Биологическая активность эндофитных штаммов Bacillus subtilis, перспективных в качестве основы новых препаратов для растениеводства тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.03, кандидат биологических наук Егоршина, Анна Александровна

• Егоршина, Анна Александровна
• кандидат биологических наук
• 2012

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Егоршина, Анна Александровна

СОДЕРЖАНИЕ

С.

Сокращения и условные обозначения

Введение

Глава 1. Способность бактерий рода Bacillus стимулировать рост

растений и возможные механизмы ее проявления (обзор

литературы)

1.1. Прямые пути стимуляции роста

1.1.1. Фитогормоны

1.1.2. Улучшение минерального питания

1.2. Непрямые пути стимуляции роста

1.2.1. Индукция системной устойчивости

1.2.2. Биологический контроль фитопатогенов

1.2.3. Улучшение жизни растений при действии абиотических стресс-факторов

1.2.4. Улучшение формирования и функционирования симбиозов

Глава 2. Экспериментальная часть

2.1. Материалы и методы

2.1.1. Объекты исследований и питательные среды

2.1.2. Определение способности штаммов В. subtilis стимулировать 43 рост растений in vitro

2.1.3. Полевые испытания

2.1.4. Определение культурально-морфологических и физиологе- 44 биохимических свойств эндофитов В. subtilis

2.1.5. Молекулярно-генетическая оценка различий между штаммами 47 и их видовой принадлежности

2.1.6. Выявление эндофитности штамма В. subtilis 1 IBM

2.1.7. Выявление у штаммов фитогормон-подобной активности

2.1.8. Иммуноферментный анализ фитогормонов

2.1.9. Определение активности ИУК-оксидазы

2.1.10. Определение фосфат-мобилизующей активности штаммов

2.1.11. Анализ спектра органических кислот, продуцируемых штаммами

2.1.12. Анализ антагонистической активности штаммов В. subtilis к фитопатогенным грибам и азотфиксирующим бактериям

2.1.13. Определение защитного эффекта В. subtilis 1 IBM при

действии метаболитов Fusarium spp. на проростки пшеницы

2.1.14. Культивирование штамма^, subtilis 11ВМ в биореакторе

2.1.15. Оценка безопасности штамма В. subtilis 11ВМ

2.1.16. Статистическая обработка результатов

2.2. Результаты исследований и их обсуждение

2.2.1. Регуляция роста растений эндофитами

2.2.2. Сравнительные культурально-морфологические, физиолого-биохимические свойства и молекулярно-генетические признаки

новых эндофитных штаммов В. subtilis

2.2.3. Эндофитность штамма В. subtilis 1 IBM

2.2.4. Фитогормон-подобная активность эндофитных штаммов

В. subtilis

2.2.5. Изменение уровня фитогормонов в растениях пшеницы под влиянием эндофитного штамма В. subtilis 1 IBM

2.2.6. Изменение активности ИУК-оксидазы в проростках пшеницы

под влиянием некоторых штаммов В. subtilis

2.2.7. Мобилизация труднорастворимых фосфатов эндофитами

2.2.8. Спектр органических кислот, продуцируемых эндофитами

2.2.9. Антагонистическая активность штаммов к фитопатогенным грибам рода Fusarium

2.2.10. Защитное действие штамма В. subtilis 1 IBM при воздействии

фузариотоксинов на проростки пшеницы

2.2.11. Взаимоотношения эндофитных штаммов В. subtilis с азотфиксирующими бактериям

2.2.12. Токсико-гигиенические исследования препарата на основе штамма 1 IBM В. subtilis

2.2.13. Моделирование производства культуры штамма 1 IBM в лабораторном биореакторе

Заключение

Выводы

Практические рекомендации

Список использованных литературных источников

Приложения

Сокращения и условные обозначения

АБК - абсцизовая кислота;

АЦК- 1-аминоциклопропанкарбоновая кислота;

БАП - 6-бензиламинопурин;

ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография;

ГК - гибберелловая кислота;

ДОН - дезоксиниваленол;

ЖК - жасмоновая кислота;

ИУК - индолил-3-уксусная кислота;

ИФА - иммуноферментный анализ;

КГА - картофельно-глюкозный агар;

КОЕ - колониеобразующая единица;

МПА - мясо-пептонный агар;

МПБ - мясо-пептонный бульон;

МПЖ - мясо-пептонная желатина;

ПА - питательный агар;

ПДРФ - полиморфизм длин рестрикционных фрагментов;

ПСС - полусинтетическая среда;

ПЦР - полимеразная цепная реакция;

ПЭГ - полиэтиленгликоль;

СК - салициловая кислота;

ISR - induced systemic resistance (индуцированная системная устойчивость);

1ST - induced systemic tolerance (индуцированная системная толерантность);

LB - среда Luria Bertani;

МНВ - mycorrhiza helper bacteria (бактерии-помощники микоризы); NBRI-BPB - National Botanical Research Institute's phosphate growth medium containing bromophenol blue;

NBRIP - National Botanical Research Institute's phosphate growth medium;

PGPB - plant growth-promoting bacteria (бактерии, стимулирующие рост растений);

PGPR - plant growth-promoting rhizobacteria (ризобактерии, стимулирующие рост растений);

RAPD - random amplification of polymorphic DNA;

SAR - systemic acquired resistance (системная приобретенная устойчивость);

VOCs - volatile organic compounds (летучие органические соединения).

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Биологическая активность эндофитных штаммов Bacillus subtilis, перспективных в качестве основы новых препаратов для растениеводства»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Долгое время единственными непатогенными для растений микроорганизмами, способными обитать внутри растительных тканей, считались клубеньковые бактерии и эндомикоризные грибы. Многочисленные доказательства способности других видов бактерий заселять внутренние растительные ткани, не вызывая какие-либо симптомы у растений (Sturz, Nowak, 2000; Bacon, Hinton, 2002; Antoun, Prévost, 2005; Wu et al., 2009), изменили традиционное мнение о стерильности последних, что позволило сформировать представление о растениях, как сложных микроэкосистемах, являющихся местом обитания различных эндофитных микроорганизмов, как паразитов, так и мутуалистов. Последние привлекают особое внимание исследователей, и именно их, как правило, называют эндофитами, исключая паразитов и комменсалов (Antoun, Prévost, 2005; Hardoim et al., 2008). Научный интерес представляют механизмы взаимодействия растений с их эндофитами. Одновременно изучение эндофитов интересно и практикам, так как такие микроорганизмы, как стимуляторы роста или защитные агенты, открывают новые возможности для создания безопасных биопрепаратов. Недостаточные сведения о свойствах эндофитных бактерий и их взаимоотношениях с хозяевами не позволяет успешно создавать на их основе новые более эффективные биофунгициды, что подтверждается использованием в растениеводстве России пока лишь одного препарата «Фитоспорин-М» на основе эндофитного штамма Bacillus subtilis 26Д (Государственный каталог пестицидов..., 2010). При этом многие авторы относят эндофитов к более перспективным бактериям по сравнению с обитателями ризосферы, поскольку первые лучше защищены от неблагоприятного воздействия многих средовых факторов (Менликиев и др., 1996; Недорезков, 2003; Мубинов, 2007). Бациллам, как потенциальной основе биофунгицидов, посвящено значительное число работ (Смирнов и др., 1982; Недорезков, 2003 Мелентьев, 2007; Choudhary, Johri, 2009; Pérez-García et al., 2010). Однако в большинстве из них эти бактерии рассматривают, в

основном, как антагонистов для биоконтроля фитопатогенов, в то время как другим механизмам стимуляции роста, устойчивости и продуктивности растений, особенно эндофитными представителями рода Bacillus, на наш взгляд, уделяется недостаточное внимание.

Цель работы - выявить комплекс биологической активности эндофитных штаммов Bacillus subtilis, позволяющий использовать бактерии в качестве основы новых полифункциональных препаратов для растениеводства.

Задачи работы. 1) Провести сравнительные исследования культурально-морфологических и физиолого-биохимических свойств, определить генетическую гетерогенность новых эндофитных штаммов В. subtilis, выделенных из растений яровой пшеницы. 2) Определить эндофитность одного из перспективных штаммов - В. subtilis 11ВМ с помощью рекомбинантного штамма В. subtilis 1 IBMgfp. 3) Выявить участие фитогормонов в механизмах регуляции роста растений эндофитными представителями В. subtilis. 4) Изучить способность штаммов переводить труднорастворимые фосфаты в подвижные формы и определить некоторые её механизмы. 5) Охарактеризовать взаимоотношения исследуемых штаммов В. subtilis с фитопатогенными грибами, а также азотфиксирующими бактериями. 6) Оценить безопасность и технологичность штамма В. subtilis 11ВМ как перспективной основы для разработки полифункционального биофунгицида.

Научная новизна. Дана подробная сравнительная характеристика культурально-морфологических, физиолого-биохимических свойств семнадцати новых эндофитных штаммов В. subtilis, выделенных из растений мягкой яровой пшеницы, показана их генетическая гетерогенность. Впервые показано, что вовлечение фитогормонов - как активаторов (ИУК и цитокинины), так ингибиторов роста (АБК) во взаимоотношения эндофитных штаммов В. subtilis с растениями может быть одним из общих механизмов проявления этими бактериями рострегулируюгцей активности по отношению

к хозяину. Выявлен один из механизмов повышения содержания ИУК в корнях растений под влиянием эндофитных представителей В. subtilis, включающий снижение активности ИУК-оксидазы. Впервые показано, что стимуляция роста растений эндофитными штаммами В. subtilis может быть опосредована их способностью переводить труднорастворимые фосфаты в подвижные формы за счет продукции бактериями органических кислот, спектр которых зависит от биологических особенностей штамма. Показано, что при наличии у изученных штаммов бактерий общего свойства проявлять антагонизм к фитопатогенным грибам рода Fusarium, эти штаммы различаются по способности угнетать рост хозяйственно полезных азотфиксирующих бактерий. Установлено, что отличительным признаком новых штаммов бацилл от депонированных (В. subtilis 26Д, 24D, 1 IB, Ml) является преимущественное ингибирование роста Äzospirillum brasilense и А. lipoferum. Показано, что бактерии Azotobacter vinelandii отличаются от других изученных представителей азотфиксаторов устойчивостью к действию антибиотиков всех исследованных штаммов бацилл.

Практическая значимость. Подробно охарактеризованная коллекция из 17 эндофитных штаммов В. subtilis представляет практическую ценность, как для выявления новых свойств этих бактерий, так и разработок биопрепаратов для сельского хозяйства. Штамм бактерий В. subtilis 1 IBM, трансформированный плазмидой pRL-GFP765 может быть использован для изучения механизмов взаимоотношений растений и эндофитов. Показано, что выявление фосфат-мобилизующей активности бактерий и её регистрируемый уровень зависят от консистенции среды, на которой культивируются микроорганизмы, также как и спектр продуцируемых ими органических кислот. Для повышения надежности оценки рострегулирующей активности эндофитных бактерий предложена методика, в которой тест-объекты получают из растений, инокулированных эндофитами. В коллекции ВНИИСХМ депонирован штамм В. subtilis 11ВМ

(№519), перспективный в качестве основы нового полифункционального биофунгицида.

