Диагностика и профилактика хламидиоза домашних плотоядных животных тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.03, кандидат ветеринарных наук Шамсутдинова, Нажия Вагизовна

• Шамсутдинова, Нажия Вагизовна
• кандидат ветеринарных наук
• 2002

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Шамсутдинова, Нажия Вагизовна

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1:1. Характеристика возбудителя.

1.1.1. Таксономическое положение хламидий.

1.1.2. Морфология и цикл развития хламидий

1.1.3. Химический состав хламидий

1.1.4. Антигенная структура и иммуногенные свойства хламидий

1.2. Лабораторная диагностика хламидиоза.

1.2.1. Выявление морфологических структур возбудителя в исследуемом материале

1.2.2. Выделение и культивирование хламидий •

1.2.3. Индикация и идентификация антигенов хламидий

1.2.4. Генодиагностика хламидиоза

1.2.5. Выявление противохламидийных антител

1.3. Специфическая профилактика хламидиоза.

1.4. Хламидиоз домашних плотоядных животных (собак и кошек).

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. Эпизоотологическое обследование

2.2. Опытные животные „

2.3. Сыворотки и патологический материал

2.4. Индикация возбудителя в патологическом материале.

2.5. Серологические реакции

2.6. Штаммы хламидий

2.7. Получение хламидийного антигена для иммуноферментного анализа

2.8. Разработка инактивированной вакцины против хламидиозов плотоядных

2.9. Статистическая обработка результатов исследований

3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Степень распространения хламидийных инфекций среди поголовья домашних плотоядных животных.

3.2. Разработка иммуноферментной тест-системы для выявления хламидийных антител.

3.2.1. Подбор метода получения хламидийного антигена

3.2.3. Конструирование иммуноферментной тест-системы для выявления хламидийных антител

3.2.4. Сравнительное изучение эффективности РСК и ИФА для ретроспективной диагностики хламидиоза домашних плотоядных

3.3. Серологический скрининг домашних плотоядных животных в отношении хламидийной инфекции.

3.4. Разработка специфического препарата для профилактики хламидиоза плотоядных животных.

3.4.1. Получение инактивированной эмульсионной вакцины против хламидиоза плотоядных животных

3.4.2. Изучение безвредности, антигенной активности и иммуногенности вакцинного препарата для профилактики хламидиоза плотоядных животных в лабораторных условиях

3.4.3. Иммуноморфологическая оценка вакцины против хламидиоза плотоядных животных (ВНИВИ)

3.4.4. Сравнительная оценка различных биопрепаратов для специфической профилактики хламидиоза домашних плотоядных

3.4.5. Использование инактивированной вакцины против хламидиоза плотоядных животных в ветеринарной практике

4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ

5. ВЫВОДЫ

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Диагностика и профилактика хламидиоза домашних плотоядных животных»

Актуальность темы. Хламидийные инфекции широко распространены среди всех видов млекопитающих животных и птиц. Заболевание наносит существенный экономический ущерб различным отраслям животноводства и птицеводства, вызывая гибель животных, патологию их воспроизводительных органов, аборты, рождение мертвого или нежизнеспособного приплода.

Больные животные часто становятся источником инфекции для работников сельского хозяйства и перерабатывающих производств, что приводит к возникновению эпидемических вспышек. Распространенность возбудителей хламидиозов в природе среди домашних и диких животных, а также птиц представляет постоянную угрозу спорадических заболеваний для людей, профессионально не занятых в сельском хозяйстве (12, 71, 101, 291).

В доступной литературе имеются единичные сообщения о хламидийной природе заболеваний у домашних собак и кошек (52, 53, 71, 72, 135). Тем не менее, многие вопросы эпизоотологии, этиологии, симптоматики, патогенеза, диагностики, лечения и-профилактики хламидиоза домашних плотоядных животных остаются нерешенными и требуют детального изучения.

Лабораторная диагностика хламидиоза включает обнаружение возбудителя в органах и тканях путем световой и люминесцентной микроскопии, выделение возбудителя на куриных эмбрионах и культурах клеток, выявление в сыворотках крови, больных и переболевших животных комплемент связывающих антител. Эти тест-системы имеют целый ряд недостатков: длительность получения ответа, низкая чувствительность и специфичность, субъективность оценки результатов исследования.

В последние годы для индикации и идентификации хламидий предложены современные иммунохимические и молекулярногенетические методы, такие как: иммуноферментный анализ, иммуноблотинг, гибридомные технологии, полимеразная цепная реакция и др. (8, 30, 34, 58, 76). Перечисленные методы обладают высокой чувствительностью, специфичностью, воспроизводимостью, возможностью одновременно исследовать большое число проб, простотой постановки и учета результатов, способностью выявлять межвидовые и меж-штаммовые различия хламидий. Исходя из этого, перспективным является совершенствование лабораторной диагностики хламидийных инфекций у домашних плотоядных с учетом достижений современной биотехнологии.

Приоритетным в профилактике и ликвидации хламидиозов сельскохозяйственных животных остается применение антимикробных препаратов и вакцин. Разработаны и внедрены в ветеринарную практику биопрепараты при хламидийных инфекциях крупного и мелкого рогатого скота, свиней и птиц (49, 96, 109, 117), разработана и апробирована в производственных условиях вакцина против хламидиоза пушных зверей (87).

Несмотря на это, вопросы специфической профилактики хламидиоза у домашних плотоядных до настоящего времени остаются открытыми. Кроме того, актуальным является разработка научно обоснованных мероприятий по диагностике, профилактике и ликвидации инфекционных болезней хламидийной природы у мелких домашних животных.

Цель и задачи исследований. Цель исследований - усовершенствовать средства диагностики и профилактики хламидиоза домашних плотоядных животных (собак и кошек).

В соответствии с целью работы были поставлены следующие задачи:

- провести комплекс исследований по выяснению встречаемости хламидиоза при различной патологии у домашних плотоядных животных;

- разработать тест-систему для серологической диагностики хламидиоза у собак и кошек иммуноферментным методом;

- разработать инактивированную вакцину против хламидиоза плотоядных животных.

Научная новизна. Разработан новый метод получения антигена из очищенной культуры хламидий.

Впервые сконструирована и апробирована в лабораторных и производственных условиях иммуноферментная тест-система для индикации в сыворотках крови домашних плотоядных животных (собак и кошек) противохламидийных антител.

С использованием разработанного набора диагностикумов проведен серологический скрининг спонтанно зараженных хламидиями мелких домашних животных.

Разработана инактивированная эмульсионная вакцина против хламидиоза плотоядных животных, которая успешно апробирована в ветеринарной практике.

Практическая ценность. Разработана иммуноферментная тест-система для ретроспективной диагностики хламидиоза у домашних плотоядных.

Установлена возможность использования указанной тест-системы для определения напряженности иммунитета у собак и кошек после вакцинации против хламидиоза.

Разработана, апробирована и успешно внедрена в ветеринарную практику вакцина против хламидиоза домашних плотоядных.

Результаты проведенных исследований вошли в следующие разработанные и внедренные в практику нормативно-технические документы:

- во "Временное наставление по применению вакцины против хламидиоза плотоядных животных (пушных зверей, собак и кошек) инактивированной эмульсионной (в порядке опыта)", утвержденное ГУВ Кабинета министров РТ 21 марта 2000 г.;

- во "Временную инструкцию по изготовлению и контролю иммунофермент-ной тест-системы для выявления хламидийных антител у собак и кошек", утвержденную ректором КГАВМ 18 марта 2002 г.;

- в "Технические условия на опытную партию иммуноферментных тестсистем для выявления хламидийных антител у собак и кошек", утвержденные ректором КГАВМ 18 марта 2002 г.;

- во "Временное наставление по применению иммуноферментной тест-системы для выявления хламидийных антител у собак и кошек", утвержденное ГУВ Кабмина РТ 18 марта 2002 г.

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены на:

- Ежегодных итоговых заседаниях ученых советов Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана (1999-2001 г.г.).

- Научно-практических конференциях по проблемам ветеринарии и зоотехнии (Казань, 1999, 2001 и 2002 г.г.).

- Международной научной конференции, посвященной 70-летию образования зооинженерного факультета (Казань, 2000 г.).

- Научно-практической конференции "Актуальные проблемы биологии и ветеринарной медицины мелких домашних животных" (Киров, 2001 и 2002).

- Научно-практической конференции "Актуальные вопросы ветеринарной медицины домашних животных" (Екатеринбург, 2000 и 2001 г.г.).

- Научно-практической конференции "Ветеринарная медицина. Современные проблемы и перспективы развития" (Саратов, 2001 г.).

- IX и X международных ветеринарных конгрессах (Москва, 2001 и 2002 г.г.).

Публикация результатов исследования. По теме диссертации опубликовано 14 научных работ. Разработаны нормативно-технические документы на биопрепараты: два наставления, одна инструкция и одни технические условия.

Основные положения диссертации, выдвигаемые для защиты:

- результаты клинико-эпизоотологических и лабораторных исследований поголовья домашних плотоядных в отношении хламидийных инфекций;

- оценка эффективности общепринятых, разработка и совершенствование методов ретроспективной диагностики хламидиозов собак и кошек;

- разработка инактивированной эмульсионной вакцины против хламидиоза 9 плотоядных животных.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 149 страницах компьютерного текста (текстовый редактор "Mikrosoft Word 2000", стиль "Times New Roman", размер шрифта 14 пт, интервал полуторный) и включает: введение, обзор литературы, материалы и методы исследований, результаты собственных исследований (4 главы), обсуждение результатов исследования, выводы, практические предложения и указатель литературы (всего 295 источника, в том числе 155 иностранных и 9 ссылок на сайты Internet). Диссертация иллюстрирована 9 таблицами и 14 рисунками. Прилагаются разработанные нормативно-технические и другие документы, подтверждающие результаты исследований, их научно-практическую ценность.

Заключение диссертации по теме «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», Шамсутдинова, Нажия Вагизовна

5. ВЫВОДЫ

1. Клинико-эпизоотологическими и лабораторными исследованиями установлено значительное распространение у мелких домашних животных хла-мидийных инфекций:

- симптомы характерные для хламидийных инфекции встречаются у 5-20% от общего числа собак и кошек, владельцы которых обращаются к ветеринарным специалистам.

- в реакции связывания комплемента с хламидийным антигеном в диагностических титрах реагируют 13,2% сывороток крови, полученных от подозрительных по заболеванию хламидиозом домашних плотоядных.

- при исследовании методом люминесцентной микроскопии клинических материалов, полученных от подозрительных по заболеванию хламидиозом собак и кошек, в 62,5% случаях выявляется специфическое внутриклеточное свечение хламидийного антигена.

2. Комбинированное использование при диагностике хламидиоза у собак и кошек люминесцентной микроскопии (РИФ) и серологических тестов (РСК) позволяет выявлять на 33,3 % больше реагирующих животных.

3. Сконструированная иммуноферментная тест-система для выявления хламидийных антител у собак и кошек эффективна при подтверждении ранее установленного другими методами диагноза на хламидиоз у спонтанно больных собак и кошек, серологическом скрининге поголовья мелких домашних животных в отношении хламидиоза, а также оценке иммунитета у вакцинированных животных.

4. Анализ результатов исследования сывороток крови подозрительных по заболеванию собак и кошек иммунопероксидазным методом показал, что диагностический титр при индикации хламидийных антител в ИФА должен составлять 1:100 и выше.

104

5. При сравнительном исследовании сывороток крови, полученных от подозрительных по заболеванию хламидиозом домашних плотоядных, в РСК и ИФА с хламидийным антигеном в диагностических титрах реагируют соответственно 13,2% и 31,7%, что свидетельствует о высокой специфичности последней.

6. Серологическим скринингом поголовья собак и кошек в г. Казани выявлено 15,8% домашних плотоядных, в сыворотках крови которых циркулируют специфические хламидийные антитела.

7. Разработанная вакцина против хламидиоза плотоядных животных является безвредной, стерильной и иммуногенной при испытании в лабораторных условиях.

8. Однократная иммунизация собак и кошек вакциной против хламидиоза плотоядных животных в условиях ветеринарной клиники вызывает образование хламидийных антител, выявляемых в РСК и ИФА в титрах 1:10-1:40 и 1:100-1:400 соответственно, у 100% вакцинированных особей.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

На основании проведенных исследований внесены следующие практические предложения:

1. С целью предупреждения заболевания домашних плотоядных хламидиозом ветеринарные специалисты обязаны регистрировать все случаи абортов и мертворождений у самок, уретритов и орхитов у самцов, конъюнктивитов, а также гибели приплода в первые дни жизни и принимать все меры для установления причин, вызвавших эту патологию;

2. Руководители и ветеринарные специалисты клубов по разведению собак и кошек обязаны учитывать эпизоотическое состояние хозяйств, в которых заготавливаются корма животного происхождения для домашних плотоядных, а при необходимости принимать меры для исследования их лабораторными методами.

3. Недопустимо использование подозрительных по заболеванию животных для получения потомства до выяснения диагноза. Самцов, при спаривании л с которыми у самок наблюдаются аборты, мертворождения и рождение слабого нежизнеспособного молодняка, для дальнейшего разведения не допускаются и должны подвергаться лабораторным исследованиям на хламидиоз.

4. При диагностике заболевания у мелких домашних животных (собак и кошек) необходимо использовать сочетание серологических тестов и методов индикации антигенов хламидий в тканях;

5. Иммуноферментная тест-система для выявления хламидийных антител у собак и кошек предложена для промышленного изготовления (Временное наставление по применению иммуноферментной тест-системы для выявления хламидийных антител у собак и кошек, утверждено ГУВ Кабмина РТ 18 марта 2002 г.) и может быть использована в ветеринарной практике для подтверждении ранее установленного другими методами диагноза на хламидиоз у спон

106 танно больных собак и кошек, серологическом скрининге поголовья мелких домашних животных в отношении хламидиоза, а также оценке иммунитета у иммунизированных животных;

6. Для специфической профилактики заболевания рекомендуется прививать домашних плотоядных специфическими биопрепаратами. Вакцина против хламидиоза плотоядных животных (ВНИВИ) предложена для промышленного изготовления (Временное наставление по применению вакцины против хламидиоза плотоядных животных инактивированной эмульсионной, утверждено ГУВ Кабинета министров РТ 21 марта 2000 г.);

7. Следует вести разъяснительную работу среди владельцев домашних плотоядных об опасности данного заболевания для человека. Лица, ухаживающие за больными животными, а также ветеринарные специалисты, оказывающие гинекологическую и терапевтическую помощь, должны соблюдать меры личной профилактики.

