Прогнозирование эффективности лечения урогенитального хламидиоза по показателям иммунного статуса тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.46, кандидат медицинских наук Миколаускас, Виталий Пронасович

• Миколаускас, Виталий Пронасович
• кандидат медицинских наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Миколаускас, Виталий Пронасович

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. История открытия Chlamydia trachomatis и характеристика возбудителя

1.2. Эпидемиология и распространенность урогенитального хлами-диоза

1.3. Иммунопатогенез урогенитального хламидиоза

1.4. Клиническая картина хламидийной инфекции

1.5. Лабораторные методы диагностики урогенитального хламидиоза

1.6. Иммунологические изменения у больных урогенитальным хла-мидиозом

ГЛАВА 2. КЛИНИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ОБСЛЕДОВАННЫХ БОЛЬНЫХ И ОПИСАНИЕ МЕТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Клиническая характеристика обследованных больных

2.2. Методы исследования

2.2.1. Общеклиническое исследование крови

2.2.2. Исследование клеточного звена иммунитета

2.2.3. Исследование гуморального звена иммунитета

2.2.4. Исследование показателей системы комплемента

2.2.5. Исследование фагоцитарной функции нейтрофилов 56 2.2.5. Исследование концентрации цитокинов

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ ИММУННОГО СТАТУСА У БОЛЬНЫХ УРОГЕНИТАЛЬНЫМ ХЛАМИДИОЗОМ

3.1. Общеклиническое исследование крови

3.2. Распределение больных урогенитальным хламидиозом по группам

3.3. Изменения показателей клеточного звена иммунитета у больных урогенитальным хламидиозом

3.4. Изменения показателей гуморального звена иммунитета у больных урогенитальным хламидиозом

3.5. Изменение показателей системы комплемента у больных уро-генитальным хламидиозом

3.6. Показатели фагоцитарной функции нейтрофилов у больных урогенитальным хламидиозом

3.7. Концентрация цитокинов в сыворотке крови больных урогенитальным хламидиозом

ГЛАВА 4. КОМПЛЕКСНАЯ ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА НАРУШЕНИЙ ИММУННОГО ОТВЕТА И ПРОГНОЗ ЭФФЕКТИВНОСТИ ЛЕЧЕНИЯ

4.1.Перечень иммунологических тестов для диагностики нарушений иммунного ответа у больных урогенитальным хламидиозом

4.2. Иммунологические критерии нарушения иммунного ответа у больных урогенитальным хламидиозом

4.3. Алгоритм комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа у больных урогенитальным хламидиозом

4.4. Эффективность алгоритма комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа у больных урогенитальным хламидиозом

4.5. Эффективность лечения больных урогенитальным хламидиозом по стандартной доксициклиновой схеме

4.6. Иммунологические критерии прогнозирования эффективности лечения урогенитального хламидиоза

4.7. Технологическая схема комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа и прогнозирования эффективности лечения больных урогенитальным хламидиозом

4.8. Эффективность технологической схемы комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа и прогнозирования эффективности лечения больных УГХ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Прогнозирование эффективности лечения урогенитального хламидиоза по показателям иммунного статуса»

Актуальность исследования Урогенитальная система человека подвержена действию значительного количества патогенных и условно-патогенных микроорганизмов бактериальной, протозойной и вирусной природы, среди них важное место занимают хламидии (Chlamydia trachomatis) [14, 15, 40].

В течение последнего десятилетия отмечается рост урогениталь-ного хламидиоза (УГХ). Последствия не выявленной и не леченой хла-мидийной инфекции наносят экономический и демографический ущерб обществу и оцениваются астрономическими цифрами. Например, в США экономические потери от хламидиоза оценены в 1 миллиард долларов в год. Значение урогенитального хламидиоза в инфекционной патологии человека определяется многоочаговыми поражениями мочеполовой сферы, в то же время увеличивается заболеваемость экстрагениталь-ными формами: проктитом, фарингитом, хламидийной пневмонией, конъюнктивитом, болезнью Рейтера [49, 70, 71].

Все острые инфекции хламидийной этиологии являются показанием для антибактериальной терапии. Выявление у женщин (особенно у беременных) бессимптомной хламидийной инфекции также является показанием для назначения антибиотиков. У мужчин лечение бессимптомной хламидийной инфекции оправдано из эпидемиологических соображений, для предотвращения дальнейшего распространения инфекции. Лечение бессимптомной хламидийной инфекции, безусловно, показано у лиц схламидийными артритами [41, 183].

Уже более 20 лет разрабатываются различные схемы антибактериальной терапии для лечения хронического урогенитального хламидиоза [7, 41, 48, 100, 126, 183]. Однако при всех формах хламидийной инфекции часто отмечаются рецидивы заболевания, основной причиной которых является состояние персистенции, характерное для хламидийной инфекции. При лечении рецидивирующего УГХ эффективность терапии, без использования иммуномодуляторов, редко превышает 50% [11-13, 39].

Данные литературы показывают ведущую роль иммунной системы в патогенезе хламидийной инфекции [2, 3, 13, 27, 92, 96, 124, 185, 202]. Еще большая роль принадлежит иммунной системе при персистенции возбудителя, когда устанавливается условное равновесие между микроорганизмом и макроорганизмом [57, 58, 81, 101, 152, 166, 172, 204].

Хламидии являются облигатными внутриклеточными бактериями, имеют две формы жизни: элементарные тельца (ЭТ) и ретикулярные тельца (РТ) обладают склонностью к персистенции. Различают две формы инфекции: продуктивный репликативный цикл и непродуктивная (персистирующая) инфекция.

Важную роль в защите от хламидийной инфекции играет Т-клеточное звено иммунитета, интерферон - гамма (IFN-y), моноциты, макрофаги и нейтрофилы [96, 195]. В обеспечении защиты организма от инфекции участвуют и специфические антитела, синтезируемые на такие антигены хламидий, как липополисахарид наружной мембраны (LPS), основной белок наружной мембраны (МОМР) и белок теплового шока (hsp 60).

Многие осложнения хламидийной инфекции сочетаются с нарушениями иммунной системы [92, 96, 203]. В ряде работ представлены данные об изменениях иммунного статуса у больных УГХ [1, 2, 3, 27, 30, 55, 89, 202]. При хламидийной инфекции происходят изменения как клеточного, так и гуморального звеньев иммунитета. УГХ сопровождается иммунными нарушениями у 82% женщин и 80% мужчин, которые характеризуются вариабельностью и неоднозначностью, что затрудняет клиническое применение результатов лабораторных иммунологических тестов [2, 13, 27, 202].

Под влиянием различных стресс-факторов (в том числе и неадекватное лечение) цикл развития хламидий может приостанавливаться на стадии РТ, при этом блокируется переход РТ в ЭТ, образуются так называемые «аберрантные» РТ, приводящие к персистирующей инфекции, с сохранением способности к реактивации. Наличие персистирующих форм хламидий в моноцитах и макрофагах объясняет развитие генерализованных ранних осложнений, внезапных рецидивов воспалительных заболеваний органов малого таза и синдрома Рейтера [151, 180]. Перси-стирование хламидий, по мнению большинства исследователей, является следствием формирования неадекватного или патологического иммунного ответа [124, 180]. Этот факт определяет необходимость использования различных схем лечения хронического УГХ, в том числе включающих и иммунокорригирующую терапию, так как при неадекватном лечении больных с продуктивной инфекцией возможно формирование персистирующей инфекции, приводящей к рецидивам заболевания и развитию различных осложнений [9,11-13, 24, 32, 38].

