Особенности микроклонального размножения шиповника и декоративных сортов рода Rosa L. тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.07, кандидат сельскохозяйственных наук Поздняков, Иван Александрович

• Поздняков, Иван Александрович
• кандидат сельскохозяйственных наук
• 2007

Оглавление диссертации кандидат сельскохозяйственных наук Поздняков, Иван Александрович

Введение.

1. Обзор литературы.

1.1. Значение культуры шиповника.

1.2. Особенности размножения плодовых гибридов шиповника и представителей рода Rosa L.

1.3. Биологические основы размножения шиповника in vitro.

1.3.1. Особенности этапа введения представителей рода Rosa L.

1.3.2. Особенности этапа размножения представителей рода Rosa L.

1.3.3. Физиологические нарушения, возникающие у роз в культуре in vitro.

1.3.4. Особенности этапов укоренения и адаптации представителей рода Rosa L.

2. Экспериментальная часть.

2.1. Цели и задачи исследований.

2.2. Объекты, методика и условия проведения экспериментов.

Микроклональное размножение.

Учёты и наблюдения.

2.3. Результаты исследований и обсуждение.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Особенности микроклонального размножения шиповника и декоративных сортов рода Rosa L.»

Представители рода Роза, глубоко вошли в жизнь человека, его культуру, быт и традиции. Разнообразие сортов, форм и гибридов роз поражает - на момент 2000 года в мире насчитывалось свыше 24000 сортов (Сурина, Сурина. 2002). При этом природных видов насчитывается всего около 150-200 (по ряду источников до 400) видов (Хржановский 1958, Тахтаджан и др. 1981). На сегодняшний день роза применяется в качестве эфиромасличной, лекарственной и пищевой культуры (Магомедов, Мирошникова, Абдулгалимова 2003). Несмотря на то, что большинство сортов используется в качестве декоративной культуры, ряд сортов имеет важное пищевое и фармацевтическое значение.

Термин шиповник применяется по отношению к формам, гибридам, сортам роз, имеющим плодовое назначение и видам. Этот же термин считается русским эквивалентом латинского названия рода Rosa L. для видов распространённых на территории России (Усенко 1969, Губанов и др. 1995, Хржановский 1958, Тахтаджан и др. 1981). Ряд сортов и сортообразцов, выращиваемых в культуре представляет собой формы, отобранные из популяций диких видов. К таким сортам относятся «Крупноплодный ВНИВИ», «Российский 2», «Юбилейный» (Стрелец, Агафонов 1994). Морфология и габитус растений сортов, имеющих плодовое назначение, близок к габитусу диких, предковых представителей рода таких, как Р. коричная (R. cinnamomea L.), Р. морщинистая (R. rugosa Thunb.), Р. яблочная (R. pomifera Herrn.), P. Уэбба (R. webbiana Wall.).

В настоящее время культура шиповника имеет два основных направления использования. Первое - плодовое, при этом используются мягкие оболочки гипантия - ложного плода, как в свежем виде, так и в виде концентратов для витаминной и пищевой промышленности. Второе -использование плодов (простых плодиков - костянок) для получения масла. Культура шиповника является одним из важнейших источников каротина и аскорбиновой кислоты для пищевой и фармакологической промышленности. Его плоды содержат рекордные количества витамина С свыше 3000 мг% и витамина Р около 1000 мг%. Содержание каротина у отдельных сортов достигает 30 мг% (Стрелец 2000). Из наиболее важных и распространённых продуктов шиповника можно отметить следующие: сироп из плодов шиповника, сушёные плоды шиповника, витаминные концентраты из мякоти плодов шиповника. Значительная часть каротина, используемого в качестве красителя для пищевой и кондитерской промышленности, получается из плодов шиповника. Употребление плодов в свежем виде не столь распространено, но небольшое их количество способно удовлетворить суточную потребность в витамине С.

Шиповник является перспективной культурой для нечернозёмной зоны плодоводства, поскольку он обладает рядом уникальных качеств. Во-первых, это рекордное содержание витаминов в плодах, ни одна культура умеренной зоны не содержит такие количества аскорбиновой кислоты и витамина Р. Во-вторых, шиповник обладает высокой морозоустойчивостью и зимостойкостью а зона промышленного выращивания может быть продвинута до широты Санкт-Петербурга и Архангельска (Пименов и сотр. 1987). В-третьих, культура шиповника нетребовательна к качеству почв и может произрастать на относительно бедных почвах. Большинство сортов и форм способно ежегодно давать устойчивые урожаи, вне зависимости от погодных условий. Урожай с куста достигает у ряда сортов 4 кг с куста при схеме посадки 3 х 3 м, что соответствует урожайности 4,4 т с гектара. Средняя урожайность ряда сортов в условиях Средне-Волжской Зональной Опытной Станции достигала 6 т. с гектара (Пименов и сотр. 1998), по многолетним данным Крымской Опытной Зональной Станции шиповник на каменистых почвах способен в возрасте 5 лет давать урожаи по 2,0-2,5 т/га (Турсин и сотр. 1990). Сравнительно молодая в историческом плане культура шиповника уже достигла урожайности такой традиционной ягодной культуры, как смородина. Современные сорта отличаются по размеру ягод и урожайности от диких видов более чем в три раза, превосходя их по содержанию витаминов и питательности. Средняя масса ложного плода шиповника коричного (К. стпатотеа Ь.) имеет среднюю массу в момент созревания 0,5 г., масса ложного плода шиповника разных сортов колеблется от 1,5 до 10 г (Стрелец 2000). Высота кустов сортов шиповника иногда более чем в полтора раза превышает высоту родительских видов. Побеги большинства сортов более мощные и долговечные, чем у предковых форм. Многие сорта такие, как «Витаминный ВНИВИ», «Пальчик», «Каштановый» несут на побегах меньше колючек, чем предковые сорта. Процесс селекции в настоящее время находится на этапе завершения отбора выдающихся форм из природных популяций и продолжении проведения активных внутривидовых и межвидовых скрещиваний. На сегодняшний день известно свыше двух десятков сортов шиповника, рекомендованных для промышленного производства. Среди наиболее перспективных сортов можно назвать такие сорта, как: «Витаминный ВНИВИ», «Воронцовский 1», «Воронцовский 3», «Каштан», «Крупноплодный ВНИВИ», «Победа» «Российский 2», «Титан», «Юбилейный», «Яблочный».

Приоритетными направлениями селекции шиповника на сегодняшний день считаются следующие. Во-первых, проводится создание сортов, обладающих плодами с большей долей мякоти. Во-вторых, отбор новых сортов шиповника должен быть направлен на улучшение органолептических характеристик плодов шиповника таких, как уменьшение количества плодиков - орешков и трихом внутри ложного плода. В-третьих, проводится поиск форм шиповников устойчивых к ржавчине и создание на их основе иммунных сортов (Стрелец, Агафонов 1994, Пименов и сотр. 1998).

