Структурно-функциональные особенности бобово-ризобиального симбиоза тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.05, доктор биологических наук Новикова, Татьяна Ивановна

• Новикова, Татьяна Ивановна
• доктор биологических наук
• 2004

Оглавление диссертации доктор биологических наук Новикова, Татьяна Ивановна

Введение.

Глава I. Генеалогия бобово-ризобиального симбиоза.

1.1. Морфогенез клубенька.

1.2. Эволюция симбиоза: факты и гипотезы.

1.3. Регуляция развития симбиоза.

Глава II. Объекты и методы исследования. Описание экспериментов.

Глава III. Морфоструктура корневых клубеньков бобовых.

3.1. Изучение структуры корневых клубеньков солодки уральской с помощью световой, электронной трансмиссионной и сканирующей микроскопии.

3.2. Исследование корневых клубеньков некоторых видов подсемейства

Papilionoideae методом сканирующей электронной микроскопии.

Глава IV. Влияние нодуляции на фенольный метаболизм бобовых растений.

4.1. Активность фенилаланин аммиак-лиазы (ФАЛ) и содержание растворимых фенольных соединений в проростках сои на ранних стадиях развития симбиоза.

4.2. Активность ФАЛ и динамика содержания растворимых фенольных соединений в нодулированных корнях сои в процессе вегетации.

4.3. Изучение фенольного состава корней и клубеньков сортов и мутантных линий гороха, различающихся по симбиотической активности.

4.4. Активность окислительных ферментов (пероксидазы, флавонол-оксидазы) в корнях и клубеньках различных сортов гороха.

Глава V. Действие экзогенных фенольных соединений на симбиоз.

5.1. Влияние фенолокислот, оксикумаринов, флавонолов на образование клубеньков у клевера лугового.

5.2. Действие флавонолов и оксикумаринов на нитрогеназную активность.

5.3. Ультраструктура корневых клубеньков при действии ФС.

5.4. Использование модельных ассоциаций Rhizobium-корневые каллусы бобовых для изучения активности ФС.

Глава VI. Эффект действия физиологически активных веществ на симбиоз.

6.1. Влияние гиббереллинов на образование клубеньков.

6.2. Действие фузикокцина на нодуляцию клевера лугового.

Глава VII. Испытание фенольных соединений как стимуляторов симбиоза в полевых условиях.

7.1. Влияние фенольных стимуляторов симбиоза на продуктивность сои.

7.2. Действие фенольных соединений на продуктивность люцерны.

Глава VIII. Функционирование бобово-ризобиального симбиоза при неблагоприятных условиях среды.

8.1. Влияние теплового стресса на симбиоз.

8.2. Воздействие хлоридного засоления на азотфиксирующий симбиоз.

8.3. Действие нитратов на ультраструктуру корневых клубеньков симбиотических мутантов гороха.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Структурно-функциональные особенности бобово-ризобиального симбиоза»

Проблемы сохранения окружающей среды и устойчивого развития сельского хозяйства стимулируют современный мультидисциплинарный подход к исследованиям, стратегическая цель которых - повышение интенсивности фиксации азота как за счет азотфиксирующего потенциала бобовых, так и путем создания новых симбиотических ассоциаций с небобовыми селькохозяйственными культурами.

Растения семейства Бобовые (Fabaceae Lindl.), благодаря своей уникальной способности вступать в симбиотические отношения с клубеньковыми бактериями, имеют «встроенный» источник азота, позволяющий им удовлетворять свои потребности в этом основном элементе питания при недостаточном содержании его в почве.

Симбиоз между клубеньковыми бактериями и бобовыми растениями основывается на сложной последовательности морфофизиологических изменений клеток партнеров. Начальные стадии взаимодействия инициируются каскадом сигналов, которыми симбионты обмениваются между собой, и сопровождаются серией молекулярных взаимодействий. Первичным сигналом служат специфические фенольные соединения (ФС), в частности флавоноиды, выделяемые корнями в ризосферу и вызывающие хемотаксис и экспрессию генов нодуляции у ризобий. В ответ бактерии синтезируют липохитоолигосахариды (Nod-факторы), запускающие программу развития корневых клубеньков. Аспекты молекулярного взаимодействия партнеров на начальных стадиях в основном известны, однако комплексный подход к использованию этих знаний для улучшения нодуляции и азотфиксации до сих пор не разработан. Не ясен и механизм регуляции более поздних этапов развития симбиоза.

Электронно-микроскопические исследования корневых клубеньков позволяют проследить взаимосвязь их структуры и функциональной активности. Морфоструктура клубеньков отдельных видов бобовых отражает различия как в инфекционном процессе, так и в программах органогенеза. Более того, эта характеристика симбиотических структур является важным таксономическим признаком и связана с эволюционным положением видов внутри семейства Fabaceae. (Corby, 1981,1988; Sprent, Raven, 1992; Doyle, 1998). Исследования морфологии, анатомии и развития клубеньков многочисленны, но касаются, главным образом, культурных растений. Детали морфоструктуры и онтогенеза клубеньков дикорастущих, особенно сибирских видов, изучены недостаточно.

Цель и задачи исследования. Цель работы - выявление структурно-функциональных связей бобово-ризобиального симбиоза и определение механизмов повышения его эффективности.

Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить ультраструктуру корневых клубеньков модельных дикорастущих сибирских видов и интродуцентов с помощью методов сканирующей микроскопии.

2. Определить влияние нодуляции на фенольный метаболизм бобовых растений.

3. Проанализировать действие экзогенных фенольных соединений и физиологически активных веществ на симбиоз.

4. Разработать биотехнологические методы усиления эффективности симбиотической азотфиксации в полевых условиях.

5. Определить пути повышения устойчивости симбиотических ассоциаций при действии стрессовых факторов (температуры, засоления, нитратов). Основные положения диссертации, выносимые на защиту.

1. Морфология бактероидов и особенности их распределения в растительных клетках специфичны на уровне вида.

2. Процесс нодуляции бобовых растений сопровождается активизацией метаболизма фенольных соединений, свидетельствующей об их участии в регуляции онтогенеза корневых клубеньков.

3. Ряд природных фенольных соединений в низких концентрациях стимулирует нодуляцию и азотфиксацию, повышает устойчивость симбиоза к стрессам, что является основой для создания биотехнологических препаратов, способствующих увеличению продуктивности бобовых культур.

Научная новизна. Впервые с помощью метода сканирующей микроскопии проанализирована структура корневых клубеньков 16 модельных видов (дикорастущих и интродуцентов) из 6 триб подсемейства Papilionoideae семейства Fabaceae и показана ее специфичность на уровне вида. При изучении фенольного метаболизма в корнях и корневых клубеньках линий гороха, различающихся по уровню симбиотической активности, впервые обнаружен специфический фермент флавонолоксидаза. Установлен стимулирующий эффект низких концентраций ряда фенольных соединений на нодуляцию и азотфиксацию. Проведен анализ взаимосвязи структуры и функциональной активности симбиотических систем при различных типах стрессовых воздействий.

Практическая значимость. Полученные нами данные, касающиеся особенностей функционирования симбиотических систем в стрессовых условиях, позволяют определить новые подходы к решению задачи повышения устойчивости симбиоза к экстремальным факторам среды.

Результаты полевых испытаний, показавшие эффективность комплексного использования изучаемых фенольных соединений и нитрагина, рекомендуется учитывать при разработке новых биотехнологических методов повышения продуктивности бобовых культур.

Апробация работы. Результаты работы были отражены в докладах на конференциях молодых ученых ботанических садов СССР (Каунас, 1979; Белая церковь, 1984), IV и V симпозиумах по фенольным соединениям

Ташкент, 1982; Таллинн, 1987), на 7, 8, и 9 Баховских коллоквиумах по азотфиксации (Тбилиси, 1983; Кобулети, 1988; Москва, 1995), VII съезде Всесоюзного микробиологического общества (Алма-Ата, 1985), Международном симпозиуме по физиологии, биохимии, генетике солеустойчивости растений (Ташкент, 1992), II, III и V съездах физиологов растений (Минск, 1992; С.-Петербург, 1993; Москва, 1999), Международном симпозиуме по роли фенольных соединений в устойчивости растений (Германия, 1993), X Международном Конгрессе по азотфиксации (С.Петербург, 1995), Международном симпозиуме по стрессу (Москва, 1996), VIII Международном Конгрессе по бактериологии и прикладной микробиологии (Иерусалим, 1997), Всероссийском совещании в честь 120-летия ТГУ (Томск, 1999).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 36 работ, включая коллективную монографию.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 225 страницах машинописного текста, состоит из введения, 8 глав, заключения, списка литературы, и включает 57 рисунков и 21 таблицу. Список литературы состоит из 442 источников, в том числе 3 59 - иностранных авторов.

Заключение диссертации по теме «Ботаника», Новикова, Татьяна Ивановна

Заключение

Впервые с помощью метода сканирующей микроскопии исследована ультраструктура корневых клубеньков 16 модельных видов растений из 6 триб подсемейства Papilionoideae, относящихся в зависимости от положения меристемы, к недетерминированному или детерминированному типам. Установлено сходство в строении инфекционных нитей у всех изученных видов, кроме люпина многолистного, у которого нити встречаются только в молодых клубеньках, а затем распадаются. При изучении морфологии бактероидов и особенностей их расположения в зараженных клетках макросимбионта обнаружена видовая специфичность. Полученные результаты показывают, что генотип растения-хозяина определяет не только структуру клубенька в целом, но и на ультраструктурном уровне влияет на морфологию микросимбионта - клубеньковых бактерий, которые, как известно, в свободноживущем состоянии имеют палочковидную форму (Новикова, Гордиенко, 2001).

Показана особая роль фенольных соединений в регуляции бобово-ризобиального симбиоза. Установлено, что в процессе вегетации сои до стадии бутонизации происходит накопление ФС, что коррелирует с ростом активности ФАЛ, ключевого фермента биосинтеза этих вторичных соединений.

Анализ этанольных экстрактов корней и клубеньков мутантных линий гороха, отличающихся по симбиотической активности, проведенный с помощью хроматографических методов, выявил, что фенольные комплексы клубеньков изучаемых сортов различаются между собой, но в целом они значительно богаче по составу, чем корни. Полученные нами результаты указывают на высокую активность фенольного метаболизма в клубеньках, особенно в фазу цветения, когда уровень азотфиксации максимален.

Исследования активности ферментов, окисляющих фенольные соединения (пероксидаза, флавонолоксидаза), проведенные на мутантных линиях гороха с различной симбиотической активностью, показали усиление катаболизма фенольных соединений в корнях и клубеньках на стадии зеленых бобов, когда происходит снижение азотфиксации и начинается старение клубеньков. Флавонолоксидазная активность в корневых клубеньках обнаружена нами впервые.

Установлен стимулирующий эффект низких концентраций ряда экзогенных фенольных соединений: флавонолов (кверцетина и его производных), оксикумаринов (эскулетина, эскулина), фенолокислот (галловой, ванилиновой) на нодуляцию и азотфиксацию бобовых растений.

Индуцирующее действие флавонолов (кверцетина, рутина) на активность нитрогеназы показано также и в ассоциациях каллусных культур бобовых с Rhizobium. Моделирование симбиоза с использованием каллусов представляется довольно перспективным, поскольку позволяет создать систему для тестирования действия изучаемых веществ именно на активность процесса азотфиксации, а не на предыдущие стадии развития симбиоза.

Для систематизации представлений о возможном механизме действия фенольных соединений на различные стадии развития симбиоза нами представлена схема, основанная на анализе собственных результатов и литературных данных (рис. 57).

Согласно нашим представлениям, ФС регулируют процесс образования клубеньков, вызывая хемотаксис и экспрессию генов нодуляции у ризобий на стадии преинфекции, и участвуют в регуляции стадии инфицирования и развития клубеньков, являясь вторичными сигналами-посредниками при действии Nod-факторов на перераспределение ауксина, контролирующего процесс формирования клубенька. По полученным данным экзогенные ФС оказывают влияние и на функционирование клубеньков как органов азотфиксации (рис. 57).

