Роль патогенов в этиологии мастита коров и рациональные способы его терапии тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.03, кандидат ветеринарных наук Давлатмуродов, Тоирджон Мирзоалиевич

• Давлатмуродов, Тоирджон Мирзоалиевич
• кандидат ветеринарных наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Давлатмуродов, Тоирджон Мирзоалиевич

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Этиология маститов.

1.2. Распространение маститов коров.

1.3. Экономический ущерб от маститов коров.

1.4. Лечение маститов.

1.5. Профилактика маститов.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Роль патогенов в этиологии мастита коров и рациональные способы его терапии»

Актуальность работы. В решении задач «Среднесрочной программы вывода из кризиса Агропромышленного комплекса Республики Таджикистан и реализации приоритетных направлений стратегии развития его отраслей на период до 2005 г» важное значение имеет разработка эффективных средств борьбы с болезнями животных и повышение их продуктивности. Однако, интенсивное развитие молочного скотоводства сдерживается из-за широкого распространения среди маточного поголовья болезней молочной железы, приводящих к снижению молочной продуктивности и качества молока, а также к преждевременной выбраковке высокоценных животных.

Маститы, являясь одной из распространенных болезней коров, наносят животноводческим хозяйствам республики значительный экономический ущерб, который выражается в ухудшении качества молока и молочных продуктов, снижении молочной продуктивности, увеличении случаев инфекционных энтеритов у людей и новорожденных телят, преждевременной выбраковке животных и затратах на диагностику и лечение.

Несмотря на то, что этой болезни уделяется значительное внимание, совершенствуются методы диагностики, этиопато-генетической терапии (И.И. Архангельский, 1963; Д. Д. Логвинов ,1979; В. М. Карташова, А.И. Ивашура, 1988; А. Я. Батраков, 1985; А. И. Ивашура, 1991; В. А. Париков, 2000 и др.) и специфической профилактики (И. И. Архангельский и др., 1985, В. С. Авдеенко и др., 1996), поиск новых эффективных химиотерапевтических препаратов продолжает оставаться актуальной проблемой ветеринарной науки и практики.

Широкое распространение мастита коров в хозяйствах республики и острый дефицит эффективных средств борьбы с ним в современных условиях послужил предпосылкой для проведения наших исследований.

Данная работа проводилась в рамках Республиканской научно-технической программы 3.1 на 2001-2005 гг., зарегистрирована в Национальном патентно-информационном центре (НПИЦентр) Республики Таджикистан № 00000971

Цель и задачи исследований.

Целыо настоящей работы явилось изучение распространения мастита у коров и разработка эффективных средств лечения.

Задачи исследования:

1.Изучить распространение мастита коров в животноводческих хозяйствах республики.

2.Изыскать эффективный антибактериальный препарат и определить его стабильность по биологической активности и безвредности.

3. Изучить терапевтическую эффективность препарата при различных формах мастита коров в экспериментальных и производственных опытах.

Научная новизна. Выяснена роль патогенных микроорганизмов в возникновении мастита у коров, определена распространенность различных форм мастита коров в животноводческих хозяйствах республики.

Разработано новое эффективное антибактериальное средство «Лактовит» для лечения мастита коров (Положительное уведомление Управления государственной экспертизы объектов промышленной собственности НПИЦентра Республики Таджикистан № 04000832 от

13. 08.2004 г.) и отработаны методы его изготовления и микробиологического контроля, изучена его стабильность и терапевтическая эффективность.

Практическая ценность. На, основании полученных результатов разработана нормативно-техническая документация на препарат лактовит: инструкция по изготовлению и контролю препарата лактовит для лечения мастита животных (одобрена Ученым Советом Тадж НИВИ, пр. № 2 от 30. 04. 2002 г., утв. ГУВ МСХ РТ, 2004); технические условия на препарат лактовит (одобрены Ученым Советом Тадж НИВИ, пр. № 2 от 30. 04. 2002 г., утв. ГУВ МСХ РТ, 2004); наставление по применению лактовита для лечения мастита животных (одобрено Ученым Советом Тадж НИВИ, пр. № 2 от 30. 04. 2002 г., утв. ГУВ МСХ РТ, 2004);

Основные положения диссертационной работы, выносимые на защиту:

Данные изучения этиологии мастита у коров и его распространения в хозяйствах Республики Таджикистан; разработка и изучение свойств противомаститного препарата лактовит; эффективность препарата лактовит при лечении больных маститом коров.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на заседаниях ученых советов Таджикского аграрного университета и Таджикского научно-исследовательского ветеринарного института в 2000-2004 гг., на республиканских конференциях и семинарах-совещаниях (Душанбе,

1999-2004), международных научных конференциях (Душанбе, 2003; Феодосия, 2004; Самарканд, 2004).

Публикации. По теме диссертации опубликованы 8 научных работ.

Заключение диссертации по теме «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», Давлатмуродов, Тоирджон Мирзоалиевич

ВЫВОДЫ

1 .Установлено, что маститы коров, обусловленные патогенными бактериями распространены повсеместно в молочно-товарных хозяйствах республики и вызывают значительный экономический ущерб. В возникновении мастита у коров большую роль играют патогенные стафилококки (46,8 %) и стрептококки (33,3%) .

2. Заболеваемость животных маститом достигает 21,8%. Субклиническая форма мастита коров по сравнению с клинической регистрируется больше в 3,8 раз.

Клиническая форма мастита коров проявляется в форме серозного (11,4%), катарального (60,1%), фибринозного (10,1%), гнойного (6,2%), гнойно-катарального (9,1%) и геморрагического (3,0%).

3. Разработанная лекарственная форма лактовит на основе нитрофурана, сульфаниламида и дибаферола обладает высоким антимикробным действием. Бактериостатическая и бактерицидная активность препарата по отношению к стафилококкам и стрептококкам составляет 7,8 и 15,6 мкг/мл, соответственно.

4.0пределена стабильность физико-химических и биологических свойств препарата при различных температурных режимах в течение 2-х лет. Лактовит стабильно сохранял активность в течение 18 месяцев.

5. Установлено, что препарат относится к категории малотоксических соединений, не оказывает местного раздражающего и аллергизирующего действий.

6. Определены ограничительные сроки использования молока в пищевых целях от коров в период внутрицистернального применения лактовита и последующих двух суток.

7.0тработана технология приготовления, контроля и применения препарата. Показано, что наилучший терапевтический эффект достигается при внутрицистернальном введении лактовита больным маститом коров в дозе 10 мл два раза в день в течение 3-4 дней.

8. Результаты производственного испытания препарата лактовит при различных формах мастита коров показали, что его терапевтическая эффективность составляет 92,0 - 97,0%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Инструкция по изготовлению и контролю препарата лактовит для лечения мастита животных (одобрено Ученым Советом Тадж НИВИ, пр. № 2 от 30. 04. 2002 г. утв., ГУВ МСХ РТ, 2004)

2. Технические условия на препарат лактовит (одобрено Ученым Советом Тадж НИВИ, пр. № 2 от 30. 04. 2002 г., утв. ГУВ МСХ РТ, 2004)

3. Наставление по применению лактовита для лечения мастита животных (одобрено Ученым Советом Тадж НИВИ, пр. № 2 от 30. 04. 2002 г., утв. ГУВ МСХ РТ, 2004)

1.6. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Правительство Республики Таджикистан проявляет постоянную заботу о наиболее полном удовлетворении растущих потребностей населения. В успешной реализации продовольственной программы одно из ведущих мест отводится животноводству, дальнейшее развитие которого предполагает 'наряду с увеличением численности поголовья повышение продуктивности животных.

