Морфология и аминокислотный состав гонады морских ежей на основных стадиях полового цикла в норме и при кадмиевой интоксикации тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, Щепин, Юрий Владимирович

• Щепин, Юрий Владимирович
• 1985

Оглавление диссертации Щепин, Юрий Владимирович

ВВЕДЕНИЕ.

Глава I. ОБЗОР ЛИТЕРАОТЫ.

1.1. Развитие и строение гонад морских ежей

1.2. Половые циклы морских ежей.

1.3. Аминокислоты морских организмов.

1.4. Аминокислоты морских ежей.

1.5. Биологическая роль кадмия.

1.6. Гонадотоксическое действие кадмия.

1.7. Влияние кадмия на обмен аминокислот.

Глава П. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ - ИСШШЩОВАНИЯ.

2.1. Постановка эксперимента.

2.2. Гистологические методы.

2.3* Биохимические методы.

2.4. Статистическая обработка результатов

Глава Ш. МОРФОЛОГИЯ ГОНАДО МОРСКИХ ЕЖЕЙ.

Глава 1У. АМИНОКИСЛОТЫ ГОНАДЫ МОРСКИХ ЕЖЕЙ НА ОСНОВНЫХ

СТАДИЯХ ПОЛОВОГО ЦИКЛА.

4.1. Аминокислоты морского ежа S.nudus.

4.1.1. Свободные аминокислоты.

4.1.2. Белковые аминокислоты.

4.1.3. Незаменимые аминокислоты.

4.2. Аминокислоты морского ежа S.intermedius.

4.2.1. Свободные аминокислоты

4.2.2. Белковые аминокислоты.

4.2.3. Незаменимые аминокислоты.

Глава У. КОРРЕЛЯЦИОННАЯ СВЯЗЬ МВДУ РОСТОМ 00ЦИТ0В, КОЛИЧЕСТВОМ ВСПОМОГАТЕЛЬНЫХ КЛЕТОК И КОНЦЕНТРАЦИЕЙ СВОБОДНЫХ И БЕЛКОВЫХ АМИНОКИСЛОТ.

Глава У1. ДЕЙСТВИЕ КАДМИЯ НА 001ЖЕЗ.

6.1. Электронно-микроскопическое исследование распространения кадмия в гонаде.

6.2. Гистологические изменения в гонаде при действии кадмия.

6.3. Влияние кадмия на обмен аминокислот в гонаде.III

6.4. Ранний эмбриогенез морских ежей при кадмиевой интоксикации.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфология и аминокислотный состав гонады морских ежей на основных стадиях полового цикла в норме и при кадмиевой интоксикации»

Актуальность проблемы. Морские беспозвоночные являются объектами для широких исследований в биологии и медицине, служат источниками новых лекарственных препаратов, используются как высококачественные продукты питания ( Giudice , 1973; Czi-hak ,1975; Ward ,1975; Мотавкин, Вараксин, 1983).

Развитие половых клеток иглокожих морфологическими методами исследовано довольно подробно ( Fuji ,1960,а,в,с; Гнездилова, 1971,1979; Мотавкин, Евдокимов, 1975; Яковлев, 1976,1977; Касьянов и др., 1976,1980; Вараксина, 1978,1980). В этих работах показана стадийность роста ооцитов, изучена морфология вспомогательных клеток, установлена зависимость гаметогенеза морских беспозвоночных от экологических факторов.

Однако, глубокая и всесторонняя оценка процесса развития половых клеток невозможна без биохимических исследований, количество которых пока недостаточно. Особенно мало сведений о сезонной динамике аминокислот, как предшественников синтеза белка, составляющего основу роста ооцитов. Изучение аминокислотного состава гонад морских ежей в течение полового цикла имеет значение как с точки зрения их пищевой ценности, так и в целях получения новых лекарственных препаратов. Кроме этого, данные сведения позволяют определить и рекомендовать оптимальные сроки отлова морских ежей, являющихся промысловыми животными.

Выявление всех особенностей гаметогенеза морских ежей возможно лишь в конкретных условиях обитания вида. В последние годы антропогенное воздействие на морские экосистемы тяжелыми металлами вызывает острую необходимость оценки как уровня загрязнения, так и его последствий. Кадмий является одним из глобальных токсикантов, интерес к которому вызван постоянным возрастанием его концентрации в окружающей среде, специфичным действием на животные организмы, которое пока еще недостаточно изучено (Власова, Христофорова, 1982). Поступая в морскую воду, кадмий аккумулируется в гидробионтах в количествах значительно превышающих таковые в окружающей среде (Патин, 1979, 1980; Fraizer , 1979; Eagle ,1980). В настоящее время все большее распространение получают биологические методы контроля состояния окружающей среды, 0 степени и характере загрязнения моря можно судить по организмам - мониторам, устойчивым к различным токсикантам.

Морские ежи обладают рядом ценных качеств для исследования влияния различных факторов среды на процессы развития. Возможность получения большого числа гамет, простота инкубации зародышей, высокая проницаемость яйцеклеток обусловили широкое применение морских ежей для массовых токсикологических и фармакологических тестирований (Бузников, Подмарев, 1975).

Цель и задачи исследования. В связи с вышеизложенным целью настоящей работы явилось изучение аминокислотного состава гонад морских ежей S.nudus и S.intermedius на основных стадиях полового цикла, а также влияние кадмия на репродуктивную функцию половой железы и ее аминокислотный состав.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучение динамики содержания свободных и связанных в белках аминокислот в гонадах морских ежей в течение полового цикла.

2. Определение корреляционной связи между морфологическими показателями гонады и содержанием аминокислот в течение полового цикла,

3. Изучение действия кадмия на морфологию гонады морских ежей.

4. Изучение влияния кадмия на аминокислотный состав гонад морских ежей.

5. Изучение действия кадмия на ранний эмбриогенез морских ежей.

Научная новизна. В настоящей работе впервые изучена динамика содержания свободных и белковых аминокислот в гонадах морских ежей S.nudus и s.intermedins в течение полового цикла.

Впервые оцределена корреляционная связь между ростом ооци-тов, количеством вспомогательных клеток и концентрацией свободных и белковых аминокислот в развитии гонады морских ежей.

Впервые изучены гистологические и биохимические изменения в гонадах морских ежей при действии различных концентраций кадмия.

Впервые изучен ранний эмбриогенез, определено количество аномалий на разных стадиях развития морских ежей при кадмиевой интоксикации.

Практическая значимость. Морские беспозвоночные, как естественные источники биологически активных веществ применяются в лечении различных заболеваний, а также используются как высококачественный продукт питания. Полученные данные по аминокислотному составу гонад морских ежей дают новые сведения как с точки зрения их пищевой ценности, так и в целях получения новых лекарственных препаратов.

Изучение динамики содержания аминокислот в течение года,позволяет определить и рекомендовать оптимальные сроки отлова морских ежей, являющихся промысловыми животными.

Исследование влияния кадмия на репродуктивную функцию морских ежей дает возможность использовать их как организмы-мониторы с целью определения и контроля уровня загрязненности моря.

Заключение диссертации по теме «Другие cпециальности», Щепин, Юрий Владимирович

ВЫВОДЫ

1. В гонадах морских ежей s.nudus и s.intermedius обнаружено 17 аминокислот: аспарагиновая, треонин, серин, глутаминовая, пролин, глицин, аланин, цистеин, валин, метионин, изолейцин, лейцин, тирозин, фенилаланин, лизин, гистидин и аргинин.

2. Качественный состав аминокислот гонад морских ежей s.nudus и s.intermedius одинаков. Некоторые различия имеются в колио чественном содержании глицина, цистеина и леицина.

3. Гонады морских ежей S.nudus и S.intermedius содержат 7 незаменимых аминокислот (треонин, валин, метионин, изолейцин, лейцин, фенилаланин, лизин), наибольшая концентрация которых наблюдается для s.nudus в июле, для S.intermedius в сентябре.

