Характеристика состояния иммунной и нервной систем у мужчин и женщин с рецидивирующей инфекцией вирусом простого герпеса тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.36, кандидат медицинских наук Меледина, Илона Валерьевна

• Меледина, Илона Валерьевна
• кандидат медицинских наук
• 2009

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Меледина, Илона Валерьевна

ОГЛАВЛЕНИЕ.

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. Иммунопатогенез инфекции вирусом простого герпеса и нейроиммунные взаимодействия при соматических заболеваниях.

1.1. Этиология и патогенез инфекции вирусом простого герпеса.

1.2. Иммунный ответ при инфекции ВПГ.

1.2.1. Факторы врожденного иммунного ответа.

1.2.2. Факторы адаптивного иммунного ответа.

1.2.2.1. Т-клеточный ответ.

1.2.2.2. Гуморальный иммунный ответ.

1.2.3. Индукция цитокинов вирусом простого герпеса.

1.2.4. Формирование иммуносупрессии при инфекции ВПГ.

1.2.5. Тендерные особенности иммунного ответа.

1.3. Взаимодействие факторов иммунной и нервной систем в процессе иммунного ответа.

1.3.1.Взаимосвязь личностных характеристик и особенностей функционирования иммунной системы.

1.3.2.Влияние стрессовых факторов на иммунную систему.

1.3.3.Память и иммунные реакции.

1.3.4.Влияние вегетативной нервной системы на иммунный ответ.

1.3.5.Функциональная межполушарная асимметрия мозга, иммунный ответ и соматические заболевания.

1.3.6.Влияние инфекции ВПГ и цитокинового ответа на состояние нервной системы.

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Объект исследования.

2.2. Иммунологические методы.

2.3. Психологические методы.

2.4. Методы функциональной диагностики.

2.5. Статистическая обработка данных.

Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Характеристика показателей иммунного статуса пациентов с рецидивирующей инфекцией ВПГ.

3.2. Характеристика показателей высшей нервной деятельности пациентов с рецидивирующей инфекцией ВПГ.

3.2.1. Общая характеристика показателей высшей нервной деятельности пациентов с рецидивирующей инфекцией ВПГ.

3.2.2. Особенности клинического течения инфекции ВПГ у пациентов с различными характеристиками памяти.

3.2.3. Особенности клинического течения инфекции ВПГ, показателей иммунного статуса и активности отделов ВНС у пациентов с различными общими способностями.

3.3. Характеристика показателей иммунного статуса, высшей нервной деятельности и активности отделов вегетативной нервной системы у больных рецидивирующей инфекцией ВПГ, с различным типом функциональной межполушарной асимметрии головного мозга.

3.4. Характеристика активности отделов ВНС общей группы пациентов с инфекцией

3.4.1. Общая характеристика активности отделов вегетативной нервной системы у пациентов с рецидивирующей инфекцией ВПГ.

3.4.2. Особенности клинического течения рецидивирующей инфекции ВПГ, показателей иммунного статуса и ВНД у пациентов с различной фоновой активностью отделов вегетативной нервной системы.

3.4.3. Особенности клинического течения инфекции ВПГ у пациентов с различной реакцией ВНС на проведение функциональных проб.

3.5. Характеристика иммунного статуса, показателей ВНД и активности отделов ВНС у пациентов в период ремиссии и рецидива инфекции ВПГ.

3.6. Характеристика состояния иммунной и нервной систем у пациентов с различным клиническим течением инфекции ВПГ.

3.6.1. Характеристика иммунного статуса, показателей ВНД и активности отделов ВНС у пациентов с различной частотой рецидивов инфекции ВПГ.

3.6.2. Характеристика иммунного статуса, показателей ВНД и активности отделов ВНС у пациентов с различной площадью поражения.

3.6.3. Характеристика иммунного статуса, показателей ВНД и активности отделов ВНС у пациентов с различной продолжительностью обострений.

3.6.4. Характеристика иммунного статуса, показателей ВНД и активности отделов ВНС у пациентов со склонностью к развитию регионарного лимфаденита и вторичному инфицированию участков герпетических высыпаний.

3.6.5. Характеристика иммунного статуса, показателей ВНД и активности отделов ВНС у пациентов с различной эффективностью противовирусной терапии.

3.6.6. Характеристика иммунного статуса, показателей ВНД и активности отделов ВНС у больных рецидивирующей инфекцией ВПГ с различной частотой острых респираторных вирусных инфекций.

3.6.7. Характеристика иммунного статуса, показателей ВНД и активности отделов ВНС у пациентов с различными провоцирующими факторами рецидива.

Глава 4. ОБСУЖДЕНИЕ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Характеристика состояния иммунной и нервной систем у мужчин и женщин с рецидивирующей инфекцией вирусом простого герпеса»

Актуальность проблемы

Около 90% населения планеты инфицировано вирусом простого герпеса (ВПГ) [15, 22, 44, 200], 20% инфицированных имеют диагностированный симптоматический герпес, в том числе — с тяжелым течением, характеризующимся частотой рецидивов свыше 6 раз в год, большой площадью поражения и развитием интоксикационного синдрома [7, 200]. Во всем мире отмечается прогрессирующий рост инфицированное™ и заболеваемости инфекцией ВПГ, летальность от нее по статистике ВОЗ занимает 2-е место среди вирусных поражений человека, уступая лишь гриппу [35]. В России самая высокая заболеваемость регистрируется в возрастных группах наиболее трудоспособного населения: 20-29 лет (41,0-46,9%) и 30-39 лет (24,2-29,4%) [37].

ВПГ пожизненно персистирует в сенсорных ганглиях вегетативной нервной системы (ВНС), а также в нейронах гипоталамуса и спинного мозга [40, 198], оказывая прямое влияние на нервную систему, вызывая альтерации цитоскелета нейронов [337], даже находясь в латентном состоянии [143, 144]. С инфекцией ВПГ в настоящее время связывают развитие болезни Альцгеймера [157] и myastenia gravis [131], у больных инфекцией ВПГ в 56% случаев выявляется синдром вегетативной дистонии [40]. Воздействие ВПГ на клетки иммунной системы приводит к развитию иммуносупрессии в связи с продуктивным инфицированием макрофагов, дендритных клеток, лимфоцитов и действием механизмов, препятствующих формированию адекватного иммунного ответа [7, 17]. За счет интеграции ВПГ в генетический аппарат клеток возможна неопластическая трансформация, доказана связь ВПГ с развитием рака шейки матки и предстательной железы [234]. ВПГ-2 повышает риск заражения ВИЧ [19, 83], герпесвирусная инфекция является одной из СПИД-индикаторных инфекций [17]. С инфекцией ВПГ связывают развитие атеросклероза и артериальной гипертензии, в стенке атеросклеротически измененной аорты методом ПЦР ВПГ обнаруживается у 67,5-85% пациентов [262]. Частота как первичной, так и рецидивирующей инфекции ВПГ-1 и ВПГ-2 выше у женщин, чем у мужчин [142, 383], что создает риск неонатальной инфекции, а у серонегативных женщин имеется высокий риск первичного инфицирования ВПГ.

ВПГ может в течение длительного времени находиться в латентном состоянии под контролем иммунной системы. Срыв иммунного ответа, приводящий к возникновению рецидива, обычно индуцируется физическим или эмоциональным стрессом и сопровождается изменением активности ЦНС и ВНС, гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой оси. Таким образом, при инфекции ВПГ в равной степени страдают иммунная и нейро-эндокринная системы. Учитывая целостность организма, непрерывное взаимодействие этих систем посредством нейротрансмиттеров и цитокинов [1, 40, 112, 303], сопряженность параметров иммунного ответа с высшей нервной деятельностью (ВНД), функциональной межполушарной асимметрией головного мозга (ФМА) и активностью отделов ВНС [5, 6], изменения каждой из них могут компенсировать, либо усугублять нарушения со стороны другой, создавая предпосылки для возникновения клинических особенностей течения заболевания.

В настоящее время подробно изучается иммунный ответ при инфекции ВПГ, но мало работ, в которых проводится комплексный анализ состояния иммунной и нервной систем при этом заболевании [40], остается неясным, какие факторьл предрасполагают к формированию клинических особенностей течения заболевания, не рассмотрены тендерные особенности нейроиммунного ответа и зависимость тяжести течения инфекции ВПГ от состояния нейроиммунного статуса пациентов, большинство исследований выполнено в период обострения инфекции и не затрагивают изменений, имеющихся в межрецидивный период [143, 144], на фоне которых и возникают предпосылки для развития рецидива. Предполагается, что у больных с разными типологическими свойствами высшей нервной деятельности (ВНД) и ВНС имеются клинико-иммунологические особенности течения инфекции ВПГ. В связи с этим, представляется актуальным выявление отличий в состоянии иммунной системы, ВНД и активности отделов ВНС у мужчин и женщин с рецидивирующей инфекцией ВПГ в сравнении со здоровыми людьми, а также оценка состояния иммунной и нервной систем, нейроиммунного взаимодействия у пациентов с различным клиническим течением инфекции ВПГ, что позволит уточнить патогенетические механизмы срыва контроля организма над вирусом, формирования особенностей клинического течения заболевания и разработать комплекс дифференцированных профилактических и лечебных мероприятий.

На основании изложенного, определены цели и задачи исследования.

Цель и задачи исследования

Целью работы явилось изучение особенностей состояния иммунной системы, высшей нервной деятельности и вегетативной нервной системы у мужчин и женщин с рецидивирующей инфекцией ВПГ. В соответствии с целью были сформулированы следующие задачи исследования:

1. Провести сравнительную оценку показателей иммунного статуса (количественного содержания и функциональной активности иммунокомпетентных клеток, включая оценку продукции ТЬ1/ТЬ2 цитокинов) у мужчин и женщин, больных рецидивирующей инфекцией ВПГ, в межрецидивный период и здоровых лиц.

2. Исследовать тип ВНД, когнитивные способности, функциональную межполушарную асимметрию головного мозга, активность отделов ВНС у мужчин и женщин с рецидивирующей инфекцией ВПГ, провести сравнительную оценку данных показателей у больных в межрецидивный период и здоровых лиц.

3. Изучить наличие и характер нейроиммунных взаимоотношений у мужчин и женщин с рецидивирующей инфекцией ВПГ, а также их связь с клиническими особенностями течения заболевания.

4. Определить особенности состояния иммунной и нервной систем у пациентов с рецидивирующей инфекций ВПГ в период ремиссии и рецидива заболевания.