Связь работы с научными программами. Исследования по теме диссертации поддержаны грантами РФФИ №05-04-08156-офи_а, №05-04-97935-р_агидель_а, №11-04-97044-р_поволжье_а, Фонда содействию развитию МПНТС №4822р/7290 («СТАРТ-07»), №5490р/7971 («У.М.Н.И.К.»). Часть работы выполнена в рамках заказа Минсельхоза России в соответствии с планом НИР Башкирского ГАУ за счет средств федерального бюджета по теме «Разработка полифункциональных биофунгицидов для растениеводства» (№ госрегистрации 01200853490).

Основные положения, выносимые на защиту. 1. 17 новых эндофитных штаммов отличаются друг от друга по ряду свойств и относятся к виду В. яиЬШгя. 2. Штамм В. яиЪНШ 11ВМ способен проникать во внутренние растительные ткани, не проявляя патогенности по отношению к растению-хозяину. 3. Стимуляция роста растений пшеницы эндофитными штаммами В. йиЫШБ опосредована комплексом их биологической активности: способностью проявлять фитогормон-подобные свойства по отношению к растениям, изменять баланс фитормонов в растительных тканях, переводить труднорастворимые фосфаты в подвижную форму, ингибировать рост фитопатогенных грибов, повышать устойчивость растений к действию фитотоксинов, избирательно подавлять рост азотфиксирующих бактерий. 4. Штамм В. буЬНШ 11ВМ (ВНИИСХМ №519) безопасен для животных, технологичен и может быть использован в качестве основы полифункционального биофунгицида.

Апробация работы. Основные результаты работы были представлены на: IV Межрегиональной конференции молодых ученых «Стратегия взаимодействия микроорганизмов и растений с окружающей средой» (Саратов, 2008); V международном конгрессе «Биотехнология: состояние и перспективы развития» (Москва, 2009); XII съезде общества микробиологов Украины им. С.М. Виноградского (Ужгород, 2009); II Всероссийской школе-

конференции молодых ученых УНЦ РАН и Волго-Уральского региона по физико-химической биологии и биотехнологии «Биомика - наука XXI века» (Уфа, 2011).

Публикации. По теме диссертации опубликовано И работ, из них 3 статьи в журналах, рекомендованных ВАК РФ.

Структура и объем диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, включающей описание материалов и методов исследования, а также полученных результатов и их обсуждения, заключения, выводов, практических рекомендаций и библиографического списка из 283 наименований, в том числе 249 на иностранном языке. Работа изложена на 145 страницах машинописного текста, включает 8 рисунков и 16 таблиц, а также приложение на 16 страницах, содержащее 5 таблиц.

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Егоршина, Анна Александровна

выводы

1.17 исследованных новых штаммов бактерий относятся к виду В. subtilis.

2. Один из механизмов стимуляции роста пшеницы эндофитными штаммами В. subtilis, обитающими в ее внутренних тканях, опосредован через фитогормон-подобное действие клеток бактерий на растения, а также изменение уровня фитогормонов АБК, ИУК и цитокининов в растительных тканях, характеризующееся на первоначальном этапе взаимоотношений растение-эндофит одновременным повышением в корнях и побегах содержания как ИУК, так и АБК.

3. Повышение содержания ауксинов в проростках пшеницы, инокулированных эндофитными штаммами бактерий В. subtilis, может происходить благодаря снижению активности оксидазы ИУК под влиянием клеток этих бактерий.

4. Все исследованные штаммы В. subtilis способны растворять in vitro фосфаты кальция и железа, и большинство из них - фосфат алюминия. Активность растворения фосфатов одним и тем же штаммом зависит от консистенции среды и может быть обусловлена выделением органических кислот в среду культивирования.

5. Исследованные виды азотфиксирующих бактерий Azospirillum brasilense, A. lipoferum, A. irakense, Azotobacter chroococcum, A. vinelandii, Rh. leguminosarum bv. viceae отличаются между собой по чувствительности in vitro к ростингибирующему действию метаболитов В. subtilis. Большинство изученных штаммов бацилл подавляют рост исследованных представителей

A. brasilense и A. lipoferurrr, ни один из штаммов не ингибирует рост представителя A. vinelandii.

6. Повышение урожайности сельскохозяйственных культур и их устойчивости к болезням при инокуляции растений эндофитными штаммами

B. subtilis происходит благодаря комплексу их полезной биологической активности, в том числе: способности стимулировать рост растений, растворять неорганические фосфаты, повышая их подвижность в почве, продуцировать органические кислоты, хелатирующие ионы микроэлементов, проявлять антагонизм к фитопатогенным грибам и повышать устойчивость растений к действию их фитотоксинов, избирательно влиять на рост различных видов ассоциативных и симбиотических азотфиксирующих бактерий.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Эндофитный штамм В. тЫШа 11ВМ, депонированный в коллекции ВНИИСХМ под номером 519, безопасен для животных, технологичен и может быть использован для разработки препаратов с комплексной биологической активностью, повышающих урожайность сельскохозяйственных культур и их устойчивость к болезням.

2. Для выявления ауксин- или цитокинин-подобной активностей эндофитов рекомендуется использовать методику, в которой, соответственно, отрезки колеоптилей или листьев получают из растений, предварительно инокулированных этими микроорганизмами, используя в качестве контроля неинокулированные растения.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Егоршина, Анна Александровна, 2012 год

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК

1. Агнистикова В.Н. Определение гибберелловой кислоты по ростовой реакции проростков // Методы определения регуляторов роста и гербицидов / Под ред. Ракитина Ю.В. - М.: Наука, 1966. - С. 93-99.

2. Архипова Т.Н., Анохина Н.Л. Влияние инокуляции цитокинин-продуцирующими микроорганизмами на рост растений пшеницы при повышении уровня минерального питания // Физиология растений. - 2009. - Том 56, № 6. - С. 899-905.

3. Архипова Т.Н., Веселов С.Ю., Мелентьев А.И., Мартыненко Е.В., Кудоярова Г.Р. Влияние микроорганизмов, продуцирующих цитокинины, на рост растений // Биотехнология. - 2006. - № 4. - С. 50-55.

4. Баймиев Ан.Х., Птицын К.Г., Благова Д.К., Мулдашев A.A., Баймиев Ал.Х. Генетическое разнообразие и филогения клубеньковых бактерий, вступающих в симбиоз с чиной весенней Lathyrus vernus (L.) BERNH // Микробиология. - 2011. - T. 80, № 1. - С. 100-104.

5. Бояркин А.Н. Метод количественного определения активности ростовых веществ // Методы определения регуляторов роста и гербицидов / Под ред. Ракитина Ю.В. - М.: Наука, 1966. - С. 13-15.

6. Веселов Д.С., Веселов С.Ю., Высоцкая Л.Б., Кудоярова Г.Р., Фархутдинов Р.Г. Гормоны растений: регуляция концентрации, связь с ростом и водным обменом. - М.: Наука, 2007. - 158 с.

7. Волошин С.А, Капрельянц A.C. Межклеточные взаимодействия в бактериальных популяциях // Биохимия. - 2004. - Т.69, № 11. - С. 15551564.

8. Гамбург К.З. Определение активности оксидазы индолилуксусной кислоты и ее ингибитора // Методы определения регуляторов роста и t гербицидов / Под ред. Ракитина Ю.В. -М.: Наука, 1966. - С. 57-61.

9. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации. - М.: Минсельхоз России, 2010.-801 с.

10. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований) // М.: Агропромиздат, 1985. - 351 с.

11. Иванчина Н.В. Взаимоотношения эндофитных штаммов Bacillus subtilis с симбиотической системой Pisum sativum L.-Rhizobium leguminosarum bv. viceae: Автореф. дис. ... канд. биол. наук / Уфа: ФГОУ ВПО "Башкирский государственный аграрный университет". -2010.-20 с.

12. Карпунина JI.B., Мельникова У.Ю., Суслова Ю.В., Мухачева Е.С., Игнатов В.В. Бактерицидные свойства лектинов азотфиксирующих бацилл // Микробиология. - 2003. - Т. 72, № 3. - С. 343-347.

13. Кривченко В.И. Устойчивость зерновых культур к возбудителям головневых болезней. - М.: Колос, 1984. - 304 с.

14. Кудоярова Г.Р., Веселов С.Ю., Каравайко H.H., Гюли-Заде В.З., Чередова Е.П., Мустафина А.Р., Мошков И.Е., Кулаева О.Н. Иммуноферментная система для определения цитокининов // Физиология растений. - 1990. - Т. 37. - С. 193-199.

15. Кулаева О.Н. Цитокинины, их структура и функции. - М.: Наука, 1973. -264 с.

16. Кутлубердина Д.Р. Антагонистические штаммы Bacillus subtilis Cohn как агенты биоконтроля грибов рода Fusarium Link: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. - Саратов, 2010. - 22 с.

17. Лукьянцев М.А Особенности биологической активности эндофитных штаммов Bacillus subtilis Cohn с различной степенью антагонизма к фитопатогенным грибам: Дис. ... канд. биол. наук / Саратовский гос. аграр-й ун-т им. Н.И. Вавилова. - Саратов, 2010. - 138 с.

18. Максимов И.В. Абсцизовая кислота во взаимоотношениях растений и микроорганизмов // Физиология растений. - 2009. - Т. 56. - С. 824-835.

19. Мелентьев А.И. Аэробные спорообразующие бактерии Bacillus Cohn в агроэкосистемах. - М. : Наука, 2007. - 147 с.

20. Менликиев М.Я., Недорезков В.Д., Ваньянц Г.М., Минеев М.И., Смирнов В.В., Байгузина Ф.А., Сорокулова И.Б., Султанова М.Х.,

Каримов К.Х., Хакимов А.Х. Фитоспорин. - Уфа: ГУП «Иммунопрепарат», 1996. - 24 с.

21. Минеев В.Г. Практикум по агрохимии. 2-е изд. - М.: Изд-во МГУ, 2001. -689 с.

22. Минина Т.С., Захарова Р.Ш., Уразбахтина H.A., Хайруллин P.M. Новые эндофитные штаммы Bacillus subtilis как основа биофунгицидов // Вестник Казанского государственного аграрного университетаю - 2009. -№2(12).-С. 55-59.

23. Мубинов И.Г. Реакции пшеницы на действие клеток эндофитного штамма 26Д Bacillus subtilis - основы биофунгицида фитоспорин: Автореф. дис. канд. биол. наук: 03.01.04 / Мубинов Искандер Гарифович; Баш. гос. университет. - Уфа, 2007. - 23 с.

24. Мубинов И.Г., Хайруллин P.M. Роль оксидаз в регуляции уровня активных форм кислорода и реакциях пшеницы на инокуляцию эндофитным штаммом Bacillus subtilis II Тезисы Второго международного симпозиума «Сигнальные системы клеток растений: Роль в адаптации и иммунитете». - Казань, 2006. - С. 93-94.

25. Не дорезков В. Д. Биологическое обоснование применения эндофитных бактерий в защите пшеницы от болезней на Южном Урале: Дис. ... д-ра с.-х. наук / ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет». - Уфа, 2003. - 280 с.

26. Олюнина Л.Н., Лабынцева О.М., Куватова А.Г. Изменения в спектре свободной и конъюгированных форм индолил-3-уксусной кислоты при действии экзогенной ИУК на проростки пшеницы // Вестн. Нижегородского ун-та. Серия: Биология. - 1999. - No. 1. - С. 109-112.

