Изучение генетической и гормональной регуляции развития цветоноса Arabidopsis thaliana тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.15, кандидат биологических наук Лебедева, Ольга Владимировна

• Лебедева, Ольга Владимировна
• кандидат биологических наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Лебедева, Ольга Владимировна

Введение

Обзор литературы

1. Генетический контроль ранних этапов развития побега

2. Влияние транспорта ауксинов на развитие побега

3. Влияние гиббереллинов и брассиностероидов на рост стебля и 19 листьев

4. Взаимодействие гормонов

5. Взаимодействие ауксинов и пероксидаз

6. Влияние пероксидаз на рост и развитие растений

7. Гены пероксидаз

Материалы и методы

1. Растительный материал и условия выращивания растений ф 2. Генетическое картирование

3. Физиологические тесты и культура ткани in vitro

4. Сканирующая электронная микроскопия

5. Определение активности и изоферментного состава пероксидаз

6. Выделение нуклеиновых кислот

7. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)

8. Клонирование ПЦР-продуктов

9. Компьютерные методы анализа

10. Методы статистического анализа

Результаты и обсуждение

1. Морфологические и генетические особенности мутанта taeniata.

1.1. Генетический анализ линии К

1.2. Фенотипическая характеристика мутанта tae

1.3. Анализ экспрессии KNOX генов класса I в листьях мутанта tae.

1.4. Анализ последовательности гена AS2 и анализ экспрессии генов 55 AS1 и AS2 у мутанта tae

1.5. Схемы возможного участия гена ТЛЕ в генетической регуляции 56 перехода меристемы побега к процессу морфогенеза

2. Изучение мутанта abruptus при помощи молекулярно- 59 генетических методов анализа

2.1. Анализ взаимодействия генов ABRUPTUS иIEAFY на основе 59 характера экспрессии этих генов

2.2. Анализ последовательности мутантного гена аЬг

3. Морфологические особенности мутанта curly и локализация гена 64 CURLY на I хромосоме

3.1. Морфологические особенности мутанта curly

3.2. Локализация гена CUR на генетической карте A.thaliana

4. Морфологические, физиологические и генетические особенности мутанта lepida

4.1. Генетический анализ линии К

4.2. Морфологические особенности мутанта 1е

4.3. Изменение чувствительности к фитогормонам у мутанта 1е

4.4. Взаимодействие генов LE и CRG

4.5. Взаимодействие генов LE и NA

5. Анализ изменений спектра изоформ пероксидаз у мутанта pxd и 90 локализация гена PXD на V хромосоме

5.1. Анализ наследования изменных изоформ пероксидаз

5.2. Анализ анионных изоформ пероксидаз в различных тканях 91 растений

5.3. Влияние стрессовых факторов на активность изоформ 98 пероксидаз, контролируемых геном PXD

5.4. Компьютерный анализ последовательностей генов пероксидаз

5.5. Локализация гена PXD при помощи молекулярных маркеров

5.6. Анализ нуклеотидных и аминокислотных последовательностей пероксидаз Р53 и Р

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Изучение генетической и гормональной регуляции развития цветоноса Arabidopsis thaliana»

Развитие цветоноса растения - сложный многоэтапный процесс, зависящий от множества факторов внутренней и внешней среды. Среди внешних факторов' основными являются продолжительность фотопериода и интенсивность света, температурные условия, питание и влажность, а также стрессовые факторы. При помощи рецепторов растение получает сигналы из внешней среды и реагирует на них изменением активности генов. Активацией и репрессией генов осуществляется полный контроль всех внутренних процессов в растении. Гормональные сигналы являются основным связующим звеном координации развития и ответных реакций различных частей растения. Каждый из этапов развития: формирование вегетативной меристемы, закладка и развитие латеральных органов - листьев и пазушных меристем, а затем переход вегетативной меристемы во флоральную, контролируется множеством генов, которые состоят в сложной иерархии, изученной в настоящее время лишь частично. Выявление новых компонентов, установление их функции и связи с другими факторами этой системы является основной задачей изучения развития растений, в решении которой большую роль играет анализ: мутантов. В результате исследования мутантов1 растений сейчас созданы первые генетические модели эмбрионального развития, роста междоузлий, индукции цветения и морфогенеза цветка. Однако эти модели еще далеко не полные, поиск и изучение новых генов способствует их дополнению и коррекции.

Плейотропные эффекты многих генов не позволяют рассматривать основные процессы, которые они контролируют, отвлеченно от других. Так, например, известно, что пероксидазы растений участвуют в защите от окислительного стресса (Smith, Hammerschmidt, 1988). Однако пероксидазы окисляют широкий спектр органических субстратов и продукты их окисления оказываются вовлеченными в другие весьма важные процессы. Показано, что пероксидазы оказывают влияние на процессы роста и морфогенеза растения, участвуя в процессах биосинтеза лигнина и деградации ауксина (Quiroga ef al., 2000; Savitsky et al., 1999). Сопряженность процессов развития с адаптивными реакциями растений на окислительный стресс, вызванный как внешними стрессовыми факторами, так и внутренними процессами, является следствием прикрепленного образа жизни и особенностей онтогенеза растений.

Arabidopsis thaliana (L.) Heynh., благодаря малому размеру генома, миниатюрности, самоопыляемости и высокой плодовитости растений в настоящее время стал излюбленным объектом генетических исследований. К 2000 году было завершено полное секвенирование генома Arabidopsis. Содержание в базах данных этой и многочисленной другой информации во многом упрощает задачу исследований. Так, например, после определения функции гена и его картирования можно провести анализ генов, расположенных в области его локализации и определить наиболее вероятных кандидатов на роль исследуемого гена, и дальнейшие исследования, в первую очередь, проводить с этими кандидатами. Однако, несмотря на ценность информации, содержащейся в базах данных, функции большей части генов еще неизвестны, также ограниченную информацию можно получить о взаимодействии генов путем анализа баз данных. Поэтому исследование и локализация мутаций, а также анализ взаимодействия генов с использованием мутантов по-прежнему актуальны.

Цели и задачи исследования:

1. Генетический и морфо-физиологический анализ мутантов с изменениями структуры побега.

2. Локализация генов на генетической карте A.thaliana.

3. Изучение взаимодействия генов на основе анализа двойных мутантов и характера генной экспрессии; построение схем генетической регуляции процессов роста и развития побега.

