Роль гормонов в координации роста и водного обмена в побеге и корне растений пшеницы тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, кандидат биологических наук Тимергалина, Лейля Назировна

• Тимергалина, Лейля Назировна
• кандидат биологических наук
• 2001

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Тимергалина, Лейля Назировна

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Координация роста побега и корня

1.1.1. Гормональная регуляция роста корней

1.1.2. Гормональная регуляция роста побега

1.2. Регуляция водного обмена 27 1.2.1. Гормоны как регуляторы водного баланса

2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Условия выращивания растений и проведения экспериментов

2.2. Методы исследования

2.2.1. Измерение роста растений

2.2.2. Определение транспирации

2.2.3. Экстракция, очистка и концентрирование гормонов

2.2.4. Очистка и концентрирование цитокининов на картридже С

2.2.5. Тонкослойная хроматография

2.2.6. Определение содержания гормонов в ксилемном соке

2.2.7. Определение активности ферментов, катализирующих распад 49 цитокининов

2.2.8. Определение О-глюкозидов цитокининов

2.2.9. Твердофазный иммуноферментный анализ

2.2.10. Условия проведения опытов с хлоридом ртути

2.3. Статистическая обработка

3. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

3.1. Гормональная регуляция ростовых процессов побега и корня

3.1.1. Содержание и транспорт цитокининов у растений после удаления части корней

3.1.2. Гормональная регуляция образования боковых корней у растений пшеницы после редукции корневой системы

3.2. Гормоны и показатели водного обмена

4. ВЫВОДЫ 97 СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Роль гормонов в координации роста и водного обмена в побеге и корне растений пшеницы»

Актуальность. В основе существования растения как единого организма лежит, с одной стороны, четкое разделение функций между побегом, ассимилирующим углекислый газ, и корнями, поглощающими воду и соли, а, с другой, - тонкая координация этих функций. Важным проявлением такой координации функций побега и корня является регуляция их относительной ростовой активности. Чутко реагируя на изменение условий обитания, растение формирует именно такие по размерам органы, которые обеспечивают эффективное поступление в организм элементов питания. При этом при постоянных условиях обитания поддерживается определенное, генетически запрограммированное соотношение биомассы побега и корня, и потеря части корней или побега активирует рост редуцированных органов и восстановление их биомассы. Хорошо известно, что гормоны играют важную роль в координации функций побега и корня (Jackson, 1993). Так, цитокинины продуцируются в основном в корнях, способны регулировать рост, активность фотосинтеза, транспирацию и другие функции побега, а ауксины, местом синтеза которых является побег, влияют на закладку боковых и придаточных корней, поглощение ионов и др. процессы, происходящие в корнях. Способность синтезировать гормон связана с размерами гормон-продуцирующего органа. Поэтому возможен механизм координации роста побега и корней, в соответствии с которым активный рост одного органа обеспечивает продукцию им гормона, транспортируемого в другие органы и активирующего их рост. Однако существует множество примеров, не укладывающихся в эту простую схему. Так, при дефиците минерального питания наблюдается относительное разрастание корней, а уровень содержания цитокининов снижается (Кудоярова и др., 1989, 1993; Chapín II, 1990). Поскольку концентрация гормонов определяется не только их синтезом, но и скоростью дальнейшего метаболизма, принципы гормональной регуляции функций побега и корня, очевидно, гораздо сложнее и требуют дальнейшего изучения.

Вместе с тем, координация функций побега и корня не должна сводиться к регуляции их роста. Ростовая реакция относительно медленная, и в быстро изменяющихся условиях окружающей среды могут быть важны не только ростовые, но и более быстрые реакции. Среди них особое место занимают процессы, которые обеспечивают поддержание водного баланса за счет координации поглощения воды корнями и ее потери листьями в результате транспирации. Гормональной регуляции устьичной проводимости уделяется очень много внимания. Вместе с тем последнее время благодаря открытию специализированных водных каналов - аквапоринов (К]е11Ьот е1 а1., 1999) -намечается смещение акцентов в область регуляции гидравлической проводимости. Относительно участия гормонов в этих процессах имеется очень мало сведений, хотя актуальность такого рода работ подчеркивалась в ряде обзоров (СкгкБоп, 2000; 81еис11е, 2000 и др.).

Цель и задачи исследования. Все сказанное определило цель работы, которая состояла в том, чтобы изучить роль гормонов в координации роста побега и корня проростков пшеницы и процессов, обеспечивающих водный баланс, на модели растений с частично удаленной корневой системой.

Для решения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

1. Исследовать динамику накопления ауксинов в процессе образования боковых корней, индуцированного деризоидацией.

2. Оценить влияние удаления части корней на скорость поступления цитокининов из корней и их метаболизм в побеге.

3. Изучить особенности водного обмена у растений с редуцированной корневой системой путем определения скорости транспирации, содержания воды и скорости роста листа.

4. Исследовать влияние ингибиторов аквапоринов на водный баланс растений.

Научная новизна. Впервые показано, что сохранение высокого уровня цитокининов в растениях с частично удаленным органом, продуцирующим цитокинины, достигается как за счет активации продукции цитокининов оставшимися корнями (что может быть связано со стимуляцией образования боковых корней), так и с замедлением распада гормона. Установлено, что быстрое накопление ауксинов в оставшемся корне может быть причиной индукции образования боковых корней. Впервые показана способность растения с частично удаленными корнями сохранять высокий уровень обеспеченности растения водой за счет увеличения гидравлической проводимости корней. Установлено, что быстрое изменение скорости транспирации в ответ на удаление части корней является результатом передачи сигнала, который не является химическим.

Практическая ценность. Сведения, полученные в результате проделанной работы, будут полезны как для разработки мер, направленных на повышение засухоустойчивости за счет регуляции водного баланса растений в условиях дефицита воды, так и на повышение регенерации корней и жизнеспособности посадочного материала с частично поврежденной корневой системой.

Апробация работы. Основные положения представлены на 3 симпозиуме Российского общества физиологов растений «Физико-химические основы физиологии растений и биотехнология» (Москва, 1997), 11 Конгрессе Федерации Европейских Обществ Физиологов растений (Варна, 1998), IV съезде общества физиологов растений России (Москва, 1999), V международной конференции «Регуляторы роста и развития растений (Москва, 1999), VII Молодежной конференции ботаников (Санкт-Петербург, 2000), 12 Конгрессе Федерации Европейских Обществ Физиологов растений

Будапешт, 2000), III конференция "Иммуноанализ регуляторов роста в решении проблем физиологии растений и биотехнологии" (Уфа, 2000).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 9 работ.

1.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Координация роста корня и побега

Одним из проявлений взаимодействия разных частей единого растительного организма является координация роста корня и побега в процессе их развития в конкретных условиях окружающей среды.

Связь между ростом и развитием побега и ростом и развитием корней отражает соотношение корень/побег (сухой вес), которое можно предсказать на различных стадиях развития растения (Davidson, 1969). Это предполагает существование механизма, контролирующего баланс роста подземных и надземных частей растения. Получены доказательства того, что на определенных стадиях в конкретных условиях соотношение массы корень/побег детерминируется генетически (Monyo, Whittington, 1970; McMichael, Quisenberry, 1991), и оно возвращается к своим прежним значениям после физического сжатия корней (Richards, 1981), действия засухи и дефолиации (Blaikie, Mason, 1990), после удаления частей побега (Buttrose, 1966), или большой части корня (Biddington, Dearman, 1984). Значительную роль во внутренней регуляции соотношения массы корень/побег играют условия, окружающие корни. Например, засоление (Kuiper et al., 1991), а также уменьшение концентраций азота или фосфора в почве (Hunt, 1975) в большей степени ингибирует рост побега, чем корней. Также известно, что в дополнение к снижению прироста неблагоприятные почвенные условия могут быстро вызывать множество изменений в побегах, таких как эпинастическое изгибание листьев и их старение, образование придаточных корней и закрытие устьиц.

Предполагается, что степень взаимодействия между корнем и побегом контролируется комбинацией не только внешних, но и внутренних факторов.

Необходимость в обмене ассимилятами и питательными веществами между полярными органами растений (побег/корень) связана с тем, что они находятся в различных средах обитания. При этом корни могут контролировать скорость роста побегов путем ограничения снабжения их питательными веществами и наоборот. Соотношение корень/побег определяется балансом между функциональной эффективностью корней и побегов (Davidson, 1969). Thornley (Thornley, 1972) высказал предположение, что рост корня и побега (каждый) зависят от концентраций углерода и минеральных веществ (преимущественно азота), которые в свою очередь определяются уровнем их поступления (Reynolds, Dantonio, 1996; Farrar, 1996; Andrews et al., 1999). Масса корня и масса побега предположительно отражают относительные конкурентные возможности корня и побега и их индивидуальные абсорбционные способности, например, для азота (McDonald et al., 1986). Моделирование доступности минеральных веществ в питательном растворе (Ingestad, Lund, 1986), а также изменение плодородия почвы (Harper, 1977) показали, что минеральное питание влияет на абсолютную и относительную скорость роста частей растения. Таким образом, минеральное питание, поступающее из корней, ощутимо влияет на размер побега. С другой стороны, значительное снижение размера корней в результате обрезания или сжатия их части не всегда вызывает существенное изменение роста побега. Например, снижение веса корневой системы саженцев ольхи путем их сжатия не снижало относительной скорости роста побега и не влияло на другие аспекты его развития или водного питания (Tschaplinski, Blake, 1985). Подобно этому удаление части корней у проростков сахарной свеклы (Das Gupta, 1972), у растений винограда (Buttrose, Mullins, 1968), ячменя и ржи (Humphries, 1958) не сопровождалось изменением роста побегов. Вместе с тем есть данные о снижении прироста побега после удаления 50% (или менее) корней (Humphries, 1959; Buttrose, Mullins, 1968; Carmi, 1986) или после некоторого их сжимания (Krizek et al., 1985; Ruff et al., 1987; Richards, Rowe, 1977; Richards, 1981). По мнению ряда авторов, такие эффекты могли быть связаны с изменением водного баланса (Hameed et al., 1987; Tschaplinski, Blake, 1985) или метаболическими процессами в корне, вызванными недостатком кислорода (Peterson et al., 1991). Эти данные дополняют недавние исследования Hurley с соавт. (Hurley, Rowarth, 1999). Они обнаружили, что сырой вес растений, площадь листа и устьичная проводимость снижались при уменьшении объема вегетационного сосуда, но при этом водный потенциал растений оставался без изменений.

