Генетические процессы в искусственно поддерживаемых популяциях атлантического лосося (Salmo salar L.) тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.15, кандидат биологических наук Артамонова, Валентина Сергеевна

• Артамонова, Валентина Сергеевна
• кандидат биологических наук
• 2008

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Артамонова, Валентина Сергеевна

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ОБЪЕКТА ИССЛЕДОВАНИЯ

1.1.1. Основные этапы жизненного цикла атлантического лосося

1.1.2. Классификация популяций атлантического лосося

1.1.3. Ареал вида

1.2. ИСКУССТВЕННОЕ РАЗВЕДЕНИЕ АТЛАНТИЧЕСКОГО ЛОСОСЯ

1.2.1. Необходимость искусственного воспроизводства атлантического лосося и строительство рыбоводных заводов

1.2.2. Особенности рыбоводного процесса на современных лососевых рыбоводных заводах Российской Федерации

1.3. ВНУТРИВИДОВОЕ РАЗНООБРАЗИЕ АТЛАНТИЧЕСКОГО ЛОСОСЯ, ВЫЯВЛЯЕМОЕ ПРИ ПОМОЩИ РАЗЛИЧНЫХ МЕТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

1.3.1. Морфологические, физиологические и поведенческие особенности

1.3.1.1. Морфологические особенности

1.3.1.2. Физиологические особенности

1.3.1.3. Поведенческие особенности

1.3.2. Признаки кариотипа

1.3.3. Разнообразие на уровне белков

1.3.3.1. Различия между близкородственными видами

1.3.3.2. Межконтинентальные, межпопуляционные и внутрипонуляционныеразличия

А) Межконтинентальные различия

Б) Меэ/спопуляционные различия и различия между внутрипопуляционными группировками рыб

1.3.3.3. Различия между проходными и пресноводными формами

1.3.3.4. Мониторинг генетической структуры популяций, испытывающих антропогенное воздействие

1.3.4. Анализ последовательностей ДНК: применение различных методических подходов к решению задач популяционной биологии и идентификации межвидовых гибридов

1.3.4.1. Выявление межвидовых гибридов методами ДНК-анализа

А) Методы анализа с использованием анонимных последовательностей ДНК

Б) Анализ с использованием известных последовательностей ядерной ДНК

1.3.4.2. Изучение внутривидового генетического разнообразия атлантического лосося и путей расселения вида

A) Внутривидовое разнообразие ядерных последовательностей

Б) Внутривидовое разнообразие последовательностей митохондриальной ДНК

B) Применимость различных методов генетического анализа к популяционным исследованиям атлантического лосося

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. ХАРАКТЕРИСТИКА РАЙОНА РАБОТ

2.1.1. Лососевые рыбоводные предприятия РФ

2.1.2. Исследованные популяции атлантического лосося

2.2. СБОР И ХРАНЕНИЕ МАТЕРИАЛА

2.2.1. Сбор информации о вселении чужеродной молоди атлантического лосося в реки Европейского Севера России

2.2.2. Сбор и фиксация проб для генетического анализа

2.3. МЕТОДЫ ГЕНЕТИЧЕСКОГО АНАЛИЗА

2.3.1. Анализ полиморфизма белков

2.3.1.1. Приготовление образцов для анализа полиморфизма белков

2.3.1.2. Проведение электрофореза в полиакршммидиом геле

2.3.1.3. Проведение электрофореза в крахмальном геле

2.3.1.4. Краткая характеристика исследованных ферментных систем и использованные методики гистохимического окрашивания

2.3.1.5. Регистрация результатов аллозимного анализа

2.3.2. Анализ полиморфизма митохондриальной ДНК

2.3.2.1. Выделение тотальной клеточной ДНК

2.3.2.2. Амплификация фрагмента митохондриальной ДНК

2.3.2.3. Расщепление амплифицированного фрагмента митохондриальной ДНК эндонуклеазами рестрикции

2.3.2.4. Электрофорез ДНК в агарозном геле

2.3.2.5. Электрофорез ДНК в полиакриламидном геле

2.3.2.6. Регистрация результатов ПДРФ-анализа

2.3.2.7. Статистическая обработка результатов

3. РЕЗУЛЬТАТЫ

3.1. ОСОБЕННОСТИ ГЕНОФОНДА АТЛАНТИЧЕСКОГО ЛОСОСЯ

ЕВРОПЕЙСКОГО СЕВЕРА РОССИИ

3.1.1. Изучение генетических особенностей популяций атлантического лосося европейского Севера России

3.1.2. Заселение атлантическим лососем территории европейского Севера России в послеледниковый период

3.1.2.1. Район распространения ESTD*80 и севроамериканских гаплотипов мтДНК

3.1.2.2. Реконструкция расселения атлантического лосося в посделедниковый период

3.1.3. Популяции атлантического лосося Кольского полуострова как хранилище генофонда вида

3.2. МЕЖВИДОВАЯ ГИБРИДИЗАЦИЯ ПРИ ИСКУССТВЕННОМ ВОСПРОИЗВОДСТВЕ АТЛАНТИЧЕСКОГО ЛОСОСЯ

3.3. ВСЕЛЕНИЕ ЧУЖЕРОДНОЙ МОЛОДИ АТЛАНТИЧЕСКОГО ЛОСОСЯ В РЕКИ ЕВРОПЕЙСКОГО СЕВЕРА РОССИИ: МАСШТАБЫ И ПОСЛЕДСТВИЯ ПЕРЕВОЗОК

3.3.1. Вселение молоди атлантического лосося в чужие для нее реки

3.3.2. Эффективность перевозок

3.3.3. Влияние перевозок на состояние генофонда атлантического лосося европейского Севера России

3.4. НЕКОНТРОЛИРУЕМЫЙ ОТБОР НА РЫБОВОДНЫХ ЗАВОДАХ

И ЕГО ВЛИЯНИЕ НА ГЕНОФОНД ПОПУЛЯЦИЙ

3.4.1. Отбор против гетерозигот по локусу ESTD*

3.4.2. Изменение частот аллелей в маточных стадах атлантического лосося и группах молоди, выращиваемых в искусственных условиях

3.4.2.1. Выращивание молоди, полученной от диких производителей реки Кереть на рыбоводных заводах Карелрыбвода, формирование маточного стада семги и получение потомства от «заводских» производителей

3.4.2.2. Генетическое разнообразие дикой молоди семги р. Кереть

3.4.2.3. Генетические различия между выборками дикой и заводской семги

3.4.2.4. Временная динамика генофонда внутри групп заводской молоди и различия между генерациями

3.4.2.5. Генетические особенности потомства маточного стада

3.4.3. Адаптивность генетического полиморфизма и необходимость противодействия неконтролируемому отбору на рыбоводных заводах

4. ОБСУЖДЕНИЕ

4.1. ОСОБЕННОСТИ ПРИРОДНОГО ГЕНОФОНДА АТЛАНТИЧЕСКОГО ЛОСОСЯ ЕВРОПЕЙСКОГО СЕВЕРА РОССИИ И РЕКОНСТРУКЦИЯ

ПУТЕЙ РАССЕЛЕНИЯ ВИДА В РЕГИОНЕ

4.2. НЕКОНТРОЛИРУЕМЫЕ ГЕНЕТИЧЕСКИЕ ПРОЦЕССЫ

В ИСКУССТВЕННО ПОДДЕРЖИВАЕМЫХ ПОПУЛЯЦИЯХ ВИДА

4.2.1. Влияние эффекта основателя и дрейфа генов

4.2.2. Межвидовая гибридизация атлантического лосося и кумжи

4.2.3 Недоучет популяционной структуры при организации рыбоводного процесса и разрушение локальных адаптаций

4.2.4. Вселение в реки чужеродной молоди и показатели эффективности работы рыбоводных заводов

4.2.5. Неконтролируемый отбор при искусственном воспроизводстве

4.2.6. Сохранение природного генофонда при искусственном разведении атлантического лосося

4.2.7. Искусственно поддерживаемые популяции как модель для изучения процесса эволюции

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Генетические процессы в искусственно поддерживаемых популяциях атлантического лосося (Salmo salar L.)»

Изменение облика биосферы становится в настоящее время одной из главных проблем, с которыми сталкивается человечество: «старые добрые» виды стремительно исчезают, зато самопроизвольно или в результате деятельности человека появляются новые формы вредителей, болезнетворных организмов и сорняков. Изучением этих процессов занимается новая наука — природоохранная генетика (Алтухов, 2003).

Понятно, что для сохранения всего разнообразия биосферы необходимо твердое знание закономерностей эволюции живого. Оновные факторы эволюции хорошо известны: это случайные процессы (дрейф генов, эффект основателя), межвидовая гибридизация, миграция (поток генов), мутации и отбор, однако единого мнения об их вкладе в эволюционный процесс все еще нет. Проблема, сформулированная Э. Майром более 30 лет назад, атуальна и сегодня (1974, с. 15): «В настоящее время большинство дискуссий затрагивают вопрос о сравнительном значении различных взаимодействующих факторов. Мы получим чрезвычайно разнообразные ответы, если зададим ряду современных эволюционистов следующие вопросы:

Насколько велико значение случайных событий в эволюции?

Насколько велика роль гибридизации в эволюции?

Каковы следствия обмена генами между популяциями?

Какая доля новых мутаций полезна?

Какая доля генетической изменчивости обусловлена сбалансированным полиморфизмом?»

Казалось бы, ответы на эти вопросы должны дать эксперименты, однако такой подход имеет свои минусы: «При слишком строгом эксперименте со множеством ограничений мы получаем лишь теоретическую модель, которая подтверждает наши наблюдения и не дает исчерпывающей информации о природных популяциях. С другой стороны, при опытной проверке того или иного явления в естественных, не контролируемых условиях результаты бывают не достаточно четкими для выбора альтернативных гипотез» (Хедрик, 2003, с. 15-16).

К счастью для исследователей, кроме двух упомянутых групп популяций (природных и экспериментальных) есть третья — это искусственно поддерживаемые популяции (Коновалов, 1975). По существу, они служат идеальным "полигоном" для изучения закономерностей динамики генофондов. К числу таких популяций можно отнести линии, которые поддерживают в лабораториях, группы особей редких видов, разводимые в зоопарках или в ботанических садах, а также популяции рыб, поддерживаемые за счет выпусков молоди с рыбоводных заводов. Здесь при искусственном воспроизводстве человек не ведет сознательную селекцию по каким-либо признакам, однако, как отмечал еще Ч. Дарвин: «На домашние существа естественный отбор оказывает некоторое влияние, независимо от воли человека и даже вопреки ей» (Дарвин, 1951, с. 595).

В отечественной литературе этот вид отбора был назван автоселекцией (Печуркин и др., 1990) или, более удачно, неконтролируемым отбором (Никоноров и др., 1989). В англоязычной литературе для обозначения этого явления используют термины inadvertent selection или unintentional selection, что буквально означает «непреднамеренный отбор».

Однако при вмешательстве человека в биологические процессы могут иметь место и другие явления: неконтролируемая межвидовая гибридизация, дрейф генов, обмен генетическим материалом между удаленными популяциями, мутагенное воздействие на особей факторов искусственной среды. При искусственном поддержании популяций избежать всех этих явлений полностью, как правило, не удается. По аналогии, для них естественно использовать термин «неконтролируемые генетические процессы» и рассматривать неконтролируемый отбор как частный случай.

Чрезвычайно удобным объектом для изучения неконтролируемых генетических процессов в искусственно поддерживаемых популяциях может служить атлантический лосось, многие популяции которого поддерживают путем искусственного разведения на рыбоводных заводах. Различная интенсивность антропогенного воздействия на разные популяции вида, вариация условий при выращивании рыб на разных рыбоводных заводах, большая продолжительность рыбоводного цикла, а также то, что часть жизненного цикла особей проходит в природной среде, — все это позволяет исследовать на данном модельном объекте абсолютное большинство процессов, которые имеют место в популяциях при антропогенном вмешательстве. Единственное исключение составляет мутагенное воздействие: о факторах, вызывающих мутационные изменения у рыб при рыбоводном процессе, до сих пор не сообщалось.

Из, всего многообразия неконтролируемых генетических процессов у атлантического лосося в настоящее время хорошо изучен только дрейф генов, чего, разумеется, недостаточно, чтобы сохранять генетическое разнообразие стад ценного хозяйственного объекта, избегая тем самым вырождения популяций в условиях преимущественно искусственного воспроизводства.

Цель настоящей работы состояла в том, чтобы изучить генетические процессы, которые имеют место в искусственно поддерживаемых популяциях атлантического лосося и оценить вклад каждого из них в изменение генофонда при различных типах антропогенного воздействия на популяцию. Для достижения цели, в работе был поставлен ряд задач:

1. На основании собственных и литературных данных дать характеристику генофонда атлантического лосося европейского Севера России, для того, чтобы выявить популяции, в которых генофонд вида представлен наиболее полно и подлежит сохранению в первую очередь.

2. Оценить угрозу межвидовой гибридизации в связи с заводским воспроизводством атлантического лосося.

3. Оценить масштабы и последствия искусственного вселения чужеродной молоди в реки, где имеются собственные популяции (уровень потока чужеродных генов и последствия межпопуляционной гибридизации).

4. Оценить возможность неконтролируемого отбора и его интенсивность при заводском разведении атлантического лосося. Наметить пути предотвращения этого явления в случае, если оно имеет место.

