Адаптация водорослей Баренцева моря к условиям освещения тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 25.00.28, доктор биологических наук Макаров, Михаил Владимирович
- Специальность ВАК РФ25.00.28
- Количество страниц 359
Оглавление диссертации доктор биологических наук Макаров, Михаил Владимирович
Введение.
Актуальность исследования.
Цель и задачи исследования.
Научная новизна.
Теоретическое значение работы.
Практическое значение работы.
Основные защищаемые положения.
Апробация работы.
Публикации.
Глава 1. Характеристика районов и объектов исследования.
1.1. Характеристика района исследования.
1.1.1 Мурманское побережье.
1.1.2 Архипелаг Шпицберген.
1.1.3 Архипелаг Земля Франца-Иосифа.
1.2. Краткое описание исследованных видов.
Глава 2. Обзор литературы.
2.1. Исследования альгофлоры Мурманского побережья и архипелагов Шпицберген и Земля Франца-Иосифа.
2.2. Исследования механизмов регуляции роста и адаптации к условиям освещения водорослей Баренцева моря.
2.3. Влияние спектрального состава освещения.
2.4. Влияние ультрафиолетовой радиации.
2.5 Влияние фотопериода.
2.6 Влияние интенсивности освещения.
2.6 Влияние гидростатического давления.
Глава 3. Материалы и методы.
3.1. Район исследований.
3.2. Объекты исследований.
3.3. Основное использованное оборудование.
3.4. Лабораторные условия.:.
3.5. Методы определения.
3.6. Получение суспензии зооспор ламинарии сахаристой.
3.7. Определение влияния интенсивности освещения.
3.8. Определение влияния фотопериода.
3.9. Определение влияния ультрафиолетовой радиации.
3.10. Мониторинг содержания фотосинтетических пигментов.
3.11. Определение влияния глубины произрастания (интенсивность и спектральный состав освещения).
3.12. Определение влияния глубины произрастания (гидростатическое давление).
3.13. Определение влияния отсутствия освещения.
3.14. Натурные исследования.
3.14. Статистическая обработка результатов исследований.
Глава 4. Результаты и обсуждение.
4.1. Влияние интенсивности освещения.
4.1.2. Влияние интенсивности освещения на ранние стадии онтогенеза Laminaria saccharina.
4.1.3. Сезонные изменения фотосинтетического аппарата.
4.1.3.1. Удельная поверхность фотосинтетических мембран.
4.1.3.2. Содержание фотосинтетических пигментов.
4.1.3.3. Размер светособирающего комплекса (ССК).
4.1.3.4. Соотношение фотосинтетических пигментов.
4.1.4. Сезонные изменения содержания экранирующих и абсорбирующих веществ (флоротаннины).
4.1.5. Сезонные изменения содержания сухого вещества.
4.1.6. Механизмы существования водорослей в период полярной ночи и при отсутствии освещения.
4.2 Влияние фотопериода.
4.3 Влияние ультрафиолетовой радиации.
4.3.1 Влияние ультрафиолетовой радиации на скорость роста водорослей-макрофитов в естественных условиях.
4.3.2. Толерантность различных видов водорослей к УФ-Б.
4.3.3. Влияние УФ-Б на выход и жизнеспособность спор Laminaria saccharina и Palmaria palmata.
4.4 Влияние глубины произрастания.
4.4.1 Изменение морфофизиологических параметров водорослей при различной глубине произрастания.
4.4.2 Влияние гидростатического давления на ранние стадии онтогенеза Laminaria saccharina.
Глава 5. Адаптация водорослей к световым условиям как основа их биогеографического распространения.
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Океанология», 25.00.28 шифр ВАК
Влияние ультрафиолетовой радиации на рост и размножение доминантных видов водорослей-макрофитов Баренцева моря1999 год, кандидат биологических наук Макаров, Михаил Владимирович
Морфо-функциональные особенности промысловых водорослей из разных биотопов Баренцева моря2005 год, кандидат биологических наук Рыжик, Инна Валериевна
Морфо-функциональные перестройки у водорослей-макрофитов Баренцева моря под воздействием нефти и нефтепродуктов2003 год, кандидат биологических наук Степаньян, Олег Владимирович
Влияние солености на фукусовые водоросли Баренцева моря2007 год, кандидат биологических наук Малавенда, Светлана Владимировна
Устойчивость и адаптация морских микроводорослей к высоким интенсивностям видимой и ультрафиолетовой радиации1998 год, кандидат биологических наук Яковлева, Ирина Михайловна
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Адаптация водорослей Баренцева моря к условиям освещения»
Актуальность исследования
Водоросли-макрофиты являются одними из основных источников органического вещества и кислорода в прибрежной зоне морей и в значительной степени определяют состояние морских экосистем. Выступая в качестве одного из средообразующих природных компонентов, они взаимодействуют со многими видами животных и растительных организмов. Являясь продуцентами большого количества биологически активных веществ, водоросли широко используются в пищевой промышленности, биотехнологии, медицине, косметологии, сельском хозяйстве.
На всех стадиях онтогенеза, от споры до взрослого растения, водоросли-макрофиты подвергаются воздействию абиотических и биотических факторов среды обитания. Ведущим фактором внешней среды, оказывающим влияние на водоросли, как на представителей фотоавтотрофных организмов, является свет: его интенсивность, спектральный состав и фотопериод.
Большинство окраинных морей России находятся за пределом полярного круга. Поэтому обитающие здесь водоросли оказываются под воздействием не только низких температур, но и перепадов освещения от полярного дня до полярной ночи. Соответственно, в течение года значительно меняется воспринимаемая ими суммарная доза дневной солнечной радиации, интенсивность освещения и спектральный состав света вследствие различной высоты поднятия солнца над уровнем горизонта, наличия ледового покрова на поверхности моря, количества планктонных организмов, растворенного органического и взвешенного вещества и т.д.
Из всех северных морей России Баренцево море, благодаря заходящим в него теплым водам Северо-Атлантического течения, структуре береговой линии и отсутствию мощных пресных водотоков, является наиболее продуктивным (Зенкевич, 1947; Экология и биологическая продуктивность., 1990; Саускан, 1996). Видовое разнообразие и биомасса водорослей в нем максимальны, особенно вдоль Мурманского побережья, К настоящему времени в Баренцевом море описано 194 вида водорослей-макрофитов. Из них 39 видов представляют зеленые водоросли (Chlorophyta). 80 - бурые (Phaeophyta), и 75 - красные (Rhodophyta). Однако, по мнению А.Д. Зиновой (1962), даже для наиболее исследованного Мурманского побережья состав флоры известен примерно на 80%. К сожалению, обширных флористических исследований в последние десятилетия не проводилось. Остальные северные моря также остаются малоизученными.
Помимо экзогенного воздействия на макроводоросли абиотических и биотических факторов среды, имеется и эндогенная регуляция физиологических процессов. И если одни ее проявления хорошо заметны (например, начало роста некоторых видов в середине полярной ночи), тс другие могут регулироваться действием внешних короткопериодических (суточная смена освещения, приливоотливные циклы) и продолжительных (полярный день - полярная ночь) воздействий.
Несмотря на более чем двухвековой период исследования, многие аспекты физиологии водорослей арктических морей, позволяющие им существовать в условиях значительных изменений освещения и низкой температуры, остаются малоизученными. В связи с этим также остаются открытыми вопросы биоразнообразия и распространения водорослей в высокие широты. При наличии большого количества теорий, описывающих основы биоразнообразия и распределения наземных и морских организмов (см. обзор Willig et al., 2003), лишь отдельные исследования рассматривают механизмы, обеспечившие возможность распространения- водорослей и приведшие к образованию новых видов в процессе эволюционного развития (Перестенко, 1998; Howe, Brunner, 2005).
Вплоть до недавнего времени, основным фактором, ограничивающим распространение морской флоры в высокие широты, считалась низкая температура (Hoek, 1982а,Ь, 1984; Lüning, 1984; Перестенко, 1998; Cambridge, 1990; Novaczek, Breeman, 1988, 1990 Howe, Brunner, 2005; Verbruggen et al
2009). Однако проведенные автором многолетние натурные наблюдения и эксперименты позволяют утверждать, что приспособленность водорослей к смене освещения от полярного дня до полярной ночи также оказывала влияние на их распространение. Это подтверждает выдвинутую в последние годы гипотезу о комплексном барьере, контролирующем биогеографическое распространение водорослей (см. обзоры Сатрапа et al, 2009; Gomez et al, 2009; Wulff et al., 2009; Zacher et al, 2009).
Решение проблем рационального природопользования также невозможно без досконального изучения биологических особенностей всех компонентов экосистемы. И исследование водорослей на разных уровнях их организации, от молекулярного до популяционного, позволяет раскрыть механизмы адаптации организмов к факторам среды, особенно в Арктическом регионе. Еще один аспект данного направления — это развитие полярной аквакультуры, требующее понимания закономерностей функционирования организмов. Таким образом, расширение исследований водорослей северных морей актуально для решения задач фундаментальной и прикладной биологической науки.
Цель и задачи исследования.
Цель работы: выявить адаптации водорослей-макрофитов Баренцева моря к условиям освещения и показать, что развитие данных адаптаций способствовало распространению водорослей в высокие широты.
Для достижения данной цели решались следующие задачи:
1) Оценка влияния на морфо-физиологические параметры водорослей следующих составляющих освещения: а) интенсивность; б) фотопериод; в) спектральный состав.
2) Выявление сезонных изменений фотосинтетического аппарата доминантных видов водорослей.
3) Выявление механизмов, позволяющих водорослям-макрофитам существовать в условиях полярной ночи и при отсутствии освещения.
4) Определение влияния глубины произрастания на морфо-физиологические параметры водорослей.
5) Оценка освещения как фактора оказывающего влияние на вертикальную зональность распределения водорослей на побережье Баренцева моря.
Научная новизна.
Многочисленные экспериментальные исследования, проведенные автором лично или совместно с коллегами, позволили выявить адаптации водорослей Баренцева моря к меняющимся в течение года условиям освещения.
Впервые экспериментально показано:
1) адаптация водорослей к изменениям освещения от полярного дня до полярной ночи, а также при увеличении глубины произрастания достигается преобразованиями фотосинтетического аппарата (ФСА). Пластичность ФСА зависит от высоты (глубины) произрастания и систематической принадлежности, увеличиваясь в ряду Бурые < Красные < Зеленые водоросли;
2) на Мурманском побережье Баренцева моря в полярную ночь интенсивности фотосинтетически активной радиации (ФАР) в дневное время достаточно для прохождения процессов фотосинтеза у водорослей— макрофитов;
3) продолжительность существования многолетних видов водорослей при отсутствии освещения зависит от количества накопленных запасных веществ, структурной организации таллома и возможности перехода на гетеротрофный способ питания. Фотосинтетический аппарат при этом остается в интактном состоянии;
4) нижняя граница произрастания сублиторальных макрофитов зависит от толерантности различных стадий жизненного цикла к освещению, температуре и гидростатическому давлению. В мутных водах вертикальное распространение водорослей ограничивается недостатком освещения, в прозрачных - уровнем гидростатического давления.
Выдвинута гипотеза, что формирование механизмов адаптации к условиям освещения способствовало распространению водорослей в полярные районы.
Полученные экспериментальные данные также подтверждают гипотезу, что в естественных условиях морфологические изменения и функциональное состояние многолетних водорослей определяются генетически (эндогенные ритмы различной периодичности), и синхронизированы с годовыми циклами освещенности в природе (Ьйшп& 1990). В ходе онтогенетического развития макрофитов направленность генеральной жизненной функции определяет скорость и направленность физиологических и биохимических процессов.
Теоретическое значение работы.
Данное исследование вносит существенный вклад в понимание механизмов адаптации, регуляции роста, размножения и биологических особенностей водорослей-макрофитов Баренцева моря. Результаты экспериментальных исследований позволяют по-новому взглянуть на достаточно устоявшиеся взгляды о функциональном состоянии в период полярной ночи водорослей в частности и прибрежной морской экосистемы в целом, а также на механизмы, определяющие географическое распространение и вертикальную зональность произрастания водорослей.
Практическое значение работы.
Полученные данные о репродукции, морфологии, физиологическом состоянии водорослей позволяют прогнозировать последствия и оценивать возможность восстановления прибрежных фитоценозов при антропогенном воздействии и климатических изменениях окружающей среды. Результаты исследований могут служить основой для проведения инженерно-экологических изысканий, разработок ОВОС, развития аквакультуры водорослей. Отдельные положения диссертационной работы могут быть использованы в учебном процессе при подготовке бакалавров, специалистов, магистров по специальностям «биология моря», «океанология», «экология» и специализациям «морская ботаника", "физиология и биотехнология водорослей", "теоретические основы аквакультуры".
Основные защищаемые положения.
1. На Мурманском побережье адаптация водорослей к низкой интенсивности освещения в период полярной ночи осуществляется за счет снижения метаболической активности и оптимизации функционирования фотосинтетического аппарата. В более высоких широтах, при отсутствии освещения, у некоторых видов макрофитов (фукоиды) возможна дополнительная адаптация в виде частичного или полного перехода на гетеротрофный способ питания.
2. В условиях полярной ночи интенсивности фотосинтетически активной радиации (ФАР) достаточно для прохождения процессов фотосинтеза у водорослей - макрофитов Мурманского побережья Баренцева моря.
3. Присутствующая в естественном освещении ультрафиолетовая радиация оказывает влияние на все этапы жизненного цикла водорослей: стимулирует выход спор в весенний период, ингибирует развитие спор и ранних стадий развития, снижает скорость роста большинства видов водорослей.
4. Нижнюю границу произрастания Laminaria saccharina на Мурманском побережье Баренцева определяет фактор гидростатического давления, поскольку условия освещенности не лимитируют распространение водорослей на большую глубину.
5. Морфологические изменения, вегетативная и репродуктивная активность многолетних водорослей определяются эндогенными ритмами. Фотопериод и спектральный состав освещения являются регуляторами, синхронизирующими эндогенные ритмы с годовыми циклами изменений факторов среды.
Апробация работы.
Основные положения диссертации были апробированы на заседаниях Ученого совета Мурманского морского биологического института КНЦ РАН (1995-2010). Материалы диссертационной работы докладывались на международных конгрессах и симпозиумах: "Effect of climate change on terrestrial and freshwater ecosystems" (Рованиеми, Финляндия, 1997), YI International Congress on History of Oceanography (Циндао, Китай, 1999), были представлены на международных конференциях (Мурманск, 1995, 1997 -1999, 2001, 2002, 2004, 2005, 2009, 2010; С-Петербург, 1996; Ростов-на-Дону, 2008; Владивосток, 2008), региональных конференциях и семинарах.
Публикации По теме диссертации опубликовано более семидесяти работ, наиболее значимые из которых приведены в автореферате, в том числе 13 статей в зарубежных и рекомендованных ВАК периодических изданиях.
Автор благодарит за помощь и ценные советы в период подготовки диссертации академика РАН Г.Г. Матишова, а также коллег из Мурманского морского биологического института КНЦ РАН, Ботанического института РАН, Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова, Мурманского государственного технического университета. Особую благодарность хочу выразить зав. лабораторией альгологии ММБИ д.б.н. Г.М. Воскобойникову и всем сотрудникам лаборатории.
Глубочайшую признательность выражаю своему отцу и учителю. В.Н. Макарову. Его трудолюбие, энтузиазм и ответственное отношение к работе всегда являлись для меня примером.
Похожие диссертационные работы по специальности «Океанология», 25.00.28 шифр ВАК
Динамика ростовых и репродуктивных процессов у водорослей Баренцева моря2001 год, доктор биологических наук Шошина, Елена Васильевна
Механизмы адаптации, регуляции роста и перспективы использования макрофитов Баренцева моря2006 год, доктор биологических наук Воскобойников, Григорий Михайлович
Морфофизиологические особенности бурой водоросли Fucus distichus L. в экосистемах Баренцева моря2009 год, кандидат биологических наук Малавенда, Сергей Сергеевич
Экология, физиология и продуктивность зостеры морской Zostera marina L. на Белом море2011 год, кандидат биологических наук Стародубцева, Анастасия Андреевна
Структурно-продукционные характеристики морского микрофитобентоса литоральной зоны Восточного Мурмана2005 год, кандидат биологических наук Витченко, Татьяна Валерьевна
Заключение диссертации по теме «Океанология», Макаров, Михаил Владимирович
выводы.
Результаты проведенных экспериментальных исследований и натурных наблюдений позволили выявить механизмы, обеспечивающие существование водорослей-макрофитов в высоких широтах:
1. У водорослей-макрофитов Баренцева моря приспособление к изменению интенсивности освещения в течение года происходит путем структурных и функциональных перестроек фотосинтетического аппарата: изменение удельной поверхности фотосинтетических мембран, содержания и соотношения фотосинтетических пигментов, размеров ССК, содержания экранирующих пигментов.
2. Вариабельность размеров ССК в течение года зависит от систематической принадлежности (повышается в ряду бурые < красные < зеленые водоросли) и высоты произрастания водорослей (наибольшая у водорослей верхней литорали).
3. На Мурманском побережье в период полярной ночи интенсивность освещения является достаточной для осуществления у водорослей процессов фотосинтеза. В дневные часы фотосинтез превалирует над дыханием, хотя суточная продукция является отрицательной.
4. Возможность и продолжительность существования многолетних видов водорослей Баренцева моря при отсутствии освещения определяется наличием следующих типов питания: потребление внутриклеточных запасных веществ (виды с тонкопластинчатой организацией таллома);
- потребление веществ, образующихся при деструкции таллома (ламинариевые водоросли). Определяется наличием гетеротрофных слоев клеток и транспорта веществ по таллому;
- переход на гетеротрофный способ питания (фукусовые водоросли).
Каждый последующий тип питания подразумевает наличие более простого и увеличивает продолжительность жизнеспособности водорослей при отсутствии освещения. Их фотосинтетический аппарат в этот период остается в интактном состоянии.
5. Механизмы, обеспечивающие существование водорослей в условиях отсутствия освещения, направлены на поддержание в интактном состоянии зоны роста и прилегающих тканей.
6. Изменение характера освещения при увеличении глубины произрастания вызывает накопление фотосинтетических пигментов в клетках водорослей. Увеличение размеров ССК наблюдается только у видов, произрастающих на верхней литорали. Адаптационные перестройки эффективны до определенной глубины, являющейся нижним пределом произрастания вида, и сопровождаются повышением метаболической активности. При этом влияния изменения спектрального состава освещения на пигментный аппарат водорослей не выявлено.
7. Нижняя граница произрастания сублиторальных макрофитов зависит от чувствительности разных стадий жизненного цикла к уровням освещения и гидростатического давления. Вертикальное распространение ламинариевых водорослей в мутных водах может ограничиваться недостатком освещения, в прозрачных — уровнем гидростатического давления.
8. Жизненные циклы и эндогенные ритмы функциональной активности водорослей синхронизированы с условиями внешней среды, при этом регулирующими сигналами являются фотопериод и спектральный состав света.
9. При изменении фотопериода функциональная перестройка фотосинтетического аппарата зависит от соотношения длительности и интенсивности освещения. Снижение длины светового дня в осенний период переключает направленность физиологических процессов с роста на накопление сухих (запасающих) веществ.