В настоящее время при лечении заболеваний, связанных с хроническими инфекциями, используются различные препараты, влияющие на иммунную систему. Естественно, что в каждой области медицины необходим тщательный анализ тех или иных методов лечения, в том числе применения иммунотерапии [29, 44, 46, 183].

Применение препаратов, влияющих на иммунную систему, обосновано только при наличии соответствующих медицинских показаний, а именно, при наличии иммунологических или клинических признаков иммунодефицита [32, 44]. Клиническими признаками иммунодефицита при УГХ можно считать длительное рецидивирующее течение заболевания, неэффективность этиологического лечения, рецидивирующее течение вирусных инфекций (герпетической, цитомегаловирусной, аденовирусной), наличие в организме больного очагов гнойной инфекции, наличие аллергических заболеваний [13, 44]. Наличие клинических признаков иммунодефицита, является прямым показанием для назначения имму-нокорригирующей терапии. При их отсутствии лабораторная диагностика нарушений иммунного ответа при УГХ вызывает большие трудности [32, 44].

Для клинициста иммунологическое обследование больного УГХ необходимо для обоснования назначения иммуномодулирующих препаратов, в частности, оказывающих стимулирующее действие на нейтро-фильно - фагоцитарное или Т-клеточное звено иммунитета. Необходимо осуществлять индивидуальный подбор иммуномодуляторов на основании исследования иммунного статуса больного [32, 39, 44, 45].

Вместе с тем, до настоящего времени не определен перечень иммунологических тестов для диагностики нарушений иммунного ответа, не установлены иммунологические критерии нарушения иммунного ответа и иммунологические критерии прогнозирования эффективности лечения урогенитального хламидиоза.

Эта проблема практически не отражена в отечественных научных публикациях и мало представлена в зарубежных публикациях. В связи с этим, важное практическое значение имеет изучение роли параметров иммунного статуса в диагностике нарушений иммунного ответа при уро-генитальном хламидиозе, разработка алгоритма комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа и определение иммунологических критериев нарушения иммунного ответа и прогнозирования эффективности лечения.

Таким образом, вопросы диагностики нарушений иммунного ответа и прогнозирования эффективности лечения для разработки оптимальной индивидуальной схемы лечения больных продуктивной инфекцией, с целью снижения риска развития персистирующей инфекции при хроническом УГХ, актуальны и во многом не решены. Их изучению и посвящено настоящее исследование.

Цель исследования

Разработать оптимальный комплекс иммунологических методов исследования для диагностики нарушений иммунного ответа и прогнозирования эффективности лечения у больных с хронической формой урогенитального хламидиоза.

Задачи исследования

1. Изучить направленность и выраженность нарушений иммунного ответа у больных хроническим урогенитальным хламидиозом.

2. Разработать алгоритм комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа у больных урогенитальным хламидиозом.

3. Оценить эффективность алгоритма комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа у больных урогенитальным хламидиозом.

4. Проанализировать прогностическую значимость иммунологических показателей и установить иммунологические критерии для прогноза эффективности лечения больных урогенитальным хламидиозом.

5. Разработать технологическую схему комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа и прогнозирования эффективности лечения больных урогенитальным хламидиозом.

6. Оценить эффективность технологической схемы комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа и прогнозирования эффективности лечения.

Научная новизна работы

1. Впервые разработан эффективный алгоритм комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа у больных хронической формой урогенитального хламидиоза.

2. Доказана необходимость включения в схему иммунологического обследования больного определения концентрации цитокинов в сыворотке крови для оценки состояния иммунной системы.

3. В работе впервые установлены иммунологические критерии для прогнозирования эффективности лечения больных урогенитальным хламидиозом, позволяющие до начала лечения по лабораторным данным дать прогноз эффективности терапии по стандартным схемам.

4. Впервые предложена технологическая схема комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа и прогнозирования эффективности лечения, позволяющая диагностировать нарушение иммунного ответа, установить тип иммунологического дефекта, оценить прогноз эффективности терапии и на основании лабораторных данных разработать индивидуальную схему лечения больного урогенитальным хламидиозом.

5. Установлено, что разработка индивидуальной схемы лечения на основании данных иммунологического обследования больного повышает эффективность терапии больных с хронической формой урогени-тального хламидиоза.

Практическая значимость работы

Определен минимально необходимый и вместе с тем отвечающий современным требованиям клинической практики комплекс иммунологических методов исследования, который позволяет достоверно диагностировать нарушение иммунного ответа, установить тип иммунологического дефекта, оценить прогноз эффективности лечения и на основании лабораторных данных разработать индивидуальную схему лечения больного урогенитальным хламидиозом.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Алгоритм комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа у больных хроническим урогенитальным хламидиозом должен включать в себя определение концентрации IFN-y, IL-4, IL-5, ILIO в сыворотке крови для оценки регуляции иммунного ответа, исследование клеточного звена иммунитета и фагоцитарной функции нейтро-филов для уточнения типа иммунологического дефекта.

2. Разработанный алгоритм обладает высокой чувствительностью и специфичностью в отношении выявления нарушений в иммунной системе у больных урогенитальным хламидиозом.

3. Определение показателей соотношений цитокинов (IFN-y/IL-4, IFN-y/IL-5, IFN-y/IL-10) позволяет дать прогноз эффективности лечения больного урогенитальным хламидиозом при использовании стандартных схем терапии.

4. Предложенная технологическая схема комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа и прогнозирования эффективности лечения позволяет разработать оптимальную индивидуальную схему лечения больного.

5. Разработка индивидуальной схемы лечения на основании данных иммунологического обследования больного повышает эффективность терапии.

Апробация работы

Апробация диссертации состоялась на объединенной научной конференции врачей Медицинского центра Банка России, Главного военного клинического госпиталя имени H.H. Бурденко, 3 Центрального военного клинического госпиталя имени A.A. Вишневского 24.06.2003 г. и на совместной научной конференции кафедры клинической лабораторной диагностики РМАПО, кафедры иммунологии РМАПО и сотрудников Медицинского центра Банка России 17.11.2003 г.

По теме диссертации опубликовано 6 печатных работ.

Реализация и внедрение результатов работы

Результаты исследования внедрены в Медицинском центре Банка России, Главном военном клиническом госпитале имени H.H. Бурденко,

25 Центральном военном клиническом госпитале РВСН, 5 Центральном военном клиническом госпитале ВВС.

Лабораторные исследования, связанные с решением поставленных задач, проведены на базе Медицинского центра Банка России.

Структура и объем диссертации Диссертация изложена на 138 страницах машинописного текста, иллюстрирована 16 рисунками, 26 таблицами и 3 схемами. Работа состоит из введения, пяти глав, выводов, практических рекомендаций и указателя литературы. Библиографический указатель включает 211 источников, из которых 52 отечественных авторов и 159 зарубежных авторов.

