Трофические отношения в системе хозяин - паразит - симбионтная микрофлора: на примере пресноводных костистых рыб и цестод тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.19, доктор биологических наук Извекова, Галина Игоревна

• Извекова, Галина Игоревна
• доктор биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации доктор биологических наук Извекова, Галина Игоревна

Общая характеристика работы

Глава 1. Материал и методы исследований

1.1. Характеристика объектов исследования

1.2. Методы определения активности 16 пищеварительных ферментов

1.2.1. Исследование протеаз

1.2.2. Исследование карбогидраз

1.3. Методы определения конечных продуктов 19 углеводного обмена цестод (содержание молочной кислоты)

1.4. Методы исследования кишечной микрофлоры

1.4.1. Традиционные методы

1.4.2. Метод десорбции

1.4.3. Питательные среды

1.5. Схема проведения опытов

1.6. Статистическая обработка данных

Глава 2. Симбионтная микрофлора кишечника рыб (обзор литературы)

2.1. Общие сведения по микрофлоре кишечника 31 позвоночных животных

2.2. Микрофлора кишечника рыб

2.2.1. Численность бактерий кишечного тракта

2.2.2. Состав бактерий кишечного тракта рыб

2.2.3. Функциональное значение микрофлоры 70 кишечника для рыб

2.3. Кишечная микрофлора и обитающие в 83 кишечнике гельминты

Глава 3. Численность, биомасса и активность ферментов 88 микрофлоры, ассоциированной с пищеварительно-транспортиыми поверхностями рыб и цестод, паразитирующих в их кишечнике и полости тела

3.1. Численность и биомасса бактерий, смытых со 88 слизистой оболочки кишечника хозяина и тегумента его паразита

3.1.1. Щука - Triaenophorus nodulosus

3.1.2. Налим - Eubothrium rugosum

3.1.3. Лещ - Caryophyllaeus laticeps

3.1.4. Лещ - Ligula intestinalis

3.1.5. Общие закономерности распределения 99 бактерий на пищеварительно-транспортных поверхностях рыб и цестод

3.2. Активность протеаз микрофлоры, 107 ассоциированной с пищеварительно-транспортными поверхностями рыб и цестод

3.2.1. Щука - Triaenophorus nodulosus

3.2.2. Налим - Eubothrium rugosum

3.2.3. Лещ - Caryophyllaeus laticeps

3.2.4. Лещ - Ligula intestinalis

3.2.5. Общие закономерности функционирования 133 протеаз симбионтной микрофлоры

3.3. Активность карбогидраз микрофлоры и 141 карбогидраз, десорбированных с пищеварительнотранспортных поверхностей рыб и цестод

3.3.1. Общая амилолитическая активность

3.3.1.1. Щука - Triaenophorus nodulosus

3.3.1.2. Налим - Eubothrium rugosum

3.3 Л .3. Лещ - Caryophyllaeus laticeps

3.3 Л .4. Лещ - Ligula intestinalis

3.3.2. Активность а-милазы

3.3.2.1. Щука - Triaenophorus nodulosus

3.3.2.2. Налим - Eubothrium rugosum

3.3.2.3. Лещ - Caryophyllaeus laticeps

3.3.3. Активность дисахаридаз

3.3.3.1. Щука - Triaenophorus nodulosus

3.3.3.2. Налим - Eubothrium rugosum

3.3.3.3. Лещ - Caryophyllaeus laticeps

3.3.4. Активность карбогидраз, десорбированных 175 со слизистой кишечника рыб и тегумента цестод

3.3.4.1. Щука - Triaenophorus nodulosus

3.3.4.2. Налим - Eubothrium rugosum

3.3.4.3. Лещ - Caryophyllaeus laticeps

3.3.5. Общие закономерности функционирования 181 карбогидраз симбионтной микрофлоры

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Трофические отношения в системе хозяин - паразит - симбионтная микрофлора: на примере пресноводных костистых рыб и цестод»

Актуальность проблемы. Одна из фундаментальных проблем паразитологии - проблема взаимоотношений паразита и его хозяина. Питание - основа симбиоза и паразитизма, а знание механизмов, с помощью которых паразиты абсорбируют и частично утилизируют нутриенты, имеет фундаментальное значение для понимания паразитизма и отношений паразит - хозяин (Crompton, Hall, 1981). Цестоды - высокоспециализированные организмы, в биологии и морфологии которых проявляются многие важные черты адаптаций к паразитическому образу жизни (Куперман, 1988; Halton, 1997; Dalton et al., 2004). В силу ярко выраженного морфологического сходства пищеварительно-транспортных поверхностей цестод и кишечника их хозяев, а также благодаря значительно большей, по сравнению с другими гельминтами, биомассе и площади поверхности, принимающей участие в процессах пищеварения, цестоды оказывают существенное влияние на пищеварительную систему.

На примере ряда позвоночных животных установлена важная роль симбионтного пищеварения в процессах экзогенного питания (Уголев, 1985; Шивокене, 1989; Уголев, Кузьмина, 1993). К настоящему времени доказано, что существование высших организмов невозможно без постоянного взаимодействия с микроорганизмами, причем многие физиологические процессы у человека, животных и растений неразрывно связаны с соответствующими процессами у населяющих их бактерий (Уголев, 1985; Tannock, 1999; Пименов и др., 2004). Животное-хозяин и его кишечная микрофлора функционируют вместе как комплексная экологическая система, в которой кишечная микрофлора оказывает значительное влияние на организм хозяина, а компоненты микрофлоры - друг на друга (Rolfe, 1984). Микроорганизмы, заселяющие кишечник, обладают набором специфических ферментов, позволяющих гидролизовать субстраты, недоступные ферментам макроорганизма. В результате жизнедеятельности симбионтной микрофлоры образуются пищевые вещества, не нуждающиеся в дальнейшем гидролизе -аминокислоты, глюкоза, жирные кислоты и другие (Уголев, 1985; Уголев, Кузьмина, 1993). Микрофлора кишечника синтезирует многие витамины, необходимые для жизнедеятельности не только хозяина, но и паразита (Шишова-Касаточкина, Леутская, 1979). Согласно современным представлениям, макроорганизм следует рассматривать как единую систему более высокого иерархического уровня, чем отдельный индивидуум, выполняющий по отношению к микроорганизмам функцию доминанта и регулятора всей системы в целом (Уголев, 1985; Кузьмина, 2005). Бактерии-не только неотъемлемый, но и жизненно необходимый компонент пищеварительного тракта различных животных, в том числе рыб (Шивокене, 1989; Cahill, 1990; Кузьмина, 1996; Clements, 1997; Кузьмина, Скворцова, 2002 б; Кузьмина, 2005). Существует обширная литература, посвященная количественному и качественному составу энтеральной микрофлоры рыб (Шивокене, Трепшене, 1985; Лубянскене и др., 1989; Шивокене, 1989; Cahill, 1990; Syvokiene, 1991; Баздеркина, 1992; Ring0 et al., 1995; Clements, 1997; Grisez et al., 1997; Ring0, Gatesoupe, 1998; Syvokiene et al., 1999; Austin, 2002). Нормальная микрофлора пищеварительного тракта играет важную роль в жизнедеятельности макроорганизма, в частности в формировании иммунитета хозяина, синтезе ряда ферментов и витаминов, утилизации пищевых субстратов с выделением незаменимых аминокислот (Шивокене, Лубянскене, 1980; Шивокене, 1989; Sugita et al., 1991). Особое значение имеет резидентная микрофлора, т.е. микрофлора стенки кишечника, которая формирует природный экологический барьер, представляющий собой один из факторов устойчивости организма (Ring0 et al., 1995), и оказывает ингибирующее воздействие на патогенные микроорганизмы (Westerdahl et al., 1991). Существенный аспект изучения кишечной микрофлоры - оценка ее роли в питании макроорганизма, которое осуществляется за счет выделения бактериями внеклеточных ферментов, способных принимать участие в гидролизе биополимеров. Познание взаимоотношений между рыбами и бактериями, населяющими кишечник, - важный вклад в сравнительную физиологию пищеварения животных. Хозяин, паразит и симбионтная микрофлора представляют собой микробиоценоз со сложившимися за время совместной эволюции тесными взаимоотношениями, исследование которых важно для понимания происходящих в нем процессов (Чахава, Горская, 1982). Работ, касающихся взаимоотношений между микрофлорой кишечника и гельминтами, обитающими в нем, крайне мало. Изучение микрофлоры, ассоциированной с пищеварительно-транспортными поверхностями цестод, обитающих в кишечнике рыб, ограничивается серией исследований, проведенных в рамках совместного гранта РФФИ с коллегами из лаборатории экологической паразитологии (кбн Ж.В. Корневой и кбн Л.Г. Поддубной).

В то же время, для анализа основных закономерностей трофических взаимоотношений между хозяином и паразитом и выяснения роли в них симбионтного пищеварения необходимы сведения о наличии бактерий в пищеварительном тракте рыб и степени их ассоциации с пищеварительно-транспортными поверхностями, а также о способности этих бактерий выделять различные гидролитические ферменты. Кроме того, требуются данные об активности ферментов, функционирующих на структурах щеточной каймы энтероцитов и тегументе цестод, о соотношении активности одноименных ферментов как в зоне мембранного пищеварения у рыб и гельминтов, так и в полости кишечника хозяина, и, наконец, об активности одноименных ферментов бактерий.

Исследования трофических взаимоотношений между хозяином и паразитом, с учетом существования симбионтной микрофлоры, позволяют пересмотреть некоторые базовые принципы отношений паразита и хозяина и выявить не известные ранее механизмы пищевых адаптаций цестод.

Цель и задачи исследования. Цель работы - изучение трофических отношений, складывающихся в кишечнике пресноводных рыб между хозяином, паразитом и симбионтной микрофлорой. В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1. Разработать методические подходы к исследованию микрофлоры, с различной степенью прочности ассоциированной со слизистой оболочкой кишечника рыб и тегументом цестод.

2. Установить существование симбионтной микрофлоры, колонизирующей пищеварительно-транспортные поверхности кишечника рыб и цестод, и исследовать способность микрофлоры продуцировать ферменты, гидролизующие основные пищевые субстраты - белки и углеводы.

3. Оценить активность протеаз и амилаз, продуцируемых бактериями, с различной степенью прочности связанными с исследованными поверхностями, а также выяснить общие закономерности функционирования этих ферментов.

4. Сравнить уровни активности исследованных ферментов бактерий с характеристиками ферментов, десорбируемых с пищеварительно-транспортных поверхностей рыб и цестод.

5. Определить локализацию процессов симбионтного пищеварения на пищеварительно-транспортных структурах рыб и цестод.

6. Выявить основные пищевые адаптации цестод - паразитов рыб.

Положения, выносимые на защиту. 1. Бактерии, ассоциированные с пищеварительно-транспортными поверхностями кишечника рыб и цестод, вносят существенный вклад в процессы пищеварения хозяина и паразита. 2. Питание у цестод осуществляется в соответствии с трехзвенной схемой пищеварения, включающей мембранное и симбионтное пищеварение, а также всасывание, или транспорт мономеров. 3. Трофические отношения в системе «хозяин - паразит - симбионтная микрофлора» представлены преимущественно взаимовыгодными связями, устанавливающимися за время совместного существования.