4. Концентрация аминокислот в гонадах морских ежей в течение полового цикла периодически изменяется. Общий пул свободных аминокислот у s.nudus повышается в октябре и феврале, снижается в декабре и апреле. Содержание аминокислот в белках гонады увеличивается в декабре и июле, уменьшается - в феврале.

5. Сезонная динамика свободных и белковых аминокислот коррелирует с ростом ооцитов и количеством вспомогательных клеток в течение года.

6. Хроническое действие различных концентраций кадмия вызывает гистологические и биохимические изменения в гонадах морских ежей, а также аномалии в развитии зародышей на стадиях: образование оболочки оплодотворения, первое дробление, бластула, гастру-ла, ранний плутеус.

7. Характер повреждающего воздействия кадмия зависит от дозы токсиканта и времени пребывания морских ежей в растворе сульфата кадмия.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В настоящей работе изучены аминокислоты гонад морских ежей S.nudus и S.intermedius в течение репродуктивного цикла. Установлено, что половые железы этих иглокожих содержат 17 аминокислот: аспарагиновую, треонин, серин, глутаминовую, пролин, глицин, аланин, цистеин, валин, метионин, изолейцин, лейцин, тирозин, фенилаланин, лизин, гистидин и аргинин. Качественный состав свободных и белковых аминокислот одинаков и остается постоянным в течение всего полового цикла. Среди аминокислот белков гонады S.nudus на всех стадиях развития преобладают глицин, лизин, аспарагиновая и глутаминовая кислоты. Их концентрации составляют 12-1% от суммы всех белковых аминокислот. Наименьшее содержание (до 2%) отмечено у метионина и цистеина.

Концентрация свободных аминокислот в гонаде на 1-2 порядка ниже содержания аминокислот в белках. Свободный глицин во много раз превышает уровни остальных аминокислот и достигает 42$ от их общей суммы. Минимальное содержание (до 1%) имеют цистеин, пролин и аспарагиновая кислота.

Аминокислотный состав гонад морского ежа S.intermedius полностью идентичен спектру аминокислот s.nudus . Однако, в количественном содержании отдельных аминокислот обнаружены некоторые различия. В белках гонад S.intermedius концентрация глицина значительно ниже, чем у s.nudus . Среди свободных аминокислот в гонадах S.intermedius отмечено более высокое содержание цистеина и лейцина. Очевидно, это отражает эволюционные различия близких видов морских ежей.

В гонадах S.intermedius концентрация свободного глицина (до 33$) также значительно превышает уровни других аминокислот. Это характерная особенность морских ежей (Reverbery ,1964).

Известно, что свободные аминокислоты являются осмотически активными соединениями ( Sansone et al. ,1978). Высокое содержание такой низкомолекулярной аминокислоты как глицин повышает адаптационные возможности вида и предохраняет животное от осмотического шока ( Tucker ,1978).

При исследовании аминокислотного состава гонад морских ежей s.nudus и s.intermedius обнаружены периодические изменения этих соединений в течение года.

Начало полового цикла s.nudus характеризуется высокой концентрацией свободных аминокислот. Эти вещества, очевидно, локализованы в основном во вспомогательных клетках, которые в это время занимают 11% площади ацинусов (Вараксина,1980). Максимальный фонд свободных аминокислот (октябрь) цредшествует росту ооцитов осенней генерации и обеспечивает в них необходимый уровень синтеза белка. Рост и созревание ооцитов сопровождается снижением концентрации свободных аминокислот и повышением уровня аминокислот в белках гонады. Этот процесс продолжается до декабря, когда замедляется развитие ооцитов осенней генерации.

С наступлением зимних отрицательных температур воды в гонадах начинается массовая резорбция ооцитов., увеличивается количество вспомогательных клеток. Последние накапливают в цитоплазме глобулы, утилизируя различные биохимические компоненты: липи-ды, полисахариды, белки (Вараксина, 1980; Takashima , 1970 а,б). Свободные аминокислоты в период наибольшего развития вспомогательных клеток имеют значительную концентрацию. Это согласуется с данными Фергюсона, который также зимой обнаружил большое содержание ЭТИХ веществ В гонадах морской звезды Echinaster echino-phorus ( Ferguson ,1975). Очевидно, высокий уровень свободных аминокислот имеет значение в сохранении аминоазота в зимний период репродуктивного цикла. При ограниченном количестве пищи и низких температурах трудно представить, что накопление свободных аминокислот происходит за счет экзогенных источников. Очевидно, в период активной резорбции ооцитов белки распадаются до аминокислот, которые и накапливаются в свободном состоянии во вспомогательных клетках. В соответствие с этим в феврале значительно снижается содержание аминокислот в белках гонады.

На стадии активного гаметогенеза происходит резкий спад общего фонда свободных аминокислот, который обусловлен, как мы полагаем, двумя причинами. Во-первых, усиленная пролиферация оого-ний и рост половых клеток требует использования свободных аминокислот в качестве пластического материала. В соответствие с этим на стадии активного гаметогенеза в гонаде увеличивается концентрация белковых аминокислот. Во-вторых, общая активация биохимических и физиологических процессов требует, несомненно, больших энергетических затрат. Свободные аминокислоты являются дополнительным источником энергии, основная часть которой выделяется за счет активного окисления липидов (Рудникова,1975).

Преднерестовая стадия развития гонады характеризуется активацией вителлогенеза. В ооцитах формируется основная масса запасного белка, возникают желточные гранулы сложного химического состава (Yamamoto, Oota ,1967). Свободные аминокислоты используются в основном в пластическом обмене, участвуя в образовании желтка и белков протоплазмы зрелых ооцитов. В соответствие с этим с мая по август уровень свободных аминокислот снижается. Концентрация аминокислот в белках гонады сначала возрастает, достигая в июле наибольшего значения, а затем незначительно снижается в августе. Известно, что в зрелых яйцеклетках синтез белка фактически прекращается ( Мопгоу ,1965; Mackintosh , Bell , 1969). Тем не менее, перед нерестом наблюдается увеличение среднего объема ооцитов, что происходит, очевидно, за счет веществ небелкового происхождения.

Корреляционно-регрессионный анализ биохимических и морфологических данных показал, что между свободными, белковыми аминокислотами и количественными параметрами половых и вспомогательных клеток существует корреляционная связь.

Рост и созревание половых клеток сопровождается значительным накоплением белка ( uiiman ,1973). Поэтому, наиболее тесная корреляция обнаружена между средним объемом ооцитов и концентрацией аминокислот в балках гонады. Коэффициент корреляции имеет высокое и положительное значение ( г =0,81; р/0,01).

Связь между средним объемом ооцитов и концентрацией свободных аминокислот менее существенна и отрицательна по знаку ( г = -0,58; р/0,05). То есть, рост ооцитов в течение полового цикла сопровождается снижением уровня свободных аминокислот в гонаде. Увеличение концентрации этих соединений происходит,когда средние размеры половых клеток уменьшаются, например, в период их резорбции. Данная корреляционная связь характеризует лишь пластическую функцию свободных аминокислот, не учитывая роли этих веществ в энергетических и регуляторных механизмах.

Изменения вспомогательных клеток и белковых аминокислот в течение года связаны отрицательной корреляционной зависимостью ( г = -0,49; р>0,05). При увеличении или уменьшении количества вспомогательных клеток происходит соответственно снижение или повышение концентрации аминокислот в белках гонады.

Общий пул свободных аминокислот связан с количеством вспомогательных клеток положительной корреляцией ( г =0,64; р/0,05). Линии графиков этих величин изменяются синхронно, практически повторяя друг друга (рис.22). Очевидно свободные аминокислоты гонады локализованы в основном во вспомогательных клетках.

Одной из задач настоящей работы было изучение действия различных добавок сульфата кадмия на рецродуктивную функцию половой железы и на аминокислотный состав этого органа у морского ежа S.intermedius.

