Влияние патогенных агентов на промысловых крабов западнокамчатского шельфа тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.08, кандидат биологических наук Рязанова, Татьяна Вячеславовна

• Рязанова, Татьяна Вячеславовна
• кандидат биологических наук
• 2011

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Рязанова, Татьяна Вячеславовна

ВВЕДЕНИЕ. .4ч

1; ГЛАВА 1. КРАТКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАЙОНА, ОБЪЕКТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ И НАИБОЛЕЕ РАСПРОСТРАНЕННЫЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ РАКООБРАЗНЫХ.

1.1. Краткая характеристика района и объектов исследований.

1.1.1. Физико-географическая характеристика района исследований.

1.1.2. Промысловые крабы шельфа Западной Камчатки

1.2. Патогены и болезни промысловых ракообразных.

1.2.1. Вирусные инфекции.

1.2.2. Бактериальные патогены.

1.2.3. Микозные заболевания.

1.2.4. Паразитарные инвазии.

2. ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

2.1.Объекты, район исследования, визуальный учет и объем материала;.'.:.

2.2. Морфологические,; гистохимические, бактериологические, паразитолопиеские и электронномикроскопические методы.

2.3. Постановка эксперимента для определения влияния подъема-спуска в ловушках на состояние здоровья крабов.

2.4. Статистическая обработка.

3. Глава 3. МОРФОПАТОЛОГИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ, ВЫЗВАННЫЕ ИНФЕКЦИОННЫМИ АГЕНТАМИ;.

3.1. Вирусная инфекция.

3.2. Панцирная болезнь ракообразных.

3.3. Вибриоз.

3.4. Некроз внутренних органов.

3.5. Развитие у крабов бактериальных инфекций и газо-пузырьковой болезни вследствие промысловых операций.

4. Глава 4. ИНВАЗИОННЫЕ ПАТОГЕНЫ И СВЯЗАННЫЕ С НИМИ ЗАБОЛЕВАНИЯ.

4.1. Микроспоридии.

4.2. Паразитические динофлагелляты НетШосИтит эр.

4.3. Инфузории и амебы.

4.4. Корнеголовый рак.

5. Глава 5. ПРЕВАЛЕНТНОСТЪ, РАСПРОСТРАНЕНИЕ И ВЛИЯНИЕ ПАТОГЕНОВ РАЗЛИЧНОЙ ЭТИОЛОГИИ НА ПРОМЫСЛОВЫХ КРАБОВ ШЕЛЬФА ЗАПАДНОЙ КАМЧАТКИ.

5.1. Превалентность и распространение заболеваний.

5.2. Влияние патогенов на популяции промысловых крабов.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние патогенных агентов на промысловых крабов западнокамчатского шельфа»

Актуальность исследования. Несмотря на глобальные и локальные экологические изменения, произошедшие в последние десятилетия, Дальний Восток остается основным рыбопромысловым регионом России. Сохранение, биоразнообразия его экосистем, изучение их структуры и динамики является одной из самых важных задач рационального природопользования (Бакланов и др., 2003; Широков и др., 2003,2006; Адрианов, 2009; Шунтов, 2009). :

Ценнейшими объектами промысла в Охотском море у берегов полуострова Камчатка являются крабы. Резкое уменьшение численности популяций промысловых крабов, прежде всего камчатского, обусловлено, прежде всего, подрывом промыслового запаса в 1999-2002 гг. (Долженков, Кобликов, 2009). Процесс сокращения запасов ракообразных и других промысловых гидробионтов происходит в разных регионах Мирового океана. Его связывают как с нерациональным промыслом, так и с экологическими причинами: изменениями климата, антропогенными загрязнениями и разрушением среды обитания (Lessios, 1988; Lafferty, Kurfs, 1993; Taylor et al., 1994; Lafferty et ai., 2004; Соколовский, Соколовская, 2007; Адрианов и др., 2008)

Исследования последних десятилетий показывают, что на численность гидробионтов значительное влияние оказывают инфекционные и инвазионные болезни (Meyers et al., 1987; Lessios, 1988; Wilhelm, Mialhe, 1996; Marty et al., 2003; Lafferty et al., 2004). Термин «болезнь» определяют как очевидное негативное отклонение от нормального состояния живого организма. В экологическом смысле имеются в виду функциональные или структурные нарушения, влияющие на выживание, рост, воспроизводство, метаболизм, выносливость организма, причиной которых могут быть как биотические, так и абиотические факторы (Власов, 2004; Ревич и др., 2004; Дудников, 2005). К биотическим факторам главным образом относят патогенные организмы. В стабильных условиях все составляющие экологического сообщества, включая возбудителей заболеваний, находятся в состоянии динамического равновесия. Одним из свидетельств нарушения этого баланса в природных популяциях является возникновение вспышек заболеваний (Гаевская, 2004; Дудников, 2005). t

Среди ракообразных зарегистрированы эпизоотии с высоким уровнем смертности, связанные с вирусами (Johnson, 1978, 1983, 1984а; Hill, 2002), риккетсиями (Johnson, 1983, 19846; Wang, Gu, 2002), хламидиями (Sparks et al., 1985), простейшими (Couch, Fournie 1983; Meyers, 1990; Sindermann, 1990). Экономический ущерб от некоторых заболеваний связан еще и с тем, что больные особи становятся непригодными для использования. Одной из самых экономически значимых болезней промысловых крабов признают инвазию паразитическими динофлагеллятами рода Hematodinium (Meyers et al., 1987, 1990, 1996; Wilhelm, Mialhe, 1996). Зарегистрированы также случаи массовой гибели креветок, крабов (Sprague, 1970) и раков (Воронин, 1971, 1986), вызванные микроспоридиями. Зараженные ими особи не имеют товарной ценности. В водах Аляски у крабов-стригунов ' широко распространен синдром «черного налета» (black mat disease), вызываемый патогенным грибом Trichomaris invadens, который приводит к серьезным экономическим потерям (Sinderman, 1990).

Сведений о составе патогенных организмов, связанных с ними заболеваниях и их распространенности в популяциях промысловых крабов в Охотском и других Дальневосточных морях крайне недостаточно. В России разработаны и утверждены правила ветеринарно-санитарной экспертизы рыбы при инфекционных и инвазионных болезнях, но для ракообразных такого документа до сих пор не существует. Продукция из крабов, зараженных микроспоридиями, паразитическими динофлагеллятами, корнеголовым раком, некоторыми видами бактерий, непригодна для использования. Несмотря на это, в соответствующие нормативные документы для контроля при санитарно-ветеринарной экспертизе включен единственный паразитарный агент, который встречается у пресноводных раков (Методы., 2001; СанПиН., 2003).

Необходимость в информации о составе инфекционных и инвазионных агентов и их распространенности в популяциях гидробионтов связана с еще одним немаловажным обстоятельством — расширением ареала многих видов патогенных организмов. Это обусловлено климатическими изменениями, переносом с интродуцируемыми или культивируемыми видами, случайным заносом (Stewart, 1991; Lafferty et. al., 2004; Гаевская, 2004). Организмы-вселенцы могут стать серьезной угрозой существованию естественных сообществ, поскольку они нарушают устоявшуюся систему паразит-хозяин в местных экосистемах. В морской среде особое значение имеет проблема биоинвазий, связанная с переносом морскими судами чужеродных организмов, в том числе патогенных, способных выживать в балластных водах (Carlton, Geller, 1993; Дгебуадзе, 2002; Алексеев и др., 2009; Зверева, 2009; Звягинцев, 2009; Звягинцев и др., 2009).

