Взаимодействие генетических и фитогормональных факторов в контроле развития растений тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.07, доктор биологических наук Кавай-оол, Урана Николаевна

• Кавай-оол, Урана Николаевна
• доктор биологических наук
• 2012

Оглавление диссертации доктор биологических наук Кавай-оол, Урана Николаевна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1. Особенности развития цветка и использование коллекции мутантов Arabidopsis thaliana для создания генетических схем регуляции морфогенеза цветка.

1.1. Формирование флоральной меристемы.

1.2. Гомеозисные гены цветка A. thaliana.

1.3. ABC- и обновленная ABCDE-модели морфогенеза цветка A.thaliana.

1.4. Молекулярные механизмы АВСЕ-модели (модели «квартет») и транскрипционная регуляция А-, В- и С-генов с участием генов LFY и/или WUS

2. Генетический контроль поддержания АМ побега A. thaliana.

2.1. Генетический контроль образования АМ побега на эмбриональной стадии развития.

2.2. Генетический контроль поддержания АМ побега на постэмбриональной стадии развития.

2.3. Молекулярные механизмы поддержания меристемы в постэмбриональном развитии побега. Эволюционные аспекты.

3. Генетическая регуляция полярного транспорта ауксина и его роль в контроле морфогенеза побега.

3.1. Роль генов, контролирующих синтез ауксина, в создании градиентов его концентрации.

3.2. Гены притока и оттока ауксина из клетки.

3.3. Роль генов, контролирующих отток ауксина, в эмбриональном и постэмбриональном развитии растений.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Взаимодействие генетических и фитогормональных факторов в контроле развития растений»

Актуальность темы. Генетика развития растений является одним из фундаментальных направлений современной биологии. В последние годы становится все более понятным, что процессы морфогенеза - результат функционирования многих генов, которые могут взаимодействовать разным образом или действовать независимо. Работа многих генов контролируется внешними и внутренними сигналами, среди которых важнейшими являются фитогормональные. Действие фитогормонов, их способность регулировать экспрессию генов опосредована функционированием сигнальных путей (Тарчевский, 2002). Компоненты сигнальных путей - рецепторные молекулы, протеинкиназы и фосфатазы, транскрипционные факторы и другие белковые молекулы - это продукты генов, экспрессия которых также находится под сложным генетическим контролем. Синтез самих фитогормонов, которые «запускают» сигнальные пути, также регулируется многими генами (Лутова и др., 2000). Действие ауксина, одного из важнейших гормонов, управляющих развитием растений на всех стадиях онтогенеза, зависит не столько от места его синтеза в растении, сколько от его полярного транспорта, который, в свою очередь, контролируется специальными генетическими системами (Galweiler et al. 1998; Friml, 2003; Benkova et al., 2003; Медведев, 2010; Чуб, 2010).

В настоящее время становится все более ясным, что плейотропный эффект, который демонстрируют подавляющее большинство, а может быть и все гены контролирующие развитие, чаще всего является результатом сложных взаимодействий между генами, контролирующими морфогенез. Под влиянием разных сигналов, включая гормональные сигналы, активирующие или инактивирующие разные транскрипционные факторы или их кофакторы, один ген может «включаться» на разных стадиях развития, контролируя морфогенез разных органов. Не удивительно, что у впервые описанных в конце 80-х -начале 90-х годов генов, контролирующих развитие (например, гена APETALA 1

А. йклИапа), и после 20-30 лет интенсивных исследований обнаруживаются все новые функции.

Развитие растений, образование органов на протяжении всего жизненного цикла возможно благодаря функционированию апикальных меристем побега и корня, которые содержат стволовые клетки и являются источником клеток для создания органов (Батыгина, 2007; Иванов, 2011). У растений и животных существует строгий организменный контроль над клеточными делениями, причем для растений этот контроль особенно важен, поскольку растительные клетки не способны мигрировать (Иванов, 2011). Изучение взаимодействия генетических и фитогормональных факторов в контроле пролиферации клеток - важнейшая задача, решению которой сегодня уделяется особое внимание. Выявление генов, контролирующих пролиферацию клеток имеет важное практическое значение, поскольку открывает новые возможности для создания растений с новыми способами репродукции. В настоящее время благодаря исследованиям отечественных эмбриологов разработаны теоретические основы репродукции растений, позволяющие прогнозировать генотип потомства, что открывает новые перспективы в управлении отдельными этапами онтогенеза (Батыгина, 2010). Основой для такого управления служит информация о генных и фитогормональных взаимодействиях, контролирующих разные типы репродукции.

Изучение взаимодействия генов и фитогормональных факторов в контроле развития растений является актуальным направлением исследований, поскольку позволяет объединить данные генетических и физиологических исследований, полнее исследовать функцию генов и их места в генных сетях морфогенеза, что является необходимой предпосылкой для создания моделей виртуального растения.

Объект исследования. Самыми плодотворными исследованиями по генетике развития являются исследования на модельном растении из семейства крестоцветных .- резуховидке (или резушке) Таля АгаЫс1ор818 ЖаПапа (Ь.)

Heynh. Приоритет открытия этого генетического объекта принадлежит отечественным ученым (Титова, 1935). Растение A. thaliana имеет неоспоримые преимущества для биологических и генетических исследований перед другими растительными модельными видами, поскольку наряду с коротким жизненным циклом и малым числом хромосом (2п=10), обладает высокой плодовитостью (до 10000 семян с одного растения), самоопыляемостью, миниатюрностью, которая дает возможность выращивать это растение в лабораторных условиях круглый год. В 2000 г. геном растения A. thaliana расы Columbia был полностью секвенирован. Размер гаплоидного ядерного генома этого вида составляет всего 125 млн.п.н. и имеет незначительное количество повторяющихся последовательностей (Arabidopsis genome initiative, 2000). Мелкий размер семян и проростков позволяет анализировать на одной чашке Петри более 1000 растений, что делает A. thaliana практически незаменимым объектом в экспериментах по выделению редких мутантов, в том числе и инсерционных (Ежова и др., 2003).

Благодаря перечисленным особенностям и, в первую очередь, наличию коллекций мутантов, A. thaliana является незаменимым в учебном процессе. В нашей стране A. thaliana впервые начал использоваться в научной работе и как учебный объект на кафедре генетики и селекции ЛГУ, где мне посчастливилось учиться. В 1960 г. мутанты, полученные в этих исследованиях (Квитко, 1960; Квитко, Мюллер, 1961), были переданы для использования в учебном процессе на кафедру генетики и селекции МГУ. Преподаватель кафедры генетики МГУ С.И. Янушкевич сделал A. thaliana основным учебным растительным объектом на большом практикуме (Янушкевич, 1977). Благодаря использованию радиационного и химического мутагенеза в научной работе и на занятиях большого практикума со студентами и стажерами С.И. Янушкевич создал на кафедре генетики и селекции МГУ самую обширную коллекцию в России, которая в 1985 г. насчитывала 389 линий (Янушкевич, 1985).

С.И. Янушкевич - основатель коллекции резушки кафедры генетики МГУ им. М.В. Ломоносова, с растущими в пробирках растениями A.thaliana (фотография из архива В.А. Высоцкого, 1972 год).

В этой коллекции преобладали летальные мутации - ценный материал для изучения генетического контроля эмбрионального развития. Однако были и жизнеспособные мутанты с изменениями морфогенеза и чувствительности к гормонам, изучение которых было начато мною при выполнении кандидатской диссертации. Я благодарна Сергею Ивановичу, с которым неоднократно беседовала в 90-е годы, знакомясь с его коллекцией, а также его ученику В.А. Высоцкому за полученные ими мутанты, с которыми мне посчастливилось работать, многие из которых остаются уникальными и сегодня.

Коллекция A. thaliana кафедры генетики МГУ продолжала пополняться новыми линиями, полученными с помощью этилметансульфоната и в последующие годы, когда поддержанием коллекции занялись сотрудники кафедры генетики О.П. Солдатова и Т.А. Ежова. В экспериментах О.П. Солдатовой и аспирантки Л.Б. Мамановой, работавшей под руководством Т.А. Ежовой, осуществлялся поиск мутантов, устойчивых к индукторам окислительного стресса. Причем, для повышения вероятности выявления мутантов для отбора мутантов в М2 поколении использовался «метод пулов» (Ежова и др., 2001), т.е. анализ на селективных средах с индукторами окислительного стресса пулов семян, которые собирались с тысяч растений Ml поколений (по 1-2 семени с растения). Эти пулы содержали также мутации, вызывающие морфологические изменения, которые были выявлены в МЗ поколении. Одной из таких мутаций является уникальная мутация bractea {bra), изучению которой были посвящены кандидатские диссертации A.A. Ленина и

P.A. Будаева, выполненные на кафедре генетики МГУ. Получены и другие мутации, изменяющие морфогенез растений, исследования которых ранее не проводилось и которые впервые исследованы в данной диссертационной работе.

Цель исследования: изучение генетического контроля морфогенеза модельного растения Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. и выяснение роли взаимодействия генов и фитогормональных факторов в регуляции процессов развития.

Основное внимание уделено изучению функции гена ABRUPTUS/PINOID1, контролирующего полярный транспорт ауксина, в регуляции морфогенеза побега, его взаимодействию с ключевыми генами морфогенеза, а также изучению функции ранее не исследованных генов, выявленных на основе анализа мутантов из коллекции кафедры генетики МГУ.

В связи с этим, решались следующие задачи:

1. Генетический анализ (особенности наследования, тесты на аллелизм, картирование) новых мутаций apl-20, lfy-107, lfy-109, fipl, ßp2, fas4, er2, min2 из генетической коллекции А. thaliana кафедры генетики МГУ и изучение их влияния на морфогенез побега и цветка.

2. Анализ распределения активного ауксина в тканях растений A.thaliana дикого типа и мутантов с использованием репортерного гена ß-глюкуронидазы {GUS - ген uidA E.coli), слитого с ауксинчувствительным промотором DR5.

3. Изучение генных взаимодействий на основе анализа фенотипа двойных мутантов и сравнительного изучения экспрессии в растениях дикого типа и мутантов репортерного гена ß-глюкуронидазы, слитого с промоторными и регуляторными участками генов LFY, API и KN1.

4. Изучение влияния мутантных аллелей исследуемых генов на пролиферативную активность клеток с помощью репортерного гена ßглюкуронидазы, слитого с промоторной и регуляторной участками гена циклина CYCB1;1.

5. Создание коллекции мутантных линий A. thaliana, содержащих в геноме конструкции LFY::GUS, AP1::GUS, KN1::GUS, CYCB1;1::GUS, DR5::GUS.

6. Создание модели генетической и гормональной регуляции морфогенеза побега и цветка A. thaliana с участием гена ABR/PID1, контролирующего полярный транспорт ауксина, и других генов, исследованных в диссертационной работе (ТАЕ, NA, FAS4, FIP1, FIP2, ER2 и MIN2).

Научная новизна. Выделены и охарактеризованы новые мутации, затрагивающие различные этапы развития модельного растительного объекта A. thaliana. Идентифицированы новые ключевые гены, контролирующие важнейшие этапы развития побега и цветка. Впервые показано, что ген ABR/PID1, контролирующий полярный транспорт ауксина, взаимодействует с генами A.thaliana, контролирующими как ранние (LFY и API), так и поздние (АР2, АРЗ, PI и AG) этапы формирования флоральной меристемы. Кроме совместного действия с гомеозисными генами API и АР2 в I-II-ой мутовках флоральной меристемы, ген ABR/PID1 вместе с генами АРЗ, PI и AG участвует в формировании органов II - IV-ой мутовок цветка. Ген ABR/PID1 участвует и в контроле пролиферации клеток апикальной меристемы побега и флоральной меристемы, комплементарно взаимодействуя с генами CLV, ТАЕ и AG.