Методами электронной микроскопии установлено, что интенсивность накопления и локализация кадмия в гонаде зависит от концентрации металла и времени пребывания морских ежей в кадмиевом растворе. При короткой экспозиции (6 суток) металл распределяется в основном в межклеточных пространствах. Увеличение времени действия токсиканта до 15 и 40 суток вызывает интенсивное накопление кадмия как во вспомогательных, так и половых клетках.

Гистологические наблюдения показали, что различные дозы токсиканта действуют на половые железы неодинаково. Концентрация кадмия 0,1 мг/л к 30 дню эксперимента вызывает увеличение числа мелких ооцитов, вступающих в стадию раннего цротоплазматическо-го роста. Доза металла 0,5 мг/л также стимулирует образование мелких ооцитов. Их число увеличивается в 2 раза по сравнению с контролем. Сходный процесс наблюдается в гонаде домашнего голубя Domestic pigeon при действии 0,5 мг кадмия на 100 г сухого веса ( Sarkar, Damahapatra ,1977).

Стимулирующий эффект кадмия в малых дозах показан и для морских водорослей. У cioreiia eiiipsoidea под влиянием токсиканта в концентрации 5 мкМ наблюдается увеличение числа клеток и содержания в них хлорофилла. При более высоком уровне металла происходит цитолиз (Ткаченко и др., 1974).

Повышение уровня кадмия до 1,0 мг/л вызывает резорбцию значительного числа растущих ооцитов и зрелых клеток. Дегенеративные изменения под влиянием кадмия описаны в репродуктивной системе позвоночных. Введение этого металла самкам крыс прерывает беременность и вызывает рассасывание плода (Паржизек, 1977). При максимальной дозе токсиканта - 5,0 мг/л морфологических изменений в гонадах не обнаружено, так как в течение 5 часов наступила гибель животных.

Таким образом, относительно низкие концентрации кадмия стимулируют образование мелких ооцитов, в то время как его более высокие дозы вызывают резорбцию половых клеток.

Биохимическими исследованиями установлено, что при концентрации кадмия 0,1 мг/л снижается уровень II свободных аминокислот, что указывает на активацию биосинтетических процессов под влиянием малых доз металла. Это соответствует данным, полученным на млекопитающих ( Koiiczewsky, Even f 1981). Повышение дозы кадмия до 1,0 мг/л вызывает уменьшение концентраций 13 свободных аминокислот и более значительное снижение их общего содержания. Очевидно, это объясняется включением защитных механизмов, связанных с синтезом металлотионеинов - низкомолекулярных белков, характеризующихся высоким уровнем цистеина и отсутствием ароматических аминокислот ( Kagi, Vaiiee ,1960). Наряду с этим, цри 1,0 мг/л в гонаде увеличивается концентрация тирозина, лизина и аспарагиновой кислоты. То есть, несмотря на защитную функцию металлотионеинов, в отдельных случаях наблюдается резорбция половых клеток, которая, как нами ранее установлено, сопровождается накоплением свободных: аминокислот.

Максимальная доза кадмия - 5,0 мг/л приводит к наиболее сильным изменениям в содержании свободных аминокислот. Их общий пул увеличивается. Уровень цистеина снижается, причем более значительно, чем при дозе 1,0 мг/л. Очевидно, цри 5,0 мг/л синтез металлотионеинов более активен. Увеличение концентрации этих белков при повышении содержания кадмия обнаружено у моллюсков Patella vulgata ( Noel-Lambоt et al. ,1980), и Mytilus edulis (George, Coombs ,1977).

Вместе с тем высокий уровень токсиканта ингибирует активность ферментных систем, обуславливающих дезаминирование и утилизацию аминокислот (Альберт, 1971). Этим объясняется повышение концентрации 9 свободных аминокислот и их общего количества, что отражает преобладание катаболических процессов (Ленинджер, 1974).

Белковые аминокислоты, как структурные компоненты протеинов, характеризуются стабильностью своего состава (Майстер, 1961). Поэтому, изменения их концентраций в белках гонад морских ежей после кадмиевого воздействия выражены значительно меньше, чем у свободных аминокислот. При всех опытных дозах токсиканта общее содержание белковых аминокислот остается на уровне контроля.

При минимальном уровне кадмия - 0,1 мг/л в белках гонад увеличивается концентрация цролина, глицина и метионина. Снижается содержание глутаминовой кислоты. Доза металла 1,0 мг/л вызывает уменьшение концентрации 7 аминокислот и повышение лишь одной -пролина. При наибольшем уровне токсиканта - 5,0 мг/л среди всех белковых аминокислот снижается содержание пролина и особенно глицина - на 45% по сравнению с контролем.

Наблюдения за эмбриогенезом морских ежей подтвердили отмеченные гистологические и биохимические изменения в гонадах беспозвоночных. Хроническое отравление половозрелых особей морских ежей сульфатом кадмия вызывает нарушения эмбрионального развития потомства. Количество аномалий на контрольных стадиях развития зависит от дозы кадмия и времени пребывания в растворе токсиканта. Следует различать стадии, которые действительно более чувствительны к повреждающему фактору и стадии, на которых сильнее проявляются ранее нанесенные повреждения (Смирнова и др., 1977). К первым необходимо отнести стадию оплодотворения, на которой при всех дозах металла процент аномалий довольно высок (40,9 -64,0%). Эффект действия кадмия мало заметен на второй индикаторной стадии - деление на два бластомера. Число аномалий на этой стадии (9,0 - 12,0%) значительно ниже, чем при оплодотворении. В то же время известно, что при воздействии нефтяных углеводородов на развивающиеся половые клетки морских ежей, процессы дробления более чувствительны к этому фактору, чем процесс оплодотворения ( Allen ,1971; Ващенко, 1980).

Известно, что критическим периодом в развитии принято считать стадию перехода к гаструле. Именно в этот период происходит детерминация важнейших частей будущего организма, а затем интенсивная дифференциация (Светлов, 1978). Повышение дозы кадмия увеличивает количество аномальных гаструл до 44,3%.

Однако, наибольшая смертность при всех концентрациях кадмия наблюдается на стадии раннего плутеуса, где отмечено 100% отклонение от нормы. Очевидно, эта стадия является критическим периодом с точки зрения выявления уже имеющихся дефектов.

Список литературы диссертационного исследования Щепин, Юрий Владимирович, 1985 год

1. АЛЕКСЕЕНКО Л.П. - Аминокислотный анализ белков, тканевых эк-страктов и биологических жидкостей. В кн.: Современные методы в биохимии, т.1, М., Медицина, 1964, с.129-161.

2. АЛЬБЕРТ Э. Избирательная токсичность. М., Мир, 1971, 431 с.

3. БЕСПАЛЪКО Л.Е., ЛИФЛЯНД Л.М. Гигиеническая оценка соединений кадмия в окружающей среде. Гигиена и санитария, 1979, 115, с.66-69.

4. БОЯДЖИЕВ В., ХАЛАЩЧЕВА Л., НИКОЛАЕВА П. Влияние свинцовойинтоксикации на содержание некоторых аминокислот в крови и печени белых 1фыс. Гигиена и санитария, 1968, J°3, с.84-88.

5. БУЗНИКОВ Г.А., ПОДМАРЕВ В.К. Морские ежи Strongylocentrotusdrobachiensis, S.nudus, S.ifitermedius.-B кн.: Объекты биологического развития. М., Наука, 1975, с.188-216.

6. БУРУКОВСКШ Р.Н. Биология розовой креветки западного побережья Африки. Архив анатомии и гистологии, 1970, J£6 с. 5666.

7. БЫКОВ В.П. Белки и небелковые азотистые вещества рыб. В кн.:

8. Использование биологических ресурсов Мирового Океана. М., Наука, 1980, с.106-130.

9. ВАРАКСИНА Г.С., ШЕЗДИЛОВА С.М., ЕВДОКИМОВ В.В., НОВИКОВА

10. Г.П. Сезонная характеристика и экспериментальная регуляция гаметогенеза у иглокожих. В кн.: Биология морских моллюсков и иглокожих. Владивосток, ДВНЦ АН СССР, 1974, с.26-29.