4. Анализ структурно-функциональных особенностей генов ABR, AS2 и трех генов пероксидаз у растений дикого типа и мутантов.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Генетика», Лебедева, Ольга Владимировна

выводы

Функцией гена ТАЕ является негативная регуляция меристематической активности. Этот ген ТАЕ участвует в процессах перехода вегетативной меристемы во флоральную. Ген ТАЕ является негативным регулятором транскрипции гомеобоксных генов STM, KNAT1, KNAT2, KNAT6, то есть геном-регулятором более высокого порядка.

Ген ABR является положительным регулятором транскрипции гена LFY. Мутация abr вызывает замену аминокислоты (глицин—>глутаминовая кислота в положении 318), в участке, входящем в каталитический центр протеинкиназы ABR.

Ген LE участвует в координации различных гормональных сигналов и является позитивным регулятором роста стебля. Ген LE эпистатически взаимодействует с геном NA; нарушение активности гена LE приводит к восстановлению роста стебля и апикального доминирования у растений, несущих доминантную мутацию па.

Новый ген CUR, мутация в котором приводит к скручиванию надземных органов растения, локализован на хромосоме I в районе 86-89сМ.

Ген PXD контролирует образование трех изоформ анионной пероксидазы, активность которых возрастает при обработке ауксином и стрессовых воздействиях. Ген PXD локализован на молекулярно-генетической карте хромосомы V и, по-видимому, идентичен гену Р53/АТР А2.

СПИСОК ПУБЛИКАЦИЙ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Лебедева О.В., Фурсова О.В. Изучение особенностей морфогенеза мутанта Arabidopsis thaliana lepida-2 in vivo и in vitro 11 Тезисы VII молодежной конференции ботаников. Санкт-Петербург, 2000. С. 129.

2. Лебедева О.В., Фурсова О.В. Изучение мутанта pxd Arabidopsis thaliana с измененным спектром пероксидаз // Тезисы VII конференции молодых ученых «Проблемы физиологии растений и генетики на рубеже третьего тысячелетия» Киев, 2000. С. 99.

3. Лебедева О.В., Фурсова О.В., Полянская И.П., Ежова Т.А. Генетический и изоферментный анализ мутанта pxdl Arabidopsis thaliana II Тезисы научной конференции памяти Грегора Менделя. Москва, 2001. С. 72.

4. Лебедева О.В., Мусин С.М., Радюкина H.JL, Ежова ТА. Гваяколовые пероксидазы Arabidopsis thaliana: изменение изоферментного спектра под воздействием мутации PXD // Тезисы VI Международной конференции «Биоантиоксидант». Москва, 2002. С. 347-349.

5. Лебедева О.В., Солдатова О.П. Плейотропное действие мутации lepida (le) на морфогенез растений Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Тезисы II Международной конференции по анатомии и морфологии растений. Санкт-Петербург, 2002. С.368-369.

6. Лебедева О. В., Ежова Т. А., Мусин С. М., Радюкина Н. JL, Шестаков С. В. Ген PXD контролирует образование трех изоформ анионных пероксидаз Arabidopsis thaliana И Известия АН. Сер. Биол. 2003. №2. С. 159-168.

7. Ежова Т.А., Лебедева О.В., Огаркова О.А., Пенин А.А., Солдатова О.П., Шестаков С.В. Arabidopsis thaliana - модельный объект генетики растений. М.: МАКС Пресс, 2003. 219 с.

8. Лебедева О.В.,. Ежова Т.А. Плейотропное действие мутации taeniata на морфогенез побега и листа растений Arabidopsis thaliana // Материалы 2-й конференции МОГиС им. Вавилова «Актуальные проблемы генетики». Москва, 2003. Т. 2. С. 246.

9. Склярова О.А., Лебедева О.В., Ежова Т.А. Эпистатическое взаимодействие мутаций по генам NANA и LEPIDA, контролирующим рост стебля у Arabidopsis thaliana.// Материалы 2-й конференции МОГиС им. Вавилова «Актуальные проблемы генетики». Москва, 2003. Т. 2. С. 254-255.

10. Солдатова О.П., Лебедева О.В., Ежова Т.А. Роль генов ABRUPTUS (ABR) и д-, LEAFY (LFY) в развитии эмбрионов Arabidopsis thaliana. И Материалы 2-й конференции МОГиС им. Вавилова «Актуальные проблемы генетики». Москва, 2003. Т. 2. С. 256.

П.Лебедева О. В., Ежова Т. А., Шестаков С. В. Локализация и молекулярный анализ гена PXD, кодирующего анионную пероксидазу Arabidopsis thaliana // Доклады Академии наук. 2004, Т. 394, №1. С.41-43.

12. Лебедева О. В., Склярова О. А., Ежова Т. А. Роль генов NANA и LEPIDA в регуляции роста стебля Arabidopsis thaliana II Генетика. 2004. Т. 40. №5.

БЛАГОДАРНОСТИ

Автор выражает глубокую благодарность научному руководителю Т.А.Ежовой за неоценимую помощь и внимательное отношение на всех этапах выполнения работы.

Искреннюю благодарность сотрудникам лаборатории Н.Л.Радюкиной, О.П.Солдатовой и А.А.Пенину, от каждого из которых в любой момент можно было получить теоретическую или практическую помощь.

Проф. S.Melzer (University of Liege, Belgium), а также в.н.с. С.М.Мусину (ВНИИ картофельного хозяйства) за предоставленную возможность выполнения части работы в руководимых ими лабораториях.

Глубокую признательность заведующему кафедрой генетики МГУ академику РАН С.В.Шестакову за интерес к работе и ее всестороннюю поддержку, а также всему коллективу кафедры генетики МГУ.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проведенные исследования; показали, что мутации в: генах ТАЕ, CUR и LE оказывают плейотропное действие на развитие цветоноса и розеточных листьев. Развитие мутантных признаков tae зависит от температуры; и фотопериода. Фенотип мутантных растений, выращенных при коротком световом дне, свидетельствует об участии гена ТАЕ в процессах перехода от вегетативного .Ах развития растения к генеративному. Розеточные листья мутанта характеризуются развитием эктопических побегов, которые наблюдаются лишь у трансгенных растений 35S::KNAT1 (Lincoln et al., 1994) и двойных мутантов filуаЬЗ (Kumaran et al., 2002). Исследования экспрессии генов STM, KNAT1, KNAT2 и KNAT6 в листьях мутанта tae позволили: сделать вывод о том, что ТАЕ является негативным регулятором этих гомеобоксных генов. Тот факт, что ген STM стоит на более высокой ступени иерархии! среди других известных KNOX генов класса I;. позволяет сделать вывод, что нами идентифицирован новый ген - регулятор гомеобоксных генов5 более высокого порядка. Предложены схемы возможного; участия гена ТАЕ в генетической регуляции процесса перехода меристемы побега к морфогенезу.

