Реакции растений на стресс в сообществе с эндофитными представителями Bacillus subtilis Cohn тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.05, доктор наук Курамшина Зиля Мухтаровна

  • Курамшина Зиля Мухтаровна
  • доктор наукдоктор наук
  • 2018, ФГБОУ ВО «Башкирский государственный университет»
  • Специальность ВАК РФ03.01.05
  • Количество страниц 252
Курамшина Зиля Мухтаровна. Реакции растений на стресс в сообществе с эндофитными представителями Bacillus subtilis Cohn: дис. доктор наук: 03.01.05 - Физиология и биохимия растений. ФГБОУ ВО «Башкирский государственный университет». 2018. 252 с.

Оглавление диссертации доктор наук Курамшина Зиля Мухтаровна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ЭНДОФИТНЫЕ ПРЕДСТАВИТЕЛИ БАКТЕРИЙ РОДА Bacillus И ИХ РОЛЬ ВО ВЗАИМООТНОШЕНИЯХ С РАСТЕНИЯМИ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

1.1. Распространенность представителей Bacillus spp. в тканях растений

1.2. Биологическая активность эндофитных штаммов Bacillus spp. по отношению к растениям

1.2.1. Влияние бацилл на рост растений

1.2.2. Антибиотическая активность бацилл

1.2.3. Роль эндофитных штаммов Bacillus в питании растений

1.2.4. Участие бактерий Bacillus spp. в адаптации растений к абиотическим стрессовым факторам среды

1.3. Взаимоотношения бактерий Bacillus spp. с ассоциативными микроорганизмами высших растений

1.3.1. Взаимодействие эндофитных бактерий с грибами, формирующими эндомикоризу

1.3.2. Взаимоотношения бактерий Bacillus spp. с микробным сообществом ризосферы

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1. Объекты исследований

2.2. Питательные среды и условия культивирования

2.3. Методика оценки влияния штаммов B. subtilis на рост растений

2.4. Оценка альгицидной активности бактерий и их метаболитов

2.5. Оценка влияния эндофитов на микробное сообщество ризосферы

2.6. Анализ антистрессовой активности эндофитов

2.6.1. Солевой стресс

2.6.2. Имитация засухи

2.6.3. Действие тяжелых металлов

2.7. Методы биохимических исследований

2.7.1. Определение активности антиоксидантных ферментов

2.7.2. Анализ содержания малонового диальдегида

2.7.3. Определение содержания фенольных соединений

2.7.4. Определение содержания фитохелатинов и глутатиона

2.7.5. Определение содержания фотосинтетических пигментов

2.7.6. Определение содержания свободного пролина

2.7.7. Определение содержания тяжелых металлов

2.7.8. Агрохимический анализ побегов растений

2.7.9. Отбор почвенных образцов в поле

2.8. Методы гистохимических исследований

2.8.1. Методы определения локализации кадмия корнях

2.8.2. Определение локализации лигнина в клетках корней растений

2.8.3. Количественная оценка микоризации корней

2.9. Отбор образцов корней растений в поле

2.10. Определение влияния препаратов на микоризацию корней растений

2.11. Статистическая обработка результатов

ГЛАВА 3. ВИДОВАЯ И СОРТОВАЯ ОТЗЫВЧИВОСТЬ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ РАСТЕНИЙ НА ИНОКУЛЯЦИЮ КЛЕТКАМИ ЭНДОФИТОВ

3.1. Видовая отзывчивость культур на инокуляцию клетками эндофитов

3.2. Сортовая отзывчивость пшеницы на инокуляцию семян клетками

эндофитов

ГЛАВА 4. ВЛИЯНИЕ ЭНДОФИТНЫХ ПРЕДСТАВИТЕЛЕЙ В. аиЫШа НА РАЗМНОЖЕНИЕ ОДНОКЛЕТОЧНЫХ ВОДОРОСЛЕЙ

4.1. Размножение клеток водорослей под влиянием эндофитов

4.2. Оценка токсичности метаболитов бактерий и альгицидов для водорослей83 ГЛАВА 5. ОТВЕТНЫЕ РЕАКЦИИ РАСТЕНИЙ, ИНОКУЛИРОВАННЫХ ЭНДОФИТАМИ, НА ДЕЙСТВИЕ СТРЕССОВЫХ ФАКТОРОВ

5.1. Протекторный эффект обработки семян эндофитами при действии на растения тяжелых металлов

5.1.1. Рост растений при действии тяжелых металлов

5.1.2. Биохимические показатели инокулированных эндофитами растений пшеницы при действии тяжелых металлов

5.1.3. Устойчивость клеток B. subtilis к тяжелым металлам и способность к биоиммобилизации

5.1.4. Анализ содержания тяжелых металлов в побегах растениях

5.2. Рост и биохимические показатели бактеризованных растений при почвенной засухе

5.3. Повышение устойчивости растений к солевому стрессу при инокуляции

эндофитами

ГЛАВА 6. ОСОБЕННОСТИ ФОРМИРОВАНИЯ РАСТЕНИЯМИ ЭНДОМИКОРИЗЫ В СООБЩЕСТВЕ С ЭНДОФИТНЫМИ БАКТЕРИЯМИ

6.1. Распространенность эндомикоризы на Южном Урале

6.2. Особенности формирования эндомикоризы культурными растениями под влиянием эндофитных штаммов бактерий B. subtilis

6.3. Влияние обработки семян различными препаратами на микоризацию корней растений

6.3.1. Действие протравителей семян на микоризацию корней сельскохозяйственных культур

6.3.2. Влияние регуляторов роста растений на микоризацию

6.3.3. Сравнительный анализ влияние биофунгицида на основе штамма B. subtilis 26Д на микоризацию корней растений

6.4. Формирование эндомикоризы при абиотических стрессах под влиянием эндофитных бактерий B. subtilis

6.4.1. Формирование микоризы растений при дефиците влаги в почве

6.4.2. Действие эндофитов на показатели микоризации корней пшеницы при засолении почвы

6.4.3. Влияние бактеризации семян на показатели микоризации корней

пшеницы в условиях воздействия тяжелых металлов

ГЛАВА 7. ИЗМЕНЕНИЕ ЧИСЛЕННОСТИ БАКТЕРИЙ В РИЗОСФЕРЕ ПШЕНИЦЫ ПОД ВЛИЯНИЕМ ЭНДОФИТА В. аиЫШа 26Д

7.1. Изменение численности почвенных микроорганизмов под влиянием бактерий В. БиЪИШ 26Д

7.2. Влияние бактерий В. яиЫШя 26Д на численность клеток азотофиксатора

Лю^Ъа^вт утв1апШ1

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

АБК - абсцизовая кислота;

АФК - активные формы кислорода;

АЦК - 1-аминоциклопропанкарбоновая кислота;

BAMr - везикулярно-арбускулярные микоризные грибы

ИУК - индолил-3-уксусная кислота;

КГА - картофельно-глюкозный агар;

КЖ - культуральная жидкость;

КОЕ - колониеобразующая единица;

ЛОС - летучие органические соединения;

МДА - малоновый диальдегид;

МПА - мясо-пептонный агар;

МПБ - мясо-пептонный бульон;

ПАУ - полициклические ароматические углеводороды;

ПОЛ - перекисное окисление липидов;

ППВ - предельная полевая влагоемкость;

ПСС - полусинтетическая среда;

ТМ - тяжелые металлы;

GSH - восстановленный глутатион;

GSSG - окисленный глутатион;

ISR - Induced Systemic Resistance (индуцированная системная устойчивость);

PGPB - Plant Growth Promoting Bacteria (бактерии, стимулирующие рост растений);

PGPEB - Plant Growth Promoting Bacterial Endophytes (эндофитные бактерии, стимулирующие рост растений);

PGPR - Plant Growth Promoting Rhizobacteria (ризобактерии, стимулирующие рост растений);

SAR - Systemic Asquiered Resistance (системная приобретенная устойчивость).

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Физиология и биохимия растений», 03.01.05 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Реакции растений на стресс в сообществе с эндофитными представителями Bacillus subtilis Cohn»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Исследования взаимоотношений между растениями и микроорганизмами значимы как в аспекте получения фундаментальных знаний, так и их применения в практике. Спектр таких взаимоотношений сложный и включает одновременное взаимодействие растений с различными видами микроорганизмов, потенциально действующих как консорциум. Эти многокомпонентные микробные сообщества очень динамичны и представляют собой функциональные группы, поддерживающие устойчивость системы, которая может включать трехсторонние взаимодействия: растение - бактерии - грибы (Dames, Ridsdale, 2012; Farrar et al., 2014).

Открытия явлений благоприятного влияния микроорганизмов на растения привели к промышленному производству различных микробных препаратов для растениеводства, что особенно актуально для решения вопросов загрязнения окружающей среды агрохимикатами. Одними из первых бактерий, успешно применявшихся в качестве агентов биологического контроля патогенов сельскохозяйственных культур и для стимуляции роста растений (PGPB, Plant Growth Promoting Bacteria), были бактерии рода Bacillus (Kumar et al., 2012). Повсеместное распространение бацилл (в почве, воде, на поверхности и во внутренних тканях растений), активный синтез ими метаболитов широкого спектра действия, высокая адаптивная способность к различным условиям окружающей среды позволяют отнести эти бактерии к перспективным объектам биотехнологии (Hirooka, 2014). Особый интерес вызывают эндофитные представители группы Bacillus spp. (PGPEB, Plant Growth Promoting Endophytic Bacteria). Согласно современным русскоязычным определениями «эндофитные бактерии - бактерии, проникающие во внутренние растительные ткани без повреждений, вызванных воздействием других факторов, и способные жить внутри растений, не нанося им вреда» (Хайруллин, Сарварова, 2016).

Эндофиты представляют интерес в первую очередь, как потенциальные агенты, так называемого, системного биоконтроля, так как проникают внутрь растений. Однако эти микроорганизмы способны влиять на физиологические процессы, определяющие устойчивость к действию и абиогенных стресс-факторов среды. В этом аспекте отсутствует глубокое понимание механизмов мутуализма эндофитных бактерий и растений (Compant et al., 2010; Dames, Ridsdale, 2012; Farrar et al., 2014). Важной является также оценка последствия влияния бактериальных эндофитов на формирование мутуалистических взаимоотношений растений с другими микроорганизмами, например, грибами, формирующими везикулярно-арбускулярную микоризу (ВАМГ). Сведения об этом пока редко встречаются в научной литературе. В целом, отсутствует комплексный подход в изучении действия эндофитных штаммов бактерий на растительный организм в условиях стрессов и при его взаимодействии с другими микроорганизмами-мутуалистами, в том числе с ВАМГ.

Цель работы - определить характер и механизмы проявления ответных реакций растений в сообществе с эндофитными представителями бактерий B. subtilis на стрессовые факторы среды.

Задачи исследования:

1. Определить характер ответа разных видов культурных растений на инокуляцию клетками эндофитных штаммов бактерий B. subtilis.

2. Исследовать особенности воздействия эндофитов и их метаболитов на одноклеточные водоросли, как на компоненты агрофитоценозов.

3. Определить характер и механизмы проявления ответных реакций растений под влиянием клеток эндофитных штаммов бактерий на действие стресс-факторов (ионов тяжелых металлов, почвенной засухи и засоления).

4. Выявить особенности формирования растениями, инокулированными эндофитными бактериями-антагонистами, везикулярно-арбускулярной микоризы в стрессовых условиях среды.

5. Оценить влияние клеток эндофитного штамма бактерии B. subtilis 26Д на микробиоценоз ризосферы пшеницы.

Научная новизна. Впервые показано одновременное влияние эндофитных штаммов B. subtilis на устойчивость растений к различным видам стресс-факторов окружающей среды - тяжелым металлам (кадмий, свинец, никель), соли хлорида натрия, а также почвенной засухи, и установлен защитный эффект обработки семян разных с.-х. культур эндофитами при действии указанных неблагоприятных условий. Установлено, что одними из общих механизмов проявления защитного действия изученных эндофитных бактерий B. subtilis на растения в указанных условиях являются снижение уровня накопления малонового диальдегида (МДА), и, соответственно, перекисного окисления липидов, а также увеличение уровня пролина в растительных тканях. Показано, что в условиях засоления почвы эндофитные бактерии способствуют уменьшению содержания ионов Na+ в побегах растений и препятствуют снижению уровня ионов K+. Другие защитные реакции растений, опосредованные эндофитами, включают повышение активности антиоксидантных ферментов пероксидазы и каталазы, накопление фенольных соединений и фитохелатинов.

Показано, что обработка семян растений клетками бактерий B. subtilis 26Д и 11ВМ приводит к увеличению содержания фотосинтезирующих пигментов, в том числе в условиях действия кадмия, что является одним из вкладов в улучшение питания растений при данном стрессе.

Установлено, что обработка семян с.-х. культур исследованными бактериями B. subtilis влияет на накопление тяжелых металлов в растительных тканях.

Впервые обнаружена способность бактерий B. subtilis 26Д и 11ВМ ингибировать размножение клеток водорослей Chlorells vulgaris и Scenedesmus quadricauda. Показано, что альгицидная активность эндофитов связана с продукцией ими метаболитов липопептидной природы.

Впервые исследована распространенность везикуляно-арбускулярной микоризы в корневой системе яровой пшеницы и озимой ржи, произрастающих на Южном Урале. Выявлено, что применение регулятора роста растений (Домоцвет), а также фунгицидов для обработки семян (ТМТД, террасил) уменьшает степень микоризации корней пшеницы, овса, гороха. Показано, что в отсутствие действия стресс-факторов обработка семян эндофитами приводит к уменьшению показателей микоризации корней яровой пшеницы, гороха, ячменя. Вместе с тем при действии засухи, ионов тяжелых металлов, а также засолении почвы инокуляция семян эндофитными бактериями позволяет увеличить интенсивность микоризации корней пшеницы, костреца, гороха, кукурузы. Установлено, что обработка семян эндофитными штаммами В. яиЫШя 26Д и 11ВМ влияет на микробиоценоз ризосферы пшеницы, а эндофит В. яиЫШя 26Д способен подавлять рост хозяйственно-полезных бактерий Лю^Ъа^вт утв1апШ1 (штамм ИБ-1).

Научно-практическая значимость работы

Показана комплексная биологическая активность эндофитного антагонистического штамма В. яиЫШя 26Д - основы биологического средства защиты растений Фитоспорин-М, что позволяет расширить спектр применения эндофита в растениеводстве не только как основы биофунгицида, но и как препаратов с антистрессовой активностью при неблагоприятном воздействии на сельскохозяйственные культуры тяжелых металлов, засухи и засоления почв.

Установлено, что применение препаратов на основе эндофитных штаммов В. яиЫШя 26Д и 11ВМ увеличивает частоту и интенсивность образования эндомикоризы у растений пшеницы в условиях стрессов, вызванных действием тяжелых металлов, засоления и засухи, в связи с чем для усиления микоризации растений при действии этих стресс-факторов рекомендуется инокулировать семена клетками указанных эндофитов.

Выявлено, что обработка семян пшеницы эндофитными бактериями В. яиЫШя уменьшает содержание кадмия и свинца в надземной части растений.

Полученные результаты не позволяют рекомендовать использование препаратов на основе бактерий B. subtilis 26Д и 11ВМ на почвах с высокой концентрацией никеля, так как это приводит к увеличению содержания токсиканта в растениях. При высоком уровне загрязнения почвы тяжелыми металлами обработка растений горчицы указанными эндофитами может быть рекомендована с целью извлечения токсикантов из почвенного покрова.

Способность эндофитных штаммов B. subtilis 26Д и 11ВМ, а также их метаболитов ингибировать рост водорослей является научной основой для создания высокоэффективных альгицидов. Выявлено, что во избежание гибели одноклеточных водорослей в природных водоемах не рекомендуется допускать их загрязнения бактериальными препаратами на основе исследованных штаммов.

Связь диссертационной работы с плановыми исследованиями и научными программами. Исследования по теме диссертации поддержаны Министерством сельского хозяйства России по теме НИР «Разработка полифункциональных биофунгицидов для растениеводства» (Госрегистрация №01200853490), Стерлитамакским филиалом ФГОУ ВО БашГУ по темам НИР «Новые высокоэффективные биофунгициды» (2013), «Биологические особенности эндофитных штаммов Bacillus subtilis и их практическое применение» (2014-2016 гг).

Основные положения, выносимые на защиту.

1. В сообществе с исследованными эндофитами у культурных растений повышается устойчивость к стрессам, вызванным различными факторами - действием тяжелых металлов, почвенной засухи, натрий-хлоридного засоления.

2. Одним из общих механизмов протекторного эффекта эндофитных бактерий B. subtilis 26Д и 11ВМ при действии исследованных стресс-факторов является уменьшение в растительных тканях количества МДА -как интегрального показателя уровня перекисного окисления липидов.

3. Под влиянием эндофитных бактерий B. subtilis 26Д и 11ВМ изменяется содержание тяжелых металлов в растительных органах, уменьшение или увеличение которого определяется видом металла и растения. Одним из механизмов повышения устойчивости проростков пшеницы к солевому стрессу, вызванному NaCl, является уменьшение содержания ионов натрия в проростках, инокулированных указанными эндофитами.

4. В условиях воздействия изученных стресс-факторов у растений в сообществе с эндофитными бактериями B. subtilis 26Д и 11ВМ увеличивается частота и интенсивность формирования эндомикоризы.

5. Под действием бактерий B. subtilis штаммов 26Д и 11ВМ подавляется размножение одноклеточных водорослей Scenedesmus quadricauda и Chlorella vulgaris, что может быть использовано в практических целях.