Одной из характеристик многих сортов шиповника является его низкая способность к вегетативному размножению. Большинство сортов шиповника характеризуется слабой способностью к наращиванию побегов и вегетативной массы куста. Многие из них слабо образуют побеги возобновления. Размножение ряда сортов черенкованием, как зелёными, так и одревесневшими черенками затруднено. Особенности вегетативного размножения сильно варьируют в зависимости от сорта и предковых видов. Низким ростом кустов и слабым наращиванием массы побегов обладают сорта и формы, полученные с участием шиповника морщинистого (R. rugosa). Слабой способностью к образованию побегов возобновления отличаются сорта «Глобус», «Каштан», «Титан», но они имеют среднюю способность к размножению зелёными черенками.

Трудности вегетативного размножения шиповников связаны, прежде всего, с особенностями их физиологии, биохимии и морфологии. Один из авторов установил закономерность, что сорта, происходящие из тёплых и влажных мест более способны к укоренению, чем сорта из сухих и холодных регионов (Сушков 1967). К трудно укореняемым сортам этим автором отнесены сорта Р. столепестной (R. centifolia), Р. дамасской (R. damascena L.), Р. альба (R. alba), Р. лютеа (R. lutea), Р. морщинистой (R. rugosa Thunb). Для каждого сорта шиповника способность к укоренению различна, в целом способность к размножению шиповников, как одревесневшими, так и зелёными черенками низкая по сравнению с большинством сортов декоративных роз.

В современном питомниководстве приняты и традиционно используются следующие виды размножения сортов и видов роз.

1. Прививка глазков или побегов на семенные или вегетативно размножаемые подвои.

2. Размножение одревесневшими черенками.

3. Размножение зелёными, облиственными черенками.

Такие методы, как размножение отводками, размножение корневыми черенками и делением куста не получили широкого распространения в промышленном производстве, поскольку они имеют низкий коэффициент размножения и применимы не для всех сортов.

В настоящее время отмечается тенденция к переходу с привитой культуры роз и шиповника на корнесобственную (Баев, Джабаев 1998,

Турсин и сотр. 1990). Причиной тому служит ряд трудностей при производстве привитых роз и некоторые отрицательные качества, которыми обладают привитые розы. Для создания саженца привитой розы требуется не менее 3-4 лет. При использовании в качестве подвоев сеянцев Р. собачей (R. canina L.), Р. коричной (R. cinnamomea L.) и других видов существует проблема низкой всхожести их семян. Основными недостатками привитых роз, сильно осложняющими их культуру, являются, сильное образование поросли и плохая совместимость ряда сортов, что делает привитую культуру недолговечной.

Большинство сортов рода роза обладает достаточно устойчивой корневой системой и слабо повреждается неблагоприятными факторами окружающей среды в зимний период. По этой причине в большинстве регионов выращивания розы предпочтителен переход к корнесобственной культуре. Корнесобственные розы лишены недостатков привитых роз. Получить полноценный саженец можно за 1,5-2 года. Они не образуют поросли, а значит, они не требуют проведения ежегодной операции удаления побегов подвоя. Большинство корнесобственных роз более устойчивы благодаря тому, что они способны возобновлять побеги от подземной части куста, привитые розы такой возможности лишены.

Недостатком всех перечисленных методов размножения является так же о то, что все они являются одним из возможных путей передачи вирусных инфекций и карантинных заболеваний. Опасность вирусных и микоплазменных заболеваний состоит в том, они могут долгое время не проявлять себя в виде заметных симптомов и распространяться при вегетативном размножении. Вопрос чистоты посадочного материала от инфекции важен при возделывании культуры по интенсивной технологии, когда требуется частая смена насаждений и в питомниководстве, когда вегетативное размножение растений происходит особенно интенсивно. Вирусные и микоплазменные инфекции, отмеченные на розе и шиповниках способны сильно снизить продуктивность растений, качество продукции, их иммунитет и способность к размножению. На розах отмечено распространение таких вирусных инфекций, как вирус кольцевой пятнистости сливы (Prunus Necrotic Ringspot Virus), вирус кольцевой пятнистости томатов (Tomato Necrotic Ringspot Virus), вирус линейной и жилковой пятнистости розы (Rose Yellow Mosaic Virus) и многие другие вирусы (Сурина, Сурина. 2002, Bjarnason et al. 1985).

Одним из эффективных способов получения корнесобственных саженцев является метод микроклонального размножения. Культура in vitro роз на данный момент не является достаточно изученной, для того чтобы посредством её можно было успешно размножать все без исключения сорта и формы. Многие сорта роз способны успешно и активно размножаться посредством микроклонального размножения.

К моменту начала проведения работы в научных источниках не было обнаружено работ, посвященных микроклональному размножению сортов шиповника, имеющих плодовое назначение. Поэтому, культура микроклонального размножения роз и в особенности сортов шиповника требует более детального и глубокого изучения.

Настоящая работа посвящена изучению условий культивирования in vitro и состава искусственной питательной среды на микроклональное размножение гибридов шиповника.

1. Обзор литературы.

Заключение диссертации по теме «Плодоводство, виноградарство», Поздняков, Иван Александрович

Выводы.

В результате проведённых исследований в период с 1999 по 2003 год был разработан цикл микроклонального размножения посадочного материала шиповника и оптимизированы условия стерильной культуры роз.

1. Проведён полный цикл микроклонального размножения шиповника. Показана принципиальная возможность регенерации и развития шиповника в культуре in vitro.

2. Определены оптимальные условия культивирования на стадии введения (I), определить благоприятный состав среды для развития и регенерации эксплантов шиповника, провести сравнение с развитием декоративных представителей рода Rosa L. на данном этапе.

3. Определены условия культуры и состав среды, обеспечивающие необходимый уровень размножения при требуемом качестве микропобегов шиповника в сравнении с культурой декоративных сортов роз на этапе размножения (II).

4. Найден состав среды на только, обеспечивающий высокий коэффициент размножения за пассаж, но и позволяющий максимально исключить такие нежелательные явления, как образование каллусной ткани и витрификация растений на всех этапах размножения.

5. Изучена возможность укоренения шиповника в культуре in vitro и выявлены благоприятные условия необходимые для обеспечения этого процесса.

6. Изучены условия адаптации укоренённых и не укоренённых микропобегов шиповника и роз в нестерильных условиях.

7. изучить морфологические и анатомические особенности листового и устьичного аппарата представителей рода Rosa L. в зависимости от состава среды и влияние на развитие его на развитие микропобегов в нестерильных условиях.

Рекомендации производству.

Для успешного размножения шиповника с применением культуры in vitro необходимо перед введением производить проращивание почек, взятых с зимних побегов. Этот приём позволяет существенно увеличить приживаемость на этом этапе. Начало стерильной культуры оптимально начинать в январе - феврале, что обеспечит проведение адаптации в оптимальные сроки и позволит завершить цикл размножения за один год. Рекомендуется проводить проращивание почек побегов с добавлением в воду 0,10 г/л салициловой кислоты, что увеличивает долю растений с развитыми побегами и листьями.

На этапе собственно введения, возможно, использовать среду, подобранную для введения роз, представленную таблице 12.

Увеличение концентрации меди в среде до 0,05 мг/л. позволяет так же эффективно (в 1,4 раза) повысить приживаемость эксплантов шиповника на данном этапе.