Научная новизна результатов исследований

Впервые проведена комплексная оценка параметров иммунного статуса, показателей ВНД, функциональной межполушарной асимметрии головного мозга, активности отделов вегетативной нервной системы у мужчин и женщин с рецидивирующей инфекцией ВПГ, в том числе, с различным клиническим течением заболевания. Впервые выявлены тендерные особенности нейроиммунной регуляции при инфекции ВПГ с различным вектором сопряженности параметров иммунного статуса и активности отделов ВНС у мужчин и женщин.

Охарактеризованы иммунодефицитные состояния у мужчин и женщин, г больных инфекцией ВПГ, в межрецидивный период и впервые продемонстрирована сопряженность параметров иммунной системы с показателями ВНД, вегетативной регуляции и особенностями клинического течения заболевания у данных больных. Впервые показано, что более ранний дебют рецидивирующей инфекции ВПГ отмечается у женщин с доминантным правым полушарием головного мозга на фоне нарушений в моноцитарно-макрофагальном звене иммунной системы в сравнении с пациентами, характеризующимися другими типами ФМА. Установлена связь увеличения частоты рецидивов инфекции ВПГ с состоянием Т-клеточного звена иммунной системы у мужчин и моноцитарно-макрофагального звена - у женщин на фоне снижения вариабельности сердечного ритма. Показана связь увеличения площади поражения кожи и слизистых оболочек с активностью клеток, участвующих в клиренсе ВПГ (СБ8+Т-лимфоциты, ЫК-клетки). Продемонстрировано, что увеличение продолжительности рецидивов у мужчин ассоциируется со снижением количества КК-клеток на фоне активации симпатического отдела ВНС, у женщин, напротив, отмечается активация парасимпатического отдела ВНС.

Установлено наличие нарушения когнитивных способностей при инфекции ВПГ, с более выраженным снижением памяти, нарастанием инертных и тормозных процессов у женщин на фоне снижения вариабельности сердечного ритма. Впервые выявлено увеличение активности парасимпатического отдела ВНС. у больных инфекцией ВПГ в сравнении со здоровыми, с ее нарастанием в период рецидива.

Теоретическая и практическая значимость работы

Полученные нами данные свидетельствуют о сочетанном поражении иммунной и нервной систем при рецидивирующей инфекции ВПГ и об их тесном взаимодействии в процессе контроля над инфекцией ВПГ. Установлены особенности нейроиммупного статуса пациентов с различным клиническим течением заболевания.

Выявленные нами взаимосвязанные патологические изменения со стороны иммунной системы, высшей нервной деятельности и вегетативной нервной системы, свидетельствуют о целесообразности применения комплексного психонейроиммунологического подхода к обследованию и лечению пациентов, страдающих рецидивирующей инфекцией ВПГ, что позволит своевременно прогнозировать изменение характера течения заболевания, повысить эффективность терапии, минимизировать риск присоединения патологических состояний, ассоциированных с инфекцией ВПГ и улучшить качество жизни таких больных.

Основные положения, выносимые на защиту

1. У пациентов с рецидивирующей инфекцией ВПГ имеются сочетанные патологические изменения иммунного статуса, высшей нервной деятельности, активности отделов вегетативной нервной системы.

2. У больных с рецидивирующей инфекцией ВПГ существует сопряженность иммунологических параметров с показателями высшей нервной деятельности, активности отделов вегетативной нервной системы и функциональной межполушарной асимметрией головного мозга с формированием особенностей нейроиммунного статуса при различном клиническом течении заболевания.

3. Существуют тендерные особенности нейроиммунных взаимоотношений у пациентов с инфекцией ВПГ.

Личное участие автора в получении научных результатов

Динамическое наблюдение больных с рецидивирующей инфекцией ВПГ, организация обследования, подготовка супернатантов цельной крови для измерения содержания цитокинов, тестирование параметров высшей нервной деятельности, функциональной межполушарной асимметрии пациентов, статистическая обработка и интерпретация данных выполнены автором лично. Научные положения и выводы, сделанные в диссертационной работе, обоснованы результатами собственных исследований автора.

Работа выполнена в ГУ НИИ КИ СО РАМН на базе иммунологического отделения клиники (руководитель отделения, заслуженный врач РФ, к.м.н. Н.М.Старостина) при участии лабораторий ГУ НИИ КИ СО РАМН: лаборатории клинической иммунологии (руководитель проф. В.С.Кожевников), лаборатории клеточной иммунотерапии (руководитель проф. Е.Р.Черных), клинико-биохимической лаборатории (руководитель Е.В.Меняева) и отделения функциональной диагностики (рук. отд., д.м.н. Труфакин C.B.) Автор благодарит руководителя иммунологического отделения клиники иммунопатологии ИКИ СО РАМН к.м.н. Н.М. Старостину за помощь в формировании группы больных для исследования, д.м.н. Т.Я. Абрамову за обучение и помощь в проведении обследования пациентов, а также творческое участие в обсуждении результатов.

Апробация материалов диссертации

Материалы диссертации доложены и обсуждены на семинарах лаборатории нейроиммунологии ГУ НИИКИ СО РАМН (Новосибирск, 2004, 2005) и иммунологического, отделения клиники иммунопатологии ИКИ СО РАМН (Новосибирск, 2005). По теме диссертации опубликовано 10 печатных работ, из них 3 в центральной печати, 1 в сборнике научных трудов ГУ НИИКИ СО РАМН.

Объем и структура диссертации

Диссертация написана в традиционном стиле и состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, 6 глав собственных исследований, обсуждения полученных результатов и выводов. Материал изложен на 172 стр. машинописного текста, содержит 19 рисунков и 24 таблицы. Список литературы включает 343 ссылки на 47 отечественных и 296 иностранных авторов.

Заключение диссертации по теме «Аллергология и иммулология», Меледина, Илона Валерьевна

выводы

1. Регистрирующиеся у больных рецидивирующей инфекцией ВПГ в межрецидивный период в сравнении со здоровыми людьми изменения иммунного статуса (снижение продукции АФК нейтрофилами, секреции 1Ь-5 и 1К№у у мужчин; снижение количества НЬА-ОК+С04+Т-лимфоцитов, НЬЛ-БЯ уровня экспрессии на моноцитах, секреции 1К№у, 1Ь-5 и 1Ь-1р у женщин), высшей нервной деятельности (снижение силы нервных процессов, доминирование тормозных процессов у мужчин и женщин, снижение когнитивных способностей у женщин) и активности отделов ВНС в виде парасимпатикотонии с ее возрастанием в период рецидива свидетельствуют о сочетанном вовлечении иммунной и нервной систем в патологический процесс при этом заболевании.

2. У мужчин и женщин с рецидивирующей инфекцией ВПГ имеются особенности нейроиммунного статуса в зависимости от типа функциональной межполушарной асимметрии. Мужчины с доминантным левым полушарием головного мозга характеризуются высоким количеством С08+Т-лимфоцитов на фоне низкой силы торможения ВНД. У мужчин с доминантным правым полушарием отмечено высокое количество НЬА-В11+СВ4+ и НЬА-В11+С08+ Т-лимфоцитов. Женщины с доминантным левым полушарием головного мозга характеризуются высокой активностью фагоцитарного звена на фоне парасимпатикотонии, высокой подвижности торможения и активности 1-й сигнальной системы. У женщин с доминантным правым полушарием отмечается относительно ранний дебют рецидивирующей инфекции ВПГ на фоне низкой активности фагоцитарного звена. Таким образом, у больных рецидивирующей инфекцией ВПГ формируется иммунологическая и психо-вегетативная разнородность на основе билатерально-асимметричной организации мозга.

3. Различный вектор сопряженности параметров иммунного статуса (количества СОЗ+ Т-лимфоцитов, показателей ГЗТ, ПАМ) и показателей, характеризующих' активность отделов ВНС, у мужчин и женщин с рецидивирующей инфекцией ВПГ свидетельствует о существовании нейроиммунологических тендерных особенностей у этих больных.

4. Нарастание тяжести течения рецидивирующей инфекции ВПГ (увеличение частоты и продолжительности рецидивов, площади поражения) сопровождается изменениями нейроиммунного статуса. У мужчин отмечаются нарушения в Т-клеточном звене иммунной системы, умешыпение количества ЫК-клеток и ПАН на фоне снижения когнитивных способностей и преимущественной активации СО ВНС, у женщин регистрируются нарушения в гуморальном, Т-клеточном звеньях иммунной системы, снижение ПАН и спонтанной продукции 1Ь-1|5 на фоне нарастания инертных процессов, снижения памяти и ВСР. Это указывает на наличие ассоциации характера нейроиммунных взаимодействий с особенностями клинического течения инфекции ВПГ.

5. Сочетанные изменения иммунной системы, ВНД и активности отделов ВНС при рецидивирующей инфекции ВПГ указывают на участие нейроиммунного механизма в патогенезе этого заболевания и требуют комплексной диагностики и коррекции с учетом тендерных различий.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. У пациентов с рецидивирующей инфекцией ВПГ необходимо комплексное мониторирование показателей иммунного статуса, высшей нервной деятельности и активности отделов вегетативной нервной системы.

2. Индивидуальную иммунокорригирующую терапию рекомендуется сочетать с коррекцией состояния нервной системы (при нарушении когнитивной функции целесообразно применение ноотропных препаратов, психотерапевтических методик, при измененной активности отделов вегетативной нервной системы -коррекция с помощью вегетотропных средств).

3. Наиболее целесообразна коррекция повышенной активности симпатического отдела ВНС, которая у мужчин ассоциируется со снижением количества ЫК-клеток, увеличением продолжительности рецидивов инфекции ВПГ, частым присоединением ОРВИ, у женщин - с увеличением частоты рецидивов, склонностью к развитию регионарного лимфаденита и также частым присоединением ОРВИ. Поскольку повышение уровня 1КЫу и ШЫа может способствовать усилению активности СО ВНС за счет стимуляции выработки катехоламинов, применять препараты интерферона у пациентов-симпатотоников следует под контролем вегетативного статуса.

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Меледина, Илона Валерьевна, 2009 год

1. Абрамов В.В., Абрамова Т.Я. Асимметрия нервной, эндокринной и иммунной систем. Новосибирск: Наука, 1996. 98 с.

2. Абрамов В.В., Гонтова И.А., Абрамова Т.Я. Асимметрия полушарий головного мозга и лимфоидных органов: роль в иммуногенезе и гемопоэзе // Функциональная межполушарная асимметрия. Хрестоматия. М.: Научный мир, 2004. С. 523-543.