Впервые исследованы мутации fipl и fip2, нарушающие дифференцировку листа и цветка A. thaliana и, по-видимому, затрагивающие процесс деления клеток в растениях. Установлено, что гены FIP1 и FIP2 совместно с генами AS1 и AS2 участвуют в контроле пролиферации клеток органов околоцветника.

Выявлен новый ген FAS4, контролирующий пролиферацию клеток апикальной меристемы побега и, совместно с генами API и АР2, участвующий в регуляции развития органов околоцветника. Впервые показано, что ген NA участвует в контроле деления клеток в апикальной меристеме и листьях.

Установлено, что ген LFY и гомеозисные гены API, АР2, АРЗ и AG, а также ген

NA влияют на распределение ауксина в органах растений A. thaliana.

Научно-практическая значимость работы. Показано, что мутация abr может служить удобной моделью для анализа влияния зависимых от температуры градиентов ауксина на процессы морфогенеза A thaliana.

Путем скрещиваний и отборов создана новая коллекция мутантных линий, содержащих в геноме химерные гены LFY::GUS, AP1::GUS, DR5::GUS, KN1::GUS и CYCB1;1::GUS. Эти мутантные линии с химерными генами являются удобными моделями для изучения генетической регуляции морфогенеза растений, в том числе - и фитогормональными сигналами.

Результаты диссертационной работы интегрированы в лекции по генетике развития растений, которые читаются на кафедре генетики МГУ, и лекции по генетике растений для ТувГУ, а также используются на занятиях Большого практикума на кафедре генетики МГУ по изучению экспрессии ключевых генов морфогенеза у A. thaliana. Ряд мутантов с соответствующими конструкциями из новой коллекции также переданы в Тувинский государственный университет.

Апробация работы. Материалы диссертации представлены на III съезде Всероссийского общества физиологов растений (Санкт-Петербург, 1993), II Международной конференции «Биология культивируемых клеток растений и биотехнология» (Алматы, 1993), на I, II, III и IV Съезде ВОГиС (Саратов, 1994; Санкт-Петербург, 2000; Москва, 2004; Москва, 2009), Международной конференции молодых ученых по фундаментальным наукам «Ленинские горы» (Москва, 1995), Российско-Германском совещании «Plant Molecular Biology and Biotechnology» (Санкт-Петербург», 1996), III Российской конференции «Флора и растительность Сибири и Дальнего Востока» (Красноярск, 2001), Международной конференции «Генетические коллекции, изогенные и аллоплазматические линии», (Новосибирск, 2001), XIV научной школе по биологии развития (Звенигород, 2005), симпозиуме «Клеточные, молекулярные и эволюционные аспекты морфогенеза» (Москва, 2007), конференции посвященной 300-летию со дня рождения К.Линнея (Луганск, 2007), Международной научной конференции «Генетика и биотехнология XXI века th фундаментальные и прикладные аспекты» (Минск, 2008), 35 FEBS Congress «Molecules of Life» (Gothenburg, Sweden, 2010), Всероссийской научной конференции «Апомиксис и репродуктивная биология» (Саратов, 2010), Всероссийской конференции с международным участием «Проблемы изучения и сохранения растительного мира Евразии» (Иркутск, 2010), Международной научной конференции «Факторы экспериментальной эволюции организмов» (Украина, 2010), Международной научной конференции «Морфогенез в индивидуальном и историческом развитии» (Москва, 2011), III Международной научно-практической конференции «Биоразнообразие и сохранение генофонда флоры, фауны и народонаселения Центрально-Азиатского региона» (Кызыл, Тува, 2011).

Публикации. По материалам исследований опубликовано 32 работы, в том числе 16 статей в журналах из Перечня, утверждённого ВАК РФ.

Декларация личного участия автора. Автором обновлена коллекция А. thaliana кафедры генетики МГУ, выполнены морфологический, генетический, физиологический анализ диких и мутантных форм A. thaliana. Путем скрещиваний созданы 32 новые линии мутантных форм содержащих в геноме химерные гены для использования в научных и учебных целях. В создании этих линий также принимали участие студенты и аспиранты Е. Полковниченко и By Чанг, которых автор диссертации обучал методам работы по созданию этих линий и их использованию для анализа экспрессии генов.

Картированы 4 новых гена (FIP1, ER2, FAS4, MIN2), сформулированы гипотезы о функции каждого из них. Автором получены данные по генетическому картированию с использованием морфологических маркёров. Эти данные и гибридные популяции растений явились основой для молекулярно-генетического картирования с использованием ДНК-маркёров для проведения более тонкого картирования в пределах группы сцепления другими сотрудниками, аспирантами и студентами группы генетики развития растений МГУ. Благодаря исследованиям н.с. Е.В. Куприяновой, аспиранта Е.В.

Альберта, студентов Т.Ю. Прошляковой и А.Д. Солтабаевой сегодня подтверждена и уточнена локализация генов FIP1, ER2 и FAS4.

Получен фонд электронных микрофотографий диких рас и мутантов A.thaliana. Предложена модель генетической и гормональной регуляции роста и развития цветка и побега растений с участием исследованных в диссертационной работе генов A. thaliana. Проведена статистическая обработка результатов. Суммарное личное участие автора составило 90%.

Связь с государственными научными программами, участие в выполнении грантов. Работы выполнены при поддержке грантов РФФИ №07-04-01515-аи 10-04-00859-а.

Заключение диссертации по теме «Генетика», Кавай-оол, Урана Николаевна

Выводы

1. Повышение температуры снижает содержание активного ауксина в цветке и листе растений дикого типа A.thaliana. Мутация abr изменяет распределение активного ауксина в тканях и является удобной моделью для анализа влияния зависимых от температуры градиентов ауксина на процессы морфогенеза.

2. На ранних стадиях развития меристемы цветка ген ABR/PID1 A.thaliana эпистатически взаимодействует с генами, инициирующими формирование флоральной меристемы морфогенеза LFYhAPI, а также гомеозисными генами, контролирующими развитие органов цветка АР2, АРЗ, PI, AG. При формировании органов цветка ген ABR/PID1 комплементарно взаимодействует со всеми перечисленными генами.

3. Ген ABR/PID1 участвует в контроле пролиферации клеток апикальной меристемы побега и флоральной меристемы, комплементарно взаимодействуя с генами CLV1, TAEuAG.

4. Гены FIP1 и FIP2 A. thaliana участвуют в поддержании клеточных делений в органах цветка и листьях, предотвращая их преждевременную дифференцировку.

5. Гены FIP1 и FIP2 комплементарно взаимодействуют с генами ASI и AS2 при развитии органов околоцветника.

6. Полудоминантная мутация NA приводит к остановке клеточных делений в апикальной меристеме побега, но вызывает эктопическую пролиферацию клеток в листьях. Влияние гена NA на пролиферацию клеток апикальной меристемы не связано с действием генов системы CLV.

7. Ген FAS4 предотвращает эктопическую пролиферацию апикальной меристемы побега и флоральной меристемы, а также оказывает влияние на детерминацию типа органов околоцветника, которую он выполняет, комплементарно взаимодействуя с генами A-класса API и АР2.

8. Ген ER2 определяет полярность клеток, комплементарно взаимодействуя с геном LE/DWF5, контролирующим синтез брассиностероидов и геном ER1, регулирующим чувствительность к гиббереллину. Функция гена ER2 важна и для нормального развития корня.

9. Для ранее исследованного гена ТАЕ выявлена дополнительная функция определения времени и места экспрессии генов API и LFY, контролирующих развитие меристемы цветка.

10. Выявлены изменения распределения ауксина в мутантах с нарушением развития флоральной меристемы (lfy-107, lfy-109), гомеозисных мутантах с изменением типа органов цветка (apl-1, api-20, ар2-1, vaf / ар2-14, арЗ-1, ag-1) и мутантах с нарушением развития листа и цветка (asi я sa I as2), свидетельствующие о важной роли этих генов в контроле ауксинового гомеостаза.

Благодарности искренняя благодарность Татьяне Анатольевне Ежовой за консультации и внимательное отношение к моей научной работе, в течение всего периода выполнения диссертаций. глубокая благодарность академику Сергею Васильевичу Шестакову, проф. Марлену Мкртычевичу Асланяну, проф. Сергею Александровичу Гостимскому, проф. Владиславу Владимировичу Зинченко (ныне зав. кафедрой генетики МГУ), зам. зав. кафедрой Елене Алексеевне Карбышевой, в.н.с. Тамаре Афанасьевне Кокшаровой, доц. Вадиму Моисеевичу Глазеру и всем сотрудникам кафедры генетики, способствовавшим осуществлению и подготовке к защите данной работы. особая благодарность своему учителю из Петербургской школы генетики, чл.-корр. РАН, проф. Илье Артемьевичу Захарову-Гезехусу за докторантуру в МГУ имени М.В.Ломоносова от Института общей генетики имени Н.И.Вавилова РАН (г. Москва), научное руководство, неоценимую помощь и поддержку тувинской школы генетики. глубокая признательность Ольге Павловне Солдатовой за оказанную разностороннюю помощь в работе. глубокая благодарность заведующему и сотрудникам лаборатории электронной микроскопии МГУ им. М.В. Ломоносова Г.Н.Давидовичу, А.Г.Богданову и Ю.В.Просиной за созданные комфортные условия работы на сканирующей электронной микроскопии. особая признательность сотрудникам, аспирантам и студентам группы генетики развития кафедры генетики МГУ А.А.Пенину, Е.В.Куприяновой, М.Г.Новокрещёновой, О.В.Лебедевой, О.А.Скляровой, Л.Помякшевой, Р.А.Будаеву, Чанг Ву, О.Ю.Карпенко, Е.НЛолковниченко, А.С.Курбидаевой,

Т.Ю.Прошляковой, Р.Ю.Сарыглар, Е.В.Альберту, А.Д.Солтабаевой и Е.А.Тармосину за сотрудничество, поддержку и помощь. огромная благодарность своему наставнику от тувинской научной школы - Маадыру Алдын-Хереловичу Ондар за внимание к моей научной деятельности. искренняя признательность зав. кафедрой общей биологии Тувинского университета Чечек Дембиреловне Назын, ректору ТувГУ проф. Сергею Октяевичу Ондар. огромная признательность дорогим сестрам Баяне Алексеевне Тугур-оол и Чечене Николаевне Монгуш, Долаане Алексеевне Ензак, Селенге Ханды и Мергену Салчак за безграничную поддержку и помощь. особое спасибо дорогим детям Андрею и Буяну Ондар, Баиру Монгуш за понимание, помощь и долготерпение. особая признательность коллегам и друзьям: д.и.н. Марине Монгуш и к.м.н. Айтен Сафаровой, педагогам Блиновой Наталье Владимировне, Васильевой Марине Юрьевне и Ширяевой Ольге Георгиевне, а также ученикам: к.м.н. Аясу Маады, Руслану Геворкяну и Анай-Хаак Дамба-Хуурак, курсантам Василию Стяжкину, Сергею Швец, Евгению Бородащенко и Артёму Смирнову за поддержку и помощь.

Список опубликованных работ по теме диссертации

Статьи в журналах списка ВАК РФ, рекомендованных для публикации основных материалов докторских диссертаций :

1. Солдатова О.П., Ежова Т.А., Ондар (Кавай-оол) У.Н., Гостимский С.А., Конрад У., Арцаенко О. Мутанты Arabidopsis thaliana (L.) Heynh., толерантные к ингибитору биосинтеза каротиноидов норфлуразону// Генетика. 1996. Т. 32. №7. С.956-961.

2. Ежова Т.А., Ондар У.Н., Солдатова О.П., Кузнецова Т.А. Изучение роли гена ABRUPTUS в дифференцировке цветоносов у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Доклады Академии наук. 1997. Т. 354. № 6. С. 839-842.