На этапе размножения целесообразно использовать среду, оптимизированную для этапа размножения роз (таблица 41).

Использование этой среды позволяет добиться увеличения коэффициента размножения в 3 раза по сравнению с размножением на среде

МС и при этом исключить физиологические расстройства такие, как витрификация, отмирание побегов в конгломерате и образование каллуса.

На этапе размножения возможно применение салициловой кислоты в качестве антимикоплазменного и антивирусного вещества в терапевтических концентрациях. Введение салициловой кислоты так же усиливает рост и способность шиповника к размножению на данном этапе.

Рекомендуется добавление в среду невысоких концентраций - 0,0250,050 мг/л. селенита натрия.

На этапе укоренения гумат калия может быть рекомендован в качестве более эффективной замены ИМК. Данное вещество показало выраженную способность к индукции ризогенеза. Обнаружено, что оптимальные концентрации этого вещества для индукции ризогенеза у микропобегов роз лежат в пределах 50-100 мг/л. Применение гумата калия существенно по сравнению ИМК снижает вероятность образования каллуса в основании побегов.

На этапах укоренения желательно использовать среду, полученную на этапе размножения, путём подбора оптимальных концентраций макроэлементов. Это обеспечит существенное (в 1,3 раза) увеличение доли адаптированных растений.

2.4. Заключение

Вопрос полноценного питания и обеспечения витаминной продукции в рационе современного человека, особенно в крупных городах стоит крайне остро. Современный темп жизни и экологическая обстановка мегаполисов диктует необходимость в рационе человека витаминной продукции. Культура питания в свою очередь ставит в качестве основной цели разнообразие и привлекательность потребляемой пищи. Шиповник, как плодовая культура является одним из возможных элементов полноценной витаминной диеты. Ряд рецептов, в состав которых входит шиповник, являются незаменимой частью витаминной терапии для организма, ослабленного стрессами и заболеваниями. Совершенствование сортов и гибридов шиповника методами современной селекции может вывести эту культуру на новый уровень, вполне возможно, что плоды шиповника со временем, могут занять место одного из ценных диетических, высоковитаминных продуктов.

Питомниководство, призвано не только, обеспечивать производство посадочного материала плодовых и ягодных культур, но и создавать базу для эффективного размножения новых сортов. Селекция шиповника и роз как перспективных и востребованных культур не может обойтись без высокоэффективных методов ускоренного воспроизводства новых сортов и гибридов.

Культура in vitro на сегодняшний день является одним из наиболее эффективных методов размножения как плодовых, так и декоративных растений. На сегодняшний день существует большое количество промышленных лабораторий с объёмом годового производства от 10 до 50 млн. растений в год (информация сайтов www.potosplants.nl, www.pac-elsner.de, www.innovaplant.com). А стерильная культура сегодня уже не столько объёкт чисто научных исследований, сколько незаменимый инструмент для массового воспроизводства растений и один из методов широко применяемых в селекции.

Разработка эффективной методики размножения in vitro таких культур, как шиповник и розы является необходимой задачей современного питомниководства. Культура in vitro так же призвана решить такую проблему, как распространение вирусных и микоплазменных инфекций с посадочным материалом плодовых и декоративных культур.

Исследования культуры in vitro шиповника и роз показали возможность эффективного размножения шиповника и позволили оптимизировать технологию размножения роз в стерильной культуре. Результаты исследования и расчёт экономической эффективности показали преимущество использования микроклонального размножения перед черенкованием.

При производстве посадочного материала роз и шиповника методом зелёного черенкования применяется схема двухгодичного выращивания саженцев в условиях умеренной зоны (Тарасенко 1991). В первый год производится укоренение черенков, на второй год черенки доращиваются в условиях открытого или защищённого грунта. Для расчётов брались условия доращивания в открытом грунте.

При использовании для производства посадочного материала с применением культуры in vitro схема выращивания саженцев обычно состоит из двух этапов, которые составляют цикл размножения, завершающийся за один год. Первый этап - собственно размножение в стерильной культуре, второй - доращивание саженцев в кассетах или контейнерах в защищённом грунте с применением установки искусственного тумана в первые две недели доращивания (таблица 1 приложения 2).

12 ООО растений за период размножения может быть обеспечено двумя работниками, один из которых выполняет пересадку, второй - приготовление среды. В этом случае необходим один ламинар-бокс и 60 м стеллажей в световой комнате. В расчётах применён средний коэффициент размножения 1/5,5

12 000 на этапе адаптации, согласно данным исследование способны обеспечить выход 10 ООО саженцев. Расчёт эффективности этапа адаптации и доращивания проводился с учётом высадки регенерантов в кассеты и условий плёночных теплиц с установкой искусственного тумана. В этом случае структура затрат будет выглядеть следующим образом. Время доращивания составит приблизительно 1 мес (таблица 2 приложения 2).

Себестоимость посадочного материала шиповника, готового к высадке в открытый грунт составит 37,90 руб. за саженец.

При использовании зелёного черенкования цикл размножения так же состоит из двух этапов и завершается за два года. Первый этап -черенкование в условиях защищённого грунта с установкой искусственного тумана, второй - доращивание саженцев в открытом грунте (таблица 3 приложения 2).

Такое количество растений может быть обеспечено двумя работниками, один из которых выполняет пересадку, второй - приготовление среды. В этом случае необходим один ламинар-бокс и 60 м стеллажей в световой комнате. В расчётах применён средний коэффициент размножения 1/5,5

На этапе доращивания из укоренённых черенков с учётом выпадов выход составит 10 000 шт. Расчёт эффективности этапа адаптации и доращивания проводился с учётом высадки регенерантов в кассеты и условий плёночных теплиц с установкой искусственного тумана. В этом случае структура затрат будет выглядеть следующим образом. Время доращивания составит приблизительно 2 мес (таблица 4 приложения 2).

Таким образом, себестоимость посадочного материала шиповника, полученного зелёным черенкованием, оставит 56,70 руб.

Таким образом, размножение шиповника и роз с применением культуры in vitro, может стать эффективной заменой зелёному черенкованию и позволит обеспечить воспроизводство этих культур с меньшими затратами в условиях умеренной зоны.

Сравнив эффективность размножения роз на среде МС и средах полученных в результате исследований установили, что опытные среды более экономичны по сравнению с МС. Так, для производства 16 200 шт. растений, затраты на реактивы в случае МС составят 186 969 руб., а в случае применения опытных сред соответственно - 186 058 руб.

Таким образом, цикл размножения роз и шиповника с применением культуры in vitro, может быть рекомендован для производства посадочного материала роз и шиповника.

Список литературы диссертационного исследования кандидат сельскохозяйственных наук Поздняков, Иван Александрович, 2007 год

1. Александров И.В., Коссов И.И., Бурков П.А., Жигмид Д., Отгонбояр Д. Гуминовые вещества бурых углей, как мелиоранты солончаковых почв. // В. сб.: Гуминовые вещества в биосфере. М.:, Наука, 1993.-е. 174-178.

2. Алехно Г.Д., Высоцкий В.А. Клональное микроразмножение роз. // Физиология и биохимия культурных растений. Киев: «Наукова Думка»., 1986.-Т. 18- № 15.-е. 489-494.

