Вироид веретеновидности клубней картофеля: Диагностика, сохранение инфекционности и особенности передачи патогена тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.11, кандидат биологических наук Гирсова, Наталья Викторовна

• Гирсова, Наталья Викторовна
• кандидат биологических наук
• 2003

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Гирсова, Наталья Викторовна

Введение.

Глава 1. Обзор литературы

1.1. История открытия возбудителя, вызывающего веретеновидность клубней картофеля. Географическое распространение ВВКК.

1.2. Основные свойства ВВКК.

1.3. Симптомы поражения и влияние вироидов на растения, штаммы ВВКК, круг растений-хозяев.

1.4. Методы диагностики ВВКК.

1.5. Способы распространения и сохранения патогена в природе. Транспорт в растении.

1.6. Влияние ВВКК на урожайность картофеля и томатов.

1.7. Способы инактивации ВВКК и меры борьбы с заболеванием.

Глава 2. Объект и методы исследования

2.1. Объект и материалы исследования.

2.2. Метод инокуляции растений.

2.3. Методы препаративного выделения ВВККГ

2.3.1. Выделение суммарной низкомолекулярной РНК.

2.3.2. Фракционирование суммарной РНК методом электрофореза в полиакриламидном геле (ПААГ).

2.3.3. Методика выделения ВВКК из полиакриламидного геля.

Глава 3. Совершенствование методов выделения и диагностики вироидов.

3.1. Диагностика ВВКК методом возвратного электрофореза.

3.2. Исследование вироидной РНК с помощью сканирующего туннельного микроскопа (СТМ).

3.3. Использование томатов в качестве растений-индикаторов ВВКК.

Глава 4. Сохранение нативности вироидной РНК во время хранения in vivo и in vitro

4.1. Сохранение инфекционности вироида в препаратах суммарной низкомолекулярной РНК.

4.2. Сохранение инфекционности ВВКК в сухих листьях.

4.3. Возможность сохранения и передачи вироида через почву и с растительными остатками.

4.4. Сохранение вироида в питательном растворе

4.4.1. Влияние возраста растений на скорость заражения их вироидом.

4.4.2. Способность вироида сохраняться в питательном растворе после удаления из него больных растений.

4.5. Возможность длительного сохранения вироидов в семенах.

4.5.1. Возможность сохранения вироида в семенах, утративших всхожесть.

Глава S. Влияние ВВКК на растения картофеля

5.1. Особенности первичного заражения картофеля вироидом.

5.2. Влияние ВВКК на рост и продуктивность различных сортов картофеля.

Выводы.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Вироид веретеновидности клубней картофеля: Диагностика, сохранение инфекционности и особенности передачи патогена»

Картофель является ценной продовольственной, технической и кормовой культурой. Вместе с тем, его производство в нашей стране носит пока экстенсивный характер. Среди множества патогенов, вызывающих болезни картофеля, в последние годы выделяются вироиды, - особый класс патогенов, представленных одной низкомолекулярной РНК, - инфицирование которыми может приводить к снижению урожая до 70 - 90%.

Картофель может поражаться несколькими вироидами, но наиболее опасным является вироид веретеновидности клубней картофеля (ВВКК). В России это заболевание под названием «готика» известно с начала 40-х годов. Однако экономически значимые потери от него отмечались только в Поволжье. Такое положение изменилось, когда в стране было налажено массовое производство безвирусного картофеля, технология получения которого не предусматривала идентификации и освобождения картофеля от ВВКК. В результате во многих регионах посадочный материал оказался инфицирован этим патогеном. В настоящее время семеноводческие хозяйства не только несут большие потери от связанного с вироидом резкого снижения урожая, но и являются распространителями ВВКК в другие регионы (Можаева и др., 1994, 1997; Козлов, Крайн, 1995; Дрыгин и др., 2000; Мусин и др., 2001). Кроме картофеля ВВКК поражаются и другие растения сем. пасленовых, в частности томаты. Растения сем. пасленовых инфицируются и другими вироидами, например, вироидом экзокортиса цитрусовых (ВЭЦ), «планто мачо» томата. Вироиды обладают высокой устойчивостью к действию различных химических соединений и факторов окружающей среды, что исключает возможность излечения пораженных ими растений. Поэтому основные меры защиты должны быть направлены на исключение возможности заражения растений при селекции и промышленном семеноводстве.

В этой связи необходимо продолжить изучение свойств вироида, способов его передачи, а также влияния вироида на урожай и его структуру у различных сортов картофеля. Кроме того, необходимо усовершенствовать методы выделения и диагностики с целью более быстрого и надежного определения патогена.

Цель и задачи исследований

Цель исследований - изучение свойств ВВКК, распространения и сохранения патогена в различных условиях. Задачи исследований:

1. Усовершенствование методов выделения и диагностики вироида.

2. Исследование стабильности вироида при хранении in vivo и in vitro.

3. Изучение распространения и сохранения ВВКК в водной среде и в почве.

4. Изучение влияния ВВКК на продуктивность различных сортов картофеля и томатов.

Научная новизна исследований

Усовершенствована методика получения препаратов ВВКК, используемых при диагностике патогена.

Впервые получено изображение вироидной РНК с помощью нанотехнологической установки «Луч - 2».

Изучена продолжительность сохранения инфекционности ВВКК и ВЭЦ в растворах РНК и в высушенных листьях.

Установлен срок сохранения вироидов в семенах томатов.

Изучена возможность передачи ВВКК с растительными остатками в почве и с питательным раствором.

Получены новые данные по пораженности, потерям урожая картофеля от ВВКК в зависимости от метеоусловий года, сорта картофеля и количества лет после инфицирования при искусственном заражении.

Практическая значимость работы

Для диагностики ВВКК отработан метод возвратного электрофореза. Подобраны сорта томатов, которые могут быть использованы в качестве растений-индикаторов.

Установлено, что передача ВВКК с питательным раствором является серьезной проблемой при выращивании растений на гидропонных установках.

Апробация работы и публикации

Материалы диссертации были представлены на совещании «Совершенствование методов фитосанитарного мониторинга вирусных болезней растеинй и методов учета сорняков - носителей вирусов», проходившем в ВИЗР 19-21 апреля 2000 г.; научной конференции молодых ученых и специалистов ТСХА в июне 2000 г.; Всероссийской конференции «Болезни основных сельскохозяйственных культур, вызывающие чрезвычайные ситуации: Мониторинг, прогноз, система защиты», проходившей во ВНИИФ в 2001 г.; «VHI-m Международном Симпозиуме по эпидемиологии вирусных болезней», проходившем в Германии в г. Ашерслебене 12-17 мая 2002 г.

По материалам диссертации опубликовано 8 работ.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части (4 главы), выводов и списка литературы.