3. Ежова Т.А., Солдатова О.П., Ондар У.Н., Маманова Л.Б., Радюкина Н.Л., Софьин A.B., Романов В.И., Шестаков C.B. Толерантные к норфлуразону карликовые мутанты Arabidopsis как объекты изучения резистентности к окислительному стрессу // Физиология растений. 1997. Т. 44. №5. С.665-670.

4. Ежова Т.А., Ондар У.Н., Солдатова О.П., Маманова Л.Б. Генетическое и физиологическое изучение карликовых мутантов Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Онтогенез. 1997. T. 28. №5. C.344-351.

5. Лебедева O.B., Ондар У.Н., Пенин A.A., Ежова Т.А. Влияние гена ABRUPTUS/PINOID Arabidopsis thaliana на экспрессию гена LEAFY// Генетика. 2005. Т. 41. №4. С. 559-565.

6. Ву Х.Ч., Ондар У.Н., Солдатова О.П. Особенности проявления новых аллелей генов AS 1 и AS 2, контролирующих морфогенез листа Arabidopsis thaliana И Онтогенез. Том 39. № 1.2008. С. 8-14.

7. Ондар У.Н., Ву Х.Ч., Ежова Т.А. Новый делеционный мутант apetalal-20 Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Онтогенез. Том 39. № 6.2008. С. 430-436.

8. Кавай-оол У.Н., Ежова Т.А. Анализ распределения ауксина в растениях дикого типа и мутанта abruptus Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. с использованием химерного гена DR5::GUS // Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2010. № 3. С. 17-19.

9. Кавай-оол У.Н., Карпенко О.Ю., Ежова Т.А. Взаимодействие генов ABRUPTUS/PINOID и АРETALAI в регуляции развития цветоноса Arabidopsis thaliana II Генетика. 2010. T. 46. № 3. С. 373-382.

Ю.Кавай-оол У.Н., Куприянова Е.В., Ежова Т.А. Различное влияние аллелей гена APETALA 1 на развитие репродуктивных органов в цветках мутанта abruptus Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Онтогенез. 2011. Т. 42. № 4. С. 307-311.

11. Кавай-оол У.Н. Генетическая регуляция полярного транспорта ауксина и его роль в контроле морфогенеза побега // Успехи современной биологии. 2011. Т. 131. № 3. С. 270-277.

12. Кавай-оол У.Н., Карпенко О.Ю., Ежова Т.А. Взаимодействие гена PINOID/ABRUPTUS с геном AGAMOUS - негативным регулятором пролиферации стволовых клеток в меристеме цветка Arabidopsis thaliana // Онтогенез. 2011. Т. 42. № 2. С. 146-150.

13.Кавай-оол У.Н., Ежова Т.А. Влияние гена ABRUPTUS/PINOID на проявление гомеозисных мутаций apetala3-l и pistillata-1 у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. II Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2011. № 3. С. 151-158.

14. Кавай-оол У.Н., Ежова Т.А. FIMBRIATA PETIOLES1 - ген Arabidopsis thaliana, контролирующий процессы деления и роста клеток органов цветка // Онтогенез. 2011. Т. 42. №2. С. 151-158.

15.Kupriyanova E.V., Kavai-ool U.N. Alleles of APETALA1 gene with truncated С and К domains differently affect on the reproductive floral organ development in Arabidopsis thaliana abruptus mutant // The FEBS JOURNAL. 2010. P. 171.

16. Солтабаева А.Д, Кавай-оол У.Н., Куприянова E.B., Ежова Т.А. Изучение мутанта er2 Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. с изменением структуры побега // Вестник ВОГИС. 2012 (в печати).

Статьи в сборниках научных конферениий и симпозиумов, учебные пособия:

17. By Х.Ч., Ежова Т.А., Ондар У.Н. Генетическая и фитогормональная регуляция стволовости клеток у Arabidopsis thaliana. Материалы докладов, посвященных 300-летию со дня рождения К.Линнея. Луганск. 2007. С. 113-115.

18.Кавай-оол У.Н., Ежова Т.А. Использование коллекции диких и мутантных форм Arabidopsis thaliana, содержащих репортёрный ген GUS, слитый с промоторами ключевых генов морфогенеза, на занятиях по генетике растений // Проблемы изучения и сохранения растительного мира Евразии. Сборник трудов Всероссийской конференции с международным участием, посвященной памяти JI.B. Бардунова. Иркутск: Изд-во Института географии им. В.Б. Сочавы СО РАН. 2010. С.701-703.

19.Кавай-оол У.Н., Ежова Т.А. Взаимодействие генов ABRUPTUS/PINOID и APETALA2 в регуляции развития цветка Arabidopsis thaliana // Факторы экспериментальной эволюции организмов. Сборник научных трудов VI-ой Международной научной конференции. Киев: ЛОГОС. 2010. Т. 9. С. 35-39.

20.Кавай-оол У.Н., By Х.Ч., Сарыглар P.P. Взаимодействие генов TAENIATA и LEAFY в регуляции развития цветоноса Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Апомиксис и репродуктивная биология. Материалы Всероссийской научной конференции, посвященной 100-летию со дня рождения С.С. Хохлова. Саратов: Изд-во СГУ им. Н.Г. Чернышевского. 2010. С. 160-163.

21.Кавай-оол У.Н., Ежова Т.А. Репортерные гены в решении прикладных и фундаментальных вопросов генетики растений. Учебно-методическое пособие по генетике растений. Кызыл: Изд-во ТувГУ. 2011. 63 с.

Тезисы конференций и симпозиумов:

1. Ондар У.Н., Высоцкий В.А. Изучение мутации, вызывающей нарушение дифференцировки цветоносов у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Генетика. 1994. Т. 30. С. ИЗ.

2. Ezhova Т.А., Ondar U.N., Soldatova О.Р., Kof Е.М. The ABRUPTUS gene function in the differentiation of Arabidopsis inflorescence. In Program and Abstracts. German-Russian Cooperation in Biotechnology Workshop IV. Plant Molecular Biology Genetics and Biotechnology. St.-Petersburg, Russia. 1996. P. 36.

3. Ежова Т.А., Пенин А.А., Ондар У.Н. Генетический контроль морфогенеза цветоноса у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Материалы II-го съезда ВОГИС. Санкт-Петербург.

2000. Т. 2. С. 245.

4. Ондар У.Н., Ежова Т.А., Сарыглар А.Д. Фенотипическое изучение мутации fasciata из линии nfz 21 Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Труды III-ей Российской конференции «Флора и растительность Сибири и Дальнего Востока». Красноярск: Изд-во КГПУ.

2001. С.211.

5. Ондар У.Н., Полковниченко Е.М. Взаимодействие генов ABRUPTUS/PINOID и APETALA1 Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Материалы III съезда ВОГИС // Генетика. 2004. Т. 1.С. 238.

6. Будаев Р.Б., Полковниченко Е.М., Ондар У.Н. Анализ взаимодействия между геном BRACTEA и генами LEAFY и APETALA1 с использованием репортёрного гена GUS. Труды XIV-ой научной школы по биологии развития // Онтогенез. 2005. Т. 36. № 5. С. 311.

7. Ондар У.Н., Солдатова О.П. ERECTA2 и FASCIATA4 - новые гены, регулирующие дифференцировку главного и боковых побегов Arabidopsis thaliana. Сборник материалов докладов симпозиума «Клеточные, молекулярные и эволюционные аспекты морфогенеза». Москва. 2007. С. 124-125.

8. Ондар У.Н., Ежова Т.А. Изучение распределения активного ауксина в растениях мутантов Arabidopsis thaliana с изменениями структуры цветоноса и цветка. Материалы Международной научной конференции «Генетика и биотехнология XXI века. Фундаментальные и прикладные аспекты». Минск. 2008. С. 140-141.

9. Кавай-оол У.Н., Зайцев A.A., Солдатова О.П. Изучение мутанта FIMBRIATA PETIOLUS 1 с нарушением развития дистальных участков органов цветка Arabidopsis thaliana. Сборник трудов V съезда Вавиловского общества генетиков и селекционеров. Москва. 2009. Ч. 1. С. 147.

Ю.Альберт Е.В., Кавай-оол У.Н. Влияние мутации fasciata4 на развитие цветка Arabidopsis thaliana II Сборник тезисов конференции «Морфогенез в индивидуальном и историческом развитии». Москва. 2011. С. 3.

11. Кавай-оол У.Н., Карпенко О.Ю. Взаимодействие генов ТАЕ и API в регуляции развития цветка Arabidopsis thaliana II Сборник материалов III-ей Международной научно-практической конференции «Биоразнообразие и сохранение генофонда флоры, фауны и народонаселения Центрально-Азиатского региона». Кызыл: ТувГУ. 2011. С. 23-24.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Кавай-оол, Урана Николаевна, 2012 год

1. Батыгина Т.Б., Васильева В.Е. Размножение растений. СПб.: изд-во СПбГУ. 2002.232 с.

2. Батыгина Т.Б., Рудский И.В. Роль стволовых клеток в морфогенезе растений // Доклады Акад. наук. 2006. Т. 410. № 5. С. 1-3.

3. Батыгина Т.Б., Титова В.В., Васильева В.Е. Репродукция растений: теоретические разработки и инновационные технологии // Инновации. 2007. № 2. С. 39-46.

4. Батыгина Т.Б. От микроспоры к сорту. М.: изд-во «Наука». 2010

5. Высоцкий В.А. Особенности индукции мутаций нитрозометилмочевиной и гамма-лучами в эмбрионах Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. M.: МГУ. 1973.

6. By Х.Ч., Ежова Т.А., Ондар У.Н. Генетическая и фитогормональная регуляция стволовости клеток у Arabidopsis thaliana. Материалы докладов, посвященных 300-летию со дня рождения К.Линнея. Луганск. 2007. С. 113-115.

7. By Х.Ч., Ондар У.Н., Солдатова О.П. Особенности проявления новых аллелей генов AS 1 и AS 2, контролирующих морфогенез листа Arabidopsis thaliana. II Онтогенез. Том 39. № 1.2008. С. 8-14.

8. Ежова Т.А., Ондар У.Н., Солдатова О.П., Маманова Л.Б. Генетическое и физиологическое изучение карликовых мутантов Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. II Онтогенез. 19976. T. 28. № 5. С. 344-351.

9. Ежова Т.А., Ондар У.Н., Солдатова О.П., Кузнецова Т.А. Изучение роли гена ABRUPTUS в дифференцировке цветоносов у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. II Доклады Акад. наук. 1997в. Т. 354. № 6. С. 839-842.

10. Ежова Т. А., Солдатова О.П., Коф Э.М. Участие гена ABRUPTUS, контролирующего морфогенез Arabidopsis thaliana в регуляции роста и морфогенеза в культуре in vitro II Физиология растений. 1999а. Т. 46. № 6. С. 865-870.

11. Ежова Т.А. Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. как модельный объект для изучения генетического контроля морфогенеза // Генетика. 1999b. Т. 35. № 111. С. 1522-1537.

12. Ежова Т.А., Солдатова О.П., Калинина А.Ю., Медведев С.С. Взаимодействие генов ABRUPTUS/P1NOID и LEAFY в процессе флорального морфогенеза у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. //Генетика. 2000. T. 36. Ks 12. С. 1682-1687.

13. Ежова Т.А., Солдатова О.П., Маманова Л.Б., Мусин С.М., Гримм Б., Шестаков C.B. Коллекция мутантов Arabidopsis thaliana с измененной чувствительностью к индукторам окислительного стресса. Известия РАН. 2001. № 5. С. 533-543.

14. Ежова Т.А., Солдатова О.П., Склярова O.A. Ген NANA регулятор делений и растяжений клеток стебля Arabidopsis thaliana (L.) // Генетика. 2002. T. 39. V. 1: 63-71.