Научная новизна. Впервые в идентичных методических условиях исследована симбионтная микрофлора, ассоциированная с пищеварительно-транспортными поверхностями паразита и хозяина, что позволило установить различную степень прочности фиксации микрофлоры с исследуемыми поверхностями. Впервые исследована способность симбионтной микрофлоры, локализованной на пищеварительно-транспортных поверхностях паразита и хозяина, гидролизовать белковые и углеводные компоненты пищи. Впервые существование симбионтной микрофлоры установлено не только для паразитов кишечника, но и для гельминта, паразитирующего в полости тела рыб. Впервые предпринята попытка выявить возможность участия и роль симбионтной микрофлоры в процессах гидролиза основных питательных веществ (белков и углеводов) у цестод и сравнить их с аналогичными процессами, протекающими в кишечнике хозяина. Впервые исследована способность симбионтной микрофлоры, ассоциированной с пищеварительно-транспортными поверхностями рыб и паразитирующих в них цестод, гидролизовать углеводы различной степени сложности (поли-, и дисахариды); сопоставлена амилолитическая активность ферментов, адсорбированных на слизистой кишечника и тегументе цестод, с активностью аналогичных ферментов бактерий. На примере низших цестод и их хозяев - рыб впервые установлены основные закономерности трофических взаимоотношений и функционирования системы "паразит-хозяин" с учетом роли симбионтной микрофлоры, что существенно дополняет представления об этих отношениях между паразитом и хозяином. Впервые исследованы заключительные стадии углеводного обмена у цестод Triaenophorus nodulosus и Eubothrium rugosum, что позволило выявить адаптивные изменения значений рН в окружении червей.

Теоретическая и практическая значимость. Работа выполнена в рамках плановых тем лаборатории экологической паразитологии ИБВВ РАН и грантов РФФИ (96-04-49080; 00-04-48289; 03-04-48271).

Результаты исследований существенно дополняют и расширяют представления об отношениях между хозяином и паразитом на примере рыб и низших цестод; способствуют систематизации сведений по пищевым адаптациям цестод; а также доказывают важную роль симбионтной микрофлоры в питании не только хозяина, но и паразита.

Сведения, приведенные в работе, могут быть использованы в вузах при чтении лекций в курсах паразитологии, экологии и физиологии пищеварения рыб.

Систематизированные представления по симбионтной микрофлоре кишечника рыб могут найти применение при разработке кормов и использовании пробиотиков в прудовых хозяйствах.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на следующих научных мероприятиях: VI Всероссийский симпозиум по популяционной биологии паразитов (Борок, 1996); «Экологический мониторинг паразитов» (С-Петербург, 1997); «Роль российской гельминтологической школы в развитии паразитологии» (Москва, 1997); «Взаимоотношения паразита и хозяина» (Москва, 1998); 50th Anniversary of Foundation and 18th Congress of Polish Parasitological Society Wiadomosci parazytologiczne, (Варшава, 1998); Совещание, посвященное 90-летию со дня рождения академика Б.Е. Быховского (С-Петербург, 1998); «История развития и современные проблемы гельминтологии в России» (Москва, 1999); «Механизмы функционирования висцеральных систем» (С-Петербург, 2001; 2003; 2005); «Паразитологические исследования в Сибири и на Дальнем Востоке» (Новосибирск, 2002; 2005); «Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера» (Сыктывкар, 2003; Вологда, 2005); «Паразиты рыб: современные аспекты изучения»

Борок, 2003); «Трофические связи в водных сообществах и экосистемах» (Борок, 2003); «Основные достижения и перспективы развития паразитологии» (Москва, 2004); Сибирская зоологическая конференция (Новосибирск, 2004); «Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов» (Петрозаводск, 2004); XIII международное совещание по эволюционной физиологии (С-Петербург, 2006).

Публикации. Материалы диссертации отражены более чем в 50 работах, в том числе в 32 статьях, опубликованных в рецензируемых журналах и сборниках.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 342 стр. машинописного текста, состоит из введения, 5 глав, заключения, выводов и списка цитируемой литературы, который включает 371 источник, из них 214 на английском языке. Работа проиллюстрирована 22 таблицами и 51 рисунком.

Заключение диссертации по теме «Паразитология», Извекова, Галина Игоревна

Выводы

1. С пищеварительно-транспортными поверхностями кишечника рыб и паразитирующих в них цестод ассоциированы бактерии, способные продуцировать ферменты, гидролизующие белки и углеводы. Присутствие бактерий с аналогичными свойствами отмечено и для плероцеркоида, паразитирующего в полости тела рыб. Использование гидролизованных бактериями нутриентов снижает энергетические затраты макроорганизмов на гидролиз высокомолекулярных субстратов.

2. Наряду со сходством функциональных свойств бактерий, колонизирующих пищеварительно-транспортные поверхности хозяина и паразита, отмечается и специфичность, связанная как с особенностями структуры слизистой кишечника и тегумента цестод, способных удерживать различное количество микроорганизмов, так и с существованием микрофлоры, избирательно колонизирующей ту или иную поверхность. Наибольший вклад в гидролиз белков и углеводов, как у хозяина, так и у паразита, очевидно, вносят микроорганизмы, более тесно связанные с их пищеварительно-транспортными поверхностями и труднее удаляемые из кишечника в ходе перистальтики.

3. При изменении содержания легкодоступных мономеров в среде, обнаруженные бактерии выделяют гидролитические ферменты или поглощают пищевые субстраты. Зависимость активности бактериальных ферментов от состава среды культивирования дает основание предполагать влияние интенсивности питания рыб на величину вклада ферментов микрофлоры в процессы пищеварения хозяина и паразита. Доля симбионтного пищеварения в гидролизе полимеров повышается при активном питании рыб, а при выключенном или ослабленном экзогенном питании бактерии конкурируют с хозяином и паразитом за доступные мономеры.

Бактерии продуцируют ферменты, деградирующие не только сложные углеводы, но и дисахариды. Учитывая низкую активность собственных дисахаридаз хозяина и паразита, присутствие бактерий, обладающих сахаразной и мальтазной активностью, особенно важно для макроорганизмов, поскольку глюкозу, образующуюся в результате гидролитической деятельности бактериальных ферментов, могут использовать все члены складывающегося сообщества. Общая протеолитическая, общая амилолитическая активность ферментов и активность а-амилазы бактерий проявляется в широком диапазоне значений рН. Уровни активности ферментов бактерий в условиях опыта сопоставимы с аналогичными характеристиками ферментов, десорбируемых с исследованных поверхностей и принимающих участие в процессах мембранного пищеварения у хозяина и паразита, что может свидетельствовать о значительном вкладе симбионтной микрофлоры в пищеварение макроорганизмов. На основе сопоставления собственных данных и обширного литературного материала для цестод предложена трехзвенная схема пищеварения, объединяющая всасывание (активный транспорт мономеров), мембранное пищеварение (осуществляемое с помощью собственных и адсорбированных из кишечника хозяина ферментов) и симбионтное пищеварение (осуществляемое с помощью ферментов бактерий, с различной степенью прочности ассоциированных на поверхности паразита).

Пищевые адаптации низших цестод, обитающих в кишечнике рыб, включают: а) более эффективные, чем у хозяев, системы транспорта мономеров, и в частности, глюкозы; б) использование ферментов хозяина для осуществления мембранного пищеварения; в) способность к сопряжению процессов гидролиза и транспорта нутриентов на поверхности тегумента; г) сочетание защиты от воздействия протеиназ хозяев с одновременным использованием этих ферментов для мембранного гидролиза белков; д) возможность использования ферментов симбионтной микрофлоры, ассоциированной с тегументом цестод; е) незначительное понижение рН окружающей среды, способствующее более эффективному функционированию транспортных систем паразита, не влияющее на активность основных пищеварительных гидролаз в кишечнике хозяина.

8. Трофические отношения в системе «хозяин - паразит - симбионтная микрофлора» включают разнонаправленные потоки гидролизованных и негидролизованных нутриентов, а также пищеварительных ферментов, продуцируемых трофическими партнерами и используемых как самими продуцентами, так и другими членами сложившегося сообщества.

5.7. Заключение

Цестоды - высоко адаптированные кишечные паразиты, лишенные кишечника, их тегумент развился в эффективный пищеварительно-транспортный слой, конкурирующий с мукозой позвоночных и дающий цестодам ряд кинетических преимуществ в избирательном поглощении нутриентов в пространстве паразит - хозяин (Halton, 1997). Различные биохимические процессы, происходящие у цестод на границе раздела паразит -хозяин, объединяют абсорбцию, переваривание, «защиту» и «передачу информации». Несомненно, каждый из этих процессов играет заметную роль в поддержании паразитического образа жизни цестод, но особенно важна интеграция процессов, которая определяет способность цестод эффективно конкурировать с хозяином за пищевые, пластические и энергетические ресурсы (Pappas, 1983). Прогресс у паразитов направлен не столько на повышение интеграции собственного организма, сколько на повышение интеграции со средой хозяина, как на биоценологическом, так и на организменном уровнях. Состояние устойчивого равновесия в гетерогенной системе паразит - хозяин достигается в достаточно узкой зоне взаимной толерантности партнеров (Краснощеков, 2000). Система паразит - хозяин двойственна по своей сути. С одной стороны, между ними существуют антагонистические отношения, с другой стороны - эволюция данной системы ведет к ее стабилизации и длительному существованию. Эволюция паразитов идет по пути постоянного совершенствования адаптивных механизмов, необходимых для их существования за счет хозяев. В результате наступает стабилизация системы паразит - хозяин, что выгодно в первую очередь паразиту (Оксов, 1991). Например, негативное воздействие на рост атлантического лосося {Salmo salar), инвазированного Eubothrium sp., отмечено только до двухмесячного возраста, у более взрослых рыб заражение паразитом на этот показатель не влияет (Saksvik et al., 2001).

Сопоставление полученных нами данных и обширного литературного материала позволяет расширить представления о питании у цестод и перейти от ранних представлений о существовании у них только систем активного транспорта мономеров, т.е. от однозвенной схемы пищеварения (Pappas, Read, 1975), к двухзвенной и далее - к трехзвенной. Двухзвенная схема (Кузьмина и др., 2000) объединяет мембранное пищеварение (осуществляемое с помощью собственных и адсорбированных из кишечника хозяина ферментов) и всасывание. Трехзвенная схема, наряду с этими двумя процессами, включает в себя также симбионтное пищеварение, осуществляемое с помощью ферментов бактерий, с различной степенью прочности ассоциированных на поверхности паразита. Как отмечено выше, для некоторых видов цестод показана также возможность осуществления пиноцитоза, который в отдельных случаях можно рассматривать как дополнительное, четвертое звено. Однако, по всей вероятности, пиноцитоз не вносит заметного вклада в процессы пищеварения цестод и обеспечение их пищевых потребностей. Современная схема пищеварения у рыб - окончательных хозяев цестод, обитающих в их кишечнике, включает шесть звеньев (Кузьмина, 1996). Для сравнения, схемы пищеварения у цестод и их хозяев - рыб представлены в таблице 5.2.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Извекова, Галина Игоревна, 2006 год

1. Аркинд М.В., Раева И.И. Мембранное пристеночное пищеварение у цестод // Журн. эвол. биох. и физиол. 1971. Т.7. № 4. С. 375-379.

2. Астафьев Б.А., Петров О.Е. Эволюционно-генетическая теория паразитизма//Усп. совр. биол. 1992. Т. 112. Вып. 2. С. 163-175.

3. Баздеркина С. А. Эколого-физиологическая характеристика микрофлоры пищеварительной системы карповых рыб при выращивании на теплых водах. Автореф. дис. на соиск. степ, к.б.н., Борок, 1992. 17 с.

4. Безбородов A.M., Астапович Н.И. Секреция ферментов у микроорганизмов. М.: Наука, 1984. 70 с.

5. Беэр С.А. Роль фактора патогенности паразитов в эволюции органического мира // Усп. общ. паразитол. Труды Института паразитологии . М.: Наука. 2004. Т. XLIV. С. 65-80.

