Возрастные и сезонные особенности гистоморфологии семенников благородного оленя (Cervus elaphus L. ) в условиях паркового содержания тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 11.00.11, кандидат биологических наук Кудряшова, Ирина Васильевна

• Кудряшова, Ирина Васильевна
• кандидат биологических наук
• 2000

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Кудряшова, Ирина Васильевна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА I. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР

1. СТРУКТУРНО-ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ОСОБЕННОСТИ МУЖСКИХ ГОНАД

У МЛЕКОПИТАЮЩИХ И ИХ ВОЗРАСТНАЯ И СЕЗОННАЯ ДИНАМИКА.

1.1. Тубулярный отдел.

1.2. Интерстициальный отдел.

1.3. Взаимоотношения тубулярного и интерстициального отделов семенника и факторы, влияющие на репродуктивную активность животных.

1.4. Сезонные и возрастные аспекты морфофункционального состояния семенников оленей и их связь с циклом роста рогов.

2. ПРОБЛЕМЫ ОХРАНЫ И СОХРАНЕНИЯ ГЕНОФОНДА СЕМЕЙСТВА ОЛЕНЬИХ.

ГЛАВА II МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКИ ИССЛЕДОВАНИЯ.

ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

1. ОСОБЕННОСТИ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ И ГИСТОХИМИЧЕСКИХ

ПОКАЗАТЕЛЕЙ СТРУКТУРНЫХ ЭЛЕМЕНТОВ СЕМЕННИКА МАРАЛА.

1.1 Морфологические показатели тубулярного отдела.

1.2. Морфологические показатели интерстициального отдела.

1.3. Гистохимические показатели структурных элементов интерстициального и тубулярного отделов семенника.

2. ВОЗРАСТНАЯ ДИНАМИКА МОРФОЛОГИЧЕСКИХ И ГИСТОХИМИЧЕСКИХ

ПОКАЗАТЕЛЕЙ ФУНКЦИОНАЛЬНОГО СОСТОЯНИЯ СЕМЕННИКА МАРАЛА.

2.1. Показатели, характеризующие общее состояние семенника.

2.2. Тубулярный отдел.

2.3. Интерстициальный отдел.

3. СЕЗОННАЯ ДИНАМИКА МОРФОЛОГИЧЕСКИХ И ГИСТОХИМИЧЕСКИХ

ПОКАЗАТЕЛЕЙ ФУНКЦИОНАЛЬНОГО СОСТОЯНИЯ СЕМЕННИКА МАРАЛА.

3.1. Показатели, характеризующие общее состояние семенника.

3.2. Тубулярный отдел.

3.3. Интерстициальный отдел.

ГЛАВА IV. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

ВЫВОДЫ.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Возрастные и сезонные особенности гистоморфологии семенников благородного оленя (Cervus elaphus L. ) в условиях паркового содержания»

Актуальность проблемы. Представители семейства оленьих (Cervid.de, АгНос1ас1у1а) являются важными компонентами экосистем, активно способствующими их нормальному функционированию (Собанский Г.Г., 1992, Май^Иак В., 1998). Один из подвидов благородного оленя - марал (Сегуш ela.ph.us зЫпсш 8еуег1гоу, 1872), обитающий в Алтае-Саянской горной области, на юго-востоке Казахстана и в Предбайкалье, представляет чрезвычайно большую ценность для человека в качестве поставщика фармакологического сырья и объекта промысловой и спортивной охоты.

В конце 80-х и, особенно, в 90-е годы вследствие сильного антропогенного пресса резко снизился репродуктивный потенциал популяций диких маралов, обитающих на Алтае, в первую очередь, из-за избирательного промысла полноценных самцов-производителей (Собанский Г.Г., 1992). Стремительно растущий спрос на продукцию пантового оленеводства в этот же период способствовал бурному развитию на территории Сибири многочисленных мараловодческих хозяйств. Сложность современной экономической ситуации побуждает их развиваться по экстенсивному пути и вопросы воспроизводства парковых маралов также стоят очень остро, тем более, что качество пантовой продукции тесно увязано с половой деятельностью самцов (Егерь В.Н., Деев Н.Г.,1994).

Таким образом, изучение репродуктивной функции самцов маралов имеет важное значение как для целей животноводства, так и в плане охраны и рационального использования популяций диких маралов, особенно в связи с тем, что одним из наиболее перспективных способов решения проблемы сохранения генофонда животных является метод консервации мужских половых клеток (Ротт Н.Н., 1995, Сипко Т.П. и др., 1997). Учитывая, что мужская гонада функционирует и как железа внутренней секреции, ее исследование может оказаться полезным при оценке состояния эксплуатируемых популяций, важными индикаторами которого являются морфофункциональные параметры эндокринных желез (Сидоров С.В., 1987).

Как подвид благородного оленя, марал отличается высокой степенью экологической пластичности (Соколов В.Е. и др., 1982, Швецов Ю.Г. и др., 1984). Специфика доместикационного процесса в который маралы были вовлечены совсем недавно (около 150 лет назад) состоит в том, что влияние основных экологических факторов на жизнедеятельность животных сохраняется и даже усугубляется вследствие ограничения их передвижения, так что доместикация не успела вызвать значительных генотипических изменений их репродуктивной функции. Кроме того, во многих мараловодческих хозяйствах, особенно расположенных в местах обитания естественных группировок, возможно скрещивание парковых и диких маралов. Это дает нам основание проводить исследования на парковых маралах, учитывая их большую доступность, и экстраполировать полученные результаты на диких животных, тем более, что такой подход исключает вмешательство в естественные популяции.

На сегодняшний день сведений о морфофункциональном состоянии половой системы маралов, в особенности, о семенниках, в литературе совершенно недостаточно. Более или менее полно изучены анатомо-морфологические особенности мужской половой системы маралов в целом, что нашло свое отражение в работах С.П. Белоноговой (1974), И.С. Ржаницыной, С.П. Белоноговой и др. (1982), С.П. Белоноговой(1982), однако, данные по семенникам фрагментарны. Сведения о состоянии тубулярного отдела, сперматогенезе, интерстиции семенника, в том числе и об интерстициальных эндокриноцитах, имеют предварительный характер.

В связи с вышеизложенным, анализ изменений морфологических показателей функционального состояния тубулярного и интерстициального отделов семенника маралов в возрастном и сезонном аспектах дает ценный фактический материал для глубокого познания механизма регуляции репродуктивной функции, управления структурно-функциональными преобразованиями в гонадах, необходимыми как для теории, так и для решения практических вопросов.

Цели и задачи исследования. Цель: выявить характерные особенности семенника марала как подвида благородного оленя и закономерности изменений морфологических показателей функционального состояния этого органа в возрастном и сезонном аспектах.

Задачи: 1. Исследовать морфологические и гистохимические особенности структурных элементов тубулярного и интерстициального отделов семенника.

2. Изучить возрастную динамику морфологических показателей мужской гонады, ее тубулярного и интерстициального отделов.

3. Проследить структурно-функциональные преобразования семенника, его тубулярного и интерстициального отделов в течение годового цикла.

4.Сопоставив полученные данные, выявить закономерности взаимоотношений тубулярного и интерстициального отделов семенника в постнатальном онтогенезе в связи с циклом роста рогов.

5. На основании состояния сперматогенного эпителия оценить возможность получения материала для криоконсервации мужских гамет от животных разных возрастов и вне периода репродукции.

Научная новизна заключается в том ,что с использованием комплекса методов классической гистологии, гистохимии, морфометрии, в том числе стереометрии и кариометрии, статистики получены новые данные по структурно-функциональным преобразованиям семенника маралов в постнатальном онтогенезе. Впервые:

- описаны морфологические и гистохимические характеристики клеток сперма-тогенного ряда и некоторые видовые особенности сперматогенеза, получены данные по возрастной и сезонной периодизации состояния сперматогенного эпителия;

- выявлена характерная динамика морфофункционального состояния интерстициальных эндокриноцитов в различных возрастных группах, обозначены периоды их повышенной функции, дегенерации и регенерации;

- установлена возрастная и сезонная динамика соотношения структурнофункциональных преобразований в семенных канальцах и интерстиции и ее связь с процессом развития рогов.