Изучение действия на нодуляцию и азотфиксацию регуляторов роста дитерпеноидной природы- фузикокцина и гиббереллинов (А3 и А7) в низких концентрациях - выявило их физиологическую активность в симбиозе.

Rhizobium

Бобовые

I преинфекция nod гены

II инфицирование и развитие клубеньков

Nod факторы

ФС- вторичные эффекторы ауксин гивацня клеточного деления

Ш функционирование клубеньков как органов азотфиксации

Рис. 57. Схема действия ФС на бобово-ризобиальный симбиоз.

Существенный прорыв в области фундаментальных исследований по регуляции бобово-ризобиального симбиоза позволяет приступить к ^ практическому использованию полученных знаний.

Нами предлагается использование экзогенных регуляторов симбиоза, например, изученных ФС в низких концентрациях, оптимизирующих функционирование симбиотических систем. Впервые проведены полевые исследования, показавшие эффективность совместного действия экзогенных фенольных соединений, стимулирующих симбиоз (кверцетина, рутина, эскулетина), и нитрагина на однолетних и многолетних бобовых культурах. Предлагаемый метод, повышающий эффективность коммерческих инокулянтов, рекомендуется для создания новых экологически чистых, рентабельных технологий.

Анализ действия различных стрессовых факторов (высокой температуры, хлоридного засоления, нитратов) на ультраструктуру корневых клубеньков и уровень азотфиксации позволил проследить взаимосвязь структуры и функциональной активности.

Выявлены особенности специфического действия экстремальных факторов на ультраструктуру клубеньков: показан разрыв клеточных оболочек клубеньков клевера, вызывающий дезинтеграцию всей системы при тепловом * стрессе, плазмолиз растительных клеток и бактероидов клубеньков солодки, характерный для хлоридного стресса, преждевременное старение бактероидсодержащей ткани клубеньков гороха, спровоцированное нитратами.

Установлены общие закономерности нарушения развития азотфиксирующих симбиозов. Для всех изученных видов стрессовых воздействий характерна корреляция между снижением уровня азотфиксации и нарушением компартментации симбиотической системы. В первую очередь при рассмотренных типах стрессов страдают эукариотические клетки ф (увеличивается площадь перибактероидных пространств, происходит их слияние, нарушается целостность мембран), и лишь затем повреждаются бактероиды.

В качестве приемов, повышающих устойчивость симбиотических ассоциаций, предлагается использование антиоксидатных свойств ФС (на примере теплового стресса), подбор пар микро- и макросимбионтов, проявляющих толерантность в природе (на примере солеустойчивой системы солодки уральской), а также генетический подход - создание суперклубеньковых мутантов, способных успешно фиксировать азот на фоне нитратов.

Проведенные нами исследования установили взаимосвязь структуры и функции симбиотической системы на клеточном и субклеточном уровнях. На молекулярном уровне показана связь между структурой и функцией ФС, являющаяся основой их физиологической активности.

Анализ полученного материала позволяет расширить наши представления о функциональной активности фенольных соединений в бобово-ризобиальном симбиозе. Эти вторичные соединения не только инициируют симбиоз, выступая в роли хемоаттрактантов, и индуцируют транскрипцию генов нодуляции на стадии инфицирования и формирования клубеньков, но и являются регуляторами физиологического состояния симбиотической системы на стадиях азотфиксации и старения.

184

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Новикова, Татьяна Ивановна, 2004 год

1. Андреева И.Н. Структурно-функциональная организация взаимоотношений растительной клетки и эндофита в клубеньках бобовых и небобовых актиноризных растений: Автореф. дис.докт. биол. наук. М.:ИФР РАН, 1986. 50 с.

2. Андреева И.Н., Кожаринова Г.М., Измайлов С.Ф. Старение клубеньков бобовых // Физиология растений. 1998. Т. 45. С. 117-130.

3. Арутюнова Н.В, Шевякова Н.И. Роль источника азота в повышении солеустойчивости Arachis hypogaea L. II Изв. акад. наук СССР. Сер.биол. 1984. № 10. С. 495-501.

4. Бабаков А.В., Абрамычева Н.Ю., Билуши С.В., Шевченко В.П. Исследования взаимодействия фузикокцина с плазматическими мембранами высших растений // Биол. Мембраны. 1990. Т. 7. С. 107-112.

5. Бленда И.Ф. Фенольные соединения плодов яблони и их биологическая активность // Автореф. дис.канд. биол. наук. Киев., 1972. 29 с.

6. Бондаренко А.И. Влияние пониженной температуры на содержание биологически активных веществ в изолированных листьях донника лекарственного // Биологически активные вещества в жизни растений и животных. Минск:Высшая школа, 1973. С. 71-74.

7. Вернер А.Р., Гордиенко Н.Я. Корневые клубеньки дикорастущих бобовых растений Горного Алтая // Микроорганизмы и зеленое растение. Новосибирск:Наука, 1967. С. 23-27.

8. Гончаров П.Л. Научные основы травосеяния в Сибири. М.:Агропромиздат, 1986. 288 с.

9. Гордиенко Н.Я., Яковлева З.М. Топография инфекционных нитей в корневых клубеньках бобовых растений // Изв. АН СССР. Сер. биол. наук. 1975. №3. С. 466-471.

10. Гордиенко Н.Я. Изучение инфекционных нитей в клубеньках клевера методом сканирующей электронной микроскопии // Изв. АН СССР. Сер. биол. наук. 1982. № 1.С. 148-152.

11. Гродзинский A.M., Гродзинский Д.М. Краткий справочник по физиологии растений. Киев:Наукова думка, 1964. 387 с.

12. Гукова М.М. Усвоение азота бобовыми растениями при различной температуре почвы // Докл. ТСХА. 1960. Вып. 67. С. 77-85.

13. Гукова М.М. Источники питания бобовых растений азотом и их использование в онтогенезе // Докл. ТСХА. 1974. Вып.203. С. 39-55.

14. Демарчук Г.А., Донова J1.B., Данилов В.П., Новикова Т.И., Цейтлина В.Р. Влияние стимуляторов роста на продуктивность люцерны в лесостепи Западной Сибири // Вестник российской акад. с.х. наук. 1996. № 4. С. 49-52.

15. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М., 1985. 386. с.

16. Енкен В.Б. Соя. М.:Сельхозгиз, 1959. 622 с.

17. Жанаева Т. А., Минаева В. Г., Запрометов М. Н. О флавонолокисляющих ферментах гречихи // Физиология и биохимия культур, растений. 1986. Т. 18. № 1.С. 82-86.

18. Закиров К.З., Нигматов С.Х. Солеустойчивость и мелиоративный эффект солодки и других сырьевых растений на засоленных землях // Материалы IV Всесоюзного симпозиума по солеустойчивости растений. ФАН, 1986. С. 156.

19. Запрометов М.Н. Основы биохимии фенольных соединений. М:Высшая школа, 1974. 214 с.

20. Запрометов М.Н. Фенольные соединения и их роль в жизни растения. М.:Наука., 1996. 45 с.

21. Кореньков Д.А. Агрохимия азотных удобрений. М:Наука., 1976. 145 с.

22. Крогулевич Р. Е. К методике отбора растений на солеустойчивость // Физиология и биохимия культ, растений. 1990. Т. 22. № 6. С. 602-607.

23. Кузин В.Ф. Возделывание сои на Дальнем Востоке. Благовещенск: Хабаровское кн.изд-во., 1976. 246 с.

24. Лебедев Е.М. Возможные экологические последствия избыточного применения азотных удобрений // Минеральный и биологический азот в земледелии СССР. М.:Наукова думка, 1985. С. 41-49.

25. Майстренко Г.Г., Гордиенко Н.Я. Анчугова Е.С. Эффект высоких доз азотной подкормки на симбиоз сои с клубеньковыми бактериями // Сибирский экол. журнал. 1999. №3. С. 303-313.

26. Майстренко Г.Г., Новикова Т.Н., Гордиенко Н.Я. Экологические аспекты функционирования бобово-ризобиального симбиоза // Материалы Всероссийского совещания в честь 120-летия ТГУ. Томск, 1999. С. 88-91.

27. Макарова Л.Е., Лузова Г.Б., Ломоватская Л.А. Роль эндогенных фенольных соединений в инфицировании Rhizobium leguminosarum корней гороха при низкой температуре // Физиология растений. 1998. Т.45. С. 824-832.

28. Мамедов К.Ю.О. Моделирование симбиотической ассоциации клубеньковые бактерии — бобовые растения (на примере инфицированных каллусов люцерны): Автореф. дис.канд. биол. наук. М:ТСХА, 1979. 17 с.

29. Мийдла X., Халдре Ы., Паду Э., Яакма Ю. О влиянии фенолкарбоновых ♦ кислот на вызываемый ауксином рост растений // Физиология растений. 1982.1. Т. 29. С. 649-654.

30. Мишустин Е.Н., Шильникова В.К. Клубеньковые бактерии и инокуляционный процесс. М., 1973. 288 с.

31. Моржина Е.В., Борисов А.Ю., Куликова О.А., Лебский В.К. Ультраструктурный анализ эффективных и неэффективных клубеньков гороха // Цитология. 1991. Т. 33. № 3. С. 3-6.

32. Муромцев Г.С. Фузикокцин новый фитогормон? // Физиология растений. 1996. Т. 43. С. 478-492.

33. Муромцев Г.С., Коренева В.М., Краснопольская JI.M. О некоторых физиологических эффектах нового регулятора роста фузикокцина // С.-х. биол. 1980. Т. 15. №6. С. 699-701.

34. Муромцев Г.С., Пеньков JI.A. Гиббереллины. М., 1962. 231 с.

35. Муромцев Г.С., Чкаников Д.И., Кулаева О.Н., Гамбург К.З. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М., 1987. 383 с.

36. Муромцев Г.С., Агнистикова В.Н. Гиббереллины. М., 1973. 270 с.

37. Ничик М.М. Старченков Е.П. Условия, определяющие азотфиксирующую способность клубеньковых бактерий в ассоциации с клетками растений // Изв. АН СССР. Сер биол. наук. 1981. № 5. С. 691-697.

38. Новикова Т.И., Яковлева З.М. Влияние кверцетина и его производных на инфицирование клевера клубеньковыми бактериями // Тезисы IV Всесоюзного симпозиума по фенольным соединениям. Ташкент, 1982. С. 69-70.

39. Новикова Т.И. Фенольные индукторы бобово-ризобиального симбиоза //Тез. VII съезда Всесоюзного микробиологического общества. Алма-Ата, 1985. Т. 7. С. 52.

40. Новикова Т.И., Цейтлина В.Р. Активность фенилаланин-аммиак-лиазы и пероксидазы на ранних стадиях инфицирования проростков соиклубеньковыми бактериями //Изв. СО АН СССР. Сер. биол.наук. 1988. Вып. 1. С. 83-86.

41. Новикова Т.И., Цейтлина В.Р., Макаренко Н.Г., Васякин Н.И., Нечаева В.У. Применение фенольных стимуляторов симбиоза для повышения продуктивности сои // Сибирский вестник с.х. науки. 1988. № 5. С.24-27.

42. Новикова Т.И., Яковлева З.М. Кверцетин и его производные как стимуляторы бобово-ризобиального симбиоза // Известия СО АН СССР. Сер.биол.наук. 1989. Вып. 1. С. 63-67.

43. Новикова Т.И., Гордиенко Н.Я. Влияние стимуляторов симбиоза на ультраструктуру и азотфиксацию клубеньков клевера лугового // Тез. Всесоюзной конференции «Микроорганизмы -стимуляторы и ингибиторы роста растений». Пущино, 1989. С. 76.

44. Новикова Т.И. Цейтлина В.Р. Применение модельных ассоциаций клубеньковых бактерий с корневыми каллусами бобовых для выявления стимуляторов симбиоза // Микробиологические исследования в Западной Сибири., Наука:Новосибирск, 1989. С. 99-104.