6. Бухарин О.В., Литвин В.Ю. Патогенные бактерии в природных экосистемах. Екатеринбург: УрО РАН, 1997. 277 с.

7. Вайнштейн М.Б., Кудряшова Е.Б. О наннобактериях // Микробиология. 2000. Т. 69. №2. С. 163-174.

8. Веригина И.А., Жолдасова И.М. Эколого-морфологические особенности пищеварительной системы костистых рыб. Ташкент: Фан. 1982.151 с.

9. Выхрестюк Н.П., Буренина Э.А. Углеводный обмен и его регуляция у трематод. Владивосток.: Дальнаука. 2001. 203 с.

10. Гальперин Ю.М., Лазарев П.И. Пищеварение и гомеостаз. М.: Наука. 1986.304 с.

11. Георгиевский А.Б. Эволюция адаптаций (историко-методологическое исследование) Л., 1989. с.

12. Голованова И.Л. Интенсивность всасывания различных Сахаров в кишечнике двухлетних карпов // Биол. внутр. вод.: информ. бюл. 1985. № 66. С. 50-54.

13. Голованова И.JI. Механизмы всасывания глюкозы и галактозы в кишечнике леща и карпа // Биол. внутр. вод: информ. бюл. 1988. № 79. С. 67-71.

14. Голованова И.Л. Некоторые характеристики транспорта углеводов в кишечнике рыб-бентофагов на примере леща и карпа. Автореф. дис. на соиск. степ, к.б.н., Ленинград, 1991. 23 с.

15. Грачева И.М, Гернет М.В. Пути синтеза и регуляция образования глюкоамилазы, выделение и очистка ее // Итоги науки и техники. Серия Микробиология. Биосинтез ферментов микроорганизмами. 1978. Т.9. С. 89-133.

16. Давыдов О.Н, Куровская Л.Я. Паразито-хозяинные отношения при цестодозах рыб. Киев: Наукова Думка, 1991. 169 с.

17. Дегтева Г.К, Лавровский С.Н, Беляева Е.В. Микробные гидролазы -ферментные препараты. Нижний Новгород: Из-во Нижненовгородского госуниветситета. 2001. 224 с.

18. Диксон М., Уэбб Э. Ферменты. М.: Мир, 1982. 1118 с.

19. Добровольский А.А., Евланов И.А, Шульман С.С. Паразитарные системы: анализ структуры и стратегии, определяющий их устойчивость // Экологическая паразитология. Петрозаводск: КНЦ РАН. 1994. С. 5-45.

20. Дубинина М.Н. Ремнецы фауны СССР. М, Л: Наука, 1966. 261 с

21. Дубовская А.Я. Сравнительное исследование потребления белков различной биологической ценности цестодами Bothriocephalus scorpii И Труды Всесоюзного института гельминтологии. 1971. Т. 17. С. 41-45.

22. Дубовская А.Я. Исследование протеолитической активности у некоторых видов цестод // Паразитология. 1973. Т. 7. Вып. 2 С. 154159.

23. Еренская А.С. Изучение протеолитической активности лентеца широкого // Актуальные вопросы гигиены питания. Труды ЛОГМИ. 1974. Т. 107. С. 67-71.

24. Извекова Г.И. Характеристика транспорта глюкозы у цестоды Eubothrium rugosum И Паразитология. 1988 а. Т. 22. № 3. С. 210-215.

25. Извекова Г.И. Особенности транспорта углеводов у цестоды Eubothrium rugosum II Паразитология. 1988 б. Т. 22. № 4. С. 337-341.

26. Извекова Г.И. Транспорт некоторых углеводов у цестоды Triaenophorus nodulosus II Паразитология. 1989. Т. 23. № 3. С. 222-228.

27. Извекова Г.И. Динамика десорбции карбогидраз с поверхности кишечника рыб и паразитирующих в них цестод // Паразитология. 1990. Т. 24. №6. С. 485-492.

28. Извекова Г.И. Некоторые характеристики гидролиза белков на пищеварительно-транспортных поверхностях цестоды Eubothrium rugosum и кишечника ее хозяина налима // Паразитология. 1991. Т. 25. В. 3. С. 244-249.

29. Извекова Г.И. Содержание белка, углеводов и транспорт глюкозы в разных частях стробилы у цестоды Eubothrium rugosum II Паразитология. 1997. Т. 31. № 2. С. 90-96.

30. Извекова Г.И. Некоторые аспекты паразито-хозяинных отношений в системе Ligula intestinalis лещ // Экологический мониторинг паразитов. С-Петербург. 1997. С. 147.

31. Извекова Г.И. Закономерности процессов ассимиляции пищи у цестод и их хозяев рыб // Роль российской гельминтологической школы в развитии паразитологии. Москва. 1997. С. 24.

32. Извекова Г.И. Характерные особенности паразито-хозяинных отношений в системе Ligula intestinalis лещ // Проблемы цестодологии. Сборник научных трудов . Сп-б: ЗИН РАН. 1998. С. 5059.

33. Извекова Г.И. Физиологическая специфика взаимоотношений между Triaenophorus nodulosus (Cestoda) и его хозяевами рыбами // Взаимоотношения паразита и хозяина. Москва. 1998. С. 29.

34. Извекова Г.И. Некоторые аспекты паразито-хозяинных отношений в системе Ligula intestinalis (L.) (Cestoda, Pseudophyllidea) лещ // Известия АН. Серия биологическая. 1999. № 4. С.432-438.

35. Извекова Г.И. Ligula intestinalis (Cestoda): своеобразие углеводного обмена // История развития и современные проблемы гельминтологии в России. Москва. 1999. С. 19.

36. Извекова Г.И. Физиологическая специфика взаимоотношений между Triaenophorus nodulosus (Cestoda) и его хозяевами рыбами // Паразитология. 2001 а. Т.35. Вып.1. С.60-68.

37. Извекова Г.И. Ligula intestinalis (Cestoda, Pseudophyllidea): некоторые аспекты углеводного обмена плероцеркоидов // Биол. внутр. вод. 2001 б. №2. С. 101-106.

38. Извекова Г.И. Особенности заключительных этапов углеводного обмена у цестод Ligula intestinalis и Triaenophorus nodulosus II Проблемы цестодологии. Товарищество научных изданий КМК, Москва. 2002 а. В. 2. С. 97-111.

39. Извекова Г.И. Активность протеаз микрофлоры пищеварительно-транспортных поверхностей кишечника щуки и паразитирующего в нем Triaenophorus nodulosus (Pallas, 1781) (Cestoda, Pseudophyllidea) // Биол. внутр. вод. 2003 а. № 2. С.96-101.

40. Извекова Г.И. Характеристика заключительных этапов углеводного обмена у цестоды Eubothrium rugosum (Cestoda, Pseudophyllidea) // Паразитология. 2003 в. Т. 37. № 6. С. 496-502.

41. Извекова Г.И. Гидролитическая активность ферментов микрофлоры, ассоциированной с пищеварительно-транспортными поверхностями кишечников рыб и паразитирующих в них цестод // Паразиты рыб: современные аспекты изучения. Борок. 2003. С. 24.

42. Извекова Г.И. Некоторые особенности заключительных этапов углеводного обмена у цестоды Eubothrium rugosum II Паразиты рыб: современные аспекты изучения. Борок. 2003. С. 25.

43. Извекова Г.И. Трофические отношения в системе хозяин паразит -симбионтная микрофлора // Трофические связи в водных сообществах и экосистемах. Борок. 2003. С. 45-46.

44. Извекова Г.И. Функционирование пищеварительной системы рыб при заражении гельминтами: роль симбионтной микрофлоры // Механизмы функционирования висцеральных систем. С-Петербург. 2003. С. 125.

45. Извекова Г.И. Пищевые взаимоотношения рыб и паразитирующих в них цестод: роль ферментов симбионтной микрофлоры // Сибирская зоологическая конференция. Новосибирск. 2004. С. 377.

46. Извекова Г.И. Роль симбионтной микрофлоры в пищеварительных процессах рыб и паразитирующих в них цестод // Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов. Петрозаводск. 2004. С. 56.

47. Извекова Г.И. Активность карбогидраз симбионтной микрофлоры и их роль в процессах пищеварения у рыб и паразитирующих в них цестод (на примере щуки и Triaenophorus nodulosus) И Журнал эвол. биох. физиол. 2005 б. Т.41. № 4. С. 325-331.

48. Извекова Г.И. Пищевые адаптации у низших цестод паразитов рыб // Паразитологические исследования в Сибири и на Дальнем Востоке. Новосибирск. 2005. С. 78-80.

49. Извекова Г.И. Симбионтное пищеварение как физиологическая коадаптация в условиях кишечного биоценоза (рыбы цестоды -микрофлора) // XIII Международное совещание по эволюционной физиологии. С-Петербург. 2006. С. 90.

50. Извекова Г.И. Гидролитическая активность ферментов микрофлоры и ее роль в процессах пищеварения у леща и паразитирующего в его кишечнике Caryophyllaeus laticeps (Cestoda, Caryophyllidea) // Известия РАН. Серия биологическая. 2006. № 3. С. 358-364.

51. Извекова Г.И, Комова А.В. Роль а-амилазы микрофлоры в процессах пищеварения у низших цестод и их хозяев рыб // Основные достижения и перспективы развития паразитологии. Москва. 2004. С. 121-122.

52. Извекова Г.И., Комова А.В. Роль а-амилазы симбионтной микрофлоры в процессах пищеварения у низших цестод и их хозяев рыб // Известия РАН. Серия биологическая. 2005. № 2. С. 208-213.

53. Извекова Г.И., Корнева Ж.В. Симбионтное пищеварение у рыб при заражении цестодами // Механизмы функционирования висцеральных систем. С-Петербург. 2005. С. 103-104.

54. Извекова Г.И., Кузьмина В.В. Сравнительная характеристика некоторых особенностей транспорта углеводов у цестод и в кишечнике их хозяев рыб // Биол. внутр. вод: инф. бюл. Л.: Наука. 1988. № 79. С. .38-41.

55. Извекова Г.И., Кузьмина В.В. Гидролиз и транспорт Сахаров у цестоды Caryophyllaeus laticeps и в кишечнике ее хозяина леща // Паразитология. 1991. Т. 25. № 6. С. 536-543.

56. Извекова Г.И., Лаптева Н.А. Закономерности пищеварительно-транспортных процессов у цестод и в кишечнике их хозяев-рыб // Механизмы функционирования висцеральных систем. С-Петербург. 2001. С. 145.

57. Извекова Г.И., Лаптева Н.А. Микрофлора пищеварительно-транспортных поверхностей кишечника щуки и паразитирующего в нем Triaenophorus nodulosus (Cestoda, Pseudophyllidea) // Биол. внутр. вод. 2002. № 4. С. 75-79.

58. Извекова Г.И., Лаптева Н.А. Микрофлора, ассоциированная с пищеварительно-транспортными поверхностями рыб и паразитирующих в них цестод // Экология. 2004 а. № 3. С. 205-209.

59. Извекова Г.И., Лаптева Н.А. Симбионтная микрофлора, ассоциированная с поверхностью плероцеркоида Ligula intestinalis (L.) (Cestoda, Pseudophyllidea) // Гидробиол. журн. 2004 б. Т. 40. № 2. С. 7886.

60. Исследование пищеварительного аппарата у человека (обзор современных методов). Л.: Наука. 1969. 260 с.

61. Коновалов Ю.Д. Свойства, локализация, роль и возможные пути регуляции активности протеиназ и аминотрансфераз в раннем онтогенезе рыб // Усп. совр. биол. 1986. Т. 101. В. 3. С. 359-373.

