Организация пигментной системы пурпурных бактерий и ее изменение в зависимости от интенсивности света тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.07, кандидат биологических наук Махнева, Зоя Карповна

• Махнева, Зоя Карповна
• кандидат биологических наук
• 1984

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Махнева, Зоя Карповна

ВВЕДЕНИЕ.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Глава I. Организация фотосинтезирувдего аппарата пурпурных бактерий

1.1. Морфология пигмент содержащих мембран пурпурных бактерий

1.2. Химический состав пигментсодержащих мембран . II

1.3. Пигменты фототрофных бактерий.

1.3.1. Бактериохлорофилл.

1.3.2. Каротиноиды.

1.3.3. Состояние пигментов в клетках и пигментсод ержащих мембранах пурпурных бактерий

1.3.4. Функции пигментов.

1.4. Методы фракционирования фотосинтезирующего аппарата бактерий.

1.5. Характеристики различных типов пигмент-белковых комплексов пурпурных бактерий.

1.5.1. Реакционные центры

1.5.2. Светособирающие комплексы

1.5.3. Светособирающие комплексы 800

1.5.4. Комплексы Б

Глава II. Изменения в фотосинтезирующем аппарате пурпурных бактерий в зависимости от условий среды

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

Глава III. Объекты и методы исследования.

III.I. Объекты исследования и культивирование бактерий.

III. 2. Выделение пигмент содержащих мембран.

111.3. Выделение пигмент-белковых комплексов III.3.1. Выделение Б 890 и ССК 800-850 c.minutissimum и Rh.palustris методом электрофореза в ПААГ.

111.3.2. Выделение Б 890 и ССК 800-850 методом гель-фильтрации на сефарозе 6Б и биогеле А-1,5м.

111.3.3. Выделение ССК 870 R.rubrum

111.4. Определение концентрации пигментов

111.5. Определение веса сухой биомассы

111.6. Определение количества липидов

111.7. Определение общего количества углеводов

111.8. Определение общего количества белка

111.9. Оценка молекулярных масс пигмент-белковых комплексов.

111.9.1. Методом электрофореза в ПААГ.

111.9.2. Методом гель-фильтрации на сефарозе 6Б

111.10. Оценка молекулярных масс белков пигмент-белковых комплексов.

111.11. Определение аминокислотного состава ССК

111.12. Определение и-концевых аминокислот ССК

111.13. Определение отношения масс двух белков ССК

III. 14. Измерение спектров поглощения.

III. 15. Измерения фотохимической активности РД

111.16. Определение содержания цитохромов

111.17. Электронная микроскопия клеток пурпурных бактерий.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Глава 1У. Характеристика свойств пигмент-белковых комплексов Б 890 и ССК пурпурных бактерий.

1У.1. Спектральные характеристики ССК 800-850 и

Б 890 пурпурных бактерий.

1У.2. Определение молекулярных масс ССК 800-850 и

1У.З. Химический состав пигментеодержащих мембран и выделенных из них Б 890 и ССК 800

1У.4. Характеристика белков пигмент-белковых комплексов

IV.5. Характеристика ССК 870 R.rubrum.

Глава У. Изменения в фотосинтезирующем аппарате пурпурных бактерий в зависимости от интенсивности света

V.1. Влияние интенсивности света на рост, синтез белка И пигментов Rh.palustris И G.minutissimum

У.2. Содержание пигментов в мембранах пурпурных бактерий в зависимости от освещенности.

У.З. Влияние интенсивности света на организацию пигмент-белковых комплексов Б 890 и ССК 800пурпурных бактерий.

У.4. Влияние изменения освещенности на рост и пигментную систему Rh.palustris.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Организация пигментной системы пурпурных бактерий и ее изменение в зависимости от интенсивности света»

Роль фотосинтеза на Земле столь велика и разнообразна, а природа самого процесса столь уникальна, что его всестороннее познание по праву считается одной из наиболее важных и актуальных проблем современной науки и практики.

Несмотря на многочисленные исследования в области фотосинтеза, выполненных к настоящему времени, существует ряд важных вопросов, связанных с выяснением механизма этого процесса. Одним из подходов к исследованию механизма фотосинтеза является изучение молекулярной организации фотосинтезирующего аппарата на уровне систем разной сложности. Относительно простыми системами являются пигмент-белковые комплексы, содержащие нативные формы хлорофилла. Большой интерес представляет изучение перестроек в фотосинтезирующем аппарате в зависимости от внешних условий и прежде всего интенсивности света как фактора, обеспечивающего фотосинтез.

У пурпурных бактерий наличие только одного хлорофилла, называемого бактериохлорофиллом (БХЛ а, EXI ъ или ЕХЛ g), основные формы которого спектрально четко разделены, делает их удобными объектами'для изучения молекулярной организации фотосинтезирующего аппарата. Кроме того, эти микроорганизмы, по всей видимости, близки к самым древним фототрофам и осуществляют фотосинтез так называемого аноксигенного типа, т.е. без выделения кислорода. Их изучение, поэтому, весьма интересно и для познания эволюции фотосинтеза.

В последнее время фототрофные бактерии интенсивно изучают в целях практического использования как продуцентов дешевой биомассы, азотфиксаторов, организмов, выделяющих такой горючий газ, как водород, а также образующих ряд практически важных ферментов. В связи с этим, весьма важным является глубокое знание всех особенностей их биологии и организации фотосинтезиругощего аппарата для эффективной биоконверсии ими солнечной энергии.

В настоящее время из пурпурных бактерий выделены различные по размерам, составу и функциям пигмент-белковые комплексы. Среди них мошю выделить следующие основные: светособирающие (ССК 800-850), содержащие коротковолновые формы бактериохлорофилла а 800 и 850; светособирающие ССК 870, содержащие длинноволновые форш бактериохлорофилла а 870-890; и реакционные центры (РЦ). Основная функция светособирающих комплексов - поглощение и передача энергии света на реакционные центры, которые являются эффективными преобразователями солнечной энергии в энергию разделенных зарядов. Указанные типы пигмент-белковых комплексов выделены из ряда пурпурных серных и несерных бактерий в чистом виде или в составе более сложных комплексов: РЦ-цитохромные комплексы, РЦ+ССК 870 (Б 890) (Garcia et al., 1966а,Ъ; 19б8а,Ъ; Ерохин, Москаленко, 1969; Thornber, 1970; Ерохин и др., 1974а,б; Drews, 1978, 1981; Прохоренко И др., 1978, 1981; Cogdell, Thornber, 1979, 1980; Olson, Thornber, 1979).

Однако данные относительно биохимического состава и структур выделенных комплексов ограничены, а иногда и противоречивы и не дают полного представления об их молекулярной организации.

Цели данной работы были следующие:

1) Сравнительное исследование молекулярной организации пигмент-белковых комплексов - ССК 800-850, ССК 870 и Б 890, выделенных из представителей пурпурных серных (chromatium minutis-simum) И несерных (Rhodopseudomonas palustris И Rhodospirillum rubrum) бактерий.

2) Исследование изменений в зависимости от интенсивности света фотосинтезирующего аппарата c.minutissimum и Rh.palustris на уровне целых клеток и выделенных пигмент-белковых комплексов:

ССК 800-850 и Б 890.

Результаты исследований таковы:

1) Показано, что в состав ССК 800-850 и ССК 870 входит по два низкомолекулярных полипептида

2) ССК 800-850, так же как и Б 890, выделенные из пурпурных серных и несерных бактерий, похожи по организации.