Заканчивая работу, выражаю благодарность ректорату Казанской академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана и дирекции Республиканского Центра по профилактике и борьбе со СПИДом (г. Казань) за предоставленную возможность выполнения и оформления работы.

Приношу искреннюю признательность и благодарность моему научному руководителю кандидату биологических наук Валерию Валентиновичу ГЕРАСИМОВУ и научному консультанту профессору Рустаму Хамитовичу РАВИЛОВУ за повседневное руководство и помощь при работе над диссертационной темой.

Выражаю сердечную благодарность сотрудникам отдела культивирования и идентификации вирусов РЦГТБ СПИД, лаборатории контроля и индикации возбудителей вирусных и хламидийных инфекций в объектах ветеринарного надзора ВНИВИ, кафедры патологии мелких животных и оперативной хирургии и других подразделений КГАВМ, а также руководству и специалистам ветеринарных клиник и лабораторий за чуткое отношение и товарищескую помощь при выполнении экспериментальной части работы.

Заключение.

Известно, что домашние плотоядные нередко подвержены инфекционным заболеваниям, характеризующимся различными нарушениями течения беременности, рождением слабого нежизнеспособного молодняка, поражением мочеполовой сферы у самцов, конъюнктивитами и другими симптомами, этиология которых зачастую остается невыясненной. Исходя из этого, особого внимания заслуживает проблема установления природы, в т.ч. и хламидийной, этих патологий.

Среди поголовья домашних плотоядных города Казани нами проведено эпизоотологическое обследование с целью установления причин возникновения и закономерностей распространения хламидийных инфекций. Были выявлены потенциальные источники и совокупность факторов передачи возбудителей инфекции, а также контингент восприимчивых животных.

При разведочных серологических исследованиях собак и кошек установлена серопозитивность в РСК соответственно 13,9 и 12,8% животных, из числа подозрительных по заболеванию хламидиозом.

В результате лабораторных исследований клинического материала от этих животных методом люминесцентной микроскопии в 62,5% случаях в мазках-отпечатках РИФ было выявлено специфическое внутриклеточное свечение хламидийного антигена. Корреляция результатов РСК и РИФ составила 66,1%.

Разработана иммуноферментная тест-система для выявления хламидийных антител в сыворотках крови собак и кошек. Создан диагностический набор биопрепаратов.

Детальное описание разработанной методики нашло отражение в нормативно-технических документах: а) Временной инструкции по изготовлению и контролю иммунофермент-ной тест-системы для выявления хламидийных антител у собак и кошек; б) Технических условиях на иммуноферментную тест-систему для выявления хламидийных антител у собак и кошек (ТУ 9388-001-00493623-02);

88 в) Временном наставлении по применению иммуноферментной тест-системы для выявления хламидийных антител у собак и кошек (в порядке опыта).

Кроме того, нами испытана возможность использования этого набора препаратов для оценки поствакцинального иммунитета, а также серологического скрининга поголовья мелких домашних животных (собак и кошек) в отношении хламидийных инфекций.

Для специфической профилактики хламидиозов плотоядных животных разработана инактивированная эмульсионная вакцина. Изготовлена опытно-промышленная партия биопрепарата, которая успешно прошла лабораторные и производственные испытания. В производственных условиях вакцина использована для иммунизации собак и кошек, содержащихся в домашних условиях. Временное наставление по применению вакцины против хламидиоза плотоядных животных инактивированной эмульсионной, утверждено ГУВ Кабинета министров РТ 21 марта 2000 г.

Внедрение этих разработок в ветеринарную практику специалистами ветеринарных лечебниц позволяет успешно бороться с хламидиозами домашних собак и кошек.

4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ

В условиях загрязнения окружающей среды, повышения уровня фоновой радиации и высокой степени урбанизации перед человечеством возникла проблема иммунодефицита, который становится причиной снижения резистентности человека и животных к возбудителям инфекционных болезней. В настоящее время регистрируется целый ряд инфекционных болезней вирусной и бактериальной природы, которые в последние 20-30 лет получили значительное распространение среди людей и животных. Одним из таких заболеваний является хламидиоз.

Многие вопросы диагностики, профилактики и ликвидации хламидиозов сельскохозяйственных животных (крупного рогатого скота, овец, коз, свиней и лошадей) изучены достаточно хорошо, результаты этих исследований широко используются в ветеринарной практике. Однако в доступной литературе нами были найдены лишь единичные сообщения об этиологической роли хламидий в патологии мелких домашних животных (19, 52, 71, 72, 92, 135, 153, 182, 248).

Недостаточная изученность данного вопроса; значительный экономический ущерб, причиняемый инфекционными болезнями служебному собаководству и заводчикам собак и кошек; моральный ущерб, причиняемый владельцам при заболевании домашних питомцев; отсутствие или несовершенство методов диагностики, мер борьбы и профилактики хламидиоза явились основанием для изучения данного заболевания у домашних плотоядных.

В целях установления этиологической роли хламидий в патологии беременности самок, поражения мочеполовой сферы у самцов, в проявлениях кера-токонъюнктивитов, поражении центральной нервной системы и др., а также гибели молодняка в первые дни после рождения, нами среди поголовья домашних собак и кошек в городе Казани, были проведены эпизоотологические, клинические, серологические, патологоанатомические исследования; а также совершенствование методов диагностики и специфической профилактики хламидиозов.

При анализе эпизоотической ситуации учитывали условия содержания и кормления животных, результаты щенения самок и сохранности щенков, результаты экспертиз ветеринарных лабораторий, другие показатели и материалы. Проводились разведочные серологические исследования сывороток крови подозрительных по заболеванию хламидиозом мелких домашних животных.

В результате проведенной работы установлено, что причиной широкого распространения хламидиозов среди домашних плотоядных (собак и кошек) оказались: отсутствие эффективных средств диагностики, профилактики и борьбы с данной инфекцией; недостаточное информирование владельцев о возможности заболевания их питомцев хламидийными инфекциями; нарушение правил содержании и спаривании мелких домашних животных; бесконтрольное использование для их кормления продуктов убоя сельскохозяйственных животных и другие факторы.

По данным, полученным из разных источников, от 5 до 20% домашних плотоядных, владельцы которых обращаются к ветеринарным специалистам, имеют клинические признаки, характерные для хламидийных инфекций, и этиология их остается не выясненной. По нашему мнению и по мнению ряда авторов (71, 72, 74, 182), хламидии могут играть значительную этиологическую роль при различной патологии у домашних собак и кошек.

Лабораторная диагностика хламидиоза представлена вполне тривиальным набором методов.

Цитологический метод, основанный на визуальном исследовании прокрашенного мазка под большим увеличением светового микроскопа (х900-1500), являясь одним из наиболее старых, тем не менее, до сих пор не утратил своего значения. Достоинством цитологических методов является дешевизна и возможность одновременного выявления других инфекций; недостатком - низкая чувствительность (по разным оценкам 10-40%). Поэтому упомянутые методы используются в ветеринарной практике, в основном, как дополнительные или мониторинговые.

Культуральный метод основан на способности хламидий к размножению на перевиваемых линиях клеток млекопитающих или клеток желточных мешочков куриных эмбрионов. Культуральный метод считается "золотым стандартом" с условной чувствительностью - 100% (в действительности - не более 80%). Чувствительность остальных методов принято выражать в процентах по отношению к культуральному методу. К недостаткам метода следует отнести его трудоемкость и длительность, а в случае с мелкими домашними животными также отсутствие специальных культур клеток.

Для совершенствования диагностики хламидиоза в последние годы предложены иммуноферментные и иммунофлюоресцентные методы выявления антигена в клиническом материале. Первый из них не получил широкого распространения в ветеринарной практике из-за высокого процента ложноположи-тельных и ложноотрицательных результатов исследования. Второй в настоящее время является одним из наиболее перспективных экспресс методов диагностики заболевания. Несмотря на высокую чувствительность и специфичность, метод иммунофлуоресценции не достаточно широко используется в ветеринарных лабораториях при диагностике хламидиозов. Это было, главным образом, связано с отсутствием специальных диагностических наборов, оборудования и специалистов, а также дискредитацией метода некомпетентными лицами, использующими при исследованиях флуоресцирующие антитела с низкими показателями красящего титра и неадекватно оценивающими результаты исследований.

Следует отметить, что медицинские специалисты сравнительно давно, широко и с успехом используют РИФ для ранней диагностики хламидийных инфекций человека (119).

Недостатками указанных методов является, необходимость специального оборудования и реактивов, а также высокой квалификации исследователей.

Использование серологических методов для выявления хламидийных антител при диагностике хламидиоза у человека и животных не позволяет с достаточной степенью уверенности говорить о наличии или отсутствие данного заболевания, т.к. эти тесты не позволяют отличить наличие инфекции в настоящее время, перенесенное заболевание и вакцинный иммунитет. Кроме того, специфика паразитирования хламидий в организме хозяина обуславливает не всегда адекватную заболеванию ответную иммунную реакцию зараженного организма. В связи с этим, в настоящее время в медицинской практике имму-ноферментный метод выявления хламидийных антител используют главным образом для подтверждения диагноза установленного другими методами (119).

Общепринятым тестом для ретроспективной диагностики хламидиозов, применяемым во всех странах мира, является реакция связывания комплемента (81, 128, 130, 140 ,235, 236, 284 и другие). У нас в стране разработаны "Методические указания по лабораторной диагностике хламидийных инфекций у животных", утвержденных Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода РФ 30 июня 1999 г., где также рекомендуется применять РСК в качестве серологического метода диагностики и при этом связывание комплемента сывороткой крови в разведении 1:5 считают сомнительной реакцией, а в разведении 1:10 и более принято в качестве диагностического титра.

Для постановки реакции в нашей работе мы использовали групповидос-пецифический антиген, изготовленный по методу Боровика Р.В. с соавт. (9) в условиях лаборатории вирусологии ВНИВИ, согласно "Временных инструкций по изготовлению, контролю набора антигенов и сывороток для серологической диагностики хламидиозов сельскохозяйственных животных и набора флуоресцирующих иммуноглобулинов и контрольных сывороток для диагностики хламидиозов сельскохозяйственных животных", утвержденных ГУВ Госагропро-ма СССР 30 ноября 1987 года.

При исследовании в РСК 287 сывороток, полученных от подозрительных по заболеванию хламидиозом домашних плотоядных в диагностических титрах реагировали 38 (13,2%) животных из числа исследованных, число реагирующих колебалось в пределах 4,4-19,0% по разным группам. Эти данные подтверждают результаты исследования сывороток крови сельскохозяйственных животных (22, 130), пушных зверей и домашних плотоядных (53, 71, 92, 87, 88).

От подозрительных по заболеванию хламидиозом собак и кошек получали клинический материал. В РИФ было исследовано 48 проб, из них 20 были взяты у собак и 28 у кошек. В 30 (62,5%) случаях методом люминесцентной микроскопии в мазках-отпечатках было выявлено специфическое внутриклеточное свечение хламидийного антигена (12 у собак и 18 у кошек). В РИФ возбудитель чаще всего обнаруживался в мазках-отпечатках с конъюнктивы и со-скобах с уретры.

Обобщенные результаты исследования подозрительных по хламидиозу домашних плотоядных животных (собак и кошек) в РСК и РИФ показали, что эти методы дополняют друг друга при индикации заболевания у мелких домашних животных. Об этом говорит высокое значение суммы показателей "РСК-/ РИФ+", "РСК±/ РИФ-" и "РСК+/ РИФ-", которая составляет 33,3%. Иными словами в эту группу входят животные, у которых хламидиоз установлен одним из тестов (РСК или РИФ), причем в первом случае мы обнаруживаем антитела, а во втором антиген. Таким образом, используя комбинацию двух разных методов диагностики, нам удается выявить большее число реагирующих животных. Сочетания ретроспективных тестов и методов индикации антигена в тканях широко используется в гуманитарной медицине (119).

Следует также отметить, что для кошек сумма вышеуказанных показателей почти в два раза выше (39,3%), чем для собак (20,0%). Это, скорее всего, связано с тем, что у первых заболевание чаще проявляется конъюнктивитами, при которых циркулирующие в крови антитела образуются в небольшом количестве (общепринятые методы серологической диагностики их не обнаруживают), в тоже время генитальная форма хламидиоза у кошек, хотя и сопровождается образованием антител в диагностических титрах, не всегда протекает типично, поэтому хламидийный антиген при патологиях органов размножения малодоступен для индикации люминесцентным методом.

Учитывая высокую чувствительность, специфичность и экспрессность иммунопероксидазных методов по сравнению с РСК при выявлении антител в сыворотках крови, нами была проделана работа по разработке иммуноферментной тест-системы для ретроспективной диагностики хламидиоза у мелких домашних животных (собак и кошек). К началу наших исследований в доступной литературе имелись сведения об использовании подобных тест-систем для выявления хламидийных антител у человека и животных (15, 33, 65, 68, 103, 105, 121, 128, 129, 264, 265, 279 и другие).

Нами были испытаны различные способы получения антигенов для модельных опытов и разные варианты выполнения ИФА. При выполнении твердофазного варианта ИФА важным моментом, предшествующим самой реакции, является подготовка антигена. Именно его качеством определяется чувствительность и специфичность конкретной тест-системы, поэтому для сравнения в ИФА нами были получены и испытаны лизатные антигены хламидий штамма "Ростиново-70". В качестве детергентов мы использовали: 0,1%-ный раствор додецилсульфата натрия, 1%-ный раствор дезоксихолата натрия, 1%-ный раствор твина-80, 1%-ный раствор тритона-ХЮО, также нами была разработана оригинальная схема очистки и концентрации лизированных антигенов хламидий.