Несмотря на то, что в некоторых случаях был зарегистрирован активный рост побега у растений с редуцированной корневой системой, снабжение минеральными веществами является важным механизмом, с помощью которого корни могут ограничивать рост побега. По мнению А.Марданова (Марданов, 1985) влияние корней на рост побега возможно из-за более высокой концентрации цитокининов в корнях по сравнению с побегом. Не исключено, что побеги также осуществляют контроль над соотношением корень/побег. Это подтверждается результатами экспериментов с прививкой карликовых растений томата на нормальные (Van Staden et al., 1987). С другой стороны известны факты, когда саженцы деревьев, росшие на питательных растворах различных концентраций, демонстрировали неодинаковые относительные скорости роста, несмотря на то, что они имели близкие по значению внутренние концентрации минеральных веществ (Darrai, Wareing, 1981). Подобные результаты были также получены при работе с различными видами рода Plantago, которые, как было обнаружено, проявляют очень разную отзывчивость на изменения в снабжении минеральными веществами (Kuiper, Staal, 1987).

При обработке растений гормональными аналогами типа бензиладенина обнаружили увеличение прироста сухого веса побега на единицу поглощенных элементов минерального питания (Richards, Rowe, 1977; Richards, 1978). Эти опыты позволяют предполагать, что эндогенные гормоны действительно могут влиять на эффективность минерального питания. Более того, опубликованы результаты исследований ростовых ответов побегов на недостаток минеральных веществ, которые невозможно объяснить только дефицитом питания в растущих клетках побега (Kuiper, Staal, 1987). По мнению авторов, быстрая ростовая реакция растений на изменение уровня минерального питания обусловлена изменением концентрации эндогенных гормонов.

Корни могут влиять на отдельные составляющие поведения побегов, изменяя в них содержание гормонов за счет транспорта их самих или их предшественников из корней, а также путем воздействия на отток гормонов по флоэме из тканей побега, где они были синтезированы (Cannell, Jackson, 1981; Jackson, 1981; Jackson, 1997).

Известно, что цитокинины играют важную роль во взаимоотношениях корень/побег. Так, старение листьев многих видов можно предотвратить обработкой их цитокининами (Кулаева, 1962, 1973; Zhang et al., 1987; Singh et al., 1992b). Существует ряд доказательств того, что цитокинины продуцируются в корнях, и поступают в побег с транспирационным потоком (Henson, Wareing, 1977а). На этом основании принято считать, что листья многих видов растений зависят от снабжения их цитокининами из корней. Последние десятилетия интенсивно изучались взаимопревращения цитокининов в корнях и побегах растений (Horgan, 1992; Yong et al., 2000). Результаты этих исследований дают основание предполагать, что цитокинины продуцируются в корнях и транспортируются в листья, где они претерпевают деградацию или превращение в запасные формы (например, О-глюкозиды), которые в свою очередь распределяются в другие части растения. В работе с короткодневными растениями Xanthium strumarium выявлена другая картина - продукция цитокининов в корнях регулировалась листьями (Henson, Wareing, 1976). Когда растения этого вида были перенесены с длинного дня на короткий, то в листьях, почках, корнях и ксилемном соке было обнаружено снижение содержания цитокининов после единственного длинного темнового периода. Скорее всего, изменение длины дня должно было фиксироваться листьями, однако изолированные листья, перенесенные на короткий день, не показали такого снижения, которое является свойством только целого растения. На этом основании авторы пришли к выводу, что листья, воспринимающие раздражение, оказывали влияние на продукцию цитокининов корнями. В экспериментах с прививкой побегов мутантных растений гороха на корни диких было показано влияние побега на содержание зеатинрибозида в ксилемном экссудате (Beveridge et al., 1997). Именно генотип побега определял поток цитокинина из корня. Таким образом, результаты этих исследований свидетельствуют о сложном характере взаимоотношений корня и побега.

Хотя приведенные выше факты позволяют предположить зависимость поведения побега от цитокининов, продуцируемых корнем, в литературе описаны лишь единичные факты, свидетельствующие в пользу того, что поток цитокининов из корня контролирует регуляцию соотношения массы корень/побег. Так было показано, что температура в зоне корней влияет на содержание цитокининов и гиббереллинов в корневых экссудатах маиса и томатов (Atkin et al., 1973). Исходя из этого, авторы предположили, что поставляемые корнями цитокинины и гиббереллины могут влиять на скорость роста листа. В ряде работ представлены доказательства того, что изменение соотношения биомассы побегов и корней Urtica dioica, обусловленное различным уровнем питательных веществ в среде обитания, может быть связано с соотношением природных цитокининов в растении (Beck, 1996). Рядом авторов была предложена модель регуляции распределения биомассы побега и корня в условиях недостаточного снабжения растения азотом (Vanderwerf, Nagel, 1996), в которой цитокининам, наряду с сахарозой и азотом, также отводится определенная роль. Среди недостатков этой модели следует отметить то, что в ней кроме снижения продукции цитокининов корнями при дефиците азота никак не учитывается роль других гормональных сигналов (ИУК, АБК).

Таким образом, в настоящее время достигнут определенный прогресс в понимании роли цитокининов в комплексе взаимоотношений корня и побега, однако доступная информация для других основных типов ростовых веществ очень отрывочна. Выяснилось, что гиббереллины могут продуцироваться как в почках, так и в корнях, и они присутствуют как в ксилемных экссудатах (Carr et al, 1963), так и во флоэмном соке (Hoad, Bowen, 1968), указывая на обмен гиббереллинами между корнем и побегом. Результаты некоторых экспериментов подтверждают существование обмена между корнем и побегом метаболитами гиббереллинов. ГА19 поступает из побега в корень, где он, по-видимому, превращается в ГА], а затем транспортируется в побег (Crozier, Reid, 1971). Ауксины и АБК также обнаружены в ксилемном (Lenton, et al., 1968) и флоэмном соке (Hoad, 1968; Hall, Baker, 1972). Присутствие всех основных групп гормонов в ксилеме и флоэме растений позволяет предполагать наличие регулярного обмена этими веществами между корнем и побегом.

Таким образом, в этом разделе нами изложены и в определенной степени проанализированы результаты исследований, которые посвящены изучению проблемы координации процессов, протекающих в побеге и корне растений. Опубликованные в последние годы данные позволяют нам предположить, что фитогормоны наряду с другими факторами играют существенную роль во взаимодействии побега и корня. Даже если принять во внимание то, что существуют более быстрые способы передачи сигналов по растению: распространение потенциала действия, гидравлического сигнала и т. д. (Malone, 1993; Fromm 1995, 1998), - то в конечном итоге последние зачастую являются или следствием гормональных изменений, или вызывают гормональную реакцию (Полевой и др., 1997).

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Тимергалина, Лейля Назировна

ВЫВОДЫ

1. Показано, что удаление у проростков яровой пшеницы большей части корней приводит к быстрому (через 15 мин) повышению содержания ИУК в оставшемся корне и индукции его ветвления.

2. Снижение транспорта цитокининов с ксилемным экссудатом из редуцированной корневой системы не приводит к уменьшению их количества в побегах. Одной из причин этого является ингибирование в них активности цитокинин-оксидазы.

3. Наблюдаемое через сутки после удаления корней возрастание скорости поступления цитокининов в побег обусловлено активацией их синтеза в оставшемся корне в результате формирования большого количества боковых корней.

4. Пластичность системы, обеспечивающей поддержание высокого содержания цитокининов у растений с частично удаленной корневой системой, имеет существенное значение для сохранения активного роста и транспирации.

5. Выявлено, что важную роль в регуляции быстрых изменений устьичной проводимости играют гидравлические сигналы, поступающие из редуцированной корневой системы.

6. Установлено, что водный баланс растений с редуцированной корневой системой поддерживается за счет увеличения скорости проведения воды по корню, в регуляции которой, вероятно, участвуют фитогормоны.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Тимергалина, Лейля Назировна, 2001 год

1. Али-Заде В.М., Ахундова Т.С., Алиева Ф.К. Гормональная регуляция движущих сил транспорта ионов калия и водорода в клетках эпидермиса корня // Изв. АН АзССР. Сер. биол.- 1986.- №6.- С. 16-21.

2. Анисимов A.B., Раткович С. Транспорт воды в растениях. Исследование импульсным методом ЯМР. 1992. Москва, Наука, 144с.

3. Беккер Г., Бергер В., Домшке Г. и др. Органикум.- М: Мир, 1979.- С.228-232, 247-250.