Одним из важнейших факторов, сдерживающих рост молочной продуктивности является мастит, который приводит к резкому уменьшению надоев, ухудшению качества молока и молочного сырья и преждевременной выбраковке животных. В молоке больных маститом нередко содержатся бактерии болезнетворные для человека. При употреблении такого молока у людей могут возникать различного рода расстройства желудочно-кишечного тракта, ангины с последующими осложнениями и- т.п. Диплококковые септицемии и колибактериозы у телят нередко бывают связаны с выпаиванием им молока от больных маститом коров.

В настоящее время установлено, что мастит является одна из основных болезней, обусловливающих выбраковку коров. Около 30

50 % из общего числа выбракованных животных составляют коровы с воспалением вымени и атрофией молочной железы.

В США ежегодно переболевает около 30% коров маститом, а ущерб от этой болезни составляет 1200 млн. долларов. В Англии экономические потери достигают 13- 20 фунтов стерлингов, а в Швейцарии - 30 -40 млн. франков в год. В России в 1997 потери молочной продуктивности на 1 голову при мастите составлял 300 кг в год. Экономический ущерб из-за снижения молочной продуктивности коров, переболевших маститом составил 270 млн. рублей.

Экономический ущерб, наносимый маститом, слагается более чем из 12 различных факторов, среди которых ведущее место занимают: снижение молочной продуктивности; преждевременной выбраковки; затраты на ветеринарные мероприятия; высокая заболеваемость и падеж; снижение оплодотворяемости; заболевание людей, особенно детей зоонозами, желудочно-кишечными и другими расстройствами.

Поэтому в настоящее время селекционная работа в молочном скотоводстве должна быть направлена не только на создание новых парод и популяций скота с ценными хозяйственно-биологическими признаками ( высокая молочная продуктивность, жирномолочность, хорошая скорость молокоотдачи, пригодность к машинному доению, длительность хозяйственного использования, высокие репродуктивные качества, крепкая конституция), но и резистентность к различным заболеваниям, в том числе к маститу.

Причиной неудач при разведении животных, устойчивых к маститу, является одностороння селекция на увеличение продуктивности. Селекционная работа должна предусматривать следующие моменты: исключение из племенного использования коров, пораженным маститом, в качестве матерей быков и быков -производителей, чьи дочери наиболее восприимчивы к маститу.

Для обеспечения высокой молочной продуктивности коров, а также производства молока высокого качества, большое значение имеет предупреждение заболеваний молочной железы.

В последние годы достигнуты определенные успехи в области контроля за маститами. Разработаны и совершенствуются методы диагностики, особенно скрытых маститов. Внедрены в клиническую ветеринарию новые методы этиопатогенетической терапии маститов. Однако, болезнь не ликвидирована и трудно ожидать, что она будет ликвидирована в ближайшие годы. Попытки иммунизации против мастита пока не дали удовлетворительных результатов из-за большого числа возбудителей.

Практические наблюдения показали, что возникновение маститов связано с множеством предрасполагающих факторов, поэтому применение только ветеринарных методов борьбы не может обеспечить ожидаемого эффекта.

Следовательно, наравне с проведением ветеринарно-санитарных мероприятий по борьбе с маститом необходимо проводить и организационно-хозяйственные, агрономические, инженерные и зоотехнические мероприятия.

Во многих странах мира созданы и положительно действуют государственные, или национальные, программы по борьбе с маститом.

Создание государственной программы по борьбе с маститами у крупного рогатого скота в нашей республике сыграла бы огромную роль в профилактике этой болезни и повышении молочной продуктивности животных.

В настоящее время установлено, что мастит возникает во все физиологические периоды. Имеются научные данные и клинические наблюдения о взаимосвязи болезни молочной железы с патологией половых органов. Наиболее часто одновременное поражение органов возникает в послеродовой период. Это объясняется тем, что существует тесная сосудистая связь через лимфо- и кровообращение и функциональная - через нервно-гормональную регуляцию их функции, а также контаминация одной и той же микрофлорой.

Из внешних воздействий наиболее отрицательное влияние на вымя оказывают: механические, физические, биологические и предрасполагающие факторы.

Факторы биологической этиологии возникают вследствие действия специальных инфекций ( туберкулез, ящур, актиномикоз, оспа), а также возбудителей неспецифических инфекций (стафилококки, стрептококки, бактерии группы кишечной палочки, синегнойная палочка, сальмонеллы, микоплазмы, кандидамикозы, корнебактерии и др.) порознь или в различных ассоциациях, проявляющие болезнетворное действие на фоне ослабленной естественной резистентности организма.

Учитывая частую сочетаемость болезней матки с маститом или мастита с метритом, необходимо при выявлении мастита тщательно исследовать половые органы на их состояние, а при установлении патологии матки - вымя на клинический и скрытый мастит для проведения совместного комплексного лечения болезни. Установлено, что если один патологический процесс протекает в клинически выраженной форме, то смежный, как правило, в скрытой или слабозаметной форме.

В ответ на действие отрицательных факторов в молочной железе наступает резкое расстройство ее функций, связанных с выведением альвеолярного молока в молочные ходы и цистерну вымени, и гемо- и лимфообразования. Это приводит к застою молока, увеличению внутритканевого давления, нарушению крово- и лимфотока и расстройству питания тканей вымени, при этом усиливается проницаемость кровеносных сосудов, вследствие чего в очаг воспаления проникает жидкая часть крови с высоким содержанием белков, а также форменные элементы крови.

В начале заболевания маститом в большинстве случаев развивается асептический воспалительный процесс вымени, а затем он осложняется микрофлорой.

Инфицирующие вымя микроорганизмы почти всегда попадают в молочную железу через просвет соскового канала, в связи с обратным током молока, которое возникает в связи с разностью давления в подсосковой камере.

Кроме этого микроорганизмы попадают в вымя через сосковый канал при лежании коров на грязных полах, инфицированных выделениями от коров больных маститом или при заболевании половых органов.

Под действием микроорганизмов происходит распад белков молока, повышается щелочность секрета, в нем появляются сгустки и хлопья. Мастит вызывает уменьшение содержания в молоке казеина, лактозы, витамина С, увеличение концентрации хлоридов и резкое повышение щелочной реакции.

В этой связи своевременная и правильная диагностика мастита коров с применением клинических и лабораторных методов исследования является главным в борьбе с маститами коров.

Стоимость рациональной профилактики маститов обычно во много раз ниже, чем экономический ущерб, наносимый болезнью, включая стоимость недополученного молока. В идеале программа профилактики борьбы с маститом в хозяйствах должна включить в себя комплекс следующих мероприятий: организационно-хозяйственных, инженерных, зоотехнических, агрономических и ветеринарно-санитарных.

Основная цель лечебной помощи животным при маститах-устранение воспалительного процесса в тканях вымени и восстановление молочной продуктивности. Каждый час отсутствия квалифицированной ветеринарной помощи увеличивает риск потери функциональной способности вымени или даже коровы. Поэтому лечение должно быть своевременным: чем раньше оно начато, тем благоприятнее исход заболевания.