Мутация в гене CUR приводит к кручению; черешков; листьев, стебля, цветоножек и стручков растения, а также изменению количества органов цветка. Сравнение фенотипа мутанта сиг с другими подобными»мутантами и локализация гена CUR на хромосоме I в районе 86-89сМ приводят к заключению, что до нас этот ген описан не был.

В результате проведенных нами физиологических тестов продемонстрирована измененная чувствительность мутанта 1е-2 к нескольким гормонам одновременно. Выявлена: способность эпибрассинолида частично восстанавливать рост гипокотилей мутанта, кроме того, у мутанта обнаружено увеличение количества устьиц и расположение их кластерами на верхней стороне розеточных листьев, подобно мутанту с нарушением биосинтеза брассиностероидов cpd (Serna, Fenoll, 2000). Однако также получены доказательства того, что 1е-2 не является мутантом ; по биосинтезу брассиностероидов. Нами сделан вывод, что ген LE участвует в координации различных гормональных сигналов и является позитивным регулятором роста стебля. Выявлена новая мутация erg, не имеющая качественного фенотипического проявления на уровне растения, но повышающая способность к регенерации побегов в культивируемых in vitro тканях. Исследования генетических взаимодействий гена LE с генами CRG и NA выявили комплементарность действия генов в первом случае и эпистатическое взаимодействие во втором. Кроме того, обнаружено сцепление генов LE и CRG. Анализ растений в поколении F2 от скрещивания мутантов /е-2 u na привел к заключению о восстановлении роста стебля и апикального доминирования у растений, несущих доминантную мутацию па при одновременном нарушении активности гена LE. Предложена схема участия генов NAylLEb регуляции растяжения клеток междоузлий A. thaliana.

Продолжение исследований мутанта abr при помощи молекулярно-генетических методов позволили выявить существенное снижение количества продукта гена LFY у мутанта abr, и сделать вывод о положительной регуляции LFY геном ABR. Анализ последовательности мутантного гена abr обнаружил замену цитозина на тимин во втором экзоне, в позиции 1260 от стартового кодона, которая приводит к замене аминокислоты глицин на глутаминовую кислоту в белковой последовательности в положении 318. Эта аминокислота находится в консервативной позиции, в участке, входящем в каталитический центр протеинкиназы ABR.

Обнаружена мутация pxd, исследование которой позволило > установить соответствие 3-х изоформ пероксидазы кодирующему их гену Р53 (АТРА2). Анализ спектра анионных пероксидаз в различных частях и тканях растения привел к заключению, что ген PXD, контролирует образование наиболее активных изоформ среди анионных пероксидаз. С помощью ДНК-маркеров CAPS и RAPD типов проведено молекулярно-генетическое картирование гена PXD. Определена его позиция в начале хромосомы V A.thaliana, в области* расположения генов пероксидаз Р53 w Р54. Сравнительный анализ последовательностей этих генов расы Dj и линии/ш/ выявил значимые замены в последовательности гена Р53, также известного под названием АТР (Ostergaard et al., 1996). Кроме того, во-первых, несмотря на обилие экспрессирующихся генов пероксидаз (из 73 генов экспрессируется 60), белков образуется гораздо меньше. Один из трех белков, которые, по сообщению Welinder et al.(2002), удалось идентифицировать — ATP А2, таким образом, доказана не только экспрессия этого гена, но и образование белкового продукта. Во-вторых, обнаружено сходство характеров экспрессии гена Р53/АТР А2 (Nielsen et aL, 2001; Ostergaard et al., 1996; Welinder et al., 2002) с характером активности изоформ пероксидаз, контролируемых геном PXD. В-третьих, обнаружена полная гомология аминокислотных последовательностей продуктов гена pxd и гена Р53 у Col и совпадение электрофоретических подвижностей изучаемых пероксидаз у этих линий. В-четвертых, предполагаемая пространственная структура белка Р53 из Dj менее компактна, чем из pxd. Исследователями Savitsky et al. (1999) идентифицированы 5 элементов структурного сходства аминокислотных последовательностей некоторых пероксидаз растений с ауксин-связывающими белками. Эти же элементы мы обнаружили в последовательности пероксидазы Р53/АТРА2. Это свидетельствует о возможном участии пероксидазы Р 53/АТРА2 в катаболизме ауксина и согласуется с увеличением активности изучаемых нами? изоформ после обработки растений ИУК. Полученные данные являются свидетельствами в пользу того, что ген PXD идентичен гену пероксидазы Р53 (АТРА2).

Результаты молекулярно-генетического анализа генов Р53, Р54 и Р57 у различных линий A. thaliana дают новую информацию о характере генетического полиморфизма пероксидаз у растений. Обнаруженная связь сайт-специфических различий в белке PXD (Р53) с электрофоретической подвижностью изоформ позволяет рассматривать этот белок в качестве удобной модели структурно-функционального анализа пероксидаз.

В ходе выполняемой работы были получены сведения о нуклеотидных последовательностях нескольких участков ДНК экотипов Dj и Blanes, которые были отправлены: в GeneBank (Табл.22). Информация о CAPSp57 маркере, выявляющем полиморфизм между расами Col и Dj, отправлена в арабидопсисную базу данных TAIR (в соответствии с правилами базы данных TAIR маркер был переименован в MSUCAPS-P57).

В результате наших исследований удалось идентифицировать ряд генов, мутации в которых позволили определить их роль в развитии растения и изучить генные взаимодействия.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Лебедева, Ольга Владимировна, 2004 год

1. Андреева В.А. Фермент пероксидаза. М.:Наука, 1988. 128 с.

2. Бургутин А.Б., Муснн С.М., Бутенко Р.Г. Сегрегация биохимических генетических детерминант у сомаклональных вариантов межвидового соматического гибрида картофеля // Физиология растений. 1994; Т. 41. № 6. С.843-852.

3. Ежова Т.А., Ондар У.Н., Солдатова О.П., Кузнецова Т.В. Изучение роли гена abruptus в дифференцировке цветоносов у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Докл. Акад. Наук. 1997. Т. 354. № 6. С. 839-842.

4. Ежова Т.А., Ондар У.Н., Солдатова О.П., Маманова Л.Б. Генетическое и физиологическое изучение карликовых мутантов Arabidopsis thaliana (L) Heynh. // Онтогенез. 1997a. Т. 28. № 5 с. 344-351.