45. Новикова Т.И., Гордиенко Н.Я. Строение азотфиксирующих клубеньков солодки уральской // Изучение и использование солодки в народном хозяйстве. Алма-Ата, 1991. С. 70-73.

46. Новикова Т.И. Аветисов J1.A. Физиолого-биохимические аспекты симбиоза // Биологическая фиксация азота. Наука:Новосибирск, 1991. С. 95-112.

47. Новикова Т.И. Влияние температурного стресса на восстановление азотфиксации после теплового стресса // Труды II Всесозного съезда физиологов растений. Минск, 1992. С. 149.

48. Новикова Т.И., Гордиенко Н.Я. Строение корневых клубеньков солодки уральской // Цитология. 1995. Т. 37. № 3. с. 208-212.

49. Новикова Т.И., Гордиенко Н.Я. Особенности ультраструктуры бактероидсодержащей ткани корневых клубеньков некоторых видов бобовых// Труды V съезда физиологов растений. Москва, 1999. Т. VII. С. 690.

50. Новикова Т.И., Гордиенко Н.Я. Особенности функционирования симбиотической системы Rhizobium-Glycyrrhiza uralensis в условиях хлоридного засоления//Сибирский экол. журнал. 1999. № 3. С. 295-302.

51. Новикова Т.И., Гордиенко Н.Я. Исследование корневых клубеньков некоторых видов подсемейства Мотыльковые методом сканирующей электронной микроскопии // Цитология. 2001. Т. 43. № 2. С. 107-113.

52. Новикова Т.И., Сидорова К.К. Исследование фенольного состава сортов и мутантных линий гороха, различающихся по симбиотической активности // Сибирский экол. журнал. 2003. № 1. С. 101-106.

53. Обручева Н.В., Антипова О.В. Фузикокцин как вероятный эндогенный фактор прорастания семян // Докл. РАН. 1992. Т. 325. С. 412-415.

54. Панкова И.А., Никитин А.А. О клубеньках камеденосных астрагалов // Тр.Ботан. ин-та. 1961. Сер. 5. С.256-261.

55. Пленник Р.Я. Морфологическая эволюция бобовых Юго-Восточного Алтая (на примере родовых комплексов Astragalus L. И Oxytropis DC.). НовосибирскгНаука, 1976. 216 с.

56. Пленник Р.Я. Стратегии биоморфологической микроэволюции полиморфного вида Medicago falcata L. в Сибири. Новосибирск:Наука, 2002. 94 с.

57. Полевой В.В. Роль ауксина в системах регуляции у растений. Л., 1982. 79 с.

58. Проворов Н.А. Эволюция генетических систем симбиоза у клубеньковых бактерий // Генетика. 1996. Т. 32. № 8. С. 1029-1040.

59. Сидорова К.К., Ужинцева Л.П. Использование мутантов для выявления генов, контролирующих симбиотические признаки у гороха // Генетика. 1992. Т. 28. №4. С. 144-151.

60. Сидорова К.К., Гордиенко Н.Я., Новикова Т.И. Ультраструктура корневых клубеньков мутантов гороха с различной эффективностью симбиоза // Цитология. 1995.Т. 37. № 9/10. С. 849-852.

61. Сидорова К.К., Шумный В.К. Новый ген гороха (Pisum sativum L.) Nods-nods, контролирующий нодуляцию // ДАН. 1997. Т. 353. С. 703-704.

62. Сидорова К.К., Шумный В.К. Генетика симбиотической азотфиксации и основы селекции для самоопыляющихся бобовых культур (на примере Pisum sativum L.) // Генетика. 1999. Т. 35. С. 1550-1557.

63. Сидорова К. К., Шумный В. К., Т.М. Мищенко Т.М. Хромосомная локализация гена Nod5, контролирующего нодуляцию у гороха {Pisum sativum L) // ДАН. 1999. Т. 367. С. 851-852.

64. Тихонович И.А. Проворов Н.А. Генетика симбиотической азотфиксации с основами селекции. С.Петербург.: Наука, 1998. 194 с.

65. Трепачев Е.П. Значение биологического и минерального азота в проблеме белка // Минеральный и биологический азот в земледелии СССР. М.:Наукова думка. 1985. С. 27-37.

66. Уикли Б. Электронная микроскопия для начинающих. М.:Мир., 1975. 324 с.

67. Федорова Е.Э., Жизневская Г.Я., Альжанпарова Ж.К., Измайлов С.Ф. Фитогормоны в азотфиксирующих клубеньках бобовых растений // Физиология и биохимия культ, растений. 1991. Т. 23. № 4. С. 426-438.

68. Хавкин Э.У., Переляева А.И. Фенилаланин-аммиак-лиаза и накопление растворимых фенольных соединений в растущих и зрелых клетках корня и колеоптиля кукурузы // ДАН СССР. 1970. Т. 193. С. 227-231.

69. Хайлова Г.Ф., Ларькова Т.П. Действие хлоридного засоления на формирование и активность симбиотической системы люцерны // Физиология растений. 1992. Т. 39. С. 326-333.

70. Хайлова Г.Ф., Мамедов Л.Ю., Шильникова В.К., Ильясова В.Б. Симбиотическая ассоциация каллусов корней люцерны с Rhizobium meliloti II Изв.ТСХА. 1977. Вып.4. С. 18-22.

71. Шапошников Г.Л. Газохроматографическое определение азотфиксирующей активности нитрогеназы // Биохимические методы. М.:Наука, 1980. С. 207-210.

72. Шемаханова Н.М., Бонарцева Г.А. Нитрогеназная активность штаммов Rhizobium meliloti при совместном культивировании с тканью донника // Изв. АН СССР. Сер. биол. наук. 1979. №. 1. С. 151-154.

73. Шильникова В.К., Ярыгин Л.А., Шатта A.M. Начальные этапы инфицирования люцерны клубеньковыми бактериями // Изв. АН СССР. Сер. биол. наук. 1975. № 2. С. 307-314.

74. Шипилова С.В., Запрометов М.Н. Локализация фенилаланин-аммиак-лиазы в хлоропластах кукурузы // Физиология растений. 1980. Т. 27. С. 67-73.

75. Юркова Г.Н., Ничик М.М., Левенко Б.А., Старченков Е.П. Фиксация молекулярного азота клубеньковыми бактериями люпина в ассоциации с клетками табака и пшеницы .// ДАН СССР. Т. 230. С. 1006-1008.

76. Яковлев Г.П. Бобовые земного шара. Л., 1991. 144 с.

77. Яковлева З.М. Бактероиды клубеньковых бактерий. Новосибирск:Наука, 1975. 172 с.

78. Яковлева З.М., Майстренко Г.Г. Влияние минерального азота на бобово-ризобиальный симбиоз и его утилизацию посредством симбиоза // Минеральный и симбиотический азот в земледелии СССР. М.:Наука,1985. С.190-193.

79. Abdel-Wahab Н. Н., Zahran Н.Н. Effects of salt stress on nitrogenase activity and growth of four legumes // Biol. Plant (Prague). 1981.V. 23. P. 16-23.

80. Abdel-Wahab S. M., El-Mokadem M. Т., Helemish F. A., Abou El-Nour M. M.

81. The symbiotic performance of Bradyrhizobium japonicum under stress of salinized irrigation water // Ain. Shams. Sci. Bull. 1991. V. 28B. P. 469-488.

82. Aguilar J. M. M., Ashby A. M., Richards A. J. M., Loake G. J., Watson M. D., Shaw C.H. Chemotaxis of Rhizobium leguminosarum biovar phaseoli towards flavonoid inducers of symbiotic nodulation genes // J. Gen. Microbiol. 1988.V. 134. P. 2741-2746.

83. Albrecht C., Geurts R., Bisseling T. Legume nodulation and mycorrhizae formation: two extremes in host specifity meet // EMBO J. 1999. V. 18. P. 281-288.

84. Alexandre G, Greer-Phillips S, Zhulin I.B. Ecological role of energy taxis in microorganisms // FEMS Microbiol Rev. 2004.V. 28. P. 113-126.

85. Allan G.J., Porter J.M. Tribal delimitation and phylogenic relationships of1.teae and Coronilleae (Fabaceae) with special reference to Lotus: evidence from nuclear ribosomal ITS sequences // Amer. J. Bot. 2000. V. 87. P. 1871-1881.

86. Allen E.K., Allen O.N., Newman A.S. Pseudonodulation of leguminous plants induced by 2-bromo-3,5-dichlorobenzoic acid // Amer. J. Bot. 1953. V. 40. P. 429435.

87. Allen E.K., Allen O.N. The Leguminosae. A sourse book of characteristics, uses and nodulation. Madison:The University of Wisconsin Press, 1981. 800 p.

88. Alibert G., Ranjeva R., Boudet A.M. Organization subcellulaire des voies desynthese des composes phenoligues // Physiol, veg. 1977. V. 15. P. 279-301.

89. Appelbaum E. The Rhizobium/Bradyrhizobium -legume symbiosis // Molecular biology of symbiotic nitrogen fixation. CRC Press: Boca Raton, 1990. P. 131-158.

90. Armitage J.P., Gallagher A., Johnston A.W. Comparison of the chemotactic behaviour of Rhizobium leguminosarum with and without the nodulation plasmid. //Mol Microbiol. 1988. V. 2. P. 743-748.

91. Arora N., Skoog F., Allen O.N. Kinetin-induced pseudonodules on tobacco roots // Amer. J.Bot. 1959. V. 46. P. 610-613.

92. Baker В., Zambryski P., Staskawicz В., Dinesh-Kumar S. P. Signaling in plant microbe interactions // Science. 1997. V. 276. P. 726-733.

93. Baker M.E. Evolution of regulation of steroid-mediated intercellular communication in vertebrates: insights from flavonoids, signals that mediate plant-rhizobia symbiosis//J Steroid Biochem. Mol. 1992. V. 41. P. 301-308.

94. Ballio A., Chain E.B., De Leo P., Erlanger B.F., Mauri M., Tonolo A.щ

95. Fusicoccin: a new wilting toxin produced by Fussicoccum amygdali Del. // Nature. 1964. V. 203. P. 297.

96. Bandyopadhyay A. K., Jain V., Nainawatee H. S. Nitrate alters the flavonoid profile and nodulation in pea {Pisum sativum L.) // Biol. Fertil. Soils. 1996. V. 21. P. 189-192.

97. Bauer P., Ratet P., Crespi M.D., Schultze M., Kondorosi A. Nod factors and cytokinins induce similar cortical cell division, amyloplast deposition and msenod 12a expression patterns in alfalfa roots // Plant J. 1996. V. 10. P. 91-105.

98. Bauer W.D. Infection of legumes by Rhizobia II Annu Rev Plant Physiol. 1981. V. 32. P. 407-449.

99. Bauer P., Ralet P., Crespi M.D., Schultze M., Kondoroshi A. Nod factors and cytokinins induce similar cortical cell division, amyloplast deposition and * MsEnodl2A expression patterns in alfalfa roots // Plant J. 1996. V. 10. P. 91-105.

100. Becana M., Aparicio-Tejo P.M., Sanchez-Diaz M. Nitrate and nitrite reduction inthe plant fraction of alfalfa root nodules // Physiol. Plant. 1985. V. 65. P. 185-188.

101. Bejerinck M.W. Uber die Natur der Faden Papilionaceen-knollchen // Zbl.Bacterid. 1894. Bd. 15(19/20). S. 728-732.

102. Bender G.L., Nayudu M., Strange K.K.L., Rolfe B.G., The nodDl gene from Rhizobium strain NGR234 is a key determinant in the extention of host range to the nonlegume Parasponia II Mol.Plant-Microbe Interact. 1988. V. 1. P. 259-266.

103. Bergersen F.J. The cytology of bacteroids from root nodules of subterranean clover//J.Gen.Microbiol. 1955. V. 13. P. 411-419.

104. Bergensen F.J. Some Australian studies relating to the longterm effects of the inoculation of the legume seeds // Plant and Soil. 1970. V. 32. P. 726-736.