Теоретическая значимость и практическая ценность работы. Работа дополняет и углубляет имеющиеся представления о сперматогенной и эндокринной функции семенника млекопитающих и потому имеет общебиологическое значение. Полученные данные могут быть использованы при написании соответствующих разделов справочных и учебных пособий по сравнительной и видовой морфологии гистологии животных. Периодизация годичного цикла сперматогенного эпителия и интерстициальных эндокриноцитов семенника может явиться основой для совершенствования методов контроля, в том числе и гормонального, за воспроизводством маралов и качеством их пантовой продукции, а также для решения проблемы сохранения генофонда этих животных путем криоконсервации их мужских гамет.

Полученные результаты отражают нормальное состояние специфических структур семенного канальца и интерстициальной ткани семенника маралов в условиях паркового содержания и могут иметь значение в практике ветеринарии при диагностике и терапии патологических состояний семенника, а также при проведении ветеринарно-санитарной и судебной экспертизы продуктов убоя маралов. Кроме того, они могут оказаться полезными, в совокупности с данными по другим железам периферической эндокринной системы, для определения состояния эксплуатируемых популяций диких маралов.

Апробация работы. Материалы диссертации доложены на ежегодных научных внутривузовских конференциях АГАУ (1996, 1997, 1998, 1999); на юбилейной региональной конференции НГАУ (1996); на научной конференции молодых ученых по вопросам ветеринарии, посвященной 100-летию аграрной науки (Барнаул, 1997); на международной научно-практической конференции “Ветеринарная медицина мелких домашних животных и охрана исчезающих диких животных, в том числе и на Алтае” (Барнаул, 1997); на международной конференции ветеринарных морфологов “Актуальные вопросы видовой и возрастной морфологии животных и пути совершенствования преподавания морфологических дисциплин”, посвященной 60-летию образования кафедры нормальной анатомии и 80-летию со дня рождения профессора К.А. Васильева (Улан-Удэ, 1998); на научной конференции “Актуальные вопросы ветеринарного образования (Барнаул, 1998).

По материалам диссертации опубликовано 8 работ, отражающих суть изучаемой проблемы.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

- наиболее заметная динамика морфологических показателей функционального состояния семенника марала наблюдается в возрасте до 2,5 лет;

- возрастные инволютивные изменения морфологических показателей семенника у марала в условиях паркового содержания выражены не очень резко в связи со спецификой выбраковки производителей;

- важнейшей репродуктивной особенностью марала как подвида благородного оленя является отсутствие периода полного прекращения сперматогенеза в течение годового цикла и наличие активного спермиогенеза в зимне-весенний период;

- максимальное снижение морфологических показателей функционального состояния тубулярного и интерстициального отделов семенника марала приходится на весенне-летний период и совпадает со временем развития пантов;

- динамика показателей секреторной активности интерстиция опережает изменения в эпителии семенных канальцев;

- в качестве доноров материала для криоконсервации мужских гамет наиболее целесообразно использовать самцов в возрасте 4-12 лет; при этом состояние сперматогенного эпителия допускает принципиальную возможность получения зрелых сперматозоидов вне периода репродукции (в конце зимы - начале весны).

Заключение диссертации по теме «Охрана окружающей среды и рациональное использование природных ресурсов», Кудряшова, Ирина Васильевна

выводы

1 Морфометрические, стереометрические и кариометрические данные в сочетании с гистохимическими тестами свидетельствуют о наличии закономерных функциональных изменений тубулярного и интерстициального отделов семенника марала как в различные возрастные периоды, так и в течение годового цикла.

2. Наиболее выраженная возрастная динамика морфологических показателей функционального состояния семенника марала наблюдается в группе молодых животных в возрасте до 2,5 лет.

3. У 17-18-летних самцов не происходит резкого снижения большинства изученных параметров по сравнению со зрелыми рогачами. В то же время, динамика снижения показателей интенсивности сперматогенеза выражена сильнее, чем соответствующие изменения параметров интерстиция.

4. Состояние сперматогенного эпителия позволяет рассматривать в качестве доноров спермы для криоконсервации маралов в возрасте от 4 до 12 лет.

5. Характерной чертой репродуктивного цикла марала является отсутствие у самцов периода полного прекращения сперматогенеза и наличие активного спермиогенеза вне сезона размножения (в зимне-весенний период), что связано с сезонно полиэстральным половым циклом самок.

6. Максимальное снижение морфологических показателей функционального состояния тубулярного и интерстициального отделов семенника марала приходится на весенне-летний период и совпадает по времени с развитием пантов.

7. Весной (в начале роста пантов), наиболее выражен спад морфологических параметров эндокринной активности семенника; летом (в период срезки пантов) отмечается наиболее выраженное в годовом цикле угнетение сперматогенеза. Изменения секреторной активности интерстиция опережают изменения в эпителии семенных канальцев.

8. Состояние сперматогенного эпителия у половозрелых самцов допускает принципиальную возможность получения зрелых сперматозоидов в конце зимы -начале весны.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Результаты исследований могут быть использованы:

- в учебном процессе для чтения лекций и проведения практических и лабораторных занятий на биологических, зооинженерных и ветеринарных факультетах высших учебных заведений;

- при написании соответствующих разделов учебников и справочных руководств по эволюционной, функциональной, сравнительно-видовой, возрастной морфологии и биологии размножения млекопитающих:

- при разработке научных программ, связанных с решением проблемы сохранения генефонда благородных оленей путем криоконсервации спермы, а также при подборе морфофизиологических индикаторов для оценки состояния эксплуатируемых популяций диких маралов;

- при проведении ветеринарно-санитарной и судебной экспертизы продуктов убоя пантовых оленей;

- при разработке методов управления процессом воспроизводства маралов в условиях паркового содержания.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Кудряшова, Ирина Васильевна, 2000 год

1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. М.: Медицина, 1992.-380 С.

2. Антонов А.Л., Сапаев В.М., Воронов Б.А. Состояние популяций копытных кедрово-широколиственных лесов юга Хабаровского края. 1. Изюбрь // Вестн. ДВО РАН,1998,- № 2.- С.53-64.

3. Ащепкова Л.Ю., Федосеев В .Я. Развитие мужских половых клеток северного морского котика (СаПогЫпш итапиз Ь.) // Архив АГЭ, 1988. Т. 65.- № 12. - С. 55-66.

4. Ащепкова Л.Ю. Сперматогенный цикл у северного морского котика (СаПогЫпш; игапш // Архив, АГЭ, 1990. Т 95,- №5. - С.79-92

5. Банников А.Г., Флинт В.Е. Отряд Парнокопытные // Жизнь животных. В 7 т. Т. 7. Млекопитающие. М.: Просвещение, 1989.- С 436-523.

6. Бахшинян М.С. Сравнительно-возрастные морфологические и гистохимические исследования семенников и их придатков у человека и некоторых млекопитающих: Автореф. дисс. канд. мед. наук.- Ереван, 1969. 16 с.

7. Башкуева М.Р. Структурно-функциональная дифференцировка внутренних половых органов самцов норок в постнатальном онтогенезе: Автореф. дисс. канд. биол. наук.- Улан-Удэ, 1997. 18 с.

8. Белоногов А.П. Морфологические показатели яичников и яйцеводов самок маралов: Автореф. дисс. канд.биол. наук.-Барнаул, 1977. 16 с.

9. Белоногова С.П. Возрастные и сезонные морфологические показатели мужской половой системы маралов: Автореф. дисс. канд. биол. наук. Алма-Ата, 1974. - 18 с.

10. Белоногова С.П. Теоретическое обоснование использования самцов маралов в условиях Горного Алтая // Прогрессивная технология пантового оленеводства: Сб. науч тр. М.: 1982. - Т. 28. - С. 62-64

11. Болтнев А.И. Функциональная морфология семенников морских млекопитающих при старении: Матер. Всесоюз. науч. и учеб.-метод конф. по акушерству, гинеколог, и биотехнолог, размножения животных.- Воронеж, 1994. -С. 160.

12. Бороздин Э.К. Спермиогенез и цикл семенного эпителия у северного оленя // Архив АГЭ. 1964. - Т. 66. - № 5. - С.33-39.

13. Бутвиловский В.В. Палеогеография последнего оледенения и голоцена Алтая: событийно-катастрофическая модель. Томск: Изд-во Томского ГУ. -1993.253 с.