Заключение диссертации по теме «Клиническая лабораторная диагностика», Миколаускас, Виталий Пронасович

выводы

1. При хронической форме хламидийной моно инфекции нижних отделов мочеполовой системы у 63% больных диагностируется нарушение иммунного ответа на инфекцию, что выражается снижением концентрации IFN-y, снижением Т-хелперов (CD3+CD4+), повышением В-лимфоцитов (CD3"CD19+) и снижением фагоцитарной активности ней-трофилов.

2. Алгоритм комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа у больных урогенитальным хламидиозом должен включать в себя определение концентрации IFN-y, IL-4, IL-5 и IL-10 в сыворотке крови и показателей соотношений цитокинов IFN-y/IL-4, IFN-y/IL-5, IFN-y/IL-10 для оценки состояния иммунной системы.

3. При снижении концентрации IFN-y < 2,0 пг/мл и показателей соотношений цитокинов IFN-y/IL-4 < 0,80, IFN-y/IL-5 < 0,33, IFN-y/IL-10 < 0,61 для уточнения типа иммунологического дефекта необходимо дополнительно проводить исследование показателей клеточного звена иммунитета и фагоцитарной функции нейтрофилов.

4. Включение в схему иммунологического обследования больного определения концентрации IFN-y, IL-4, IL-5 и IL-10 в сыворотке крови повышает эффективность диагностики иммунологических нарушений, чувствительность и специфичность предложенного алгоритма составляет 94,8% и 94,1% соответственно.

5. При значениях показателей соотношений цитокинов (IFN-y/IL-4 > 0,80; IFN-y/IL-5 > 0,33; IFN-y/IL-10 > 0,61) прогноз эффективности лечения по стандартным схемам составляет более 95%, при показателях (<0,80; <0,33; <0,61) - менее 85% и при значениях данных показателей (<0,63; <0,15; <0,46) - менее 60%.

6. Разработанная технологическая схема комплексной лабораторной диагностики нарушений иммунного ответа и прогнозирования эффекгивности лечения больных урогенитальным хламидиозом позволяет снизить стоимость иммунологического обследования в 1,24 раза и разработать оптимальную индивидуальную схему лечения больного.

7. Эффективность лечения больных урогенитальным хламидиозом по индивидуальным схемам, разработанным на основании лабораторных данных полученных при обследовании по технологической схеме составила 94,3%, а при применении стандартных схем терапии - 80,4%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Проведенные нами исследования показали, что иммунологические исследования у больных УГХ необходимо проводить до начала всех видов терапии, так как назначение антибактериальной терапии и особенно препаратов влияющих на иммунную систему приводит к искажению результатов исследования и затрудняет их оценку.

2. При значениях концентрации 1Р1Ч-у > 2,0 пг/мл и показателей соотношений цитокинов 1Р1М-у/11-4 > 0,80, 1Р1\1-у/11-5 > 0,33, 1Р1\1-у/11--10 > 0,61 дополнительные исследования не проводятся, при снижении данных показателей необходимо исследование клеточного звена иммунитета и фагоцитарной функции нейтрофилов для уточнения типа иммунологического дефекта.

3. При разработке индивидуальной схемы лечения необходимо учитывать тип иммунологического дефекта и прогностический показатель эффективности лечения.

4. Индивидуальная схема лечения, разработанная на основании данных иммунологического обследования больного, должна быть комплексной и включать в себя иммунокоррекцию, антибактериальную терапию, системную энзимотерапию, восстановительное и местное лечение.

116

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Миколаускас, Виталий Пронасович, 2004 год

1. Анчупане И.С., Милтиньш А.П. Смешанные хламидийные инфекции и их иммунокоррекция // Вестн. дерматол. венерол. 2000. - № 1. - С. 28-30.

2. Базарный В.В., Левчик Н.К., Белых О.А. Особенности клеточного иммунитета больных урогенитальным хламидиозом в зависимости от уровня поражения половых путей // Иммунология. 2001. - № 3. - С. 45-46.

3. Базарный В.В., Левчик Н.К. Клиническая оценка фагоцитарных тестов при урогенитальном хламидиозе // Клиническая лабораторная диагностика. 2002. - № 2. - С. 21-24.

4. Брагина Е.Е., Дмитриев Г.А., Кисина В.И. Структурно функциональные особенности жизненного цикла хламидий in vivo // Вестн. дерматол. венерол. - 1995. - № 6. - С. 18-21.

5. Брагина Е.Е., Орлова О.Е., Дмитриев Г.А. Некоторые особенности жизненного цикла хламидий. Атипичные формы существования // ЗППП. 1998. - № 1. - С. 3-9.

6. Больч Б., Хуань К.Дж. Многомерные статистические методы для экономики // Пер. с англ. М.: Статистика, 1979. 317 с.

7. Васильев М.М., Николаева Н.В., Говорун В.М., Парфенова Т.М. Анти-биотикоустойчивость Chlamydia trachomatis как один из факторов неэффективности терапии при урогенитальной хламидийной инфекции // ИППП. 2003. - № 1. - С. 24-27.

8. Власов В.В. Эффективность диагностических исследований // М.: Медицина, 1998.-256 с.

9. Гаин Ю.М., Леонович С.И., Завада Н.В. и др. Иммунный статус приперитоните и пути его патогенетической коррекции: Руководство дляврачей // Мн.: ООО Юнипресс, 2001. 256 с.

10. Герасимова Н.М., Кунгуров Н.В., Бажин Ю.А. Новая классификация хламидий и её значение для практики //ИППП. 2001. - № 1. - С. 14-19.

11. Гомберг М.А., Соловьев A.M., Еремина О.Ф. Иммунологические подходы к лечению больных хронической персистирующей хламидийной урогенитальной инфекцией // ЗППП. 1996. - № 4. - С. 32-37.

12. Гомберг М.А., Соловьев A.M., Некрасов A.B., Иванова A.C. Иммунотерапия при хроническом персистирующем урогенитальном хлами-диозе // ЗППП. 1997. - № 4. - С. 34-36.

13. Гомберг М.А., Соловьев A.M., Черноусое А.Д. Обоснование иммунотерапии при лечении рецидивирующего урогенитального хламидиоза // ИППП. 2000. - № 2. - С. 30-36.

14. Делекторский В.В., Яшкова Г.Н., Мазурчук С.А. Хламидиоз. Бактериальный вагиноз. (Клиника, диагностика, лечение) // М.: ЛАБ-диагнос-тика, 1995.-32 с.

15. Делекторский В.В., Яшкова Г.Н., Лупан И.Н. и др. Семейный хламидиоз: Пособие по клинике, диагностике и лечению // М.:НПФ Медс-лайд, АО Центр-мед, 1996. 256 с.

16. Дьяконова В.А., Климова С.В., Ким К.Ф., Пинегин Б.В. Продукция ци-токинов под действием полиоксидония in vitro // Иммунология. — 2002. № 6. - С. 337-340.

17. Иванова B.C., Сигунова H.H., Сухова А.П. и др. Об опыте использования современных методов диагностики урогенитального хламидиоза // Вестн. дерматол. венерол. 1998. - № 5. - С. 62-63.