105. Bergersen F.J. Formation and function of bacteroids // The biology of nitrogen fixation. Amsterdam, 1974. P. 473-498.

106. Bladergroen M.R., Spaink H.P. Genes and signal molrcules involved in the r\\\zoh\a-Leguminoseae symbiosis // Current Opinion in Plant Biology. 1998. V. 1. P. 353-359.

107. Bohlool B.B., Schmidt E.L. Lectins: a possible basis for specificity in the Rhizobium-legume root nodule symbiosis // Science. 1974. V. 185. P. 269-271.

108. Bors W., Heller W., Michel C., Saran M. Flavonoids as antioxidants: determination of radical-scavenging efficiencies // Methods Enzymol. 1990. V. 186. P. 343-355.

109. Bors W., Michel C., Saran M. Flavonoid antioxidants: rate constants for reactions with oxygen radicals // Methods Enzymol. 1994. V. 234. P. 420-429.

110. Bottomley P. Ecology of Rhizobium and Bradyrhizobium II Biological nitrogen fixation / G. Stacey, R. H. Burris, and H. J. Evans (ed.). Chapman & Hall: New York, 1991. P. 292-347.

111. Brewin N.J. Rhizobium-legume symbiosis: plant morphogenesis in a nodule // Seminars in Cell Biology. 1993. V. 4. P. 149-156.

112. Brewin N.J. Tissue and cell invasion by Rhizobium: the structure and development of infection threads and symbiosomes // The Rhizobiaceae / Eds. Spaink HP, Kondorosi A. Kluwer, 1998. P. 417-429.

113. Broughton W.J., Perret X. Genealogy of legume-Rhizobium symbiosis // Current opinion in Plant Biology. 1999. V. 2. P. 305-311.

114. Broughton W.J., Jabbouri S., Perret X. Key to symbiotic harmony // J. Bact., 2000. V. 182 P. 5641-5652.

115. Browmick P.K., Basu P.S. Contents of hormones and indole acetic acid metabolism in root nodules of Erythrine indica Lame., Sesbania grandiflora Pers. and Pterocarpus santallines Lill // Biochem. Physiol.Pflanz. 1984. V. 179. P. 455462.

116. Burg D.,Guillaume J.,Tailliez R. Chemotaxis by Rhizobium meliloti II Arch. Microbiol. 1982. V. 133. P. 162-163.

117. Caba J.M., Centeno M.L., Fernandez В., Gresshoff P.M., Ligero F. Inoculation and nitrate alter phytohormone levels in soybean roots: differences between a supernodulating mutant and the wild type // Planta. 2000. V. 211. P. 98-104.

118. Caetano-Anolles G., Wrobel-Berber E., Bauer W.D. Growth and movement of spot inoculated Rhizobium meliloti on the root surface of alfalfa // Plant physiol. 1992. V. 9. P. 1181-1189.

119. Caetano-Anolles G., Joshi P.A., Gresshoff P.M. Nodulation in the absence of Rhizobium И Plant Biotechnology and Development. CRC Press, 1992. P. 61-70.

120. Carroll B.J. Gresshoff P.M. Nitrate inhibition and nitrogen fixation in white clover // Z.Pflanzenphysiol. 1983. V. 110. P. 77-88.

121. Carroll В .J., Mathews A. Nitrate inhibition of nodulation in legumes // Molecular Biology of Symbiotic Nitrogen Fixation / Ed. Gresshoff P.M. CRC Press: FL, 1990. * P. 159-180.

122. Castelluccio C., Paganga G., Melikian N., Bolwell G.P., Pridham J., Sampson J., Rice-Evans C. Antioxidant potential of intermediates in phenylpropanoid metabolism in higher plants // FEBS Lett. 1995. V. 368. P. 188-192.

123. Charon C., Johansson C., Kondorosi E., Kondorosi A., Crespi M. Enod 40 induces dedifferentiation and division of root cortical cells in legumes // Proc Natl Acad Sci USA. 1997. V. 94. P. 8901-8906.

124. Child J.J., LaRue T.A. A simple technique for the establishment of nitrogen in soybean callus culture // Plant Physiol. 1974. V. 53. P. 88-92.

125. Child J.J. Nitrogen fixation by a Rhizobium sp. Association with nonleguminous plant cell cultures // Nature. 1975. V. 253. P. 350-357.

126. Cho M., Harper J. Effect of inoculation and nitrogen on isoflavonoid concentration in wild-type and nodulation-mutant soybean roots // Plant Physiol. 1991 a. V. 95. P. 435-442.

127. Cho M., J. Harper J. Root isoflavonoid response to grafting between wild-type and nodulation-mutant soybean plants // Plant Physiol. 1991 b. V. 96. P. 1277-1282.

128. Chen P., Phillips D.A. Induction of root nodule senescence by combined % nitrogen in Pisum sativum L. // Plant Physiol. 1977. V. 59. P. 440-442.

129. Cheng H.-P., Walker G.C. Succinoglycan is required for initiation and elongation of infection threads during nodulation of alfalfa by Rhizobium meliloti II J.Bacteriol. 1998. V. 180. P. 5183-5191.

130. Cohna J., Daya R.B., Stacey G. Legume nodule organogenesis // Trends Plant Sci. 1998. V. 3: P. 105-110.

131. Coronado C., Sanchez-Andujar В., Palomares A.J. Rhizobium extracellular structures in the symbiosis // World J. Microbiol. Biotechnol. 1996. V. 12. P. 127* 136.

132. Cote R., Bordeleau L. M., Lapointe J., Grodzinski B. Carbon partitioning in nodulated alfalfa in the presence of nitrate // Can. J. Microbiol. 1989. V. 67. P. 19982004.

133. Corby H.D.L. The systematics value of leguminous root nodules // Advance in Legume Systematics. Kew, 1981. V. 2. P. 657-669.

134. Corby H.D.L. Types of rhizobial nodules and their distribution among the Leguminosae . Kirkia, 1988. V. 13. P. 53-123.

135. Cordovilla M. P., Ocana A., Ligero F., C. Lluch C. Salinity effects on growth analysis and nutrient composition in four grain \egumes-Rhizobium symbiosis // J. Plant Nutr. 1995. V. 18. P. 1595-1609.

136. Cooper J.E., Rao J.R. Localized changes in flavonoids biosynthesus in roots of Lotus pedunculatus after infection by Rhizobium loti И Plant Physiol. 1992. V. 100. P. 444-450.

137. Cooper J.B., Long S.R. Morphogenetic rescue of Rhizobium meliloti nodulation mutants by trans-zeatin secretion // Plant Cell. 1994. V. 6. P. 215-225.

138. Cooper J. E., Rao , J. R., Everaert E., De Cooman L. Nitrogen Fixation: Fundamental and Applications. Kluwer Academic Publishers:

139. Dordrecht/Boston/London, 1995. P. 287-293.

140. Csonka, L. N., Hanson A. D. Prokaryotic osmoregulation: genetics and physiology // Annu. Rev. Plant Physiol. 1991. V. 45. P. 569-606.

141. Cullimore J.V., Ranjeva R., Bono J.-J. Perception of lipo-chitooligosaccharidic Nod factors in legumes // Trends in Plant Science. 2001. V. 6. P. 24-30.

142. Dakora F.D., Joseph C.M., Phillips D.A. Alfalfa {Medicago sativa L.) root exudates contain isoflavonoids in the presence of Rhizobium meliloti II Plant physiol. 1993. V. 101. P. 819-824.

143. Dart P.J. Scanning electron microscopy of plant roots // J. Exp. Bot. 1971. V. 22 P. 163-168.

144. Dart P.J. The infection process // Biol, nitrogen fixation. Amsterdam, 1974. P. 381-429.

145. Date R.A. Microbiological problems in the inoculation and nodulation of legumes // Plant and Soil. 1970. V. 32. P. 703-725.

146. Davidson, I. A., Robson M. J. Effect of contrasting patterns of nitrate uptake, N2-fixation, nodulation and growth of white clover // Ann. Bot. 1986. V. 57 P. 331-338.

147. Day R.B., McAlvin C.B., Loh J.T., Denny R.L., Wood T.C., Young N.D., Stacey G. Differential expression of two soybean apyrases? One of which early nodulin // Mol. Plant-Microbe Interact. 2000. V. 13. P. 1053-1070.

148. Dazzo F.B., Hubbell H.D. Cross-reactive antigens and lectins as determinants of symbiotic specifity in the Rhizobium-clover association // Appl Microbiol. 1975. V. 30. P. 1017-1033.

149. Dharmatilake A.J., BauerW.D. Chemotaxis of Rhizobium meliloti towards nodulation gene-inducing compounds from alfalfa roots //Appl. Environ.Microbiol. 1992. V. 58. P. 1153-1158.

150. Delgado M. J., Ligero F., Lluch C. Effects of salt stress on growth and nitrogen fixation by pea, faba-bean, common bean and soybean plants // Soil. Biol. Biochem. 1994. V. 26. P. 371-376.

151. Denarie J., Debelle F., Rosenberg C. Signaling and host range variation in nodulation // Annu. Rev. Microbiol. 1992. V. 46. P. 497-531.

152. Dellaporta S.L.,Calderon-Urrea A. Sex determination in flowering plants // Plant cell. 1993. V. 5. P. 1241-1251.

153. Denarie J., Debelle F., Rosenberg C. Signaling and host range variation in nodulation // Annu. Rev. Microbiol. 1992. V. 46. P. 497-531.

154. Denarie J., Debelle, F., Prome J.-C. Rhizobium lipochitooligosaccharide nodulation factors: signaling molecules mediating recognition and morphogenesis // Ann.Rev.Biochem. 1996. V. 65. P. 503-525.

155. Diaz C.L., Melchers L.S., Hookaas P.J.J., Lugtenberg E.J.J., Kijene J.W. Root lectin as a determinant of host-plant specificity in the Rhizobium-legume symbiosis. Nature. 1989. V. 338. P. 579-581.

156. Dixon M.W., Jacobson J.A., Cady C.T., Muday G.K. Cytoplasmic orientation of the naphtylphthalamic acid-binding protein in zucchini plasma membrane vesicles // ^ Plant physiol. 1996. V. 112. P. 421 -432.

157. Djordjevic M.A., Redmond J.W., Batley M., Rolfe B.G. Clovers secret specific phenoloc compounds which either stimulate or repress nod gene expression in Rhizobium trifolii IIEMBO J. 1987. V. 6. P. 1173-1179.

158. Dobert R.C., Rood S.B., Blevins D.G. Gibberellins and the legume-Rhizobium symbiosis.I. Endogenous gibberellins of lima bean {Phaseolus lunatus L.) stem and nodules // Plant physiol. 1992, a. V. 98. P. 221-224.

159. Dobert R.C., Rood S.B., Blevins D.G. Rhizobial-induced increase in internode length and identification of endogenous Gas of cowpea (Vigna unguiculata L.) stem and nodules // Journal of plant regulation. 1992 б. V. 11. P. 155-164.

160. Dobert R.C., Rood S.B., Blevins D.G. Zanewich K. Gibberellins and the legume-Rhizobium symbiosis III. Quantification of gibberellins from stem and nodules of lima and cowpea // Plant physiol. 1992 в. P. 1994-2001.

161. Downie J.A., Surin B. Either of two nod gene loci can complement the nodulation defect of a nod deletion mutant of Rhizobium leguminosarum bv. Viciae I/ Mol.Gen.Genet. 1990. V. 222. P. 81-86.

162. Doyle J.J. Phylogenetic perspectives on nodulation: evolving views of plants and * symbiotic bacteria// Trends Plant Science. 1998. V. 3. P. 473-478.

163. Doyle J.J, Doyle J.L., Ballenger J.A., Dickson E.E., Kajita T. Ohashi. H. A phylogeny of the chloroplast gene rbcL in the Leguminosae: Taxonomic Correlations and insights into the evolution of nodulation // Am. J.Bot. 1997. V. 84. P. 541-554.