5. Оценить относительный вклад каждого из неконтролируемых генетических процессов, имеющих место на рыбоводных заводах, в изменение генофонда искусственно поддерживаемых популяций.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Генетика», Артамонова, Валентина Сергеевна

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Представленная работа, выполненная на атлантическом лососе в качестве модельного объекта, затронула три смежных раздела генетики, тесно связанных между собой: популяционную генетику, природоохранную (экологическую) генетику и эволюционную генетику.

В ходе ее выполнения удалось прояснить вопрос о путях заселения атлантическим лососем европейского Севера России, а также показать, что максимально высокое генетическое разнообразие, наблюдаемое в популяциях баренцевоморского побережья Кольского полуострова, связано с историей заселения региона рыбами в послеледниковый период. Было показано, что данные популяции представляют собой хранилище генофонда вида в целом и подлежат первоочередной охране.

Таким образом, популяционно-генетические исследования дали возможность оценить потенциал использования генофонда отечественных популяций атлантического лосося как для восстановления исчезающих популяций других регионов, так и в качестве мощного резерва для селекционных программ.

В связи с этим, центральное место в работе заняла проблема сохранения природного генофонда популяций атлантического лосося в процессе искусственного воспроизводства, что относится уже к области экологической генетики. Было показано, что в искусственно поддерживаемых популяциях имеют место процессы, разрушающие природные генофонды: в первую очередь, это межвидовая и межпопуляционная гибридизация, а также отбор на адаптацию к искусственным условиям среды.

И хотя оказалось, что для атлантического лосося европейского Севера России характерно наличие мощных популяционно-специфических адаптаций, которые в значительной степени «гасят» поток генов извне и поддерживают генетическое разнообразие на оптимальном уровне, при достаточно мощном давлении антропогенных факторов природный генофонд популяции может быть безвозвратно разрушен. При этом одним из факторов, способствующих разрушению генофонда, может стать даже само искусственное воспроизводство с целью поддержания популяции.

В то же время, опыт работы таких передовых рыбоводных предприятий, как ФГУП «Ропша», Выгский и Кемский рыбоводные заводы, показывает, что при правильной организации производственного цикла этих негативных процессов можно практически полностью избежать.

По итогам проведенных исследований был опубликован ряд статей, в том числе, в отраслевых изданиях, которые помогли остановить межпопуляционную гибридизацию в бассейне Белого моря, а также позволили наметить пути борьбы с неконтролируемым отбором, имеющим место при длительном выращивании молоди в искусственной среде.

Анализ литературных данных позволяет сделать заключение, что неконтролируемые человеком генетические процессы, которые были зарегистрированы и изучены в искусственно поддерживаемых популяциях атлантического лосося, характерны для искусственно поддерживаемых популяций самых разных организмов (Артамонова, Махров, 2006). Их совокупность может служить хорошей моделью процесса биологической эволюции, причем представляющаяся возможность рассмотреть различные ее составляющие по отдельности, позволяет сделать вывод о том, что ведущим фактором, определяющим изменение генофондов популяций, является отбор.

Под его контролем находятся и случайные процессы (дрейф генов и эффект основателя), и мутационный процесс. Он регулирует поток генов как между популяциями внутри вида, так и между близкородственными видами, создавая механизмы, препятствующие или способствующие гибридизации.

Логическим продолжением данной работы должно стать исследование конкретных биохимических механизмов, ответственных за взаимодействие генотипа и среды, а также изучение преимуществ различных аллелей генов в тех или иных условиях для решения практических задач — селекции и охраны природных генофондов.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Артамонова, Валентина Сергеевна, 2008 год

1. Беланович Л.И., Митанс А.Р. 1974. Промысловый возврат заводских покатников балтийского лосося и кумжи р. Венты // Рыбное хозяйство. № 11. с. 9-10.

2. Белое море. ч. 2. СПб. 1995. 250 с.

3. Белоусов А.Н. 1978. Влияние искусственного воспроизводства на динамику численности семги р. Колы // Рыбное хозяйство. № 4. с. 20-21.

4. Берг Л.С. 1908. О черноморском лососе // Ежег. Зоол. музея АН. т. 13. с. 255-266.

5. Берг Л.С. 1935. Материалы по биологии семги // Изв. ВНИОРХ. т. 20. с. 3-113.

6. Берг Л.С. 1948. О происхождении форелей и других пресноводных лососевых // Памяти академика Сергея Алексеевича Зернова. М.-Л.: Изд-во АН СССР. с. 159-172.

7. Биометрия / Н.В. Глотов, Л.А. Животовский, Н.В. Хованов, Н.Н. Хромов-Борисов. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1982. 264 с.

8. Б-чъ К. 1887. Наши рыбные промыслы // Русское судоходство. № 10-11. с. 17-29.

9. Бэр К.М. 1950. Автобиография. Л..: Изд-во АН СССР. 544 с.

10. Валетов В.А. 1999. Лосось Ладожского озера (биология, воспроизводство). Петрозаводск: Изд-во КГПУ. 91с.

11. Васильев В.П. 1985. Эволюционная кариология рыб. М : Наука. 304 с.

12. Васин О. П. 1988. Изменчивость генетической структуры популяций заводской молоди балтийского лосося // Современное состояние исследований лососевидных рыб. Тез. III Всес. совещ. по лососевидным рыбам. Тольятти, март 1988 г. Тольятти, с. 54-55.

13. Вернидуб М.Ф. 1977. Экстерьер молоди семги и его изменения в процессе роста // Тр. ПИНРО. вып. 32. с. 119-131.

14. Веселов А.Е. 1998. Распределение и поведение молоди атлантического лосося в летний период//Атлантический лосось. СПб.: Наука, с. 159-180.

15. Веселов А.Е., Казаков Р.В., Сысоева М.И. 1998. Закономерности катадромной миграции смолтов атлантического лосося // Атлантический лосось. СПб.: Наука, с. 242-265.

16. Вшивцев А.С. 1990. Эффективность работы Тайбольского рыбоводного завода // Тр. Коми НЦ УрО РАН. № 114. с. 121-133.

17. Генетика изоферментов. М.: Наука. 1977. 275 с.

18. Головков Г., Кожин И. 1939. Рыбоход на реке Туломе // Рыбное хоз-во. № 6. с. 40- 44.

19. Городилов Ю.Н. 1998. Зародышевое и личиночное развитие атлантического лосося //Атлантический лосось. СПб.: Наука, с. 142-158.

20. Гринюк И.Н., Городилов Ю.Н., Деева Т.А. 1977. Перспективы морского культивирования лосося в СССР // Рыбное хозяйство. № 10. с. 10-12.

21. Дарвин Ч. 1951. Изменения домашних животных и культурных растений. (Сочинения, т. 4.) М.-Л.: Изд-во АН СССР. 883 с.

22. Дихнич А.В. 2004. Биологические основы формирования маточных стад атлантического лосося Salmo salar L. в заводских условиях. Автореф. дисс. ... канд. биол. наук. СПб.: ГосНИОРХ. 24 с.

23. Дихнич А.В. 2005а. Предпосылки создания маточных стад атлантического лосося Salmo salar L. в заводских условиях // Генетика, селекция и племенное дело в аквакультуре России. М. с. 329-372.

24. Дихнич А.В. 20056. Сравнительная характеристика производителей атлантического лосося Salmo salar L. анадромных и заводских маточных стад // Генетика, селекция и племенное дело в аквакультуре России. М. с. 373-391.

25. Дорофеева Е.А. 1965. Кариологическое обоснование систематического положения каспийского и черноморского лососей {Salmo trutta caspins Kessler, Salmo trutta labrax Pallas) // Вопросы ихтиологии, т. 5. вып. 1. с. 38-45.

26. Дорофеева Е.А. 1998. Таксономический статус, морфология и распространение атлантического лосося // Атлантический лосось. СПб.: Наука, с. 11-31.

27. Драганов М.А., Мартынов В.Г., Лысенко Л.Ф. 1990. Условия естественного воспроизводства и популяционная структура атлантического лосося {Salmo salar 1..) в бассейне р. Варзуга // Тр. Коми научного центра УрО АН СССР. № 114. с. 5-30.

28. Дубинин Н.П. 1986. Общая генетика. 3-е изд. М.: Наука. 560 с.

29. Европейцева Н.В. 1960. Опыт прудового выращивания молоди семги, балтийского и озерного лососей до покатного состояния // Матер, совещ. по вопросам рыбоводства. М. с. 20-30.

30. Европейцева Н.В., Беляева Г.В. 1963. Экспериментально-экологический анализ молоди гибридов балтийского лосося {Salmo salar L.) и кумжи {Salmo trutta trutta 1..), выращенных в прудах // Тр. Ин-та биол. АН Латв. ССР. т. 23. с. 297-308.

31. Евсюков А.Н., Офицеров М.В., Кононов И.В. 2002. Анализ корреляции длины тела и генетического полиморфизма локусов ESTD-1 и IDHP-3 семги {Salmo salar) II Генетика, т. 38. № 7. с. 965-971.

32. Елина Г.А., Лукашов А.Д., Юрковская Т.К. 2000. Позднеледниковье и голоцен восточной Фенноскандии (палеорастительность и палеогеография). Петрозаводск: Карельский Научный Центр РАН. 242 с.

33. Ермолаев Г.И. 1984. Экологические основы повышения эффективности заводского разведения атлантического лосося Salmo salar L. и Salmo salar L. morpha sebago Girard в Карелии. Автореф. дис.... канд. биол. наук. Л.: ГосНИОРХ. 1984. 19 с.

34. Зелинский Ю.П. 1979. О промысловом возврате семги заводского воспроизводства // Рыбное хозяйство. № 11. с. 30-31.

35. Зелинский Ю.П. 1985. Структура и дифференциация популяций и форм атлантического лосося. Л.: Наука. 128 с.

36. Зелинский Ю.П. 1990. О некоторых особенностях дифференции по межвидовым и популяционным признакам у пресноводных форм атлантического лосося и кумжи // Фенетика природных популяций: Мат. 4 Всес. сов. (Борок, ноябрь 1990 г.). М. с. 87-88.

37. Зелинский Ю.П., Махров А.А. 2001. Хромосомная изменчивость, реорганизации генома в филогенезе и систематические отношения благородных лососей Salmo и Parasalmo (Salmonidae) // Вопросы ихтиологии, т. 41. № 2. с. 184-191.

38. Иванова Е.И. 1959. Ихтиофауна и рыбный промысел Карской губы (по материалам Карской экспедиции 1945-1946 гг.) // Проблемы Севера, вып. 3. М.: Изд-во АН СССР. с. 78-90.

39. Исаченко В.Л. 1931. Исследование семги и ее промысла и выяснение в реках Севера мест, пригодных для проведения мероприятий по искусственному ее разведению // Изв. Ленингр. НИ ихтиол, ин-та. т. 13. вып. 2. с. 31-59.

40. Ихтиопатология. М.: Мир. 2003. 448 с.

41. Июлленстен У., Уилсон А.К. 1991. Митохондриальная ДНК лососевых (изучение внутри- и межвидовой изменчивости с помощью рестрикционных ферментов) // Популяционная генетика и управление рыбным хозяйством. М. с. 354-371.

42. Казаков Р.В. 1990. Искусственное формирование популяций проходных лососевых рыб. М.: Агропромиздат. 239 с.

43. Казаков Р.В. 1992. Атлантический лосось Salmo salar L. в пресноводных водоемах Европы: терминология и таксономический статус // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. вып. 304. с. 125-145.

44. Казаков Р.В., Веселов А.Е. 1998. Закономерности смолтификации атлантического лосося//Атлантический лосось. СПБ.: Наука, с. 195-241.

45. Казаков Р.В., Кузьмин О.Г., Шустов Ю.А., Щуров И.Л. 1992. Атлантический лосось реки Варзуги. СПб.: Гидрометеоиздат. 108 с.

46. Казаков Р.В., Мурза И.Г., Ильенкова А., Христофоров О.Л. 1982. Озимые самки атлантического лосося Salmo salar L. (Salmonidae) в реке Нарова // Вопросы ихтиологии, т. 22. вып. 5. с. 883-885.

47. Казаков Р.В., Семенова О.В. 1986. Морфологическая характеристика заводской и природной молоди семги Salmo salar L. // Тр. Зоол. Ин-та АН СССР. т. 154. с. 75-86.

48. Казаков Р.В., Титов Ф. 1992. Популяционно-генетический аспект рыбоводной работы в лососеводстве Европейского Севера СССР // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. вып. 304. с. 109-124.

49. Карасева Т.А. 2003. Проблемы здоровья рыб в аквакультуре. Автореф. дисс. ... канд. биол. наук. Петрозаводск: ПИНРО. 22 с.

50. Квасов Д.Д. 1975. Позднечетвертичная история крупных озер и внутренних морей Восточной Европы. Л.: Наука. 278 с.

51. Кимура М. 1985. Молекулярная эволюция: теория нейтральности. М.: Мир. 394 с.

52. Коновалов СМ. 1975. Субизолят как относительно жесткая система. Функция субизолята // Журн. общ. биол. т. 36. № 5. с. 731-743.

53. Костылев Ю.В. 1975. Изучение ската и выживаемости покатной молоди лосося в р. Кумсе // Отчетная сессия Ученого Совета СевНИОРХ по итогам работ 1973-1974 г.г. 18-20 марта 1975 г. Петрозаводск, с. 90-91.

54. Костылев Ю.В. 1981. Искусственное воспроизводство беломорской семги. Проблемы и перспективы развития // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. Вып. 163. с. 34-42.

55. Костылев Ю.В. 2000. О сезонных формах атлантического лосося // Атлантический лосось (биология, охрана и воспроизводство). Тез. докл. межд. конф. г. Петрозаводск, 4-8 сентября 2000 г.. Петрозаводск, с. 29.