10. Совершенствование механизмов адаптации водорослей к условиям освещения и низкой температуре определило возможность их распространения в полярные районы Мирового океана.
11. Эволюционное развитие и адаптация к условиям существования в высокоширотных районах привели к конвергентному сходству в функционировании фотосинтетического аппарата водорослей различных систематических групп.
Список опубликованных работ, содержащих основные положения диссертации:
Kuznetzov L.L., Makarevich P.R., Makarov M.V. Structural and productional indices of marine phytocenoses // Environment and ecosystems of the Franz Josef Land (Archipelago and shelf). Apatity. 1993. P. 98-104.
Шошина E.B., Макаров В.Н., Макаров М.В. Особенности биологии ламинариевых водорослей Земли Франца-Иосифа. // Биология моря. 1997. Т. 23. №5. С. 286-292.
Воскобойникое Г.М., Макаров М.В. Влияние физических и химических факторов на выход, подвижность и развитие спор. // Промысловые и перспективные для использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и Белого морей. Апатиты: изд. КНЦРАН. 1998. С. 68-81.
Макаров М.В., Воскобойникое Г.М. Влияние ультрафиолетовой радиации на споры Laminaria saccharina (Phaeophyta). // Бот. журн. 1999. Т. 84, №10. С. 63-72.
Makarov M.V. Influence of ultraviolet-radiation on the growth of the dominant macroalgae of the Barents Sea. // Chemosphere: Global Change Science. Climate Change Effect on Northern Terrestrial and Freshwater Ecosystems. 1999. V. 1. No. 4. P. 461-469.
Макаров M.B., Воскобойникое Г.М., Шошина E.B., Матишов Г.Г. Влияние ультрафиолетовой радиации на рост и размножение ламинарии сахаристой {Laminaria saccharina (L.) Lamour.) Баренцева моря. // Доклады РАН. 1999. Т. 367. №2. С. 286-288.
Makarov V.N., Makarov M.V., Schoschina E.V. Seasonal dynamics of growth in the Barents sea seaweeds: endogenous and exogenous regulation. // Bot. Mar. 1999. V. 42. N. 1. P. 43-49.
Makarov M.V., Voskoboinikov G.M. The Influence of Ultraviolet-B Radiation on Spore Release and Growth of the Kelp Laminaria saccharina. II Bot. Mar. 2001. V. 44. P. 89-94.
Voskoboinikov G., Makarov M., Maslova T., Sherstneva O. The photosynthetic apparatus of Ulvaria obscura during the polar day and polar night. // Phycologia. 2001. V. 40. No. 4 (Suppl.). P. 83.
Макаров M.B., Облучинская Е.Д., Воскобойников Г.М., Рыжик И.В. Биологически активные вещества макрофитов Баренцева моря: содержание^ механизмы накопления, технологии получения и перспективы использования. // Сб. Север-2003. Проблемы и решения. Апатиты. 2004. С. 218-229.
Тропин КВ., Макаров М.В. Фотосинтетический аппарат представителей Fucales (Phaeophyta) Баренцева моря после полярной ночи. // Альгология. 2004. Т. 4. .№ 4. С. 393-404.
Воскобойников Г.М., Макаров М.В., Маслова Т.Р., Шерстнева O.A. Ультраструктура и пигментный состав фотосинтетического аппарата зеленой водоросли Ulvaria obscura в полярный день и полярную ночь. // Доклады РАН. Общая биология. 2004. Т. 394. № 3. С. 423-426.
Матишов' Г.Г., Макаров М.В. Изменения пигментного состава Fucus vesiculosus L. и F. serratus L. Баренцева моря при длительном нахождении в темноте. // Доклады РАН. Общая биология. 2004. Т. 397. № 5. С. 1-2.
Воскобойников Г.М., Макаров М.В., Рыжик И.В. Изменения в составе фотосинтетических пигментов и структуре клеток Fucus vesiculosus L. и F. serratus L. Баренцева моря при длительном нахождении в темноте. // Биология моря. 2006. Т. 32. № 1. С. 26-33.
Макаров М.В., Рыжик КВ., Воскобойников Г.М., Матишов Г.Г. Дифференциация пластины Laminaria saccharina (L) Lamour. как приспособление к длительному отсутствию освещения. // Доклады РАН. Общая биология. 2006. Т. 409. № 2. С. 1-2.
Макаров М.В., Рыжик КВ., Воскобойников P.M., Матишов Г.Г. Влияние интенсивности движения воды на морфологические и физиологические показатели Fucus vesiculosus L Баренцева моря. // Доклады РАН. Общая биология. 2007. Т. 415. № 4. С. 1-2.
Воскобойников Г.М., Макаров М.В., Рыжик И.В., Малавенда С.В. Влияние абиотических факторов на структуру фитоценозов, морфологические и физиологические особенности водорослей-макрофитов Баренцева моря. // Динамика морских экосистем и современные проблемы сохранения биологического потенциала морей России. Влад.: Дальнаука. 2007. С. 357-386.
Рыжик КВ., Макаров М.В. Активизация физиологических процессов у Fucus vesiculosus (L) Баренцева моря при произрастании в поверхностном слое воды. // Материалы конференции РБО. Петрозаводск, сентябрь. 2008. С. 173-174.
Макаров М.В., Рыжик И.В., Воскобойников Г.М. Механизмы существования бурых водорослей в период полярной ночи: функциональная дифференциация и гетеротрофия. // Сб. Современные проблемы альгологии, Мат. междунар. научн. конф. Ростов-на-Дону, 9-12 июня. 2008. С. 225-227.
Макаров М.В., Степаньян О.В. Выбор потенциальных биоиндикаторов состояния морских экосистем. Водоросли. // Новые технологии мониторинга природных процессов в зоне взаимодействия пресных и морских вод (биологическая индикация). Апатиты. 2009. С. 60-69.
Макаров М.В. Влияние давления на ранние онтогенетические стадии ламинарии сахаристой {Laminaria saccharina (L.) Lamour.). // 8-я Всероссийская школа по морской биологии «Проблемы морской палеоэкологии и биогеографии в эпоху глобальных изменений» (Мурманск, ноябрь). М.: ГЕОС. 2009. С. 106-112.
Макаров М. В., Рыжик И. В., Воскобойников Г. М., Матишов Г. Г. Влияние глубины произрастания на морфофизиологические показатели Fucus vesiculosus L. Баренцева моря. // Доклады РАН. Общая биология. 2010. Т. 430. № 3. С. 427-429.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ.
Ведущим фактором внешней среды, оказывающим влияние на водоросли, как на представителей фотоавтотрофных организмов, является освещение. Как показало проведенное исследование, составляющие данного фактора - интенсивность, спектральный состав и фотопериод - оказывают значительное воздействие на все стадии жизненного цикла водорослей. Однако функциональная значимость этих составляющих различается. Так фотопериод и спектральный состав света выступают в роли сигналов, синхронизирующих эндогенные ритмы функционирования организма (периоды интенсивного роста, размножения, накопления запасных веществ, снижения метаболической активности в зимний период и т.д.) с факторами внешней среды. Например, влияние спектрального состава ярко проявляется в индукции гаметогенеза при синем свете и остановке данного процесса при красном. Влияние фотопериода - в образовании новой пластины или спорогенной ткани у ламинариевых водорослей, а также в накоплении сухих веществ у фукусовых при короткодневном освещении.
Сигнальная роль фотопериода проявляется и при сезонных перестройках фотосинтетического аппарата: нами было показано изменение соотношения фотосинтетических пигментов при снижении длины светового дня. Изменения их общего содержания выявлено не было, хотя у красной водоросли Palmaria decipiens наблюдалось увеличение содержания фотосинтетических пигментов (Lüder et al, 2001). По всей вероятности, поскольку исследователи определяли содержание пигментов в естественных условиях, имело место влияние не фотопериода, а интенсивности освещения, что было показано в представленной работе. Интенсивность освещения в этом случае может выполнять дополнительную, корректирующую роль, для наиболее успешного функционирования фотосинтетического аппарата в конкретных световых условиях. Пределы возможных изменений ФСА заложены генетически и определяют существование вида в определенном диапазоне интенсивности освещения.
Акклимация к искусственному изменению интенсивности освещения, например при экспериментальных исследованиях, также проявляется в перестройке фотосинтетического- аппарата, но в меньших пределах, и сопровождается значительным повышением метаболической активности. Опыты с увеличением глубины произрастания водорослей показали, что снижение интенсивности освещения до определенного уровня (конкретное значение зависит от видовой принадлежности) вызывает накопление фотосинтетических пигментов. При дальнейшем снижении освещения наблюдается разрушение ФСА и деградация таллома. Однако в природных условиях в осенний период, при значительно более низкой интенсивности и дозе освещения, функциональная активность водорослей не снижается. И в данном случае четко прослеживается связь между эндогенными ритмами функционирования растений и изменяющимися условиями окружающей среды.
Анализ сезонных изменений фотосинтетического аппарата показал, что у водорослей разных систематических групп, несмотря на различия в наборе фотосинтетических пигментов и строении ФСА, наблюдаются сходные адаптационные перестройки. В зимний период у всех видов происходит увеличение размеров ССК, площади тилакоидных мембран и содержания фотосинтетических пигментов.
Вместе с тем, имеются и отличия в сезонном содержании некоторых каротиноидных пигментов у водорослей, принадлежащие к различным отделам. Однако, по всей вероятности, данные отличия связаны не с работой фотосинтетического аппарата, а с функциональной направленностью организма в определенный период времени, например, с формированием органов размножения.
Произрастание водорослей в приполярных районах зависит не только от адаптации фотосинтетического аппарата к изменяющимся условиям освещения (в основном к низкой интенсивности света), но и от адаптации к низкой температуре окружающей среды. Анализ изменений, происходящих на различных уровнях у высших растений при адаптации к низкой температуре и у водорослей при низкой интенсивности освещения, показал, что имеется большое количество сходных изменений. На уровне организма наблюдается торможение метаболических процессов, а также синхронизация сезонного ритма развития организма с условиями окружающей среды. На клеточном уровне - изменение численности (или парциального объема в клетке) митохондрий и хлоропластов, тилакоидов в хлоропласте. На молекулярном уровне - изменение содержания фотосинтетических пигментов и доли хлорофиллов, относящихся к ССК. У высших растений, адаптированных к холоду, и у зеленых водорослей при низкой интенсивности освещения наблюдается снижение парциального объема крахмальных гранул. При гидролизе крахмала происходит накопление водорастворимых углеводов в цитоплазме (что способствует снижению температуры точки образования льда), а также их потребление для поддержания процессов клеточного метаболизма при недостатке ассимилятов, синтезирующихся в процессе фотосинтеза.
Описанные перестройки ФСА происходят вследствие снижения уровня светового насыщения фотосинтеза при низких температурах, что было показано на высших растениях и зеленых водорослях (Mawson, Cummins, 1991; Gray et al., 1997; Huner et al., 1998; Morgan et al., 1998). Таким образом; результаты наших исследований и анализ литературных данных показали, что, несмотря на многообразие жизненных форм, на разницу в месте и времени происхождения, эволюция и распространение в высокоширотные районы Мирового океана привели к конвергентному функционированию фотосинтетического аппарата водорослей различных систематических групп.
Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Макаров, Михаил Владимирович, 2010 год
1. Аверинцев В.Г., Виноградова K.JI. Фитоценоз Halosaccion arcticum -Sphacelaria arctica на мелководье острова Хейса (Земля Франца-Иосифа). // Биология моря. 1990. № 5.
2. Аверинцева С. Г. Фитоценозы литорали губы Дроздовка Баренцева моря // Экология, биологическая продуктивность и проблемы марикультуры Баренцева моря. Тез. докл. II Всесоюзн. конф. Мурманск. 1988. С. 249 251.
3. Аверинцева С. Г., Шошина Е. В. Флора губы Ярнышной Баренцева моря // Препринт. Мурманск. 1990. 14 с.
4. Бардан С.И., Дружков Н.И., Бобров Ю.А., Байтаз В.А. Комплексный экологический мониторинг в губе Дальнезеленецкая (Баренцево море): зимне-весенний период 1987-88 г // Препринт. Апатиты: изд. КНЦ АН СССР. 1989. 42 с.
5. Блинова Е.И. Запасы и годовая продукция ламинариевых водорослей побережья Баренцева моря // Тр. молод, ученых. М., Пищ. пром-ть, 1964а. С. 141-144.
6. Блинова Е.И. Типы растительности макрофитов сублиторали Мурманского побережья Баренцева моря // Тр. молод, ученых. М., Пищ. пром-ть, 19646. С. 136-140.
7. Блинова Е.И. Вертикальное распределение и количественный учет макрофитов Айновых островов (Баренцево море) // Тр. ММБИ. Вып. 8(12). 1965. С. 41-56.
8. Блинова Е.И. Распределение, запасы и годовая продукция доминирующих видов водорослей литорали Мурманского побережья Баренцева моря // Растительные ресурсы. 1969. Т. 5. С. 163-173.
9. Блинова ЕЖ, Хромов В.М. Прирост и разрушение слоевищ ламинарии Laminaria saccharina (L.) Lamour. // Промысловые водоросли и их использование. М.: изд. ВНИРО. 1981 а. С. 18-27.
10. Блинова Е.И., Хромов В.М. Рост и развитие сахаристой ламинарии -Laminaria saccharina (L.) Lamour. в Дальнезеленецкой губе Баренцева моря // Промысловые водоросли и их использование. М.: изд. ВНИРО. 1981 б. С. 617.
11. Бобров Ю.А. Сезонные изменения некоторых показателей продуктивности фитопланктона Баренцева моря // Закономерности биопродукционных процессов в Баренцевом море. Апатиты: Изд. КФ АН СССР, 1978. С.37-52.
12. Богоров В.Г. 1967. Биологическая трансформация и обмен энергии и веществ в океане. Океанология, т. 7. 5: 104-123.
13. Богоров В. Г. Планктон мирового океана // М., "Наука", 1974. 320 с.
14. Бойцов В.Д. Структура гидрологических сезонов в прибрежной зоне Мурмана // Физико-химические условия формирования биологической продукции Баренцева моря. Апатиты. Изд-во Кольского филиала АН СССР. 1980. С. 18-25.
15. Брандт А. Б., Деревянко В. Г., Павлова И. Л. Тагеева С. В. Значение различной интенсивности и спектрального состава света для пигментообразовання растениями. //Биофизика. 1957. Т. 2. Вып. 6. С. 649.
16. Бриттон Г. Биохимия природных пигментов. // М.: Мир. 1986. 436с.
17. Бухое Н.Г. Динамическая световая регуляция фотосинтеза. // Физиол. раст. 2004. № 51. С. 825-837.
18. Бухое Н.Г., Макарова В.В., Кренделева Т.Е. Координированные изменения редокс-состояний фотосистем I и II в листьях подсолнечника при различных освещенностях // Физиология растений. 1998. Т. 45. С. 551-557.
19. Быков О.Д. Фотосинтез и темновая фиксация С02 литоральных макроводорослей Баренцева моря в условиях полярной ночи. // Ботан. журн. 2003. Т. 88, № 12. С. 68-73.
20. Вершинин, А. О. Камнев А.Н. Каротиноиды некоторых морских макроводорослей и их светозависимые превращения // Альгология. 1993. Т. 3.№ 1. С. 34-40.
21. Виноградова К.Л: Новые для Мурмана виды водорослей // Ботан. матер. Отдела споровых раст. Бот. ин-та АН СССР. 1961. Т. 14. С. 91-93.
22. Виноградова K.JI. К распространению Fucus spiralis L. на литорали Мурмана. // Ботан. мат. отдела споровых растений Ботан. ин-та АН СССР. 1963. Т. 16. С. 67-68.
23. Виноградова K.JI. Запасы литоральных водорослей Мурмана. // Тр. ММБИ АН СССР. 1964 . Т. 5(9). С. 37-40.
24. Виноградова K.JI. Ульвовые водоросли (Chlorophyta) морей СССР. Л. Наука, 1974. 166 с.
25. Виноградова K.JI. Видовой состав морских водорослей архипелага Земля Франца-Иосифа. // Новости систематики низших растений. 1986. Т. 23. С. 27-37.
26. Виноградова K.JI. Некоторые особенности флоры бентосных водорослей архипелага Земля Франца-Иосифа // Ботан. ж. 1987. № 9. С. 12031206.
27. Виноградова K.JI. Проблема жизненных форм у морских бентосных водорослей // Ботан. ж. 1990. Т. 75, № 4. С. 454-461.
28. Виноградова K.JI, Шошина Е.В. Водоросли // Среда обитания и экосистемы Земли Франца Иосифа (архипелаг и шельф). Апатиты, 1994. С: 100-106.
29. Владимиров, Ю. А., Рощупкин Д. И. Действие УФ-излучения на мембранные структуры клеток // Биологическое действие ультрафиолетового излучения. М. "Наука". 1975. С. 31-39.
30. Возжинская В.Б. Донные макрофиты Белого моря // М. Наука. 1986.
31. Возжинская В.Б., Болдуман М.М., Пестриков В.В., Сорокин A.JI. Гидробиологические исследования в Арктике: Растительные сообщества архипелага Шпицберген // Докл. АН (Россия). 1992. Т. 324 С. 1332-1335.
32. Возжинская В.Б., Кейлис-Борок И.В., Кузин B.C. Глубоководные макрофиты подводных гор Атлантического океана // Биология моря. 1990. № 3. С. 60-62.
33. Воробьев И. А., Драчев В. А. Влияние высокого гидростатического давления на клеточный центр и микротрубочки в клетках культуры ткани // Цитология. 1989. T. XXXI. № 2. С. 170-175.
34. Воскобойников Г.М. Морфофункциональные изменения одноклеточной водоросли Euglena gracilis Klebs при длительном содержании в темноте на минеральной среде. Автореф. дис. канд. биол. наук. ИНЦ РАН, Л., 1980. 22 с.
35. Воскобойников Г.М. Механизмы адаптации, регуляции роста и перспективы использования макрофитов Баренцева моря.// Дис. . докт. биол. наук: 25.00.28. Мурманск, 2007. 465 стр.
36. Воскобойников Г.М., Камнев А.Н. Морфо-функциональные изменения хлоропластов в онтогенезе водорослей. СПб.: Наука. 1991. 96 с.
37. Воскресенская Н. П. О восстановлении нитратов в листьях при различных условиях освещения. // Докл. АН СССР. 1951. Т. 79. № 1. С. 165.
38. Воскресенская Н. П. О влиянии спектрального состава света на соотношение веществ, образующихся при фотосинтезе. // Докл. АН СССР. 1952. Т. 86. № 2. С. 429.
39. Воскресенская Н. П. Значение спектрального состава света для фотосинтетического образования веществ. // Докл. АН СССР. 1953. Т. 93. № 5. С. 911.
40. Воскресенская Н. 77. Поглощение кислорода фотосинтезирующими растениями на свету. // В сб.: Фотохимия и биохимия фотосинтеза. М., Изд-во «Наука». 1965. С. 219-234.
41. Воскресенская Н.П. Гришина Г.С. К вопросу об использовании растениями С1402 в .разных условиях освещения. // Докл. АН СССР. 1956. Т. 106. № 3, С. 565.