4. Бессонова В.П., Лыженко И.И., Михайлов О.Ф., Кулаева О.Н. Влияние цитокинина на рост растений и содержание хлорофилла в листьях в условиях загрязнения Среды// Физиол. раст.- 1984.- Т.31, вып.6.- С.1149-1153.

5. Блохин В.Г. Концентрационная зависимость влияния 6-бензиламинопурина на рост корней растений разных видов// Физиол. раст. Т. 33, №6.-С. 1084-1089.

6. Бурханова Э.А., Федина Ф.Б., Баскаков Ю.А., Кулаева О.Н. Сравнительное изучение действия 6-бензиламинопурина, тидиазурона и картолина на рост интактных проростков тыквы// Физиол. раст.- 1985.- Т.31, №1.- С.13-19.

7. Веселов С.Ю. Использование антител для количественного определения, очистки и локализации регуляторов роста растений. // Изд-е Башкирск. Ун-та. -Уфа, 1998.- 138 с.

8. Гамбург К.З. Ауксины как регуляторы деления клеток// Укр.ботан.журн. 1982.-t.39, N З-С.60-67.

9. Дедов A.B. Датчик вертикального роста растения ДЛТ-1. // Леса Башкортостана: Современное состояние и перспективы. Материалы научно практической конференции / Уфа.- 1997. С. 72-74.

10. Демченко К.Н. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук «Пролиферация клеток в ходе инициации бокового корня». Санкт-Петербург, 1999.

11. Дерфлинг К. Гормоны растений. Системный подход. М.: Мир, 1985.206 с.

12. Жолкевич В.Н., Гусев H.A., Капля A.B., и др. Водный обмен растений. -М.: Наука. 1989. - 256с.

13. Зауралов O.A., Пустовойтова Т.Н., Чернавина М.В. Изменение содержания фитогормонов в листьях пшеницы при завядании// Физиол. раст. -1987. Т. 34, № 3. - С. 564-568.

14. Иванов И. И., Трапезников В.К., Кудоярова Г.Р. Цитокинины и абсцизовая кислота в корнях пшеницы при локальном повышении концентрации ионов в питательной среде//Физиол. биохим. культ, расст. 1993. - № 1.-С. 325-331.

15. Калинин Ф.Л., Сарнацкая В.В., Полищук В.Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений// Киев: Наук, думка, 1980.- 488 с.

16. Кислин E.H., Кефели В.И. Образование абсцизовой и индолил-3-уксусной кислот в побегах и корнях винограда и гороха//Известия РАН (сер. биол.) -1985. -№3.- С. 375-382.

17. Кудоярова Г.Р., Усманов И.Ю., Гюли-Заде В.З., Фаттахутдинов Э.Г., Веселов С.Ю. Взаимодействие пространственно разобщенных органов растений. Соотношение электрических и гормональных сигналов. Доклады Академии Наук СССР, 1990, Т. 310, № 6, с. 1511-1514.

18. Кудоярова Г.Р., Усманов И.Ю., Гюли-заде В.З., Иванов И.И., Трапезников В.К. Влияние уровня минерального питания на рост, концентрацию цитокининов и ауксинов в проростках пшеницы// Физиол. раст. -1989,- Т.36, вып.5. С.1012-1015.

19. Кудоярова Г.Р., Докичева P.A., Веселов С.Ю., Трапезников В.К., Иванов И.И. БАП-индуцированная ростовая реакция растений пшеницы и эндогенное содержание гормонов, обусловленное уровнем минерального питания// Физиол. раст,- 1993.- Т.40, вып.6.- С.893-897.

20. Кузина Г.В., Карникова Л.Д., Калинина Г.А., Трунова Т.И., Штильман М.И. Влияние полистимулина К и 6-бензиламинопурина на покой и морозоустойчивость древесных растений// Физиол. раст.- 1988.- Т.35, №3.-С.574-584.

21. Кулаева О.Н. Влияние корней на обмен веществ листьев в связи с проблемой действия на лист кинетина // Физиол. раст. 1962. - Т.9. - С.229-239.

22. Кулаева О.Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РЖ и белка: 41-е Тимирязевское чтение. М.:Наука, 1982.-82 с.

23. Кулаева О.Н. Цитокинины, их структура и функции.М.: Наука. 1973.263с.

24. Курсанов А.Л. Транспорт ассимилятов в растении. Москва., Наука, 1976.

25. Лялин О.О., Лукоянова С.А. Влияние кинетина и АБК на параметры корневой экссудации// Физиол. раст. 1993.- Т.40, вып.З.- С.406-413.

26. Макарова Р.В., Судейная C.B., Коф Э.М. Ауксины и цитокинины в ризогенезе черенков гвоздики// Рост и устойчивость растений. Нука: Новосибирск, 1988. С.65-70.

27. Марданов A.A. Влияние цитокининов на рост побегов и корней растений в условиях дефицита азота // Физиол. раст. 1985. - Т.32, №6(2), С.855-861.

28. Медведев С.С. Физиологические основы полярности растений. 1996. СПб., "Кольна", 160 с.

29. Медведев С.С., Маркова И.В., Батов А.Ю., Максимов Г.Б. Полярные потоки ионов кальция и рост растительных тканей//Физиол. раст. 1989. - Т. 36,№5.-С. 990-997.

30. Нижко В.Ф. Физиологически активные соединения и транспорт веществ в растениях// Физиология и биохимия культурных растений.- 1983.- Т. 15, №3.-С.211-222.

31. Ниловская Н.Т., Помелов A.B., Морозова Э.В., Лихолат Т.В. Влияние кинетина на продуктивность пшеницы, выращиваемой на неблагоприятном температурном режиме// Докл. АН СССР.- 1984.-Т.274, № 1.- С.254-256.

32. Полевой A.B., Танкелюн О.В., Полевой В.В. Быстрая дистанционная передача сигнала о локальном стрессовом воздействии у проростков кукурузы // Физиол. раст. 1997. - Т.44, №.5. - С.645-651.

33. Полевой В.В. Фитогормоны. Л.: ЛГУ.- 1982. - 249 с.

34. Полевой В.В., Саламатова Т.С. Растяжение клеток и функции ауксина// Рост растений и природные регуляторы. М.: Наука, 1977. - С. 171-192.

35. Полевой В.В., Саламатова Т.С. Физиология роста и развития растений. -Л.: ЛГУ.- 1991.-240 с.

36. Титов А.Ф., Дроздов С.Н., Критенко С.П., Таланова В.В., Шерудило Е.Г. Влияние цитокининов на холодо- и теплоустойчивость активно вегетирующих растений// Физиол. биохим. культ, раст.- 1986.- Т. 18, №1.- С.64-69.

37. Трапезников В.К., Иванов И.И. Тальвинская Н.Г. Локальное питание растений. Уфа: Гилем, 1999. - 260 с.

38. Усов В.П., Иванов И.И., Трапезников В.К., Тальвинская Н.Г., Шендель Г.В. Зависимость урожайности и качества зерна яровой пшеницы от условий выращивания на фоне комплекса воздействий в онтогенезе//Агрохимия.- 1988, N. 12.- С.46-52.

39. Шакирова Ф.М., Кудоярова Г.Р., Ямалеев А.М., Еркеев М.И. Влияние картолина на белоксинтезирующий аппарат растений пшеницы в связи с устойчивостью к мучнистой росе// Физиол. раст. 1985.- Т.32, вып.2.- С.396-400.

40. Ainley W.M., Walker J.C., Nagao R.T., Key J.L. Sequence an characterization of two auxin-regulated genes from soybean// J. Biol. Chem.- 1988.- V.263.- P. 1065810666.

41. Ali M., Jensen C.R., Mogensen V.O., Andersen M.N., Henson I.E. Root signalling and osmotic adjustment during intermittent soil drying sustain grain yield of field grown wheat // Field Crops Research 1999. - V.62. - P.35-52.

42. Allan E.F., Trewavas AJ. The role of calcium in metabolic control// In. The Biochemistry of Plants. A Comprehensive Treatise (vol. 12), (Stumpf P.K., Conn E.G., eds.).- Academic Press., New York.- 1987.- P. 117-149.

43. Aloni R. Differentiation of vascular tissues// Ann. Rev. Plant Physiol.- 1987.-V.38.- P. 179-204.

44. Aloni R. Role of cytokinin in differentiation of secondary xylem fibres// Plant Physiol.- 1982.- V.70.- P.1631-1633.

45. Aloni R. The induction of vascular tissues by auxin and cytokinin // In Plant Hormones, P.J.Davies (ed.). 1995. -P.531-546, Kluwer Academic Publishers, Netherlands.

46. Aloni R. The role of cytokinin in organised differentiation of vascular tissues// Aust. J. Plant Physiol.- 1993,- V.20.- P.601-608.

47. Aloni R. Wood formation in deciduous hardwood trees// In Physiology of Trees.- 1991.- P. 175-197, Raghavendra, A.S., ed. Wiley, New York.

48. Aloni R., Baum S.F., Peterson C.A. The role of cytokinin in sieve tube regeneration and callose production in wounded Coleus internodes// Plant Physiol.-1990.- V.93.- P.982-989.

49. Atkin R.K., Barton G.E., Robinson D.K. Effect of root-growing temperature on growth substances in xylem exudate of Zea mays//., of Exp. Bot.-1973.- V.24, №79.-P.475-487.

50. Aung L.H. Action of cytokinins and anticytokinins on cotyledonary bud growth of Lycopersicum esculentum Mill.// Biol. Plant.- 1986.- V. 28, № 6.- P. 407411.