Наиболее специфичным оказался антиген, полученный из фракции собранной в 35%-ной сахарозе ступенчатого градиента, которая подвергалась обработке 1%-ным дезоксихолатом натрия. Коэффициент его специфичности в ИФА при концентрации 6 мкг/мл составлял для сывороток кошек 10,6, собак -11,8.

Полученный антиген не реагировал с гетерологичными сыворотками, содержащими антитела против микоплазам и вирусов чумы плотоядных.

Хламидийные сыворотки получали на клинически здоровых серонега-тивных беспородных собаках и кошках. В качестве антигена для иммунизации мы использовали смесь хламидий штаммов "КС-93" и "КК-99". Интервалы между введениями антигенов составляли 14-15 дней. Все полученные иммунные хламидийные сыворотки сводили в серию с таким расчетом, чтобы специфическая активность приготовленной серии сыворотки была в РСК не ниже, чем 1:40. Контрольные (отрицательные) сыворотки получали от серонегативных интактных собак и кошек. Их обработку проводили аналогично схеме получения положительных сывороток. Контрольные (отрицательные) сыворотки также объединяли в одну серию.

В качестве конъюгата мы использовали белок А, меченный пероксидазой хрена (НПО "Пептоскрин-2", г. Электросталь). Титр конъюгата определяли путем "шахматного" титрования специфического антигена и положительных хламидийных сывороток.

Кроме того, нами был подобран регламента постановки реакции. При этом мы учитывали, что иммуноферментная тест-система относится к экспрессным методам диагностики, т.е. экспозиция реагентов должна быть наименьшей. Кроме того, чрезмерное увеличение времени инкубации планшете с реагентами в термостате часто приводит к снижению коэффициента специфичности тест-системы. В тоже время мы учитывали, что короткая экспозиция приводит к появлению ложноотрицательных результатов. Оптимальным временем экспозиции сывороток оказалась инкубация планшета в термостате в течение 60 минут, конъюгата - 40 минут. Полученные нами результаты согласуются с данными полученными исследователями, которые также разрабатывали иммуноферментные тест-системы для выявления специфических антител (6, 7).

В результате исследований нами разработан набор для диагностики хламидиоза собак и кошек в ИФА путем выявления антител, включающий: сорбированный специфическим хламидийным антигеном планшет для иммунологических реакций; положительные и отрицательные контрольные образцы сывороток крови собак и кошек; конъюгат; концентрат фосфатно-солевого раствора с твином; цитратный буферный раствор с перекисью водорода; хромоген и стоп-реагент.

ИФА с использованием этой тест-системы выполняется по непрямому методу:

- планшет или необходимое количество стрипов разборного планшета один раз промывают раствором ФСР-Т;

- контрольные и исследуемые образцы разводят в растворе ФСР-Т 1:100 и вносят по 100 мкл в лунку (контрольные образцы вносят каждый в 2 лунки);

- в одну лунку не вносят ни контрольные, ни исследуемые сыворотки (контроль конъюгата);

- планшет или стрипы разборного планшета помещают во влажную камеру и инкубируют 60 минут при 37°С;

- лунки 4 раза промывают раствором ФСР-Т, остатки содержимого лунок удаляют легким постукиванием по 4-5 слоям фильтровальной бумаги;

- в каждую лунку планшета или стрипа разборного планшета вносят по 100 .> мкл рабочего раствора конъюгата, после чего планшет или стрипы помещают во влажную камеру и инкубируют 40 минут при температуре 37°С;

- лунки 5 раз промывают раствором ФСР-Т, остатки содержимого лунок удаляют легким постукиванием по 4-5 слоям фильтровальной бумаги;

- в каждую лунку планшета или стрипа вносят по 100 мкл субстратного раствора и инкубируют при комнатной температуре в темном месте в течение 10-15 минут;

- реакцию останавливают добавлением в лунки по 50 мкл стоп-реагента и проводят учет результатов ИФА.

Результаты ИФА мы регистрировали с помощью спектрофотометра Mul-tiskan, измеряя оптическую плотность (ОП) смеси реагентов в лунках при длине волны 492 нм. «0» (бланк) устанавливали по воздуху. Результат подлежал учету, если среднее значение ОП отрицательных контрблей (ОП ср. К-) не превышало 0,2 оптические единицы (о.е.), а среднее значение ОП положительных контролей (ОП ср. К+) составляло не менее 0,8 о.е. Положительными считали образцы исследуемых сывороток, ОП которых превышала критическое значение ОП (ОП крит.), которое рассчитывали по формуле: ОП крит.= ОП ср. К- + 0,2.

Сконструированная нами тест-система имеет достаточно высокий коэффициент специфичности (6,5-7,5), что позволяет регистрировать результаты анализа не только инструментально, но и визуально по интенсивности окрашивания цветной реакции ферментзависимой метки с субстратом. Положительными считали образцы, интенсивность окрашивания которых в лунках с исследуемой сывороткой отчетливо отличалась от таковой в отрицательном контроле. Интенсивность окрашивания положительного контроля при этом должна была быть достаточно выраженной.

При определении критериев оценки результатов исследования сывороток крови подозрительных по заболеванию хламидиозом домашних плотоядных о, иммунопероксидазным методом мы учитывали обобщенные данные собственных исследований, а также анализировали сообщения по данному вопросу в доступной литературе. Нашими предыдущими (87) и настоящими исследованиями установлено, что для экспериментально и спонтанно зараженных хла-мидиями собак и кошек диагностическим титром является разведение сыворотки 1:100. Такой критерий оценки позволяет в наибольшей степени избежать получения как лоноположительных, так и ложноотрицательные результатов ИФА. Многие исследователи также указывают, что ИФА на порядок более чувствителен, чем РСК (1, 36, 126, 127, 128, 130, 203, 270). Исходя из этих данных, диагностический титр иммунопероксидазного метода при индикации хламидийных антител должен составлять 1:100, т.к. в РСК положительным принят титр сыворотки 1:10.

В ИФА нами были исследованы 287 проб сывороток крови мелких домашних животных, из них 91 проба (31,7%) реагировала в диагностических титрах (1:100 и выше).

Сравнительное изучении эффективности использования РСК и ИФА для ретроспективной диагностики хламидиоза у собак и кошек показало, что совпадение результатов двух тестов отмечается в 80,1% случаев. Значение показателя "РСК отрицательно / ИФА положительно", равное 19,2% (при исследовании сывороток собак - 17,6%, кошек - 20,1%), говорит о более высокой чувствительности последней. При этом в ИФА отдельные полевые сыворотки реагировали в титре 1:1600, что говорит о высокой чувствительности теста при диагностике хламидиоза у собак и кошек. Представленные данные находятся в соответствии с результатами других исследователей (65, 229, 543, 569 и другие), которые также отмечали высокую чувствительность, специфичность и воспроизводимость ИФА, а также целый ряд преимуществ метода перед РСК (3, 130, 203, 270, 279 и другие).

Таким образом, нашими исследованиями установлена возможность применения реакции связывания комплемента и иммуноферментного анализа для ретроспективной серологической диагностики хламидиозов у домашних собак и кошек. При этом установлено, что использование в качестве диагностического теста ИФА более эффективно.

Разработанный и испытанный нами набор препаратов для выявления хламидийных антител в ИФА обеспечивал индикацию и идентификацию заболевания у спонтанно инфицированных домашних плотоядных. Кроме того, мы предлагаем использовать этот метод для оценки эффективности иммунитета при вакцинации против хламидиоза и серологического скрининга поголовья мелких домашних животных (собак и кошек).

В настоящее время не возможно представить борьбу с хламидийными инфекциями животных без применения иммуногенных препаратов. Получением вакцин активно занималась целая группа исследователей (47, 96, 109, 110, 111, 112, 117, 131, 152, 215,216, 223, 225, 239 и многие другие).

В нашей стране созданы и внедрены в ветеринарную практику вакцины против хламидиозов крупного и мелкого рогатого скота, свиней. В последние годы разработаны вакцины против хламидиозов пушных зверей, собак и кошек, однако их качество не всегда удовлетворяет требованиям ветеринарных специалистов.

Нами была проделана работа по разработке биопрепарата для профилактики хламидиоза плотоядных животных. Для этого была использована технология получения инактивированной эмульсионной вакцины, разработанная Хамадеевым Р.Х. с соавт. (ТУ 10-07-253-91).

Были подобраны: иммуногенные штаммы хламидий, выделенные от пушных зверей, собак и кошек; режимы их инактивации; эмульгаторы, дающие удобную для применения препарата консистенцию и не обладающие повышенной реактогенностью в организме. Проведены лабораторные и производственные испытания вакцины против хламидийных инфекций плотоядных животных.

Учитывая достаточную иммуногенность штаммов хламидий "БЛ-84", "ПП-87", "КС-93" и "КК-99" (соответственно возбудителей хламидиозов лисиц, песцов, собак и кошек), они были использованы при изготовлении вакцинного препарата.

По методу, описанному Хамадеевым Р.Х. с соавт. (108) получена биомасса вышеуказанных штаммов. Разработана схема очистки и концентрации элементарных телец хламидий путем дифференциального и на градиенте сахарозы центрифугирования. Получены гомогенная и инактивированная взвесь хламидий с высоким содержанием специфического антигена, пригодная для приготовления препарата.

На основе двух эмульгаторов: легкого минерального "вакцинного" масла, изготовленного на Ангарском нефтехимическом заводе (43% в конечном продукте) и безводного ланолина (7% в конечном продукте) получена вакцина, которая имела стабильную при длительном хранении сметанообразную консистенцию и при температуре 30-37°С легко набиралась в шприц и вводилась животным подкожно и внутримышечно. Применение указанного масляного адъ-юванта повышает иммуногенность вакцин против хламидиоза (109).

В условиях лаборатории было установлено, что полученная вакцина безвредна и стерильна; при подкожном и внутримышечном введении обеспечивает у 100% морских свинок формирование иммунитета.

При вакцинации белых мышей препарат защищал от внутрибрюшинного заражения штаммом "250" 83,3-86,7% лабораторных животных. Иммунизированных белых мышей заражали штаммом "250", т.к. его летальность для белых мышей при внутрибрюшинной контаминации составляет 100%, что облегчает учет иммуногенных свойств вакцинного препарата. Использование морских свинок и белых мышей для оценки соответственно антигенных свойств и им-муногенности противохламидийных биопрепаратов предлагали и другие исследователи (109, 206, 215).

Кроме того, антигенность вакцины против хламидиоза плотоядных животных изучалась в условиях лаборатории на собаках и кошках путем анализа сероконверсии у подопытных животных через 2 и 4 недели после введения биопрепарата. Было установлено, что однократная вакцинация вызывает у домашних плотоядных накопление в сыворотках крови хламидийных антител, выявляемых в РСК и ИФА. Через 4 недели после инъекции титры антител в РСК и ИФА составили при внутримышечном введении 1:10-1:80 и 1:1001:1600 соответственно у 100% животных. В этом плане наши результаты согласуются с данными других исследователей (3, 178). Аналогичная картина наблюдалась при изучении сероконверсии после вакцинации против лептоспиро-за (4).

Для оценки иммуногенности вакцинных препаратов, в том числе и против хламидиоза, наравне с серологическими методами и экспериментальным заражением, используют и гистологические исследования иммунокомпетент-ных органов привитых животных.

Проведенные исследования свидетельствовали, что микроморфологические изменения в органах животных разных видов не имели резких отличий.

При микроскопических исследованиях гистологических срезов, приготовленных из органов морских свинок, собак и кошек, иммунизированных инактивированной эмульсионной вакциной против хламидиоза плотоядных животных (ВНИВИ), были обнаружены потоморфологические изменения, которые свидетельствували, что данный биопрепарат оказывает достаточно выраженное иммунологическое действие на организм, что подтверждается выраженными лимфоидно-гиперпластическими процессами в иммунокомпетентных органах.

Кроме того, мы отмечаем, что вакцина обладает и умеренными реакто-генными свойствами, которые вполне допустимы и не приводят к развитию необратимых процессов в органах и тканях иммунизированных животных.

С целью сравнительного изучения эффективности отечественных биопрепаратов против хламидиоза кошек и собак в условиях лаборатории нами была проведена иммунизация котят 3-4 месячного возраста и щенят 2,5-4 месячного отечественных противохламидийными биопрепаратами для мелких домашних животных: ассоцированной вакциной "Мультифел-4" против пан-лейкопении, калицивироза, гервесвироза и хламидиоза кошек (НПО "Нарвак"), вакциной против хламидиоза пушных зверей, собак и кошек "Хламикон" (ЗАО "Ветзвероцентр") и вакциной против хламидиоза плотоядных животных (ВНИВИ).

Нами установлено, что титры хламидийных антител у подопытных котят после введения вакцины против хламидиоза плотоядных животных (ВНИВИ) были несколько выше, чем после применения "Мультифел-4", однако эти показатели отличались недостоверно (Р>0,1). У групп котят и щенков, вакцинированных вакциной "Хламикон" уровень специфических антител был достоверно

102 ниже такового после иммунизации вакциной против хламидиоза плотоядных животных (ВНИВИ).

При испытании опытной серии вакцины в условиях ветеринарной клиники мы провели иммунизацию собак и кошек, содержащихся в домашних условиях. Было вакцинировано 24 собаки и 32 кошки. Препарат вводили однократно внутримышечно в дозе 0,5 мл с массой тела до 10 кг и однократно внутримышечно в дозе 1 мл с массой тела свыше 10 кг. Исследование сывороток крови иммунизированных животных спустя 30 дней после вакцинации показало высокую иммуногенность биопрепарата.

В заключение следует подчеркнуть, что проведенные нами исследования позволили: установить распространение хламидийных инфекций среди домашних плотоядных животных; усовершенствовать средства и методы диагностики хламидиоза у собак и кошек; разработать вакцину для профилактики заболевания у плотоядных животных и доказать её эффективность.

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Шамсутдинова, Нажия Вагизовна, 2002 год

1. Багдонас И.И., Тамашаускене Б.И. Внутрикожная проба □ как диагностический тест хламидийной пневмонии телят / Матер, конф.: "Вопр. групп, профилактики заболеваний животных и птиц". Вильнюс, 1986. - С.39-40.