62. Копылов А.И., Крылова И.Н. Структура бактериопланктона Рыбинского водохранилища // Современное состояние экосистемы Рыбинского водохранилища. СПб.: Гидрометеоиздат. 1993. С. 141-173.

63. Корнева Ж.В. Ультраструктурная организация бактерий, ассоциированных с тегументом цестоды Triaenophorus nodulosus и кишечником ее хозяина щуки // Сибирская зоологическая конференция. Тезисы докладов. Новосибирск. 2004. С. 384.

64. Корнева Ж.В. Симбионтная микрофлора, колонизирующая тегумент протеоцефалидных цестод // Паразитологические исследования в Сибири и на Дальнем Востоке. Материалы II межрегиональной научной конференции. Новосибирск. 2005. С. 92-94.

65. Корнева Ж.В., Плотников А.О. Симбионтная микрофлора, колонизирующая тегумент Triaenophorus nodulosus (Cestoda) и кишечник его хозяина щуки // Паразитология. В печати.

66. Корнева Ж.В., Плотников А.О. Симбионтная микрофлора, колонизирующая тегумент протеоцефалидных цестод и кишечник их хозяев рыб// Паразитология. В печати.

67. Краснощеков Г.П. Паразитарные системы: II. Воспроизводство популяций паразита и их биоценологические взаимодействия. Тольятти. 1996. 67 с.

68. Краснощеков Г.П. Паразитизм: критерии и экологический статус // Успехи совр. биол. 2000. Т. 120. № 3. С. 253-264.

69. Крылов Ю.М., Долгих Е.А., Долгих В.В. Активность лактатдегидрогеназы и изменение спектра ее изоферментов в печени леща Abramis brama при паразитировании плероцеркоидов цестоды Digramma interrupta // Паразитология. 1993. Т.27. Вып. 4. С. 332-335.

70. Кудрявцев В.М. Численность бактерий в зарослях и обрастаниях высших водных растений // Гидробиол. журн. 1978. Т. 14. № 6. С. 1420.

71. Кузнецов С.И., Дубинина Г.А. Методы изучения водных микроорганизмов. М.: Наука, 1989. 283 с.

72. Кузьмина В.В. Применение метода последовательной десорбции а-амилазы с отрезков кишки при изучении мембранного пищеварения у рыб // Вопр. ихтиол. 1976. Т. 16. В. 5. С. 944-946.

73. Кузьмина В.В. Мембранное пищеварение у круглоротых и рыб // Вопр. ихтиол. 1978. Т. 18. Вып. 4(111). С. 684-696.

74. Кузьмина В.В. Общие закономерности мембранного пищеварения у рыб и его адаптивные перестройки / Автореф. дис. . докт. биол. наук. JL: ИЭФиБ, 1986. 39 с.

75. Кузьмина В.В. Активность пищеварительных ферментов слизистой кишечника у различающихся по экологии костистых рыб Черного моря //Вопр. ихтиологии. 1992. Т. 32. Вып. 2. С. 141-148.

76. Кузьмина В.В. Защитная функция пищеварительного тракта рыб // Вопр. ихтиол. 1995. Т. 35. № 1. С.86-93.

77. Кузьмина В.В. Трофология рыб (физиолого-биохимические аспекты) // Биол. внутр. вод. 1996. № 1. С. 14-23.

78. Кузьмина В.В. Трофическая, защитная и трансформационная функции пищеварительной системы рыб // Вопр. ихтиол. 1999. Т.39. № 1. С.69-77.

79. Кузьмина В.В. Физиологические адаптации (на примере экзотрофии у рыб)//Журн. эвол. биохим. физиол. 2001. Т. 37. № 3 С. 215-224.

80. Кузьмина В.В. Физиолого-биохимические основы экзотрофии рыб. М.: Наука. 2005. 300 с.

81. Кузьмина В.В., Голованова И.Л. Влияние рН на амилолитическую активность слизистой кишечника у некоторых видов пресноводных костистых рыб // Вопросы ихтиологии. 1980. Т. 20. В. 3. С. 566-571.

82. Кузьмина В.В, Голованова И.Л., Извекова Г.И. Влияние различных факторов на процесс всасывания глюкозы в кишечнике рыб // Биол. внутр. вод: инф. бюл. 1987. № 76. С. 41-44.

83. Кузьмина В.В, Извекова Г.И. Механизмы транспорта углеводов в кишечнике пресноводных костистых рыб // Биол. внутр. вод: инф. бюл. 1988. № 79. С. 42-44.

84. Кузьмина В.В, Извекова Г.И. Влияние температуры на кинетические характеристики сахаразы слизистой кишечника рыб // Биол. внутр. вод: инф. бюл. 1992. № 92. С. 58-63.

85. Кузьмина В.В, Извекова Г.И, Куперман Б.И. Особенности физиологии питания цестод и их хозяев рыб // Усп. совр. биол. 2000. Т. 120. № 4. С. 384-394.

86. Кузьмина В.В, Куперман Б.И. Сравнительная характеристика мембранного пищеварения у цестод и их хозяев рыб // Паразитология. 1983. Т. XVII. № 6. С.436-442.

87. Кузьмина В.В, Скворцова Е.Г. Активность протеиназ энтеральной микробиоты рыб: ревизия методических подходов // Биол. внутр. вод. 2002 а. № 3. С. 76-83.

88. Кузьмина В.В, Скворцова Е.Г. Бактерии желудочно-кишечного тракта и их роль в процессах пищеварения у рыб // Успехи совр. биол. 2002 б. Т. 122. №6. С. 569-579.

89. Кузьмина В.В, Скворцова Е.Г, Первушина К.А. Активность протеиназ энтеральной микробиоты рыб: влияние температуры и рН // Биол. внутр. вод. 2002. № 4. С. 69-74.

90. Куперман Б.И. Ленточные черви рода Triaenophorus паразиты рыб. Л.: Наука. 1973. 207 с.

91. Куперман Б.И. Биология и цикл развития Eubothrium rugosum (Cestoda: Pseudophyllidea) // Проблемы гидропаразитологии. Киев, 1978. С. 105112.

92. Куперман Б.И. Ультраструктура покровов цестод и ее значение для систематики // Паразитол. сборник Зоологического института АН СССР. Л., 1980. Т. 29. С. 84-95.

93. Куперман Б.И. Функциональная морфология низших цестод. 1988. Л.: Наука. 168 с.

94. Куперман Б.И., Извекова Г.И. Таликина М.Г., Папченкова Г.А. Популяционные и морфофизиологические аспекты паразито-хозяинных отношений при лигулезе // VI Всероссийский симпозиум по популяционной биологии паразитов. Борок. 1996. С. 51-52.

95. Куперман Б.И., Извекова Г.И. Кузьмина В.В. Морфологические и физиологические аспекты взаимоотношений цестод и их хозяев рыб // Совещание, посвященное 90-летию со дня рождения академика Б.Е. Быховского. С-Петербург. 1998. С. 52-54.

96. Куперман Б.И., Кузьмина В.В. Ультраструктура кишечного эпителия щуки Esox lucius L. (Esocidae) // Вопр. ихтиол. 1984. Т. 24. Вып. 3. С. 431-437.

97. Куперман Б.И., Кузьмина В.В., Веригина И.А. Ультраструктура кишечного эпителия налима Lota lota (L.) (Gadidae) // Вопр. ихтиол. 1985. Т. 25. Вып. 2. С. 275-282.

98. Куровская Л.Я. Изучение трофических связей лентецов и рыб и влияния на них ряда антгельминтиков: Автореф. дис. канд.биол.наук. Киев, 1978. 20 с.

99. Куровская Л.Я. Сопряженность процессов пищеварения в системе Bothriocephalus acheilognathi карп // Паразитология. 1991. Т. 25. Вып. 5. С. 441-449.

100. Кушак Р.И. Пищеварительно-транспортная система энтероцитов. Рига. 1983. 304 с.

101. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа. 1980. 294 с.

102. Лубянскене В, Вирбицкас Ю., Янкявичюс К. и др. Облигатный симбиоз микрофлоры пищеварительного тракта и организма. Вильнюс: Мокслас, 1989. 192 с.

103. Лубянскене В, Шивокене Я, Тряпшене О, Лясаускене Л, Грибаускене В. Микрофлора пищеварительного тракта рыб // Acta hydrobiologica Lituanica. 1980. V. l.P. 87-94.

104. Лубянскене В, Ястюгинене Р. Микроорганизмы пищеварительного тракта плотвы озера Друкшяй и их активность // Ekologija (Vilnius). 1995. №3. С. 17-22.

105. Метельский С.Т, Уголев A.M. Сравнение двух путей транспорта натрия через стенку тонкой кишки крысы in vitro // ДАН СССР. 1983. Т. 269. №3. С. 767-768.

106. Мосолов В.В. Протеолитические ферменты. М.: Наука. 1971. 413 с.

107. Никольский Н.Н. Всасывание Сахаров // Физиология всасывания. Л. «Наука». 1977. С. 249-277.

108. Оксов И.В. Тканевой уровень организации системы паразит хозяин // Паразитология. 1991. Т. 25. № 1. С. 3-12.

109. Олескин А.В. Надорганизменный уровень взаимодействия в микробных популяциях //Микробиология. 1993. Т. 62. № 3. С. 389-403.

110. Осадчая А.И, Кудрявцев В.А, Сафронов Л.А, Смирнов В.В. Влияние источников питания на синтез экзополисахаридов и аминокислот штаммами Bacillus subtilis II Мжробюл. журн. 1999. 61. № 5. С. 56-63.

111. Пименов Е.В., Дармов И.В, Бывалов А.А, Рудой Б.А, Чеботарев Е.В, Рощевский М.П. Актуальные проблемы физиологии микроорганизмов //Журн. эволюц. биохим. физиол. 2004. Т.40. № 2. С. 180-186.

112. Поддубный А.Г. Экологическая топография популяций рыб в водохранилищах. Л, 1971. 312 с.

113. Подцубная Л.Г. Электронно-микроскопическое исследование микрофлоры, ассоциированной с тегументом цестоды Eubothriumrugosum, паразита кишечника налима // Паразитология. 2005. Т.39. № 4. С.293-298.

114. Прист Ф. Внеклеточные ферменты микроорганизмов. М.: Мир. 1987. 117 с.

115. Пронина С.М., Пронин Н.М. Взаимоотношения в системах гельминты рыбы М.: Наука. 1988. 176 с.

116. Протасова Е.Н., Куперман Б.И., Ройтман В.А., Поддубная Л.Г. Кариофиллиды фауны СССР М.: Наука, 1990. 238 с.

117. Ройтман В.А., Беэр С.А. Паразитарные системы: понятия, концепции, структуры, свойства, функции в экосистемах // Успехи общей паразитологии. Труды Института паразитологии. М.: Наука. 2004. Т. XLIV. С. 273-317.

118. Роджерс Г.Дж. Метаболизм бактерий. Иностранная литература. 1963. 496 с.

119. Родина А.Г. Методы водной микробиологии. М.-Л.: Наука, 1965. 363 с.

120. Романенко В.И., Кузнецов С.И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Л.: Наука, 1974. 194 с.

121. Рощина Г.М. Особенности всасывания углеводов у некоторых видов костистых рыб // Журн. эволюц. биох. физиол. 1981. Т. 17. № 1. С. 9394.

122. Сергеева Е.Г., Беэр С.А. Факторы паразито-хозяинной специфичности // Актуальные проблемы общей паразитологии. Труды Института паразитологии РАН. М.: Наука. 2000. Т. XLII. С. 192-204.