Заключение диссертации по теме «Защита растений», Гирсова, Наталья Викторовна

Выводы

1. Оптимизация метода выделения суммарной РНК, содержащей ВВКК, сократила время ее выделения в пересчете на один образец. Применение возвратного электрофореза для диагностики ВВКК позволило четко выявлять вироидную РНК, поскольку этот метод более чувствителен, чем обычно используемый электрофорез в полиакриламидном геле.

2. Впервые получено изображение кольцевой и линейной молекул ВВКК на изготовленной в Институте нанотехнологий Международного фонда конверсий установке «Луч-2»

3. Сорт томата Волгоградский 5/95 может быть использован в качестве растения-индикатора, поскольку симптомы поражения на нем появляются раньше, а отставание в росте более выражено, чем у томата сорта Rutgers, традиционно используемого как растение-индикатор ВВКК.

4. ВВКК способен к длительному сохранению инфекционности как in vivo, так и in vitro: а) в водном растворе в составе низкомолекулярной РНК при -20°С, по крайней мере, 22 года; б) в лиофильно высушенных листьях при температуре - 20°С - 13 лет; в) в высушенных и хранящихся при комнатной температуре листьях - 2 года; г) во всхожих семенах томатов - до 23 лет; д) в семенах, утративших всхожесть, вироид не был обнаружен.

5. При выращивании в питательном растворе здоровые растения томата заражаются вироидом уже через пять суток после того, как в раствор попадают больные растения. В этих же условиях черенки, имеющие большую раневую поверхность, заражаются вироидом на третьи сутки.

6. Несмотря на высокую стабильность молекулы ВВКК и контагиозность этого патогена, возможность передачи его через почву и с растительными остатками при использовании для диагностики методов растений-индикаторов и возвратного электрофореза в ПААГ установить не удалось.

7. При первичном заражении картофеля ВВКК симптомы вироидного поражения на ботве наблюдались не на всех растениях, а клубни могли не иметь симптомов даже на следующий после инфицирования год. Однако все клубни, полученные от инфицированных растений, являлись носителями инфекции.

8. При заражении ВВКК продуктивность картофеля, как правило, снижалась, начиная со следующего после заражения года. Снижение продуктивности происходило в результате уменьшения массы одного клубня и количества клубней на одно растение. Степень снижения продуктивности больного растения в последующие годы зависит от изолята ВВКК, продолжительности инфицирования, сорта картофеля, а также от погодных условий.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Гирсова, Наталья Викторовна, 2003 год

1. Анализ генома. Методы. 1990// Под. ред. К. Дейвиса. М.: Мир, 246 с.

2. Анисимов Б.В. 2001. Сортовые ресурсы и качество семенного картофеля//М., 117 с.

3. Баранов В.И., Дынник В.В. 2000. ПЦР-диагностика вироида веретеновидности клубней картофеля (ВВКК) на основе нового поколения отечественных технологий// Картофель и овощи, № 3, с. 16 17.

4. Бахтизин Р.З. 2000. Сканирующая туннельная микроскопия новый метод изучения поверхности твердых тел// Соросовский образовательный журнал, том 6, № 11, с. 83 - 89.

5. Безвирусное семеноводство картофеля (рекомендации). 1990// М.: ВО «Агропромиздат», 33 с.

6. Бентли М. 1965. Промышленная гидропоника// М.: Колос, 376 с,

7. Берлинчик Е.Е. 1997. Диагностика ВВКК визуальным и индикаторным методами// Весщ академи навук Беларуси сер. Б1ялапчных навук, № 3, с. 50 53.

8. Васильева Т.Я. 1985. Изучение свойств вироида веретеновидности клубней картофеля//Автореф. дис, .канд. биол. наук. М., 23 с.

9. Васильева Т.Я., МожаеваК.А. 1984. Устойчивость вироида веретеновидности клубней картофеля к некоторым физическим факторам// Биологические науки, № 3, с. 15-21.

10. Вредные организмы, имеющие карантинное значение для Европы. 1996//М., Колос, 912 с.

11. Вершинин Б.М., Лялько Р.В., Савин А.И. 2001. Центр безвирусного семеноводства картофеля на Ставрополье// Опыт выращивания оздоровленного семенного картофеля в ООО ЭТК «Меристемные культуры». Практические рекомендации. М., с. 6 13.

12. Галлямов М.О., Яминский И.В. 1998. Сканирующая зондовая микроскопия нуклеиновых кислот// М.; МГУ, физ.фак, 17 с.

13. Горюшин В.А. 1963. Природа готики картофеля, распространенной на Украине// В кн.: Материалы научной конференции «Семеноводство и меры борьбы с болезнями вырождения картофеля на Дальнем Востоке», Владивосток, с. 37 39.

14. Горюшин В.А. 1966. Серологическое и электронно-микроскопическое изучение вирусов, обнаруженных в картофеле, пораженном готикой// В кн.: Вирусные болезни с/х растений и меры борьбы с ними. Киев, с. 211 -228.

15. Грама Д.П. 1969. Изучение готики картофеля на Украине// Автореф. .канд. дис. Киев. 18 с.

16. Грама Д.П. 1972.1дентификация ßipycy, видшенного з уражених готикою рослин картоши сорту Лорх// М1кробюл, журнал, т. 34, № 5, с. 625 629.

17. Гросс Г.И. 1987. Вироиды: инфекционные нуклеиновые кислоты, как возбудители болезней растений// Молекулярная биология, т. 21, вып. 6, с. 1480 1485.

18. Доспехов Б.А. 1985. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований)// М.: Агропромиздат, 351 с.

19. Друка А.Я. 1989. Диагностика вироидных заболеваний картофеля и хризантем// Автореф. .канд. дис. Рига, 19 с.

20. Дрыгин Ю.Ф., Кондакова O.A., Атабеков И.Г., Мусин С.М., Бойко В. В., Бабоша A.B. 2000. Проблема вироида в семеноводстве картофеля: диагностика, формирование генобанка, производство исходного материала// Картофель и овощи, № 2, с. 38 40.

21. Дрыгин Ю.Ф., Мусин С.М., Кондакова O.A., Савенков Е.И., Соломатин C.B., Можаева К.А., Атабеков И.Г. 1996. Молекулярная диагностика зараженности оздоровленных сортообразцов картофеля вироидом веретеновидности клубней// Доклады РАСХН, № 6, с. 24 -25.

22. Дынник В.В. 1998. Опыт освоения современных технологий безвирусного семеноводства картофеля// Новые сорта и передовой опыт семеноводства картофеля. Материалы семинара, Ленинградская область, агрофирма «ОНЕГА», август 1998 года, с. 24.