42. Воскресенская Н. П., Гришина Г С. О действии интенсивности и спектрального состава радиации на обмен веществ и урожай. // Докл. АН СССР. 1959. Т. 124. № 2. С. 469.
43. Воскресенская Н. П., Гришина Г. С. Поглощение кислорода зелеными листьями в зависимости от интенсивности и спектрального состава-света. // Физиол. раст. 1960. Т. 7. Вып. 5. С. 497.
44. Воскресенская Н. П., Гришина Г. С. Некоторые особенности поглощения кислорода зелеными листьями на свету. //. Физиол. раст. 1961. Т. 8. Вып. 6. С. 726.
45. Воскресенская Н. П., Зак Е. Г. О поглощении кислорода листьями растений в разных участках спектра. // Д. АН СССР 1957. Т. 114 № 2. С. 375
46. Гавриленко В.Ф., Жигалова Т.В. Фотосинтез. // Физиология растений: Учебник для студ. ВУЗов. Под ред. И.П. Ермакова. М.: Издательский центр «Академия». 2005. 640 с.
47. Гоби Хр.Я. Флора водорослей Белого моря и прилегающих к нему частей Северного Ледовитого океана. СПб, 1878. 85 с.
48. Голдовский А.М. (а) Современное состояние знаний о мезабиозе // Успехи соврем, биологии. 1977. Т. 74, вып. 3 (6). С. 461-472.
49. Голдовский А.М. (б) Основы учения о состояниях организмов. Л.: Наука. 116 с.
50. Гринталъ А.Р. Состав и распределение сообществ водорослей на литорали губ Ярнышной и Подпахты (Восточный Мурман) // Тр. ММБИ. 1965. Т. 8 (12). С. 23-40.
51. Гринталъ А.Р. Температурная адаптация фотосинтеза Laminaria saccharina (L.) Lam. // Ботан. ж. 1975. Т. 60, N 2. С.256-265.
52. Гурьянова Е.Ф., Закс И.Г., Ушаков П.В. Литораль Кольского залива.
53. Описание основных площадок литорали // Тр. Ленингр. об-ва естествоиспыт. 1928а. Т. 58. № 2, С. 89-143.
54. Гурьянова Е.Ф., Закс КГ., Ушаков П.В. Литораль Кольского залива.
55. Сравнительное описание литорали Кольского залива на всем его протяжении // Тр. Ленингр. об-ва естествоиспыт. 19286. Т. 59. № 2. С. 47-71.
56. Гурьянова Е.Ф., Закс И.Г., Ушаков П.В. Литораль Западного Мурмана // Исслед. морей СССР. Л., изд. ГОИН, 1930а. Вып. 2. С. 47-52.
57. Гурьянова Е.Ф., Закс И.Г., Ушаков П.В. Литораль Кольского залива // Тр. Ленингр. об-ва естествоиспыт. 19306. Т. 60. № 2. С. 17-107.
58. Гюббенет Е.Р., Вобликова Т.В. Суточный ход фотосинтеза водорослей Баренцева моря во время полярного дня. // Изв. науч. ин-та им. П.Р. Лесгафта. Т. 20. Вып. 2. С. 47-68.
59. Данилов Л. Н. Изменение внутренних факторов фотосинтеза под влиянием света. // Эксперим. ботаника. 1940. № 4. С. 42.
60. Дарвин Ч. Происхождение видов путем естественного отбора или сохранение благоприятных рас в борьбе за жизнь. Пер. 6-го изд. (Лондон, 1872). Отв. ред. акад. А. Л. Тахтаджян. С-Пб «Наука». 1991г.
61. Досон Р., Эллиот Д., Эллиот У., Джонс К. Справочник биохимика. М.: Мир. 1991. 544 с.
62. Джус В.Е. Распределение и запасы промысловых бурых водорослей Мурманского прибрежья Баренцева моря // Апатиты. Изд. Кольского филиала АН СССР. 1984. 89 с.
63. Елшин Ю.А. Приток речных вод в Баренцево и Белое моря и его колебания внутри года и в многолетнем разрезе // Водные ресурсы. 1979. Т. 2. С. 20-32.
64. Ермолаева Е. Я. Влияние света различного спектрального состава на некоторые физиологические процессы растений. // Эксперим. ботаника. 1953. Вып. 9. С. 100.
65. Зенкевич Л.А. Фауна и биологическая продуктивность моря. // М.: Изд-во МГУ, 1947.189 с.
66. Зенкевич Л.А. Моря СССР. Их флора и фауна // М.: Учпедгиз. 1951. 368 с.
67. Зенкевич Л.А. Биология морей СССР. // М.: Изд-во АН СССР. 1963. 740 с.
68. Зинова А. Д. О некоторых особенностях флоры водорослей Белого моря // Тр. Всесоюзн. гидробиол. общ-ва АН СССР. 1950. Т. II. С. 231-252.
69. Зинова А.Д. Определитель бурых водорослей северных морей СССР. М.: Л.: изд. АН СССР, 1953. 224 с.
70. Зинова А.Д. Определитель красных водорослей северных морей СССР. М.: Л.: изд. АН СССР, 1955. 220 с.
71. Зинова А.Д., Петров Ю.Е. Пути формирования флоры морских макроскопических водорослей Арктического бассейна // Северный Ледовитый океан и его побережье в кайнозое / под ред. А.И. Толмачёва. Л.: Гидрометеоиздат, 1970. С. 162-165.
72. Зинова Е.С. Водоросли Мурмана Введение. Зеленые и красные водоросли // Тр. С-Пб. об-ва естествоиспыт. 1912. Т. 43. № 3. С. 170-343.
73. Зинова Е.С. Водоросли Мурмана. Часть II. Бурые водоросли // Тр СПб об-ва естествоиспыт. 1914. Т. 44-45, вып.З, N 4. С. 212-326.
74. Зинова Е. С. Водоросли Новой Земли // Иссл. морей СССР. 1929. Вып. 10. С. 41-128.
75. Зинова Е.С. Водоросли Мурмана в окрестностях острова Кильдина и их использование // Исслед. морей СССР. Л. Изд. ГОИН. 1933. Вып. 18. С. 49-72.
76. Ильин Г.В., Гаркавая Г.П. Биогенные элементы прибрежных вод восточного Мурмана // Закономерности биопродукционных процессов в Баренцевом море. Апатиты. Изд-во Кольского филиала АН СССР. 1978. С. 13-27.
77. ИостХ. Физиология клетки. Мир. Москва. 1975.
78. Кахнович Л: В. Фотосинтетический аппарат при'регулировании его формирования светом // Фотосинтетический аппарат и факторы его регуляции. Под ред. Кахнович Л:В; Минск: Изд-во БГУ. 1983. С. 5-34.
79. Киреееа М. С., Щапова Т. Ф. Темпы роста, возраст и спороношение Laminaría saccharina и L. digitata Кольского залива // Тр. ВНИРО. 1938. Т.7. С. 24-49.
80. Климов С.В. Пути адаптации растений к низким температурам. // Успехи совр. биологии. 2001. Т. 121. № 1. С. 3-22.
81. Кобленц-Мишке О.И., Волковинский В.В., Кабанова Ю Г. Первичная продукция планктона Мирового океана. М. 1970.
82. Колмаков П.В. Темновая фиксация неорганического углерода некоторыми видами морских зеленых макроводорослей. // Материалы 48 Межвузовской научно-технической конференции. Т III. Владивосток. 2005. С. 55-57.
83. Кондрацова О Ф. Термика и соленость прибрежных вод Восточного Мурмана // Закономерности скоплений и миграций промысловых рыб в прибрежной зоне Мурмана. М:-Л. Изд-во АН СССР. 1958. С. 7-34.
84. Кузнецов JI.JI., Шошина ЕВ. Фитоценозы Баренцева моря. Физиологические и структурные характеристики. Изд-во КНЦ РАН. Апатиты. 2003. 307 с.
85. Ладыгин В.Г. Биосинтез каротиноидов в пластидах растений // Биохимия:.2000. Т. 65. № 10. С. 1317-1333.
86. Ладыгин В.Г. Современные представления о путях биосинтеза каротиноидов в хлоропластах эукариот// Журн. общ. биологии. 2002. Т. 63. № 4; С. 299-325.
87. Ладыгин В.Г., Ширшикова Г.Н. Современные представления о функциональной роли каротиноидов в хлоропластах эукариот. // Журн. общей биол. 2006. Т. 67. №3. С. 163-189.
88. Лебедева О.Н., Стафеева Е.Б., Николаевская Т. С., Титов А. Ф. Роль пигментов в формировании фотопротекторных свойств растений. // Успехи совр. биол. 2008. Т. 128. №4. С. 369 383.
89. Лелеткин В.А. Выделение фотосинтетического кислорода морскими водорослями при адаптации к свету // Дисс. . канд. биол. наук. Владивосток. Ин-т биол. моря ДВНЦ АН СССР. 1981. 203 с.
90. Ли Б.Д. Разделение, идентификация и количественное определение фотосинтетических пигментов макробентосных водорослей // Экологические аспекты фотосинтеза морских растений. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1978. С. 38-54.
91. Лоция Баренцева моря. Часть 2. Адм. № 1112. От реки Ворьема до пролива Карские Ворота и западные берега острова Новая Земля // СПб: ГУН и О. 1995.464 с.
92. Ли Б.Д., Титлянов Э.А. Адаптация бентических растений к свету. 3. Содержание фотосинтетических пигментов в морских макрофитах из разных по освещенности мест обитания. // Биол. моря. 1978. № 2. С. 47-55.
93. Макаров В.Н. Поведение зооспор и ранние стадии развития Laminaria saccharina (L) Lamour. Белого и Баренцева морей. Автореф. . канд. биол. наук. Ленинград. 1987. 20 с.
94. Макаров В.Н. Шошина Е.В. Водоросли-макрофиты Баренцева моря. // Жизнь и условия ее существования в бентали Баренцева моря. Апатиты. 1986. С. 52-67.
95. Макаров В.Н. Шошина Е.В. Рациональное использование водорослей-макрофитов прибрежья Кольского полуострова (современное состояние и перспективы исследования). // Препринт. Апатиты. Изд-во Кольского филиала АН СССР. 1993. 52 с.
96. Макаров В.Н. Шошина Е.В. Резистентность ламинариевых водорослей к ультрафиолетовой радиации. // Современное состояние и перспективы исследований экосистем Баренцева, Карского морей и моря Лаптевых. Тез. докл. межд. конф. Мурманск. 1995. С. 56-58.
97. Макаров В.Н., Шошина Е.В. Динамика сезонного роста Laminaria saccharina в Баренцевом море. // Биология моря. 1996. № 4. С. 238-248.
98. Макаров В.Н., Шошина Е.В. Динамика и стратегия сезонного роста. // Промысловые и перспективные для использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и Белого морей. Апатиты: Изд. КНЦ РАН, 1998 а. С. 97-114.
99. Макаров М.В. Влияние ультрафиолетовой радиации и темноты на выход тетраспор Palmaria palmata. II Материалы научной сессии молодых ученых ММБИ КНЦ РАН (апрель 1998). Мурманск: ООО "МИП-999". 1998. С. 51-54.
100. Макаров М.В. Рыжик И.В. Воскобойников Г.М. Литоральные водоросли в период полярной ночи: жизнь или выживание // Материалы III международной конференции «Актуальные проблемы современной альгологии». Харьков, 20-23 апреля 2005. Харьков. 2005. С. 88-89.
101. Макаров М.В., Рыжик И.В, Воскобойников Г.М., Матишов Г.Г. Дифференциация пластины Laminaria Saccharina (L) Lamour какприспособление к длительному отсутствию освещения. // Докл. АН. Общая биология, 2006. 409, 2. С. 1-2.
102. Макаров М.В., Рыжик И.В, Воскобойников Г.М., Матишов Г.Г. Влияние интенсивности движения воды на морфологические и физиологические показатели Fucus vesiculosus L Баренцева моря. // Доклады АН. Общая биология. 2007, Т. 415. №4. С. 1-2.
103. Маланская (Гринталъ) А.Р. Исследование экологии бурой водоросли Laminaria saccharina (L.) Lamouroux на Восточном Мурмане. // Автореф. дисс. . канд. биол. наук. Ленинград. 1978. 21 с.
104. Мальцев В.Н. Изучение гаметофита ламинарии японской при ее культивировании. // Матер. 6 сов.-япон. симпозиума по вопросам аквакультуры и и повышения биопродуктивности Мирового океана. Москва -Батуми, 7-21 октября 1977 г. М: ВНИРО, 1978. С. 76-77.
105. Маслова Т.Г., Попова И.А., Попова О.Ф. Критическая оценка спектрофотометрического метода количественного определения каротиноидов // Физиология растений. 1986. Т. 33. № 3. С. 615-619.
106. Матишов Г.Г., Макаров М.В. Изменения пигментного состава Fucus vesiculosus L. и F. serratus L. Баренцева моря при длительном нахождении в темноте // Доклады АН. Общая биология, 2004, Т. 397, №5, с. 1-2.
107. Мирославов Е. А. Структурная» адаптация растений к холодному климату // Ботан. журн. 1994. Т. 79. № 2. С. 20-26.
108. Мирославов Е.А., Вознесенская Е.В. Буболо JI.C. Структура хлоропластов северных растений в связи с адаптацией фотосинтетического аппарата к условиям Арктики. // Физиология растений. 1996. Т.43. С. 374379.
109. Мокроносов А.Т., Гавриленко В.Ф. Фотосинтез. Физиолого-экологические и биохимические аспекты // М.: Изд-во МГУ. 1992. 320 с.
110. Павлова Л.Г. Динамика содержания биогенных элементов в иловой воде отложений литорали Дальнего; Пляжа // Физико-химические условия формирования биологической продукции Баренцева моря. Апатиты. Изд-во Кольского филиала АН СССР. 1980. С. 53-60.
111. Перестенко Л.П. Список водорослей литорали губ Плохие и Большие Чевры (Восточный Мурман) // Новости сист. низш. раст. 1964. Т. 1. С. 139-146.
112. Перестенко Л.П. Распределение водорослей на литорали губ Плохие и Большие Чевры (Восточный Мурман) // Тр. ММБИ. 1965. Т. 8(12). С. 13-22.
113. Перестенко Л.П. О происхождении и эволюции ламинариевых водорослей (Laminariales, Phaeophyta) // Бот. журн. 1998. № 5, С. 1-11.
114. Перестенко Л. 77. Эволюция бурых водорослей (Phaeophyta) в мировом океане 1. Особенности географического распространения // Бот. журн. 2000. № 8. С. 1-13.
115. Пигменты пластид зеленых растений и методика их исследований / Под ред. Д.И. Сапожникова. М.; JL: Наука. 1964. 120 с.
116. Полевой В. В., Саламатова Т. С. Физиология роста и развития растений. JL: Изд-во Ленинградского ун-та, 1991. 240 с.
117. Попова И.А., Маслова Т.Г., Попова О.Ф. Особенности пигментного аппарата растений различных ботанико-географических зон // Эколого-физиологические исследования фотосинтеза и дыхания растений / Под редакцией Семихатовой O.A. Л.: Наука. 1989. С. 115-129.
118. Постелъс А., Рупрехт Ф. Изображения и описания растений, собранных в Северном и Тихом океане. СПб., 1840. 180 с.
119. Преображенский Ю.В. Гидрометеорологическая характеристика Баренцева моря // Л. Гидрометеоиздат. 1947. 303 с.
120. Пропп М.В. Верхняя сублитораль Западного Мурмана у Айновых островов // Тр. ММБИ. 1964. С. 5-9.
121. Пропп М.В*. Донные сообщества ламинарий и литотамния в верхней сублиторали Восточного Мурмана // Состав и распределение планктона и бентоса в южной части Баренцева моря. M.-J1. Наука. 1966. С. 92-115.
122. Пропп М.В. Экология прибрежных донных сообществ Мурманского побережья Баренцева моря // JI. Наука. 1971. 128 с.
123. Раймонт Дж. Планктон и продуктивность океана/ // М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983. 568 с.
124. Рощупкин, Д.И. Первичные стадии действия ультрафиолетового излучения на белки, липиды и биологические мембраны. // Докл. симп. IV Международного биофизического конгресса. Пущино. 1973. Т. 3. С. 91-110.
125. Рубин А.Б. Принципы организации и регуляции первичных процессов фотосинтеза Тимирязевские чтения LV. 1995. Пущино. ОНТИ ПНЦРАН. 38 с.
126. Рубин А.Б. Биофизика фотосинтеза и методы экологического мониторинга // 2008. http://library.biophys.msu.ru/PDF/3362.pdf •
127. Рубин А.Б., Кренделева Т.Е. Регуляция первичных процессов фотосинтеза. // Усп. биологич. химии. 2003. Т. 43. С. 225 266.
128. Рубин Б.А., Чернавина И. А., Михеева A.B. Влияние света на активность цитохромоксидазы. // Докл. АН СССР. 1955. Т. 105. № 5. С. 1039.
129. Рыжик И.В. Тетразолиевый метод как способ оценки метаболической активности тканей фукусовых водорослей // Материалы XXVI конф. Мол. уч. ММБИ. Апатиты: Изд-во КНЦ РАН. 2008. с. 124-127
130. Рыжик И.В., Воскобойников Г.М. Видовой состав и размерно-весовые характеристики морских макрофитов Западного Шпицбергена // Сб.мат. 3 мёждунар. конф. Комплексные исследования природы архипелага Шпицберген. Апатиты: Изд-во КНЦ РАН, 2003. €.173-177.
131. Сабинин Д:А., Щапова Т.Ф. Темп роста, возраст и продукция Cystoseira barbata B Черном море // Тр. Ин-та океанологии АН СССР. 1954. Т. VIII. С. 119-146.
132. Сапожников ДЖ Пигменты пластид зеленых растений и методика их исследования. М.-Л.: Наука. 1964. 120 с.
133. Сапожников Д.И. Химическое строение каротиноидов и их превращения в растительной клетке // Успехи соврем, биологии. 1967. Т. 64. С. 248-258.
134. Сарочан В.Ф. Биология японской ламинарии у юго-западного побережья Сахалина. // Изв. ТИНРО. 1963. Т. 49. С. 115-136.
135. Сарынина Р.Н. Сезонная термоструктура толщи воды в Баренцевом море и миграция трески // Физико-химические условия формирования биологической продукции Баренцева моря. Апатиты. Изд-во Кольского филиала АН СССР. С. 29-34.
136. Саускан В .И. Экология и биологическая продуктивность океана: Учебное пособие//Калинингр. ун-т. Калининград. 1996. 72 с.
137. Смирнов В:А. О жизни водорослей в полярных странах // Тр. ГГИ. 1924. № 8. С. 27-46.
138. Соловченко А. Е. Экранирование видимого и УФ излучения как фотозащитный механизм растений. Автореф. дисс. . докт. биол. наук. М., МТУ. 2009. 47 с.
139. Сорокин А. Л., Пелътихина Т. С. Ламинариевые водоросли Баренцева моря//Мурманск. Изд-во ПИНРО. 1991. 187 с.
140. Стадничук И.Н. Фикобилисомы // Итоги науки и техники. Серия Биологическая химия. 46. М: ВИНИТИ. 1991. 170 с.