51. Baker D.A. Vascular transport of auxins and cytokinins in Ricinus II Plant Growth Regul. 2000. - Vol.32. - P. 157-160.

52. Bangerth F. Response of cytokinin concentration in the xylem exudate od bean (Phaseolus vulgaris L.) plants to decapitation anf auxin treatment, and relationship to apical dominance// Planta.- 1994.- V.194.- P.439-442.

53. Baum S.F., Aloni R., Peterson C.A. The role of cytokinin in vessel regeneration in wounded Coleus internodes // Ann. Bot. 1991.- V.67.- P.543-548.

54. Beck E.H. Regulation of shoot/root ratio by cytokinins from roots in Urtica dioica-O^imonJI Plant and Soil.- 1996.- V.185.- P.3-12.

55. Behringer F.J., Davies P.J. Indole-3-acetic acid levels after phytohormone-mediated changes in the stem elongation rate of dark- and light -grown Pisum seedlings// Planta 1992. - V.188. - P.85-92.

56. Bellandi D.M., Derffling K. Effect of ABA and other plant growth hormones on growth of apical and lateral buds of seedlings // Physiol. Plant. 1974. - V.32. -P.369-372.

57. Benayoun J., Aloni R., Sachs T. Regeneration around wounds and the control of vascular differentiation//Ann. Bot.-1975.-V.39.-P.447-454.

58. Bertell G., Bolander E., Eliasson L. Factors increasing ethylene production enhance the sensitivity of root growth to auxins// Physiol.Plant. -1990.-V.79.- P.255-258.

59. Bertell G., Eliasson L. Cytokinin effects on root growth and possible interaction with ethylene and indole-3-acetic acid// Physiol. Plant. 1992.- V.84.-P.255-261.

60. Berthon J.Y., Maldiney R., Sotta B., Gaspar T., Boyer B. Endogenous levels of plant hormones during the course of adventitious rooting in cuttings of Sequoiadendron giganteum (Lindl.) in vitro// Biochem Physiol Pflanzen.- 1989.-V.184.-P.405-412.

61. Beveridge C.A., Murfet I.C., Kerhoas L., Sotta B., Miginiac E., Rameau C. The shoot controls zeatin ribiside export from pea roots. Evidence from the branching mutant rmsAII J. Plant.- 1997.-V.11.- P.339-345.

62. Blackman P.G., Davies W.J. Modification of the C02 responses of maize stomata by abscisic acid and by naturally-occurring and synthetic cytokinins// Experimental Botany J.- 1984.- V.35, №151.- P.174-179.

63. Blackman P.G., Davies W.J. The effects of cytokinins and ABA on stomatal behaviour of maize and Commelinall J. of Exp. Bot.- 1983.- V.34, N 149.- P.1619-1626.

64. Blaikie S.J., Mason W.K. Correlation of growth of the root and shoot systems of white clover after a period of water shortage and or defoliation// Austr. J.of Agric. Res.- 1990.- V.41.- P.891-900.

65. Blakely L.M., Durham M., Evans T.A., Blakely R.M. Experimental studies on lateral root formation in radish seedlings roots. I. General methods, developmental stages, and spontaneous formation of laterals //Bot. Gaz. 1982. - V.143. - P.341-352.

66. Blakely L.M., Evans T.A. Cell dynamics studies on the pericycle of radish seedlings roots //Plant Sci. Lett. 1979. - V.14. - P.79-83.

67. Blakesley D., Weston G.D., Hall J.F. The role of endogenous auxin in root initiation. Part I: Evidence from studies on auxin application, and analysis of endogenous levels// Plant Growth Regulation.- 1991.- V.10.- P.341-353.

68. Blatt M., Thiel G. Hormonal control of ion channel gating // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol.Biol. 1993. - V.44 - P.543-567.

69. Blazkova A., Sotta B., Tranvan H., Maldiney R., Bonnet M., Einhorn J., Kerhoas L., Miginiac E. Auxin metabolism and rooting in young and mature clones of Sequoia sempervirenslI Physiol. Plant.- 1997.- V.99.- P.73-80.

70. Blazkova J., Prochazka S. The influence of cytokinins on endogenous IAA in cotyledonary buds of pea seedlings // Physiology and biochemistry of cytokinins in plants. 1992. - pp.415-417. SPB Academic Publishing, The Nitherlands.

71. Bouza L., Jacques M., Sotta B., Miginiac C. Relations between auxin and cytokinin contents and in vitro rooting of tree peony (Peonia-Suffruticosa Andr)// Plant Growth Regul.- 1994.- V.15.- P.69-73.

72. Boyer J.S. Temperature and growth-induced water potential//Plant Cell Environ. 1993. - V. 16. - P. 1099-1106.

73. Boyer J.S., Wu G. Auxin increases the hydraulic conductivity of auxin-sensitive hypocotyl tissue // Planta. 1978. - Vol.139. - P.227-237

74. Boysen-Jensen P. 1936. Growth hormones in plants. McGraw-Hill Book Co., New York

75. Brenner M.L. The role of hormones in photosynthate partitioning and seed filling. // Plant hormones and their role in plant growth and development (P.J.Davies, ed.), pp.474-493. Martinus Nijhoff Publishers, Dordrecht. 1987.

76. Bruck D.K., Paolillo D.J. Jr. Replacement of leaf primordia with IAA in the induction of vascular differentiation in the stem of Coleus II New Phitol. 1984.-V.96.- P.353-370.

77. Buttrose M.S. The effect of reducing leaf area on the growth of root, stems and berries of Gordo grapevinesll Vitis.- 1966.- V.5.- 455-464

78. Buttrose M.S., Mullins M.G. Proportional reduction in shoot growth of grape vines with root systems maintained at konstant relative volumes by repeat pruning// Australian Journal of Biological Sciences.- 1968.- V.21.- P. 1095-1101.

79. Cannel R.G., Jackson M.B. Alleviating aeration stresses. In: Modifying the plant Environment to Reduce Crop Stress (G.Arkin and H.M. Taylor, eds), 1981. American Society of Agricultural Engineers, St Joseph.- p. 141-192.

80. Canny M.J. Contributions to the debate on water transport //Amer. J. of Bot. -2001. Vol.88. - P.43-46.

81. Carmi A. Effects of cytokinins and root pruning on photosynthesis and growth// Photosynthetica.- 1986.- V.20.- P. 1-8.

82. Carr D.J., Reid D.M., Skene K.G.M. The supply of gibberellins from the root to the shoot// Planta.- 1963.- V.63.- P.382-392.

83. Carvajal M., Martinez V., Alcaraz C.F. Physiological function of water channels as affected by salinity in roots of paprika pepper //Physiol. Plant. 1999. -Y.105. -P.95-101.

84. Chang W.C., Chan S.J. Cytochemical studies on the changes of nuclear histones and RNA synthesis activity of adventitious root initials in mung bean hypocotyl cuttings// Bot Bull Acad Sinica.- 1976.- V.17.- P.192-202.

85. Chapin F.S. Ill, Clarkson D.T., Lenton J.R., Walter C.H.S. Effect of nitrogen stress and ABA on nitrate absorbtion and transport in barley and tomato// Planta. -1988. V.173. -P.340-351.

86. Chen C.M., Ertl J.R., Leisner S.M., Chang C.C. Localization of cytokinin biosynthetic sites in pea plants and carrot roots// Plant Physiol. 1985. - V.78. -P.510-513.

87. Chibbar R.N., Gurumurti K., Nanda K.K. Changes in IAA oxidase activity in rooting hypocotyl cuttings of Phaseolus mungo L.// Experientia.- 1979.-V.35.-P.202-203

88. Clarkson D.T., Carvajal M., Henzler T., Waterhouse R.N., Smyth A.J., Cooke D.T., Steudle E. Root hydraulic conductance: diurnal aquaporin expression and the effects of nutrient stress // J.Exp.Bot. 2000. - Vol.51. - №342. - MP Special Issue, - P.61-70.

89. Cline M.G. Apical dominance// Bot Rev.- 1991.- V.57.- P.318-358.

90. Cline M.G. The role of hormones in apical dominance new approaches to an old problem in plant development// Physiol. Plant.- 1994.- V.90.- P.230-237.

91. Cline M.G., Wessel T., Iwamura H. Cytokinin/auxin control of apical dominance in Ipomoea Nil!I Plant and Cell Physiol.- 1997.- V.38.- P.659-667.

92. Collins J.C., Kerrigan A.P. The effect of kinetin and ABA on water and ion transport in isolated maize roots // New Phytol. 1974. - V.72. N2. - P.309.

93. Cooke T.J., Racusen R.H., Cohen J.D. The role of auxin in plant embriogenesis // Plant Cell 1993. - V.5. - P. 1494-1495.

94. Cornish. K, Zeevaart J.A.D. Abscisic acid accumulation by roots of Xanthium strumarium E. and Lycopersicon vsculenlum Mill in relation to water stress// Plant Physiol.- 1985.-V.79.-P.653-658.

95. Correia M.J., Pereira J.S. The control of leaf conductance of white lupin by xylem ABA concentration decreases with the severity of water deficits // J. of Exp. Bot. 1995. - V.46. - P. 101-110.

96. Cosgrove D.J. Water uptake by growing cells: an assessment of the controlling roles of wall relaxation, solute uptake, and hydraulic conductance // Int.J.Plant Sci. -1993. V.154(l). -P.10-21.

97. Creelman R.A. Abscisic acid physiology and biosynthesis in higher plants// Physiol. Plantarum.- 1989.- V.75.- P.131-136.