23. Кастальева Т.Б., Можаева К.А. 1988. Фракционирование цетавлоном нуклеиновых кислот из растений, пораженных вироидом веретеновидности клубней картофеля// Биологические науки, № 10, с. 101 105.

24. Кастальева Т.Б., Можаева К.А. 1991. Изучение возможности оценки устойчивости томатов к ВВКК по накоплению патогенеззависимых белков// IX Всесоюзное совещание по иммунитету растений к болезням и вредителям. Тезисы докладов. Минск, с. 231 232.

25. Кастальева Т.Б., Можаева К.А., Писецкая Н.Ф., Романова С.А., Трофимец Л.Н. 1992. Вироид веретеновидности клубней и оздоровление картофеля// Вестник Росийской академии с.-хоз. наук, № 3, с. 22 24.

26. Кинчарова М.Н. 1999. Влияние сорта, регуляторов роста и биопрепаратов на устойчивость картофеля к вироиду веретеновидности клубней в условиях Среднего Поволжья// Автореф. дис. .канд. с-хоз. наук. Курган, 20 с.

27. Кинчарова М.Н., Макеева А.М., Кагарлицкая A.C. 1998. Влияние регуляторов роста и биопрепаратов на устойчивость картофеля квироидно-вирусной инфекции и урожайность клубней// Проблемы повышения продуктивности полевых культур. Самара, с. 121 123.

28. Козлов Л.П. 1997. Стратегия и тактика борьбы с вироидом веретеновидностиклубней картофеля// Arpo XXI, №2, с. 10-11.

29. Козлов Л.П., Крайн A.B. 1995. Проблемы сертификации картофеля на вироидную инфекцию// Защита растений в условиях агропромышленного комплекса: экономика, эффективность,экологичность. Тезисы докладов. Санкт-Петербург, с. 12-13.

30. Колобаев В.А. 1964. Изучение инфекционности готики картофеля// В кн.: Вирусные болезни с/х растений и меры борьбы с ними. М., с. 127 -133.

31. Кокина Т.П., Анисимов Б.В. 2001. Контроль качества и сертификация семенного картофеля// Картофель и овощи, № 2, с. 6 — 8.

32. Комаров С.М. 2000. Искусственные объекты наномира// Химия и жизнь XXI век, №5, с. 10 - 17.

33. Леонтьева Ю.А. 1962. Инфекционность вирусных болезней (картофеля)// Картофель и овощи, № 1, с. 24 25.

34. Леонтьева Ю. А. 1964. О готике картофеля// В кн.: Вирусные болезни с.-х. растений и меры борьбы с ними. М., стр. 115 122.

35. Леонтьева Ю.А. 1966а. Идентификация готики картофеля// Труды Куйбышевского СХИ, 14, с. 279 286.

36. Леонтьева Ю.А. 19666. Эффективность летних посадок и ранних сроков уборки картофеля в борьбе с веретеновидностью клубней и вирусом Y// Научные Труды Харьковского СХИ, т. 56, с. 109 118.

37. Леонтьева Ю.А. 1971. Веретеновидность клубней (готика) одно из основных заболеваний картофеля в Поволжье// Автореф. дис. . докт. биол. наук. Пушкин, 43с.

38. Леонтьева Ю.А. 1977. О штаммах вируса (вироида) веретеновидности клубней картофеля// В кн.: Штаммы вирусов растений. Владивосток, с. 180- 187.

39. Леонтьева Ю. А. 1980. Томаты и вироид веретеновидности клубней картофеля// Защита растений, № 8, с. 22.

40. Лысенко Н.Ю., Калягина Л.Г., Можаева К.А. 1997. Влияние вироида веретеновидности клубней картофеля на развитие и продуктивность безвирусного картофеля// Вестник Росийской академии с.-хоз. наук, № 6, с. 42 44.

41. Марковская Г.К. 1983. Анатомо-физиологические изменения растений картофеля и томатов под влиянием вироидной инфекции// Автореф. дис. .канд. биол. наук. М., 14 с.

42. Маурер Г. 1971. Диск электрофорез// М., 247 с.

43. Методические указания по диагностике вироида веретеновидности клубней картофеля. 1999// РАСХН., М., 24 с.

44. Методические указания по диагностике и идентификации вироидов веретеновидности клубней картофеля (ВВКК) и карликовости хризантем (ВКХр). 1988// ВАСХНИЛ. М., 43 с.

45. Методы оценки оздоровленных сортов и меристемных линий в элитном семеноводстве картофеля. 1991// НИИКХ, М., 40 с.

46. Можаева К.А., Васильева Т.Я. 1982. Некоторые причины, препятствующие распространению вироида веретеновидности клубней в посадках картофеля// Биологические науки, № 11, с. 26 30.

47. Можаева К.А., Васильева Т.Я. 1990. Изучение действия веществ белково пептидной природы на ВТМ и ВВКК// Тезисы докладов научно - технической конференции «Создание перспективных пестицидов и сырья для их производства». Уфа, с. 56.

48. Можаева К.А., Васильева Т.Я. 1991. Изучение веществ возможных ингибиторов вироидной инфекции// Биологические науки, № И, с. 31 — 35.

49. Можаева К.А., Васильева Т.Я. 1992. Поиск новых средств защиты растений от вирусных и вироидных инфекций. II. Изучение антивироидной активности РНК-полимераз//Биологические науки, № 7, с. 61 65.

50. Можаева К. А., Васильева Т. Я., Кастальева Т. Б. 1994. Опасность распространения вироида с безвирусным картофелем// Картофель и овощи, №2, с. 28 29.

51. Можаева К. А., Васильева Т. Я., Кастальева Т. Б. 1996. Заражение томатов вироидом веретеновидности// Вестник РАСХН, №3, с. 57 -58.

52. Можаева К. А., Васильева Т. Я., Кастальева Т. Б. 1997. Вироид ВКК передается через корневую систему// Картофель и овощи, №2, с. 28.

53. Можаева К. А., Васильева Т. Я., Кастальева Т. Б. 1998. Влияние вироида веретеновидности картофеля на его продуктивность// Вестник РАСХН, №3, с. 42-44.

54. Можаева К. А., Васильева Т. Я., Налевина Т. Н. 1980. Выделение и фракционирование РНК из растений, пораженных вироидом веретеновидности клубней картофеля (ВВКК)// В кн.: Вирусные болезни растений и меры борьбы с ними. Владивосток, с. 33 39.

55. Можаева К. А., Грачева Н. К., Тер-Сааков А. А. 19866. Об элементном составе клубней картофеля, пораженного вироидом веретеновидности клубней картофеля// Биологические науки, № 6, с. 23 25.

56. Можаева К.А., Мелдрайс Я.А., Друка А.Я., Кастальева Т.Б., Лине И.Э., Васильева Т.Я. 1989. Сравнительное изучение различных методов диагностики вироида веретеновидности клубней картофеля// Биологические науки, №7, с. 104-110.