3. Абрамов В.В., Гонтова И.А., Кармацких O.JI. Функциональная асимметрия клеток из контралатеральных долей тимуса мышей (CBAxC57Bl/6)Fl // Бюллетень СО РАМН. 1994. №4. С. 31-36.

4. Абрамов В.В., Козлов В.А., Кармацких O.JI. Асимметрия формирования экзогенных CFUs-12 у мышей // Взаимодействие нервной и иммунной систем. Ленинград -Ростов-на-Дону, 1990. с. 172.

5. Абрамова Т.Я. Клинико-иммунологические особенности ревматоидного артрита у больных правшей и амбидекстров: дис. . канд. мед. наук. Новосибирск: Институт клинической иммунологии СО РАМН, 1995. 132 с.

6. Абрамова Т.Я. Характеристика иммунной системы у здоровых людей с разными показателями высшей нервной деятельности: дис. . докт. мед. наук. Новосибирск: Институт клинической иммунологии СО РАМН, 2004. 286 с.

7. Актуальные вопросы тяжелой герпесвирусной инфекции у взрослых / Дидковский H.A., Малашенкова И.К., Сарсания Ж.Ш. и др. // Лечащий врач. 2006. № 9. С. 8-12.

8. Анастази А., Урбина С. Психологическое тестирование. 7-е межд. изд. СПб.: Питер, 2007. 688 с.

9. Аршавский В.В. Межполушарная асимметрия в системе поисковой активности (к проблеме адаптации человека в приполярных районах СССР). Владивосток: ДВО АН СССР, 1988. 136 с.

10. Бианки В.JI. Механизмы парного мозга. JL: Наука, 1989. 264 с.

11. Брагииа H.H., Доброхотова Г.А. Функциональная асимметрия человека. М.: Медицина, 1988. 237 с.

12. Вартанян Г.А., Клементьев Б.И. Химическая симметрия и асимметрия мозга. М.: Медицина, 1991. 190 с.

13. Вегетативные расстройства: клиника, диагностика, лечение. / под ред. A.M. Вейна. М.: ООО «Медицинское информационное агенство», 2003. 752 с.

14. Вирус простого герпеса и его роль в патологии человека / Коломиец А.Г., Малевич Ю.К., Коломиец Н.Д. и др.. Мн.: Наука и техника, 1986. 262 с.

15. Высшая нервная деятельность и иммунитет / Абрамов В.В., Абрамова Т.Я., Егоров Д.Н., Вардосанидзе К.В. Новосибирск: типография СО РАМН, 2001. 123 с.

16. Герпесвирусные инфекции человека: руководство для врачей / под ред. В.А. Исакова. СПб.: СпецЛит, 2006. 303 с.

17. Герпетические нейроипфекции / Ющук И.Д., Деконенко Г.И., Федосеепко Г.И., Климова Е.А. М.: ГОУ ВУНМЦ МЗ РФ, 2003. 32с.

18. Гранитов В.М. Герпесвирусная инфекция. М.: Медицинская книга, 2001. 88 с.

19. Ершов Ф.И., Наровлянский А.Н., Мезенцева М.В. Ранние цитокиновые реакции при вирусных инфекциях // Цитокины и воспаление. 2004. Том 3. №1. С.3-6.

20. Иммунодефицитные состояния / под ред. проф. B.C. Смирнова и проф. И.С, Фрейдлин. СПб: «Фолиант», 2000. 568с.

21. Клинико-эпидемиологические аспекты и современные рекомендации по лечению генитального герпеса / Гладько В.В., Аковбян В.А., Масюкова С.А. и др. // Воен. мед. журн. 2002. № 12. С. 32-38.

22. Кожевников B.C. Современная методология иммунодиагностики // Актуальные вопросы клинической иммунологии и аллергологии. Барнаул, 1998. С. 23-30.

23. Колышкин В.В. Функциональная асимметрия мозга и ее роль в генезе артериальной гипертензии // Физиология человека. 1993. Т. 19. №5. С. 23-30.

24. Латерализация функций и аутоиммунный процесс / Насонова В.А., Мелехин В.Д., Синяченко В.В. и др. // Нелекарственная (би- и унилатеральная) терапия в наркологии, психиатрии и неврологии: Мат. иаучн,- практ. конф. Донецк, 1988. С. 140.

25. Леутин В.П., Николаева Е.И. Функциональная асимметрия мозга: мифы и действительность. СПб.: Речь, 2005. 368 с.

26. Михайлов В.М. Вариабельность ритма сердца. Опыт практического применения метода. Иваново: Нейрософт, 2000. 200 с.

27. Неизвестная эпидемия: герпес. Смоленск: Фармаграфикс, 1997. 157с.

28. Неруш П.А., Дмитриенко A.M., Короткая Г.П. Функциональная асимметрия мозга и тонус вегетативных нервных центров // Apxiß психдатрп. 1997. № 12-13. С. 57-58.

29. Останин A.A., Черных Е.Р. Сравнительная оценка уровня 17 цитокинов в сыворотке и цельной крови здоровых доноров методом проточной флюориметрии // Цитокины и воспаление. 2005. №2. С. 25-32.

30. Различия в экспрессии 1а-антигенов и иммуноглобулинов на поверхности клеток из оппозитных лимфоидных органов у мышей / Абрамов В.В., Коненков В.И., Гонтова И.А., Кашаба И.В. // Иммунология. 1992. № 1. С.31-32.

31. Реброва Н.П., Чернышева М.П. Функциональная межполушарная асимметрия мозга человека и психические процессы. СПб.: Речь, 2004. 96 с.

32. Реброва О.Ю. Статистический анализ медицинских данных. Применение пакета прикладных программ STATISTICA. М.: СедиаСфера, 2003. 312с.

33. Русинова Е.В. Влияние "животного гипноза" на двигательную доминанту, созданную действием постоянного тока на кору левого полушария //Журн. высш. нерв. деят. 1997. Т. 47. № 1.С. 109-115.

34. Самгин М.А., Халдин A.A. Простой герпес (дерматологические аспекты). М.: МЕДпресс-информ, 2002. С. 160.

35. Семенова Т.Б., Губанова Е.И. Эпидемиологические аспекты генитального герпеса. Анализ заболеваемости генитальным герпесом в Российской Федерации и г. Москва за период с 1994 по 1998 г // ИППП. 2000. № 6. С. 26-30.

36. Серебряная Н.Б., Егорова В.Н. Новые подходы к терапии герпесвируной инфекции: пособие для врачей. СПб: Новая альтернативная полиграфия, 2007. 28с.

37. Снарский С.И., Бианки B.JI. Половой диморфизм роли левого и правого полушарий крыс в контроле болевой чувствительности // Физиол. жури, им И.М. Сеченова. 1992. Т.78. № 1. С. 12-19.

38. Состояние вегетативной нервной и иммунной систем у инфицированных вирусом простого герпеса / Малышева O.A., Ширинский B.C., Кожевников B.C., Старостина Н.М. // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2001. №3. С. 37-40.

39. Терапия Кагоцелом генитальной хронической рецидивирующей герпес-вирусной инфекции / Тутушкина Т.В., Шульженко А.Е., Наровлянский А.Н. и др. // Цитокины и воспаление. 2005. Т. 4. № 2. С. 59-64.

40. Функциональная межполушарная асимметрия и межполушарные отношения / Фокин

41. B.Ф., Пономарева Н.В., Городенский Н.Г., Иващенко Е.И., Разыграев И.И. // Системный подход в физиологии. 2004. №12. С. 111-127.

42. Халдин А.А.,Баскакова Д.В. Эпидемиологические аспекты заболеваний, вызываемых вирусом простого герпеса (обзор литературы) // Consilium-medicum. 2007. Т. 09. № 1.1. C. 27-30.

43. Хаснулин В.И. Дизадаптация, патология и асимметрия мозга // ApxiB ncnxiaTpii. 1997. № 12-13. С. 23-26.

44. Черноситов A.B. Функциональная межполушарная асимметрия важнейший фактор неспецифической резистентности//Apxie ncHxiaTpii. 1997. № 12-13. С. 15-18.

45. Agarwal S.K., Marshall G.D. Jr. Dexamethasone promotes type 2 cytokine production primarily through inhibition of type 1 cytokines // J. Interferon Cytokine Res. 2001. — Vol.21.-P. 147-155.

46. Allan R.S., Smith C.M., Belz G.T. et al. Epidermal viral immunity induced by CD8alpha+ dendritic cells but not by Langerhans cells // Science. 2003. Vol. 301. P. 1925-1928.

47. Aloe L., Alleva E., Fiore M., Lebon P. Stress and nerve growth factor: findings in animal models and humans // Pharmacol. Biochem. Behav. 2002. Vol. 73. P. 159-166.

48. Ankel H., Westra D.F., Welling-Wester S., Lebon P. Induction of interferon-alpha by glycoprotein D of herpes simplex virus: a possible role of chemokine receptors // Virology. 1998. Vol. 251(2). P. 317-326.

49. Aravalli R.N., Hu S., Rowen T.N. et al. Differential apoptotic signaling in primary glial cells infected with herpes simplex virus 1 // J. Neurovirol. 2006. Vol. 12(6). P. 501-510.

50. Aravalli R.N., Hu S., Rowen T.N., Palmquist J.M., Lokensgard J.R. Cutting edge: TLR2-mediated proinflammatory cytokine and chemokine production by microglial cells in response to herpes simplex virus // J. Immunol. 2005. Vol. 175(7). P. 4189-4193.

51. Ashley R.L., Crisostomo F.M., Doss M., et al. Cervical antibody responses to a herpes simplex virus type 2 glycoprotein subunit vaccine // J. Infect. Dis. 1998. Vol. 178. P. 1-7.

52. Asselin-Paturel C., Boonstra A., Dalod M. et al. Mouse type I IFN-producing cells are immature APCs with plasmacytoid morphology // Nat. Immunol. 2001. Vol. 2. P. 1144— 1150.

53. Athmanathan S., Vydehi B.V., Sundaram C. et al. Neuronal apoptosis in herpes simplex virus -1 encephalitis (HSE) // Indian J. Med. Microbiol. 2001. Vol. 19(3). P. 127-131.

54. Bachmann M.F., Wolint P., Schwarz K., Oxenius A. Recall proliferation potential of memory CD8+ T cells and antiviral protection // J. Immunol. 2005. Vol. 175. P. 4677-4685.

55. Balschun D., Wetzel W., Del Rey A., Pitossi F., Schneider H., Zuschratter W. et al. Interleukin-6: a cytokine to forget // FASEB J. 2004. Vol. 18. P. 1788-1790.