3) Установлены принципы универсальной организации фотосин-тезирущего аппарата разных видов пурпурных бактерий: он состоит из трех пигмент-белковых комплексов: ССК 800-850, ССК 870 и РЦ, два последние объединены в пигмент-белковом комплексе Б 890.

4) Обнаружено, что содержание бактериохлорофилла в ССК 800850 зависит от интенсивности света, но содержание белков при этом не меняется, что указывает на некоординированный синтез пигментов и белков, входящих в состав ССК 800-850.

Полученные результаты могут быть использованы для развития исследований по выяснению молекулярной организации фотосинтези-рующего аппарата пурпурных бактерий и при разработке методов управления продуктивностью фототрофных микроорганизмов, что тлеет непосредственный выход в практику.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Махнева, Зоя Карповна

ВЫВОДЫ

1. Из пигментсодержащих мембран фототрофных пурпурных бактерии Chromatium minutissimum, Rhodopseudomonas palustris И Rhodo-spirilium rubrum выделены три типа пигмент-бежовых комплексов: светособирающий 800-850, который выполняет только функцию антенны; светособирающий 870, осуществляющий также передачу энергии электронного возбуждения на реакционные центры;' Б 890, содержащий реакционные центры и светособирающие комплексы 870.

2. В СОК 800-850 C.minutissimum и Rh.palustris присутствуют две формы бактериохлорофилла (БХЛ) 800 и 850, два низкомолекулярных полипептида: с молекулярной массой 2900 и 8900 д (в молярном отношении 3:1) В ССК C.minutissimum и 3300 И 6600 д (в отношении 2:1) в ССК Rh.palustris, не менее трех молекул бактериохлорофилла и одной молекулы каротиноидов. Молекулярная масса комплексов составляет около 50000 д.

3. В светособирающем комплексе 870 R.rubrum имеется одна форма бактериохлорофилла 885. В его состав входят два низкомолекулярных полипептида с молекулярной массой 6400 и 9300 д, две молекулы бактериохлорофилла и одна молекула каротиноида (спириллоксантина).

4. В Б 890, выделенных из C.minutissimum и Rh.palustris, присутствуют две формы бактериохлорофилла 800 и 890. В их состав входят триада бежов реакционного центра, два низкомолекулярных полипептида, относящихся к светособирающим комплексам 870, а в случае c.minutissimum - и дополнительные полипептвды, обусловленные наличием цитохромов с-типа.

5. Размер фотосинтетических единиц, содержание БХЛ, РЦ и пигментсодержащих мембран в расчете на клетку Rh.palustris выше в условиях слабого освещения. У c.minutissimum количество реакционных центров на клетку не зависит от интенсивности света, а размер фотосинтетических единщ увеличивается с повышением интенсивности света, при которой растут культуры.

6. Содержание бактериохлорофилла в светособирающих комплексах 800-850 пурпурных бактерий находится в обратной зависимости от интенсивности света, при которой растут культуры. Соотношение форм БХЛ 800 и БХЛ 850 у C.minutissimum и Rh.paiustris штамм 1К является постоянным, а у Rh.paiustris штамм АБ изменяется в зависимости от освещенности. Строгой корреляции в содержании белков и пигментов ССК 800-850 пурпурных бактерий нет.

7. Содержание бактериохлорофилла в комплексах Б 890 c.minutissimum и Rh.paiustris постоянно и не зависит от условий освещенности.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Махнева, Зоя Карповна, 1984 год

1. Молярное отношение общего БХЛ/РЦ находится в обратной зависимости от интенсивности света у тех пурпурных бактерий, в состав ФСА которых входят формы БХЛ 800 и БХЛ 850.

2. I.3. Выделение пигмент-белковых комплексовПигмент-белковые комплексы Б 890 и ССК 800-850 выделяли с помощью двух методов.

3. Барский Е.Л., Борисов А.Ю., Самуилов В.Д. Комплексы реакционных центров фотосинтезирущих бактерий. Успехи совр. биол., 1976, т.82, Jfc 2(5), с.222-235.

4. Белозерский А.Н., Проскуряков Н.И. Практическое руководство по биохимии растений. М.: Сов. наука, 1951, с.388

5. Богоров Л.В. 0 свойствах Thiocapsa roseopersicina штамм BBS, выделенного из эстуария Белого моря. Микробиология, 1974, т.43, }& 2, с.326-332.

6. Владимирова М.Г., Семененко В.Е. Интенсивная культура одноклеточных водорослей. М.: изд-во АН СССР, 1962, с.44-47.

7. Гоготов И.Н., Зорин Н.А., Кондратьева Е.Н. Очистка и свойства гид-рогеназы ИЗ фототрофной бактерии Thiocapsa roseopersicina. -Биохимия, 1976, т.41, № 5, с.836-842.

8. Микробиология, 1969, т.38, № 5, с.787-792.

9. Детерман Г. Гель-хроматография. М.: Мир, 1970, 252 с.

10. Ерохин Ю.Е., Москаленко А.А. Выделение и некоторые свойства пигмент-белковых комплексов хроматофоров фотосинтезирующих бактерий. В сб.: II Всесоюз. биохим. съезд. 19 секция. Проблемы фотосинтеза. Ташкент, изд-во "ФАН" Узбекской ССР, 1969, с.29.

11. Ерохин Ю.Е., Москаленко А.А. Некоторые свойства двух бактериохло-рофилл-белковых комплексов из хроматофоров Chromatium. В сб.: 1У Междунар. биофизич. конгресс. Тезисы, т.1. Секция 1-4». М., 1972, с.364.

12. Ерохин Ю.Е., Москаленко А.А. Характеристика белков (число цепей и молекулярные веса) пигмент-липопротеиновых комплексов chromatium. Докл. API СССР, 1973, т.212, № 2, с.495-497.

13. Ерохин Ю.Е., Москаленко А.А., Ганаго А.О. Некоторые данные о роли каротиноидов в структуре и функциях пигментной системы пурпурной бактерии Chromatium minutissimum. В сб.: Итоги исследования механизма фотосинтеза. Пущино, 1974а, с.162-171.

14. Ерохин Ю.Е., Москаленко А.А., Демина Л.П., Махнева З.К. Состояние бактериохлорофилла и организация пигментной системы пурпурных бактерий. В сб.: Хлорофилл (ред. Шлык А.А.). Минск, Наука и техника, 1974^ с.242-248.

15. Ерохин Ю.Е., Нестеров А.И., Финогенова Т.В., Кондратьева Е.Н.

16. Образование пурпурными бактериями бактериохлорофилла и свободных порфиринов в зависимости от интенсивности света. -Микробиология, 1964, т.33, № 6, с.951-955.

17. Ерохин Ю.Е., Синегуб О.А. О молекулярной организации пигментной системы пурпурных фотосинтезирующих бактерий. Мол. биол., 1970, т.4, JG 3, с.401-410.

18. Ерохин Ю.Е., Синегуб О.А. Изменения в спектрах поглощения хромато-форов Chromatium при действии детергентов и органических растворителей. Мол. биол., 19706, т.4, !£ 4, с.541-550.

19. Ерохин Ю.Е., Чугунов В.А., Махнева З.К., Агрикова И.М., Шантурова Т.В. Сравнительное изучение молекулярной организации светосо-бирающих комплексов C.minutissimum И Rh.sphaeroides. Докл. АН СССР, 1977, т.234, }Ь 3, о.709-712.