Смертность от болезней является важной составляющей естественной смертности в популяции и может использоваться как один из показателей изменения запаса. При оценке естественной смертности невозможно применять широко используемые в ихтиологии статистические методы, поскольку ракообразные не имеют структур, позволяющих определить их возраст. Современные оценки естественной смертности крабов, используемые для определения общего допустимого улова (ОДУ) носят экспертный характер и сильно различаются. Поэтому выявление патогенных агентов, определение степени их влияния на здоровье ракообразных, показателей зараженности и особенностей их распространения в популяциях промысловых видов крабов особенно актуально. Особенное значение здесь имеют заболевания, способные влиять на численность гидробионтов (Meyers et al., 1987; Wilhelm, Mialhe, 1996). Так, уровень зараженности возбудителем «горькой болезни» в истощенных промыслом популяциях крабов-стригунов в водах Аляски уже используют как важный критерий в прогнозе способности этих популяций к восстановлению численности (Pestai et al., 2003; Shareef et al., 2010).

Известно, что резистентность крабов к заболеваниям резко снижается в результате стресса (McDonough, Hemmingsen, 1984; Holman et al., 2004). Для эксплуатируемых популяций ракообразных серьезнейшим стрессовым фактором является промысел. Так, количество крабов, больных панцирной болезнью, увеличивается в районах интенсивного промысла (Benhalima et al., 1998; Вялова, 1999). Хотя самок и непромысловых самцов возвращают в море в живом виде, часть из них позже погибает как от травм, полученных в процессе сортировки, так, по-видимому, и от спровоцированных стрессом; заболеваний (Macintosh, Stevens, 1996; Zhou, Shirley, 1996). Доля отбракованных при ловушечном промысле крабов разных видов может составлять от 1/3 до 2/3 и более улова (Слизкин, Сафронов, 2000; Кобликов, 2004). Вопрос о последствиях промысловых операций для состояния их здоровья и о том, какая часть из них погибает и, следовательно, выбывает из популяции, практически не изучен.

Цель и задачи исследования: Цель настоящей работы заключалась в выявлении патогенных организмов, оценке их распространенности и степени влияния на здоровье основных промысловых видов крабов шельфа Западной Камчатки.

Для выполнения этой цели были поставлены следующие задачи: выявить инфекционные и инвазионные патогены у 4 видов крабов: камчатского, синего, крабов-стригунов опилио и Бэрда; описать патоморфологические признаки заболеваний и оценить степень воздействия патогенов на органы и ткани ракообразных; определить состав возбудителей инфекционных и инвазионных болезней промысловых крабов на шельфе Западной Камчатки и выявить наиболее опасных из них; изучить воздействие подъема в ловушках на состояние здоровья ракообразных, возвращаемых в природную среду; провести визуальный учет крабов с признаками патологии в уловах и оценить степень распространенности заболеваний различной этиологии.

Научная новизна. Впервые определен состав основных патогенных агентов и получены данные об их распространенности в популяциях промысловых крабов восточной части Охотского моря. Паразитические динофлагелляты НетШосИтит ер., микроспоридии рода Атезоп впервые зарегистрированы у крабов сем. ЬШюсМае, ресничные инфузории МезапоркгуБ Бр. - у краба-стригуна опилио. Кроме того, впервые у крабов Охотского моря обнаружены: герпес-подобная вирусная инфекция, инвазия микроспоридиями рода ТкеЪЬата. Описаны патоморфологические признаки заболеваний у промысловых крабов шельфа Западной Камчатки. Впервые на основании гистопатологических и бактериологических данных оценено воздействие подъема в ловушках при промысле на состояние здоровья ракообразных, возвращаемых в природную среду. Сделана попытка применения географических информационных систем, обычно используемых при расчете численности и запасов крабов на основе данных ловушечных или траловых съемок, для определения распространенности заболеваний в популяции ракообразных.

Практическое значение. Результаты исследований позволяют дать оценку состояния здоровья промысловых крабов и эпизоотической ситуации в популяциях ракообразных на шельфе Западной Камчатки. Данные о патогенных организмах, стадиях их развития, сезонной динамике и распространении болезней позволяют применять меры по профилактике их распространения в другие районы обитания. Сведения о составе патогенных организмов необходимы для мониторинга возможного появления у крабов восточной части Охотского моря новых болезнетворных агентов в результате биоинвазий и/или иных причин. Результаты исследований могут быть использованы для уточнения и мониторинга уровня естественной смертности в популяциях промысловых крабов и аргументирования оценки пополнения и общего допустимого улова (ОДУ). Данные по влиянию промысловых операций на состояние здоровья крабов, возвращаемых в природную среду после сортировки, также могут быть использованы для корректировки ОДУ и уточнения правил рыболовства. Сведения об опасных и портящих товарное качество продукции патогенных агентах, обнаруженных в районах промысла крабов, позволят рекомендовать методы утилизации зараженных экземпляров, определить перечень обязательных для контроля патогенов крабов и разработать правила санитарно-ветеринарной экспертизы ракообразных при инфекционных и инвазионных болезнях. Кроме того, результаты исследований могут быть использованы в разработке научных обоснований для культивирования ракообразных на Камчатке, а также в лекционных курсах и на практических занятиях по патологии и паразитологии ракообразных.

Благодарности. Выражаю глубокую признательность за помощь и ценные советы при подготовке работы своему научному руководителю д.б.н., профессору В.И. Карпенко.

Приношу искреннюю благодарность бывшим и настоящим сотрудникам КамчатНИРО к.б.н. Т.В. Гаврюсевой, к.б.н. И.В. Кармановой, И.В. Шлапаковой, Е.В. Бочковой, Н.В. Сергеенко, к.б.н. C.JI. Рудаковой за помощь и конструктивную критику, а также Р.В. Дунаеву, З.Н. Овчинниковой, к.б.н. В.Н. Лысенко и членам экипажей НИС «Аметист» и «Профессор Кагановский» за содействие при сборе материала во время морских экспедиционных работ. Неоценимую помощь в определении принадлежности бактерий оказала н.с. КамчатНИРО Е.А. Устименко. Огромная благодарность сотруднику института биологии моря им. A.B. Жирмунского к.б.н М.Г. Елисейкиной за помощь в электронно-микроскопическом исследовании. Работа не состоялась бы без помощи и всесторонней поддержки сотрудника этого же института к.б.н. В.И. Харламенко.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на международной научной конференции «Фауна, биология, морфология и систематика паразитов» (Москва, 2006), международной конференции «Современное состояние популяций крабов Баренцева моря и их взаимодействие с донными организмами» (Мурманск, 2006), международной научно-практической конференции «Проблемы иммунологии, патологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов - 2» (Борок, 2007), 1 международной научной конференции «Биоразнообразие и экология паразитов наземных и водных ценозов» (Москва, 2008), международной российско-американской конференции "Здоровье водных организмов" (Шефердстоун, Западная Вирджиния, 2009), X Съезде Гидробиологического общества при РАН (Владивосток, 2009), VI международном симпозиуме «Здоровье водных животных: глобальная стратегия в изменяющейся окружающей среде» (Тампа, Флорида, 2010), международном симпозиуме «Паразиты Голарктики» (Петрозаводск, 2010), международной конференции «Современное состояние биоресурсов» (Новосибирск, 2010) и на отчетных сессиях КамчатНИРО в 2003-2010 гг. По теме диссертации опубликовано 16 работ и 2 находятся в печати.