5. Ежова Т.А., Солдатова О .П. , Калинина А.Ю., Медведев С.С. Взаимодействие генов ABRUPTUS/PINOID и LEAFY в процессе флорального морфогенеза у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Генетика. 2000. Т. 36. № 12. с.1-6.

6. Ежова Т.А., Солдатова О.П., Коф Э.М., Участие гена ABRUPTUS, контролирующего морфогенез Arabidopsis thaliana в регуляции роста и морфогенеза в культуре in vitro // Физиология растений. 1999. Т. 46. № 6 . С. 865-870.

7. Ежова Т.А., Солдатова О.П., Склярова О.А. Ген NANA — регулятор делений и растяжений клеток стебля Arabidopsis thaliana (L.) // Генетика. 2002. т. 39. 1. С. 63-71.

8. Калинина А.Ю., Ежова Т.А., Голубева Н.В., Донец И.С., Маркова И.В., Медведев С.С. Полярный транспорт ауксина у мутанта abruptus Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Вестник СПбГУ. Сер.З. 2000. Вып. 1(№3).

9. Ю.Квитко К.В. Асептическая культура Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. и перспективы ее использования в ботанических исследованиях. Вестник Ленинградского университета. 1960, 15, серия биол., 3. с. 47 -56.

10. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа. 1990. 352 с.

11. Лебедева О. В., Ежова Т. А., Шестаков С. В. Локализация и молекулярный анализ гена PXD, кодирующего анионную пероксидазу Arabidopsis thaliana // Доклады академии наук. 20046, Т. 394, №1. С.41-43.

12. Лебедева О. В., Ежова Т. А., Мусин С. М., Радюкина Н. Л., Шестаков С. В. Ген PXD контролирует образование трех изоформ анионных пероксидаз Arabidopsis thaliana II Известия академии РАН. Сер. Биол. 2003. №2. С. 159168.

13. Лебедева О. В., Склярова О. А., Ежова Т. А. Роль генов NANA и LEPIDA в регуляции роста стебля Arabidopsis thaliana II Генетика. 2004a. T.40. № 5.

14. Серебровский А.С. Генетический анализ. М.: Изд-во "Наука". 1970. С. 288290.

15. Янушкевич С.И. Использование арабидопсис в практических занятиях по общей генетике. М: Изд. МГУ, 1985. 62.С.

16. Alba C.M. Isoperoxidases and laccase like ensymes related with indole-acetic acid oxidation activity and lignification on peach fruits.// Plant perox. newslett. 1997. V.ll.

17. Aloni R. Differentiation of vascular tissues. // Annu. Rev. Plant Physiol. 1987.V. 38.P. 179-204.

18. Azpiroz R., Wu Y., LoCascio J.C., Feldmann K.A. An Arabidopsis brassinosteroid-dependent mutant is blocked in cell elongation.// Plant Cell. 1998. V. 10. P. 219-230.

19. Barton M. K., Poethig R. S. Formation of the shoot apical meristem in Arabidopsis thaliana: an analysis of development in the wild type and in the shoot meristemless mutant. // Development 1993. V. 119. P. 823-831.

20. Barton M. Leaving the meristem behind: regulation of KNOX genes.// Genome Biol. 2001. V.2 (1):REVIEWS 1002. Jan 09. Review. P. 1-3.

21. Baurle I., Laux T. Apical meristems: the plant's fountain of youth //BioEssays. Wiley Periodicals, Inc. 2003. V. 25.P.961-970.

22. Beaudoin N., Serizet C., Gosti F., Giraudat J. Interactions between abscisic acid and ethylene signaling cascades.// Plant Cell. 2000. V. 12(7). P.l 103-1115.

23. Benjamins R., Quint A., Weijers D., Hooykaas P., Offringa R. The PINOID protein kinase regulates organ development in Arabidopsis by enhancing polar auxin transport.//Development. 2001. V.128(20). P. 4057-4067.

24. Bennet S.R.M., Alvarez J., Boosinger G., Smyth D.R. Morphogenesis in pinoid mutants of Arabidopsis thaliana II Plant J. 1995. V. 8 (4). P. 505-520.

25. Bennett M.J., Marchant A., Green H.G., May S.T., Ward S.P., Millner P.A., Walker A.R., Schulz В., Feldmann K.A. Arabidopsis AUX1 gene: a permease-like regulator of root gravitropism.// Science. 1996. V. 16;273(5277). P. 948-950.

26. Berleth Т., Jurgens G. The role of the monopterous gene in organising the basal body region of the Arabidopsis embryo // Development. 1993. V. 118. P. 575-587.

27. Bishop G.J., Koncz С. Brassinosteroids and plant steroid hormone signaling.// Plant Cell. 2002. V.14. Suppl:S 197-110.

28. Blazquez M., Soowal L., Lee I., Weigel D. LEAFY expression and flower initiation in Arabidopsis. //Development. 1997. V. 124. P. 3835-3844.

29. Botella M.A., Quesada M.A., Kononowicz A.K., Bressan R.A., Pliego F., Hasagawa P.M., Valpuesta V. Characterization and in situ localization of a salt-induced tomato peroxidase mRNA. // Plant. Mol. Biol. 1994. V. 25.P. 105-114.

30. Breda C., van Huystee R.B., Esnault R. Differential expression of two peanut peroxidase cDNA clones in peanut plants and cells in suspension culture in response to stress.// Plant Cell Rep. 1993. V. 12. P. 268-272.

31. Byrne M., Timmermans M., Kidner C., Martienssen R. Development of leaf shape.// Curr. Opin. Plant Biol. 2001. V. 4. P. 38-43.

32. Byrne, M.E., Barley, R., Curtis, M., Arroyo, J.M., Dunham, M., Hudson, A., and Martienssen, R.A. Asymmetric leaves 1 mediates leaf patterning and stem cell function in Arabidopsis Л Nature. 2000. V. 408. P. 967-971.

33. Byrne, M.E., Simorowski, J., and Martienssen, R.A. ASYMMETRIC LEAVES 1 reveals knox gene redundancy in Arabidopsis.ll Development. 2002. V. 129. P. 1957-1965.

34. Carland F.M., McHale N.A. LOP I: a gene involved in auxin transport and vascular patterning in Arabidopsis.il Development. 1996. V. 122(6). P. 18111819.

35. Cary A.J., Liu W., Howell S.H. Cytokinin action is coupled to ethylene in its effects on the inhibition of root and hypocotyl elongation in Arabidopsis thaliana seedlings.//Plant Physiol. 1995. V. 107(4). P.1075-1082.