164. Downie J.A. Signaling strategies for nodulation of legumes by rhizobia // Trends Microbiol. 1994. V. 2. P. 318-324.

165. Downie J.A., Walker S.A. Plant responses to nodulation factors // Curr.Opin.- Plant Biol. 1999. V. 2. P. 483-489.

166. Dullaart J., Duba L.I. Presence of gibberellin-like substances and their possible role in auxin bioproduction in root nodules and root of Lupinus luteus L. // Acta Bot.Neerl. 1970. V. 19. P. 877-883.

167. Eriksson J. Studier ofVer Leguminosernas rotknolar // Acta Univ. 1873. Bd. 10. S. 1-30.

168. Estabrook E. M, Yoder J.I. Plant-Plant Communications: Rhizosphere Signaling between Parasitic Angiosperms and Their Hosts // Plant Physiol. 1998. V. 116. P. 17.

169. Estabrook E.M., Sengupta-Gopalan C. Differential expression of phenylalanine ammonia-lyase and chalcone synthase during soybean nodule development // Plant Cell. 1991. V. 3.P. 299-308.

170. Etzler M.E., Kalsi G., Ewing N.N., Roberts N.J., Day R.B., Murphy J.B. A nod factor binding lectin with apyrase activity from legume roots // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. P. 5856-5861.

171. Faria S.M. de, Sprent J.I. Legume nodule development: an evolutionary hypothesis // Advances in Legume Systematics. Kew, V. 5. 1994. P. 33-39.

172. Feinbaum R.L., Storz G., Ausubel F.M. High intensity and blue light regulated expression of chimeric chalcone synthase genes in transgenic Arabidopsis thakiana plants // Mol. Gen.Genet., 1991. V.226. P. 449-456.

173. Fellay R., Perret X., Viprey V., Broughton W.J., Brenner S. Organization of host-inducible transcripts on the symbiotic plasmid of Rhizobium sp. NGR234 // Mol. Microbiol. 1995. V. 16. P. 657-667.

174. Ferguson B.J., Mathesius U. Signalling interactions during nodule development // J. Plant Growth. Regul. 2003. V. 22. P. 47-72.

175. Firmin J.L., Wilson K.E., Rosen L., Johnston A.W.B. Flavonoid activation of nodulation genes in Rhizobium reversed by other compounds present in plants // Nature. 1986. V. 324. P. 90-92.

176. Fritzemeier K.H., Kindl H. Coordinate induction by UV light of stilbene synthase? Phenylalanine ammonia-lyase and cinnamate 4-hydroxylase in leaves of Viticeae II Planta. 1981. V. 151. P. 48-52.

177. Fyson A., Sprent J. The devepment of primary root nodules on Vicia faba L. at two temperatures // Ann. Bot. 1982. V. 50. P. 681-688.

178. Gage D.J. Handing by a thread: invasion of legume plants by rhizobia // Current Opinion in Microbiology. 2000. V. 3. P. 613 617.

179. Georgiev, G. I., and C. A. Atkias. Effects of salinity on N2 fixation, nitrogen metabolism and export and diffusive conductance of cowpea root nodules // Symbiosis. 1993. V.15. P. 239-255.

180. Geurts R., Bisseling T. Rhizobium Nod factor perception and signalling // Plant Cell. 2002. V. 14. P. 8239-8249.

181. Geurts R. R. Heidstra, Hadri A. E., Downie J. A., Franssen H., van Kammen A., Bisseling T. Sym2 of pea is involved in a nodulation factor-perception that controls the infection process in the epidermis // Plant Physiol. 1997. V. 115. P. 351-359.

182. Gibson A.H. Root temperature and symbiotic nitrogen fixation // Nature. 1961. V. 191. P. 1080-1098.

183. Gibson A.H., Pagan J.D. Nitrate effects on the nodulation of legumes inoculated with nitrate-reductase deficient mutants of Rhizobium II Planta. 1977. V. 134. P. 17

184. Giovanetti M., Avio L., Sbrana C., Citernesi A.S. Factors affecting appresorium development in the vesicular-arbuscular mycorrhizal fungus Glomus mosseae И New Phytol. 1993. V. 123. P. 115-122.

185. Goedhart J., Hink M.A.,Visser A.J.W.G., Bisseling Т., Gadella T.W.J. Jr. In vivo fluorence correlation microscopy (FCM) reveals accumulation and immobilization of Nod factors in root hair cell walls // Plant J. 2000. V. 2. P. 109-119.

186. Gonsalez L. Solvent-dependent conformational behaviour of lipochitoligosaccharides related to Nod factors // Carbohydrate Res. 1999. V. 318. P. 10-19.

187. Gonsalez J.E., Reuhs B.L., Walker G.C. Low molecular weight EPS II of Rhizobium meliloti allows nodule invasion in Medicago sativa II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 8636-8641.

188. Gortner W.A., Kent M.J., Sutherland G.K. Ferulic and p-coumaric acids in pineapple tissue as modifiers of pineapple indolacetic acid oxidase // Nature. V.181. P. 630.

189. Gottfert M.,Grob P., Hennecke H. Proposed regulatory pathway encoded by the nodV and NodW genes, determinants of host specificity in Bradyrhizobium japonicum II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. V. 87. P. 2680-2684.

190. Gottfert M.D., Holzhauser D., Bani D., Hennecke H. Structural and functional analysis of two different nodD genes in Bradyrhizobium japonicum USDA 110// Mol. Plant-Microbe Interact. 1992. V. 5. P. 257-265.

191. Glazebrook J., Walker G.C. A novel exopolysaccharide can function in place of the calcofluor-binding exopolysaccharide in nodulation of alfalfa by Rhizobium meliloti II Cell. 1989. V. 56. P. 661-672.

192. Grady H., Palmer R.G., Imsande J. Isoflavonoids in root and hypocotyls of soybean seedlings (Glycine max, Fabaceae) // Amer. J. Bot. 1995. V. 82. P. 964968.

193. Graham T.L. Flavonoid and isoflavonoid distribution in developing soybean seedling tissues and in seed and root exudates // Plant Physiol. 1991. V. 95. P. 594603.

194. Graham P. H. Stress tolerance in Rhizobium and Bradyrhizobium, and nodulation under adverse soil conditions // Can. J. Microbiol. 1992. V. 38. P. 475-484.

195. Gronevald J.W., Cheeseman J.M., Hanson J.B. Comparison of the responses of corn root tissue to fusicoccin and washing // Plant Physiol. 1979. V. 63. P. 255-259.

196. Gualtieri G., Bisseling T. The evolution of nodulation // Plant mol. biol. 2000. V. 42. P. 181-194.

197. Gupta R.P., Kalra M.S., Bajaj P.S. Nitrogen fixation cell cuptures of some legumes and non-legumes // Indian J. Exp. Biol. 1984. V.22. P. 560-563.

198. Gyorgypal Z., Kondorosi E. Kondorosi A. Diverse signal sensitivity of NodD protein homologs from narrow and broad host range rhizobia // Mol. Plant-Microbe Interact. 1991. V. 4. P. 356-364.

199. Hadri A.E., Spaink H.P., Bisseling Т., Brewin N.J. Diversity of root nodulation and rhizobial infection processes // Rhizobeaceae. 1998. P.347-360.

200. Hamblin J., Kent S.P. Possible role of phytohemagglutinin in Phaseolus vulgaris L. // Nat New Biol. 1973. V. 245 P. 28-29.

201. Harborne J.B., Williams C.A. Advances in flavonoid research since 1992 // Phytochemistry. 2000. V. 55. P. 481-504.

202. Hardarson G., Jones D.G. Effect of temperature on competition amoung strains of Rh.trifolii for nodulation of white clover varieties // Annales of Appl.Biol. 1979. V. 92. P. 229-236.

203. Hardy R.W.F., Burns R.C., Holsten R.D. Applications of acetylene-ethylene assay for measurement of nitrogen fixation // Soil.Biol.Biochem. 1973. V.5. P. 4781.

204. Harrison M.J. Molecular and cellular aspects of the arbuscular mycorrhizal symbiosis // Annu. Rev.Plant. Physiol. Plant mol Biol. 1999. V. 50. P. 361-389.

205. Hartel P. G., Alexander M. Temperature and desiccation tolerance of cowpea rhizobia // Can. J. Microbiol. 1984. V. 30. P. 820-823.

206. Hartwig U.A., Maxwell C.A., Joseph C.M., Phillips D.A., Effects of alfalfa nod gene-indusing flavonoids on nodABC trascription in Rhizobium meliloti strains containing different nodD genes // J. Bacteriol. 1990. V. 172. P. 2769-2773.

207. Hartwig H.A., Phillips D.A. Release and modification of nod-gene-inducing flavonoids from alfalfa seeds // Plant Physiol. 1991. V. 95. P. 804-807.

208. Haser A., Robinson D.L., Due G., Vance C.P. A mutation in Vicia faba results ineffective nodules with impaired bacteroid differentiation and reduced synthesis of late nodulins // J. Exp.Botany. 1992. V. 43. P. 1397-1407.

209. Hellriegel H., Wilfarth H. Untersuchungen uber die Stickstoff-nahrung der Gramineen und Leguminosen. Beilageheft zu der Zeitschrift des Vereins fur die Rubenzucker-Industrie des Deutschen Reiches, Buchdruckerei der "Post". Berlin, 1888.

210. Henson I.E., Wheeler C.T. Hormones in plants bearing nitrogen-fixing root nodules: gibberellin-like substances in Alnus glutinosa (L.) // New Phytol. 1977. V. 78. P. 373-381.

211. Herdina P. H., Silsbury J. H. Nodulation and early growth of faba bean (Vicia faba L.) and pea {Pisum sativum L.) as affected by strain of Rhizobium, N03 supply, and growth temperature // Aust. J. Agric. Res. 1989. V. 40. P. 991-1001.

212. Hernandes G., Ramirez M., Suarez R., Fuentes S. Root exuded nod-gene inducing signals limit the nodulation capacity of different alfalfa varieties with Rhizobium meliloti II Plant cell rep. V. 14. P. 626-629.

213. Hillis W.E., Swain Т. The phenolic constituents of Prumes domestica. II The analysis of tissues of Victoria plum-tree // J.Sci. Food Agric. 1959. V. 10. P. 135-« 144.

214. Hinson K. Nodulation responses from nitrogen applied to soybean half-root systems // Agron.J. 1975. V. 67. P. 799-804.

215. Hirsch A.M., Developmental biology of legume nodulation // New Phytol. 1992. V. 122. P. 211-237.

216. Hirsch A.M., FangY. Plant hormones and nodulation:What's the connections? // Plant Mol. Biol. 1994. V. 26. P. 5-9.

217. Hirsch A.M., Fang Y., Asad S., Kapulnik Y. The role of phytohormones in plant-microbe symbiosis // Plant Soil. 1997.V. 194. P. 171-184.

218. Hirsch A.M., McFall-Ngai M.J. Fundamental concepts in symbiotic interactions:light and dark, day and night, squid and legume // J.Plant Growth. Regul. 2000. V. 19. P. 113-130.

219. Hodnick W.F., Milosavjevic E.B., Nelson J.H., Pardini R.S. Electrochemistry of * flavonoids // Biological pharmacology. 1988. V. 37. P. 2607-2611.

220. Holl F.B. A nodulating strain of Pisum unable to fix nitrogen // Plant physiol. (suppl.). 1973. V. 51. P. 35-38.

221. Holsten R.D., Burns R.C., Hardy R.W.F., Herbert R.R. Establishment of symbiosis between Rhizobium and plant cells in vitro II Nature. 1971. V. 232. P. 173-176.

222. Huq I.S.M., Lahrer F., Z. Effect of NaCl on the growth and the nitrogen status of nodulated cowpea (Vigna sinensis L.) and mung bean (Phaseolus aureus L.) // Pflanzenphysiol. 1983. V. 112. P. 75-79.

223. Hungria M., Franco A. A. Effects of high temperature on nodulation and nitrogen fixation by Phaseolus vulgaris L. // Plant Soil. 1993. V. 149. P. 95-102.