3. Анализ транедукции сигнала цитокинина на гены первичного ответа. / Романов Г.А. // 6-ая Международная конференция «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях». Москва. 26-28 июня 2001: Тез. докл. с. 61.

4. Баев В.И., Джабаев Б.Р. Новое в выращивании саженцев садовых роз. // Махачкала «Юпитер», 1998.

5. Бабаев В.И. Размножение плодовых и декоративных растений зелёными черенками в Дагестане. // Махачкала, 1983.

6. Бабаев В.И., Джамбулатова З.М. О сравнительном изучении привитой и корнесобственной из зелёных черенков культуры роз. // Тр. Даг. СХИ. Махачкала. 1980. с. 3-11.

7. Безуглова О.С., Шевченко И.Д. Влияние углегуминовых удобрений на гумусовое состояние чернозёма обыкновенного карбонатного. // Тез. докл. II съезда Общества почвоведов. // РАН.-Спб., 1996.-Кн. 1.-е. 147-148.

8. Бленда A.B. Вплив генотипу на особливост} м1кроклонального розмноження предствниюв шдродини Prunoideae. Автореферат дисертацп на здобуття наукового ступеня кандидата бюлопчних наук.: 03.00.15., Кшв.-2000. 15 с.

9. Биохимия растений, культура клеток. Г.П. Болвел, Дж.В. Чалман, P.A. Диксон и др., перевод д.б.н. В.И. Негру к, под ред. Р.Г. Бутенко. М. В.О. «Агропромиздат». 1989.

10. Болезни и вредители растений интродуцентов. / Синадский Ю.В., Козаржевская Э.Ф., Мухина JI.H. и др. - М.: Наука, 1990.272 с.

11. И. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М. изд. «Наука». 1964.

12. Вигоров Л.И. Фонды защитных веществ у съедобных фруктов и закономерности их распределения. // Вопросы уральского садоводства: Тр. Уральского НИИ сельского хозяйства. -Свердловск., 1985. Т.45. - с. 53-66.

13. Виджешвар П. Биотехнологические и физиологические основы клонального микроразмножения Actinidia deliciosa (Chev.) Liang, Ferguson. // Автореферат на соискание учёной степени кандидата биологических наук.: 03.00.23., Ялта. 1996. 25 с.

14. Влияние гумата калия на прорастание семян Orchis picta Loisel. in vitro. / Теплицкая Л.М. // 6-ая Международная конференция «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях». Москва. 26-28 июня 2001: Тез. докл. с. 196.

15. Высоцкий В. А. Биотехнологические методы в системе производства оздоровленного посадочного материала и селекции плодовых и ягодных культур. // Автореферат на соискание учёной степени доктора с.-х. наук.: 06.01.07., 03.00.12., М. 1998. 44 с.

16. Высоцкий В.А. Действие некоторых регуляторов роста на изолированные меристематические верхушки чёрной смородины. // Плодоводство и ягодоводство нечернозёмной полосы. М., 1976.-Т. IX.-с. 101-107.

17. Высоцкий В.А. Клональное микроразмножение некоторых форм груши. // Биология культивируемых клеток и биотехнология. / Тезисы докладов междун. Конференции. Новосибирск. 1988. т. 2.-е. 318-319.

18. Высоцкий В.А. Клональное размножение плодовых и декоративных кустарников. // Микроразмножение и оздоровление растений в промышленном плодоводстве и цветоводстве. // Сб. научных трудов ВНИИС им. И.В. Мичурина. Мичуринск. 1989. -с. 3-8.

19. Высоцкий В.А. Корнацкий С.А. Изменение коэффициента размножения и укореняемости микропобегов сливы при длительном культивировании in vitro. // Агротехника, защита от вредителей и болезней, механизация в плодоводстве в НЗ РСФСР. М., 1992.-с. 14-20.

20. Высоцкий В.А. О генетической стабильности при микроклональном размножении плодовых и ягодных культур. // Сельскохозяйственная биология. 1995. № 5. с. 57-63.

21. Высоцкий В.А. Олешко Е.В. Совершенствование питательных сред для микроклонального размножения вишни. // Агротехника и сортоизучение плодовых культур. // Сб. научных трудов НИЗИСНП. М. 1985. с. 72-76.

22. Высоцкий В.А., Попов Ю.Г., Трушечкин В.Г. Регенерация изолированных верхушек древесных растений. // Плодоводство и ягодоводство нечернозёмной полосы. М., 1976. - Т. IX. - с. 89100.

23. Высоцкий В.А. Ризогенез у микропобегов малино-ежевичных гибридов при различных температурах. // Тез. докладов II международной конференции «Биология культивируемых клеток и биотехнология». Алматы. 1993. - Т. 2. - с. 210.

24. Высоцкий В.А., Упадышев М.Т. Регенерация вегетативных органов листовыми дисками и другими эксплантами рода Rubus in vitro. // Физиология растений. 1992. Т. 39. - вып. 3. - с. 584591.

25. Высоцкий В.А. Усовершенствование способов получения растений малины из изолированных меристематических верхушек. // Ягодоводство в Нечерноземье. М., 1984. с. 3-8.

26. Глежери Г.С. Подбор питательных сред для микроклонального размножения роз // Науч. труды сельскохозяйственной акад. 1990. 35. с. 26-32. (лит.). Рез. рус. библ. 10464287. / Реф. ж. Биол. Физиол. И Биохим. раст. 1991 № 1 с. 35.

27. Горовая А.И., Орлов Д.С., Щербенко О.В. Гуминовые вещества. Строение, функции, механизм действия, протекторные свойства, экологическая роль. // Киев. «Наукова Думка». 1995.

28. Деменко В.И. Микроклональное размножение плодовых и ягодных культур. Методические указания к практическим занятиям по плодоводству. // М. Изд. МСХА. 1997.

29. Деменко В.И., Трушечкин В.Г. Размножение вишни методом in vitro. // С.-х. биология. 1983. № 7. с. 51-53.

30. Демидова H.A., Фомина В.О. Результаты селекции облепихи и высоковитаминного шиповника в Архангельске. // Садоводство, семеноводство и интродукция древесных растений. Красноярск. 1998.

31. Досон Р., Эллиот Д., Эллиот У., Джонс К. Справочник биохимика, пер. с англ. к.хим.н. Друцы B.JL, и к.хим.н. Королёвой О.Н. М. «Мир». 1991.

32. Жаркова И.В. Микроклональное размножение земляники. // Сб. Интенсификация возделывания ягодных культур. Ленинград. 1988.-с. 41-45.

33. Жидёхина Т.В. Размножение шиповника зелёными черенками с использованием ростовых веществ. // Состояние и перспективы развития нетрадиционных садовых культур. Воронеж 2003. с. 182-185.

34. Жидёхина Т.В., Куминов Е.П., Тимкин A.B. Шиповник в центральном Черноземье. // Состояние и перспективы развития нетрадиционных садовых культур. Воронеж 2003. с. 185-193.

35. Жуковский П.М. Культурные растения и их дикие сородичи. // -М. 1950.-с 595.