14. Васильев К.А. Морфофункциональная характеристика онтогенеза яка по периодам развития. Улан-Удэ: Бурят, кн. изд-во, 1991. - 224 с.

15. Виноградов В.В. Углеводные соединения // Принципы и методы цито-гистохимического анализа в патологии. М.: 1971. - С.7-12.

16. Вислобокова И.А. Ископаемые олени Монголии // Тр. Советско Монгольской палеонтологической экспедиции,- М.: 1983. Вып. 23. - С.3-75.

17. Волкова B.C. Колебания климата в Западной Сибири в позднеплиоцене и четвертичное время // Эволюция климата, биоты и среды обитания человека в позднем кайнозое Сибири: Сб. науч. тр.-Новосибирск: Изд-во ОИГГМ СО АН СССР,1991. С.30-40.

18. Волкова О.М., Пекарский М.И. Эмбриогенез и возрастная гистология внутренних органов человека. М.: Медицина, 1976. - 416 с.

19. Габаева Н.С. О строении и функции фолликулярного эпителия семенников позвоночных.// Современные проблемы сперматогенеза. М.: Наука, 1982. - С. 1 OS159.

20. Данилова JI.B Сперматогонии, сперматоциты, сперматиды.// Современные проблемы сперматогенеза,- М.: Наука, 1982. С.25-72

21. Динесман Л.Г. Экология растений и животных и количественная биоиндикация палеоклиматов// Палеоклиматы позднеледниковья и голоцена. М.: Наука, 1989. - 168 с

22. Добрынин В.А., Петров С.Б. Функциональная морфология инволютивных изменений мужских половых желез //Казан, мед. журнал, 1975. Т. 56, № 4. - С. 2427.

23. Држевецкая И.А. Основы физиологии обмена веществ и эндокринной системы. М.: Высш. шк., 1994. - 256 с.

24. Егерь В.Н. Научные основы нормирования энергии в рационе маралов. Автореф. дисс. докт. с./х. наук. Новосибирск,-1994,- 52 с.

25. Егерь В.Н., Деев Н.Г. Пантовое оленеводство.- М.: Колос, 1994.-128 с.

26. Иванов И.Ф., Ковальский П.А. Цитология, гистология, эмбриология,- М.: Колос, 1976,- 432 с.

27. Иванова Т.М. Строение семенного эпителия и цикл его развития у речного бобра//Тр. Воронежского гос. заповедника, 1974,- Вып. 10. С 3-13.

28. Киссели Д. Практическая микротехника и гистохимия,- Будапешт: Изд-во АН Венгрии, 1962,- 320 с.

29. Кононский А.И. Гистохимия. Киев: Вища школа, 1974. - 280 с.

30. Кретсер де Д.М. Семенники // Гормональная регуляция размножения у млекопитающих,- М.: Мир, 1987,- Гл. 4. С.100-117.

31. Крживински А. Твардовски J1. Сезонные изменения репродукции и наблюдения за ростом рогов у быков лося // 3 Междунар. симп. по лосю: Тез докл.-Сыктывкар.-1990.- С 193.

32. Лавров Н. П., Павлов М.П. Акклиматизация один из путей расширения ареала и увеличения численности оленей // Копытные фауны СССР (экология, морфология, использование и охрана). - М.: Наука, 1975.-С 11-12.

33. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. - 352 с.

34. Лилли Р. Патологическая техника и практическая гистохимия. М.: Мир, 1969.- 645 с.

35. Линкольн А. Эпифиз // Гормональная регуляция размножения у млекопитающих,- М.: Мир, 1987. Гл. 3. - С 71-99.

36. Луппа X. Основы гистохимии,- М.: Мир, 1990. 343 с.

37. Мамаладзе Д.А. Количественные и некоторые гистохимические изменения паренхиматозных клеток семенных желез в процессе старения // Опыт советской медицины. Тбилиси: Сабчота Сакартвело, 1972. - С. 7-11.

38. Меркулов Г.А. Курс патогистологический техники,- Л.: Медицина, 1969. -423 с.

39. Микроскопическая техника: Руководство // Под ред. Д.С. Саркисова и Ю.Л. Перова,- М: Медицина, 1996. 544 с.

40. Мухачев А.Д. Оленеводство. М.: Агропромиздат, 1990. - 272 с.

41. Невструева В.В. Субмикроскопическая организация клеток Лейдига в норме и при нарушении механизмов иннервации // Эндокринные железы. Тр. 2-го Московск. Мед. ин-та,- М.: 1974. Т. 15. Сер. Эмбриология и гистология,- Вып. 3.-С.161-169

42. Невструева В.В. Воронихина Т.В. Некоторые барьерообразующие структуры семенника // Архив АГЭ, 1980. Т. 79. - С. 81-92.

43. Осадчук Л.В., Красс П.М., Иванова Л.Н. Эндокринная функция гонад у серебристо-черных лисиц на различных стадиях репродуктивного цикла // Известия СО АН СССР, 1977. Сер. Биол. науки. - № 5. - Вып. 1. - С. 118-121.

44. Пирс Э Гистохимия теоретическая и прикладная. М.: Иностранная литература, 1962. - 962 с.

45. Портной А.С. Патогенетические механизмы аденомы и рака предстательной железы,- Л.: Медицина, 1970. 319 с.

46. ПожидаевВ.А. Эпителий извитых семенных канальцев//Архив АГЭ, 1982.-Т 82. №3. - С.101-112.

47. Попов А.П. Структурно-функциональная дифференциация внутренних половых органов быков в онтогенезе, эксперименте и особенности их в сравнительно-видовом аспекте: Автореф. дис. докт. вет. наук. Улан-Удэ, 1995. - 43 с.

48. Прасолов А.И. Количественный анализ сперматогенного эпителия у норки / / Науч. труды УСХА,- Киев, 1976. Вып. 182. - С. 96-98.

49. Прасолов А.И. Функциональная морфология сустентоцитов речного бобра в течение цикла сперматогенного эпителия // Тез докл. обл. науч.-практ. конф.молодых ученых и специалистов. Воронеж, 1977. - С. 35.

50. Прасолов А.И. Иванова Т.М. Количественное изучение сперматогенного эпителия у речного бобра // Акушерство, гинекология, искусственное осеменение и болезни молочной железы. Л.: 1976. - С. 274-275.

51. Приходько. В.И. О снижении численности кабарги в России // Редкие виды млекопитающих России и сопредельных территорий: Тез. междунар. совещ. М.: 1997. - С.79

52. Райцина С.С. Травма семенника и аутоиммунитет. М.: Медицина. - 1970. -183 с.

53. Райцина С.С. Цикл сперматогенного эпителия и кинетика сперматогенеза у млекопитающих // Современные проблемы сперматогенеза. М.: Наука, 1982. - С. 73-107.

54. Райцина С.С. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М.: Наука, 1985. - 205 с.

55. Репродуктивная эндокринология // Под ред. С.С.К. Иена, Р.В. Джаффе. В 2х томах. Т. 1. М.: Медицина, 1998. - 704 с.

56. РомейсБ. Микроскопическая техника.-М.: Иностранная литература, 1953. -718 с.

57. Ротт Н.Н. Создание генетических криобанков и использование методов биологии развития как способ сохранения редких видов животных. I Криоконсервация спермы диких млекопитающих // Онтогенез. 1995. - Т. 26, № 4. - С. 270281.

58. Ротт Н.Н., Вепринцев Б.Н. Экспериментальные и теоретические предпосылки для решения проблемы сохранения генофонда методом консервации// Успехи современной биологии,- 1981. Т. 91. - Вып. - 3. - С. 451-463.

59. Ржаницина И.С., Малофеев Ю.М., Белоногова С.П., Белоногов А.П. Адаптационные особенности морфологии ряда систем органов пантовых оленей Горного Алтая // Прогрессивная технология пантового оленеводства: Сб науч. тр. -М.: 1982. Т. 28. - С. 80-82.

60. Рузен-Ранге Э. Сперматогенез у животных.- М.: Мир, 1980. 255 с.

61. Санкевич М.Н. Методы получения спермы от маралов в период гона и ее качественные показатели // Новое в технологии пантового оленеводства: Сб. науч. работ. Барнаул, 1979. - С.23-26.