56. Baral E., Nagy E., Berczi I. Modulation of natural killer cell mediated cytotoxicity by tamoxifen and estradiol // Cancer. 1995. Vol. 75. P. 591-599.

57. Barcy Serge, Huang Meei-Li, Corey Lawrence, Koelle David M. Longitudinal analysis of herpes simplex virus-specific CD4+ cell clonotypes in infected tissues and blood // J. Infect. Dis. 2005. Vol. 191(12). P. 2012-2021.

58. Bauer D., Tampe R. Herpes viral proteins blocking the transporter associated with antigen processing TAP from genes to function and structure // Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2002. Vol. 269. P. 87-99.

59. Bebo, B.F., Schuster J.C., Vandenbark A.A., Offner H. Androgens alter the cytokine profile and reduce encephalitogenicity of myelinreactive T cells // J. Immunol. 1999. Vol. 162. P. 35-40.

60. Bellner L., Thoren F., Nygren E. et al. A proinflammatory peptide from herpes simplex virus type 2 glycoprotein G affects neutrophil, monocyte, and NK cell functions // J. Immunol. 2005. Vol. 174(4). P. 2235-2241.

61. Belz G.T., Wilson N.S., Smith C.M., Mount A.M., Carbone F.R., Heath W.R. Bone marrow-derived cells expand memory CD8+ T cells in response to viral infections of the lung and skin // Eur. J. Immunol. 2006. Vol. 36. P. 327-335.

62. Benencia F., Courreges M.C., Gamba G. et al. Effect of aminoguanidine, a nitric oxide synthase inhibitor, on ocular infection with herpes simplex virus in Balb/c mice // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2001. Vol. 42. P. 1277-1284.

63. Ben-Hur T., Cialic R., Itzik A., Yirmiya R., Weidenfeld J. Acute effects of purified and UV-inactivated Herpes simplex virus type 1 on the hypothalamo-pituitary-adrenocortical axis // Neuroendocrinology. 2001. Vol. 74(3). P. 160-166.

64. Ben-Hur T., Cialic R., Weidenfeld J. Virus and host factors that mediate the clinical and behavioral signs of experimental herpetic encephalitis. A short auto-review // Acta Microbiol. Immunol. Hung. 2003. Vol. 50(4). P. 443-451.

65. Berg B.M., Godbout J.P., Chen J., Kelley K.W., Johnson R.W. Alpha-tocopherol and selenium facilitate recovery from lipopolysaccharide-induced sickness in aged mice // J. Nutr. 2005. Vol. 135. P. 1157-1163.

66. Biron, C.A., Brossay L. NK cells and NKT cells in innate defense against viral infections // Curr. Opin. Immunol. 2001. Vol. 13. P. 458-464.

67. Biswas P.S., Banerjee K., Kinchington P.R., Rouse B.T. Involvement of IL-6 in the paracrine production of VEGF in ocular HSV-1 infection // Exp. Eye Res. 2006. Vol. 82(1). P. 46-54.

68. Biswas P.S., Banerjee K., Zheng M., Rouse B.T. Counteracting corneal immunoinflanimator}' lesion with interleukin-1 receptor antagonist protein // J. Leukoc. Biol. 2004. Vol. 76(4). P. 868-875.

69. Bluthe R.M., Michaud B., Poli V., Dantzer R. Role of IL-6 in cytokine-induced sickness behavior: a study IL-6 deficient mice // Physiol. Behav. 2000. Vol. 70. P. 367-373.

70. Cai S., Brandt C.R. Induction of interleukin-6 in human retinal epithelial cells by a attenuated Herpes simplex virus vector requires viral replication and NFkappaB activation // Exp. Eye Res. 2008. Vol. 86(2). P. 178-188.

71. Campadelli-Fiume G., Cocchi F., Menotti L., Lopez M. The novel receptors that mediate the entry of herpes simplex viruses and animal alphaherpesviruses into cells // Rev. Med. Virol. 2000. Vol. 10. P. 305-319.

72. Carra G., Gerosa F., Trinchieri G. Biosynthesis and posttranslational regulation of human IL-12 // J. Immunol. 2000. Vol. 164. P. 4752-4761.

73. Celum C. The interaction between Herpes simplex virus and human immunodeficiency virus // Herpes: J. IHMF. 2004. Vol. 11 (Supl. 1). P. 36 44.

74. Chao T.C., Vanalten P.J., Walter R.J. Steroid sex-hormones and macrophage function — modulation of reactive oxygen intermediates and nitrite release // Am. J. Reprod. Immunol. 1994. Vol. 32. P. 43-52.

75. Chen G. et al. Suppression of HMGB1 release by stearoyl lysophosphatidylcholine:an additional mechanism for its therapeutic effects in experimental sepsis // J. Lipid. Res. 2005. Vol. 46. P. 623-627.

76. Chesler D.A., Reiss C.S. The role of IFN-gamma in immune responses to viral infections of the central nervous system // Cytokine Growth Factor Rev. 2002. Vol. 13. P. 441-454.

77. Chisholm S.E., Howard K. GA3mez M.V., Reyburn H.T. Expression of ICP0 is sufficient to trigger natural killer cell recognition of herpes simplex virus-infected cells by natural cytotoxicity receptors // J. Infect. Dis. 2007. Vol. 195(8). P. 1160-1168.

78. Christensen A.J., Edwards D.L., Wiebe J.S., Benotsch E.G., McKelvey L., Andrews M., Lubaroff D.M. Effect of verbal self-disclosure on natural killer cell activity: moderating influence of cynical hostility // Psychosom. Med. 1996. Vol. 58. P. 150-155.

79. Correale J., Arias M., Gilmore W. Steroid hormone regulation of cytokine secretion by proteolipid protein-specific CD4(1) T cell clones isolated from multiple sclerosis patients and normal control subjects // J. Immunol. 1998. Vol. 161. P. 3365-3374.

80. Cutolo M., Sulli A., Barone A., Seriolo B., Accardo S. The role of androgens in the pathophysiology of rheumatoid-arthritis // Fundamental Clin. Immunol. 1995. Vol. 3. P. 918.

81. Dai J., Megjugorac N.J., Amrute S.B., Fitzgerald-Bocarsly P. Regulation of IFN regulatory factor-7 and IFN-alpha production by enveloped virus and lipopolysaccharide in human plasmacytoid dendritic cells // J. Immunol. 2004. Vol. 173. P. 1535-1548.

82. Dane S., Erdem T., Gumustekin K. Cell-mediated immune hypersensitivity is stronger in the left side of the body than the right in healthy young subjects // Percept. Mot. Skills. 2001. Vol. 93. № 2. P. 329-332.

83. Dantzer R., Bluthe R-M., Castanon N. et al. Cytokine effects on behavior / In: Ader R., Felten D., Cohen N. editors. // Psychoneuroimmunology. San Diego, CA: Academic Press, 2001. P.703-727.

84. De La Garza R., Asnis G.M. The non-steroidal anti-inflammatory drug diclofenac sodium attenuates IFN-a induced alterations to monoamine turnover in prefrontal cortex and hippocampus //Brain Res. 2003. Vol. 977. P. 70-79.

85. Depino A.M., Alonso M. Ferrari C., del Rey A., Anthony D., Besedovsky H., Medina J.H., Pitossi F. Learning modulation by endogenous hippocampal IL-1: blockade of endogenous IL-1 facilitates memory formation // Hippocampus. 2004. Vol. 14(4). P. 526535.

86. Diaz George A., Koelle David M. Human CD4+ CD25high cells suppress proliferative memory lymphocyte responses to herpes simplex virus type 2 // J. Virol. 2006. Vol. 80(16). P. 8271-8273.

87. Divito S.J., Hendricks R.L. Activated inflammatory infiltrate in HSV-1-infected corneas without herpes stromal keratitis // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2008. Vol. 49(4). P. 1488-1495.

88. Du X., Poltorak A., Wei Y., Beutler B. Three novel mammalian toll-like receptors: gene structure, expression, and evolution // Eur. Cytokine Netw. 2000. Vol. 11. P. 362-371.

89. Duerst R.J., Morrison L.A. Innate immunity to Herpes simplex virus type 2 //Viral Immunology. 2003. Vol. 16. № 4. P. 475-490.

90. Dunn A. J. Effects of cytokines and infections on brain neurochemistry // Clin. Neurosci. Res. 2006. Vol. 6(1-2). P. 52-68.

91. Elenkov I.J., Wilder R.L., Chrousos G.P., Vizi E.S. The sympathetic nerve an integrative interface between two supersystems: the brain and the immune system // Pharmacalogical Reviews. 2000. Vol. 52. Issue 4. P. 595-638.

92. Eling D.J., Johnson P.A., Sharma S., Tufaro F., Kipps T. J. Chronic lymphocytic leukemia B cells are highly sensitive to infection by herpes simplex virus-1 via herpesvirus-entry-mediator A // Gene Ther. 2000. Vol. 7. P. 1210-1216.

93. Ellermann-Eriksen Svend. Macrophages and cytokines in the early defence against herpes simplex virus // Virology Journal. 2005. Vol. 2. 59 p.

94. Evagelatou M., Farrant J. Effect of 17-beta-estradiol on immunoglobulin secretion by human tonsillar lymphocytes in-vitro // J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 1994. Vol. 48. P. 171-177.

95. Everett R.D., Murray J. ND10 components relocate to sites associated with herpes simplex virus type 1 nucleoprotein complexes during virus infection // J. Virol. 2005. Vol. 79. P. 5078-5089.

96. Fernandez S., Gillgrass A., Kaushic C. Differential responses of murine vaginal and uterine epithelial cells prior to and following herpes simplex virus type 2 (HSV-2) infection // Am. J. Reprod. Immunol. 2007. Vol. 57(5). P. 367-377.

97. Fields M., Zheng M., Zhang M., Atherton S.S. Tumor necrosis factor alpha and macrophages in the brain of herpes simplex virus type 1-infected BALB/c mice // J. Neurovirol. 2006. Vol. 12(6). P. 443-455.

98. Fontana S., Moratto D., Mangal S., De Francesco M., Vermi W., Ferrari S. et al. Functional defects of dendritic cells in patients with CD40 deficiency // Blood. 2003. Vol. 102. P. 4099-4106.

99. Friedman H.M., Wang L., Pangburn M.K., Lambris J.D., Lubinski J. Novel mechanism of antibody-independent complement neutralization of herpes simplex virus type 1 // J. Immunol. 2000. Vol. 165. P. 4528-4536.