98. Creelman R.J., Mason H.S., Bensen R.J., Boyer J.S., Mullet J.E. Water deficit and ABA cause differential inhibition of shoot versus root growth in soybean seedlinds // Plant Physiiol. 1990. - V.92. - P.205-214.

99. Crozier A., Reid D.M. Do roots synthesize gibberellins? //Canadian J. Bot.-1971.- V.49.- P. 967-975.

100. D'Agostino I.B., Kieber J.J. Molecular mechanisms of cytokinin action // Curr. Opin. Plant Biol. 1999. - V.2. - P.359-364.

101. Daniels M., Mirkov T.E., Chrispeels M. The plasma membrane of Arabidopsis thaliana contains a mercury-insensitive aquaporin that is a homolog of the tonoplast water channel protein TIP // Plant Physiol. —1994. V.106. - P.1325-1333.

102. Darral N.M., Wareing P.F. The effect of nitrogen nutrition on cytokinin activity and free amino acids in Betula pendula Roth, and Acer pseudoplantanus L.// J. Exp. Bot.- 1981.- V.32.- P.369-379.

103. Das Gupta D.K. Developmental physiology of sugar-beet. III. Effects of decapitation, defoliation, and removing part of the root and shoot on subsequent growth of sugar beet// Experimental Botany J.- 1972.- V.23.- P.93-102.

104. Davidson R.L. Effect of root/leaf temperature differentials on root/shoot ratios of some pasture grasses and clover// Ann. of Bot.- 1969.- V.33.- P.561-569.

105. Davies W.J. and Zhang J. Root signals and the regulation of growth and development of plants in drying soil // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol.-1991. V.42. - P.55-76.

106. Davis T.D. Effect of shoot growth retardants and inhibitirs // In Davis T.D., Haissig B.E., Sankhla N. (eds.) Adventitious root formation in cuttings. 1988. -V.2. -P.174-184.

107. Dieffenbach H., Luttge U., Pitman M.G. Release of guttation fluid from passive hydathodes of intact barley plants. II. The effects of ABA and cytokinins // Ann. Bot. 1980. - V.45. - P.703.

108. Einspahr K.J., Thompson G.A. Transmembrane signalling via phosphatidylinositol 4.5-bisphosphate hydrolysis in plants// Plant Physiol.- 1990.-V.93.-P. 361-366.

109. El-Antably H.M.M., Wareing P.F., Hillman J. Some physiological responses to D,L,Abscisin (dormin) // Planta 1967. - V.73. - P.74-90.

110. Eliasson L., Areblad K. Auxin effects on rooting in pea cuttings // Physiol. Plant. 1984. - V.61. - P.293-297.

111. Elliott M.C. Auxins and the regulation of root growth. In: Plant Growth Regulation (Ed. Pilet P.E.), 1977.- Berlin: Springer.- P. 100-108.

112. Eriksen E.N. Root formation in pea cuttings. I. Effects of decapitation and disbudding at different developmental stages // Physiol .Plant. 1973. - V.28. -P.503-506.

113. Evans D.E., Briars S-A., Williams I-.A. Active calcium transport by plant cell membranes// J. Exp. Bot.- 1991.- V.42.- P.285-303.

114. Evans M.L. A new sensitive root auxanometer: Preliminary studies of the interaction of auxin and acid pH in the regulation of intact root elongation// Plant Physiol.- 1976,- V. 58.- P.599-601.

115. Evans M.L. Functions of hormones at the cellular level of organization/ In: Encyclopedia of Plant Physiology, New Series (T.K.Scott, ed), 1984.- V.10, p.23-79. Springer-Verlag, Berlin.

116. Farrar J. Regulation of root weight ratio is mediated by sucrose Opinion// Plant and Soil.- 1996.- V.185.- P.13-19.

117. Fischer C., Neuhaus G. Influence of auxin on the establishment of bilateral symmetry in monocots // Plant J. 1996. - V.9. - P.659-669.

118. Fiscus E.L. Effects of ABA on the hydraulic conductance of and the total ion transport through Phaseolus root systems // Plant Physiol. 1981. - Y.68. - P. 169.

119. Freudle E., Steudle E., Härtung W. Water uptake by roots of maize and sunflower affects radial transport of abscisic acid and its concentration in the xylem.// Planta, 1998, 207, 8-19.

120. Fromm J., Fei H. Electrical signaling and gas exchange in maize plants of drying soil // Plant Science. -1998. V. 113. - P. 203-213.

121. Fromm J., Hajirezaei M., Wilke I. The biochemical response of electrical signaling in the reproductive system of Hibiscus plants // Plant. Physiol. 1995. V 109. N1.P.384.

122. Fujita H., Syono K. Pis-1, a negative regulator of the action of auxin transport inhibitors in Arabidopsis thaliana// Plant Journal.- 1997.- V.12.- P.583-595.

123. Fukuda H. Tracheary element formation as a model system of cell differentiation // Int. Rev. Cytol. 1992.- V.136.- P.289-332.

124. Fukuda H., Komamine A. Establishment of an experimental system for the study of tracheary element differentiation from single cell isolated from the mesophyll of Zinnea elegansll Plant Physiol.- 1980.- V.65.- P.57-60.

125. Gaither D.H., Lutz D.H., Forrence L.E. Abscisic acid stimulates elongation of excised pea root tips// Plant Physiol.- 1975.- V.55.- P.948-949.

126. Gaspar T. and Hofinger M. 1988. Auxin metabolism during adventitious rooting // In Adventitious root formation in cuttings. Haissig B. and Sankhla N. (eds). Portland: Dioscorides Press, pp. 61-69.

127. Glinka Z. ABA promotes both volume flow and ion release to the xylem in sunflower roots // Plant Physiol. 1980. - V.65. - P.537.

128. Goldsmith M.H.M., Cataldo D.A., Kam J., Drenneman T., Trip P. The rapid nonpolar transport of auxin in the phloem of intact Coleus plants // Planta 1974.-V.116.- P.301-317.

129. Goring H., Mardanov A.A. Influence of nitrjgen deficiency on K/Ca ratio and cytokinin content of pumpkin seedlings //Biochem. Physiol. Pflanzen.- 1976.- V.170, №3.-P.261 -264.

130. Gowing D.J.G., Jones H.G. and Davies W.J. Xylem transported ABA: The relative importance of its mass and its concentration in the control of stomatal aperture // Plant Cell Environ. -1993. V.16. - P.453-459.

131. Grabski S., Schindler M. Auxins and cytokinins as antipodal modulators of elasticity within the actin network of plant cells// Plant Physiol.- 1996.- V.110.-P.965-970.

132. Hagen G., Uhrhammer N., Guilfoyle T.J. Regulation of expression of an auxin-induced soybean seqence by cadmium// J/ Biol. Chem.- 1988.- V.263.- P.6442-6446.

133. Haissig B.E. Meristematic activity during adventitious root primordium development. Influences of endogenous auxin and applied gibberellic acid // Plant Physiol. 1972. - V.49. - P.886-892.

134. Hall C.M., Baker D.A. The chemical composition of Ricinus phloem exudate// Planta.- 1972.- V.106.-P.131-140.

135. Hall H.K., McWha J.A. Effects of ABA on growth of wheat (Triticum aestivum L.) // Ann. Bot. 1981. - V.47. - P.427-433.

136. Hameed M.A., Reid J.B., Rowe R.N. Root confinement and its effect on the water relations, growth and assimilate partitiong of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.)// Annals of Botany.- V.59.- P.685-692.

137. Hare P.D., Van Staden J. Cytokinin oxidase: biochemical features and physiological significance// Physiol. Plant.- 1994.- V.91.- P.128-136.

138. Harper J.L. "Population biology of plants". London: Academic Press, 1977.

139. Hartung W. The site of action of abscisic acid at the guard cell plasmalemma oiWaierianella locuslall Plant. Cell & Environment.- 1983.- V.6.- P.427-428.

140. Hartung W., Radin J.W., Herndrix D.L. Abscisic acid movement into the apoplastic solution of water-stressed cotton leaves. Role of apoplastic pH//Plant Physiol.- 1988. V. 86, N 3. - P.908-913

141. Hartung W., Steigerwald F. ABA and apical dominance in Phaseolus coccineus L. // Ibid. 1977. - V. 134. - P.295-299.

142. Henson I.E., Wareing P.F. Cytokinins in Xanthium strumarium L.: The metabolism of cytokinins in detached leaves and buds in relation to photoperiod// New Phytol.- 1977.-V.78.-P.27-33

143. Hepler P.K., Wayne R.O. Calcium and plant development// Annu. Rev. Plant Physiol.- 1985.- V.35.- P.397-439.

144. Hetherington A.M., Battey N.H., Millner P.A. Protein kinases// In: Mrihodsin Plant Biochemistry, (Lea P.J. ed.).- Academic Press. London.- 1990.- P.371-384.

145. Hetherington A.M., Graziana A. Mazars C., Thuleau P., Ranjeva R. The biochemistry and pharmacology of plasma-membrane calcium channels in plants// Phil Trans. R. Soc. Lond.- B 338.-1992.- P.91-96.

146. Hetherington A.M., Quatrano R.S. Mechanisms of action of abscisic acid at the cellular level// New Phytol.-1991.- V.l 19.- P.9-32.

147. Hillman J.R., Hocking T.J., McWha J.A. ABA and the regulation of dormancy in tree seedlings and lettuce fruits // Proceedings of the 8th international conference on plant growth substances, Tokyo, Japan, 1973.