Заключение диссертации по теме «Экология (по отраслям)», Рязанова, Татьяна Вячеславовна

ВЫВОДЫ

1. В восточной части Охотского моря у промысловых крабов четырех исследованных видов: камчатского Paralithodes camtschaticus, синего Р. platypus, крабов-стригунов опилио Chionoecetes opilio и Бэрда Ch. bairdi обнаружены инфекционные (бактерии 8 родов, вирусы) и инвазионные (микроспоридии 2 родов, паразитические динофлагелляты, амебы, ресничные инфузории, корнеголовый рак) патогенные агенты.

2. Специфические клинические и патологоанатомические признаки заболеваний выявлены у крабов при панцирной болезни, инвазии микроспоридиями родов Thelohania и Ameson, паразитическими динофлагеллятами Hematodinium sp., корнеголовым раком Briarosaccus callosus. Некроз внутренних органов, бактериальный сепсис, герпес-вирусная инфекция имеют лишь патологоанатомические визуальные признаки.

3. У ракообразных с сильной степенью панцирной болезни, бактериальным сепсисом, некрозом внутренних органов, зараженных вирусом, микроспоридиями, паразитическими динофлагеллятами, подвижными ресничными инфузориями, корнеголовым раком обнаружили тяжелые деструктивные изменения внутренних органов и тканей.

4. Установлено, что из инфекционных заболеваний наиболее опасными для крабов были некроз внутренних органов, который встречается у всех исследованных видов крабов и герпес-вирусная инфекция, зарегистрированная только у синего краба.

5. Из паразитарных агентов к наиболее опасным относятся микроспоридии родов Thelohania и Ameson, а также паразитические динофлагелляты Hematodinium sp. Заболевания встречаются чаще у молоди и самок крабов-литодид.

6. Среди крабов, возвращаемых в природную среду после сортировки улова, увеличивается доля особей с бактериальной микрофлорой в составе гемолимфы. Бактериями рода Vibrio обсеменяется гемолимфа от 3,1 до 35% ракообразных. Кроме того, у животных происходят повреждения внутренних органов, вызванные газовой эмболией. Смертность крабов непосредственно после подъема-спуска в ловушках составила от 2,9 и до 10%.

7. Уровень встречаемости инфекционных и инвазионных заболеваний у промысловых крабов на шельфе Западной Камчатки в период с 2002-2010 гг. был относительно невысок и в настоящее время эпизоотическую обстановку в этом районе можно считать благополучной.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Рязанова, Татьяна Вячеславовна, 2011 год

1. Адрианов A.B. Экологическая безопасность Дальневосточных морей России // X Съезд Гидробиологического общества при РАН. Тез. докладов. Владивосток: Дальнаука. 2009. С. 4.

2. Арзамасцев И.С., Яковлев Ю.М., Евсеев Г.А., Гульбин В.В., Клочкова Н.Г., Селин Н.И., Ростов И.Д., Юрасов Г.И., Жук А.П., Буяновский А.И. Атлас промысловых беспозвоночных и водорослей морей Дальнего Востока России. Владивосток: Аванте. 2001.192 с.

3. Бакланов П.Я., Касьянов В.Л., Качур А.Н. Основные экологические проблемы Дальнего Востока России и направления их решения // Вестник ДВО РАН. 2003. № 5. С. 109-118.

4. Бауэр О.Н. Паразитизм и вопросы биоразнообразия / Теоретические и прикладные проблемы паразитологии / Тр. института паразитологии. М.: Наука. 2002. Т. ХЫП. С. 25-36.

5. Быховская-Павловская И.Е. Паразиты рыб. Руководство по изучению. Л.: Наука. 1985. 121 с.

6. Виноградов Л.Г. Камчатский краб. Владивосток: ТИНРО. 1941. 94 с.

7. Винокурова Т.Т. Межгодовая изменчивость придонной температуры узападного побережья Камчатки // Исслед. по биол. рыб и промысловой океанографии. Владивосток: ТИНРО. 1972. Вып. 7. С. 3-11.

8. Власов В.В. Эпидемиология: Учеб. пос. для вузов. М.: ГЕОТАР-МЕД. 2004. 464 с.

9. Воронин В.Н. Новые данные по микроспоридиозу речного рака Astacus astacus (L., 1758) //Паразитология. 1971. Т. 5. № 2. С. 186-191.

10. Воронин В.Н. Микроспоридии ракообразных / Протозоология. Л.: Наука. 1986. Вып. 10. С. 137-166.

11. Вялова Г.П. Некроз панцирных покровов крабов у побережья восточного Сахалина // Рыбохоз. исслед. в сахалино-курильском районе и сопредельных акваториях. 1999. Т. 2. С. 126-131.

12. Гаевская A.B. Паразитологические аспекты интродукции чужеродных организмов в морские экосистемы // Морський еколопчний журнал. 2004. Т. 3. № 1. С. 18-22.

13. Долженков В.Н., Кобликов В.Н. Современное состояние промысловых ресурсов основных видов крабов Охотского моря и перспективы их промышленного изъятия // X Съезд Гидробиологического общества при РАН. Тез. докладов. Владивосток: Дальнаука. 2009. С. 125.

14. Дгебуадзе Ю.Ю. Проблемы инвазий чужеродных организмов // Экол. безопасность и инвазии чужеродных организмов. М.: МСОП. 2002. С. 11-21.

15. Дудников С.А. Количественная эпизоотология: основы прикладной эпидемиологии и биостатистики. Владимир: Демиург. 2005. 460 с.

16. Звягинцев А.Ю. Организация мониторинга балластных вод и морскихбиоинвазий в дальневосточных морях России // Вестник ДВО РАН. 2009. № 3 (145). С. 32-39.

17. Звягинцев А.Ю., Шин В.В., Кашин И.А. Население балластных вод в порту Владивосток // Биология моря. 2009. Т. 35. № 1. С. 29-40.

18. Иванов A.B., Стрелков A.A. Промысловые беспозвоночные дальневосточных морей. Описание строения и атлас анатомии. Владивосток: Приморское краевое издательство. 1949.103 с.

19. Иванов Б.Г., Карпинский М.Г. Смертность крабов в ловушках: краб-стригун в северной части Охотского моря // Вопросы рыболовства. 2003. Т. 4. №4(16). С. 590-607.

20. Иванов Б.Г., Соколов В.И. Смертность крабов в ловушках: камчатский краб у Западной Камчатки // Вопросы рыболовства. 2004. Т. 4. № 1(13). С. 116-134.

21. Исаева В.В., Долганов С.М., Шукалюк А.И. Корнеголовые ракообразные — паразиты промысловых крабов и других десятиногих // Биология моря. 2005. Т. 31. № 4. С. 256-261.

22. Исси И.В. Микроспоридии / Протозоология. Л.: Наука. Вып. 10. 1986; С. 3— 121.