100. Fu Q.L., Shen Y.Q., Gao M.X., Dong J., Neveu P.J., Li K.S. Brain interleukin asymmetries and paw preference in mice // Neuroscience. 2003. Vol. 116(3). P. 639-647.

101. Fujii T., Takada-Takatori Y., Kawashima K. Roles played by lymphocyte function-associated antigen-1 in the regulation of lymphocytic cholinergic activity // Life Sei. 2007. Vol. 80(24-25). P. 2320-2324.

102. Futterman A.D., Wellisch D.K., Zighelboim J., Luna-Raines M., Weiner H. Psychological and immunological reactions of family members to patients undergoing bone marrow transplantation//Psychosom. Med. 1996. Vol. 58. P. 472-480.

103. Gadjeva M., Verschoor A., Brockman M.A. et al. Macrophage-derived complement component C4 can restore humoral immunity in C4-deficient mice // J. Immunol. 2002. Vol. 169. P. 5489-5495.

104. Galasso F., Altamura V., Sbano E. Effects of topical testosterone propionate on the positive nickel patch test // J. Dermatol. Sci. 1996. Vol. 13. P. 76-82.

105. Gao F.G., Wan da F., Gu J.R. Ex vivo nicotine stimulation augments the efficacy of therapeutic bone marrow-derived dendritic cell vaccination // Clin. Cancer Res. 2007. Vol. 13(12). P. 3706-3712.

106. Gao M.X., Li K., Dong J., Liege S., Jiang B., Neveu P.J. Strain-dependent association between lateralization and lipopolysaccharide-induced IL-lbeta and IL-6 production in mice // Neuroimmunomodulation. 2000. Vol. 8(2). P. 78-82.

107. Gebhardt B.M. Evidence for antigenic cross-reactivity between herpesvirus and the acetylcholine receptor//J. Neuroimmunol. 2000. Vol. 105(2). P. 145-153.

108. Gerendai I., Halasz B. Neuroendocrine asymmetry // Frontal Nuroendocrinology. 1997. Vol. 18. P. 354-381.

109. Ghiasi H., Osorio Y., Perng G.C., Nesburn A.B., Wechsler S.L. Recombinant herpes simplex virus type 1 expressing murine interleukin-4 is less virulent than wild-type virus in mice // J. Virol. 2001. Vol. 75. P. 9029-9036.

110. Giebelen I.A., van Westerloo D.J., LaRosa G.J., de Vos A.F., van der Poll T. Local stimulation of alpha7 cholinergic receptors inhibits LPS-induced TNF-alpha release in the mouse lung // Shock. 2007. Vol. 28(6). P. 700-703.

111. Gilden D.H., Gesser R., Smith J., Wellish M., Laguardia J.J., Cohrs R.J., Mahalingam R. Presence of VZV and HSV-1 DNA in human nodose and celiac ganglia // Virus Genes. 2001. Vol. 23. P. 145-147.

112. Gill N., Ashkar A.A. Adaptive immune responses fail to provide protection against genital HSV-2 infection in the absence of IL-15 // Eur. J. Immunol. 2007. Vol. 37(9). P. 2529-2538.

113. Glaser R., Kiecolt-Glaser J.K. Stress-induced immune dysfunction: implications for health //Nat. Rev. Immunol. 2005. Vol. 5. P. 243-251.

114. Goetz F.W., Planas J.V., MacKenzie S: Tumor necrosis factors // Dev. Comp. Immunol. 2004. Vol. 28. P. 487-497.

115. Gordon S. Alternative activation of macrophages // Nat. Rev. Immunol. 2003. Vol. 3. P. 23-35.

116. Goshen I., Kreisel T., Ounallah-Saad H., Renbaum P., Zalzstein Y., Ben-IIur T., Levy-Lahad E., Yirmiya R. A dual role for interleukin-1 in hippocampal-dependent memory processes//Psychoneuroendocrinology. 2007. Vol. 32(8-10). P. 1106-1115.

117. Gupta A., Gartner J.J., Sethupathy P. et al. Anti-apoptotic function of a microRNA encoded by the HSV-1 latency-associated transcript // Nature. 2006. Vol. 442. №. 7098. P. 82-85.

118. Hamza M.A., Higgins D.M., Ruyechan W.T. Herpes simplex virus type-1 latency inhibits dendritic growth in sympathetic neurons // Neurobiol. Dis. 2006. Vol. 24(2). P. 36773.

119. Han Jin-Young, Sloan Derek D., Aubert Martine, Miller Sara A., Dang Chung H., Jerome Keith R. Apoptosis and antigen receptor function in T and B cells following exposure to herpes simplex virus // Virology. 2007. Vol. 359(2). P. 253-263.

120. Han X., Lundberg P., Tanamachi B., Openshaw H., Longmate J., Cantin E. Gender Influences Herpes Simplex Virus Type 1 Infection in Normal and Gamma Interferon-Mutant Mice // J. Virol. 2001. P. 3048-3052.

121. Harle P., Sainz B. Jr., Carr D.J., Halford W.P: The immediate-early protein, ICP0, is essential for the resistance of herpes simplex virus to interferon-alpha/beta // Virol. 2002. Vol. 293. P. 295-304.

122. Hashido M., Lee F.K., Inouye S., Kawana T. Detection of herpes simplex virus type-specific antibodies by em enzyme-linked immunosorbent assay based on glycoprotein G // J. Med. Virol. 1997. Vol. 53(4). P. 319-323.

123. Huber S.A., Kupperman J., Newell M.K. Hormonal regulation of CD41 T-cell responses in coxsackievirus B3-induced myocarditis in mice // J. Virol. 1999. Vol. 73. P. 4689-4695.

124. Inoue Y. Immunological aspects of herpetic stromal keratitis // Semin. Ophthalmol. 2008. Vol. 23(4). P. 221-227.

125. Irie H., Shiga J. Pathogenesis of herpes simplex hepatitis in macrophage-depleted mice: possible involvement of tumor necrosis factor-alpha and inducible nitric oxide synthase in massive apoptosis //Anat. Sci. Int. 2005. Vol. 80(4). P. 199-211.

126. Ito N., Kromminga A., Bettermann A., Takigawa M., Kees F., Straub R.H. et al. Human hair follicles display a functional equivalent of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis and synthesize Cortisol // FASEB J. 2005. Vol. 19. P. 1332-1334.

127. Itzhaki R.F., Wozniak M.A. Herpes simplex virus type 1 in Alzheimer's disease: the enemy within//J. Alzheimers Dis. 2008. Vol. 13(4). P. 393-405.

128. Johnson A.J., Chu C.F., Milligan G.N. Effector CD4+ T cell involvement in clearance of infectious herpes simplex virus type 1 from sensory ganglia and spinal cords // J. Virol. 2008. Vol. 82(19). P. 9678 9688.

129. Johnson D.C, Webb M., Wisner T.W., Brunetti C. Herpes simplex virus gE/gl sorts nascent virions toepithelial cell junctions, promoting virus spread // J. Virol. 2001. Vol. 75. P. 821-833.

130. Johnson J.D., Campisi J., Sharkey C.M., Kennedy S.L., Nickerson M., Fleshner M. Adrenergic receptors mediate stress-induced elevations in extracellular Hsp72 // J. Appl. Physiol. 2005. Vol. 99. P. 1789-1795.

131. Jones C.A., Fernandez M., Here K. Herpes simplex virus type 2 induces rapid cell death and functional impairment of murine dendritic cells in vitro // J. Virol. 2003. Vol. 77. P. 11139-11149.

132. Kassim S.H., Rajasagi N.K., Zhao X. In vivo ablation of CD llc-positive dendritic cells increases susceptibility to Herpes simplex virus type 1 infection and diminishes NK and T-cell responses // J. Virol. 2006. Vol. 80. № 8. P. 3985-3993.

133. Kent J.R., Kang W., Miller C.G., Fraser N.W. Herpes simplex virus latency-associated transcript gene function // J. Neurovirol. 2003. Vol. 9. P. 285-290.

134. Khanna K.M., Bonneau R.H., Kinchington P.R., Hendricks R.L. Herpes simplex virus-specific memory CD8+ T cells are selectively activated and retained in latently infected sensory ganglia // Immunity. 2003. Vol. 18. P. 593-603.

135. Kikuchi H., Itoh J., Fukuda S. Chronic nicotine stimulation modulates the immune response of mucosal T cells to Thl-dominant pattern via nAChR by upregulation of Thl-specific transcriptional factor//Neurosci. Lett. 2008. Vol. 432(3). P. 217-221.

136. Kim S., Elkon K.B., Ma X: Transcriptional suppression of interleukin-12 gene expression following phagocytosis of apoptotic cells // Immunity. 2004. Vol. 21. P. 643653.

137. Kim Y.C., Bang D., Lee S., Lee K.H. The effect of herpesvirus infection on the expression of cell adhesion molecules on cultured human dermal microvascular endothelial cells // J. Dermatol. Sci. 2000. Vol. 24(1). P. 38-47.

138. Knickelbein Jared E., Divito Sherrie, Hendricks Robert L. Modulation of CD8+ CTL Effector Function by Fibroblasts Derived from the Immunoprivileged Cornea // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2007. Vol. 48(5). P. 2194-2202.

139. Koelle D.M., Huang J., Hensel M.T., McClurkan C.L. Innate immune responses to herpes simplex virus type 2 influence skin homing molecule expression by memory CD4+ lymphocytes // J. Virol. 2006. Vol. 80(6). P. 2863-2872.

140. Koelle David M., Corey Lawrence. Recent progress in herpes simplex virus immunobiology and vaccine research // Clin. Microbiol. Rev. 2003. Vol. 16(1). P. 96-113.

141. Koka R., Burkett P., Chien M., Chai S., Boone D.L., Ma A. Cutting edge: murine dendritic cells require IL-15R alpha to prime NK cells // J. Immunol. 2004. Vol. 173. P. 3594-3598.

142. Komi J., Lassila O. Nonsteroidal anti-estrogens inhibit the functional differentiation of human monocyte-derived dendritic cells // Blood. 2000. Vol. 95. P. 2875-2882.

143. Krishnan N., Thellin O., Buckley D.J., Horseman N.D., Buckley A.R. Prolactin suppresses glucocorticoid-induced thymocyte apoptosis in vivo // Endocrinology. 2003. Vol. 144. P. 2102-2110.

144. Krug A., Luker G.D., Barchet W., Leib D.A., Akira S., Colonna. Herpes simplex virus type 1 activates murine natural interferon-producing cells M. through toll-like receptor 9 //Blood. 2004. Vol. 103. P. 1433-1437.