Апробация работы. Основные результаты работы были представлены на пяти Международных научно-практических конференциях «Биотехнология: состояние и перспективы развития» (Москва, 2009, 2010, 2011, 2014, 2015 гг); IV Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы экологии Южного Урала» (Оренбург, 2009); Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы региональной экологии в условиях устойчивого развития» (Киров, 2009); VII Международной научно-практической конференции «Тяжелые металлы и радионуклиды в окружающей среде» (Семипалатинск, 2012), Съезде микологов России «Современная микология в России» (Москва, 2012, 2015 гг); Международной конференции «Физиология и биотехнология микроводорослей» (Москва,

2012); Международной научно-практической конференции «Биотехнология: реальность и перспективы в сельском хозяйстве» (Саратов, 2013); Всероссийских научных конференциях с международным участием «Инновационные направления современной физиологии растений» (Москва,

2013) и «Современные проблемы биохимии и биотехнологии» (Уфа, 2013); Международной научной конференции по биологии и биотехнологии

(Алматы, 2014), Всероссийской конференции с международным участием «Биотехнология - от науки к практике» (Уфа, 2014), Международной научной конференции «Физиология растений - теоретическая основа инновационных агро- и фитобиотехнологий» (Калининград, 2014), Международной научной конференции «ЭкоБиотех-2015» (Уфа, 2015).

Публикации. Основные материалы диссертации изложены в 33 печатных работ, в том числе 15 статей опубликованы в журналах из перечня ВАК РФ, из них 6 из международной базы цитирования. По теме исследования автором опубликованы 1 монография и 1 учебное пособие.

Структура и объем работы Диссертация изложена на 252 страницах, содержит 19 рисунков, 42 таблицы и состоит из введения; обзора литературы и экспериментальной части, включающей объекты и методы исследований, результаты исследований и их обсуждение; а также заключения, выводов и списка использованных литературных источников, включающего 584 наименований, в том числе 519 зарубежных.

Личное участие автора в получении научных результатов.

Автором работы сформулированы цели и задачи исследования, проведены эксперименты, получены и обработаны их результаты, интерпретированы экспериментальные данные, сформулированы выводы. Исследования, осуществленные в соавторстве, отражены в совместных публикациях. Личный вклад автора составляет не менее 80%.

Благодарности. Выражаю глубокую признательность научному консультанту доктору биол. наук, профессору Хайруллину Р.М. за постоянное внимание и неоценимую помощь на всех этапах работы. Искреннюю признательность выражаю Смирновой Ю.В. С особой признательностью и уважением благодарю сотрудников научно-образовательного центра ФГБОУ «Башкирский ГАУ» и лично канд. биол. наук Уразбахтину Н.А. Выражаю благодарность всем сотрудникам кафедры биологии естественнонаучного факультета Стерлитамакского филиала ФГОУ ВО «Башкирский государственный университет».

ГЛАВА 1. ЭНДОФИТНЫЕ ПРЕДСТАВИТЕЛИ БАКТЕРИЙ РОДА Bacillus И ИХ РОЛЬ ВО ВЗАИМООТНОШЕНИЯХ С РАСТЕНИЯМИ

(ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

Род Bacillus Cohn (1872) (семейство Bacillacea) представляет собой разнообразную группу (гетерогенный таксон), представители которой повсеместно распространены в природе (Sicuia et al., 2015). Род был выделен Ф. Коном (F. Cohn) в 1872 году, а вид B. subtilis был определен в качестве типового вида М. Соулом (Soule M.) в 1932 году (цит. по Sella et al., 2014) и имеет три подвида: Bacillus subtilis subsp. subtilis, subsp. spizizenii и subsp. inaquosorum (Rooney et al., 2009). Наряду с B. subtilis описаны другие родственные виды (B. amyloliquefaciens, B. atrophaeus, B. axarquiensis, B. licheniformis, B. malacitensis, B. mojavensis, B. sonorensis, B. tequilensis, B. vallismortis, B. velezensis), которые в настоящее время объединены в группу Bacillus subtilis («Bacillus subtilis group») (Jeyaram et al., 2011).

Несмотря на морфологические и физиолого-биохимические различия бактерии рода Bacillus обладают рядом общих важных свойств (активно синтезируют метаболиты широкого спектра действия, легко адаптируются к различным условиям окружающей среды и другие), благодаря которым они, в том числе, способны стимулировать рост растений и защищать их от патогенов и действия других стрессовых факторов внешней среды (Xu et al., 2003; Rooney et al., 2009; Sicuia et al., 2015).

Бактерии рода Bacillus принято относить к типичным почвенным бактериям, однако многочисленные исследования доказывают их повсеместное распространение: они обнаружены в почве, воде, на поверхности и во внутренних тканях растений (Hirooka, 2014).

Особый интерес вызывают эндофитные представители этой группы, которые колонизируют ткани внутри растения, не вызывая заболеваний и не оказывая отрицательного влияния на развитие растительного организма (Wilson, 1995; Хайруллин, Сарварова, 2016).

Эндофитные штаммы Bacillus spp. в силу занимаемой экологической ниши считаются перспективными агентами биологического контроля, так как способны заселять одну и ту же среду вместе с фитопатогенами многих видов и конкурировать с ними за место обитания и питательные вещества (Hallmann et al., 1997; Munif et al., 2013). Эндофиты, синтезируя большое количество биологически активных веществ, могут выполнять множество полезных функций для растений-хозяев (Azevedo et al., 2000; Munif et al., 2013).

1.1. Распространенность представителей Bacillus spp. в тканях растений

Считается, что эндофиты эволюционно появились как промежуточная группа между сапрофитными бактериями и патогенами растений (Menpara, Chanda, 2013), и любое из 300000 видов существующих в мире растений является хозяином одного или нескольких видов эндофитов (Strobel et al., 2004; Chebotar et al., 2015). Тем не менее, в настоящее время наличие эндофитов и их видовой состав достаточно хорошо изучены лишь у нескольких видов растений: это цитрусовые (Araujo et al., 2001), сахарный тростник (Gangwar, Kaur, 2009), кукуруза (Araujo et al., 2000), эвкалипт (Procopio, 2009; Ferreira et al., 2008), клубника (Dias et al., 2009), сахарная свекла, картофель (Dent et al., 2004; Taghavi et al., 2009; Sessitsch et al., 2012; Menpara, Chanda, 2013) и некоторые другие.

Следует отметить, что одно растение может быть колонизировано несколькими видами как грамположительных, так и грамотрицательных бактерий, относящихся к разным родам, таким как, например, Achromobacter, Acinetobacter, Agrobacterium, Bacillus, Brevibacterium, Burkholderia, Chromobacterium, Curtobacterium, Enterobacter, Kocuria, Lysinibacillus, Methylobacterium, Microbacterium, Paneibacillus, Pantoea, Phyllobacterium, Pseudomonas, Rahnella, Rhodanobacter, Stenotrophomonas (Sun et al., 2013; Ma et al., 2012). Однако преобладающее количество видов эндофитных бактерий было выявлено среди родов Streptomyces sp. и Bacillus sрp. (Sun et al., 2013).

Зндофиты Bacillus spp. найдены во внутренних тканях разнообразных частей растений: семян, фруктов, стеблей, листьев, корней и клубней, цветков (Russo et al., 2012). Бактерии B. amyloliquefaciens СС09 выделены из здоровых тканей камфорного дерева (Cinnamomum camphora) (Xun-Chao et al., 2013), лекарственного растения Scutellaria baicalensis Georgi (Sun et al., 2006); B. subtilis EDR4 - из фильтрата корней пшеницы (Liu et al., 2010), B. subtilis ZZ120 - из стеблей Prunus mume (семейство: розоцветных) (Li, 2012; Wang, Liang, 2014); B. licheniformis и B. pumilus - из корней ширококольчика цветкового (Platycodon grandiflorum) (Asraful et al., 2010); штаммы B. subtilis, B. thuringiensis и B. pumilus - из клубеньков сои (Bai et al., 2002; Li et al., 200S; Zhang et al., 2012) и из тканей пшеницы (Liu et al., 2009); B. subtilis, B. pumilus и Bacillus sp. - из кукурузы (Rai et al., 2007; Rijavec et al., 2007); B. endophyticus и Bacillus sp. - хлопчатника (Reva et al., 2002; Rajendran et al., 2007; Rajendran, Samiyappan, 2008). Разные виды и штаммы эндофитов (в том числе и Bacillus) выделены из корней и стеблей риса (Nhu, Diep, 2014).

Несмотря на то, что эндофитные бактерии могут колонизировать любую внутреннюю часть растения (Jha et al., 2013), самая высокая плотность эндофитов наблюдаются в корнях, и имеется тенденция уменьшения концентрации клеток от тканей корней к листьям и другим надземным органам (Moore et al., 2006).

Разнообразие эндофитов может зависеть от вида и сорта растений (Ulrich et al., 2008), а плотность заселения - от ткани, стадии развития растения, факторов окружающей среды, например, времени года (Shen, Fulthorpe, 2015; Kuklinsky-Sobral et al., 2004). Зндофитная колонизация зависит от физиологических изменений в растениях и может быть ограничена или замедлена защитными механизмами (Rosenblueth, Martínez-Romero, 2006). У двудольных растений салициловая кислота, этилен, жасмоновая кислота ограничивают колонизацию (Iniguez et al., 2005; Miché et al., 2006). На колонизацию растений эндофитами могут влиять удобрения. Так под влиянием азотных удобрений уменьшается концентрация сахарозы, используемая

эндофитами, и их проникновение в растения ухудшается (Hallman et al., 1997). Антимикробные пептиды, синтезируемые некоторыми растениями, такими как рис и кукуруза, могут привести к уменьшению степени эндофитной колонизации этих растений (Hurek, Reinhold-Hurek, 2003).

Следует отметить, что выявление эндофитов не всегда удается методами классической микробиологии, поэтому в настоящее время широко стал использоваться ДНК-анализ с «метагеномным» подходом (Sessitsch et al., 2012; Lacava, Azevedo, 2014).

Эндофитные бактерии, по всей видимости, могут «передаваться из поколения в поколение» через семена (Pleban et al., 1995; Adams, Kloepper, 2002), вегетативный посадочный материал (Dong et al., 1994), а также через почву на клубнях (Sturz, 1995; Hallmann et al., 1997; Mahaffee, Kloepper, 1997). За исключением семян, в которых уже присутствуют бактерии, потенциальные эндофиты колонизируют поверхность корня перед входом в растения. Эндофиты, как считается, могут находить своих хозяев путем хемотаксиса, электротаксиса или случайного столкновения. Входными воротами в растения для эндофитных бактерий чаще всего являются раны (поранения, повреждения (Sprent, de Faria, 1998; Preito et al., 2011; Reinhold-Hurek, Hurek, 2011)). Проникновение эндофитных бактерий в растения может происходить, как через корневую систему (Chi et al., 2005; Hardoim et al., 2008; Jha et al., 2013), так и через воздушное зоны побега (Sharrock et al., 1991), возможно проникновение через устьица и чечевички (Kluepfel, 1993). Эндофитные бактерии после проникновения в растения через корни активно распространяются в надземной части благодаря продукции умеренного количества таких ферментов, как пектиназы и целлюлазы (Jha et al., 2013).

Эндофиты могут жить в пределах межклеточного пространства (ePGPR, extracellular PGPR) где питаются апопластическими веществами, как непатогенные микроорганизмы (Bacon, Hinton, 2002; Chanway, 1998; McCully, 2001), но могут присутствовать и внутри клеток (iPGPR, intracellular bacteria или в сосудистой системе (Hallmann et al., 1997; James et al., 1998;

Reinhold-Hurek, Hurek, 1998; Sturz et al., 2000; Rosenblueth, Martinez-Romero, 2006; Gai et al., 2009; Lacava, Azevedo, 2014; Kumar et al., 2012).

Анализ данных литературы показывает чрезвычайно большое видовое разнообразие эндофитных бактерий, их локализацию в различных растительных органах и тканях, однако далеко не все виды растений исследованы на наличие эндофитов. Остается открытым вопрос и о механизмах функционирования симбиоза растений с эндофитами бактериями.

1.2. Биологическая активность эндофитных штаммов Bacillus spp. по

отношению к растениям

Главная причина растущего у исследователей интереса к разнообразию и роли эндофитных бактерий заключается в том, что эндофиты, устанавливая стабильные отношения с растениями, часто являются отличными стимуляторами роста и биологическими агентами контроля патогенов (Malfanova et al., 2011). Предполагается, что бактериальные эндофиты используют те же механизмы биологического контроля и стимулирования роста растений, как и ризосферные микроорганизмы (PGPR) (Berg, Hallmann, 2006). К таким широко признанными механизмами относится антибиоз (Haas, Défago, 2005; Lugtenberg, Kamilova, 2009), индуцированная системная устойчивость (Kloepper et al., 2004; Van Loon, 2007), конкуренция за ниши и питательные вещества (Kamilova et al., 2005), хищничество и паразитизм (Ordentlich et al., 1998; Harman et al., 2004).

Бактерии, относящиеся к PGPR и PGPB, улучшают физиологическое состояние растений путем синтеза фитогормонов или других полезных органических соединений (Mishra, Kumar, 2012), например, полиаминов, которые, играю важную физиологическую роль, будучи вовлеченными в деление и дифференцировку клеток, синтез белка, стабильность мембран; к тому же они играют защитную роль при различных абиотических стрессах (Xie et al., 2014).

Представители Bacillus spp. могут усиливать поглощение важных, но

плохо усвояемых микроэлементов, таких, как фосфор, цинк или оксид кремния (Abaid-Ullah et al., 2015; Acuña et al., 2011; Vijayapriya, Muthukkaruppan, 2010).

Воздействие бактерий на растения прямо или косвенно приводит к стимуляции роста либо путем «подачи» макроорганизму соединений, которые синтезируется самими микроорганизмами (например, фитогормоны и регуляторы роста), либо путем защиты растений от патогенов и, косвенно, индукцией устойчивости, а также улучшения структуры почвы, уменьшения степени воздействия загрязнения почв ксенобиотиками (Beneduzi et al., 2012; Ahemad, 2012; Ahemad, Malik, 2011).

1.2.1. Влияние бацилл на рост растений

Способность бактерий Bacillus spp. стимулировать рост и развитие различных растений широко изучена, как в естественных, так и лабораторных условиях (Kumar et al., 2011; Sicuia et al., 2015). Бактерии B. subtilis NRRL B-30408 стимулировали рост, повышали урожайность риса (Oryza sativa), дагуссы (Eleusine coracana), пайзы (Echinochloa frumentacea) (Malviya et al., 2012). Обработка растения штаммами B. amyloliquefaciens IN937a, B. cereus BS107, B. pumilus INR7, B. subtilis GB03 способствовала не только стимуляции роста растений калонхое (Kalanchoe daigremontiana), но и бесполого размножения (Park et al., 2015). Клетки B. subtilis BS87 стимулировали рост побегов, накопление биомассы, количества листьев, повышали содержание флавоноидов, стероидов и эфирного масла лекарственных растений рода Anoectochilus (A. formosanus, A. roxburghii) (Refish et al., 2016). Бактерии B. velezensis ВаСОЗ усиливали рост различных видов сельскохозяйственных растений (Meng et al., 2016). Представители Bacillus spp. (B. fortis IAGS162, B. subtilis IAGS174 и другие) стимулировали рост томатов (Huang et al., 2014; Akram et al., 2015). Штамм B. subtilis A1 активизировал рост растений перца и способствовал увеличению количества и массы плодов (Panayotov et al., 2015).

По мнению разных исследователей, многие виды Bacillus (B. cereus, В. subtilis, B. amyloliquefacien) проявляют положительный эффект воздействия на растения рапса (Danielsson и др, 2007), пшеницы (El-Daim et al., 2014) томата (Choudhary, Johri, 2009; Lim, Kim, 2009), кукурузы (Oliveira et al., 2008), в основном, благодаря подавлению фитопатогенных микроорганизмов.

Стимуляция роста растений является комплексным проявлением биологической активности клеток Bacillus spp. Ключевую роль в процессах роста и развития растений, как известно, играют фитогормоны, механизмы действия которых на растения сложны и разнообразны. Поэтому неудивительно, что фитогормоны относят к ключевым компонентам растительно-микробных взаимодействий (Durbak et al., 2012; Bottini et al., 2004; Tsavkelova et al., 2006; Puga-Freitas, Blouin, 2015).

Штаммы Bacillus spp. синтезируют такие стимуляторы роста как ауксины, цитокинины и гиббереллины (Sicuia et al., 2015). Некоторые виды бактерий могут синтезировать в определенной концентрации и ингибиторы -этилен и абсцисовую кислоту (АБК) (Porcel et all, 2014; Sicuia et al., 2015).

Наиболее хорошо у представителей Bacillus spp. изучен синтез ауксина индолил-3-уксусной кислоты (ИУК). Он был обнаружен при культивировании многих штаммов Bacillus spp. (Ahmed, Hasnain, 2010; Sicuia et al., 2015; Shao et al., 2015). Продукция ИУК увеличивалась в присутствии ее предшественников и при определенных значениях рН (Acuna et al., 2011). Основным в синтезе ИУК у представителей Bacillus spp. является триптофанзависимый путь через образование индолил-3-пировиноградной кислоты. ИУК также может быть образована и другими, независимыми от триптофана путями, включающими ароматическую аминокислоту (фенилаланин), а также пролин, цистеин, аланин и метионин (Acuna et al., 2011). Биосинтез ауксинов бактериями зависит от целого ряда факторов внешней среды (Gamalero, Glick, 2011).