36. Ильин B.C., Ильина H.A. Шиповник. // Нетрадиционные садовые культуры. Мичуринск. 1994. с. 336-356.

37. Ипполитова Н.Я., Высоцкий В. А., Талалаева Г. А. Микроклональное размножение пионов. // Цветоводство. 1984. № 1.-е. 34.

38. Кин Е.В., Митрофанова О.В., Клименко З.К. Совершенствование биотехнологических приёмов микроразмножения розы садовой. // Проблемы дендрологии, садоводства и цветоводства. Ялта, 1995, -с. 57.

39. Кириченко Е.Б., Фернандо Ш.С., Кузмина Т.А., Чернядьев И.И. Особенности морфогенеза эфиромасличных роз при микроклональном размножении. // Бюллетень Главного ботанического сада, 1993. т. 167. - с. 96-102.

40. Кириченко Е.Б., Кузмина Т.А., Катаева Н.В. Факторы оптимизации репродуцирования декоративных и эфиромасличных роз in vitro. // Бюллетень Главного ботанического сада, 1991.-т. 159. с. 61-67.

41. Кларксон Д. Транспорт ионов и структура растительной клетки. Перевод М.Г. Дудиной, под ред. д.б.н. Д.Б. Вахмистрова., М. изд. «Мир». 1978.

42. Корнацкий С.А. Наиболее значимые элементы промышленной технологии клонального микроразмножения древесных культур. // Пром. пр-во оздоровленного посадочного материала плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур. М., 2001.

43. Кузнецова Т.А., Кириченко Е.Б. Стимуляция формирования побегов и корней регуляторами роста при микроклональном размножении роз. // VIII Всесоюзная конференция по регуляторам роста. Киев, «Наукова Думка», 1989. с. 243.

44. Кузьмина H.A. Потапова O.A. Культивирование меристем различных сортов роз in vitro. // Естественные науки и экология: Ежегодник. Омск, 2000. Вып. 5 с. 38-39.

45. Кулаева О.Н., Силина Е.И., Курсанов А.Л. Пути первичного усвоения аммонийного азота в корнях тыквы. // Физиол. растений. 1957. №4.-с. 520-528.

46. Курбонмамадова С.А., Мамадризохонов A.A. Проблема семенного размножения шиповника. // IV съезд О-ва физиологов астений России: Тез. докл. -М. 1999. т. 2. - с. 615.

47. Курсанов А.Л. Корневая система растений как орган обмена веществ. // Известия АН СССР, серия биол. 1957. № 5. с. 689705.

48. Курсанов А.Л. Круговорот органических веществ в растении и деятельность корневой системы. // Вопросы ботаники. 1954. № 1. -с. 131-141.

49. Курсанов А.Л. Метаболизм первичной ассимиляции ионов и теория клеточных переносчиков. // Известия АН СССР, серия биол. 1962. №5.-с. 740-753.

50. Курсанов А.Л. Транспорт ассимилятов в растении. М. изд. «Наука». 1976.

51. Курсанов A.Jl. Выскребенцева Э.И. Первичное включение фосфата в метаболизм корней. // Физиол. растений. 1960. № 7. с. 276-286.

52. Лазарев М.И. Война с витаминным голодом. Опыт участия. // Пищевая промышленность. 2002. № 2. 80 с.

53. Леонченко В.Г., Жбанова Е.В. Пищевая и биологическая ценность плодов нетрадиционных садовых растений. // Состояние и перспективы развития нетрадиционных садовых культур. Воронеж 2003. с. 202-207.

54. Магомедов Г.О., Мирошникова Т.Н., Абдулгалимова О.В. Полуфабрикаты из шиповника и сроки годности жироёмких изделий. // Кондитерское производство. 2003. № 4. с. 26-27.

55. Мамадризохонов A.A., Коровин С.Е. О калусообразовании видов рода Rosa L. // IV съезд физиологов растений России: Тез. док. -М. 1999 Т.2.-С. 627-628.

56. Метлицкая К.И. Вирусные и вирусоподобные болезни косточковых пород и пути оздоровления от них насаждений. // Пром. пр-во оздоровленного посадочного материала плодовых, ягодных и чветочно-декоративных культур. М., 2001.

57. Миронова O.A. Микроклональное размножение крыжовника. // Сб. «Проблемы вегетативного размножения в садоводстве». М. 1985.-с. 102-106.

58. Мичурин И.В. Избранные сочинения // М. 1948.-е. 791.

59. Олешко Е.В., Трушечкин В.Г., Высоцкий В.А. Размножение клоновых подвоев вишни. // Садоводство. 1983. № 3. - с. 20-21.

60. Орлов П.Н. Особенности размножения зелёными черенками садовых роз в связи с происхождением их сортов. // Автореферат дисс. на соискание учёной степени кандидата биологических наук. М., 1973.

61. Петрова В.П. Дикорастущие плоды и ягоды. М. Лесная пр-сть, 1987.-248 с.

62. Попов Ю.Г. Высоцкий В.А. Культура стеблевых верхушек in vitro, как метод ускоренного размножения плодовых и ягодных растений. // Вестник сельскохозяйственной науки. 1978. № 4. -с. 124-127.

63. Попов Ю.Г., Высоцкий В.А., Трушечкин В.Г. Культура изолированных стеблевых верхушек вишни. // Физиология растений.-1976.-Т. 23.- № 3. с. 513-518.

64. Причко Т.Г. Нетрадиционные и дикорастущие культуры Северного Кавказа. // Состояние и перспективы развития нетрадиционных садовых культур. Воронеж 2003. с. 211-216.

65. Пухирь Ю.Н. Размножение роз и других декоративных растений зелёными черенками в условиях южной лесостепи УССР. // Автореферат дисс. на соискание учёной степени кандидата биологических наук. М., 1974.

66. Реактивы для биохимии и исследований в области естественных наук. // Каталог корпорации Сигма-Алдрич 2004-2005 г.

67. Родэ В.В., Аляутдинова Р.Х., Екатеринина JI.H., Рыжков О.Г., Мотовилова JLB. Стимуляторы роста растений из бурых углей. //

68. B. сб.: Гуминовые вещества в биосфере. М. «Наука». 1993. с. 157-162.

69. Роль кальция в механизме действия фитогормонов. / Медведев

70. C.С. // 6-ая Международная конференция «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях». Москва. 26-28 июня 2001: Тез. докл. с. 51.

71. Сабинин Д.А. О значении корневой системы в жизнедеятельности растений. // Тимирязевские чтения. М. изд. АН.СССР. 1949. № 9., с 47.

72. Селен адаптоген и стимулятор роста растений. / Блинохватов А.Ф. Вихрева В.А. Хрянин В.Н. // 6-ая Международная конференция «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях». Москва. 26-28 июня 2001: Тез. докл. - с. 82.

73. Современная лаборатория // Каталог фирмы «Диа ЭМ» от 2001 г.

74. Современные прогуматы. / Алейников И.Н. // 6-ая Международная конференция «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях». Москва. 26-28 июня 2001: Тез. докл. -с. 77.