56. Костылев Ю.В., Поляков В.Н. 1980. К вопросу об эффективности искусственного воспроизводства лосося и путях ее повышения // Лососевидные рыбы. Л.: Наука, с. 207-210.

57. Кудерский Л.А., Лейзерович Х.А., Мельникова М.Н., Чистобаева Р.Е. 1982. Локальные стада лосося в Ладожском озере // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. вып. 190. с. 86-94.

58. Кулида С В . 1982. Исследования биологии семги рек юго-восточной части Белого моря // Рыбное хозяйство. № 2. с. 48-49.

59. Кучина Е.С. 1935. Биология и промысел семги реки Сояны (притока реки Кулой) // Изв. ВНИОРХ. т. 20. с. 264-293.

60. Кязимов И.Б. 1970. Искусственное выращивание семги в Азербайджане // Рыбное хоз-во. № 5. с. 20-21.

61. Левонтин Р. 1978. Генетические основы эволюции. М.: Мир. 351 с.

62. Леонтьев А.И. 1999. Зимняя сторона. Архангельск: Изд-во "Правда Севера". 576 с.

63. Лоенко А.А. 1985. К вопросу об эффективности работы Кандалакшского рыбоводного завода // Экология и воспроизводство проходных лососевых рыб в бассейнах Белого и Баренцева морей. Мурманск: ПИНРО. с. 101-110.

64. Лоенко А.А. 2000. Состояние запасов семги и меры по их увеличению // Воспроизводство рыбных запасов. Матер, совещ. в г. Ростов-на-Дону с 28 сентября по 2 октября 1998 г. М. с. 107-118.

65. Майр Э. 1974. Популяции, виды и эволюция. М.: Мир. 460 с.

66. Макеева А.П. 1980. Триплоидия и гиногенез при отдаленной гибридизации рыб // Кариологическая изменчивость, мутагенез и гиногенез у рыб. Л. с. 86-90.

67. Мартынов В.Г. 2007. Атлантический лосось (Salmo salar L.) на Севере России. Екатеринбург: УрО РАН. 414 с.

68. Мартынов В.Г., Куценко B.C. 1985. О влиянии Нижнетуломской ГЭС на скат молоди семги {Salmo salar L.) // Исследования популяционной биологии и экологии лососевых рыб водоемов Севера. Л.: Зоол. ин-т АН СССР. с. 17-25.

69. Махров А.А. 1995. Структурно-популяционные, морфологические и генетические особенности кумжи бассейна реки Оланга // Природа и экосистемы Паанаярвского национального парка. Петрозаводск, с. 122-126.

70. Махров А.А., Кузищин К.В., Новиков Г.Г. 1998а. Естественные гибриды семги (Salmo salar L.) и кумжи (S. trutta L.) в реках бассейна Белого моря // Вопросы ихтиологии, т. 38. вып. 1. с. 67-72.

71. Махров А.А., Скоола О., Алтухов Ю.П., Саундерс Р.Л. 19986. Аллозимный локус ESTD* как маркер генетической дифференциации популяций атлантического лосося (Salmo salar L.) Европы и Северной Америки // Доклады Академии Наук. т. 360. № 6. с. 850-852.

72. Медников Б.М., Шубина Е.А., Мельникова М.Н., Савваитова К.А. 1999. Проблема родового статуса тихоокеанских лососей и форелей (геносистематический анализ) // Вопросы ихтиологии, т. 39. № I.e. 14-21.

73. Мельникова М.Н. 1959а. Биология семги р. Варзуги // Известия ВНИОРХ. т. 48. с. 80-93.

74. Мельникова М.Н. 19596. Сравнительная характеристика молоди семги рек Варзуги, Колы и Емцы // Научно-технич. бюлл. ВНИОРХ. № 8. с. 12-15.

75. Мельникова М.Н. 1960. О карликовых самцах семги // Научно-техн. бюлл. ВНИОРХ. № 1 1 . с. 68-70.

76. Мельянцев В.Г. 1951. Данные к биологии кумжи Пяозера (Salmo trutta L. morpha lacustris) II Тр. Карело-Финск. отд. ВНИОРХ. т. 3. с. 58-68.

77. Михайленко В.Г. 1990. Аномалии эмбрионов и личинок лососевидных рыб на рыбоводных заводах Карелии // Рыбоводство в естественных водоемах Карелии. Мурманск, с. 54-67.

78. Мурза И.Г., Христофоров О.Л. 1991. Определение степени зрелости гонад и прогнозирование возраста достижения половой зрелости у атлантического лосося и кумжи (Методические указания). Л.: ГосНИОРХ, Физиол. НИИ ЛГУ. 102 с.

79. Неклюдов М.Н., Мигаловский И.П. 1988. Проверка разведения семги Salmo salar L. методом посадки икры в грунт // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. вып. 276. с. 73-79.

80. Никольский Г.В. 1980. Структура вида и закономерности изменчивости рыб. М.: «Наука». 182 с.

81. Никоноров СИ., Витвицкая Л.В. 1993. Эколого-генетические проблемы искусственного воспроизводства осетровых и лососевых рыб. М.: Наука. 254 с.

82. Никоноров СИ., Офицеров М.В., Витвицкая Л.В., Лоенко А.А. 1989. Неконтролируемый генетический отбор лососей //Рыбное хозяйство. № 1. с. 54-55.

83. Новиков Г.Г., Кузьмичев СА. 2003. Некоторые особенности генетической изменчивости атлантического лосося Salmo salar по локусу триозофосфатизомеразы (TFI-3*) // Вопросы ихтиологии, т. 43. № 2. с. 237-241.

84. Новиков П.И. 1948. Какая форма лосося обитает в Топозере? // Бюллетень рыбного хозяйства Карело-Финской ССР. № 3. с. 55-57.

85. Новиков П.И. 1953. Северный лосось - семга. Петрозаводск: Гос. изд-во Карело- Финск. ССР. 134 с.

86. Новиков П.И. 1959. Динамика уловов семги по Советскому Союзу // Изв. ВНИОРХ. т. 48. с. 7-10.

87. Нусенбаум Л.М. 1950. Состояние и пути рационализации заводского воспроизводства семги // Вестник ЛГУ. № 8. с. 117-128.

88. Осинов А.Г. 1984. К вопросу о происхождении современного ареала кумжи Salmo trutta L. (Salmonidae): Данные по биохимическим маркерам генов // Вопросы ихтиологии, т. 24. вып. 1. с. 11-24.

89. Осинов А.Г. 1999. Лососевые рыбы Salmo, Parasalmo и Oncorhynchus: генетическая дивергенция, филогения и классификация // Вопросы ихтиологии, т. 39. № 5. с. 595-611.

90. Осинов А.Г., Берначе Л. 1996. "Атлантическая" и "дунайская" филогенетические группы кумжи Salmo trutta complex: генетическая дивергенция, эволюция, охрана // Вопросы ихтиологии, т. 36. № 6. с. 762-786.

91. Офицеров М.В., Голованова Т.С., Витвицкая Л.В., Никоноров СИ. 1989. Влияние заводского выращивания на генетическое разнообразие молоди атлантического лосося Salmo salar II Вопросы ихтиологии, т. 29. вып. 5. с. 871-874.

92. Печуркин Н.С, Брильков А.В., Марченкова Т.В. 1990. Популяционные аспекты биотехнологии. Новосибирск: Наука. 173 с.

93. Пономарева Е.В. 2007. Популяционная структура атлантического лосося {Salmo salar L.) Европейского Севера России. Автореф. дисс. ... канд. биол. наук. М.: ВНИРО. 24 с.

94. Попова Э.К. 2004. Эффекты лазерного воздействия на рыб в раннем онтогенезе. Петрозаводск: ГПЗ «Кивач». 126 с.

95. Потуткин А.Г. 2004. Миграции атлантического лосося (Salmo solar L.) в прибрежном районе Белого моря и бассейне реки Варзуга. Автореф. дисс. ... канд. биол. наук. Петрозаводск: Петрозаводский гос. ун-т. 24 с.

96. Правдин И.Ф. 1946. Семужьи ресурсы реки Кеми и вопросы воспроизводства их // Ученые записки Карело-Финск. Гос. Ун-та. т. I.e. 345-362.

97. Привезенцев Ю.А., Власов В.А. 2004. Рыбоводство. М.: Мир. 456 с.

98. Петрозаводск, с. 28-29.

99. Пробатов А.Н. 1934. Материалы по научно-промысловому обследованию Карской губы и реки Кары // Материалы по научно-промысловому обследованию Карской губы и реки Кары. М. с. 1-140.

100. Прокофьева А.А. 1935. Морфология хромозом некоторых рыб и амфибий // Тр. Ин- та генетики, т. 10. с. 153-178.

101. Прокофьева-Бельговская А.А. 1964. Гетероцикличность системы клеточного ядра на ранних стадиях развития лосося, форели и сига // Цитология, т. 6. № 5. с. 553-559.

102. Протокол 3-го заседания Тифлисского отдела Российского общества рыбоводства и рыболовства, происходившего 28-го апреля 1895 года // Вестник рыбопром. 1896. №2-3. с. 102-109.

103. Рулье К., Борзенков Я., Усов 1857. Донесение членов комиссии для освидетельствования рыбоводного завода г. Врасского // Журн. сельского хозяйства. № 11. с. 71-90.

104. Салманов А.В. 1986. Остеологические особенности заводской и природной молоди семги (Salmo salar L.) из р. Лувеньга// Тр. Зоол. Ин-та АН СССР. т. 154. с. 87-98.

105. Салманов А.В. 1989. Анализ изменчивости морфометрических показателей у заводской и природной молоди атлантического лосося (Salmo salar L.) // Тр. Зоол. Ин-та АН СССР. т. 192. с. 126-144.

106. Салмов В.З. 1981. Значение естественного и искусственного воспроизводства для семги р. Колы // Тр. ПИНРО. вып. 45. с. 94-111.

107. Семенова К. 1988. Генетическая дифференциация популяций атлантического лосося (Salmo salar L.) северо-западной части СССР. Дисс. ... канд. биол. наук. М. : ИОГенАНСССР. 107 с.

108. Семенова К., Слынько В.И. 1988а. Генетическая дифференциация популяций атлантического лосося (Salmo salar L.) северо-западной части СССР // Доклады АН СССР. т. 300. № 5. с. 1239-1243.

109. Семенова К., Слынько В.И. 19886. Полиморфизм белков в популяциях атлантического лосося {Salmo salar L.), кумжи (S. trutta L.) и их гибридов // Генетика, т. 24. № 3. с. 548-555.

110. Скаткин П.Н. 1962. Биологические основы искусственного рыборазведения. М.: Изд-во АН СССР. 244 с.

111. Смирнов Ю.А. 1971. Лосось Онежского озера (биология, воспроизводство, использование). Л.: Наука. 144 с.

112. Смирнов Ю.А. 1979. Пресноводный лосось (экология, воспроизводство, использование). Л.: Наука. 156 с.

113. Сохнов В.В., Щуров И.Л. 2001. Воспроизводство лососевых в Карелии // Рыбоводство и рыболовство. № 1. с. 54-55.

114. Столь Г. 1991. Генетическая структура популяций атлантического лосося // Популяционная генетика и управление рыбным хозяйством. М.: Агропромиздат. с. 155-176.

115. Суворов Е.К. 1921. Работы по искусственному разведению семги в 1920 году // Тр. Северной Научно-Пром. Экспедиции, вып. 8. с. 3-11.

116. Титов Ф. 1992. Особенности мониторинга генетической структуры заводских популяций атлантического лосося Salmo salar L. // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. вып. 304. с. 156-163.

117. Титов Ф., Казаков Р.В., Антонова В.П. 1992. Внутрипопуляционная дифференциация атлантического лосося Salmo salar L. реки Печоры. 1. Особенности генетичекого полиморфизма в Пижме и Верхней Печоре // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ. вып. 304. с. 146-155.

118. Трувеллер К.А., Нефедов Г.Н. 1974. Многоцелевой прибор для вертикального электрофореза в параллельных пластинах полиакриламидного геля // Биол. науки. № 9 . с. 137-140.

119. Флеминг Я.А. 1998. Размножение атлантического лосося // Атлантический лосось. СПБ.: Наука, с. 127-141.

120. Халтурин Д.К. 1967. Величина углового перемещения в характеристике анадромной миграции лососей рода Salmo II Доклады Академии наук СССР. т. 177. № 6 . с. 1462-1464.

121. Хедрик Ф. 2003. Генетика популяций. М.: Техносфера. 592 с.

122. Хованский И.Е. 2004. Эколого-физиологические и биотехнологические факторы эффективности лососеводства. Хабаровск: Хабаровское книжн. изд-во. 418 с.

123. Христофоров О.Л., Мурза И.Г. 2002. Промысел и воспроизводство атлантического лосося в бассейне Балтийского моря: общая характеристика и вклад России // Вопросы рыболовства, т. 3. № 2. с. 227-247.

124. Черницкий А.Г., Лоенко А.А. 1983. Состояние осморегуляторной системы и возможные пути дифференциации различных форм атлантического лосося // Вопросы ихтиологии, т. 23. вып. 6. с. 974-983.

125. Черницкий А.Г., Лоенко Л.А. 1990. Биология заводской молоди семги после выпуска в реку. Апатиты. 118с.

126. Черницкий А.Г., Лоенко Л.А., Попов А.П. 1989. Выпуск молоди семги в реку Нива: первые результаты. Апатиты: ММБИ КНЦ АН СССР. 10 с.