27. Определитель бактерий Берджи. / Под. ред. Дж. Хоулт, Н. Криг, П. Снит, Дж. Стейли, С. Уильяме - М.: Мир. -1997. - 368 с.

28. Смирнов В.В., Резник С.Р., Василевская И.А. Спорообразующие аэробные бактерии продуценты биологически активных веществ. - Киев: Наукова Думка, 1982. - 280с.

29. Соколова М. Г., Акимова Г. П. Адаптогенное влияние препаратов, содержащих ризосферные бактерии, на рост проростков гороха в условиях гипотермии // BicHHK Харювського нацюнаоьного аграрного ушверситетую - 2009. - Вип. 3 (18). - С. 55-63.

30. Сэги Й. Методы почвенной микробиологии. - М.: Колос, 1983. - 162 с.

31. Цавкелова Е.А., Климова С.Ю., Чердынцева Т.А., Нетрусов А.И. Гормоны и гормоноподобные соединения микроорганизмов // Прикладная биохимия и микробиология. - 2006. - Том 42, № 3. - С. 261-268.

32. Цавкелова Е.А., Климова С.Ю., Чердынцева Т.А., Нетрусов А.И. Микроорганизмы - продуценты стимуляторов роста растений и их практическое применение (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. - 2006. - Том 42, № 2. - С. 133-143.

33. Шакирова Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. - Уфа: Гилем, 2001. - 160 с.

34. Шакирова Ф.М., Максимов И.В., Хайруллин P.M. О влиянии септориоза колоса на динамику накопления лектина и содержание фитогормонов в развивающихся зерновках пшеницы // Физиол. биохимия культ, растений. -1994.-Т. 26.-С. 40-45.

35. Abriouel Н., Franz С.М.А.Р., Omar N.B., Galvez A. Diversity and applications of Bacillus bacteriocins // FEMS Microbiol. Rev. - 2011. - Vol. 35, No. l.-P. 201-232.

36. Afif E., Matar A., Torrent J. Availability of phosphate applied to calcareous soils of West Asia and North Africa // Soil Sci. Soc. Am. J. - 1993. - Vol. 57. -P. 756-760.

37. Agarwal S., Shende S.T. Tetrazolium reducing microorganisms inside the root of Brassica species // Curr. Sci. - 1987. - Vol. 56. - P. 187-188.

38. Ahn P.M. Tropical soils and fertilizer use. - TAP, Maiaysia, 1993. - 264 p.

39. Alexandre G., Zhulin I.B. Chemotaxis in soil diazotrophs: survival and adaptative response // Associative and endophytic nitrogen-fixing bacteria and

cyanobacterial assotiations / Elmerich, C., Newton, W.E. - Springer, 2007. - P. 171-190.

40. Andreote F.D., Araûjo W.L., Azevedo J.L., Elsas J.D., Nunes da Rocha U., Overbeek L.S.. Endophytic colonization of potato (Solarium tuberosum L.) by a novel competent bacterial endophyte, Pseudomonas putida strain P9, and its effect on associated bacterial communities // Appl. Environ. Microb. - 2009. -Vol. 75.-P. 3396-3406.

41. Antoun H., Prévost D. Ecology of plant growth promoting rhizobacteria // PGPR: Biocontrol and Biofertilization / Siddiqui Z.A. (ed.). - Springer, 2005. -P. 1-38.

42. Arata H., Iwasaki I., Kusumi K., Nishimura M. Thermodynamics of malate transport across the tonoplast of leaf cells of CAM plants // Plant Cell Physiol. - 1992. - Vol. 33, No. 7. - P. 873-880.

43. Arguelles-Arias A., Ongena M., Halimi B., Lara Y., Brans A., Joris B., Fickers P. Bacillus amyloliquefaciens GAI as a source of potent antibiotics and other secondary metabolites for biocontrol of plant pathogens // Microbial Cell Factories. - 2009. - Vol. 8. - P. 63.

44. Artursson V., Finaly R.D., Jansson J.K. Interactions between arbuscular mycorrhizal fungi and bacteria and their potential for stimulating plant growth // Environ. Microbiol. - 2006. - Vol. 8, No. 1. - P. 1-10.

45. Ash C., Priest F.G., Collins M.D. Molecular identification of rRNA group 3 bacilli (Ash, Farrow, Wallbanks, and Collins) using a PCR probe test. Proposal for the creation of a new genus Paenibacillus. / Antonie van Leeuwenhoek 64, 1993. P.253-260.

46. Azcôn R., Perâlvarez M. C., Roldân A., Barea J. M. Arbuscular mycorrhizal fungi, Bacillus cereus, and Candida parapsilosis from a multicontaminated soil alleviate metal toxicity in plants // Microbial Ecology. - 2010. - Vol. 59. - P. 668-677.

47. Baca B.E., Elmerich C. Microbial production of plant hormones // Associative and Endophytic Nitrogen-fixing Bacteria and Cyanobacterial Associations / Elmerich C., Newton W.E. - Springer, 2007. - P. 113-143.

48. Bacilio-Jiménez M., Aguilar-Flores S., Velázquez del V.M., Pérez A., Zepeda A., Zenteno E. Endophytic bacteria in rice seeds inhibit early colonization by Azospirillum brasilense II Soil Biol. Biochem. - 2001. - Vol. 33. - P. 167-172.

49. Bacon C. W., Yates I. E., Hinton D. M., Meredith, F. Biological control of Fusarium moniliforme in maize // Environ. Health Perspect. - 2001. - Vol. 109 -P. 325-332.

50. Bacon C.W., Glenn A.E., Yates I.E. Fusarium verticillioides: Managing the endophytic association with maize for reduced fumonisins accumulation // Toxin Reviews. - 2008. - Vol. 27. - P. 411^46.

51. Bacon C.W., Hinton D.M. Bacillus mojavensis: its endophytic nature, the surfactins, and their role in the plant response to infection by Fusarium verticillioides II Bacteria in Agrobiology: Plant Growth Responses / D.K. Maheshwari (ed.). - Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2011. - P. 21-39.

52. Bacon C.W., Hinton D.M. Bacterial endophytes: the endophytic niche, its occupants, and its utility // Plant-associated bacteria / Gnanamanickam S.S. -Springer, 2006. - P. 155-194.

53. Bacon C.W., Hinton D.M. Endophytic and biological control of Bacillus mojavensis and related species // Biol. Control. - 2002. - Vol. 23. - P. 274284.

54. Bacon C.W., Hinton D.M. Use of Bacillus subtilis as an endophyte for the control of diseases caused by fungi / US Patent and Trademark Office, November 30, 1999.

55. Bacon C.W., Hinton D.M., Porter J.K., Glenn A.E., Kuldau G. Fusaric acid, a Fusarium verticillioides metabolite, antagonistic to the endophytic biocontrol bacterium Bacillus mojavensis II Can. J. Botany. - 2004. - Vol. 82. - P. 878885.

56. Bais H. P., Fall R., Vivanco J. M. Biocontrol of Bacillus subtilis against infection of Arabidopsis roots by Pseudomonas syringae is facilitated by biofilm formation and surfactin production // Plant Physiol. - 2004. - Vol. 134. -P. 307-319.

57. Bally R., Elmerich C. Biocontrol of plant diseases by associative and endophytic nitrogen-fixing bacteria // Associative and endophytic nitrogen-fixing bacteria and cyanobacterial assotiations / Elmerich, C., Newton, W.E. -Springer, 2007. - P. 171-190.

58. Barzanti R., Ozino F., Bazzicalupo M., Gabbrielli R., Galardi F., Gonnelli C., Mengoni A. Isolation and characterization of endophytic bacteria from the nickel hyperaccumulator plant Alyssum bertolonii II Microb. Ecol. - 2007. -Vol. 53.-P. 306-316.

59. Bashan Y., Holguin G. Proposal for the division of plant growth-promoting rhizobacteria into two classifications: biocontrol-PGPB (plant growth-promoting bacteria) and PGPB // Soil Biol. Biochem. - 1998. - Vol. 30, No 8-9.-P. 1225-1228.

60. Bashan Y., Holguin G., Lifshitz R. Isolation and characterization of plant growth-promoting rhizobacteria // Methods in plant molecular biology and biotechnology / Glick B.R., Thompson J.E. (eds). - CRC Press, Boca Raton, Fla, 1993.-P. 331-345.

61. Baud S., Bellec Y., Miquel M., Bellini C., Caboche M., Lepiniec L., Faure J.D., Rochat C. gurke and pasticcino3 mutants affected in embryo development are impaired in acetyl-CoA carboxylase // EMBO Rep. - 2004. - Vol. 5. - P. 515-520.

62. Beauchamp C. J. Mode of action of plant growth-promoting rhizobacteria and their potential use as biological control agents // Phytoprotection. - 1993. - Vol. 71.-P. 19-27.

63. Belimov A.A., Safronova V.I., Sergeyeva T.A., Egorova T.N., Matveyeva V.A., Tsyganov V.E., Borisov A.Y., Tikhonovich I.A., Kluge C., Preisfeld A., Dietz K.-J., Stepanok V.V. Characterization of plant growth promoting

rhizobacteria isolated from polluted soils and containing 1-aminocyclopropane-1-carboxylate deaminase // Can. J. Microbiol. - 2001. - Vol. 47, No. 7. - P. 642-652.

64. Bending G.D., Poole E.J., Whipps J.M., Read D.J. Characterisation of bacteria from Pinus sylvestris-Suillus luteus mycorrhizas and their effects on root-fungus interactions and plant growth // FEMS Microbiol. Ecol. - 2002. - Vol. 39.-P. 219-227.

65. Benhamou N., Kloepper J. W., Quadt-Hallman A., Tuzun S., Induction of defense-related ultrastructural modifications in pea root tissues inoculated with endophytic bacteria // Plant Physiol. - 1996. - Vol. 112. - 919-929.

66. Benhamou, N., Kloepper, J.W., Tuzun, S. Induction of resistance against Fusarium wilt of tomato by combination of chitosan with an endophytic bacterial strain: ultrastructure and cytochemistry of the host response // Planta. -1998.-Vol. 204.-P. 153-168.

67. Berg A.J.J., Radema M.H., Labadie R.P. Influence of acetate and malonate on the production of 1,8-dihydroxyanthracene derivatives in suspension cultures of Rhamnuspurshiana II Planta. - 1988. - Vol. 174, No. 3. - P. 417-421.

68. Berkeley R.C.W. Whither Bacillus? // Application and systematics of Bacillus and relatives / Berkeley R., Heyndrickx M., Logan N., De Vos P. (Eds.). -Blackwell, Oxford, 2002. - P. 1-7.

69. Biggs A.R. Effects of calcium salts on apple bitter rot caused by two Colletotrichum spp. // Plant Dis. - 1999. - Vol. 83. - P. 1001-1005.

70. Biggs A.R., El-Kholi M.M., El-Neshawy S., Nickerson R. Effects of calcium salts on growth, polygalacturonase activity, and infection of peach fruit by Monilinia fructicola II Plant Dis. - 1997. - Vol. 81. - P. 399-403.

71. Blodgett A.B., Caldwell R.W., McManus P.S. Effects of calcium salts on the cranberry fruit rot disease complex // Plant Dis. - 2002. - Vol. 86. - P. 747752.