57. Мусин С.М., 1997. Проблемы биотехнологии картофеля в России// Arpo XXI, №4, с. 6-7.

58. Мусин С. М., Бабоша А. В., Кондакова O.A., Дрыгин Ю. Ф., Атабеков И. Г. 2001. Диагностика и контроль вироида веретеновидности клубней картофеля// Защита и карантин растений, №10, с. 22 23.

59. Мусин С. М., Бойко В. В., Бабоша А. В. 1998. Получение новых оздоровленных меристемных линий и сортов картофеля// Arpo XXI, №11, с. 20-21.

60. Мусин С. М., Бойко В. В., Усков А. И. 1995. Диагностика и терапия вироида веретеновидности клубней картофеля// Защита растений вусловиях агропромышленного комплекса: экономика, эффективность, экологичность. Тезисы докладов. Санкт-Петербург, с. 348.

61. Остерман Л.А. 1981. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот: электрофорез и ультрацентрифугирование/ М.: Наука, 288 с.

62. Пантелеймонов И.А. 1998. Межрегиональная ассоциация по семеноводству картофеля «Северсемкартофель»// Новые сорта и передовой опыт семеноводства картофеля. Материалы семинара, Ленинградская область, агрофирма «ОНЕГА», август 1998 года, с. 15 -16.

63. Пересыпкин В. Ф., Лопатин В. М., Дробницкая О. А. 1966. К вопросу приготовления антисыворотки к вирусу готики картофеля// В кн.: Вирусные болезни с/х растений и меры борьбы с ними. Киев, с. 188 -196.

64. Рожалин Л. В., Белова О. Д. 1948. К вопросу о готике или веретеновидности картофеля// Агробиология, №6, с. 83 96.

65. Романова С. А. 2002. Итоги изучения вирусных, вироидных и микоплазменных болезней картофеля на Дальнем Востоке России// В кн. . Становление и развитие фитовирусологии на Дальнем Востоке России, с. 175 193.

66. Романова С. А., Можаева К. А., Рейфман В. Г., Леднева В. А. 1996. Вироид веретеновидности клубней картофеля на Дальнем Востоке// В кн.: Проблемы фитовирусологии на Дальнем Востоке, с. 41 47.

67. Сибирякова И.И., Коротаева С.Г., Романова С.А., Гнутова Р.В. 1999. Электрофоретическое выявление вироида веретеновидности клубней картофеля// С-хоз. биология, №5, с. 88 90.

68. Терещенко ОТ. 1937. Нова хвороба картопл1// Сад та огород, № 10, с. 13-17.

69. Терещенко А. И. 1941. Удобрения и вирусные болезни картофеля// В кн.: Вирусные болезни растений и меры борьбы с ними. М.-Л., с. 321 -325.

70. Трофимец Л.Н. 1990. Вирусные болезни картофеля// М., ВО «Агропромиздат», 79 с.

71. Усков А. И., Бойко Ю. П., Бойко В. В. 2000. Организация воспроизводства оздоровленного исходного материала// Картофель и овощи, №2, с. 42.

72. Усков А.И., Симаков Е.А. 2001. Система воспризводства оздоровленного исходного материала// Картофель и овощи, № 3, с. 15 -16.

73. Фомюк М. К. 1953. О готике картофеля// Научные труды ин-та энтомологии и фитопатологии АН УССР, т.4, с. 62.

74. Фомюк М- К. 1954. Готика картофеля и обоснование мероприятий по борьбе с нею// Автореф. .канд. дис. Киев, 20 с.

75. Фомюк М.К. 1966. Вопросы диагностики готики картофеля// В кн: Вирусные болезни сельскохозяйственных растений и меры борьбы с ними. Киев, с. 205 210.

76. Яшина И. М., Склярова Н. П. 2000. Картофель//М.: ЗАО «Фитон + », 128 с.

77. Altenburg Е. 1946. The "viroid theory" in relation to plasmagenes, viruses, cancer and plastids//Amer. Naturalist, vol. 80, №794, p. 559 - 567.

78. Bagnall R. H. 1967. Serology of the potato spindle tuber virus// Phytopathology, vol. 57, №5, p. 533 534.

79. Benson A. P., Salama F. M., Singh R. P. 1964. Concentration and characterization of potato spindle tuber virus// Amer. Potato J., vol. 41, №9, p. 293.

80. Biao Ding, Kwou M.-O., Hammond S., Owens R. 1997. Cell to - cell movement of potato spindle tuber viroid// The Plant Journal, vol. 12, №4, p. 931 -936.

81. Bonde R., Merriam D. 1951. Studies on the dissemination of the potato spindle tuber virus by mechanical inoculation// Amer. Potato J., vol. 28, №3, p. 558 560.

82. Branch A. D., Robertson H. D. 1984. A replication cycle for viroids and other small infectious RNA's// Science, vol. 223, p. 450 455.

83. Camacho Henriquez A., Sanger, H. L. 1982. Analysis of acid extractable tomato leaf proteins after infection with a viroid, two viruses and a fungus and partial purification of the pathogenesis related protein P14// Arch. Virol., vol. 74, p. 181 - 193.

84. Candresse Т., Macquaire G., Brault V., Monsion M., Dunez J. 1990.32P-and biotin labeled in vitro transcribed cRNA probes for the detection of potato spindle tuber viroid and chrysanthemum stunt viroid// Res. Virol., vol. 141, p. 97- 107.

85. Da Graca J. V., Martin M. M. 1981. Ultrastructural changes in avocado leaf tissue infected with avocado sunblotch// J. Phytopathology, vol. 102, p. 185 194.

86. Davies, J. W., Kaesberg, P., Diener, Т. O. 1974. Potato spindle tuber viroid. XII. An investigation of viroid RNA as a messenger for protein synthesis// Virology, vol. 61, p. 281 286.

87. De Bokx J. A., Piron P. G. M. 1981. Transmission of potato spindle tuber viroid by aphids// Neth. J. Plant Pathol., vol. 87, p. 31 34.

88. Diener Т. O. 1971a. A plant virus with properties of a free ribonucleic acid: potato spindle tuber virus//In: Comparative Virology. New York and London, Acad. Press, chap. 14, p. 433 478.

89. Diener Т. O. 1971b. Potato spindle tuber virus: A plant virus with properties of a free nucleic acid. III. Subcellular location of PSTV-RNA and the question of whether visions exist in extracts or in situII Virology, vol. 43, №1, p. 75 -89.

90. Diener Т. O. 1979. Viroid and viroid diseases// A Wiley Interscience Publication. N. - Y., Toronto, 245 p.

91. Diener Т. O., Hadidi A., Owens R. A. 1977. Methods for studing viroids// In: Methods in Virology, Maramorosch K, and Koprowski, H., Eds., Academic Press, New York, vol. 6, p. 185 217.