23. Карасев А.Н., Карпинский М.Г. Функциональная структура ареала краба стригуна в северной части Охотского моря // X Съезд Гидробиологического общества при РАН. Тез. докладов. Владивосток: Дальнаука. 2009. С. 179-180.

24. Кобликов В.Н. О смертности японского краба-стригуна (Chionoecetes japonicus) в промысловых ловушках и некоторые аспекты его добычи в северной части Японского моря // Вопросы рыболовства. 2004. Т. 5. № 3 (19). С. 458-469.

25. Коновалова Г.В. Паразитические перидинеи (Dinoflagellates) и эллобиопсиды (Ellobiopsidae) прибрежных вод Японского моря // Биология моря. 2007. Т. 33. № 3. С. 167-175.

26. Корн О.М., Ахмадиева A.B., Рыбаков A.B., Шукалюк А.И. Уровень зараженности краба Hemigrapsus sanguineus корнеголовым ракообразным Sacculina polygenea (Crustacea: Cirripedia) в заливе Восток Японского моря // Биология моря. 2005. Т. 31. № 3. С. 180-184.

27. Левин B.C. Камчатский краб Parälithodes camtschaticus. Биология, промысел, воспроизводство. СПб: Ижица. 2001. 198 с.

28. Лысенко В.Н. Особенности линьки камчатского краба на западнокамчатском шельфе в конце 90-х годов / Исслед. биологии промысловых ракообразных морей России. М.: Изд-во ВНИРО. 2000. С. 111-119.

29. Лысенко В.Н. Особенности биологии самок синего краба Paralithodes platypus в северо-восточной части Охотского моря // Известия ТИНРО. 2001. Т. 128. С. 523-532.

30. Лысенко В.Н. Камчатский краб / Состояние биологических ресурсов СевероЗападной Пацифики. Петропавловск-Камчатский: КамчатНИРО. 2003а. С. 95-97.

31. Лысенко В.Н. Синий краб / Состояние биологических ресурсов СевероЗападной Пацифики. Петропавловск-Камчатский: КамчатНИРО. 20036. С. 98-101.

32. Меркулов Г. П. Курс патогистологической техники. Медгиз. 1959.117 с.

33. Методические рекомендации по определению видового состава крабов и возможности их возвращения в среду обитания в прикамчатских водах. Петропавловск-Камчатский: Изд-во КамчатНИРО. 2009. 31 с.

34. Методы санитарно-паразитологической экспертизы рыбы, моллюсков, ракообразных, земноводных, пресмыкающихся и продуктов их переработки: МУК 3.2.988-00. М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России. 2001. 69 с.

35. Миронов А.А., Комиссарчик Я.Ю., Миронов В.А. Методы электронной микроскопии в биологии и медицине. СПб., М.: Наука. 1994. 400 с.

36. Надточий В.А., Чучукало В.И., Кобликов В.Н. Характеристика питания камчатского (Paralithodes camtschatica) и равношипого (Lithodes aequspina) крабов на юге западнокамчатского шельфа в летний период // Известия ТИНРО. 1998. Т. 124, ч.2. С. 651-657.

37. Надточий В.А., Чучукало В.И., Кобликов В.Н. Предварительные данные о питании краба-стригуна Бэрда (Chionoecetes bairdi) в Олюторском заливе Берингова моря // Известия ТИНРО. 2002. Т. 130. С. 542-544.

38. О разграничении Мирового океана на промысловые районы в новых условиях ведения промысла / Приказ МРХ СССР № 468. М.: 1980.

39. Павлов В.Я. Жизнеописание краба камчатского Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1885). М.: ВНИРО. 2003.110 с.

40. Павлов В.Я., Тальберг Н.Б. Оценка физиологических изменений в популяциях промысловых крабов под воздействием промысла // Прибрежные гидробиологические исследования: Труды ВНИРО. М.: ВНИРО. 2005. Т. 144. С. 78-90.

41. Пальцев М.А., Аничков Н.М. Патологическая анатомия. М.: Медицина. 2001. Т. 1. 731 с.

42. Пирс Э. Гистохимия. М.: Иностранная литература. 1962. 962 с.

43. Полтев Ю.Н. Паразитирование корнеголового рака Briarosaccus callosus (Rhizocephala) на крабе Paralomis verrilli (Crustacea: Lithodidae) в водахюго-восточного Сахалина // Биология моря. 2008. Т. 34. № 3. С. 190— 195.

44. Ревич Б.А., Авалиани С.Л., Тихонова Г.И. Экологическая эпидемиология: Учебник для высших учебных заведений. М: Академия. 2004. 384 с.

45. Родин В.Е. Пространственная и функциональная структура популяций камчатского краба // Известия ТИНРО. 1985. Т. 110. С. 86-97.

46. Руководство по изучению десятиногих ракообразных Decapoda дальневосточных морей / Сост.: Родин В.Е., Слизкин А.Г., Мясоедов В.И., Барсуков В.Н., Мирошников В.В., Згуровский К.А., Канарская O.A., Федосеев В.Я. // Владивосток: Изд-во ТИНРО. 1979. 58 с.

47. Рыбаков A.B., Буторина Т.Е., Кулепанов В.Н., Зверева Л.В. Болезни и паразиты культивируемых и промысловых беспозвоночных и водорослей. Владивосток: Дальрыбвтуз. 2005.123 с.

48. Рязанова Т.В. Гистопатологические изменения при панцирной болезни у камчатского краба Paralithodes camtschaticus И Биология моря. 2005. Т. 31. №6. С. 421-428.

49. Рязанова Т.В. Патологические изменения, вызванные микроспоридиями, у камчатского краба Paralithodes camtschaticus (Охотское море) // Сб. матер, междунар. конф. «Современное состояние популяций крабов

50. Баренцева моря и их взаимодействие с донными организмами». Мурманск: ММБИ КНЦ РАН. 2006. С. 91-94 Рязанова Т.В. Синдром «горького краба» у двух видов крабов-литодид в

51. Слизкин А.Г., Сафронов С.Г. Промысловые крабы прикамчатских вод.

52. Стексова В.В. Морфофизиологическое состояние краба-стригуна опилио (Chionoecetes opilio: Brachyura: Majidae) в водах Сахалина в связи с воздействием на него некоторых организмов эпибиоза. Автореф. дис. канд. биол. наук. М.: МГТА. 2004. 18 с.

53. Столяренко Д.А., Иванов Б.Г. Метод сплайн-аппроксимации плотности для оценки запасов по результатам траловых донных съемок на примере креветок Pandalus borealis у Шпицбергена // Морские промысловые беспозвоночные. М.: ВНИРО. Т. 1988. С. 45-70.

54. Тарвердиева М.И. Питание камчатского краба Paralithodes camtschatica, крабов-стригунов Chionoecetes opilio и Ch. bairdi в юго-восточной части Берингова моря // Биология моря. 1976. № 1. С. 41-48.

55. Федотов П.А. Краб стригун Бэрда / Состояние биологических ресурсов Северо-Западной Пацифики. Петропавловск-Камчатский:

56. КамчатНИРО. 2003. С. 102-107.

57. Харламенко В.И. Краб стригун опилио / Состояние биологических ресурсов Северо-Западной Пацифики. Петропавловск-Камчатский:

58. КамчатНИРО. 2003. С. 108-109.