141. Танцюра А.И. О сезонных изменениях течений Баренцева моря // Тр. ПИНРО: 1959. Вып. XXIV. С. 108-112.1511 Тимирязев К.А. Космическая роль зеленого растения. 1903. Цит. по изд. 1948 г. Избранное, т. 1. М.
142. Титлянов Э-А. Адаптация бентических растений к свету. 1. Значение света в распределении морских прикрепленных водорослей: // Биология моря. 1976. № 1. С. 3-13.
143. Титлянов Э.А. Адаптации водорослей и кораллов к свету // Дисс. . докт. биол. наук. Владивосток. Ин-т биол. моря ДВНЦ АН СССР. 1983. 608 с.
144. Титлянов Э.А., Колмаков ИВ. Лавин П.И. Темновая фиксация неорганического углерода морскими зелеными водорослями // Инф. Бюлл. Сиб. ин-та физиол. и биохим. растений. 10. Иркутск: 1972. С. 47-48.
145. Титлянов Э.А., Колмаков П.В., Лелеткин В.А., Воскобойников Г.М. Новый тип адаптаций водных растений к свету // Биология моря. 1987. №. 2. С. 48-57.
146. Титлянов Э.А., Новожилов А.В., Чербаджи И. И. Физиология анфельции // "Анфельция тобучинская: биология, экология, продуктивность". -М: Наука, 1993. -221 с,
147. Тиховская З.П. Сезонные изменения продуктивности/и фотосинтеза Laminaria saccharina в губе Дальнезеленецкой Баренцева моря // ДАН СССР. 1940. Т. 29. № 2. С. 122-126.
148. Тиховская З.П. Первичная продуктивность фукоидов в* губах Восточного Мурмана. // Тр. МБС. 1948. Т. 1. С. 164-189.
149. Тиховская З.П. Видовой состав морских водорослей в районе Мурманской биологической станции //Тр. МБС. 1948. Т. 1. С. 189-192.
150. Тиховская З.П. Циклы жизни Fucus vesiculosus на берегах Восточного Мурмана // Тр. МБС. 1955. Т. 2. С. 93-107.
151. Тиховская З.П. Последействие температуры на фотосингез, дыхание и; продуктивность Fucus' vesiculosus L. в Баренцевом море. // Бот. журнал. 1960. Т. 45. №8. С. 1147-1160.
152. Толстикова Н.Е. Наблюдения за развитием Fucus vesiculosus L. и Ascophyllum nodosum (L.) Le Jolis в течение года на литорали Восточного
153. Мурмана // Донная флора и продукция краевых морей СССР. М.: Наука, 1980. С. 81-84.
154. Тропин И.В., Макаров М.В. Оценка состояния фотосинтетического аппарата фукоидов Баренцева1 моря после завершения полярной ночи. //' Альгология. 2004. Т. 4. № 4. С. 393-404.
155. Хайлов K.M. Экологический метаболизм в море. Киев: Наук, думка. 1971.252 с.
156. Хайлов K.M., Бурлакова З.И. Включение растворенных органических метаболитов в питание водорослей. // Биохимическая трофодинамика в морских прибрежных экосистемах. Киев. «Наукова думка». С. 28-65.
157. Хайлов K.M., Монина Т.Л. Органотрофия у морских макрофитов как функция плотности их популяции в условиях эксперимента // Биология моря. 1977. Т. 2. С. 11-18.
158. Хайлов K.M., Фирсов Ю.К. Фотосинтез и органотрофия морских макрофитов как функция индивидуального веса их талломов // Биология моря. 1976. Т. 6. С. 47-51.
159. Хочачка П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. М.: Мир. 1988. 568 с.
160. Хромов В.М., Прохорова С.А. Сезонная динамика фотосинтеза некоторых водорослей-макрофитов Баренцева моря. // Тез. докл III всесюзн. совещания по морской альгологии-макрофитобентосу (Севастополь, октябрь 1979 г) Киев. Наукова думка. 1979. С. 127-128.
161. Ченцов Ю. С. Общая цитология. М.: Изд. МГУ. 1984. 344, с.
162. Чернавина И.А., Рубин Б.А. Влияние условий предварительного освещения на устойчивость хлорофилла к разрушению в темноте. // Докл. АН СССР. 1956. Т. 3. № 2. С. 486.
163. Черновская E.H. Гидрологические и гидрохимические условия на литорали Восточного Мурмана и Белого моря // M.-JI. Изд-во АН СССР. 1956. 115 с.
164. Широколобое В.Н. Особенности суточных колебаний в губах Восточного Мурмана двух типов // Природа и хозяйство Севера. 1970. Вып. 4. Мурманск. Мурм. кн. изд-во. С. 98-99.
165. Широколобое В.Н. Характеристика прибрежных вод Мурмана // Физико-химические условия формирования биологической продукции Баренцева моря. Апатиты. Изд-во Кольского филиала АН СССР. 1980. С. 310.
166. Шипилов Э.В., Тарасов Г.А. Региональная геология нефтегазоносных осадочных бассейнов Западно-Арктического шельфа России. Апатиты: Изд-во КНЦ РАН, 1998. 306 с.
167. Шмелева B.JI. Распределение пигментов и фотосинтетической активности по площади таллома морской макроводоросли Laminaria saccharinall Физиол. раст. 1986. Т. 33. Вып. 6. С. 1062-1068.
168. Шмелева В.Л. Изменчивость морфофизиологических характеристик ламинарии в зависимости от факторов окружающей среды. Препр. Апатиты: Изд-во КНЦ АН СССР. 1991. 32 с.
169. Шошина Е.В. Биология некоторых массовых видов красных водорослей Баренцева и Белого морей: Автореф. дис. . канд. биол. наук. JL, 1989. 16 с.
170. Шошина ЕВj Возраст, рост, размножение красной водоросли Phycodrys rubens в Баренцевом и Белом морях: Препр. Апатиты: Изд. КНЦ АН СССР, 1990 а. 46 с.
171. Шошина Е.В. Определение возраста и возрастной состав популяций красной водоросли Odonthalia dentata в Баренцевом и Белом морях. // Биол. моря. 1990 б. № 2. С. 34-38.
172. Шошина Е.В: Размножение красной водоросли Odonthalia dentata (L.) Lyngb. в Баренцевом море. // Биол. моря. 1993. № 1. С. 30-39.
173. Шошина Е.В. Красные водоросли. // Промысловые и перспективные для использования водоросли и беспозвоночные Баренцева и Белого морей. Апатиты: Изд. КНЦ РАН. 1998 а. С. 187-212.
174. Шошина Е.В. Сезонный рост и размножение Palmaria palmata (Rhodophyta) на Мурманском побережье Баренцева моря. // Ботан. журнал. 1998 6. Т. 83. № 8. С. 46-55.
175. Шошина Е.В. Динамика ростовых и репродуктивных процессов // Автореф. дис. на соиск. уч. степ. докт. биол. наук. СПб. 2001. 30 с.
176. Шошина Е.В., Воскобойников Г.М., Макаров В. Н. Оценка состояния пояса макрофитов губы Териберская Баренцева моря. // Препринт. Апатиты. 1994. 30 с.
177. Шошина Е.В., Макаров В Н., Макаров М.В. Особенности биологии ламинариевых водорослей Земли Франца-Иосифа. // Биология моря. 1997. Т. 23. №5. с. 286-292.
178. Экология и биологическая продуктивность Баренцева моря: Материалы конференции : научное издание // Отв. ред. Г. Г. Матишов. М. : Наукш 1990. 117 с.
179. Яковлев Б.А. Климат Мурманской области // Мурманск. Мурм. кн. изд-во. 1961. 180 с.
180. Albright L.J. Morita R.X. Effect of hydrostatic pressure on synthesis of protein, ribonucleic acid, and deoxyribonucleic acid by the psychrophilic marine bacterium, Vibrio marinus // Limno. Oceanogr. 1968. V. 13. N. 4. P. 637-643.
181. Alden J., Hermann R.K. Aspects of the cold- hardiness mechanism in plants. //Bot. Rev. 1971. V. 37. P. 37-142.
182. Algar A.C., Kerr J.T., Currie D.J. A test of Metabolic Theory as the mechanism underlying broad-scale species-richness gradients // Global Ecol. Biogeogr. 2007. V. 16. P. 170-178.
183. Algarra P., de la Villa G., Niell J. Effects of light quality and irradiance level interactions on short-term pigment response of the red alga Corallina elongate. II Mar. Ecol. Prog. Ser. 1991. N. 74. P. 27-32.
184. Allen A.P., Gillooly J.F., Savage V.M., Brown J.H. Kinetic effects of temperature on rates of genetic divergence and speciation // PNAS. 2006. V. 103. N. 24. P. 9130-9135.
185. Allen J.F. Protein phosphorylation in regulation of photosynthesis//i
186. Biochim. Biophys. Acta. 1992. V. 1098. P. 275-335.
187. Amory A.M., Vanlerberghe G.C., Turpin D.H. Demonstration of both a photosynthetic and a nonphotosynthetic C02 requirement for NH/ assimilation In the green alga Selenastrum minutum II Plant Physiol. 1991. N. 95. P. 192-196.
188. Anderson J.M. Photoregulation of the composition, function, and structure of thylakoid membranes. // Annu. Rev. Plant Physiol. 1986. V. 37. P. 93136:
189. Appleman D., Pyfrom H.T. Changes in catalase activity and others responses induced in plants by red and blue light. // Plant Physiol. 1955. V. 30. N 6. P. 543-549.
190. Aro E.-M., Virgin I., Anderson B. Photoinhibition of Photosystem II: inactivation, protein damage, and turnover. // Plant Physiol. 1993. V. 103. P. 835843.
191. As are S.O., Harlin M.M. Seasonal fluctuation in tissue nitrogen for five species of perennial macroalgae in Rhode Island sound. // J. Phycol. 1983. V.19. P. 254-257.
192. Ashikawa I., Miyaia A., Koike H., Inoue Y., Koyama Y Light-induced structural change of (3-carotene in thylakoid membranes. // Biochemistry. 1986. V. 25. P. 6154-6160.
193. Backhausen J.E., Kitzmann C, Scheibe R. Competition between electron acceptors in photosynthesis: regulation of the malate valve during C02 fixation and nitrite reduction //Photosynth. Res. 1994. V. 42. P. 75 86.
194. Baker K.S., Smith R.C. Spectral irradiance penetration in natural waters. // The role of solar ultraviolet radiation in marine ecosystems. Calkins J. (Ed.). Plenum. New York. 1981. P. 233-246.
195. Bartlett D.H. Pressure effects on in vivo microbial processes // Biochim. et Biophys. Acta. 2002. N. 1595. P. 367-381.
196. Beer S., Levy I. Effects of photon fluence rate and light spectrum composition on growth, photosynthesis and pigment relation in Gracilaria sp. // J. Phycol. 1983. N. 19. P. 516-522.
197. Behrenfeld M.J., Hardy J.T. Lee II. H. Chronic effect of ultraviolet-B radiation on growth and cell volume of Phaeodactylum tricornutum (Bacillariophyceae). // J. Phycol. 1992. V. 28. P. 757-760.
198. Behrenfeld M.J., Hardy J., Gucinski H., Hanneman A., Lee IIH., Wones A. Effects of ultraviolet-B radiation on primary production along latitundial transects in the South Pasific ocean. // Mar. Environ. Res. 1993. V. 35. P. 349-363.
199. Behrenfeld M. J., Lee LI H., Small L.F. Interactions between nutritional status and long-term responses to ultraviolet-B radiation stress in a marine diatom. //Mar. Biol. 1994. V. 118. P. 523-530.
200. Beggs C.J., Schneider-Ziebert U., Wellman E. UV-B radiation and adaptive mechanisms in plants. // Stratospheric ozone reduction, solar ultraviolet radiation and plant life. Worrest R.C., Caldwell M.M. (Eds.). NATO ASI Series. 1986. V.G8. P. 235-251.
201. Bell P.R.F., Fu F-X. Effect of light on growth, pigmentation and N2 fixation of cultured Trichodesmium sp. from the Great Barrier Reef lagoon. // Hydrobiologia. 2005. N. 543. P. 25-35.
202. Ben-Amotz, A., Katz, A. Avron, M. Accumulation of B-carotene in halotolerant algae: Purification and characterization of B-carotene-rich globules from Dunaliella bardawil (Chlorophyceae) // J. Phycol. 1982. V. 18 P. 529-537.
203. Bennett A., Bogorad L. Complementary chromatic adaptation in a filamentous blue-green alga. // J. Cell Biology. 1973. N. 58. P. 419 -435.
204. Bennett J. Protein phosphorylation in green plant chloroplast// Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1991. V. 42. P. 281-311.
205. BischofK., HaneltD., Tug H., Karsten U., Brouwer P.E.M., Wiencke C. Acclimation of brown algal photosynthesis to ultraviolet radiation in Arctic coastal waters (Spitsbergen, Norway) // Polar Biol. 1998. V. 20. N. 6. P. 388-395.
206. Bischoff B., Wiencke C. Temperature requirements for growth and survival of macroalgae from Disko Island (Greenland). // Helgoland Marine Research. 1993. V. 47. N. 2. P. 167-191.
207. Blinks L. K. Chromatic transients in the photosynthesis of green, brown and red algae. I I In: Comparative Biochemistry of Photoreaktive Systems. M.B. Allen (Ed.). Acad. Press N.Y. London. I960.
208. Blakefield M.K., Calcins J. Inhibition of phototaxis in Volvox aureus by natural and simulated solar ultraviolet radiation. // Photochem. Photobiol. 1992. V. 55. N. 6. P. 867-872.
209. Bolton J.J. LiiningK. Optimal growth and maximal survival temperatures of Atlantic Laminaria species (Phaeophyta) in culture. // Mar.Biol. 1982. V. 66. P. 89-94.
210. Bornman J. F. Target sites of UV-B radiation in photosynthesis of higher plants. // J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 1989. V. 4. P. 145-158.
211. Boussiba S., Carotenogenesis in the green alga Haematococcus pluvialis: cellular physiology and stress response II Physiol. Plant. 2000. V. 108. P. 111-117.
212. Breeman A.M. Relative importance of temperature and other factors in determining geographic boundaries of seaweeds: Experimental and phenological evidence // Helgoland Marine Research. 1988. V. 42. N. 2 P. 199-241.
213. Breeman A.M., ten Hoopen A. The mechanism of daylength perception in the red alga Acrosymphytonpurpuriferum. II J. Phycol. 1987. V. 23. P. 36-42.
214. Brodie J., Guiry M.D. Life history and photoperiodic responses in Cordylecladia erecta (Rhodophyta) from Ireland. // Br. Phycol. J. 1987. V. 22. P. 300-301.
215. Brodie J., Guiry M.D. Life history and reproduction of Botryocladia ardreana sp. nov. (Rhodymeniales, Rhodophyta) from Portugal. // Phycologia. 1988. V. 27. P. 109-130.
216. Brody M., Brody S.S. Indused changes in the photosynthetic efficiency of Porphyridium cruentum. II Arch. Biochem. Biophys. 1962. N. 96. P. 354-359.
217. Brody M., Emerson R. The effect of wavelength and intensity oa light on the proportion of pigments in Porphyridium cruentum. II Am. J. Bot. 1959. N. 46. P. 433-440.
218. Brown D.L., Bouck G.B. Microtubule biogenesis and cell shape in Ochromonas II. The Role of Nucleating Sites in Shape Development // J. Cell Biol. 1973. V. 56. P. 360-378.
219. Brown T.E., Richardson F.L. The effect of grown environment on the physiology of algae: light intensity. // J. Phycol. 1968. N. 4. P. 38-54.
220. Bruce D., Samson G., Carpenter C. The origins of non-photochemical quenching of chlorophyll fluorescence in photosynthesis: direct quenching by P680+ in photosystem II enriched membranes at low pH. // Biochemistry. 1997. V. 36. P. 749-755.
221. Buchanan B.B. Role of light in the regulation of chloroplast enzymes // Annu. Rev. Plant Physiol. 1980. V. 31. P. 341-374.
222. Buchanan B.B. Regulation of C02 assimilation in oxygen photosynthesis: the ferredoxin / thioredoxin system// Arch. Biochem. Biophys. 1991. V. 288. P. 19.
223. Buchanan B.B. Carbon dioxide assimilation in oxygenic and anoxygenic photosynthesis//Photosynth. Res. 1992. V. 33. P. 147-162.
224. Bukhov N.G., Carpentier R. Measurements of photochemical quenching of absorbed quanta in Photosystem I of intact leaves using simultaneous measurements of absorbance changes at 830 nm and thermal dissipation // Planta. 2003. V. 216. P. 630-638.
225. Bukhov N.G., Heber U., Wiese C, Shuvalov A.V. Energy dissipation in photosynthesis: does the quenching of chlorophyll fluorescence originates from antenna complexes of Photosystem II or from the reaction center? // Planta. 2001. V. 212. P. 749-758.
226. Bukhov N.G., Wiese C, Neimanis S., Heber U. Control of Photosystem II in spinach leaves by continuous light and by light given in the dark. // Photosynth. Res. 1996. V. 50. P. 181-191.
227. Bungard R.A., Ruban A. V., Hibberd J.M., Press M. C., Horton P., Scholes J.D. Unusual carotenoid composition and a new type of xanthophyll cycle in plants // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. N. 3. P. 1135-1139.
228. Burton G.W., Ingold K.U. Beta-Carotene: an unusual type of lipid antioxidant // Science. 1984. V. 224. N. 4649. P. 569-573.
229. Caldwell M.M. Solar ultraviolet radiation as an ecological factor for alpine plants. // Ecol Monogr. 1968. V. 38. P. 243-268.
230. Calkins J., Barcelo J.A. Action spectra. // The role of solar ultraviolet radiation in marine ecosystems. Calcins J. (Ed.). Plenum Press. New York. 1982. P. 143-150.
231. Calkins J., Thordardottir T. The ecological significance of solar UV radiation on aquatic organisms. //Nature (Lond.) 1980. V. 283. P. 563-566.
232. Calkins J., Thordardottir T. Penetration of solar UV-B into waters off Iceland. // The role of solar ultraviolet radiation in marine ecosystems. Calkins J. (Ed.). 1982. P. 309-321.
233. Campana G. L., Zacher K., Fricke A., Molis M., Wulff A., Quartino M. L., Wiencke Ch. Drivers of colonization and succession in polar benthic macro- and microalgal communities // Bot. Mar. 2009. V. 52. P. 655-667.
234. Carbon Dioxide (Section- 4500-C02) // Standard methods for the examination of water and waste water. 17th Ed. Washington, DC, 1989. P. 13-20.
235. Carmona R., Vergara J. J., Lahaye M., Niell F.X. Light quality affects morphology and polysaccharide yield and composition of Gelidium sesquipedale (Rhodophyceae).//J. Appl. Phycol. 1998. N. 10. P. 323-332.
236. Carmona R., Vergara J. J., Perez-Llorens J.L., Figueroa F.L., Niell F.X. Photosynthetic acclimation and biochemical responses of Gelidium sesquipedale cultured in chemostats under different qualities of light. // Mar. Biol. 1996. N. 127. P. 25-34.
237. Carreto J.I., Carignan M.O., Daleo G., De Marko S.G. Occurence of mycosporine-like amino acids in the red tide dinoflagellate Alexandrium excavatum: UV protectiv compaunds. // J. Plane. Res. 1990. V. 12. P. 909-921.