72. Bluma R.V., Etcheverry M.G. Influence of Bacillus spp. isolated from maize agroecosystem on growth and aflatoxin B(l) production by Aspergillus section Flavi // Pest. Manag. Sei. - 2006. - Vol. 62. - P. 242-251.

73. Brandl M.T., Lindow S.E. Contribution of indole-3-acetic acid production to the epiphytic fitness of Erwinia herbicola II Appl. Environ. Microbiol. - 1998. -Vol. 64.-P. 3256-3263.

74. Camacho M., Santamaría C., Temprano F., Rodríguez-Navarro D.N., Daza A. Co-inoculation with Bacillus sp. CECT 450 improves nodulation in Phaseolus vulgaris L. // Can. J. Microbiol. - 2001. - Vol. 47. - P. 1058-1062.

75. Carrillo C., Teruel J. A., Aranda F. J., Ortiz A. Molecular mechanism of membrane permeabilization by the peptide antibiotic surfactin // Biochimica et Biophysica Acta.-2003.-Vol. 1611, No. 1-2.-P. 91-97.

76. Cavaglieri L., Orlando J., Rodriguez M.I., Chulze S., Etcheverry M. Biocontrol of Bacillus subtilis against Fusarium verticillioides in vitro and at the maize root level // Res. Microbiol. - 2005. - Vol. 156. - P. 748-754.

77. Chakraborty U., Chakraborty B., Basnet M. Plant growth promotion and induction of resistance in Camellia sinensis by Bacillus megaterium II J. Basic Microbiol.-2006.-Vol. 46.-P. 186-195.

78. Chen F., Wang M., Zheng Y., Luo J., Yang X., Wang X. Quantitative changes of plant defense enzymes and phytohormone in biocontrol of cucumber Fusarium wilt by Bacillus subtilis B579 // World J. Microbiol. Biotechnol. -2010.-Vol. 26.-P. 675-684.

79. Chen H., Kim H.U., Weng H., Browse J. Malonil-CoA synthetase, encoded by ACYL ACTIVATING ENZYME13, is essential for growth and development of Arabidopsis II Plant Cell. - 2011. - Vol. 23. - P. 2247-2262.

80. Chen X.H., Koumoutsi A., Scholz R., Eisenreich A., Schneider K., Heinemeyer I., Morgenstern B., Voss B., Hess W.R., Reva O., Junge H., Voigt B., Jungblut P.R., Vater J., Süssmuth R., Liesegang H., Strittmatter A., Gottschalk G. Borriss R. Comparative analysis of the complete genome

sequence of the plant growth-promoting bacterium Bacillus amyloliquefaciens FZB42 // Nature Biotechnol. - 2007. - Vol. 25. - P. 1007-1014.

81. Chen Y.P., Rekha P.D., Aran A.B., Shen F.T., Lai W.-A., Young C.C. Phosphate solubilizing bacteria from subtropical soil and their tricalcium phosphate solubilizing abilities // Appl. Soil Ecol. - 2006. - Vol. 34. - P. 3341.

82. Cho K.J., Kang J.S., Cho W.T., Lee C.H., Ha J.K., Song K.B. In vitro degradation of zearalenone by Bacillus subtilis II Biotechnol. Lett. - 2010. -Vol. 32.-P. 1921-1924.

83. Cho K.M., Hong S.Y., Lee S.M., Kim Y.H., Kahng G.G., Lim Y.P., Kim H., Yun H.D. Endophytic bacterial communities in ginseng and their antifungal activity against pathogens // Microb. Ecol. - 2007. - Vol. 54, No. 2. - P. 341— 351.

84. Choi, J., Huh S.U., Kojima M., Sakakibara H., Paek K.H., Hwang I. The cytokinin-activated transcription factor ARR2 promotes plant immunity via TGA3/NPR1 -dependent salicylic acid signaling in Arabidopsis // Dev. Cell. -2010. - Vol. 19. - P. 284-295.

85. Choudhary D.K., Johri B.N. Interactions of Bacillus spp. and plants with special reference to induced systemic resistance (ISR) // Microbiol Res. - 2009. Vol. 164No. 5.-P. 493-513.

86. Compant S., Duffy B., Nowak J., Clément C., Barka E.A. Use plant growth-promoting bacteria for biocontrol of plant diseases principles, mechanism of action, and future prospects // Appl. Environ. Microbiol. - 2005. - Vol. 71, No 9.-P. 4951-4959.

87. Czaban J., Ksiçzniak A., Perzinsky A. An attempt to protect winter wheat against Fusarium culmorum by the use of rhizobacteria Pseudomonas fluorescens and Bacillus mycoides II Polish J. Microbiol. - 2004. - Vol. 53, No. 3.-P. 175-183.

88. Czaban J., Ksiçzniak A., Wrôblewska B., Paszkowsky W.L. An attempt to protect winter wheat against Gaeumannomyces graminis var. tritici by the use

of rhizobacteria Pseudomonas fluorescens and Bacillus mycoides II Polish J. Microbiol.-2004.-Vol. 53, No. 2.-P. 101-111.

89. Davey M.E., O'Toole G.A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics // Microbiol. Mol Biol. Rev. - 2000. - Vol. 64. - P. 847-67.

90. Deng Y., Zhu Y., Wang P., Zhu L., Zheng J., Li R., Ruan L., Peng D., Sun M. Complete genome sequence of Bacillus subtilis BSn5, an endophytic bacterium of Amorphophallus konjac with antimicrobial activity for the plant pathogen Erwinia carotovora subsp. Carotovora II J. Bacteriol. - 2011. - Vol. 193, No. 8.-P. 2070-2071.

91. Ding Y., Wang J., Liu Y., Chen S. Isolation and identification of nitrogen-fixing bacilli from plant rhizospheres in Beijing region // J. Appl. Microbiol. -2005.-Vol. 99.-P. 1271-1281.

92. Dobbelaere S., Okon Y. The plant growth-promoting effect and plant responses // Associative and Endophytic Nitrogen-fixing Bacteria and Cyanobacterial Associations / Elmerich C., Newton W.E. - Springer, 2007. - P. 145-170.

93. Duponnois R., GarbayeJ. Mycorrhization helper bacteria associated with the Douglas fir Laccaria laccata symbiosis: effects in vitro and in glasshouse conditions // Ann. Sci. For. - 1991. - Vol. 48. - P. 239-251.

94. Dutta D., Gachhui R. Novel nitrogen-fixing Acetobacter nitrogenifigens sp. nov., isolated from Kombucha tea // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2006. - Vol. 56. - P. 1899-1903.

95. El-Komy H.M.A. Coimmobilization of Azospirillum lipoferum and Bacillus megaterium for successful phosphorus and nitrogen nutrition of wheat plants // Food Technol. Biotechnol. - 2004. - Vol. 43, No. 1. - P. 19-27.

96. Faisal M., Hasnain S. Growth stimulatory effect of Ochrobactrum intermedium and Bacillus cereus on Vigna radiata plants // Lett. Appl. Microbiol. - 2006. - Vol. 43, No. 4. - P. 461-466.

97. Fan B., Chen X.H., Budiharjo A., Bleiss W., Vater J., Borriss R. Efficient colonization of plant roots by the plant growth promoting bacterium Bacillus

amyloliquefaciens FZB42, engineered to express green fluorescent protein // J. Biotechnol. - 2011. - Vol. 151. - P. 303-311.

98. Fankem H., Nwaga D., Deubel A., Dieng L., Merbach W., Etoa F.X. Occurrence and functioning of phosphate solubilizing microorganisms from oil palm tree (Elaeis guineensis) rhizosphere in Cameroon // African J. Biotechnol. - 2006. - Vol. 56. - P. 2450-2460.

99. Farag M.A., Ryu C.-M., Sumner L.W., Paré P.W. GC-MS SPME profiling of rhizobacterial volátiles reveals prospective inducers of growth promotion and induced systemic resistance in plants // Phytochemistry. - 2006. - Vol. 67. - P. 2262-2268.

100. Figueiredo M.V.B., Seldin L., Araujo F.F., Mariano R.L.R. Plant growth promoting rhizobacteria: fundamentals and applications // Plant growth and health promoting bacteria, microbiology monographs 18 / Maheshwari D.K. (ed.). - Springer, 2010.

101. Finking R., Marahiel M.A. Biosynthesis of nonribosomal peptides 1 // Annu. Rev. Microbiol. - 2004. - Vol. 58. - P. 453-488.

102. Forchetti G., Masciarelli O., Alemano S., Alvarez D., Abdala G. Endophytic bacteria in sunflower (Helianthus annuus L.) isolation, characterization, and production of jasmonates and abscisic acid in culture medium // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2007. - Vol. 76. - P. 1145-1152.

103. Frey-Klett P., Carbaye J., Tarrka M. The mycorrhiza helper bacteria revisited // New phytologist. - 2007. - Vol. 176. - P. 22-36.

104. Ghosh S., Penterman J.N., Little R.D., Chavez R, Glick B.R. Three newly isolated plant growth-promoting bacilli facilitate the seedling growth of canola, Brassica campestris II Plant Physiol. Biochem. - 2003. - Vol. 41. - P. 277-281.

105. Girgis M.G.Z., Khalil H.M.A., Sharaf M. S. In vitro evaluation of rock phosphate and potassium solubilizing potential of some Bacillus strains // Aust. J. Basic & Appl. Sci. - 2008. - Vol. 2, No. 1. - P. 68-81.

106. Gong M., Wang J., Zhang J., Yang H., Lu X. Study of the antifungal ability of Bacillus subtilis strain PY-1 in vitro and identification of its antifungal

substance (iturin A) // Acta Biochim. Biophys. Sincia. - 2006. - Vol. 38. - P. 233-240.

107. González L.F., Perez F., Rojas M.C. Indole-3-acetic acid control on acidic oat cell wall peroxidases // J. Plant Growth Regul. - 1999. - Vol. 18. - P. 2531.

108. Gupta R., Singal R., Shanker A., Kuhad R.C., Saxena R.K. A modified plate assay for screening phosphate solubilizing microorganisms // Gen. Appl. Microbiol. - 1994. - Vol. 40. - P. 255-260.

109. Gutierrez-Manero F.J., Ramos-Solano B., Probanza A., Mehouachi J., Tadeo F.R., Talon M. The plant-growth promoting rhizobacteria Bacillus pumilus and Bacillus licheniformis produce high amounts of physiologically active gibberellins // Physiol. Plant. - 2001. - Vol. 111. - P. 206-211.

110. Gyaneshwar P., Naresh Kumar G., Parekh L.J., Poole P.S. Role of soil microorganisms in improving P nutrition of plants // Plant Soil. - 2002. - Vol. 238.-P. 83-93.

111. Hager A. Role of the plasma membrane H+-ATPase in auxin-induced elongation growth: historical and new aspects // J. Plant Res. - 2003. - Vol. 116.-P. 483-505.

112. Hallman J., Berg G. Spectrum and population dynamic of bacterial root endophytes // Microbial root endophytes / Schulz B., Boyle C., Sieber T.N. -Springer-Verlag, 2006. - P. 15-31.

113. Hallman J., Quadt-Hallman A., Mahaffee W.F., Kloepper J.W., Bacterial endophytes in agricultural crops // Can. J. Microbiol. - 1997. - Vol. 43. - P. 895-914.