20. Ерохин Ю.Е., Чугунов В.А., Москаленко А.А., Демина Л.П., Махнева З.К. Общие закономерности организации пигментной системы пурпурных фотосинтезирующих бактерий. В сб.: Итоги исследования механизма фотосинтеза. Пущино, 1974в, с.148-161.

21. Ильянкова Г.И. Метаболические взаимоотношения пигментных подфондов фотосинтезирующих бактерий семейства Chromatiaceae; Автореф. Дис. . канд. биол. наук. Минск, 1984. - 19 с.

22. Кондратьева Е.Н. Использование пурпурными бактериями органических соединений в присутствии света. Микробиология, 1956, т.25, В 4, с.393-400.

23. Кондратьева Е.Н. Фотосинтезирующие бактерии. М.: изд-во АН СССР, 1963, 315 с.

24. Кондратьева Е.Н. Фотосинтезирующие бактерии и бактериальный фотосинтез. М.: изд-во МГУ, 1972, 75 с.

25. Кондратьева Е.Н., Гоготов И.Н. Молекулярный водород в метаболизме микроорганизмов. М.: Наука, 1981, 342 с.

26. Кондратьева Е.Н., Петушкова Ю.П., Жуков В.Г. Рост и окисление соединений серы Thiocapsa roseopersicina в темноте. Микробиология, 1975, т.44, & 3, с.389-394.

27. Корсунский О.Ф., Смолыгина Л.Д. Свойства и функции низкопотенциальных переносчиков электрона, выделенных из азотфиксирующей пурпурной серобактерии Thiocapsa roseopersicina. В кн.: Биологическая фиксация молекулярного азота. Материалы У1

28. Всесоюз. Ваковского коллоквиума. Киев: Наукова думка, 1983, с.219-222.

29. Кочетов Г.А. Методы количественного определения белка. В кн.: Практическое руководство по энзимологии. М.: Высшая школа, 1971, с.309-311.

30. Красилышкова Е.Н. Ферменты углеводного метаболизма у фототрофных бактерий. Микробиология, 1975, т.44, № I, с.5-10.

31. Красильникова Е.Н. Ферменты метаболизма углерода у пурпурных серобактерий при росте в темноте. Микробиология, 1977, т.46, .№ 2, с.217-222.

32. Красильникова Е.Н., Ивановский Р.Н., Кондратьева Е.Н. Рост пурпурных бактерий за счет использования ацетата в анаэробных условиях в темноте. Микробиология, 1983, т.52, № 2, с.244-248.

33. Красильникова Е.Н., Макарова JI.M., Кондратьева Е.Н. Рост пурпурных бактерий в разных условиях в зависимости от содержания железа. Микробиология, 1982, т.51, № 3, с.379-385.

34. Красильникова Е.Н., Педан Л.В., Кондратьева Е.Н. Рост пурпурныхсеробактерий в темноте в анаэробных условиях. Микробиология, 1976, т.45, Л<2 4, с.581-585.

35. Красновский А.А. Фотохимия хлорофилла и молекулярная организация пигментной системы. В сб.: Функциональная биохимия клеточных структур. М.: Наука, 1970, с.15-38.

36. Красновский А.А. Преобразование энергии света при фотосинтезе. Молекулярные механизмы. М.: Наука, 1974, 64 с.

37. Красновский А.А., Быстрова М.И. Перестройка агрегированных форм хлорофилла и бактериохлорофилла. Докл. АН СССР, 1967, т.174, № 2, с.480-483,

38. Красновский А.А., Войновская К.К., Кособуцкая Л.М. Природа естественного состояния бактериохлорофилла в связи со спектральными свойствами его коллоидных растворов и твердых пленок. Докл.

39. АН СССР, 1962, т.85, № 3, с.389-392.

40. Литвин Ф.Ф., Гуляев Б.А. Система агрегирования форм бактериальных пигментов. Известия АН СССР, 1970, сер. биол., В I, с.43-52.

41. Любименко В.Н. Избранные труды (ред. Любинский Н.А.). Киев: изд-во АН УССР, 1963, т.2, 682 с.

42. Максимова И.В. Влияние интенсивности света на некоторые особенности обмена веществ пурпурных бактерий. Докл. АН СССР, 1957, т.112, № 3, с.545-548.

43. Максимова И.В. Изменение степени гетеротрофности Rhodopseudomonas palustris при разных интенсивностях света. Изв. АН СССР, 1958, сер. биол., № 2, с.202-210.

44. Москаленко А.А. Изучение пигмент-липопротеиновых комплексов из

45. C.minutissimum. Дис. . канд. биол. наук. -Пущино, 1974. - 190 с.

46. Москаленко А.А. Электрофорез в полиакриламидном геле. В кн.:

47. Практикум по физико-химическим методам в биологии (ред. Литвин Ф.Ф.). МГУ, 1981, с.154-180.

48. Москаленко А.А., Ерохин Ю.Е. Выделение пигмент-липопротеиновых комплексов из пурпурных фотосинтезирующих бактерий методом препаративного электрофореза в ПААГ. Микробиология, 1974, т.43, № 4, с.654-658.

49. Москаленко А.А., Ерохин Ю.Е. Структурная роль каротиноидов в организации пигмент-белковых комплексов из пурпурных фотосинтезирующих бактерий. Пущино, 1981. - 20 с. (Препринт, ОНТИ НЦБИ).

50. Москаленко А.А., Кузнецова H.I0., Ерохин Ю.Е. Выделение, спектральные и фотохимические характеристики трех типов пигмент-белковых комплексов из Chromatium с подавленным синтезом каротиноидов. Докл. АН СССР, 1983, т.270, № I, с.251-253.

51. Москаленко А.А., Торопыгина О.А., Ерохин Ю.Е. Выделение и частичная характеристика двух типов пигмент-бежовых комплексов из Rhodopseudomonas capsulata. Тезисы симпозиума: Биологические мембраны. Структура и функции. Ташкент, 1983, с.133.

52. Нестеров А.И., Гоготов И.Н., Кондратьева Е.Н. Значение интенсивности света для использования различных соединений углерода фотосинтезирующими бактериями. Микробиология, 1966, т.35, J& 2, с.193-199.

53. Осницкая Л.К., Чудина В.И. Значение спектрального состава света и его интенсивности для развития фотосинтезирующих пурпурных серных бактерий Chromatium vinosum. Микробиология, 1965, т.34, & I, с.19-23.

54. Осницкая Л.К., Чудина В.И. Способность фотосинтезирующих бактерий к автотрофному и гетеротрофному развитию. В сб.: Биохимия и биофизика фотосинтеза. Иркутск, 1971, с.75-79.

55. Остерман Л.А. Методы исследования бежов и нуклеиновых кислот. -М.: Наука, 1981, 286 с.

56. Прохоренко И.Р., Сердюк О.П., Проскуряков И.И., Ганаго А.О., Абду-рахманов И.А., Ерохин Ю.Е. Выделение и характеристики комплекса реакционного центра с цитохромами из хроматофоров chromatium minutissimum. Докл. АН СССР, 1978, т.243, № 2, с.520-522.

57. Прохоренко И.Р., Сердюк О.П., Торопыгина О.А., Ерохин Ю.Е. Два типа комплексов реакционного центра с цитохромами из Chromatium minutissimum. Докл. АЛ СССР, 1981, т.256, № 2, с.496-499.

58. Пфенниг Н., Зейферт Э. Метаболизм ^-соединений Rhodopseudomonas acidophila. II Мездунар. симпозиум: Рост микроорганизмовна отсоединениях. Пущино, 1977, с. 147-148.