В настоящее время для терапии животных, больных маститами, предложено множество методов и лекарственных средств. Однако, эффективность их разная, к сожалению, через 2-3 лактации основная масса животных выбраковывается с диагнозами: гипогалактия, агалактия, атрофия четвертей вымени, индурация, абцедирование, гангрена и другие.

Такая низкая терапевтическая результативность объясняется зачастую отсутствием условий для проведения леченой работы, лечением без проведения лабораторных исследований секрета вымени, недостаточным кормлением и доением больных животных.

Терапевтическая эффективность зависит не только от выбора лекарственного средства или сочетанного его применения и пути их введения.

Для лечения животных при Мастите существует много методов и лекарственных средств, однако предпочтение отдают антибиотикам широкого спектра действия, сульфаниламидам и производным нитрофурана. При этом наиболее часто применяют мастисан А, Б и Е., мастицид, мастаэрозоль, дифурол-А, менэрсин А, мстивален, лактопен, неотил, аэродит и др.

Результаты научно-практические исследования В.А. Парикова и др. (2000) по сравнительной оценке терапевтической активности различных препаратов при маститах у коров показали, что при лечении больных маститом коров в лактационном периоде предпочтение отдается тем препаратам, которые в своем составе не содержать антибиотики (диофур, дифурол, дифумаст), чтобы не допускать потери молока. В то же время в периоды запуска и сухостоя необходимо использовать для лечения препараты широкого спектра действия, содержащие антибиотики ( диеномаст, эримаст, колимаст, тетрамаст, эроксимаст).

Все химиотерапевтические препараты, в том числе и антибиотики. По своей природе обладают избирательной активностью по отношению к микроорганизмам, которая изменяется при выработке изменчивости к ним.

С учетом вышеизложенного разработка эффективных противомаститных препаратов на основе нитрофурана, сульфаниламида и координационных соединений железа играет большую роль в успешной борьбе с маститами коров.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 2.1. Материал и .методы исследования

Работа выполнена в период 1999-2004 гг в Таджикском аграрном университете и Научно-исследовательском ветеринарном институте Таджикской академии сельскохозяйственных наук.

Экспериментальные и производственные опыты проведены в 13 животноводческих хозяйствах республики.

В опытах использовали 120 белых мышей, крыс, 34 кролика и материалы от 1417 коров. Распространенность мастита коров по республике определяли по данным ветеринарной отчетности и результатам исследований патологического материала от животных.

Диагностику мастита проводили на основании эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов бактериологического исследования секрета пораженной доли вымени или кусочков от пораженной доли паренхимы по общепринятой методике (утв. ГУВ МСХ СССР, 1973).

Клинические формы мастита определяли методом клинического осмотра вымени и по изменению внешних признаков молока. Клинически больными маститами считали животных, имеющих в вымени и молоке заметные отклонения от нормы, свойственные различным формам воспаления молочной железы. Субклинические формы воспаления молочной железы коровы выявили с помощью препарата димастин, пробой отстаивания и иногда подсчетом клеточных элементов молока.

Для исследования молока готовили 5%-ный раствор димастина на дистиллированной воде. Исследования проводили при помощи молочно-контрольных пластинок. В каждое углубление этой

41. L f'OCCHltCKAP I пластинки из соответствующей четверти вымени надаивали по 1 мл молока и из бутылки с автоматом - клювиком добавляли 1 мл раствора димастина. Смесь молока с реактивом перемешивали палочкой в течение 30 секунд. Реакцию учитывали в крестах по густоте желе и по изменению цвета, как дополнительного показателя.

1. Отрицательная реакция - однородная жидкость и цвет смеси - оранжевый или оранжево-красный.

2. Сомнительная реакция г следы образования желе и цвет смеси - желтый.

3. Положительная реакция - ясно видимый сгусток, который при перемешивании палочкой наполовину или целиком выбрасывается из луночки пластинки, цвет смеси красный.

Для постановки пробы отстаивания из каждой доли вымени коров, дающей положительную реакцию с димастином после окончания дойки, надаивали в пробирки по 10-15 мл молока. Пробы ставили в холодильник (4-8 С) через 16-18 часов, учитывали реакцию. При наличии на дне пробирки осадка высотой более 0,1 см реакцию считали положительной.

Молоко /секрет вымени/ для бактериологического исследования брали из последних порций удоя непосредственно после окончания доения в стерильные пробирки с ватными пробками, с соблюдением правил асептики. Для этого перед взятием молока вымя коров подмывали и вытирали чистым полотенцем. Соски протирали ватным тампоном, смоченным 70 денатурированным спиртом. При выдаивании молока старались, чтобы соски не касались края пробирок.

Исследование пробы молока на наличие патогенных стафилококков. Доставленные в лабораторию пробы молока, после смешивания высевали на МПА, содержащей 7,5% поваренной соли.

Для этого 1-2 капли молока наносили на поверхность питательной среды в чашку Петри и растирали ее по всей поверхности агара стерильным шпателем, приготовленным на пастеровской пипетки. Засеянные чашки в положении крышкой вниз, выдерживали в термостате при температуре 37 °С, в течение 24 часов.

При получении однородной по морфологии популяции культуры для дальнейшего исследования брали по одной колонии с чашки. Если колонии были различны, то брали по одной колонии каждого образца.

У выделенных штаммов стафилококков изучали: морфологические, культуральные, гемолитические, плазмокоагулирующие, пигментообразующие свойства, а также способность ферментировать среды с углеводами.

Морфологические и культуральные свойства стафилококков изучали по характеру роста на МПА и МПБ. Кроме того после выращивания на МПА в термостате при температуре 37° С в течение 24 часов, для определения формы и расположения кокков из выросших культур готовили мазки, окрашивали по Граму и микроскопировали.

Пигментообразующие свойства стафилококков определили путем выращивания на МПА в течение 24 часов при температуре 37° С последующим выдерживанием в течение 2-3 дней при комнатной температуре.

Гемолитические свойства выделенных штаммов отмечали после просмотра посева на МПА, содержащего 5,0% крови барана.

Для приготовления кровяного агара к расплавленному МПА с температурой не выше 55°С добавляли 5% дефибринированной крови барана. После перемешивания кругообразным движением агар разливали по чашкам. Посев на кровяной агар производили из культур стафилококков, выращенных в МПБ. Через 24 часа у выращенных культур, определяли тип гемолиза. При этом учитывали окраску зоны гемолиза: бета-зелено-оливковой цвет, альфа - в виде бесцветного прозрачного поля вокруг колоний микробов.

Плазмокоагулирующие свойства изучали в реакции плазмокоагуляции с плазмой крови кролика. Кровь брали из сердца кролика в центрифужную пробирку, со стерильным 5%-ным раствором лимонно-кислого натрия, в соотношении 4:1 и центрифугировали. Полученную плазму разводили стерильным физиологическим раствором в соотношении 1:4, разливали в агглютинационные пробирки, по 0,5 мл.

Затем 12-18 часовую бульонную культуру испытуемого штамма стафилококка вносили по 2 капли в пробирку с разведенной плазмой. Посевы ставили в термостат при температуре 37 С. В качестве контроля в термостат помещали пробирки, одна из которых содержала смесь плазмы с физиологическим раствором, а другая с заведомо коагулазоположительной культурой стафилококка. Наблюдения за реакцией проводили после 1, 2, 3, 4, 6, 18, 24 часа. Коагуляцию плазмы определяли путем переворачивания пробирок. При этом, если содержимое пробирки образовало густое желе и не выливалось, то реакцию считали положительной. При отрицательной же реакции содержимое пробирок оставалось жидким.