224. Hungria M., Phillips D.A. Effects of a seed color mutation on rhizobial nod-gene-inducing flavonoids and nodulation in common bean // Mol. plant-microbe interact. V. 6. P 418-422.

225. Hungria M., Stacey G. Molecular signals exchanged between host plants and rhizobia: basic aspects and potential application in agriculture // Soil Biol.Biochem. 1997. V. 29. P. 819-830.

226. Jacobs M., Rubery P.H. Naturally-occuring auxin transport regulators // Science. 1988. V. 241. P. 346-349.

227. Jacobs T. Why do plant cells divide? // Plant cell., 1997. V. 9. P. 1021-1029.

228. Jangaard N.O. The characterization of phenylalanine ammonia lyase from several plant species // Phytochemistry. 1974. V. 13. P. 1765-1768.

229. Jones F.R., Tisdalt W.B.J. Effect of soil temperature upon the development of nodules on the roots of certain legumes // J.Agr.Res. 1981. V. 22. P. 17-23.

230. Kamst E., Spaink H.P., Kafetzopoulos D. Biosynthesis and secretion of rhizobial lipochitin-oligosaccharide signal molecules // Plant microbe interactions. 1998. Plenum Press:New York, P. 29-71.

231. Kapulnik Y., Joseph C.M., Phillips D.A. Flavone limitation to root nodulation and symbiotic nitrogen fixation in alfalta // Plant Physiol. 1987. V. 84. P. 11931196.

232. Karanja N. К., M. Wood. Selecting Rhizobium phaseoli strains for use with beans (Phaseolus vulgaris L.) in Kenya. Tolerance of high temperature and 4 antibiotic resistance // Plant Soil. 1988. V. 112. P. 15-22.

233. Katznelson H., Cole S.E. Production of gibberellin-like substances by bacteria and actinomycetes // Can J. Microbiol. 1965. V. 11. P. 733-741.

234. Kawaguchi M., Imaizumi-Anraku H., Fukai S., Syono K. Unusual branching in the seedling of Lotus japonicus gibberellins reveal the nitrogen-sensitive cell divisions within the pericycle on roots // Plant cell physiol. 1996. V. 37. P. 461-470.

235. Kawai Y., Yamamoto Y. Increase in the formation and nitrogen fixation of soybean nodules by vesicular-arbuscular mycorrhiza // Plant Cell Physiol. V. 27. P. 399-405.

236. Kende H., Zeevaart, J.A.D. The five "classical" plant hormones // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 1197-1210.

237. Kijene J.W., Bauchrowitz M.A., Diaz C.L. Root lectins and rhizobia // Plant Physiol. 1997.V. 115. P. 869-873.

238. Kosslak R.M., Bohlool B.B. Suppression of nodule development of one side of a split-root system of soybeans caused by prior inoculation of the other side // Plant Physiol. V. 84. P. 1193-1196.

239. Kosslak R.M., Joshi R.S., Bowen B.A. Strain-specific inhibition of nod gene induction in Bradyrhizobium japonicum by flavonoid compounds // Appl. Environ.Microbiol. 1990.V. 56. P. 1333-1341.

240. Koucol J., Conn E. The metabolism of aromatic compounds in higher plants. IV. Purification and properties of the phenylalanine deaminase of Hordeum vulgare II The J. Biol. Chem. 1961. V. 236. P. 2692-2698.

241. Mabry T. J., Markham K. R., Thomas M. B. The Systematic Identification of Flavonoids. Berlin Heidelberg,New York: Springer-Verlag, 1970. 345 p.

242. Mader M. Compartmentation of peroxidase isoenzymes in plant cells // Plant peroxidases. University of Geneva, 1992. P. 37-46.

243. McClure J.W. Physiology and function of flavonoids //The Flavonoids. Academic Press:New York, 1975. P. 970-1055.

244. Malik N.S.A., Calvert H.E., Bauer W.D. Nitrate induce regulation of nodule formation in soybean // Plant physiol. 1987. V.84. P. 266-271.

245. Marigo G., Boudet P. Relations polyphenols-croissance: mise en evidence d'un effect inhibiteur des composes phenoliques sur le trasport polarize de l'auxine // Physiol Plant. V. 41. P. 197-202.

246. Martinez E. Recent developments in Rhizobium taxonomy // Plant and Soil.1994. V. 161. P. 11-20.

247. Mathesius U. Weinman J.J., Rolfe B.G., Djordjevic M.A. Rhizobia can induce nodules in white clover by "hijacking" mature cortical cells activated during lateral root development // Mol.plant Microbe Interact. 2000. V. 13. P. 170-182.

248. Mathesius U. Flavonoids induced in cells undergoing nodule organogenesis in white clover of auxin breakdown by peroxidase // J. Exp. Bot. 2001. V. 52. P. 419426.

249. Mellor R.B. Bacteroids in the Rhizobium-legume symbiosis inhabit a plant internal lytic compartment: implications for other microbial endosymbioses // J. Exp. Bot. 1989. V. 40. P. 831-839.

250. Michiels J. C. Verreth, Vanderleyden J. Effects of temperature stress on bean nodulating Rhizobium strains // Appl. Environ. Microbiol. 1994. V. 60. P. 12061212.

251. Miller E., Schreirier P. Studies of flavonoid degradation by peroxidase (donor: H202- oxidoreductation, EC 1.11.1.7). Part 1 :kaemmpferol // Food Chem. 1985. V. 17. P. 143-154.

252. Minamikawa Т., Uritani J. Phenylalanine deaminase and tyrosine deaminase in sliced or black-rot-infected sweet potato roots // Arch.Biochem.Biophys. 1964. V. 108. P. 573-579.

253. Minchin F.R. Regulation of oxygen diffusion in legume nodules // Soil Biol. Biochem. 1997. V. 29. P. 881-888.

254. Mohammad M, Campbell W.F, Rumbaugh M.D. Variation in salt tolerance of alfalfa // Arid soil rehabil. 1989. V. 3. P. 11-20.

255. Moran J.F., Klucas R.V., Grayer R.J., Abian J., Becana M. Complexes of iron with phenolic compounds from soybean nodules and other legume tissues:prooxidant and antioxidant properties // Free Radic. Biol. Med. 1997. V. 22. P. 861870.

256. Morris P., Ward E. Chemoattraction of zoospores of the soybean pathogen, Phytophtora Sojae, by isofalvones // Physiol. Mol. Plant Pathol. 1992. V. 40. P. 1722.

257. Mulligan J.T., Long S.R. Induction of Rhizobium by plant exudates requires nod D // Pros. Nat. Acad. Sci. USA. 1985. V. 82. P. 6609-6613.

258. Mulligan J.T., Long S.R. A family of activator genes regulates expression of Rhizobium meliloti nodulation genes // Genetics. 1989. V. 122. P. 7-18.

259. Munevar F., Wollum A.G. Response of soybean plants to high root temperature as affected by plant cultivar and Rhizobium strain // Agron.J. 1982. V. 74. P. 138142.

260. Munns D.N. Nodulation of Medicago sativa in solution culture. III. Effects of nitrate on root hairs and infection // Plant soil. 1968. V. 29. P. 33-49.

261. Munns, D. N., H. H. Keyser, V. W. Fogle, J. S. Hohenberg, T. L. Righetti, D. L. Lauter, M. G. Zaruog, K. L. Clarkin, Whitacre K. W. Tolerance of soil acidity in symbiosis of mung bean with rhizobia // Agron. J. 1979. V. 71. P. 256-260.

262. Muromtsev G.S., Voblikova V.D., Kobrina N.S., Koreneva V.M., Krasnopolskaya L.M., Sadovskaya V.L. Occurrence of fusicoccanes in plants and fungi // J.Plant Grown Regul. 1994. V. 13. P. 39-49.

263. Murphy A., Peer W., Taiz L. Regulation of auxin trasport by aminopeptidases and endogenous flavonoids // Planta. 2000. V. 211. P. 315-324.

264. Newcomb W., Syono K., Torrey J.G. Development of an ineffective root nodule: morphogenesis, fine structure and cytokinin biosynthesis // Can.J. Bot. 1977. V. 55. P. 1891-1907.

265. Niehaus K.D., Kapp D., Puhler A. Plant defence and delayed infection of alfalfa pseudonodules induced by exopolysaccharide (EPS I)-deficient Rhizobium meliloti mutant //Planta. 1993. V. 190. P. 415-425.

266. Norris D.O. Legumes and Rhizobium symbiosis // Empire J.Exp.Agric., 1956. V. 24. P. 247-270.

267. Nover L., Hellmund D., NeumannD. The heat shock response of eukaryotic cells // Biol Zentralbl. 1984. Bd. 1034. S. 357-435.

268. Novikova Т. I., Gordienko N.Y. Effect of salinity on licorice -Rhizobium symbiosis // Abstracts of International Symposium «Physiology, biochemistry and genetics of plant salt tolerance». Tashkent:FAN, 1992. P. 52.

269. Novikova Т. I. Effect of flavonoids on recovery of nitrogenase activity of clover-Rhizobium symbiosis // Abstr. International Symposium "Natural Phenols in Plant Resistance". Germany, 1993. III. P.7.

270. Novikova Т. I. Influence of natural phenols on Trifolium pratense-Rhizobium trifolii symbiosis // Acta Horticulturae. 1994. V. 381. P. 421-424.

271. Novikova Т. I., Gordienko N.Y. Sidorova K.K. Ultrastructure of root nodules of pea mutant grown in the presence of nitrate // Abstracts of X International Congress on Nitrogen Fixation, S.-Petersburg, 1995. P. 519.

272. Novikova T. I.,Tseitlina V.R., Koreneva V.M. Effect of fusicocin on trifolium symbiosis IIII Abstracts of X International Congress on Nitrogen Fixation. S.Petersburg, 1995. P. 288.

273. Novikova Т. I., Anchugova E.S., Maistrenko G.G., Gordienko N.Y. Influence of sodium and nitrate stresses on nitrogen fixation and fine structure of legumes N.Y. // Abst.International Symposium On Stress. Moskow, 1996. P. 319.

274. Novikova Т. I., Gordienko N.Y. Structure of infection threads of lupine root nodules // Abstr. VIII Intern. Congress on Bacteriology and Applied Microbiology. Jerusalem, 1997.

275. Оке V., Long S.R. Bacteroid formation in the Rhizobium-legume symbiosis // Curr.Opinion Microbiol. 1999. V. 2. P. 641-646.

276. Oldroyd G.E.D., Engstrom E.M., Long S.R. Ethylene inhibition the Nod factor signal transduction pathway of Medicago truncatula II Plant cell. 2001. V. 13. P. 1835-1849.

277. Pan В., Smith D.L. Preincubation of B.japonicum cells with genestein reduces the inhibitory effects of mineral nitrogen on soybean nodulation and nitrogen fixation under field conditions // Plant and soil. 2000. V. 223. P. 235-242.

278. Pandya S., Iyer P., Gaitonde V., Pakekh Т., Desai A. Chemotaxis of Rhizobium sp.S2 towards Cajanus cajan root exudates and its major components // Curr. Microbiol. 1999. V. 38. P. 205-209.

279. Pankhurst C.E. Ineffective Rhizobium trifolii mutants examined by immune-diffusion, gel-electrophoresis and electron microscopy // J.Gen.Microbiol. 1974. V. 82. P. 405-413.

280. Pankhurst C.E., Craig A.S., Jones W.T. Effectiveness of lotus root nodules I. Morphology and flavolan content of nodules for med on Lotus pedunculatus by fast-growing lotus rhizobia // J. Exp. Bot. 1979. V. 30. P. 1085-1093.

281. Parsons R. Sunley R. Nitrogen and the role of root-shoot nitrogen signaling particularly in symbiotic systems // J. Exp. Bot. 2001. V. 52. P. 435-443.