238. Carvalho R.F., Takaki M., Azevedo R.A. Plant pigments: the many faces of light perception. // Acta Physiol Plant DOI 10.1007/sl 1738-010-0533-7. 2010. In press.
239. Chapman A.R.O. Reproduction, recruitment and mortality in two species of Laminaria in southwest Nova Scotia. // J. Exper. Mar. Biol, and Ecol. 1984. V. 78. N. 1-2. P. 99-109.
240. Chapman A.R.O., Craigie J.S. Seasonal growth of Laminaria longicruris: relations with reserve carbohydrate storage and production // Mar. Biol. 1978. N. 46. P. 209-213.
241. Chapman A.R.O., Lindley J.E. Seasonal growth of Laminaria solidungula in the Canadian hight Arctic in relation to irradiance and dissolved nutrient concentrations. //Mar.Biol. 1980. V.57. P. 1-5.
242. Chapman A.R.O., Markham J.V., Luning K. Effects of nitrate concentration on the growth and physiology of Laminaria saccharina (Phaeophyta) in culture. //J.Phycol. 1978. V.14(2). P. 195-198.
243. ChazdonR.L. Sunflecks and their importance to forest understory plants. //Adv. Ecol. Res. 1988. V. 18. P. 1 63.
244. Chazdon R.L., Pearcy R. W. Photosynthetic responses to light variation in rain forest species. I. Induction under constant and fluctuating light conditions. // Oecologia. 1986. V. 69. P. 517 523.
245. Chow W.S., TelferA., Chapman DJ., Barber J. State 1- State 2 transition in leaves and its association with atp-induced chlorophyll fluorescence quenching. //Biochim. Biophys. Acta. 1981. V. 638. P. 60-68.
246. Cie D. K., Edwards M. S. The effects of high irradiance on the settlement competency and viability of kelp zoospores. // J. Phycol. 2008. V. 44. N. 2. P. 495500.
247. Clayton M.N. Culture studies on the life history of Scytothamnus australis and Scytothamnus fasciculatus (Phaeophyta) with electron microscope observations on sporogenesis and gametogenesis. // Br. Phycol. J. 1986. V. 21. P. 371-386.
248. Conjeaud H., Mathis P., Paillotin G. Primary and secondary electron donors in photosystem ii of chloroplasts: rates of electron transfer and location in the membrane. // Biochim. Biophys. Acta. 1979. V. 546. P. 280-291.
249. Connan S., Goulard F., Stiger V., Deslandes E., Ar Gall E. Interspecific and temporal variation in phlorotannin levels in an assemblage of brown algae. H Bot. Mar. 2004. V. 47. P. 410-416.
250. Cook J. S. The quantitative interrelations between ion fluxes cell swelling and radiation doze in ultraviolet hemolysis // J. Gen. Physiol. 1965. V. 48. N. 4. P. 719.
251. Critchley C. Molecular adaptation to irradiance: the dual functionality of photosystem II // Concepts in photobiology: photosynthesis and photomorphogenesis. / Eds Singhai G.S. et al., New Delhi: Narosa Publ. 1999. P. 572-587.
252. Croce R., Weiss S., Bassi R. Carotenoid-binding sites of the major light-harvesting complex II of higher plants // J. Biol. Chem. 1999a. V. 247. N 42. P. 29613-29623.
253. Croce R., Remelli R., Varotto C., Breton J., Bassi R. The neoxanthin binding site of the major light-harvesting complex (LHC-II) of higher plants // FEBS Lett. 1999b. V. 456. P. 1-6.
254. Cullen J.J., Lesser M.P. Inhibition of photosynthesis by ultraviolet radiation as a function of dose and dosage rate: results for marine diatoms. // Mar. Biol. 1991. V. 111. p. 183-190.
255. Cullen J J., Neale P. J., Lesser M.P. Biological weighting function for the inhibition of phytoplancton photosyntesis by ultraviolet radiation. // Science (Wash. D.C.). 1992. V. 258. P. 646-650.
256. Dale H. M. Hydrostatic pressure as the controlling factor in the depth distribution of Eurasian watermilfoil Myriophvllum spicatum L. // Hydrobiologia. 1981. V. 79. P. 239-244.
257. Dale H M. Hydrostatic pressure and aquatic plant growth: a laboratory study //Hydrobiologia. 1984. V. 111. P. 193-200.
258. Dale H. M. Temperature and light: The determining factors in maximum depth distribution of aquatic macrophytes in Ontario, Canada // Hydrobiologia. 1986. V. 133. P. 173-177.
259. DeCew T.C, West J.A. Investigations on the life histories of three Farlowia species (Rhodophyta: Ciytonemiales, Dumontiaceae) from Pacific North America. // Phycologia. 1981. V. 20. P. 342-351.
260. DeCoster B., Christensen R.I., Gebhard R., Lugtenburg J., Farhoosh R., Frank H.A. Low lying electronic states of carotenoids. // Biochim. Biophys. Acta. 1992. V. 1102. P. 107-119.
261. Delosme R., Beal D., Joliot P. Photoacoustic detection of flash-induced charge separation in photosynthetic systems: spectral dependence of the quantum yield // Biochim. Biophys. Acta. 1994. V. 1185. P. 56-64.
262. Demmig-Adams B., Gilmore A.M., Adams III W.W., In vivo function of carotenoids in higher plants 11 The FASEB J. 1996. V. 10. N. 1. P. 403-412.
263. Detxviller S.B. The effect of ultra-violet light on the germination of seeds and growth of seedlings of Ribes rotundifolium. // Mich. J. Forestry. 1931. V. 29. P. 131-133.
264. Deysher L.E., Dean T.A. Critical irradiance levels and the interactive effects of quantum irradiance and dose on gametogenesis in the giant kelp, Macrocystis pyrifera II J. Phycol. 1984. N. 20. P. 520-524.
265. Dohler G. Effects of UV-B radiation on the marine diatoms Lauderia annulata and Thallassiosira rotula grown in different salunities. // Mar. Biol. 1984. V. 83. P. 247-253.
266. Dohler G. Effect of UV-B radiation (290-320 nm) on the nitrogen metabolism of several marine diatoms. II J. Plant Physiol. 1985. V. 118. P. 391400.
267. Donkor V., Hader D.-P. Effects of solar and ultraviolet radiation on motility, photomovement and pigmentation in filamentous, gliding cyanobacteria. //FEMS Microbiol. Ecol. 1991. V. 70. P. 511-515.
268. Drew E.A., Hastings R.M. A year round ecophysiological study of Himantothallus grandifolius (Desmarestiales, Phaeophyta) at Signy island, Antarctica II Phycologia. 1992. N. 31. P. 262-277.
269. Dring M.J. Effects of daylength on growth and reproduction of the Conchocelis-phase of Porphyra tenera. //J. Mar. Biol. Ass. U. K. 1967a. V. 47. P. 501-510.
270. Dring M.J. Phytochrome in red alga, Porphyra tenera. //Nature. 1967b. V. 215. P. 1411-1412.
271. Dring M.J. Light quality and the photomorphogenesis of algae in marine environments. // 4th European Marine Biology Symposium, 1971. Crisp, D.J., ed. Cambridge: University Press. P. 375-392.
272. Dring M.J. Chromatic adaptation photosynthesis in benthic marine algae: an examination of the ecological significance using a theoretical model. // Limnol. Oceanogr. 1981. N. 26. P. 271-284.
273. Dring M.J. Pigment composition and photosynthetic action spectra of sporophytes of Laminaria (Phaeophyta) grown in different light qualities and irradiances. // Br. Phycol. J. 1986. N.21. P. 199-207.
274. Dring M.J. Photocontrol of development in algae // Annu. Rev. Plant. Physiol. 1988. N. 39. P. 157-174.
275. Dring M.J., Liming K. A photoperiodic response mediated by blue light in the brown alga Scytosiphon lomentaria. II Planta. 1975. V. 125. P. 25-32.
276. Dring M.J., Lüning K. Photomorhogenesis of brown algae in the laboratory and in the sea // Proceedings of the international Seaweed symposium. 1981. N.8. P. 159-166.
277. Dring M.J., Makarov V., Shoshina E., Lorenz M., Lüning K. Influence of ultraviolet-radiation on chlorophyll fluorescence and growth in different life-history stages of three species of Laminaria (Phaeophyta). // Mar. Biol. 1996. V. 126. P. 183-191.
278. Dring M.J., West J.A. Photoperiodic control of tetrasporangium formation in the red alga Rhodochorton purpureum II Planta. 1983. V. 159. P. 143150.
279. Dromgoole F.l. Light fluctuations and photosynthesis in marine algae. I. Adjustment of rate in constant and fluctuating light regimes. // Funct. Ecol. 1987. V. l.P. 377-386.
280. Dromgoole F.l. Light fluctuations and photosynthesis in marine algae. II. Photosynthetic response to frequency, phase ratio and amplitude. // Funct. Ecol. 1988. V. 2. P. 211-219.
281. Dulbecco R. Reactivation of ultraviolet-inactivated bacteriophage by visible light//Nature (Lond.). 1949. N. 163. P. 949-950.
282. Dunlap W.S., Chalker B.E., Oliver J.K. Bathyrythmic adaptations of reef building corals at Davies Reef, Australia. Ill UV-B absorbing compounds. // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1986. V. 104. P. 239-248.
283. Durant J.P., Spratling L., O'Kelley J.C. A study of light intensity, periodicity, and wavelength on zoospore production by Protosiphon botryoides Klebs. // J. Phycol. 2007. V. 4. N. 4. P. 356-362.
284. Duysens L. N. M. Photosynthesis. // In: Progress in Biophysics. Pergamon Press. 1964. V. 14. P. 1-104.
285. Ekelund N. G.A. Effects of UV-B radiation on growth and motility of four phytoplankton species // Phys. Plant. 1990. V. 78. P. 590-594.
286. Eltinge E. T. The effect of ultraviolet radiation upon higher plants. // Ann. Mo. Bot. Gdn. 1928. V. 15. P. 169-240.
287. Ekelund N. G.A. Effects of UV-B radiation on growth and motility of four phytoplankton species. // Phys. Plant. 1990. V. 78. P. 590-594.
288. Ekelund N.G.A. The effects of UV-B radiation on dinoflagellates. // J. Plant Physiol. 1991. V. 138. P. 274-278.
289. Emerson R. The quantum yield of photosynthesis. // Annual Rev. Plant Physiol. 1958. N. 9. P. 1-24.
290. Emerson R. Yield of photosynthesis from simultaneous illumination with pairs of wavelengths. // Science. 1958a. V. 127. N 3305. P. 1059.
291. Emerson R., Chalmers R., Cederstrand C. Some factors influencing the long-wave limit of photosynthesis. // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1957. V. 43. N 1. P. 133-143.
292. Emerson R., Lewis C.M. The dependence of the quantum yield of Chlorella photosynthesis on wave length of light. // Amer. J. Bot, 1943. V. 30, N 3. P. 165-178.
293. Emerson R., Rabinowitch E. Red drop and role of auxiliary, pigments in photosynthesis. // Plant Physiol. 1960. V. 35. N. 4. P. 477-485.
294. Engelmann Th.W. Ueber Sauerstoffausscheidung von Pflanzenzellen im Mikrospektrum II Pflügers Archiv European Journal of Physiology. 1882. V. 27 N. l.P. 485-489.
295. Engelmann Th.W. Ueber Sauerstoffauscheidung von Pflanzenzelleii in Mikrospectrum. //Bot. Ztg. 1882.V. 40. N. 26. P. 419.
296. Engelmann Th.W. Untersuchungen über die quantitativen Berichtun-gen zwischen Absorption des Lichtes und Assimilation in Pflanzenzellen. // Bot. Ztg. 1884. V. 42. N. 81. P. 97.
297. Engelmann W. How plants identify the season by using a circadian clock. // Rhythms in plants: phenomenology, mechanisms, and adaptive significance. Mancuso S. Shabala S. (Eds.). Springer-Verlag Berlin Heidelberg. 2007. P. 181198.
298. Ensmingera I,. Buscha F., Huner N. P. A. Photostasis and cold acclimation: sensing low temperature through photosynthesis // Physiologia Plantarum. 2006. V. 126. P. 28^14.
299. Escoubas J.M., Lomas M., LaRoche J., Falkowski P.G. Light intensity regulation of cab gene transcription is signaled by the redox state of the plastoquinone pool. //Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1995. V. 92. P. 10237-10241.
300. Farman J.C. Gardiner B.G., Shanklin J.D. Large loses of total ozone in Antarctica reveal seasonal CIO4/NO4 interaction. //Nature. Lond. 1985. V. 314. P. 207-210.
301. Farquhar G.D., von Cammerer S., Berry J.A. A Biochemical model of photosynthetic co2 assimilation in leaves of C3 species // Planta. 1980. V. 149. P. 78-90.
302. Faust M.A., Sager J. C., Meeson B. W. Response of Prorocentrum mariae-leboureae (Dinophycea) to light of different spectral qualities and irradiances: growth and pigmentation. // J. Phycol. 1982. N. 18. P. 349-356.
303. Ferling E. Die Wirkungen des erhöhten hydrostatischen Druckes auf Wachstum und Differenzierung submerser Blutenpflanzen II Planta. 1957. V. 49. P. 235-270:
304. Fortes M.D., Liming K. Growth rates of North Sea macroalgae in relation to temperature, irradiance and photoperiod. // Helgolander Meeresunters. 1980. V. 34. P. 15-29.
305. Foyer C, Furbank R., Harbinson J., Norton P. Mechanisms contributing to photosynthetic control of electron transport by carbon assimilation in leaves // Photosynth. Res. 1990. V. 25. P. 83-100.
306. Franklin L.A., Krabs G., Kuhlenkamp R. Blue light and UV-radiation control the synthesis of mycosporine-like amino acids in Chondrus crispus (Florideophyceae). // J. Phycol. 2002. N. 37. P. 257-270.
307. Fredriksen S., Sjotun K, Lein T.E., Rueness J. Spore dispersal in Laminaria hyperborea (Laminariales, Phaeophyceae) // Sarsia. 1995. V. 80. P. 4754.
308. Freiberg A., Ellervee A., Kukk P., Laisaar A., et al. Pressure effects on spectra of photosynthetic light-harvesting pigment-protein complexes // Chem. Phys. Lett. 1993. V. 214. N. 1. P. 10-16.
309. Fridborg G., Ericsson T. Partial reversal by cytocinin and (2-chloretyl) trimetyl ammonium chloride of near-ultraviolet inhubited growth and morphogenesis in callus cultures. // Physiol. Plant. 1975. V. 34. P. 162-166.
310. Fritz S. Solar energy on clear and cloudy days // Scientific Mountly. 1957. V. 84. N. 2. P. 55-65.
311. Fukuhara Y., Mizuta H., Yasui H. Swimming activities of zoospores in Laminaria japónica (Phaeophyceae). // Fisheries Science.2003. V. 68. N. 6. P. 1173-1181.
312. Fuller H.J. Stimulatory effects of ultraviolet radiatin on higher plants. // Science. 1930. V. 75. P. 535-536.
313. Gaillard J. L'iridescence chez deux Dictyotales, Dictyota dichotoma (Huds.) Lamouroux et Zonaria tournefortii (Lamour.) Montagne. Cytologie des celluloses iridescentes // Botaniste. 1972. V. 55. N 6. P. 71-79.
314. Gagne J.A., Mann K.H., Chapman A.R.O. Seasonal patterns of growth and storage in Laminaria longicrurus in relation to differing patterns of availability of nitrogen in the water. // Mar. Biol. 1982. V. 69. P. 91-101.
315. Galston A. W., Baker R. S. Studies on the physiology of light action. III. Light activation of a flavoprotein enzyme by reversal of naturally occurring inhibition. //Am. J. Bot. 1951. V. 38. N. 3, P. 190-196.
316. Genty B., Briantais J.-M., Baker N.R. The Relationship between the quantum yield of photosynthetic electron transport and quenching of chlorophyll fluorescence // Biochim. Biophys. Acta. 1989. V. 990. P. 87- 92.
317. Genty B., Harbinson J., Baker N.R. Relative quantum efficiencies of the two photosystems of leaves in photorespiratory and non-photorespiratory conditions // Plant Physiol. Biochem. 1990a. V. 28. P. 1-10.
318. Genty B., Harbinson J., Briantais J.-M., Baker N.R. The relationship between non-photochemical quenching of chlorophyll fluorescence and the rate of photosystem 2 photochemistry in leaves // Photosynth. Res. 1990b. V. 25. P. 249257.
319. Gerard V.A. Growth and utilisation of internal nitrogen reserves by the giant kelp Macrocystis pyrifera in a low-nitrogen environment. // Mar. Biol. 1982. V. 66. P. 27-35.
320. Gerard V.A. The light environment of a giant kelp forest: influence of Macrocystis pyrifera on spatial and temporal variability. // Mar. Biol. 1984. V. 84. P. 189-195.
321. Gessner F. Der Druck in seiner Bedeutung fíir das Wachstum submerser Blütenpflanzen // Planta. 1952. V. 40. P. 391-397.
322. Gessner F. Hydrostatischer Druck und Pflanzenwachstum. // Encyclopedia of plant physiology. Ruhland W. (Ed.).Berlin: Springer Verlag. 1961. V. 16. P. 668-690.
323. Gieskes W.W.C., Вита A.G.J. UV damage to plant life in a photobiologically dynamic environment: the case of marine phytoplancton. // Plant Ecol. 1997. V. 128. P. 16-25.
324. Gillooly J.F., Allen A.P., Savage V.M., Charnov E.L., West G.B., Brown J.H. Response to Clarke and Fraser: effects of temperature on metabolic rate // Funct. Ecol. 2006. V. 20. P. 400-404.
325. Gilmore A., Yamamoto H.Y. Linear model relating xanthophylls and lumen acidity to non-photochemical fluorescence quenching: evidence that antheraxanthin explains zeaxanthin-independent quenching. // Photosynth. Res. 1993. V. 35. P. 67-78.
326. Glazer A.N. Structure and molecular organization of the photosynthetic accessory pigments of cyanobacteria and red algae // Mol. Cell. Biochem. 1977. V. 18. P. 125-140.
327. Glazer A.N. Light harvesting by phycobilisomes. // Annu. Rev. Biophys. Chem. 1985. N. 14. P. 47-77.
328. Glazer A.N. Light Guides. Directional energy transfer in a photosynthetic antenna // J. Biol. Chem. 1989. V. 264. N. 1. P. 1-4.
329. Godinez-Ortega J.-L., Snoeijs P., Robledo D., Freile-Pelegrin Y., Pedersen M. Growth and pigment composition in the red alga Halymenia floresii cultured under different light qualities. // J. Appl. Phycol. 2008. N. 20. P. 253-260.
330. Gomez I., Wiencke C. Seasonal growth and photosynthetic performance of the antarctic macroalga Desmarestia menziesii (Phaeophyceae) cultivated under fluctuating antarctic daylengths //Bot. Acta. 1997. V. 110. N 1. P. 25-31.
331. Gomez I., Wulff A., Roleda M. Y, Huovinen P., Karsten U., Ouartino M. L., Dunton K., Wiencke C. Light and temperature demands of marine benthic microalgae and seaweeds in polar regions // Bot. Mar. 2009. V. 52. N. 6. P. 593608.