Одним из основных эффектов действия бактериальной ИУК является развитие боковых и адвентивных корней у растений, что улучшает их

Похожие диссертационные работы по специальности «Физиология и биохимия растений», 03.01.05 шифр ВАК

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Курамшина Зиля Мухтаровна, 2018 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Архипова, Т.Н. Сравнение действия штаммов бактерий, различающихся по способности синтезировать цитокинины, на рост и содержание цитокининов в растениях пшеницы / Т.Н. Архипова, С.Ю., Веселов, А.И Мелентьев, Е.В., Мартыненко. Г.Р. Кудоярова // Физиология растений. - 2006. - Т. 53. - № 4. - С. 567-574.

2. Балашова, Н.Б. Водоросли / Н.Б. Балашова, В.Н. Никитина. - Л.: Лениздат, 1989. - С. 79-92.

3. Бетехтина, А.А.. Распространенность иинтенсивность микоризообразования у травянистых растений Среднего Урала с разными типами экологических стратегий / А.А. Бетехтина, Д.В. Веселкин // Экология. 2011. - № 3. - С. 176-183.

4. Безрукова, М.В. Участие лектина в формировании устойчивости пшеницы к токсическому действию кадмия / М.В. Безрукова, Р.А. Фатхутдинова, А.Р. Лубянова, А.Р. Мурзабаев, В.В. Федяев, Ф.М. Шакирова // Физиология растений. - 2011. - Т. 58. - №6. - С. 907-914.

5. Бетехтина, А.А. Эндомикориза травянистых растений: распространенность и экологическое значение: автореф. дисс. ... канд. биол. наук. 03.00.16, 03.00.05 / Бетехтина Анна Анатольевна. - Екатеринбург: УГУ, 2006. - 24 с.

6. Белимов, А.А. Использование ассоциативных бактерий для инокуляции ячменя в условиях загрязнения почвы свинцом и кадмием / А.А. Белимов, А.М. Кунакова, В.И. Сафронова, А.П. Кожемяков, В.В. Степанок, Л.Ю. Юдкин, Ю.В. Алексеев // Микробиология. - 2004. - Т. 73. - С. 118-125.

7. Гао, Я. Фитоэкстракция кадмия и физиологические изменения у Solarium nignim как нового гипераккумулятора / Я. Гао, П. Чжоу, Л. Мао, В.-Ц. Ши, Ю.-Э. Чжи // Физиология растений. - 2010. - Т. 57. - №4. - С. 538546.

8. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации. - М.: Минсельхоз России, 2010. - 801 с.

9. ГОСТ 13496.3-92. Комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения влаги. М.: Стандартформ, - 2011.

10. ГОСТ 27548-97. Корма растительные. Методы определения содержания влаги. М.: Стандартформ, - 2011.

11. ГОСТ 13496.4-93. Методы определения содержания азота и сырого протеина. М.: Стандартформ, - 2011.

12. ГОСТ 53764-2009. Определение содержания почвенной влаги в виде объемной доли с применением трубок для отбора пробы грунта. Гравиметрический метод. М.: Стандартформ, - 2010.

13. Егоршина, А.А. Участие фитогормонов в формировании взаимоотношений проростков пшеницы с эндофитным штаммом Bacillus subtilis 11ВМ / А.А. Егоршина, Р.М. Хайруллин, А.Р. Сахабутдинова, М.А. Лукьянцев // Физиология растений. - 2012. - Т. 59. - № 1. - С. 148-155.

14. Егоршина, А.А. Фосфат-мобилизующая активность эндофитных штаммов Bacillus subtilis и их влияние на степень микоризации корней пшеницы / А.А. Егоршина, Р.М. Хайруллин, М.А. Лукьянцев, З.М. Курамшина, Ю.В. Смирнова // Журнал Сибирского Федерального Университета. Серия Биология. - 2011. - № 2. - С. 172-182.

15. Емцев, В.Т. Защитное действие бактерий Klebsiella на газонные травы в условиях засоления почвы / В.Т. Емцев, А.Я. Соколова, О.В. Селицкая // Почвоведение. - 2010. - № 7. - С. 825-830.

16. Жмур, Н.С. Методика определения токсичности вод, водных вытяжек из почв, осадочных сточных вод и отходов по изменению уровня флуоресценции хлорофилла и численности клеток водорослей / Н.С Жмур, Т.Л. Орлова. - М.: АКВАРОС, 2007. - С. 25-40.

17. Запрометов, М.Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях / М.Н. Запрометов. - М: Наука, 1993. -272 с.

18. Звягинцев, В.И. Микробы-антагонисты (стрептомицеты и бациллы) выделенные из почв разных типов / В.И. Звягинцев, А.И. Кузин, Е.М. Шагов, Р.Р. Азизбекян, Г.М. Зенова, Т.А. Воейкова // Почвоведение. -2004. - № 7. -С. 860-866.

19. Зольникова, Н.В. Метод массового отбора фитотоксич-ных почвенных микроорганизмов (разработка и применение): Автореф. дис. ... канд. биол. наук: 03.00.07 / Зольникова Наталья Васильевна. - Л., 1979. - 21 с.

20. Иванчина, Н.В. Взаимоотношения эндофитных штаммов Bacillus subtilis с симбиотической системой Pisum sativum L. - Rhizobium leguminosarum bv. Viceae: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 03.01.05., 03.02.03/ Иванчина Наталья Валерьевна. - Уфа, 2010. - 133 с.

21. Каменский, Ф.М. О симбиотическом соединении мицелия грибов с корнями высших растений // Тр. Спб. Об-ва естествоип. -1886. -Т. 17. - С. 34-36.

22. Квеситадзе, Г.И. Метаболизм антропогенных токсикантов в высших растениях / Г.И. Квеситадзе, Г.А. Хатисашвили, З.Г. Евстигенеева. - М.: Наука, 2005. - 199 с.

23. Королюк, М. А. Метод определения активности каталазы / М.А. Королюк, Л.И. Иванова, И.Г. Майорова, В.Е. Токарев // Лаб. дело. - 1988. -№ 1. - С. 16-18.

24. Курамшина З.М. Повышение толерантности Triticum aestivum к кадмий-стрессу с помощью эндофитных штаммов Bacillus subtilis / З.М.Курамшина, Ю.В. Смирнова, Р.М. Хайруллин // Физиология растений. -2016. - Т. 63. -№ 5. - С. 1-9.

25. Курамшина З.М. Влияние антагонистического штамма Bacillus subtilis 26Д на численность микроорганизмов почвы, прилегающей к семенам

пшеницы /З. М. Курамшина, Р. М. Хайруллин, М. А. Лукьянцев // Почвоведение. - 2014. - № 9. - C. 1102-1106.

26. Кутузова, Р.С. Структура микробного комплекса пшеницы в условиях гербицидного стресса / Р.С. Кутузова, Н.И. Воробьев, Ю.В. Круглов // Почвоведение. - 2006. - № 2. - С. 220-227.

27. Лабутова, Н.М. Методы исследования арбускулярных микоризных грибов / Н.М. Лабутова.- СПб: Российская академия сельскохозяйственных наук. ВНИИ Сельскохозяйственной микробиологии., 2000. - 23 с.

28. Лукьянцев, М.А. Особенности биологической активности эндофитных штаммов Bacillus subtilis Cohn с различной степенью антагонизма к фитопатогенным грибам: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 03.02.03 / Лукьянцев Михаил Александрович. - Саратов, 2010. - 21 с.

29. Максимов, И.В. Стимулирующие рост растений бактерии в регуляции устойчивости растений к стрессовым факторам / И.В. Максимов, С.В. Веселова, Т.В. Нужная, Е.Р. Сарварова, Р.М. Хайруллин // Физиология растений. - 2015. - Т. 62 (6). - С. 763.

30. Мелентьев, А.И. Аэробные спорообразующие бактерии Bacillus Cohn в агроэкосистемах / А.И. Мелентьев. - М.: Наука, 2007. - 147 с.

31. Методические указания по определению тяжелых металлов в почвах сельхозугодий и продукции растениеводства. - М.: ЦИНАО, 1992. - 61 с.

32. Методы определения микроэлементов в почвах, растениях, и водах / Под редакцией И.Г. Важенина. - М.: Колос, 1974. - 287 с.

33. Минеев, В.Г. Практикум по агрохимии / В.Г. Минеев, В.Г. Сычев, О.А. Амельянчик, Т.Н. Болышева, Н.Ф. Гомонова, Е.П. Дурынина, B.C. Егоров, Е.В. Егорова, Н.Л. Едемская, Е.А. Карпова, В.Г. Прижукова - M.: МГУ, 2001. - 689 с.

34. Минина, Т.С. Новые эндофитные штаммы Bacillus subtilis как основа биофунгицидов / Т.С. Минина, Р.Ш. Захарова, H.A. Уразбахтина, P.M. Хайруллин // Вестник Казанского государственного аграрного университета. -2009. - №2(12). - С. 55-59.

35. Мубинов, И. Г. Реакции пшеницы на действие клеток эндофитного штамма 26Д Bacillus subtilis - основы биофунгицида фитоспорин: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 03.00.12 / Мубинов Искандар Гарифович. - Уфа, 2007. - 22 с.

36. Мункуева, Б.Д. .Влияние тяжелых металлов на микроорганизмы рода Bacillus / Б.Д Мункуева, С.В. Гомбоева, В.Ж. Цыренов // Биотехнология в интересах экономики и экологии Сибири и Дальневого Востока. -2016. - С. 60-64.

37. Недорезков, В.Д. Биологическое обоснование применения эндофитных бактерий в защите пшеницы от болезней на Южном Урале: Автореф. дисс. д -ра. с.-х. наук: 06.01.11 / В.Д. Недорезков. - Уфа, 2003. - 48 с.

38. Нетрусов, А.И. Экология микроорганизмов / А.И. Нетрусов. -М.: Академия, 2004. - 352 с.

39. Никифорова [Сунгурцева], И.Ю. Скрининг и изучение ризобактерий, устойчивых к кадмию / И.Ю. Никифорова [Сунгурцева], Е.В Любунь., Е.В., Плешакова, А.Ю. Муратова // Бюл. Оренбург. науч. центра УрО РАН. - 2014.

- № 3. -11 с.

40. Нусинская, М.В. Активация микосимбиотрофизма регуляторами роста: Автореф. дисс. ... канд. биол. наук: 03.00.23/ Нусинская Марина Владимировна - СПб: СПбТУ, 2000. -19 с.

41. Пешков, С.А. Исследование биоаккумуляции тяжелых металлов бактериями рода Bacillus с использованием рентгенофлуоресцентного анализа и атомно-силовой микроскопии / С.А. Пешков, А.Н. Сизенцов, А.Н. Никиян, Г.И. Кобзев // Современные проблемы науки и образования. - 2015.

- № 4. - С 526- 633.

42. Практикум по микробиологии / Под ред. А.И. Нетрусова. - М.: «Академия», 2005. - 608 с

43. Проворов, Н.А. Растительно-микробные симбиозы как эволюционный континуум / Н.А. Проворов // Журнал общей биологии. - 2009. - Т. 70(1). -С. 10-34.

44. Прусакова, Л.Д. Регуляторы роста растений с антистрессовыми и иммунопротекторными свойствами/ Л.Д. Прусакова, Н.Н Малеванная, С.Л. Белопухов, В.В Вакуленко // Агрохимия. - 2005. - № 11. - С. 76-86.

45. Пусенкова, Л.И. Повышение адаптивного потенциала посевов сахарной свеклы микробными биопрепаратами в условиях биотических и абиотических стрессов / Л.И. Пусенкова, Е.Ю. Ильясова, И.В. Максимов, О.В.Ласточкина // Сельскохозяйственная биология. - 2015. - Т. 50 (1). - С. 115-123.

46. Рыбальченко, Н. П. Альгицидные свойства Bacillus sp. / Н. П. Рыбальченко, М. А. Хархота, С. В. Лапа, Л. В. Авдеева // Бюлопчш Студи / Studia Biologica . - 2015. - Т. 9(2). - С. 5-12

47. Селиванов, И.А. Микосимбиотрофизм как форма консортивных связей в растительном покрове Советского Союза / И.Ф. Селиванов // - М: Наука, 1981. - 232 с

48. Серегин, И.В. Гистохимические методы изучения распределения кадмия и свинца в растениях / И.В. Серегин, В.Б. Иванов // Физиология растений. - 1997. - Т. 44. - С. 915-921.

49. Серегин, И.В. Токсическое действие и распределение никеля в корнях кукурузы / И.В. Серегин, А.Д. Кожевникова, Е.М. Казюмина, В.Б. Иванов // Физиология растений. - 2003. - Т. 50. - С. 793-800.

50. Стахурлова, Л.Д. Биологическая активность как индикатор плодородия черноземов в различных биоценозах / Л.Д. Стахурлова, И.Д. Свистова, Д.И. Щеглов // Почвоведение. - 2007. - № 6. - С. 769-774.

51. Сунгурцева, И. Ю. Исследование динамики биоаккумуляции кадмия (II) ризобактерией Bacillus sp. 14 / И. Ю. Сунгурцева, Е. В. Любунь, А. Ю. Муратова, Е. В. Плешакова / Изв. Сарат. ун-та. Нов. сер. Сер. Химия. Биология. Экология. - 2015. -Т. 15. - Вып. 4. - С.74-77.

52. Титов, А.Ф. Тяжелые металлы и растения / А.Ф. Титов, Н.М. Казнина, В.В. Таланова. - Петрозаводск: Карельский научный центр РАН, 2014. - 194 с.

53. Узбеков, И.С. Биологическая активность почвы и урожайность яровой пшеницы при использовании метаболитов эндофита и сернокислой меди в условиях Южной лесостепи Республики Башкортостан: Автореф. дисс. . канд. биол. наук: 03.02.13/ Узбеков Ильяс Сайфуллаевич - Уфа: БГАУ, 2010.- 19 с .

54. Уромова, И.П. Использование фиторегуляторов в картофелеводстве / И.П.Уромова. - Новгород: ВВАГС, 2009. - 119 с.

55. Фурст, Г.Г. Методы анатомо-гистохимического исследования растений / Г.Г. Фурст. - М.: Наука, 1979. - 155 с.

56. Хайруллин, Р.М. К термину «эндофитные бактерии» / Р.М. Хайруллин., Е.Р. Сарварова // Вестник защиты растений. - 2016. - Т. 89(3). - С. 175-176.

57. Хайруллин, Р.М. Повышение устойчивости пшеницы к абиотическим стрессам эндофитным штаммом Bacillus subtilis / Р.М. Хайруллин, В.Д. Недорезков, И.Г. Мубинов, Р.Ш. Захарова // Вестник ОГУ. - 2007. - №2. - С. 129-134.

58. Хазиев, Ф.Х. Почвы Башкортостана. Т. 1: Эколого-генетическая и агропроизводственная характеристика / Ф.Х. Хазиев, Ф.Х. Мукатанов, И.К. Хабиров // Уфа: Гилем, 1995. - 384 с

59. Характеристики сортов растений, впервые включённых в 2016 году в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию: официальное издание. - М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2016. - 432 с.

60. Чупахина, Г.Н. Физиологичекие и биохимихеские методы анализа растений: Практикум / Калинингр. ун-т; Авт.-сост. Г.Н. Чупахина. -Калиниград, 2000. - 59 с.

61. Шапошников, Ф.И. Сравнительные характеристики корневых систем и корневой экссудации у синтетического, примитивного и современного сортов пшеницы /А.И. Шапошников, А.И. Моргунов, Б. АКИН, Н.М. Макарова, А.А. Белимов, И.А. Тихонови // Сельскохозяйственная биология. -2016. - T. 51(1). - С. 68-78.

62. Шевелуха, В.С. Регуляторы роста растений в сельском хозяйстве/ В.С Шевелуха, В. М Ковалев, Л. Г. Груздев // Вестник с.-х. науки. - 1985. - № 9. -С. 57-65.

63. Шихалеева, Г.Н. Модифицированная методика определения пролина в растительных объектах / Г.Н.Шихалеева, А.К.Будняк, И.И.Шихалеев, О.Л.Иващенко // Вюник Харювського нащонального ушверситету iменi В.Н.Каразiна. Серiя: бiологiя. 2014.Вип. 21, №1112. P. 168-172.

64. Шлык, А.А. Определение хлорофиллов и каратиноидов в экстрактах зеленых листьев / А.А. Шлык // Биохимические методы в физиологии растений. М.: Наука, 1971. - С. 154-171.

65. Штарк, О.Ю. Перспективы использования многокомпонентных симбиотических систем бобовых / О.Ю. Штарк, В.А. Жуков, А.С. Сулима, Р. Сингх, Т. С Наумкина, Г. А. Ахтемова, А. Ю. Борисов // Экологическая генетика. - 2015. - T. XIII. - №1. - С. 31-37.

66. Abaid-Ullah, M. Plant growth promoting rhizobacteria: an alternate way to improve yield and quality of wheat (Triticum aestivum) / M.N. Hassan, M. Jamil, G. Brade, M.K.N. Shah, A. Sessitsch, F.Y. Hafeez // Int. J. Agric. Biol. -2015. -Vol. 17. - P. 51-60.

67. Abdallah, M.M. Effect of drought conditions at different stages on phenol and carbohydrate content of cotton leaves / M.M. Abdallah // Z Ack Pflanzenbau. - 1985. - Vol. 155. - P. 246-252.