92. Diener T. O., Raymer W. B. 1967. Potato spindle tuber virus: a plant virus with properties of a free nucleic acid// Science, vol. 158, №3799, p. 378-381.

93. Diener T.O., Owens R.A., Hammond R.W. 1993. Viroids: the smallest and simplest agents of infectious disease. How do they make plants sick?// Intervirology, vol. 35, p. 186 195.

94. Fernow K. C., Peterson L. C., Plaisted R. L. 1969. The tomato test for eliminating spindle tuber from potato planting stock// American Potato Journal, vol. 46, № 11, p. 424 430.

95. Fernow K. H. 1967. Tomato as a test plant for detecting mild strains of potato spindle tuber viroid// Phytopathology, vol. 57, № 11, p. 1347 -1352.

96. Fernow K. H., Peterson L. C., Plaisted R. L. 1970. Spindle tuber virus in seed and pollen of infected potato plants// American Potato Journal, vol. 47, №3, p. 75-81.

97. Forster A. C., Jeffries A. C., Sheldon C. C., Symons R. H. 1987. Structural and ionic requirements for self-cleavage of virusoid RNA and trans self-cleavage of viroid RNAII Cold Sprig Harbor Symp. Quant. Biol., vol. 52, p. 249 259.

98. Forster A. C., Symons R. H. 1987. Self-cleavage of plus and minus RNAs of a virusoid and a structural model for the active site// Cell, vol. 49, p. 211 -220.

99. Garnsey S. M., Randies J. W. 1987. Biological interactions and agricultural implications of viroids// In: Viroids and Viroid like Pathogens. J. S. Semancik, ed. CRC Press, Boca Raton, Florida., p. 127 160.

100. Garnsey S. M., Whidden R. 1971. Decontamination treatments to reduce the spread of citrus exocortis virus (CEV) by contaminated tools// Proc. Ha. State Hort. Soc., vol. 84, p. 63 67.

101. Goss R. W. 1926. Transmission of potato spindle tuber by cutting knives and seed piece contact// Phytopathology, vol. 16, p. 299 - 304.

102. Goss R. W. 1928. Transmission of potato spindle tuber by grasshoppers (Locustidae)ll Phytopathology, vol. 18, p. 445 448.

103. Goss R. W. 1930. Insect transmission of potato virus diseases// Phytopathology, vol. 20, p. 136.

104. Goss R. W. 1931. Infection experiments with spindle tuber and unmottled curly dwarf of the potato// Univ. Nebraska Agr. Exp. Sta. Res. Bull., vol. 53, 36 p.

105. Grasmic M. E., Slack S. A. 1986. Effect of potato spindle tuber viroid on sexual reproduction and viroid transmission in true potato seed// Canadian Journal of Botany, vol. 64, №2, p. 336 340.

106. Hadidi A. 1988. Synthesis of disease associated proteins in viroid -infected tomato leaves and binding of viroid to host proteins// Phytopathology, vol. 78, p. 575 - 578.

107. Hadidi A., Diener T. O. 1977. De novo synthesis of potato spindle tuber viroid as measured by incorporation of P// Virology, vol. 78, p. 99.

108. Hadidi A., Levy L., Podleckis E.V. 1995. Polymerase chain reaction technology in Plant Pathology// In: Molecular Methods in Plant Pathology. R.P. Singh, U.S. Singh, eds. CRC Press, Boca Raton, USA, ch. 13.

109. Hanold D., Randies J. W. 1991. Coconut cadang cadang disease and its viroid agent// Plant Dis., vol. 75, p. 330 - 335.

110. Harders, J., Lukacs, N., Robert-Nicoud, D., Jovin, T. M., Riesner, D. 1989. Imaging of viroids in nuclei from tomato leaf tissue by in situ hybridization and confocal laser scanning microscopy// The EMBO Journal, vol. 8, №13, p. 3941 -3949.

111. Hari V. 1980. Ultrastructure of potato spindle tuber viroid-infected tomato leaf tissue// Phytopathology, vol. 70, p. 385 387.

112. Haseloff J., Mohamed N. A., Symons R. H. 1982. Viroid RNAs of cadang cadang disease of coconuts// Nature (London), vol. 299, p. 316.

113. Hollings M., Stone O. M. 1973. Some properties of chrysanthenum stunt, a virus with the characteristics of an uncoated ribonucleic acid// Ann. Appl. Biol., vol. 74, №3, p. 333 348.

114. Howell S.H. 1984. Physical structure and genetic organization of the genome of maize streak virus (Kenyan isolate)// Nucleic Acids Res., vol. 12, p. 7359 7370.

115. Hunter D. E., Darling D. H., Beale W. L. 1969. Seed transmission of potato spindle tuber virus// Am. Potato J, vol. 46, №7, p. 247 250.

116. Huttinga H., Mosch W. H. M., Treur A. 1987. Comparison of bidirectional electrophoresis and molecular hybridization methods to detect potato spindle tuber viroid and chrysanthemum stunt viroid// Bulletin OEPP/EPPO Bulletin, vol. 17, p. 37 43.

117. Ishikawa M., Meshi T., Ohano T„ Okada Y., Sano T., Uyeda I., Shikata E. 1984. A revised replication cycles for viroids: the role of longer than unit length RNA in viroid replication// Mol. Gen. Genet., vol. 196, p. 421-428.

118. Kaczmarek U. 1989. The effect of various inoculation procedures on potato plants infection with PSTV and viroid detectability// Virus disease of plants. Warczawa, p. 41 53.

119. Kamen R. I. 1975. Structure and function of the Q replicase// In: RNA Phage. N. D. Zinder, ed. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N. Y., p. 203 234.

120. Keese P., Symons R. H. 1985. Domains in viroids: Evidence of intermolecular RNA rearrangements and their contribution to viroid evolution// Proc. Natl. Acad. Sci., U. S. A., vol. 82, p. 4582 4586.

121. Keese P., Symons R. H. 1987. The structure of viroids and virusoids// In: Viroid and Viroid Like Pathogens. J. S. Semancik, ed. CRC Press, Boca Raton, Florida, p. 1 - 48.

122. Keller D., Bustamante C., Keller R.W. 1989. Imaging of single uncoated DNA molecules by scanning tunneling microscopy// Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol. 86, № 14, p. 5356 5360.

123. Kojima M., Murai M., Shikata E. 1983. Cytopathic changes in viroid-infected leaf tissue, cucumbers, tomatoes// J. Fac. Agr. Hokkaido Univ., vol. 61, p. 219-224.