114. Hammami I., Rhouma A., Jaouadi B., Rebai A., Nesme X. Optimization and biochemical characterization of a bacteriocin from a newly isolated Bacillus subtilis strain 14B for biocontrol of Agrobacterium spp. strains // Lett. Appl. Microbiol. - 2009. - Vol. 48, No. 2. - P. 253-260.

115. Hammond J.P., White P.J. Sucrose transport in the phloem: integrating root responses to phosphorus starvation // J. Exp. Bot. - 2008. - Vol. 59. - P. 93109.

116. Hamoen L.W., Venema G., Kuipers O.P. Controlling competence in Bacillus subtilis: shared use of regulators // Microbiology. - 2003. - Vol. 149, No. 1. -P. 9-17.

117. Hardoim P.R., van Overbeek L.S., van Elsas J.D. Properties of bacterial endophytes and their proposed role in plant growth // Trends Microbiol. - 2008. -Vol. 16.-P. 463^171.

118. Hartwig U.A., Joseph C.M., Phillips D.A. Flavonoids released naturally from alfalfa seeds enhance growth rate of Rhizobium meliloti' II Plant Physiol. -1991.-Vol. 95.-P. 797-803.

119. Hayat R., Ali S., Amara U., Khalid R., Ahmed I. Soil beneficial bacteria and their role in plant growth promotion: a review // Ann. Microbiol. - 2010. - Vol. 60.-P. 579-598.

120. Hennequin C., Lalanne V., Daudon M., Lacour B., Drueke T. A new approach to studying inhibitors of calcium oxalate crystal growth // Urological Research. - 1993. - Vol. 21. - P. 101-108.

121. Hervieux V., Yaganza E.S., Arul J., Tweddell R.J. Effect of organic and inorganic salts on the development of Helminthosporium solani, the causal agent of potato silver scurf// Plant Dis. - 2002. - Vol. 86. - P. 1014-1018.

122. Hinsinger P. Bioavailability of soil inorganic P in the rhizosphere as affected by root-induced chemical changes: a review // Plant and Soil. - 2001. - Vol. 237.-P. 173-195.

123. Hontzeas N., Zoidakis J., Glick B.R., Abu-Omar M.M. Expression and characterization of 1-aminocyclopropane-l-carboxylate deaminase from the

rhizobacterium Pseudomonas putida UW4: a key enzyme in bacterial plant growth promotion // Biochim. Biophys. Acta. - 2004. - Vol. 1703. - P. 11-19.

124. Huang C.J., Chen C.Y. High-level expression and characterization of two chitinases, ChiCH and ChiCW, of Bacillus cereus 28-9 in Escherichia coli II Biochem. Biophys. Res. Commun. - 2005. - Vol. 327. - P. 8-17.

125. Huang L. F., Fang B. P., Luo Z. X., Chen J. Y., Zhang X. J., Wang Z. Y. First report of bacterial stem and root rot of sweetpotato caused by a Dickeya sp. (Erwinia chrysanthemi) in China // Plant Dis. - 2010. - Vol. 94, No 12. - P. 1503.

126. Idris E.E., Iglesias D.J., Talon M., Borriss R. Tryptophan-dependent production of indole-3-acetic acid (IAA) affects level of plant growth promotion by Bacillus amyloliquefaciens FZB42 // Mol. Plant-Microbe Interact. - 2007. - Vol. 20, No. 6. - P. 619-626.

127. Idris R., Trifonova R., Puschenreiter M., Wenzel W.W., Sessitsch A. Bacterial communities associated with plants of the Ni hyperaccumulator Thlaspi goesingense II Appl. Environ. Microbiol. - 2004. - Vol. 70, No. 5. - P. 2667-2677.

128. Idriss E.E., Makarewicz O., Farouk A., Rosner K., Greiner R., Bochow H., Richter Т., Borriss R. Extracellular phytase activity of Bacillus amyloliquefaciens FZB45 contributes to its plantgrowth-promoting effect // Microbiology. - 2002. - Vol. 148. - P. 2097-2109.

129. Ito T. Enzymatic determination of itoic acid, a Bacillus subtilis siderophore, and 2,3-dihydroxybenzoic acid // Appl. Environ. Microbiol. - 1993. - Vol. 59, No. 7.-P. 2343-2345.

130. Jack R. W., Bierbaum G., Sahl H.-G. Lantibiotics and related peptides / Berlin: Springer. -1998.

131. Jacobson C.B., Pasternak J.J., Glick B.R. Partial purification and characterization of ACC deaminase from the plant growth promoting rhizobacterium Pseudomonas putida GR12-2 // Can. J. Microbiol. - 1994. -Vol. 40.-P. 1019-1025.

132. Jenssen H., Hammil P., Hancock R.E. Peptide antimicrobial agents I I Clin. Microbiol. Rew. - 2006. - Vol. 19, № 3. - P. 491-511.

133. Jeun Y.C., Park K.S., Kim C.H., Fowler W.D., Kloepper J.W. Cytological observations of cucumber plants during induced resistance elicited by rhizobacteria // Biological Control - 2004. - Vol. 29. - P. 34-42.

134. Jezequel K., Perrin L., Lebeau T. Bioaugmentation with a Bacillus sp. to reduce the phytoavailable Cd of an agricultural soil: comparison of free and immobilized microbial inocula // Chemosphere. - 2005. - Vol. 59. - P. 1323— 1331.

135. Jones D. L. Organic acids in the rhizosphere - a critical review // Plant Soil. - 1998. - Vol. 205. - P. 25^4.

136. Joo G.-J., Kim, Y.M., Kim, J.T., Rhee, I., Kim, J., Lee, I. Gibberellins-producing rhizobacteria increase endogenous gibberellins content and promote growth of red peppers // J. Microbiol. - 2005. - Vol. 43, No. 6. - P. 510-515.

137. Jorquera M.A., Crowley D.E., Marschner P., Greiner R., Fernández M.T., Romero D., Menezes-Blackburn D., Mora M.L. Identification of p-propeller phytase-encoding genes in culturable Paenibacillus and Bacillus spp. from the rhizosphere of pasture plants on volcanic soils // FEMS Microbiology Ecology. -2011.-Vol. 75.-P. 163-172.

138. Jourdan E., Henry G., Duby F., Dommes J., Barthelemy J.P., Thonart P., Ongena M. Insights into the defense-related events occurring in plant cells following perception of surfactin-type lipopeptide from Bacillus subtilis II Mol. Plant Microbe Interact. - 2009. - Vol. 22. - P. 456-468.

139. Kamilova F., Kravchenko, L. V., Shaposhnikov, A. I., Azarova, T., Makarova, N., Lugtenberg, B. Organic asids, sugars and L-tryptophan in exudates of vegetables growing on stonewool and their effects on activities of rhizosphere bacteria // Mol. Plant-Microbe Interact. - 2006. - Vol. 19. - P. 250-256.

140. Kerovuo J., Lauraeus M., Nurminen P., Kalkkinen N., Apajalahti J. Isolation characterization, molecular gene cloning, and sequencing of a novel phytase

from Bacillus subtilis II Appl. Environ. Microbiol. - 1998. - Vol. 64. - P. 2079-2085.

141. Kim P.I., Chung K. Production of an antifungal protein for control of Colletotrichum lagenarium by Bacillus amyloliquefaciens MET0908 // FEMS Microbiol. Lett. - 2004. - Vol. 234. - P. 177-183.

142. Kim Y.S. Malonate metabolism: biochemistry, molecular biology, physiology, and industrial application // J. Biochem. Mol. Biol. - 2002. - Vol. 35,No. 5.-P. 443-451.

143. Kim Y. S., Chae H.Z. A model of nitrogen flow by malonamate in Rhizobium japonicum—soybean symbiosis // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1990. -Vol. 169.-P. 692-699.

144. Kloepper J. W., Gutiiirrez-Estrada A., Mclnroy J. A. Photoperiod regulates elicitation of growth promotion but not induced resistance by plant growth-promoting rhizobacteria // Can. J. Microbiol. - 2007. - Vol. 53. - P. 159-167.

145. Kloepper J. W., Schippers B., Bakker P. A. H. M. Proposed elimination of the term endorhizosphere // Phytopathol. - 1992. - Vol. 82. - P. 726-727.

146. Kloepper J.W., Leong J., Teintze M., Schroth M.N. Enhanced plant growth by siderophores produced by plant growth-promoting rhizobacteria // Nature. -1980. - Vol. 286. - P. 885-886.

147. Kloepper J.W., Ryu C.-M. Bacterial endophytes as elicitors of inducted systemic resistance // Microbial root endophytes / Schulz B., Boyle C., Sieber T.N. - Springer-Verlag, 2006.

148. Kloepper J.W., Schroth M.N. Plant growth promoting rhizobacteria on radishes // Proceedings of the 4th International Conference on Plant Pathogenic Bacteria, Angers, France. - 1978. - Vol. 2. - P. 879-882.

149. Knoester M., Pieterse C.M.J., Bol J.F., van Loon L.C. Systemic resistance in Arabidopsis induced by rhizobacteria requires ethylene - dependent signaling at the site of application // Mol. Plant-Microbe Interact. - 1999. - Vol. 12. - P. 720-727.

150. Koike S. T., Henderson D. M., Azad H. R., Cooksey D. A., Little E. L. Bacterial blight of broccoli raab: A new disease caused by a pathovar of Pseudomonas syringae // Plant Dis. - 1998. - Vol. 82. - P. 727-731.

151. Koumoutsi A., Chen X.-H., Henne A., Leisegang H., Hitzeroth G., Franke P., Vater J., Borriss R. Structural and functional characterization of gene clusters directing nonribosomal synthesis of bioactive cyclic lypopeptides in Bacillus amyloliquefaciens strain FZB42 / J. Bacteriol. - 2004. - Vol. 186, No. 4.-P. 1084-1096.

152. Koumoutsi A., Chen X.-H., Vater J., Borriss R. DegU and YczE positively regulate the synthesis of bacillomycin D by Bacillus amyloliquefaciens strain FZB42 // Appl. Environ. Microbiol. - 2007. - Vol. 73, No. 21. - P. 6953-6964.

153. Lacava .P.T., Araûjo W.L., Azevedo J.L. Evaluation of endophytic colonization of Citrus sinensis and Catharanthus roseus seedlings by endophytic bacteria // J. Microbiol. - 2007. - Vol. 45, No. 1. - P. 11-14.

154. Lambers H., Chapin F.S., Pons T.L. Plant Physiological Ecology. Second Edition. - Springer, 2008. - 604 p.

155. Lambers H., Shane M.W., Cramer M.D., Pearse S.J., Veneklaas E.J. Root structure and functioning for efficient acquisition of phosphorus: matching morphological and physiological traits // Ann. Bot. - 2006. - Vol. 98. - P. 693713.

156. Lang S. Biological amphiphiles (microbial biosurfactants) // Cur. Opin. Colloid Interface Sci. - 2002. - Vol. 7, No. 1-2. - P. 12-20.

157. Lazarovits G., Nowak J. Rhizobacteria for improvement of plant growth and establishment // Hortiscience. - 1997. - Vol. 32. - P. 188-192.