Способность ферментировать маннит. В пробирки, содержащие пептонную воду и индикаторы с добавлением 0,5% маннита, вносили каплю свежей бульонной культуры испытуемого штамма стафилококка. Среду выдерживали в термостате при температуре 37 С. Посевы проверяли ежедневно в течение 7 суток. При наличии пузырков газа внутри поплавка и окрашивании среды в розовый цвет считали доказанным расщепление углевода, а только розовое окрашивание среды указывало нарасщепление

Для обнаружения патогенных стрептококков исследуемые пробы засевали на среду накопления, В.М.Карташовой, которую готовили следующим образом: к 500 мл. МПБ с РН-7, 2-7,3 добавляли 2,5 г лактозы, 1 мл спиртово-водного раствора бромкрезолпурпура (соотношение 1:100), затем МПБ ставили в водяную баню, доводили до кипения и кипятили 5-7 мин. После остывания до 50-55 в колбу добавляли 50 мл стерильной сыворотки без консерванта и 0,5 мл раствора неомицина содержащего 2500 ед. антибиотика. В стерильных условиях приготовленную среду разливали по 5 мл в пробирки.

Посевы выдерживали в термостате при температуре 37°С в течение 24 часов. Изменение сине-фиолетового цвета среды в лимонный или желто-зеленый указывало на рост стрептококков. Из пробирок с измененным цветом готовили мазки, окрашивали по Граму и микроскопировали. При наличии в мазках окрашенных грамположительно стрептококков их пересевали на мясопептонный агар, содержащий 5,0% эритроцитов крови барана.

Посевы выдерживали в термостате при 37 °С в течение 24 часов. После чего определяли тип гемолиза.

Для дифференциации агалактийного стрептококка с выделенными гемалотическими стрептококками ставили КАМП-тест. Для этого суточную культуру бета-гемолитического стафилококка высевали на МПА с 5,0% крови барана. Посев делали петлей сплошной линией по диаметру чашки. Перпендикулярную к линии посева стафилококка, не доходя.5-6 мм высевали ровным штрихом испытуемую культуру стрептококка. Чашки помещали в термостат на 24 часа при температуре 37°С.

При наличии четко выраженного гемолиза в виде усеченного треугольника или полукруга в зоне бета-гемолитического стрептококка испытуемых культуру считали КАМП-положительной.

Кроме того, для дифференциации выделенных штаммов стрептококков их высевали в бульон с 6,5% хлористого натрия с 40,0% желчи крупного рогатого скота и на 5 мл стерильно обезжиренного молока с добавлением 0,5 мл 1,0%-го раствора метиленовой сини, а также в бульон с 0,5% сорбита.

Для изучения сахаролитических свойств, выделенные штаммы стрептококков высевали в среды, содержащие глюкозу, лактозу, сахарозу, мальтозу и раффинозу.

Морфологические и дсультуральные свойства бактерий группы кишечной палочки были изучены у 11 штаммов. Все выделенные штаммы хорошо росли на обычных питательных средах. На МПА образовали серовато-белые, сочные колонии, легко сливающимся между собой. В МПБ росли с образованием помутнения, с последующим образованием осадка, легко разбивающегося при встряхивании. На среде Эндо колонии красного цвета с металлическим отблеском или без него.

В мазках, окрашенных по Граму, бактерии имели вид палочек с закруглыми концами, окрашенные грамотрицательно.

Для выделения бактерий группы кишечной палочки высевы молока производили на среду 'накопления Карташовой, в состав которой входили следующие компоненты: 10 г пептона, 10 г лактозы, 5 г хлористого натрия, 12 г порошкообразного сульфаната, 2 мл брореволпурпура в разведении 1:1000 мл стерильной дистиллированной воды, рН = 7,8. после добавления всех компонентов среду стерилизовали при 0,5 атм. в течение 15-20 минут. После разлива среды в пробирки, производили посев молока. Пробирки с посевами выдерживали в термостате при 370С в течение 24 часов. При наличии изменения цвета среды из сине-сиреневого в ярко-зеленый с помутнением делали дробные высевы на чашки с агаром

Эндо. Мазки из выросших выпуклых, округлой формы колонии, красного цвета с металлическим оттенком или без него, окрашивали по Граму и микроскопировали.

Если морфологии бактерий в мазке была схожа с морфологией семейства кишечных бактерий, то колонам отсевали на МПА и для дальнейшего исследования.

У выделенных нами культур изучали следующие свойства: гемолитические, ферментацию Сахаров, образование сероводорода и индола, образование ацетилометилкарбонила из глюкозы (реакция Фогес-Проскауэра), подвижность, патогенность для белых мышей и серологические свойства.

Для изучения сахаролитических свойств из суточной бульонной культуры испытуемых штаммов, делали посевы на среды с глюкозой, лактозой, сахарозой, мальтозой, маннитом и дульцитом.

Образование ацетилметилкарбинола определяли при помощи реакции Фогес-Проскауэра. Для этого к 5 мл четырехсуточной культуры испытуемых штаммов кишечной палочки на среде Кларка добавляли 5 мл 10% раствора едкого калия. Смесь помещали в термостат при температуре 37° С. Учет реакции проводили через 18-24 часа. При положительной реакции, в результате образования в среде ацетилметилкарбинола, появлялось розовое окрашивание среды. При отрицательной реакция среда оставалась без изменения.

Образование сероводорода у выделенных штаммов кишечной палочки определяли с помощью полоски фильтровальной бумаги, смоченной 10% раствором уксуснокислого свинца. Свинцовые бумажки фиксировали ватной пробкой в пробирке с посевом. Реакцию считали положительной если от образовавшегося сероводорода наступало почернение полоски фильтровальной бумаги. При отсутствии изменения цвета бумаги, реакцию считали отрицательной.

Серологические свойства выделенных штаммов группы кишечной палочки изучали в реакции агглютинации с типовыми «О моно и поливалентными агглютинирующими колисыворотками. Предварительно реакцию ставили с поливалентной сывороткой. Для постановки реакция агглютинации на предметное стекло наносили каплю поливалентной агглютинирующей сыворотки. Затем в эту каплю платиновой петлей вносили часть испытуемой колонии и хорошо перемешивали. Реакцию учитывали в течение первой минуты при покачивании стекла. Положительная реакция характеризовалась образованием агглютината в виде комочков и зернышек с полным или частичным просветлением жидкости. К отрицательной реакции относили те штаммы, которые в капле сыворотки образовали равномерную муть.

Штаммы кишечной палочек, давшие положительную реакцию агглютинации с поливалентной агглютинирующей сывороткой, пересевали на скошенный МПА и через 19-24 часа роста культуры типировали в капельной реакции агглютинации на стекле при помощи моновалентных сывороток, предварительно разведенных физиологическим раствором в соотношении 1:10. культуры кишечных палочек, давших положительную реакцию на стекле с моновалентными сыворотками, исследовали с соответствующей моновалентной сывороткой в пробирочной реакции агглютинации.