145. Kruse M., Rosorius O., Kratzer F., Stelz G., Kuhnt C., Schuler G., Hauber J., Steinkasserer A. Mature dendritic cells infected with herpes simplex virus type 1 exhibit inhibited T-cell stimulatory capacity // J. Virol. 2000. Vol. 74. P. 7127-7136.

146. Kurt-Jones E.A., Chan M., Zhou S. Herpes simplex virus 1 interaction with Toll-like receptor 2 contributes to lethal encephalitis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. Vol. 101. P. 1315-1320.

147. La S., Kim J., Kwon B.S., Kwon B. Herpes simplex virus type 1 glycoprotein D inhibits T-cell proliferation // Mol. Cells. 2002. Vol. 14. P. 398-403.

148. Langrish C.L., McKenzie B.S., Wilson N.J., de Waal M.R., Kastelein R.A., Cua D.J. IL-12 and IL-23: master regulators of innate and adaptive immunity // Immunol. Rev. 2004. Vol. 202. P. 96-105.

149. Larson S.J., Dunn A.J. Behavioral effects of cytokines // Brain Behav. Immun. 2001. Vol. 15. P. 371-387.

150. Lee S., Gierynska M., Eo S.K., Kuklin N., Rouse B.T. Influence of DNA encoding cytokines on systemic and mucosal immunity following genetic vaccination against herpes simplex virus // Microbes Infect. 2003. Vol. 5(7). P. 571-578.

151. Leo N.A., Bonneau R.H.Chemical sympathectomy alters cytotoxic T lymphocyte responses to herpes simplex virus infection // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2000. Vol. 917. P. 92334.

152. Li W.R., Niu B., Wang J.W., Feng Z.J., Wang D.X. Coexpression of interleukin-2 enhances the immunization effect of a DNA vaccine expressing herpes simplex 1 glycoprotein D // Acta Virol. 2006. Vol. 50(4). P. 251-256.

153. Lieberman L.A., Hunter C.A. Regulatory pathways involved in the infection-induced production of IFN-gamma by NK cells // Microbes Infect. 2002. Vol. 4. P. 1531-1538.

154. Lin R., Noyce R., Collins R. The herpes simplex virus ICPO Ring finger domain inhibits IRF3 and IRF7-mediated activation of interferon-stimulated genes // J. Virol. 2003. Vol. 78. P. 1675-1684.

155. Liu Y.J. Dendritic cell subsets and lineages, and their functions in innate and adaptive immunity // Cell. 2001. Vol. 106. P. 259-262.

156. Lorenzo M.E., Ploegh H.L., Tirabassi R.S. Viral immune evasion strategies and the underlying cell biology // Semin. Immunol. 2001. Vol. 13. P. 1-19.

157. Lu P., Jones F.E., Saffran H.A., Smiley J.R. Herpes simplex virus virion host shutoff protein requires a mammalian factor for efficient in vitro endoribonuclease activity // J. Virol. 2001. Vol. 75. P. 1172-1185.

158. Lund J.M., Hsing L., Pham T.T., Rudensky A.Y. Coordination of early protective immunity to viral infection by regulatory T cells // Science. 2008. Vol. 320(5880). P. 12201224.

159. Lund Jennifer M., Linehan Melissa M., Iijima Norifumi, Iwasaki Akiko. Cutting edge: plasmacytoid dendritic cells provide innate immune protection against mucosal viral infection in situ // The Journal of Immunology. 2006. Vol. 177. P. 7510-7514.

160. Lutgendorf S.K., Logan H., Kirchner L., Rothrock N., Svengalis S., Iverson K., Lubaroff D. Effects of relaxation and stress on the capsaicin-induced local inflammatory response // Psychosom. Med. 2000. Vol. 62. P. 524-534.

161. Maestroni G.J., Mazzola P. Langerhans cells (32-adrenoceptors: role in migration, cytokine production, Th priming and contact hypersensitivity // J. Neuroimmunol. 2003. Vol. 144. P. 91-99.

162. Maillet S., Naas T., Crepin S., Roque-Afonso A.M., Lafay F., Efstathiou S., Labetoulle M. Herpes simplex virus type 1 latently infected neurons differentially express latency-associated and ICP0 transcripts // J. Virol. 2006. Vol. 80(18). P. 9310-21.

163. Mal'khanov V.B., Shevchuk N.E., Marvanova Z.R. Cytokine status of patients with ophthalmic herpes // Vopr. Virusol. 2004. Vol. 49(1). P. 28-30.

164. Malkin J.-E. Epidemiology of Herpes simplex virus infection in developed countries // Herpes J. IHFM. 2004. Vol. 11 (Suppl. 1). P. 2-23.

165. Malmgaard L, Melchjorsen J, Bowie AG, Mogensen SC, Paludan SR: Viral activation of macrophages through TLR-dependent and -independent pathways. J Immunol 2004. Vol. 173. P. 6890-6898.

166. Markovitz Jerome H. Resolved: Psychosocial interventions can improve clinical outcomes in organic disease—moderator introduction // Psychosomatic Medicine. 2002. Vol. 6. P. 549-551.

167. Marques C.P., Hu S., Sheng W., Cheeran M.C., Cox D., Lokensgard J.R. Interleukin-10 attenuates production of HSV-induced inflammatory mediators by human microglia // Glia. 2004. Vol. 47(4). P. 358-366.

168. Masopust D., Vezys V., Marzo A.L., Lefrancois L. Preferential localization of effector memory cells in nonlymphoid tissue // Science. 2001. Vol. 291. P. 2413-2417.

169. Mata M., Zhang M., Hu X., Fink D.J. HveC (nectin-1) is expressed at high levels in sensory neurons, but not in motor neurons, of the rat peripheral nervous system // J. Neurovirol. 2001. Vol. 7. P. 476-480.

170. Matyszak M.K., Citterio S., Rescigno M., Ricciardi-Castagnoli P. Differential effects of corticosteroids during different stages of dendritic cell maturation // Eur. J. Immunol. 2000. Vol. 30. P. 1233-1242.

171. McKay L.I., Cidlowski J.A. Molecular control of immune/inflammatory responses: interactions between nuclear factor-KB and steroid receptor-signaling pathways // Endocrinol. Rev. 1999. Vol. 20. P. 435^159.

172. Melroe G.T., DeLuca N.A., Knipe D.M. Herpes simplex virus 1 has multiple mechanisms for blocking virus-induced interferon production // J. Virol. 2004. Vol. 78. P. 8411-8420.

173. Mikloska Z., Bosnjak L., Cunningham A.L. Immature monocyte-derived dendritic cells are productively infected with herpes simplex virus type 1 // J. Virol. 2001. Vol. 75. P. 5958-5964.

174. Mikloska Z., Cunningham A.L. Herpes simplex virus type 1 glycoproteins gB, gC, and gD are major targets for CD4 T-lymphocytc cytotoxicity in HLA-DR expressing human epidermal keratinocytes // J. Gen. Virol. 1998. Vol. 79. P. 353-361.

175. Mikloska, Z., Cunningham A.L. Alpha and gamma interferons inhibit herpes simplex virus type 1 infection and spread in epidermal cells after axonal transmission // J. Virol. 2001. Vol. 75. P. 11821-11826.

176. Milligan G.N., Bernstein D.I., Bourne N. T lymphocytes are required for protection of the vaginal mucosae and sensory ganglia of immune mice against reinfection with herpes simplex virus type 2 //J. Immunol. 1998. Vol. 160. P. 6093-6100.

177. Milligan G.N., Bourne N., Dudley K.L. Role of polymorphonuclear leukocytes in resolution of HSV-2 infection of the mouse vagina // J. Reprod. Immunol. 2001. Vol. 49. P. 49-65.

178. Mogensen T.H., Melchjorsen J., Malmgaard L., Casola A., Paludan S.R. Suppression of proinflammatory cytokine expression by herpes simplex virus type 1 // J. Virol. 2004. Vol. 78. P. 5883-5890.

179. Mogensen T.H., Paludan S.R. Reading the viral signature by Toll-like receptors and other pattern recognition receptors // J. Mol. Med. 2005. Vol. 83. P. 180-192.

180. Nagafuchi M., Nagafuchi Y., Sato R., Imaizumi T., Ayabe M., Shoji PI., Ichiyama T. Adult meningism and viral meningitis, 1997-2004: clinical data and cerebrospinal fluid cytokines //Intern. Med. 2006. Vol. 45(21). P. 1209-1212.

181. Nash A.A. T cells and the regulation of Herpes simplex virus latency and reactivation//J. Exp. Med. 2000. Vol. 191. №. 9. P. 1455-1458.

182. Neumann J., Eis-Hubinger A.M., Koch N. Herpes simplex virus type 1 targets the MHC class II processing pathway for immune evasion // J. Immunol. 2003. Vol. 171. P. 3075-3083.

183. Niimi M., Wada Y., Sato M., Takahara J., Kawanishi K. Effect of continuous intravenous injection of interleukin-6 and pretreatment with cyclooxygenase inhibitor on brain c-fos expression in the rat // Neuroendocrinology. 1997. Vol. 66. P. 47-53.

184. Nilsson N., Carlstein H. Estrogen induces suppression of natural killer cell cytotoxicity and augmentation of polyclonal B cell activation // Cell. Immunol. 1994. Vol. 158. P. 131-139.

185. Nizri E., Hamra-Amitay Y., Sicsic C., Lavon I., Brenner T. Anti-inflammatory properties of cholinergic up-regulation: a new role for acetylcholinesterase inhibitors // Neuropharmacology. 2006. Vol. 50(5). P. 540-547.

186. Nomura J., Hosoi T., Okuma Y., Nomura Y. The presence and functions of muscarinic receptors in human T cells: the involvement in IL-2 and IL-2 receptor system // Life Sci. 2003. Vol. 72(18-19). P. 2121-2126.

187. Novelli F., Casanova J.L. The role of IL-12, IL-23 and IFN-gamma in immunity to viruses // Cytokine Growth Factor Rev. 2004. Vol. 15. P. 367-377.

188. Ofek K., Krabbe K.S., Evron T. et al. Cholinergic status modulations in human volunteers under acute inflammation // J. Mol. Med. 2007. Vol. 85(11). P. 1239-1251.

189. Orange J.S., Ballas Z.K. Natural killer cells in human health and disease // Clin. Immunol. 2006. Vol. 118. P. 1-10.