62. Санкевич М.Н. Возрастные изменения качества спермы маралов в периодгона//Новое в технологии пантового оленеводства: Сб. науч. работ. Барнаул, 1979. -С.27-29. '

63. Серов В.В., Шехтер А.В. Соединительная ткань. М : Медицина, 1981. - 312 с.

64. Сидоров С.В. Предпосылки и возможные направления эндокринологических исследований в популяциях промысловых видов копытных // Биологические основыохраны о воспроизводства охотничьих ресурсов: Сб. науч. тр. ЦНИЛ Главохоты РСФСР.-М.: 1987.-С. 89-105

65. Сипко Т.П., Абилов А.И., Шишова Н.В. Криоконсервация поетмортальной спермы диких оленей // Биофизика живой клетки. 1994. - Т. 6. - С. 127-129.

66. Сипко.Т.П., Ротт Н.Н., Абилов А.И., Присяжнюк В.Е., Шишова Н.В., Комбарова И.А. Сохранение генетических ресурсов оленьих (Сепчёае) путем криоконсервации их половых клеток // Изв. РАН. Сер. биол. 1997, № 5. - С. 546555.

67. Сипко Т.П., Ротт НИ., Абилов А.И. Проблемы сохранения генетических ресурсов оленьих (Сепчёае) и создание геномного криобанка их половых клеток// Редкие виды млекопитающих России и сопред. территорий: Тез. Междунар. совещ. -М.: 1997. С. 89.

68. Собанский Г.Г. Копытные Горного Алтая.- Новосибирск: ВО “Наука”. Сиб. изд. фирма, 1992. С. 257.

69. Собанский Г.Г. Федосенко А.К. Распространение и численность марала (СегуиБ е1арЬш бЛшсш Беу.) в СССР // Фауна и экология позвоночных Сибири. -Новосибирск: Наука, 1982. С. 132-148.

70. Соколов В.Е. Данилкин А.А., Дуламцурэн С. Современнное распространение и численность лесных копытных в Монголии // Зоологические исследования в МНР. М.: Наука, 1982. - С. 37-56.

71. Спивакова Л.В., Байдавлетов Р.Ж. Микроструктура гонад половозрелых самцов оу1з агштюп соШит в Центральном Казахстане // Редкие виды млекопит. России и сопред. территорий: Тез. докл. междун. совещ. Москва, 9-11 апреля. -М.: 1997.- С. 92

72. Сурикова К.К. К вопросу о цитологических и цитохимических изменениях при сперматогенезе//Вестник ЛГУ, 1957. Сер. Биол. - Т. 15. - Вып. 3. - С. 53-71.

73. Сухов Н.М. Морфофункциональные изменения интерстициальных клеток семенника у норок и бобров в течение годового цикла // Матер, докл. Всесоюз. науч., посвящ. 100-летию Казанского ордена Ленина ветеринарного ин-та. -Казань,1974. Т.2. - С. 425-427.

74. Ташкэ К. Введение в количественную цитогистологическую морфологию.-Бухарест Изд-во АН Соц. Респ. Румынии, 1980. 192 с.

75. Товстик О.В. Гистологический анализ возрастных изменений гонад у ондатры // Ученые записки ЛГПИ им. А.И. Герцена. 1953. - Т. 88. - С. 99-112.

76. Товстик О.В. Сезонные изменения в семенниках ондатры. //Ученые записки ЛГПИ им. А.И. Герцена. 1953.-Т. 88. - С. 115-127.

77. Турянин И.И. Экологические особенности и современное состояние карпатских популяций диких копытных // Копытные фауны СССР (экология, морфология, использование и охрана). М.: Наука, 1975. - С. 26-27.

78. Ухов Ю.И., Астраханцев А.Ф. Морфометрические методы в оценке функционального состояния семенников //Архив АГЭ. 1983. - Т. 84. - Вып. 3. - С. 66-72.

79. Францкевич Н.Н. Возрастные изменения размеров ядер клеток Лейдига у кроликов// Актуальные проблемытеоретич. и клинич. медицины: Сб. науч. работ. -Минск, 1973. С. 52-53

80. Францкевич Н.Н., Рябов К.П. Мофологические и цитологические характеристики клеток Лейдига семенников растущих кроликов // Дифференцировка клеток в гисто- и органогенезах: Мат. IY Всесоюз. симпоз. Киев: Наукова думка, 1975. -С. 99-203.

81. Хесин Я.Е. Размеры ядер и функциональное состояние клеток. М.: Медицина, 1967. - 423 с.

82. Хмельницкий В.К., Ступина А.С. Функциональная морфология эндокринной системы при атеросклерозе и старении,- Л.: Медицина, 1989. 248 с.

83. Христолюбова Н.Б. К истории развития стереологических методов и вывод основных формул // Применение стереологических методов в цитологии. -Новосибирск, 1974. С. 5-10

84. Хэм А., Кормак Д. Гистология (в 5-ти томах). Т. 5. - М.: Мир, 1988. - 294 с.

85. Цаплюк О.Э. Наступление половозрелости и процесс сперматогенеза у самцов сайгака // Труды Ин-та зоологии АН Каз. ССР. 1962,- Вып. 17. - С. 222-240.

86. Цаплюк О.Э. Возрастные и сезонные особенностии биологии размножения косули (Capreolus capreolus) в Казахстане // Зоол. журнал., 1977. Т. 56, № 4. - С. 611-618.

87. Цветкова П. Електронномикроскопско изследоване на пресперматогеназата при плъхове // Експерим. мед. и морфол. 1990. Т. 29, № 3. - С. 51-54

88. Целлариус Ю.Г., Циммерман В.Г., Семенова Л.А. Сезонные изменения семенников серебристо-черных лисиц // Архив АГЭ. 1986. - Т. 60. - Вып. 5. - С. 69-71.

89. Четвертичная геология зарубежной Азии / В.Э Мурзаев, А.М. Сокольский и др.; под ред. Н.Н. Кригер. М: Наука, 1991. - 244 с.

90. Шабадаш А.Л. Рациональная методикаика гистохимического обнаружения гликогена и ее терапевтическое обоснование // Известия АН ССР. Сер. Биол.- 1947. -Вып. 66. С. 745-760.

91. Швецов Ю.Г., Смирнов М.Н., Монахов Г.И. Млекопитающие бассейна озера Байкал.- Новосибирск: Наука, 1984. 257 с.

92. Шевлюк Н.Н. Морфофункциональная характеристика интерстициальных эндокриноцитов (клеток Лейдига) семенников некоторых позвоночных в условиях сезонного изменения репродуктивной активности // Морфология, 1995. Т. 108, № 2.-С. 57-59.

93. Шевлюк Н.Н. Морфофункциональная характеристика интерстициальной ткани семенников представителей различных классов позвоночных // Тез. ІУ Конгресса междунар. ассоциац. морфол. // Морфология. Т. 113, № 3. - С. 113.

94. Шевлюк Н.Н. Морфофункциональная характеристика интерстициальных эндокриноцитов семенников суслика рыжеватого в условиях сезонного изменения репродуктивной активности // Морфология. 1998. - Т. 114, № 4. - С. 88-93.

95. Шубич М.Г. Метод элективной окраски кислых (сульфатированных) мукополисахаридов основным коричневым // Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1961. №2.-С. 116-120

96. Шубич М.Г. Могильная Г.М. Гликопротеины и протеогликаны. Принципы их гистохимического анализа // Архив АГЭ. 1979. - Т. 77, № 8. - С. 92-98.

97. Шилов А.Г. Общие принципы стереологии срезов // Применение стереологических методов в стереологии: Сб. науч. трудов. Новосибирск, 1974. - С. 11-17.

98. Шик Г.Г. Гистологическое исследование панта// Пантокрин: Сб. науч. тр,-Горно-Алтайск, 1969. С. 33-36

99. ШортР.В. Сезонность размножения//Гормональная регуляция размноженияу млекопитающих. М.: Мир, 1987. - С. 178-183.

100. Яцковский А.Н. Метод оценки функциональной активности клеточных ядер //Архив АГЭ. 1987. - Т. 62. - Вып. 1. - С. 76-79.