123. Скворцова Е.Г. Роль протеиназ объектов питания и энтеральной микробиоты в процессах пищеварения у рыб разных экологических групп. Автореф. дис. канд. биол. наук. Борок. 2002. 21 с.

124. Смит Л.С. Введение в физиологию рыб. М.: Агропромиздат. 1986. 166 с.

125. Сопрунов Ф.Ф. Успехи в изучении углеводного обмена гельминтов // Труды ГЕЛАН СССР. 1984. Т. 32. С. 121-154.

126. Сопрунов Ф.Ф. Молекулярные основы паразитизма. М.: Наука. 1987. 224 с.

127. Сорвачев К.Ф. Основы биохимии питания рыб. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1982. 247.С.

128. Стасюнайте П., Шивокене Я., Скродените В. Влияние вида корма на взаимосвязь микробиологических и ростовых показателей кумжи {Salmo trutta trutta L.) // Ekologija (Vilnius). 1996. № 1. C. 13-17.

129. Уголев A.M. Видовые и индивидуальные адаптации пищеварительных желез // Изв. АН СССР. Сер. биологическая. 1960. № 5. С. 768-774.

130. Уголев A.M. Физиология и патология пристеночного (контактного) пищеварения. Л.: Наука. 1967. 230 с.

131. Уголев A.M. Мембранное пищеварение. Полисубстратные процессы, организация и регуляция. Л.: Наука. 1972. 356 с.

132. Уголев A.M. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций. 1985. Л.: Наука. 544 с.

133. Уголев A.M. Теория адекватного питания и трофология. С-П.: Наука, 1991.272 с.

134. Уголев A.M., Иезуитова Н.Н. Мембранное пищеварение. Структурная и функциональная организация // Успехи физиол. наук. 1985. Т. 16. № 4. С. 3-34.

135. Уголев A.M., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. С-П.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.

136. Уголев A.M., Кузьмина В.В., Рощина Г.М., Смирнова Л.Ф., Голованова И.Л., Груздков А.А. Характеристика мембранного гидролиза и транспорта у рыб // Известия АН СССР (серия биол.). 1989. № 3. С. 341-349.

137. Чахава О.В. Гнотобиология. М.: Медицина, 1972. 200 с.

138. Чахава О.В., Горская Е.М. Гнотобиологический принцип исследования взаимоотношений паразита с хозяином // Паразиты и паразитозы человека и животных. Киев: Наукова Думка, 1982. С.57-63.

139. Чахава О.В, Горская Е.М, Рубан С.З. Микробиологические и иммунологические основы гнотобиологии. М.: Медицина, 1982. 160 с.

140. Шивокене Я.С. Роль микроорганизмов пищеварительного тракта в питании прудовых рыб. 23. Изменчивость физиологических групп микроорганизмов в зависимости от характера питания рыб // Труды Академии наук Литовской ССР. 1980. Т. 2(90). С. 77-83.

141. Шивокене Я. С. Активность амилолитических и протеолитических ферментов микрофлоры химуса, слизистой пищеварительного тракта и пищи двухлеток карпа при кормлении комбикормом // Труды Академии наук Литовской ССР Серия В. 1984. Т. 1 (85). С. 47-54.

142. Шивокене Я. Симбионтное пищеварение у гидробионтов и насекомых. Вильнюс: Мокслас, 1989. 223 с.

143. Шивокене Я, Мицкенене Л. Изменчивость бактериоценозов пищеварительного тракта рыб в зависимости от питания // Трофические связи в водных сообществах и экосистемах. Материалы Международной конференции. Борок. 2003. С. 137.

144. Шивокене Я, Мицкенене Л, Восилене 3. Влияние сырой нефти на бактериоценоз кишечника радужной форели // Актуальные проблемы экологической физиологии, биохимии и генетики животных. Материалы международной научной конф. Саранск. 2005. С. 273-276.

145. Шивокене Я., Мицкенене Л., Лазаускене Л., Сабалюнене И., Репечка Р., Вайтонис Г. Микроорганизмы, ассоциированные с кишечником гидробионтов // Ekologija (Vilnius). 1992. № 3. С. 3-15.

146. Шивокене Я., Мицкенене Л., Милерене Э., Репечка Р., Вайтонис Г. Микрофлора пищеварительного тракта гидробионтов Каунасского водохранилища // Ekologija (Vilnius). 1996. № 1. С. 29-34.

147. Шивокене Я.С., Трепшене О.П. Численность и биомасса бактерий пищеварительного тракта прудовых рыб в зависимости от особенностей их питания // Вопросы ихтиол. 1985. 25. 5. С. 821-827.

148. Шишова-Касаточкина О.А., Дубовская А.Я. Некоторые стороны белкового обмена у цестод-паразитов позвоночных различных классов // Цестоды и трематоды. Морфология, систематика и экология. Тр. ГЕЛАН. 1977. Т. 27. С. 211-221.

149. Шишова-Касаточкина О.А., Леутская З.К. Биохимические аспекты взаимоотношений гельминта и хозяина. М.: Наука, 1979. 279 с.

150. Шишова-Касаточкина О.А., Павлов А.В. К вопросу о причинах резистентности гельминтов по отношению к протеолитическим ферментам кишечника хозяина // Труды ГЕЛАН СССР. 1969. Т. 20. С. 195-204.

151. Al-Harbi А.Н., Uddin M.N. Seasonal variation in the intestinal bacterial flora of hybrid tilapia (Oreochromis niloticus * Oreochromis aureus) cultured in earthen ponds in Saudi Arabia // Aquaculture. 2004. V. 229. P. 37-44.

152. Anson M. The estimation of pepsin, tripsin, papain and eathepsin with hemoglobin // J. Gener. Phys. 1938. V.22. № 1. P. 79-83.

153. Arme C. Ontogenetic changes in helminth membrane function // Parasitology 1988. 96 (Suppl.). S83-S104.

154. Arme C., Bridges J. F., Hoole D. Infections in the vertebrate host // Biology of the Eucestoda. Academic Press, 1983. V. 2. P. 449-538.

155. Arme С. Ligulosis in two cyprinid host: Rutilus rutilus and Gobio gobio II Helminthologia. 1997. V. 34. № 4. p. 191-196.

156. Arme C., Owen, R.W. Observations on a tissue response within the body cavity of fish infected with the plerocercoid of Ligula intestinalis (L.) (Cestoda) // J. Fish Biol. 1970. 2. 35-37.

157. Arme C., Read C.P. A surface enzyme in Hymenolepis diminuta (Cestoda) // J. Parasitol. 1970. V. 56. P. 514-516.

158. Austin B. The bacterial microflora of fish // The Scientific Word Journal. 2002. 2. P. 558-572.

159. Austin В., Al-Zahrani A. M. J. The effect of antimicrobial compounds on the gastrointestinal microflora of rainbow trout, Salmo gairdueri Rchardson //J. Fish Biol. 1988. V. 33. P. 1-14.

160. Bailey H.H., Fairbairn D. Lipid metabolism in helminth parasites. V. Absorption of fatty acids and monoglycerides from micellary solution by Hymenolepis diminuta (Cestoda) // Сотр. Biochem. Physiol. 1968. V. 26. P. 819-836.

161. Bairagi A., Ghosh K.S., Sen S.K., Ray A.K. Enzyme producing bacterial flora isolated from fish digestive tracts // Aquaculture International. 2002. V. 10. P. 109-121.

162. Barker S.B., Summerson W.H. The colorimetric determination of lactic acid in biological material // J. Biol. Chem. 1941. V. 138. № 2. P. 535-554.

163. Barrett J. The anaerobic end-products of helminthes // Parasitol. 1984. V. 88. № 1. P. 179-198.

164. Barrett J. Developmental aspects of metabolism in parasites // International J. for Parasitol. 1987. V. 17. P. 105-110.

165. Barrett J., Precious W.Y. Application of metabolic control analysis to the pathways of carbohydrate breakdown in Hymenolepis diminuta // Intern. J. for Parasitol. 1995. V. 25. № 4. P. 431-436.

166. Behm С.A, Bryant С. Studies of regulatory metabolism in Moniezia expansa: general consideration // Intern. J. for Parasitol. 1975. V. 5. P. 209217.

167. Behm C.A, Bryant C, Jones A.J. Studies glucose metabolism in Himenolepis diminuta using 13C nuclear magnetic resonance // Int. J. Parasitol. 1987. V. 17. №7. P. 1333-1341.

168. Bennet E.M., Behm C.A, Bryant C. The role of the host in the regulation of end-product formation in two strains of the rat tapeworm, Hymenolepis diminuta II Int. J. Parasitol. 1990. V.20. №> 7. P. 841-848.

169. Bennet E.M, Heath P.A, Bryant C. The effects of changes in the definitive host environment on the metabolism of Hymenolepis diminuta during growth and maturation // Int. J. Parasitol 1993. V.23. № 1. P. 57-68.

170. Berg R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract // Trends Microbiol. 1995. № 3(4). P. 149-154.

171. Berg R.D. The indigenous gastrointestinal microflora // Trends in Mirobiol. 1996. Vol. 4. № 11. P. 430-435.

172. Beveridge T.J. Bacterial structure and its implication in the mechanisms of infection: a short review // Can. J. Microbiol. 1980. V. 26. № 6. P. 643-653.

173. Blum S, Alvarez S, Haller D, Perez P, Schiffrin E.J. Intestinal microflora and the interaction with immunocompetent cells // Antonie van Leeuwenhoek. 1999. V. 76. P. 199-205.

174. Bolla R.J, Robesrts H.S. Developmental physiology of cestodes X. The effect of crowding on carbohydrate levels and on RNA, DNA and protein synthesis in Hymenolepis diminuta И Сотр. Biochem. Physiol. 1971.V. 40. № ЗА P. 777-787.

175. Brand T. von Biochemistry of parasites. Academic Press.: New York, London. 1966.

176. Bry L, Falk P.G, Midtvedt T, Gordon J.I. A model of host-microbial interactions in an open mammalian ecosystem // Science. 1996. V. 273. P. 1380-1383.

177. Bundy D.A., Golden M.H.N. The impact of host nutrition on gastrointestinal helminth populations // Parasitology. 1987. V. 95. № 3. P. 623-635.

178. Cahill M.M. Bacterial flora of fishes: a review // Microb. Ecol. 1990. V. 19. № 1. P. 21-41.

179. Campbell A.C., Buswell J.A. The intestinal microflora of farmed Dover sole (Solea solea) at different stages of fish development // J. of Applied Bacteriology. 1983. V. 55. P. 215-223.

180. Cornford E.M. Glucose utilization rates are linked to the internal free glucose gradient in the rat tapeworm // Exp. Parasitol. 1990. V. 70. № 1. P. 25-34.

181. Cyr D., Gruner S., Mettrick D.F. Hymenolepis diminuta: uptake of 5-hydroxytpyptamine (serotonin), glucose, and changes in worm glycogen levels // Can. J. Zool. 1983. V. 61. № 7. P. 1469-1474.

182. Clements K.D. Fermentation and gastrointestinal microorganisms in fishes // Gastrointestinal microbiology. London and New York: New York, 1997. V. l.P. 156-198.

183. Crompton D.W.T., Hall A. Parasitic infection and host nutrition // Parasitology. 1981. V. 82. № 4. P. 77-82.

184. Dahulat E., Kausch H. Chitinase activity in the digestive tract of the cod Gadus morhua (L.) // J. Fish Biol. 1984. V. 24. № 2. P. 125-133.

185. Dalton J.P., Skelly P., Halton D.W. Role of the tegument and gut in nutrient uptake by parasitic platyhelminths // Can. J. of Zoology. 2004. V. 82. № 2. P. 221-232.