59. Чернявский В.И. Циркуляционные системы Охотского моря // Известия ТИНРО. 1981. Т. 105. С. 13-19.

60. Широков Э.И., Широкова Е.Э., Дьяков М.Ю. Экономическая оценка природного потенциала шельфа Западной Камчатки. Петропавловск-Камчатский: Камчатпресс. 2006. 54 с.

61. Шунтов В.П. Биология дальневосточных морей. Владивосток: ТИНРО-центр.2001. Т. 1.580 с.

62. Шунтов В.П. Состояние биоты и биоресурсов морских макроэкосистем дальневосточной экономической зоны России // Вестник ДВО РАН. 2009. Т. № 3 (145). С. 15-22. Шунтов В.П., Дулепова Е.П. Экосистемы Берингова и Охотского морей //

63. Austin B., Austin D.A. Methods for the microbiological examination of fish and shellfish / Edinburgh: Depart. Biol. Sci. Heriot. Watt Univ. 1989. P. 69-97.

64. Bancroft D., Stevens A., Turner D.R. Theory and practice of histological techniques. Edinburgh-London-Melbourne-New York: Churchill Livingstone Inc. 1990. 725 p.

65. Bell T.A., Lightner D.V. A handbook of normal penaeid shrimp histology. Baton Rouge. Louisiana: The World aquaculture society. 1988.114 p.

66. Benhalima K., Moriyasu M. Structure and function of the posterior vas deferens of the snow crab, Chionoecetes opilio (Brachyura: Majidae) // Invertebrate Reproduction & Development. 2000. V. 37. № 1. P. 11-23.

67. Benhalima K., Moriyasu M., Wade E., Hebert M. Exoskeletal lesions in the male snow crab Chionoecetes opilio (Brachyura: Majidae) in the southern Gulf of St. Lawrence 11 Can. J. Zool. 1998. V. 76. № 4. P. 601-608.

68. Bishop R.K., Cannon L.R.G. Morbid behavior of the commercial sand crab, Portunus pelagicus (L.), parasitized by Sacculina gramfera Boschma, 1973 (Cirripedia: Rhizocephala) // J. Fish Dis. 1979. V. 2. № 2. P. 131-144.

69. Blue book. Suggested procedures for the detection and identification of certain finfish and shellfish pathogens. Fish Health Section. Bethesda, MD: Amer. Fish. Soc. 1994.294 p.

70. Bower S.M., McGladdery S.E., Price I.M. Synopsis of infectious diseases and parasites of commercially exploited shellfish. Ann. Review of Fish Dis. Pergamon. 1994. V. 4.199 p.

71. Bower S.M., Meyer G.R., Phillips A., Workman G., Clark D. New host and range extension of bitter crab syndrome in Chionoecetes spp. caused by Hematodinium sp. // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol.2003. V. 23. № 2. P. 86-91.

72. Brock J.A., Lightner D.V. Diseases of Crustacea. 3.1 Diseases Caused by Microorganisms / Diseases of marine animals. V. 3. Hamburg: Biologische Anstalt Helgoland. 1990. P. 245-349.

73. Cachon J., Cachon M. Parasitic dinoflagellates / The biology of dinoflagellates. Oxford: Blackwell monographs. 1987. V. 21. P. 571-610.

74. Cain T.A., Morado J.F. Changes in total hemocyte and differential counts in dungeness crabs infected with Mesanophrys pugettensis, a marine facultative parasitic ciliate I I J. Aquat. Anim. Health. 2001. V. 13. № 4. P. 310-319.

75. Carlton J.T., Geller J.B. Ecological roulette — the global transport of nonindigenous marine organisms // Science. 1993. V. 261. № 5117. P. 7882.

76. Chang L.Y.E., Pate J.L., Betzig R.J. Isolation and characterization of nonspreading mutants of the gliding bacterium Cytophaga johnsonae II J. Bacterid. 1984. V. 159. № 1. P. 26-35.

77. Childers R.K., Reno P.W., Olson R.E. Prevalence and geographic range of

78. Nadelspora canceri (Microspore) in Dungeness crab Cancer magister II Dis. Aquat. Org. 1996. V. 24. № 2. P. 135-142.

79. Chualain C.N., Hayes M., Allen B., Robinson M. Hematodinium sp. in Irish Cancer pagurus fisheries: infection intensity as a potential fisheries management tool //Dis. Aquat. Org. 2009. V. 83. № 1. P. 59-66.

80. Coats D.W. Parasitic life styles of marine dinoflagellates // J. Eukaryotic Microbiol. 1999. V. 46. № 4. P. 402-409.

81. Corbel V., Coste F., Bonami J.R. CpSBV, a systemic virus of the edible crab, Cancer pagurus (L.) // J. Fish Dis. 2003. V. 26. № 2. P. 121-126.

82. Couch J.A., Fournie J.W. Diseases caused by protozoa / The Biology of Crustacean. N.Y: Academic Press. 1983. Vol. 6. P. 79-111.

83. Culling C.F.A., Allison R.T., Barr W.T. Cellular pathology technique. London: Butterworth-Heinemann. 1985. P. 3-163.

84. Diggles B.K. A mycosis of juvenile spiny rock lobster, Jasus edwardsii (Hutton, 1875) caused by Haliphthoros sp., and possible methods of chemical control II J. Fish Dis. 2001. V. 24. № 2. P. 99-110.

85. Edgerton B.F., Evans L.H., Stephens F.J., Overstreet R.M. Synopsis of freshwater crayfish diseases and commensal organisms // Aquaculture. 2002. V. 206. №1.2. P. 57-135.

86. Esteve M., Herrera F.C. Hepatopancreatic alterations in Litopenaeus vannamei (Boone, 1939) (Crustacea: Decapoda: Penaeidae) experimentally infected with a Vibrio alginolyticus strain // J. Invertebrate Pathol. 2000. V. 76. № 1. P. 1-5.

87. Field R.H., Appleton P.L.A Hematodinium-like dinoflagellate infection of the norway lobster Nephrops norvegicus — observations on pathology and progression of infection // Dis. Aquat. Org. 1995. V. 22. № 2. P. 115-128.

88. Field R.H., Chapman C .J., Taylor A.C., Neil D.M., Vickerman K. Infection of the Norway lobster Nephrops norvegicus by a Hematodinium-like species of dinoflagellate on the west coast of Scotland // Dis. Aquat. Org. 1992. V. 13. Jfel.P. 1-15.

89. Hawkes C.R., Meyers T.R., Shirley T.C. Parasitism of the blue king crab, Paralithodes platypus, by the rhizocephalan, Briarosaccus callosus II J. Invertebrate Pathol. 1985. V. 45. № 2. P. 252-253.

90. Hawkes C.R., Meyers T.R., Shirley T.C., Koeneman T.M. Prevalence of theparasitic barnacle Briarosaccus callosus on king crabs of southeastern Alaska // Transactions of the American Fisheries Society. 1986. V. 115. № 2. P. 252-257.

91. Hill B. National and international impacts of white spot disease of shrimp // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 2002. V. 22. № 2. P. 58-65.