127. Шишкова Ы.А. 1987. Некроз плавников у рыб // Биохимия молоди рыб в зимовальный период. Петрозаводск: Ин-т биологии КНЦ РАН. с. 110-114.

128. Шмальгаузен И.И. 1968. Факторы эволюции. М.: Наука. 451 с.

129. Штерман Л.Я. 1967. Серологические показатели молоди атлантического лосося (семги) озимой и яровой форм // Обмен веществ и биохимия рыб. М.: Наука, с. 310-313.

130. Шубин П.Н., Ефимцева Э.А., Челпанова Т.И., Шубин Ю.П. 2000. Аллозимная изменчивость лососевидньгх рыб Европейского Севера. Сыктывкар: Институт физиологии Коми НЦ УрО РАН. 100 с.

131. Шубин Ю.П., Челпанова Т.И., Шубин П.Н. 1990. Изменчивость частот аллелей Ме- 2 локуса у семги рек европейского Севера // Симпозиум по атлантическому лососю. Тез. докл. Сыктывкар, с. 79.

132. Шустов Ю.А., Щуров И.Л., Смирнов Ю.А. 1980. О сроках адаптации заводской молоди семги Salmo salar L. к речным условиям // Вопросы ихтиологии, т. 20. вып. 4. с. 758-761.

133. Щуров И.Л. 1987. Проблемы повышения качества заводской молоди атлантического лосося Salmo salar L. // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ, вып. 260. с. 28-37.

134. Щуров И.Л. 1998. Атлантический лосось реки Керети (естественное и искусственное воспроизводство) // Проблемы лососевых на Европейском Севере. Петрозаводск, с. 51-63.

135. Экология промысловых видов рыб Баренцева моря. Апатиты: Из-во КНЦ РАН. 2001.461с.

136. Эриков И. 1940. Рыбоводство в СССР за 1929-1938 гг. // Рыбное хозяйство. № 1. с. 19-24.

137. Юхименко Л.Н., Бычкова Л.И. 2000. Бактериальные болезни лососевых рыб и методы их профилактики // Марикультура северо-запада России. Тез. докл. научно-практич. конф. 25-27 октября 2000. Мурманск, с. 44-45.

138. Яковенко М.Я. 1976. Выживаемость атлантического лосося при естественном воспроизводстве // Труды ВНИРО. т. 63. с.43-45.

139. Яковлев В.Н., Слынько Ю.В., Гречанов И.Г., Крысанов Е.Ю. 2000. Проблема отдаленной гибридизации у рыб // Вопросы ихтиологии, т. 40. № 3. с. 312-326.

140. Яндовская Н.И., Казаков Р.В., Лейзерович Х.А. 1979. Инструкция но разведению атлантического лосося. Л.: ГосНИОРХ. 96 с.

141. Aebersold Р.В., Winans G.A., Teel D.J., Milner G.B., Utter F.M. 1987. Manual for Starch Gel Electrophoresis: a Method for the Detection of Genetic Variation // NO A A Technical Report NMFS 61. 19 p.

142. Antunes A., Gharbi K., Alexandrino P., Guyomard R. 2006. Characterization of transferrin-Mnked microsatellites in brown trout (Salmo trutta) and Atlantic salmon (Salmo salar) II Mol. Ecol. Notes, v. 6. № 2. p. 547-549.

143. Antunes A., Templeton A.R., Guyomard R., Alexandrino P. 2002. The role of nuclear genes in intraspecific evolutionary inference: genealogy of the transferrin gene in the brown trout // Mol. Biol. Evol. v. 19. № 8. p. 1272-1287.

144. Avise J.C. 2004. Molecular Markers, Natural History and Evolution. Second Edition. Sunderland, Massachusetts: Sinauer Associates, Inc. Publishers. 684 p.

145. Ayllon F., Martinez J.L., Davaine P., Beall E., Garcia-Vazquez E. 2004. Interspecific hybridization between Atlantic salmon and brown trout introduced in the subantarctic Kerguelen Islands // Aquaculture. v. 230. p. 81-88.

146. Ayllon F., Martinez J.L., Garcia-Vazquez E. 2006a. Loss of regional population structure in Atlantic salmon, Salmo salar L., following stocking // ICES J. Mar. Sci. v. 63. № 7. p. 1269-1273.

147. Ayllon F., Martinez J.L., Juanes F. et al. 20066. Genetic history of the population of Atlantic salmon, Salmo salar L., under restoration in the Connecticut River, USA // ICES J. Mar. Sci. v. 63. № 7. p. 1286-1289.

148. Bagliniere J.L., Tabet Aoul K., Menella J.Y. 2002. Occurence of an adult Atlantic salmon in the River Rhone, France // J. Fish Biology, v. 60. p. 249-255.

149. Вакке T.A., Harris P.D., Hansen H., Cable J., Hansen L.P. 2004. Susceptibility of Baltic and East Atlantic salmon Salmo salar stocks to Gyrodactylus salaris (Monogenea) // Diseases of Aquatic Organisms, v. 58. p. 171-177.

150. Вакке T.A., Jansen P.A., Hansen L.P. 1990. Differences in the host resistance of Atlantic salmon, Salmo salar L., stocks to the monogenean Gyrodactylus salaris Malmberg, 1957 //J. Fish Biology, v. 37. p. 577-587.

151. Barbour S.E., Garside E.T. 1983. Some physiologic distinctions between freshwater and diadromous forms of the Atlantic salmon, Salmo salar L. // Can. J. Zool. v. 61. № 5. p. 1165-1170.

152. Beland K.F., Roberts F.L., Saunders R.L. 1981. Evidence of Salmo salar x Salmo trulia hybridization in a North American river// Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 38. p. 552-554.

153. Berg M. 1964. North Norwegian salmon rivers. Johan Grundt Tanum Forlag. Oslo. 300 p. (in Norwegian)

154. Berg O.K. 1985. The formation of non-anadromous populations of Atlantic salmon, Salmo salar L., in Europe // J. Fish Biology, v. 27. p. 805-815.

155. Bermingham E., Forbes S.H., Fnedland K., Pla С 1991. Discrimination between Atlantic salmon (Salmo salar) of North American and European origin using restriction analyses of mitochondrial DNA // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 48. p. 884-893.

156. Beukeboom L.W., Vrijenhoek R.C. 1998. Evolutionary genetics and ecology of sperm- dependent parthenogenesis // J. Evol. Biol. v. 11. p. 755-782.

157. Birt T.P., Green J.M. 1986. Parr-smolt transformation in female and sexually mature male anadromous and nonanadromous Atlantic salmon, Salmo salar II Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 43. № 3. p. 680-686.

158. Birt T.P., Green J.M., Davidson W.S. 1986. Analysis of mitochondrial DNA in allopatric anadromous and nonanadromous Atlantic salmon, Salmo salar II Can. J. Zool. v. 64. № l . p . 118-120.

159. Birt T.P., Green J.M., Davidson W.S. 1991a. Contrasts in development and smolting of genetically distinct sympatric anadromous and nonanadromous Atlantic salmon, Salmo salar II Can. J. Zool. v. 69. № 8. p. 2075-2084.

160. Birt T.P., Green J.M., Davidson W.S. 19916. Mitochondrial DNA variation reveals genetically distinct sympatric population of anadromous and nonanadromous Atlantic salmon, Salmo salar II Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 48. p. 577-582.

161. Blanco G., Presa P., Vazquez E., Sanchez J.A. 1998. Allozyme heterozygoty and development in Atlantic salmon, Salmo salar II Fish Physiology and Biochemistry, v. 19. p. 163-169.

162. Blanco G., Ramos M.D., Vazquez E., Sanchez J.A. 2005. Assessing temporal and spatial variation in wild populations of Atlantic salmon with particular reference to Asturias (Northern Spain) rivers // J. Fish Biology, v. 67. Suppl. A. p. 169-184.

163. Blanco G., Sanchez J.A., Vazquez E., Rubio J., Utter F.M. 1992. Genetic differentiation among natural European populations of Atlantic salmon, Salmo salar L., from drainages of the Atlantic Ocean // Animal Genetics. V. 23. № 1. P. 11-18.

164. Borrcll Y.J., Pineda H., McCarthy I. et al. 2004. Correlation between fitness and heterozygosity at allozyme and microsatellite loci in the Atlantic salmon, Salmo salar II Heredity, v. 92. № 6. p. 585-593.

165. Burton M.P., Idler D.R. 1984. Can Newfoundland landlocked salmon, Salmo salar L., adapt to sea water? // J. Fish Biology, v. 24. № 1. p. 59-64.

166. Cairney M., Taggart J.B., Hoyheim B. 2000. Characterization of microsatellite and minisatellite loci in Atlantic salmon {Salmo salar L.) and cross-species amplification in other salmonids // Mol. Ecol. v. 9. p. 2155-2234.

167. Carr J.W., Whoriskey F., O'Reilly P. 2004. Efficacy of releasing captive reared broodstock into an imperilled wild Atlantic salmon population as a recovery strategy // J. Fish Biology, v. 65. Suppl. A. p. 38-54.

168. Child A.R. 1980. Identification of stocks of Atlantic salmon {Salmo salar L.) by electrophoretic analysis of serum proteins // Rapp. P.-v. Reun. Cons. int. Explor. Mer. v. 176. p. 65-67

169. Child A.R., Burnell A.M., Wilkins N.P. 1976. The existence of two races of Atlantic salmon {Salmo salar L.) in the British Isles // J. Fish Biology. V. 8. P. 35-43.

170. Clayton J.W., Tretiak D.N. 1972. Amine-citrate buffers for pH control in starch gel electrophoresis // J. Fish. Res. Bd. Canada, v. 29. p. 1169-1172.

171. Claytor R.R., MacCrimmon H.R., Gots B.L. 1991. Continental and ecological variance components of European and North American Atlantic salmon {Salmo salar) phenotypes // Biol. J. Linn. Soc. 44. № 3. p. 203-229.

172. Claytor R.R., Verspoor E. 1991. Discordant phenotypic variation in sympatric resident and anadromous Atlantic salmon (Salmo salar) populations // Can. J. Zool. v. 69. № 1 1 . p. 2846-2852.

173. Clifford S.L., McGinnity P., Ferguson A. 1998a. Genetic changes in an Atlantic salmon population resulting from escaped juvenile farm salmon // J. Fish Biology, v. 52. p. 118-127.

174. Clifford S.L., McGinnity P., Ferguson A. 1998b. Genetic changes in Atlantic salmon {Salmo salar) populations of Northwest Irish rivers resulting from escapes of adult farm salmon // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 55. p.358-363.

175. Consuegra S., Garcia de Leaniz C, Serdio A. et al. 2002. Mitochondrial DNA variation in Pleistocene and modern Atlantic salmon from the Iberian glacial refugium // Mol. Ecol.v. 11. p. 2037-2048.

176. Consuegra S., Megens H.J., Leon K. et al. 2005a. Patterns of variability at the major histocompatibility class II alpha locus in Atlantic salmon contrast with those at the class I locus // Immunogenetics. v. 57. p. 16-24.

177. Consuegra S., Megens H.-J., Schaschl H. et al. 20056. Rapid evolution of the MH class I locus results in different allelic composition in recently diverged populations of Atlantic salmon // Mol. Biol. Evol. v. 22. № 4. p. 1095-1106.

178. Consuegra S., Verspoor E., Knox D., Garcia de Leaniz C. 2005B. Asymmetric gene flow and the evolutionary maintenance of genetic diversity in small, peripheral Atlantic salmon populations // Conserv. Genet, v. 6. p. 823-842.

179. Consuegra S., Garcia de Leaniz C , Serdio A., Verspoor E. 2005r. Selective exploitation of early running fish may induce genetic and phenotypic changes in Atlantic salmon // J. Fish Biology, v. 67. Suppl. A. p. 129-145.

180. Cordes J.F., Perkins D.L., Kincaid H.L., May B. 2005. Genetic analyses offish genomes and populations: allozyme variation within and among Atlantic Salmon from Downeast rivers of Maine // J. Fish Biology. V. 67. Suppl. A. P. 104-117.

181. Cowan G.I.McT., Baggs E.M. 1988. Incidences of lacustrine spawning of the ouananiche, Salmo salar, and the brook charr, Salvelinus fontinalis, on the Avalon Peninsula, Newfoundland // J. Fish Biology, v. 32. № 2. p. 311-312.

182. Cross Т., Bailey J., Friars G., O'Flynn F. 1993. Maintenance of genetic variability in reared Atlantic salmon {Salmo salar) stocks // Salmon in the sea and new enchancement strategies. Ed. D. Mills. Fishing News Books, London, p. 356-366.

183. Cross T.F., Challanain D.N. 1991. Genetic characterisation of Atlantic salmon {Salmo salar) lines farmed in Ireland // Aquaculture. v. 98. p. 209-216.

184. Cross T.F., Healy J.A. 1983. The use of biochemical genetics to distinguish populations of Atlantic salmon, Salmo salar II Irish Fisheries Investigations. Series A. v. 23. p. 61-66.

185. Cross T.F., King J. 1983. Genetic effects of hatchery rearing in Atlantic salmon // Aquaculture. v. 33. p. 33-40.

186. Cross T.F., Ward R.D. 1980. Protein variation and duplicate loci in the Atlantic salmon, Salmo salar L. // Genet. Res., Camb. v. 36. p. 147-165.

187. Crozier W.W. 1993. Evidence of genetic interaction between escaped farmed salmon and wild Atlantic salmon {Salmo salar L.) in a Northern Irish river // Aquaculture. v. 113. № 1-2. p. 19-29.