186. Dike S.C., Read C.P. Tegymentary phosphohydrolases of Hymenolepis diminuta // The Journal of Parasitology. 1971. V. 57. P. 81-87.

187. Ezeasor D.N., Stokoe W.M. Light and electron microscopic studies on the absorptive cells of the intestine caeca and rectum of the adult rainbow trout, Salmo gairdneri Buch // J. Fish Biol. 1981. V. 18. № 5. P. 527-544.

188. Fange R., Grove D. Digestion // Fish physiology. New York; San Francisco; London. 1979. V. 8. P. 162-260.

189. Fidopiastis P.M. Microbial activity in the gut of an herbivorous marine fish // Masters Abstracts International. 1996. V. 34. № 3. P. 1102.

190. Fisher F.M., Jr, Read C.P. Transport of sugars in the tapeworm Calliobothrium verticillatum II Biol. Bull. Mar. Biol. Lab.: Woods Hole. 1971. 140. P. 46-62.

191. Gamble H.R., Pappas P.W. Solubilization of membrane-bound ribonuclease (RNase) and alkaline phosphatase from the isolated brush border of Hymenolepis diminuta II The Journal of Parasitology. 1980. V. 66. P. 434438.

192. Gamble H.R., Pappas P.W. Type 1 phosphodiesterase in the isolated brush border membrane of Hymenolepis diminuta II The Journal of Parasitology. 1981. V. 67. P. 617-622.

193. Gordon H.A., Pesti L. The gnotobiotic animal as a tool in the study of host microbial relationships // Bact. Rev. 1971. V. 35. № 4. P. 390-429.

194. Grisez L., Reyniers J., Verdonck L., Swings J., Ollevier F. Dominant intestinal microflora of sea bream and sea bass larvae, from two hatcheries, during larval development// Aquaculture. 1997. 155. P. 387-399.

195. Gruner S., Mettrick D.F. The effect of 5-hydroxytryptamine on glucose absorption by Hymenolepis diminuta and by the mucosa of the rat small intestine // Can. J. Zool. 1984. V. 62. № 5. P. 798-803.

196. Gunalp A, Sellioglu В., Uras G. The effects of intestinal parasites on enteric bacterial flora//Mikrobiol. Bui. 1979. 13(1). P.73-79.

197. Halton D.W. Nutritional adaptations to parasitism within the platyhelminthes // Int. J. for Parasitol. 1997. V. 27. № 6. P. 693-704.

198. Hansen G.H., Olafsen J.A. Bacterial interactions in early life stages of marine cold water fish // Microbiol. Ecology. 1999. V. 38. P. 1-26.

199. Harris В. G. Protein metabolism // Biology of the Eucestoda. Academic Press. 1983. V. 2. P. 335-341.

200. Henderson D. The effect of worm age, weight and number in the infection on the absorption of glucose by Hymenolepis diminuta II Parasitology. 1977. V. 75. № 3. P. 277-284.

201. Hockley D.J. Schistosoma mansoni: the development of the cercarial tegument // Parasitol. 1972. V. 64. № 2. P. 242-252.

202. Holben W.E, Williams P, Saarinen M, Sarkilahti L.K, Apajalahti J.H.A. Phylogenetic analysis of intestinal microflora indicates a novel mycoplasma phylotype in farmed and wild salmon // Microbial ecology. 2002. V. 44. №2. P. 175-185.

203. Hollanders F.D. The production of lactic acid by the perfused rat diaphragm // Сотр. Bioch. Physiol. 1968. V. 26. P. 907-916.

204. Hooper L.V, Bry L, Falk P.G, Gordon J.I. Host-microbial symbiosis in the mammalian intestine: Exploring an internal ecosystem // BioEssays. 1998. V. 20. №4. P. 336-343.

205. Horsley R.W. A review of the bacterial flora of teleosts and elasmobranches, including methods for its analysis // J. Fish Biology. 1977. V. 10. P. 529553.

206. Insler G.D., Roberts L.S. Developmental physiology of cestodes. XV. A system for testing possible crowding factors in vitro // J. Exp. Zool. 1980. V. 211. P. 45-54.

207. Izvekova G.I. Peculiarities of the final stages of carbohydrate metabolism in Ligula intestinalis plerocercoids (Cestoda, Pseudophyllidea) // Helminthologia. 2000. V. 37. № 1. P. 9-13.

208. Izvekova G.I. Triaenophorus nodulosus (Cestoda, Pseudophyllidea): final stages of carbohydrate metabolism // Helminthologia. 2001. V. 38. № 1. P. 23-27.

209. Izvekova G.I., Kuperman B.I., Kuz'mina V.V. Digestion and digestive-transport surfaces in cestodes and their fish hosts// Сотр. Biochem. Physiol. 1997. V. 118A. № 4. P. 1165-1171.

210. Jankauskiene R. Defence mechanisms in fish: Lactobacillus genus bacteria of intestinal wall in feeding and hibernating carps // Ekologija (Vilnius). 2000 a. № l.P. 3-6.

211. Jankauskiene R. The dependence of the species composition of lactoflora in the intestinal tract of carps upon their age // Acta Zoologica Lituanica. 2000 b. V. 10. №3. P. 78-83.

212. Jankauskiene R. Defence mechanisms in fish: frequency of the genus Lactobacillus bacteria in the intestinal tract microflora of carps // Biologija. 2002. №2. P. 13-17.

213. Kapoor B.G., Smit H., Verigina I.A. The alimentary canal and digestion in teleosts // Advances Mar. Biol. 1975. V. 13. P. 109-239.

214. Karasov W.H., Buddington R.K., Diamond J.M. Adaptation of intestinal sugar and amino acid transport in vertebrate evolution. // Transport processes, iono- and osmoregulation. Springer-Verlag Berlin Heidelberg. 1985. P.227.

215. Knowles W.J., Oaks J.A. Isolation and partial biochemical characterization of the brush border plasma membrane from the cestode Hymenolepis diminuta II The Journal of Parasitology. 1979. V. 65. P. 715-731.

216. Koushik G., Kumar S.S., Kumar R.A. Characterization of bacilli isolated from the gut of rohu, Labeo rohita, fingerlings and its significance in digestion // J. Appl. Aquculture. 2002. 12. № 3. P. 33-42.

217. Korting W, Barrett J. Carbohydrate catabolism in the plerocercoids of Schistocephalus solidus (Cestoda: Pseudophyllidea) // Int. J. Parasitol. 1977. V. 7. P. 411-417.

218. Krogdahl A., Hemre G.-I., Mommsen T.P. Carbohydrates in fish nutrition: digestion and adsorption in postlarval stages // Aquaculture Nutrition. 2005. V. 11. P. 103-122.

219. Kuperman B.I., Kuz'mina V.V. The ultrastructure of the intestinal epithelium in fishes with different types of feeding // Journal of Fish Biology. 1994. V. 44. P. 181-193.

220. Kuz'mina V.V., Gelman A.G. Membrane-linked digestion // Reviews in Fisheries Science. 1997. V. 5. № 2. P. 99-129.

221. Kuzmina V.V., Golovanova I.L., Izvekova G.I. Influence of temperature and season on some characteristics of intestinal mucosa carbohydrases in six freshwater fishes // Сотр. Biochem. Physiol. 1996. V. 113B. № 2. P. 255260.

222. Kwa B.H. Studies on the sperganum of Spirometra erinacei // International Journal ofParasitilogy. 1972. V. 1. P. 29-33.

223. Laurie J. S. Carbohydrate absorption in cestodes from elasmobranch fishes // Сотр. Biochem. Physiol. 1961. V. 4. P. 63-71.

224. Lee A. Normal flora of animal intestinal surfaces // In: Bitton G., Marshall K.C. (eds) Adsorption of Microorganisms to surfaces. Wiley, New York. 1980. P. 145-173.

225. Lee C.G.I., Ip Y.K. Effect of host fasting and subsequent refeeding on the glycogen metabolizing enzymes in Hymenolepis diminuta (Cestoda) // Biol. Bull. 1986. V. 171. № 2. P. 417-425.

226. Lee D. L., Rothman A.H., Senturia J. Esterases in Hymenolepis and in Hydatigera II Expl. Parasit. 1963. V. 14. P. 285-295.

227. Lindsay G.J.H., Gooday G.W. Chitinilytic enzymes and the bacterial microflora in the digestive tract of cod, Gadus morhua II J. Fish Biol. 1985. V. 26. № 3. P. 255-265.

228. Lumsden R.D. Surface ultrastructure and cytochemistry of parasitic helminths // Exp. Parasitol. 1975. V. 37. № 2. P. 267-339.

229. Lumsden R. D, Gonzalez G., Mills R. R, Viles J. M. Cytological studies on the absorptive surfaces of cestodes. III. Hydrolysis of phosphate esters // J. of Parasitol. 1968. V. 54. P. 524-535.

230. MacCormack W.P., Fraile E.R. Bacterial flora of newly caught Antarctic fish Notothenia neglecta II Polar Biology. 1990. V. 10. № 6. P. 413-417.

231. MacDonald N. L, Stark J.R, Austin B. Bacterial microflora in the gastrointestinal tract of Dover sole (Solea solea L.), with emphasis on the possible role of bacteria in the nutrition of the host // FEMS Microbiol. Lett. 1986. 35. P. 107-111.

232. MacMillan J.R, Santucci T. Seasonal trends in intestinal bacterial flora of farm-raised channel catfish // J. of Aquatic Animal Health. 1990. V. 2. № 3. P. 217-222.

233. Matskasi I. The effect of Bothriocephalus acheilognati infection on the protease and ce-amylase activity in the gut of carp fry // Symposia Biologia Hungarica. 1984. V. 23. P. 119-125.

234. Matskasi I, Juhasz S. Ligula intestinalis (L, 1758): Investigation on plerocercoids and adults for protease and protease inhibitor activities // Parasitol. Hung. 1977. V. 10. P. 51-59.

235. McCracken R.O, Lumsden P.D. Structure and function of parasite surface membranes. I. Mechanism of phlorisin inhibition of hexose transport by the cestode Hymenolepis diminuta II Сотр. Biochem. And Physiol. 1975. V. 50. № l.P. 153-157.

236. McFall-Ngai M.J. Unseen Forces: The influence of bacteria on animal development // Developmental Biology. 2002. V. 242. P.l-14.

237. McManus D.P. Intermediary metabolism in parasitic helminthes // Intern. J. for Parasitol. 1987. V. 17. № 1. P. 79-96.

238. McManus D. P., Sterry P. R. Ligula intestinalis'. intermediary carbohydrate metabolism in plerocercoids and adults // Z. Parasitenk. 1982. Bd. 67. S. 7385.

239. Mead R. W. Histochemical study on the distribution of amylase activity within the intestine of the rat and the effect of cestode (Hymenolepis diminuta) infection // Trans. Am. Microsc. Soc. 1976. V. 95. P. 183-188.

240. Mead R. W. Roberts L. S. Intestinal digestion and absorption of starch in the intact rat: effects of cestode (Hymenolepis diminuta) infection // Сотр. Biochem. Physiol. 1972. V. 41A. P. 749-760.

241. Mettrick D.F. Hymenolepis diminuta: the microbiota, nutritional and physico-chemical gradients in the small intestine of uninfected and parasitized rats // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1971. V. 49. P. 972-984.

242. Mettrick D.F. The intestine as an environment for Hymenolepis diminuta И Biology of the Tapeworm Hymenolepis diminuta. Academic Press, London and New York. 1980, P. 281-356.