59. Рубин Л.Б. Некоторые вопросы эволюции систем фоторегуляции. В кн.: Фоторегуляция метаболизма и морфогенеза растений. М.: Наука, 1975, с.82-93.

60. Самуилов В.Д. Конверсия энергии в мембранах фотосинтезирующих бактерий. Успехи совр. биол., 1982, т.93, Jg I, с.46-63.

61. Самуилов В.Д. Фотосинтетический аппарат бактерий как преобразователь световой энергии в электрическую. Итоги науки и техники. ВИНИТИ. Биофизика, 1983, т.14, 125 с.

62. Семененко В.Е., Касаткина Т.И. Изучение процесса разрушения клеток хлореллы в дезинтеграторе со стеклянными бусами для количественного извлечения нативных белков. Физиол. растений, 1972, т.19, № I, с.169-179.

63. Серебрякова Л.Г., Зорин Н.А., Гоготов И.Н. Очистка и свойства связанной с хроматофорами гидрогеназы фототрофной бактерии Thiocapsa roseopersicina, Биохимия, 1977, т.42, Jfc 4, с.740-745.

64. Синегуб О.А., Ерохин Ю.Е. Нарушение состояния бактериохлорофилла в хроматофорах c.minutissimum при изменении рН, ионной силы и добавлении окислителей. Мол. биол., 1971, т.5, № 3, с.472-479.

65. Стейниер Р., Эдельберг Э., Ингрэм №. Мир микробов, т.III. М.: Мир, 1979, 486 с.

66. Цыганков А.А., Павлова Е.А., Гоготов И.Н. Активность некоторых ферментов, участвующих В метаболизме н2 у Rhodopseudomonas capsulata, в зависимости от условий роста культур. Микробиология, 1982, т.51, № 2, с.188-193.

67. Черни Н.Е., Соловьева Ж.В., Федоров В.Д., Кондратьева Е.Н. Ультраструктура клеток двух видов пурпурных серобактерий. Микробиология, 1969, т.38, 3, с.479-484.

68. Шапошников В.Н., Осницкая Л.К., Чудина В.И. Развитие пурпурной серной бактерии Chromatium vinosum при разной интенсивности света. Микробиология, 1961, т.30, № 5, с.825-832.

69. Швинка Э.Ю., Адамова Н.П., Рубин Л.Б. Регуляторная и субстратная роль света В развитии Ectothiorhodospira shaposhnikovii. -Микробиология, 1973, т.42, № 3, с.452-457.

70. Шлык А.А., Семенович Н.Д. Метаболическая гетерогенность бактериохлорофилла. Докл. АН СССР, 1972, т.204, В 2, с.479-482.

71. Шлык А.А., Семенович Н.Д., Ильянкова Т.Н. Исследование метаболических взаимоотношений бактериохлорофилла пигментных комплексов антенны и реакционного центра на свету и в темноте. -Докл. АН СССР, 1978, т.242, J3 3, с.726-729.

72. Шувалов В.А. Перенос электрона в реакционных центрах фотосинтезирующих организмов; Автореф. Дис. . докт. биол. наук. М., 1982. - 34 с.

73. Aagaard J., Sistrom W.R. Control on synthesis of reaction center bacteriochlorophyll in photosynthetic bacteria. Photochem. Photobiol., 1972, v.15, No.2, p.209-225.

74. Aiking H., So jka G. Response of Rhodopseudomonas capsulata toillumination and growth rate in a light-limited continuous culture. J. Bacteriol., 1979, v.159, No.2, p.550-556.

75. Arnheim K., Oelze J. Differences in the control of bacteriochlorophyll formation by light and oxygen. Arch. Microbiol., 1985, v.155, No.4, p.299-504.

76. Bartsch E.G. Cytochromes. In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N.Y., Plenum Press, 1978, p.249-277.

77. Bolt J.D., Hunter C.N., Niederman R.A., Sauer K. Linear and circular dichroism and fluorescence polarization of the B875 light harvesting bacteriochlorophyll-protein complex from

78. Rhodopseudomonas sphaeroides. Photochem. Photobiol., 1981a, v.34, N0.5, p.653-656.

79. Bolt J., Sauer K. Linear dichroism of light harvesting bacterio-chlorophyll proteins from Rhodopseudomonas sphaeroides in stretched polyvinyl alcohol films. Biochim. Biophys. Acta, 1979, v.546, No.1, p.54-63.

80. Bolt J.D., Sauer K., Shiozawa J.A., Drews G. Linear and circular dichroism of membranes from Rhodopseudomonas capsulata. -Biochim. Biophys. Acta, 1981b, v.635, N0.3, p.555-541.

81. Boucher F., van der Rest M., Gingras G. Structure and function of carotenoids in the photoreaction center from Rhodospirillum rubrum. Biochim. Biophys. Acta, 1977, v.461, N0.3, p.339-557.

82. Bowyer J.R., Crofts A.R. The photosynthetic electron transferchain of Chromathium vinosum chromatophores. Flash-induced cytochrome b reduction. Biochim. Biophys. Acta, 1980, v.591, No.2, p.298-311.

83. Bradford M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem., 1976, v.72, No.1, p.248-254.

84. Bril C. Action of a non-ionic detergent on chromatophores of Rps. sphaeroides. Biochim. Biophys. Acta, 1958, v.29, No. 2, p.458-460.

85. Brockmann H., Lipinski A. Bacteriocliloropliyll g. A new bacteriochlorophyll from Heliobacterium chlorum. Arch. Microbiol., 1985, v.156, No.1, p.17-19.

86. Brooks K.P., Sander E.G. Preparative polyacrylamide gel electrophoresis: removal of polyacrylate from proteins. Anal. Biochem., 1980, v.107, No.1, p.182-186.

87. Brunisholz R.A., Cuendett P.A., Theiler R., Zuber H. The complete amino acid sequence of the single light harvesting protein from chromatophores of Rhodospirillum rubrum G-9+. -FEBS Lett., 1981, v.129, No.1, p.150-154.

88. Burton K. A study of the conditions and mechanism of the diphenyl-amine reaction for the colorimetric estimation of deoxyribonucleic acid. Biochem. J., 1956, v.62, No.2, p.515-525»

89. ChancLrajan J., Klein L.R. Lowry assay of dilute protein solutions containing high concentrations of triton X-100. Anal. Biochem., 1975, v.69, No.2, p.652-656.

90. Clayton R.K. Toward the isolation of a photochemical reactioncenter in Rhodopseudomonas sphaeroides. Biochim. Biophys. Acta, 1965a, v.75, N0.5, p.512-525.

91. Clayton R.K. Absorption spectra of photosynthetic bacteria and their chlorophylls. In: Bacterial Photosynthesis. (Ed. Gest H.), Ohio, Antioch Press, 1965b, p.495-500.

92. Clayton R.K., Clayton R.J. Relation between pigments and proteins in the photosynthetic membranes of Rhodopseudomonas sphaeroides. Biochim. Biophys. Acta, 1972, v.283, No.3, p.492-504.

93. Clayton B.J., Clayton R.K. Properties of photochemical reaction centers purified from Rhodopseudomonas gelatinosa. Biochim. Biophys. Acta, 1978, v.501, No.3, p.470-477.

94. Clayton R.K., Clayton B.J. B850 pigment protein complex of

95. Rhodopseudomonas sphaeroides: Extinction coefficients, circular dichroism, and the reversible binding of bacteriochloro phyls. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1981, v.78, No.9, p.5583-5587.