101. Amagase Noriharu Электронномикроскопическое изучение интерстициальной ткани семенников и семенных пузырьков у старых крыс // Курумэ ураккай дзасси, J. Kurume Med Assoc. 1973. - 36, № 11. - P. 881-895.

102. Amat.P., Paniagua R., Nistal М., Martin A Mitosis in adult Leydig cells // Cell and Tissue Res. 1986.- 243, № 1.-P. 219-221.

103. Angelova P., Davidoff M.C. Immunocytochemical demonstration of substance in hamster Leydig cells during ontogenesis // Z. Microsk.-anat. Forsch. 1989. - 103, №4. P. 560-566.

104. Audi M.C. Etude ultrastructurale des cellules de Leydig et de Sertoli au cours du cycle sexual saisonnier de la fouine ( Martes foina Erx.) // Gen. and comp. Endocrinol. -1978.- 36, № 4. P. 462-476.

105. Audi M.C., Bonnin-Lattargue M. Lactivite endocrine du testicule ebuz le blaireau european (Meles meles L.) // Arch. biol. (Belg). 1975,- 86, № 2,- P. 223-232.

106. Aoki A. Faucett D.W. Is there a local feed from the seminiferous tubules affecting activity of the Leydig cells?//Biol. Reprod., 1987,- 19, №1,- P. 144-158.

107. Barlet J.P., Copin H. Histologie testiculaire de 1 enfant // Bull. Assoc. Anat.-1990.- 74, № 227.-P. 8.

108. Bergh A., Damler J.-E. Local regulation of Leydig cell function from the seminiferous tubules. Effect of short-term cryptorchidism // Acta endocrinol. 1983. - 103, Suppl. № 256. - P. 247.

109. Boissin J., Boissin-Agasse L., Maurel D., Sempere A. Cycle annual de la fonction gonadotrope et de la pholactimenic: regulation del- activite testuiculaire saisonniere // Ann. Endocrinoll. 1983,- 1983. - 44, № 5. - P. 319-321.

110. Bustos-Obregon E. Ultrastructura and function of the lamina propria of mammalian seminiferous tubules // Andrologia, 1976. V. 8, № 3. - P. 179-185.

111. Cavagnuolo A., Varano L., Rutti R. The structure and ultrastructure of the Leydig cell andthe myoid peritubular cells the mini-pig testis // Monit. Zool. ital.- 1976. 10, № 1. - P. 381-402.

112. Ceng C. Y., Grima J., Sfayler M.S., Guglielmatti A., Silvestrini B.Bardin C.W. // Sertoli cell synthesizes and secretes a protease inhibitor, a2-macroglobulin // Biochemistry, 1990. 29, № 4. - P. 1063-1068.

113. Christl H.-W. The lamina propria of vertebrate seminiferous tubules: A comparative light and electron investigation // Andrologia, 1990. 22. - P. 85-94.

114. Cieciura L. Studies on the structure of the boundary tissue of the white rat seminiferous tubules // Folia histochem. et cytobiol. -1988. 26, № 1. - P .33-37.

115. Cieciura L., Jaszczuk-Jarosz D., Pietrzkowska K. Ultrastructural stadies on the boundary tissue of the seminiferous tubules of different mammals //Folia histjchemica et cytobiol. 1988. - 26, № 3. - P. 33-37.

116. Csanyi S., Paller A. Condition changes of red deer stags during the rut in the population of Labod, South-West Hungary // Abstr. Euro. Amer. Mammal. Congr. -Santiago-de-Compostera, 1998. P. 395.

117. Cuq P., Agba K.Ch. Rythmes biologiques anneuls des organes genitaux du taureau Zebu dans la zone soudano-sahelienne du Senegal// C.r. Soc. Biol. 1979. - 173, № l.-P. 169-181.

118. Dahlback M., Andersson M. Biology of the wild rabbit, Oryctolagus cuniculus in Southern Sweden. IY. Leydig cell activity and seasonal development of two male accessory organs of reproduction // Acta Zool., 1981.- 62, № 2. P. 113-120.

119. Davidoff M.S., Breicker H., Holstein A.F., Seidl K. Cellular architecture of the lamina propria of human seviniferous tubules // Cell and Tissue Res. 1990. - 262, № 2. -P. 253-261

120. Davis J.R., Langford G.A., Kirly P.J. The testicular capsule.- In: The testis / Ed. A.D. Johnson et al. N.Y.: L.: Acad. Press. 1970. - V.l. - P. 282-334.

121. Drechler H. Sterbealter und Todesursachen alter Rothirche ( Cervus elaphus L.) im Harz.// J. Jagdwiss. 1998.- 44, № 2,- P. 94-97.

122. Dumber J.E. Bergh A., Janson P.O. Leydig cell function and morphology in the rat testis after exposure to heat // Andrologia, 1980. 12, № l.-P. 12-19.

123. Dutourne B., Saboureau M. An endocrine and histophysiological study of the testicular annual cycle in the hedgehog (Erinacius europaeus L.) // Gen. And Comp. Endocrinol. 1983. - 50, № 2 - P. 324-332.

124. Dyche W.J. Cytodifferentiation of the fetal mouse Sertoli cells // Anat. Res.1975,-V. 181.-P. 34-372.

125. Dym M. The fine structure of the monkey (Macaca) Sertoli cell and its role in maintaining the blood-testis barrier// Anat. Res. 1973. - V 175. - P. 639-656.

126. Dym M. Caviccia J.S. Functional morphology of the testis // Biol. Reprod. -1978. 18, № l. p. 1-15.

127. Engel Sindy Reece. Social ststus and seasonality of testicular weight and plasma testosterone levels in the European mail rabbit (Oryctolagus cunuculus). J. Reprod. and Fert. 1989.-№3.-P. 61.

128. Fawcett D.W., Neaves W.B., Flores M.N. Comparative observations intertubu-lar lymphatics and the organization of the intisinal tissue of the mammalian testis // Biol. Reprod.- 1973. 9, № 5. - P. 500-532.

129. Fischer K. Gosch B. Seasonally conditioned changes in the testicular function of adult male fallow deer (Dama dama L.) exposed to natural and artifical altered photoperiods // Gen. and Comp. Endocrinol., 1987. 66, № 1. - P. 26-27.

130. Foreman D. Seminiferous tubule stages in teh prairie dog (Cynomys ludovicianus) during the annual breeding cycle // Anat. Res. 1997. - 247, № 3. - P. 355-367.

131. Forti G., Vanelli G.B., Barni T., Orlando C., Balloni G.C., Casano R., Serio M. Sertoli cell proteins in the human testis // Progr. Endocrinol. 1988. - V.2.- P. 1163-1168.

132. Fouquet J.P. Ultrastructural analysis of a local regulation of Leydig cells in adult monkey (Macaca fascicularis) and rat. // Reprod. and Fertil. 1987. - 79, № 1. - P. 49-56.

133. Friedlander M., Rosentrauch A., Bedrak E. Leydig cell Differentiation during the reproductive cycle of the seasonal breeder Camelus dromedarius : an ultrastructural analysis //Gen. and Comp. Endocrinol. 1984. - 55, № 1. - P. 1-11.

134. Gentile R., Sciscioli V., Lenti M., Passantivo G. Ulteriori osservationi e considerazioni sul ciclo biologico e reproduttivo del capriolo (Capreolus capreolus L.). // Bull. Soc. Ital. Biol. Sper. 1989. - 65, № 7. - P. 631-638.

135. Gondos B. Testicular development // In : The testis/ Ed. A.D. Johnson et al. N. Y.: Acad. Press. -1977. V. 4. - P. 1-13

136. Gondos B., Renston R.H., Goldstein D.A. Postnatal Leydig cell differentiation on rabbit//Amer. J. Anat. 1976. - V. 145.-P. 167-182.

137. Gosch B. Fischer K. Seasonal Changes of testis volume and sperm quality in adult fallow deer (Dama damam) and their relationship the antler cycle. G. Reprod. and Fert. - 1984. - 85, № 1. - P. 7-17.

138. Goss R.J. Tissue differentiation in regenerating antlers // Bull. Roy. Soc. N. Z.1985. -№22. P. 229-238.

139. Gottreich A., Hammel I., Yogev L., Terkel J. Qiantitative microscopic changes in the mole rat testis during an annyal cycle // Anat. Res.- 1995,- 243, № 2.- P. 195-199.