243. Mettrick D.F., Munro H.N. Studies on the protein metabolism of cestodes // Parasitology. 1965. V. 55. P. 453-466.

244. Mettrick D. F., Podesta R. B. Ecological and physiological aspects of helminth-host interactions in the mammalian gastrointestinal canal // Advances in Parasitology. London and New York: Academic Press, 1974. V. 12. P. 183-279.

245. Mettrick D. F., Rahman M.S., Podesta R. B. Effect of 5-hydroxytryptamine (5-HT-serotonin) on in vitro glucose uptake and glucogen reserves in Hymenolepis diminuta II Mol. and Biochem. Parasitol. 1981. V. 4. № 3-4. P. 217-223.

246. Mickeniene L., Syvokiene J. Changes of the diversity of the bacteriocenosis in the digestive tract of fish under the impact of heavy metals // Ekologija (Vilnius). 2001. №4. P. 11-15.

247. Moczori T. Glycogen distribution and accumulation of radioactive compounds in tissue of mature specimens of Hymenolepis diminuta (Cestoda) after incubation in glucose 14Ci.6 // Acta parasit. Pol. 1975 a. V. 23. P. 135-145.

248. Moczon T. Histochemical studies on the enzymes of Hymenolepis diminuta (Rud., 1819) (Cestoda). V. Some enzymes of the synthesis and phosphorolytic degradation of glycogen in mature cestodes // Acta parasit. Pol. 1975 b. V. 23. P. 569-592.

249. Moczon T. Histochemical studies on the enzymes of Hymenolepis diminuta (Rud., 1819) (Cestoda). XI. Some hydrolases of oligosaccharides in mature tapeworms // Acta parasit. Pol. 1980. V. 27. P. 477-486.

250. Moczon T. Histochemical studies on the enzymes of Hymenolepis diminuta (Rud., 1819) (Cestoda). XII. Activities of some glucosidases of the mature parasite in different nutritional conditions // Acta parasit. Pol. 1981. V. 28. P. 97-102.

251. Moran D., Turner S.J., Clements K.D. Ontogenetic development of the gastrointestinal microbiota in marine herbivorous fish Kyphosus sydneyanus II Microbial Ecology. 2005. V. 49. № 4. P. 590-597.

252. Morris G.P. The structure of the tegument and associated structures of the cercaria of Schistosoma mansoni II Ztschr. Parasitenk. 1971. Bd. 36. № 2. P. 115-121.

253. Mountfort D.O., Campbell J., Clements K.D. Hindgut fermentation in three species of marine herbivorous fish // Appl. Environ. Microbiol. 2002. P. 1374-1380.

254. Nabih I., Ansary A. El., Metabolic end-products in parasitic helminthes and their intermediate hosts // Сотр. Biochem. Physiol. 1992. V. 101B. № 4. P. 499-508.

255. Oaks J, Knowles W, Cain G. A simple method of obtaining an enriched fraction of tegumental brush border from Hymenolepis diminuta // J. Parasitol. 1977. V. 63. P. 476-485.

256. Olsen R.E., Sundell K., Hansen T, Hemre G-I, Myklebust R, Mayhew T.M, Ring0 E. Acute stress alters the intestinal lining of Atlantic salmon, Salmo salarL.: An electron microscopical study // Fish Physiology and Biochemistry. 2002. V. 26. P. 211-221.

257. Pampori N.A, Singh G, Srivastava V.M.L. Cotugnia diginipora: carbohydrate metabolism and effect of anthelmintics on immature worms // J. ofHelminthology. 1984. V. 58. P. 39-47.

258. Pappas P. W. Tryptic and protease activities in the normal and Hymenolepis i/z>nz>7wta-infected rat small intestine // J. Parasit. 1978 V. 64. P. 562-564.

259. Pappas P.W. Enzyme interactions at the host-parasite interface // Cellular Interactions in Symbiosis and Parasitism. The Ohio State University Press, Columbus. 1980. P. 145-172.

260. Pappas P.W. Hymenolepis diminuta: partial characterization of membrane-bound nucleotidase activities (ATPase and 5'-nucleotidase) in the isolated brush border membrane // Experimental Parasitology. 1981. V. 51. P. 209219.

261. Pappas P.W. Hymenolepis diminuta: partial characterization of the membrane-bound and solubilized alkaline phosphohydrolase activities of the isolated brush border plasma membrane // Experimental Parasitology 1982. V. 54 P. 80-86.

262. Pappas P.W. Host-parasite interface // Biology of Eucestoda. Academic Press. 1983. V. 2 P. 297-334.

263. Pappas P.W. Proteinase inhibitors in helminth parasites (antienzymes: fact or fiction?) // Parasite host environment. First international autumn school. Varnus, Bulgaria. 1987. P. 41-53.

264. Pappas P.W. Activation and inhibition of the brush-border membrane-bound alkaline phosphatase activity of Hymenolepis diminuta (Cestoda) by divalent cations//Parasitology. 1991 a. V. 102. № i. p. 141-145.

265. Pappas P.W. Hymenolepis diminuta: further characterization of the membrane-bound acid phosphatase activity associated with the brush border membrane of tapeworm's tegument // Exp. Parasitol. 1991 b. V. 72. № 4. P. 362-367.

266. Pappas P.W., Barley A.J., Wardrop S.M. Hymenolepis diminuta: glucose and glycogen gradients in the adult tapeworm // Exp. Parasitol., 1999. V. 91. №4. P. 315-326.

267. Pappas P. W., Freeman B. A. Sodium dependent glucose transport in the mouse bile duct tapeworm, Hymenolepis microstoma II J. Parasitol. 1975. 61. P. 434-439.

268. Pappas P.W., Leiby D.A. Alkaline phosphatase and phosphodiesterase activities of the brush border membrane of four strains of the tapeworm Hymenolepis diminuta И J. Parasitol. 1986. V. 72. № 5. P. 809-811.

269. Pappas P.W., Narcisi E.M. A comparison of membrane-bound enzymes of the isolated brush border plasma membranes of the cestodes Hymenolepis diminuta and Hymenolepis microstoma II Parasitology. 1982. V. 84. P. 391396.

270. Pappas P.W., Narcisi E.M., Rentko V. Alteration in brush border membrane proteins and membrane-bound enzymes of the tapeworm Hymenolepis diminuta during development in the definitive host // Mol. And Bioch. Parasitol. 1983. V. 8. P. 317-323.

271. Pappas P.W., Read C.P. Trypsin inactivation by intact Hymenolepis diminuta H The Journal of Parasitology. 1972 a. V. 58. P. 864-871.

272. Pappas P.W., Read C.P. Inactivation of a- and P-chymotrypsin by intact Hymenolepis diminuta (Cestoda) // Biol. Bull. 1972 b. V. 143. № 3. P. 605616.

273. Pappas P.W., Read C.P. Membrane transport in helminth parasites: a review //Exp. Parasitol. 1975. V. 37. № 3. P. 469-530.

274. Pappas P. W., Uglem G. L. Hymenolepis diminuta (Cestoda) liberates an inhibitor of proteolytic enzymes during in vitro incubation // Parasitology. 1990. V. 101. №3. P. 455-464.

275. Phifer K. Permeation and membrane transport in animal parasites: the absorption of glucose by Hymenolepis diminuta II The J. of Parasitology. 1960. V. 46. P. 51-62.

276. Podesta, R.B., Evans, W.S., Stallard H.E. Hymenolepis diminuta and Hymenolepis microstoma: effect of ouabain on active nonelectrolyte uptake across the "epithelial" syncytium // Experimental Parasitology. 1977. V. 43. P. 25-38.

277. Podesta R.B., Mettrick D.F. The interrelationships between the in situ fluxes of water, electrolytes and glucose by Hymenolepis diminuta II Int. Jour, for Parasitol. 1976. V. 6. P. 163-172.

278. Poddubnaya L.G., Izvekova G.I. Detection of bacteria associated with the tegument of caryophyllidean cestodes // Helminthologia. 2005. V. 42. № 1. P. 9-14.

279. Polzer M., Overstreet R.M., Taraschewski H. Proteinase activity in the plerocercoid of Proteocephalus ambloplitis (Cestoda) // Parasitology. 1994. V. 109. Iss. P. 209-213.

280. Precious W.Y., Barrett J. Quantification of the control of carbohydrate catabolism in the tapeworm Hymenolepis diminuta II Biochem. Cell Biol. 1993. V. 71. P. 315-323.

281. Read C.P. Carbohydrate metabolism of Hymenolepis diminuta II Experimental Parasitology. 1956. V. 5. № 4. P. 325-344.

282. Read C.P, Simmons J. E. Biochemistry and physiology of tapeworms // Physiol. Revs. 1963. V. 43. P. 263-305.

283. Read C.P. Contact digestion in tapeworms // The Journal of Parasitology. 1973. V. 59. P. 672-677.

284. Read С. P, Rothman A. H. The role of carbohydrates in the biology of cestodes. I. The effect of dietary carbohydrate quality on the size of Hymenolepis diminuta I I Expl. Parasit. 1957. № 6. P. 1-7.

285. Read С. P, Rothman A. H, Simmons J. E, Jr. Studies on membrane transport, with special reference to parasite-host integration // Ann N.Y. Acad. Sci. 1963. V. 113. P. 154-205.

286. Rimmer D.W. Changes in diet and the development of microbial digestion in juvenile buffalo bream, Kyphosus cornelii II Marine Biology. 1986. V. 92. № 3. P. 443-448.

287. Rimmer D.W, Wiebe W.J. Fermentative microbial digestion in herbivorous fishes // J. Fish Biol. 1987. V. 31. № 2. P. 229-236.

288. Ringo E, Bendiksen H.R, Wesmajervi M.S., Olsen R.E, Jansen P.A, Mikkelsen H. Lactic acid bacteria associated with the digestive tract of Atlantic salmon (Salmo salar L.) // Journal of Applied Microbiol. 2000. V. 89. P. 317-322.

289. Ringo E, Gatesoupe F.-J. Lactic acid bacteria in fish: a review // Aquaculture. 1998. V. 160. P. 177-203.

290. Ringo E, Lodemel J.B, Myklebust R, Kaino T, Mayhew T.M, Olsen R.E. Epithelium-associated bacteria in the gastrointestinal tract of Arctic charr (Salvelinus alpinus L.). An electron microscopical study // J. of Appl. Microbiol. 2001. V. 90. P. 294-300.

291. Ringo E., Olsen R.E. The effect of diet on aerobic bacterial flora associated with intestine of Arctic charr (Salvelinus alpinus L.) // J. Appl. Microbiol. 1999. V. 86(1). P. 22-28.

292. Ring0 E., Olsen R.E., Mayhew T.M., Myklebust R. Electron microscopy of the intestinal microflora of fish // Aquaculture. 2003. V. 227. P. 395-415.

293. Ringo E., Strem E., Tabachek J.-A. Intestinal microflora of salmonids: a review// Aquaculture Research. 1995. V. 26. P. 773-789.

294. Roberts L. S. Carbohydrate metabolism // Biology of the Eucestoda. Academic Press. 1983. V. 2. P. 343-390.

295. Roberts L.S., Insler G.D. Developmental physiology of cestodes. 17. Some biological properties of putative crowding factor in Hymenolepis diminuta II J. Parasitol. 1982. V. 68. № 2. P. 263-269.

296. Rolfe R.D. Interactions among microorganisms of the indigenous intestinal flora and their influence on the host // Rev. Infect. Dis. 1984. V. 6. Suppl. 1. P. 73-79.

297. Rosen R., San M. L., Denton M. E., Wolf J. M., Uglem G. L. The rapid development of the glucose-transport system in the excysted metacestode of Hymenolepis diminuta II Parasitol. 1994. V. 108. P. 217-222.