75. Стрелец В.Д. Агафонов Н.В. и др. Методические рекомендации по селекции шиповника (Rosa L.): Для студентов и аспирантов плодоовощного факультета МСХА. // ТСХА, НПО Всерос. НИИ лекарств. Растений М., Изд-во МСХА. 1994.

76. Стрелец В.Д. Биологические особенности промышленных сортов шиповника и разработка технологии их выращивания. // Автореферат диссертации на соискание учёной степени доктора с.-х. наук.: 06.01.07. М., Изд-во МСХА. 2000. 43 с.

77. Сушков К.Л., Бесчётнова М., Михнева Т. Под водяным светофильтром.//Цветоводство № 1. 1967.

78. Сурина Е.И., Сурина О.Б. Розы. // «Олма-Пресс Звёздный Мир». М. 2002.

79. Тарасенко М.Т., Новиков П.Г., Прохорова З.А. Интенсификация технологии зелёного черенкования декоративных культур в условиях Южного берега Крыма // Изв. ТСХА. 1977. Вып. 6. с. 95-105.

80. Турсин Г.С. и сотрудники. Выращивание саженцев шиповника методом зелёного черенкования. Методические рекомендации. // Симферополь. 1990. 23 с.

81. Тутунова Ш.М. Размножение суперэлитного материала земляники с помощью метода культуры меристем. // Автореферат диссертации на соискание учёной степени кандидата с.-х. наук.: 06.01.07. М. 1980. 23 с.

82. Упадышев М.Т. Высоцкий В.А. Размножение ежевики и малины чёрной методом культуры тканей. // Садоводство и виноградарство 1991. № 6. - с. 24-27.

83. Усенко Н.В. Деревья, кустарники и лианы Дальнего Востока. // Хабаровское кн. издательство. 1969. 416 с.

84. Физиологическая активность продуктов трансформации лигнина, / Комаров A.A. // 6-ая Международная конференция «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях». Москва. 26-28 июня 2001: Тез. докл. с. 101.

85. Холодовая адаптация озимой пшеницы в связи с действием салицилата. / Воловник И.Л., Асафова Е.В., Роматова С.А. // 6-ая Международная конференция «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях». Москва. 26-28 июня 2001: Тез. докл. -с. 19.

86. Хржановский В.Г. Розы. Филогения и Систематика. Спонтанные виды Европейской части СССР, Крыма и Кавказа. Опыт и перспективы использования. М., «Сов. Наука». 1958.

87. Шипунова A.A. Высоцкий В.А. Повышение укореняемости побегов миниатюрной розы при размножении in vitro. //

88. Плодоводство и ягодоводство России. М.: 2006. - Т 15., - с. 1315.

89. Шувалова О.П. Доктор шиповник. // СПб.: Невский проспект., 2001.- 122 с.

90. Эол. О.Х., Калашникова Е.А. Влияние антиоксидантов на развитие эксплантов вишни. // Проблемы дендрологии, садоводства и цветоводства. Ялта, 1995, с. 129-130.

91. Эффективность комплексного применения гумата калия и микроэлементов на растениях томатов. / Блинова З.П. // 6-ая Международная конференция «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях». Москва. 26-28 июня 2001: Тез. докл. -с. 81-82.

92. Эффективность применения гумата калия удобрительного на озимой пшенице. / Шаповал O.A., Чернышёва Н.В. // 6-ая Международная конференция «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях». Москва. 26-28 июня 2001: Тез. докл. -с. 293.

93. Юдинцева Е.В. Корнесобственные розы. // Интродукция и приёмы культуры цветочно-декоративных растений. M.: Бот. сад АН СССР. 1977.-с. 140-149.

94. Abbott Aj. Practice and promise of micropropagation of woody species.//Acta Hort. 1978. №79.-p. 113-127.

95. Abdulnour J., Arnold N.P., Barthakur N.N. Uptake of labelled phosphorus by rooted and non-rooted in vitro cultured 'John Franklin' rose.//J. Plant Nutr. 1994. № 17. v. 2&3.-p. 333-343.

96. Alderson P.G., McKinless J., Rice R.D. Rooting of cultured rose shoots.//Acta Hortic. 1988. № 226.-p. 175-182.

97. Avramis T., Hugard J., Jonard R. Exaltation des potentialités rhizogenes de pousses feuillées de rosier multipliées in vitro. // C. R. Acad. Sci. Paris. 1982. № 294.: 679-682.

98. Avramis T., Hugard J., Jonard R. La multiplication in vitro du rosier porte-greffe Rosa indica major. // С. R. Acad. Sci. Paris. 1982. № 294.: 63-68.

99. Ault J., Blackmon W. In vitro propagation of Ferocactus acanthoides (Cactaceae). // HortScience. 1987. № 22. v. 1.

100. Badzian T., Hennen G.R., Fotyma-Kern J. In vitro rooting of clonal propagated miniature rose cultivars. // Acta. Hortic. 1991. № 289. p. 329-330.

101. Barber D.A. "Dual isotherms" for the absorption of ions by plant tissues. // New Phytol. 1972. № 71. p. 255-262.

102. Baraceló-Muñoz A., Encina C.L., Simón-Pérez E., Pliego-Alfaro F. Micropropagation of adult avocado. // Plant Cell Tissue and Organ Culture. 1999. № 17.-p. 11-17.

103. Bell C.W., Biddulph O. Translocation of calcium: Exchange versus mass flow.//Plant Physiol. 1963. №38. -p. 610-614.

104. Bilkey P.C., McCown В., Hildebrandt A.C. Micropropagation of African violet petiole cross-section. HortScience. 1978. № 13.: 37-38.

105. Bini G., Leva A.R.C., Nicese F.P. Richere sulla micro propagazione della rosa. // Riv Ortoflorofrutt Ital. 1983. № 67.: 1-13.

106. Bjarnason E.N., Hanger D.C., Moran J.R., Cooper J.A. Production of Prunus necrotic ringspot virus free roses by heat treatment and tissue culture.//N.Z.J. Agric Res. 1985. №85.-p. 151-156.

107. Brainerd K.E., Fuchigami L.J. Acclimatization of aseptically cultured apple plants to low relative humidity. // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1981. № 106.-v. 4.-p. 515-518.

108. Bressan P.H., Kim Y.J., Hasegawa P.M. Plant regeneration from cultured rose shoot tips.//HortScience. 1980. № 15.-p. 432-433.

109. Bressan P.H., Kim Y.J., Hyndman S.E., Hasegawa P.M., Bressan R.A. Factor affecting in vitro propagating of rose. // J. Am Soc. Hortic Sci. 1982. № 107.-p. 979-990.

110. Capellades M., Fontarnau R., Carulla C., Debergh P Environment influences anatomy of stomata and epidermal cells in tissue cultured Rosa multiflora. // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1990. № 115. v. 1. - p. 141-145.

111. Christine A Webster, Jones O.P. Micropropagation of apple rootstock M.9: effect of sustained subculture on apparent rejuvenilisation in vitro. //J. Hortic. Science. 1989. № 64. v. 4. - p. 421-428.