68. Abd-Alla M. H. The impact of pesticides on arbuscular mycorrhizal and nitrogen-fixing symbioses in legumes / M.H. Abd-Alla, S. A.Omar, S. Karanxha // Applied Soil Ecology - 2000. - Vol. 14 - P. 191-200

69. Abdel Latef, A.A.H. Arbuscular Mycorrhizal Symbiosis and Abiotic Stress in Plants: A Review /A.A. H.Abdel Latef, A.Hashem, S.Rasool, E. Fathi Abd_Allah, Alqarawi A. A, D.Egamberdieva, S. Jan, N.A. Anjum, P. Ahmad // J. Plant Biol. - 2016. - Vol. 59. - P. 407-426.

70. Abdel-Rahman, S.S.A. Response of three sweet basil cultivars to inoculation with Bacillus subtilis and arbuscular mycorrhizal fungi under salt stress conditions

/ S.S.A. Abdel Rahman, A.A.S. Abdel-Kader, S.E. Khalil // Nature and Science. -2011. - Vol. 9(6). - P. 93-111.

71. Abiala, M.A. Harnessing the potentials of vesicular arbuscular mycorrhizal (vam) fungi to plant growth - A Review / M.A Abiala., O.O Popoola., O.J Olawuyi, J.O. Oyelude, A.O Akanmu., A.S. Killani., O. Osonubi, A.C Odebode // Int. J. Pure Appl. Sci. Technol. - 2013. - Vol.14.(2). - P. 61-79

72. Adams, P.D. Effect of host genotype on indigenous bacterial endophytes of cotton (Gossypium hirsutum L.) / P.D. Adams, J.W. Kloepper // Plant Soil. - 2002. -Vol. 240. - P.181-189.

73. Acosta-Motos J. R. Plant responses to salt stress: adaptive mechanisms / J.R.Acosta-Motos, M. F. Ortuño, A. Bernal-Vicente, P.Diaz-Vivancos, M.J. Sanchez-Blanco, J.A. Hernandez // Agronomy. - 2017. - Vol. 7(1): 18; -doi: 10.3390/agronomy7010018

74. Acuña. J.J. Indole acetic acid and phytase activity produced by rhizosphere bacilli as affected by pH and metals / J.J. Acuña, M.A. Jonquera, O.A. Martínez., D. Menezes-Blackburn, M.T.Fernández, P. Marschner, R. Greiner, M.L.Mora // Journal of Soil Science and Plant Nutrition. - 2011. - Vol. 11 (3). - P. 1-12.

75. Aggarwal, M. Exogenous proline application reduces phytotoxic effects of selenium by minimising oxidative stress and improves growth in bean (Phaseolus vulgaris L.) seedlings / M. Aggarwal, S. Sharma, N. Kaur, D. Pathania, K. Bhandhari, N. Kaushal, R. Kaur, K. Singh, A. Srivastava, H. Nayyar // Biol. Trace Elem. Res. - 2011. - Vol.140. - P. 354-367.

76. Ahemad, M. Implications of bacterial resistance against heavy metals in bioremediation: a review / M. Ahemad // IIOAB J. - 2012. - Vol.3 - P. 39-46.

77. Ahemad, M. Bioaccumulation of heavy metals by zinc resistant bacteria isolated from agricultural soils irrigated with wastewater / M Ahemad, A. Malik // Bacteriol. J. - 2011. - Vol. 2. - P. 12-21.

78. Ahmad, A. Effective phytoextraction of cadmium (Cd) with increasing concentration of total phenolics and free proline in Cannabis sativa (L) plant

under various treatments of fertilizers, plant growth regulators and sodium salt / A. Ahmad, F. Hadi, N. Ali // Int J. Phytoremediation. - 2015. - Vol. 17. P. 56-65.

79. Ahmad, P. Polyamines: role in plants under abiotic stress / P. Ahma, A. Kumar, A. Gupta, X. Hu, K.R. Hakeem, M.M. Azooz, S. Sharma // Crop Production for Agricultural Improvement /Ashraf M, Oztürk M., Ahmad M.A., Aksoy A.. (eds.) - Berlin: Springer, Amsterdam, The Netherlands, 2012. - P. 491512.

80. Ahmad, F. Screening of free-linving rhizospheric bacteria for their multiple plant growth promoting activities / F. Ahmad, I. Ahmad, M.S. Khan // Microbiol Res. - 2008. - Vol. 163. - P. 173-181

81. Ahmad, F. Screening of free-living rhizospheric bacteria for their multiple plant growth promoting activities. / F. Ahmad, I. Ahmad, M. S. Khan // Microbiological Research. - 2006. - Vol. 163(2). -P.173-181.

82. Ahmed, A. Auxin-producing Bacillus sp.: Auxin quantification and effect on the growth of Solanum tuberosum / Ahmed A, Hasnain S. // Pure Appl Chem. -2010. - Vol. 82 (1) - P. 313-319.

83. Ahn, C.Y. Selective control of cyanobacteria by surfactin-containing culture broth of Bacillus subtilis C1 / C.Y Ahn, S.H. Joung, J.W. Jeon, H S.Kim, B.D. Yoon, H.M. Oh // Biotechnology Letters. -2003. -Vol. 25(14). - P. 1137-1142.

84. Ahsan, N. Comparative proteomic study of arsenic-induced differentially expressed proteins in rice roots reveals glutathione plays a central role during As stress / N. Ahsan, D.G. Lee, I. Alam, P.J. Kim, J.J. Lee, Y.O. Ahn, S.S.Kwak, I.J. Lee, J.D. Bahk, K.Y. Kang, J. Renaut, S. Komatsu, B.H. Lee // Proteomics. -2008. -Vol. 8. - N. 17. - P. 3561-3576.

85. Akram, W. Co-cultivation of tomato with two Bacillus strains: effects on growth and yield / W. Akram, T. Anjum, B. Ali // J. Anim. Plant Sci. - 2015. -Vol 25(6). - P.1644-1651.

86. Allen, M.F. The ecology of arbuscular mycorrhizas: a look back into the 20 th Century and a peek into the 21 st./ M.F. Allen // Mycological Research. - 1996. - V. 100. - P. 769-782

87. Ali, G. Effect of CO2 enrichment on synthesis of some primary and secondary metabolites in ginger (Zingiber officinale Roscoe) / G. Ali, Hawa Z.E. Jaafar // J. Mol. Sci. - 2011. - Vol. 12. - P. 1101-1114.

88. Al-Khaliel, A..S. Effect of salinity stress on mycorrhizal association and growth response of peanut infected by Glomus mossea / A.S. Al-Khaliel // Plant Soil Environ. - 2010. - Vol. 56. - P. 318-324.

89. Amir, H.G. N2 fixation, nutrient accumulation and plant growth promotion by rhizobacteria in association with oil palm seedlings / H.G. Amir, Z.H. Shamsuddin, M.S. Halimi, M.F. Ramlan, M. Marziah // Pakistan Journal of Biological Sciences. -2003 - Vol. 6 (14). - P. 1269-1272.

90. Amir, H.G. Enhancement in nutrient accumulation and growth of oil palm seedlings caused by PGPR under field nursery conditions / H.G. Amir, Z.H. Shamsuddin, M.S. Halimi, M.F. Ramlan, M. Marziah // Communications in Soil Science and Plant Analysis. - 2005. - Vol. 36. - P. 2059-2066.

91. Andrade, G. Bacterial associations with the mycorrhizosphere and hyphosphere of the arbuscular mycorrhizal fungus Glomus mosseae / G. Andrade, R.G. Linderman, G.J. Bethlenfalvay // Plant Soil. - 1998. -Vol. 202. - P. 79-87.

92. Anjum, N.A. Modulation of glutathione and its related enzymes in plant's responses to toxic metals and metalloids - A review / N.A. Anjum, I. Ahmad, I. Mohmood, M. Pacheco, A.C. Duarte, E.Pereira, S.Umar, A.Ahmad, N. A. Khan. M. Iqbal, M.N.V. Prasad // Environ Exp. Bot. - 2012. - Vol. 75. - P. 307-324.

93. Apel, K. Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction / K. Apel, H. Hirt //Ann Rev Plant Biol. - 2004. - Vol.5. - P. 373399.

94. Araujo, A.S. Plant bioassays to assess toxicity of textile sludge compost / A.S.R. Araujo, R.T.R. Monteiro // Scientia Agricola (Piracicaba Brazil). -2005. -Vol. 62. - P. 286-290.

95. Araujo, J.M. Isolation of endophytic actinomycetes from roots and leaves of maize (Zea mays L.) / J.M. Araujo, A.C. Silva, J.L.Azevedo // Braz Arch Biol Technol. -2000. - Vol. 43. - P. 447-451.

96. Araújo, W.L. Variability and interactions between endophytic bacteria and fungi isolated from leaf tissues of citrus rootstocks / W.L Araújo, Junior W. Maccheroni, C.I. Aguilar-Vildoso, P.A.V. Barroso, H.O. Saridaki, J.L. Azevedo // Can J Microbiol. - 2001. - Vol.47. - P. 229 -236.

97. Argolo-Filho, R.C. Bacillus thuringiensis is an environmental pathogen and host-specificity has developed as an adaptation to human-generated ecological niches / R.C. Argolo-Filho, L.L. Loguercio // Insects. - 2014. - Vol. 5(1). - P. 6291.

98. Arguelles-Arias, A. Bacillus amyloliquefaciens GA1 as a source of potent antibiotics and other secondary metabolites for biocontrol of plant pathogens / A. Arguelles-Arias, M. Ongena, B. Halimi, Y. Lara, A. Brans, B. Joris, P. Ficker // Microbial Cell Factories. - 2009. - Vol. 8. - P. 1-12.

99. Arkhipova, T.N. Ability of bacterium Bacillus subtilis to produce cytokinins and to influence the growth and endogenous hormone content of lettuce plants / T.N. Arkhipova, S.U. Veselov. A.I. Melentiev, E.V. Martynenko, G.R Kudoyarova // Plant and Soil. - 2005. - Vol. 272(1-2). - P. 201-209.

100. Armada, E. Native plant growth promoting bacteria Bacillus thuringiensis and mixed or individual mycorrhizal species improved drought tolerance and oxidative metabolism in Lavandula dentata plants / E Armada, A. Probanza, A. Roldán, R. Azcón // J. Plant Physiol. - 2016. - Vol. 21(192). - P. 1-12.

101. Aroca. R. Arbuscular mycorrhizal symbiosis influences strigolactone production under salinity and alleviates salt stress in lettuce plants / R Aroca, J.M. Ruiz-Lozano, A.M. Zamarreño, J. A. Paz, J M García-Mina, M. J. Pozo, J. A. López-Ráez // Journal of Plant Physiology. - 2013. - Vol. 170(1). - P.47-55.

102. Arora, N.K. PGPR for protection of plant health under saline conditions / N.K. Arora, S.Tewari, S.Singh, N. Lal, D.K. Maheshwari // Bacteria in agrobiology: Stress management / Maheshwari D.K (ed.). - Springer, Verlag Berlin Heidelberg, 2012. - P. 239-258.

103. Arora, S. Isolation and characterization of endophytic bacteria colonizing halophyte and other salt tolerant plant species from coastal Gujarat / S. Arora,

P.N. Patel, M.J. Vanza, G.G. Rao // Afr. J. Microbiol. Res. - 2014. - Vol. 8. - P. 1779-1788.

104. Arshad, M. Inoculation with Pseudomonas spp. containing ACC-deaminase partially eliminates the effects of drought stress on growth yield and ripening of pea (P. sativum L) / M. Arshad, B. Shahroona, T. Mahmood // Pedosphere. - 2008. - V. 18. - P. 611-620.

105. Asada, K. The water-water cycle as alternative photon and electron sinks / K. Asada // Philos. Trans. R. Soc. B: Biol. Sci. - 2000. - Vol. 355. - P. 1419-1431.

106. Ashfaque, F. Influence of heavy metal toxicity on plant growth, metabolism and its alleviation by phytoremediation - a promising technology / F. Ashfaque, A. Inam, S. Sahay, S. Iqbal //Journal of Agriculture and Ecology Research International. - 2016. - Vol. 6(2). - P. 1-19.

107. Asmelash, F. The potential role of arbuscular mycorrhizal fungi in the restoration of degraded lands / F. Asmelash, T. Bekele, E. Birhane // Frontiers in Microbiology. - 2016. - Vol. 7. - P. 1-17.

108. Ashraf, M. Inoculating wheat seedlings with exopolysaccharide-producing bacteria restricts sodium uptake and stimulates plant growth under salt stress / M. Ashraf, S.Hasnain, O. Berge, T. Mahmood // Biol. Fertil. Soil. - 2004. - Vol. 40. -P.157-162.

109. Asraful Islam, S. Effect of plant age on endophytic bacterial diversity of balloon flower (Platycodon grandiflorum) root and their antimicrobial activities / S. Md. Asraful Isla, R K. Math, J. M. Kim, M. G. Yun, J.J. Cho, E.J. Kim, Y.H. Lee, H.D. Yun // Current Microbiology. - 2010. - Vol. 61. - P. 346-356.

110. Assche, F. Effects of metals on enzyme activity in plants / F. Assche, H. Clijsters // Plant, Cell and Environment. - 1990. - Vol. 24. - P. 1-15.

111. Assie, L.K. Insecticide activity of surfactins and iturins from abiopesticide Bacillus subtilis Cohn (S499 strain) / L.K Assie, M. Deleu, L. Arnaud, M. Paquot, P. Thonart, Ch. Gaspar, E. Haubruge // Meded Rijksuniv Gent Fak Landbouwkd Toegep Biol Wet. - 2002. - Vol. 67(3). - P.647-655.

112. Assmann, S.M. OPEN STOMATAj opens the door to ABA signaling in Arabidopsis guard cells / S.M. Assmann // Trends Plant Sci. - 2003. - Vol. 8. - P. 151-153.

113. Auge, R.M. Arbuscular mycorrhizal symbiosis alters stomatal conductance of host plants more under drought than under amply watered conditions: a metaanalysis / R. M. Auge, H. D. Toler, A. M. Saxton // Mycorrhiza. - 2015. - Vol. 25(1). - P. 13-24.

114. Azcon, R. Arbuscular mycorrhizal fungi, Bacillus cereus, and Candida parapsilosis from a multi contaminated soil alleviate metal toxicity in plants / R. Azcon, M.C. Peralvarez, A. Roldan, J.M. Barea // Microbial Ecology. - 2010. -Vol. 59. - P. 668-677

115. Azevedo, E.C. Bacitracin production by a new strain of Bacillus subtilis. Extraction, purification, and characterization / E.C Azevedo, E.M Rios., K Fukushima., G.M. Campos-Takaki // Appl Biochem Biotechnol. - 1993. - Vol. 42. -P. 1-7.

116. Azevedo, J.L. Endophytic microorganisms: a review on insect control and recent advances on tropical plants / J.L. Azevedo, Jr. W. Maccheroni, J.O. Pereira, W.L. Araujo // Elect. J. Biotech. - 2000. - Vol 3(1). - P. 40-65.

117. Bacilio-Jimenez, M. Chemical characterization of root exudates from rice (Oryza sativa) and their effects on the chemotactic response of endophytic bacteria / M. Bacilio-Jimenez, S. Aguilar-Flores, E. Ventura-Zapata, E. Perez-Campos, S. Bouquelet, E. Zenteno // Plant Soil. - 2003. - Vol 249. - P. 271-277.

118. Bacon, W. Endophytic and biological control potential of Bacillus mojavensis and related species / W. Bacon, M. Hinton // Biological Control. -2002. - Vol. 23. - P. 274-284.

119. Badri, D.V. Rhizosphere chemical dialogues: plant-microbe interactions / D. V. Badri, T.L. Weir, D. van der Lelie, J.M Vivanco // Current Opinion in Biotechnology. - 2009. -Vol. 20. - P.642-650.

120. Bai, Y. Isolation of plant-growth-promoting Bacillus strains from soybean root nodules / Y. Bai, F.D'Aoust, D.L. Smith, B.T. Driscoll // Can. J. Microbiol. -2002. - Vol. 48. - P. 230-238.

121. Bais, H.P. Biocontrol of Bacillus subtilis against infection of Arabidopsis roots by Pseudomonas syringae is facilitated by biofilm formation and surfactin production / Bais H.P., Fall R., Vivanco J.M. // Plant Physiol. - 2004. - V. 134. -P. 307-319.

122. Baker, A. Metal tolerance / A. J. M. Baker // New Phytologist. -1987. -Vol.106. - P. 93-111.

123. Baker A.J.M. The possibility of in situ heavy metal decontamination of polluted soils using crops of metal-accumulationg plants / A.J.M. Baker, S.P. McGrath, C.M.D. Sidoli, R.D. Reeves // Resources, Conservation and Recycling. -1994. - Vol.11. - P. 41-49.

124. Bakhtiar, Y. Adaptation of oil palm seedlings inoculated with arbuscular mycorrhizal fungi and mycorrhizal endosymbiotic bacteria Bacillus subtilis B10 towards biotic stress of pathogen Ganoderma boninense Pat / Y.Bakhtiar, S.Yahya, W.Sumaryono, M. S. Sinaga, S.W. Budi // Microbiology. -2012. - Vol 6(4). - P. 157-164.

125. Balasubramaniyam, A. Hormetic Dose Response as the Paradigm of Plant Response to Stress / A. Balasubramaniyam // Int. J. Plant Biol. Res. - 2015. - Vol. 3(2). - P.1-5.

126. Balasubramanian, N. Bacillus pumilus S124A carboxymethyl cellulase; a thermo stable enzyme with a wide substrate spectrum utility / N. Balasubramanian, N.Simoes // Int. J. Biol. Macromol. - 2014 - Vol. 67. - P. 132-139.

127. Banerjee, A. Metabolic engineering of lipids in plants / A. Banerjee, A. Roychoudhury // J. Plant Scin. Res. - 2014. - Vol.1 (3). - P. 1-20.