140. Grandi D., Allegri F. Aspetti ultrastrutturali delle cellule interstiziali del testicolo di pipistrello (Vesperugo savi) // Acta biomed. Ateneo parm.-1984.- 55, № 5-6,- P. 209221.

141. Gravis C.I. Testicular involution following optic enucleation: the Leydig cell // Cell and Tissue Res. 1997. -185, № 3. - P. 303-313.

142. FlafezM.N., Heidger P.M. Stereological stydy of Leydig cell density in the guinea pig testes // Arch. Androl. 1986. - 17, № 1. - P. 1-17.

143. Haider S.G., Passia D. Hilscher W. Morphological stadies jn the fetal and postnatal development of rat Leydig cells // Acta endocrinol, 1985.- 108.- Suppl. № 267,- P.

144. Haider S.G., Passia D, Treiber A., Milhorst S. Description of eight phases of spermiogenesis in the marmoset testis // Acta anat., 1989. 135, № 2,- P. 180-184.

145. Haigh J.C., Barth A.D., Bowman P. An evolution of extenders for wapiti, Cervus elaphus, semen// J. Zool. Anim. Med., 1986. V. 17. - P. 119-123.

146. Hardy .M.P., Mendis-Handagama S.M. L.C., Zirkin B.R., Ewing L.L. // J. Exp. Zool., 1987. 244, № 2. - P. 269-276.

147. Hernandez P., Reynolds J.E. Age and seasonality in spermatogenesis of Florida manatees // US. Dep. Inter. Nat. Biol. Serv. 1995, № 1. - P. 84-97.

148. Hikim A.P.S., Hikim i.s., Amador A.G., Bartlce A., Woolf A., Russel L.D. Reinitiation of spermatogenesis by chuck (Marmota monax) during gonadal inactivity// Amer. J. Anat., 1991. 192, № 2. - P. 194-213.

149. Hochereau-de-Reviers M.T., Perreau C., Risselet C., Pelletier J. Effect of a two-month light cycle regimen on testicular parameters of adult Ill-de-France rams // Microsc. Res. And Techn.- 1992. 20, №3,-P. 119-123.

150. Hodson J.M., Irby D.C., Kerr J.B., Kretser D.M.de. Studies of the structure and function of the Sertoli cell in a seasonal by breeding rodent // Biol. Reprod. 1979. - V.21.- P. 1091-1098.

151. Horn R., Pastor L.M., Moreno E., Calvo A., Canteras M., Pallares J. Morphological and morphometric study of early changes in the ageing golden hamster testis // J. Anat., 1996. 188, № i.p. 109-117

152. Jaczewski Z., Doboszynska T., Krzywinski A. The indication of antler growth by amputation of the peducle in red deer (Cervus elaphus L.). Males castrated before puberty // Folia biol(PRL). 1976,- 24, № 3. p. 299-307.

153. Jegou B., Pineau Ch., Dupaix A. La cellule de Sertoli: Actualization du concept de cellule nourriciere // M/S: Med. Sci., 1995. 11, № 4. - P. 519-527.

154. Joffre M. Relationship between testicular blood flaw testosterone secretion and spermatogenic activity in young and adult wild red foxes (Vulpes vulpes) // J. Reprod. and Fertil., 1969. -V. 19.-P. 551-553.

155. Johnson L., Mckenzie S.K., Snell J.R. Partial wave in human seminiferous tubules appears to be a random occurence // Tissue and Cell., 1996. 28, № 2,- P. 127-136.

156. Johnson L., Neaves W.B. Comparative development of testicular interstitium in post-pubertal and adult stallions and in adult zebras // Biol. Reprod., 1980. 22 Suppl. -P. 89

157. Kaler L.W., Neaves W.B. Attrition of the human Leydig cell population with advancing age//Anat. Res., 1978,- 192, № 4,-P. 513-518.

158. Kamarad V., Vseticka J. A morphometric stydy of postnatal development of the rat testis // Folia morphol. (CSSR), 1978. 26, № 2.-P. 182-186.

159. Kanwar U., Sheikher Ch. Morphological and cytochemical studies on the Leydigcells of the shrew, Suncus murinus (Insectivora) //Vestn. Cs. Spolec. Zool., 1978.- 42, №3,- P. 191-194.

160. Kerr J.B. A light microscopical and morphometrical analysis of the Sertoli cell during the spermatogenic cycle of the rat // Anat. and Embryol., 1988. 177, № 4. - P. 341-348

161. Kerr J.B., Abbenhuys D.C., Irby D.C. Crystaaoid formation in Leydig cell of rats (Rattus fuscipes). An ultrastructural and hormonal study // Cell and Tissue Res.,1986,- 245, № 1, P. 91-109.

162. Kerr J. B., Risbridger G.P., Knell C.M. Stimylation of interstitial foetal Leudig cells in the testis of poctnatal rats // Cell and Tissue Res., 1988.- 252, № 1. P. 89-98.

163. Kluin Ph. М., Kremer D.C., Rooij M.F. de. Proliferation of spermatogonia and Sertoli Cells in maturing mice // Anat. and Embryol., 1984. V. 169. - P. 72-78.

164. Kluin Ph. М., Rooij. M.F. de. Testicular development in Macaca irus after birth // Intern. J. Androl, 1983. V. 6. - P. 25-43.

165. Konno Minoru, Hosaka Masaniko, Iwasaki A., Michimura R., Takai Sh. Функция клеток Лейдига при бесплодии у мужчин // Нихон фуккин заккей дзасси, Jap. J. Fertil. and Steril., 1976. 21, № 3. - P. 407-415.

166. Kothari L.K., Gupta A.S. Effect of aging on the volume structure and total Leydig cell content of the human testis // Int. Fert., 1974. 19, № 3.- P. 140-146.

167. Kothari L.K., Patni M.K., Tain M.L. The total Leydig Cell volume of the testis in some common mammals // Andrologia, 1978. 10, № 3. - P. 218-222.

168. Krzywinski A., Jaczewski Z. Observations on the artifical breeding of red deer // Symp. Zool. Soc. London, 1978. - V. 43. - P. 271-275.

169. Kula K. Testosterone stabilizes number of Sertoli cells in developing testis of rats and inhibits number of immature Sertoli cells with negative relation to meiotic prophase // Acta endocrinol., 1983. 103, Suppl. J\T° 256. - P. 248.

170. Kurohmaru М., Kobayashi H., Hattori S., Nishida Т., Hayashi Y. Spermatogenesis and ultrastructure of a peculiar acrosomal formation the musk shrew Suncus murinus // J. Anat., 1994. 185, № 3. - P. 503-509.

171. Lamano-Carvalho T.L., Kempinas W.G. Stage-dependent variation in the rat Sertoli cells nuclear volume //Gegenbauers morphol. Jahrb., 1988,- 134, № 1.-P. 93-98.

172. Langford G.A., Heller C.G. Fine structure of muscle cells of the human testicular capsule: Basis of testicular contractions.- Science, 1973. V. 79. - P. 573-575.

173. Leader-Williams N. Age-related changes in the testicular and antlers cycles of reindeer, Rangifer tarandus // J. Reprod. and Fert., 1979. 57, № 1. - P. 117-126.

174. Leader-Williams N. Abnormal testes in reindeer, Rangifer tarandus // J. Reprod. and Fert, 1979. 57, № 1. - P. 127-130.

175. Leeson T.S, Coockson F.B. The mammalian testicular capsula and its muscle elements.- J. Morphol, 1974. 144. - P. 237-253.

176. Lev. R, Spicer S.S. Specific Staining of sulfate groups // J. Histochem, Cytochem., 1964. -V. 12, №4,-P. 303-311.

177. Lin M, Harman A, Rodger J.C. Spermiogenesis and spermiation in a marsupial, the tammer wallaby (Macropus eugenii) // J. Anat, 1997. 190, № 3. - P. 377-395.

178. Lincoln G.A. Seasonal aspects of testicular function // In: The testis./ Ed. H. Burger, D. de Kretser. N. Y.: Raven press, 1981. P. 255-303.

179. Lincoln G.A. Antlers and their regeneration a study using hummels, hunds and haviers // Proc. Roy. Soc. Edinburgh, 1984. - V. 82. - P. 243-259.