Пробирочную реакцию агглютинации ставили в объеме 1 мл в пробирках. Для этого соответствующую моновалентную агглютинирующую сыворотку разводили в двух рядах пробирок стерильным физиологическим раствором в разведениях: 1:25, 1:50, 1:100, 1:200 и т.д. до предельного титра. В каждой пробирке обоих рядов наливали по 0,5 мл сыворотки соответствующего разведения. Для реакции готовили антиген путем смыва физиологическим раствором исследуемой культуры;после 18-24 часового роста на МПА. Густота взвеси доводилась до 500 млн микробных тел в 1 мл по стандарту мутности. В каждую пробирку первого ряда добавляли по 0,5 мл антигена, прогретого в водяной бане в течение 1,5 часа при температуре 100°С, в пробирки второго ряда вносили по 0,5 мл антигена не подвергавшегося нагреванию (живая взвесь микробов).

После внесения антигенов пробирки выдерживали в термостате при 37°С в течение 18-20 часов. Одновременно ставили контроли на самоагглютинирующие свойства прогретого и не подвергавшегося прогреванию антигенов и соответствующей агглютинирующей сыворотке (1 мл в наименьшем разведении 1:25).

Реакцию учитывали при помощи лупы. Положительной считали агглютинацию при условии просветления жидкости и образования на две пробирки осадка склеенных микробов в форме раскрытого зонтика, разбивающегося при встряхивании на отдельные зернышки хлопья. Реакцию считали отрицательной, когда на дне пробирки образовался точкообразный осадок, который при встряхивании легко разбивался и давал равномерную взвесь.

В работе применяли препарат лактовит, разработанный нами совместно с доктором химических наук, профессором 3. Н. Юсуповым и кандидатом химических наук, доцентом У. Р. Раджабовым.

Антимикробную активность испытуемого препарата в отношении патогенных возбудителей мастита коров изучали in vitro в жидкой питательной среде методом последовательных разведений.

Минимальное количество препарата, дающее полную видимую задержку роста культуры (прозрачный бульон), соответствовало минимальной подавляющей концентрации (МПК) препарата и по нему определялась степень чувствительности бактерий.

Для установления бактерицидного действия лактовита, из последних, прозрачных пробирок после осторожного взбалтывания жидкости проводили посев на мясо-пептонный агар. Наименьшую концентрацию лактовита в пробирке посев из которой при инкубации в течение 48-72 ч не дал роста в питательной среде, принимали за минимальную бактерицидную концентрацию.

Стерильность препарата определяли на питательных средах: МПБ, сусло-агар, среды Китт-Тароцци и Чапека по общепринятой методике.

Безвредность препарата лактовит изучали в соответствии с «Методическим указанием по определению токсических свойств препаратов, применяемых в ветеринарии и животноводстве» (утв. ГУВ Госагропрома СССР, 1987).

При этом определяли острую и хроническую токсичность препарата. Оценивали действие препарата на массу, температуры тела, поведенческие реакции, анафилактического и раздражающего действия на лабораторных животных.

Для определения сроков годности лактовита образцы отобрали и заложили на хранение 14 серий - при режиме 4-8°С и 20-25° С. По истечению определенного срока образцы подвергли исследованию на стерильность, безвредность и суммарную биологическую активность.

Остаточное количество ингибирующих веществ в молоке коров , после применения препарата лактовит определяли на 20 головах лактирующих коров методами последовательных разведений на жидкой питательной среде и диффузии в агар.

В экспериментальных условиях терапевтическая эффективность препарата лактовит при мастите коров изучалась в сравнении с известным препаратом мастисан А.

Эффективность препарата при различных формах мастита коров в экспериментальных и производственных условиях определяли на 310 гол. С этой целью животным опытных групп вводили лактовит внутрицистернально в дозе 10 мл на голову два раза в день в течение 3-5 дней. Животные контрольной группы получали мастисан Л согласно наставлению по его применению. Учет результатов проводили путем контроля за состоянием здоровья вымени в течение всего периода лечения и в конце опыта для исключения возможных рецидивов и осложнений.

Статистическую обработку полученных результатов проводили по общепринятой в биологии методов.

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Давлатмуродов, Тоирджон Мирзоалиевич, 2004 год

1. Авдеенко B.C., Гаврилин В.Г., Сидоркин В.А. Профилактики и терапии болезней с/х животных, Воронеж, 1996, с.45-49.

2. Артур-Саран Заболевания вымени и борьба с ними в Изралие. (Мастит у крупного рогатого скота) 1986, с. 8-9.

3. Архангельский И.И., Балковой И.И., Гасанов А.Г. Профилактика мастита у коров в период запуска. «Ветеринария», 8-1970, с. 18-21.

4. Архангельский И.И.,Иващура А.И. Патогенные бактерии в молоке коров. «Ветеринария». № 12,1963, с. 12-15.

5. Архангельский И.И., Оксамитный А.К. Чувствительность реактивов для диагностики мастита у коров. «Ветеринария», № 5, 1968, с.23-25

6. Байрак В.А., Дмитриева Т.А. Дифференцирования стафилококков по ДНК азотной активности, «ветеринария», 1970, с.30.

7. Батраков А.Я. Опыт лечения коров при маститах в совхозе

8. Детско-сельский» записки Ленинградского ордена трудового Красного Знамени. СХИ- Л. 1972, с.110 112.

9. Батраков А.Я. Лечение и профилактика маститов у коров. «Ветеринария», 1985, № 8, с. 32-33.

10. Батраков А.Я. Профилактика и лечение маститов у коров. Петербург: «Петроллазер», 2001, с. 7.

11. Васильев В.Г. Доение коров, больных маститом. «Ветеринария»5 1998 с 32-33.

12. Велиток И.Г., Серебряков Е.В. Характеристика скрытых нарушений секреции молока. «Ветеринария», № 8, 1970. с. 27-29.

13. Вишневский С.М. К диагностике и профилактике мастита укоров. «Ветеринария», № 1, 1965, с. 31-32.

14. Выгодчиков Г.В. Стафилококковые инфекции. Москва, 1963, с.58.

15. Воскобойников В.М. Внутривенное введение новокаин -пенициллинового раствора при маститах. «Ветеринария», № 10. 1961, с. 59-60.

16. Выгодчиков Г.В. Микробиология и иммунология стафилококковыхзаболеваний. М., Медгиз, 1950.С. 34 -98

17. Ворганов А.И., Тетерев И.И. Шилова Е.В. Экологический чистый противомаститный препарат. Научные аспекты профилактики и терапии болезней сельскохозяйственных животных. Воронеж, 1996, с. 59 -60.

18. Ворганов А.И., Конопельцев И.Г., Филатов А.В. Распространение и этиология мастита и эндометрита у коров. Актуальные проблемы ветеринарной науки, 1999, с. 7:8.

19. Гавриш В.Г., Егунова А.В. Септогел для лечения коров при мастите. «Ветеринария» №6 2000 с 33-34.

20. Гейдрих Р., Ренка В. Маститы сельскохозяйственных животных и борьба с ними. Москва, «Колос», 1968, с. 111 113.

21. Гончаров В.П., Карпов В.А., Якимчук И.Л. Профилактика и лечение маститов у животных. М. Россельхозиздат, 1987, с.23 -25

22. Головко А.Н., Вегтомов В.Я. и др. Этиопатогенез и терапия мастита у коров. «Ветеринария», № 11,2001, с. 35-36.

23. Гавриш В.Р., Егунова А.В. и др. Септогель для лечения коров при мастите. «Ветеринария», № 6,2000, с. 33-35.