2. Багдонас И.И., Тамашаускене Б.И. Внутрикожная проба — как диагностический тест хламидийных пневмоний телят / Тезисы докладов Межреспубликанской конференции: "Вопр. групп, профилактики заболеваний животных и птиц". Вильнюс, 1987. - С.39-40.

3. Белов А.Д., Данилов Е.П., Дукур И.И. и др. Болезни собак. М.: Агро-промиздат, 1990. - 368с.

4. Белоусов В.И., Клюкина В.И., Елисеев А.К., Кочиш И.И. Получение компонентов ИФА для выявления специфических антител к лептоспирам, сальмонеллам, кампилобактериям и хламидиям / Вирусн. болезни с/х животных. Владимир, 1995. - С.74.

5. Белоусов В.И., Клюкина В.И., Кочиш И.И. Разработка набора для иммуноферментной серодиагностики хламидиоза овец / Вирусн. болезни с/х животных. Владимир, 1995. - С.76.

6. Бескина С.Р., Панкратова В.Н., Попов В.П. Индикация антигенов гальпро-вий (хламидий) иммунопероксидазным методом / Сб. науч. тр.: Экология вирусов. Баку, 1976. - С.208-209.

7. Боровик Р.В., Хамадеев Р.Х., Гаффаров Х.З., Шафикова Р.А. Получение антигена энзоотического аборта овец с помощью РСК // Ветеринария. -1975. №6. - С.51-53.

8. Борисенко К.К. и другие. Диагностика, лечение и профилактика заболеваний, передаваемых половым путем. Методический материал. - М.: Асс. «Сенам», 1997.-С. 53.

9. Бортничук В.А., Попович Г.Г. Выделение хламидий от сельскохозяйственных животных и их идентификация // Микробиол. журн. 1981. - Т. 43. - № 2. — С. 183-187.

10. Бортничук В.А. Хламидиоз свиней. Киев: Урожай, 1991. - 192с.

11. Брагина Е.Е., Дмитрйев Г.А. Морфологическое обоснование персистент-ного или латентного течения урогенитального хламидиоза / Тез. докл.: Рос. съезда дерматол. и венерол. Казань, 1996. - С.106.

12. Бутин B.C., Тарасова Э.К., Сосновская А.И. Эпизоотология болезней сельскохозяйственных животных. Новосибирск, 1983. - С.74-76.

13. Ветеринарное Законодательство. Под общей редакцией Третьякова А.Д. // М.: «Агропромиздат», 1989.-Т-4. С.391.

14. Вишняков И.Ф., Цыбанова Л.Я., Молчанова Т.В. Шшуноферментный анализ при диагностике инфекционных болезней сельскохозяйственных животных / Вопр. вет. вирусол., эпиз. и микроб.: Тез. докл. научн. конф. Покров, 1983. - С.66-76.

15. Вишнякова Л.А. Иммунология орнитоза: Автореф. дис. . докт. мед. наук. Ленинград, 1974. - 33с.

16. Вустина У.Д., Воробьёва В.Я. Источники инфекции клеточных пушных зверей / Экспресс-информация Казахского НИИНТИ. Алма-Ата, 1979. -С.1-10.

17. Вяянанян П. Диагностика хламидийных инфекций / В. сб.: Диагностика и лечение хламидийных инфекций. .М., 1987. - С. 18-21.

18. Гаффаров Х.З. Выделение вируса из группы пситтакоза-лимфогранулемы от телят, больных бронхопневмонией / Ученые записки КВИ. 1969. - № 104. -С.47.

19. Гаффаров Х.З., Хамадеев Р.Х., Шафикова Р.А. и др. Итоги широкого производственного испытания диагностикума хламидийного аборта овец / Болезни овец и меры борьбы с ними: Тез. докл. Всесоюз. конф. Чита, 1980.-С.33-36.

20. Гольдин Р.Б., Красник Ф.И. Применение флуоресцирующих антител для обнаружения вируса орнитоза // Вопр. мед. вирусол. 1964. - №10. - С.55-62.

21. Горовиц Э.С., Тимашева О.А. Использование реакции непрямой гемагг-лютинации для изучения орнитозной инфекции // Ж. Микробиол. 1976. -№ 12. - С.120-124.

22. Горовиц Э.С., Тимашева О.А. Использование РИГА для изучения орнитозной инфекции // Ж. Микробиол. эпидемиология и иммунобиология.-1978.-№2.-С.68-71.

23. Горовиц Э.С., Тимашева О. А., Катаева Г.В. Разработка и применение эрит-роцитарного диагностикума для выявления хламидийных инфекций усельскохозяйственных животных с помощью реакции гемагглютинации // Тез. докл. всесоюзн. конф. М., 1978. - С.47-49.

24. Горовиц Э.С., Тимашева О.А. Использование реакции непрямой гемагглютинации при изучении орнитозной инфекции // Ж. Микробиол., эпидемиология и иммунобиология. 1979. - № 3. - С. 108-112.

25. Горовиц Э.С., Тимашева О.А. Использование иммунофлуоресцентной реакции микроагглютинации для изучения орнитозной инфекции // Ж. Микробиол. эпидемиология и иммунобиология. 1981. - №9. - С.67-70.

26. Горовиц Э.С., Федоров В.Г., Елькин В.Д. и др. Выявление иммунологических сдвигов к хламидиям у больных с урогенитальной патологией // Ж. Микробиол. эпидемиология и иммунобиология. 1984. - №2. - С.89-91.

27. Громыко Л.Г., Терских И.И. Обнаружение и локализация антигена возбудителя орнитоза и трахомы в клетке // Вопр. вирусол. 1966. - №4. - С.95-99.

28. Громыко Л.Г., Терских И.И. Применение иммуноферментного метода (ELISA) при хламидийных инфекциях // Вопр. вирусол. 1981. - № 2. -С.245-248.

29. Гуненков В.В., Шарабрин О.И., Коромыслов И.Г. Диагностика иммуно-ферментным методом короновирусной инфекции крупного рогатого скота //Вестн. с/х науки. 1985. - № 11. - С. 122-124.

30. Домейка М.А. ELISA для индикации антител и антигена хламидий энтерита и пневмоний телят // Бюлл. ВНИИ экспер. вет. 1985. - № 58. - С.58-61.

31. Домейка М.А., Абрамова Л.Н., Мальцева Н.Н. , Терских И.И. Использование иммуноферментного метода для исследований антихламидийных сывороток // Вопр. вирусол. 1985. - № 4. - С.474.

32. Домейка M.A. Биологическая характеристика хламидий возбудителя энзоотического энтерита телят. Автореф. дис. . канд. вет. наук. - Тарту, 1986. -25с.

33. Домейка М.А., Терских И.И. Применение реакции ELISA для индикации антител и антигена хламидий энтерита и пневмонии телят / Вопр. груп. профилакт.заболеваний животных и птиц: Тез. докл. Межресп. конф. -Вильнюс, 1987.-С. 46-48.

34. Евдокимова Н.С. Выделение возбудителя орнитоза методами вирусолог, исследований / Материалы 45-й Научн. конф. мед. ин-та. Вып.2. - Алма-Ата, 1976. - С.27-29.

35. Евстифеев В.В., Хамадеев Р.Х., Хусаинов Ф.М., Равилов А.З. Выявление хламидийных антител и антигенов в РИГА / Матер. Междунар. науч. конф., посв.125-летию академии. Казань, 1998. - Ч. 1. - С.37-38.

36. Ильинский Ю.А. Орнитоз. Клиника, диагностика, лечение. М., Медицина. - 1974.

37. Ильинский Ю.А., Воробьева В.В., Горовиц Э.С., Тимашева О.А. Уровень спецефической сенсибилизации у больных орнитозом // Матер, всесоюзн. конф. Львов, 1988. - С.123-124.

38. Караваев Ю.Д., Дзиова Н.Н., Крюков Н.Н. Сравнительное изучение чувствительности РСК и микроагглютинации при диагностике энзоотического аборта овец // Бюлл. ВИЭВ. 1971. - Ч. И. - С.77-78

39. Караваев Ю.Д. Агглютинирующая активность штаммов возбудителя, выделенных при массовых абортах овец // Бюлл. ВИЭВ. 1972. - № 14. С.62-63.

40. Караваев М.А., Шаткин А.А., МакароваМ.А. и др. Профилактика и меры борьбы с болезнями овец. Махачкала ,1973.-С. 150-152.

41. Караваев Ю.Д., Налетов Н.И. Вакцинопрофилактика хламидиозного аборта овец / Тр. ВИЭВ. 1981. - № 53. - С.95-102.

42. Караваев Ю.Д., Исатаева Ш.И., Налетов Н.И. Сравнительное изучение РСК, РНГА и РНИФ при диагностике хламидиозного аборта овец // Бюлл. ВНИИ экспер. вет. 1986. - № 62. - С.14-18.

43. Караваев Ю.Д. Хламидиозный аборт овец (этиология, диагностика, специфическая профилактика). Автореф. дис. . докт. вет. наук. М., 1987. -39с (ДСП).

44. Караваев Ю.Д., Налетов Н.И., Калугина И. Хламидиозы меры борьбы и профилактики // Ветеринарная газета. - 1993. - № 26. - С.4.

45. Ковалев В.Л. Схема выделения хламидий от животных / Труды Тадж. НИВИ. Душанбе, 1077. - Т.7. - С.11-14.

46. Ковалев В.Л., Андреева Р.Х., Степанова С.Н. Дикие животные резервен-ты возбудителей хламидиозов / Вопросы природ, очаговости болезней. -1978.-№9.-С.138-143.

47. Ковалев В.Л., Андреева Р.Х. Экспериментальный хламидиоз собак / Тр. ТаджНИВИ. Душанбе, 1979. - Т. 9. - С.9-14.

48. Колкова Н.И., Мартынова В.Р. К вопросам диагностики хламидийных инфекций//Ж. Клин. Лаб. диагн. 1998. - № 2. - С.20-21.

49. Кравченко Т.Ф. Серологическая диагностика при хламидиозе свиней / Матер. Всесоюзн.конф.: Эпизоотол., эпидемиол., средства диагн., терапии и спец.профил.инф.бол., общих для чел. и жив. Львов, 1988. - С.114-115.

50. Кузьменко В.П. Особенности взаимодействия хламидий с клетками //Микробиол.журнал.-1980.-№2.-С.250-259.

51. Курбанов И.А., Попова О.М., Терских И.И., Гизатуллин Х.Г. Возбудители группы OJ1T в этиологии абортов коров // Ветеринария. 1973. - № 7. -С .36-39.

52. Кутлин А.В., Шаткин А.А., Дробышевская Э.И. Иммунодиагностические препараты на основе моноклональных антител к Chi.trachomatis // Ж. Мик-робиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1996. - № 6. - С.42-44.

53. Манолов А.Д. Твердофазные радиоиммунные и иммуноферментные методы для количественного экспресс-анализа в микробиологии // Ж. Микро-биол., эпидемиол. и иммунобиол. 1985. - № 4. - С.100-107.

54. Мартынова Р.В., Шаткин А.А., Щербакова Н.И. Диагностическое выделение гальпровий (хламидий) в куриных эмбрионах при трахоме, паратра-хоме и другой этиологически родственной патологии / Гальпровиозы (хламидиозы) человека и животных. М., 1979. - С.36-40.

55. Мартынова Р.В., Колкова Н.И., Шаткин А.А. Хламидии и хламидиозы: клиника, биология и диагностика // Рос. мед. вести. 1997. - Т.2. - № 3. -С.49-55.

56. Матвеев Л.В. Болезни собак и кошек. Н. Новгород, 1997. - 400с.

57. Медицинская микробиология / Под редакцией Покровского В.И., Поздеева O.K. М.: ГЭОТАР МЕДИЦИНА, 1999 г.

58. Митрофанов П.М. Меры борьбы с хламидиозом крупного рогатого скота // Ветеринария. 1980. - № 10. - С.33-34.

59. Мникова Л.А., Авилов А.С., Гоголев М.М. Применение иммунофермент-ного анализа в диагностике ротавирусной инфекции крупного рогатого скота// Бюлл. ВНИИ экспер. вет. 1985. - № 58. - С.26-29.

60. Мошковский Ш.Д. Природа вирусов и их место в системе живого // Вестн. АМН СССР. 1963. - Т.1. - С.37-39.

61. Муравьева Т.В. Применение метода флуоресцирующих антител для диагностики некоторых вирусных заболеваний глаз (трахома, паратрахома, герпес ). Автореф. дис.канд. мед. наук. М., 1968. - 22 с.

62. Непоклонова И.В., Васильев А.В. ИФА для выявления вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота и антител к нему // Бюлл. ВНИИ экспер. вет. 1985. - № 58. - С.30-35.

63. Николаева А.В. Об энзоотической пневмонии свиней, вызываемой вирусом из группы орнитоза лимфогранулемы - трахомы / Вирусные болезни сельскохозяйственных животных: Матер. I Межвузовской вет. вирусол. конф.-М., 1970. - с.227-228.

64. Новохатский А.С., Носик Д.Н., Литвинович Н.Е., Малахова И.В. Иммуно-ферментный анализ моноклональных антител на твердой фазе инфицированных клеток // Вопр. вирусол. 1986. - № 4. - С.440-444.

65. Обухов И.Л. Хламидиоз кошек. Приложение к журналу «Новости звероводства». М., 1994. - 92 с.

66. Обухов И.Л. Обнаружение Chi. psittaci при конъюнктивитах у собак / Сб. науч. тр. Всерос. ГНИИ контроля стандартизации и сертификации вет.препаратов. 1996. - Т.57. - С.45-51.

67. Обухов И.А. Хламидийные инфекции животных и птиц // Ветеринария. -1996. -№ 10. С. 19-26.

68. Обухов И.Л. Диагностика хламидийной инфекции у кошек // Ветеринария. 1997. -№5. -С.49-50.

69. Обухов И.Л. Молекулярный механизм паразитизма хламидий и их внутриклеточное развитие // С/х биол. Сер. Биол.животных. 1997. - № 2. - С.86-98.