188. Crozier W.W. 1994. Maintenance of genetic variation in hatchery stocks of Atlantic salmon, Salmo salar L.: Experiences from the river Bush, Northern Ireland // Aquaculture & Fisheries Management, v. 25. № 4. p. 383-392.

189. Crozier W.W. 1997. Genetic heterozygosity and meristic character variance in a wild Atlantic salmon population and a hatchery strain derived from it // Aquaculture International, v. 5. p. 407-414.

190. Crozier W.W. 1998. Genetic implications of hatchery rearing in Atlantic salmon: effects of rearing environment on genetic composition // J. Fish Biology, v. 52. p. 1014-1025.

191. Crozier W.W., Moffett I.J.J. 1989. Amount and distribution of biochemical-genetic variation among wild populations and a hatchery stock of Atlantic salmon, Salmo salar 1.., from north-east Ireland // J. Fish Biology, v. 35. № 5. p. 665-677.

192. Culter M.G., Bartlett S.E., Hartley S.E., Davidson W.S. 1991. A polymorphism in the ribosomal RNA genes distinguishes Atlantic salmon (Salmo salar) from North America and Europe // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 48. p. 1655-1661.

193. Danielsdottir A.K., Marteinsdottir G., Arnason F., Gudjonsson S. 1997. Genetic structure of wild and reared Atlantic salmon (Salmo salar L.) populations in Iceland // ICES J. Mar. Sci. v. 54. p. 986-997.

194. Dannewitz J., Jansson N. 1996. Triploid progeny from a female Atlantic salmon x brown trout hybrid backcrossed to a male brown trout // J. Fish Biology, v. 48. p. 144-146.

195. Elo K., Ivanoff S., Vuorinen J.A., Piironen J. 1997. Inheritance of RAPD markers and detection of interspecific hybridization with brown trout and Atlantic salmon // Aquaculture. v. 152. p. 55-65.

196. Elo K., Vuorinen J.A., Niemelii E. 1994. Genetic resources of Atlantic salmon (Salmo salar L.) in Teno and Naatamo Rivers, northernmost Europe // Hereditas. v. 120. p. 19-28.

197. Fleming LA., Hindar K., Mjolnerod LB., Jonsson В., Balstad Т., Lamberg A. 2000. 1.ifetime success and interactions of farm salmon invading a native population // Proc. R. Soc. Lond. B. 267. p. 1517-1523.

198. Fontaine P.-M., Dodson J.J. 1999. An analysis of the distribution of juvenile Atlantic salmon (Salmo salar) in nature as a function of relatedness using microsatellites // Mol. Ecol.v. 8. p. 189-198.

199. Fontaine P.-M., Dodson J.J., Bernatchez L., Slettan A. 1997. A genetic test of metapopulation structure in Atlantic salmon (Salmo salar) using microsatellites // // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 54. p. 2434-2442.

200. Frankham R., Ballou J.D., Briscoe D.A. 2002. Introduction to Conservation Genetics. Cambridge: Cambridge University Press. 617 p.

201. Fraser D.J., Jones M.W., McParland T.L., Hutchings J.A. 2007. Loss of historical immigration and the unsuccessful rehabilitation of extirpated salmon populations // Conserv. Genet, v. 8. p. 527-546.

202. Galbreath P. F., Adams K.J., Wheeler P.A., Thorgaard G.H. 1997. Clonal Atlantic salmon x brown trout hybrids produced by gynogenesis // J. Fish Biology, v. 50. p. 1025-1033.

203. Galbreath P. F., Thorgaard G.H. 1995. Sexual maturation and fertility of diploid and triploid Atlantic salmon x brown trout hybrids // Aquaculture. v. 137. p. 299-311.

204. Galvin P., Cross Т., Ferguson A. 1994. Genetic differentiation and gene flow in Atlantic salmon, Salmo solar L.: a case study of the River Shannon system in Ireland // Aquaculture and Fisheries Management, v. 25. Suppl. 2. p. 131-145.

205. Galvin P., McKinnell S., Taggart J. B. et al. 1995. Genetic stock identification of Atlantic salmon using single locus minisatellite DNA profiles // J. Fish Biology, v. 47. Suppl. A. p. 186-199.

206. Galvin P., Taggart J., Ferguson A. et al. 1996. Population genetics of Atlantic salmon {Salmo solar) in the River Shannon system in Ireland: an appraisal using single locus minisatellite (VNTR) probes // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 53. p. 1933-1942.

207. Garant D., Dodson J.J., Bernatchez L. 2000. Ecological determinants and temporal stability of the within-river population structure in Atlantic salmon (Salmo solar L.) // Mol. Ecol. v. 9. p. 615-628.

208. Garant D., Dodson J.J., Bernatchez L. 2001. A genetic evaluation of mating system and determinants of individual reproductive success in Atlantic salmon (Salmo solar L.) // J. Heredity, v. 92. № 2. p. 137-145.

209. Garant D., Fontaine P.-M., Good S.P. et al. 2002. The influence of male parental identity on growth and survival of offspring in Atlantic salmon (Salmo solar) II Evolutionary Ecology Research, v. 4. p. 537-549.

210. Garant D., Dodson J.J., Bernatchez L. 2003a. Differential reproductive success and heritability of alternative reproductive tactics in wild Atlantic salmon (Salmo solar L.) // Evolution, v. 57. № 5. p. 1133-1141.

211. Garant D., Dodson J.J., Bernatchez L. 2005. Offspring genetic diversity increases fitness of female Atlantic salmon (Salmo salar) II Behav. Ecol. Sociobiol. v. 57. p. 240-244.

212. Garant D., Fleming I.A., Einum S., Beraatchez L. 20036. Alternative male life-history tactics as potential vehicles for speeding introgression of farm salmon traits into wild populations // Ecology Letters, v. 6. p. 541-549.

213. Garcia de Leaniz C, Verspoor E., Hawkins A.D. 1989. Genetic determination of the contribution of stocked and wild Atlantic salmon, Salmo salar L., to the angling fisheries in two Spanish rivers // J. Fish Biology, v. 35. Suppl. A. p. 261-270.

214. Garcia-Vazquez E., Ayllon F., Martinez J.L., Perez J., Beall E. 2003. Reproduction of interspecific hybrids of Atlantic salmon and brown trout in a stream environment // Freshwater Biology, v. 48. p. 1100-1104.

215. Garcia-Vazquez E., Moran P., Martinez J.L., Perez J., de Gaudemar В., Beall E. 2001. Alternative mating strategies in Atlantic salmon and brown trout // J. Heredity, v. 92. № 2. p. 146-149.

216. Garcia-Vazquez E., Moran P., Perez J., Martinez J.L., Izquierdo J.I., de Gaudemar В., Beall E. 2002. Interspecific barriers between salmonids when hybridization is due to sneak mating // Heredity, v. 89. № 4. p. 288-292.

217. Gibson J. 1993. The Atlantic salmon in fresh water: spawning, rearing and production // Reviews in Fish Biology and Fisheries, v. 3. p. 39-73.

218. Gilbey J., Knox D., O'Sullivan M., Verspoor E. 2005. Novel DNA markers for rapid, accurate, and cost-effective discrimination of the continental origin of Atlantic salmon (Salmo salar L.) // ICES J. Mar. Sci. v. 62. № 8. p. 1609-1616.

219. Giuffra E., Guyomard R., Forneris G. 1996. Phylogenetic relationships and introgression patterns between incipient parapatric species of Italian brown trout {Salmo trutta L. complex) // Mol. Ecol. v. 5. № 2. p. 207-220.

220. Gjedrem Т., Eggum A., Refstie T. 1977. Chromosomes of some salmonids and salmonid hybrids // Aquaculture. v. 11. № 4. p. 335-348.

221. Gjedrem Т., Gjoen H.M., Gjerde B. 1991. Genetic origin of Norwegian farmed salmon // Aquaculture. v. 98. p. 41-50.

222. Grimholt U., Larsen S., Nordmo R. et al. 2003. MHC polymorphism and disease resistance in Atlantic salmon {Salmo salar); facing pathogens with single expressed major histocompatibility class I and class II loci // Immunogenetics. v. 55. p. 210-219.

223. Gross R., Nilsson J. 1999. Restriction fragment length polymorphism at the growth hormone 1 gene in Atlantic salmon {Salmo salar L.) and its association with weight among the offspring of a hatchery stock // Aquaculture. v. 173. p. 73-80.

224. Gross R., Nilsson J., Schmitz M. 1996. A new species-specific nuclear DNA marker for identification of hybrids between Atlantic salmon and brown trout // J. Fish Biology, v. 49. № 3. p. 537-540.

225. Guyomard R. 1978. Identification par electrophorese d'hybrides de Salmonides // Ann. Genet. Sel. Anim. v. 10. p. 17-27. (In France, English summary)

226. Hansen L.P., Jonsson B. 1991. Evidence of a genetic component in the seasonal return pattern of Atlantic salmon, Salmo salar L. // J. Fish Biology, v. 38. p. 251-258.

227. Hartley S.E. 1996. High incidence of Atlantic salmon x brown trout hybrids in a Lake District stream//J. Fish Biology, v. 48. № 1. p. 151-154.

228. Hastein Т., Lindstad T. 1991. Diseases in wild and cultured salmon: possible interaction // Aquaculture. v. 98. № 1-3. p. 277-288.

229. Heggberget T.G., Lund R.A., Ryman N., Stahl G. 1986. Growth and genetic variation of Atlantic salmon {Salmo salar) from different sections of the River Alta, North Norway // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 43. p. 126-133.

230. Hendry A.P., Letcher B.H., Gries G. 2003. Estimating natural selection acting on stream- dwelling Atlantic salmon: implications for the restoration of extirpated populations // Conservation Biology, v. 17. № 3. p. 795-805.

231. Herbinger СМ., O'Reilly P.T., Verspoor E. 2006. Unravelling first-generation pedigrees in wild endangered salmon populations using molecular genetic markers // Mol. Ecol. v. 15. p. 2261-2275.

232. Hindar K., Fleming LA. 2007. Behavioral and genetic interactions between escaped farm salmon and wild Atlantic salmon // Ecological and genetic implications of aquaculture activities. T.M. Bert (ed.). Springer, p. 115-122.

233. Hindar K., Ryman N., Utter F. 1991. Genetic effects of cultured fish on natural fish populations // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 48. p. 945-957.

234. Holmes R.S., Masters C.J. 1970. Epigenetic interconversion of the multiple forms of mouse liver catalase // FEBS Lett. v. 11. p. 45-48.

235. Hovey S.L., King D.P.F., Thompson D., Scott A. 1989. Mitochondrial DNA and allozyme analysis of Atlantic salmon, Salmo salar L., in England and Wales // J. Fish Biology, v. 35. Suppl. A. p. 253-260.

236. Hubbs C.L. 1955. Hybridization between fish species in nature // Syst. Zool. v. 4. p. 1-20.

237. Hurrell R.H., Price D.J. 1993. Genetic variation in Atlantic salmon, Salmo salar L., within the Tamar catchment in south-west England // J. Fish Biology, v. 42. p. 153-156.

238. Hurst CD., Bartlett S.E., Davidson W.S., Bruce I.J. 1999. The complete mitochondrial DNA sequence of the Atlantic salmon, Salmo salar II Gene. v. 239. p. 237-242.

239. Johnsen B.O., Jensen A.J. 2003. Gyrodactylus salaris in Norwegian rivers // Atlantic salmon: biology, conservation and restoration. Petrozavodsk: Institute of Biology KRC RAS. p. 38-44.

240. Johnson K.R., Wright J.E. 1986. Female brown trout x Atlantic salmon hybrids produce gynogens and triploids when backcrossed to male Atlantic salmon // Aquaculture. v. 57. p. 345-358.

241. Jonasson J. 1993. Selection experiments in salmon ranching. I. Genetic and environmental sources of variation in survival ang growth in freshwater // Aquaculture. v. 109. p. 225-236.

242. Jones J.W. 1959. The salmon. London: Collins. 192 p.

243. Jones M.W., Hutchings J.A. 2001. The influence of male parr body size and mate competition on fertilization success and effective population size in Atlantic salmon // Heredity, v. 86. p. 675-684.

244. Jones M.W., Hutchings J.A. 2002. Individual variation in Atlantic salmon fertilization success: implications for effective population size // Ecological Applications, v. 12. Iss. l .p . 184-193.

245. Jonsson В., Jonsson N., Hansen L.P. 2003. Atlantic salmon straying from the river Imsa // J. Fish Biology, v. 62. p. 641-657.

246. JonssonN., Hansen L.P., Jonsson B. 1991. Variation in age, size and repeat spawning of adult Atlantic salmon in relation to river discharge // J. Animal Ecology, v. 60. № 3. p.937-947.

247. Jordan W.C., Fleming I.A., Garant D. 2007. Mating system and social structure // The Atlantic salmon. Genetics, Conservation and Management. E. Verspoor, L. Stradmeyer, J.L. Nielsen, eds. Oxford: Blackwell Publishing Ltd. p. 167-194.

248. Jordan W.C., Youngson A.F. 1992. The use of genetic marking to assess the reproductive success of mature male Atlantic salmon parr {Salmo salar L.) under natural spawning conditions//J. Fish Biology, v. 41. p. 613-618.

249. Jorde E. 1994. Allozymes in Scandinavian brown trout {Salmo trutta L.) // Division of Population Genetics Stockholm University. Report. 54 p.

250. Kallio-Nyberg I., Koljonen M.-L. 1999. Sea migration patterns in the Atlantic salmon: a comparative study of two stocks and their hybrids // Boreal Environmental Research, v. 4. № 2 . p. 163-174.