11. ВАРАКСИНА Г.С. Гистофизиология вспомогательных клеток гонады морских ежей strongyiocentrotus nudus и Strongyiocentrotus intermedius . Дис. канд.биол.наук. Л., Ин-Т ЦИТОЛ. АН СССР, 1978.

12. ВАРАКСИНА Г.С. Морфология вспомогательных меток в репродуктивном цикле морских ежей. Биология моря, 1980, с.38-44.

13. ВАЩЕНКО М.А. Влияние дисперсантов на эмбриональное развитие морского ежа strongyiocentrotus nudus .Биология моря,1978, J£ 5, с.56-62.

14. ВАЩЕНКО М.А. Влияние водорастворимых углеводородов легкогодизельного топлива на развитие половых клеток и качество потомства у морского ежа strongyiocentrotus nudus . Биология моря, 1980, Jfc 4, с.68-73.

15. ВЛАСОВА Г.А., ХРИСТОФОРОВА Н.К. Действие кадмия на раннийонтогенез морского ежа Strongyiocentrotus intermedius

16. Биология моря, 1982, Ш 4, с.31-36.

17. ВОРОБЬЕВА P.O., ШАБАЯША Л.П. Экспериментальное исследование токсических свойств различных соединений кадмия. Гигиена и санитария, 1975, )&2, с. 102-104.

18. ВОРОБЬЕВА P.O. Гигиена и токсикология кадмия. - Научныйобзор. ,М.,ВШИМИ, 1979, 60 с.

19. ГНЕЗДИЛОВА С.М. Морфологическая и цитохимическая характеристика оогенеза и половых циклов у морских ежей strongy-locentrotus nudus И Strongylocentrotus intermedins Дис. канд.биол.наук. Владивосток, 1971.

20. ГНЕЗДИЛОВА С.М., ВАСИЛЬЕВА B.C. Температурная зависимостьрепродуктивного процесса морских ежей рода Strongylocentrotus залива Петра Великого. Материалы 1У Всесоюзного коллоквиума по иглокожим. Тбилиси, 1979, с.49-52.

21. ГОФМАН Э. Динамическая биохимия. М.,Мир, 1971, 311 с.

22. ДАВЛЕТОВ Э.Г. Активность некоторых тканевых ферментовэнергетического обмена у крыс при отравлении ртутью и кадмием. Тр. Башк. мед. ин-та, т.23, вып. I, 1976, с.32-34.

23. ДАВЛЕТОВ Э.Г., СОРОКИНА B.C. К анализу биохимического механизма токсического действия тяжелых металлов. Тр. Ленин-гр. сан-гигиен, мед. ин-та,т.125, 1979, с.33-36.

24. ДЗКЕА С.М. Морфологическая и цитохимическая характеристика овогенеза и половых циклов у приморского гребешка и дальневосточной гигантской мидии. Дис. канд.биол.наук. Владивосток, 1972.

25. ДИКСОН Р., ЛИ И., ШЕРИНС Р. Методы оценки действия загрязнений окружающей среды на репродуктивную функцию. В кн.: Материалы I итогового советско-американского симпозиума по проблеме "Гигиена окружающей среды". М. ,1975, с.96-111.

26. ДЭВЕНИ Т., ГЕРГЕИ Я. Аминокислоты, пептиды и белки. М.,1. Мир, 1976, 364 с.

27. КАСЬЯНОВ В.Л., КУКШ А.Ф., МЕЩВВДЕВА Л.А., ЯКОВЛЕВ Ю.М.

28. Сроки размножения и состояния гонад в нерестовый период у массовых видов двустворчатых моллюсков и иглокожих залива Восток Японского моря. В кн.: Биологические исследования залива Восток. Владивосток, ДВНЦ АН СССР, 1976, с.155-167.

29. КАСЬЯНОВ В.Л., МЕЩВВДЕВА Л.А., ЯКОВЛЕВ С.Н., ЯКОВЛЕВ Ю.М.

30. Размножение иглокожих и двустворчатых моллюсков. М.,Наука, 1980, 207 с.

31. КАФИАНИ К.А., КОСТОМАРОВА А.А. Информационные макромолекулы в раннем развитии животных. М., Наука, 1978, 336 с.

32. КИЗИВЕТТЕР И.В. Основные направления исследований в областитехнологии и биохимии рыб и некоторые особенности белков морских организмов. В кн.: Биохимические исследования на Советском Дальнем Востоке, 1973, т.13 (116); с.106-117.

33. КИМ Е.Д, Особенности изменения аминокислот и липидов вооцитах некоторых карповых рыб цри созревании. В кн. :Раз-нокачественность ошшюнеза у рыб. Киев, 1981, с.61-84.

34. КИМ Е.Д., КУКИНСКИЙ В.Н. Состав белковых аминокислот в незрелой, овулировавшей и перезрелой икре леща разного , возраста. В кн.: Экология и физиология рыб. Киев, 1976, с. 6264.

35. КОЛОМШЦЕВА М.Г., ГАБОВИЧ Р.Д. Микроэлементы в медицине.1. М.,Медицина, 1970, 288 с.

36. ЛАКИН Г.Ф. Биометрия. М.,Медицина, 1980, 293 с.

37. ЛЕВША Э.Н. Общая токсикология металлов. Л.,Медицина,1972, 184 с.

38. ЛЕНИНДЖЕР А. Биохимия. М.,Мир, 1974, 958 с.

39. ЛШСКАЯ Е.Г. 0 кадмии в животных организмах и его отношениик цинку. Дис. канд. биол.наук. Сталино, 1947.

40. МАИСТЕР А. Биохимия аминокислот. М. ,Мир, 1961, 530 с.

41. МАСЛОВА Н.И. Аминокислотный состав суммарных белков теладвухлетков карпа, выращенных при уплотненных посадках. Изв. Тимирязевск. с.-х. акад.,1973, $3, с.185-191.

42. МЕН30Р0ВА Н.И. Влияние ионов 2-х валентных металлов наферментативную активность Ga^, зависимой ДНК-азы изэмбрионов морских ежей Strongylocentrotus intermedius . Биохимия, 1980, т.45, вып.З, с.544-553.

43. МОТАВКИН П.А., ЕВДОКИМОВ В.В. Получение у морского ежа вискусственных условиях зрелых половых клеток и их функциональная характеристика. Биология моря, 1975, I, с.58-67.

44. МОТАВКИН П.А., ВАРАКСИН А.А. Гистофизиология нервной системы и регуляция размножения у двустворчатых моллюсков. М., Наука, 1983, 206 с.

45. НАСЕДКИНА Е.А., ДИДЕНКО А.П., КАСЬЯНЕНКО Ю.И. Аминокислотный состав тканей осьминога. Вопросы питания, 1974, Ш 2, с.80-82.

46. НОЗДРЮХИНА Л.Р. Биологическая роль микроэлементов в организме животных и человека. М., Наука, 1977, 184 с.

47. ПАРЖИЗЕК И. Факторы, определяющие ответную реакцию организма на введение некоторых мшфоэлементов. В кн. :Мщфоэле-менты в медицине, вып.7, Киев, Здоровья, 1977, с.106-109.

48. ПАТИН С.А. -Влияние загрязнения на биологические ресурсы ипродуктивность Мирового Океана. М, Пищевая промышленность, 1979, 303 с.

49. ПАТИН С.А. Некоторые черты биологического действия загрязняющих веществ на морские организмы. В кн.: Человек и биосфера, вып. 6, М., Наука, 1980, с.80-81.

50. ПАТИН С.А., МОРОЗОВ Н.П., РОМАНТЕЕВА А.С., МЕЛЬНИКОВА P.M.,

51. БОРИСЕНКО Г.С. Микроэлементы в экосистеме Японского моря. Геохимия, 1980, JS3, с.423-429.