70. Обухов И.Л., Груздев К.Н., Панин А.Н. Использование полимеразной цепной реакции в практических ветеринарных лабораториях // Ж. Ветеринария. 1997.-№ 2. - С.24-27.

71. Обухов И.Л., Яковенко М.В. Разработка праймеров для детекции хламидий // Ж. Ветеринария. 2000. - №5. - С.22-23.

72. Овчинников М.Н., Дилекторский В.В. Ультратсруктура возбудителей венерических заболеваний и ее клиническое значение. М.: Медицина, 1986. -С.175.

73. Осидзе Д.Ф. Неориккетсиозы / Малоизвестные заразн. болезни жив. М., 1973. -С.164-183.

74. Попов B.JI., Бескина С.Р., Шаткин А.А. Электронно-микроскопическое определение локализации группоспецифического антигена гальпровий (хламидий) прямым иммунопероксидазным методом // ЖМЭИ. 1976. - № 12. -С.70-73.

75. Попов B.JL, Бескина С.Р., Панкратова В.Н. Иммунологические методы диагностики хламидиозов сельскохозяйственных животных / XXII Всемирный вет. конгр.: Резюме (доклады и сообщения). М., 1979. - Т.З. - С.53-57.

76. Попов B.JI. Цикл развития и клеточный цикл и хламидий / Хламидии (гальпровии) и хламидиозы. М., 1982. - С. 16-17.

77. Попович Г.Г.Изучение антигенов полученных при помощи ультразвуковой дезинтеграции из* хламидий, в перекрестных РСК // Микробиол. журн. 1978. - Т. 40. - №4. - С.477-479.

78. Попович Г.Г. Антигенные свойства хламидий разного происхождения // Ж. Микробиол. 1978. - № 1. - С.69-72.

79. Попович Г.Г. Оценка серологических методов диагностики хламидиозов // Микробиол. журн. 1981. - Т.43. - № 2. - С.188-192.

80. Равилов Р.Х., Хамадеев Р.Х., Алимов A.M. Рекомендации по диагностике, профилактике и лечению хламидиоза домашних плотоядных животных, утвержденные Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода РФ 18 сентября 1998 г.-5с. (5/3).

81. Равилов Р.Х. Хламидиоз плотоядных животных. Автореф. дис. . докт. вет. наук. - Казань, 1999. - 28с.

82. Равилов Р.Х. Хламидиоз пушных зверей, собак и кошек. / Материалы VIII международного конгресса по ветеринарной медицине мелких домашних животных. М., 2000. - С. 214-216.

83. Равилов Р.Х., Гаффаров Х.З., Хамадеев Р.Х. Современные методы диагностики хламидиозов животных и птиц // Ж. Ветеринарный врач. №3. -2000.-С. 40-52. (12/4).

84. Равилов Р.Х. Диагностика, профилактика и лечение хламидиоза собак и кошек. / Ученые записки КГАВМ. Казань, 2002. - С. 49-57.

85. Руководство по эпидемиологии инфекционных болезней / Под. ред. В.И. Покровского. М., 1993. т.1: 357-366.

86. Ременцова М.М., Постричева О.В., Рыбалко С.И. Антропозоонозы в звероводческих хозяйствах. Алма-Ата: Наука, 1983.

87. Сайдуллин Т.С. Статистическая обработка результатов серологических исследований //Ветеринария. 1981. - № 7. - С.62-64.

88. Сербезов В., Огнянов Д., Матова Б. Выявление вируса орнитоза методом флуоресцирующих антител при помощи сывороток овец, содержащих антитела к вирусному аборту // Ж. гигиены, эпидемиол., микробиол., имму-нолог.-1965.-9.-№2.-С. 225-227.

89. Терских И.И. Орнитоз в СССР. Автореф. дис. . докт. мед. наук. - М., 1957.

90. Терских И.И. Возбудитель орнитоза и другие представители хламидиоза // Вестн. АМН СССР. 1964. - № 3. - С.67-78.

91. Терских И.И., Громыко А.И. Вопросы патогенеза и механизм заражения при орнитозе //Вопр. мед.вирусол. Вып.Х. - 1964. - С.71-76.

92. Терских И.И. Беклешова А.Ю., Попова О.М. Культивирование вируса ор-нитоза в культуре клеток и приготовление тканевого диагностикума для кожной пробы // Вопр. мет. вирусол. 1964. - № 10. - С.95-100.

93. Терских И.И., Курбанов И.А. Об этиологии аборта коров / Акт. вопр. вет. вирусол. М., 1967. - С.28.

94. Терских И.И. Орнитоз и другие хламидийные инфекции. М.: Медицина, 1979.

95. Токаревич К.Н. Опыт серодиагностики орнитозной инфекции при помощи флуоресцентного метода // Научн. труды Ленинградского института эпидемиологии и микробиологии им. Пастера. 1963. - Т. 25.-С.245-250.

96. Умнова Н.С., Желудков М.М., Павлова И.П., Шаханина К.Л. Выявление антигенов возбудителя бруцеллеза иммуноферментным методом // Ж. микробиол., эпидем. и иммунобиол. 1987. - № 9. - С. 103-107.

97. Фраткин В.А. Реакция нейтрофилов крови как показатель инфекционной и лекарственной аллергии // Сов. медицина. 1962. - № 9. - С.41-43.

98. Хазипов Н.З., Тюрикова Р.П., Нуруллин А.А. Метод твердофазного анализа для выявления туберкулезных микобактерий в суспензиях / Диагн., профилакт. и методы борьбы с туберкулезом животных. Казань, 1985. -С.98-101.

99. Хамадеев Р.Х. Изучение энзоотического аборта овец в Татарской АССР и усовершенствование методов лабораторной диагностики этого заболевания: Автореф. дис. канд. вет.наук. Казань, 1975. - 26с.

100. Хамадеев Р.Х. Методы лабораторной диагностики / Хламидиозы сельскохозяйственных животных. М.: Колос, 1984. - С. 152-192.

101. Хамадеев Р.Х., Гаффаров Х.З., Равилов А.З. Способ получения концентрированной биомассы хламидий: Авт. свид. № 1460786. 1988.

102. Хамадеев Р.Х. Хламидиозы рогатого скота и свиней. Автореф. дис. . докт. вет. наук. - Казань, 1991. - 40с.

103. Хамадеев Р.Х., Равилов А.З., Хусаинов Ф.М. Итоги'производственных испытаний вакцины против хламидиоза крупного рогатого скота / Тез. докл.науч.практ.конф. по проблемам ветер, и животновод. Казань, 1994. -С.26-27.

104. Хамадеев Р.Х., Хусаинов Ф.М., Равилов А.З. Разработка и испытание по-лиштаммовой вакцины против хламидиоза крупного рогатого скота / Тез. докл.науч.-практ.конф.по проблемам ветер, и животноводства. Казань, 1994. - С 28-29.

105. Хамадеев Р.Х., Хусаинов Ф.М., Равилов А.З. Разработка инактивирован-ной эмульсионной вакцины против хламидиоза свиней // Вирусн. болезни с/х животных. Владимир, 1995. - С.151.

106. Хамадеев Р.Х., Гумеров В.Г., Угрюмова B.C. и др. Разработка ассоциированной вакцины против парагриппа-3, ИРТ и хламидиоза крупного рогатого скота / Тез. докл.респ.науч.-практ.конф. по актуальным вопр.ветерин. и зоотехнии. Казань, 1996. - С.53.

107. Хамадеев Р.Х., Хусаиов Ф.М. Оценка эффективности полиштаммовой вакцины против хламидйоза крупного рогатого скота в производственных условиях / Тез. докл.респ.науч.-произв.конф. по актуальным проблемам ветеринарии и зоотехнии. Казань, 1996. - С. 51.

108. Хамадеев Р.Х., Хусаинов Ф.М., Равилов А.З. Вакцина против хламидиоза крупного рогатого скота // Ветеринария. 1996. - № 6. - С.22-24.

109. Хамадеев Р.Х., Равилов А.З. Возбудители хламидиозов сельскохозяйственных животных и их патогенность для человека // Журн. микробиол. -1997. -№ 1. С.99-101.

110. Хамадеев Р.Х., Хусаинов Ф.М., Равилов А.З., Магзянов Ф.З., Евстифеев В.В. Профилактика хламидиоза в условиях промышленного свиноводства / Матер. Межд. науч. конф., посвящ.125-летию Казанской вет. академии. -Казань, 1998. 4.1. - С.99-100.

111. Хисматуллина Н.А., Зуева Н.Я., Бусыгин К.Ф., Юсупов Р.Х., Новошинов Г.П. Диагностический препарат для иммуноферментного анализа антигена вируса бешенства / Актуальн. пробл. вирусол.: Тез. докл. конф. М., 1985. - С.174.

112. Хламидиоз (клиника, диагностика, лечение): Методические рекомендации /Под ред. Серова В.Н., Краснопольского В.И., Делекторского В.В. и др. -М.: Патент, 1999. 22с.

113. Хламидиозы сельскохозяйственных животных / Под ред. Хазипова Н.З. и Равилова А.З. М.: Колос. - 1984. - 223с.

114. Хусаинов Ф.М., Хамадеев Р.Х., Равилов А.З., Хисматуллина Н.А. Использование иммуноферментного анализа для диагностики хламидиоза свиней / Вирусн. болезни с/ животных. Владимир. 1995. - С.67.

115. Червонский В.И., Попова О.М. Антиген для реакции связывания комплемента при орнитозе-пситтакозе // Вопр. вирусол. 1959. - № 1.

116. Ш6$кйк А.А., Бескина Р.С., Панкратова В.Н. и др. Индикация антигенов гальпровий (хламидий) прямым иммунопероксидазным методом // Ж. Микроб., эпидемиол.* иммунол. 1976. - № 9. - С.74-78.

117. Шаткин А.А. Гальпровии (хламидии) и вызываемая ими патология // Гальпровиозы (хламидиозы) человека и животных. М., 1979. - Вып.1. -С.5-12.

118. Шаткин А.А. Основные принципы лабораторной диагностики гальпровио-зов (хламидиозов) / Гальпровиозы (хламидиозы) человека и животных. -М., 1979.-Вып.1.-С.25-36.

119. Шафикова Р.А., Гаффаров Х.З., Равилов А.З. Выявление антител к возбудителю хламидиозного аборта овец в РЭМА / Сб. науч.тр. КВИ: Актуал. вопр.инф.патол.в промышл.животн. Казань, 1987. - С.35-40.

120. Шафикова Р.А., Гаффаров Х.З., Равилов А.З. Диагностика эпизоотического аборта овец реакцией энзиммеченных антител / Науч. основы технол. ипромыш. произв. вет. биол. преп.: Тез. докл. III Всесоюзн. конф. М., 1987.- С.204-206.

121. Шафикова Р.А., Равилов А.З., Гаффаров Х.З. Новое в диагностике хламидиозного аборта овец / Тез. докл. рес. науч.-произв. конф. Казань, 1989. -С.4.

122. Шафикова Р.А. Иммунобиологическая характеристика хламидий, усовершенствование методов и средств лабораторной диагностики хламидиозов.- Автореф. дис. докт. вет. наук. Казань, 1991. - 38с.

123. Щербань Г.П., Фирсова Г.Д. Хламидиоз свиней, меры борьбы с ним / Тез. докл. Всесоюзн. науч.-исслед. конф.: Профилакт. желуд.-кишеч. и респир. болезн. свиней. 1978. - С.53-54.

124. Alexander E.R., Wang S.P., Grayston J.T. Father classification of TRIC agents from ocular trachoma and other sources by the mouse toxicity prevention test // Am. J. Ophthal. 1967. - N63. - P. 1469-1478.

125. Armstrong J.A., Valentine R.C., Filds C. Structure and replication of the trachoma agent in cell cultures, as shown by electromicroscopy // J. Gen. Microbiol. 1963. - N30. - P.59-73.

126. Babudieri B. The slide microagglutination tests in the field of Rickettsial and viral serology. Its Advantages and Limitations // Path. Microbiol. 1961. - N24. -P. 11-20.

127. Baker J.A. Comments in feline pneumonitis // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1971. -N214. -P.250-259.

128. Barron A.L., Collins A.R. Studies on trachoma agent by double diffusion gel precipitation //Amer. J. Ophthal. -1967. -63. -p. 1437/461-1491/465.

129. Barron A.L., Gaste P.G., Paul В., Page L.A. Detection of chlamydiae antibodies in animal sera by double diffusion in gel //Appl. Microbiol. -1972. -29, #4.-P.770-774.

130. Becker J. The Molecular Biology of Trachoma Agent // J. Isr. Med. 1972. -N8. - P.l 134-1137

131. Bedson S.P., Bland J.O. Morphological study of the psittacosis virus, with a description of the developmental cycle // Brit. J. Exp. Path. 1932. - N13. - P.461-466.

132. Bedson S.P Immunological studies with vims of psittacosis // Brit. J. Exp. Path. 1935.-N14.-P.165-170.

133. Bedson S.P The PVL group of viruses // Brit. Med. Bull. V.9. - N3. - P.226-230.

134. Beer I. Untersuchungen an und mit romplement bilden den Antigen des Vi-rusabortus Schafe // Zbl. Vet. Med. 1958. - V.5. - N4. - S.305-328.

135. Beer I. Der Virusabort des Schafes // Mh. Vet. Med. 1961. - V. 16. - N1. - P.l -5.

136. Beer J. Experimented Untersuchungen uber die Diagnostik der Virus-aborts der Schafe mit allergishen Intracutantesten // Arch. Exp. Veterinarmed. -1958.-12.-S. 384-391.

137. Belden E.L., Mckercher D.G. Passive hemagglutination test for bovine chlamydial abortion // Infec. and Immun. 1973. - 7. #2.-P. 141-146.

138. Benedict A.A.,0'brien E. Antigenic studies on the psittacosis-lymphogranuloma venereum group of viruses. II. Characterisation of complement fixing antigens extracted with sodium lauril sulfate //J. Immunol.-1956.-76,#4.-P.293-300.