24. Гасанов Н.Г. Усовершенствование лабораторные методы диагностики мастита стафилококковой этиологии у коров. «Диагностика, терапия и профилактика акушерскогинекологической патологии у животных».Москва, 1994, с. 97-99.

25. Гасанов Н.Г., Черепахин Д.А., Кордюков А.Г., Гусейнов Э.М. Диагностика и лечения маститов у коров с применением неантибиотических препаратов. «Диагностика, терапия и профилактика акушерско-гинекологической патологии у животных». Москва, 1994,с. 24-26

26. Головко А.Н., Кузьмин А.А. Лечение коров больных маститами.т

27. Ветеринарная медицина 77», 2000. с. 124 - 126.

28. Гужвинская С.А. Применение Химиопрепаратов и пробиотиков для профилактики и лечение маститов. «Ветеринарная медицина-84», Харьков, 2004, с. 279 -280

29. Гасанов Н.Г., Черепахин Д.А. Взаимосвязь между маститов и эндометритам у коров. Реферативный журнал, № 3, Москва, 1989.

30. Демидова Л.Д.,Юрков В.М. Биологический препарат на основе ферментов для лечения больных маститом коров. Научные аспекты профилактики и терапии болезней с/х животных. Воронеж, 1996,с. 76-77

31. Демидова Л.Д., Юрков В.М. Сравнительное испытание лекарственных препаратов при лечении мастита у коров. «Диагностика, терапия и профилактика акушерско-гинекологической патологии у животных,М. 1994, с. 127- 129.

32. Демидова Л.Д., Реброва Т.Б., Болибалова С.Н. Лечение коров больных маститов и эндометритом при помощи прибора «Кентавр». В кн.: Диагностика, терапия и профилактика акушерско-гинекологической патологии у животных, М.1994, с. 120-122.

33. Демидова Л.Д. Влияние лечения мастита и эндометрита коров на санитарное качество молоко. В кн.: Диагностика, терапия ипрофилактика акушерско-гинекологической патологии у животных, М. 1994, с. 85-86.

34. Демидова В.В. Сравнительная эффективность методов лечения при маститах. Реферативный журнал, № 3, Москва, 1989.,С.38-41

35. Емельянов А.С., Кулаков Н.К. Изменчивость титра лизоцима молоко на протяжение лактации у коров. Доклады ВАСХНИЛ, № 10, 1968.

36. Зверева Г.В., Олескив В.Н., Зинченко Л.Р. К этиологии маститов у коров. «Ветеринария», № 5, 1964. с. 33-35

37. Зачаевский И.С. Ветеринарно-санитарная оценка молоко при маститах коров. «Ветеринария», № 7, 1964,с. 34 -35

38. Зверева Г.В., Берченко И.В. Оценка молока при маститах и эндометритах Доклады Всесоюзной конференции по молочному делу. М., Сельхозиздат. 1958.С. 29-30

39. Ильина А.И., Поспелов А.И. Болезни вымени у коров. Москва, Сельхозгиз, 1968, с.ЗЗ -34.

40. Иващура А.И. Чувствительность патогенных бактерий выделенных из молоко коров к антибиотикам. Вестник с/х науки, № 4, 1967. с.18-19

41. Иващура А.И. Характеристика коли бактерий, выделенных из молока коров. - В кн. Проблема ветеринарной санитарии . М., 1967, с. 23 - 25.

42. Иващура А.И. Антибиотикотерапия при маститах коров. «Ветеринария», № 8, 1970, С. 33-34 .

43. Иващура А.И. Гигиена производства молока. Россельхозиздат, 1984. с. 110-131.

44. Иващура А.И. Гигиена производства молока. Россельхозиздат, 1989. с. 121-128.

45. Иващура А.И. Система мероприятий по борьбе с маститами укоров. Москва. Россельхозиздат, 199I.e. 34

46. Иващура А.И. Маститы коров. Издательство «Колос», Москва, 1972.

47. Ильинский Е.В., Трошин А.Н. ,Котова О.В. Об этиопатогенезе мастита у коров. Государственный аграрный университет, 1995, с. 49-53.

48. Карташов В.М. Новая элективная среда для выделения патогенных стрептококков. «Ветеринария», № 1, 1972. 34 -35

49. Карташов В.М. Индикация патогенных бактерий в молоке и молочных продуктов. Москва, «Колос», 1973 .с 42 -44

50. Карташова O.JI., Киргизова С.Б. Диагностика скрытых форм мастита у коров. «Ветеринария» №10 2004 с.32-33.

51. Крикова М.В. Применение бактериофага для индентификации и индикации стафилококков, выделенных на коровьего молока. Автореферат канд.диссертации. В., 1967.

52. Кузнецов М.А. Способы получения чистого молока и профилактика маститов при Машином доении коров. В кн.: «Проблемы повышения качества молока и профилактика маститов у коров». М., 1969. с .84-90

53. Камышанова А.С. Маститу высокопродуктивных молочных коров в период лактации и их воспроизводительная функция. Автореферат канд.диссертации, 2000. с.28

54. Кузьмин Г.Н. Мастит кокковой этиологии у коров и рациональное способы его терапии и профилактики. Автореферат докторской диссертации, Воронеж, 1995. с.48 .

55. Копыткин В.К., Новиков О.Г. Мастит у коров. «Ветеринария», № 2, 1999, с. 12-14.

56. Кузьмин А.А. Бимастин новый эффективный препарат примаститах коров . Проблемы изыскания синтеза и производства препаратов для ветеринарии. Самарканд, 1999, с. 96.

57. В.М. Карташова. Стрептоэкоракт для лечение коров при мастите в период лактации. «Ветеринария», № 5, 1999. С.з1-32 Проблемы изыскания синтеза и производства препаратов для ветеринарии. Самарканд, 1999, с. 96.

58. Корякина С.П. Заклеивание соскового отверстия вымени коров как метод профилактики мастита. Реферативный журнал, № 3, 1988.

59. Логвинов Д.Д. Комплексное лечение маститов, Ветеринария, № 9, 1964.С 34 -35

60. Логвинов Д.Д. Болезни вымени у коров. Издательства «Урожай», Киев, 1979.С. 11 -79

61. Логвинов Д.Д., Логвинов А.Д. Устройство для определение качества молока (УОКМ-1), Днепропетровск, 1990.С. 36

62. Максимов Б.И. Диагностике и лечение маститов у коров. Тр.

63. Юбилейной сессии отд.животн.и ветеринарии Академии с.х. наук Белорусской ССР. Минск, 1958. С.49-51

64. Марчук А.Т., Фартушный В.Ф. Лечение маститов ящурной этиологии. «Ветеринария», № 1, 1967, с. 29-31.

65. Мамаев А.П. Профилактика маститов у коров при машинном доении. «Ветеринария», № 8, 1970, с. 38-39.

66. Мутовин В.И. Ветеринарно-санитарная экспертиза молока «Ветеринария», № 5, 1960, с. 18-21.

67. Мутовин В.И. Борьба с маститами коров. Москва, «Колос», 1974.

68. Мутовин В.Н. Скрытые (субклинические) маститы у коров иборьба с ними. Труды ВНИИВС, т. 14, М., 1959.