332. Govihdgee, Rabihowitch E., Thomas J. Inhibition of photosynthesis in certain algae by extreme red'light. // Biophys. J. 1960. V. 1. N. 2. P. 91-97.
333. Graham L.E., Graham J.M., Kranzfelder J.A. Irradiance, daylength and temperature effects on zoosporogenesis in Coleochaete scutata (Charophyceae). // J. Phycol. 1985a. V. 22. N. 1. P. 35-39.
334. Graham J.M.„ Graham L.E., Kranzfelder J.A. Light, temperature and photoperiod as factors controlling reproduction in Ulothrix zonata (Ulvophyceae). // J. Phycol. 19856. V. 21. N. 2. P. 235-239.
335. Graham L.E., Graham J.M., Kranzfelder J.A. Irradiance, daylength and temperature effects on zoosporogenesis in Coleochaetes cutata (Charophyceae). // J. Phycol. 1986. V. 22. N. 1. P. 35-39.
336. Graham M. H. Effect of high irradiance on recruitment of the giant kelp Macrocystis (Phaeophyta) in shallow water. // J. Phycol. 1996. V. 32. N. 6. P. 903906.
337. Granbom M., Pedersen M., Kadel P., Liining K. Circadian rhythm of photosynthetic oxygen evolution in Kappaphycus alvaresii (Rhodophyta):dependence of light quantity and quality // J. Phycol. 2001. N. 37 P. 1020-1025.
338. Greene R. M., Gerard V.A. Effects of high-frequency light fluctuations on growth and photoacclimation of the red alga Chondrus crispus // Mar. Biol. 1990. V. 105 P. 337-344.
339. Grobe C.W., Murphy T.M. Inhibition of growth of Ulva expansa (Chlorophyta) by ultraviolet-B radiation. //J. Phycol. 1994. V. 30: P. 783-90.
340. Guiry M.D. Photoperiodic and temperature responses in the growth and tetrasporogenesis of Gigartina acicularis (Rhodophyta) from Ireland // Helgolander Meeresunters. 1984. V. 38. P. 335-347.
341. Guiry M.D., Cunningham E.M. Photoperiodic and temperature responses in the reproduction of north-eastern Atlantic Gigartina acicularis (Rhodophyta: Gigartinales). // Phycologia. 1984. V. 23. P. 357-367.
342. Guiry M.D., Kee W.R., Garbary D.J. Morphology, temperature, and photoperiodic responses in Audouinella botryocarpa (Harvey) Woelkerling (Acrochaetiaceae, Rhodophyta) from Ireland. // G. Bot. Ital. 1987. V. 121. P. 229246.
343. Guiry M.D., Maggs C.A. Reproduction and life history of Meredithia microphylla (J. Ag.) J. Ag. (Kallymeniaceae, Rhodophyta) from Ireland. // G. Bot. Ital. 1985. V. 118. P. 105-125.
344. Guiry M.D., West J.A. Life history and hybridization studies on Gigartina stellata and Petrocelis cruenta (Rhodophyta) in the North Atlantic. // J. Phycol. 1983. V. 19. P. 474-494.
345. Gust D. Molecular wires and girders. // Nature. 2002. V. 372. P. 133-134.
346. Hader D.-P. The effect of enchanced solar UV-B radiation on motile organisms. // Stratospheric ozone reduction, solar ultraviolet radiation and plant life, (eds.: Worrest R.C., Caldwell M.M.) NATO ASI Series. 1986. V. 8. P. 223233.
347. Hader D.-P. Penetration and effects of solar UV-B on phytoplancton and macroalgae. //Plant. Ecol. 1997. V. 128. P. 4-13.
348. Hader D.-P., Hader M.A. Inhibition of motility and phototaxis in the green flagellate, Euglena gracilis, by UV-B radiation. // Arch. Microbiol. 1988. V. 150. P. 20-25.
349. Hader D.-P., Liu S.-M. Effects of artificial and solar UV-B radiation on gravitactic orientation of the dinoflagellate Peridinium gatunense. // FEMS Microbiol. Ecol. 1990. V. 73. P. 331-338.
350. Hader D.-P., Worrest R.C. Effect of enhanced solar ultraviolet radiation on aquatic ecosystem. // Photochem. Photobiol. 1991. V. 53. P. 717-725.
351. Hader D.-P., Worrest R.C., Kumar H.D., Smith R.C. Effect of increased solar ultraviolet radiation on aquatic ecosystems. // AMBIO. 1995. V. 24. P. 174180.
352. Halldal P. The photosynthetic apparatus of microalgae and its adaptation to environmental factors. // Photobiology of microorganisms. L.: Wiley-Intersci. 1970. P. 17-55.
353. Halldal P., French C.S. Algal growth in crossed gradients of light intensity and temperature. // PI. Physiol. 1958. V. 33. P. 249-252.
354. Han T., Kain J.M. Blue light sensitivity of UV-irradiated young sporophytes of Laminaria hyperborea //J. Exp.Mar. Biol. Ecol. 1992. N. 158. P. 219-230.
355. Han T., Kain J.M. Blue light reactivation in ultraviolet-irradiated young sporophytes of Alaria esculenta and Laminaria saccharina (Phaeophyta) // J. Phycol. 1993. N. 29. P. 79-81.
356. Han O., Shinohara K, Kakubari Y., Mukai Y. Photoprotective role of rhodoxanthin during cold acclimation in Cryptomeria japonica. II Plant Cell Envir. 2003. V. 26. P. 715-723.
357. Hanagata N., Dubinsky Z. Secondary carotenoid accumulation in Scenedesmus komarekii (Chlorophyceae, Chlorophyta) // J. Phycol. 1999. V. 35 P. 960-966.
358. Harm W. Biological effects of ultraviolet radiation. // IUPAB Biophysics Series 1. Cambrige University Press. Cambrige. 1980. 216 p.
359. Harries R. An investigation by cultural methods of some of the factors influencing the development of the gametophytes and the early stages of the sporophytes of Laminaria digitata, L. saccharina and L. cloustoni. II Ann. Bot. 1932. N. 46. P. 893-928.
360. Harvey JM. The action of light on Calanus finmarchicus (Gunner) as determined by its effect on the heart rate. // Contrib. Can. Biol. 1930. V. 5. P. 8592.
361. Hawkins B.A. Ecology's oldest pattern? //Trends Ecol. Evol. 2001. V. 16. N. 8. P. 470.
362. Henley W.J., Dunton K.H. A Seasonal comparison of carbon, nitrogen and pigment content in Laminaria solidungula and L. saccharina (Phaeophyta) in the Alaskan Arctic // J. Phycol. 1995. N 31. P. 325-331.
363. Henley W.J., Dunton K.H. Effects of nitrogen supply and continuous darkness on growth and photosynthesis of the arctic kelp Laminaria solidungula 11 Limnol. Oceanogr. 1997. N. 42. P. 209-216.
364. Henry E.C. The life history of Phyllariopsis brevipes (= Phyllaria reniforme) (Phyllariaceae, Laminariales, Phaeophyceae), a kelp with dioecious but sexually monomorphic gametophytes. // Phycologia/ 1987a. V. 26. P. 17-22.
365. Henry E.C. Primitive characters and a photoperiodic response in Saccorhiza dermatodea (Laminariales, Phaeophyceae). // Br. Phycol. J. 1987b. V. 22. P. 23-31.
366. Hess J., Tolbert N. E. Changes in Chlorophyll a/b Ratio and Products of I4C02 Fixation by Algae Grown in Blue or Red Light. // Plant Physiology 1967 N. 42. P. 1123-1130.
367. Hibben S.G. Influence of colored light on plant growth. // Trans. Ilium. Eng. Soc. 1924. V.19.P. 1000-1010.
368. Hillis-Colinvaux L. Deep water populations of Halimeda in the economy of an atoll. // Bull. Mar. Science, 1986a. V. 38. N. 1. P. 155-169.
369. Hillis-Colinvaux L. Halimeda growth and diversity on the deep fore-reef of Enewetak Atoll. // Coral Reefs. 1986b. V. 5. N. 1. P. 19-21.
370. Ho Z.Z., Moore T.A., Lin S.H, Hanson R.C. Pressure dependence of the absorption spectrum of p-carotene // J. Chem. Phys. 1981. V. 74. P. 873-882.
371. Hoek van den C. The distribution of benthic marine algae in relation to the temperature regulation of their life histories // Biol. J. Linn. Soc. 1982a. V. 18. P. 81-144.
372. Hoek van den C. Phytogeographic distribution groups of benthic marine algae in the North Atlantic Ocean. A review of experimental evidence from life history studies // Helgoland Marine Research. 1982b. V. 35. N. 2. P. 153-214.
373. Hoek van den C. World-wide latitudinal and longitudinal seaweed distribution patterns and their possible causes, as illustrated by the distribution of Rhodophytan genera // Helgoland Marine Research. 1984. V. 38. N. 2. P. 227-257.
374. Hojerslev N.K., Aas E. A relationship for the penetration of ultraviolet B radiation into the Norvegian sea. // J. Geophys. Res. 1991. V. 96. N. 9. P. 1700317005.
375. Holm-Hansen O. Short and long term effects of UV-A and UV-B on marine phytoplankton productivity. II Photochem. Photobiol. 1997. V. 65. P. 266268.
376. Holm-Hansen O., Helbling E.W., Lubin D. Ultraviolet radiation in Antarctica:, inhibition of primary production. // Photochem. Photobiol. 1993.V. 58. P. 567-570.
377. Hommersand M., Haxo F. The enhancement spectrum of photosynthesis inElodea. //Plant Physiol. 1962. N. 37. Suppl. P. 902.
378. Honkanen T., Jormalainen V. Genotypic variation in tolerance and resistance to fouling in the brown alga Fucus vesiculosus II Oecologia. 2005, 144: 196-205.
379. Horton P., Hague A. Studies on the induction of chlorophyll fluorescence in isolated barley protoplasts: IV. Resolution of non-photochemical quenching // Biochim. Biophys. Acta. 1988. V. 932. P. 107-115.
380. Howe G.T., Brunner A.M. An evolving approach to understanding plant adaptation // New Phytologist. 2005. V. 167. N. 1. P. 1-5.
381. Humbeck K., Hoffmann B., Senger H. Influence of energy phlox and quality of light on molecular organization of photosynthetic apparatus in Scenedesmus. II Planta. 1988. N. 173. P. 205-212.
382. Humbeck K., Senger H. The blue light factor in sun and shade plant adaptation. // In: Blue light effects in biological systems (Ed.: Senger H.). Springer-Verlag. 1984. P. 344-351.
383. Huner N.P.A., G.Öquist., F. Sarhan Energy balance and acclimation to light and cold. // Trends in plant science. 1998. V. 3. N. 6. P. 224-230.
384. Huntsmann A.G. Limiting factors fog marine animals. 1. The letal effect of sunlight. // Contrib. Can. Biol. 1925. V. 2. P. 83-88.
385. Hutchinson A.H., Newton D. The specific effects of monochromatic light on growth of yeast. II Can. J. Res. 1930. V. 2. P. 249-263.
386. Huth K. Einfluss von tageslange und beleuchtungsstarke auf den generationswechsel bei Batrachospermum moniliforme. // Ber. Dt. bot. Ges. V. 92. P. 467-472.
387. Jakobi C. Untersuchungen über die Wirkung des ultravioletten Lichtes auf Keimung und Wachstum. //Beitr. Biol. Pflanzen. 1928. V. 16. P. 405-464.
388. Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining Chlorophylls a, b, Ci and c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton // Biochem. Physiol. Pflanzen. 1975. V. 167. P. 191-194.
389. Jennings J.G., Steinberg P.D. Phlorotannins versus other factors affecting epiphyte abundance on the kelp Ecklonia radiata II Oecologia. 1997. V. 109 P. 461-473.
390. Jerlov N. G. Marine Optics. // Elsevier Scientific. Amsterdam. 1976. 2311. P
391. Jerlov N. G. The optical classification of the sea water in the euphotic zone. II Rep. Kjob. Univ. Inst. Fus. Oceanogr. 1978. V. 36. P. 1-46.
392. Jokiel P.L., York R.H. Importance of ultraviolet radiation in photoingibition of microalgal growth. // Limnol. Oceanogr. 1984. V. 29. P. 192199.
393. Jordan, B.R., Chow W.S., Strid A., Anderson J.M. Reduction in cab and psb A RNA trancripts in response to supplementary ultraviolet-B radiation. // FEBS Letters. 1991. V. 284. N. 1. P. 5-8.
394. Jordan B.R., He J., Chow W.S., Anderson J.M. Changes in mRNA levels and polypeptide subunits of ribulose 1,5-bisphosphate carboxilase in response to supplementary ultraviolet-B radiation. // Plant. Cell Environ. 1992. V 15.P. 91-98.
395. Jorgensen E. G. The adaptation of plankton algae. 4. Light adaptation in different algae species. //Physiol, plant. 1969. V. 22. P. 1307-1315.
396. Kain J.H. Aspects of the biology of Laminaria hyperborean. V. Comparison with early stages of competitors. I I J. Mar. Biol. Assoc. U.K. 1969: V.49.N2. P.455-473.
397. Kain J.M. Continuous recording of underwater light in relation to Laminaria distribution. // Fourth European Marine Biology Symposium. Crisp D.J. (Ed.). 1971. Cambridge University Press. P. 335-346.
398. Kain J.M. A view of the genus Laminaria. // Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev. 1979. V. 17. P. 101-161.
399. Kain J.M. Photoperiod and temperature as triggers in, the seasonality of Delesseria sanguínea. II Helgolinder Meeresunters. 1987. V.41.P. 355-370.
400. Karentz D., Cleaver J.E., Mitchell D.L. Cell survival characteristic and molekular responses of Antarctic phytoplancton to ultraviolet-B radiation. // J. Phycol. 1991a. V. 27. P. 326-341.
401. Karentz D., McEuen F.S., Land M.S., Dunlap W.C. Survey of mycosporine-Iike amino acids compounds in Antarctic marine organisms: potential protection from ultraviolet exposure. // Mar. Biol. 1991b. V. 108. P. 157-166.
402. Keeley J.E. CAM photosynthesis in submerged aquatic plants. // Bot. Rev. 1998. N. 64. P. 121-175.
403. Kjellman F.R. The algae of the Arctic sea // K. Svens, Acad. Handl. Boktryckeriet, Stockholm. 1883. 350 pp.
404. Kiirikki M. Mechanisms affecting macroalgal zonation in the northern Baltic Sea // Eur. J. Phycol. 1996. V. 31. P. 225-232.
405. Kim J., ZoBell C.E. Agarase, amylase, cellulase, and chitinase activity at deep-sea pressures // J. Oceanograph. Soc. Japan. 1972. V. 28. P. 131-137.
406. Klenell M., Snoeijs P., Pedersén M. The involvement of a plasma membrane ET-ATPase in the blue-light enhancement of photosynthesis in Laminaria digitata (Phaeophyta). // J. Phycol. 2002. V. 38. N. 6. P. 1143-1149.
407. Klugh A.B. The effect of ultra-violet component of sunlight on certian marine organisms. // Can. J. Res. 1929. V. 1. P. 100-109.
408. Klugh A.B. The effect of ultra-violet component of the sun's radiation upon some aquatic organisms. // Can. J. Res. 1930. V. 2. P. 312-317.
409. Koivikko R., Loponen J., Honkanen T., Jormalainen V. Contents of soluble, cell-wall-bound and exuded phlorotannins in the brown alga Fucus vesiculosus, with implications on their ecological functions. // J. Chem. Ecol. 2005. V.31,N. l.P. 195-212.
410. Kohler B.E., Spangler C, Westerfeld C. The 2'A state in the linear polyene 2,4,6,8,0,12,14,16-octadecaoctaene // J. Chem. Phys. 1988. V. 89. P. 5422-5428.
411. Kowallik W., Schurmann R. Chlorophyll at Chlorophyll- b ratios of Chlorella vulgaris in blue and red light. // In: Blue light effects in biological systems (Ed.: SengerH.). Springer-Verlag. 1984. P. 352-358.
412. Krieger A., Weis E. Energy-dependent quenching of chlorophyll-a-fluorescence, the involvement of proton-calcium exchange at Photosystem II // Photosynthetica. 1992. V. V. 27. P. 89-98.
413. Krieger A., Rutherford A.W., Jegerschold C. Thermoluminescence measurements on chloride-depleted and calcium-depleted Photosvstem II. // Biochim. Biophys. Acta. 1998. V. 1364. P. 46-54.
414. Kuhlbrandt W, Wang D.N. Fujiyosh, Y. Atomic model of plant light-harvesting complex by electron crystallography // Nature. 1994. V. 367. P. 614621.
415. Larkum A.W., Wood W.F. The effect of UV-B radiation on photosynthesis and respiration on phytoplancton, benthic macroalgae and seagrasses. //Photosynth. Res. 1993. V. 36. P. 17-23.
416. Leatherman G., Durantini E.N., Gust D., Moore T.A., Moore A.L., Stone S., Zhou Z, Rez P., Liu Y.Z., Lindsay S.M. Carotene as a molecular wire: conducting atomic force microscopy. // J. Phys. Chem. B. 1999. V. 103. N. 20. P. 4006-4010.
417. Lee A.J., Brinkhuis B.H. Seasonal light and temperature interaction effects on development of Laminaria saccharina (Phaeophyta) gametophytes and juvenile sporophytes. // J. Phycol. 1988. V. 24. P. 181-191.
418. Leedale G.F. Euglenoid flagellates. New York, 1967. 242 p.
419. Lesser M.P., Cullen J.J., Neale P.J. Carbon uptake in a marine diatom during acute exposure to ultraviolet B radiation: relative importance of damage and repair. // J. Phycol. 1994. V. 30. P. 183-192.
420. Leukart P:, Luning K. Minimum spectral light requirements and maximal light levels for long-term germling growth of several red algae from different water depths and a green alga. II Eur. J. Phycol. 1994. N. 29. P. 103-112.
421. Ley A.C., Butler W.L. Effects of chromatic adaptation on the photochemical apparatus of photosynthesis in Porphyridium cruentum. // Plant. Physiol. 1980. N. 65. P. 714-722.
422. Liaaen-Jensen S. Carotenoids in chemosystematics // Carotenoids: Biosynthesys and Metabolism. V. 3 / Eds. Britton J., Liaaen-Jensen S., Pfander H. Basel: Boston; Berlin: Birkhauser Verlag. 1998. P. 217-247.
423. Lohr M., Wilhelm C. Algae displaing the didinoxanthin cycle also possess the violaxanthin cycle // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. N 15. P. 8784-8789
424. Lohr M., Wilhelm C. Xanthophyll synthesis in diatoms: quantification of putitative intermediates and comparison of pigment conversion kinetics with rate constant derived from a model // Planta. 2001. V. 212. P. 382-391.
425. Lopez-Figueroa F. Red, green and blue light photoreceptors controlling chlorophyll a, biliprotein and total protein synthesis in the red algae Chondrus crispus. II Br. Phycol. J. 1991. N. 26. P. 383-393.
426. Lopez-Figueroa F., Aguilera J., Niell F.X. Red and blue light regulation of growth and photosynthetic metabolism in Porphyra umbilicalis (Bangiales, Rhodophyta). // Eur. J. Phycol. 1995. N. 30. P. 11-18.