139. Blanco L.A., Barrera P.J., Macrotegui M.A. Ultrastructura de una chlamydia de origen bovino // An. Inst Nac. Investig. Agr. Ser.: Hig. Sanid anim. 1975. -N2. - P.37-55.

140. Bugdeman S., Teichert C., Ahlin A. et al. Influence of'storing urogenital specimens at 20° before testing by enzyme amplified immunoassay // Geniourin Med. 1989. - V.65, N2 - P 92-95.

141. Caldwell H.D., Kromhout J., Schachter J. Purification and partial characterization of the major outer membrane protein of Chi. trachomatis // Infect. Immunol. 1981.-N31.-P.l 161-1176.

142. Caldwell H.D., Judd R.C. Structural analysis of chlamydial major outer membrane proteins // Infect. Immunol. 1982. - N38 - P.960-968.

143. Carbolos D.S., Jesus S., Francoise В., Armel S., Annie R. Protective immunity against Chi. psittaci serotype 1 strains // Infec. Dis. Obestet. and Gynecol. -1996. V.4. - N3 - P.197-198.

144. Cello R.M. Microbiological and immunologic aspects of feline pneumomitis // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1971. - N158. - P.932-938

145. Cevenini R., Rumpianesi F., Donati M., Sarov I. A rapid immunoperoxidase assay for the detection of specific IgG antinodies to Chlamydia trachomatis //J. Clin. Pathol. 1983. - 36, #3.-P.353-356.

146. Charton A. Chlamydioses des ruminants (bovine, ovine, caprine): etudes ex-perimentales. 2. Composition polypeptidique des corps elementaires de soches de diverses origines // Bull. Acad. Vet. Fr. 1976. - V.49. - N4. - P.401-408.

147. Chassey D., Davies P., Dawson M. Immunoperoxidase detection of chlamydia ovis in experimentally infected cell culture // Brit. Vet. J. 1981. - V. 13 7 - N6.- P.634-638.

148. Chiba N., Arikawa J., Takaschima I., Hashimoto N. Isolation and serological survey of chlamydioses in feral pigeons and crows in Horraido // Jap. J. Vet. Sc.- 1984. V.46 - N2. - P.243-245.

149. Christensen P.M., Nolkert M. Two complement fixing antigens from infected yolk sacs. II. The nature of the virus antigen and its relation to phosphatide antigen//Acta Path. Microbiol. Scand.- 1955.-V.37.-N.3.-P.219-224.

150. Christiansen G., Ostergaard L., Birkelund S. Molecular biology of the Chi. pneumoniae surface // Scand. J. Infect Dis. 1997. Suppl. N104. - p.5-10.

151. Colon J.I. The role of folic acid in the metabolism of members of the psittacosis group of microorganisms // Ann. N.Y. Acad. Sc. 1962. - N98. - P.243.

152. Cutlip R.S. Electron microscopy of cell cultures infected with a chlamydial agent causing polyartritis of lambs // Infect. Immunity. 1970. — N1. - P.499-502.

153. Darougar S., Dwyer R., Treharne J.D. et al. A comparison of laboratory methods of diagnosis of chlamydial infection // Excerpta Med. Amsterdam, 1971. -P.445-460.

154. Darougar S., Treharne J.D. Cell culture methods for the isolation of Chi. trachomatis : a review / Chlamydial infection Elsevier Biomedical Press, 1982. -P.265-274.

155. Dhingra P.N., Agarwal L.P., Mahajan V.M. et al. Chlamydia group antigen // Zbl. Vet.Med. 1981. -B.28. -N4. -P.336-340.

156. Dhir S.P., Kenny G.E., Grayston J.T. Characterization of the group antigen of Chi. trachomatis // Am. Soc. Microbiol. 1971. - V.4. -N6. - P.725-730.

157. Dhir S.P., Hakomori S., Kenny G.E. et al. Immunochemical studies on chlamydial group antigen // J. Immunol. 1972. - N109. - P. 116-122.

158. Doughri A.M., Storz J., Altera K.P. Mode of Chlamydia in infections of intestinal epithelial cells // J. Infect. Dis. 1972. - V.126. -P.652-657.

159. Duggan M.A., Pomponi C., Kay D., Robboy S.J., Infantile chlamydial conjunc-ticitis A comparison of Papanicolaon, Giemsa and immunoperoxidase staining methods // Acta cytol. -1986. -30, #4.- P.341-346.

160. Dwenger A. Radioimmunoassay: an overview // J. Clin Biochem. 1984. -V.22. -N12. -P.883-894.

161. Eissenberg L.G., Wyrick P.B., Davis C.H., Rumpp J.W.' Chi. psittaci elementary body envelopes: Ingestion and inhibition of phagolysosome fusion // Infect, and Immunol. 1983. - V.40. - N2. - P.741-751.

162. Engvall E., Perlmann P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA): Quantitative assay for immunoglobulin G // J.Immunoch.-1971- N8- P. 871.

163. Erlandson R.A., Allen E.G. The ultrastructura of meningopneumonitis // Virology. 1964.-N22.-P.410-418.

164. Escalante O.C., Rivera F.A., Trigo T.F., Romero M.J. Detection of Chi. psittaci in enteric subclinical infections in adult sheep, through cell culture isolation // Rev. Latinoamer. Microbiol. 1996. - V.38. - N1. - P. 17-23.

165. Evans R.T., Chalmres W.S., Woolcock P.R. An enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the detection of chlamydia antibody in duck sera // Avian Pathol. 1983. - V. 12. - N1. - P. 117-124.

166. Fames K., Richard D.F., Groft G.F., Johnson F.B. Evaluation of a cell culture-immunoperoxidase stain method for the diagnosis of chlamydia trachomatis infections // Abstr. Annu Veet Amer. Soc. Microbiol., 1986.- Washington D.C., 1986.

167. Farshy C.E., Barnes R.C. Detection of Chi. trachomatis inclusions in tissue culture by an antigen-capture sandwich ELISA / Abstr. Annu. Meet Am. Soc. Microbiol. Waschington, D.C., 1986.

168. Fedorko D.P., Clark R.B., Nachamkin I., Dalton H.P. Complement dependent in vitro neutralization of Chi. trachomatis by a subspecies-specific monoclonal antibody // Med. Microbiol, and Immunol. 1987. - V.176. -N4. - P.225-228.

169. Finney P.M., Bushell A.C. An enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for anti-chlamydial secretory immunoglobulin A in guinea pig tears // J. Immunol. Meth. 1986. - V.86. - N1. - P.71 -74.

170. Frazer G., Berman D.T. Typospecific antigens in the PLV group of organisms // J. Bact. 1965. -N89. -P.943-948.

171. Frei W. Eine Meue Hautreaktion bei Lumphogranuloma inguinale //Klin. Wo-chenschr.- 1925.- 4.-S. 2148-2149.

172. Friis R.R. Infection of L cells and Chi. psittaci, entry of the parasite and host responses to its development // J. Bacteriol. 1972. - V.l 10. -P.706-721.

173. Fukuchi H., Ogawa H., Ninamoto N. et al. Seroepidemiological surveillance of Chi. psittaci in cats and dogs in Japan // Vet.Res. 1985. - V.l 17. - N19. -P.503-504.

174. Gollins A.R. Barron A.L. Demonstration of Group- and Species-Specific Antigens of Chlamydial Agents by Gel Diffusion // J.Inf. Dis. -1970.-121, #1.- P.l-8.

175. Geally J.F. Monoclonal antibodies and their potential in medicine // Irish Med. J. 1987. - V.80. -N6. - P. 161-162. .

176. Glynn A.A., Ison C. Enzyme immunoassay in Bacteriology / Immunoassays 80: Symp. Lancaster, 1981. - P.431-440.

177. Gordon F.E., Nichols R.L., Quan A.L. Trachoma and related disorders caused by chlamydial agents. -Excerpta-Medica, 1971. -P.358-362.

178. Hackstandt T. Identification and properties of chlamydial polypeptides that bind eucaryotic cell surface components // J. Bacteriol. 1986. - N165. - P.13-20.

179. Haskizume S. Diagnosis of chlamydial infection // Asian Med. J. 1988. -V.31. - N2. - P.83-86.

180. Hendrick J.C., Franchimont P. New trends in radioimmunoassay / Protid. Biol. Fluids. Oxford, 1974. - P.619-624.

181. Hewinson R.G., Griffith P.C., Rankin S.E.S. Towards a d: fferential polymerase chain reaction test for Chlamydia psittaci. Vet. Tec., 1991,128; 381-382

182. Higachi N. Electron microscopic studies on the trachoma virus and psittacosis virus in cellcultures // Ex. Mol. Pathol. 1965. - N4. - P.24-29.

183. Holland S.m., Gaydes C.A., Quinn T.C. Detection and di fferention of Chlamydia trachomatis, Chi. psittaci and Chi. pneumoniae by DNA amplification. J.Jnfect. Dis, 1990, 162:984-987.

184. Hunter W.M. Radioimmunoassay: Handbookof experimental immunology / Weir D.M., ed. Oxford: Blackwell Scient. Publ., 1978. - V.l. -N14. - P. 1-40.

185. Jeggo M.H. Diagnosis of viral diseases using ELISA techniques / Nucl. And Related Techn. Anim. Prod. And Health, Proc. Inf. Symp. Viena, 1986. -P.289-301.

186. Jenkin H.M. Preparation and properties of cell walls of agent of meningopneu-monitis // J. Bacteriol. 1960. - V.80. - P.639-647.

187. Jenkin H.M., Ross H.R., Moulder J.W. Spacies-specifie antigens from the cell walls of the agents of meningopneumonitis and foline pneumonitis //J.Immunol.-1961 .-86.-P. 123-127.

188. Jenkin H.M. Chlamydia: biology and experimental pathology / Charman's report and discussion: Nongonococcal urethritis and relat. infect. Washington, D.C., 1977. - P.233-234.

189. Johnson F.W.A., Glarksen M.J., Spencer W.N. Susceptibility of Chlamydia psittaci (ovis) to antimicrobial agents // J. Antimicrob. Chemother.-1983.-11,#5.-P.413-418.

190. Kaleta E.F. Aktuelle Fragen der Diagnose und Bekampfung der Psittakose // Tierarztl. Umsch. 1997. Jg.52. -Nl. - S.36-44.

191. Kaltenboeck В., Kousoulas K.G., Storz J. Detection and strain differentiation of Chlamydia psittaci mediated by a two-step polymerase chain reaction. J.Clin. Microbiol., 1991,29:1969-1975.

192. Kaltenboeck В., Kousoulas K.G., Stors J. Two-step Polymerase chain reactions and restriction endonuclcase analyses detect and differentiate ompADNA of Chlamydia spp. J.Clin. Microbiol., 1992,30:1098-1104.

193. Kingsbery D.T., Weiss E. Lack of DNA homology between species of the genus Chlamydia // J. Bacteriol. 1968. - V.96. -N4. - P. 1421-1423.

194. Kishimoto Т., Kobota Y., Matsumoto A. et al. // J. Jap. Assoc. Infect. Dis. -1996. V.70. - N8. - P.821 -829.

195. Kordova N., Wilt J.C., Martin C.E. The use of cell cultures from the chorioallantoic membrane of chick embryos for studies of chlamydiae // Can. J. Microbiol.- 1977.-23, #5. -P.624-626.

196. Krauss H. Diagnosis of chlamydia disease with particular reference to aheep // Ann. Proc. sheep. Vet Soc.-1985.-9.-P.73-78.

197. Kruger M., Wehr J. Zur Eignung verschidener Labortiere als Model zur Wirk-samkeitsprufung von Chlamydienimpfstoffen // Wiss. Wissenschaftiliche Zeitschrift. 1980. - V.29. -Nl. - P. 123-129.

198. Kuo C.C., Caldwell H.D., Wang S.P., Grayston J.T. Nongonococcal Urethritis and Related Infections.-Washington, DC., 1977.-P. 176-185.

199. Kuo C.C., Chi E.Y. Ultrastructural studies of Chi. trachomatis surface antigens by immunogold staining with monoclonal antibodies // Infect, and Immunol. -1987. V.55. -N5.-P.1324-1328.

200. Levy R.A., Waford A.L. Evaluation of the modified chlamydiazyme immunoassay for the detection of chlamydial antigen // Am. J. Clin. Pathol. 1986. -V.86. - N3. - P.330-335.

201. Lema F., Everaere S., Rougeot C. et al. ELISA for detection of human antibodies to Chlamydiae // J. Immunol. Meth. 1986. - V.94. -Nl-2. -P.153-159.

202. Lewis V.J., Thacker W.L., Engelman H.M. Indirect Hemagglutination Test for Chlamydial antibodies //App.Microbiol.-1972. -24, #l.-P.22-252

203. Litwin J., Officer J., Brawn A., Moulder S. A comparative study of the different cycle of different member of the psittacosis group in different host cells // J. Infect. Dis. 1961.-V.109.-N3.-P.251.

204. Maclean I.W., Peelino R.W., Brunham R.C. Characterization of Chi. trachomatis antigens with monoclonal antibodies // Can. J. Microbiol. 1988. - N34. -P.141-147.

205. Manire C.P., Tamura A. Preparation and chemical composition of the cell walls of nature infections dense forms of meningopneumonitis organisms // J. Bact. -1967. V.94. - N4. - P.l 178-1183.

206. Мартинов С., Попов Г. Вакцина против хламидщалён абортус Kaj овците // Македон. Вет. Прегл. 1993. Г.22. - Бр.1/2. - С.25-33.

207. Мс Ewen A.D., Foggie A. Enzootic abortion in ewes: Prolonged immunity following the injection of adjuvant vaccine // Am. J. Vet. Res. 1956. - V.68. -N40. - P.686-690.

208. Meinerhofer W.A., Frank F.W., Scrivner L. Ovine virus abortion // J. Am. Vet. Med. Ass. 1962.- V.140.-N5.-P.448-450.

209. Mendlowski В., Segre D. Purification of the virus ovine abortion and its use in agglutination test // Am. J. Vet. Res. 1963. - N25. - P.627-645.

210. Meyer K.F., Eddie В., Schachter J. Возбудители пситтакоза и венерической лимфогранулемы / Лаб. Диагн. вирус, и риккетсиозных забол. М.: Медицина, 1974. - С.708-739.