112. Clarkson D.T. Sanderson J. Inhibition of the uptake and long-distance transport of calcium by aluminium and over polyvalent cations. // J. Exp. Bot. 1971. №23.-p. 837-851.

113. Collander R. The permeability of plant protoplast to small molecules. //Physiol. Plant. 1949. № 13.-p. 1471-1479.

114. Collet G.F. Enracinement amélioré lors de la production in vitro de rosier. // Rev Suisse Vitic Arboric Hortic. 1985. № 17.: 259-263.

115. Davies D.R. Rapid propagation of roses in vitro. Sci. Hortic. 1980. № 13.-p. 385-389.

116. Delbard H. Micropropagation of roses at Delbard nurseries. // Plant Prop. 1982. №28.-p. 7-8.

117. De Profit M.P., Van den Broek G., De Greef J.A. Involvement of ethylene on senescence and vitrification of in vitro cultured miniroses. // Acta Hortic. 1987. № 212. p. 217-222.

118. Die I. van On the synthesis of carboxylic- and amino acid in the roots and their transport to aerial parts of tomato plant. // Proc. Koninkl. nederl. Akad. Wet., Sec. C. 1959. № 62. p. 505-517.

119. Donnelly D.J., Skelton F.E. Comparison of hydathode structure in micropropagated plantlets and greenhouse-grown "Queen Elizabeth" rose plants. //J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1989. T 114. № 3. p. 841-846.

120. Dubois L.A.M., Roggemans J., Soyeurt G., De Vries D.P. Comparison of the growth and development of dwarf rose cultivars propagated in vitro and in vivo by softwood cuttings. // Sci. Hortic. 1988. № 35. p. 293-299.

121. Dunlop J., Bowling D.J.F. The Movement of the ions to the xylem exudate of maize root. // J. Exp. Bot. 1971. № 22. p. 434-444.

122. Elliott R.F. Axenic culture of meristem tips of Rosa mutiflora. // Planta. 1970. №97.: 183-186.

123. Fritsch F.E., Salisbury E. Plant form and function. Bell., London. 1953.

124. Fuchigami L.H., Cheng T.Y., Soeldner A. Abaxial transpiration and water loss in aseptically cultured plum. // J. American Soc. Hortic Sci. 1982. № 106.-v. 4.-p. 519-522.

125. Gavinlertvantana P., Read P.E., Wilkins H.F., Heins R. Ethylene levels in flask atmospheres of Dahlia pinnata Cav. leaf segments and callus cultured in vitro. // J. American Soc. Hortic Sci. 1982. № 107. p. 3-6.

126. Ghashghaie J., Brenckmann F., Saugier B. Effects of agar concentration on water status and growth of rose plant cultured in vitro. // Physiol. Plantarum. 1991. № 82. p. 73-78.

127. Ginsig U., Zwygart T. Morphologische unterschiede zwischen blattern von pflanzen aus in vitro und ex vitro kultur. // Erwerbsobstbau 1995. №37/1.: 23-26.

128. Goldstein D.A., Solomon A.K., Determination of equivalent pore radius for human red cells by osmotic pressure measurement.// J. Gen. Physiol. 1960. №44.-p. 11-17.

129. Graifenberg A. Coltura in vitro embrioni e di parti de seme in Rosa canina. // Riv. Ortoflorofrutt Ital. 1973. № 5. p. 374-380.

130. Hasegawa P.M. In vitro propagation of rose. // HortScience. 1979. № 14.: 610-612.

131. Hasegawa P.M. Factor affecting shoot and root initiation from cultured rose shoot tips. // J. Am Soc Hortic Sci. 1980. № 105.: 216-220.

132. Hinke J.A.M. Glass microelectrodes for measuring intracellular activities of sodium and potassium. // Nature. 1959. № 184. p. 12571258.

133. Hoagland D.R. Davis A.R. The uptake and accumulation of electrolytes by plant cells. // Protoplasm. 1929. № 6. p. 610-626.

134. Horan I., Walker S., Roberts A.V. Mottley J., Simpkins I. Micropropagation of roses: The benefits of pruned mother-plantlets at stage II and greenhouse environment at stage III. // J. Hort. Sci. 1995. № 70. v.5. - p. 799-806.

135. Horn W.A.H. Micropropagation of rose. // High Tech. 1992. v.2. - p. 322-342.

136. Horn W., Schlegel G., John K. Micropropagation of roses. // Acta Hortic. 1988. №226.: 623-626.

137. Hyndman S.E., Hasegawa P.M., Bressan R.A. The role of sucrose and nitrogen in adventitious root formation on cultured rose shoot. // Plant Cell Tissue and Organ Cult. 1982. № 1. p. 229-238.

138. Hyndman S.E., Hasegawa P.M., Bressan R.A. Stimulation of root initiation of cultured rose shoot through the use of reduced concentration of mineral salts. // Hort Science. 1982. № 17. p. 82-83.

139. In vitro propagation of rose: effect of cytokinin, sucrose, agar and pH on shoot proliferation. / Ära K.A., Sharifuzzaman S.M., Hossain M.M. // Bangladesh J. Agril. Res. 1999 24 № 2 - c. 265-274.

140. In vitro regeneration of shoots fro callus of Rosa x hybrida L. cv. 'Landera'. / Rout G.R., Debata B.K., Das P. // Indian J. Exp. Biol. 1992,-30, № l.p. 15-18. Англ.

141. Isermann K. Der Einfluss von chelatoren auf die Ca-aufnahme und Ca-verlagerung die höheren pflanze. // Z. Pflanzenr. Bodenkunde. 1971. № 128.: 355-362.

142. Ivanko S., Inguerson J. Chemical composition of exudate from maize roots. // Physiol. Plant. 1971. № 24. p. 355-362.

143. Jacobs G., Alan P., Bornman C.N. Tissue culture studies on rose: use of shoot tip explants. III. auxin:gibberellin effects. // Agroplantae. 1970. №2.: 45-50.

144. Khosh-Khui M., Sink K.C. Micropropagation of New and Old World rose species. // J Hortic Sei. 1982. № 57.: 315-319.

145. Khosh-Khui M., Sink K.C. Rooting enhancement of Rosa hybrida for tissue culture propagation. // Sei Hortic. 1982. № 17.: 371-376.

146. Khosh-Khui M., Sink K.C. Callus induction and culture of Rosa. // Sei Hortic. 1982. № 17.: 361-370.

147. Korban M., Donnelly D.J. Performance of micropropagated 'Queen Elisabeth' rose following mechanically induced stress. Hort Science. 1994. № 29.-v. l.-p. 20-21.

148. Kyte L., Klein J. Plant from test tubes. An Introduction to micropropagation. Third edition. Timber press, Portland, Oregon 1999.

149. Langford P.J., Wainwright H. Influence of sucrose concentration on the photosynthetic ability of in vitro grown rose shoot. // Acta Hortic. 1988. №227.: 305-310.

150. Leffring L., Skovdogaard M., Esendam H. Weefselkweek bij roos. // Bloem OndersNed., Alasmeer. 1984.: 364-365.

151. Malcolm R.L., MacCarthy P. Limitation in the use of commercial HA in water and soil research. // Environ. Sci. Technol. 1986. № 20. p. 904-911.