69. Мутовин В.И. Борьба с маститами коров. М., 1963.С. 89-96

70. Мутовин Б.И. Молочно-контрольная пластинка для диагностики мастита. «Ветеринария» № 5, 1966.с. 30-33

71. Мутовин В.И. Лизоцимы молока коров. В кн.: «Проблемы повышения качества молока yi профилактика маститов у коров». М., 1969.С. 72-75

72. Нежданов А.Г., Попов П.Х. Профилактика мастита у коров. «Ветеринария» №11 2004 с.37-38.

73. Ницмане А.К. Скрытая форма мастита как источник инфекцииздоровых коров в латвийской ССР. Автореферат канд.диссертации, Рига, 1955.

74. Ницмане А.К. Профилактика инфекционных маститов у коров.

75. В кн.: Труды Лат.с/х. Академии т.5. 1956.

76. Никитин В.Р. К вопросу диагностики субклинического маститов у коров. Труды Ставропольского с/х института, 1967, с. 24.

77. Огурцов А.Ф. Сосковые мини катера Огурцова. «Ветеринария», № 12, 2000.

78. Оксамитный Н.К. Роль быстрых диагностических тестов в борьбес маститами. В кн.: «Проблемы повышения качества молока и профилактика маститов у коров», М., 1969.

79. Оксамитный Н.К. К этиологии маститов. «Ветеринария», № 3,1970. с. 22-24

80. Оксамитный Н.К. Субкл и чи адастити у Кор в. Киев, 1973. с. 85-88

81. Осташевский А.Г., Образцов В.И. Токсигенные стафилококки, выделенные из молока здоровых и больных животных. Тезисы док.научн.техн.конф. М., 1967. с. 65-68

82. Париков В.А., Климов Н.Т., Романенко А.И. Мастит у коров. (Профилактика и терапия) «Ветеринария»№11 2000 с.34-36

83. Погуляйло В.Н. влияние машинного доения на возникновениемаститов у коров. «Ветеринария», 13, 1967.С. 14-15.

84. Пориков В.А., Климовый А.Н. мастит у коров. «Ветеринария»,11, 2000.С. 35.

85. Пориков В.А. Автореферат докт.вет.наук. Воронеж, 1990.

86. Пориков В.Н., Слободяник В.И., Романенко А.И. и др. Препарат для лечения мастита у коров «Диофур», Воронеж, 1995.

87. Пориков В.А., Л.В.Смирнова, Новиков О.Г., Поноткин Д.М. Мероприятия по профилактике и терапии мастита у коров (Актуальные проблемы ветеринарной науки), 1999, с. 8-9.

88. Подберезный В.В. Биотерапия и биопрофилактика мастита у коров. Автореферат докт.вет.наук, Воронеж, 1995.

89. Притыкин Н.В. Распространение и формы проявление мастита у коров в сухостойный период. Актуальные проблемы болезни молодняк, 2002.

90. Петков П., Божкова Г. Эффективность пентозола для лечения коров больных клиническим-маститам.Ветер.сборник 1988.С.86

91. Полянцев А.И.,Подкуйко А.Г. Мастит у коров в сухостойный период и заболеваемость телят диспепсией. «Ветеринария» , № 3, 1987. с. 32-33.

92. Попов Л.К., Попов Ю.Л. Скрытая форма мастита и гинекологические болезни у коров

93. Ветеринария » №4 1998 с 39-41

94. Попов Ю.И., Турченков А.А. Ветеринарные кремы в терапии мастита у коров. Актуальные проблемы болезни молодняка в современных условиях. Воронеж, 2002.

95. Пориков В.А., Паршин П.А. Эффективность лечения субклинического мастита у коров в сухостойный период. Актуальные проблемы болезни молодняка в современных условиях. Воронеж, 2002.с. 478.

96. Притыкин Н.В. Распространение и формы проявления маститов укоров в сухостойный период. Актуальные проблемы болезнимолодняка в современных условиях. Воронеж, 2002, с. 500.

97. Рубцов В.И. Лечение коров при серозном и катаральном мастите. «Ветеринария», № 1, 1999.С. 31-33

98. Ребровская А.Ф. Дезоксирибонуклеазная активность стафилококков, выделенных из молока здоровых и больных маститом коров. В кн.: Материалы докладов научной конф. посвящ. 50-летием Великого Октября. Казань, 1967, с. 86-88.

99. Соколова К.Ф. Роль бактериального фактора в течение маститов коров в Дагестанской АССР. Научн.конф. М., 1969.

100. Симецкий О.А. лечение маститов в период запуска и сухостоя.

101. В кн.: «Маститы и болезни обмена веществ сельскохозяйственных животных», Рига, 1973.

102. Ситникова М.М., Рыкова А.Е. Опыт лечения маститов усухостойных коров. Труды Ульяновского сельхоз ин-та, т.8, 1961.

103. Сорокина О.Ф. Молоко коров, больных скрытым маститом.

104. Молочная промышленность, № 4, 1964.С. 64-68

105. Сорокина О.Ф. Разработка среды для молочнокислых палочек.

106. В кн.: «Материалы научн.конф. по итогам НИ работы за 1966-1967 гг. Вологда, Молочный институт.

107. Степанова Б. А. Роль токсигенных стафилококков в этиологии маститов коров и значение стафилококкового анатоксина для их профилактики. Автореферат канд.дисс. М., 1967.

108. Студенцов А.П. Болезни молочной железы. В кн.: «Ветеринарное акушерство и гинекология», М., 1970.

109. Хамори Д. Борьба с маститами в Венгрии при помощи направленной племенной работы. В кн.: «Проблемы повышения качества молока и профилактика маститов у коров». М., 1969.

110. Хилькевич Н.М. К вопросу этиологии и лечения маститов у коровантибиотиками. «Ветеринария» , № 9, 1966.С. 20-22.

111. Хилькевич Н.М. Болезни молочной железы у коров. «Ветеринария», № 1, 1973.С. 23-25

112. Хилькевич Н.М. Чувствительность к антибиотикам микробов, вызывающих маститы. «Ветеринария», № 5, 1972.

113. Хилькевич Н.М. Профилактика и лечение мастита.«Ветеринария», № 4, 1987.C. 31-33

114. Юб.Хилькевич Н.М., Хилькевич С.Н. Комплекс мер борьбы с бесплодием и маститом коров. « Ветеринария » №8 1998 с 29-33

115. Шатохин Н.Г. Роль стафилококков в заболевании молочной железы коров. В кн.: «Проблемы повышения качества молока и профилактика маститов у коров». М., 1969.С. 39-41

116. Шатохин Н.Г. Инфекционные маститы коров, овец и коз в Узбекистане и меры борьбы с ними. Автореферат докт.дисс. М., 1971.

117. Alberson K.L. Traitment des mammites colibacillairesaiques. Point veter. 1990, s.22.

118. Bardan A.E., Ebied A.B. Economic losses resulting from mastiris disease in Friesian dairy herd Indian Veter. S. 1990. s. 67.

119. Booth S.M. Progress in controlling mastitis in. England and Wales Adstacts 1987. s. 236. Wold veterinary congress Montreal.