15. Ежова Т.А. Генетический контроль морфогенеза и устойчивости растений к стрессовым факторам. Диссертация на соискание учёной степени доктора биологических наук. М.: МГУ. 2003. 312 с.

16. Ежова Т.А., Лебедева О.В., Огаркова O.A., Пенин A.A., Шестаков C.B. Arabidopsis thaliana модельный объект генетики растений. М.: изд-во «Макс-пресс». 2003. 219 с.

17. Захаров И.А. Генетические карты высших растений. 1979. Л.: Наука. С. 2 -28.

18. Иванов В.Б. Проблема стволовых клеток // Онтогенез. 2002. Т. 34. № 4. С. 253261.

19. Иванов В.Б. Клеточные механизмы роста растений. 68-ое Тимирязевское чтение. ИФР им. К.А. Тимирязева РАН, 4 июня 2007 год. М.: «Наука». 2011. 104 с.

20. Калинина А.Ю., Ежова Т.А., Голубева Н.В., Донец И.С., Маркова И.В., Медведев С.С. Полярный транспорт ауксина у мутанта abruptus Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Il Вестник СпбГУ. 2000. Сер. 3. Вып. 1. № 3. С. 44-51.

21. Квитко К.В. Асептическая культура Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. и перспективы её использования в ботанических исследованиях. Вестник Ленинградского университета. 1960. Т. 15. Сер. «Биол.». № 3. С. 47-56.

22. Квитко К.В., Мюллер А. Новый объект для генетических исследований -Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. В кн.: исследования по генетике. Л.: изд-во ЛГУ. 1961. Т. 1.С. 79-91.

23. Лакин Г.Ф. Биометрия // М.: изд-во «Высшая школа». 1990. 352 с.

24. Лебедева О.В., Склярова O.A., Ежова Т.А. Роль генов NANA и LEPIDA в регуляции роста стебля Arabidopsis thaliana II Генетика. 2004. T. 40. №7. С. 940-948.

25. Лотова Л.И. Ботаника: морфология и анатомия высших растений. М.: изд-во «Комкнига». 2007. 512 с.

26. Лутова Л.А., Проворов H.A., Тиходеев О.Н., Тихонович И.А., Ходжаева Л.Т., Шишкина С.О. Генетика развития растений. Под ред. чл.-кор. РАН С.Г. Инге -Вечтомова. СПб: изд-во «Наука». 2000. 539 с.

27. Лутова Л.А., Додуева И.Е. Роль меристемоспецифичных генов растений в формировании генетических опухолей // Онтогенез. 2007. Т. 38. № 6. С. 420-433.

28. Лутова Л.А., Долгих Е.А., Додуева И.Е., Осипова М.А., Ильина Е.Л. Изучение системного контроля деления и дифференцировки клеток растений на примере опухолевого роста у редиса // Генетика. 2008. Т. 44. № 8. С. 1075-1083.

29. Лутова Л. А. Биотехнология высших растений: Учебник.— Изд. 2-е. СПб.: изд-во СПбГУ. 2010. 240 с.

30. Лутова Л.А., Ежова Т.А., Додуева И.Е., Осипова М.А. Генетика развития растений. СПб: изд-во «Н-Л». 2010. 432 с.

31. Медведев С.С., Шарова Е.И. Биология развития растений. Том 1. Начало биологии развития растений. Фитогормоны: Учебник. СПБ.: изд-во СПбГУ. 2010. 367 с.

32. Медведев С.С., Шарова Е.И. Генетическая и эпигенетическая регуляция развития растительных организмов // Журнал Сибирского федерального университета. Биология. 2010. Т. 2. № 3. С. 3-23.

33. Ондар У.Н. Изучение гормональных мутантов Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Диссертация на соискание уч. степ, к.б.н. М.: МГУ. 1996. 144 с.

34. Пенин A.A. Анализ генетического контроля и моделирование развития структуры соцветия у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Диссертация на соискание уч. степ, к.б.н. М.: МГУ. 2003.

35. Прошлякова Т. Молекулярно-генетическое картирование гена FI PI Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. M: МГУ, 2011.

36. Серебровский A.C. Генетический анализ. M.: изд-во «Наука». 1970. С. 288-290.

37. Синюшин A.A., Гостимский С.А. Генетический контроль признака фасциации у гороха посевного (Pisum sativum L.) И Генетика. 2008. Т. 44. № 6. С. 807-814.

38. Склярова O.A. Изучение генетического контроля передачи гиббереллинового сигнала у Arabidopsis thaliana. Диссертация на соискание уч. степ, к.б.н. Москва: МГУ им. М.В. Ломоносова. 2006. 121 с.

39. Скрябин К.Г., Алексеев Д.В., Ежова Т.А. и др. Определение типа и положения органов цветка: динамическая модель развития // Известия АН. Серия биол. 2006. №6. С. 645-659.

40. Смирнов В.Г., Соснихина С.П. Генетические коллекции растений и их использование // Сборник научных трудов. Итоги Науки и Техники. Общие проблемы биологии. М.: ВИНИТИ. 1983. С. 3-27.

41. Тарчевский И.А. Сигнальные системы клеток растений. М.: изд-во «Наука». 2002.296 с.

42. Тимонин А.К. Ботаника: в 4-х томах. Т. 3. Высшие растения. М.: изд-кий центр «Академия». 2007.352 с.

43. Титова H.H. Поиски ботанической дрозофилы. Советская ботаника. 1935. Т. 2. С. 61-67.

44. Чуб В.В. Роль позиционной информации в регуляции развития органов цветка и листовых серий побегов. М.: БИНОМ. Лаборатория знаний. 2010. 263 с.

45. Шевченко В.В., Гриних Л.И. Генетические коллекции арабидопсиса // Сборник научных трудов. Итоги Науки и Техники. Общие проблемы биологии. М.: ВИНИТИ. 1983. С. 28-55.

46. Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 1. Генеративные органы цветка. Под ред. Батыгиной Т.Б. СПб.: изд-во «Мир и семья». 1994. 508 с.

47. Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 2. Семя. Под ред. Батыгиной Т.Б. СПб.: изд-во «Мир и семья». 1997. 823 с. + 65 илл.с.

48. Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 3. Системы репродукции. Под ред. Батыгиной Т.Б. СПб.: изд-во «Мир и семья». 2000. 640 с.

49. Янушкевич С.И. Химический мутагенез у растений // В кн. Большой практикум по генетике животных и растений. М.: изд-во МГУ. 1977. С. 43-64.

50. Янушкевич С.И. Использование арабидопсис в практических занятиях по общей генетике. М.: изд-во МГУ. 1985.

51. Aida M., Ishida Т., Fukaki H., Fujisawa H. & Tasaka M. Genes involved in organ separation in Arabidopsis: an analysis of the cup-shaped cotyledon mutant // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 841-857.

52. Aida M., Ishida T. & Tasaka M. Shoot apical meristem and cotyledon formation during Arabidopsis embryogenesis: interaction among the CUP-SHAPED COTYLEDON and SHOOTMERISTEMLESS genes/ // Development. 1999. V. 126. P. 1563-1570.

53. Aloni R. In Plant hormones: biosynthesis, signal transduction, action. Kluwer Acad. Publ. 2004. 21p.

54. Aloni R., Aloni E., Langhans M. & Ullrich C.I. Role of auxin in regulating Arabidopsis flower development // Planta. 2006. V. 223. P. 315-328.

55. Alvarez J. & Smyth D.R. CRABS CLA W and SPATULA, two Arabidopsis genes that control carpel development in parallel with AGAMOUSII Development. 1999. V. 126. P. 2356-2375.

56. Alvarez-Buylla E.R., Barbara A. B-Function Expression in the Flower Center Underlies the Homeotic Phenotype of Lacandonia schismatica (Triuridaceae) // The Plant Cell. Online November 2010. V. 22. № 11. P. 3543-3559.

57. Angenent G.C., Franken J., Busscher M., Weiss D. & van Tunen A J. Co-suppression of the petunia homeotic gene jbp2 affects the identity of the generative meristem // Plant J. 1994. V. P. 33-44.

58. Angenent G.C., Franken J., Busscher M., van Dijken A., van Went J.L., Dons H J. & van Tunen A.J. A novel class of MADS box genes is involved in ovule development in petunia // Plant Cell. 1995. V. 7. P. 1569-1582.

59. Bai F. & De Mason D.A. Hormone interactions and regulation of PsPK2::GUS compared with DR5::GUS and PID::GUS in Arabidopsis thaliana II Am. J. Bot. 2008. V. 95. P.133-145.

60. Bao F., Azhakanandam S. & Franks R.G. SEUSS and SEUSSLIKE transcriptional adaptors regulate floral and embryonic development in Arabidopsis I I Plant Physiol. 2010. V. 152. P. 821-836.

61. Baurle I. & Laux T. Apical meristems: the plant's fauntion of youth // BioEssay. 2003. V. 25. P. 961-970.

62. Bell CJ. & Maher E.P. Mutants of Arabidopsis thaliana with abnormal gravitropic responses //Mol. Gen. Genet. 1990. V. 220. P. 289-293.

63. Benjamins R., Quint A., Weijers D., Hookaas P.J. & Offringa R. The PINOID protein kinase regulates organ development in Arabidopsis by enhancihg polar auxin transport //Development. 2001. V. 128. P. 4057-4067.

64. Benkova E., Michniewicz M., Sauer M., Teichmann T., Seifertova D., Jurgens G. & Friml J. Local, efflux-dependent auxin gradients as a common module for plant organ formation // Cell. 2003. V. 115. P. 591-602.

65. Bennett S.R.M., Alvarez J., Bossinger G. & Smyth D.R. Morphogenesis in pinoid mutants of Arabidopsis thaliana II Plant J. 1995. V. 8. P. 505-520.

66. Bennett M.J., Marchant A., Green H.G., May S.T., Ward S.P., Millner P.A., Walker A.R., Schulz B. & Feldmann K.A. Arabidopsis AUX1 gene: a permease-like regulator of root gravitropism// Science. 1996. V. 273. P. 948-950.

67. Bharathan G., Janssen B.J., Kellogg E.A. & Sinha N. Did homeodomain proteins duplicate before the origin of angiosperms, fungi, and metazoa? Proceedings of the National Academy of Sciences, USA. 1997. V. 94. P. 13749-13753.

68. Bharathan G., Goliber T.E., Moore C., Kessler S., Pham T. & Sinha N.R. Homologies in leaf form inferred from KNOXI gene expression during development // Science. 2002. 296:1858-1860.

69. Blazquez M.A., Soowal L.N., Lee I. & Weigel D. LEAFY expression and flower initiation m Arabidopsis II Development. 1997. V. 124. P. 3835-3844.

70. Blazquez M.A., Green R., Nilsson O., Sussman M.R. & Weigel D. Gibberellins promote flowering of Arabidopsis by activating the LEAFY promoter. Plant Cell. 1998. V. 10. P. 791-800.

71. Blazquez M.A. & Weigel D. Integration of floral inductive signals in Arabidopsis II Nature. 2000. V. 404. P. 889-892.

72. Bowman J.L., Smyth D.R. & Meyerowitz E.M. Genes directing flower development in Arabidopsis I I Plant Cell. 1989. V. 1. P. 37-52.

73. Bowman J.L., Smyth D.R & Meyerowitz E.M. Genetic interactions among floral homeotic genes of Arabidopsis //Development. 1991. V. 112. P. 1-20.

74. Bowman J.L., Alvarez J., Weigel D., Meyerowitz E.M. & Smyth D.R. Control of flower development in Arabidopsis thaliana by APETALA1 and interacting genes // Development. 1993. V. 119. P. 721-743.