128. Banerjee, S. Microbial observation in bioaccumulation of heavy metals from the ash dyke of thermal power plants of chhattisgarh, india / S.Banerjee, R. Gothalwal, P.K. Sahu, S. Sao // Advances in Bioscience and Biotechnology. -2015. - Vol. 6. - P. 131-138.

129. Baniaghil, N. The effect of plant growth promoting rhizobacteria on growth parameters, antioxidant enzymes and microelements of canola under salt stress / N. Baniaghil, M.H. Arzanesh, M. Ghorbanli, M. Shahbazi // J Appl Environ Biol Sci.

- 2013. - Vol. 3. - P.17-27.

130. Barea, J.M. Impact on arbuscular mycorrhiza formation of Pseudomonas strains used as inoculants for biocontrol of soil borne fungal plant pathogen. / J.M. Barea, G. Andrade, V. Bianciotto, D. Dowling, S. Lohrke, P. Bonfante, F. O'Gara, C.Azcon-Aguilar // Appl Environ Microbiol. - 1998. - Vol. 64(6). - P. 2304-2307.

131. Barea, J.-M. Microbial cooperation in the rhizosphere / J.-M Barea, M.-J. Pozo, R. Azcon, C. Azcon-Aguilar // J. Exp. Botany. - 2005. - Vol. 56(14). -P.1761-1788.

132. Barka, E.A. Enhancement of chilling resistance of inoculated gravepive plantlets with a plant growth-promoting rhizobacterium, Burkholderia phytofirmas strain PsJN / E.A. Barka, J. Nowak, C. Clément //Appl Environ Microbiol. - 2006.

- Vol. 72. - P. 7246-7252.

133. Bais, H.P. Biocontrol of Bacillus subtilis against infection of Arabidopsis roots by Pseudomonas syringae is facilitated by biofilm formation and surfactin production / H.P. Bais, R. Fall, J.M.Vivanco // Plant Physiology. 2004. -Vol.134 (1). - P. 307-319.

134. Bashan, Y. Environmental uses of plant growth-promoting bacteria / Y. Bashan, M. E. Puente, L. E. de Bashan, J.P. Hernandez / Plant-Microbe Interactions /E. Ait Barka, C. Clément (eds). - Kerala, India : Research Signpost, 2008. - P. 69-93.

135. Bashan, Y. Current status of Azospirillum inoculation technology: Azospirillum as a challenge for agriculture / Y. Bashan, H. Levanony // Canadian J.l of Microbiology. - 1990. -V. 36. - P. 591-608.

136. Bayoumi, T.Y. Application of physiological and biochemical indices as a screening technique for drought tolerance in wheat genotypes / T.Y Bayoumi, M.H. Eid, E.M. Metwali //Afr. J. Biotech. - 2008. - Vol. 7(14). - P. 2341-2352.

137. Becerril, J.M. Changes induced by cadmium and lead in gas exchange and water relations of clover and Lucerne/ J.M. Becerril., C.G. Murua, A.M., Rueda, M.R. De Felipe // Plant Physiol. Biochem. - 1989. - Vol. 27 (6). - P. 913-918.

138. Beneduzi, A. Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): Their potential as antagonists and biocontrol agents / A. Beneduzi, A Ambrosini, L.M.P. Passaglia // Genet Mol Biol. -2012. - Vol. 35(4). - P. 1044-1051.

139. Bakker, P.A.H.M. The rhizosphere revisited: root microbiomics / P.A.H.M. Bakker, R.L. Berendsen, R.F. Doornbos, P.C.A. Wintermans, C.M. J. Pieterse // Frontiers in Plant Science. - 2013. - Vol. 4. - P.1-7

140. Bending, G.D. Characterisation of bacteria from Pinus sylvestris-Suillus luteus mycorrhizas and their effects on root-fungus interactions and plant growth / G.D. Bending, E.J. Poole, J.M.Whipps, D.J. Read // FEMS Microbiol. Ecol. -2002. - Vol. 39. - P. 219-227.

141. Berg, G. Control of plant pathogenic fungi with bacterial endophytes / G. Berg, J. Hallmann // Microbial root endophytes / B. Schulz, C, Boyle, T. Sieber (eds) - Berlin, Springer-Verlag, 2006. - P. 53-69.

142. Bevivino, A. Characterization of a Free-Living Maize-Rhizosphere Population of Burkholderia Cepacia: Effect of Seed Treatment on Disease Suppression and Growth Promotion of Maize / A. Bevivino, S. Sarrocco, C. Daimastri, S.Tabacchioni, C. Cantale, L. Chiarinin // FEMS Microbiology Ecology - 1998. - Vol. 27. - P. 225-237.

143. Bhardwaj, D. Biofertilizers function as key player in sustainable agriculture by improving soil fertility, plant tolerance and crop productivity / D. Bhardwaj, M.W. Ansari, R.K. Sahoo, N. Tuteja // Microb. Cell Fact. - 2014. - Vol. 13. - P. 66 -76.

144. Bhore, S. J. Bacterial endophytes in purple coraltree (Erythrina fusca Lour.) and their screening for cytokinins / S.J. Bhore, Y.Y. Tan, V. Komathi, J.F.F.Weber // JPBMS - 2012. - Vol. 14 (12). - P. 1-4.

145. Bialonska, D. Phenolic compounds and cell structure in bilberry leaves affected by emissions from a Zn-Pb smelter // D. Bialonska, A. M. Zobel, M.

Kuras, T. Tykarska, K. Sawicka-Kapusta // Water, Air, and Soil Pollution. -2007.

- Vol. 181(1-4). - P.123-133.

146. Bianco, C. Soil bacteria support and protect plants against abiotic stresses / C. Bianco, R. Defez // Abiotic Stress in Plants - Mechanisms and Adaptations. / Shanker A., Venkateswarlu B. (eds.) / Rijeka, Croatia, In Tech, 2011. - P. 143170.

147. Borriss, R. Comparative analysis of the complete genome sequence of the plant growth-promoting bacterium Bacillus amyloliquefaciens FZB42 / Borriss, R. // Molecular Microbial Ecology of the Rhizosphere / F. J. de Bruijn (ed). -Hoboken, NJ: Wiley Blackwell Hoboken, 2013. - P. 883-898.

148. Bottini, R. Gibberellin production by bacteria and its involvement in plant growth promotion and yield increase / R. Bottini, F. Cassan, P. Piccoli // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2004. - Vol. 65. P. 497-503.

149. Bottone, E.J. Production by Bacillus pumilus (MSH) of an antifungal compound that is active against Mucoraceae and Aspergillus species: preliminary report / E.J. Bottone, R.W. Peluso // J Med Microbiol. - 2003 - Vol. 52. - P. 6974.

150. Bouamr, R. A. Arbuscular mycorrhizal fungi species associated with rhizosphere of Phoenix dactylifera L. in Morocco / R.Bouamri, Y.Dalpé, M.N Serrhini, A. Bennani // African Journal of Biotechnology. - 2006. - Vol. 5 - № 6.

- P. 510-516.

151. Boyd, R S. The significance of metal hyperaccumulation for biotic interactions/ R.S. Boyd, S.N. Martens // Chemoecology - 1998. - Vol. 8(1). - P. 17.

152. Bowler, C. Superoxide dismutase and stress tolerance / C. Bowler, M.M. Van, D. Inze // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. - 1992. - Biol. - Vol. 43. -P. 83-116.

153. Brogden, K.A. Antimicrobial peptides: pore formers or metabolic inhibitors in bacteria? / K.A. Brogden// Nat. Rev. Microbiol. - 2005. - Vol. 3. - P. 238-250.

154. Bulgarelli, D. Revealing structure and assembly cues for Arabidopsis root-inhabiting bacterial microbiota / D. Bulgarelli, M. Rott, K. Schlaeppi, E.Ver Loren van Themaat, N. Ahmadinejad, F.Assenza, B. Huettel, R. Reinhardt, E. Schmelzer, J.Peplies, F.O. Gloeckner, R. Amann, T. Eickhorst, P. Schulze-Lefert. // Nature. -2012. - Vol. 488. - P. 91-95.

155. Carina, V.T. Effect of Arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) and Azospirillum on growth and nutrition of banana plantlets during acclimatization phase / V.T. Carina, M. M.Emilia, U.S. Miguel, D. R. Ortiz , B. Manjunatha , S. Thangaswamy, S. I. Mulla // Journal of Applied Pharmaceutical Science. - 2016. -Vol. 6 (6). - P. 131-138.

156. Chakraborty, N. Reduction of oxalate levels in tomato fruit and consequentmetabolic remodeling following overexpression of a fungal oxalate decarboxylase/ N. Chakraborty, R. Ghosh, S. Ghosh, K. Narula, R. Tayal, A. Datta, S. Chakraborty // Plant Physiol. - 2013. - Vol. 162(1). - P. 364-378.

157. Chan, Y. Identification of lipopeptide antibiotics of a Bacillus subtilis isolate and their control of Fusarium graminearum diseases in maize and wheat / Y. Chan, M. Savard, L. Reid, T. Cyr, W.McCormick, C. Seguin // BioControl. -2009. - Vol.54. - P. 567-574.

158. Chanway, C. P. Bacterial endophytes: ecological and practical implications / C.P. Canway // Sydowia. - 1998. - Vol. 50. - P.149-170.

159. Chebotar, V.K. Biodiversity of endophytic bacteria as a promising biotechnological resource / V.K. Chebotar, A.V. Shcherbakov, E.N. Shcherbakova, S.N. Maslennikova, A.N. Zaplatkin, N.V. Mal'fanova // Agricultural biology. -2015. - Vol. 50 (5). - P. 648-654.

160. Cheek, T.E. Effect of Bacillus thuringiensis (Bt) maize cultivation history on arbuscular mycorrhizal fungal colonization, spore abundance and diversity, and plant growth / T.E. Cheek, H. Darby, T.N. Rosenstiel, J.D. Beverc, M.B. Cruzan // Agriculture, Ecosystems and Environment. - 2014. - Vol. 195(1). - P. 29-35.

161. Cheeseman, J.M. Mechanisms of salinity tolerance in plants / J.M. Cheeseman // Plant Physiol. - 1988. - Vol. 87. - P. 547-550.

162. Chen, C. Functions and toxicity of nickel in plants: recent advances and future prospects / C. Chen, D. Huang, J. Liu // Clean. - 2009. - Vol.37 (4, 5). P.304 -313.

163. Chen, H. Isolation and characterization of lipopeptide antibiotics produced by Bacillus subtilis / H. Chen, L. Wang, C.X. Su, G.H Gong, P. Wang, Z.L. Yu // Lett. Appl. Microbiol. - 2008. - Vol. 47. - P. 180-186.

164. Chen, L. Characterization of two anti-fungal lipopeptides produced by Bacillus amyloliquefaciens SH-B10 / L.Chen, N.Wang, X. Wang, J. Hu, S. Wang // Bioresource Technology. - 2010. - Vol. 101. - P. 8822-8827.

165. Chen, X. H. Comparative analysis of the complete genome sequence of the plant growth-promoting bacterium Bacillus amyloliquefaciens FZB42 / X. H Chen, A. Koumoutsi, R. Scholz, A. Eisenreich, K. Schneider, L. Heinemeyer, B. Morgenstern, B. Voss, W. R. Hess, O Reva, H. Junge, B. Voigt, P. Jungblut, J. Vater, R. Sussmuth, H. Liesegang, A. Strittmatter, G. Gottschalk, R. Borriss // Nat Biotechnol. - 2007. - Vol. 25. - P. 1007-1014.

166. Chibuike, G.U. Heavy metal polluted soils: effect on plants and bioremediation methods / G.U. Chibuike, S. C.Obiora // Applied and Environmental Soil Science. - 2014. - Article ID 752708. doi:10.1155/2014/752708.

167. Chi, F. Ascending migration of endophytic Rhizobia, from roots to leaves, inside rice plants and assessment of benefits to rice growth physiology / F. Chi, S.H. Shen, H.P. Cheng, Y.X. Jing, Y.G. Yanni, F.B. Dazzo //Appl. Environ. Microb. - 2005. - V. 71. - P. 7271-7278.

168. Choudhary, D. K. Interactions of Bacillus spp. and plants - With special reference to induced systemic resistance (ISR) / D.K. Choudhary, B.N. Johri // Microbiological Research. - 2009. - Vol.164. - P. 493-513.

169. Choudhary, D.K. Microbial rescue to plant under habitat-imposed abiotic and biotic stresses / D.K.Choudhary // Appl Microbiol Biotechnol. - 2012. - Vol. 96(5). - P. 1137-1155.

170. Cho, U.H. Oxidative stress in Arabidopsis thaliana exposed to cadmium is due to hydrogen peroxide accumulation / U.H. Cho, N.H. Seo // Plant Science. -2005. - Vol. 168. - P. 113-116.

171. Chowdhury, S.P. Biocontrol mechanisms by root-associated Bacillus amyloliquefaciens FZB42 - a review / S.P. Chowdhury, A. Hartmann, X. W. Gao, R. Borriss //Front. Microbiol. - 2015. -Vol. 6. -.№ 780-. - P. 1-11

172. Chuang, C. C. Solubilization of inorganic phosphates and plant growth by aspergillus niger / C. C. Chuang, Y.L.Kuo, C.C Chao, W.L. Chao // Biology and Fertility of Soils. - 2007. - Vol. 43. - P. 575-584.

173. Cobbett, C. Phytochelatins and metallothioneins: Roles in heavy metal detoxification and homeostasis / C. Cobbett, P. Goldsbrough // Annual Review of Plant Biology. - 2002. - Vol. 53. - P. 159-182.

174. Coleman-Derr, D. Building the crops of tomorrow: Advantages of symbiont-based approaches to improving abiotic stress tolerance / D. Coleman-Derr, S.G.Tringe // Front. Microbiol. - 2014. - Vol. 5. - P. 1-6.

175. Compant, S. Plant growth-promoting bacteria in the rhizo- and endosphere of plants: their role, colonization, mechanisms involved and prospects for utilization / S. Compant, C. Clément, A. Sessitsch // Soil Biol. Biochem.- 2010. -Vol. 42. - P. 669-678.

176. Correa, O.S. Bacillus amyloliquefaciens BNM122, a potential microbial biocontrol agent applied on soybean seeds, causes a minor impact on rhizosphere and soil microbial communities / O.S Correa, M.S Montecchia, M.F Berti, M.C F Ferrari, N.L Pucheu, N.L Kerbe, A.F. Garcia // Appl. Soil Ecol. - 2009. - Vol. 41.

- P. 185-194.

177. Costa, A.C.A. Bioaccumulation of copper, zinc, cadmium and lead by Bacillus sp., Bacillus cereus, Bacillus sphaericus and Bacillus subtilis/ A.C.A. Costa, F.P. Duta // Brazilian Journal of Microbiology. - 2001. - Vol. 32. - P. 1-5.

178. Costa, H. Effect of UV-B radiation on antioxidant defense system in sunflower cotyledons / H. Costa, S.M. Gallego, M.L. Tomaro // Plant Sci. - 2002.

- Vol. 162. - P. 939-945.

179. Chibuike, G. U.Heavy Metal Polluted Soils: Effect on Plants and Bioremediation Methods / G. U. Chibuike, S. C. Obiora // Applied and Environmental Soil Science. - 2014. - Article ID 752708. -doi:org/10.1155/2014/752708.

180. Cruz, A.F. Impact of the Arbuscular Mycorrhizal Fungi and Bacteria on Biocontrol of White Root Rot in Fruit Seedlings / A.F. Cruz, W.R.O. Soares, L.E.B. Blum // J. Plant Physiol. Pathol. - 2014. - Vol. 2(1). - P. 1-5.

181. Cunhua, S. The effects of drought stress on the activity of acid phosphatase and its protective enzymes in pigweed leaves / S. Cunhua, D. Wei, C. Xiangling, X. Xinna, Z.Yahong, S. Dong, S.Jianjie // African Journal of Biotechnology. -2010. - Vol. 9(6). - P.825-833.

182. Cuin, T.A. A root's ability to retain K+ correlates with salt tolerance in wheat / T.A. Cuin, S.A. Betts, R. Chalmandrier, S. Shabala // J. Exp. Bot. - 2008.

- Vol. 59. - P. 2697-2706.

183. Daei, G. Alleviation of salinity stress on wheat yield, yield components, and nutrient uptake using arbuscular mycorrhizal fungi under fi eld conditions / G. Daei, M.R. Ardekani, F. Rejali, S. Teimuri, M Miransari // J Plant Physiol. - 2009

- Vol. 166. - P. 617-625.

184. Dalvi, A.A. Response of plants towards heavy metal toxicity: An overview of avoidance, tolerance and uptake mechanism / A.A. Dalvi, S.A. Bhalerao //Annals of Plant Sciences. - 2013. - Vol. 2(9). - P. 362-368.

185. Dames, J.F. What we know about arbuscular mycorhizal fungi and associated soil bacteria / J.F. Dames, C.J. Ridsdale // Afr. J. Biotechnol. - 2012 -Vol.11. - P. 13753-13760.

186. Danielsson, J. Protection of oilseed rape (Brassica napus) toward fungal pathogens by strains of plant-associated Bacillus amyloliquefaciens / J. Danielsson, O. Reva, J. Meijer // Microbial Ecology. - 2007. - Vol. 54(1). - P. 134-140.

187. Das, K. Assessment of mosquito larvicidal potency of cyclic lipopeptides produced by Bacillus subtilis strains / K Das, A.K. Mukherjee //Acta Trop. - 2006.

- Vol. 97. - P.168-173.