158. Leclère V., Marti R., Béchet M., Fickers P., Jacques P. The lipopeptides mycosubtilin and surfactin enhance spreading of Bacillus subtilis strains by their surface-active properties // Arch. Microbiol. - 2006. - Vol. 186. - P. 475483.

159. Leelasuphakul W., Sivanunsakul P., Phongpaichit S. Purification, characterization and synergistic activity of _-l,3-glucanaseand antibiotic extract

from an antagonistic Bacillus subtilis NSRS 89-24 against rice blast and sheath blight // Enzyme Microb. Technol. - 2006. - Vol. 38. - P. 990-997.

160. Li J., Copeland L. Role of malonate in chickpea // Phytochemistry. - 2000. -Vol. 54.-P. 585-589.

161. Li J., Glick B.R. Transcriptional regulation of the Enterobacter cloacae UW4 1-aminocyclopropane-l-carboxylate (ACC) deaminase gene (acdS) // Can. J. Microbiol. - 2001. - Vol. 47. - P. 359-367.

162. Lima A.O.S., Quecine M.C., Fungaro M.H.P., Andreote F.D., Maccheroni Jr W., Araújo W.L., Silva-Filho M.C., Pizzirani-Kleiner A.A., Azevedo J.L. Molecular characterization of a /?-1,4-endoglucanase from an endophytic Bacillus pumilus strain // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2005. - Vol. 68. - P. 57-65.

163. Lin L., Qiao Y.-S., Ju Z.-Y., Ma C.-W., Liu Y.-H., Zhou Y.-J., Dong H.-S. Isolation and characterization of endophytic Bacillus subtilis Jaas edl antagonist of eggplant verticillium wilt // Biosci. Biotechnol. Biochem. - 2009. - Vol. 73, No. 7. - P. 1489-1493.

164. Lindblow-Kull C., Shrift A., Gherna R.L. Aerobic, selenium-utilizing Bacillus isolated from seeds of Astragalus crotalariae II Appl. Environ. Microbiol. - 1982. - Vol. 44, No. 3. - P. 737-743.

165. Llama-Palacios A., López-Solanilla E., Rodriguez-Palenzuela P. Role of the PhoP-PhoQ system in the virulence of Erwinia chrysanthemi strain 3937: involvement in sensitivity topPlant antimicrobial peptides, survival at acid pH, and regulation of pectolytic enzymes // J. Bacteriol. - 2005. - Vol. 187, No. 6. -P.2157-2162.

166. Lombo F., Pfeifer B., Leaf T„ Ou S., Kim Y.S., Cane D.E., Licari P., Khosla C. Enhancing the atom economy of polyketide biosynthetic processes through metabolic engineering // Biotechnol. Prog. - 2001. - Vol. 17. - P. 612-617.

167. Loper J.E., Henkels M.D. Utilization of heterologous siderophores Enhances levels of iron available to Pseudomonas putida in the rhizosphere // Appl. Environ. Microbiol. - 1999. - Vol. 65, No. 12. - P. 5357-5363.

168. Lopez-Bucio J., Campos-Cuevas J.C., Hernández-Calderón E., Velásquez-Becerra C., Farias-Rodriguez R., Macías-Rodríguez L.I., Valencia-Cantero E. Bacillus megaterium rhizobacteria promote growth and alter root-system architecture through an auxin- and ethylene-independent signaling mechanism in Arabidopsis thaliana II Mol. Plant-Microbe Interact. - 2007. - Vol. 20. - P. 207-217.

169. López-Bucio J., Campos-Cuevas J.C., Hernández-Calderón E., Velásquez-Becerra C., Farias-Rodriguez R., Valencia-Cantero E. Bacillus megaterium rhizobacteria promote growth and alter root-system architecture through an auxin- and ethylene-independent signaling mechanism in Arabidopsis thaliana II Mol. Plant-Microbe Interact. - 2007. - Vol. 20, No 2. - P. 207-217.

170. Luo S., Xu T., Chen L., Chen J., Rao C., Xiao X., Wan Y., Zeng G., Long F., Liu C., Liu Y. Endophyte-assisted promotion of biomass production and metal-uptake of energy crop sweet sorghum by plant-growth-promoting endophyte Bacillus sp. SLS18 // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2011. - Vol. 26.-P. 1-9.

171. Makarewicz O., Dubrac S., Msadek T., Borriss R. Dual role of the PhoP approximately P response regulator: Bacillus amyloliquefaciens FZB45 phytase gene transcription is directed by positive and negative interactions with the phyC promoter // J. Bacteriol. - 2006. - Vol. 188, No. 19. - P. 6953-6965.

172. Malfanova N., Kamilova F., Validov S., Shcherbakov A., Chebotar V., Tikhonovich I., Lugtenberg B. Characterization of Bacillus subtilis HC8, a novel plant-beneficial endophytic strain from giant hogweed // Microb. Biotechnol. - 2011. - Vol. 4, Issue 4. - P. 523-532.

173. Mamatha G., Bagyaraj D.J., Jaganath S. Inoculation of field-established mulberry and papaya with arbuscular mycorrhizal fungi and a mycorrhiza helper bacterium // Mycorrhiza. - 2002. - Vol. 12. - P. 313-316.

174. Manjula K., Kishore G. K., Podile A.R. Whole cells of Bacillus subtilis AF 1 proved more effective than cell-free and chitinase-based formulations in

biological control of citrus fruit rot and groundnut rust // Can. J. Microbiol. -2004. - Vol. 50, No. 9. - P. 737-744.

175. Mano H., Morisaki H. Endophytic bacteria in the rice plant // Microbes and Environments. - 2008. - Vol. 23, No. 2. - P. 109-117.

176. Mantelin S., Touraine B. Plant growth-promoting bacteria and nitrate availability: impact on root development and nitrate uptake // J. Exp. Bot. -2004. - Vol. 55, No. 394. - P. 27-34.

177. Marulanda A., Azcon R., Chaumont F., Ruiz-Lozano J.M., Aroca R. Regulation of plasma membrane aquaporins by inoculation with a Bacillus megaterium strain in maize {Zea mays L.) plants under unstressed and salt-stressed conditions // Planta. - 2010. - Vol. 232, No. 2. - P. 533-543.

178. May J. J., Wendrich T.M., Marahiel M.A. The dhb operon of Bacillus subtilis encodes the biosynthetic template for the catecholic siderophore 2,3-dihydroxybenzoate-glycine-threonine trimeric ester bacillibactin // J. Biol. Chem. - 2001. - Vol. 276. - P. 7209-7217.

179. Mehta S., Nautiyal C.S. An efficient method for quantitative screening of phosphate-solubilizing bacteria // Curr. Microbiol. - 2001. - Vol. 43. - P. 5156.

180. Melnick R.L., Zidac, N.K., Bailey B.A., Maximova S.N., Guiltinan M., Backman P.A., Bacterial endophytes: Bacillus spp. from annual crops as potential biological control agents of black pod rot of cacao // Biological Control. - 2008. Vol. 46. - P. 46-56.

181. Miethke M., Klotz O., Linne U., May J.J., Beckering C.L., Marahiel M.A. Ferri-bacillibactin uptake and hydrolysis in Bacillus subtilis II Mol. Microbiol. -2006.-Vol. 61.-P. 1413-1427.

182. Mirik M., Aysan Y., Cetinkaya-Yildiz R., Sahin F., Saygili H. Watermelon as a new host of Pseudomonas viridiflava, causal agent of leaf and stem necrosis, discovered in Turkey // Plant Dis. - 2004. - Vol. 88, No. 8. - P. 907.

183. Moura R.S., Martin J.F., Martin A., Liras P. Substrate analysis and molecular cloning of the extracellular alkaline phosphatase of Streptomyces griseus II Microbiology. - 2001. - Vol. 147. - P. 1525-1533.

184. Munimbazi C., Bullerman L. B. Inhibition of aflatoxin production of Aspergillus parasiticus NRRL 2999 by Bacillus pumilus II Mycopathologia. -1998.-Vol. 140.-P. 163-169.

185. Nagorska K., Bikowski M., Obuchowski M. Multicellular behaviour and production of a wide variety of toxic substances support usage of Bacillus subtilis as a powerful biocontrol agent // Acta Biochimica Polonica. - 2007. -Vol. 54, No. 3. - P. 495-508.

186. Nair J.R., Singh G., Sekar V. Isolation and characterization of a novel Bacillus strain from coffee phyllosphere showing antifungal activity // J. Appl. Microbiol. - 2002. - Vol. 93. - P. 772-780.

187. Nam M.H., Park M.S., Kim H.G., Yoo SJ. Biological control of strawberry Fusarium wilt caused by Fusarium oxysporum f. sp. fragariae using Bacillus velezensis BS87 and RK1 formulation // J. Microbiol. Biotechnol. - 2009. -Vol. 19, No. 5.-P. 520-524.

188. Newman L., Reynolds C.M. Bacteria and phytoremediation: new uses for endophytic bacteria in plants // Trends Biotechnol. - 2005. - Vol. 23, No. 1. -P. 6-8.

189. Niu D.-D, Liu H.-X., Jiang C.-H., Wang Y.-P., Wang Q.-Y, Jin H-L., Guo J-H. The plant growth-promoting rhizobacterium Bacillus cereus AR156 induces systemic resistance in Arabidopsis thaliana by simultaneously activating salicylate- and jasmonate/ethylene-dependent signaling pathways // Mol. Plant-Microbe Interact. - 2011. - Vol. 24, No. 5. - P. 533-542.

190. Olivier C., MacNeil C.R., Loria R. Application of organic and inorganic salts to field-grown potato tubers can suppress silver scurf during potato storage // Plant Dis.- 1999. -Vol. 83.-P. 814-818.

191. Ongena M., Jacques P. Bacillus lipopeptides: versatile weapons for plant disease biocontrol // Trends Microbiol. - 2008. - Vol. 16. - P. 115-125.

192. Ongena M., Jacques P., Toure Y., Destain J., Jabrane A., Thonart P. Involvement of fengycin-type lipopeptides in the multifaceted biocontrol potential of Bacillus subtilis II Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2005. - Vol. 69. -P. 29-38.

193. Ongena M., Jourdan E., Adam A., Paquot M., Brans A., Joris B., Arpigny J.-L., Thonart P. Surfactin and fengycin lipopeptides of Bacillus subtilis as elicitors of induced systemic resistance in plants // Environ. Microbiol. - 2007. - Vol. 9, No. 4. - P. 1084-1090.

194. Ortiz-Castro R., Valencia-Cantero E., López-Bucio J. Plant growth promotion by Bacillus megaterium involves cytokinin signaling // Plant Signal Behav. - 2008. - Vol. 3, No. 4. - P. 263-265.

195. Pal K.K., Tila K.V.B.R., Saxena A.K., Dey R., Singh C.S. Suppression of maize root diseases caused by Macrophomina phaseolina, Fusarium moniliforme and Fusarium graminearum by plant growth promoting rhizobacteria // Microbiol. Res. - 2001. - Vol. 156. - P. 209-223.

196. Palazzini J. M., Ramirez M. L., Torres A. M., Chulze S. N. Potential biocontrol agents for Fusarium head blight and deoxynivalenol production in wheat // Crop Prot. - 2007. - Vol. 26. - P. 1702-1710.

197. Pang J., Cuin T., Shabala L., Zhou M., Mendham N., Shabala S. Effect of secondary metabolites associated with anaerobic soil conditions on ion fluxes and electrophysiology in barley roots // Plant Physiol. - 2007. - Vol. 145. - P. 266-276.