152. Marcelis-van Acker C.A.M., Scholten H.J. Development of axillary buds of rose in vitro. // Sci. Hort. 1995. № 63. p. 47-55.

153. Martin C., Carré M., Vernoy R. La multiplication végétative in vitro des végétaux ligneux cultivés. // C.R. Acad. Sci Paris. 1981. № 293.: 175-177.

154. McGranahan G.H., Driver J.A., Tulecke W. Tissue culture of Juglans. In cell and tissue culture in forestry. // Dordrecht, Netherlands: Martinus-Nijhoff. 1987.

155. Morton R.A. Fat soluble vitamins. Pergamon. 1970.

156. Mothes K., Engelbrecht L. Uber allantoinsaure und allantoin. I. Ihre rolle als wanderform des stickstoffs und ihre besiehungen zum eiweisstoffwechsel des ahorns. // Flora. 1952. № 139.: 585-591.

157. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 1962. № 15.: 473-497.

158. Oswald T.H., Smith A.E., Phillips D.V. Callus and plantlet regeneration from cell cultures of ladino clover (Trifolium repens 'Royal Ladino') and soybean (Glycine max). // Phisiologia Plantarum. 1977. №39. -p. 129-134.

159. Parthasarathi Bhattacharya, Satyahari Dey & Bimal Chandra Bhattacharya. Use of low-cost gelling agents and support matrices for industrial scale plant tissue culture. // Plant Cell Tissue & Organ Cult. 1994. №37.-p. 15-23.

160. Piccolo A., Pietramellara G., Mbagwu J.S.C. Use of humic substance as soil conditioners to increase aggregate stability. // Geoderma. 1997. Vol. 75. №3/4.-p. 267-277.

161. Piccolo A., Celano G., Pietramellara G. Influence of humic acid on laurel growth, associated rhizospheric microorganism and mycorrhizal fungi.//Biol. Fertil. Soils. 1993. № 16.-p. 11-15.

162. Pitman M.G., Mertz S.M., Graves J.S., Pierce W.S., Higinbotham N. Electrical potential difference in cells of barley roots and their relation to ion uptake. // Plant Physiol. 1970. № 47. p. 76-80.

163. Pittet H., Moncousin C. La micropropagation in vtro du rosier. // Rev Hortic Suisse. 1982. № 55.: 67-70.

164. Podwyszynska M., Hempel M. The factors influencing acclimatization f Rosa hybr. Plants multiplied in vitro to greenhouse condition. // Acta. Hortic. 1988. №226.: 639-642.

165. Podwyszynska M., Olszewski T. Influence of gelling agents on shoot multiplication and uptake of macroelements by in vitro culture of rose cordyline and homalomena. // Sci. Hortic. 1995. № 64.: 77-84.

166. Propagation in vitro del portaingerto Rosa x noisettiana. cv. 'Monettia' partir de yemas axilares. / Lozoya H.S., Burgarin M.R. // Rev. chapigno. // Реф. ж. Биол. Физиол. и Биохим. раст. 1992. 16, № 78. - с. 39-44. - Исп.; рез. Англ. автореф. Рус.

167. Rozmnazanie podkladki Rosa manetti w kulturach in vitro. / Kucharska D., Golis A., Podwyzynska M., Wisniewska-Grzeszkiewicz H., Orlikowska T. // Zeszyty naukowe. Institutu sadownictwa I kwiaciarstwa. 2000. T. 7. c. 365-373.

168. Sauer A., Walter F., Preil W. Different suitability for in vitro propagation of rose cultivars. // Gartenbauissuscraft. 1985. № 50.: 133138.

169. Skirvin R.M., Chu M.C. In vitro propagation of Forever Yours rose. HortScience. 1979. № 14.: 608-610.

170. Skirvin R.M., Chu M.C. Propagation of rose with tissue culture. // III. Res. № 21.: 3.

171. Skirvin R.M., Chu M.C. Root and shoot formation from Forever Yours rose in vitro. HortScience. 1979. № 14.: 457 (abstr. on 455).

172. Smith F.A. Active phosphate uptake by Nitella translucens. // Biochim. Biophys. Acta. 1966. № 126. p. 94-99.

173. Smith R.H. In vitro propagation of Nandina. // Hort Science. 1983. № 18.-p. 304.

174. Somatic embryogenesis & generation of flowering plants in rose. / de Wit Joyce C., Esendan Harald F. et al. // Plant cell Repts. 1990. 9 № 8ю-p. 456-458. Англ.

175. Spanswick R.M. Electrophysiological techniques and magnitudes of membrane potentials and resistance in Nitella Translucens. // J. Exp. Bot. 1970. №21. p. -617-627.

176. Starling R. In vitro propagation of Leuchtenbergia princeps. // Cactus & Succulent J. 1985. №57.

177. Stein W.D. The Movement of Molecules across Cell Membrans. // Academic Press, N.Y. and London. 1967.

178. Vallini G., Pera A., Avio L., Valdrighi M., Giovanetti M. Influence of humic acid on laurel growth, associated rhizospheric microorganism, andmycorrhizal fungi.//Biol. Fertil. Soils. 1993. № 16.-p. 1-4.

179. Valles M., Boxus P. Micropropagation of several Rosa hybrida cultivars.//Acta. Hortic. 1987., №212.: 611-617.

180. Valles M., Boxus P. Regeneration from Rosa callus. // Acta. Hortic. 1987., №212.: 691-696.

181. Vaughan D., B.G. Ord, and R.E. Malcolm. Effect of soil organic matter on some root surface enzymes of and uptake into winter wheat. // J. Exp. Biol. 1978. № 29. -p. 1337-1344.

182. Voyiatzi C. An assessment of the in vitro germination capacity of pollen grains of five tea hybrid rose cultivars. // Euphytica. 1995. № 83.-p. 199-204.

183. Voyiatzi C. Voyiatzis D.G., Tsiakmaki V. In vitro shoot proliferation rates of the rose cv. (hybrid tea) 'Dr. Verhage', as affected by apical dominance regulating substances. Sci. Hortic. 1995. № 61. p. 241249.

184. Walker N.A. Microelectrode experiments on Nitella. // Aust. J. Biol. Sei. 1955. № 8.-p. 476-489.

185. Walker N.A., Hope A.B. Membrane fluxes and electric conductance in Characean cells. // Aust. J. Biol. Sei. 1969. № 22. p. 1179-1195.

186. Walter R.J., Kamp M., Smith R.H. In vitro propagation of Rosa chinensis Jacq. Red Cascade. // J. Rio Grande Vial Hortic Soc. 1979. № 33. -p. 125-127.

187. Wang A. Callus induction and plant regeneration of American ginseng // Hort Science. 1990. № 25. p. 5.

188. Wulster G., Sacalis J. Effects of auxins and cytokinins on ethylene evolution and growth of rose callus in sealed vessels. // Hort Science. 1980. № 15.-p. 736-737.

189. Xiangfu Gao, Tianyong Gao. In vitro propagation of Rosa roxburghii. // Acta Hortic. Sinica. 1994. vol. 21. № 3. p. 235-238.