124. Koltunow A. M., Rezaian M. A. 1989. A scheme for viroid classification// Intervirology, vol. 30, p. 194.

125. Kowalska Noordam A., Chrzanowska M., Skrzeczkowska S. 1987. Reaction of ten polish potato cultivars to severe and mild strains of potato spindle tuber viroid// Ziemniak, 1986 - 1987, Poznan, p. 71 - 92.

126. Kryczynski S., Stawiszynska A., Abuhliga T. A. 1995. The reaction of field grown tomato cultivars to infection with potato spindle tuber viroid (PSTV)// Phytopathologia Polonica, 10 (XXII), p. 85-91.

127. Kryczynski S., Stawiszynska A., Abuhliga T. A. 1999. Translocation and distribution of potato spindle tuber viroid in infected plants// Phytopathologia Polonica, p. 61 -71.

128. Kryczynski S., Stawiszynska A., Skrzeckowska St. 1991. Detection of potato spindle tuber viroid in composite plant samples// Phytopathologia Polonica XII, 19-20 Sept., p. 29 32.

129. Lawson R. H. 1987. Chrysanthemum stunt// In: The Viroid. Т. O. Diener, ed. Plenum Press, N.-Y., p. 247 259.

130. LeClerg, E. L., Lombard, P. M., Eddins, A. H., Cook, H. T., Campbell, J. C. 1944. Effect of different amount of spindle tuder and leaf roll on yield of Irish potatoes/Am. Potato J., vol. 21, p. 60-71.

131. Lewin B. 1997. Genes VI// Oxford, New York, Tokyo. Oxford University Press. 1260 p.

132. Lizarraga R. E., Salazar L. F., Roca W. M., Schilde-Rentschler L. 1980. Elimination of potato spindle tuber viroid by low temperature and meristem culture// Phytopathology, vol. 70, №8, p. 754 755.

133. Macquaire G., Monsion M., Dunez J. 1987. Etude des possibilities de detection précoce du viroide des tubercules fusiformes de la pomme de terre// Agronomie, vol. 7, №8, p. 639 645.

134. Macquaire G., Monsion M., Mouches C., Cadresse T., Dunez J. 1984. Spot hybridization: application to viroid identification// Annales de Virologie, vol. 135E, №2, p. 219 230.

135. Manzer F. E., Merriam D. 1961. Field transmission of the potato spindle tuber and virus X by cultivating and hillihg equipment// Amer. Potato J., vol. 38, № 10, p. 346 352.

136. Martin W.H. 1922. "Spindle tuber", a new potato trouble// Hints to potato growers. New Jersey State Potato Assoc., 3, № 8 , 4 pp.

137. MatouSek J., Rakousky S. 1993. Antisense DNA inhibits infection of potato spindle tuber viroid// Folia Biologica, vol. 39, p. 87 100.

138. MatouSek J., Trnena L., Rakousky S., Riesner D. 1994. Inhibition of potato spindle tuber viroid (PSTVd) infectivity with antisense RNA transcripts// J. Phytopathol., vol. 141, № 1, p. 10 24.

139. McClean A. P. D. 1948. Bunchy top disease of the tomato: additional host plants and the transmission of the virus through the seed of infected plants// Sci. Bull. Dept. Agrio. South. Afric., vol. 256, 28 p.

140. McClements W. L., Kaesberg P. 1977. Size and secondary structure of potato spindle tuber viroid// Virology, vol. 76, №2, p. 477 484.

141. McKay M. B., Dykstra T. P. 1932. Potato virus diseases// Oregon State Coll. Agric. Exp. Sta. Bull., p. 294.

142. Merriam D., Bonde R. 1954. Dissemination of spindle tuber by contaminated tractor wheels and by foliage contact with diseased potato plants// Phytopathology, vol. 44, p. 111.

143. Mink G. L. 1993. Pollen- and seed-transmitted viruses and viroids// Annu. Rev. Phytopathol., vol. 31, p. 375 402.

144. Morris T., Wright N. 1975. Detection on PAAG of a diagnostic nucleic acid from tissue infected with potato tuber virus// Am. Potato J., vol. 52, №2, p. 57 63.

145. Miihlbach H.-P., Sanger H.L. 1978. Viroid replication is inhibited by a-amanitin// Nature, vol. 278, № 5700, p. 185 188.

146. Nakahara Kenji, Hataya Tatsuji, Uyeda Ichiro. 1999. A simple, rapid method of nucleic acid extraction without tissue homogenization for detecting viroids by hybridization and RT-PCR// J. Virol. Methods, vol. 77, № l,p. 47-58.

147. Niblett, C. L., Dickson, E., Horst, R. K., and Romaine, C. P. 1980. Additional hosts and an efficient purification procedure for four viroids // Phytopathology, vol. 70, p. 610.

148. O'Brien M. J., Raymer W. B. 1963. Symptomless host of the potato spindle tuber vims (PSTV)// Phytopathology, vol. 53, №8, p. 884.

149. Owens R. A., Diener T. O. 1982. RNA intermediates in potato spindle tuber viroid replication// Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol. 79, p. 113-117.

150. Owens R. A., Steger G., Hu Y„ Fels A., Hammond R. W., Riesner D. 1997. RNA structural features responsible for potato spindle tuber viroid (PSTVd) pathogenicity// Phytoparasitica, vol. 25, №1, p. 73.

151. Paduch-Cichal E., Kryszynski S. 1987. A low temperature therapy and meristem tip culture for eliminating four viroids from infected plants// J. Phytopathol., vol. 118, p. 341 - 346.

152. Palukaitis P., Zaitlin M. 1987. The nature and biological significance of linear potato spindle tuber viroid molecules// Virology, vol. 157, № 1, p. 199-210.

153. Pfannenstiel M. A,, Slack S. A., Lane L. C. 1980. Detection of potato spindle tuber viroid in field-grown potatoes by an improved electrophoretic assay// Phytopathology, vol. 70, p. 1015.

154. Pospieszny H. 1997. Antiviroid activity of chitosan// Crop. Protection., vol. 16, №2, p. 105 106.

155. Querci M., Owens R. A., Bartolini I., Lazarte V., Salazar L. F. 1997. Evidence for heterologous encapsidation of potato spindle tuber viroid in particles of potato leafroll virus// J. Gen. Virol., vol. 78, №6, p. 1207 1211.

156. Querci M., Owens R. A., Vargas C., Salazar L. F. 1995. Detection of potato spindle tuber viroid in avocado growing in Peru// Plant Disease, vol. 79, №2, p. 196-202.

157. Raymer W. B., Diener T. O. 1969. Potato spindle tuber virus: a plant virus with properties of a free nucleic acid. I. Assay, extraction and concentration// Virology, vol. 37, №3, p. 343 350.