427. Lopez-Figueroa F., Niell F.X. Red-light and blue-light photoreceptors controlling chlorophyll a synthesis in the red alga Porphyra umbilicalis and in the green alga Ulva rigida. II Physiologia. PI. 1989. N. 76. P. 391-397.
428. Lopez-Figueroa F., Niell F.X. A possible control by phytochrome-like photoreceptor of chlorophyll synthesis in the green alga Ulva rigida. II Photochem. Photobiol. 19896. N. 50. P. 261-265.
429. Lopez-Figueroa F., Niell F.X. Effect of light quality on chlorophyll and biliprotein accumulation in seaweeds. // Mar. Biol. 1990. N. 104. P. 321-327.
430. Lopez-Figueroa F., Perez R., Niell F.X. Effects of red and far-red light on chlorophyll and biliprotein accumulation in the red alga Corallina elongate. II J. Photochem. Photobiol. 1989. N. 4. P. 185-193.
431. Lorenzen C.J. Extinction of light in the ocean by the phytoplancton. // J. Cons. Int. Explor. Mer. 1972. V. 34. P. 262-267.
432. Lubin D., Frederick J.E. Measurements of enchanced spring time ultraviolet radiation at Palmer Station Antarctica // Geophys. Res. Let. 1989. V.16. P. 783-785.
433. Liider U., Clayton M. N. Induction of phlorotannins in the brown macroalga Ecklonia radiata (Laminariales, Phaeophyta) in response to simulated herbivory the first microscopic study // Planta. 2004.V. 218, N 6. P. 928-937
434. Liider U.H., Knoetzel J., Wiencke C. Acclimation of photosynthesis and pigments to seasonally changing light conditions in the endemic Antarctic red macroalga Palmaria decipiens. II Polar Biol. 2001. V. 24. P. 598-603.
435. Liider U.H., Wiencke C., Knoetzel J. Acclimation of photosynthesis during and after six months of darkness in Palmaria decipiens (Rhodophyta): a study to simulate Antarctic winter sea ice cover. // J. Physiol. 2002. V. 38. P. 904913.
436. Liining K. Control of algal life history by daylength and temperature. I I The Shore Environment: Method and Ecosystems (Price, J. H., Irvine, D. E. & Famham, W. F., editors). 1980a. V. 2. P. 915-945.
437. Liining K. Critical levels of light and temperature regulating the gametogenesis of three Laminaria species (Phaeophycea) // J. Phycol. 1980b. N. 16. P. 1-5.
438. Liining K. Photomorphogenesis of reproduction in marine macroalgae. // Ber. Dt. Bot. Ges. 1981. V. 94. P. 401-417.
439. Liining K. Temperature tolerance and biogeography of seaweeds: The marine algal flora of Helgoland (North Sea) as an example // Helgoland Marine Research. 1984. V. 38. N. 2. P. 305-317.
440. Liining K. New frond formation in Laminaria hyperborea (Phaeophyta): a photoperiodic response II Br. phycol. J. 1986. V. 21. P. 269 273.
441. Liining K. Photoperiodic control of sorus formation in the brown alga Laminaria saccharina//Mar. Ecol. Prog. Ser. 1988. V. 45. P. 137-144
442. Liining K. 1990. Seaweeds: Their Environment, Biogeography and Ecophysiology. John Wiley and Sons, Inc., New York.
443. Liining, K. Circannual growth rhythm in a brown alga Pterygophora californica. // Bot. Acta. 1991. V. 104. P. 157-162.
444. Liining K. Day and night kinetics of growth rate in green, brown and red seaweeds //J. Phycol. 1992. N 28. P. 794-803.
445. Liining K. Environmental and internal control of seasonal growth in seaweeds//Hydrobiol. 1993. V. 260/261. P. 1-14.
446. Liining K. Circadian growth rhythm in juvenile sporophytes of Laminariales (Phaeophyta) // J. Phycol. 1994. V.30. P. 193-199.
447. Liining K., Dring M.J. Reproduction induced by blue light in female gametophytes of Laminaria saccharina II Planta. 1972. N. 104. P. 252-256.
448. Liining K., Dring M.J. Reproduction, growth and photosynthesis of gametophytes of Laminaria saccharina growth in blue and red light. // Mar. Biol. 1975. N. 29. P. 195-200.
449. Liining K., Dring M.J. Continuous underwater light measurements near Helgoland (North Sea) and its significance for characteristic light limits in sublittoral region // Helgolander wissenschaftlice Meeresuntersuchungen 1979. N. 32. P. 403-424.
450. Liining K., Kadel P. Day length range for circannual rhythmicity in Pterygophora californica (Alariaceae, Phaeophyta) and synchronization of seasonal growth by daylength cycles in several other brown algae. // Phycologia. 1993. V. 33. P. 379-387.
451. Liining K., Neushul M. Light and temperature demands for growth and reproduction of Laminarian gametophyte in southern and central California. // Mar. Biol. 1978. N. 45. P. 297-309.
452. Lüning K., Titlyanov E.A., Titlyanova T.V. Diurnal and circadian periodicity of mitosis and growth in marine algae. III. The red alga Porphyra umbilicalis II Eur. J. Phycol. 1997. V. 32. P. 167-173.
453. Maegawa M, Kunieda M., Kida W. The influence of ultraviolet radiation on the photosynthetic activity of several red algae from differents depth. // Jpn. J. Phycol. 1993. V. 41. P. 207-214.
454. Maggs C.A., Guiry M.D. Morphology, phenology and photoperiodism in Halymenia latifolia Kutz. (Rhodophyta) from Ireland. // Bot. Mar. 1982. V. 15. P. 589-599.
455. Maggs C.A., Guiry M.D. Life history and reproduction of Schmitzia hiscockiana sp. nov. (Rhodophyta, Gigartinales) from the British Isles. // Phycologia. 1985. V. 24. P. 297-310.
456. Maggs C.A., Guiry M.D. Environmental control of macroalgal phenology. // Plant life in aquatic and amphibious habitats (Crawford R.M.M. ed.). Blackwell, Oxford. 1987. P. 359-373.
457. Makarov M.V., Voskoboinikov G.M. The influence of ultraviolet-b radiation on spore release and growth of the kelp Laminaria saccharina. II Bot. Mar. 2001. N. 44. P. 89-94.
458. Makarov V.N., Makarov M.V., Schoschina E.V. Seasonal dynamics of growth in the Barents sea seaweeds: endogenous and exogenous regulation. // Bot. Mar. 1999. V. 42. N. 1. P. 43-49.
459. Makarov V.N., Schoschina E.V., Lüning K. Diurnal and circadian periodicity of mitosis and growth in marine algae. I. Juvenile sporophytes of Laminariales (Phaeophyta) // Eur. J. Phycol. 1995. V. 30. P. 261-266.
460. Marchant H.J., Davidson A. T., Kelly G.J. UV-B protecting compounds in the marine alga Phaeocystis pouchetii from Antarctica. // Mar. Biol. 1991. V. 109. P. 391-395.
461. Maslova T.G., Popova I.A. Adaptive properties of plant pigment systems // Photosynthetica. 1993. V.29, № 2. P. 195-203.
462. Maxwell D.P., Falk S., Trick C.G., Huner N.P. Growth at low temperature mimics high-light acclimation in Chlorella vulgaris II Plant Physiol. 1994. V.105.P. 535-543.
463. Mawson T., Cummins W. R. Low temperature acclimation of guard cell chloroplasts by the arctic plant Saxifraga cernua L. // Plant, Cell Environ. 1991. V. 14. N. 6. P. 569-576.
464. Mayhoub H. Cycle de développement du Calosiphonia vermicularis (J. Ag.) Sch. (Rhodophycées, Gigartinales). Mise en évidence d'une réponse photopériodique. //Bull. Soc. Phycol. Fr. 1976. V. 21. P. 48.
465. Melis A., Nemson J.A., Harrison M.A. Damage to functional components and partial degradation of Photosystem II reaction center proteins upon chloroplast exposure to ultraviolet-B radiation. // Biochem. Biophys. Acta. 1992. V. 1100. P. 312-320.
466. Mezzadral C., Vareton E. Azione dei raggi di Wood (circa 3600 A) sulla germinazione dei semi e sull accrescemento delle planti. // Rend. R. Acad. Lincei. 1929. V. 10. P. 281-289.
467. Mitchel D.L., Nairn R.S. The biology of the (6-4) photoproduct. // Photochem. Photobiol. 1989. V. 49. P. 805-819.
468. Mitchel D.L., Karentz D. The induction and repair of DNA photodamage in the environment. // In: Environmental UV Photobiology (eds. Young A. R., Björn L., Moan J., Nultsch W.). Plenum Press, New York. 1993. P. 345-377.
469. Mizuta H., Kai T., Tabuchi K, Yasui H. Effects of light quality on the reproduction and morphology of sporophytes of Laminaria japónica (Phaeophyceae). // Aquaculture Research. 2007. Vol. 38. N. 12. P. 1323 1329.
470. Molina-Hoppner A., Sato T., Kato Ch., et al. Effects of pressure on cell morphology and cell division of lactic acid bacteria // Extremophiles. 2003. V. 7. P. 511-516.
471. Monroe K, Poore A.G.B. Light quantity and quality induce shade-avoiding plasticity in a marine macroalga. // J. Evol. Biol. 2005. N. 18(2). P.426-435
472. Morgan R.M., Ivanov A.G., Priscu J.C., Maxwell D.P., Huner N.P.A. Structure and composition of the photochemical apparatus of the Antarctic green alga, Chlamydomonas subcaudata. //Photosynt. Res. 1998. V. 56. P. 303-314.
473. Müller R., Laepple T., Bartsch I., Wiencke C. Impact of oceanic warming on the distribution of seaweeds in polar and cold-temperate waters // Bot. Mar. 2009. V. 52. N. 6. P. 617-638.
474. Myers J., French S. Relationships between time course, chromatic transient, and enhancement phenomena of photosynthesis. // Plant Physiol. 1960. V. 35. N 6. P. 963-969.
475. Nachtwey D.S., Caldwell M.M, Biggs R.H. (Ed.) Impacts of climatic change on the biosphere. U.S. Dept. Transportation. Washington, D.C. 1975.
476. Nadson G., Philippov G. Uber die Reizwerkung ultravioletter Strahlen auf das Wachstum von Hefe und Pilzen. // Vestnik Roentgenalogii Radiol. 1927. V. 5. P. 425-431.
477. Nakahara N. Alternation of generations of some brown algae in unialgal and axenic cultures. // Sci. Pap. Inat. algol. Res. Hokkaido Univ. 1984. V. 7. N 2. P. 77-194.
478. Nanba O., Satoh K. Isolation of a photosystem II reaction center consisting of D-l and D-2 polypeptides and cytochrome b-559. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1987. V. 84. P. 109-112.
479. Nilsson A. Ultraviolet reflection. Life under thinning ozone layer. // Chichester. England. 1996.
480. Nimura K., Mizuta H. Inducible effects of abscisic acid on sporophyte discs from Laminaria japonica Areschoug (Laminariales, Phaeophyceae). // J. Appl. Phycol. 2002. V. 14. N. 3. P. 159-163.
481. Novaczekl, Breeman A.M. Thermal ecotypes of amphi-Atlantic algae. II. Cold-temperate species (Furcellaria lumbricalis and Polyides rotundus) // Helgoland Marine Research. 1990. V. 44. N. 3-4. P. 475-485.
482. Nussberger S., Dorr K., Wang, D.N., Kuhlbrandt W. Lipid-proiein interactions in crystals of plant light-harvesting complex // J. Mol. Biol. 1993. V. 234. P. 347-356.
483. Odegaard S., Sjotun K., Eiliv Т., Aas E. Sporophyte formation of Laminaria hyperborea (Laminariales, Phaeophyceae) related to photon doses of blue light in the sea // Sarsia. 1998. N. 83. P. 301-308.
484. Ohki K., Fujita Y. Photoregulation of phycobilisomes structure during complementary chromatic adaptation in the marine cyanophyte Phormidium sp. C86. // J. Phycol. 1994. N. 28. P. 803-808.
485. Owens T.G., Alberte R.S., Gallagher J.С. Photosynthetic light-harvesting function of violaxanthin in Nannochlopsis spp. (Eustigmatophyseae) // J. Phycol. 1987. V. 23. P. 79-85.
486. Oza R.M. Culture studies on induction of tetraspores and their subsequent development in the red alga Falkenbergia rufolanosa Schmitz. // Bot. Mar. 1976. V. 20. P. 29-32.
487. Palenik В., Price N.M., Morel F.M.M. Potential effects of UV-B on the chemical environment of marine organisms: review. // Envir. Polut. 1991. V. 70. P. 117-30.
488. Palmer D. S., Albright L. J. Salinity Effects on the Maximum Hydrostatic Pressure for Growth of the Marine Psychrophilic Bacterium, Vibrio marinus // Limnol. Oceanogr. 1970. V. 15. N. 3. P. 343-347.
489. Parke M. Studies on British Laminariaceae. I. Growth in Laminaria saccharina (L.) Lamour. // J. Mar. Biol. Assoc. U.K. 1948. V. 27. P. 651-709.
490. Passaquet C., Thomas J.C, Caron L., Hauswirth N., PuelF., Berkalojf C. Light-harvesting complexes of brown algae. Biochemical characterization and immunological relationships. //FEBS Lett. 1991 Mar 1 l;280(l):21-6.
491. Pearcy R.W. Photosynthetic utilization of lightflecks by understory plants. // Aust. J. PI. Physiol. 1988. V. 15. P. 223-238.
492. Pearcy R. W. Sunflecks and photosynthesis in plant canopies. // A. Rev. PL Physiol. (PL molec. Biol.) 1990. V. 41. P. 421-453.
493. Pearcy R.W., Chazdon R.L., Kirschbaum M.U.E. Photosynthetic utilization of lightflecks by tropical forest plants. // Prog, photosynth. Res. 1987. V. 4. P. 257-260.
494. Penuelas J. High oxygen tension inhibits vascular aquatic plant growth in deep waters // Photosynthetica. 1987. V. 21. N. 4. P. 494-502.
495. Penuelas J. An experimental system to study the effects of pressure, light and temperature on macrophyte production. // Pol. Arch. Hydrobiol. 1988a. V. 1. N. 35. P. 17-21.
496. Penuelas J. Effects of hydrostatic pressure and irradiance on two submerged aquatic plants. An experimental study // Pol. Arch. Hydrobiol. 1988b. V. 35. N. l.P. 23-32.
497. Perrier-Cornet J.-M., Hayert M., Gervais P. Yeast cell mortality related to a high-pressure shift: occurrence of cell membrane permeabilization // J. Appl. Microbiol. 1999. V. 87. P. 1-7.
498. Peters A.F. Culture studies of a sexual life history in Myriotrichia clavaeformis (Phaeophyceae, Dictyosiphonales). // Br. Phycol. J. 1988. V. 23. P. 299-306.
499. Pierschle K, von Wettstein F. Einige vorlaufige Beobachtungen über die Wirkung verschiedener Licht intensitaten und quantaten auf höhere Pflanzen unter Konstanten Bedingingen. // Biol. Zblt. 1940. V. 60. P. 626-650.
500. Plumley F.G., Schmidt G.W. Reconstitution of chlorophyll a/b light-harvesting complexes: Xanthophyll-dependent assembly and energy transfer. // Cell Biol. 1987. V. 84. P. 146-150.
501. Pollard D.E. W The effects of rapidly changing light on the rate of photosynthesis in largetooth aspen (Populus grandidentata). // Can. J. Bot. 1970. V. 48. P. 823 829.
502. Pope D. H., Berger L. R. Inhibition of metabolism by hydrostatic pressure: What limits microbial growth? // Arch. Mikrobiol. 1973. V. 93. P. 367370.
503. Popp H.W., Charlton F.B. Effects of ultraviolet radiation upon germination and seedling development. // Penn. Agric. Stat. Bull. 1988. 366 p.
504. Porter C.L., Bockstahler H. W. Concerning the reaction of certain fungi to various wavelengths of light. //Proc. Ind. Acad. Sci. 1929. V. 38. P. 133-135.
505. Post A., Larkum A.W.D. UV-absorbing pigments, photosynthesys and UV exposure in Antarctica: comparison of terristrial and marine algae. // Aquat. Botan. 1993. V. 45. P. 231-243.
506. Powell J.H. A short day photoperiodic response in Constantinea subulifera. II Am. Zool. 1986. V. 26 N. 2. P. 479-487.
507. PrechtH. etal. (Eds.) Temperature and life. Springer. 1973. 779 p.
508. Purohit R., Singh S. P. Germination and growth of Potamogeton pectinatus (L.) at different water depths in lake Nainital, Uttar Pradesh, India // Internat. Rev. gesamt. Hydrobiol. Hydrograph. 1985. V. 72. N. 2. P. 251-256.
509. Quick W.P., Stitt M. An examination of factors, contributing to non-photochemical quenching of chlorophyll fluorescence in barley leaves // Biochim. Biophys. Acta. 1989. V. 977. P. 287-296.
510. Rabbani, S., Beyer, P., Lintig, J., Hugueney, P., Kleinig, H. Induced p-carotene synthesis driven by triacylglycerol deposition in the unicellular alga Dunaliella bardawil//Plant Physiol., 1998, V. 116, P. 1239-1248.
511. Ragan M.A. The high molecular weight polyphloroglucinols of the marine braun alga Fucus vesiculosus L.: degradative analysis // Canadian Journal of chemistry. 1985. V. 63. N. 2. P. 294-303.
512. Rajagopal S., Bukhov N.G., Carpentier R. Photoinhibitory light-induced changes in the composition of chlorophyll-protein complexes and photochemicalactivity in Photosystem-I submembrane fractions. // Photochem. Photobiol. 2003. V. 77. P. 284-291.
513. Rajagopal S., Bukhov N.G., Tajmir-Riah A.-T., Carpentier R. Control of energy dissipation and photochemical activity in Photosystem I by NADP-dependent reversible conformational changes // Biochemistry. 2003. V. 42. P. 11839-11845.
514. Ramus J. A physiological test of the theory of complementary chromatic adaptation. II. Brown, green and red seaweeds. // J. Phycol. 1983. N. 19. P. 173178.
515. Ramus J., Lemons F., Zimmerman C. Adaptation of light-harvesting pigments to downwelling light and the consequent photosynthetic performance of the eulittoral rockweeds Ascophyllum nodosum and Fucus vesiculosus. // Mar. Biol. 1977. N. 42. P. 293-303.
516. Raven J.A. Biochemical disposal of excess of H+ in growing plants // New Phytol. 1986 V. 104. P. 175-206.
517. Rentschier H.G. Photoperiodische Induktion der Monosporenbildung bei Porphyra tenera Kjellm. (Rhodophyta-Bangiophyceae). Planta (Berlin) 1967. V. 76. P. 65-74.
518. Richardson S.D. Radicle elongation of Pseudotsuga menzeisii in relation to light and gibberelic acid. // Nature. 1958. V. 181. P. 429-430.
519. Richardson N. Studies on the photobiology of Bangia fuscopurpurea. II J. Phycol. 1970. V.6. P. 215-219.
520. Rietema H., Klein A.W.O. Environmental control of the life cycle of Dumontia contorta (Rhodophyta) kept in culture. // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1981. V. 4. P. 23-29.