180. Liu Huiwen, Li cun Jin Lianhong, Liu Zhiui, Li Xuijun. Ультраструктурное изучение и стереологический анализ развития клеток Лейдига в семенниках крыс / / Jiepou xuebao = Acta anat. Sin, 1995. 26, № 4. - P. 431-435, 467.

181. Lopez-Arranz J.S, Hinojal Fonseka R, Castro Cactro J, Rujgomez Guerra A. Some histochemical and histoenzymological observations of the tesicle // Phronesis.1976, №28, P. 391-402.

182. Low O. Quantitative Structuruthtersuchungen an Hoden.- Jahrb. Morphol. und microsk. Anat, 1980. Abt. 1. - 126, № 3 - P. 398-403.

183. Matushak B. Hircshe sorgen fur Artenvielfalt // Wald und Holz, 1998. 79, №12. P. 11-14.

184. Mausle E, Hohbach Ch. Alterssperfische Veranderungen der menschlichen Leydig-zells-ultrastructurelleund ultramorphometrische unter- suchungen//Vert. Dtshh. Ges. Pathol, 1977.- 61,-P. 385.

185. Me Guckin M.A, Blackshaw A.W. Cycle of the seminiferous epithelium in the grey-headed fruit bat Pteropus poliocephalus //Austral. J. Biol. Sci, 1987, 40, № 2. P. 203-210.

186. Me Lachlan R.I, Wreford N.G, О Donnell L, Kretser D.M. de, Robertson D.M. The endocrine regulation of spermatogenesis: Independent roles for testosterone and FSH.// J. Endocrinol, 1996. 148, № 1. - P. 1-9.

187. Me Millin J.M, Seal U.S., Rogers L, Erickson A. W. Annual testosterone rhythm in the black bear (Ursus americanus) // Biol. Reprod, 1976.- 15, № 2. P. 163-167.

188. Mieting A. Intercellular bridges between germ cells in the immature golden hamster testis: evidence for clonal and nonclonal mode of proliferation // Cell and Tissue Res, 1990. 262, № 3,- P. 559-567.

189. Mirarchi R.E, Scanlon P.F, Kirkpatrick R.L. Annual chenges in spermatozoan production and associated organs of white-tailed deer // J. Wild life Manag, 1977. 41, № 1. - P. 92-99

190. Mirarchi R.E, Scanlon P.F, Kirkpatrick R.L, Schreck C.B. Androgen levels antler development in cfptive and wild white-tailed deer // J. Wild life Manag, 1977.41, №2.-P. 178-183.

191. Mori Hiroshi, Tamai Masamitsu, Fushimi Hiroaki, Fucuda Hazuki, Maeda

192. Tamaki. Leydig cells within spermatogenic seminiferous tubules // Hum. Pathol, 1987.18, № 12. P. 1227-1231.

193. Mowry R.W.Alcian blue technics for the histochemical study // Histochem, Cytochem, 1956.- 4.-P. 107.

194. Mugisha G.H, Radke B, Schwarz R. Observation on the Leudig cells in the mail east african spring hare (Pedes surdaster) // Z. mikrosk.-anat. Forsch, 1979. 93, № l.-P. 63-73.

195. Mulley R.C. Moore M. W, English A.W. Successful uterine insemination of fallow deer with frech and frozen semen //Theriogenology, 1988. V. 29, № 5. - P. 11491153.

196. Munoz E.M, Fogal T, Dominguer S, Scardapane L, Guzman J, Piezzi R.S. Stages of the cycle of the seminiferous epithelium of viscacha (Lagostomus maximus maximus) // Anat Res, 1998. 252, № 1. - P. 8-16.

197. Munoz. E, Fogal. T, Mohamed F, Dominguez S, Scardapane L, Guzman J, Cawiccia J.C, Piezzi R.S. Ultrastructural study of Leydig cells of viscacha (Lagostomus maximus maximus) in period of maximum activity // Comun biol, 1994. 12, № 3. - P. 278.

198. Myoga H, Sung Weng Kong, Jagiello G. The cycle of the seminiferous epithelium turkish hamster Mesocricetus brandti // Dev, Growth and Differ, 1991. 33, № 6. -P. 599-604

199. Neaves W.B, Johnson L, Petty C.S. Age-related chahge in number of other interstitial cells in testis of adultmen: evidence bearing on the fate of Leydig cells lost with encreasing age // Biol. Reprod, 1985. 33, № 1. - P. 259-269.

200. Nistal M, Paniagua R. Histogenesis of human extraparenchymal Leydig cells // Acta anat, 1979,- 105, №2. -P. 188-197.

201. Nistal M, Paniagua R, Regadera J, Santamatia L, Amat P. A quantitative morphological study of human Leydig Cells from birth to adulthood // Cell and Tissue Res, 1986. 246, № 1. - P. 229-236.

202. Orth J.M, Gonsalus G.L, Lamperti A.A, Evidence from Sertoli cell-depleted rats that spermatid number in adult depends on number of Sertoli cells produced during perinatal development //Endocrinol, 1988. 122, № 3. - P. 787-794.

203. Paniagua R, Redriguez M.C, Nistal M, Faile B, Regadera J, Amat P. Changes in surface area and number of Leydig cell in relation to the 6 stages of the cycle of the hyman seminiferous epithelium // Anat. and Embryol, 1989. 178, № 5. - P. 423-427.

204. Passia D, Hahner J., Hilscher B, Hilscher W. Enzymhistochemishe untersuchungen an dem inter-und peritubularen Leydigzell-System der Ratter // Anat. Anz, 1979. 146, Erganzungsh.- Teil 2 .-P. 699-700

205. Pelltier R.M, Byers S.W. The blood testis barrier and Sertoli cell junctions: structural considerations //Microsc. Res. and Techn, 1992. 20, № 1. - P. 3-33.

206. Pierce E.J, Breed W.G. Cytological organization of the seminiferous epithelium in the Australian rodents Pseudomys australis and Notomys alexis // J. Reprod. and Fert, 1987.- 80.-№ 1. P. 91-103.

207. Pirke K.M, Geiss M, Vogt H.T. In vitro and in vivo Stadies on Leydig cell function in old rats // Acta endocrinol, 1978. 87. Suppl № 215. - P. 37-38.

208. Prince F.P. Ultrastructure of immature Leydig cells in the human prepubertal testis // Anat. Res, 1984. 209, № 2. - P. 165-176.

209. Pudney I, Lacy D. Correlation between ultrastructure and biochemical changes in the testis of the American grey squirrel, Sciurus carolinensis, during the reproductive cycle // J. Reprod. and Fert, 1977. 49, № 1. - P. 5-6.

210. Rey R.A, Nagle C.A, Chemes H. Morphometric study of the testicular interstitial tissue of the monkey Gebus apella during postnatal development // Tissue and Cell, 1996.- 28, № 1,-P. 31-42.

211. Reyes E, Bubenic G.A, Schams D, Lobos A, Enriguez R. Seasonal changes of testucular parametrs in sauthern pudu Pudu pudu in relationship to circannual variation of in reproductive hormones // Acta theriol, 1997. 42, № 1. - P. 25-35.

212. Rich. K. A, Kerr J.B, Kretser D.M. de. Evidence for Leydig cell disfunction in rats with seminiferous tubule gamage // Mol. And Cell. Endocrinol, 1979. 13, № 2. - P. 123-135.

213. Rojas M.A, Morales B, Esponda D. Effects of photoperiod on structure of lamina propria of the testis of Octodon degus // J. Morphol, 1995. 226, № 3. - P. 331338.

214. Rooij D.G. de. Regulation of the proliferation of spermatogonial stem cells // Cell. Sci, 1988. Suppl. № 10. P. 181-184.

215. Roulier R, Mattei A. La cellule de Sertoli // Contracept.- fertil.- sex, 1980. 8, №4. - P. 373-378.

216. Sanches A, Stamatopoulos C, Redi C.A. Descriptive kinrtics of the seminiferous epithilium cycle and genome size in the mole Talpa occidentalis (Insectivora) // J. Exp. Zool, 1995.-273, № l.-P. 51-58.