188. Das, P. Improved bioavailability and biodegradation of a model polyaromatic hydrocarbon by a biosurfactant producing bacterium of marine origin/ P. Das, S. Mukherjee, R. Sen // Chemosphere. - 2008. - Vol. 72. - P.1229-1234.

189. Das, P. Studies on cadmium toxicity in plants: a review / P. Das, S. Samantaray, G.R. Rout // Environ Pollut. - 1997. - Vol. 98. - P. 29-36.

190. De-Bashan, L.E. The potential contribution of plant growth-promoting bacteria to reduce environmental degradation - a comprehensive evaluation / L.E De-Bashan, J.P Hernández, Y. Bashan // Appl. Soil. Ecol. - 2012. - Vol. 61.- P. 171-189.

191. De Boer, W. Microbial community composition affects soil fungistasis / W. De Boer, P. Verheggen, P.J.A. Klein Gunnewiek, G.A Kowalchuk, J.A. Van Veen // Applied and Environmental Microbiology. - 2003. - Vol. 69. - P. 835-844.

192. de Carvalho Costa, F.E. Endophytic and rhizospheric bacteria from Opuntia ficus-indica mill and their ability to promote plant growth in cowpea, Vigna unguiculata (L.) Walp, / F. E. de Carvalho Costa, I.S.de.Melo //Afr. J. Microbiol. -2012. - Vol. 6( 6). - P. 1345-1353.

193. Deleu, M. Fengycin interaction with lipid monolayers at the air-aqueous interface - implications for the effect of fengycin on biological membranes / M. Deleu, M. Paquot, T. Nylander // J. Colloid Interf. Sci. - 2005. - Vol. 283. - P. 358-365.

194. Dell'Amico, E. Improvement of Brassica napus growth under cadmium stress by cadmium-resistant rhizobacteria. / E. Dell'Amico, L. Cavalca, V. Andreoni // Soil biology and Biochemiatry. - 2008. - Vol 40(1). - P. 74-84.

195. Dent, K.C. Molecular profiling of microbial communities associated with seeds of Beta vulgaris subsp. vulgaris (sugar beet) / K.C. Dent, J.R. Stephen, W.E. Finch-Savage // J. Microbiol. Methods - 2004. - Vol.56. - P.17-26.

196. De-Vos, C.H.R. Glutathione depletion due to copper-induced phytochelatin synthesis caused oxidative stress in Silene cucubalus / C.H.R. De-Vos, M.J. Vonk, R. Vooijs, H. Schat // Plant Physiol. - 1992. - Vol. 98. - P. 853-858.

197. Dias, A.C.F. Isolation of micropropagated strawberry endophytic bacteria and assessment of their potential for plant growth promotion / A.C.F. Dias, F.E.C. Costa, F.D. Andreote, P.T. Lacava, M.A. Teixeira, L.C. Assumpfao, W.L. Araujo, J.L. Azevedo, I.S. Melo // World J. Microbiol Biotechnol. - 2009. - Vol. 25. - P. 189 -195.

198. Diba, F. Plant Growth Promoting Ability of Soil Arsenite Resistant Bacteria / F. Diba, S. K. Sannyal, S.M. S.Alam, M A. Hossain, M. Sultana. // Bangladesh J. Microbiol. - 2015. - Vol. 32(1, 2). - P. 25-31.

199. Dimkpa, C. Plant rhizobacteria interactions alleviate abiotic stress conditions / C. Dimkpa, T. Weinand, F. Asch // Plant Cell Environ. - 2009. - Vol. 32. - P. 1682-1694.

200. Ding, Y. Isolation and identification of nitrogen-fixing Bacilli from plant rhizospheres in Beijing region / Y. Ding, J. Wang, Y. Liu, S. Chen // J.Appl. Microbiol. - 2005. - Vol.99. - P. 1271-1281.

201. Dobbelaere, S. Phytostimulatory effect of Azospirillum brasilense wild type and mutant strains altered in IAA production on wheat / S Dobbelaere, A Croonenborghs, A .Thys, A. Vande Broek, J. Vanderleyden // Plant Soil - 1999 -Vol. 212. - P. 155-164.

202. Dong, Z. A nitrogen fi xing endophyte of sugarcane stems / Z. Dong, M.J. Canny, M.E. McCully, M.R. Roboredo, C.F. Cabadilla, E. Ortega, R. Rodes // Plant Physiol. - 1994 - Vol. 105. - P. 1139-1147.

203. Doornbos, R. Impact of root exudates and plant defense signaling on bacterial communities in the rhizosphere. A review / R. Doornbos, L. van Loon, P. Bakker // Agronomy for Sustainable Development. - 2012. - Vol. 32. - P. 227234.

204. Durbak, A. Hormone signaling in plant development / A. Durbak, H. Yao, P. McSteen // Curr. Opin. Plant Biol. - 2012. - Vol. 15. - P. 92-96.

205. Dubey, R.S. Metal toxicity, oxidative stress and antioxidative defense system in plants / R.S. Dubey // Reactive oxygen species andantioxidants in higher plants / S.D. Gupta (ed.). - CRC Press, Boca Raton, FL, USA, 2011. - P.177-203.

206. Ebrahimi, M. Antioxidant activity: a strategy for alleviating the effects of drought on Calendula officinalis L. / M. Ebrahimi, G. R. Zamani, Z. Alizadeh // European Journal of Medicinal Plants - 2016. - Vol. 15(4). - P. 1-14.

207. Egamberdiyeva, D. Influence of growth-promoting bacteria on the growth of wheat in different soils temperatures / D. Egamberdiyeva, G. Hoflich // Soil Biol. Biochem. - 2003. - Vol. 35. - P. 973-978.

208. Egamberdieva, D. Selection for root colonizing bacteria stimulating wheat growth in saline soils / D. Egamberdieva, Z. Kucharova // Biology and Fertility of Soils. - 2009. - Vol. 45. - P. 563-571

209. El-Daim, I.A.A. Improved heat stress tolerance of wheat seedlings by bacterial seed treatment/ I.A.A. El-Daim, S. Bejai, J. Meijer // Plant and Soil. -2014. - Vol. 379(1-2). - P. 337-350.

210. El-Halmouch, Y. Potential of halotolerant rhizobacteria isolated from taif to promote growth and alleviate the salt stress of barley (Hordeum vulgare L.) grown in saline soils / Y. El-Halmouch, A.R. El-Shanshoury, S.F. Mahmoud, S.A. Amer // RJPBCS (Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences). - 2016. - Vol. 7(3). - P. 2596-2612.

211. El-Helow, E. R. Cadmium biosorption by a cadmium resistant strain of Bacillus thuringiensis: regulation and optimization of cell surface affi nity for metal cations / E. R El-Helow, S.A Sabry, R.M.Amer // Biometals. - 2000. - Vol. 13(4). - P. 273-280.

212. Erlacher, A. The impact of the pathogen Rhizoctonia solani and its beneficial counterpart Bacillus amyloliquefaciens on the indigenous lettuce microbiome / A. Erlacher, C. Cardinale, R. Grosch, M. Grube, G.Berg // Front. Microbiol. - 2014. - Vol. 5: - P. 1-8.

213. Etchegaray, A. Effect of a highly concentrated lipopeptide extract of Bacillus subtilis on fungal and bacterial cells / A. Etchegaray, C.D Bueno, de I.S. Melo, S. Tsai, M.D. Fiore, M.E. Silva-Stenico, L.A.B. de Moraes, O. Teschke // Archives of Microbiology. - 2008. - Vol. 190 (6). - P. 611-622.

214. Farag, M.A. Dynamic chemical communication between plants and bacteria through airborne signals: induced resistance by bacterial volatiles / M.A. Farag, H. Zhang, C.M. Ryu // J. Chem. Ecol. - 2013. - Vol. 39. - P. 1007- 1018.

215. Farag, M. A. GC-MS SPME profiling of rhizobacterial volatiles reveals prospective inducers of growth promotion and induced systemic resistance in plants / M. A Farag, C.M Ryu, L.W Sumner, P.W Paré// Phytochemistry. - 2006. -Vol. 67. - P. 2262-2268.

216. Farrar, K. Understanding and engineering beneficial plant-microbe interactions: plant growth promotion in energy crops / K. Farrar, D. Bryant, N. Cope-Selby // Plant Biotechnology Journal. - 2014. - Vol. 12. - P. 1193-1206.

217. Ferreira, A. Diversity of endophytic bacteria from Eucalyptus species seeds and colonization of seedlings by Pantoea agglomerans /A. Ferreira, M.C. Quecine, P.T. Lacava, S. Oda, J.L. Azevedo, W.L. Araújo // FEMS Microbiol Lett. - 2008. - Vol. 287. - P. 8-14.

218. Fernando,W.G.D. Identification and use of potential bacterial organic antifungal volatiles in biocontrol / W.G.D. Fernando, R. Ramarathnam, A.S. Krishnamoorthy, S.C. Savchuk // Soil Biology and Biochemistry. - 2005 - Vol. 37. - P. 955-964.

219. Figueiredo, M.V.B. Plant growth promoting rhizobacteria: fundamentals and applications / M.V.B. Figueiredo, L. Seldin, F.F. de Araujo, R.L.R. Mariano // Plant growth and health promoting bacteria / D.K. Maheshwari (ed.). Microbiology Monographs. Springer-Verlag; Berlin Heidelberg, 2010. - P. 21-43.

220. Folin, O. On tyrosine and tryptophane determinations in proteins / O. Folin, V. Ciocalteu // J. Biol. Chem. - 1927. - Vol. 73 (2). - P. 627-650.

221. Fortmeier, R. Salt tolerance of maize (Zea mays L.): the role of sodium exclusion / R. Fortmeier, S. Schubert // Plant Cell Environ. - 1995. - Vol.18. - P. 1041-1047.

222. Foyer, C.H. Oxidant and antioxidant signaling in plants: A re- evaluation of the concept of oxidative stress in a physiological context / C.H. Foyer, G. Noctor // Plant Cell Environ. - 2005. - Vol. 28. - P.1056-1071.

223. Foyer, C.H. Protection against oxygen radicals: an important defence mechanism studied in transgenic plants / C.H. Foye, P. Descourvieres, K.J. Kunert // Plant Cell Environ - 1994. - Vol. 17. - P.507-523.

224. Furuki, K. Interaction between Chattonella and bacteria and prevention of this red tide / K. Furuki, M. Kobayashi // Mar Pollut Bull. - 1991. - Vol. 23. -P.189-193.

225. Fukami, K. Isolation and properties of a bacterium inhibiting the growth of Gymnodinium nagasakiense / K. Fukami K, A. Yuzawa, T. Nishijima, Y. Hata // Nippon Suisan Gakkaishi. -1992. - Vol. 58. -P. 1073-1077.

226. Fusco, N. Identification of cadmium-regulated genes by cDNA-AFLP in the heavy metal accumulator Brassica juncea L. / N. Fusco, L. Micheletto, G. Dal Corso, L. Borgato, A. Furini // J. Exp. Bot. - 2005. - Vol. 56. - P. 3017-3027.

227. Gai, C.S.Transmission of Methylobacterium mesophilicum by Bucephalogonia xanthophis for paratransgenic control strategy of citrus variegated chlorosis / C.S. Ga, P.T. Lacava, M.C. Quecine, M.C. Auriac, J.R.S. Lopes, W.L. Araûjo, T.A Miller, J.L. Azevedo // J. Microbiol. - 2009. - Vol. 47. - P. 448-454.

228. Gagné-Bourque, F.Accelerated Growth Rate and Increased Drought Stress Resilience of the Model Grass Brachypodium distachyon Colonized by Bacillus subtilis B26 / F. Gagné-Bourque, B.F. Mayer, J-B. Charron, H. Vali, A. Bertrand, S. Jabaji // PLoS ONE. - 2015. - Vol. 10(6): e0130456. -doi:10.1371/journal.pone.0130456.

229. Gamalero, E. Beneficial role of plant growth promoting bacteria and arbuscular mycorrhizal fungi on plant responses to heavy metal stress / E.Gamalero, G.Lingua, G. Berta, B.R. Glick // Canadian Journal of Microbiology. - 2009. - Vol. 55(5). - P. 501-514.

230. Gamalero, E. Mechanisms Used by Plant Growth-Promoting Bacteria/ E. Gamalero, B.R. Glick // Bacteria in Agrobiology: Plant Nutrient Management / Maheshwari D.K. (ed). - Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, 2011. - P. 17-46.

231. Gangwar, M. Isolation and characterization of endophytic bacteria from endorhizosphere of sugarcane and ryegrass / M. Gangwar, G. Kaur // Internet J Microbiol. - 2009. - Vol. 7. - P. 139-144.

232. Glick, B. R. The enhancement of plant growth by free living bacteria / B. R. Glick // Canadian Journal of Microbiology. - 1995. - Vol. 41. -P. 109- 117.

233. Glick, B. R. Using soil bacteria to facilitate phytoremediation/ B. R. Glick // Biotechnology Advances. - 2010. - Vol. 28. - P. 367-374.

234. Graham, J.H. Influence of vesicular arbuscular mycorrhiza on the hydraulic conductivity of roots of two Citrus rootstocks. / J.H. Graham, J.P .Syversten // New Phytol. - 1984. - Vol. 97. - P. 277-284

235. Grenville-Briggs, L. A molecular insight into algal-oomycete warfare: cdna analysis of ectocarpus siliculosus infected with the basal oomycete eurychasma dicksonii /L. Grenville-Briggs, C. M. M. Gachon, M. Strittmatter, L. Sterck, F. C. Küpper, P. van West // PLoS ONE. - Vol. 6 (9): e24500. doi:10.1371/journal.pone.0024500.

236. Green-Ruiz, C. Mercury (II) removal from aqueous solutions by nonviable Bacillus sp. from a tropical estuary / C. Green-Ruiz // Bioresour. Technol. - 2006. - Vol. 97 (15). - P. 1907 -1911

237. Gilbert, G.S. Effects of an introduced bacterium on bacterial communities on roots / G.S. Gilbert, J.L. Parke, M. K. Clayton, J. Handelsman //Ecology. - 1993. -Vol. 74(3). - P. 840-854.

238. Gill, S.S. Differential cadmium stress tolerance in five Indian mustard (Brassica juncea L.) cultivars: An evaluation of the role of antioxidant machinery / S.S. Gill, N.A. Khan, N. Tuteja // Plant Signal Behav. - 2011. - Vol. 6. - P.293-300.

239. Gill, S.S. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants / S.S. Gill, N. Tuteja // Plant Physiol Biochem. -2010. - Vol. 48. - P.909-930.

240. Glick, B. R. The enhancement of plant growth by free living bacteria / B. R. Glick // Canadian Journal of Microbiology. - 1995. - Vol. 41. - P. 109- 117.

241. Glick, B. R. Using soil bacteria to facilitate phytoremediation/ B. R. Glick // Biotechnology Advances. - 2010. - Vol. 28. - P. 367-374.

242. Gong, H. Silicon alleviates oxidative damage of wheat plants in pots under drought / H. Gong, X. Zhu, K.Chen, S. Wang, C. Zhang // Plant Sci. - 2005. - Vol. 169. - P.313-321.

243. Gordillo, M.A. Purification of peptides from Bacillus strains with biological activity / M.A.Gordillo, M.C.Maldonado // Chromatography and Its Applications /Sasikumar Dhanarasu (ed.). - In Tech, 2012. - P. 201- 224.

244. Guo, J. Interactive effects of cytokinins, light, and sucrose on the phenotypes and the syntheses of anthocyanins and lignins in cytokinin overproducing transgenic Arabidopsis / J. Guo, X. Hu, R. Duan // J. Plant Growth Regul. - 2005. - Vol. 24. - P. 93-101.

245. Gupta, A. K. Phytoremediation using aromatic plants: a sustainable approach for remediation of heavy metals polluted sites / A. K. Gupta, S. K. Verma, K. Khan, R.K. Verma // Environ. Sci. Technol. - 2013. - Vol. 47. - P. 10115-10116.

246. Gutierrez-Manero, F.J. The plant growth promoting rhizobacteria Bacillus pumilus and Bacillus licheniformis produce high amounts of physiologically active gibberellins / F.J. Gutierrez-Manero, B. Ramos, A. Probanza, J. Mehouachi, M. Talon // Physiol Plant.. - 2001. - Vol. 111. - P. 206-211.

247. Gutjahr, C. Phytohormone signaling in arbuscular mycorrhiza development / C. Gutjahr // Curr. Opin. Plant Biol. - 2014. - Vol. 20. - P. 26-34.

248. Haas, D. Biological control of soil-borne pathogens by fluorescent pseudomonads / D. Haas, G. Défago // Nat. Rev. Microbiol. - 2005. - Vol. 3. - P. 307-319.

249. Haldar, S. Plant-microbe Cross-talk in the Rhizosphere: Insight and Biotechnological Potential / S. Haldar, S.Sengupta // The Open Microbiology Journal. - 2015. - Vol. 9. - P. 1-7.

250. Halo, B.A. Endophytic bacteria (Sphingomonas sp. LK11) and gibberellin can improve Solanum lycopersicum growth and oxidative stress under salinity /

B.A. Halo, A.L. Khan, M. Waqas, A. Al-Harrasi, J. Hussain, L. Ali, M.Adnan, I.-J. Lee // Journal of Plant Interactions. - 2015. - Vol. 10 (1). - P. 117-125.

251. Hallmann, J. Bacterial endophytes in agricultural crops / J. Hallmann, Q.A. Quadt- Hallmann, W.F. Mahaffee, J.W. Kloepper // Can J Microbiol. - 1997-Vol.43. - P. 895-914.