18. Игликов В.А. Современная диагностика, этиологическое и физиотерапевтическое лечение осложненного и не осложненного урогенитального хламидиоза у мужчин //Автореф. дисс. .канд. мед. наук.1. Екатеринбург, 1998. 26 с

19. Ильин И.И. Урогенитальный хламидиоз // Медицинский вестник. -1993. № 11. — С. 89-114.

20. Каримов Р.Н. Обработка экспериментальной информации. Уч. пособие. Ч. 3. Многомерный анализ. // СГТУ, Саратов, 2000. -108 с.

21. Кашкин К.П. Цитокины иммунной системы: основные свойства и иммунобиологическая активность (лекция). // Клиническая лабораторная диагностика. 1998. - № 11. - С. 21-32.

22. Кетлинский С.А. Роль Т-хелперов типов 1 и 2 в регуляции клеточного и гуморального иммунитета // Иммунология. 2002. - № 2. - С. 77-79.

23. Конопля А.И., Шатохин М.Н., Серегин С.П. и др. Использование по-лиоксидония в комплексном лечении хронического простатита // Иммунология. 2002. - № 6. - С. 382-385.

24. Кузнецов В.П., Маркелова В.П., Лазанович В.А. и др. Дисбаланс ци-токинов как фактор патогенеза гнойно-септических заболеваний и иммунокорригирующие эффекты лейкинферона // Медицинская иммунология. 2002. - Т. 4, № 1. - С. 11-21.

25. Кулагин В.И., Пономарев Б.А., Селисский Б.А., Зуева И.В. Заболеваемость инфекциями, передаваемыми половым путем в г. Москве в 1990-1998 гг // ИППП. 2000. - № 1. - С. 34-37.

26. Левчик Н.К. Иммунологический мониторинг при урогенитальной хла-мидийной инфекции // Автореф. дис. .канд. мед. наук. Челябинск, 1999.-24 с.

27. Малова И.О., Сокольникова Н.В. Хламидиоз в структуре урогени-тальных инфекций у мальчиков младшего возраста// ИППП. 2001. -№ 1. — С. 19-23.

28. Манько В.М., Петров Р.В., Хаитов Р.М. Иммуномодуляция: история, тенденции развития, современное состояние и перспективы // Иммунология. 2002. - № 3. - С. 132-138.

29. Мартенова A.A., Сотникова Н.Ю., Семенов A.B., Паникратов К.Д. Иммунный статус мужчин при простатите смешанного хламидийно -трихомонадного генеза с низкой активностью воспалительного процесса // Медицинская иммунология. 2000. - Т. 2, № 2. - С. 178-179.

30. Медицинские лабораторные технологии. Справочник. Том 2 / Под ред. А.И. Карпищенко. Санкт-Петербург, Интермедика, 1999. - 656 с.

31. Медицинские стандарты (протоколы) диагностики и лечения больных с аллергическими заболеваниями и нарушениями иммунной системы. Издание 2-е / Под ред. P.M. Хаитова. М., 2001. -118 с.

32. Молочков В.А., Ильин И.И. Хронический уретрогенный простатит // М. Медицина, 1998. 304 с.

33. Назаренко Г.И., Кишкун A.A. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований // М.: Медицина, 2000. 544 с.

34. Назарова Е.К., Мазурчук С.А. Иммунофлуоресцентная диагностика инфекций урогенитального тракта // Лаборатория. 1998. - № 9. - С. 16-17.

35. Приказ МЗ РФ № 286 от 7 декабря 1993 г. "О совершенствовании контроля за заболеваниями, передаваемыми половым путем". М., 1993.-36 с.

36. Редько И.И. Сравнительная характеристика прямых микроскопических методов лабораторной диагностики хламидийной инфекции у новорожденных детей // Клиническая лабораторная диагностика. — 1999.-№ 8.-С. 34-35.

37. Романцов М.Г., Ершов Ф.И., Коваленко А.Л., Голубев С.Ю. Иммуно-дефицитные состояния: коррекция циклофероном // СПб.: НТФФ По-лисан, 1998. 124 с.

38. Савичева А.М., Башмакова М.А. Урогенитальный хламидиоз у женщин и его последствия // Н. Новгород.: Издательство НГМА, 1998. -312 с.

39. Сидоренко С.В. Антибактериальная терапия инфекций, вызываемых Chlamydia trachomatis // Антибиотики и химиотерапия. 2001. - Т. 46, № 2. - С. 3-9.

40. Сидорович С.Ю., Латыпова М.Ф., Коликова Т.Г. и др. Сравнительный анализ методов лабораторной диагностики урогенитального хлами-диоза // Вестн. дерматол. венерол. 2001. - № 1. - С. 9-10.

41. Фрейдлин И.С. Паракринные и аутокринные механизмы цитокиновой иммунорегуляции // Иммунология. 2001. - № 5. - С. 4-7.

42. Хаитов P.M., Пинегин Б.В. Вторичные иммунодефициты: клиника, диагностика, лечение // Иммунология. 1999. - № 1. - С. 14-17.

43. Хаитов P.M., Пинегин Б.В. Оценка иммунного статуса человека в норме и при патологии // Иммунология. 2001. - № 4. - С. 4-7.

44. Хашукоева А.З., Торчилов А.М., Фириченко В.И., Смирнова Л.Е. Комплексная терапия хронических воспалительных заболеваний внутренних половых органов в стадии обострения с применением поли-оксидония // Иммунология. 2002. - № 6. - С. 379-382.

45. Чеботарев В.В., Кулачина Л.М. Хронический простатит-вопросы патогенеза // Вестн. дерматол. венерол. 1997. - № 3. - С. 17-20.

46. Чеботарев В.В., Гомберг М.А. Сравнительная эффективность различных схем лечения осложненных форм урогенитального хлами-диоза у мужчин // ИППП. 2001. - № 3. - С. 18-21.

47. Шинский Г.Э., Мерзляков В.А., Тимофеева С.Б. Эпидемиологические аспекты хламидийной инфекции // Вестн. дерматол. венорол. 1999. -№ 1.-С. 11-13.

48. Эдельштейн И.А. Фундаментальные изменения в классификации хламидий и родственных им микроорганизмов порядка Chlamydiales

49. Клиническая микробиология и антимикробная терапия. 1999. - Т. 1, №1. — С. 5-11.

50. Яковлев В.М., Новиков А.И. Сосудистый эндотелий и хламидийная инфекция // М.: Медицина, 2000. -172 с.

51. Ярилин A.A. Основы иммунологии //М.: Медицина, 1999. 256 с.

52. Abdelatif О., Chandeers F., McGuire В. Chlamydia trachomatis abacterial prostatitis: demonstration by color in situ hybridization. // Hum. Pathol. -1991. -P 22: 41.

53. Anttila Т., Saikku P., Paavonen J. et al. Serotypes of Chlamydia trachomatis and risk for cervical squamous cell carcinoma. // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. -P. 311.

54. Askienazy-Elbar M. Immune consequens of Chlamydia infections in pregnancy and in vitro fertilization outcome// Infections Diseases in Obstet. And. Gynecol. 1996. - Vol. 4. - P. 143-148. .