75. Brand U., Fletcher J.C., Hobe M., Meyerowitz E.M. & Simon R. Dependence of stem cell fate in Arabidopsis on a feedback loop regulated by CLV3 activity. Science. 2000. V. 289. P. 617-619.

76. Brand U., Grunewald M., Hobe M. & Simon R. Regulation of CLV3 expression by two homeobox genes in Arabidopsis II Plant Physiol. 2002. V. 129. P. 565-575.

77. Baurle I. & Laux T. Apical meristems: The plant's fountain of youth // Bioessays. 2003. V. 25. P. 961-970.

78. Busch M.A., Bomblies K. & Weigel D. Activation of a floral homeotic gene in Arabidopsis II Science. 1999. V. 285. P. 585-587.

79. Byrne M., Barley R., Curtis M., Arroyo J.M., Dunham M., Hudson A. & Martienssen R.A. Asymmetric leaves 1 mediates leaf patterning and stem cell function in Arabidopsis II Nature. 2000. V. 408. P. 591-602.

80. Byrne M.E., Simorowski J. & Martienssen R.A. ASYMMETRIC LEAVES 1 reveals knox gene redundancy in Arabidopsis II Development. 2002. V. 129. P. 1957-1965.

81. Carraro N., Forestan C., Canova S., Traas J. & Varotto S. ZmPINla and ZmPINlb encode two novel putative candidates for polar auxin transport and plant architecture determination of maize // Plant Physiol. 2006. V. 142. P. 254-264.

82. Cerrutti L., Mian N. & Bateman A. Domains in gene silencing and cell differentiation proteins: the novel PAZ domain and redefinition of the PIWI domain // Trends in Biochemical Sciences II2000. V. 25. P. 481-482

83. Chen R., Hilson P., Sedbrook J., Rosen E., Caspar T. & Masson P. The Arabidopsis thaliana AGRAVITROPIC1 gene encodes a component of the polar-auxin-transport efflux carrier//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. P. 15112-15117.

84. Chen X. A MicroRNA as a translational repressor of APETALA2 in Arabidopsis flower development // Science. 2004. V. 303. P. 2022-2025.

85. Cheng Y., Dai X. & Zhao Y. Auxin biosynthesis by the YUCCA flavin monooxygenases controls the formation of floral organs and vascular tissues in Arabidopsis H Genes Dev. 2006. V. 20. P. 1790-1799.

86. Cheng J.Z., Zhu S.S., Gao Q.X. & Zhang S.X. Cytokinin and auxin regulates WUS induction and inflorescence regeneration in vitro in Arabidopsis II Plant Cell Rep. 2010. V. 29. P. 927-933.

87. Christensen S.K., Dagenais N., Chory J. & Weigel D. Regulation of auxin response by the protein kinase PINOID // Cell. 2000. V. 100. P. 469-478.

88. Clark S.E., Running M.P. & Meyerowitz E.M. CLAVATA1, a regulator of meristem and flower development in Arabidopsis //Development. 1993. V. 119. P. 397-418.

89. Clark S.E., Jacobsen S.E., Levin J.Z. & Meyerowitz E.M. The CLA VATA and SHOOT MERISTEMLESS loci competitively regulate meristem activity in Arabidopsis II Development. 1996. V. 122. P. 1567-1575.

90. Clark S.E., Williams R.W. & Meyerowitz E.M. The CLAVATA1 gene encodes a putative receptor kinase that controls shoot and floral meristem size in Arabidopsis Cell. 1997. V. 89. V. 575-585.

91. Clark S.M., Running M.P. & Meyerowitz E.M. CLAVATA3 is a specific regulator of shoot and floral meristem development affecting the same processes as CLAVATA1 II Development. 1995. V. 121. P. 2057-2067.

92. Coen E.S., Romero J.M., Doyle S., Elliot R., Murphy G. & Carpenter R. Floricula: A homeotic gene required for flower development in Antirrhinum majus II Cell. 1990. V. 63. P. 1311-1322.

93. Coen E.S. & Meyerowitz E.M. The war of the whorls: Genetic interactions controlling flower development//Nature. 1991. V. 353. P. 31-37.

94. Deruere J., Jackson K., Garbers C., Soil D. & DeLong A. The tfCiW-encoded A subunit of protein phosphatase 2A increases phosphatase activity in vivo II Plant J. 1999. V. 20. P. 389-399.

95. Dharmasiri N., Dhannasiri S., Weijers D., Lechner E., Yamada M., Hobbie L., Ehrismann J.S., Jürgens G. & Estelle M. Plant development is regulated by a family of auxin receptor F box proteins // Dev. Cell. 2005. V. 9. P. 109-119.

96. Douglas S.J., Chuck G., Dengler R.E., Pelecanda L. & Riggs CD. KNAT1 and ERECTA regulate inflorescence architecture in Arabidopsis II Plant Cell. 2002. V. 14. P. 547-58.

97. Drews G.N., Bowman J.L. & Meyerowitz E.M. Negative regulation of the Arabidopsis homeotic gene AGAMOUS by the APETALA2 product // Cell. 1991. V. 65. P. 991-1002.

98. Egea-Cortines M., Saedler H. & Sommer H. Ternary complex formation between the MADS-box proteins SQUAMOSA, DEFICIENS, and GLOBOSA is involved in the control of floral architecture in Antirrhinum majus //EMBO J. 1999. V. 18. P. 5370-5379.

99. Eriksson S., Bo"hlenius H., Moritz T. & Nilsson O. GA4 is the active gibberellin in the regulation of LEAFY transcription and Arabidopsis floral initiation // The Plant Cell. 2006. V. 18. P. 2172-2181.

100. Fan H.-Y., Hu Y., Tudor M. & Ma H. Specific interactions between K domains of AG and AGLs, members of the MADS domain family of DNA binding proteins // Plant J. 1997. V. 12. P. 999-1010.

101. Favaro R., Pinyopich A., Battaglia R., Kooiker M., Borghi L., Ditta G., Yanofsky M.F., Kater M.M. & Colombo L. MADS box protein complexes control carpel and ovule development in Arabidopsis II Plant Cell. 2003. V. 15. P. 2603-2611.

102. Ferrario S., Immink R.G., Shchennikova A., Busscher-Lange J. & Angenent G.C. The MADS box gene FBP2 is required for SEPALLATA function in petunia II Plant Cell. 2003. V. 15. P. 914-925.

103. Fletcher J.C., Brand U., Running M.P., Simon R. & Meyerowitz E.M. Signaling of cell fate decisions by CLAVATA3 in Arabidopsis shoot meristems // Science. 1999. V. 283. P. 1911-1914.

104. Friml J., Benkova E., Blilou I., Wisniewska J., Hamann T., Ljung K., Woody S., Sandberg G., Scheres B., Jürgens G. & Palme K. AtPIN4 mediates sink-driven auxin gradients and root patterning in Arabidopsis H Cell. 2002a. V. 108. P. 661-673.

105. Friml J., Wisniewska J., Benkova E., Mendgen K. & Palme K. Lateral relocation of auxin efflux regulator PIN3 mediates tropism in Arabidopsis II Nature. 2002b. V. 415. P. 806-809.

106. Friml J., Benkova E., Mayer U., Palme K. & Muster G. Automated whole mount localisation techniques for plant seedlings // Plant J. 2003a. V. 34. P. 115-124.

107. Friml J., Vieten A., Sauer M.,.Weijers D., Schwarz H., Hamann T., Offringa R. & Jurgens G. Efflux-dependent auxin gradients establish the apical-basal axis of Arabidopsis II Nature. 2003b. V. 426. P. 147-153b.

108. Furner I.J. & Pumfrey J.E. Cell fate in the shoot apical meristem of Arabidopsis thaliana II Development. 1992. V. 115. P. 755-764.

109. Gallois J.L., Woodward C., Reddy G.V. & Sablowski R. Combined SHOOT MERISTEMLESS and WUSCHEL trigger ectopic organogenesis in Arabidopsis II Development. 2002. V. 129. P. 3207-3217.

110. Galweiler L., Guan C., Muller A., Wisman E., Mendgen K., Yephremov A. & Palme K. Regulation of polar auxin transport by AtPINl in Arabidopsis vascular tissue // Science. 1998. V. 282. P. 2226-2230.

111. Gegas C.V. & Doonan H.J. Expression of Cell Cycle Genes in Shoot Apical Meristems // Plant Mol. Biol. 2006. V. 60. № 6. P. 947-961.

112. Giulini A., Wang J. & Jackson D. Control of phyllotaxy by the cytokinin-inducible response regulator homologue ABPHYL1II Nature. 2004. V. 430. P. 1031-1034.

113. Gordon S.P., Heisler M.G., Reddy G.V., Ohno C., Das P. & Meyerowitz E.M. Pattern formation during de novo assembly of the Arabidopsis shoot meristem // Development. 2007. V. 134. P. 3539-3548.

114. Goto K. & Meyerowitz E.M. Function and regulation of the Arabidopsis floral homeotic gene PISTILLATAII Genes Dev. 1994. V. 8. P. 1548-1560.

115. Goto K., Kyozuka J. & Bowman J.L. Turning floral organs into leaves, leaves into floral organs // Curr. Opin. Genet. Dev. 2001. V. 11. P. 449-456.

116. GroB-Hardt R., Lenhard M. & Laux T. WUSCHEL signaling functions in interregional communication during Arabidopsis ovule development. Genes Dev. 2002. V. 16. P. 1129-1138.

117. GroB-Hardt R. & Laux T. Stem cell regulation in the shoot meristem // J. of the cell science. 2003. V. 116. P. 1659-1666.

118. Guo M., Thomas J., Collins G. & Timmermans M.C. Direct repression of KNOX loci by the ASYMMETRIC LEAVES 1 complex of Arabidopsis II Plant Cell. 2008. V. 20. P. 4858.

119. Gustafson-Brown C., Savidge B. & Yanofsky M.F. Regulation of the Arabidopsis floral homeotic genqAPETALAI II Cell. 1994. V. 76. P. 131-143.

120. Hamann T., Benkova E., Baurle I., Kientz M. & Jurgens G. The Arabidopsis BODENLOS gene encodes an auxin response protein inhibiting MONOPTEROS-mediated embryo patterning // Genes Dev. 2002. V.16. P. 1610-1615.

121. Han P., Li Q. & Zhu Y.X. Mutation of Arabidopsis BARD1 causes meristem defects by failing to confine WUSCHEL expression to the organizing center I I Plant Cell. 2008. V. 20.P.1482-1493.

122. Hardtke C.S. & Berleth T. The Arabidopsis gene MONOPTEROS encodes a transcription factor mediating embryo axis formation and vascular development // EMBO J. 1998. V. 17. P. 1405-1411.

123. Hartmann U., Hohmann S., Nettesheim K., Wisman E., Saedler H. & Huijser P. Molecular cloning of SVP, a negative regulator of the floral transition in Arabidopsis II Plant J. 2000. V. 21. P. 351-360.

124. Hay A., Kaur H., Phillips A., Hedden P., Hake S. & Tsiantis M. The gibberellin pathway mediates KNOTTED 1-type homeobox function in plants with different body plans // Curr Biol. 2002. V. 12. P. 1557-1565.

125. Hay A., Craft J. & Tsiantis M. Plant hormones and homeoboxes: bridging the gap? // Bioessays. 2004. V. 26. P. 395-404.

126. Hay A., Barkoulas M. & Tsiantis M. ASYMMETRIC LEAVES 1 and auxin activities converge to repress BREVIPEDICELLUS expression anin d promote leaf development Arabidopsis II Development. 2006. V. 133. P. 3955-3961.

127. Hempel F.D., Weigal D., Mandel M.A., Ditta G., Zambryski P., Feldman L.J. & Yanofsky M.F. Floral determination and expression of floral regulatory genes in Arabidopsis II Development. 1997. V. 124. P. 3845-3853.