52. ШРЛЮК М.Ф., ЗЛОБИН B.C., ОРЛОВА Т.А. Изменчивость аминокислотного состава водорослей, обитающих в зоне переменной солености. Гидробиологический журнал, 1974, т.Ю, j£6, с.53-58.

53. ПЕРСОВ Г.М. Адаптивные черты процесса дифференцировки пола у рыб. Тезисы докладов 4 совещания эмбриологов. Л.,ЛГУ, 1963, с.144-145.

54. РОКИТСКИЙ П.Ф. Биологическая статистика. Минск, Выш.школа,1973, 320 с.

55. РУДНИКОВА Л.Т. Липиды гонад морского ежа Strongyiocentrotus nudus на основных стадиях полового цикла. Дис. канд.биол.наук. Владивосток, 1975.

56. САНОЦКШ И.В., ФОМЕНКО В.Н. Отдаленные последствия влияния химических соединений на организм. М.,Медицина,1979, 232 с.

57. СВЕТЛОВ П.Г. Физиология (механика) развития, т.2. Внутренние и внешние факторы развития. Л.,Наука, 1978, 264 с.

58. СМИРНОВА И.Б., ГРАЕВСКШ Э.Я., КОНСТАНТИНОВА С.М., НЕйФАХ

59. А.А. Влияние ионизирующей радиации на отногенез. В кн.: Внешняя среда и развивающийся организм. М.,Наука, 1977, с. 91-139.

60. ТКАЧЕНКО В.П., МОРТЙНА С.В., ЛУКАНКИНА Е.В. Методика проведения токсикологических опытов и некоторые результаты действия металлов на морские одноклеточные водоросли. В кн.: Труды ВНИРО, т.С, 1974, с.63-67.

61. ХЕСИН Я.Е. Размеры ядер и функциональное состояние клеток.

62. М.,Медицина, 1967 , 423 с.

63. ХЛЕБОВИЧ В.В., ОЛОНЦЕВА О.й. Изменение концентрации свободных аминокислот ткани мидии Mytiius edulis в зависимости от солености внешней среды. Докл. АН СССР, т.195, № 2, с.493-495.

64. ЧАРЫЕВ О.Г. Прогнозирование гонадатоксического эффектанекоторых тяжелых металлов в связи с их гигиеническим нормированием в воде. Автореф. дис. канд.мед.наук.Казань, 1977.

65. ШАБАЛИНА Л.П. Вопросы гигиены труда и промышленной токсикологии при получении и применении соединений кадмия. Автореф. дис. канд.мед.наук. М.,1967.

66. ШАТУНОВСКИИ М.И., ШЕВЧЕНКО В.В. 0 сезонных изменениях некоторых физиолого-биохимических показателей североморской пикши. Тр. ВНИИ морского, рыбного хозяйства и океанографии, 1973, вып. 93, с.322-328.

67. ШАПВИЛЬ Ф., ЭННИ А. Биосинтез белка. Л.,Мир, 1977,315 с.

68. ЩЕРБАКОВА И.В. Изменение белков сыворотки и их функциональных групп при хроническом отравлении соединениями кадмия и детоксикация организма антидотами. Автореф. дис. канд.мед.наук. Рязань, 1962.

69. ЯКОВЛЕВ С.Н. Сезоны размножения морских ежей strongyiocentrotus nudus и s. intermedius в заливе Восток (Японское море). В кн.: Биологические исследования залива Восток. Владивосток, ДВНЦ АН СССР, 1976, с.136-142.

70. ЯКОВЛЕВ C.H., КАСЬЯНОВ В.Л., СТЕПАНОВ В.В. Экология нереста черного морского ежа в заливе Петра Великого (Японское море). Экология, 1976, J$5, с.85-91.

71. ЯКОВЛЕВ С.Н. Динамика нереста морских ежей strongyiocentrotus intermedius и S. nudus в Японском море. Тезисы докладов I съезда советских океанологов. М., Наука, 1977, вып.II, с.36-37.

72. ЯРЖОМБЕК А.А., 1ЖСЛЕННИК0ВА Н.В. Динамика свободных аминокислот в процессе эмбриогенеза кумжи Salmo trutta ъ. и белуги Huso huso ( L.) . Вопросы ихтиологии, 1972, т.12, J£5, с.946-949.

73. ALLEN Н. Effects of petroleum fractions on the earlidevelopment of a sea urchin. Mar. Pollut. Bull., 1971, v. 2, К 6, p. 138-140.

74. ARMSTRONG D.A., STRANGE K., CROWE J., KHIGHT A., SIMONS M.

75. High salinity acclimation by the prawn Macrobrachium rosenbegii: uptak of exogenous ammonia and changes in endogenous nitrogen compounds.- Biol. Bull., 1981, v.160, N 3, p. 349-365.

76. BARNES H., BLACKSTOCK J. Studies in the biochemistry ofcirripede eggs. IV. The free amino-acid pool in the eggs of Balanus balanoides (L.) and B. balanus (L.) during development.- J. Exp. Mar. Biol, and Ecol., 1975, v. 19, N 1, p. 59-79.

77. BEIG D., CRUZ-LANDIUM C. Sperm reabsorption in sea urchin

78. Echinometra locunter). Cienc. e cult., 1975, v. 27, N 2, p. 221-228.

79. BORDAS E., GABOR S., PAPILIAN V.V. Die Rolle der Thioaminsauren bei durch Kadmium hervorgerufenen experimentellen

80. Hoden schadigunyen. Arch Toxicol., 1976, v. 36, N 2, p. 163-168.

81. BOYD Т.А., СНА CHimG-JA, FORSTER R.P., GOLDSTEIN L. Freeamino acid in tissues of the skate Raja erinacea and the stringray Dasyatis sabina: effects of environmental dilution. J. Exp. Zool,, 1977, v. 199, N 3, p. 435-442.

82. BRIGGS L.B.R. Effects of cadmium on the intracellular poolof free amino acid in Mytilus edulis.- Bull. Environ. Contam. and Toxicol., 1979, v. 22, N 6, p. 838-845.

83. CAJIPE G.J.В., BALAGAT C.A. Chemical composition of thegonads of the sea urchin Diadema setosum. Kalikasan. Philipp. J. Biol., 1979, v. 8, N 1, p. 23-28.

84. CARTER H.E. Essential amino acid. Ann. N.Y. Acad. Sci.,1979, p. 239-248.

85. CHATLYNNE L.G. A histochemical study of oogenesis in,.thesea urchin Strongylocentrotus purpuratus. Biol. Bull., 1969, v. 136, N 2, p. 167-184.

86. CHEN R.W., WHANGER P.D., WESWIG P.H. Biological functionof metallothionein. I. Synthesis and degradation of rat liver metallothionein. Biochem. Med., 1975, N 12, p. 95-Ю5.

87. COGNETT G., DELAVAULT R. La sexualite des asterides.

88. Cah. biol. mar., 1962, v. 3, N 2, p. 157-182.

89. COOK P.A., GABBOTT P.A., YOUNGSON A. Seasonal changes inthe free amino acid composition of the abult barnacle, Balanus balanoides. Сотр. Biochem. and Physiol., 1972, B42, N 3, p. 409-421.

90. COOKE M., JACKSON A., NICKLESS G., ROBENS D.J. Distributionand speciation of cadmium in the terrestrial snail Helix aspersa.- Bull. Environ. Contam. and Toxicol., 1979, v. 23, N 4-5, p. 445-451.

91. COWDEN R.R. Cytochemistry of oogenesis and early embryonicdevelopment. Amer. Zool., 1977, v. 16, N 3, p. 363-374.

92. CZECZUGA В., GIERASIMOW M. Amino acid content in the proteins of fresh- and salt-water crustaceans. Bull. Acad, pol. sci. Ser. sci. biol., 1976, v. 24, N 11, p. 663-666.