217. Schlatt S, De Geyter M, Kliesch S. Nieschlag E, Bergmann M. Spontaneous recrudenscence of spermatogenesis in the photoinhibited male djungarian hamster, Phodopus sungorus // Biol. Reprod. 1995. - 53, № 5,- P.l 169-1177.

218. Schiilke B, Tonhardt H, Sajonski H, Thomas E. Intersuchungen zur endokrinen und spermiogenen Hodenfunction// Arcsh. Exp. Veterinarmed, 1976. 30, № 2,- P. 183191, 283-291.

219. Schulze C. Heterotope Leydigzellen in der lamina propria der tubuli seminiferi beim Menschen // Anat. Anz, 1979. 146. - Erganzungsh. - Teil 2. - P. 695-697.

220. Schulze C. The Leydig cells and its variants in the human testis. A morphological study//Diagn. Aspects Androl. Berlin, 1983. - P. 130-141.

221. Schulze C. Holstein A.-F. Leydig cells within lamina propria of seminiferous tubules in four patients with azoospermia // Andrologia, 1978. 10, № 6,- P. 444-452.

222. Schulze W. Davidoff M.C. Neuropeptides in human Leydig cells // Gegenbauers morphol. Jahrb, 1989. 135, № 2,- P. 337.

223. Sharpe R.M. Seminiferous tubule-leydig cell interactions // Acta Endocrinol.1983,- 103, Suppl. № 256.-P. 257.

224. Sheikher Ch, Rawat A.K. Reproduction in bandicota bengalensis: seasonal testicular cycle // Z. angew. Zool, 1990. 77, № 2,- P. 133-141

225. Sinha A.A. Erickson A.W, Seal U.S. Fine structure of Leydig cells in crabiater, leopard and Ross seals // J. Reprod. and Fert, 1977. 49, № 1. - P. 51-54.

226. Sipko T.P, Rott N.N, Abilov A.J. Cryoconcervation of sperm as a means for saving the rare ungulate species // Abstr. Euro-Amer. Mammal. Congr.- Santiago de Compostela. 1998,- P. 69.

227. Smithwick E.B, Young L.G. Germ cell maturation and cellular assotiations in the seminiferous epithelial cycle of the chimpanzee // Tissur and cell, 1996. 28, № 2,-P. 137-148.

228. Spicer S.S. The use of various cations reagents in histochemical differentiation of mucopolysacharides // Amer. J. Clin. Path, 1961. V.36. - № 5. - P. 393-407.

229. Spicer S.S. Histochemical Differentiation of mucopolysacharides // Ann. N.Y. Acad. Sci, 1963. V. 106. - № 2. - P. 379-388.

230. Straaten H.W.M. van Two types of Leydig cells in the testis of the pig // Acta anat, 1977. 99, №3. - P. 345.

231. Straaten H.W.M. van, Wensing C.J. G. Leydig cells development in the testis of the pig // Biol. Reprod, 1978. 18, № 1. - P. 51-54.

232. Suntiemma V, Francavillia S, FrancvavilliaF. Sviluppo e differenziazione delle cellule contractili del tubulo seminifero e dell' epididimo di rattio. Quad Ric. Sci, 1982.-№ 110. - P. 69-75.

233. Suswillo R.F.L, Watson P.F. A neww light microsscopy classification of spermatogenesic in the bull and the boar applicable to tissues processed for electron microscopy // Anat, Histol, Embryol, 1990. 19, № 4. - P. 324-339.

234. Suzuki F, Racey R. The organization of testicular unterstitial tissue and changes in the fine structure of the Leydig cells of European moles (Talpa europaea) throughout the the year // J. Reprod. and Fert, 1978. 52, № 2. - P. 189-194.

235. Suzuki M. Kaji K, Higi H. Annual changes of testis size, seminiferous tubulesand plasma testosterone concentration of wild sika deer (Cervus nippon yesoensis Huede, 1884) in Hokkaido//J. Vet. Med. Sci, 1992.-V. 54, № 3. P 551-556.

236. Tahka K.M. Current aspects Of Leydig cell Function and its regulation // Reprod. and Ferti, 1986. 78, № 2. - P. 367-380.

237. Tahka K, Teravainen T, Pankakoshi E. The testes of moles (Talpa europaea) retain a considirable microsomal capacity for androgen synthesis during seasonal regression // Gen. and Comp. Endocrinol, 1989. 76, № 2.- P. 301-309.

238. Takano Hiroko, Abe Kazuhiro. Age related histologic changes in the mouse testis // Arch. hist. Jap, 1987. 50, № 5. - P. 533-544.

239. Temmin C.K, Rao K.V. Seasonal variation in the testis and epididymis of Rhinolophus rouxi // J. Curr. Biosci, 1988. 5, № 1. - P. 267-279.

240. Tiba T, Kita I. Undifferentiated spermatogonia and their role in the seasonally fluctuated spermatogenesis in the mink Mustela vison // Anat, Histol, Embryol, 1991.20, №2. P. 118-128.

241. Tiba T, Takachashi M, Kita I. Enhanced proliferation of undifferentiated spermatogonia after treatment of short photoperiod exposure in the Syrian hamster, Mesocricetus auratus // Anat, Histol, Embryol, 1992. 21, № 1. - P. 9-22.

242. Todhanter R, Gemmel R. Seasonal changes in the moephology of the reproductive tract of the male bandicoot, Isoodon macrurus // J. Anat, 1986. 149. - P. 259.

243. Topinski P. Abnormal antler cycles in deer as a result of stress inducing factors // Actatheriol, 1975,- 20, № 15-23. P. 267-279.

244. Tonhardt H, Sajonski H, Schulke B. Unterrsuchungen zur endocrinen und spermiogenen Hodenfunction // Arch. exp. Veterinarmed, 1976. 30, № 2,- P. 183-191, 283-291.

245. Ueno H, Mori H. Stereological analysis of ultrastructural alterations of rat Sertoli cells in spermatogenic cycle // J. Electron, microsc, 1986. 35. - Supll. № 4. - P. 2947-2948.

246. Verhoeven G Paracrine interaction between interstitial and the tubular compartment of the testis//Bull. Assoc. Anat, 1991. 75, № 28. - P. 167-169.

247. Weinbauer G. F, Arsslan M, Bartlett J.M, Gockeber E, Knan S.A, Nieschlag E. The role of intratesticular androgens in spermatogenesis: comparison between rats and monkeys // Gen. and Comp. Endocrinol, 1989. 74, № 2. - P. 265.

248. Weinbauer G. F. Nieschlag E Paracrine control of spermatogenesis // Reprod. Domest. Anim, 1997. Suppl. №. 4. - P. 85.

249. Werner G, Haben B, Neumann K. The fine structure of testicular interstitialcells in the mouse. A comparison after conventional double fixation versus rapid freezing followed by freeze substitution // Cytol. And Pathol, 1991. 23, № 3. - P. 405-414.

250. Wing-Tung Yang, Lin Huai-San. The fine structure of testicular interstitial cells in the adult golden hamster with special reference to seasonal changes // Cell and Tissue Res, 1977. -183, № 3. P.385-399.

251. Wrobel K.-H, Dostal S, Schimmel M. Postnatal development of the tubular lamina propria and the intertubular tissue in the bovine testis // Cell and Tissue Res, 1988. 252, №3,-P. 639-653.

252. Wrobel K.-H, Hees H. Uber heterotope Leydigzellen bei der Katze // Anat, Histol, Embryol, 1987. 16, № 4. - P. 289-292.

253. Wrobel K.-H, Schimmel M. Morphology of the bovine Sertoli cell during the spermatogenetic cycle // Cell and Tissue Res, 1989. 257, № 1,- P. 93-103.

254. Wurster K, Hofmann W, Dondor F.W. Einseitiger Hodenschwund bei einem Rothisch (Cervus elaphus L.) // Z. Jagdwiss, 1975. 21, № 4. - P. 238-242.

255. Xie Q, Mackay S, Ullmann S.L, Gilmore D.P, Paune A.P. Testis development in the opossum Monodelphis domestica // J. Anat, 1996. 189, № 2.- C. 393-406.

256. Zirkin B.R, Ewing L.L. Leydig cell differentiation during maturation of the rat testis: a stereological study of cell number and ultrastructure // Anat. Res. 1987. - 219, №2. P. 157-163.