128. Hill T.A., Day C.D., Zondlo S.C., Thackeray A.G. & Irish V.F. Discrete spatial and temporal cis-acting elements regulate transcription of the Arabidopsis floral homeotic gene APETALA3II Development. 1998. V. 125. P. 1711-1721.

129. Hohm T., Zitzler E. & Simon R. A dynamic model for stem cell homeostasis and patterning in Arabidopsis meristems // PLos One. 2010. V. 5 (2). P. 1-9.

130. Honma T. & Goto K. Complexes of MADS-box proteins are sufficient to convert leaves into floral organs // Nature. 2001. V. 409. P. 525-529.

131. Hjortswang H.I., Sundas-Larsson A., Bharathan G., Bozhkov P.Y., von Arnold S. & Vahala T. KNOTTED!-like homeobox genes of gymnosperm, Norway spruce, expressed during somatic embryogenesis // Plant Physiology and Biochemistry. 2002. V. 40. P. 837843.

132. Huang H., Tudor M., Su T., Zhang Y., Hu Y. & Ma H. DNA binding properties of two Arabidopsis MADS domain proteins: Binding consensus and dimer formation // Plant Cell. 1996. V. 8. P. 81-94.

133. Immink R.G.H., Gadella T.W.J., Ferrario S.I.T., Busscher M. & Angenent G.C. Analysis of MADS box protein-protein interactions in living plant cells // Proc. Nat. Acad.Sci. USA. 2002. V. 99. P. 2416-2421.

134. Immink R.G.H. & Angenent G.C. Transcription factors do it together: The hows and whys of studying protein-protein interactions // Trends in Plant Sciences. 2002. V. 7. V. 531-534.

135. Ingrame G.C., Goodrich J., Wilkinson M.D., Simon R., Haughn G.W. & Coen E.S. Parallels between UNUSUAL FLORAL ORGANS and FIMBRIATA, genes controlling flower development in Arabidopsis and Antirrhinum II Plant Cell. 1995. V. 7. P. 15011510.

136. Irish V.F. & Sussex I.M. Function of the apetala-1 gene during Arabidopsis floral development // Plant Cell. 1990. V. 2. P. 741-753.

137. Irish V.F. & Sussex I.M. A fate map of the Arabidopsis embryonic shoot apical meristem//Development. 1992. V. 115. P. 745-753.

138. Jack T., Fox G.L. & Meyerowitz E.M. Arabidopsis homeotic gene APETALA3 ectopic expression: Transcriptional and post-transcriptional regulation determine floral organ identity // Cell. 1994. V. 76. P. 703-716.

139. Jackson D. & Hake S. Control of phyllotaxy in maize by the abphyll gene // Development 1999. V. 126. P. 315-323.

140. Jacobsen S. & Olszewski N. Mutation at the SPINDLY locus of Arabidopsis alter gibberellin signal transduction // The Plant Cell. 1993. V. 5. P. 887-896.

141. Jefferson A. R., Kavanagh' A. Tony & Bevan W. M. GUS fusions: B-glucuronidase as a sensitive and versatile gene fusion marker in higher plants // The EMBO J. 1987. V.6 (13). P.3901 -3907.

142. Jenik P.D. & Irish V.F. Regulation of cell proliferation pattern by homeotic gene during Arabidopsis floral development//Development. 2000. V. 127. P. 1267-1276.

143. Jeong S., Trotochaud A.E. & Clark S.E. The Arabidopsis CLAVATA2 gene encodes a receptor-like protein required for the stability of the CLAVATA1 receptor-like kinase // Plant Cell. 1999. V. 11. P. 1925-1934.

144. Jofuku K.D., den Boer B.G.W., Van Montagu M. & Okamuro J.K. Control of Arabidopsis flower and seed development by the homeotic gene // Plant Cell. 1994. V.6. P. 1121-1125.

145. Kempin S.A., Savidge B. & Yanofsky M.F. Molecular basis of the cauliflower phenotype in Arabidopsis II Science. 1995. V. 267. P. 522-525.

146. Kleine-Vehn J. & Friml J. Polar targeting and endocytic recycling in auxin-dependent plant development // Annu. Rev. Dev. Biol. 2008a. V. 24. P. 447-473.

147. Kleine-Vehn J., Leitner J., Zwiewka M., Sauer M., Abas L., Luschnig C. & Friml J. Differential degradation of PIN2 auxin efflux carrier by retromer-dependent vacuolar targeting // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008b. V. 105. P. 17812-17817.

148. Klucher K.M., Chow H., Reiser L. & Fischer R.L. The AINTEGUMENTA gene of Arabidopsis required for ovule and female gametophyte development is related to the floral homeotic gen&APETALA2 //Plant Cell. 1996. V. 8. P. 137-153.

149. Known C.S., Chen C. & Wagner D. WUSCHEL is a primary target for transcriptional regulation by SPLAYED in dynamic control of stem cell fate in Arabidopsis II Genes Dev. 2005. V. 19. P. 992-1003.

150. Kohler C., Hennig L., Spillane C., Pien S., Gruissem W. & Grossniklaus U. The Polycomb-group protein MEDEA regulates seed development by controlling expression of the MADSbox gene PHERES1II Genes Dev. 2003. V. 17. P. 1540-1553.

151. Kondo T., Sawa S., Kinoshita A., Mizuno S., Kakimoto T., Fukuda H. & Sakagami Y. A plant peptide encoded by CLV3 identified by in situ MALDI-TOF MS analysis // Science. 2006. V. 313. P. 845-848.

152. Kramer E.M., Dorit R.L. & Irish V.F. Molecular evolution of genes controlling petal and stamen development: duplication and divergence within the APETALA3 and PISTILLATA MADS box gene lineages // Genetics. 1998. V. 149. P. 765-783.

153. Kramer E.M. Evolution of Genetic Mechanisms Controlling Petal and Stamen Development. PhD Thesis. Yale University. New Haven. Connecticut. 2000.

154. Krizek B.A. & Meyerowitz E.M. The Arabidopsis homeotic genes APETALA3 and PISTILLATA are sufficient to provide the В class organ identity function // Development. 1996. V. 112. P. 11-22.

155. Krizek B.A. & Fletcher J.C. Molecular mechanisms of flower development: an armchair guide // Nat. Rev. Genet. 2005. V. 6. P. 688-698.

156. Krizek B.A. Arabidopsis: Flower Development and Patterning. In: Encyclopedia of Life Sciences (ELS). John Wiley & Sons Ltd. 2009. P. 1-9.

157. Kuhlemeier C. & Reinhardt D. Auxin and phyllotaxix // Trends Plant Sci. 2001. V. 6. P. 187-189.

158. Kusaba S., Kano-Murakami Y., Matsuoka M., Tamaoki M., Sakamoto Т., Yamaguchi I. & Fukumoto M. Alteration of hormone levels in transgenic tobacco plants overexpressing the rice homeobox gene OSH1II Plant Physiology. 1998. V. 116. P. 471-476.

159. Lamb R.S. & Irish V.F. Functional divergence within the APETALA3/PISTILLAТА floral homeotic gene lineages. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003. V. 100. P. 6558-6563.

160. Laux Т., Mayer K.F., Berger J. & Jurgens G. The WUSCHEL gene is required for shoot and floral meristem integrity in Arabidopsis II Development. 1996. V. 122. P. 87-96.

161. Leibfried A., To J.P.C., Busch W., Stehling S„ Kehle A., Demar M., Kieber J.J. & Lohmann J.U. WUSCHEL controls meristem function by direct regulation of cytokinin-inducible response regulators // Nature. 2005. V. 438. P. 1172-1175.

162. Lenhard M., Bohnert A., Ju" rgens G. & Laux T. Termination of stem cell maintenance in Arabidopsis floral meristems by interactions between WUSCHEL and AGAMOUS // Cell. 2001. V. 105. P. 805-814.

163. Lenhard M., Jurgens G. & Laux T. The WUSCHEL and SHOOTMERISTEMLESS genes fulfil complementary roles in Arabidopsis shoot meristem regulation // Development. 2002. V. 129. P. 3195-206.

164. Leyser H.L.O. & Furner I.J. Characterisation of three shoot apical meristem mutants of Arabidopsis thaliana II Development. 1992. V. 116. P. 397-403.

165. Lewis D.R., Miller N.D., Splitt B.L., Wu G.S. & Spalding E.P. Separating the roles of acropetal and basipetal auxin transport on gravitropism with mutations in two

166. Arabidopsis Multidrug Resistance-Like ABC transporter genes // Plant Cell. 2007. V. 19. P. 1838-1850.

167. Li Y., Hagen G. & Guilfoyle T.J. Altered morphology in transgenic tobacco plants that overproduce cytokinins in specific tissues and organs // Developmental Biology. 1992. V. 153. P.386-395.

168. Liljegren S.J., Ditta G.S., Eshed Y., Savidge B., Bowman J.L. & Yanofsky M.F. SHATTERPROOF MADS-box genes control seed dispersal in Arabidopsis II Nature. 2000. V. 404. P. 766-770.

169. Lin R. & Wang H. Two homologous ATP-binding cassette transporter proteins, AtMDRl and AtPGPl, regulate Arabidopsis photomorphogenesis and root development by mediating polar auxin transport I I Plant Physiol. 2005. V. 138. P. 949-964.

170. Liu C., Zhou J., Bracha-Drori K., Yalovsky S., Ito T. & Yu H. Specification of Arabidopsis floral meristem identity by repression of flowering time genes // Development. 2007. V. 134. № 10. P. 1901-1910.

171. Liu C., Thong Z. & Yu H. Coming into bloom: the specification of floral meristems // Development. 2010. V. 136. P. 3379-3391.

172. Liu Z. & Meyerowitz E.M. LEUNIG regulates AGAMOUS expression in Arabidopsis flowers. Development. 1995. V. 121. P. 975-991.

173. Liu Z., Franks R.G. & Klink V.P. Regulation of gynoecium marginal tissue formation by LEUNIG and AINTEGUMENTA // Plant Cell. 2000. V. 12. P. 1879-1891.

174. Lohmann J.U., Lohmann J.U., Hong R.L., Hobe M., Busch M., Parcy F., Simon R. & Weigel D. A molecular link between stem cell regulation and floral patterning in Arabidopsis II Cell. 2001. V. 105. P. 793-803.

175. Lohmann J.U. & Weigel D. Building beauty: The genetic control of floral patterning //Dev. Cell. 2002. V. 2. P. 135-142.

176. Long J.A., Moan E.I., Medford J.I. & Barton M.K. A member of the KNOTTED class of homeodomain proteins encoded by the STM gene of Arabidopsis II Nature. 1996. V. 379. P. 66-69.

177. Long J.A. & Barton M.K. The development of apical embryonic pattern in Arabidopsis II Development. 1998. V. 125. P. 3027-3035.

178. Long J. & Barton M. K. Initiation of axillary and floral meristems in Arabidopsis II Dev. Biol. 2000. V. 218. P. 341-353.

179. Luschnig C., Gaxiola R.A., Grisafi P. & Fink G.R. EIR1, a rootspecific protein involved in auxin transport, is required for gravitropism in Arabidopsis thaliana II Genes Dev. 1998. V. 12. P. 2175-2187.

180. Lyndon R.F. The shoot apical meristem: its growth and development. Cambridge: Cambridge University Press. 1998.

181. Lynn K., Fernandez A., Aida M., Sedbrook J., Tasaka M., Masson P. & Barton M.K. The PINHEAD/ZWILLE gene acts pleiotropically in Arabidopsis development and has overlapping functions with the ARGONAUTE1 gene // Development. 1999. V. 126. P. 469481.