55. Barnes R.C., Rompato A.M., Stamm W.E. Comparison of Chlamidia trachomatis serovars causing rectal and cervical infections. // J. Inf. Dis. -1987. Vol. 156. - N 6. - P. 953.

56. Beatty W.L., Byrne G.I., Morrison R.P. Morphological and antigenic characterization of interferon gamma mediated persistent Chlamydia trachomatis infection in vitro. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1993. - Vol. 90. -P. 3998-4402.

57. Beatty W.L., Morrison R.P., Byrne G.I. Persistent chlamydiae: from cell culture to a paradigm for chlamydial pathogenesis. // Microbiol. Rev. -1994. Vol. 58, N 4. - P. 686-699.

58. Beatty W.L., Belanger Т., Desai A., et al. Chlamydial persistence: mechanism of induction and parallels to a stress-relate response. // Infect. Immunol. 1994. - Vol. 62. - P. 3705-3711.

59. Berger R.E. Acute epididimitis. // In: Holmes K.K., Mardh P-A., Sparling P.F., Wiesner P.J., eds. / Sexually Transmitted Disease. 2nd ed. New

60. York: McGraww-Hill Information Services. 1990. - P. 641-651.

61. Bernstein G.R., Zenitman J.M., Gaydos C.A. et al. Predictors of repeat Chlamydia trachomatis infections diagnosed by DNA amplification testing among inner city females // Sex. Transm. Dis. 2001. - Vol. 77. - P. 2632.

62. Blanchard A., Crabb D.M., Dybvig K. et al. Rapid detection of tetM in M. hominis and U. urealyticum by PCR: tetM confers resistance to tetracycline, but not necessarily to doxycycline. // FEMS Microbiol. Lett. 1992. -Vol. 74.-P. 277-281.

63. Bollmann R., Engel S., Sagert D., Gobel U.B. Investigations on the detection of Chlamydia trachomatis infections in infertile male outpatients. // Andrologia. 1998. - Vol. 30 (Suppl 1). - P. 23-27.

64. Brunham R.C., Maclean J.W., Binns B. Chlamydia trachomatis: its role in tubal infertility. // J. Infect. Dis. 1985. - Vol. 152, N 6. - P. 1275-1282.

65. Brunham R., Binns B., McDowell J. et al. Chlamydia trachomatis infection in women with ectopic pregnancy. // Obstet. Gynecol. 1986. - Vol. 67. -P. 722-726.

66. Burtstein G.R., Gaydos C.A., Diener W.M. et al. Incident Chlamydia trachomatis infections among inner-city adolescent females. // JAMA 1998. Aug 12. Vol. 280, N 6. - P. 521-526.

67. Cain T.K., Rank R.G. Local Th 1-like responses are induced by intravaginal infection of mice with the mouse pneumonitis biovar of Chlamydia trachomatis. // Infect. Immun. 1995. - Vol. 63. - P. 1784-1789.

68. Centers for Disease Control. Recomendations for the prevention and management of Chlamydia trachomatis infections 1993. MMWR 1993. -Vol. 42.-(N. RR-12).

69. Centers for Disease Control and Prevention. 1998. Guidelines for treatment of sexually transmitted diseases. // MMWR 1998. Vol. 47. - (N RR-1).

70. Chernesky M., Morse S., Schachter J. Newly available and future Lab tests for sexually transmitted diseases (STDs) other than HIV. // Sex. Transm. Dis. 1999 Apr. - Vol. 26, N 4. - P. 8-11.

71. Chernesky M., Jang D., Copes D. Et al. Use of enzyme amplified immunoassay (IDEIA PCE) and LCR to detect Chlamydia trachomatis in cervical swabs. // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. - P. 89.

72. Chowdhary A., Malhotra V.L., Deb M., Rai U. Screening for chlamydial infections in women with pelvic inflammatory diseases. // New Delhi Commun. Dis. 1998 Sep. - Vol. 30, N 3. - P. 163-166.

73. Christiansen G., Birkelund S. Surface structure of Chlamydia. // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000.-P. 17-20.

74. Division of STD Prevention. Sexually Transmitted Disease Surveillance, 1999. // U.S. Department of Health and Human Services, Atlanta. 2000. Sept.

75. Division of STD Prevention. Sexually Transmitted Disease Surveillance 1999 Supplement, Chlamydia Prevalence Monitoring Project. // Ibid., Atlanta. 2000. Nov.

76. Domeika M., Mardh P.-A. ABC on Chlamydia II Behring ed. 1993. 80 p.

77. Dong Z.W., Li Y., Zhang L.Y., Liu R.M. Detection of Chlamydia trachomatis intrauterine infection using polymerase chain reaction on chorionic villi. // China Int. J. Gynaecol. Obstet. 1998 Apr. - Vol. 61, N 1. - P. 2932.

78. Dreses-Werringloer U., Jurgens B., Zeidler H. et al. Persistence of Chlamydia trachomatis is mediated by treatment with ciprofloxacin in vitro. // Proc. 3rd Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Sept. 11-14, 1996, Vienna, Austria. Vienna, 1996. - P. 342.

79. Dutilh B., Bebear C., Taylor-Robinson D., Grimont P.A.D. Detection of Chlamidya trachomatis by in sity hybridization with sulphonated total DNA. // Ann. de I'lnstitut Pasteur Microbiol. 1989. -Vol. 140, N 1. - P. 716.

80. Eastick K., Longhurst D., Paul I.D. et al. Sensitive detection of Chlamydia trachomatis using the Lightcycler a new reference test. // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. - Helsinki, 2000. - P. 93.

81. Eilard T., Brorsson J.E., Hamark B., Forssman L. Isolation of Chlamydia in acute salpingitis // Scand. J. Infect. Dis. 1976. - Suppl. 9. - P. 82-87.

82. Eschenbach D.A. Chlamydia trachomatis in pregnancy. // Chlamydial infection. Proc. 7th Internat. Symp. on human Chlamydial infection, June 24-29, 1989, Ottawa, Canada: Abstracts. Ottawa, 1989. - P. 329-339.

83. Everett K.D.E., Bush R.M., Andersen A.A. Phylogenic analyses of five coding genes support the new chlamydial taxonomy. // Pros. Meet. Eur.

84. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. -P. 5.

85. Forsey Th., Peterson E. Comparison of immunofluorescence tests for detecting antibodies to Chlamidia trachomatis. // J. Clin. Microbiol. -1989. Vol. 27, N 10. - P. 2400-2406.

86. Garrett A.J. Some properties of the polysaccharide from cell cultures infected with TRIG agent (Chlamydia trachomatis). // J. Gen. Microbiol: -1975. Vol. 90. - P. 133-139.

87. Gaston J.S.H. Immunological basis of chlamydia induced reactive arthritis. // Sex. Transm. Infect. 2000. - Vol. 76. - P. 156-161.

88. Gerard H.C., Branigan P.J., Schumacher H.R., Hudson A.P. Synovial Chlamydia trachomatis in patients with reactive arthritis / Reiter's syndrom are viable but show aberrant gene expression. // J. Reumathol. — 1998. -Vol. 25. P. 734-742.

89. Gerard H.C., Branigan P.J., Balsara G.R. et al. Viability of Chlamydia trachomatis in fallopian tubes of patients with ectopic pregnancy. // Fertil. Steril. 1998. - Vol. 70. - P. 945-948.