190. Oshima M., Azuma H., Suzutani T., Ikeda H., Okuno A. Direct and mononuclear cell mediated effects on interleukin 6 production by glioma cells in infection with herpes simplex virus type 1 // J. Med. Virol. 2001. Vol. 63(3). P. 252-258.

191. Paludan S.R. Requirements for the induction of interleukin-6 by herpes simplex virus-infected leukocytes // J. Virol. 2001. Vol. 75. P. 8008-8015.

192. Papanicolaou D.A., Wilder R.L., Manolagas S.C., Chrousos G.P. The pathophysiologic roles of interleukin-6 in human disease // Ann. Intern. Med. 1998. Vol. 128. P. 127-137.

193. Parnet P., Kelley K., Bluthe R., Dantzer R. Expression and regulation of interleukin-1 receptors in the brain. Role in cytokines-induced sickness behavior // J. Neuroimmunol. 2002. Vol. 125. P. 5-14.

194. Pereira R.A., Simon M.M., Simmons A. Granzyme A, a noncytolytic component of CD8(+) cell granules, restricts the spread of herpes simplex virus in the peripheral nervous systems of experimentally infected mice // J. Virol. 2000. Vol. 74. P. 1029-1032.

195. Perez-Romero P., Perez A., Capul A., Montgomery R., Fuller A.O. Herpes simplex virus entry mediator associates in infected cells in a complex with viral proteins gD and at least gH // J. Virol. 2005. Vol. 79. P. 4540-4544.

196. Perkins D.Targeting apoptosis in neurological disease using the herpes simplex virus. Cell Mol Med. 2002. Vol. 6(3). P. 341-356.

197. Pestka S., Krause C.D., Walter M.R. Interferons, interferon-like cytokines, and their receptors // Immunol. Rev. 2004. Vol. 202. P. 8-32.

198. Petitto J.M., McNamara R.K., Gendreau P.L., Huang Z., Jackson A.J. Impaired learning and memory and altered hippocampal neuro development resulting from interleukin-2 gene deletion // J. Neurosci. Res. 1999. Vol. 56(4). P. 441-446.

199. Pflanz S., Timans J.C., Cheung J., Rosales R., Kanzler H., Gilbert J. et al. IL-27, a heterodimeric cytokine composed of EBI3 and p28 protein, induces proliferation of naive CD4(+) T cells // Immunity. 2002. Vol. 16. P. 779-790.

200. Pike J.L., Smith T.L., Hauger R.L. et al. Chronic life stress alters sympathetic, neuroendocrine, and immune responsivity to an acute psychological stressor in humans // Psychosom. Med. 1997. Vol. 59. P. 447-457.

201. Pirhonen J. Regulation of IL-18 expression in virus infection // Scand. J. Immunol. 2001. Vol. 53. P. 533-539.

202. Pollara G., Jones M., Handley M.E. et al. Herpes simplex virus type-1-induced activation of myeloid dendritic cells: the roles of virus cell interaction and paracrine type I IFN secretion // J. Immunol. 2004. Vol. 173. P. 4108^1119.

203. Pongpanich A., Bhattarakosol P., Chirathaworn C. Induction of apoptosis by herpes simplex virus in Jurkat cells is partly through caspase-3, -8 and -9 activation // J. Med. Assoc. Thai. 2004. Vol. 87 (Suppl 2). P. 140-145.

204. Posavad C.M., Koelle D.M., Shaughnessy M.F., Corey L. Severe genital herpes infections in HIV-infected individuals with impaired HSV-specific CD8+ cytotoxic T lymphocyte responses // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1997. Vol. 94. P. 10289-10294.

205. Prechtel A.T., Turza N.M., Kobelt D.J. et al. Infection of mature dendritic cells with herpes simplex virus type 1 dramatically reduces lymphoid chemokine-mediated migration // J. Gen. Virol. 2005. Vol. 86. P. 1645-1657.

206. Prehaud C., Megret F., Lafage M., Lafon M. Virus infection switches TLR-3-positive human neurons to become strong producers of beta interferon // J. Virol. 2005. Vol. 79(20).-P. 12893-12904.

207. Qiu Y.H., Peng Y.P., Jiang J.L., Wang J.J. Effect of acetylcholine on in vitro IL-2 production and NK cell cytotoxicity of rats // Lymphology. 2004. Vol. 37(1). P. 31-38.

208. Rabin B.S. Stress, immune function, and health: the connection. New York: A John Wiley & Sons, Inc., Publication, 1999. 341p.

209. Rakasz E., Mueller A., Perlman S. Gammadelta T cell response induced by vaginal Herpes simplex 2 infection // Immunol. Lett. 1999. Vol. 70. P. 89-93.

210. Raulet D.H. Interplay of natural killer cells and their receptors wth the adaptive immune response //Nature Immunology. 2004. Vol. 5. № 10. P. 996-1002.

211. Reading P.C., Whitney P.G., Barr D.P. et al. IL-18, but not IL-12, regulates NK cell activity following intranasal herpes simplex virus type 1 infection // J. Immunol. 2007. Vol. 179(5). P. 3214-3221.

212. Reszka E, Jegier B, Wasowicz W, Lelonek M, Banach M, Jaszewski R. Detection of infectious agents by polymerase chain reaction in human aortic wall // Cardiovasc. Pathol. 2008. Vol. 17(5). P. 297-302.

213. Richards C.M., Shimeld C., Williams N.A., Hill T.J. Induction of mucosal immunity against herpes simplex virus type 1 in the mouse protects against ocular infection and establishment of latency // J. Infect. Dis. 1998. Vol. 177(6). P 1451-1457.

214. Richards D.F., Fernandez M., Caulfield J., Hawrylowicz C.M. Glucocorticoids drive human CD8+T cell differentiation towards a phenotype with high IL-10 and reduced IL-4, IL-5 and IL-13 production // Eur. J. Immunol. 2000. Vol. 30. P. 2344-2354.

215. Roberts C.W., Walker W., Alexander J. Sex-associated hormones and immunity to protozoan parasites // Clin. Microbiol. Rev. 2001. Vol. 14. P. 476-488.

216. Roizman B., Pellett P.E. The family Herpesviridae: A brief introduction / In Fields Virology. / Edited by Knipe DM, Howley PM. Lippincott Williams & Wilkins, 2001. P. 2381-2397.

217. Rong Q., Alexander T.S., Koski G.K., Rosenthal K.S. Multiple mechanisms for HSV-1 induction of interferon alpha production by peripheral blood mononuclear cells // Arch. Virol. 2003. Vol. 148. P. 329-344.

218. Saeed R.W., Varma S., Peng-Nemeroff T. et al. Cholinergic stimulation blocks endothelial cell activation and leukocyte recruitment during inflammation // J. Exp. Med. 2005. Vol. 201. P. 1113-1123.

219. Schroder K., Hertzog P.J., Ravasi T., Hume D.A. Interferon-gamma: an overview of signals, mechanisms and functions // J. Leukoc. Biol. 2004. Vol. 75. P. 163-189.

220. Sergerie Y., Rivest S., Boivin G. Tumor necrosis factor-alpha and interleukin-1 beta play a critical role in the resistance against lethal herpes simplex virus encephalitis // J. Infect. Dis. 2007. Vol. 196(6). P. 853-860.

221. Shcheglovitova O.N., Maksianina E.V. Spectrum of cytokines produced by blood leukocytes in infection of herpes simplex virus, type 1 // Vopr. Virusol. 2004. Vol. 49(4). P. 39-43.

222. Sheridan B.S., Khanna K.M., Frank G.M., Hendricks R.L. Latent virus influences the generation and maintenance of CD8+ T cell memory // J. Immunol. 2006. Vol. 177(12). P. 8356-8364.

223. Silverman M.N., Pearce B.D., Biron C.A., Miller A.H. Immune modulation of the hypothalamic-pituitary-adrenal (HPA) axis during viral infection // Viral. Immunol. 2005. Vol. 18. P. 41-78.

224. Sinha S., Cheshenko N., Lehrer R.I., Herold B.C. NP-1, a rabbit alpha-defensin, prevents the entry and intercellular spread of herpes simplex virus type 2 // Antimicrob. Agents Chemother. 2003. Vol. 47. P. 494-500.

225. Skok M.V., Grailhe R., Agenes F., Changeux J.P. The role of nicotinic receptors in B-lymphocyte development and activation // Life Sci. 2007. Vol. 80(24-25). P. 2334-2336.

226. Sloan D.D., Jerome K.R. Herpes simplex virus remodels T-cell receptor signaling, resulting in p38-dependent selective synthesis of interleukin-10 // J. Virol. 2007. Vol. 81(22). P. 12504-12514.

227. Slominski A., Zbytek B., Szczesniewski A., Semak I., Kaminski J., Sweatman T. et al. CRH stimulation of corticosteroids production in melanocytes is mediated by ACTH // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2005. Vol. 288. P. 701-706.

228. Smith C.M., Belz G.T., Wilson N.S. Cutting edge: conventional CD8 alphas-dendritic cells are preferentially involved in CTL priming after footpad infection with herpes simplex virus-1 // J. Immunol. 2003. Vol. 170. P. 4437-4440.

229. Sorachi K.I., Kumagai S., Sugita M., Yodoi J., Imura H. Enhancing effects of 17 beta-estadiol on human NK cell activity // Immunol. Lett. 1993. Vol. 1. P. 31-36.

230. Soucy G., Boivin G., Labrie F., Rivest S. Estradiol is required for a proper immune response to bacterial and viral pathogens in the female brain // J. Immunol. 2005. Vol. 174. P. 6391-6398.

231. Spatz M., Wolf H.M., Thon V., Gampfer J.M., Eibl M.M. Immune response to the herpes simplex type 1 regulatory proteins ICP8 and VP 16 in infected persons // J. Med. Virol. 2000. Vol. 62. P. 29-36.

232. Spear P.G. Herpes simplex virus: receptors and ligands for cell entry // Cell. Microbiol. 2004. Vol. 6. P. 401-410.

233. Sternberg E.M. Neural regulation of innate immunity: a coordinated nonspecific host response to pathogens //Nat. Rev. Immunol. 2006. Vol. 6(4). P. 318-328.

234. Strengell M., Matikainen S., Siren J., Lehtonen A., Foster D., Julkunen I., Sareneva T. IL-21 in synergy with IL-15 or IL-18 enhances IFN-gamma production in human NK and T cells // J. Immunol. 2003. Vol. 170. P. 5464-5469.