158. Riesner D. 1990. Structure of viroids and their replication intermediates. Are thermodynamic domains also functional domains?// Seminars in Virol. 1, p. 83 99.

159. Riesner D., Gross H. J. 1985. Viroid// Annu. Rev. Biochem., vol. 54, p. 531 -564.

160. Riesner D., Henco K., Rokohl U., Klotz G., Kleinschmidt A. K., Domdey H., Jank P., Gross H. J., Sanger H. L. 1979. Structure and structure formation of viroids// J. Mol. Biol., vol. 133, №1, p. 85 115.

161. Robertson H. D., Branch A. D. 1987. The viroid replication process// In: Viroids and Viroid Like Pathogens. Semancik J. S., ed. CRC Press, FL„ p. 49 - 69.

162. Robertson H. D., Rosen D. L., Branch A. D. 1985. Cell free synthesis and processing of an infectious dimeric transcript of potato spindle tuber viroid RNA// Virology, vol. 142, p. 441.

163. Roistacher C. N., Calavan E. C., Blue R. L. 1969. Citrus exocortis virus chemical inactivation on tools, tolerance to heat and separation of isolates// Plant Dis. Reptr., vol. 53, p. 333 - 336.

164. Romaine C. P., Horst R. K. 1975. Suggested viroid etiology for chrysanthemum chlorotic mottle disease// Virology, vol. 64, №1, p. 86 95.

165. Rudzinska-Langwald A. 1999. Cytopathological changes is nucleus of Lycopersicon esculentum cult. Rutgers plants infected with potato spindletuber viroid (PSTVd)// Annals of Warsaw Agr. Univ. SGGW. Agr. №35, p. 3- 13.

166. Salazar L. F. 1996. Potato viruses and their control// Lima. Peru: CIP, 214 p.

167. Salazar L. F., Querci M., Bartolini I., Lazarte V. 1995. Transmission of potato spindle tuber viroid by aphids assisted by potato leafroll virus// Fitopatología, vol. 30, №1, p. 56 58.

168. Sänger H. L. 1987. Viroid function: viroid replication// In: The Viroid. T. O. Diener, ed. Plenum Press, N. Y., p. 117 166.

169. Schmitz A., Riesner D. 1998. Correlation between bending of the VM region and pathogenicity of different potato tuber viroid strains// RNA, vol. 4, № 10, p. 1295- 1303.

170. Schroeder M., Weidemann H.-L. 1989. Simplified application of return gel electrophoresis for the routine detection of PSTVd// Bulletin OEPP/ EPPO Bulletin, vol. 19, № 4, p. 661 665.

171. Schultz E. S., Folsom D. 1923a. Spindling tuber and other degeneration diseases of Irish potatoes// Phytopatology, vol. 13, p. 40.

172. Schultz E. S., Folsom D. 1923b. Transmission, variation, and control of certain degeneration diseases of Irish potatoes// J. Agr. Res., vol. 25, p. 43 117.

173. Schumacher J., Meyer N., Riesner D., Weidemann H. L. 1986. Diagnostic procedure for detection of viroids and viruses with circular RNAs by "return" gel electrophoresis// J. Phytopathol., vol. 115, p. 332 -343.

174. Schumacher J., Randies J. E., Riesner D. 1983a. A two dimensional electrophoretic technique for detection of circular viroids and virusoids// Anal. Biochem., vol. 135, p. 228 - 295.

175. Schumacher J., Sänger H. L., Riesner D. 1983b. Subcellular localization of viroids in highly purified nuclei from tomato leaf tissue// The EMBO Journal, vol. 2, №9, p. 1549 1555.

176. Semancik J. K., Weather L. G. 1972. Exocortis virus: an infectious free-nucleic acid plant virus with unusual properties// Virology, vol. 47, №2, p. 456 466.

177. Semancik J. S., Morris T. J., Weathers L. G., Rodorf B. F., Kearns D. R. 1975. Physical properties of a minimal infectious RNA (viroid) associated with the exocortis disease// Virology, vol. 63, №1, p. 160 167.

178. Semancik J. S., Vanderwoude W. J. 1976. Exocortis viroid: cytopathic effects at the plasma membrane in association with pathogenic RNA// Virology, vol. 69, p. 719 726.

179. Singh A., Sänger H. L. 1980. A simple and rapid method for partial purification of viroid and other cellular ribonucleic acids of higher secondary structure// Cell. Mol. Biol., vol. 25, p. 291.

180. Singh R. P. 1970. Seed transmission of potato spindle tuber virus in tomato and potato// Am. Potato J., vol. 47, p. 225 227.

181. Singh R. P. 1971. A local lesion host for potato spindle tuber virus// Phytopathology, vol. 61, p. 1034- 1035.

182. Singh R. P. 1973. Experimental host range of the potato spindle tuber "virus"// Am. Potato J., vol. 50, p. 111 123.

183. Singh R. P. 1977. Piperonyl butoxide as a protectant against potato spindle tuber viroid infection// Phytopathology, vol. 67, p. 933 935.

184. Singh R. P. 1983. Viroids and their potential danger to potatoes in hot climates// Can. Plant Dis. Surv., vol. 63, p. 13-18.

185. Singh R. P. 1984. Solanum x berthaultii, a sensitive host for indexing potato tuber viroid from dormant tubers// Potato Research, vol. 27, №2, p. 163- 172.

186. Singh R. P. 1985. Clones of Solanum berthaultii resistant to potato spindle tuber viroid// Phytopathology, vol. 75, p. 1432 1434.

187. Singh R. P. 1991. Return Polyacrylamide gel electrophoresis for the detection of viroids// In: Viroids and Satellites: Molecular Parasites at the frontier of Life. K. Maramorsch, ed. CRC Press, Boca Raton, Florida, p. 89 - 118.

188. Singh R. P., Bagnall R. H. 1968a. Infectious nucleic acid from host tissues infected with the potato spindle tuber virus// Phytopathology, vol. 58, №5, p. 696-699.

189. Singh R. P., Bagnall R. H. 1968b. Solanum rostratum Dunal, a new test plant for the potato spindle tuber virus// Amer. Potato J., vol. 45, №9, p. 335 -336.

190. Singh R. P., Boucher A. 1987. Electrophoretic separation of a severe from mild strains of potato spindle tuber viroid// Phytopathology, vol. 77, №11, p. 1588- 1591.

191. Singh R. P., Boucher A. 1988. Comparative detection of mild strains of potato spindle tuber viroid from the dormant potato tubers by return -Polyacrylamide gel electrophoresis and nucleic acid hybridization// Potato Research, vol. 31, p. 159- 166.

192. Singh R. P., Boucher A., Seabrook J. E. A. 1988. Detection of the mild strains of potato spindle tuber viroid from single true potato seed by return electrophoresis// Phytopathology, vol. 78, p. 663 667.