251. Kazakov R.V., Titov S.F. 1991. Geographical patterns in the population genetics of Atlantic salmon, Salmo salar L., on U.S.S.R. territory, as evidence for colonization routes// J. Fish Biology, v. 39. p. 1-6.

252. Kazakov R.V., Titov S.F. 1993. Population genetics of salmon, Salmo salar L., in northern Russia // Aquaculture and Fisheries Management, v. 24. p. 495-506.

253. Khanna N.D., Juneja R.K., Larsson В., Gahne B. 1975. Electrophoretic studies on proteins and enzymes in the Atlantic salmon, Salmo salar L. // Swedish J. Agric. Res. v. 5. p. 185-192.

254. King D.P.F., Hovey S.L., Thompson D., Scott A. 1993. Mitochondrial DNA variation in Atlantic salmon, Salmo salar L., populations // J. Fish Biology, v. 42. p. 25-33.

255. King T.L., Eackles M.S., Letcher B.H. 2005. Microsatellite DNA markers for the study of Atlantic salmon {Salmo salar) kinship, population structure, and mixed-fishery analyses // Mol. Ecol. Notes, v. 5. p. 130-132.

256. King T.L., Kalinowski ST., Schill W.B. et al. 2001. Population structure of Atlantic salmon {Salmo salar L.): a range-wide perspective from microsatellite DNA variation // Mol. Ecol. v. 10. № 4. p. 807-821.

257. King T.L., Spidle A.P., Eackles M.S. et al. 2000. Mitochondrial DNA diversity in North American and European Atlantic salmon with emphasis on the Downeast rivers of Maine // J. Fish Biology, v. 57. p. 614-630.

258. Knox D., Lehmann K., Reddin D.G., Verspoor E. 2002. Genotyping of archival Atlantic salmon scales from northern Quebec and West Greenland using novel PCR primers for degraded mtDNA // J. Fish Biology, v. 60. p. 266-270.

259. Knox D., Verspoor E. 1991. A mitochondrial DNA restriction fragment length polymorphism of potential use for discrimination of farmed Norwegian and wild Atlantic salmon populations in Scotland // Aquaculture. v. 98. № 1-3. p. 249-257.

260. Koch H.L.A.E. 1983. Regulation minerale et hemoglobines chez quelques saumons {Salmo salar L.) dulcaquicoles // Ann. Soc. R. Zool. Belg. v. 113. Suppl. 1. p. 259-260.

261. Koljonen M.-L. 1989. Electrophoretically detectable genetic variation in natural and hatchery stocks of Atlantic salmon in Finland // Hereditas. v. 110. p. 23-35.

263. Koljonen M.-L., McKinnel S. 1996. Assessing seasonal changes in stock composition of Atlantic salmon catches in the Baltic Sea with genetic stock identification // J. Fish Biology, v. 49. p. 998-1018.

264. Koljonen M.-L., Tahtinen J., Saisa M., Koskiniemi J. 2002. Maintenance of genetic diversity of Atlantic salmon {Salmo salar) by captive breeding programs and the geographic distribution of microsatellite variation // Aquaculture. v. 212. p. 69-92.

265. Krieg F., Guyomard R. 1985. Population genetics of French brown trout {Salmo tnitta 1..): large geographical differentiation of wild populations and high similarity of domesticated stocks // Genet. Sel. Evol. v. 17. № 2. p. 225-242.

266. Lage C , Kornfield I. 2006. Reduced genetic diversity and effective population size in an endangered Atlantic salmon {Salmo salar) population from Maine, USA // Conserv. Genet, v. 7. p. 91-104.

267. Landegren U., Kaiser R., Sanders J., Hood L. 1988. A ligase-mediated gene detection technique // Science, v. 241. № 4869. p. 1077-1080.

268. Landry C , Bernatchez L. 2001. Comparative analysis of population structure across environments and geographical scales at major histocompatibility complex and microsatellite loci in Atlantic salmon {Salmo salar L.) // Mol. Ecol. v. 10. p. 2525-2539.

269. Landry C , Garant D., Duchesne P., Bernatchez L. 2001. 'Good genes as heterozygosity': the major histocompatibility complex and mate choice in Atlantic salmon {Salmo salar 1..) // Proc. R. Soc. Lond. B. v. 268. p. 1279-1285.

270. Langefors A.H. 2005. Adaptive and neutral genetic variation and colonization history of Atlantic salmon, Salmo salar II Environ. Biology of Fishes, v. 74. p. 297-308.

271. Langefors A., Lohm J., Grahn M., Andersen O., von Schantz T. 2001. Association between major histocompatibility complex class IIB alleles and resistance to Aeromonas salmonicida in Atlantic salmon // Proc. R. Soc. Lond. B. v. 268. p. 479-485.

273. Larsson P.-O., Larsson H.-O., Eriksson C. 1979. Review of Swedish salmon {Salmo salar 1..) stocks based on results of tagging experiments // Salmon research Institute Report. 5. p. 1-28. (In Swedish, English summary).

274. Letcher B.H., King T.L. 2001. Parentage and grandparentage assignment with known and unknown mating: application to Connecticut river Atlantic salmon restoration // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 58. № 9. p. 1812-1821.

275. Li Y.-C, Korol A.B., Fahima Т., Nevo E. 2004. Microsatellites within genes: structure, function, and evolution // Mol. Biol. Evol. v. 21. № 6. p. 991-1007.

276. Lohm J., Grahn M., Langefors A., Andersen O., Storset A., von Schantz T. 2002. Experimental evidence for major histocompatibility complex-allele-specific resistance to a bacterial infection // Proc. R. Soc. Lond. B. v. 269. p. 2029-2033.

277. Luczynski M., Bartel R., Marczynski A. 1997. Biochemical genetic characteristics of the farmed Atlantic salmon (Salmo salar) stock development in Poland for restoration purposes // Archives of Polish Fisheries, v. 5. № 2. p. 241-246.

278. Ludwig A., Debus L., Lieckfeldt D. et al. 2002. When the American sea sturgeon swam east // Nature, v. 419. p. 447-448.

280. Makhrov A.A. Atlantic salmon (Salmo salar L.) and brown trout (S. trutta L.) hybridization // J. Fish Biology, (submitted)

281. Makhrov A.A., Skaala O., Altukhov Yu.P. 2002. Alleles ofsAAT-1,2* isoloci in brown trout: potential diagnostic marker for tracking routes of post-glacial colonization in northern Europe // J. Fish Biology, v. 61. p. 842-846.

282. Martinez J.L., Dumas J., Beall E., Garcia-Vazquez E. 2001. Assessing introgression of foreign strains in wild Atlantic salmon populations: variation in microsatellites assessed in historic scale collections // Freshwater Biology, v. 46. p. 835-844.

283. Martinez J.L., Gephard S., Juanes F., Garcia-Vazquez E. 2000a. The use of microsatellite loci for genetic monitoring of Atlantic salmon populations //North Amer. J. Aquaculture. v. 62. p. 285-289.

285. McCarthy I.D., Sanchez J.A., Blanco G. 2003. Allozyme heterozygosity, date of first feeding and life history strategy in Atlantic salmon // J. Fish Biology, v. 62. p. 341-357.

286. McConnell S., Hamilton L., Morris D. et al. 1995. Isolation of salmonid microsatellite loci and their application to the population genetics of Canadian east coast stocks of Atlantic salmon//Aquaculture. v. 137. p. 19-30.

287. McElligott E.A., Cross T.F. 1991. Protein variation in wild Atlantic salmon, with particular reference to southern Ireland // J. Fish Biology, v. 39. Suppl. A. 35-42.

288. McGinnity P., Prodohl P., Maoileidigh N.O. et al. 2004. Differential lifetime success and performance of native and non-native Atlantic salmon examined under communal natural conditions // J. Fish Biology, v. 65. Suppl. A. p. 173-187.

289. McVeigh H.P., Bartlett S.E., Davidson W.S. 1991. Polymerase chain reaction/direct sequence analysis of the cytochrome b gene in Salmo salar II Aquaculture. v. 95. № 3-4. p. 225-233.

290. Mjolnerod LB., Refseth U.H., Karlsen E. et al. 1997. Genetic differences between two wild and one farmed population of Atlantic salmon {Salmo salar) revealed by three classes of genetic markers // Hereditas. v. 127. № 3. p. 239-248.

291. Mjolnerod I.B., Fleming LA., Refseth U.H., Hindar K. 1998. Mate and sperm competition during multiple-male spawnings of Atlantic salmon // Can. J. Zool. v. 76. p. 70-75.

292. Mjolnerod LB., Refseth U.H., Hindar K. 1999. Spatial association of genetically similar Atlantic salmon juveniles and sex bias in spatial patterns in a river // J. Fish Biology, v. 55. p. 1-8.

293. Moffett I.J.J., Crozier W.W. 1991. Genetic marker identification in Atlantic salmon {Salmo salar L.) by electrophoretic analysis of low risk tissues // J. Fish Biology, v. 39. p. 609-611.

294. Moffett I.J.J., Crozier W.W. 1996. A study of temporal genetic variation in a natural population of Atlantic salmon in the River Bush, Northern Ireland // J. Fish Biology, v. 48. № 2. p. 302-306.

295. Moller D. 1970. Transferrin polymorphism in Atlantic salmon {Salmo salar) II J. Fish. Res. Bd. Canada, v. 27. № 9. p. 1617-1625.

296. Moller D. 2005. Genetic studies on serum transferrins in Atlantic salmon // J. Fish Biology, v. 67. Suppl. A. p. 55-67.

297. Moran P., Garcia-Vazquez E. 1998. Multiple paternity in Atlantic salmon: a way to maintain genetic variability in relicted populations // J. Heredity, v. 89. p. 551-553.

298. Moran P., Pendas A.M., Beall E., Garcia-Vazquez E. 1996. Genetic assessment of the reproductive success of Atlantic salmon precocious parr by means of VNTR loci // Heredity, v. 77. p. 655-660.

299. Moran P., Pendas A. M., Garcia-Vazquez E., Izquierdo J. I. 1994a. Genetic variation among Atlantic salmon in six Spanish rivers // J. Fish Biology, v. 45. № 5. p. 831-837.

300. Moran P., Perez J., Dumas J., Beall E., Garcia-Vazquez E. 2005. Stocking-related patterns of genetic variation at enzymatic loci in south European Atlantic salmon populations // J. Fish Biology, v. 67. Suppl. A. p. 185-199.

301. Moran P., Perez J., Garcia-Vazquez E. 1998. The malic enzyme MEP-2* locus in Spanish populations of Atlantic salmon: Sea age and foreign stocking // Aquat. Sci. v. 60. p. 359-366.

302. Naevdal G., Holm M., Ingebrigtsen O., Moller D. 1978. Variation in age at first spawning in Atlantic salmon (Salmo salar) II J. Fish. Res. Board Can. v. 35. p. 145-147.

303. Ng S.H.S., Chang A., Brown G.B. et al. 2005. Type I microsatellite markers from Atlantic salmon (Salmo salar) expressed sequence tags // Mol. Ecol. Notes, v. 5. p. 762-766.

304. Nicieza A.G. 1995. Morphological variation between geographically disjunct populations of Atlantic salmon: the effects of ontogeny and habitat shift // Functional Ecology, v. 9. № 3. p. 448-456.

305. Nielsen E.E., Hansen M.M., Bach L. A. 2001. Looking for a needle in a haystack: Discovery of indigenous Atlantic salmon (Salmo salar L.) in stocked populations // Conserv. Genet, v. 2. p. 219-232.

306. Nielsen E.E., Hansen M.M., Loeschcke V. 1996. Genetic structure of European populations of Salmo salar L. (Atlantic salmon) inferred from mitochondrial DNA // Heredity, v. 77. p. 351-358.

307. Nielsen E.E., Hansen M.M., Loeschcke V. 1997. Analysis of microsatellite DNA from old scale samples of Atlantic salmon Salmo salar: a comparison of genetic composition over 60 years // Mol. Ecol. v. 6. p. 487-492.

308. Nielsen E.E., Hansen M.M., Loeschcke V. 1999. Genetic variation in time and space: microsatellite analysis of extinct and extant populations of Atlantic salmon // Evolution, v. 53. № 1 . p. 261-268.

309. Nielsen J. 1961. Contributions to the biology of the Salmonidae in Greenland. I-IV. // Meddelelser ora Gronland. Bd. 159. № 8. 75 p.

310. Nilsen Т.О., Ebbesson L.O.E., Stefansson S.O. 2003. Smolting in anadromous and landlocked strains of Atlantic salmon (Salmo salar) II Aquaculture. v. 222. p. 71-82.

311. Nilsson J. 1997. MtDNA and microsatellite variation in Baltic Atlantic salmon // ICES J. Mar. Sci. v. 54. № 6 . p. 1173-1176.

312. Norris A.T., Bradley D.G., Cunningham E.P. 1999. Microsatellite genetic variation between and within farmed and wild Atlantic salmon {Salmo salar) populations // Aquaculture. v. 180. p. 247-264.

313. Norris A.T., Bradley D.G., Cunningham E.P. 2000. Parentage and relatedness determination in farmed Atlantic salmon {Salmo salar) using microsatellite markers // Aquaculture. v. 182. p. 73-83.

314. Nygren A., Nilsson В., Jahnke M. 1968. Cytological studies in Atlantic salmon {Salmo salar) II Ann. Acad. Regiae Scient. Upsal. № 12. p. 21-52.