92. Holman J.D., Burnett K.G., Burnett L.E. Effects of hypercapnic hypoxia on the clearance of Vibrio campbelli in the Atlantic blue crab, Callinectes sapidus Rathbun // Biol. Bull. 2004. V. 206. № 3. P. 188-196.

93. Holt J.G., Krieg N.R., Sneath P.H.A., Staley J.T., Bergey's T.W.S. Manual of determinative bacteriology, 9th ed. Baltimore: Williams & Wilkins. 1994. 787 p.

94. Hose J.E., Lightner D.V., Redman R.M., Danald D.A. Observations on the pathogenesis of the imperfect fungus, Fusarium solani, in the California brown shrimp, Penaeus californiensis H J. Invertebrate Pathol. 1984. V. 44. № 3. P. 292-303.

95. Hoskin G.P. Fungus invasion of legs of the tanner crab, Chionoecetes bairdi H Applied and Environmental Microbiology. 1983. V. 46. № 2. P. 499-500.

96. Hudson D.A., Hudson N.B., Shields J.D. Infection of Trapezia spp. (Decapoda, Xanthidae) by Hematodinium sp. (Duboscquodinida: Syndinidae) — a new family record of infection I I J. Fish Dis. 1993. V. 16. № 3. P. 273-276.

97. Hudson D.A., Shields J.D. Hematodinium australis n. sp, a parasitic dinoflagellate of the sand crab Portunus pelagicus from Moreton bay, Australia // Dis. Aquat. Org. 1994. V. 19. № 2. P. 109-119.

98. Johnson P.T. Paramoebiasis in the Blue Crab, Callinectes sapidus II J. Invertebrate

99. Pathol. 1977. V. 29. № 3. P. 308-320. Johnson P.T. Viral diseases of the blue crab Callinectes sapidus II Marine Fish. Rev. 1978. V. 40. № 10. P. 13-15.

100. Johnson P.T. Histology of the blue crab, Callinectes sapidus: a model for the Decapoda. New York: Praeger Publishers. 1980.440 p.

101. Johnson P.T. Viral diseases of marine invertebrates // Helgolander Meeresuntersuchungen. 1984a. V. 37. № 1-4. P. 65-98.

102. Johnson P.T. A rickettsia of the blue king crab, Paralithodes platypus H J. Invertebrate Pathol. 19846. V. 44. № 1. P. 112-113.

103. Johnson P.T. Diseases caused by viruses, bacteria, rickettsia, and fungi / The Biology of Crustacea. V. 6. New York: Academic Press. 1983. P. 1-78. f Johnson P.T. Blue crab diseases: Paramoebiasis / Disease diagnosis and control in

104. North American marine aquaculture. Amsterdam — Oxford — New York — : Tokyo: Elsevier. 1988a. P. 204-207.

105. Johnson P.T. Blue crab diseases: Picorna-like virus disease / Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture. Amsterdam — Oxford New York-Tokyo: Elsevier. 19886. P. 189-190.

106. Johnson P.T. Blue crab diseases: Reo-like and rhabdo-like virus disease / Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture. Amsterdam -Oxford-New York-Tokyo: Elsevier. 1988b. P. 186-187.

107. Johnson P.T. Blue crab diseases: Herpes-like virus disease / Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture. Amsterdam Oxford - New * York - Tokyo: Elsevier. 1988r. P. 183-185.

108. Johnson P.T. Blue crab diseases: Bacterial disease / Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture. Amsterdam — Oxford New York -Tokyo: Elsevier. 1988«. P. 191-193.

109. Johnson P.T., Lightner D.V. Rod-shaped nuclear viruses of crustaceans — gut-infecting species // Dis. Aquat. Org. 1988. V. 5. № 2. P. 123-141.

110. Johnson S.K. Handbook of shrimp diseases. Department of wildlife and fisheries sciences. Texas A&M University. 1995. 27 p.

111. Jones J.B., Hyatt A.D., Hine P.M., Whittington R.J., Griffin D.A., Bax N.J. Special topic review: Australasian pilchard mortalities // World J. Microbiol, and

112. Biotechnol. 1997. V. 13. № 4. P. 383-392.

113. Keeling P.J., Fast N.M. Microsporidia: Biology and evolution of highly reduced intracellular parasites // Ann. Rev.of Microbiol. 2002. V. 56. P. 93-116.

114. Keeling P.J., McFadden G.I. Origins of microsporidia // Trends in Microbiology. 1998. V. 6. № 1. P. 19-23.

115. Khoa L.V., Hatai K., Aoki T. Fusarium incarnatum isolated from black tiger shrimp, Penaeus monodon Fabricius, with black gill disease cultured in Vietnam // J. Fish Dis. 2004. V. 27. № 9. p. 507-515.

116. Kinne O. Diseases of Marine Animals:. General Aspects / Diseases of marine animals. Chichester-New York-Brisbane-Toronto: John Wiley & Sons. 1980. V. l.P. 13-73.

117. Krol R.M., Hawkins W.E., Overstreet R.M. Rickettsial and mollicute infections in hepatopancreatic cells of cultured pacific white shrimp {Penaeus vannamei) // J. Invertebrate Pathol. 1991. V. 57. № 3. P. 362-370.

118. Mari J., Bonami J:R. PC 84, a parvo-like virus from the crab, Carcirrus mediterraneus: pathological aspects, ultrastructure of the agent, and first biochemical characterization // J. Invertebrate Pathol. 1988. Vol. 51. P. 145156.

119. Martin G.G., Poole D., Poole C., Hose J.E., Arias M., Reynolds L., McKrell N., Whang A. Clearance of bacteria injected into the hemolymph of the penaeid shrimp, Sicyonia ingentis II J. Invertebrate Pathol. 1993. V. 62. № 3. P. 308315.

120. Marty G. D., Quinn T. J., Carpenter G., Meyers T. R., Willits N. H. Role of disease in abundance of a Pacific herring (Clupea pallasi) population // Can. J. Fish. Aquat. Scien. 2003. V. 60. № 10. P. 1258-1265.

121. McCallum, H., Harvell, D., Dobson A. Rates of spread of marine pathogens //

122. Memorandum NMFS-F/NEC-88.1992. 24 p.

123. Meyers T.R. Diseases of Crustacea. 3.2 Diseases Caused by Protistans and Metazoans / Diseases of marine animals. Hamburg: Biologische Anstalt Helgoland. 1990. V. 3. P. 350-389.

124. Meyers T.R., Botelho C., Koeneman T.M., Short S., Imamura K. Distribution of bitter crab dinoflagellate syndrome in southeast Alaskan tanner crabs Chionoecetes bairdi II Dis. Aquat. Org. 1990. V. 9. № 1. P. 37-43.

125. Meyers T.R., Koeneman T.M., Botelho C., Short S. Bitter crab disease — a fatal dinoflagellate infection and marketing problem for Alaskan tanner crabs Chionoecetes bairdi // Dis. Aquat. Org. 1987. V. 3. № 3. P. 195-216.

126. Meyers T.R., Lightner D.V., Redman R.M. A dinoflagellate-like parasite in alaskan spot shrimp Pandalus platyceros and pink shrimp P. borealis // Dis. Aquat. Org. 1994. V. 18. № 1. P. 71-76.