36. Cella R., Carbonera D. Peroxidases and morphogenesis. // Plant Perox. Newslett. 1997. V. 10. P. 24-29.

37. Chance В., Maehly A.C. Assay of catalases and peroxidases // Methods in Enzymol. 1955. V.2. P.764-775.

38. Chen J.J., Janssen B.J., Williams A., Sinha N. A gene fusion at a homeobox locus: alterations in leaf shape and implications for morphological evolution.// Plant Cell. 1997. V. 9(8). P. 1289-304.

39. Choe S., Dilkes B.P., Fujioka S., Takatsuto S., Sakurai A., Feldmann К.А. The DWF4 gene of Arabidopsis encodes a cytochrome P450 that mediates multiple 22-hydroxylation steps in brassinosteroid biosynthesis.// Plant Cell. 1998. V. 10. P. 231-243.

40. Choe S., Dilkes B.P., Gregory B.D. The Arabidopsis dwarfl mutant is defective in the conversion of 24-methylenecholesterol to campesterol in brassinosteroid biosynthesis // Plant Physiol. 1999. V. 119(3). P. 897-907.

41. Christensen S.K., Dagenais N., Chory J., Weigel D. Regulation of auxin response* by the protein kinase PINOID.II Cell. 2000. V. 18;100(4). P. 469-478.

42. Chuck G., Lincoln C., Hake S. KNAT1 induces lobed leaves with ectopic meristems when overexpressed in Arabidopsis II Plant Cell. V 8 (8). P. 12771289.

43. Clark G.B., Sessions A., Eastburn D.J., Roux S.J. Differential expression of members of the annexin multigene family in Arabidopsis. II Plant Physiol. 2001.1. V.126(3). P.1072-1084.

44. Clark S.E., Running M.P., Meyerowitz E.M. CLAVATA3 is a specific regulator of shoot and floral meristem development affecting the same processes as CLAVATA1.1 I Development. 1995. V. 121. P. 2057-2067.

45. Clark S.E., Williams R.W., Meyerowitz E.M. The CLAVATA1 gene encodes a putative receptor kinase that controls shoot and floral meristem size in Arabidopsis.il Cell. 1997. V. 16;89(4). P. 575-585.

46. Clouse S.D., Langford M., McMorris T.C. A brassinosteroid-insensitive mutant in Arabidopsis thaliana exhibits multiple defects in growth and development.// Plant Physiol. 1996. V. 111(3). P.671-678.

47. Cowling R. J., Kamiya Y., Seto #., HarberdN.P. Gibberellin Dose-Response Regulation of GA4 Gene Transcript Levels in Arabidopsis. // Plant Physiol. 1998. V.117.P. 1195-1203.

48. Cross J.W. Cycling of auxin-binding protein through the plant cell: pathways in auxin signal transduction.//New Biol. 1991. V. 16(9). P.603-615.

49. Davis B.J. Disk electrophoresis to human serum protein // Ann. N.-Y. Acad. Sci. 1964. V. 121 .P.404-427.

50. Dellaporta S.L., Wood J., Hicks J.B. A plant DNA minipreparation: version II. Plant Mol. Biol. Rep. 1983. V. 1. P. 19-21.

51. Dolan J. W., Fields S. Cell-type-specific transcription in yeast.// Biochim. Biophys. Acta. 1991. V. 1088. P. 155-169.

52. Dowd P.F., Hermis D.A., Berhow M.A., Lagrimini L.M. Mechanism of insect resistance in transgenic plants (over) expressing a tobacco anionic peroxidase.// Plant perox. newslett. 14.2000. P. 93-101.

53. Dunford H.B., Horseradish peroxidase: structure and kinetic properties.// In Peroxidase in Chemistry and Biology. 1991. P. 1-23.

54. Fletcher J.C., Bran, U., Running M.P., Simon R. and Meyerowitz E.M. Signaling of cell fate decisions by CLAVATA3 in Arabidopsis shoot meristems. 1999. Science. V. 283. P.1911-1914.

55. Fridborg L., Kuusk S., Moritz Т., Sunberg E. The Arabidopsis dwarf mutant shi exhibits reduced gibberellin responses conffered by overexpression of a new putative zinc finger protein. // Plant Cell. 1999. 11: 1019-1031.

56. Friedrichsen D.M., Joazeiro C.A., Li J., Hunter Т., Chory J. Brassinosteroid-insensitive-1 is a ubiquitously expressed leucine-rich repeat receptor serine/threonine kinase.// Plant Physiol. 2000. V. 123(4). P.1247-1256.

57. Friml J. Isolation and characterisation of novel At PIN genes from Arabidopsis thaliana L. PhD thesis. 2000. Cologne.

58. Fujioka S., Sakurai A. Biosynthesis and metabolism of brassinosteroids.// Physiol Plant. 1997. V. 100. P. 710-715.

59. Fujita H., Syono K. Genetic analysis of the effects of polar auxin transport inhibitors on root growth in Arabidopsis thaliana.// Plant Cell Physiol. 1996. V. 37(8). P. 1094-1101.

60. Galweiler L., Guan C., Muller A., Wisman E., Mendgen K., Yephremov A., Palme K. Regulation of polar auxin transport by AtPINI in Arabidopsis vascular tissue.// Science. 1998. V. 18;282(5397). P. 2226-2230.

61. Gaspar Т., Penel C., Greppin H. Peroxidases: structures and catalytic reactions, biosynthesis, transport and location, physiological roles.// Bull Groupe Polyphenols. 1986. V. 13. P. 159-176.

62. Geldner N., Friml J., Stierhof Y.D., Jurgens G., Palme K. Auxin transport inhibitors block PIN1 cycling and vesicle trafficking.//Nature. 2001. V. 27;413(6854). P.425-428.

63. Greene E.A., Codomo C.A., Taylor N.E., Henikoff J.G., Till B.J., Reynolds S.H., Enns L.C., Burtner C., Johnson J.E., Odden A.R., Comai L., Henikoff S. Spectrumjt of chemically induced mutations from a large-scale reverse-genetic screen in

64. Arabidopsis.ll Genetics. 2003. V. 164(2). P. 731-740.

65. Guilfoyle T.J., Ulmasov Т., Hagen G. The ARF family of transcription factors and their role in plant hormone-responsive transcription.// Cell Mol. Life Sci. 1998. V. 54(7). P. 619-627.

66. Ha C.-H., Kim G.-T., Kim B.-C., Jun J.-H., Soh M.-S., Ueno Y., Machida.Y., Tsukaya H., Nam H.-G. The BLADE-ON-PETIOLE gene controls leaf pattern formation through regulation of meristematic activity.// Development. 2003. V. 130. P. 161-172.