315. Nygren A., Nilsson В., Jahnke M. 1972. Cytological studies in Atlantic salmon from Canada, in hybrids between Atlantic salmon from Canada and Sweden and in hybrids between Atlantic salmon and sea trout // Hereditas. v. 70. p. 295-305.

316. Nyman O.L. 1970. Electrophoretic analysis of hybrids between salmon {Salmo salar L.) and trout {Salmo trutta L.). Trans. Amer. Fish. Soc. v.99. p. 229-236.

317. Nyman O.L., Pippy J.H.C. 1972. Differences in Atlantic salmon, Salmo salar, from North America and Europe // J. Fish. Res. Bd. Canada, v. 29. p. 179-185.

318. On the run. Escaped farmed fish in Norwegian waters. WWF-Norway Report 2/2005. 42 p. (www.wwf.no/core/pdf/)

319. O'Connell M., Skibinski D. O. F., Beardmore J. A. 1995. Mitochondrial DNA and allozyme variation in Atlantic salmon {Salmo salar) populations in Wales // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 52. № l. p . 171-178.

320. O'Connell M., Skibinski D. O. F., Beardmore J. A. 1996. Allozyme and mtDNA divergence between Atlantic salmon populations in North Wales // J. Fish Biology, v. 48. № 5 . p. 1023-1026.

321. O'Reilly P., Doyle R. 2007. Live gene banking of endangered populations of Atlantic salmon // The Atlantic salmon. Genetics, Conservation and Management. E. Verspoor, L. Stradmeyer, J.L. Nielsen, eds. Oxford: Blackwell Publishing Ltd. p. 425-469.

322. O'Reilly P.T., Herbinger C , Wright J.M. 1998. Analysis of parentage determination in Atlantic salmon {Salmo salar) using microsatellites // Animal Genetics, v. 29. p. 363-370.

323. Osinov A.G., Lebedev V.S. 2000. Genetic divergence and phylogeny of the Salmoninae based on allozyme data // J. Fish Biology, v. 57. p. 354-381.

324. Paaver T. 1991. Electroforetisk undersokning av romproteiner hos laxfisk // Information fran Sotvattenslaboratoriet, Drottningholm. v. 4. p. 49-62.

325. Paaver Т., Gross R., Vasemagi A. 2001. Genetic characterization of Estonian salmon populations // Present and potential production of salmon in Estonian rivers (Kangur M., Wahlberg В., eds.). Tallinn: Estonian Academy Publishers, p. 77-84.

326. Pakkasmaa S., Piironen J. 2001. Water velocity shapes juvenile salmonids // Evolutionary Ecology, v. 14. p. 721-730.

327. Palva Т.К., Lehvaslaiho H., Palva E.T. 1989. Identification of anadromous and non- anadromous salmon stocks in Finland by mitochondrial DNA analysis // Aquaculture. v. 81. №3-4. p. 237-244.

328. Parrish D.L., Behnke R.J., Gephard S.R., McCormick S.D., Reeves G.H. 1998. Why aren't there more Atlantic salmon (Salmo salar)? II Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 55. Suppl. 1. p. 281-287.

329. Paterson S., Piertney S.B., Knox D. et al. 2004. Characterization and PCR multiplexing of novel highly variable tetranucleotide Atlantic salmon {Salmo salar L.) microsatellites // Mol. Ecol Notes, v. 4. p. 160-162.

330. Payne R.H. 1974. Transferin variation in North American population of the Atlantic salmon, Salmo salar II J. Fish. Res. Bd. Canada, v. 31. № 6. p. 1037-1041.

331. Payne R.H., Child A.R., Forrest A. 1971. Geographical variation in the Atlantic salmon // Nature, v. 231. p. 250-252.

332. Peacock A.C., Bunting S.L., Quenn K.G. 1965. Serum protein electrophoresis in acrilamide gel: patterns from normal human subjects // Science, v. 147. № 3664. p. 1451-1453.

333. Peek A.S., Wheeler P.A., Ostberg CO., Thorgaard G.H. 1997. A minichromosome carrying a pigmentation gene and brook trout DNA sequence in transgenic rainbow trout // Genome, v. 40. № 5. p. 594-599.

334. Pendas A.M., Moran P., Garcia-Vazquez E. 1994. Organization and chromosomal location of the major histone cluster in brown trout, Atlantic salmon and rainbow trout // Chromosoma. v. 103. № 2. p. 147-152.

335. Pendas A.M., Moran P., Martinez J.L., Garcia-Vazquez E. 1995. Applications of 5S rDNA in Atlantic salmon, brown trout, and in Atlantic salmon X brown trout hybrid identification // Mol. Ecol. v. 4. № 2. p. 275-276.

336. Petersson E., Jarvi Т., Steffher N.G., Ragnarsson B. 1996. The effects of domestication on some life history traits of sea trout and Atlantic salmon // J. Fish Biology, v. 48. p. 776-791.

337. Perez J., Martinez J.L., Moran P., Beall E., Garcia-Vazquez E. 1999. Identification of Atlantic salmon x brown trout hybrids with a nuclear marker useful for evolutionary studies // J. Fish Biology, v. 54. № 2. p. 460-464.

338. Perez J., Moran P., Pendas A.M., Garcia-Vazquez E. 1997. Applications of single locus minisatellite DNA probes to the study of Atlantic salmon {Salmo salar L.) population genetics // J. Heredity, v. 88. p. 80-82.

339. Pineda H., Borrell Y.J., McCarthy I. et al. 2003. Timing of first feeding and life history strategies in salmon: genetic data // Hereditas. v. 139. p. 41-48.

340. Pollard S.M., Danzmann R.G., Claytor R.R. 1994. Association between the regulatory locus PGM-lr* and life-history types of juvenile Atlantic salmon {Salmo salar) II Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 51. № 6. p. 1322-1329.

341. Potvin С , Bernatchez L. 2001. Lacustrine spatial distribution of landlocked Atlantic salmon populations assessed across generations by multilocus individual assignment and mixed-stock analyses // Mol. Ecol. v. 10. p. 2375-2388.

342. Presa P., Pardo B.G., Martinez P., Bernatchez L. 2002. Phylogeographic congruence between mtDNA and rDNA ITS markers in brown trout // Mol. Biol. Evol. v. 19. № 12. p. 2161-2175.

343. Primmer C.R., Koskinen M.T., Piironen J. 2000. The one that did not get away: individual assignment using microsatellite data detects a case of fishing competition fraud // Proc. R. Soc. Lond. B. v. 267. p. 1699-1704.

344. Rajakaruna R.S., Brown J.A., Kaukinen K.H., Miller K.M. 2006. Major histocompatibility complex and kin discrimination in Atlantic salmon and brook trout // Mol. Ecol. v. 15. № 14. p. 4569-4575.

345. Reed K.M., Hackett J.D., Phillips R.B. 2000. Comparative analysis of intra-individual and inter-species DNA sequence variation in salmonid ribosomal DNA cistrons // Gene, v. 249. p. 115-125.

346. Rengmark A.H., Sletten A., Skaala O. et al. 2006. Genetic variability in wild and farmed Atlantic salmon (Salmo salar) strains estimates by SNP and microsatellites // Aquaculture. v. 253. № 1-4. p. 229-237.

347. Report of the Working Group on North Atlantic Salmon. 5-14 April 2005. Nuuk, Greenland. (ICES WGNAS Report). 291 p.

348. Ritter J.A. 1975. Lower ocean survival rates for hatchery-reared Atlantic salmon (Salmo salar) stocks released in rivers other than their native streams // ICES. C M . M: 26. 10 p.

349. Roff D.A., Bentzen P. 1989. The statistical analysis of mitochondrial DNA polymorphisms: x2 and the problem of small samples // Mol. Biol. Evol. v. 6. № 5. p. 539-545.

350. Russell R.G. 1999. Atlantics find a home in the Pacific // Flyfisher. Summer, p. 10.

351. Ryynanen H.J., Primmer C.R. 2004. Distribution of genetic variation in the growth hormone 1 gene in Atlantic salmon (Salmo salar) populations from Europe and North America// Mol. Ecol. v. 13. p. 3857-3869.

352. Sadler J., Pankhurst P.M., King H.R. 2001. High prevalence of skeletal deformity and reduced gill surface area in triploid Atlantic salmon (Salmo salar L.) // Aquaculture. v. 198. p. 369-386.

353. Saisa M., Koljonen M.-L., Gross R. et al. 2005. Population genetic structure and postglacial colonization of Atlantic salmon (Salmo salar) in the Baltic Sea area based on microsatellite DNA variation // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 62. p. 1887-1904.

354. Saisa M., Koljonen M.-L., Tahtinen J. 2003. Genetic changes in Atlantic salmon stocks since historical times and the effective population size of a long-term captive breeding programme // Conserv. Genet, v. 4. p. 613-627.

355. Sanchez J.A., Blanco G., Vazquez E., Garcia E., Rubio J. 1991. Allozyme variation in natural populations of Atlantic salmon in Asturias (northern Spain) // Aquaculture. v. 93. № 4 . p. 291-298.

356. Sanchez J.A., Clabby C , Ramos D. et al. 1996. Protein and microsatellite single locus variability in Salmo salar L. (Atlantic salmon) // Heredity, v. 7. p. 423-432.

357. Saunders R.L. 1977. The incidence and genetic implications of sexual maturity in male Atlantic salmon parr // ICES. CM. M: 21. 8 p.

358. Saura M., Caballero P., Caballero A., Moran P. 2006. Genetic variation in restored Atlantic salmon {Salmo salar L.) populations in the Ulla and Lerez rivers, Galicia, Spain // ICES J. Mar. Sci. v. 63. № 7. p. 1290-1296.

359. Schartl M., Nanda I., Schlupp I., Wilde В., Epplen J.T., Schmid M., Parzefall J. 1995. Incorporation of subgenomic amounts of DNA as compensation for mutational load in gynogenetic fish //Nature, v. 373. № 6509. p. 68-71.

360. Schom СВ., Miles M.S., Morgan R.I.G., Thorpe J.E., Alderson R. 1984. North American and European Atlantic salmon {Salmo salar) II Genetics, v. 107. Suppl. 3. Pt. 2. p. s96.

361. Schreiber A., Schenk M., Lehmann J., Sturenberg F.-J. 1994. Genetische Untersuchungen an Meerforellen- und Lachswildfangen aus dem Rheinsystem in Nordrhein-Westfalen. Fischer & Teichwirt. v. 2. p. 52-53.

362. Scribner K.T., Page K.S., Barton M.L. 2001. Hybridization in freshwater fishes: a review of case studies and cytonuclear methods of biological inference // Reviews in Fish Biology and Fisheries, v. 10. p. 293-323.

363. Seppovaara O. 1962. Zur Systematik und okologie des Lachses und der Forellen in der Binnengewassern Finlands // Ann. Zool. Soc. "Vanamo". v. 24. № 1. 86 p.

364. Shaklee J.B., AUendorf F.W., Morizot D.C, Whitt G.S. 1990. Gene nomenclature for protein-coding loci in fish // Trans. Amer. Fish. Soc. v. 119. p. 2-15.

365. Skaala O., Hoyheim В., Glover K., Dahle G. 2004. Microsatellite analysis in domesticated and wild Atlantic salmon {Salmo salar L.): allelic diversity and identification of individuals // Aquaculture. v. 240. p. 131-143.

366. Skaala O., Makhrov A.A., Karlsen Т., Jorstad K.E., Altukhov Y.P., Politov D.V., Kuzishin K.V., Novikov G.G. 1998. Genetic comparison of salmon from the White Sea and north-western Atlantic Ocean // J. Fish Biology, v. 53. p. 569-580.

367. Skaala О., Taggart J.B., Gunnes К. 2005. Genetic differences between five major domesticated strains of Atlantic salmon and wild salmon // J. Fish Biology, v. 67. Suppl. A. p. 118-128.

368. Skaala O., Wennevik V., Glover K.A. 2006. Evidence of temporal genetic change in wild Atlantic salmon, Salmo salar L., populations affected by farm escapes // ICES J. Mar. Sci.v. 63. № 7 . p. 1224-1233.

369. Slettan A., Olsaker I., Lie O. 1993. Isolation and characterization of variable (GT)n repetitive sequences from Atlantic salmon, Salmo salar L. // Animal Genetics, v. 24. № 3.p. 195-197.

370. Slettan A., Olsaker I., Lie O. 1997. Segregation studies and linkage analysis of Atlantic salmon microsatellites using haploid genetics // Heredity, v. 78. p. 620-627.

371. Slettan A., Olsaker I., Lie O. 1996. Polymorphic Atlantic salmon, Salmo salar L., microsatellites at the SSOSL438, SSOSL439 and SSOSL444 loci // Animal Genetics, v. 27. p. 57-58.

372. Smitt F. A. 1886. A history of Scandinavian fishes. Part 2. Stockholm. 1240 p.

373. Solomon D.J., Child A.R. 1978. Identification of juvenile natural hybrids between Atlantic salmon {Salmo salar L.) and trout {Salmo trutta L.) // J. Fish Biology, v. 12. p. 499-501.

374. Spidle A.P., Kalinowski S.T., Lubinski B.A. et al. 2003. Population structure of Atlantic salmon in Maine with reference to populations from Atlantic Canada // Trans. Amer. Fish. Soc. v. 132. p. 196-209.

375. Spidle A.P., Schill W.B., Lubinski B.A., King T.L. 2001. Fine-scale population structure in Atlantic salmon from Maine's Penobscot river drainage // Conserv. Genet, v. 2. p. 11-24.