127. Microscopic anatomy of invertebrates. Crustacea. New York: Willey-Liss Inc. 1992. V. 10. 459 p.

128. Moodie E.G., Le Jambre L.F., Katz M.E. Thelohania parastaci sp. nov (Microspora: Thelohaniidae), a parasite of the Australian freshwater crayfish, Cherax destructor (Decapoda: Parastacidae) // Parasitol. Res. 2003a. V. 91. № 2. P. 151-165.

129. Morado J.F., Giesecke R.H., Syqala S.E. Molt related mortalities of the Dungenesscrab Cancer magister caused by a marine facultative ciliate Mesanophrys pugettensis // Dis. Aquat. Org. 1999. V. 38. № 2. P. 143-150.

130. Morado J.F., Small E.B. Cilliate parasites and related diseases of crustacea: a review // Rev. in Fish. Scien. 1995. V. 3. № 4. P. 275-354.

131. Mouritsen K.N., Jensen T. The effect of Sacculina carcini infections on the fouling, burying behaviour and condition of the shore crab, Carcinus maenas // Marine Biol. Res. 2006. V. 2. № 4. P. 270-275.

132. Munn C.B. Viruses as pathogens of marine organisms — from bacteria to whales // J. Marine Biol. Ass. Unit. King. 2006. V. 86. № 3. P. 453-467.

133. Musgrove R.J., Geddes M.C., Thomas C. Causes of tail fan necrosis in the southern rock lobster, Jasus edwardsii // New Zealand J. Marine and Freshwater Res. 2005. V. 39. № 2. P. 293-304.

134. Newman M.C., Feng S.Y. Susceptibility and resistance of the rock crab, Cancer irroratus, to natural and experimental bacterial infection // J. Invertebrate Pathol. 1982. V. 40. № 1. P. 75-88.

135. Nha V.V., Hoa D.T., Khoa L.V. Black gill disease of cage-cultured ornate rock lobster Panulirus ornatus in central Vietnam caused by Fusarium species // Aquat. animal health. 2009. V. 15. № 4. P. 35-37.

136. Noga E.J. Fish Disease: diagnosis and treatment. St. Louis: Mosby Year Book, Inc 1996.367 p.

137. Noga E.J., Engel D.P., Arroll T.W., McKenna S., Davidian M. Low serum antibacterial activity coincides with increased prevalence of shell disease in blue crabs Callinectes sapidus II Dis. Aquat. Org. 1994. V. 19. № 2. P. 121128.

138. Noga E.J., Smolowitz R., Khoo L.H. Pathology of shell disease in the blue crab, Callinectes sapidus Rathbun, (Decapoda: Portunidae) // J. Fish Dis. 2000. V. 23. № 6. P. 389-399.

139. Olson R.E., Lannan C.N. Prevalence of microsporidian infection in commercially caught pink shrimp, Pandalus jordani II J. Invertebrate Pathol. 1984. V. 43.1. P. 407-413.

140. Overstreet R.M. Blue crab diseases. Microsporosis / Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture. Amsterdam — Oxford — New York — Tokyo: Elsevier. 1988. P. 200-203.

141. Pappalardo R., Mari J., Bonami J.R. (Tau) virus infection of Carcinus mediterraneus: histology, cytopathology, and experimental transmission of the disease // J. Invertebrate Pathol. 1986. V. 47. P. 361-368.

142. Pathobiology of marine and estuarine organisms. Roca Raton: CRC Press. Inc. 1993. P. 319-342.

143. Patterson L., Dick J.T.A., Elwood R.W. Physiological stress responses in the edible crab Cancer pagurus, to the fishery practice of de-clawing // Marine Biol. 2007. V. 152. P. 265-272.

144. Robaldo R.B., Monserrat J., Cousin J.C.B., Bianchini A. Effects of metacercariae (Digenea: Microphallidae) on the hepatopancreas of Chasmagnathns granulata (Decapoda: Grapsidae) // Dis. Aquat. Org. 1999. V. 37. № 2. P. 153-157.

145. Robles R., Alvarez F., Alcaraz G. Oxygen consumption of the crab Callinectes rathbunae parasitized by the rhizocephalan barnacle Loxothylacus texanus as a function of salinity // Marine Ecol. Progress Ser. 2002. V. 235. P. 189194.

146. Russell J.D., Walker G., Woollen R. Observations on two infectious agents foundwithin the rootlets of the parasitic barnacle, Sacculina carcini // J. Marine Biol. Ass. Unit. King. 2000. V. 80. № 2. P. 373-374.

147. Saville D.H., Irwin S.W.B. A study of the mechanisms by which the cercariae of Microphallus primas (Jag, 1909) Stunkard, 1957 penetrate the shore crab, Carcinus maenas (L) //J. Parasitol. 2005. V. 131. № 4. P. 521-529.

148. Selvin J.L., Lipton A.P. Vibrio alginolyticus associated with white spot disease of Penaeus monodon // Dis. Aquat. Org. 2003. V. 57. P. 147-150.

149. Shareef M., Siddeek M., Zheng J., Morado J.F., Kruse G.H., Bechtol W.R. Effect of bitter crab disease on rebuilding in Alaska tanner crab stock // ICES J. Marine Science. 2010. V. 67. P. 1-6.

150. Shields J.D. Parasites and symbionts of the crab Portunus pelagicus from Moreton Bay, eastern Australia // J. Crustacean Biol. 1992. V. 12. № l. p. 94-100.

151. Shields J.D. The infestation and dispersion of Carcinonemertes spp. (Nemertea) on their crab hosts // J. Hydrobiol. 1993. V. 266. P. 45-56.

152. Shields J.D. The parasitic dinoflagellates of marine crustaceans // Ann. Rev. Fish Dis. 1994. V. 4. P. 241-271.

153. Shields J.D. Research priorities for diseases of the blue crab Callinectes sapidus H Bull, of Marine Science. 2003. V. 72. № 2. P. 505-517.

154. Shields J.D., Behringer D.C. A new pathogenic virus in the Caribbean spiny lobster Panulirus argus from the Florida Keys // Dis. Aquat. Org. 2004. V. 59. №2. P. 109-118.

155. Shields J.D., Squyars C.M. Mortality and hematology of blue crabs, Callinectes sapidus, experimentally infected with the parasitic dinoflagellate Hematodiniumperezi // Fish. Bull. 2000. V. 98. № 1. P. 139-152.

156. Shields J.D., Taylor D.M., Sutton S.G., O'Keefe P.G., Ings D.W., Pardy A.L. Epidemiology of bitter crab disease {Hematodinium sp.) in snow crabs Chionoecetes opilio from Newfoundland, Canada // Dis. Aquat. Org. 2005. V. 64. №3. P. 253-264.

157. Shields J.D., Wood F.E.I. Impact of Parasites on the Reproduction and Fecundity of the Blue Sand Crab Portunus pelagicus from Moreton Bay, Australia // Marine Ecol. Progr. Ser. 1993. V. 92. № 1-2. P. 159-170.

158. Sinderman C.J. Principal diseases of marine fish and shellfish. New York: Academic Press. 1990. 516 p.

159. Sinderman C.J. Blue crab diseases: Fungus {Lagenidium) disease / Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture. Amsterdam — Oxford-New York-Tokyo: Elsevier. 1988a. P. 197-199.