67. Hake S., Char B.R., Chuck G., Foster Т., Long J., Jackson D. Homeobox genes in the functioning of plant meristems. // Philos. Trans. R. Soc. Lond В Biol. Sci. 1995. V. 30;350(1331). P. 45-51.

68. Hay A., Kaur H., Phillips A., Hedden P., Hake S., Tsiantis M. The gibberellin pathway mediates KNOTTED 1-type homeobox function in plants with different body plans. // Curr. Biol. 2002.V.12.P.1557-1565.

69. Hedden P., Proebsting W. M. Genetic Analysis of Gibberellin Biosynthesis. Plant Physiol. 1999. 119: 365-370.

70. Hempel F.D., Weigel D., Mandel M.A., Ditta G., Zambryski P., Feldman L. J., Yanofsky M.F. Floral determination and expression of floral regulatory genes in Arabidopsis. //Development. 1997. V. 124. P. 3845-3853.

71. Higo K, Ugawa Y, Iwamoto M, Korenaga T. Plant cw-acting regulatory DNA elements (PLACE) database: 1999 //Nucl. Acids Res. 1999 .V. 27(1). P. 297-300.

72. Hiraga S., Yamamoto K., Ito H., Sasaki K., Matsui H., Honma M., Nagamura Y., Sasaki Т., Ohashi Y. Diverse expression profiles of 21 rice peroxidase genes.// FEBS Lett. 2000. V. 14;471(2-3). P. 245-250.

73. Ни C., van Huystee R.B. Role of carbohydrate moieties in peanut peroxidases.//

74. Jackson D., Veit В., and Hake S. Expression of maize KNOTTED/-related homeobox genes in the shoot apical meristem predicts patterns of morphogenesis in the vegetative shoot.// Development. 1994. V. 120. P. 405-413.

75. Jaranowski J.K. Gamma-ray induced mutations in Pisum arvense. II Genet Pol. 1976. 17: 478-495.

76. Kerstetter R., Vollbrecht E., Lowe В., Veit В., Yamaguchi J., Hake S. Sequence analysis and expression patterns divide the maize knotted 1-like homeobox genes4* into two classes.// Plant Cell. 1994. V. 6. P. 1877-1887.

77. Klotz K.L., Lagrimini L.M. Phytohormone control of the tobacco anionic peroxidase promoter // Plant. Mol. Biol.1996. V. 31. P. 565-573.

78. Koka C.V., Cerny R.E., Gardner R.G., Noguchi Т., Fujioka S., Takatsuto S., Yoshida S., Clouse S.D. A putative role for the tomato genes DUMPY and CURL-3 in brassinosteroid biosynthesis and response.// Plant Physiol. 2000. V. 122(1). P.85-98.

79. Koornneef M., Elgersma A., Hanhart C.J., van Loenen-Martinet E.P., van Rign L., Zeevart J.A.D. A gibberellin insensitive mutant of Arabidopsis thaliana. II Physiol. Plant. 1985. 65: 33-39.

80. Koornneef M., Stam P. Procedure for mapping by using F2 and F3 population7/ Arabidopsis Inf. Serv. 1987. 25. P. 35-40.

81. Krizek D. Т., Mandava N. B. Influence of spectral quality on the growth response of intact bean plants to brassinosteroid, a growth-promoting steroidal lactone. I. Stem elongation and morphogenesis.// Physiol. Plant. 1983. V. 57. P.317-323.

82. Kumaran M.K., Bowman J.L., Sundaresan V. YABBY polarity genes mediate the repression of АЖЮотеоЬох genes in Arabidopsis.// Plant Cell. 2002. V.14(l 1). P. 2761-2770.

83. Lagrimini L.M. Analysis of peroxidase function in transgenic plants.// In: KG Welinder, SK Rasmussen, С Penel & H Greppin, eds, Plant Peroxidases: Biochemistry and Physiology, Univ Geneva.1993. P. 301-306.

84. Lagrimini L.M. The role of tobacco anionic peroxidase in growth and development. // In Plant Peroxidases: Biochemistry and Physiology, University of Geneva. 1996. P. 235-242.

85. Lagrimini L.M., Gingas V., Finger F., Rothstein S., Liu T. Characterization of antisense transformed plants deficient in the tobacco anionic peroxidase. // Plant Physiol. 1997. V. 114(4). P. 1187-1196.

86. Lenhard M., Jtirgens G., Laux T. The WUSCHEL and SHOOTMER1STEMLESS genes fulfil complementary roles in Arabidopsis shoot meristem regulation. // Development. 2002.V. 129. P. 3195-3206

87. Lenhard M., Laux T. Formation and maintenance of the shoot meristem.// Curr. Op. Plant Biol. 1999. V. 2. P. 44-50.

88. Li J., Chory J. A putative leucine-rich repeat receptor kinase involved in brassinosteroid signal transduction.// Cell. 1997. V. 5;90(5). P. 929-938.

89. Li J., Nam K.H. Regulation of brassinosteroid signaling by a GSK3/SHAGGY-like kinase.// Science. 2002. V. 15;295(5558). P. 1299-1301.

90. Li J., Nam K.H., Vafeados D., Chory J. BIN2, a new brassinosteroid-insensitive locus in Arabidopsis.il Plant Physiol. 2001.V. 127(1). P. 14-22.

91. Li J.M., Nagapal P., Vitart V., McMorris T.C., Chory J. A role for brassinosteroids in light-dependent development of Arabidopsis.il Science. 1996. V. 27. P. 398-401.

92. Li Y., Hagen G., and Guilfoyle T.J. Altered morphology in transgenic tobacco plants that overproduce cytokinins in specific tissues and organs. // Dev. Biol. 1992. V. 153. P. 386-395.

93. Liu C., Xu Z., Chua N.H. Auxin polar transport is essential for the establishment of bilateral symmetry during early plant embryogenesis.// Plant Cell. 1993. V. 5(6). P. 621-630.

94. Lomax T.L., Muday G.K., Rubery P. Auxin transport. // In plant hormones: physiology, biochemistry, and molecular biology. PJ Davies, Ed. (Norwell: Kluwer Academic Press). 1995. P. 509-530.

95. Long J.A., Moan E.I., Medford J.I., Barton M.K. A member of the KNOTTED class of homeodomain proteins encoded by the STM gene of Arabidopsis.il Nature. 1996. V. 4;379(6560). P. 66-69.