93. CZIHAK G. The sea urchin embryo: biochemistry and morphogenesis. Berlin: Springer-Verlag, 1975, p. 671.

94. D'ANIELLO A. Free amino acid in some tissues of marine crustacea. Experientia. 1980, v. 36, N 4, p. 392-393.

95. DAVIS K.B., MEIER A.H., Seasonal and daily variations ofsodium potassium and chloride levels in the plasma and brain of Zonatrichia albicollis. Physiol. Zool., 1974, v. 47, p. 13-21.

96. DUPAUL W.D., WEBB K.L. The effect of temperature on salinity-induced changes in the free amino acid poll of Mya arenaria. Сотр. Biochem. and Physiol., 1970, v. 32, N 4, p. 785-801.

97. EAGLE G.A. The sublethal effects of some trace metals, particularly cadmium, copper, mercury and lead, on various marine organisms. GSIR Res. Rept., 1980, If 382, p. 49.

98. EVANS P.D. The stability of the free amino acid pool inisolated periferal nerves of Carcinus macnas (L.). -J. Exp. Biol., 1973, v. 59, N 2, p. 463-476.

99. FELDMAN S.L., SQUIBB K.S., COUSINS R.J. Degradation ofcadmium-thionein in rat liver and kidney. J. Toxicol, and Environ. Health, 1978, v. 4, N 5-6, p. 805-813.

100. FENAUX L. Maturation of the gonads and seasonal cycle ofthe planktonic larvae of the ophiuroid Amphiura chiajei Forbes. Biol. Bull., 1970, v. 138, p. 262-271.

101. FERGUSON J.С. The role of free amino acid in nitrogen storage during the annual cycle of a starfish. Сотр. Bio-chem. and Phisiol., 1975, A51, N 2, p. 341-350.

102. FERGUSON J.C. Ingestion and assimilation of dissolved aminoacid by a starfish. Сотр. Biochem. and Physiol., 1979, A62, N 2, p. 343-346.

103. FORSTER R.F., GOLDSTEIN L. Intracellular osmoregulatoryrole of amino acids and urea in marine elastobranches. -Amer. J. Physiol., 1976, v. 230, N 4, p. 925-931.

104. FORSTER R.F., HANNAFIN J.A., GOLDSTEIN L. Osmoregulatoryrole of amino acids in brain of the elasmobranch, Raja erinacea. Сотр. Biochem. and Phisiol., 1978, A60, N 1, p. 25-30i

105. FOWLER A.J., SINGH D.N., DWIVEDI C. Effect of cadmium onmeiosis. Bull. Environ. Contam. and Toxicol., 1982, v. 29, N 4, p. 412-415.

106. FRAIZER J.M. Bioaccumulation of cadmium in marine organisms.

107. Environ. Health Perspect., 1979, N 28, p. 75-79.

108. FRANKEME F., NOEL-LAMBOT F., DISTECHE A. Isolation andcharacterization of metallothioneins Cd-loaded mussel Mytilus edulis. Сотр. Biochem. Phisiol., 1980, v. 66C, p. 179-182.

109. FUJI A. Studiea on the biology of the sea urchin. I. Superficial and histological changes in gametogenic process of two sea urchins Strongylocentrotus nudus and S. intermedius. Bull. Fac. Fish. Hokkaido Univ., 1960a, v. 11, p. 1-14.

110. FUJI A. Studies on the biology of the sea urchin. II. Sizeat first maturity and sexuality of two sea urchins, Strongylocentrotus nudus and S. intermedius. Bull. Fac. Fish. Hokkaido Univ., 1960b, v. 11, p. 43-48.

111. FUJI A. Studies on the biology of the sea urchin. III. Reproductive cycle of two sea urchins, Strongylocentrotus nudus and S. intermedius, in southern Hokkaido. Bull. Рас. Pish. Hokkaido.Univ., 1960c, v. 11, p. 49-57.

112. GEORGE S.G., COOMBS T.L. The effects of chelating agentson the uptake and accumulation of Cd by Mytilus edulis. -Mar. Biol., 1977, N 39, p. 261-268.

113. GEORGE S.G., CARPENE E., COOMBS T.L., OVERSELL J., YOUNGSON A,

114. Characterization of Cd-binding proteins from mussels, Mytilus edulis exposed to Cd. Biochim. biophys. acta, 1979, v. 580, N 2, p. 225-233.

115. GILLES R. Oxygen consumption as related to the amino-acidmetabolism during osmoregulation in the blue crab Callin-actes sapidus. Neth.J.Sea Res., 1973, 7, Aug., p. 280289.

116. GIUDICE G, Developmental biology of the sea urchin embryo.

117. N.Y. Ь.: Academic Press, 1973. - 469 p.

118. GOULD E. Low-salinity stress in American lobster, Homarusamericanus, afte chronic sublethal exposure to cadmium: biochemical effects. Helgoland. Meeresuntersuch, 1980, v. 33, N 1-4, P. 36-46.

119. HALATCHEVA L., NIKOLOVA P. The effect of heavy metals (Lead,manganese, Mercury) on the concentration of free amino acid in the liver of rats. Arch. Toxicol., 1980, Sappl. 4, p. 355-357.

120. HAMILTON P.В. Ion-exchange chromatography of amino acid.

121. Anal. Chem., 1958, v. 30, p. 914-926.

122. HARVEY E.B. The American Arbacia and other Sea Urchins.

123. Princeton Univ. Press., 1956. 223 p.

124. HEGAB S.A., HANKE W. The significance of the amino acidduring osmotic adjustment in teleost fish. II. Changes in the stenohaline Cyprinus carpio. Сотр. Biochem. and Physiol., 1983, A74, N 3, p. 537-543.

125. HOLLAND N.D., GRIMMER J.C., KUBOTA H. Gonadal developmentduring the annual reproductive cycle of Comanthus japonica (Echinodermata, Crinoidea). Biol. Bull., 1975, v. 148, N 2, p. 219-242.

126. HOWARD A«G«, NICKLESS G. Heavy metal complexation in polluted molluscs. I. Limpets (Patella vulgata and Patella intermedia). Chem. - Biol. Interactions, 1977, N 16, p. 107-114.

127. JACOBSON K.B., TURNER J.E. The interaction of cadmium andcertain other metal ions with proteins and nucleic acid. -Toxicology., 1980, v. 16, N 1, p. 1-37.

128. KKGI J.H.R., VALLEE B.L. Metallothionein: a Cd- and Zncontaining protein from equine renal cortex. J. Biol. Chem., 1960, v. 235, p. 3460-3465.

129. KAGI J.H.R., VALLEE B.L. Metallothionein: a Cd- and Zncontaining protein from equine renal cortex. II. Physio-chemical properties. J. biol. Chem., 1961, v. 236, p. 2435-2442.

130. KiLGI J.H.R., HIMMELHOCH S., WHANGER P.D., BETHUNE J.L., VALLEE B.L. Equine hepatic and renal metallothioneins.

131. Purification, molecular weight, amino acid compositionand metal content.- J. biol. Chem., 1974, v. 249, p. 3537-3542.

132. KANAZAWA A., TESHIMA S. Essential amino acid of the prawn.

133. Nippon suisan gakkaishi, Bull. Jap. Soc. Sci. Pish., 1981, v. 47, N 10, p. 1375-1377.

134. KASSCHAU M.R.,,SKAGGS M.M., CHEN EDWARD C.M. Accumulationof glutamate in sea anemones exposed to heavy metals and organik amines. Bull. Environ. Contam. and Toxicol., 1980, v. 25, N 6, p. 873-878.

135. KAUSHIK S., LIQUET P. Study of free amino acids in rainbowtrout in relation to salinity changes. II. Ann. hydro-biol., 1977, v. 8, N 3, p. 375-387.

136. KAVANAU J.L. Amino acid metabolism in the early developmentof the sea urchin Paracentrotus. Exp. Cell. Res., 1954, N 7, p. 530-557.