90. Gerbase A.C., Rowley J.T., Heymann D.H. et al. Global prevalence and incidence estimates of selected curable STDs. // Sex. Transm. Infect. -1998 Jun.-Vol. 74, N 1.-P. 12-16.

91. Ghaem-Maghamy S., Lewis D.J., Hay P.E. Characterization of immune responses to human genital chlamydial infections. // Proc. 3rd Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Sept. 11-14, 1996, Vienna, Austria. Vienna, 1996. -P. 81.

92. Gomberg M.A., Chernousov A.D., Soloviov A.M. Immunotherapy in the management of Chlamydia trachomatis infection. (RUS) // Int. J. STD & AIDS 2001. - Vol. 12. (Suppl 2). - P 10.

93. Guo H., Lu G., Zhang Q., Xiong X. Detection of Chlamydia trachomatis by polymerase chain reaction assay in nonbacterial prostatitis. // Chin. Med. J. Engl. 1997. Mar., - Vol. 110, N 3. - P. 177-179.

94. Hammerschlag M.R., Golden N.H., Oh M.K. et aL Single dose of azithromycin for the treatment of genital chlamydial infections in adolescents. // J. Pediatr. 1993. - Vol. 122. - P. 961-965.

95. Harrison H.R., Riggin R.T. Infection of untreated primary human amnion monolayers with Chlamydia trachomatis. // J. Infec. Diseases. 1979. -Vol. 140, N6.-P. 968-971.

96. Hatch T.P. Competition between Chlamydia psittaci and L-cells for host isoleucine pools: a limiting factor in chlamydial multiplication. // Infect. Immun. 1975. - Vol. 12. - P. 211-220.

97. Henry-Suchet J., Utzman CM De Brüx A. et al. Microbiologic study of chronic inflammation associated with tubal factor infertility: role of Chlamydia trachomatis. // Fertil. Steril. 1987. Vol. 47. - P. 274-277.

98. Hitunen-Back E., Haikala O., Kautiainen H., Reunala T. Patients at risk for Chlamydia trachomatis infection. // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. - P. 326.

99. Holland S.f Hudson A., Bobo L., et al. Demonstration of chlamydial RNA and DNA during a culture-negative state. // Infect. Immunol. — 1992. -Vol. 60. P. 2040-2047.

100. Honey E.J., Templeton A.A Cost effectiveness of screening for Chlamydia trachomatis. // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. - P. 416.

101. Hudson A., McEntee C., Reacher M.N., Whitten-Hudson J., et al. Inapparent ocular infection by Chlamydia trachomatis in experimental and human trachoma. // Curr. Eye. Res. 1992. - Vol. 27. - P. 279-283.

102. Johnson B.A., Poses R.M., Fortner C.A., Mieier F.A., Dalton H.P. Derivation and validation of a clinical diagnostic model for chlamydial cervical infection in university women. // JAMA. 1990. - Vol. 264. - P. 31613165.

103. Kadar A., Bucsek M., Kardos M. et al. Detection of Chlamydia trachomatis in chronic prostatitis by in situ hybridization (preliminary methodical report). // Orv. Hetil. 1995. - Vol. 136. - P. 659-662.

104. Kiviat N.B., Paavonen J.A., Brockway J. et al. Cytologic manifestation of cervical and vaginal infections. I. Epithelial and inflammatory cellular changes. // JAMA. 1985. - Vol. 253. - P. 989-996.

105. Kleinman D., Sharon J., Sarov J. et al. A new method for culturing human endometrium as separate epithelial and stromal components // Arch. Gynecol. 1983. - Vol. 234. - P. 103-112.

106. Kleinman D., Sarov J., Insler V. The effects of contraceptive hormones on the replication of Chlamydia trachomatis in human endometrial cells // Contraception. 1987. - Vol. 35, N 6. - P. 533-542.

107. Koivisto A.L., Isoaho R., Von Hertzen L. et al. Chlamydial antibodies in an elderly Finnish population. // Scand. J. Infect. Dis. 1999. — Vol. 31, N2.-P. 135-139.

108. Kossein M., Brunham R. Fallopian tube obstruction as a sequelae to Chlamydia trachomatis. // Eur. J. Clin. Microbiol. 1986. - Vol. 5. - P. 584-590.

109. Kuo C.C., Wang S.P., Grayston J.T. Growth of trachoma organisms in HeLa 229 cell culture // Nongonococcal Urethritis and Relat. Infect. / Washington, DC. 1977. - P. 328-336.

110. La Verda D., Kalayoglu M.V., Byrne G.I. Chlamydial heat shock proteins and disease pathology: new paradigms for old problems? // Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 1999. - Vol. 7, N 1-2. - P. 64-71.

111. Ludwig M., Hausmann G., Hausmann W. et al. Chlamydia trachomatis antibodies in serum and ejaculate of male patients without acute urethritis // Ann. Urol. 1996. - Vol. 30. - P. 139-146.

112. Lunenfeld E., Shapiro B.f Sarov B. Et al. The association between chlamydial-specific IgG and IgA antibodies and pregnancy outcome in an in vitro fertilization program // J. In Vitro Fertil. Embryo Transfer. -1989. Vol. 6. - P. 222-227.

113. Mabey D.C.V. Immunology of chlamydial infections // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. -P. 157-160.

114. Madger L.S., Harrison H.R., Ehret J.M., Anderson T.S., Hudson F.N. Factors related to genital Chlamydia trachomatis and its diagnosis by culture in a sexually transmitted disease clinic // Am. J. Epidemiol. -1993.-Vol. 138.-P. 143-153.

115. Magat A.H., Alger L.S., Nagey D.A. et al. Double-blind randomized study comparing amoxicillin and erythromycin for the treatment of Chlamydia trachomatis in pregnancy// Ibid. 1993. - Vol. 81, N 5 (pt 1). - P. 745-749.

116. Mardh P.-A. Influence du choix du tampon de prelevement et de Pepro-uvette de transport sur le resultat des cultures chlamidiales // Rev. Int. Trachome. 1982. - Vol. 59, N 2-3. - P. 41-47.

117. Mardh P.-A., Oriel D. Genital chlamydial infections // Chlamydial infections: Cambridge Univ. Press. 1990. - P. 293-302.

118. Mardh P.-A. Discussion // Medical Masterclasses. 1993. - Vol. 1, N 2. -P. 21-28.

119. Mardh P.A., Hogg В. Are oral contraceptives masking symptoms of chlamydial cervicitis and pelvic inflammatory disease? // Eur. J. Contra-cept. Reprod. Health Care. 1998 Mar. - Vol. 3, N 1. - P. 41-43.

120. Mardh P.A. Need for improvement of surveillance systems for genital chlamydial infections // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. - P. 338-339.

121. Mardh P-A., Persson K. Is there a need for rescreening of patients treated for genital chlamydial infections? // Int J STD & AIDS 2002. - Vol. 13, N6.-P. 363-367.

122. Martin D.H., Pastorek J.G., Faro S. Risk factors for Chlamidia trachomatis infection in a high risk population of pregnant women // Chlamydial inf. Proc. 6th Internat. Sym. on human Chlam. Infections, 1986, Cambridge.-P. 189.