96. Lu C., Fedoroff N. A mutation in the Arabidopsis HYL1 gene encoding a dsRNA binding protein affects responses to abscisic acid, auxin, and cytokinin.// Plant Cell.2000. V. 12(12). P. 2351-2366.

97. Marinescu G., Badea E., Babeanu C., Glodeanu E. Peroxidase system activity in leaves of cucumber plants as marker of growth stimulant treatment.// Plant Perox. Newslett 2000. V. 14. P. 79-85.

98. Matsuoka M., Ichikawa H., Saito A., Tada Y., Fujimura Т., Kano-Murakami Y. Expression of a rice homeobox gene causes altered morphology of transgenic plants.// Plant Cell. 1993. V.5(9). P. 1039-1048.

99. Mayer KF, Schoof H, Haecker A, Lenhard M, Jurgens G, Laux T. Role of WUSCHEL in regulating stem cell fate in the Arabidopsis shoot meristem. // Cell. 1998. V.l 1;95(6). P. 805-815.

100. Melzer S., Kampmann G., Chandler J., Apel K. FPF1 modulates the competence to X. flowering in Arabidopsis.ll Plant J. 1999. V. 18(4). P. 395-405.

101. Moerschbacher B.M. Plant peroxidases: involvement in response to pathogen. // Topics and detailed literature on molecular, biochemical and physiological aspects. In: Penel C, Gaspar Th, Greppin H, eds, Plant Peroxidases. 1992. Univ Geneva. P. 91-99.

102. Moffat B.A., McWhinne E.A., Agarwhal S.K., Schaff D.A. The adenine phosphoribosyltransferase-encoding gene of Arabidopsis thaliana. II Gene. 1994. V.143. P. 211-216.

103. Nadeau J.A., Sack. F.D. The Arabidopsis mutant mustaches is defective in guard cell shape and pore formation. // International Arabidopsis Meeting. 1997. P.49.

104. Nick P., Furuya M. Induction and fixation of polarity early steps in plant morphogenesis.// Development, Growth and Differentiation. 1992. V. 34. P. 115125.

105. Noguchi Т., Fujioka S., Choe S., Takatsuto S., Yoshida S., Yuan H., Feldmann K.A., Tax F.E. Brassinosteroid-insensitive dwarf mutants of Arabidopsis accumulate brassinosteroids. // Plant Physiol. 1999. V. 121(3). P. 743-752.

106. Oka M., Miyamoto K., Okada K., Ueda J. Auxin polar transport and flower formation in Arabidopsis thaliana transformed with indoleacetamide hydrolase (iaaH) gene.// Plant Cell Physiol. 1999. V. 40(2). P. 231-237.

107. Ori N., Eshed Y., Chuck G., Bowman J. L., Hake, S. Mechanisms that control knox gene expression in the Arabidopsis shoot.// Development 2000. V. 127. P. 55235532.

108. Ostergaard L., Abelskov A.K., Mattsson O., Welinder K.G. Structure and organ specificity of an anionic peroxidase from Arabidopsis thaliana cell suspension culture.// FEBS Lett. 1996. V. 2;398(2-3). P. 243-247.

109. Ostergaard L., Pedersen A.G., Jespersen H.M., Brunak S., Welinder K.G. Computational analyses and annotations of the Arabidopsis peroxidase gene family.// FEBS Lett. 1998. V. 14;433(l-2). P. 98-102.

110. Paran I. Michelmore R.W. Development of reliable PCR-based markers linked to downey milder resistance genes in lettuce. // Theor. Appl. Genet. 1993.V. 85. P. 985-993.

111. Parsons B.L., Heflich R.H. Genotypic selection methods for the direct analysis of point mutations. // Mutat. Res. 1997. V. 387. P. 97-121.

112. Penel C., Carpin S., Crevecoeur M., Simon P., Greppin H. Binding of peroxidase toI

113. Ca -pectate: Possible significance for peroxidase function in cell wall. // Plant V Perox. Newslett. 2000. V. 14. P. 33-40.

114. Penel C., Greppin H. Binding of plant isoperoxidases to pectin in the presence of calcium.// FEBS Lett. 1994. V. 343. P. 51-55.

115. Prigge M.J., and Wagner D.R. The Arabidopsis SERRATE gene encodes a zinc-finger protein required for normal shoot development.// Plant Cell. 2001. V. 13. P. 1263-1279.

116. Quiroga M., Guerrero C., Botella M.A., Barcelo A., Amaya I., Medina M.I., Alonso F.J., de Forchetti S.M., Tigier H., Valpuesta V. A tomato peroxidase involved in the synthesis of lignin and suberin.// Plant Physiol. 2000. V. 122(4). P. 1119-1127.

117. Ratcliffe O., Bradley D.J., Coen E.S. Separation of shoot and floral identity in Arabidopsis. II Development. 1999. V. 126. P. 1109-1120.

118. Reid J.B., Ross J.J., Swain S.M. Internode length in Pisum: Anew slender mutant with elevated levels of Cl9 gibberellins.// Planta. 1992. V.188. P. 462^167.

119. Reinhardt D., Mandel Т., Kuhlemeier С. Auxin regulates the initiation and radial position of plant lateral organs. // Plant Cell. 2000. V.12(4). P. 507-518.44

120. Reinhardt D., Pesce E.R., Stieger P., Mandel Т., Baltensperger K., Bennett M., Traas J., Friml J., Kuhlemeier C. Regulation of phyllotaxis by polar auxin transport.// Nature. 2003. V. 20; 426(6964). P.255-260.

121. Sachs Т. Cell polarity and tissue patterning in plants //Development. 1991.V.1.P.83-93.

122. Sakamoto Т., Kamiya N., Ueguchi-Tanaka M., Iwahori S., Matsuoka M. KNOX homeodomain protein directly suppresses the expression of a gibberellin biosynthetic gene in the tobacco shoot apical meristem.// Genes Dev. 200l.V. 1; 15(5). P.581-590.

123. Satina S., Blakeslee A.F., Avery A.G. Demonstration of the three germ layers in the shoot apex of Datura by means of induced polyploidy in periclinal chimeras. // Am. J. Bot. 1940. V.27. P. 895-905.

124. Savitsky Р.А., Gazaryan I.G., Tishkov V.I., Lagrimini L.M., Ruzgas Т., Gorton L. Oxidation of indole-3-acetic acid by dioxygen catalysed by plant peroxidases: specificity for the enzyme structure // Biochem J. 1999. V.15 (340). P. 579-583.