282. Pate J.S. Perennial nodules on native legumes in the British Isles // Nature. 1961. V. 192. P. 376-377.

283. Peer W.A., Murphy A.S., Brown D.E., Tague B.W., Muday G.K., Taiz L. Flavonoid accumulation patterns of transparent testa mutants of Arabidopsis II Plant Physiol. 2001. V. 126. P. 536-548.

284. Penmetsa R.V., Cook D.R. A legume ethylene-insensitive mutant hyperinfected by its rhizobial symbiont // Science. 1997. V. 275. P. 527-530.

285. Perret X. Staehelin C., Broughton W.J. Molecular basis of symbiotic promiscuity // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2000. V. 64. P. 180-201.

286. Peters N.K., Frost J.W., Long S.R. A plant flavone, luteolin, induces expression of Rhizobium meliloti nodulation genes // Science. 1986. V. 233. P. 977-980.

287. Peters N.K., Long S.R. Alfalfa root exudates and compounds which promote or inhibit induction of Rhizobium meliloti nodulation genes // Plant Physiol. 1988. V. 88. P. 396-400.

288. Peters N.K., Verma D. P. S. Phenolic compounds as regulators of gene expression in plant-microbe interactions // Mol. Plant Microbe Interact. 1990. V. 3. P. 4-8.

289. Phillips D.A. Promotion of acetylene reduction by Rhizobium soybean cell associations in vitro // Plant Physiol. 1974. V.54. P. 654-655.

290. Phillips D.A., Streit W.R.// Plant Microbe Interactions/ Stacey G., Keen NT. eds. Chapman&HalkNew York, 1996. P. 236-271.

291. Piha, M. I., D. N. Munnus. 1987. Sensitivity of the common bean (Phaseolus vulgaris L.) symbiosis to high soil temperature // Plant Soil. V. 98. P. 83-194.

292. Pilet P.E. Effects of p-hydroxybenzoic acid on growth, auxin content and auxin catabolism // Phytochemistry. 1966. V. 5. P. 77-82.

293. Polhill R.M., Raven P.H., Stirton C.H. Evolution and systematics of the Leguminosae II Advances in Legume Systematics. 1981. Kew, V. 1. P. 1-26.

294. Prome J.C. Signalling events elicited in plants by defined oligosaccharide structures // Current Opinion in Structure Biol. 1996. V. 6. P. 671-678.

295. Provorov N.A. Coevolution of rhizobia with legumes: facts and hypotheses // Symbiosis. 1998. V. 24. P. 337-367.

296. Provorov N.A., Borisov A.Yu., Tikhonovich I.A. Developmental genetics and evolution of symbiotic structures in nitrogen-fixing nodules and arbuscular mycorrhiza // J. Theor. Biol. 2002. V. 214. P. 215-232.

297. Pueppke S.G., Broughton W.J. Rhizobium sp.NGR234 and R.fredii USDA257 share exceptionally broad, nested host-ranges // Mol. Plant-Microbe Interact. 1999. V. 12. P. 293-318.

298. Raggio M., Raggio N., Torrey J.G. The nodulation of isolated leguminous roots // Amer. J. Bot. 1957. V. 44. P. 325-334.

299. Ray S.D., Guruprasad K.N., Laloraya M.N. Antagonistic action of phenolic compounds on abscisic acid influenced inhibition of hypocotyls growth // J. Exp. Bot. 1980. V. 31. P. 1651-1656.

300. Reed J.W., Glazebrook J., Walker G.C. The exoR gene of Rhizobium meliloti affects RNA levels of other exo genes but lacks homology to known transcriptional regulators // J. Bacteriol. 1991. V. 173. P. 3789-3794.

301. Relic В., Talmont F., Kopcinska J., Golinowsky W., Prome J.-C., Broughton W.J. Biological activity of Rhizobium sp. NGR234 Nod-factors on Macroptillium atropurpureum И Mol. Plant-Microbe Interact. 1993. V. 6. P. 764-774.

302. Relic В., Perret X., Estrada-Garcia M.T., Kopsinska J., Golinowski W., Krishnan H.B., Pueppke S.G., Broughton WJ. Nod factors of Rhizobium are the key to legume door // Mol. Microbial. 1994. V. 13. P. 171-178.

303. Reuber T.L., Walker G.C. Biosynthesis of succinoglucan, a symbiotically impotant exopolysaccharide of Rhizobium meliloti II Cell. 1993. V. 74. P. 269-280.

304. Reynolds E.S. The use of lead citrate at high pH as an electron-opaquestain in electron microscopy // J. Cell Biol. 1963. V. 17. P. 208-212.

305. Richardson A.E., Simpson R.J., Djordjevic M.A., Rolfe B.G. Expression of nodulation genes in Rhizobium leguminosarum biovar trifolii is affected by low pH and by Ca and Al ions //Applied and Enviromental Microbiology. 1988. V. 54. P. 2541-2548.

306. Rigaud J., Puppo A. Effect of nitrate upon leghemoglobin and interaction with nitrogen fixation // Biochem. Biophys. Acta. 1977. V. 497. P. 702-706.

307. Robson A.D., Bottomley P. J. Limitations in the use of legumes in agriculture and forestry // Biology and biochemistry of nitrogen fixation. Amsterdam:Elsevier, 1991. P. 320-349.

308. Rohrig H., Scmidt J., Walden R. Grown of tobacco protoplasts stimulated by synthetic lipo-chitooligosaccharides // Science., 1995.V.269. P. 841-843.

309. Ross J.J., O'Neil D.P., Smith J.J., Kerckhoffs H.J., Elliot R.C. Evidence that auxin promotes gibberellin A. biosynthesis in pea //Plant J. 2000. V. 21. P. 547-552.

310. Roth L.E., Stasey G. Bacterium release into host cells of nitrogen-fixing soybean nodules: the symbiosome membrane comes from three sources // Eur.J.Cell.Biol. 1989. V. 49. P. 13-23.

311. Roughley, R. J. 1970. The influence of root temperature, Rhizobium strain and host selection on the structure and nitrogen-fixing efficiency of the root nodules of Trifolium subterraneum II Ann. Bot. V. 34. P. 631-646.

312. Roughley, R. J., Dart P. J. Root temperature and root-hair infection of Trifolium subterraneum L. cv. Cranmore // Plant Soil., 1970. V. 32. P. 518-520.

313. Rubery P.H., Northcote D.H. Site of phenylalanine ammonia-lyase activity and synthesis of lignin during xylem differentiation // Nature. 1968. V. 219. P. 12301234.

314. Sagan M., Huguet Т., Due G. Phenotypic characterization and classification ofnodulation mutants of pea (Pisum sativum L.) // Plant sci. 1994. V. 100. P. 59-70.

315. Sakuta M. transcriptional control of chalcone synthase by environmental stimuli // J. Plant Res. 2000. V. 113. P. 327-333.

316. Savoure A., Magyar Z., Pierre M., Brown S., Schultze M., Dudits D., Kondorosi

317. A., Kondorosi E. Activation of cell cycle machinery and the isoflavonoid biosynthesis pathway by active Rhizobium meliloti signal molecules in Medicago microcallus suspensions // EMBO Journal. 1994. V. 13. P. 1093-1102.

318. Scalese M., Marzullo D., Castelli F., Lanza M., Saija A., Bonina F. Flavonoids as antioxidant agents: importance of their interaction with biomembranes // Free radical biology and medcine. 1995. V. 19. P. 481-486.

319. Scheres В., McKhanann H.I., Zalensky A., Lobler M., Bisseling Т., Hirsch A.M. The PsENOD12 gene is expressed at two different sites in Afganistan pea pseudonodules induced by auxin transport inhibitors // Plant Physiol. 1992. V. 100. P. 1649-1655.

320. Schlaman H.R., Phillips D.A., Kondorosi E. Genetic organization and transcriptional regulation of rhizobial nodulation genes // The Rhizobiaceae / Eds. Spaink HP, Kondorosi E. Kluwer, 1998 a. P. 361-386.

321. Schlaman H.R., Gisel A.A., Quaedlieg N.E.M., Bloemberg G.V., Lugtenberg

322. B.J.J., Kijene J.W., Potrykus I., Spaink H.P., Sautter C. Chitin oligosaccharides can induce cortical cell ballistic microtargeting // Development. 1998 б. V. 124. P. 48874895.

323. Schmid J., Doerner P.W., Clouse S.D., Dixon R.A., Lamb C.J. Development and environmental regulation of bean chalcone synthase promoter in transgenic tobacoo // Plant cell. 1990. V. 2. P. 619-631.

324. Schmidt J.S, Harper J.E., Hoffman Т.К., Bent A.F. Regulation of soybeannodulation independent of ethylene signaling // Plant Physiol. 1999. V. 119. P. 951960.

325. Schreirier P., Miller E., Studies of flavonoid degradation by peroxidase (donor:

326. H202- oxidoreductation, ЕС 1.11.1.7).Part 2: quercetin // Food Chem. 1985. P. 301317.

327. Schuller K.A., Day, D.A., Gibson A.H., Gresshoff P.M. Enzymes of ammoniaassimilation and ureide biosynthesis in soybean nodules: effect of nitrate // Plant Physiol. 1986. V. 80. P. 646-650.

328. Schultze M., Kondorosi E., Ratet P., Buire M.,Kondorosi A. Cell and molecular biology of Rhizobium-p\ant interactions // Int. rev.Cytol. 1994. V. 156. P. 1-75.

329. Schultze M., Kondorosi A. Regulation of symbiotic root nodule development // Annu. Rev. Genet. 1998. V. 32. P. 33-57.

330. Shirley B.W. Flavonoid biosyncesis: "new" functions for an "old" pathway // Trends Plant Sci. 1996. V.l. P.377-382.

331. Shirley B.W., Kubasek W.L., Storz G., Bruggermann E., Koornneef M., Ausubel F.M., Goodman H.M. Analysis of Arabidopsis mutants deficient in flavonoid biosynthesis. Plant J, 1995. V.8. P. 659-671.

332. Singleton P.W. Bohlool B.B. Effect of salinity on the functional components of the soyhean-Rhizobium japonicum symbiosis//Crop science. 1983. V. 23. P. 815818.

333. Singleton P.W., El Swaley S.A., Bohlool B.B. Effect of salinity on Rhizobium growth and survival. Isolated from sand growing legumes, Hawaii // Appl.Environ.Microbiol. 1982. V. 44. P. 884-890.

334. Smit G., De Koster C.C., Schripsema J., Spaink H.P., Van Brussel A.A., Kijene J.W. Uredine, a cell division factor in pea roots // Plant Mol. Biol. 1995. V. 29. P. 869-873.

335. Spaink H.P., Kondorosi A., Hooykaas P.JJ. The Rhizobiaceae: Molecular Biology of Model Plant-Associated Bacteria. Kluwer Academic Publishers : Dordrecht, 1998.

336. Spaink H.P., Wijffelman C.A., Pees E., Okker R. J.H., Lugtenberg B.J.J. Rhizobium nodulation gene nodD as a determinant of host specificity // Nature. 1987. V. 328. P. 337-340.

337. Spratt E.R. A comparative account of the root-nodules of the Leguminosae II Ann.Bot. 1919. V. 33. P. 189-199.

338. Sprent J.I. Functional evolution in some papilionoid nodules // Advances in Legume Systematics. Kew, 1981. V. 2 P. 671-677.

339. Sprent J.I., Sutherland J.M., Faria S.M. Some aspects of biology of nitrogen fixing organisms // Phil.Trans.Ser.B. 1987. V.317. P. 111-129.

340. Sprent J.I., Sutherland J.M., Faria S.M. Structure and function of root nodules from woody legumes //Advance in legume biology.Monogr.Syst.Biol.Missouri Bot.Gard. 1989. V.29. P. 559-578.

341. Sprent J.I. Raven J.A. Evolution of nitrogen-fixing symbiosis // Biological Nitrogen Fixation/ Eds. Stacey G., Burris R.H., Evans H. Chapman and Hall, 1992. P. 461-496.

342. Sprent J. I., Zahran H. H. Infection, development and functioning of nodules under drought and salinity // Nitrogen fixation by legumes in Mediterranean agriculture / Eds. Beck D. P., L. A. Materon L. A. Dordrecht, 1988. P. 145-151.