182. Mandel M.A., Gustafson-Brown C., Savidge B. & Yanofsky M.F. Molecular characterization of the Arabidopsis floral homeotic gene APETALA1II Nature 1992. V. 360. P. 273-277.

183. Mandel M.A. & Yanofsky M.F. A gene triggering flower development in Arabidopsis. Nature. 1995. V. 377. P. 522-524.

184. Mauseth J.D. Giant shoot apical meristems in Cacti have ordinary leaf primordia but altered phyllotaxy and shoot diameter // Annals of Botany. 2004. V. 94. P. 145-153.

185. Mayer K.F.X., Schoof H., Haecker A., Lenhard M. & Ju" rgens G. Role of WUSCHEL in regulating stem cell fate in the Arabidopsis shoot meristem // Cell. 1998. V. 95. P. SOS-SIS.

186. McConnell J.R. & Barton M.K. Effect of mutations in the PINHEAD gene of Arabidopsis in the formation of shoot apical mersitems // Dev Genet. 1995. V. 16. P. 258— 366.

187. McGonigle B., Bouhidel K. & Irish V.F. Nuclear localization of the Arabidopsis APETALA3 and PISTILLATA homeotic gene products depends on their simultaneous expression//Genes Dev. 1996. V. 10. P. 1812-1821.

188. Mele G., Ori N., Sato Y., Hake S. The knotted 1-like homeobox gene BREVIPEDICELLUS regulates cell differentiation by modulating metabolic pathways. Genes & Development. 2003. V. 17. P. 2088-2093.

189. Morita Y. & Kyozuka J. Characterization of OsPID, the rice ortholog of PINOID, and its possible involvement in the control of polar auxin transport // Plant Cell Physiol. 2007. V. 48. P. 540-549.

190. Moussian B., Schoof H., Haecker A., Ju'rgens & G. Laux T. Role of the ZWILLE gene in the regulation of central shoot meristem cell fate during Arabidopsis embryogenesis //EMBO J. 1998. V. 17. P. 1799-1809.

191. Mravec J., Kubes M., Bielach A., Gaykova V., Petrasek J., Skupa P., Chand S., Benkova E., Zazimalova E. & Friml J. Interaction of PIN and PGP transport mechanisms in auxin distribution-dependent development // Development. 2008. V. 135. P. 3345-3354.

192. Muller A., Guan C., Galweiler L., Tanzler P., Huijser P., Marchant A., Parry G., Bennett M., Wisman E. & Palme K. AtPIN2 defines a locus of Arabidopsis for root gravitropism control // EMBO J. 1998. V. 17. P. 6903-6911.

193. Muller R., Borghi L., Kwiatkowska D., Laufs P. & Simon R. Dynamic and compensatory responses of Arabidopsis shoot and floral meristems to CLV3 signaling // Plant Cell. 2006. V. 18. P. 1188-1198.

194. Muller R., Bleckmann A. & Simon R. The receptor kinase CORYNE of Arabidopsis transmits the stem cell-limiting signal CLAVATA3 independently of CLAVATA1 // Plant Cell. 2008. V. 20. P. 934-946.

195. Murphy A.S., Hoogner K.R., Peer W.A. & Taiz L. Identification, purification, and molecular cloning of N-l-naphthylphthalmic acid-binding plasma membrane-associated aminopeptidases from Arabidopsis // Plant Physiol. 2002. V. 128. P. 935-950.

196. Nag A., Yang Y., & Jack T. DORNROSCHEN-LIKE, an AP2 gene, is necessary for stamen emergence in Arabidopsis II Plant Molecular Biology. 2007. V. 65. №. 3. P. 219-32.

197. Nemhauser J.L., Zambryski P.C. & Judith L.R. Auxin signaling in Arabidopsis flower development ? // Current Opinion in Plant Biology. 1998. V. 1. P. 531-535.

198. Newman K.L., Fernandez A.G. & Barton M.K. Regulation of axis determinacy by the Arabidopsis PINHEAD gene // Plant Cell. 2002. V. 14. P. 3029-3042.

199. Ng M. & Yanofsky M.F. Activation of the Arabidopsis B class homeotic genes by APETALA1II Plant Cell. 2001. V. 13. P. 739-753.

200. Nillsson O., Lee I., Blazques M.A. & Weigel D. Flowering time genes modulate the response to LEAFY activity. Genetics. 1998. V. 150. P. 403-410.

201. Noh B., Murphy A.S. & Spalding E.P. Multidrug resistance-like genes of Arabidopsis required for auxin transport and auxin-mediated development // Plant Cell. 2001. V. 13. P. 2441-2454.

202. Noh B., Bandyopadhyay A., Peer W.A., Spalding E.P. & Murphy A.S. Enhanced gravi- and phototropism in plant mdr mutants mislocalizing the auxin efflux protein PIN1 // Nature. 2003. V. 423. P. 999-1002.

203. Ogawa M., Shinohara H., Sakagami Y. & Matsubayashi Y. Arabidopsis CLV3 peptide directly binds CLV1 ectodomain // Science. 2008. V. 319. P. 294.

204. Oka M., Ueda J., Miyamoto K. & Okada K. Activities of auxin polar transport in inflorescence axes of flower mutants of Arabidopsis thaliana: relevance of flower formation and growth // J. Plant Res. 1998. V. 111. P. 407-410.

205. Okada K. & Shimura Y. Reversible root-tip rotation in Arabidopsis seedlings induced by obstacle-touching stimulus // Science. 1990. V. 250. P. 274-276.

206. Okada K., Ueda J., Komaki M.K., Bell C.J. & Shimura Y. Requirement of the auxin polar transport-system in early stages of Arabidopsis floral bud formation // Plant Cell. 1991. V.3.P. 677-684.

207. Okamuro J.K., den Boer B.G., Lotys-Prass C., Szeto W. & Jofuku K.D. Flowers into shoots: Photo and hormonal control of a meristem identity switch in Arabidopsis II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 13831-13836.

208. Okamuro J.K., Caster B., Villarroel R„ Van Montagu M. & Jofuku K.D. The AP2 domain of APETALA2 defines a large new family of DNA binding proteins in Arabidopsis II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997a. 94, 7076-7081.

209. Okamuro J.K., Szeto W., Lotys-Prass C. & Jofuku K.D. Photo and hormonal control of meristem identity in the Arabidopsis flower mutants apetala2 and apetalal // Plant Cell. 1997b. V. 9. P. 37-47.

210. Ori N., Eshed Y., Chuck G., Bowman J. L. & Hake S. Mechanisims that control knox genes expression in the Arabidopsis shoot // Development. 2000. V. 127. P. 55235532.

211. Parcy F., Nilsson O., Busch M.A. & Weigel D. A genetic framework for floral patterning//Nature. 1998. V. 395. P. 561-566.

212. Paponov I.A, Teale W.D., Trebar M., Blilou I. & Palme K. The PIN auxin efflux facilitators: Evolutionary and functional perspectives // Trends Plant Sci. 2005. V. 10. P. 170-177.

213. Parry G., Delbarre A., Marchant A., Swarup R., Napier R., Perrot-Rechenmann C. & Bennett M.J. Novel auxin transport inhibitors phenocopy the auxin influx carrier mutation auxl // Plant J. 2001. V. 25. P. 399-406.

214. Pelaz S., Ditta G.S., Baumann E., Wisman E. & Yanofsky M.F. B and C floral organ identity functions require SEPALLATA MADS-box genes // Nature 2000. V. 405. P. 200203.

215. Pelaz S., Gustafson-Brown C., Kohalmi S.E., Crosby W.L. & Yanofsky M.F. APETALA1 and SEPALLATA3 interact to promote flower development // Plant J. 2001a. V. 26. P. 385-394.

216. Pelaz S., Tapia-Lopez R., Alvarez-Buylla E.R. & Yanofsky M.F. Conversion of leaves into petals in Arabidopsis II Curr. Biol. 2001b. V. 11. P. 182-184.

217. Peng J., Carol P., Richards D.E., King K.E., Cowling R.J., Murphy G.P. & Harberd N.P. The Arabidopsis GAI gene defines a signaling pathway that negatively regulates gibberellin responses // Genes Dev. 1997. V. 11. P. 3194-3205.

218. Petrasek J. & Friml J. Auxin transport routes in plant development // Development. 2009. V. 136. P. 2675-2688.

219. Pham T. & Sinha N. Role of KNOX genes in shoot development of Welwitschia mirabilis // International Journal of Plant Sciences. 2003. V. 164. P. 333-343.

220. Przemeck G.K., Mattsson J., Hardtke C.S., Sung Z.R. & Berleth T. Studies on the role of the Arabidopsis gene MONOPTEROS in vascular development and plant cell axialization I I Planta. 1996. V. 200. P. 229-237.

221. Piazza P., Jasinski S. & Tsiantis M. Evolution of leaf developmental mechanism // New Phytologist. 2005. V. 167. P. 693-710.

222. Pinyopich A., Ditta G.S., Savidge B., Liljegren S.J., Baumann E., Wisman E. & Yanofsky M.F. Assessing the redundancy of MADS-box genes during carpel and ovule development //Nature. 2003. V. 424. P. 85-88.

223. Pnueli L., Hareven D., Broday L., Hurwitz C. & Lifschitz E. The TM5 MADS box gene mediates organ differentiation in the three inner whorls of tomato flowers // Plant Cell. 1994. V. 6. P. 175-186.

224. Reinhardt D., Mandel T. & Kuhlemeier C. Auxin regulates the initiation and radial position of plant lateral organs // Plant Cell. 2000. V. 12. P. 507-518.

225. Reinhardt D., Pesce E.R., Stieger P., Mandel T., Baltensperger K., Bennett M., Traas J., Friml J. & Kuhlemeier C. Regulation of phyllotaxis by polar auxin transport // Nature. 2003. V. 426. P. 255-260.

226. Riechmann J.L., Krizek B.A. & Meyerowitz E.M. Dimerization specificity of Arabidopsis MADS domain homeotic proteins APETALA1, APETALA3, PISTILLATA and AGAMOUS // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996a. V. 93. P. 4793-4798.

227. Riechmann J.L., Wang,M. & Meyerowitz E.M. DNA binding properties of Arabidopsis MADS domain homeotic proteins APETALA1, APETALA3, PISTILLATA and AGAMOUS. Nucleic Acids Res. 1996b. V. 24. P. 3134-3141.

228. Riechmann J.L. & Meyerowitz E.M. MADS domain proteins in plant development // Biol. Chem. 1997. V. 378. P. 1079-1101.

229. Riechmann J.L. & Meyerowitz E.M. The AP2/EBEBP family of plant transcription factors // Biol. Chem. 1998. V. 379. P. 633-646.

230. Roeder A.H.K., Chickarmanel V., Cunha A., Obara B., Manjunath B.S. & Meyerowitz E.M. Variability in the control of cell division underlies sepal epidermal patterning in Arabidopsis thaliana II PLoS Biology. 2010. V. 8. № 5.

231. Roman G., Lubarsky B., Kieber J.J., Rothenberg M. & Ecker J.R. Genetic-analysis of ethylene signal transduction in Arabidopsis thaliana: five novel mutant loci integrated into a stress-response pathway//Genetics. 1995. V. 139. P. 1393-1409.

232. Sablowski R. The dynamic plant stem cell niches // Curr. Opin. Plant Biol. 2007. V. 10. P. 639-644.

233. Sakamoto T., Kamiya N., Ueguchi-Tanaka M., Iwahori S. & Matsuoka M. KNOX homeodomain protein directly suppresses the expression of a gibberellin biosynthetic gene in the tobacco shoot apical meristem // Genes & Development 2001. V. 15. P. 581-590.

234. Schneeberger R.G., Becraft P.W., Hake S. & Freeling M. Ectopic expression of the knox homeo box gene rough sheath 1 alters cell fate in the maize leaf // Genes & Development. 1995. V. 9. P. 2292-2304.