96. Cogdell R.J., Crofts A.R. Analysis of the pigment content of an antenna pigment-protein complex from three strains of Rhodopseudomonas sphaeroides. Biochim. Biophys. Acta, 1978, v.502, No.3, Р»409-416.

97. Cogdell R.J., Durant J., Valentine J., Lindsay J.G., Schmidt K. The isolation and partial characterization of the light-harvesting pigment-protein complement of Rhodopseudomonas acidophila. Biochim. Biophys. Acta, 1983, v.722, No.3, p.427-435.

98. Cogdell R.J., Lindsay J.G., Macdonald W., Reid G.P. The subunit structure of the В 800-850 light-harvesting pigment protein complex from Rhodopseudomonas sphaeroides strain 2.4.1. -Biochem. Soc. Trans., 1978, v.7, No.1, p.184-187.

99. Cogdell-, R.J., Lindsay J.G., Reid G.P., Webster G.D. A comparison of the constituent polypeptides of the В 800-850 light-harvesting pigment-protein complex from Rhodopseudomonas sphaeroides. Biochim. Biophys. Acta, 1980, v.591, No.2, p. 312-320.

100. Cogdell R.J., Lindsay J.G., Valentine I., Durant I. A further characterization of the B890 light-harvesting pigment-protein complex from Rhodospirillum rubrum S1. FEBS Lett., 1982a, v.150, No.1, p.151-154.

101. Cogdell R.J., Valentine I., Lindaay J.G., Schmidt K. The structure of the bacterial photosynthetic unit. Biochem. Soc. Trans., 1982b, v.10, No.5, p.334-335.

102. Cogdell R.J., Thornber J.P. Light-harvesting pigment-proteincomplexes of purple photosynthetic bacteria. FEBS Lett., 1980, v.122, No.1, p.1-8.

103. Cohen L.K., Kaplan S. The non-detergent solubilization and isolation of intracytoplasmic membrane polypeptides from Rhodopseudomonas sphaeroides. J. Biol. Chem., 1981a, v.256, No.11, p.5901-5908.

104. Cohen L.K., Kaplan S. Characterization of the three major intracytoplasmic membrane polypeptides isolated from Rhodopseudomonas sphaeroides. J. Biol. Chem., 1981b, v.256, No.11, p.5909-5915.

105. Cohen-Bazire G., Kunisawa R. The fine structure of Rhodospirillum rubrum. J. Cell Biol., 1963, v.16, No.2, p.401-419.

106. Cohen-Bazire G., Sistrom W.R. The procaryotic photosyntheticapparatus. Ins The Chlorophylls. (Eds. Vernon L.P., Seely G.R.), N. Y., Academic Press, 1966, p.313-341.ii

107. Cohen-Bazire G., Sistrom W.R., Staner R.G. Kinetic studies ofpigment synthesis by non-sulfur purple bacteria. J. Cell. Comparat. Physiol., 1957, v.49, No.1, p.25-68.

108. Collins M.L.P., Niederman R.A. Membranes of Rhodospirillum rubrum: physicochemical properties of chromatophore fractions isolated from osmotically and mechanically disrupted cells. J. Bacteriol., 1976, v.126, No.3, p.1326-1228.

109. Cuendet P.A., Zuber H. Isolation and characterization of a bac-teriochlorophyll-associated chromatophore protein from Rhodospirillum rubrum G-9. FEBS Lett., 1977, v.79, No.1, p.96-100.

110. Cuendett P.A., Zuber H. On the amino acid sequence of the major bacteriochlorophyll-associated protein from chromatophores of Rhodospirillum rubrum G-9+. In: Abst. V. Int. Congr. Photosynthesis, Greece, 1980, p.136.

111. Cusanovich M.A., Kamen M.D. Light-induced electron transport in Chromatium strain D. I. Isolation and characterization of Chromatium chromatophores. Biochim. Biophys. Acta, 1968, v.153, No.2, p.376-396.

112. Davidson E., Cogdell R.J. Reconstitution of carotenoides intothe light-harvesting pigment-protein complex from the caro-tenoidless mutant of Rhodopseudomonas sphaeroides R-26. -Biochim. Biophys. Acta, 1981a, v.635, No.2, p.295-503.

113. Davidson E., Cogdell R.J. The polypeptide composition of the

114. B850 light-harvesting pigment-protein complex from Rhodopseudomonas sphaeroides R 26.1. FEBS Lett., 1981b, v.132, No.1, p.81-84.

115. Davis B.J. Disc electrophoresis. II. Method and application to human serum proteins. Ann. N. Y. Acad. Sci., 1964, v.121, No.2, p.404-427.

116. Donohue T.J., Gain B.D., Kaplan S. Alterations in the phospholipid composition of Rhodopseudomonas sphaeroides and other bacteria induced by tris. J. Bacterid., 1982, v.152, No.2, p.595-606.

117. Drachev L.A., Kondrashin A.A., Samuilov V.D., Sculachev V.P.

118. Generation of electric potential by reaction center complexes from Rhodospirillum rubrum. FEBS Lett., 1975, v.50, No.2, p.219-222.

119. Drews G. Nachweis der Zucker in den Thylakoiden von Rhodospiril-lum rubrum und Rhodophseudomonas viridis. 2. Naturforsch., 1968, v.23b, No.5, p.671-675.

120. Drews G. Structure and development of the membrane system of photosynthetic bacteria. Ins Current Topics in Bioenergetics. (Eds. Sanadi D.R., Vernon L.P.), N. Y., Academic Press, 1978, v.8B, p.161-207.

121. Drews G., Oelze J. Organization and differentiation of membranes of phototropic bacteria. In: Advances in Microbial Physiology. (Eds. Rose A.H., Morris J.G.), London, Academic Press, 1981, v.22, p.1-92.

122. Drews G., Peters J., Dier'stein R. Molecular organization and biosynthesis of pigment-protein c'omplexes of Rhodopseudomonas capsulata. Ann. Microbiol. (Inst. Pasteur), 1983, v.134B, p.151-158.

123. Drews G., Wevers P., Dierstein R. Studies on the photоsynthetically inactive mutant Ala+pho~ of Rhodopseudomonas capsulata which synthesizes B870. FEMS Microbiol. Lett., 1979» v.5, No.1, p.139-142.

124. Button P.L., Prince R.C. Reaction-center-driven cytochrome interactions in electron and proton translocation and energy coupling. In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y. and London, Plenum Press, 1978, p.525-570.

125. Feher G., Okamura M.G. Chemical composition and properties of reaction centers. — In: The photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.549-586.

126. Feick R., Drews G. Isolation and characterization of light harvesting bacteriochlorophyll protein complexes from Rhodopseudomonas capsulata. Biochim. Biophys. Acta, 1978, v.501, N0.3, p.499-515.

127. Feick R., Drews G. Protein subunits of bacteriochlorophylls B802 and В855 of the light-harvesting complex II of Rhodopseudomonas capsulata. 2. Naturforsch., 1979, v.54c, p.196-199.

128. Feick R., van Grondelle R., Rijgersberg C.P., Drews G. Fluorescence emission by wild-type and mutant-strains of Rhosopseudomo-nas capsulata. Biochim. Biophys. Acta, 1980, v.595, No.2, p.241-255.

129. Fenna R.E., Matthews B.W. Chlorophyll arrangement in a bacteriochlorophyll protein from Chlorobium limicoia. Nature, 1975, v.258, No.5556, p.575-577.