198. Patel H., Tscheka C., Edwards K., Karlsson G., Heerklotz H. All-or-none membrane permeabilization by fengycin-type lipopeptides from Bacillus subtilis QST713 // Biochimica et Biophysica Acta - Biomembranes. — 2011. — Vol. 1808.-P. 2000-2008.

199. Patten C.L., Glick B.R. Bacterial biosynthesis of indole-3-acetic acid // Can. J. Microbiol. - 1996. - Vol. 42. - P. 207-220.

200. Patten C.L., Glick B.R. Role of Pseudomonas putida indoleacetic acid in development of the host plant root system // Appl. Environ. Microbiol. - 2002. -Vol. 68.-P. 3795-3801.

201. Payne M.S., Jackson E.N. Use of alkaline phosphatase fusion to study protein secretion in Bacillus subtilis II J. Bacteriol. - 1991. - Vol. 173. - P. 2278-2282.

202. Peck S., Kende H. Sequential induction of the ethylene biosynthetic enzymes by indole-3-acetic acid in etiolated peas // Plant Mol. Biol. - 1995. -Vol. 28.-P. 293-301.

203. Peer W.A., Brown D.E., Tague B.W., Muday G.K., Taiz L., Murphy A.S. Flavonoid accumulation patterns of transparent testa mutants of Arabidopsis II Plant Physiol. - 2001. - Vol. 126. - P. 536-548.

204. Penrose D.M., Glick, B.R. Methods for isolating and characterizing ACC deaminase-containing plant growth-promoting rhizobacteria // Physiol. Plant. -2003.-Vol. 118.-P. 10-15.

205. Pereg-Gerk L., Paquelin A., Gounon P., Kennedy I.R., Elmerich C. A transcriptional regulator of the LuxR-UhpA family, FlcA, controls flocculation and wheat root surface colonization by Azospirillum brasilense Sp7 // Mol. Plant-Microbe Interact. - 1998. - Vol. 11, No. 3. - P. 177-187.

206. Pereira P., Nesci A., Etcheverry M. Effects of biocontrol agents on Fusarium verticillioides count and fumonisin content in the maize agroecosystem: Impact on rhizospheric bacterial and fungal groups // Biological Control. - 2007. -Vol. 42.-P. 281-287.

207. Pérez-García A, Romero D, de Vicente A. Plant protection and growth stimulation by microorganisms: biotechnological applications of Bacilli in agriculture // Curr. Opin. Biotechnol. - 2011. - Vol. 22, No. 2. - P. 187-193.

208. Pieterse C.M.J., Van Wees S.C.M., Hoffland E., Van Pelt J.A., Van Loon L.C. Systemic resistance in Arabidopsis induced by biocontrol bacteria is independent of salicylic acid accumulation and pathogenesis - related gene expression // The Plant Cell. - 1996. - Vol. 8. - P. 1225-1237.

209. Pieterse C.M.J., van Wees S.C.M., van Pelt J.A., Knoester M., Laan R., Gerrits H., Weisbeek P.J., van Loona L.C. A novel signaling pathway controlling induced systemic resistance in Arabidopsis II The Plant Cell. -1998.-Vol. 10.-P. 1571-1580.

210. Plassard C., Dell B. Phosphorus nutrition of mycorrhizal trees // Tree Physiol. - 2010. - Vol. 30. - P. 1129-1139.

211. Popova T.N., Pinheiro de Carvalho M.A. Citrate and isocitrate in plant metabolism // Biochim. Biophys. Acta. - 1998. - Vol. 1364, No. 3. - P. 307325.

212. Pradhan N., Sukla L.B. Solubilization of inorganic phosphates by fungi isolated from agriculture soil // African J. Biotechnol. - 2006. - Vol. 5. - P. 850-854.

213. Puente M.E., Li C.Y., Bashan Y. Endophytic bacteria in cacti seeds can improve the development of cactus seedlings // Environ. Expt. Bot. - 2009. -Vol. 66. - P. 402-408.

214. Puente M.E., Li C.Y., Bashan Y. Rock-degrading endophytic bacteria in cacti // Environ. Exp. Bot. - 2009. - Vol. 66. - P. 389-401.

215. Rajendran L., Samiyappan R. Endophytic Bacillus species confer increased resistance in cotton against damping off disease caused by Rhizoctonia solani II Plant Pathol. J. - 2008. - Vol. 7. - P. 1-12.

216. Rajkumar M., Ma Y., Freitas H. Characterization of metal-resistant plant-growth promoting Bacillus weihenstephanensis isolated from serpentine soil in Portugal // J. Basic Microbiol. - 2008. - Vol. 48. - P. 500-508.

217. Rashedul I.M., Madhaiyan M., Boruah H.P.D., Yim W., Lee G., Saravanan V.S., Fu Q., Hu H., Sa T. Characterization of plant growth-promoting traits of free-living diazotrophic bacteria and their inoculation effects on growth and nitrogen uptake of crop plants // J. Microbiol. Biotechnol. - 2009. - Vol. 19, No. 10.-P. 1213-1222.

218. Reddy K.R.N., Farhana N.I., Salleh B., Oliveira C.A.F. Microbiological control of mycotoxins: present status and future concerns // Current Research,

Technology and Education Topics in Applied Microbiology and Microbial Biotechnology / Méndez-Vilas A. - Formatex, 2010. - P. 1078-1086.

219. Reiter B., Pfeifer U., Schwab H., Sessitsch A. Response of endophytic bacterial communities in potato plants to infection with Erwinia carotovora subsp. Atrospetica II Appl. Environ. Microbiol. - 2002. - Vol. 68. - P. 22612268.

220. Reva O.N., Dixelius C., Meijer J., Priest F.G. Taxonomic characterization and plant colonizing abilities of some bacteria related to Bacillus amyloliquefaciens and Bacillus subtilis II FEMS Microbiol. Ecol. - 2004. -Vol. 48. - P. 249-259.

221. Richardson A.E., Simpson R.J. Soil microorganisms mediating phosphorus availability update on microbial phosphorus // Plant Physiol. - 2011. - Vol. 156, No. 3.-P. 989-996.

222. Rodriguez H., Fraga R., Gonzalez T., Bashan Y. Genetic of phosphate solubilization and its potencial applications for improving plant growth-promoting bacteria // Plant Soil. - 2006. - Vol. 287. - P. 15-21.

223. Romero D., Pérez-García A., Veening J.W., de Vicente A., Kuipers O.P. Transformation of undomesticated strains of Bacillus subtilis by protoplast electroporation // J. Microbiol. Methods. - 2006. - Vol. 66, No. 3. - P. 556559.

224. Rouached H., Arpat A.B., Poirier Y. Regulation of phosphate starvation responses in plants: signaling players and cross-talks // Mol Plant. - 2010. -Vol.3.-P. 288-299.

225. Rudrappa T., Biedrzycki M.L., Kunjeti S.G., Donofrio N.M., Czymmek K.J., Paré P.W., Bais H.P. The rhizobacterial elicitor acetoin induces systemic resistance in Arabidopsis thaliana II Communicative & Integrative Biology. -2010. - Vol. 3, No. 2. - P. 130-138.

226. Rudrappa T., Czymmek K.J., Paré P.W., Bais H.P. Root-secreted malic acid recruits beneficial soil bacteria // Plant Physiol. - 2008. - Vol. 148. - P. 15471556.

227. Ryan P.R., Delhaize E., Jones D.L. Function and mechanism of organic anion exudation from plant roots // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. -2001. - Vol. 52. - P. 527-560.

228. Ryu C.-M., Farag M.A, Hu C.-H., Reddy M.S., Wei H.-X., Paré P.W., Kloepper J.W. Bacterial volátiles promote growth in Arabidopsis II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2003. - Vol. 100. - P. 4927-4932.

229. Ryu C.-M., Farag M.A., Paré P.W., Kloepper J.W. Invisible signals from the underground: bacterial volátiles elicit plant growth promotion and induce systemic resistance // Plant Pathol. J. - 2005. - Vol. 21, No. 1. - P. 7-12.

230. Ryu, C.-M., Murphy J.F., Reddy M. S., Kloepper J.W. A two-strain mixture of rhizobacteria elicits induction of systemic resistance against Pseudomonas syringae and cucumber mosaic virus coupled to promotion of plant growth on Arabidopsis thaliana II J. Microbiol. Biotechnol. - 2007. - Vol. 17, No. 2. - P. 280-286.

231. Salomone J.-Y., Szegedi E., Cobanov P., Otten L. Tartrate utilization genes promote growth of Agrobacterium spp. on grapevine // Mol. Plant-Microbe Interact. - 1998. - Vol. 11, No. 8. - P. 836-838.

232. Scholz R., Molohon K.J., Nachtigall J., Vater J., Markley A.L., Süssmuth, R.D., Mitchell D.A., Borriss R. Plantazolicin, a novel microcin B17/streptolysin S-like natural product from Bacillus amyloliquefaciens FZB42 // J. Bacteriol. -2011.-Vol. 22.-P. 215-224.

233. Selosse M.-A., Baudoin E., Vandenkoornhuyse P. Symbiotic microorganisms, a key for ecological success and protection of plants // C. R. Biologies. - 2004. - Vol. 327. - P. 639-648.

234. Selosse M.-A., Faccio A., Scappaticci G., Bonfante P. Chlorophyllous and achlorophyllous specimens of Epipactis microphylla (Neottieae, Orchidaceae) are associated with ectomycorrhizal septomycetes, including truffles I I Microb. Ecol. - 2004. - Vol. 47. - P. 416^126.

235. Sexton A.C., Howlett B.J. Parallels in fungal pathogenesis on plant and animal hosts // Eukaryotic Cell. - 2006. - Vol. 5, No. 12. - P. 1941-1949.

236. Sgroy V., Cassan F., Masciarelli O., Del Papa M.F., Lagares A., Luna V. Isolation and characterization of endophytic plant growth-promoting (PGPB) or stress homeostasis-regulating (PSHB) bacteria associated to the halophyte Prosopis strombulifera II Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2009. - Vol. 85, Issue 2.-P. 371-381.

237. Shanmugam V., Atri K., Gupta S., Kanoujia N., Naruka D. S. Selection and differentiation of Bacillus spp. antagonistic to Fusarium oxysporum f.sp. lycopersici and Alternaria solani infecting tomato // Folia Microbiologica. -2011.-Vol. 56.-P. 170-177.

238. Siddiqui Z.A. PGPR: prospective biocontrol agents of plant pathogens // PGPR: Biocontrol and biofertilization / Z.A. Siddiqui. - Netherlands, Springer,

2005.-P. 111-142.

239. Silk G.W., Matthews B.F. Soybean DapA mutations encoding lysine-insensitive dihydrodipicolinate synthase // Plant Mol. Biol. - 1997. - Vol. 33. -P. 931-933.

240. Silva V.N., Silva L.E.S.F., Figueiredo M.V.B. Co-inoculation of cowpea seeds with Bradyrhizobium and Paenibacillus and its efficiency on calcium, iron and phosphorus plant absorption // Pesquisa Agropecuaria Tropical. -

2006.-Vol. 36.-P. 95-99.