252. Halverson, L.J. Enhancement of soybean nodulation by Bacillus cereus UW85 in the field and in a growth chamber / L.J. Halverson, J.O. Handelsman //Appl. Environ. Microbiol. - 1991 - Vol. 57 (9). - P. 2767-2770.

253. Halverson, L.J. Variable stability of antibiotic-resistance markers in Bacillus cereus UW85 in the soybean rhizosphere in the field / L.J. Halverson., M.K. Clayton, J. Handelsman // Mol Ecol. -1993. - Vol. 2. - P. 65-78.

254. Hancock, R.E. The Role of Cationic Antimicrobial Peptides in Innate Host Defenses / R.E. Hancock, G. Diamond // Trends Microbiol. - 2000. - V. 8. -P. 402-410.

255. Handelsman, J.S. Biological control of damping-off of alfalfa seedlings with Bacillus cereus UW85 / J.S. Handelsman, E.H. Raffel, L. Mester, Wunderlich, C. R. Grau //Appl. Environ. Microbiol. - 1990. - Vol. 56. - P. 713-718.

256. Han, Q-Q. Beneficial soil bacterium Bacillus subtilis (GB03) augments salt tolerance of white clover / Q.-Q. Han, X.-P. Lü, J.-P. Bai, Y. Qiao, P.W. Paré, S.M.Wang, J.-L. Zhang, Y.-N. Wu, X.-P. Pang, W.-B. Xu, Z.-L.Wang // Frontiers in Plant Science. - 2014. - Vol. 5(525). - P. 1-8.

257. Hao Y. Mitigative effect of Bacillus subtilis QM3 on root morphology and resistance enzyme activity of wheat root under lead stress / Y.Hao, H.Wu, Y.Liu, Q.Hu // Advances in Microbiology. - 2015. - Vol. 5. - P. 469-478.

258. Haque, M.A. Diversity of indigenous endophytic bacteria associated with the roots of Chinese cabbage (Brassica campestris L.) cultivars and their antagonism towards pathogens / M. A.Haque, H.D.Yun, K.M. Cho // J. Microbiol. - 2016. -Vol. 54(5). - P. 353-363.

259. Hardoim, P.R. Properties of bacterial endophytes and their proposed role in plant growth / P.R. Hardoim, van L.S. Overbeek, J.D. Elsas // Trends Microbiol. -2008. - Vol. 16. - P.463-471.

260. Harman, G.E. Trichoderma species- opportunistic, avirulent plant symbionts / G.E. Harman, C.H Howel, A. Viterbo., I.Chet., M. Lorito // Nat. Rev. Microbiol.

- 2004. - Vol. 2. - P. 43-56.

261. Hartmann, A. Plant-driven selection of microbes / Hartmann, A., Schmid, M., van Tuinen, D., and Berg, G // Plant Soil. - 2009. - Vol. 321. - P.235-257.

262. Hashem A. The interaction between arbuscular mycorrhizal fungi and endophytic bacteria enhances plant growth of acacia gerrardii under salt stress / A. Hashem, E.F. Abd Allah, A.A. Alqarawi, A.A. Al-Huqail, S. Wirth, D.Egamberdieva // Frontiers in Microbiology. - 2016. - Vol. 7. - P. 1-15.

263. Hassan, M. Oxidative stress and antioxidant defense mechanism in mung bean seedlings after lead and cadmium treatments / M. Hassan, S. Mansoor // Turk J Agric. For. - 2014. - Vol. 38. - P. 55-61.

264. Hassan, T.U. Role of plant growth promoting rhizobacteria and L-tryptophan on improvement of growth, nutrient availability and yield of wheat (Triticum aestivum) under salt stress / T.U. Hassan, A. Bano // J. Agro. Agri. Res.

- 2014. - Vol. 4(2). - P. 30- 39.

265. Hayat, S. Role of proline under changing environments / S. Hayat, Q. Hayat, M.N. Alyemeni, A.S.Wani, J. Pichtel, A. Ahmad // Plant Signal Behav. -2012. -Vol. 7. - P. 1456-1466.

266. Heggo, A. Effects of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi on heavy metal uptake by soybeans / A.Heggo, J. Angle, R. Chaney //Soil Biology and Biochemistry. - 1990. - Vol. 22. - P. 865-869.

267. He, H. Interactions between nitric oxide and plant hormones in aluminum tolerance / H. He, L. He, M. Gu // Plant Signal. Behav. - 2012. - Vol. 7. - P. 469471.

268. Hennigan T. Toward an understanding of arbuscular mycorrhizal symbioses within a creation model of ecology: implicationsfor godly stewardship and

sustainable agriculture / T. Hennigan // Answers Research Journal. - 2009. - Vol. 2. - P. 21-27.

269. Hidayati, U. Potency of plant growth promoting endophytic bacteria from Rubber plants (Hevea brasiliensis Mull. Arg.) / U. Hidayati, I.A. Chaniago, A. Munif, S.D.A. Santosa // Journal of Agronomy. - 2014. - Vol. 13. - P. 147-152.

270. Hiltner, L. Uber neuere erfahrungen und probleme auf dem gebiet der bodenbakteriologie und unter besonderer berucksichtigung der grundungung and brache / L. Hiltner // Arb Dtsch Landwirtsch Ges Berl - 1904. - Vol. 98. - P.59-78.

271. Hines, P.J. What's bugging plants? Plant-microbe interactions. Introduction / P.J. Hines, L.M. Zahn // Science. - 2009. - Vol. 324. - P. 741-742.

272. Hirooka K. Transcriptional response machineries of Bacillus subtilis conducive to plant growth promotion / K. Hirooka // Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. - 2014. - Vol. 78(9). - P. 1471-1484.

273. Hogan, D.A. Pseudomonas aeruginosa Quorum-Sensing Molecule Influence Candida albicans Morphology / D.A. Hogan, A. Vik, R. Kolter // Mol. Microbiol. - 2004. - Vol. 54. - P. 1212-1223.

274. Hogan, D.A. Pseudomonas-Candida Interactions: an Ecological Role of Virulence Factors / D.A. Hogan, R. Kolter // Science. - 2002. - Vol. 296. - P. 2229-2232.

275. Hossain, M.A.. Molecular mechanism of heavy metal toxicity and tolerance in plants: central role of glutathione in detoxification of reactive oxygen species and methylglyoxal and in heavy metal chelation / M.A.Hossain, P. Piyatida, J.A.T. da Silva, M. Fujita // Journal of Botany. - 2012. - № 872875. - P. 1-37.

276. Hossain, M.A. Up-regulation of antioxidant and glyoxalase systems by exogenous glycinebetaine and proline in mung bean confer tolerance to cadmium stress./ M.A. Hossain, M. Hasanuzzaman, M. Fujita // Physiol. Mol. Biol. Plants. -2010. - Vol. 16. - P. 259-272.

277. Hrynkiewicz, K. The potential of rhizosphere microorganisms to promote the plant growth in disturbed soils / K. Hrynkiewicz, C. Baum, C. // Environmental

protection strategies for sustainable development. strategies for sustainability/A. Malik, E. Grohmann (eds). - New York, NY: Springer Science+Business), 2011. -P. 35-64.

278. Huang, X. Antiviral activity of antimicrobial lipopeptide from Bacillus subtilis fmbj against Pseudorabies Virus, Porcine Parvovirus, Newcastle Disease Virus and infectious bursal disease Virus in vitro / X. Huang, Z. Lu, H. Zhao, X. Bie, F.X. Lii, S.Yang // International Journal of Peptide Research and Therapeutics. - 2006. - Vol. 12(4). - P. 373-377.

279. Huang, X.F. Bacillus spp. from rainforest soil promote plant growth under limited nitrogen conditions / X. F. Huang, D. Zhou, J. Guo, D.K. Manter // Journal of Applied Microbiology. - 2014. - Vol. 118. - P. 672-684.

280. Huang, X. Optimization of antimicrobial activity of surfactin and polylysine against Salmonella enteritidis in milk evaluated by a response surface methodology/ X. Huang, J. Suo, Y. Cui // Foodborne Pathogens and Disease. -2011. - Vol. 8(3). - P.439-443.

281. Hussain, A. Cytokinin production by some bacteria: Its impact on cell division in cucumber cotyledons / A. Hussain, S. Hasnain // African Journal of Microbiology Research. - 2009. - Vol. 3(11). - P. 704-712.

282. Hurek, T. Azoarcus sp. strain BH72 as a model for nitrogen-fixing grass endophytes / T. Hurek, B. Reinhold-Hurek // J. Biotechnol. - 2003. - Vol. 106. -P.169-178.

283. Hu, Y. Drought and salinity: a comparison of their effects on mineral nutrition of plants / Y. Hu, U. Schmidhalter // J Plant Nutr Soil Sci. - 2005. - Vol. 168. - P. 541-549.

284. Iannone, M.F. Reactive oxygen species formation and cell death in catalase-deficient tobacco leaf disks exposed to cadmium / M.F. Iannone, E.P. Rosales, M.D. Groppa, M.P. Benavides // Protoplasma. - 2010. - Vol. 245. - P. 5-27.

285. Ibrahim, A.H. Parental Drought and Defoliation Effect on Yield, Grains Biochemical Aspects and Drought Performance of Sorghum / A.H. Ibrahim,

O.A.El-Shahaby, S.A. Abo-Hamed, M.E.Younis // Journal of Stress Physiology and Biochemistry. - 2013. - Vol. 9(1). - P. 258-272.

286. Idriss, E.E.S. Extracellular phytase activity of Bacillus amyloliquefaciens FZB 45 contributes to its plant-growth-promoting effect / E.E.S., O. Idriss Makarewicz., A. Farouk, K. Rosner, R..Greiner, H. Bochow, T. Richter, R. Borriss // Microbiology. - 2002. - Vol. 148. - P. 2097-2109.

287. Iniguez, A.L. Regulation of enteric endophytic bacterial colonization by plant defenses / A.L Iniguez, Y. Dong, H.D. Carter, B.M.M. Ahmer, J.M. Stone, E.W. Triplett // Mol Plant-Microbe Interact. - 2005. - Vol. 18. - P. 169-178.

288. Ishihara, H. Distribution and variation of bacitracin synthetase gene sequences in laboratory stock strains of Bacillus licheniformis. / H. Ishihara, M. Takoh, R. Nishibayashi, A. Sato // Current Microbiology. - 2002. - Vol. 45. - P. 18-23.

289. Jadia, C. D. Phytoremediation of heavy metals: recent techniques / C. D. Jadia, M. H. Fulekar // African Journal of Biotechnology. - 2009. - Vol. 8 ( 6). -P. 921-928.

290. Jaques, P. Surfactin and other lipopeptides from Bacillus spp. / P. Jaques / / Biosurfactants-from genes to applications / Gloria Soberon-Chavez (ed.) . -Heidelberg: Springer, 2011. - P. 57-91.

291. James, E.K. Infection and colonization of sugarcane and other graminaceous plants by endophytic diazotrophs/ E.K. James, F.L. Olivares // Crit Rev. Plant Sci. - 1998. - Vol. 17. - P. 77-119.

292. James, R. A. Major genes for Na+ exclusion, Nax1 and Nax2 (wheat HKT1; 4 and HKT1;5), decrease Na+ accumulation in bread wheat leaves under saline and waterlogged conditions / R. A James, C. Blake, C.S. Byrt, R. Munns //. J. Exp. Bot. - 2011. - Vol. 62. - P. 2939-2947.

293. Jeyaram, K. Distinct differentiation of closely related species of Bacillus subtilis group with industrial importance/ K. Jeyaram, W. Romi, T.A. Singh, G.A. Adewumi, K. Basanti, F.A. Oguntoyinbo // Journal of Microbiological Methods. -2011. - V. 87. - P. 161-164.

294. Jenssen, H. Peptide antimicrobial agents / H. Jenssen, P. Hammil, R.E. Hancock // Clin. Microbiol. Rew. - 2006. - Vol. 19. - Vol. 3. - P. 491-511.

295. Jha, P.N. Association of rhizospheric/endophytic bacteria with plants: a potential gateway to sustainable agriculture / P. N. Jha, G.Gupta, P.Jha, R. Mehrotra // Greener Journal of Agricultural Sciences. - 2013. - Vol. 3 (2). - P. 7384.

296. Jing, Y.-D. Role of soil rhizobacteria in phytoremediation of heavy metal contaminated soils / Y-D Jing, Z.-L He, X.-E. Yang // Journal of Zhejiang University of Science B. - 2007. - Vol. 8 (3). - P. 192-207

297. Jones, D.L. Carbon flow in the rhizosphere: carbon trading at the soil-root interface / D.L. Jones, C. Nguyen, R.D. Finlay // Plant Soil. - 2009. - Vol. 321. -P. 5-33.

298. Juniper, S. Soil salinity delays germination and limits growth of hyphae from propagules of arbuscular mycorrhizal fungi / S. Juniper, L.K. Abbott // Mycorrhiza. - 2006. - Vol. 16. - P. 371-379.

299. Kabir, Z. Vertical distribution of arbuscular mycorrhizal fungi under corn (Zea mays L.) in no-till and conventional tillage systems / Z. Kabir, I.P OHalloran, P. Widden, C. Hamel // Mycorrhiza. -1998. - V. 8. - P. 53-55.

300. Kamilova, F. Enrichment for enhanced competitive root tip colonizers selects for a new class of biocontrol bacteria / F. Kamilova, S. Validov, T. Azarova, I. Mulders, B. Lugtenberg //Environ. Microbiol. - 2005. - Vol. 7(11). -P. 1809-1817.

301. Kanwar, M.K. Plant steroid hormones produced under Ni stress are involved in the regulation of metal uptake and oxidative stress in Brassica juncea L. / M.K Kanwar, R. Bhardwaj, P. Arora, S. P. Chowdhary, P. Sharma, S. Kumar // Chemosphere. - 2012. - Vol. 86. - P. 41-49.

302. Karlidag, H. Plant growth-promoting rhizobacteria mitigate deleterious effects of salt stress on strawberry plants (Fragaria^ananassa). / H. Karlidag, M. Turan, M. Pehluvan, F. Donmez //Hort Science. - 2013. - Vol. 48(5). - P. 563567.

303. Kasim, W.A. Control of drought stress in wheat using plant growth-promoting bacteria / W.A. Kasim, M.E. Osman, M.N. Omar, I.A. Abd. El-Daim, S. Bejai, J.Meijer //. J Plant Growth Regul. - 2013. - Vol. 32. - P.122-130.

304. Kerovuo, J. Isolation, characterization, molecular gene cloning, and sequencing of a novel phytase from Bacillus subtilis /J. Kerovuo , M. Lauraeus, P. Nurminen, N. Kalkkinen, J. Apajalahti //Appl. Environ. Microbiol. - 1998. - Vol. 64. - P. 2079-2085.

305. Khan, M.S. Role of phosphate-solubilizing microorganisms in sustainable agriculture - a review / M.S. Khan, A. Zaidi, P.A. Wani //Agron Sustain Dev -2007.- Vol. 27(1). - P.29-43.

306. Khiyami, M.A. Bacillus-based biological control of cotton seedling disease complex / M.A. Khiyami, M.R. Omar, K.A. Abd-Elsalam, A.A. El-Hady Aly // Journal of plant protection research. - 2014. - Vol. 54 (4). - P. 340-348.

307. Killani, A.S. Antagonistic effect of indigenous Bacillus subtilis on root-/soil-borne fungal pathogens of cowpea / A.S. Killani, R.C. Abaidoo, A.K Akintokun, M.A Abiala // Sciencepub. - 2011. - Vol. 3(3). - P. 11-18.

308. Kim, P.I. Production of biosurfactant lipopeptides Iturin A, fengycin and surfactin A from Bacillus subtilis CMB32 for control of Colletotrichum gloeosporioides/ P.I. Kim, J. Ryu, Y.H. Kim, Y.T Chi / Journal of Microbiology and Biotechnology. - 2010. - Vol. 20 (1). - P. 138-145.

309. Kloepper, J.W. Induced systemic resistance and promotion of plant growth by Bacillus sp. / J.W. Kloepper, C.-M. Ryu, S. Zhang // Phytopathology. - 2004. -Vol. 94 (11). - P. 1259-1266.

310. Kluepfel, D. The behavior and tracking of bacteria in the rhizosphere / D. Kluepfel // Annual Reviews in Phytopathology. -1993. - Vol. 31. - P. 441-472.

311. Kohler, J. An AM fungus and a PGPR intensify the adverse effects of salinity on the stability of rhizosphere soil aggregates of Lactuca sativa / J. Kohler, F.Caravaca, A. Roldan // Soil Biology & Biochemistry. - 2010. - Vol. 42. - P. 429-434.

312. Koumoutsi, A. Structural and functional characterization of gene clusters directing nonribosomal synthesis of bioactive cyclic lipopeptides in Bacillus amyloliquefaciens strain FZB42/ A. Koumoutsi, X.H. Chen, A. Henne, H. Liesegang, G.Hitzeroth, P. Franke, J.Vater, R.Borriss // J. Bacteriol. - 2004. - Vol. 186 (4). - P. 1084-1096.

313. Kreth, J. Streptococcal antagonism in oral biofilms: Streptococcus sanguinis and Streptococcus gordonii interference with Streptococcus mutans / J.Kreth, Y. Zhang, M.C. Herzberg // J. of Bacteriology. - 2008. - Vol. 190(13). - P. 46324640.

314. Kuklinsky-Sobral, J. Isolation and characterization of soybean associated bacteria and their potential for plant growth promotion/ J. Kuklinsky-Sobral, W.L. Araüjo, R Mendes, I.O. Geraldi, A.A. Pizzirani-Kleiner, J.L. Azevedo // Environ. Microbiol. - 2004. - Vol. 6. - P. 1244-1251.