130. Firsow N.N., Drews G. Differentiation of the intracytoplasmic membrane of Rps. palustris induced by variation of oxygen partial pressure or light intensity. Arch. Microbiol., 1977, v.115, N0.5, p.299-506.

131. Fraker P.J., Kaplan S. Isolation and fractionation of the photosynthetic membranous organelles from Rhodopseudomonas sphaeroides. J. Bacteriol., 1971, v.108, No.1, p.465-475.- 158

132. Fraker P.J., Kaplan S. Isolation and characterization of bacterio-chlorophyll-containing protein from Rhodopseudomonas sphaeroides. J. Biol. Chem., 1972, v.247, N0.9, p.2732-2737.

133. French C.S. The chromoproteins of photosynthetic purple bacteria. Science, 1938, V.88, No.1, p.60-62.

134. Frenkel A.W. Light-induced phosphorylation by cell-free preparations of photosynthetic bacteria. J. Amer. Chem. Soc., 1954, v.76, No.21, p.5568-5569.

135. Fuller R.C., Conti S.F., Mellin D.B. The structure of the photosynthetic apparatus in the green and purple sulfur bacteria. In: Bacterial Photosynthesis. (Eds. Gest H., San Pietro A., Vernon L.P.), Yellow Springs, Antioch Press, 1963, p.71-87.

136. Garcia A., Vernon L.P., Mollenhauer H. Properties of Chromatium subchromatophore particles obtained by treatment with triton X-100. Biochemistry, 1966a, v.5, No. 7, p.2399-2407.

137. Garcia A., Vernon L.P., Mollenhauer H. Properties of Rhodospiril-lum rubrum subchromatophore particles obtained by treatment with triton X-100. Biochemistry, 1966b, v.5, N0.7, p.2408-2416.

138. Garcia A., Vernon L.P., Ke В., Mollenhauer H. Some structural and photochemical properties of Rhodopseudomonas palustris subchromatophore particles obtained by treatment with triton X-100. Biochemistry, 1968a, v.7, No.1, p.319-325.

139. Garcia A., Vernon L.P., Ke B., Mollenhauer H. Some structural and photochemical properties of Rhodopseudomonas species NHTC 133 subchromatophore particles obtained by treatment with triton X-100. Biochememistry, 1968b, v.7, No.1, p.326-332.

140. Gest H., Favinger J.L. Heliobacterium chlorum an anoxygenic brownish-green photosynthetic bacterium containing a "new" formof bacteriochlorophyll. Arch. Microbiol., 1983, v.136, No.1, p.11-16.

141. Gobel P. Quantum efficiencies of growth. In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.B.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.907-925.

142. Gogel G.E., Parkes P.S., Brunisholz R.A., Zuber H., Loach P.A.

143. Complete amino acid sequence of the light harvesting protein from Rhodospirillum rubrum. Biophys. J., 1982, v.37, No.1, p.109a.

144. Golecki J.R., Oelze J. Quantitative determination of cytoplasmic membrane invaginations in phototrophically growing Rhodospirillum rubrum. A freeze-etch study. J. Gen. Microbiol., 1975, v.88, No.2, p.253-258.

145. Golecki J.R., Schumacher A., Drews G. The differentiation of the photosynthetic apparatus and the intracytoplasmic membrane in cells of Rhodopseudomonas capsulata upon variation of light intensity. Eur. J. Cell Biol., 1980, v.23, No.1, p.1-5.

146. Gorchein A. Distribution and metabolism of ornithine in Rhodopseudomonas sphaeroides. Proc. Roy. Soc. В., 1968, v.170, No.1020, p.265-278.

147. Gorchein A., Neuberger A., Tait G.H. The isolation and characterization of subcellular fractions from pigmented and unpig-mented cells of Rhodopseudomonas sphaeroides. Proc. Roy. Soc. В., 1968, v.170, No.1020, p.229-246.

148. Griffiths M., Stanier R.I. Some mutational changes in photosynthetic pigment system of Rhodopseudomonas sphaeroides. J. Gen. Microbiol., 1956, v.14, N0.3, p.698-715.

149. Halsey J.D., Byers B. A large photoreactive particle from Chroma-thium vinosum chromatophores. Biochim. Biophys. Acta,1975, v.387, No.2, p.349-367.

150. Hauska G., Hurt E., Gabellini N., Lockau W. Comparative aspects of quinol-cytоchrome c/plastocyanin oxidoreductases. -Biochim. Biophys. Acta, 1983, v.726, No.1, p.97-133.

151. Haut A., Tudhofe G.R., Cartwright G.E., Wintrobe M.M. The nonhe-moglobin erythrocytic proteins studied by electrophoresis on starch gel. J. Clin. Invest., 1962, v.41, N0.3, p.579-587.

152. Hayashi H., Morita S. Near-infrared absorption spectra of light harvesting bacteriochlorophyll protein complexes from Chromatium vinosum. J. Biochem., 1980, v.88, N0.5, p.1251-1258.

153. Hayashi H., Miyao M., Morita S. Absorption and fluorescencespectra of light-harvesting bacteriochlorophyll-protein complexes from Rhodopseudomonas palustris in near-infrared region. J. Biochem., 1982a, v.91, N0.3, p.1017-1027.

154. Hayashi H., Nozawa T., Hatano M., Morita S. Circular dichroism of Bacteriochlorophyll a in light harvesting bacteriochlorophyll protein complexes from Chromatium vinosum. J. Biochem. , 1981, v.89, N0.6, p.1853-1861.

155. Heinemeyer E.-A., Schmidt K. Changes in carotenoid biosynthesis caused by variations of growth conditions in cultures of Rhodopseudomonas acidophila strain 7050. Arch. Microbiol.;1983, v.134, N0.3, p.217-221.

156. Jacob J.S., Miller K.R. Structure of a bacterial photosynthetic membrane» Arch. Biochem. Biophys., 1983, v.223, No.1, p.289-290.

157. Kaiser I., Oelze J. Growth and adaptation to phototrophic conditions of Rhodospirillum rubrum and Rhodopseudomonas sphaeroides at different temperatures. Arch. Microbiol., 1980, v.126, No.2, p.187-194.

158. Kampf C., Pfennig N. Capacity of Chromatiaceae for chemotrophic growth. Specific respiration rates of Thiocystis violaceae and Chromatium vinosum. Arch. Microbiol., 1980, v.127, No.2, p.125-135.

159. Kaplan S. Control and kinetics of photosynthetic membrane development. In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.809-840.

160. Katz J.J., Norris J.R. Chlorophyll and light energy transduction in photosynthesis. Curr. Top. Bioenerg., 1973» v.5, No.1, p.41-75.

161. Solubilization of membrane-bound cytochrome. Biochim. Biophys. Acta, 1971a, v.234, No.3, p.458-467.

162. Kennel S.J., Kamen M.D. Iron-containing proteins in Ghromatium.1.. Purification and properties of cholate-solubilized cytochrome complex. Biochim. Biophys. Acta, 1971b, v.253, No.1, p.153-166.

163. Madigan M., Cox J.C., Gest H. Photopigments in Rhodopseudomonas capsulata cells grown anaerobically in darkness. J. Bac-teriol., 1982, v.150, No.3, p.1422-1429.

164. Madigan M.T., Gest H. Growth of the photosynthetic bacterium

165. Rhodopseudomonas capsulata chemoautotrophically in darkness with H^ as the energy source. J. Bacterid., 1979, v. 137, No.1, p.524-530.