148. Hinchee M.A.W., Rost T.L. The control of lateral root development in cultured pea seedlings. I. The role of seedlings organs and plant growth regulators// Bot. Gaz. 1986.- V.142.- P.137-147.

149. Hoad G.V. Transport of hormones in the phloem of higher plants// Plant Growth Regul.- 1995.- V.16.- P.173-182.

150. Hoad G.V., Bowen M.R. Evidence for gibberellin-like substances in phloem exudate of higher plants// Planta.- 1968.- V.82.- P.22-32.

151. Horgan R.// Physiology and biochemistry of cytokinins in plants/ Eds. Kaminek M., Mok D.W.S., Zazimalova E., The Hague:Academic Publishing, 1992. P. 3-12.

152. Hornberg C., Weiler E.W. High affinity binding sites for abscisic acid on the plasmalemma of Vicia faba guard cells//Nature.- 1984.- V.310.- P.321-324.

153. Humphries E.C. Effect of mutilation of the root on subsequent growth// Scientific Horticulture.- 1959.- V.14.- P.42-48.

154. Humphries E.C. Effect of removal of part of the root system on subsequent growth of the root and shoot// Ann. Bot.- 1958.- V.22.- P251-257.

155. Hunt R.S. Further observations on root-shoot equilibria in perennial rye-grass (Lolium perenne)// Ann. Bot.- 1975.- V.39.- P.745-755.

156. Jackson G.E., Irvine J., Grace J., Khalil A.A.M. ABA concentrations and fluxes in droughted conifer saplings // Plant Cell Environ. 1995. - V.18. - P. 13-22.

157. Jackson M. Are plants hormones involved in root to shoot communication? / In: Advanced in Botanical Research, 1993.- V.19 (ed. by J.A.Callow), Academic Press. P.103-187.

158. Jackson M. Hormones from roots as signals for the shoots of stressed plants// Elsevier Trends J.- 1997.- V.2, №1.- P.22-28

159. Jacobs W.P. The role of auxin in differentiation of xylem around a wound // Amer. J. of Bot. 1952.- V.39.- P. 301-309.

160. Jarvis B.C. 1986. Endogenous control of adventitious rooting in non woody cuttings. // In: Jackson M.B. (ed). New root formation in plants and cuttings. Dordrecht: Martinus Nijhoff Publishers, pp. 191-222.

161. Jasik J., Boggetti B., Caricato G., Mantell S. Characterization of morphology and root formation in the model woody perennial shrub solanum aviculare forst expressing rolabc genes of agrobacterium rhizogenes// Plant Sci.- 1997.- V.124.-P.57-68.

162. Jensen C.R., Henson I.E., Turner N.C. Leaf gas exchange and water relations of lupins and wheat. II. Root and shoot water relations of lupin during drought-induced stomatal closure // Aust.J.Plant Physiol. 1989.- V.16.- P.415-428.

163. Jensen P.J., Hangarter R.P., Estelle M. Auxin transport is requiredfor hypocotyl elongation in light-grown but not dark-grown Arabidopsis 11 Plant Physiol. 1998. - V.116. -P.455-462.

164. Jia W., Zhang J. and Zhang D-P. Metabiolism of xylem delivered ABA in relation of ABA flux and concentration in leaves of maize and Commelina communis II J. Exp. Bot. 1996. - V.47. - P. 1085-1091.

165. Jia W., Zhang J. Stomatal closure is induced rather by prevailing xylem ABA than by accumulated amount of xylem derived ABA // Physiol. Plant. 1999. -V.106. -P.268-275.

166. Jia W., Zhang J., Zhang D-P. Effect of leaf water status and xylem pH on metabolism of xylem transported ABA // J. Exp. Bot. 1996. - V.47. - P. 1085-1091.

167. Johansson I., Larsson C., Ek B., Kjellbom P. The major integral proteins of spinach leaf plasma membranes are putative aquaporins and are phosphorylated in response to Ca2+ and apoplastic water potential // Plant Cell. 1996. - V.8. - P.l 1811191.

168. Jones H.G. Drought tolerance and water use efficiency //In: (eds. J.A.C. Smith, H.Griffiths) Water Deficits: plant responses from cell to community. 1993. - P. 193203, Bios, Oxford.

169. Jones H.G. Plants and Microclimate. A Quantitative Approach to Environmental Plant Physiology Cambridge University Press 1983, Cambridge

170. Kaminek M. Progress in cytokinin research// Tibtech.- 1992.- V.10.- P. 159164.

171. Kannan S., Shaikh M. ABA induced root tip swelling in Sorghum II Biochem. Physiol. Pflanzen 1986. - V. 181. - P.279-281.

172. Kappler R., Kristen U. Exogenous citokinins cause cell separation and cell expansion in the root tip cortex of Zea mays.I I Bot. Gaz. 1986.- V. 147.- P.247-251.

173. Katekar G.F., Geissler A.E. Auxin transport inhibitors. IV. Evidence of a common mode of action for a proposed class of auxin transport ihibitors, the phytotropins // Plant Physiol. 1980. - V.66. - P.l 190-1195.

174. Katsumi M., Chiba Y., Fukuyama M. The roles of cotyledons and auxin in the adventitious root formation of hypocotyl cuttings of light grown cucumber seedlings // Physiol.Plant. 1969. - V.22. - P.993-1000.

175. Kerk N.M., Feldman L.J. A biochemical model for the initiation and maintenance of the quescent center: implications for organization of root meristems // Development 1995. - V. 121. - P.2825-2833.

176. Kjellbom K., Larsson C., Johansson I., Karlsson M., Johanson U. Aquaporins and water homeostasis in plants // Trends Plant Sci. 1999. - V.4. - P.308-314.

177. Knepper F. The aquaporin family of molecular water channels // Proc.Natl.Acad.Sci. 1994. - V.91. -P.6255-6258.

178. Koukourikoupetridou M.A., Bangerth F. Effect of changing the endogenous concentration of auxin and cytokinins and the production of ethylene in pea stem cuttings on adventitious root formation// Plant Growth Regul.- 1997,- V.22.- P. 101108.

179. Kramer PJ. Drougth stress, and the origin of adaptations // Adaptation of plants to water and high temperature stress. New York ets.: Wiley, 1980. - P.7-20.

180. Kuiper D., Sommarin M., Kylin A. The effects of mineral nutrition and benzyladenine on the plasmalema ATPase activity from roots of wheat and Plantago major ssp. pleiospermalI Physiol. Plant.- 1991.- V.81.- P. 169-174.

181. Kuiper D., Staal M. The effects of exogenously applied plant growth substances on the physiological plasticity in Plantago major spp. pleiosperma:responses of growth, shoot to root ratio and respiration// Physiologia Plantarum.- 1987.- V.69.- P.651-658.

182. MacRobbie E.A.C. Calcium and ABA-induced stomalal closure// Phil. Trans. R.Soc. Lond.- B 338.-1992.- P.5-18.

183. MacRobbie E.A.C. Calcium-dependent and calcium-independent events in the initiation of stomatal closure by ahscisic acid// Proc. R. Soc. Lond.- B 241.- 1990.-P.214-219.

184. Malone M. Hydraulic signals // Phil.Trans.R.Soc.Lond. 1993. - V.341. -P.33-39.

185. Mansfield T.A., McAinsch M.R. Hormones as regulators of water balance// Plant Hormones/ Davies P.J., eds. Dortrecht Berlin London: Kluwer Academic Publisher, 1995. P. 598-616.

186. Masle J. The effects of elevated CO2. on cell division rates, growth patterns and blade anatomy in young wheat plants are modulated by factors related to leaf position, vernalization and genotype // Plant Physiol. 2000. - V.122. - P. 13991416.

187. Maurel C., Kado R.T., Guern J., Chrispeels M. Phosphorylation regulates the water channel activity of the seed-specific aquaporin a-TIP // EMBO J. 1995. -V.14. -P.3028-3035.

188. McAinsh M.R., Brownlee C., Hetherington A.M. Abscisic acid-induced elevation of guard cell cytosolic Ca2' precedes stomatal closure// Nature.- 1990.-Y.343.- P.186-188.

189. McDavid C.R., Sagar G.R., Marshall C. The effect of auxin from the shoot on root development in Pisum sativum L. // New Phytol. 1972. - V.71. - P. 1027-1032.

190. McDonald A.J.S., Lohammer T., Ericsson A. Growth responses to step decreases in nutrient availability in small birch (.Betula pendula Roth)// Plant, Cell and Environment.- 1986.- V.9.- P.427-432.

191. Medford J.I., Horgan R., El-Sawi Z., Klee H.J. Alteration of endogenous cytokinins in transgenic plants using chimeric isopentenyl transferase gene // Plant Cell-1989.- V.l. -P.403-413.

192. Michael J., Beringer H. The role of hormones in yield formation// In: Physiol. Aspects. Crop. Prod.- Berlin: Wobflanfen, 1980.- P.85-116.

193. Mitchell E.K., Davies P.J. Evidence for three different systems of movement of indoleacetic acid in intact roots of Phaseolus coccineus II Physiol.Plant. 1975. -V.33. -P.290-294.

194. Mittlehauser C.G., van Steveninck R.F.M. Stomatal closure and inhibition of transpiration induced by RS-abscisic acid // Nature. 1969. - V.221. - P.281 -282.

195. Monyo J.H., Whittington W.J. Genetic analysis of root growth in wheat// Agricultural Science J.- 1970.- V.74.- P.329-338.