343. Sprent J.I. Evolution and diversity in the legume-rhizobium symbiosis — chaos theory? // Plant and Soil., 1994. V. 161. P. 1-10.

344. Stafford H.A. Flavonoid metabolism. Boca Raton:CRC Press, 1990.

345. Stafford H.A. Roles of flavonoids in symbiotic and defense functions in legume roots //The Botanical Review. 1997. V. 63. P. 27-39.

346. Stacey G., Evans H., Burris R. Biological nitrogen fixation. Chapman &Hall:New York, 1992 .

347. Stenlid G. Effects of flavonoids on polar trasport of auxins // Physiol Plant. 1976. V. 38. P. 262-266.

348. Stenlid G. The effect of flavonoid compounds on oxidative phosphorilation and on enzymatic destruction of indolacetic acid // Physiol. Plantarum. 1963. V. 16. P. 110-121.

349. Stephens, B. D., Neyra C. A. Nitrate and nitrite reduction in relation to nitrogenase activity in soybean nodules and Rhizobium japonicum bacteroids // Plant Physiol. 1983. V. 71. V. 731-735.

350. Stougaard J. Regulators and regulation of legume root nodule development // Plant Physiol. 2000. V. 124. P. 531-540.

351. Strozycki P.M., Legocki A.B. Leghemoglobins from an evolutionarily old legume, Lupinus luteus II Plant Science. 1995. V. 110. P. 83-93.

352. Subba-Rao N.S., Lakshmi-Kumari M., Singh G.S., Magu S.P., Nodulation of lucerne (Medicago sativa L.) under the influence of chlorides of magnesium and potassium // Ind. J. Agron. Res. 1972. V. 42. P. 384- 386.

353. Suganuma N, Yamauchi H, Yamamoto K. Enhanced production of ethylene by soybean roots after inoculation with Bradyrhizobium japonicum II Plant Sci. 1995. V. 111. P. 163-168.

354. Sutherland J.M., Mclnroy S.G., James E.K., Naisbitt T. Nodule structure with special reference to the Tribes Sophoreae, Genisteae and Thermopsideae II Advances in Legume Systematics. Kew, V. 5: 1994. P. 41-55.

355. Sutton J.M., Lea E.J., Downie J.A. The nodulation-signalling protein NodO from Rhizobium leguminosarum biovar viciae forms ion channels in membranes // Proc.Natl.Acad.Sci. 1994. V. 9. P. 671-680.

356. Swensen S.M., Mullin B.C. The impact of molecular systematics on hypotheses for the evolution of root nodule symbioses and implications for expanding symbioses to new host plant genera // Plant and Soil. V. 194. P. 185-192.

357. Syono K., Newcomb W.,Torrey J.G. Cytokinin production in relation to the development of pea root nodules // Can.J.Bot. 1976. V.54. P. 2155-2162.

358. Tagu D., Lapeyrie F., Martin F. The ectomycorrhizal symbiosis: genetics and development // Plant and Soil. 2002. V. 244. P. 97-105.

359. Takahama U. A role of hydrogen peroxide in the matabolism of phenolics in mesophyll cells of Vicia faba L. // Plant Cell Physiol. 1989. V. 30. P. 295-301.

360. Takahama U., Egashira T. Peroxidase in vacuoles of Vicia faba leaves // Phytochemitry. 1991. V. 30. P. 73-77.

361. Tanner J.W., Anderson I.C. External effect of combined nitrogen on nodulation. // Plant Physiol. 1964. V. 39. P. 1039-1046.

362. Тепа M., Valbuena R.L. Increase in phenylalanine ammonia-lyase activity caused by Plasmopara bastedii in sunflower seedlings resistant and susceptible to downy mildew // Phytopathol. Z. 1983.V. 107. P. 47-56.

363. Thimann K.V. On physiology of the formation of nodules on legume roots // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1936. V. 22. P. 511-513.

364. Thomas C., Sun Y., Naus K., Lloyd A., Roux S. Apyrase functions in plant phosphate nutrition and mobilize phosphate from extracellular ATP // Plant Physiol. 1999. V.119. P. 543-551.

365. Timmers A.C., Auriac M.C., de Billy F., Truchet G. Nod factor internalization and microtubular cytoskeleton changes occur concomitantly during nodule differentiation in alfalfa// Development. 1998. V. 125. P. 339-349.

366. Torrey J.G. Endogenous and exogenous infiiences on the regulation of lateral root formation // New Root Formation in Plants and Cuttings. Dordrecht, 1986. P. 31-66.

367. Trewavas A. Resource allocation under poor grown conditions. A major role for growth substances in developmental plasticity// Plasticity in Plant. 1986. P. 31-76.

368. Trinchant, J.C., Rigaud J. Nitrate inhibition of nitrogenase from soybean bacteroids // Arch. Microbiol. 1980.V. 124. P. 49-54.

369. Truchet G., Barker D.G., Camut S., de Billy F., Vasse J., Huguet T. Alfalfa nodulation in the absence of Rhizobium II Molec. Gen. Genet. 1989. V. 219 P. 6568.

370. Tu J.C. Effect of salinity on Rhizobium-root hair interaction, nodulation andgrowth of soybean // Can.J. Plant Sci. 1981. V. 61. P. 231-239.

371. Turgeon В., Bauer W.D. Early events in the infection of soybean by Rhizobium ^ japonicum. Fine course and cytology of the initial infection process // Can. J. Bot.1982. V. 60. P. 152-173.

372. Turner S.L., Young J.P.W. The glutamine synthetases of rhizobia: phylogenetics and evolutionary implications // Mol Biol. Evol. 2001. V. 17. P. 309-319.

373. Vance C. P. Comparative aspects of root and root nodule secondary metabolism in alfalfa // Phytochemistry. 1978. V. 17. P. 1889-1891.

374. Van Rhjin P., Vandeleyden J. The Rhizobium plant symbiosis // Microbiol. Rev. 1995. V. 59. P. 124-142.

375. Van P.C. Spronsen, Так Т., Rood A.M.M., van Brussel A.A.N., Kijne J.W., Boot K.J.M. Salicylic acid inhibits indeterminate -type nodulation but not determinate-type nodulation // Mol.Plant-Microbe Interact. 2003. V.16. P. 83-91.

376. Viprey V., Del Greco A., Golinowski W., Broughton W.J., Perret X. Symbiotic implications of type III protein secretion machinery in Rhizobium II Mol. Microbiol. и 1998. V. 28. P. 1381-1389.

377. Wagner G.R., Youngman R.Y., Estner E.F. Inhibition of chloroplast photooxidation by flavonoids and mechanisms of the antioxidative action // J. Photochem. Photobiol. B. 1988. V. 1. P. 451-460.

378. Wang L.X., Wang Y., Pellock В., Walker G.C. Structural characterization of the symbiotically important low-molecular-weight succinoglycan of Sinorhizobium meliloti II J. Bacteriol. 1999. V.181. P. 6788-6796.

379. Walker S.A. Dissection of nodulation signaling using pea mutants defect calcium spiking induced by Nod factors and chitin oligomers // Pros. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. V. 97. P. 13413-13418.

380. Walsh, К. B. 1995. Physiology of the legume nodule and its response to stress // Soil Biol. Biochem. V. 27. P. 637-655.

381. Weisshaar В., Jenkins G.I. Phenylpropanoid biosynthesis and its regulation //Current opin. plant, biol. 1998. V.l. P. 251-257.

382. Werner D. Physiology of nitrogen-fixing legume nodules: compartments and functions // Biological nitrogen fixation. New York, 1992. P.399-431.

383. Williams P.M., De Mallorca M.S. Effect of gibberellins and the growth retardant CCC on the nodulation of soya //Plant and Soil. 1984. V.77. P. 19-26.

384. Winkel-Shirley B. Flavonoid biosynthesis. A colorful model for genetics, biochemistry, cell biology and biothechnology // Plant Physiol. 2001. V. 126. P.485-493.

385. Wojtaszek P., Stobiecki M., Gulewicz K. Role of nitrogen and planr growth regulators in the exudation and accumulation of isoflavonoids by roots of intact white lupin (Lupinus albus L.) plants // J Plant Physiol. 1993. V. 142. P. 689-694.

386. Wopereis J., Pajuelo E., Dazzo F.B., Jing Q., Gresshoff P.M., de Bruijn F.J., Stoagaard J., Szczglowski K. Short root mutants of Lotus japonicus with a dramatically altered symbiotic phenotype // Plant J. 2000. V. 23. P. 97-114.

387. Wu C.F., Dickstein R., Cary A.J., Norris J.H. The auxin transport inhibitor N-(1-naphthyl)phtalamic acid elicits pseudonodules on nonnodulating mutants of white sweetclover // Plant physiol. 1966. V. 110. P. 502-510.

388. Wu Y., Qui X., Du S., Erickson L. Cloning and characterization of P022, a pollen gene in alfalfa//Plant Mol. Biol. 1996. V. 32. P. 1205-1207.

389. Yamasaki H., Uefuji H., Sakihama Y. Bleaching of the red anthocyanin induced by superoxide radical // Arch Biochem Biophys. 1996. V. 332. P. 183-186.

390. Yamasaki H., Sakihama Y., Ikehara N. Flavonoid-peroxidase reaction as a detoxication mechanism of plant cells against H202 // Plant Physiol. 1997. V. 115. P. 1405-1412.

391. Yang W.-C., Cremers H.C.J., Higendijk P., Katinakis P., Wijffelman C.A., Franssen H., Kammen A.V., BisselingT. In situ localization of chalcone synthase mRna in pea root nodule development // Plant J. 1992. V. 2. P. 143-151.

392. Yelton M.M., Mulligan J.T., Long S.R. Expression of Rhizobium meliloti nod genes in Rhizobium and Agrobacterium backgrounds // J. Bacteriol. 1987. V. 169. P. 3094-3098.

393. Young J.P.W., Haukka K.E. Diversity and phylogeny of rhizobia // New Phytologist. 1996. V. 133. P. 87-94.

394. Zahran, H. H. Conditions for successful Rhizobium-legume symbiosis in saline environments //Biol. Fertil. Soils. 1991. V. 12. P. 73-80.

395. Zahran, H. H., M. A. Abu-Gharbia. Development and structure of bacterial root-nodules of two Egyptian cultivars of Vicia faba L. under salt and water stresses // Bull. Fac. Sci. AssiutUniv. 1995. V.24. P. 1-10.

396. Zahran H.H., Sprent J.I. Effects of sodium chloride and polyethylene glycol on root hair infection and nodulation of Vicia faba L. plants by Rhizobium leguminosarum //Planta. 1986. V. 167. P. 303-309.

397. Zahran H.H. Rhizobium-iegume symbiosis and nitrogen fixation under severe conditions and in an arid climate // Micr.Mol.Biol.Rev. 1999. V. 63. P. 968-989.

398. Zhang F., Smith D.L. Preincubation of Bradyrhizobium japonicum with genestein accelerates nodule development of soybean at suboptimal root zone temperatures // Plant physiol. 1995. V. 108. P. 961-968.

399. Zhang F., Lynch D.H., Smith D.L. Impact of low root zone temperature in soybean {Glycine max L. Merr.) on nodulation and nitrogen fixation // Environ. Exp. Bot. 1995. V. 63. P. 968-989.

400. Zhang F., Smith D.L. Application of genistein to inocula and soil to overcome low spring soil temperature inhibition of soybean nodulation and nitrogen fixation // Plant and soil. 1997. V. 192. P. 141-151.

401. Zimny H. Brodawkowanie niektorych gatunkow roslin motykowych w zbiorowiskah lesnych I lakowych Bialowiezy // Fragm.floristica et geobatanica. 1962. V. 8. P. 157-183.

402. Zucker M. Induction of phenylalanine ammonia-lyase in Xanthium leaf disks; photosynthetic requirement and effect of daylength // Plant physiol. 1969. V. 44. P. 912-922.