235. Schoof H., Lenhard M., Haecker A., Mayer K.F., Ju" rgens G. & Laux T. The stem cell population of Arabidopsis shoot meristems in maintained by a regulatory loop between the CLAVATA and WUSCHEL genes // Cell. 2000. V. 100. P. 635-644.

236. Schultz E.A. & Haughn G.W. LEAFY, a homeotic gene that regulates inflorescence development in Arabidopsis II Plant Cell. 1991. V. 3. P. 771-781.

237. Sentoku N., Sato Y. & Matsuoka M. Overexpression of rice OSH genes induces ectopic shoots on leaf sheaths of transgenic rice plants // Developmental Biology. 2000. V. 220. P. 358-364.

238. Sharma V.K., Carles C. & Fletcher J.C. Mantenance of stem cell populations in plants // PNAS. 2003. V. 100. P. 11823-11829.

239. Shpak E.D., McAbee J.M., Pillitteri L.J., Torii K.U. Stomatal patterning and differentiation by synergistic interactions of receptor kinases // Science. 2005. V. 309. P. 290-293.

240. Simon R., Carpenter R., Doyle S. & Coen E. Fimbriata controls flower development by mediating between meristem and organ identity genes // Cell. 1994. V. 78. P. 99-107.

241. Sinha N.R., Williams R.E. & Hake S. Overexpression of the maize homeo box gene, KNOTTED-1, causes a switch from determinate to indeterminate cell fates // Genes & Development. 1993. V. 7. P. 787-795.

242. Skirpan A., Culler A. H., Gallavotti A., Jackson D., Cohen J.D. & McSteen P. BARREN INFLORESCENCE2 interaction with ZmPINla suggests a role in auxin transport during maize inflorescence development // Plant Cell Physiol. 2009. V. 50. P. 652-657.

243. Sridhar V.V., Surendrarao A. & Liu Z. APETALA1 and SEPALLATA3 interact with SEUSS to mediate transcription repression during flower development // Development. 2006. V. 133. P. 3159-3166.

244. Steinmann T., Geldner N., Grebe M., Mangold S., Jackson C.L., Paris S., Galweiler L., Palme K. & Jurgens G. Coordinated localization of auxin offluxe carrier PIN1 by GNOM ARF GEF // Science. 1999. V. 286. P. 316-318.

245. Stewart R.N. & Dermen H. Determination of number and mitotic activity of shoot apical initial cells by analysis of mericlinal chimeras // Am J Bot. 1970. V. 57. P. 816-826.

246. Su Y.H., Zhao X.Y., Liu Y.B., Zhang C.L., O'Neill S.D., Zhang X.S. Auxin-induced WUS expression is essential for embryonic stem cell renewal during somatic embryogenesis in Arabidopsis II Plant J. 2009. V. 59. P. 448-460.

247. Su H.Y., Liu Y.B., Zhang X.S. Auxin-Cytokinin Interaction Regulates Meristem Development // Molecular Plant. 2011. V. 4 (4). P. 616-625.

248. Taguchi-Shiobara F., Yuan Z., Hake S. & Jackson D. The fasciated ear2 gene encodes a leucine-rich repeat receptor-like protein that regulates shoot meristem proliferation in maize // Genes & Development. 2001. V. 15. P. 2755-2766.

249. Takada S., Hibara K., Ishida T., Tasaka M. The CUP-SHAPED COTYLEDON 1 gene of Arabidopsis regulates shoot apical meristem formation // Development. 2001. V. 128. P. 1127-1135.

250. Tanaka-Ueguchi M., Itoh H., Oyama N., Koshioka M. & Matsuoka M. Overexpression of a tobacco homeobox gene, NTH15, decreases the expression of a gibberellin biosynthetic gene encoding GA 20-oxidase // Plant Journal. 1998. V. 15. P. 391-400.

251. TheiBen G., Kim J. & Saedler H. Classification and phylogeny of the MADS-box multigene family suggest defined roles of MADS-box gene subfamilies in the morphological evolution of eukaryotes // J. Mol. Evol. 1996. V. 43. P. 484-516.

252. TheiBen G., Becker A., Di Rosa A., Kanno A., Kim J.T.M., Winter K.-U. & Saedler H. A short history of MADS box genes in plants // Plant Mol. Biol. 2000. V. 42. P. 115149.

253. Theissen G. Development of floral organ identity: Stories from the MADS house // Curr. Opin. Plant Biol. 2001a. V. 4. P. 75-85.

254. Theissen G. & Saedler H. Floral quartets // Nature. 2001b. V. 409. P. 469-471.

255. Tilly J., Allen D.W. & Jack T. The CArG boxes in the promoter of the Arabidopsis floral organ identity gene APETALA3 mediate diverse regulatory effects // Development. 1998. 125. 1647-1657.

256. Timmermans M.C., Hudson A., Becraft P.W. & Nelson T. ROUGH SHEATH2: a Myb protein that represses knox homeobox genes in maize lateral organ primordial // Science. 1999. V. 284. P. 151-153.

257. Timpte C., Lincoln C.J., Pickett S.B., Turner J. & Estelle M. The AXR1 and AUX1 genes of function in separate auxin-response pathways // Plant. J. 1995. V. 8. P. 561-519.

258. Tsiantis M., Brown M.I., Skibinski G. & Langdale J.A. Disruption of auxin transport is associated with aberrant leaf development in maize // Plant Physiology. 1999a. V. 121. P. 1163-1168.

259. Tucker M.R., Hinze A., Tucker E.J., Takada S., Jurgens G. & Laux T. Vascular signalling mediated by ZWILLE potentiates WUSCHEL function during shoot meristem stem cell development in the Arabidopsis embryo // Development. 2008. V. 17. P. 28392843.

260. Ulmasov T., Murfett J., Hagen G. & Guilfoyle T.J. Aux/IAA proteins repress expression of reporter genes containing natural and highly active synthetic auxin response elements // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 1963-1971.

261. Utsuno K., Shikanai T., Yamada Y. & Hashimoto T. AGR, an agravitropic locus of Arabidopsis thaliana, encodes a novel membrane-protein family member // Plant Cell Physiol. 1998. V. 39.1111-1118.

262. Vernoux T., Kronenberger J., Grandjean O., Laufs P. & Traas J. PIN-FORMED 1 regulates cell fate at the periphery of the shoot apical meristem // Development. 2000. V. 127. P. 5157-5165.

263. Vieten A., Vanneste S., Wisniewska J., Benkova E., Benjamins R., Beeckman T., Luschnig C. & Friml J. Functional redundancy of PIN proteins is accompanied by auxindependent cross-regulation of PIN expression // Development. 2005. V. 132. P. 45214531.

264. Vollbrecht E., Veit B., Sinha N. & Hake S. The developmental gene Knotted-1 is a member of a maize homeobox gene family // Nature. 1991. V. 350. P. 241-243.

265. Vollbrecht E., Reiser L. & Hake S. Shoot meristem size is dependent on inbred background and presence of the maize homeobox gene, knottedl H Development. 2000. V. 127. P. 3161-3172.

266. Wagner D., Sablowski R.W.M. & Meyerowitz E.M. Transcriptional activation of APETALA1 by LEAFY // Science. 1999. V. 285. P. 582-584.

267. Wagner D., Meyerowitz E.M. SPLAYED, a novel SWI/SNF ATPase homolog, controls reproductive development in Arabidopsis II Current Biology. 2002. V.12. № 2. P. 85-94.

268. Wagner D. Flower morphogenesis: timing is key // Dev. Cell. 2009. P. 621-622.

269. Weigel D., Alvarez J., Smyth D.R., Yanofsky M.F. & Meyerowitz E.M. LEAFY controls floral meristem identity in Arabidopsis II Cell. 1992. V. 69. P. 843-859.

270. Weigel D. & Meyerowitz E.M. Activation of floral homeotic genes in Arabidopsis II Science. 1993. V. 261. P. 1723-1726.

271. Weigel D. & Meyerowitz E.M. The ABCs of floral homeotic genes // Cell. 1994. V. 78. P. 203-209.

272. Weigel D. & Nilsson O. A developmental switch sufficient for flower initiation in diverse plants // Nature. 1995. V. 377. P. 495-500.

273. Weigel D. & Jurgens G. Stem cells that make stems // Nature. 2002. V. 415. P. 751754.

274. Weiss D. & Ori N. Mechanisms of cross talk between gibberellins and other hormones //Plant Physiology. 2007. V. 144. P. 1240-1246.

275. Woodward A.W. & Bartel B. Auxin: regulation, action, and interaction // Annals of Botany. 2005. V. 95. P. 707-735.

276. Wu G.S., Lewis D.R. & Spalding E.P. Mutations in Arabidopsis multidrug resistance-like ABC transporters separate the roles of acropetal and basipetal auxin transport in lateral root development // Plant Cell. 2007. V. 19. P. 1826-1837.

277. Xu B., Li Z., Zhu Y., Wang H., Ma H., Dong A. & Huang H. Arabidopsis genes AS1, AS2 and JAG negatively regulate boundary specifying genes to promote sepal and petal development//Plant Physiology. 2008. V. 146. P. 566-575.

278. Yadav K.R., Girke T., Pasala S., Xie M. & Reddy G.V. Gene expression map of the Arabidopsis shoot apical meristem stem cell niche // Plant Biol. 2009. V. 106 (№ 3). P. 4941-4946.

279. Yang Y., Fanning L. & Jack T. The K domain mediates heterodimerization of the Arabidopsis floral organ identity proteins APETALA3 and PISTILLATA // Plant J. 2003a. V. 33. P. 47-59.

280. Yang Y., Xiang H. & Jack T. Pistillata-5, an Arabidopsis B class mutant with strong defects in petal but not stamen development. Plant J. 2003b. 33. P. 177-188.

281. Yanofsky M.F., Ma H., Bowman J.L., Drews G.N., Feldmann K.A. & Meyerowitz E.M. The protein encoded by the Arabidopsis homeotic gene AGAMOUS resembles transcription factors // Nature. 1990. V. 346. P. 35-39.

282. Yanofsky M.F. Floral meristems to floral organs: Genes controlling early events in Arabidopsis flower development // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1995. V. 46. P. 167-188.

283. Yu H., Ito T., Wellmer F. & Meyerowitz E.M. Repression of AGAMOUS-LIKE 24 is a crucial step in promoting flower development //Nat. Genet. 2004. V. 36. P. 157-161.

284. Zazimalova E., Krecek P., Skupa P., Hoyerova K. & Petrasek J. Polar transport of the plant hormone auxin: the role of PIN-FORMED (PIN) proteins // Cell. Mol. Life Sci. 2007. V. 64. P. 1621-1637.

285. Zazimalova E., Murphy A.S., Haibing Y., Hoyerova K. & Hosek P. Auxin Transporters—Why So Many? // Cold Spring Harb Perspect Biol. 2010. P. 1-14.

286. Zhao Y., Medrano L., Ohashi K„ Fletcher J.C., Yu H., et al. HANABA TARANU is a GATA transcription factor that regulates shoot apical meristem and flower development in Arabidopsis II Plant Cell. 2004. V. 16. P. 2586-2600.

287. Zhao Z., Andersen S.U., Ljung K., Dolezal K., Miotk A., Schultheiss SJ. & Lohmann J.U. Hormon control of the shoot stem-cell niche // Nature. 2010. V. 465. P. 10891092.

288. Zgurski J.M., Sharma R., Bolokoski D.A. & Schultz E.A. Asymmetric auxin response precedes asymmetric growth and differentiation of asymmetric leafl and asymmetric leaf2 Arabidopsis leaves // Plant Cell. 2005. V. 17. P. 77-91.