166. Marrs B., Gest H. Regulation of bacteriochlorophyll synthesis by oxygen in respiratory mutants of Rhodopseudomonas capsulata. J. Bacteriol., 1973, v.114, No.3, p.1052-1057.

167. Matson G. Polyacrylamide gel electrophoresis a simple system using gel columns. Anal Biochem., 1965, v.13, No.2, p.294-304.

168. Maudinas В., Oelze J., Villoutreix J., Reisinger 0. The influence of 2-hydroxybiphenyl on membranes of Rhodospirillum rubrum. Arch. Microbiol., 1973, v.93, No.3, p.219-228.

169. Mauzerall D. Bacteriochlorophyll and photosynthetic evolution. -In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.223-231.

170. Mechler В., Oelze J. Differentiation of thephotosynthetic apparatus of Chromatium vinosum strain D. I. The influence of growth conditions. Arch. Microbiol., 1978a, v.118, No.1, p.91-97.

171. Mechler В., Oelze J. Differentiation of the photosynthetic apparatus of Chromatium vinosum strain D. II. Structural and functional differences. -Arch. Microbiol., 1978b, v.118, No.1, p.99-108.

172. Miller R.R. Structure of a bacterial photosynthetic membrane. -Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1979, v.76, No.12, p.6415-6419

173. MioviS M.L., Gibson J. Nucleotide pools and adenylate energycharge in balanced and unbalanced growth of Chromatium. -J. Bacteriol., 1973, v.114, No.1, p.86-95.

174. Miyazaki T*r Morita S. CD and absorption spectra of bacteriochlorophyll types in Chromatium vinosum and Rhodopseudomonas palustris. Photosynthetica, 1981, v.15, No.2, p.238-243.

175. Monger T.G., Parson W.W. Singlet-triplet fusion in Rhodopseudomonas sphaeroides chromatophores. A probe of the organization of the photosynthetic apparatus. Biochim. Biophys. Acta, 1977, v.460, No.3, p.393-407.

176. Moscalenko A.A., Erokhin Yu.E. Investigation of light-harvesting complex Rps. sphaeroides. PEBS Lett., 1979, v.87, No.2, p.254-256.

177. Niederman R.A. Membranes of Rhodopseudomonas sphaeroides: interactions of chromatophores with the cell envelope. J. Bacterid., 1974, v.117, No.1, p.19-28.

178. Niederman R.A., Gibson K.D. Isolation and physicochemical properties of membranes from purple photosynthetic bacteria. -In: Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.79-118.

179. Niederman R.A., Mallon D.E., Langan J.J. Membranes of Rhodopseudomonas sphaeroides. IV. Assembly of chromatophores in low-aeration cell suspensions. Biochim. Biophys. Acta, 1976, v.440, No.2, p.429-447.

180. Oelze J., Arnheim K. Control of bacteriochlorophyll formation by oxygen and light in Rhodopseudomonas sphaeroides. FEMS Microbiol. Lett., 1983, v.19, No.213, p.197-199*

181. Oelze J., Drews G. Die Morphogenese des Photosyntheseapparates von Rhodospirillum rubrum. II. Die kinetik der Thylakoid-syntheses nach Markierung der Membranen mit V^CjAcetat. Biochim. Biophys. Acta, 19&9, v.173, N0.3, p.448-455.

182. Oelze J., Drews G. Der Einfluss der Lightintensitat und der

183. Sauerstoffspannung auf die Differenzierung der Membranen von Rhodospirillum rubrum. Biochim. Biophys. Acta, 1970,v.203, No.2, p.189-198.

184. Oelze J., Drews G. Membranes of photosynthetic bacteria. -Biochim. Biophys. Acta, 1972, v.265, No.2, p.209-239.

185. Oelze J., Golecki J.B. Properties of reaction center depleted, membranes of Rhodospirillum rubrum. Arch. Microbiol., 1975, v.102, No.1, p.59-64.

186. Olson J»M., Thornber J.P. Photosynthetic reaction centers. In:

187. Membrane Proteins in Energy Transduction. (Eds. Capaldi R.A.), N. Y., Marcel Dekker, Inc., 1979, p.279-340.

188. Ormerod J.G., Ormerod K.S., Gest H. Light-dependent utilization of organic compounds and photoproduction of molecular hydrogen by photosynthetic bacteria; relationships with nitrogen metabolism. Arch. Biochem. Biophys., 1961, v.94, No.3, p.449-463.

189. Parson W.W. Quinones as secondary electron acceptors. In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.455-470.

190. Peters J., Drews G. The B870 pigment-protein complex of Rhodopseudomonas capsulata contains two different pigment-binding polypeptides. FEMS Microbiol. Lett., 1983, v.17, No.1-3, p.235-237

191. Puncheu N.L., Kerber N.L., Garcia A»F. Isolation and purification of reaction center from Rhodopseudomonas viridis ШТС 133 by means of LDAO. Arch. Microbiol. 1976, v.109, No.1-2,p.301-З05.

192. Raymond J., Sistrom W.R. The isolation and preliminary characterization of a halophilic photosynthetic bacterium. Arch. Microbiol., 1967, v.59, No.3, p.255-268.

193. Reed D.W. Isolation and composition of a photosynthetic reaction center complex from Rhodopseudomonas sphaeroides. J. Biol. Chem., 1969, v.244, No.18, p.4936-4941.

194. Reed D.W., Clayton R.K. Isolation of a reaction center function from Rps. sphaeroides. Biochem. Biophys. Res* Commun., 1968, v.30, No.4, p.471-475•

195. Rijgersberg C.P., Grondelle R., Amesz J. Energy transfer and bacteriochlorophyll fluorescence in purple bacteria at low temperature. Biochim. Biophys. Acta, 1980, v.592, No.1, p.53-64.

196. Remsen C.C. Comparative subcellular architechture of photosynthetic bacteria. In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.31-60.

197. Reynolds E.S. The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy. J. Cell Biol., 1963, v.17, No.1, p.208-212.

198. Sauer K. Primary events and trapping of energy. In: Bioenerge-tics of Photosynthesis. (Ed. Govindjee ), N. Y., Academic Press, 1975, p.115-181.

199. Sauer K., Austin L.A. Bacteriochlorophyll-protein complexesfrom the light-harvesting antenna of photosynthetic bacteria. Biochemistry, 1978, v.17, No.10, p.2011-2019

200. Schachman H.K., Pardee А.В., Stanier R.J. Studies on the molecular organization of microbial cells. Arch. Biochem., 1952, v.38, p.213-221.

201. Schmidt K. Biosynthesis of carotenoids. In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum1. Press, 1978, p.729-750.

202. Schon G., Drews G. Der Redoxzustand des NAD(P) und der Cytochrome b und C£ in Abhangig keit vom pOg bei einigen Athiorhod-aceae. Arch. Microbiol., 1968, v.61, N0.3, p.317-326.

203. Schroder J., Drews G. Quantitative Bestimmung der Fettsauren von Rhodospirillum rubrum und Rhodopseudomonas capculata wahrend der Thylakoidmorphogenese. Arch. Microbiol.,1968, v.64, No.1, p.59-70.

204. Schultz J.E., Weaver P.P. Fermentation and anaerobic respiration by Rhodospirillum rubrum and Rhodopseudomonas capsulata. -J. Bacteriol., 1982, v.149, No.1, p.181-190.