521. Ronchi V. The nature of light. An historical survey. // Heinemann. London. 1970.
522. Rudiger W., Lopez-Figueroa F. Photoreceptors in algae. // Photochem. Photobiol. 1992. V. 55. P. 949-954.
523. Rueness J., Asen P.A. Field and culture observations on the life history of Bonnemaisonia asparagoides (Woodw.) C. Ag. (Rhodophyta) from Norway. // Bot. Mar. 1982. V. 25. P. 577-587.
524. Sacanishi Y., Saga N. The sensitivity of cultured cells to UV-rays in a Laminariales plant. //Nippon Suisan Gakkaishi. 1990. V. 56. N. 10. P. 1699.
525. Sage R.F., Kubien D.S. The temperature response of C3 and C4 photosynthesis // Plant, Cell and Environment. 2007. V. 30. P. 1086-1106.
526. Sagert S., Schubert H. Acclimation of the photosynthetic apparatus of Palmaria palmata (Rhodophyta) to light qualities that preferentially excite photosystem I or photosystem II. // J. Phycol. 1995. N. 31. P. 547-554.
527. Sale A. J. H, Gould G. W., Hamilton W. A. Inactivation of bacterial spores by hydrostatic pressure // J. gen. Microbiol. 1970. V. 60. P. 323-334.
528. Salisbury F.B. Responces to photoperiod. // Encyclopedia of plant physiology/ New Seies. V. 12A. (Lange O.L., Nobel P.S., Osmond C.B., Ziegler
529. H. eds.) Springer-Verlag, Berlin. P. 135-167.
530. Salmon E. D. Pressure-induced depolymerization of spindle microtubules
531. Changes in birefringence and spindle length // J. Cell Biol. 1975. V. 65. N. 9. P. 603-614.
532. Saffo M.B. New light on seaweeds // Bioscience, 1987. V. 37, N. 9, P. 654-664.
533. Sancar A. Structure and function of DNA photolyase. // Biochem. 1994. V. 33. P. 2-9.
534. Sanders R.T., Giese A.C. The effect of ultraviolet light on the sodium and potassium composition of resting yeast cells. // J. Gen. Physiol. 1959. V. 42. N. 3. P. 589-607.
535. Senger H., Bauer B. The influence of light quality an adaptation and function of the photosynthetic apparatus. // Photochem. Photobiol. 1987. N. 45. P.939-946.
536. Schaffelke B., LüningK. A circannual rhythm controls seasonal growth in the kelps Laminaria hyperborea and L. digitata from Helgoland (North Sea). // Eur. J. Phycol. 1994. V. 29. P. 49-56.
537. Schmid R., Dring M.J. Circadian rhythm and fast responses to blue light of photosynthesis in Ectocarpus (Phaeophyta, Ectocarpales) I. Characterization of the rhythm and the blue-light response II Planta. 1992. V. 187. P. 53-59.
538. Schmitz K., Lobban C.S. A survey of translocation in Laminariales (Phaeophyta). // Mar. Biol. 1976, V. 36. P. 207-216
539. Schoenwaelder M. E. A., Clayton M. N. The role of the cytoskeleton in brown algal physode movement // Eur. J. Phycol. 1999. V. 34: P 223-229.
540. Schofield O. Kroon B.M.A., Prezelin B.B. Impact of ultraviolet-B radiation on photosystem II activity and its relationship to the inhibition of carbon fixation rates for Antarctic ice algae communities. // J. Phycol. 1995. V. 31. P. 703715.
541. Schwarz J. R., Landau J. V. Hydrostatic pressure effects on Escherichia coli: site of inhibition of protein synthesis // J. Bactriol. 1972. V. 109. N. 2. P. 945948.
542. Schweiger J., Lang M., Lichtenthaler H. K. Differences in fluorescence excitation spectra of leaves between stressed and non-stressed plants. // J. Plant. Physiol. 1996. V. 148. N. 5. P. 536-547.
543. Shanab S., Abdel-Rahman M.H. Action de la photopériode sur la croissance de laPhéophycézBachelotia antillarum. II Cryptogam. Algol. 1988. V. 9. P. 87-100.
544. Shi C., Kataoka H., Duan D. Effects of blue light on gametophyte development of Laminaria japónica (Laminariales, Phaeophyta). // Chin. J. Oceanol. Limnol. 2005. V. 23. N. 3, P. 323-329.
545. Schoschina E. V., Makarov V.N., Voskoboinikov G.M., van der Hoek C. The growth and reproductive phenology of nine intertidal algae on the Murman coast of the Barents sea. !l Bot. Mar. 1996. V. 39. P. 83-93.
546. Shi C., Kataoka H., Duan D. Effects of blue light on gametophyte development of Laminaria japonica (Laminariales, Phaeophyta). // Chin. J! Oceanol. Limnol. 2005. V. 23. No. 3. P. 323-329.
547. Siefermann-Harms D. Carotenoids in photosynthesis. 1. Location in photosynthetic membranes and light-harvesting function // Biochem. Biophys. Acta. 1985. V. 811. P. 325-355.
548. Sisson W.B. Effects of UV-B radiation on photosynthesis. // Stratospheric ozone reduction, solar ultraviolet radiation and plant life (eds.: Worrest R.C., Caldwell M.M.). NATO ASI Series. 1986.Vol. G8. P. 161-171.
549. Sivalingam P.M., Nisizava K. Ozone hole and its correlation with the characteristic UV-absorbing substanse in marine algae. // Jpn. J. Phycol. 1990. V. 38. P. 365-370.
550. Sivalingam P.M., Ikawa T., Yokohama Y., Nisizawa K. Distribution of the 334 UV-absorbing substance in algae, with special regard of its special physoilogical roles. // Bot. Mar. 1974. V. 17. P. 23-29.
551. Sjotun K., Gunnarsson K. Seasonal growth pattern of an Icelandic Laminaria population (Section Simplices, Laminariaceae, Phaeophyta) containing solid and hollow stiped plants // Eur. J. Phycol. 1995. V. 30. P. 281-287.
552. Smith R.C., Baker K.S. Penetration of UV-B and biologically effective dose-rates in natural waters. // Photochem. Photobiol. 1979. V. 29. P. 311-323.
553. Smith R.C., Prezelin B.B., Baker K.S., Bidigare R.R., Boucher N.P., Coley T., Karentz D., Maclntyre S., Matlick H.A., Menzies D., Ondrusek M., Wan
554. Z, Waters KJ. Ozone depletion: Ultraviolet radiation and phytoplancton biology in Antarctic waters. // Science. 1992. V. 255. P. 952-959.
555. Sofronova V.E., Chepalov V.A., Petrov K.A. Carotenoid involvement in the regulation of Spirodela polyrhiza (L.) Schleid resistance to cold shock. // J. Stress Physiol. Biochem. 2006. V. 2. N. 1. P. 16-20.
556. Sonoike K, Terashima I., Iwaki M., Itoh S. Destruction of Photosystem I iron-sulfur centers in leaves of Cucumis sativus L. by weak illumination at chilling temperatures. // FEBS Lett. 1995. V. 362. P. 235-238.
557. Spence, D.H.N. The zonation of plants in freshwater lakes // Adv. ecol. Res. 1981. V. 12. P. 37-125.
558. SteinhoffF. S., Wiencke C., Muller R., Bischof K. Effects of ultraviolet radiation and temperature on the ultrastructure of zoospores of the brown macroalgaLaminaria hyperborea. //PlantBiol. 2008. V. 10. N. 3. P. 388-397.
559. Stengel D.B., Dring M.J. Seasonal variation in the pigment content and photosynthesis of different thallus regions of Ascophyllum nodosum {Fucales, Phaeophyta) in relation to position in the canopy // Phycologia. 1998. V. 37. N. 4. P. 259-268.
560. Stoy V. Action of different light qualities on simultaneous photosynthesis and nitrate assimilation in wheat leaves. // Physiol. Plant. 1955. V. 8. N. 14. P. 963-986.
561. Subczynski W.K., Markowska E., Gruszecki W.I., Sielewiesiuk J. Effects of polar carotenoids on dimyristoylphosphatidylcholine membranes: a spin-label study. //Biochim. Biophys. Acta. 1992. V. 1105. N. 1. P. 97-108.
562. Surif M.B., Raven J.A. Exogenous inorganic carbon sources for photosynthesis in seawater by members of the Fucales and the Laminariales
563. Phaeophyta): ecological and taxonomic implications // Oecologia. 1989. V. 78. P. 97-105.
564. Talarico L., Cortese A. Response of Audouinella-saviana (Meneghini) Woelkerling (Nemaliales, Rhodophyta) cultures to monochromatic light. Hydrobiologia. 1993. N. 261. P. 477-484.
565. Talarico L., Maranzana G. Light and adaptive responses in red macroalgae: an overview.// J Photochem. Photobiol. B-Biol. 2000. N. 56. P. 1-11.
566. Terborgh J. Effects of red and blue light on the growth and morphogenesis of Acetabularia crenuhla.ll Nature. 1965. N. 207. P. 1360-1363.
567. Terry L.A., Moss B.L. The effect of photoperiod on receptacle initiation in Ascophyllum nodosum. //Br. Phycol. J. 1980. V. 15. P. 291-301.
568. Tevini M. Ozone depletion and biological consequences for terrestrial plants and aquatic ecosystems. // BfS-ISH-Ber. 1995. N. 171. P. 25-31.
569. Thielmann J., Galland P., Senger H. Action spectra for photosynthetic adaptation in Scenedesmus obliquus. I. Chlorophyll biosynthesis under autotrophic conditions. // Planta. 1991. N. 183. P. 334-339.
570. Titlyanov E.A., Titlyanova T.V., Liming K. Diurnal and circadian periodicity of mitosis and growth in marine algae. II. The green alga Ulva pseudoculyata II Eur. J. Phycol. 1996. V. 31. P. 181-188.
571. Turpin D.H., Vanlerberghe G.C., Amory A.M., Guy R.D. The inorganic carbon requirements for nitrogen assimilation 11 Can. J. Bot. 1991. V. 69. P. 1139 1145.
572. Van Baalen C. The effects of ultraviolet radiation on a coccoid blue-green algae: survival, photosynthesis and photoreactivation // Plant Physiol. 1968. N. 43. P. 1689-1695.
573. Van Baalen C., ODonnel R. Action spectra for ultraviolet killing and photoreactivationin the blue-green alga Agmenellum quadruplicatum. U Photochem. Photobiol. 1972. N.15 P. 269-274.
574. Van Leeuwe M.A., Stefels J. Effects of iron and light stress on the biochemical composition of antarctic Phaeocystis sp. (Prymnesiophyceae). II. Pigment composition // J. Phycol. 1998. V. 34. N. 3. P. 496-503.
575. Vanti W. N„ Davies-Colley R. J., Clayton J. S., Coffey В. T. Macrophyte depth limits in North Island (New Zealand) lakes of differing clarity // Hydrobiologia. 1986. V. 137. P. 55-60.
576. Vavasseur A., Raghavendra A.S. Guard cell metabolism and C02 sensing //NewPhytologist. 2005. V. 165. P. 665-682.
577. Veen A., Reuvers M., Roncak P. Effects of acute and chronic UV-B exposure on a green algae: a continuous culture stady using a computer-controlled dynamic light regime. // Plant. Ecol. 1997. V. 128. P. 28-40.
578. Vesk M., Jeffrey S.W. Effects of blue-green light on photosynthetic pigments and chloroplast structure in unicellular marine algae from six classes. // J. Phycol. 1977. N. 13. P. 280-288.
579. Vinebrook R. D., Leavitt P. R. Effects of ultraviolet radiation on periphiton in an alpine lake. // Limnol. and Oceanogr. 1996. V. 41. N. 5. P. 10351040.
580. Vinogradova, K.L. The checklist of the marine algae from Spitsbergen. // Bot. Zhr. SSSR. 1995 V. 80. N. 6. P. 50-61.
581. Voskoboinikov G.M., Breeman A. M., Hoek C. Influence of temperature and photoperiod on the rate of growth of algae from the Barents Sea // Tes. IY Intern: Phycological Congress. Leiden. 1997. P. 234
582. Voskoboinikov G., Makarov M., Maslova T., Sherstneva O. The photosynthetic apparatus of Ulvaria obscura during the polar day and polar night // Phycologia. V. 40 (4) Suppl. 2001. P. 83.
583. Waaland J.R., Dickson L.G., Carrier J.E. Conchocelis growth and photoperiodic control of conchospore release in Porphyra torta (Rhodophyta). // J. Phycol. 1987. V. 23. P. 399-406.
584. Wang, B., Zarka, A., Trebst, A., Boussiba, S. Astaxanthin accumulation in Haematococcus pluvialis (Chlorophyceae) as an active photoprotective process under high irradiance // J. Phycol., 2003, V. 39, P. 1116-1124.
585. Wegand A. Das ultraviolette ende des sonnenspectrums in verschiedenen hohen bis 9000 nm. // Physik Zeit. 1913. V. 14. P. 1144-1160.
586. Weis E., Berry JA. Quantum efficiency of Photo system II in relation to energy-dependent quenching of chlorophyll fluorescence. // Biochim. Biophys. Acta. 1987. V. 894. P. 198-208.
587. Weller J.L., Kendrick R.E. Photomorphogenesis and photoperiodism in plants. // Photobiology. The Science of Life and Light. Björn L.O. (Ed.). 2008. P. 417-463.
588. Went F. The periodic aspect of photoperiodism and thermoperiodicity. // In: Photoperiodism and related phenomena in plants and animals (Withrow R., ed.). American Association for the Advancement of Science, Washington. DC. 1959. P. 551-564.
589. Werbin, H., Rupert C.S. Presence of photoreactivating enzyme in blue-green algal cells. //Photochem. Photobiol. 1968. N.7. P. 225-230.
590. West J.A. Morphology and reproduction of the red alga Acrochaetium pectinatum in culture. // J. Phycol. 1968. V. 4. P. 89-99.
591. Weston E., Thorogood K., Vinti G., Lopez-Jues E. Light quantity controls leaf-cell and chloroplast development in Arabidopsis thaliana wild type and blue-light-perception mutants. //Planta. 2000. V. 211. P. 807-815.
592. Wiencke C., Clayton M.N., Gomez, I. Iken K, Lüder U.H., Amsler C.D., Karsten U., Hanelt D., Bischof K, Dunton K. Life strategy, ecophysiology andecology of seaweeds in polar waters // Rev Environ Sci Biotechnol. 2007. V. 6. P. 95-126.
593. Wiencke C., Gomez L, Dunton K. Phenology and seasonal physiological performance of polar seaweeds // Bot. Mar. 2009. V. 52, N. 6. P. 585-592.
594. Wiencke C„ Roleda M.Y., Gruber A., Clayton M. N., Bischof K. Susceptibility of zoospores to UV radiation determines upper depth distribution limit of Arctic kelps: evidence through field experiments. // J. Ecol. 2006. V. 94 N. 2. P. 455-463.
595. Williams E., Lambert J., O'Brien P., Houghton J.A. Evidence for dark repair of far ultraviolet light damage in the blue-green alga Gloeocapsa alpicola. II Photochem. Photobiol. 1979. V. 29. P. 543-547.
596. Willig M.R., Kaufman D.M., Stevens R.D. Latitudinal gradients of biodiversity: pattern, process, scale, and synthesis // Annu. Rev. Ecol. Evol. Syst. 2003. V. 34. P. 273-309.
597. Wing S. R., Patterson M. R. Effects of wave-induced lightflecks in the intertidal zone on photosynthesis in the macroalgae Postelsia palmaeformis and Hedophyllum sessile (Phaeophyceae) // Mar. Biol. 1993. V. 116. P. 519-525.
598. Winkel-Shirley B. Biosynthesis of flavonoids and effects of stress // Current Opinion in Plant Biology. 2002. V. 5 P. 218-223.
599. Wood W.F. Effect of solar ultra-violet radiation on the kelp Eclonia radiata. //Mar. Biol. 1987. V. 96. P. 143-50.
600. Wood W.F. Photoadaptive responses of the tropical red alga Euchemia striatum Schmitz (Gigartinales) to ultraviolet radiation. // Aquatic Botany. 1989. V. 33. P. 41-51.
601. Worrest R.C., Dyke H.V., Thomson B.E. Impact of enhanced simulated solar ultraviolet radiation upon a marine community. // Photochem. Photobiol.1978. V. 27. P. 471-478.
602. Worrest R.C. Impact of enhanced solar UV-B radiation upon the marine ecosystem. // Biological effects of UV-B radiation (eds.: Bauer H., Caldwell M.M., Tevini M., Worrest R.C.). Munich. 1982. P. 204-215.
603. Worrest R.C. Review of literature concerning the impact of UV-B radiation upon marine organisms. // The role of solar ultraviolet radiation in marine ecosystems (ed.: Calcins J.). 1982. P. 429-457.
604. Worrest R.C. Impact of solar ultraviolet-B radiation (290-320 nm) upon marine microalgae. // Physiol. Plant. 1983. V. 58. P. 428-34.
605. Wulff A., Iken K., Ouartino M. L., Al-Handal A., Wiencke C., Clayton M. N. Biodiversity, biogeography and zonation of marine benthic micro- and macroalgae in the Arctic and Antarctic // Bot. Mar. 2009. V. 52. N. 6. P. 491-507.
606. Xu Z., Dapeng L., Hanhua H., Tianwei T. Growth promotion of vegetative gametophytes of Undaria pinnatifida by blue light. // Biotechnol. Lett. 2005. N. 27. P. 1467-1475.
607. Yabu H. Early development stages of several species of Laminariales in Hokkaido. // Hem. Fac. Fish. Hokkaido Univ. 1964. V. 12. P. 1-72.
608. Yano Y., Nakayama A., Ishihara K„ Saito H. Adaptive changes in membrane lipids of barophilic bacteria in response to changes in growth pressure // Appl. Env. Microbiol. 1998. V. 64. N. 2 P. 479^185.
609. Yocum C. S., Blinks L.R. Light-induced efficiency and pigment alteranions in red algae. // J. gen. Physiol. 1958. N. 41. P. 1113-1117.
610. Yopp J. K, Albright G., Miller DM. Effects of antibiotics and ultraviolet radiation on the halophilic blue-green algae, Aphanothece halophytica. II Bot. Mat,1979. N. 22. P. 267-272
611. Yoshida T., Sivalingam P.M. Isolation and characterization of the 337nm UV-absorbing substancein red alga Porphyra yezonensis. II Plant Cell Physiol. 1970. V. 11. P. 427-434.
612. Yuasa M., Ono T., Inoue Y Effects of hydrostatic pressure on photosynthetic systems. I. Preferential destruction of the 02-evolving center // Plant and Cell Physiol. 1995. V. 36. N. 6. P. 1081-1088.
613. Zacher K., Rautenberger R., Hanelt D., Wulff A., Wiencke C. The abiotic environment of polar benthic algae // Bot. Mar. 2009. V. 52. P. 483^190.
614. Zundorf /., Hader D.-P. Biochemical and spectroscopic analysis of UV effects in the marine flagellate Cryptomonas maculata. II Arch. Mycrobiol. 1991. V. 156. P. 405-11.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.