376. Stabell O.B. 1984. Homing and olfaction in Salmonids: a critical review with special reference to the Atlantic salmon // Biol. Rev. v. 59. p. 333-388.

377. Stahl G. 1983. Differences in the amount and distribution of genetic variation between natural populations and hatchery stocks of Atlantic salmon // Aquaculture. v. 33. p. 23-32.

378. Stahl G. 1987. Genetic population structure of Atlantic salmon // Population genetics and Fishery Management. N. Ryman and F. Utter (eds.), University of Washington Press, Seattle and London, p. 121-140.

379. Stahl G., Hindar L. 1988. Genetisk struktur hos norsk laks: status og perspectives. Direktoratet for Naturforvaltning, Trondheim, Norway. Rapport fra Fiskeforskningen. № 1 . 5 7 p.

380. Stahl G., Loudenslager E.J., Saunders R.L., Schofield E.J. 1983. Electrophoretic study on Atlantic salmon populations from the Miramichi River (New Brunswick) system, Canada // ICES. CM. M:20. 14 p.

381. Staurnes M., Lysfjord G., Berg O.K. 1992. Parr-smolt transformation of a nonanadromous population of Atlantic salmon {Salmo salar) in Norway // Can. J. Zool. v. 70. p. 197-199.

382. Stewart D.C., Smith G.W., Youngson A.F. 2002. Tributary-specific variation in timing of return of adult Atlantic salmon {Salmo salar) to fresh water has a genetic component // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 59. № 2. p. 276-281.

383. Stone C.E., Taggart J.B., Ferguson A. 1997. Single locus minisatellite DNA variation in European populations of Atlantic salmon (Salmo solar L.) // Hereditas. v. 126. № 3. p. 269-275.

384. Sutterlin A.M., Holder J., Benfey T.J. 1987. Early survival rates and subsequent morphological abnormalities in landlocked, anadromous and hybrid (landlocked x anadromous) diploid and triploid Atlantic salmon // Aquaculture. v. 64. № 2. p. 157-164.

385. Svardson G. 1945. Chromosome studies on Salmonidae // Reports from the Swedish State Institute of Freshwater Fishery Research, Drottningholm. v. 23. p. 1-151.

386. Svardson G. 1949. Salmon {Salmo salar L.) with no adipose fin // Institute of freshwater research. Drottningholm. Rep. № 29. p. 112-114.

387. Taggart J.B., McLaren I.S., Hay D.W. et al. 2001. Spawning success in Atlantic salmon {Salmo salar L.): a long-term DNA profiling-based study conducted in a natural stream // Mol. Ecol. v. 10. №. 4. p. 1047-1060.

388. Taggart J.B., Verspoor E., Galvin P.T., Moran P., Ferguson A. 1995. A minisatellite DNA marker for discriminating between European and North American Atlantic salmon {Salmo salar) II Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 52. № 11. p. 2305-2311.

389. Taveekijakarn P., Miyazaki Т., Matsumoto M., Arai S. 1996. Histopatological and haematological changes in amago salmon, Oncorhynchits rhodurus (Jordan @ McGregor), fed a vitamin-D-free diet // J. Fish Diseases, v. 19. № 4. p. 289-294.

390. Tessier N., Bematchez L., Presa P., Angers B. 1995. Gene diversity analysis of mitochondrial DNA, microsatellites and allozymes in landlocked Atlantic salmon // J. Fish Biology, v. 47. p. 156-163. f

391. Tessier N., Bematchez L. 1999. Stability of population structure and genetic diversity across generations assessed by microsatellites among sympatric populations of landlocked Atlantic salmon {Salmo salar L.) // Mol. Ecol. v. 8. p. 169-179.

392. Tessier N., Bematchez L. 2000. A genetic assessment of single versus double origin of landlocked Atlantic salmon {Salmo salar) from Lake Saint-Jean, Quebec, Canada // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 57. № 4. p. 797-804.

393. Tessier N., Bematchez L., Wright J.W. 1997. Population structure and impact of supportive breeding inferred from mitochondrial and microsatellite DNA analyses in land-locked Atlantic salmon Salmo salar L. // Mol. Ecol. v. 6. p. 735-750.

394. Thomas D., Beall E., Burke T. 1997. Alternative reproductive tactics in Atlantic salmon: factors affecting mature parr success // Proc. R. Soc. Lond. B. v. 264. p. 219-226.

395. Thompson D., Russell I.C. 1991. Allele frequency variation at the sAAT-4 locus as a potential measure of the relative performance of native and introduced Atlantic salmon in the river Test // Aquaculture. v. 98. p. 243-247.

396. Thorpe J.E. 1988. Salmon enhancement: stock discreteness and choice of material for stocking // Atlantic salmon: Planning for the future (D. Mills and D. Piggins, eds.). 1.ondon @ Sydney: Croom Helm/Portland, Oregon: Timber Press, p. 373-388.

397. Thorpe J.E. 2004. Life history responses of fishes to culture // J. Fish Biology, v. 65. Suppl. A. p. 263-285.

398. Thorpe J.E., Morgan R.I.G., Talbot C , Miles M.S. 1983. Inheritance of developmental rates in Atlantic salmon, Salmo salar L. // Aquaculture. v. 33. p. 119-128.

399. Tiira K., Laurila A., Peuhkuri N. et al. 2003. Aggressiveness is associated with genetic diversity in landlocked salmon {Salmo salar) II Mol. Ecol. v. 12. p. 2399-2407.

400. Tonteri A., Titov S., Veselov A. et al. 2005. Phylogeography of anadromous and non- anadromous Atlantic salmon {Salmo salar) from northern Europe // Arm. Zool. Fennici. v. 42. p. 1-22.

401. Tucker S., Pazzia I., Rowan D., Rasmussen J.B. 1999. Detecting pan-Atlantic migration in salmon {Salmo salar) using 137Cs // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 56. № 12. p. 2235-2239.

402. Utter F. 2003. Genetic impacts offish introductions // Population genetics: principles and application for fisheries scientists (E.M. Hallerman, ed.). Bethesda, Maryland: American Fisheries Society, p. 357-378.

403. Vasemagi A., Gross R., Paaver T. et al. 2001. Identification of the origin of Atlantic salmon {Salmo salar L.) population in a recently recolonized river in the Baltic Sea // Mol. Ecol. v. 10. p. 2877-2882.

404. Vasemagi A., Gross R., Paaver T. et al. 2005a. Analysis of gene-associated tandem repeat markers in Atlantic salmon {Salmo salar L.) populations: implications for restoration and conservation in the Baltic Sea // Conserv. Genet, v. 6. p. 385-397.

405. Vasemagi A., Nillson J., Primmer C.R. 2005B. Seventy-five EST-linked Atlantic salmon {Salmo salar L.) microsatellite markers and their cross-amplification in five salmonid species // Mol. Ecol. Notes, v. 5. p. 282-288.

406. Vasin O. 1998. First finding of polymorphism at esterase D loci in the Baltic salmon {Salmo salar L.) // ICES CM K:9. 6 p.

407. Vazquez E., Presa P., Sanches J.A., Blanco G., Utter F. 1993. Genetic characterization of introduced populations of Atlantic salmon, Salmo salar, in Asturias (Northern Spain) //Hereditas. v. 119. p. 47-51.

408. Verspoor E. 1986. Spatial correlations of transferrin allele frequencies in Atlantic salmon {Salmo salar) populations from North America // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 43. p. 1074-1078.

409. Verspoor E. 19886. Reduced genetic variability in first-generation hatchery populations of Atlantic salmon {Salmo salar) II Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 45. p. 1686-1690.

410. Verspoor E. 1994. The evolution of genetic divergence at protein coding loci among anadromous and nonanadromous populations of Atlantic salmon Salmo salar II Genetics and evolution of aquatic organisms. L.: Chapman & Hall. p. 52-67.

411. Verspoor E. 1997. Genetic diversity among Atlantic salmon {Salmo salar L.) populations // ICES J. Mar. Sci. v. 54. p. 965-973.

412. Verspoor E. 2005. Regional differentiation of North American Atlantic Salmon at allozyme loci // J. Fish Biology, v. 67. Suppl. A. p. 80-103.

413. Verspoor E., Beardmore J.A., Consuegra S. et al. 2005. Population Structure in the Atlantic Salmon: Insights From 40 Years of Research into Genetic Protein Variation // J. Fish Biology, v. 67. Suppl. A. p. 3-54.

414. Verspoor E., Cole L.J. 1989. Genetically distinct sympatric populations of resident and anadromous Atlantic salmon, Salmo salar II Can. J. Zool. v. 67. p. 1453-1461.

415. Verspoor E., Cole L.E. 2005. Genetic evidence for lacustrine spawning of the nonanadromous Atlantic salmon populations of Little Gull Lake, Newfoundland // J. Fish Biology, v. 67. Suppl. A. p. 200-205.

416. Verspoor E., Fraser N.H.C., Youngson A.F. 1991. Protein polymorphism in Atlantic salmon within a Scottish river: evidence for selection and estimates of gene flow between tributaries // Aquaculture. v. 98. № 1-3. p. 217-230.

417. Verspoor E., Garcia de Leaniz C. 1997. Stocking success of Scottish Atlantic salmon in two Spanish rivers // J. Fish Biology, v. 51. № 6. p. 1265-1269.

418. Verspoor E., Hammar J. 1991. Introgressive hybridization in fishes: the biochemical evidence // J. Fish Biology, v. 39. Suppl. A. p. 309-334.

419. Verspoor E., Jordan W.C. 1989. Genetic variation at the Me-2 locus in the Atlantic salmon within and between rivers: evidence for its selective maintenance // J. Fish Biology, v. 35. Suppl. A. p. 205-213.

420. Verspoor E., McCarthy E. 1997. Genetic divergence at the NAD+-dependent malic enzyme locus in Atlantic salmon from Europe and North America // J. Fish Biology, v. 51. p. 155-163.

421. Verspoor E., McCarthy E.M., Knox D., Bourke E.A., Cross T.F. 1999. The phylogeography of European Atlantic salmon {Salmo salar L.) based on RFLP analysis of the NDl/16sRNA region of the mtDNA // Biol. J. Linn. Soc. v. 68. Iss. 1-2. p. 129-146.

422. Verspoor E., O'SuUivan M., Arnold A.L. et al. 2002. Restricted matrilineal gene flow and regional differentiation among Atlantic salmon {Salmo salar L.) populations within the Bay of Fundy, eastern Canada // Heredity, v. 89. p. 465-472.

423. Verspoor E., Stradmeyer L., Nielsen J.L., eds. 2007. The Atlantic salmon. Genetics, Conservation and Management. Oxford: Blackwell Publishing Ltd. 500 p.

424. Vladic T.V., Jarvi T. 2001. Sperm quality in the alternative reproductive tactics of Atlantic salmon: the importance of the loaded raffle mechanism // Proc. R. Soc. Lond. B.v. 268. p. 2375-2381.

425. Vuorinen J., Berg O.K. 1989. Genetic divergence of anadromous and nonanadromous Atlantic salmon {Salmo salar) in the River Namsen, Norway // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 46. p. 406-409.

426. Vuorinen J., Piironen J. 1984. Electrophoretic identification of Atlantic salmon (Salmo salar), brown trout {S. trutta), and their hybrids // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 41. p. 1834-1837.

427. Webb J.H., Fryer R.J., Taggart J.B. et al. 2001. Dispersion of Atlantic salmon {Salmo salar) fry from competing families as revealed by DNA profiling // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 58. № 12. p. 2386-2395.

428. Weir L., Hutchings J.A., Fleming I.A., Einum S. 2005. Spawning behaviour and success of mature male Atlantic salmon {Salmo salar) parr of farmed and wild origin // Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 62. p. 1153-1160.

429. Wennevik V., Skaala O., Titov S.F., Studyonov I., Navdal G. 2004. Microsatellite variation in populations of Atlantic salmon from North Europe // Environmental Biology of Fishes, v. 69. p. 143-152.

430. Wilkins N.P., Courtney H.P., Gosling E., Linnane A., Jordan C , Curatolo A. 1994. Morphometric and meristic characters in salmon, Salmo salar L., trout, Salmo trutta L., and their hybrids // Aquaculture and Fisheries Management, v. 25. p. 505-518.

431. Williams G.C., Koehn R.K. 1984. Population genetics of North Atlantic catadromous eels {Anguilld) II Evolutionary Genetics of Fishes. Edited by B.J. Terner. New York and 1.ondon: Plenum Press, p. 529-560.

432. Wilson I.F., Bourke E.A., Cross T. F. 1995. Genetic variation at traditional and novel allozyme loci, applied to interactions between wild and reared Salmo salar L. (Atlantic salmon) // Heredity, v. 75. № 6. p. 578-588.

433. Youngson A.F., Martin S.A.M. Jordan W.C, Verspoor E. 1989. Genetic protein variation in farmed Atlantic salmon in Scotland: comparison of farmed strains with their wild source populations // Scottish Fisheries Research. Report № 42. p. 1-12.

434. Youngson A.F., Martin S.A.M., Jordan W.C, Verspoor E. 1991. Genetic protein variation in Atlantic salmon in Scotland: comparison of wild and farmed fish // Aquaculture. v. 98. p. 231-242.

435. Youngson A.F., Verspoor E. 1998. Interactions between wild and introduced Atlantic salmon {Salmo salar) II Can. J. Fish. Aquat. Sci. v. 55. Suppl. 1. p. 153-160.

436. Zaykin D.V., Pudovkin A.I. 1993. Two programs to estimate Chi-square values using pseudo-probability test // J. Heredity, v. 84. p. 152.