137. KAWAMURA K., TAKI Y. Ecological studies on sea urchin Strongylocentrotus intermedius on the coast of funadomari in the north region of Rebun Island, Sci. Rept Hokkaido Pish. Exp. Sta., 1965, N 4, p. 22-40.

138. Okayama igakkaizasshi, 1979, v. 91, N 1-2, p. 183-186.

139. KOBAYASHI N. Fertilized sea urchin eggs as an indicatorymaterial for marine pollution bioassay, preliminary experiments.- Publ. Seto Mar. Biol. Lab., 1971, v. 18, N 6, p. 379-406.

140. KOBAYASHI N. Stadies on the effects some agents on fertilized sea urchin eggs, as a part of the bases for marinepollution bioassay. Publ. Seto Mar. Biol. Lab., 1973, v. 21, N 2, p. 109-114.

141. KOBAYASHI N. Marine pollution bioassay by sea urchin eggs:an attempt to entrance accuracy. Publ. Seto Mar. Biol. Lab., 1974, v. 21, N 3/6, p. 377-391.

142. KOBAYASHI N. Preliminary experiments with sea urchin pluteusand metamorphosis in marine pollution bioassay. Publ. Seto Mar. Biol. Lab., 1977, v. 24, N 1/3, p. 9-21.

143. KOBAYASHI N. Fertilized molluscan eggs as an indicatorimaterial for marine pollution bioassay. Preliminary experiments. Publ. Seto Mar. Biol. Lab., 1978, v. 19, N 3, p. 68-75.

144. KRIVIS A.F. Marine adhesives. 5. Amino acid content of

145. Mytilus edulis byssal threads. Microchem. J., 1976, v. 20, N 3, p. 315-318.

146. KULISZEWSKI M.J., MCEVEN N.D. The effect of cadmium ofkidney ribosomes. Chem. Biol. Interact., 1981, v. 33, N 2-3, p. 307-308.

147. LASSER G.W., ALLEN W.V. The essential amino acid requerements of the dungeness crab, Cancer magister. Aqua-culture., 1976, v. 7, N 3, p. 235-244.

148. LASSERRE P., GILLES R. Modification of the amino acid poolin the parietal muscle of two euryhaline teleosts during osmotic adjustment. Experientia., 1971, v. 27, N 12, p. 1434-1435.

149. LEE S.S., MATE B.R., VON DER TRENCK K.T., RIMERMAN R.A., BUHLER D.R. MT and. the subsellular localization of mercuryand Cd in the California Sea Lion. Сотр. Biochem. Phisiol., 1977, 57C, p. 45-53.

150. LONNING S., HAGSTROM B.E. The effect of crude oils and thedispersant Corexit 8666 on sea urchin garnets and embryos. -Norw. J. Zool., 1975, v. 23, p. 121-129.

151. LUE-KIM H., WOZNIAK P.C., FLETHER R.A. Cadmium toxicity onsynchronous populations of Chlorella ellipsoidea. Can. J. Bot., 1980, v. 58, N 16, p. 1780-1788.

152. MACKINTOSH F.R., BELL E. Regulation of protein synthesisin sea urchin eggs. J. Molec. Biol., 1969, v. 41, N 3, p. 365-380.

153. MADARIAGA M.A., MATA P., MUNICITO A.M., RIBERA A.A. Changesin the fatty acid patterns of glicerolipids of Dacus Oleae during metamorphosis and development. Insect. Biochem., 1974, v. 4, N 2, p. 151-160.

154. MANCINELLA A. Attualita del cadmio negli organismi viventi:considerazioni fisiopatologiche, cliniche e terapeutiche. -Clin. ter., 1981, v. 98, N 5, p. 545-560.

155. MCBRIDGE W.J. Levels of free amino acids in excitatory andsensory axons of the wolking limbs of the lobster. -Life Sci., 1974, v. 14, N 6, p. 1109-1120.

156. MCEVEN N.D., RAKHRA G.S. Testticular protein synthesisduring the response to subtoxic levels of cadmium. -Homrone Res., 1981, v. 14, N 1, p. 56-69.

157. MERRIAM R.W. The intracellular distribution of the freeamino acid pool in frog oocytes. Exp. Cell Res., 1969, v. 56, N 2-3, p. 259-264.

158. METAILLER R., FEBVRE A., ALLIOT E. Preliminary note on theessential amino-acid of the sea-bass Disentrarchus labrax (Linne). Gen. Fish. Coumc. Mediterranean, Studies and rev., 1973, N 52, p. 91-96.

159. MiRZA M.V., BADEA M. Amino acid dynamics in the mantletissue of pontic Mytilus galloprovincialis Lmc. Rev. roum. biochim., 1976, v. 13, N 1, p. 19-23.

160. MONROY A. An analysis of the process of activation ofprotein sinthesis upon fertilization. Arch. biol., 1965, v. 76, N 2-4, p. 511-522.

161. MOORE S., STEIN W.H. Modified preparation of ninhydrin forphotometrical estimation of amino acid. J. Biol., Chem., 1954, v. 211, p. 907-910.

162. MOORE S., SPACEMAN D.H., STEIN W.H. Chromatography of Amino

163. Acid on sulfonated Polysterene Resins. An Improved System. Anal., Chem., 1958, 30, p. 1185-1189.

164. NAGABHUSHANAM R., MANE.U.H. Seasonal variation in the biochemical composition of the clam Katelisia opima. Riv. biol., 1975, v. 68, N 4, p. 279-301.

165. NAKANO E., YAMAMOTO S. Amino acid component in the fish•egg. Develop. Biol., 1972, v. 28, N 3, p. 528-530.

166. NOEL-LAMBOT F. Distribution of Cd, Zn and Cu in the mussel

167. Mytilus edulis. Existence of Cd-binding proteins similar to metallothioneins. Experientia., 1976, v. 32, N 3, p. 324-326.

168. NOEL-LAMBOT F., BOUQUEGNEAU J.M., FRANKENNE F., DISTECHE A.1. role des metallothioneins dans le stockage des metaux lourds chez les animaux marins. Revue int. Oceanogr. med., 1978, N 49, p. 13-20.

169. NOEL-LAMBOT P., BOUQUEGNEAU J.M., FRANKENNE P., DISTECHE A.

170. OKUBO K., OKUBO T. Study of the bioassay method for theevaluation of water pollution. Use of the fertilized eggs of sea urchins and bivalves. Bull. Tokai Reg. Pish. Lab., 1962, v. 32, p. 131-140.

171. OLAFSON R.W., THOMPSON J.A.J. Isolation of heavy metalbinding proteins from marine vertebrates. Mar. Biol., 1974, N 28, p. 83-86.

172. OLAFSON R.W., KEARNS A., SIM R.G. Heavy metal induction ofmetallothionein synthesis in the hepatopancreas of the crab Scylla serrata. Сотр. Biochem. Physiol., 1979a, 62B, p. 417-424.

173. ORD M.J., AL-ATIA G.R. The intracellular effect of cadmium:an experimental study using Amoebaproteins as a singl cell model. Chem., Biochem. and Biol. Cadmium., Amsterdam e.a., 1979, p. 141-173.

174. OVERNELL J., DAVIDSON I.A., COOMBS T.L. A cadmium-bindingglicoprotein from the liver of the plaice (Pleuronectes platessa). Biochem. Soc. Trans., 1977, N 5, p. 267-269.

175. PARASCHIVESCU D., HURGHISIU I. Mowificari ale continutuluiin aminoacizi liberi la Tetramorium caespitum L. (Formi-cidae Hymenoptera) colectat din zone diferite. - Stud, si cerc. biochim., 1973, v. 16, N 2, p. 181-184.

176. PATENT D.H. The reproductive cycle of Gorgonocephalus caryi

177. Echinodermata: Ophiuroidea). Biol. Bull., 1969, v. 136, p, 241-252.

178. PEC (Ж J., POWELL E.N. Effect of amino acid histidine onthe uptake of cadmium from the digistive system of blue crab Callinectes sapidus. Bull. Environ. Contam. and Toxicol., 1981, v. 27, N 1, p. 34-41.