205. Schumacher A., Drews G. The formation of bacteriochlorophyllprotein complexes of the photosynthetic apparatus of Rhodopseudomonas capsulata during early stages of development. -Biochim. Biophys. Acta, 1978, v.501, No.2, p.183-194.

206. Schumacher A., Drews G. Effects of light intensity on membrane differentiation in Rhodopseudomonas capsulata. Biochim. Biophys. Acta, 1979, v.547, N0.3, p.417-428.

207. Shiozawa I.A., Cuendett P.A., Drews G., Zuber H. Isolation and characterization of the polypeptide components from light-harvesting pigment-protein complex В 800-850 of Rhodopseudomonas capsulata. Eur. J. Biochem., 1980a, v.111, No.2, p.455-460.

208. Shiozawa I., Cuendett P., Zuber H., Drews G. The light-harvesting В 800-850 complex of Rhodopseudomonas capsulata: Analysis of the native complex and its subunits. In: Abst. Vth Int. Congr. Photosynthesis, Greece, 1980b, p.526.

209. Shiozawa J.A., Welte W., Hodapp N., Drews G. Studies on the size and composition of the isolated light-harvesting В 800-850 pigment-protein complex of Rhodopseudomonas capsulata.

210. Arch. Biochem. Biophys., 1982, v.213, No.2, p.473-485.

211. Siefert E., Pfennig N. Chemoautotrophic growth of Rhodopseudomonas species with Hg and chemotrophic utilization of methanol and formate. Arch. Microbiol., 1979, v.122, No.2, p.177-182.

212. Sistrom W.R. Control of antenna pigment components. Ins The

213. Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.841-848.

214. Sistrom W.R., Clayton R.K. Studies on a mutant of Rhodopseudomonas sphaeroides unable to grow photosynthetically. Biochim. Biophys. Acta, 1964, v.88, p.61-73*

215. Stanier S., Burnham J.C., Lester R.G., Conti S.P. Effect of light intensity of polar lipids of Chromatium strain D. Bacterid. Proc., 1969, v.4-9, p.140.

216. Steffen H., Calvin M. The origin of the long wavelength absorption bands in purple bacteria. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1970, v.41, No.2, p.282-286.

217. Steiner R., Wieschoff H., Scheer H. High-performance liquidchromatography of bacteriochlorophyll b and its derivatives as an aid for structure analysis. J. Chromatogr., 1982, v.242, No.1, p.127-134.

218. Straley S.C., Parson W.W., Mauzerall D.C., Clayton R.K. Pigment content and molar extinction coefficient of photochemical reaction centers from Rhodopseudomonas sphaeroides. -Biochim. Biophys. Acta, 1973, v.305, N0.3, p.597-609

219. Tadros M.H., Suter F., Drews G., Zuber H. The complete aminoacid sequence of the large bacteriochlorophyll-binding polypeptide from light-harvesting complex II (B 800-850) of Rhodopseudomonas capsulata. -Eur. J. Biochem., 1983, v.129, No.3, p.533-536.

220. Takacs B.J., Holt S.G. Thiocapsa floridana; A cytological, physical and chemical characterization. I. Cytology of whole cells and isolated chromatophore membranes. Biochim. Biophys. Acta, 1971a, v.233, No.2, p.258-277

221. Takacs B.J., Holt S.C. Thiocapsa floridana: a cytological, physical and chemical characterization. II. Physical and chemical characteristics of isolated and reconstituted chromatophores. Biochim. Biophys. Acta, 1971b, v.233, No.2, p.278-295.

222. Takamiya K.-I., Nishimura M. Nature of photochemical reactions in chromatophores of Chromatium D. III. Heterogeneity of the photosynthetic units. Biochim. Biophys. Acta, 1975, v.396, No.1, p.93-103.

223. Takemoto J. Kinetics of photosynthetic membrane protein assembly in Rhodopseudomonas sphaeroides. Arch. Biochem. Biophys., 1974, v.163, No.3, p.515-520.

224. Takemoto J., Lascelles J. Coupling between bacteriochlorophylland membrane protein synthesis in Rhodopseudomonas sphaeroides. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1973, v.70, p.799-803.

225. Talsky L., Rygesberg C.P., van Grondelle R., Feik R., Drews G.

226. Derivative absorption spectroscopy of the pigment-protein complexes from Rhodopseudomonas capsulata. Z. Naturforsch., 1980, v.35c, No.9-10, p.722-725.

227. Thornber J.P. Photochemical reactions of purple bacteria as revealed by studies of three spectrally different caroteno-bacteriochlorophyll-protein complexes isolated from Chromatium vinosum strain D. Biochemistry, 1970, v.9, No.13, p.2688-2698.

228. Thornber J.P., Cogdell H.J., Pierson B.K., Seffor H.E.B. Pigment-protein complexes of purple photosynthetic bacteria: an overview. J. Cell Biochem., 1983, v.23, No.1, p.159-169.

229. Thornber J.P., Trosper T.L., Stro.use C.E. Bacteriochlorophyll in vivo: relationship of spectral forms to specific membrane components. In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.133-160.

230. Tonn S.J., Gogel G.E., Loach P.A. Isolation and characterization of an organic solvent soluble polypeptide component from photoreceptor complexes of Rhodospirillum rubrum. Biochemistry, 1977, v.16, No.5, p.877-885.

231. Travelyan W., Harrison J. Studies on yeast metabolism. Functional and mi его determination of cell carbohydrates. Biochem, J., 1952, v.50, No.3, p.298-303.

232. Uffen R.L. Fermentative metabolism and growth of photosynthetic bacteria. In: The Photosynthetic Bacteria. (Eds. Clayton R.K., Sistrom W.R.), N. Y., Plenum Press, 1978, p.857-872.

233. Uffen R.L., Wolfe R.S. Anaerobic growth of purple nonsulfur bacteria under dark conditions. J. Bacteriol., 1970, v.104, No.2, p.462-472.

234. VadeboncoSur C., Noel M., Poipier L., Cloutier J., Gingras G.

235. Photoreaction center of photosynthetic bacteria. 1. Further chemical characterization of the photoreaction center from Rhodospirillum rubrum. Biochemistry, 1979, v.18, No.20, p.4301-4308.

236. Wakim В., Golecki J.R., Oelze J. The unusual mode of altering the cellular membrane content by Rhodospirillum tenue. -FEMS Microbiol. Lett., 1978, v.4, p.199-201.

237. Wang C.S., Smith. R.L. Lowry determination of protein in the presence of triton X-100. Anal. Biochem., 1975, v.63, No.2, p.414-417

238. Weber K., Osborn M. The reliability of molecular weight determinations by dodecyl-sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. J. Biol. Chem., 1969, v.244, No.16, p.4406-4412.

239. Webster G.D., Cogdell R.J., Lindsay G.J. The location of the carotenoid in the В 800-850 light-harvesting pigment-protein complex from Rhodopseudomonas capsulata. FEBS Lett., 1980, v.111, p.391-394.

240. Weiner A.M., Piatt Т., Weber K. Amino-terminal sequence analysis of proteins purified on a nanomole scale by gel electrophoresis. J. Biol. Chem., 1972, v.247, No.10, p.3242-3251.

241. Worden P.B., Sistrom W.R* The preparation and properties ofbacterial chromatophore fractions. J. Cell Biol., 1964, v.23, No.1, p.135-150.

242. Zannoni D., Ingledew W.J. A functional characterization of the membrane bound iron sulphur centres of Rhodopseudomonas capsulata. Arch. Microbiol., 1983, v.135, p.176-181.