211. Mields W., Hentchke J., Becker W., Teufel P. Die Immunoperoxidase-methode zum Nachweis von Virus-and Chlamydien-antigenen // Zbl. Vet. Med. B. -1974.-V.21.-S.48-58.

212. Mitscherlich E. Der Virusabort des Schofes in Deutschland // Dtsch. Tierarztl. Wsch. 1954. - N5. - S.42-46.

213. Mitscherlich E.Die Bekampfung des Virusabort der Schofes // Berl. und Munch. Tierarztl. Wochen. 1965. - B.78.-N5. - S.81.

214. Mitscherlich E. .Die Bekampfung des Virusabort der Schofes // Zbl. Vet. Med. 1966. - В13. - N2. - S. 180-183.

215. Morland В., Byrne G.I., Jones T.C. The effect of ultracellular Chi. psittaci on Lysosomal enzyme activities in mouse peritoneal macrophages // Acta Path., Microbiol, et Immunol. Scand. 1987. - V.95. - N6. - P.291-293.

216. Morter R. Chlamydial diseases // Mod. Vet. Pract. 1981. - V.62. - N6. -P.467-468.

217. Moulder J.W. Биохимия внутриклеточного паразитизма. M.: Мир, 1965. -197с.

218. Moulder J.W. Metabolic capabilities and deficiencies of rickettsiae and psittacosis group // Int. J. Leprosy. 1965. - V.33. - P.494.

219. Moulder J.W., Grissa D.L., Cho H.J. Endogenous metabolism of protein and ribonucleic acid in a member of the psittacosis group // J. Infect. Dis. 1965. -V.115. -N3. -P.254.

220. Moulder J.W. The contribution of model system to the studying of infections disease // Persp. Biol. Med. 1971. -N14. - P.486-502.

221. Moulder J.W., Levy N.J., Schulman L.P. Persistent infection of mouse fibroblasts (L-cell) with Chi. psittaci: evidence for a cryptic chlamydial from // Infect. and Immunol. 1980. - V.30. - N3. - P.874-883.

222. Murrey E.S. Guinea pig inclusion conjunctivitis virus. I. Isolation and identification as a member of the PLV group // J. Infect. Dis. 1964. -N114. P.1-12.

223. Nettleman M.D., Batteiger B.E., Wilde C.E., Jones R.B. Conservation of the major outer membrane protein of Chi. trachomatis within a serovar // Abstr. Ann. Meet Am. Soc. Microbiol. Washington, D.C., 1986. - P.92-96.

224. Nowell P. Phytohemagglutinin an initiator of mitoses in cultures of normal human leucocytes // Gancer. Res.-1960.-20.-P.462-470.

225. Огнянов Д., Симерджиев Б., Макавеева-Симонова Е. и др. Исследования на комплементсвъращи противотела срещу неориккетсии различии видове домашни животни // Вет. Мед. Науки. 1965. - T.l 1. - N4. - С.475-481.

226. Огнянов Д. Неориккетсиозите катозоонози // Вет. Сб. 1976. - Т.74. - N9. -С.12-15.

227. Ohana В., Prankratova V., Groh A. et al. Sero CT™-e new peptide based ELISA test for specific detection of Chi. trachomatis antibodies // Infect. Dis. Obstet. and Ginecol. 1996. - V.4.-N3.-P.192.

228. Ориэл Д.Д., Риджуей Д.Л. Хламидиоз. -М.: Медицина, 1984. 191с.

229. Page L.A. Stimulation of cell mediated immunity to Chlamydiosis in Turkeys by inoculation of Chlamydial Bacterin // Am. J. Vet. Res. 1978. - V,39. -P.473-480.

230. Parker C.W. Radioimmunoassay of biologically active compounds. New Jersey: Prentice-Hall Inc., 1976.

231. Pearson T.W. Properties of the monoclonal antibodies produced by hybridoma technology and their application to the study of diseases. Geneva, 1982. -P.55-62.

232. Pepin M., Bailly L., Souriau A., Rodolakis A. An enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the detection of chlamydial antibodies in caprine sera // Ann. Rech. Vet. 1985. - V.16. -N4. -P.393-398.

233. Perez-Martinez J.A., Storz I. Chlamydial infection in cattle. P.l // Mod. Vet. Pract. 1985. - V.66. - N8. - P.517-522.

234. Perez-Martinez J.A., Storz I. Chlamydial infection in cattle. P.2 // Mod. Vet. Pract 1985. - V.66. - N9. - P.603-608.

235. Petersen E.E. Chlamydien infektionen // MTA. 1996. - V.ll. - N5. -S.354,356-358,360,362.

236. Piriano F.F., Abel C. Plague assay for psittacosis virus in monolayers of chick embryo fibroblasts//J. Bacteriol. 1964.-N87.-P.1503-1511.

237. Poffenroth L., Costerton J.w., Kordova N., Wilt J.C. Ultrastructural studies of Chi. psittaci 6BC strains // Can. J. Microbiol. 1973. - V,19. - N8. - P.887-894.

238. Popovici V., Sotirin E. Cercetari serologica a supra avortului virotic al oilor // Inst. Patol. si Gigiena. Anim. 1963. -N12. -P.237-243.

239. Rake G. Viral and rickettsial diseases of the skin, eye and mucous membranes of man // Ann. N.Y. Acad. Sc. 1953. - V.56. - N3. - P.557-560.

240. Rank R.G., Barron A.L. Effect of antithymocyte serum on the course of chlamydial genital infection in female guinea pigs // Infec. and Immun.-1983.-41, #2.-P. 876-879.

241. Rasmussen S.J. Timms P. Detection Chlamidia psittaci usinq DNA probes and the polymerase chain reaction, REMS Microbiol. Jett., 1992,77:169-174.

242. Reed D.K., Lincoln S.D., Kwaplan R.P., et al. Comparison of antigenic structure and pathogenicity of bovine intestinal Chlamydia isolate with an agent of epizootic bovine// Am. J. Vet. Res. 1975. - V.36. -N8. - P. 1141-1143.

243. Reed L.F., Muench H. A simple method of counting 50% end-point // Am. J. Hygiene. 1938. - V.27. - P.493-497.

244. Riera M.C., Barron A.L. Reactions with Hemagglutinin of Psittacosis Agent in Gel Biffusion // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1970.-135, #1 .-P.594-597.

245. Rodolakis A., Souriau A. Clinical evaluation of a commerical vaccine against chlamydial abortion of ewes // Ann. Rech. Vet.-1979.-10,-S.41-48.

246. Russo P., Giauffret A. Interet du test de transformation lymphoblactique pour le controle des vaccins chlamydiens // Rev. Med. Veter. -1978.-129, #6.-P.879-886.

247. Samoilovich S.R., Dugan C.B., Macario A.J.L Hybridoma technology: new developments of practical interest // J. Immunol. Meth. 1987. - V.101. - N2. -P.153-170.

248. Sardinia J., Ganem D. Outer membrane protein of Chi. trachomatis are devel-opmentally regulated // J. Cell Biochem. 1987. -B.II. - P.l 12-115.

249. Sarov J., Becker Y. Trachoma agent DNA // J. Mol. Biol. 1969. - N42. -P.581-584.

250. Schachter J., Storz J., Tarizzo M.L., Bodel K. Chlamydiae as agents of human and animal diseases // Bull. Wrld. Hlth. Org. 1973. - V.43. - P.443-449.

251. Schachter J., Banks J., Sugg N. et al. . Serotyping of Chlamydia: isolates of bovine origin // Infect, and Immunol. 1975. - V.II. - N5. - P.905-907.

252. Schlossberger H., Kolle W., Hetsch H. Experimentelle Bakteriologie und Infek-tionskrankheiten Munchen, 1952.

253. Seki C., Takashima I., Arikawa J., Hashimoto N. Monoclonal antibodies to Chi. psittaci: characteristics and antigenic analysis // Jap. Vet. Sc. 1988. - V.50. -N2. -P.383-393.

254. Schmeer N., Adami M., Dopfer B. u.a. Zur humoralen Immunantwort von Ziegen, Kaninchen und Meerschweinchen hach der Vakzination mit einem Q-Fieber-Impfstoff // Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. 1985. -N98. - S.20-24.

255. Schmeer N., Krauss H., Apel J. et al. Analysis of caprine IgGl and IgG2 subclass responses to Chi. psittaci infection and vaccination // Vet. Microbiol. -1987. V.14. - N2. - P.125-135.

256. Shewen P.E., Povey R.C., Wilson M.R. A survey of the conjunctival flora of clinically normal cats and cats with conjunctivitis // Can. Vet. J. 1980. -N21. -P.231-233.

257. Singh C.K., Dhingra P.N., Kumar N. Isolation of Chlamydia from cerebral tissue of buffalo calf// Curr. Sc. (India) 1989. - V.58. -N9. - P.500-502.

258. Southern E.M. Detection of specific sequences among DNA fragments separated by gel electrophoresis // J. Mol. Biol. 1975. -N98. - P>503-517.

259. Stephens R.S., Kuo C.C. Chi. trachomatis species-specific epitope detected on mouse biovar outer membrane protein // Infect. Immunol. 1984. - N45. -P.790-791.

260. Sting R. Chlamydia-psittaci-Infektionen bei Kuhun und weiblichen Schafen im nordlichen Baden-Werttemberg // Tierarztl. Umsch. 1997. - Jg.52. - N6. -S.332-339.

261. Storz J. Superinfection of pregnant ewes latently infected with a psittacosis lymphogranuloma agent // Cornell Vet. 1963. -N53. - P.469-480.

262. Studdert M.J., Mokercher D. Bedsonia abortion of Sheep. III. Immunological Studies // Res. Vet. Sci.- 1968.-9. -P.331-336.

263. Terzin A.L., Matuka S., Fornazaric M.R., HXaca D.M. Preparation of group specific Bedsonia antigens for use in complement-fixation reaction // Acta Virol. 1961.-N5.-P.78-83.

264. Todd W.J., Caldwell H.D. The infection of Chi. trachomatis with host cell. Ultrastructural studies of the mechanism of release of biovar II stain from Hela 229 cells //J. Infect. Dis. 1985. - V. 151. - N6. - P.l 037-1044.

265. Travnicek M., Dravesky Т., Balascak J. Isolacia Chi. psittaci z abortovaneho plodu kravy // Vet. Med. (CSSR). 1984. - V.29. -N3. -P.133-136.

266. Urnovitz H.B., Gottfried T.D., Robinson D.J. Immunoassays for the detection of antibodies toChl. Trachomatis in the urine: Pat. 5516638 USA. 1996.

267. Van Weemen B.K., Schuurs A.H.W.M. Immunoassay using antigen-enzyme conjugete //FEBS Letters. 1971. - N15. - P.232-236.

268. Van Zaane D., Ijzerman J. Monoclonal antibodies against bovine immunoglobulins and their use in isotype-specific ELISAs for rotavirus antibody // J. Immunol. 1984. - V.72. -N2. - P.421-441.

269. Vitu C., Russo P., Giauffret A. Application du test ELISA a la serologie des chlamydioses des oviris et des caprine: Edu de comparative avec la reaction de fixation du complement // Bull. Lab. Vet. P 1984. N13. - P.55-69.

270. Wachendorfer C., Valder W.A., Luthgen W. Erfahrungen mit der Vakzination gegen den Chlamydienabort des Schafes // Wiss. Z.Humb. Univ. Berlin.-1980.-R.29.-S. 105-111.

271. Wang S.P., Grayston J.T. Trachoma and related disorders coused by chlamydial agents / Amsterdam, 1971. P.305-321.

272. Wang S.P., Kuo C.C., Barnes R.C. et al. Immunotyping of Chi. trachomatis with monoclonal antibodies // J. Infect. Dis. 1985. - V.152. -N4. - P.791-800.

273. Watkins N.G., Moos A.B., Caldwell H.D. A genus specific chlamydial antiden elicits ocular delayed hypersensitivity in immune guinea pigs // J.Cell. Bioch.-1987.-11B.-P.120-124.

274. Wilson M.K. Isolation of PLV group vims from the faeces of clinically normal cattle in Britain // Vet. Rec. 1968. - V.74. - N49. - P. 1430.

275. Yolken R.H. Monoclonal antibodies in microbiologic immunoassay // Lab. Manag. 1983. - V.21. -N9. - P.49-51, 54-55.

276. Zhang Y.X., Stewart S., Joseph T. et al. Protective monoclonal antibodies re-codnize epitopes located on the major outer membrane protein of Chi. trachomatis // J. Immunol. 1987. - V.138. -N2. - P.575-581.1. Ссылки на сайты Internet

277. Биологические свойства хламидий http://iaci. ru. /Ь/chool. htm. 22.11.2000.

278. Ямникова С.С., Федякина И.Т., Непоклонова И.В. Новая классификация*хламидий и их роль в заболевании мелких животных. Институт вирусологии им. Д.И. Ивановского РАМН. http://vet. webservis. ru./doc/.

279. Обухов И.Л., Шипулин Г.А., Груздев И.Н. Молекулярногенетический подход диагностики хламидиозов животных и птиц на основе полимеразной цепной реакции. http://www. per. ru. Bibliogr /27.10.00.

280. Ремцов А.П., Неверов В.А., Семенов Н.В. Хламидийные инфекции. Санкт-Петербург. 1995. http://vet. webservis. ru./doc/.

281. Хламидиоз: современные подходы в диагностике и лечение. http://www. Laborotoria.khv. ru./2001.

282. Хламидиоз кошек. http://Lpets-By-nm. ru/veteriny/09.12.01.

283. На основании приказа по Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана № 57 от 25 июня 2001 г. комиссия в составе:

284. Зав. каф. биохимии, профессор Хазипов Н.З. (председатель).

285. Зав. каф. микробиологии и вирусологии, профессор Госманов Р.Г.

286. Доцент каф. биохимии Якупов Т.Р.

287. Провела проверку пригодности "Тест-системы иммуноферментной для выявления хламидийных антител у собак и кошек", предложенной коллективом авторов Хамадеев Р.Х., Герасимов В.В., Равилов Р.Х, Шамсутдинова Н.В.