196. Morris D.A., Thomas A.G. A microautoradiographic study of auxin transport in the stem of intact pea seedlings (.Visum sativum L.) // J. Exp. Bot. 1978.- V.29.-P.147-157.

197. Muday G.K., Haworth P. Tomato root growth, gravitropism, and lateral root development: correlation with auxin transport // Plant Physiol. Biochem. 1994. -V.32. -P.193-203.

198. Munns R. and King RW. Abscisic asid is not only stomatal inhibitor in the transpiration stream of wheat plants // Plant Physiol.- 1988.- V.88.- P.703-708.

199. Nagel O., Konings H., Lambers H. Growth rate, plant development and water relations of the ABA-deficit tomato mutant sitiens.ll Physiol.Plant. 1994. - V.92. -P.102-108.

200. Nandi S.K., Letham D.S., Palni L.M.S., Wong O.C., Summons R.E. 6-Benzylaminopurine and its glycosides as naturally occuring cytokinins// Plant. Sci.-1989.- V/61.-P.189-196.

201. Nordstom A-C., Eliasson L. Regulation of root formation by auxin-ethylene interaction in pea stem cuttings. // Physiol.Plant. 1984. - V.61. - P.298-302.

202. Palme K., Hesse T., Moore I., Campos N., Feldwilsch I., Garbers C., Hesse F., Schell J. Hormonal modulation of plant growth: the role of auxin perception// Mechanisms of development 1991. - V.33. - P.97-106.

203. Passioura J.B. The effect of root geometry on the yield of wheat growing on stored water // Austr. J. of Agricultural Research 1972. - V.23. - P.745-752.

204. Patrick J.W. Sieve element unloading: cellular pathway, mechanism and control // Physiol. Plant. 1990. - V.78. - P.298-308.

205. Pemadasa M.A. Differential abaxial and adaxial stomatal responses to indole-3-acetic acid in Commelina communis L.// New Phitol. -1982. -V.90. P.209-219.

206. Peterson T.A., Reinsel M.D., Krizek T.D. Tomato {Lycopersicon esculentum Mill., cv. "Better Bush") plant response to root restriction// Experimrntal Botany J.-1991.-V.42.- P.1233-1240.

207. Pilet P.E., Saugy M. Effect of applied and endogenous IAA on maize root growth // Planta.- 1985,-V. 164.-P.254-258.

208. Poovaiah B.W., Reddy A.S.N. Calcium and signal transduction in plants// CRC Critical Rev. Plant Sci.- 1993.- V.12.- P. 185-211.

209. Poovaiah B.W., Reddy A.S.N. Calcium messenger systems in plants// CRC Critical Rev. Plant Sci.- 1987.- V.6.- P.47-103.

210. Preston G.M., Carroll T.P., Guggino W.B., Agre P. Appearance of water channels in Xenopus oocytes expressing red cell CHIP28 protein I I Science 1992. -V.256. -P.385-387.

211. Quarrie S.A., Jones H.G. Effects of ABA and water stress on development and morphology of wheat // J. Exp. Bot. 1977. - V.28. - P.192-203.

212. Radin J.W. Control of plant growth by nitrogen: differences between cereals and broadleaf species // Plant Cell and Environ. 1983. - V.6. - P.65-68.

213. Radin J.W. Stomatal responses to water stress and to abscisic acid in phosphorus-deficient cotton plants// Plant Physiol- 1984.- V.76- P.392-394.

214. Radin J.W., Boyer J.S. Control of leaf expansion by nitrogen nutrition in sunflower plants: role of hydraulic conductivity and turgor // Plant Physiol. 1982. -Y.69.-P.771-775.

215. Raschke K. Stomatal action // Annu. Rev. Piant Physiol. 1975. - V. 26.- P. 309-340.

216. Ranasinghe S., Taylor G. Mechanism for increased leaf growth in elevated C02.// J. Exp. Bot. 1996. - V.47. - P.349-358.

217. Rayle D.L., Ross C.W., Robinson N. Estimation of osmotic parameters accompanying zeatin-induced growth of detached cucumber cotyledons // Plant Physiol. 1982. - V.70. -P.1634-1636.

218. Reed R.C., Brady S.R., Muday G.K. Inhibition of auxin movement from the shoot into the root inhibits lateral root development in Arabidopsis II Plant Physiol. -1998. V.118. -P.1369-1378.

219. Reid D.M., Wample R.L. Water relation and plant hormones //Hormonal regulation of development. III. Berlin etc.,: Springer-Verlag, 1985. - P. 513-577.

220. Reinders-Gouwentak C.A. Physiology of the cambium and other secondary meristems of the shoot // In: Handbuch der PflanzenPhysiologie XV/1, 1965.-P.1077-1105, Ruhland W., ed. Springer, Berlin, Gottingen, Heidelberg.

221. Reynolds H.L., Dantonio C. The ecological significance of plasticity in root weight ratio in response to nitrogen Opinion// Plant and Soil.- 1996.- V.185.- P.75-97.

222. Richards D. Root-shoot interactions: functional equilibria for nutrient uptake in peach (Prunus persica L. Batsch)// Annals of Botany.- 1978.- V.42.- 1039-1043.

223. Richards D., Rowe R.N. Effects of root restriction, root pruning and 6-benzylaminopurine on the growth of peach seedlings// Annals of Botany.- 1977.-V.41.- P.729-740.

224. Roberts L.W., Gahan P.B., Aloni R. Vascular differentiation and plant growth Regulators // In: Springer Series in Wood Science, Timell T.E., ed. 1988.-Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New York.

225. Rowntree R.A., Morris D.A. Accumulation of 14C from exogenous labelled auxin in lateral root primordia of intact pea seedlings (Pisum sativum L.) // Planta -1979. V. 144. -P.463-466.

226. Rubinstein B., Nagao M.A. Lateral bud outgrowth and its control by the apex// Bot. Rev.- 1978.- V.42.- P.83-113.

227. Ruff M.S., Krizek D.T., Mirecki R.M., Inouye D.W. Restrictsd root zone volume: influence on growth and development of tomato// Journal of the American Society for Horticultural Science.- 1987.- V.l 12.- P.763-769.

228. Saab I.N., Sharp R.E., Pritchard J. Effect of inhibition of ABA accumulation on the spatial distribution of elongation in the primary root and mesocotyl of maize at low water potentials // Plant Physiol. 1992. - V.99. - P.26-33.

229. Saab I.N., Sharp R.E., Pritchard J., Voetberg G.S. Increased endogenous ABA maintains primary root growth and inhibits shoot growth of maize seedlings at low water potentials // Plant Physiol. 1990. - V.93. - P.1329-1336.

230. Sachs T. Cell polarity and tissue patterning in plants // Development 1991. — V.91 (suppl.). - P.83-93.

231. Sachs T. The control of the patterned differentiation of vascular tissues // Adv. Bot. Res. 1981.- V.9.- P. 152-255.

232. Sachs T., Thimann K.V. The role of auxins and cytokinins in the release of buds from dominance// Amer J. Bot.- 1967.- V.54.- P. 136-144.

233. Saks Y., Feigenbaum P., Aloni R. Regulatory effect of cytokinin on secondary xylem fiber formation in an in vitro system // Plant Physiol. 1984. -V.76. - P.638-642.

234. Schaffner A.R. Aquaporin function, structure and expression: are there more surprises to surface in plant water relations // Planta. 1998. - Vol.204. - P. 131-139.

235. Scholander P.F., Hammel H.T., Hemmingsen E.A., Bradstreet E.D. Hydrostatic pressure and osmotic potentials in leaves of Mangrove and some other plants//Proc. Natl. Acad. Sci USA 1964.-V.52(l).-P.l 19-125.

236. Schroeder J.I., Hedrich R. Involvement of ion channels and active transport in osmoregulation and signaling in higher plant cells// Trends Biochem. Sci.- 1989.-V.14.- P.187-192.

237. Shane M.W., McCully M.E. Root xylem embolisms: implications for water flow to the shoot in single-rooted maize plants // Austr. J. Plant Physiol. 1999. -V.26. - P.107-114.

238. Short K.C., Torrey J.G. Cytokinins in seed ling roots of pea// Plant Physiol.-1972.-49.-P.155 160.

239. Skoog F. Cytokinins, structure/activity relationships // Phytochem.- 1967.- V.-6.-P.1169- 1192.

240. Sloger C., Caldwell B.E. Responses of cultivars soybean to syntheic ABA // Plant Physiol. 1970. - V.45. - P.634-635.

241. Slovik S. and Hartung W. Compartmental distribution and redistribution of ABA in intact leaves. II. Model analysis. // Planta. -1992. V.187. - P.26-36.

242. Snaith P.J., Mansfield T.A. 1982a. Stomatal sensitivity to abscisic acid: can it be defined? // Plant Cell Environ. 5, 309-311.

243. Snaith P. J., Mansfield T.A. 1982b. Control of the C02 responses of stomata by indol-3-ylacetic acid and ABA. //J. Exp. Bot. 33, 360-365.

244. Steudle E. Water transport across plant tissue: role of water channels // Biology of the Cell. 1997. - Vol.89. - P.259-273.

245. Steudle E. Water transport across roots. // Plant Soil. 1994. - Vol.167. - P.7990.

246. Steudle E., Frensch J. Water transport in plants: role of apoplast // Plant Soil. -1996.-Vol.187.-P.67-79.

247. Steudle E., Henzler T. Water channels in plants: do basic concepts of water transport change? // J.Exp.Bot. 1995. - Vol.46. - P. 1067-1076.