123. Martinov S.P., Popov G.V., Dimitrov K.D. Chlamydial infection in the oc-ulo-urethro-synovial Reiter's syndrome // Докл. Болг. АН. 1985. Т. 38, № 6. - С. 787-790.

124. Mavoungou E., Poaty Mavoungou V., Toure F.S. et al. Impairment of natural killer cell activity in Chlamydia trachomatis infected individuals // Trap. Med. Int. Health. 1999 Nov. - Vol. 4, N 11. - P. 719-727.

125. McCarthy M., Morris A. Frequency of and possible explanation for discrepant PCR results for Chlamydia trachomatis. // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. - P. 121.

126. McComb D.E., Nichols R.L., Semine D.L. et al. Chlamidia trachomatis in women: antibody in cervical secretion as a possible indicator of genital infection // J. Infect. Dis. 1979. - Vol. 139, N 6. - P. 628-633.

127. McCormack W.M., Rosner B., McComb D.E., Evrard J.R., Zinner S.H. Infection with Chlamidia trachomatis in female college students // Amer. J. Epidemiol.-1985.-Vol. 121, N 1.-P. 107-115.

128. Medley G. Cytological diagnosis of chlamydial infection of female genital tract // Lancet. 1983. - P. 8339: 1449.

129. Meijer A. Use of the broad range PCR assay for the identification and classification of bacteria in the order Chlamydiales // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000.- P. 42.

130. Millman K.L., Black C.M., Stamm W.E. et al. Molecular epidemiology of Chlamydia trachomatis genital infections in the USA // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000.- P. 324.

131. Moller B.R., Mardh P.-A. Experimental epididimitis and urethritis in grivet monkeys provoked by Chlamydia trachomatis // Fertil. Steril. 1980. -Vol. 34, N 3-4. - P. 273-279.

132. Moller B.R. Demonstration of chlamydial infections in exfoliated cells // Scand. J. Inf. Dis. 1982. - Vol. 14 (Suppl. 32). - P. 16-20.

133. Moller B.R., Ahrons S., Lanrin J., Mardh P.-A. Pelvic infection after selective abortion associated with Chlamydia trachomatis // Obst. Gyn. -1982. Vol. 59. - P. 210-212.

134. Morgan H.R. Latent viral infection of cells in tissue culture. // J. Exp. Med. 1956. - Vol. 103. - P. 37-47.

135. Morre S.A., Kuijl C., Ossewaarde J.M. et al. Expression analysis by NASBA of the Chlamydia trachomatis virulence genes hsp60, hsp70 and CT-MIP in symptomatically versus asymptomatically infected patients //

136. Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland.- Helsinki, 2000. P. 202.

137. Morton R.S., Kinghorn G.R. Genitourinary Chlamydial Infection: a Reappraisal and Hypothesis // (UK). Int. J. STD AIDS. 1999. - Vol. 10. -P. 765-775.

138. Moulder J.W., Levy N.J., Schulman R.P. Persistent infection of mouse fibroblasts (L cells) with Chlamydia psittaci: evidence for a cryptic chlamydial form // Infect. Immun. 1980. - Vol. 30. - P. 874-883.

139. Munday P.E., Staccy C.M., Thomas B.J. et al. A etiology of pelvic pain in women with Chlamydial lower genital tract infection // Chlamydial infect. Cambridge Univ. Press. 1990. - P. 315-318.

140. Myhre E., Mardh P.-A. Unusual manifestations of chlamydial infections // Scand. J. Inf. Dis. 1982. - Suppl. 32. - P. 122-125.

141. Naher H., Drzonek h., WolfJ. et al. Detection of Chlamidia trachomatis in urogenital specimens by polymerase chain reaction // Genitourin. Med. 1991. - Vol. 67. - P. 211-214.

142. Naughton H., Mallison H. Microplate culture with PAS staining for the diagnostic isolation of Chlamydia trachomatis // Med. Lab. Sei. 1983.-Vol. 40, N2.-P. 193-195.

143. Notomy T., Ikeda Y., Okadome A., Nagayama A. The inhibitory effect of phosphate on the ligase chain reaction used for detecting Chlamydiatrachomatis // (Japan). J. Clin. Pathol. 1998 Apr. - Vol. 5, N 4. - P. 306-308.

144. Oddi G., Martineiii B., Capobasso G., Cneo S. Raporto fra cervicovagi-nate da chlamydia ed alterazioni della morfologia cellulare // Minerva gi-necol. 1988. - Vol. 40, N 3. - P. 163-167.

145. Osser S., Persson K., Liedholm P. Tubal infertility and silent chlamydial salpingitis // Hum. Reprod. 1989. - Vol. 4. - P. 280-284.

146. Ostaszewska I., Zdrodowska-Stefanov B., Badyda J. et al. Chlamydia trachomatis: probable cause of prostatitis // (Poland). Int. J. STD & AIDS. 1998 Jun. - Vol. 9, N 6. - P. 350-353.

147. Ostergaard L. DNA-amplifikation til diagnostik af urogenital Chlamydia trachomatis infektion // Tiddsskr. Nor. Laegeforen. 1999 Jun. - Vol. 20, N 119, (Suppl 16). - P. 2350-2356.

148. Paavonen J., Purola E. Cytologic findings in cervical chlamydial infection II Med. Biol. 1980. - Vol. 58, N 3. - P. 174-178.

149. Palva A., Korpela K., Lassus A., Ranki M. Detection of Chlamidia trachomatis from genito-urinary specimens by improved nucleic acid sandwich hybridization // FEMS Microbiol. Letts. 1987. - Vol. 40. - P. 211217.

150. Pate M.S., Dixon P.B., Hardy K. et al. Evaluation of the Biostar Chlamydia OIA assay with specimens from women attending a sexually transmitted disease clinic // J. Clin. Microbiol. 1998 Aug. - Vol. 36, N 8. -P. 2183-2186.

151. Pearce J.H., Allan I. Chlamydial Infection // Elsevier. 1982. - P 29-32.

152. Poletti F., Medici M., Alinovi M. et al. Isolation of Chlamydia trachomatis from the prostatic cells in patients affected by nonacute prostatitis // J. Urol. 1985. - Vol. 134. - P. 691.

153. Ripa K.T. Biological principles of the culture of Chlamydia trachomatis in cell monolayers // Acta patol., microb., immunol. Scand. 1982. - Suppl. 32. - P. 4-8.

154. Rota T.R. Chlamydia trachomatis in cell culture. II Susceptibility of seven established mammalian cell typen in vitro // Adoption of trachoma organisms to McCoy and BHK-21 cells. 1977. - Vol. 13. - P. 280-284.

155. Ruczkowska J. Badania laboratoryjne w kienrunku Chlamydia trachomatis; czy wskazuja one na spadek liczby zakazen? // Przegl. Epidemiol. 1998. - Vol. 52, N 1-2. - P. 163-169.

156. San-Pin Wang, Cho-Chou Kuo, Grayston T. Formalinized Chlamidia trachomatis organisms as antigen in the immunofluorescence test // J. Clin. Microb. 1979. - Vol. 10, N 2. - P. 259-261.