120. Bramley A.S. Streptococcus uberis mastitis. Epidemiology pothogenesis/ Anim.Health Nutrit. 1987, s. 42.

121. Cave -Penney T. Mastitis creeps in as hygiene standartds relaxed Livestock Farmy, 1988, s. 26.

122. Cloux D., F.Mammite du Jura: Mythe tu realite. Terre Romande -1989, s.23

123. Dalton C. Plan dry cow therapy now. N.Z.Famer, 1990.

124. Dube J.P. Les leucjcytes et la prevention la Mammite producteur agr., 1989.

125. Davidson A. Thex. Veterin.Rec, 1961, 73,42, s. 1015-1019.

126. Elkoly A.M., Mahmoud А/А/ Effect of post milking disinfectants as prophylactive meaure in control of mastitis Assint veter med J1988.s.l8,38, 107-114.

127. Erskine R.S., Unflat J.G. Pseudomonas mastitis difficulties in detection and elimination from contaminated Wash-Water systems. J.at.Veter Med. Assn, 1987, s. 191.

128. Flasteridge W.N. Bovine nastitis. J. Dairy Sci. 41. 1958.

129. Fox L., Staph. Aureus: Surce, impact.Dairy Herd Manag- 1990.

130. Fox L.K.; Hancock D.D., Weems C.W. The effect of intaramammary antibiotic therapy at. Calving on udder health traits. S.dairy, 1987, s. 8.

131. Fox L.K.; Hancock D.D., Follow the basis to control s.aureus Hooards-Dairyman, 1990, s. 135.

132. Fox L.K. Managements role in the control of mastitis Lairyman, 1988, s. 69

133. Jonson P., Olsson S.O., Funxe H. Peiter mastitis in Sweden during a three years period. /Current science/ 1987, s. 45

134. Hermsen P.S. You have to control two types of mastitis. Hoard.s. Dairyman, 1989.

135. Hogan S.S., Smith K.L. Growth responses of environmentalmastitis pathogens to long-chain fatty acids. J.Dairy, s с 1988, s. 71.

136. Hogan S.S., White D.G., Pankey S.W. Effect of teat dipping on intramammary infections by staphylococci other than staphylococcus aureus. J.dairy, sc, 1987, s. 70

137. Meyer F. Die Bedeutung der mastitis fur die prxis und ihre stellung im schrilttum vin, 1945, bis heute. Bert u munch tierarzti Wschr,1988. s. 101

138. Morcos M.B.; Elyas A.N. Sahvat E.A. Bovine mastitis concomitant with post-partum metritis. Assint Veter.med. S, 1988, 18, s. 101

139. Neumeister E. Wien-tierarzli, Machr, 1971. V 58, N 6.

140. Neumeister E. Ein Beitrag zur Antibiotkarsistenz euter-pathogener staphylokokken, -Borl.-Munch tier.Urztl.Wachr, 1971, Vol.84, N 18.

141. Neumeister E. Uber die Euterverttraglichkeit Ausscheiungsdauer und therapeutische wirkung von stapenor. Dt.tierurzti. Wachr, 1973. V.80, N. 1.

142. Nocard Mollero. Su rune mammitecontagieuse des laitiers-Bull. Vet. Med. De la Soc. Cehtr. De med. Vet. 1884.

143. Oklyesa M.N. The relationship between milk yield and Sensitivity of the udder to streptococcus agalactiae infection, Dairy Sei.Abstr.Vet.Arh1. V.37, N 7.

144. Oliver J., Neave F.K., Snaroe M. Elisbeth the prevention of infection of the dry udder. J.Dairy Res.291, 1962.

145. Owens M. Dry cow therapy. Proceeding, 1987. s. 15-18.

146. Pagano J.S. et.al. Isolation from animals of numan strains of staphylococci during an epidemic in a veterinary school. 131,1960,

147. Pankey J.W. Teat dipping: a tool control of contagious and envirommental pathogens. Proceeding, 1987, s. 156-159.

148. Pearson I.et.al. The relationship between bulk milk cell counts and cow and guarter mastitis incidence. Vet.Rec., 1971. Vol.88, N 19.

149. Plastridge W.N. Bovine mastitis. J. Dairy Sci, 41, 1958.

150. Pleszka A. Nosicielstwo gronknowew koagulazododatnich W.wumenia ir krov. Roczn.Panstw. Zaki.nig. 14, 1. 1963.

151. Rako A. et.al. Ikijesa Zuchtungskunde 1962,34: 367.

152. Redselli G.et.al. Arch.Vet.Ital. 1961.Vol. 12, N 289.

153. Richter O. Zur Behanlung der chronischen Rinder-mastitis in der Trockenzeit. Mittei-lungen des Rindergesundhei tsdientes, Heft" 20, Madz, 1968.

154. Reichmuth J., Bericht D.T.Pophylaxe der pyogenss Mastis beim Rind Veterinarmedizische Ges Kongz. 1987.

155. Schallibaum M. Die Pyogenesmastitis und die sommer mastitis. Zbi land Mitchwirtscha ft, 1989.

156. SchalmO.W. Pathogenesis of coliform mastitis International-Mastitis congres. Vol. 89, 1964.

157. Seelemann M., Rackow. Hygiene bei der Nilchgewinnung . Mittig.der DLG, Vol.67, 1952, N705.

158. Seelemann M., Rackow. .International dari congress, 13. The Hague. Vol.2, 1953.

159. Seelemann M., Mejer A. und Knolle J. Zur Frage praktisen Anwendung von Reinigungs und Desinfektionsmanbahmen Mittel zur Verhutung vermeidbarer Milch und Buterinfektionen. Kieler Milchwirtachaftliche Fcrechung- Sberichte, 14 Band, 2 Heft, 1962.

160. Shimzu К. et.al. J.Japan Vet.Med.Ass. 1965ДМ8, N 420.

161. SipkaM. Vet.Glass. 1961, Vet. 15, N 123.

162. Schmidt G. H. J.Dairy Scince 1969. V. 52. N 689.

163. Smith I.M. et.al. Staphylococci in rural patientesdischargeft from hospital. Am. J. MeddSci. 245, 1963, 12.

164. Smith By. A. et.al. Methods of Reducing the Incidence of Udder Infection in Dry Cows. Veterinary Record, 1966, Vol. 79, N 8.

165. Smith By. A.et.al. Methods of Reducing the Incidence of Udder Infection in Dry Cows,Veterinary Record, November 11,1967.

166. Smith By. A., Dodd F.H., Neave F.K. The effect of infermamary infection during the period on the milk production pf the effected quarter at the start of the succeeding lactation. National Institute for Research in Dairying Lhinfield, Reading. 1968.

167. Smith A. et.al. "Methodes of reducing the incidence of udder infection in dry cows", 1970.

168. Schonherr W. Wastitis diagnostic in the Tierbestand und Laboratorium. Mh. Fur Vet.Med.3, 1963.

169. Schonherr W.et.al. Tierurztliche Milchygiene. Verlag. Leipzig. 1967. 8. Smith K.L., Hogan S.S. Selenium in dairy cattle; its role in disease resistance. Veter. Med.(Edwordsville) 1988, s. 83.

170. Thonton D. The southern couties veterinary society mastitis control scheme. Vet.Rec., 1972. Vol.90, N 3.

171. Thakur D.K. Armi S. Udder odema in dairy cows-actimal study. Indian Veter. S.1989.

172. Trinidad P., Nickerson S.C. Efficacy of intramammary treatment in unfreol and primugravid dairy heifers. S.Am.Veter.Med.Assn, 1990, s.197.

173. Vasil M. Liecba mastitis at. Dosnic v. oblodi laktacic masticanom E and difurolom A. Veter.Med. and Kosiciach, 1988. s. 24.4'