298. Rothman, A.H. Ultrastructural studies of enzyme activity in the cestode cuticle//Experimental Parasitology. 1966. V. 19. P. 332-338.

299. Roy Т. K. Hydrolytic enzymes and membrane digestion in parasitic platyhelminths // J. of Scientific and Industrial Research. 1982 V. 41. P. 439-454.

300. Ruff M. D., Read C. P. Inhibition of pancreatic lipase by Hymenolepis diminuta II J. Parasit. 1973. V. 59. P. 105-111.

301. Saha A.K., Ray A.K. Cellulase activity in rohy fingerlings // Aquaculture International. 1998. V. 6. № 4. P. 281-291.

302. Saksvik M., Nilsen F., Nylund A., Berland B. Effect of marine Eubothrium sp. (Cestoda: Pseudophyllidea) on the growth of Atlantic salmon, Salmo salar L // J. Fish Diseases. 2001. V. 24. № 2. P.l 11 -119.

303. Savage D.C. Colonization by and survival of pathogenic bacteria on intestinal mucocal surfaces // In: Bitton G., Marshall K.C. (eds) Adsorption of Microorganisms to surfaces. Wiley, New York. 1980. p. 175-206.

304. Savage D.C., Dubos R., Schaedler R.W. The gastrointestinal epithelium and its autochthonous bacterial flora // J. Exp. Med. 1968. 127. P. 67-76.

305. Schramlova J., Blazek K. Cysticercus bovis: pinocytosis in the cysticercus tegument // Folia parasitol. 1988. V. 35. № 3. P. 223-226.

306. Schroeder L.L., Pappas P.W. Trypsin adsorption by Hymenolepis diminuta (Cestoda) // The Journal of Parasitology. 1980. V. 66. № 1. P. 49-52.

307. Schroeder L.L., Pappas P.W., Means G.E. Trypsin inactivation by intact Hymenolepis diminuta (Cestoda ): some characteristics of the inactivated enzyme // The Journal of Parasitology. 1981. V. 67. № 3. P. 378-385.

308. Seeto G.S., Veivers P.C., Clements K.D., Slaytor M. Carbohydrate utilization by microbial symbionts in the marine herbivorous fishes Odax cyanomelas and Crinodus lophodon II J. Сотр. Physiol. 1996. V. 165 B. № 7. P. 571-579.

309. Sisova-Kasatockina O.A., Dubovskaya A.Ja. Proteinase activity in certain cestode species parasitizing vertebrates of different classes // Acta parasitol. Pol. 1975. V. 23(35). P. 389-393.

310. Smyth J.D. The Physiology of Cestodes. W.H. Freeman and Company. San Francisco. 1969. 279 p.

311. Smyth. J.D. Changes in the digestive-absorptive surface of cestodes during larval adult differentiation // Symp. Soc. Parasitology. 1972. V. 10. P. 41-70.

312. Spanggaard В., Huber I., Nielsen J., Nielsen L., Applel K., Gram L. The microflora of rainbow trout intestine: a comparison of traditional and molecular identification // Aquaculture. 2000. V. 182. P. 1-15.

313. Starling J.A. Tegumental carbohydrate transport in intestinal helminthes: Correlation between mechanisms of membrane transport and the biochemical environment of absorptive surfaces // Trans. Amer. Microsc. Soc. 1975. V. 94. № 4. P. 508-523.

314. Sugita H., Iwata J., Miyajima C., Kubo Т., Noguchi Т., Hashimoto K., Deguchi Y. Changes in microflora of a puffer fish Fugu niphobles, with different water temperatures // Marine Biology. 1989. V. 101. № 3. P. 299304.

315. Sugita H., Kawasaki J., Kumazawa J., Deguchi Y. Production of amylase by the intestinal bacteria of Japanese coastal animals // Letters in Applied Microbiol. 1996 a. 23. 174-178.

316. Sugita H., Kawasaki J., Deguchi Y. Production of amylase by the intestinal microflora in cultured freshwater fish // Lett. Appl. Microbiol. 1997 a. V. 24. №2. P. 105-108.

317. Sugita H., Miyajima G., Deguchi Y. The vitamin Bi2-producing ability of the intestinal microflora of freshwater fish // Aquaculture. 1991. V. 92. P. 267-276.

318. Sugita H., Shibuya K., Shimooka H., Deguchi Y. Antibacterial abilities of intestinal bacteria in freshwater cultured fish // Aquaculture. 1996 b. V. 145. P. 195-203.

319. Sugita H., Shibuya K., Hanada H., Deguchi Y. Antibacterial abilitiea of intestinal microflora of river fish // Fisheries Science. 1997 b. V. 63(3). P. 378-383.

320. Sugita H., Tsunohara M., Ohkoshi Т., Deguchi Y. The establishment of an intestinal microflora in developing godfish (Carassius auratus) of culture ponds // Microbiol. Ecol. 1988. V. 15. P. 333-344.

321. Sweeting R.A. Studies on Ligula intestinalis. Some aspects of the pathology in the second intermediate host // J. Fish Biol. 1977. V. 10. P. 43-50.

322. Syvokiene J. Interrelation berween the macroorganism and its digestive tract microorganisms // Ekologija (Vilnius). 1991. № 4. P. 37-44.

323. Syvokiene J, Mickeniene L. Microorganisms in the digestive tract of fish as indicators of feeding condition and pollution // J. of Marine Science. 1999. V. 56S. P. 147-149.V

324. Syvokiene J, Mickeniene L. Effects of heavy metals on the bacteriocenoses of the digestive tract of fish // Chemia i inzynieria ekologiczna. 2002. V. 9. №9. P. 1033-1038.V

325. Syvokiene J, Mickeniene L. Microorganisms in the digestive tracts of Baltic fish // Baltic Marine Science Conference, R^nne, Denmark, 22-26 October 1996. In: ICES Cooperative Research Report 2003. № 257. P. 3-7.

326. Syvokiene J, Mickeniene L, Bubinas A, Repecka, Voveriene G. Characteristics of microflora of the digestive tract of commercial fish depending on fish feeding // Ekologija (Vilnius). 1999. № 4. P.46-54.V

327. Syvokiene J, Mickeniene L, Kazlauskiene N, Stasitinaite P. Assessment of interrelation between macro- and microorganisms in salmon fish on the example of sea trout // Ekologija. 1997. N 4. P. 40-48.

328. Syvokiene J, Mickeniene L, Petrauskiene L, Stasitinaite P. Effect of heavy metals on microflora in the digestive tract of the rainbow trout (Salmo gairdneri Rich.) // Ekologija (Vilnius). 1995. № 1. P. 75-79.

329. Syvokiene J, Stasitinaite P, Mickeniene L. The impact of municipal wastewater and heavy metal mixture on larvae of rainbow trout (iOncorhynchus mykiss) // Acta Zoologica Lituanica. 2003. V. 13. № 3. P. 372-378.

330. Tannock G.W. Mini Review: Molecular Genetics: a New Tool for Investigating the Microbial Ecology of the Gastrointestinal Tract // Microbiol. Ecol. 1988. V. 15. P. 239-256.

331. Tannock G.W. Studies of the intestinal microflora: a prerequisite for the development of probiotics // Int. Dairy Journal. 1998. V. 8. P. 527-533.

332. Tannock G.W. Analysis of the intestinal microflora: a renaissance // Antonie van Leeuwenhoek. 1999. V. 76. P. 265-278.

333. Tannock G.W. Analysis of the intestinal microflora using molecular methods // European J. of Clinical Nutrition. 2002. V. 56 Suppl. 4. P. 44-49.

334. Taylor E.W., Thomas J.N. Membrane (contact) digestion in the three species of tapeworm Hymenolepis diminuta, Hymenolepis microstoma and Moniezia expansa/I Parasitol. 1968. V. 58. P. 535-546.

335. Taylor M., Hoole, D. Ligula intestinalis (L.) (Cestoda: Pseudophyllidea): plerocercoid induced changes in the spleen and pronephrous of roach, Rutilus rutilus (L.) and gudgeon, Gobio gobio (L.) // J. Fish Biol. 1989. V. 34. P. 583-596.

336. Thomas J.N., Turner S.G. A reinterpretation of the evidence for contact digestion in the tapeworm Hymenolepis diminuta II J. Physiol. (Gr. Brit.). 1980. V.301.P. 79-80.

337. Thompson R.S.A., Hayton A.R., Jue Sue L.P. A ultrastructural study of the microtriches of adult Proteocephalus tidswelli (Cestoda: Proteocephalidea) at the ultrastructural level // Ztschr. Parasitenk. 1980. Bd. 64. № 1. S. 95111.

338. Threadgold L.T. An electron microscopic study of the tegument and associated structures of Dipylidium caninum II Q.J. Microsc. Sci. 1962. 103. P. 135-140.

339. Threadgold L.T. Fasciola hepatica: Ultrastructure and histochemistry of the glycocalyx of the tegument // Exp. Parasitol 1967. V. 39. № 1. P. 119-134.

340. Threadgold L.T., Hopkins C.A. Schistocephalus solidus and Ligula intestinalis: pinocytosis by the tegument // Expl. Parasit.1981. V. 51. P. 444456.

341. Threadgold L.T., Robinson A. Amplification of the cestode surface: a stereological analysis // Parasitol. 1984. V. 89. № 3. P. 523-535.

342. Trust T.J, Sparrow R.A.H. The bacterial flora in the alimentary tract of freshwater salmonid fishes //Can. J. Microbiol. 1974. V. 20. P. 1219-1228.

343. Turcekova L', Hanzelova V. The membrane transport of I4C glucose and 14C leucine in cestodes of the genus Proteocephalus II Helminthologia. 1998. V. 35. №3. P. 167-168.

344. Uglem G.L, Love R.D. Hymenolepis diminuta: properties of phlorizin inhibition of glucose transport // Experimental Parasitology. 1977. V. 43. P. 94-99.

345. Uglem G.L, Pappas P.W. Mechanism of 3-0-methylglucose uptake by Hymenolepis diminuta II Int. J. Parasitol. 1991. V. 21. № 5. P. 517-520.

346. Voveriene G, Mickeniene L, Syvokiene J. Hydrocarbon-degrading bacteria in the digestive tract of fish, their abundance, species composition, and activity // Acta Zoologica Lituanica. 2002. V. 12. № 3. P. 333-339.

347. Ward F.V. Aspects of helminth metabolism // Parasitology. 1982. V. 84. № l.P. 177-194.

348. Watts S.D.M, Fairbairn D. Anaerobic excretion of fermentation acids by Hymenolepis diminuta during development in the definitive host // J. Parasitol. 1974. V. 60. P.621-625.

349. Webb R.A, Mettrick D.F. The role of glucose in the lipid metabolism of the rat tapeworm Hymenolepis diminuta I I Int. Jour, for Parasitol. 1975. № 5. P. 107-112.

350. White A. C., Molinari J. L., Pillai A. V., Rege A. A. Detection and preliminary characterization of Taenia solium metacestode proteases // J. Parasitol. 1992. V. 78. № 2. P. 281-287.

351. Williams M.A., Hoole D. Ligula intestinalis (Cestoda: Pseudophyllidae): studies on the antibody response of the intermediate host, Rutilus rutilus L. // Bull. Soc. fr. Parasitol. 1990. V. 8. Suppl. № 2. P. 1165-1170.

352. Williams H.H., McVicar A.H., Ralph R. The alimentari canal of fish as an environment for helminth parasites // Symp. Br. Soc. Parasit. 1970. V. 8. P. 43-77.

353. Zavras E.T., Roberts L.S. Developmental physiology of cestodes characterization of putative crowding factors in Hymenolepis diminuta II J. Parasitol. 1984. V. 70. № 6. P. 937-944.