315. Kumar, A. Bacillus as PGPR in Crop Ecosystem / A. Kumar, A. Prakash, B.N. Johri // Bacteria in Agrobiology: Crop Ecosystems / Maheshwari, D.K .(ed.). - Berlin Heidelberg: Springer, 2011. - P. 37-59.

316. Kumar, P. Bacillus strains isolated from rhizosphere showed plant growth promoting and antagonistic activity against phytopathogens / P. Kumar, R.C. Dubey, D.K. Maheshwari //Microbiol. Res. - 2012. - Vol. 167 (8). - P. 493-499.

317. Kumar, P. Diversity of Bacilli from disease suppressive soil and their role in plant growth promotion and yield enhancement / P. Kumar, S.Khare, R.C. Dubey // New York Science Journal. - 2012. - Vol. 5(1). - P. 90 -111.

318. Kumar, R.R. Effect of polyethylene glycol induced water stress on physiological and biochemical responses in pigeon pea (Cajanus cajan L. Mill sp.)/ R.R Kumar, K. Karajol, G.R. Naik // Recent Res. Sci. Tech. - 2011. -Vol. 3 (1). - P. 148-152.

319. Kupper, H. Cellular compartmentation of nickel in the hyperaccumulators Alyssum lesbiacum, Alyssum bertolonii and Thlaspi goesingense / H. Kupper, E. Lombi, F.J. Zhao, G.Wieshammer, S.P. McGrath // J. Exp. Bot. - 2001. - Vol. 52 (365). - P. 2291-2300.

320. Kuznetsov, V.V. Polyamines and stress tolerance of plants / V.V. Kuznetsov, N.I. Shevyakova // Plant Stress. - 2007. - Vol. 1. - P. 50-71.

321. Lacava, P.T. Biological Control of Insect-Pest and Diseases by Endophytes/ P.T. Lacava, J. L.Azevedo // Advances in Endophytic Research / V.C. Verma, A.C. Gange (eds.). - Springer, India, 2014. - P. 231-256.

322. Lambrecht, M. Indole-3-acetic acid: a reciprocal signalling molecule in bacteria-plant interactions / M. Lambrecht, Y. Okon, A.V. Broek, J. Vanderleyden //Trends Microbiol. - 2000. -Vol. 8(7). - P. 298-300. 15.

323. Lambertz, C. Challenges and advances in the heterologous expression of cellulolytic enzymes: a review / C. Lambertz , M. Garvey, J. Klinger, D. Heesel, H. Klose, R.Fischer // Biotechnology for Biofuels. - 2014. - Vol. 7(135). - P. 1-15

324. Lampen, J. O. Inhibition of Algae by Nystatin / J.O. Lampen, P. Arnow // J. Bacteriol. - 1961. - V. 82. - P. 247-251.

325. Langella, F. Microbially assisted phytoremediation approaches for two multielement contaminated sites/ F. Langella, A. Grawunder, R. Stark, A. Weist, D. Merten, G.Haferburg, G. Buchel, E. Kothe // Eviron. Sci. Pollut. Res. - 2014. -Vol. 21. - P. 6845-6858.

326. Ledin, M. Zn, Cd and Hg accumulation by microorganisms, organic and inorganic soil components in multi-compartment systems M. Ledin, C. Krantz-Rülcker, B. Allard / Soil Biology and Biochemistry. - 1996. - Vol. 28. - P. 791799.

327. Lee, Y. J. Purification and characterization of cellulase produced by Bacillus amyoliquefaciens DL-3 utilizing rice hull / Y.J. Lee, B.K Kim, B.H. Lee, K.I. Jo, N.K. Lee, C.H. Chung, Y.C. Le., J.W. Lee // Bioresource Technology. -2008. -Vol. 99(2). - P. 378-386.

328. Li, H. Endophytic Bacillus subtilis ZZ 120 and its potential application in control of replant diseases / H. Li, X. Wang, M. Han, Z. Zhao, M. Wang, Q. Tang1, C. Liu, B. Kemp, Y. Gu, J. Shuang1, Y. Xue // African Journal of Biotechnology. - 2012. - Vol. 11(1). - P. 231-242.

329. Li, J. Genetic diversity and potential for promotion of plant growth detected in nodule endophytic bacteria of soybean grown in Heilongjiang province of China / J. Li, E. Wang, W. Chen // Soil Biol. Biochem. - 2008. - Vol. 40. - P. 238-246.

330. Li, X. The endophytic bacteria isolated from elephant grass (Pennisetum purpureum Schumach) promote plant growth and enhance salt tolerance of Hybrid Pennisetum / X. Li, X. Geng, R.Xie, L. Fu, J. Jiang, L.Gao, J. Sun // Biotechnol Biofuels. - 2016. - Vol. 9. - P. 1-12.

331. Li, Y. Characterisation of endophytic bacteria from a desert plant Lepidium perfoliatum L./ Y .Li, C. Cheng, D. An // Plant Protect. Sci. - 2017. - Vol. 53. - P. 32-43.

332. Lim, J.H. Synergistic plant growth promotion by the indigenous auxinsproducing PGPR Bacillus subtilis AH18 and Bacillus licheniforims K11 / J.H. Lim, S.D. Kim // Journal of the Korean Society for Applied Biological Chemistry. - 2009. - Vol. 52. - P. 531-538.

333. Li, L. Cucumber rhizosphere microbial community response to biocontrol agent Bacillus subtilis B068150 / L. Li, J.Ma, A.M.Ibekwe, Q.Wang, C.-H. Yang // Agriculture. - 2016. - Vol. 6 ( 2). - P. 1-15.

334. Liu, B. Isolation and partial characterization of an antifungal protein from the endophytic Bacillus subtilis strain EDR4 / B. Liu, L.Huang, H. Buchenauer, Z.Kang // Pesticide Biochemistry and Physiology. - 2010. - Vol. 98. - P. 305-311.

335. Liu D.F. Conversion of furfural residue to biofertilizer using Bacillus subtilis L7 by solid-state fermentation method / D.F. Liu, L.Zhao,Y.Z. Gao, H.X. Ren, X. L.Liu // Journal of Chemical and Pharmaceutical Research. - 2015. - Vol. 7 (3). - P.2491-2496.

336. Liu, J. Production, characterization and antioxidant activities in vitro of exopolysaccharides from endophytic bacterium Paenibacillus polymyxa EJS-3 / J. Liu, J. Luo, H. Ye, Y. Sun, Z. Lu, X. Zeng // Carbohydr. Polym. - 2009. - Vol. 78. - P. 275-281.

337. Liu, H. Influence of iron plaque on uptake and accumulation of Cd by rice (Oryza sativa L.) seedlings grown in soil /H.Liu, J. Zhang, P. Christie, F. Zhang // Sci. Total Environ. - 2008. - V. 394. - P. 361-368.

338. Louis, I. Spore density and root colonization of vesicular-arbuscular mycorrhizas in tropical soil / I. Louis, G. Lim // Trans. Br. Mcol. Soc. - 1987. -V. 58(2). - P. 207-212.

339. Loper, J. E. Availability of iron to Pseudomonas fluorescens in rhizosphere and bulk soil evaluated with an ice nucleation reporter gene/ J.E. Loper, M.D. Henkels /Appl Environ Microbiol. - 1997. - Vol. 63. - P. 99-105.

340. Lugo, M.A. Arbuscular mycorrhizal fungi in a mountain grassland II: Seasonal variation of colonization studied, along with its relation to grazing and metabolic host type / M.A., Lugo, M.E. Gonzalez Maza., M.N. Cabello // Mycologia. - 2003. - Vol. 95(3). - P. 407-415.

341. Lugtenberg, B. Plant-growth-promoting rhizobacteria / B. Lugtenberg B, F. Kamilova // Annu. Rev. Microbiol. - 2009. - Vol. 63. - P. 541-556.

342. Lucy, M. Applications of free living plant growth-promoting rhizobacteria / M. Lucy, E. Reed, B. R. Glick // Antonie van Leeuwenhoek. - 2004. - Vol. 86. -P. 1-25.

343. Lum, S.M. Effect of drought stress on growth, proline and antioxidant enzyme activities of upland rice / S.M. Lum, M.M.Hanafi, Y.M. Rafii, A.S.N. Akmar //The J. Animal Plant Sci. - 2014. - Vol. 24(5). - P. 1487-1493.

344. Madhaiyan, M. Metal tolerating methylotrophic bacteria reduces nickel and cadmium toxicity and promotes plant growth of tomato (Lycopersicon esculentum L.) / M. Madhaiyan, S. Poonguzhali, S.A. Torgmin // Chemosphere. - 2007. - Vol. 69(2). - P. 220-228.

345. Maestri, E. Metal tolerance and hyperaccumulation: Costs and trade-offs between traits and environment / E. Maestri, M. Marmiroli, G. Visioli, N.Marmiroli // Environmental and Experimental Botany. - 2010. - Vol. 68. - P. 113.

346. Mahaffee, W.F. Temporal changes in the bacterial communities of soil, rhizosphere and endorhiza / W.F. Mahaffee, J.W. Kloepper // Microb Ecol. - 1997. -Vol. 34. - P. 210-223.

347. Mahajan, S. Cold, salinity and drought stresses: an overview / S. Mahajan, N. Tuteja //Arch. Biochem. Biophys. - 2005. - Vol. 444 (2). - P. 139-158.

348. Ma, Y. Biochemical and molecular mechanisms of plant-microbe-metal interactions: relevance for phytoremediation / Y. Ma, R.S. Oliveira, H. Freitas, C.Zhang // Frontiers in Plant Science. - 2016. -Vol. 7. - P. 1-19.

349. Ma, Y. Plant growth promoting rhizobacteria and endophytes accelerate phytoremediation of metalliferous soils / Y. Ma, M. Prasad, M. Rajkumar, H. Freitas // Biotechnol. - 2011. - Vol. 29. - P.248-258.

350. Maksimov, I.V. Regulation of peroxidase activity under the influence of signaling molecules and Bacillus subtilis 26D in potato plants infected with Phytophthora infestans / I.V. Maksimova, P.P. Abizgildinab, A.V. Sorokan'a, and G.F. Burkhanovaa // Applied Biochemistry and Microbiology. - 2014. - Vol. 50 (2). - P. 173-178.

351. Malfanova, N. Characterization of Bacillus subtilis HC8, a novel plantbeneficial endophytic strain from giant hogweed / N.Malfanova, F. Kamilova, S. Validov, A. Shcherbakov, V. Chebotar, I. Tikhonovich, B. Lugtenberg // Microb Biotechnol. - 2011. - Vol. 4. - P. 523-532.

352. Ma, L. Phylogenetic diversity of bacterial endophytes of Panax notoginseng with antagonistic characteristics towards pathogens of root-rot disease complex / L. Ma, Y. Cao, M. Cheng // Antonie van Leeuwenhoek. - 2013. - Vol. 103(2). - P. 299 -312 .

353. Malviya, M.K. Bacillus subtilis NRRL B-30408: A potential inoculant for crops grown under rainfed conditions in the mountains / M.K. Malviya, A. Sharma, A. Pandey, K. Rinu, P. Sati, L.M.S. Palni // Journal of Soil Science and Plant Nutrition. - 2012. - Vol. 12 (4). - P. 811-824.

354. Mamatha, G.D. Inoculation of field established mulberry and paponza with VAM fungi and my helper bacterium / G.D. Mamatha, J. Bagyaraj, S. Jaganath // Mycorrhiza. - 2002. - Vol. 12. - P. 313 -316.

355. Manage, P.M. Algicidal effect of the bacterium Alcaligenes denitrificans on Microcystis / P. M.Manage, Z. Kawabata, S. Nakano // Aquat. Microb. Ecol. -2000. - Vol. 22. - P. 111-117.

356. Mano, H. Endophytic bacteria in rice plant / H.Mano, M. Hisao // Microbres Environ. - 2008. - Vol. 23(2). - P. 109-117.

357. Marasco, R.A drought resistance-promoting microbiome is selected by root system under desert farming / R. Marasco, E. Rolli, B. Ettoumi, G.Vigani, F. Mapelli, S. Borin, A.F.Abou-Hadid, U.A .El-Behairy, C. Sorlini, A.Cherif, G. Zocchi, D. Daffonchio // PLoS ONE. - 2012. - Vol. 7 (10). - P. 1-14.

358. Marques, A. Inoculating Helianthus annuus (sunflower) grown in zinc and cadmium contaminated soils with plant growth promoting bacteria-Effects on phytoremediation strategies / A. P. Marques, H. Moreira, A.R. Franco, A. O. Rangel, P. M. Castro // Chemosphere. - 2013. - Vol. 92. - P. 74-83.

359. Marquez-Garcia, B. Effects of Cadmium on Phenolic Composition and Antioxidant Activities of Erica andevalensis /B. Marquez-Garcia, M. Angeles Fern andez-Recamales, F. Cordoba // Journal of Botany. - 2012. - № 936950. - P. 1-6.

360. Marulanda, A. Regulation of plasma membrane aquaporins by inoculation with Bacillus megaterium strain in maize (Zea mays L.) plants under unstressed and salt-stressed conditions / A. Marulanda, R. Azcon, F. Chaumont, J.M. Ruiz-Lozano, R. Aroca // Planta. - 2010. - Vol. 232. - P. 533-543.

361. Marulanda, A. Stimulation of plant growth and drought tolerance by native microorganisms (am fungi and bacteria) from dry environments: mechanisms related to bacterial effectiveness / A. Marulanda, J.M. Barea, R. Azcon // J. Plant Growth Regul. - 2009. - Vol. 28. - P. 115-124.

362. Marulanda-Aguirre, A. DiVerential eVects of a Bacillus megaterium strain on Lactuca sativa plant growth depending on the origin of the arbuscular mycorrhizal fungus coinoculated: physiologic and biochemical traits / A.

Marulanda-Aguirre, R. Azcón, J.M. Ruiz-Lozano, R. Aroca // J. Plant Growth Regul. - 2008. - Vol. 27. - P. 10-18.

363. McCully, M. Niches for bacterial endophytes in crop plants: a plant biologist's view / M. McCully //Australian Journal of Plant Physiology. - 2001. -Vol.28. - P. 983-990.

364. McGonigle, T.P. Winter survival of extraradical hyphae and spores of arbuscular mycorrhizal fungi in the field / T.P. McGonigle, M.H Miller // Applied Soil Ecology. - 1999. - V.12. - P. 41-50.

365. Meharg, A.A. Integrated tolerance mechanisms - constitutive and adaptive plant - responses to elevated metal concentrations in the environment / A.A. Meharg // Plant Cell Environ. - 1994. - Vol. 17. - P. 989-993.

366. Meng, Q. Effects of Bacillus velezensis strain BAC03 in promoting plant growth : theory and applications in pest management / Q.Meng, H. Jiang, J. Hao // Biological Control. - 2016 - Vol. 98. - P. 18-26

367. Menpara, D. Endophytic Bacteria- Unexplored Reservoir of Antimicrobials for Combating Microbial Pathogens / D. Menpara, S. Chanda //Microbial pathogens and strategies for combating them: science, technology and education / A. Méndez-Vilas. (ed.). - Formatex Research Center, 2013. - P. 1095-11032.

368. Mesa , J. Endophytic cultivable bacteria of the metal bioaccumulator Spartina maritima improve plant growth but not metal uptake in polluted marshes soils/ J. Mesa , E. Mateos-Naranjo, M. A. Caviedes, S. Redondo-Gómez, E. Pajuelo, I. D. Rodríguez-Llorente // Frontiers in Microbiology. - 2015. - Vol. 6. -P. 1-15.

369. Michalak, A. Phenolic compounds and their antioxidant activity in plants growing under heavy metal stress / A. Michalak //Polish Journal of Environmental Studies. - 2006. - Vol. 15 ( 4). - P. 523-530.

370. Miché, L. Upregulation of jasmonate-inducible defense proteins and differential colonization of roots of Oryza sativa cultivars with the endophyte Azoarcus sp. / L. Miché, F.Battistoni, S.Gemmer, M.Belghazi, B. Reinhold-Hurek // Mol Plant Microbe. -2006. - Vol.19 (5). - P. 502-511.

371. Miller, S.L. Functional diversity in fungi / S.L. Miller // Can.J.Bot. -1995. -V. 73. - P. 50-57.

372. Milner, J.L. Production of kanosamine by Bacillus cereus UW85 / J.L. Milner, L. Silo-Suh, J.C. Lee, H. He, J. Clardy, J. Handelsman // Appl. Environ. Microbiol. -1996. - Vol. 62(8). - P. 3061-3065.

373. Milner, J.L. Zwittermicin A resistance gene from Bacillus cereus / J.L. Milner, E.A. Stohl, J. Handelsman // J. Bacteriol. - 1996. - Vol. 178. - P. 42664272.

374. Miransari, M. Eff ects of soil compaction and arbuscular mycorrhiza on corn (Zea mays L.) nutrient uptake / M. Miransari, H.A. Bahrami, F. Rejal, M.J. Malakouti //Soil Till Res - 2009. - Vol. 103. - P. 282- 290.

375. Mishra, V.K. Plant growth promoting and phytostimulatory potential of Bacillus subtilis and Bacillus amyloliquefaciens. / V.K Mishra, A. Kumar //ARPN J. Agri. Biol. Sci. - 2012. - Vol. 7 (7). - P. 509-519.

376. Mittler, R. Oxidative stress, antioxidants, and stress tolerance / R.Mittler / Trends Plant Sci. - 2002. - Vol. 7 (9). - P.405-410.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.