241. Snook M.E., Mitchell T.R., Hinton D.M., Bacon C.W. Isolation and characterization of Leu[7]-surfactin from the endophytic bacterium Bacillus mojavensis RRC 101, a biocontrol agent for Fusarium verticillioides II J. Agricult. Food Chem. - 2009. - Vol. 57. - P. 4287^1292.

242. Stajkovic O., Meyer S. de, Milicic B., Willems A., Delic D. Isolation and characterization of endophytic non-rhizobial bacteria from root nodules of alfalfa (Medicago sativa L.) // Botanica Serbica. - 2009. - Vol. 33, No. 1. - P. 107-114.

243. Stein T. Bacillus subtilis antibiotics: structures, syntheses and specific functions // Molecular Microbiology. - 2005. - Vol. 56. - P. 845-857.

244. Sturz A. V., Christie B. R., Matheson B. G., Nowak J. Biodiversity of endophytic bacteria which colonize red clover nodules, roots, stems and foliage and their influence on host growth // Biol. Fertil. Soils. - 1997. - Vol. 25. - P. 13-19.

245. Sturz A.V., Nowak J. Endophytic communities of Rhizobacteria and the strategies required creating yield-enhancing associations with crops // Appl. Soil Ecol.-2000.-Vol. 15.-P. 183-190.

246. Sun L., Lu Z., Bie X., Lu F., Yang S. Isolation and characterization of a co-producer of fengycins and surfactins, endophytic Bacillus amyloliquefaciens ES-2,from Scutellaria baicalensis Georgi // World J. Microbiol. Biotechnol. -2006. - Vol. 22. - P. 1259-1266.

247. Surette M.A., Sturz A.V., Lada R.R., Nowak J. Bacterial endophytes in processing carrots (Daucus carota L. var. sativus): their localization, population density, biodiversity and their effects on plant growth in vivo II Plant and Soil. -2003.-Vol. 253.-P. 1381-1390.

248. Szczech M.; Shoda M. The influence of Bacillus subtilis RB14-C on the development of Rhizoctonia solani and indigenous microorganisms in the soil // Can. J. Microbiol. - 2005. - Vol. 51, No. 5. - P. 405-411.

249. Sziderics A.H., Rasche F., Trognitz F., Sessitsch A., Wilhelm E. Bacterial endophytes contribute to abiotic stress adaptation in pepper plants (Capsicum annuum L.) // Can. J. Microbiol. - 2007. - Vol. 53, No. 11.-P. 1195-1202.

250. Taguchi G., Ubukata T., Nozue H., Kobayashi Y., Takahi M., Yamamoto H., Hayashida N. Malonylation is a key reaction in the metabolism of xenobiotic phenolic glucosides in Arabidopsis and tobacco // Plant J. - 2010. -Vol. 63.-P. 1031-1041.

251. Tinyiro S.E., Wokadala C., Xu D., Yao W. Adsorption and degradation of zearalenone by Bacillus strains // Folia Microbiol. (Praha). - 2011. - Vol. 56. -P. 321-327.

252. Tjamos E.C., Tsitsigiannis D.I., Tjamos S.E., Antoniou P.P., Katinakis P. Selection and screening of endorhizosphere bacteria from solarized soils as

biocontrol agent against Verticillium dahliae of solanaceous hosts // Europ. J. Soil. Biol. - 2004. - Vol. 110. - P. 35^14.

253. Toraya T., Oka T., Ando M., Yamanishi M. and Nishihara H. Novel pathway for utilization of cyclopropanecarboxylate by Rhodococcus rhodochrous II Appl. Environ. Microbiol. - 2004. - Vol. 70, No. 1. - P. 224228.

254. Touré Y., Ongena M., Jacques P., Guiro A., Thonart P. Role of lipopeptides produced by Bacillus subtilis GA1 in the reduction of grey mould disease caused by Botrytis cinerea on apple // J. Appl. Microbiol. - 2004. - Vol. 96. -P. 1151-1160.

255. Tye A.J., Siu F., Leung T., Lim B. Molecular cloning and the biochemical characterization of two novel phytases from B. subtilis 168 and B. licheniformis II Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2002. - Vol. 59, No. 2-3. - P. 190-197.

256. Van Loon J.C. Induced resistance // Mechanisms of Resistance to Plant Diseases / Slusarenko A.J., Fraser R.S.S., Van Loon J.C. (eds.). - Kluwer Academic publishers, Dordrecht, NL, 2000. - P. 521-574.

257. Van Loon L.C., Glick B.R. Increased plant fitness by rhizobacteria // Ecological Studies. - 2004. - Vol. 170. - P. 177-205.

258. Vansuyt G., Robin A., Briat J.-F., Curie C., Lemanceau P. Iron acquisition from Fe-pyoverdine by Arabidopsis thaliana II Molec. Plant-Microbe Interact. - 2007. - Vol. 20. - P. 441-447.

259. Vater J., Kablitz B., Wilde C., Franke P., Mehta N., Cameotra S.S. Matrixassisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry of lipopeptide biosurfactants in whole cells and culture filtrates of Bacillus subtilis C-l isolated from petroleum sludge // Appl. Environ. Microbiol. - 2002. - Vol. 68,No. 12.-P. 6210-6219.

260. Vavrina C.S., Roberts P.D., Kokalis-Burelle N., Ontermaa E.O. Greenhouse screening of commercial products marketed as systemic resistance and plant growth promotion inducers // Hort Science. - 2004. - Vol. 39, No. 2. - P. 433437.

261. Volpon H., Benson F., Lancelin J.M. NMR structure of antibiotics plipastations A and B from Bacillus subtilis inhibitors of phospholipase A2 // FEBS Lett. - 2000. - Vol. 485. - P. 76-80.

262. Wandersman C., Delepelaire P. Bacterial iron sources: from siderophores to hemophores // Annu. Rev. Microbiol.. - 2004. - Vol. 58. - P. 611-647.

263. Wani P.A., Khan M.S. Bacillus species enhance growth parameters of chickpea (Cicer arietinum L.) in chromium stressed soils // Food Chem. Toxicol. - 2010. - Vol. 48. - P. 3262-3267.

264. Wani P.A., Khan M.S., Zaidi A. Chromium reduction, plant growth-promoting potentials, and metal solubilization by Bacillus sp. isolated from alluvial soil // Curr. Microbiol. - 2007. - Vol. 54, No. 3. - P. 237-243.

265. Wasilewska A., Vlad F., Sirichandra C., Redko Y., Jammes F., Valon C., Frei dit Frey N.F., Leung J. An update on abscisic acid signaling in plants and more... // Mol. Plant. - 2008.-Vol. l.-P. 198-217.

266. Whipps, J.M. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere // J. Exp. Bot. - 2001. - Vol. 52. - P. 487-511.

267. Wu C.H., Bernard S.M., Andersen G.L., Chen W. Developing microbe-plant interactions for applications in plant-growth promotion and disease control, production of useful compounds, remediation and carbon sequestration // Microb. Biotechnol. - 2009. - Vol. 2. - P. 428^140.

268. Wu S.C., Cao Z., Li Z., Cheung K., Wong M. Effects of biofertilizer containing N-fixer, P and K solubilizers and AM fungi on maize growth: a greenhouse trial // Ganoderma. - 2005. - Vol. 125. - P. 155-166.

269. Yadav S., Kaushik R., Saxena A.K., Arora D.K. Diversity and phylogeny of plant growth-promoting bacilli from moderately acidic soil // J. Basic Microbiol. - 2011. - Vol. 51. - P. 98-106.

270. Yamakura F., Ikeda Y., Kimura K., Sasakawa T. Partial purification and some properties of pyruvate-aspartic semialdehyde condensing enzyme from sporulating Bacillus subtilis II J. Biochem. - 1974. - Vol. 76 No. 3. - P. 611621.

271. Yan Z., Reddy M.S., Yyu C.-M., Mclnroy J.A., Wilson M., and Kloepper J.W. Induced systemic protection against tomato late blight by plant growth-promoting rhizobacteria // Phytopathology. - 2002. - Vol. 92. - P. 1329-1333.

272. Yang J., Kloepper J.W., Ryu C.-M. Rhizosphere bacteria help plants tolerate abiotic stress // Trends Plant Sci. - 2009. - Vol. 14, No. 1. - P. 1-4.

273. Yasuta T., Satoh S., Minamisawa K. New assay for rhizobitoxine based on inhibition of 1-aminocyclopropane-l-carboxylate synthase // Appl. Environ. Microbiol. - 1999. - Vol. 65. - P. 849-852.

274. Yu X., Ai C., Xin L., Zhou G. The siderophore-producing bacterium, Bacillus subtilis CAS 15, has a biocontrol effect on Fusarium wilt and promotes the growth of pepper // Europ. J. Soil. Biol. - 2010. Vol. 34 - P. 1-8.

275. Yusran M.W., Roemheld V., Mueller T. The effects of plant growth promoting rhizobacteria on healthy plant growth of tomato affected by soil sickness // 19th World Congress of Soil Science, Soil Solutions for a Changing World. - 1-6 August 2010, Brisbane, Australia. - P. 144-147.

276. Zhang H., Kim M.S., Krishnamachari V., Payton P., Sun Y., Grimson M., Farag M.A., Ryu C.-M., Allen R., Meló I.S., et al. Rhizobacterial volatile emissions regulate auxin homeostasis and cell expansion in Arabidopsis II Planta. - 2007. - Vol. 226. - P. 839-851.

277. Zhang H., Sun Y., Xie X., Kim M.-S., Dowd S.E., Paré P.W. A soil bacterium regulates plant acquisition of iron via deficiency-inducible mechanisms // Plant J. - 2009. - Vol. 58, No, 4. - P. 568-577.

278. Zhang H., Xie X., Kim M.-S., Kornyeyev D.A., Holaday S., Paré P.W. Soil bacteria augment Arabidopsis photosynthesis by decreasing glucose sensing and abscisic acid levels in planta II Plant J. - 2008. - Vol. 56. - P. 264-273.

279. Zhang S., Moyne A.-L., Reddy M.S., Kloepper J.W. The role of salicylic acid in induced systemic resistance elicited by plant growth-promoting rhizobacteria against blue mold of tobacco // Biological control. - 2002. - Vol. 25.-P. 288-296.

280. Zhang H., Murzello С., Sun Y., Kim M.-S., Xie X., Jeter R.M., Zak J.C., Dowd S.E., Paré P.W. Choline and Osmotic-Stress Tolerance Induced in Arabidopsis by the Soil Microbe Bacillus subtilis (GB03) // Molec. Plant-Microbe Interact. - 2010. - Vol. 23, No. 8. - P. 1097-1104.

281. Zhao Z., Wang Q., Wang K., Brian K., Liu C., Cou Y. Study of the antifungal activity of Bacillus vallismortis ZZ 185 in vitro and identification of its antifungal components // Bioresour. Technol. - 2010. - Vol. 101. - P. 292297.

282. Ziedan E.H.E. Manipulating endophytic bacteria for biological control to soil borne diseases of peanut // J. Appl. Sci. Research. - 2006. - Vol. 2, No. 8. -P. 497-502.

283. Zou C., Li Z., Yu D. Bacillus megaterium XTBG34 promotes plant growth by producing 2-pentylfuran // J. Microbiol. - 2010. - Vol. 48, No. 4. - P. 460466.