179. PESCH G.G., STEWART N.E. Cadmium toxicity to three speciesof estuarine invertebrates. Mar. Environ. Res., 1980, v. 3, N 2, p. 145-156.

180. PETZOLDT U., BRIEL G., GOTTSCHEWSKI G.H.M., NEUHOFF V. Freeamino acid in the early cleavage stages of the rabbit egg. Develop. Biol., 1973, v. 31, N 1, p. 38-46.

181. PILLAY K.K., MIR N.B. Observations on the biochemicalchanges in gonads and other organs of Uca annulipes, Portunus pelagicus and Metapenaeus affinis (Decapoda: Crustacea) during the reproductive cycle. Mar. Biol., 1973, v. 18, N 3, p. 167-198.

182. PORBIRI В., B0SC0L0 P., CARELLI G. Effect of chronic cadmium exposure on the ultrastructure of rabbit testis. -Acta med. romana, 1979, v. 17, N 3, p. 177-185.

183. POWELL E.N., KASSCHAU M., CHEN E., KOENIG M., PECON J.

184. Changes in the free amino acid pool during environmentel stress in the gill tissue of the oyster, Crassostrea vir-ginica. Сотр. Biochem. and Physiol., 1982, A71, N 4, p. 591-598.

185. REGNAULT M. Free amino-acids of the larvae of Crangon septemspinosa (Caridea). Variation in their concentration from eclosion to metamorphosis. Their role during develop ment and their importance in nutrition. Marine Biol., 1971, v. 11, N 1, p. 35-44.

186. REVERBERI G., MALIARO M., METAFORA S. Free amino acid inthe development of the Aplysia egg. Acta Embryol. Могphol. Exp., 1964, N 7, p. 101-105.

187. RIDLINGTON J.W., FOWLER B.A. Isolation and partial characterization of a cadmium binding protein from the American oyster (Crassostrea virginica). Chem. - Biol. Interact.,1979, v. 25, N 2-3, p. 127-138.

188. RIEHL R. The oocytes of the goby Pomotoschistus minutus.

189. I. Defermination of amino acid component. Z. Natur-forsch, 1980, C35, N 11-12.

190. RINALDI A.M., PARENTE A. Rate of protein synthesis in oocytes of Paracentrotus lividus. Develop. Biol., 1976, v. 49, N 1, p. 260-267.

191. SAKAMOTO M., KUSHIHATA Т., DEMUR R. Effect of cadmium on14

192. C-proline metabolism in female rats. J. Pharm-Dyn.,1980, v. 3, N 4, p. 21-29.

193. SANDOR D. Etude cytochemique des polysaccharides au coursde la spermatogenese dun amphibien anoure: le discoglosse Discoglossus pictus (OTTH). J. Microsc. (Prance), 1970, v. 9, N 2, p. 243-262.

194. SANSONE G., BIONDI A., NOVIELLO L. Free amino acid in fluidsand tissues of Mytilus galloprovincialis in relation to the environment. Their behaviour as an index of normality of metabolism. Сотр. Biochem. and Physiol., 1978, A61, IT 1, 133-139.

195. SARKAR A.K., DASMAHAPATRA A.K. Effect of cadmium chlorideon the reproductive system of mole domestic pigeon. -Proc. Zool. Soc., 1977, v. 30, p. 7-11.

196. SCHAFER R.D., SWAM E. Free amino acid variations in theanchovy, Engraulis mordax (Girard) from the Los Angeles Coastal Area. Rev. int. oceanogr. med., 1974, N 33, p. 103-110.

197. SCHOFFENIELS E. Amino acid metabolism and cell volumeregulation. Сотр. Physiol. Locomot., Respirat., Transp. and Blood., Amsterdam e.a., 1973, p. 353-385.

198. SELWOOD L.B. Interrelationships between developing oocytesand ovarian tissues in the chiton Sypharochiton septen-triones (Ashby) (Mollusca, Polyplacophora). J. Morphol., 1968, v. 125, N 1, p. 71-104.

199. SELWOOD L.B. The role of the follicular cell during oogenesis in the chiton Sypharochiton septentriones (Ashby) (Polyplacophora, Mollusca). Z. Zellforsch., 1970, v. 104, N 2, p. 178-192.

200. SILVER D.J., COMB D.G. Free amino acid pools in the developing sea urchin Lytechinus variegatus. Exp. Cell Res., 1966, v. 43, p. 699-700.

201. SUYMA M., SUZUKI T. Free and conjugated amino acids in theextract of rainbow trout eggs. Bull, of the Jap. Soc of Sci. Fish., 1978, v. 44, N 4, p. 345-348.

202. TAKASHIMA Y. Electron microscopic observations on the oogenesis in sea urchin stained with phosphotungstic acid. -Med. J. Osaka Univ., 1970a, v. 21, N 1, p. 13-36.

203. TAKASHIMA Y. Electron microscopic observations on the oogenesis in sea urchin. Jap. J. Develop. Biol., 1970 b, v. 24, N 1, p. 13-15.

204. TALBOT V., MAGEE R.J. Naturally-occuring heavy metal bindingproteins in invertebrates. Arch. Environ. Contam. Toxicol., 1978, N 7, p. 73-81.

205. TALLAN H.H., MOORE S., STEIN W.H. Studiens of free aminoacid and related compouds in the tissues of cat. J. Biol., Chem., 1954, v. 211, N 2, p. 927-939.

206. TANDON R.S., JOSHI B.D. Seasonal variations in bloodglucose and serum calcium levels of fresh water fishes.-Ztschr. Tierphysiol., Tierernahr. and Puttermittelk., 1974, Bd. 33, S. 108-112.

207. TIMM P. Zur Histochemic der Schwermetalle das Sulfid

208. Silberverfanzen. Deusche Zeitschrift fur gerichtliche Medizin, 1958, Bd. 46, S. 706-711.

209. TUCKER R.K. Free amino acids in developing larvae of thestone crab Menippe mercenaria. Сотр. Biochem. and Physiol., 1978, A60, N 2, p. 169-172.

210. UEDA T. Changes in the fatty acid composition of mackererllipid and probably related factors. Seasonal variations in fatty acid composition. Bull. Jap. Soc. Sci. Pish., 1976, v. 42, N 5, p. 557-560.

211. ULLMAN S.L. Oogenesis in Tenebrio molitor: histologicaland autoradiographical observations on pupal and adult ovaries. J. Embryol. and Morphol., 1973, v. 30, N 1, p. 179-217.

212. WARD J. Sea Urchins a new Victorian industrys anstral.

213. Pish, 1975, v. 34, N1, p. 16.

214. WEBB M. Functions of hepatic and renal MT in the controlof the metabolism of cadmium and certain other bivalent cations. Experientia Suppl., 1979,■ N 34, p. 313-320.

215. WEBER R.E., MARREWIJK W.J.A. Free amino acids in the shrimp

216. Crangon crangon and their osmoregulatory significance. -Netherl. J. Sea. Res., 1972, v. 5, N 4, p. 391-415.

217. WOODHAM A.A. The prediction of nutritive value in proteinconcentrates from amino acid composition. Proc. 10th Int. Congr. Uutr., Kyoto., 1975., Kyoto, 1976, p. 682.

218. YAMAMOTO К., OOTA I. An electron microscope study of theformation of the yolk globule in the oocyte of zebra-fish, Brachidamio rerio. Bull. Рас. Pish. Hokkaido Univ., 1967, v. 17, N 4, p. 165-174.200. yishida м. Влияние кадмияна различные органы крыс.

219. Yakugaku zasshi, 1973, v. 93, N 1, p. 119-123.

220. ZAROOGIAN G.E., MORRISON G. Effect of Cadmium Body Burdensin Adult Crassostrea virginica in Fecundity and Viability of Larvae. Bull. Environ. Contain, and Toxicol., 1981, v. 27, N 3, p. 334-348.