157. Schachter J., Moncada J., Dawson C.R., et al. Nonculture methods for diagnosing chlamydial infection in patients with trachoma: a clue to the pathogenesis of the disease? // J. Infect. Dis. 1988. - Vol. 158. - P. 1347-1352.

158. Schachter J. Chlamydial infections. Infectious diseases / Gorbach S.L., Bartlett J.G., Blacklow N.R. (ed.) / Philadelphia. 1992. - P. 817-822.

159. Schlott T., Ruda G., Hoppert M. et al. The in situ polymerase chain reaction for detection of chlamydia trachomatis // (Germany). J. Histo-chem. Cytochem. 1998 Sep. - Vol. 46, N 9. - P. 1017-1023.

160. Shurbaji M., Gupta P., Myers J. Immunohistochemical demonstration of chlamydial antigens in association with prostatitis // Med. Pathol. — 1998. -Vol. 1.-P. 348.

161. Solomon M., Bixby T., Bott M. et al. Performance of the APTIMA Combo 2 assay for the detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. - P. 141.

162. Stamm W.E., Holmes K.K. Chlamydia trachomatis infections of the adult // In: Holmes K.K., Mardh P-A., Sparling P.F., Wiesner P.J., eds. Sexually Transmitted Disease. 2nd ed. New York: McGraww-Hill Information Services. 1990. - P. 181-194.

163. Stamm W.E. Chlamydia trachomatis infections: progress and problems //J. Infect. Dis. 1999 Mar. - Vol. 179, N 2. - P. 380-383.

164. Stary A. Nucleic acid amplification for STD diagnosis: advances and disadvantages // Int. J. STD & AIDS. 2001. - Vol. 12, N 2. - P. 15.

165. Stary A. European Guideline for management of Chlamydial infection // Int. J. STD & AIDS. 2001. - Vol. 12, N 3. - P. 31-33.

166. Stenberg K., Mardh P.A. Treatment of chlamydial conjunctivitis in newborns and adults with erythromycin and roxithromycin // J. Antimicrob. Chemother. 1991. - Vol. 28. - P. 301-307.

167. Stephens R.S. Chlamydia. Intracellular Biology, Pathogenesis, and Immunity // Washington: ASM Press. 1999. - P. 143-146.

168. Stergachis A., Scholes D., Heidrich F.E., Sherer D.M., Holmes K.K., Stamm W.E. Selective screening for Chlamydia trachomatis infection in a primary care population of women // Am. J. Epidemiol. 1993. - Vol. 138.-P. 143-153.

169. Stothard D.R., Batteiger B.E. Variation of polymorphic membrane protein genes among serovars of Chlamydia trachomatis // Pros. Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Aug. 20-23, 2000, Helsinki, Finland. Helsinki, 2000. -P. 6.

170. Su H., Caldwell H.D. CD4(+) T-cells play a significant role in abortive immunity to Chlamydia trachomatis infections of the mouse genital tract // Infect. Immun. 1995. - Vol. 63. - P. 3302-3308.

171. Tanaka M., Nakayama H., Yoshida H. et al. Detection of Chlamydia trachomatis in vaginal specimens from female commercial sex workers using a new improved enzyme immunoassay // Sex. Transm. Infect. 1998 Dec. - Vol. 74, N 6. - P. 435-438.

172. Taylor-Robinson D. The history of nongonococcal urethritis // Sex. Transm. Dis. 1996. - Vol. 23, N 1. - P. 86-91.

173. Thejls H., Gnarpe J., Lundkvist O. Et al. Diagnosis and prevalence of persistent chlamydia infection in infertile women: tissue culture, direct antigen detection, and serology // Fertil. Steril. 1991. - Vol. 55. - P. 304-310.

174. Thelin J., Mardh P.-A. Contact tracing in genital chlamydial infection // Scand. J. Inf. Diseases. 1982. - Vol. 14, (Suppl. 32). - P. 163-166.

175. Thomas M., Everson S., Tusirey M., Ward M.E. Differential cytokines gene expression in the genital tracts of mice infected with Chlamydiatrachomatis II Proc. 3rd Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Sept. 11-14, 1996, Vienna, Austria. Vienna, 1996. - P. 82.

176. Toye B., Woods W., Bobrowska M., Ramotar K. Inhibition of PCR in genital and urine specimens submitted for Chlamydia trachomatis testing II J. Clin. Microbiol. 1998 Aug. - Vol. 36, N 8. - P. 2356-2358.

177. Vela C., Mendoza N. Otiniano L. Cytologic diagnosis of Chlamydia in cervicovaginal secretions. Use of a Papanicolaou stain modification with buffered wright solution // Acta Cytol. 1998 Jul-Aug. - Vol. 42, N 4. - P. 954-958.

178. Walters M., Eddy C., Gibbs R. Et al. Antibodies to Chlamydia trachomatis and risk for tubal pregnancy // Am. J. Obstet Gynecol. 1988. - Vol. 159. - P. 942-946.

179. Wang H., Wang J., Liu Y. Polymerase chain reaction in the detection of patients infected by Chlamydia trachomatis after treatment // Chung Hual I Hsueh Tsa Chih. 1997 Feb. - Vol. 77, N 2. - P. 91-93.

180. Ward M.E. The immunobiology and immunopathology of chlamydial infections // APMIS. 1995. - Vol. 103. - P. 769-796.

181. Ward M.E. An update on the immunology of chlamydial infection // Proc. 3rd Meet. Eur. Soc. Chlam. Res., Sept. 11-14, 1996, Vienna, Austria. -Vienna, 1996. P. 58-62.

182. Whittington W.L., Kent C., Kissinger P., et al. Determinants of persistent and recurrent Chlamydia trachomatis infection in young women: resultsof a multicenter cohort study A~Sex Transm Dis. 2001 Feb. - Vol. 28, N 2.-P. 117-123.

183. Witkin S.S. Immunity to heat shock proteins and pregnancy outcome // Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 1999. - Vol. 7, N 1-2. - P. 35-38.

184. Wolner-Hanssen P., Mardh P.-A., Svensson L., Westrom L. Laparos-copy in women with chlamydial infection and pelvic pain: a comparision of patients with and without salpingitis // Obstet. Gynecol. 1983. - Vol. 61.-P. 299-303.

185. Wolner-Hanssen P., Mardh P.-A. In vitro tests of the adherence of Chlamydia trachomatis to human spermatozoa // Fert. Steril. 1984. -Vol. 42.-P. 102-104.

186. Wolner-Hanssen P., Eschenbach D.A., Paavonen J. et al. Acute salpingitis: relationship of manifestation to infection with Chlamydia trachomatis or with Neisseria gonorrhoeae // Chlamydial infections. Cambridge Univ. Press. 1990.-P. 311-314.

187. Zahn I., Szeredi L. et al. Immunohistochemical determination of Chlamydia psittaci/pecorum and C. trachomatis in the piglet gut // J. Vet. Med. Ser. B. 1995. - Vol. 42. - P. 266-276.

188. Zhong G., Fan T., Liu L. Chlamydia inhibits interferon gammainducible major histocompatibility complex class II expression by degradation of upstream stimulatory factor 1. // (Canada). J. Exp. Med. 1999 Jun. 21. - Vol. 189, N 12. - P. 1931 -1938.