288. Комиссионные испытания проведены в соответствии с регламентом, утвержденным проректором КГАВМ по HP, профессором Папуниди К.Х.

289. При исследовании испытуемых материалов в ИФА было установлено, что 20 (25,6%) проб были серопозитивными в отношении хламидийного антигена проверяемой тест-системы, в том числе и все сыворотки реагировавшие в РСК.

290. Результаты комиссионной проверки представлены в приложении к "Акту комиссионной проверки.".

291. Комиссия рекомендует Научно-техническому совету академии рассмотреть и одобрить нормативно-техническую документацию на "Тест-систему иммуно-ферментную для выявления хламидийных антител у собак и кошек"1. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

292. Председатель комиссии, профессор Члены комиссии: профессор доцент1. Р.Г. Госманов1. J. i^/ruiv/iwiinv

293. Результаты исследования сывороток крови собак и кошек, подозрительных по заболеванию хламидиозом

294. Кличка, порода, пол, возраст Клинические признаки Результатыпп исследования в1. РСК ИФА1 2 3 4 51. СОБАКИ

295. Семен, бультерьер, кобель, 10 лет Хронический бронхит, конъюнктивит

296. Ося, боксер, сука, 8 лет Гнойный вульвит

297. Катя, стаффоширский терьер, сука, 8 мес. Цистит, вульвит

298. Цезарь, ср. азиат, кобель, 1,5 месяца Лярингит

299. Тина, ротвейлер, сука, 2,5 м. Бронхит

300. Шурик, шарпей, кобель, 6 лет Артрит, сердечная недостаточность

301. Шархан, ротвейлер, кобель, 6,5 лет Простатит и-к - w

302. Гурда, ризеншнауцер, сука, 7 месяцев Конъюнктивит 00

303. Туя, кок.-спаниель, сука, 8 лет бесплодие

304. Оста, эрдельтерьер, сука, 10 лет Конъюнктивит, отит

305. Дук, пудель, сука, 12 лет мертворожд. плоды, пиометра

306. Тори, черный терьер, сука, 6 месяцев Цистит, вульвит + +

307. Рада, спаниель, сука, 3 года Артрит, бронхит ± +

308. Саша, амер. к.-спаниель, сука, 8 лет Пиометра

309. Рокки, немец, овчарка, кобель, 4 месяца Гнойные выделения из препуция

310. Дик, колли, кабель, 8 лет Хронический бронхит

311. Рой, бульмастив кобель, 3 года Пиодермия, гнойные выделения из препуция

312. Терра, кери-блю терьер, сука, 3 года Выкидыш

313. Дези, пудель, сука, 2,8 лет Бесплодие + +

314. Туй, ризеншнауцер, кабель, 10 лет Баланопостит22. --------, -f f "-"V J • ^J'*"?^^**) "J Зуля, бультерьер, кабель, 4 лет. Бронхит

315. Зера, ротвейлер, сука, 3 года Мертворожден, плоды

316. Дик, немец.овчарка, кабель, 1,5 лет Гнойные выделения из глаз (конъюнктивит)

317. Фрося, фокстерьер, сука, 9 лет Вульвит +

318. Зора, колли, сука, 3 месяца Бронхит

319. Котя, немецкая овчарка, сука, 8 лет Конъюнктивит, экзема +

320. Дик, ротвейлер, кабель, 7 лет Постит

321. Саша, боксер, кабель, 2 года Постит ± +

322. Ося, колли, сука, 8 лет Артрит

323. Ян, русский спаниель, кабель, 7 лет Конъюнктивит, лярингит +

324. Зина, бультерьер, сука, 6 лет Выкидыш +

325. Роза, немецкая овчарка, сука, 5 лет Хронический бронхит + +

326. Изоля, левретка, сука, 3 года Выкидыш

327. Гура, шарпей, сука, 4 месяца Вульвит Н-1 - Ui

328. Глаша, б\п, сука, 4 месяца Бронхит

329. Зухраб, ротвейлер, кабель, 3 года Постит ± +

330. Гера, б/п, сука, 9 месяцев Вульвит, эндометрит +

331. Долли, той пудель, сука, 2 года Выкидыш

332. Дик, бультерьер, кабель, 10 лет Конъюнктивит

333. Сим, колли, кабель, 6 лет Чума

334. Чуй, эрдельтерьер, кабель, 4,5 месяцев Бронхит

335. Тереза, доберман, сука, 3 года Бесплодие1. КОШКИ

336. Мурка, б/п, кошка, 3 месяца Конъюнктивит

337. Пушок, б/п, кот, 1 год Бронхит

338. Кошечка, б/п, кошка, 3 месяца Конъюнктивитt. 5. оадим, и/ii, kui, i,~> )ида Маруся, б/п, кошка, 2,8 лет у pcipni Конъюнктивит, лярингит

339. Шаян, б/п, кот, 4 года Баланопостит ± +

340. Регина, персидская кошка, 1 год Катар- конъюнктивит, выкидыш

341. Семен, б/п, кот, 10 лет Хронический бронхит + +

342. Сонет, сиамская кошка, 1 год Мертворожд. плоды +

343. Соня, персидская кошка, 3 года Конъюнктивит

344. Ося, персидский кот, 3 года Хронический конъюнктивит, бронхит ± +

345. Маша, кошка б/п, 8 месяцев Конъюнктивит, лярингит, бронхит +

346. Катя, б/п кошка, 3 месяца Вульвит

347. Муре, б/п, кот, 6 лет Бронхопневмония + +

348. Мурка, б/п, кошка, 3 года Выкидыш

349. Солнышко, персидская кошка, 4 года Конъюнктивит, выкидыш

350. Пушок, персидский кот, 3 года Бесплоден

351. Черныш, б/п, кот, 5 месяцев Конъюнктивит Ь-1

352. Груша, б/п, кошка, 4 года Бронхит

353. Тима, б/п, кот, 6 лет Цистит, уретрит

354. Алсу, б/п, кошка, 4 месяца Уретрит, цистит

355. Анфиса, б/п, кошка, 3 года Мертворожденые плоды ± +

356. Гуля, б/п, кошка, 2,5 года Конъюнктивит

357. Семен, б/п, кот, 9 лет Астма

358. Махмут, б/п, кот, 2,5 года Бронхит

359. Чишмя, б/п, кот, 2 года Бронхит

360. Сема, б/п, кот, 2 года Конъюнктивит

361. Сима, б/п, кошка, 6 месяцев Бронхопневмония

362. Киса, персидский кот, 1 месяц Истечения из глаз

363. Дуся, сиамская кошка, 1 месяц Конъюнктивит

364. Мурка, персидская кошка, 4 года Бесплодие

365. Персик, персидский кот, 1,2 года — t WilJV Л. JLS x A JL Хронический бронхит +

366. Оскар, персидский кот, 1,3 года Лярингит, бронхит

367. Сонет, персидская кошка, 3 года Бесплодие

368. МИНИСТЕРСТВ О СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОДЛЬСТВИЯ

369. РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт

370. УТВЕРЖДАЮ Резщщ К аз ан с ко й академии ветери-яйрМой медицины, профессор J -J^jaj^u^ К.Х. Папуниди sktPsifezpip 2002 г.

371. ВРЕМЕННАЯ' ИНСТРУКЦИЯ ПО ИЗГОТОВЛЕНИЮ И КОНТРОЛЮ ИММУНОФЕРМЕНТНОЙ ТЕСТ-СИСТЕМЫ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ ХЛАМ1ЭДШТНЫХ АНТИТЕЛ У СОБАК И КОШЕК

372. СОГЛАСОВАНО Директор Всероссийского научно-исследовательского ветеринарн ого1. Казань 2002.

373. ПРАВИЛА САНИТАРНОГО РЕЖИМА И МЕР ЛИЧНОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ПРИ ИЗГОТОВЛЕНИИ И КОНТРОЛЕ ТЕСТ1. СИСТЕМЫ

374. Производственные штаммы хламидий.3

375. Схема технологического процесса производства тест-системы.3

376. Технология производства тест-системы.35. Контроль тест-системы.136. Упаковка тест-системы.14

377. Хранение и транспортировка тест-системы.15

378. Правила санитарного режима и мер личной профилактики при изготовлении и контроле тест-системы.161. Разработчики:

379. Главный научный сотрудник лабораториивирусологии ВНИВИ, ,профессор Хамадеев Р.Х.

380. Зав. кафедрой патологии мелких животных и оперативной хирургии КГАВМ, профессор —^y^—-Лл-^ ~ Равилов Р.Х.1. Врач-лаборант РЦПБ СПИД,1. Герасимов В.В.

381. Ассистент каф. патологии мелких животных и оперативной хирургии КГАВМ1мсутдино ва Н.В.

382. Директор Республиканской ветеринарной лаборатории1. Королева Л.В.

383. МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОДЛЬСТВИЯ

384. РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт

385. УТВЕРЖДАЮ Вектор Казанской государственной академии ветеринарной медицины, проф^е'сор r^^jf^jc^f К.Х. Папуниди гМа/гъ^г 2002 г.1ШМУНОФЕРМЕНТНАЯ ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ XJIAM1ЗД1ГЙНБ1Х АНТИТЕЛ У СОБАК И КОШЕК

386. ТЕХНИЧЕСКИЕ УСЛОВИЯ ТУ 9388 001 - 00493623 - 02

387. Вводятся впервые на опытную партию в количестве 500 наборов Срок введения /г^я/?™?*?2002г.1. Срок действия '2004г.

388. СОГЛАСОВАНО Шч а'ль н и кГл а в н о г о управления ветеринарии Кабинет а министров РТ^рофессрр1. Зшмщб^ А.В. Иванов

389. СОГЛАСОВАНО Директор Всероссийского научно

390. Продолжение на следующей странице

391. Продолжение титульного листа ТЕХНИЧЕСКИЕ УСЛОВИЯ ТУ 9388 001 - 00493623 - 021. РАЗРАБОТЧИКИ:

392. Главный научный сотрудник лаборатории вирусологии ВНИВИ, профессор Хамадеев Р.Х.ф-р^Я * >f 2002 г.

393. Зав. кафедрой патологии мелких животных и оперативной хирургии КГАВМ, профессор —с Равилов Р.Х " Л8 " ^b^^^^Jj 2002 г.1. Врач-лаборант РЦГ1Б СПИД,к.б. н Герасимов В.В.2002 г.

394. Ассистент каф. патологии мелких животных и оперативной хирургии КГАВМ

395. Шамсутдинова Н.В. ".<//'.jjh^A^c^^- .2002 г.

396. Директор Республиканской ветеринарной лаборатории

397. Королева Л.В. fL&fyC*^2002 г.

398. ГЛАВНОЕ УПРАВЛЕНИЕ ВЕТЕРИНАРИИ КАБИНЕТА МИНИСТРОВ РЕСПУБЛИКИ ТАТРСТАН Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт

399. СОГЛАСОВАНО Ректор Казанской академии ветеринарной медицины, профессор1. К.Х. Папуни,iSiX^ 2002 г.- утверждаю

400. Иммуноферментная тест-система для выявления хламидийных антител у собак и кошек представляет собой набор реагентов для проведения ИФА.

401. Порядок предъявления рекламаций.

402. Главный научный сотрудник лаборатории вирусологии В НИВ И, профессор Хамадеев Р.Х.

403. Зав. кафедрой патологии мелких животных и оперативной хирургии КГАВМ, профессор ^Лл^л ■ Равилов Р.Х.

404. Врач-лаборант РЦПБ СПИД, к.б.н.---izfri7 Герасимов В.В.

405. Ассистент каф. патологии мелких животных и оперативной хищ£>гии КГАВМ1. Шамсутдинова Н.В.

406. Директор Республиканской ветеринарной лаборатории1. Королева Л.В.1. СОГЛАСОВАНО"1. ИВИ, академик АНТ,1. А.З. Равилов 2000 г.1. УТВЕРЖДАЮ"

407. Начальник Главного Управления и KM1. А.В. Иванов 2000 г.1. ВРЕМЕННОЕ НАСТАВЛЕНИЕпо применению вакцины против хламидиоза плотоядных животных (пушных зверей, собак и кошек) инактивированной эмульсионнойв порядке опыта)1. Общие положения

408. Вакцина предназначена для профилактики хламидиоза у пушных зверей, собак и кошек.

409. Вакцина выпускается: в запаянных стеклянных ампулах по 0,5 и 1 мл; в плотно закрытых резиновыми пробками (обкатанными металлическими колпачками) стеклянных флаконах по 2, 5, 50 и 100 мл. Ампулы и флаконы этикетируются в соответствии с ТУ.

410. Перед применением ампулы и флаконы с вакциной подогревают до 20-25°С и тщательно встряхивают.

411. Порядок применения вакцины

412. Клинически здоровых животных вакцинируют однократно. Ревакцинация через 6 месяцев. Самок иммунизируют за 21-28 дней до случки.

413. Больных хламидиозом плотоядных животных перед вакцинацией подвергают обработке антибиотиками, эффективными в отношении хламидий,и симптоматическому лечению. Иммунизацией переболевших животных можно проводить через 10-15 дней после курса терапии.

414. Вакцину применяют глубоко внутримышечно в области бедра. Животным с живой массой менее 10 кг в дозе 0,5 мл, свыше 10 кг 1 мл (независимо от возраста).

415. У иммунизированных животных на месте введения вакцины может появляться болезненность и небольшая припухлость, которые исчезают в течение 2-3 недель.

416. Иммунитет у привитых животных наступает через месяц после вакцинации и сохраняется 6 месяцев.

417. Шкурки, полученные после убоя вакцинированных пушных зверей, реализуют без ограничений.

418. Ведущий научный сотрудник ВНИВИ, профессор1. Научный сотрудник ВНИВИ,1. Хамадеев Р.Х.кандидат вет. наук'X'71. Хусаинов Ф.М.

419. Заведующий кафедрой патологии мелких животных КГАВМ,доктор вет. наукдоктор вет. наук — Равилов Р.Х.

420. Ассистент кафедры патологии мел вотных КГАВМ,1. Шамсутдинова Н.В.