193. Singh R. P., Boucher A., Singh A. 1991a. High incidence of transmission and occurrence of a viroid in commercial seeds of Coleus in Canada// Plant Dis., vol. 75, p. 184 187.

194. Singh R. P., Boucher A., Somerville T. 1989. Evaluation of chemicals for disinfection of laboratory equipment exposed to potato spindle tuber viroid// Am. Potato J., vol. 66, p. 239 246.

195. Singh R. P., Boucher A., Somerville Т. H. 1993. Interaction between a mild and severe strain of potato spindle tuber viroid in doubly infected potato plants// American Potato Journal, vol. 70, №2, p. 85 92.

196. Singh R. P., Boucher A., Wang R. G. 1991b. Detection, distribution and long term persistence of potato spindle tuber viroid in true potato seed from Heilongjiang, China// Am. Potato J., vol. 68, p. 65 - 74.

197. Singh R. P., Finnie R. E. 1973. Seed transmission of potato spindle tuber metavirus through the ovules of Scopolia sinensis// Can. Plant Dis. Surv., vol. 53, p. 153- 154.

198. Singh R. P., Finnie R. E. 1977. Stability of potato spindle tuber viroid in freeze-dried leaf powder// Phytopathology, vol. 67, p. 283 286.

199. Singh R. P., Finnie R. E., Bagnall R. H. 1971. Losses due to the potato spindle tuber virus// Am. Potato J., vol. 48, p. 262 267.

200. Singh R. P., Michniewiuz J. J., Narang S. A. 1975. Piperonyl butoxide, a potent inhibitor of potato spindle tuber viroid in Scopolia sinensis// Can. J. Biochem., vol. 53, p. 1130- 1132.

201. Singh R. P., O'Brien M. J. 1970. Additional indicator plants for potato spindle tuber virus// Amer. Potato J., vol. 47, №10, p. 367 371.

202. Singh R. P., Slack S. A. 1984. Reactions of tuber bearing Solanum species to infection with potato spindle tuber viroid// Plant Dis., vol. 68, p. 784-787.

203. Singh R. P., Somerville Т. H. 1987. New disease symptoms observed on field grown potato plants with potato spindle tuber viroid and potato virus Y infectious// Potato Res., vol. 30, p. 127 - 132.

204. Singh R.P., Boucher A., Somerville Т.Н. 1992. Detection of potato spindle tuber viroid in the pollen and various parts of potato plant pollinated with viroid infected pollen// Plant Dis., vol.,76, № 9, p. 951 - 953.

205. Singh R.P., Dhar A.K. 1998. Detection and management of plant viroids// In: Plant virus disease control. Hadidi A., Khetarpal R.K., Koganezawa H., eds. APS PRESS, The American Phytopathological Society, St. Paul, Minnesota, p. 428 448.

206. Skrzeczkowski L. J., Howell W. E., Mink G. I. 1993. Correlation between leaf epinasty symptoms on two apple cultivars and results of cDNA hybridization for detection of apple scar skin viroid// Plant Dis., vol. 77, p. 919-921.

207. Sogo J. M., Koller Т. H., Diener Т. O. 1973. Potato spindle tuber viroid: X. Vizualization and size determination by electron microscopy// Virology, vol. 55, №1, p. 70 80.

208. Spieker R. L., Haas В., Charng Y.-C., Freimuller K., Sanger H. L. 1990. Primary and secondary structure of a new viroid 'species' (CbVd 1) present in the Coleus blumei cultivar 'Bienvenue'// Nucl. Acids Res., vol. 18, p. 3998.

209. Stark-Lorenzen P., Guitton M.-C., Werner R., MUhlbach H.-P. 1997. Detection and tissue distribution of potato spindle tuber viroid in infectedtomato plants by tissue print hybridization// Arch. Virol., vol. 142, №7, p. 1289- 1296.

210. Stöcker S., Guittons M. C., Barth A., Mühlbach H. P. 1993. Photosynthetically active suspension cultures of potato spindle tuber viroid infected tomato cells as tools for studing viroid-host cell interaction// Plant Cell Reports, vol. 12, p. 597 602.

211. Syller J., Marczewski W. 2001. Potato leafroll virus assisted aphid transmission of potato spindle tuber viroid to potato leafroll virus - resistant potato// J. Phytopathol., vol. 149, № 3 - 4, p. 195 - 201.

212. Syller J., Marczewski W., Pawlowicz J. 1997. Transmission by aphids of potato spindle tuber viroid encapsidated by potato leafroll luteovirus particles// European Journal of Plant Pathology, vol. 103, p. 285 289.

213. Van Loon L.C. 1985. Pathogenesis related proteins// Plant Mol. Biol., vol. 4, p. 111-116.

214. Weidemann H.-L. 1987. The distribution of potato spindle tuber viroid in potato plants and tubers// Bulletin OEPP/EPPO Bulletin, vol. 17, p. 45 -50.

215. Weidemann H.-L., Buchta U. 1998. A simple and rapid method for the detection of potato spindle tuber viroid (PSTVd) by RT-PCR// Potato Res., vol. 41, № l,p. 1-8.

216. Xu H., Nie J., Ward L. J., De Boer S. H. 1999. Comparison of techniques for detection of potato spindle tuber viroid in dormant potato tubers: Abstr. Can. Phytopathol. Soc., Annu. Meet., Montreal//Can. J. Plant Pathol., vol. 21,№ 2, p. 206.

217. Yamamoto H., Kagani Y., Jurokawa M., Nishimura S., Ukawa S., Kubo S. 1973. Studies on hop stunt disease in Japan// Rept. Res. Lab. Kirin Brewery Co. Ltd., vol. 16, p. 49 62.

218. Yang Xicai, Kang Liangyi, Tien Po. 1997. Resistance of tomato infected with cucumber mosaic virus satellite RNA to potato spindle tuber viroid// Ann. Appl. Biol., vol. 130, № 1, p. 207 215.

219. Zaitlin M., Hariharasubramanian V. 1972. A gel electrophoretic analysis of protein from plants infected with tobacco mosaic and potato spindle tuber viruses// Virology, vol. 47, p. 296 305.

220. Состав питательных растворов, использованных в опыте1. Бентли,1965)1. Раствор № 30

221. Магний сернокислый 5,37 г Кальций азотнокислый 16,88 г Монокалий фосфат 3,5 г Калий сернокислый 1,5 г Раствор микроэлементов 1,56 мл Вода до 10 литров1. Раствор микроэлементов

222. Железо сернокислое закисное 14,1 г Борная кислота 1,963 г Марганец сернокислый 1,4 г Цинк сернокислый 0,141 г Медь сернокислая 0,141 г Серная кислота 0,625 г Вода до 100 мл