235. Summers-de Luca L.E., McCarthy D.D., Cosovic B., Ward L.A., Lo C.C., Scheu S., Pfeffer K., Gommerman J.L. Expression of lymphotoxin-ap on antigen-specific T cells is required for DC function // J. Exp. Med. 2007. Vol. 204(5). P. 1071-1081.

236. Suvas S., Azkur A.K., Kim B.S., Kumaraguru U., Rouse B.T. CD4(+)CD25(+) regulatory T cells control the severity of viral immunoinflammatory lesions // J. Immunol. 2004. Vol. 172. P. 4123-4132.

237. Suvas S., Azkur A.K., Rouse B.T. Qa-lb and CD94-NKG2a interaction regulate cytolytic activity of herpes simplex virus-specific memory CD8+ T cells in the latently infected trigeminal ganglia // J. Immunol. 2006. Vol. 176. P. 1703-1711.

238. Takahashi H.K., Iwagaki H., Hamano R., Yoshino T., Tanaka N., Nishibori M. Effect of nicotine on IL-18-initiated immune response in human monocytes // J. Leukoc. Biol. 2006. Vol. 80(6). P. 1388-1394.

239. Tato C.M., Martins G.A., High F.A., DiCioccio C.B., Reiner S.L., Hunter C.A. Cutting Edge: Innate production of IFN-gamma by NK cells is independent of epigenetic modification of the IFN-gamma promoter // J. Immunol. 2004. Vol. 173. P. 1514-1517.

240. Taube M., Svensson L., Carlsten H. T lymphocytes are not the target for estradiol-mediated suppression of DTH in reconstituted female severe combined immunodeficient (SCID) mice // Clin. Exp. Immunol. 1998. Vol. 114. P. 147-153.

241. Teng Y.C., Chen Y.T., Cheng Y.Y., Hung S.L. Requirements for the upregulation of interleukin-6 by herpes simplex virus-infected gingival fibroblasts // Viral Immunol. 2005. Vol. 18(1). P. 170-178.

242. Teuscher C., Noubade R., Spach K., McElvany B., Bunn J.Y., Fillmore P.D., Zachary J.F., Blankenhorn E.P. Evidence that the Y chromosome influences autoimmune disease in male and female mice // PNAS. 2006. Vol. 103. № 21. P. 8024-8029.

243. Tracey K.J. Physiology and immunology of the cholinergic antiinflammatory pathway // J. Clin. Invest. 2007. Vol.117(2). P. 289-296.

244. Trautner B.W., Zimmermann K.P., Darouiche R.O. Skin response to delayed hypersensitivity testing in persons with unilateral stroke-related paresis: implications for people with spinal cord injury // J. Spinal Cord Med. 2007. Vol. 30(4). P. 362-365.

245. Trgovcich J., Johnson D., Roizman B. Cell surface major histocompatibility complex class II proteins are regulated by the products of the gamma(l)34.5 and U(L)41 genes of herpes simplex virus 1 // J. Virol. 2002. Vol. 76. P. 6974-6986.

246. Vanitha Daisy J., Joo Hye Mee, Rouse Barry T., Sangster Mark Y. Quantitative analysis of herpes simplex virus type 1-specific memory B cells generated by different routes of infection// Virology. 2007. Vol. 360 (1). P. 136-142.

247. Vezys V., Masopust D., Desmarets M., Wess J., Zimring J.C. Analysis of CD8+ T cell-mediated anti-viral responses in mice with targeted deletions of the Ml or M5 muscarinic cholinergic receptors // Life Sci. 2007. Vol. 80(24-25). P. 2330-2333.

248. Wang H., Yu M., Ochani M. et al. Nicotinic acetylcholine receptor a7 subunit is an essential regulator of inflammation //Nature. 2003. Vol. 421. P. 384-388.

249. Ware C.F. The TNF superfamily // Cytokine Growth Factor Rev. 2003. Vol. 14. P. 181-184.

250. Watkins L.R., Maier S.F. Implications of immune-to-brain communication for sickness and pain // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. Vol. 96. P. 7710-7713.

251. Weaver J.D., Haung M., Albert M., Harris T., Rowe J.W., Seeman T.E. Interleukin-6 and risk of cognitive decline: MacArthur studies of success aging // Neurology. 2002. Vol. 59. P. 371-378.

252. Webster J.I., Tonelli L., Sternberg E.M. Neuroendocrine regulation of immunity // Annu. Rev. Immunol. 2002. Vol. 20. P. 125-163.

253. Wells C.A., Ravasi T., Faulkner G.J., Carninci P., Okazaki Y., Hayashizaki Y. et al. Genetic control of the innate immune response // BMC Immunol. 2003. Vol. 4. P. 5.

254. Wen X.M., Zhang Y.L., Liu X.M., Guo S.X., Wang H. Immune responses in mice to arecoline mediated by lymphocyte muscarinic acetylcholine receptor // Cell. Biol. Int. 2006. Vol. 30(12). P. 1048-1053.

255. Wherry E.J., Teichgraber V., Becker T.C., Masopust D., Kaech S.M., Antia R., von Andrian U.H., Ahmed R. Lineage relationship and protective immunity of memory CD8 T cell subsets //Nat. Immunol. 2003. Vol. 4. P. 225-234.

256. Whitley R.J. Herpes simplex viruses / In Fields Virology. Edited by Knipe D.M., Howley P.M. Lippincott Williams & Wilkins ,2001. P. 2461-2509.

257. Wilcoxen S.C., Kirkman E., Dowdell K.C., Stohlman S. A. Gender-dependent IL-12 secretion by APC is regulated by IL-10 // J. Immunol. 2000. Vol. 164. P. 6237-6243.

258. Wilder R.L. Neuroimmunoendocrinology of the rheumatic diseases: past, present, and future //Ann. N. Y. Acad. Sci. 2002. Vol. 966. P. 13-19.

259. Woltman A.M., Massacrier C., de Fijter J.W., Caux C., van Kooten C. Corticosteroids prevent generation of CD34+-derived dermal dendritic cells but do not inhibit Langerhans cell development // J. Immunol. 2002. Vol. 168. P. 6181-6188.

260. Wonnacott K.M., Bonneau R.H. The effects of stress on memory cytotoxic T lymphocyte-mediated protection against herpes simplex virus infection at mucosal sites // Brain Behav. Immun. 2002. Vol. 16. P. 104-117.

261. Wutzler P., Doerr H.W., Farber I. et al. Seroprevalence of herpes simplex virus type 1 and type 2 in selected German populations relevance for the incidence of genital herpes // J. Med. Virol. 2000. Vol. 61. P. 201-207.

262. Yamaguchi K., Yamamoto A., Hisano M., Natori M., Murashima A.Herpes simplex virus 2-associated hemophagocytic lymphohistiocytosis in a pregnant patient // Obstet. Gynecol. 2005. Vol. 105(5). Pt. 2. P. 1241-1244.

263. Yaraee R., Ebtekar M., Ahmadiani A., Sabahi F. Neuropeptides (sp and CGRP) augment IL-1 Beta production in hsv-infected macrophages // Iran J. Allergy Asthma Immunol. 2003. Vol. 2(2). P. 95-100.

264. Yasin B., Wang W., Pang M., Cheshenko N., Hong T., Waring A.J., Herold B.C., Wagar E.A., Lehrer R.I. Theta-Defensins protect cells from infection by herpes simplex virus by inhibiting viral adhesion and entry// J. Virol. 2004. Vol. 78. P. 5147-5156.

265. Yasuda T., Yoshida H., Garcia-Garcia F., Kay D., Krueger J.M. Interleukin-lbeta has a role in cerebral cortical state-dependent electroencephalographic slow-wave activity // Sleep. 2005. Vol. 28. P. 177-184.

266. Yasukawa M., Ohminami H., Yakushijin Y., Arai J., Hasegawa A., Ishida Y., Fujita S. Fas-independent cytotoxicity mediated by CD4+ CTL directed against herpes simplex virus-infected cells // J. Immunol. 1999. Vol. 162. P. 6100-6106.

267. Yirmiya R., Winocur G., Goshen I. Brain interleukin-1 is involved in spatial memory and passive avoidance conditioning // Neurobiol. Learn. Mem. 2002. Vol. 78(2). P. 379-389.

268. Yokoyama W.M., Kim S., French A.R. The dynamic life of natural killer cells // Ann. Rev. Immunol. 2004. Vol. 22. P. 405^129.

269. Yuan W., Dasgupta A., Cresswell P. Herpes simplex virus evades natural killer T cell recognition by suppressing CDld recycling // Nat. Immunol. 2006. Vol. 7(8). P. 835842.

270. Zabrodskii P.F., Kirichuk V.F., Germanchuk V.G. Role of anticholinesterase mechanism in suppression of antibody formation during acute poisoning with organophosphorus compounds // Bull. Exp. Biol. Med. 2001. Vol. 131(5). P. 467-469.

271. Zambrano A., Solis L., Salvadores N., Cortes M., Lerchundi R., Otth C. Neuronal cytoskeletal dynamic modification and neurodegeneration induced by infection with herpes simplex virus type 1 // J. Alzheimers Dis. 2008. Vol. 14(3). P. 259-269.

272. Zammit D.J., Cauley L.S., Pham Q.M., Lefrancois L. Dendritic cells maximize the memory CD8 T cell response to infection // Immunity. 2005. Vol. 22. P. 561-570.

273. Zhang M., Zhang Y. Study of serum levels of interlukin-2 and its receptor, interlukin-6, sICAM-1, sVCAM-1 in patients with recurrent genital herpes // Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2003. Vol. 34(1). P. 84-85.

274. Zhou X., Deak E., Soderberg K. et al. Vaginal submucosal dendritic cells, but not Langerhans cells, induce protective Thl responses to herpes simplex virus-2 // J. Exp. Med. 2003. Vol. 197. P. 153-162.V

275. Zhu J., Koelle D.M., Cao J., Vazquez J., Huang M.L, Hladik F., Wald A., Corey L. Virus-specific CD8+ T cells accumulate near sensory nerve endings in genital skin during subclinical HSV-2 reactivation // J. Exp. Med. 2007. Vol. 204(3). P. 595-603.

276. Zimring J.C., Kapp L.M., Yamada M., Wess J., Kapp J.A. Regulation of CD8+ cytolytic T lymphocyte differentiation by a cholinergic pathway // J. Neuroimmunol. 2005. Vol. 164(1-2). P. 66-75.

277. Zozulya A.A., Gabaeva M.V., Sokolov O.Y., Surkina I.D., Kost N.V. Personality, coping style, and constitutional neuroimmunology // J. Immunotoxicol. 2008. Vol. 5(2). P. 221-225.