125. Schmiilling Т., Beinsberger S., De Greef J., Schell J., Van Onckelen H., Spena A. Construction of a heat inducible chimeric gene to increase the cytokinin content in transgenic plant tissue.// FEBS Lett. 1989. V. 249. P.401-406.

126. Schultz E.A., Haughn G.W. LEAFY, a homeotic gene that regulates inflorescence development in Arabidopsi//Plant Cell. 1991. V.3. P.771-781.

127. Serikawa K.A., Martinez-Laborda A., Zambryski P. Three knotted 1-like homeobox genes in Arabidopsis II Plant Mol Biol. 1996 . V.32(4). P.673-683.

128. Serna L., Fenoll C. Stomatal development in Arabidopsis: how to make a functional pattern.// Trends Plant Sci. 2000. V. 5(11). P. 458-460.

129. Sinha N.R., Williams R.E., Hake S. Overexpression of the maize homeobox gene, KNOTTED-1, causes a switch from determinate to indeterminate cell fates.//Genes Dev. 1993. V. 7(5). P. 787-795.

130. Skoog F., Miller C.O. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultivated in vitro.// Symp. Soc. Exp. Biol. 1957. V. 11. P.l 18-131.

131. Smith J.A., Hammerschmidt R. Comparative study of acidic peroxidases associated with induced resistance in cucumber, muskmelon and watermelon. // Physiol. Mol. Plant Pathol. 1988. V. 33. P. 255-261.

132. Smith L.G., Greene B:, Veit В., and Hake S. A dominant mutation in the maize homeobox gene, Knotted-1, causes its ectopic expression in leaf cells with altered fates. // Development .1992. V. 116. P. 21-30.

133. Stewart R.N., and Burk L.G. Independence of tissues derived from apical layers in ontogeny of the tobacco leaf and ovary.// Am. J. Bot. 1970. V. 57. P. 1010-1016.

134. Tang Y., N. Liang. Characterization of the photosynthetic induction response in a Populus species with stomata barely responding to light changes. // Tree Physiol. 2000. V. 20. P. 969-976.

135. Tognolli M., Overney S., Penel C., Greppin H., Simon P. A genetic and enzymatic survey of Arabidopsis thaliana peroxidases. // Plant Perox. Newslett. 2000. V. 14. P. 3-12.

136. Tognolli M., Penel C., Greppin H., Simon P. Analysis and expression of the class III peroxidase large gene family in Arabidopsis thaliana.// Gene. 2002. V.288. P.129-138.

137. Treisman R. The serum response element.// Trends Biochem. Sci. 1992. V. 17(10).1. P. 423-426.

138. Trotochaud A. E., Нао Т., Wu G., Yang Z., and Clark S. H. The CLAVATA1 receptor-like kinase requires CLAVATA3 for its assembly into a signaling complex that includes KAPP and a Rho-related protein.// Plant Cell. 1999. V. 11. P. 393-406.

139. Tsukaya H. Leaf development // The Arabidopsis book. American Soc. of Plant Biol. 2002. P 1-23.

140. Ulmasov Т., Hagen G., Guilfoyle T.J. ARF1, a transcription factor that binds to auxin response elements.// Science. 1997. V. 20;276(5320). V.1865-1868.

141. Vollbrecht E., Veit В., Sinha N., Hake S. The developmental gene Knotted-1 is a member of a maize homeobox gene family.// Nature. 1991. V. 21;350(6315). P. 241243.

142. Warren-Wilson J., Warren-Wilson P. Mechanism of auxin regulations of structural and physiological polarity in plant, tissues, cell and embryos. // Plant Physiol. 1993. V. 20. P. 555-571.

143. Warren-Wilson J., Warren-Wilson P., Walker E. Patterns of tracheary differentiation in lettuce pith exploits: positional control and temperature effects.//Annals of Botany. 1991. V.68. p. 109-128.

144. Weigel D., Alvarez J., Smyth D.R., Yanofsky M.F., Meyerowitz E.M. LEAFY controls floral meristem identity in Arabidopsis // Cell. 1992. V. 69. P. 843-859.

145. Welinder K.G. Plant peroxidases, Structure-function relationships. In Plant Peroxidases 1980-90, Topics and Detailed Literature on Molecular, Biochemica, and Physyological Aspects, University of Geneva, Swetzerland. P 1-24.

146. Welinder K.G. Superfamily of plant, fungal and bacterial peroxidases.// Curr. Opin. Struct. Biol. V.2. 1992. P. 388-393.

147. Welinder K.G., Justesen A.F., Kjaersgard I.V., Jensen R.B., Rasmussen S.K., Jespersen H.M., Duroux L. Structural diversity and transcription of class III peroxidases from Arabidopsis thaliana.ll Eur J Biochem. 2002. V. 269(24). P. 60636081.

148. Whetten R.W., MacKay J.J., Sederoff R.R. Recent advances in understanding lignin biosynthesis //Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1998. V 49. P. 585-609.

149. Williams R. W. Plant homeobox genes: many functions stem from a common motif. //BioEssays.1998. V. 20. P. 280-282.

150. Williams J.G., Kubelik A.R., Livak K.J., Rafalski J.A., Tingey S.V. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers.// Nucleic Acids Res. 1990. V. 25;18(22). P. 6531-6535.

151. Wilson A.K., Pickett F.В., Turner J.C., Estelle M. A dominant mutation in Arabidopsis confers resistance to auxin, ethylene and abscisic acid.// Mol. Gen. Genet. 1990. V. 222(2-3). P. 377-383.

152. Woodward F.I., C.K. Kelly. The influence of C02 concentration on stomatal density. // New Phytol. 1995. V.131. P. 311-327.

153. Yang S.F., Hoffman N.E. Ethylene biosynthesis and its regulation in higher plants.// Annu Rev Plant Physiol.1984. V. 35. P.155-189.

154. Yang Т., Davies P. J., Reid J.B. Genetic dissection of the relative roles of auxin and gibberellin in the regulation of stem elongation in intact light-grown peas.// Plant Physiol. 1996. V. 110. P. 1029-1034.

155. Yoshizumi Т., Nagata N., Shimada H., Matsui M. An Arabidopsis cell cycle -dependent kinase-related gene, CDC2b, plays a role in regulating seedling growth in darkness.//Plant Cell. 1999. V. 11(10). P. 1883-1896.

156. Zhong R., Taylor J.J., Ye Z.H. Transformation of the collateral vascular bundles into amphivasal vascular bundles in an Arabidopsis mutant.// Plant Physiol. 1999. V. 120(1). P.53-64.