248. Steudle E., Peterson C.A. How does water get through roots?// J.Exp.Bot. -1998.-Vol.49.-P.775-788.

249. Steudle E. Water uptake by plant roots: an integration of views // Plant Soil. -2000. V.226. - P. 45-56.

250. Stillwell W., Brengle B., Hester P., Wassail S.R. Interaction ofabscisic acid with phospholipid membranes// Biochemistry.- 1989,- V.28.- P.2798-2804.

251. Suttle J.C. Effect of ethylene treatment on polar IAA transport, net IAA uptake and specific binding of N-l-naphthylphthalamic acid in tissues and microsomes isolated from etiolated pea epicotyls // Plant Physiol. 1988. - V.88. - P.795-799.

252. Svensson S.B. A comparative study of the changes in root growth induced by coumarin, auxin, ethylene, kinetin and gibberellic acid// Physiol. Plant. 1972.- V. 26.-P.l 15-135.

253. Takeuchi Y., Kondo N. Effect of ABA on cell-wall metabolism in guard cells of Viciafaba L. //Plant Cell Physiol. 1988b. - V.29. - P.573-580.

254. Takeuchi Y., Kondo N. Effect of ABA on glucose metabolism iin guard cells of Viciafaba L. //Plant Cell Physiol. 1988a. - V.29. - P.247-253.

255. Tal M., Imber D. Abnormal stomata behavior and hormonal imbalance in flacca, a wilty mutant of tomato. III. Hormonal effects on the water status in the plant //PlantPhysiol. 1971. - V.47. -N6. -P.849.

256. Taneja R., Varma S.K., Dayal J., Datta K.S. Effect of kinetin on water relation, photosynthesis, respiration and chlorophyll and nucleic acid contents of wheat (Triticum aestivum L.) grown under salinity// Biol. Plant.- 1992.- V.34, №1-2,- P.85-91.

257. Tardieu F. and Davies W.J. Integration of hydraulic and chemical signaling in the control of stomatal conductance and water status of droughted plants // Plant Cell Environ. 1993.-V.16.-P.341-349.

258. Tardieu F. and Davies W.J. Stomatal response to ABA is a function of current plant water status // Plant Physiol. 1992. - V.98. - P.540-545.

259. Thompson N.P., Jacobs W.P. Polarity of IAA effect on sieve-tube and xylem regeneration in Coleus and tomato stems // Plant Physiol. 1966. - V.41. - P.673-682.

260. Thornley J.N.M. A balanced quantitative model for root:shoot ratios in vegetative plants// Annals of Botany.- 1972,- V.36.- P.431-441.

261. Torrey J.G. Endogenous and exogenous influences on the regulation of lateral root formation.// In New root formation in plants and cuttings (M.B.Jackson, ed.), 1986, pp. 31-65. Martinus Nijhoff, Dordrecht.

262. Torrey J.G. Root hormones and plant growth// Ann. Rev. Plant Physiol.-1976.-V.27.- P.407-413.

263. Trejo C.L., Clephan A.L., Davies W.J. How do Stomata Read Abscisic Acid Signals? // Plant Physiol. 1995. V.109. P.803-811.

264. Trejo C.L., Davies W.J., Ruiz L.M.P. Sensitivity of stomata to ABA. An effect of the mesophyll//Plant Physiol. 1993. - V. 102, N 2. - P. 487-502.

265. Tschaplinski T.J., Blake T.J. Effects of root restriction on growth correlations, water relations and senescence of alder seedlings// Physiologia Plantarum.- 1985.-V.64.- P.167-176.

266. Tsurumi S., Ohwaki Y. Transport of 14C labelled IAA in Vicia root segments // Plant Cell Physiol. 1978. - V.19. - P.l 195-1206.

267. Van Staden J., Carmi A., Forsyth C., Krizek D.T. Cytokinin-like activity in the roots and shoots of tomatoes following reciprocal grafts between normal and dwarf genotypes// Suid Afrikaans Tydskrif Vir Plantkunde.- 1987.- V.53.- P.276-278.

268. Van Staden J., Davey J.E. The synthesis, transport and metabolism of endogenous cytokinins // Plant Cell Environ. 1979.- V.2.- P.93-106.

269. Van Staden J., Dimalla G.G. The production and utilization of cytokinins in rootless, dormant almond shoots maintained at low temperature // Z Pflanzenphysiol. 1981. - V.103. -P.121-129.

270. Van Staden J., Harty R. Cytikinins and adventitious root formation// In: Adventitious root formation in cuttings. (Eds. T.D. Davies, B.E. Haissig, N. Sankhila).- Dioscorides Press, 1988.- V.2.- P.185-201.

271. Van Staden J., Ntingane B.M. The effect of a combination of decapitation treatments, zeatin and benzyladenine on the initiation and emergence of lateral roots in Pisum sativum IIS. Afr. J. Bot. 1996. - V.62(l) - P.l 1-16.

272. Vanderwerf A., Nagel O. W. Carbon allocation to shoots and roots in relation to nitrogen supplay is mediated by cytokinins and sucrose opinion// Plant and Soil.-1996.- V.185.- P.21-32.

273. Vysotskaya L.B., Timergalina L.N., Simonyan M.V., Veselov S.Y. and Kudoyarova G.R. Grwoth rate, IAA and cytokinin content of wheat seedlings after root pruning. // Plant Growth Regul. 2001. - Vol.33. - P.51-57.

274. Wakabayashi K., Sakurai N., Kuraishi S. Role of the outer tissue in ABA-mediated growth suppression of etiolated squash hypocotyl segments // Physiol. Plant. 1989b. - V.75. -P.151-156.

275. Wareing P.F. Abscisic acid as a natural growth regulation// Phil. Trans. Roy. Soc. London. B.- 1978.- P.483-498.

276. Weigel U., Horn W., Hock B. Endogenous auxin leevels in terminal stem cuttings of Chrysathemum morifolium during adventitious rooting // Physiol.Plant. -1984. V.61. -P.422-428.

277. Westgate M.E., Boyer J.S. Transpiration and Growth-Induced Water Potentials in Maize // Plant Physiol. 1984. - V.74. - P.882-889.

278. Wightman F., Schneider E.A., Thimann K.V. Hormonal factors controlling the initiation and development of lateral roots. II. Effects of exogenous growth factors on lateral root formation in pea roots // Physiol. Plant. 1980.- V.49.- P.304-314.

279. Wightman F., Thimann K.V. Hormonal factors controlling the initiation and development of lateral roots. I. Sources of primordia-inducing substances in the primary root of pea seedlings // Physiol. Plant. 1980.- V.49.- P.13-20.

280. Wright S.T.C., Hiron R.W.P. ( + ) abscisic acid, the growth inhibitor induced in detached wheat leaves by a period of wilting// Nature.- 1969.- V.224.- P.719-720.

281. Ye Z.N., Varner J.E. Expression of an auxin-regulated and cytokinin -regulated gene in cambial region in Zinnia!I Proceed. Nat. Acad. Scien. USA.- 1994.-V.91.- P.6539-65-43.

282. Yong J.W.H., Wong S.C., Letham D.S., Hocart C.H., Farquhar G.D. Effects of elevated C02. and nitrogen nutrition on cytokinins in the xylem sap and leaves of cotton// Plant Physiol. 2000. - V. 124. - P.767-779.

283. Zazimalova E., Kaminek M., Brezinova A., Motyka V. Control of cytokinin biosynthesis and metabolism. //In P.J.J. Hooykaas, M.A. Hall, K.R. Libbenga (eds). Biochemistry and Molecular Biology of Plant Hormones. Elsevier Science B.V. 1999.

284. Zeevaart JD., Boyer GL. Accumulation and transport of abscisic acid and its metabolites in Ricinus and Xanthium II Plant Physiol.- 1984.- V. 74.- P.934-939.

285. Zeiger E. Light perception in guard cells // Plant Cell Environ. 1990. - VI3. -P.739-747.

286. Zhang J, Schurr U. and Davies W.J. Control of stomatal behavior by abscisic acid which apparently originates in the roots// J. Exp. Bot. 1987. - V.39. - P. 11741291181.

287. Zhang J., Davies W.J. ABA in roots and leaves of flooded pea plants// J. of Exp. Botany.- 1987.- V.38.- P.649-659.

288. Zhang J., Davies W.J. Abscisic acid produced in dehydrating roots may enable the plant to measure the water status of the soil// Plant, Cell & Environment.- 1989.-V.12.- P.73-81.

289. Zhang J., Davies W.J. Antitranspirant activity in xylem sap of maize plants // J. Exp. Bot. 1991. -V.42. -P.317-321.

290. Zhang J., Jia W., Zhang D P. Effect of leaf water status and xylem pH on metabolism of xylem - transported ABA // Plant Growth Regul. -1997. - V.21. -P.51-58.

291. Zhang X.D., Letham D.S., Wong O.C., Nooden L.D., Parker C.W. Cytokinin biochemistry in relation to leaf senescence. II. The metabolism of 6-benzylaminopurine in soybean leaves and inhibition of its conjugation// Plant Physiol.- 1987.-V. 83.- P.334-340.

292. Zhang X.D., Letham D.S., Zhang R. Higgins T.J.V. Expression of the isopentenyl transferase gene is regulated by auxin in transgenic tobacco tissues// Transgenic Research.- 1996.- V.5.- P.57-65.

293. Zimmermann H.M., Steudle E. Apoplastic transport across young maize roots: effect of the exodermis// Planta 1998. - V.206. - P.7-19.