160. Sinderman C.J. Lobsters diseases. Gaffkaemia / Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture. Amsterdam Oxford - New York —

161. Tokyo: Elsevier. 19886. P. 232-235.

162. Sinderman C.J. Blue crab diseases. Ciliate (Ladenophrys) disease / Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture. Amsterdam — Oxford New York - Tokyo: Elsevier. 1988b. P. 208-209.

163. Small H.J., Neil D.M., Taylor A.C., Bateman K., Coombs G.H. A parasitic scuticociliate infection in the Norway lobster (Nephrops norvégiens) // J. Invertebrate Pathol. 2005. V. 90. № 2. P. 108-117.

164. Smith A.C., Taylor R.L. Digestive gland and integument lesions associated with malnutrition in ghost shrimp, Callianassa affinis II J. Invertebrate Pathol. 1968. V. 12. № 1. P. 1-6.

165. Smolowitz R.M., Bullis R.A., Abt D.A. Pathologic cuticular changes of winter impoundment shell disease preceding and during intermolt in the american lobster Homariis americanus II Biol. Bull. 183.1992. P. 99-112.

166. Sparks A.K. The red king crab (Paralithodes camtschatica) as a host for juvenile acanthocephalans //J. Invertebrate Pathol. 1987. V. 50. № 2. P. 166-168.

167. Sparks A.K., Hibbits J., Fegley J.C. Observations on the histopathology of a systemic ciliate (Paranophrys sp.?) disease in the Dungeness crab, Cancer magister // J. Invertebrate Pathol. 1982. V. 39. № 2. P. 219-228.

168. Paralithodesplatypus II Dis. Aquat. Org. 1986a. V. 1. № 2. P. 115-122. Sparks A.K., Morado J.F. Histopathology and host response in lithodid crabs parasitized by Briarosaccus callosus I I Dis. Aquat. Org. 19866. V. 2. № 1. P. 31-38.

169. Hematodinium species and Hematodinium-\\ks infections in marine crustaceans //Dis. Aquat. Org. 2005. V. 66. № 1. P. 47-70.

170. Stentiford G.D. Diseases of the European edible crab {Cancer pagurus): a review I I ICES J. of Marine Scien. 2008. V. 65. P. 1-15.

171. Stewart J.E. Introductions as factors in diseases of fish and aquatic invertebrates // Can. J. Fish. Aquat. Scien. Suppl. 1.1991. V. 48. P. 110-117.

172. Stewart J.E. Infectious diseases of marine crustaceans / Pathobiology of marine and estuarine organisms. Boca Raton: CRC Press. 1993. P. 319-342.

173. Takahashi T., Matsuura S. Laboratory studies on molting and growth of the shore crab, Hemigrapsus sanguineus de Haan, parasitized by a rhizocephalan barnacle II Biol. Bull. 1994. V. 186. № 3. P. 300-308.

174. Taylor D.M., Okeefe P.G., Fitzpatrick C. A snow crab, Chionoecetes opilio (Decapoda: Majidae), fishery collapse in Newfoundland // Fish. Bull. 1994. V. 92. № 2. P. 412-419.

175. Torchin M.E., Lafferty K.D., Kuris A.M. Infestation of an introduced host, the European green crab, Carcinus maenas, by a symbiotic nemertean egg predator, Carcinonemertes epialti // J. Parasitol. 1996. V. 82. № 3. P. 449453.

176. Vivares C.P., Azevedo C. Ultrastructural observations of the life cycle stages of Ameson atlanticum sp. nov., a microsporidan parasitizing Cancer pagurus L // J. Fish Dis. 1988. V. 11. № 5. P. 379-387.

177. Vogan C.L., Costa-Ramos C., Rowley A.F. A histological study of shell disease syndrome in the edible crab Cancer pagurus H Dis. Aquat. Org. 2001. V. 47. № 3. P. 209-217.

178. Vogan C.L., Costa-Ramos C., Rowley A.F. Shell disease syndrome in the edible crab Cancer pagurus — isolation, characterization and pathogenicity of chitinolytic bacteria // Microbiol. 2002. V. 148. № 3. P. 743-754.

179. Vogan C.L., Llewellyn P.J., Rowley A.F. Epidemiology and dynamics of shell disease in the edible crab Cancer pagurus: a preliminary study of Langland

180. Bay, Swansea, UK//Dis. Aquat. Org. 1999. V. 35. № 2. P. 81-87.

181. Vogan C.L., Powell A., Rowley A.F. Shell disease in crustaceans — just chitin recycling gone wrong? // Environ. Microbiol. 2008. V. 10. № 4. P. 826-835.

182. Vogan C.L., Rowley A.F. Dynamics of shell disease in the edible crab Cancer pagurus: a comparative study between two sites on the Gower Peninsula, South Wales, UK // Dis. Aquat. Org. 2002. V. 52. № 2. P. 151-157.

183. Vogan C.L., Rowley A.F. Effects of shell disease syndrome on the haemocytes and humoral defences of the edible crab, Cancer pagurus II Aquaculture. 2002. V. 205. № 3-4. P. 237-252.

184. Wang W., Gu Z.F. Rickettsia-like organism associated with tremor disease and mortality of the Chinese mitten crab Eriocheir sinensis II Dis. Aquat. Org. 2002. V. 48. № 2. P. 149-153.

185. Welsh P.C., Sizemore R.K. Incidence of bacteremia in stressed and unstressed populations of the blue crab, Callinectes sapidus II Appl. Envir. Microbiol. 1985. V. 50. № 2. P. 420-425.

186. Weng H.T. The parasitic barnacle, Sacculina granifera Boschma, affecting the commercial sand crab, Portunus-pelagicus (L), in populations from 2 different environments in Queensland // J. Fish Dis. 1987. V. 10. № 3. P. 221-227.

187. Weng S.P., Guo Z.X., Sun J.J., Chan S.M., He J.G. A reovirus disease in cultured mud crab, Scylla serrata, in southern China // J. Fish Dis. 2007. V. 30. № 3. P. 133-139.

188. Wickham D.E. Dungeness crab diseases. Nemertean worm predation / Disease diagnosis and control in North American marine aquaculture. Amsterdam -Oxford New York - Tokyo: Elsevier. 1988. P. 226-229.

189. Wilhelm G., Mialhe E. Dinoflagellate infection associated with the decline of Necora puber crab populations in France // Dis. Aquat. Org. 1996. V. 26. № 3. P. 213-219.

190. Young E.L., Pearse J.B. Shell disease in crabs and lobsters from New York Bight

191. Marine Pollut. Bull. 1975. V. 6. № 7. P. 101-105.

192. Zhang S., Shi Z., Zhang J., Bonami J.R. Purification and characterization of a new reovirus from the Chinese mitten crab, Eriocheir sinensis II J. Fish Dis. 2004. V. 27. № 12. P. 687-692.

193. Zheng J., Kruse G.H., Ackle D.R. Spatial distribution and recruitment patterns of snow crabs in the Eastern Bering sea // Spatial processes and management of marine populations. Lowell wakefield fish. symp. Anchorage. 2001. P. 233255.

194. Zhou S., Shirley T.C. Is handling responsible for the decline of the red king crab fishery / High latitude crabs: Biology, management, and economics. Univer. of Alaska Sea Grant, AK-SG-96-02. Fairbanks: Univer. of Alaska. 1996. P. 591-611.