Классическая чума свиней: территориальное распределение и анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.03, кандидат ветеринарных наук Стариков, Александр Михайлович

• Стариков, Александр Михайлович
• кандидат ветеринарных наук
• 2005

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Стариков, Александр Михайлович

1. ВВЕДЕНИЕ.

1.1. Актуальность работы.

1.2. Цель и задачи исследований.

1.3. Научная новизна. л 1.4. Практическая значимость и реализация результатов исследований.

1.5. Апробация работы.

1.6. Публикации.

1.7. Основные положения диссертационной работы, выдвигаемые на защиту.

1.8. Личный вклад соискателя.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1. Классическая чума свиней: вирус, болезнь, диагностика и специфическая профилактика.

2.1.1. Современная таксономия, патогенность вируса.

2.1.2. Болезнь, патогенез, иммунитет.:

2.1.3. Лабораторная диагностика.

2.1.3.1. Обнаружение вируса и вирусного антигена.;.

2.1.3.2.0бнаружение вирусспецифических антител.

2.1.4. Вакцины.

2.2. Современные особенности эпизоотического процесса классической чумы свиней.

2.2.1. Глобальная эпизоотическая ситуация в мире и странах ЕС.

2.2.2. Основные эпизоотологические показатели КЧС в РФ.

2.2.2.1. Инцидентность и географическое распространение КЧС среди домашних свиней.2i

2.2.2.2. Эпизоотология КЧС среди кабанов.

2.2.3. Источники и пути передачи вируса КЧС.

2.3. Стратегии борьбы с классической чумой свиней.

2.3.1. Контроль КЧС среди домашних свиней в Европе.

2.3.2. Стратегия без применения вакцинации.

2.3.3. Альтернативная стратегия, основанная на «не-вакцинации».

2.3.4. Стратегия, включающая чрезвычайную вакцинацию.

2.3.5. Меры борьбы с КЧС среди диких кабанов.

3.0. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3.1. Материалы и методы.

3.1.1. Материалы.

3.1.1.1.Виру

3.1.1.2. Вакцины.

3.1.1.3. Животные.

3.1.1.4. Культуры клеток.

3.1.1.5. Питательные среды, сыворотка.

3.1.1.6. Основные реактивы, приборы.

3.1.2. Методы.-.

3.1.2.1. Основные методы эпизоотологического исследования.

3.1.2.2. Методы учёта количества и плотности обитания кабанов.

3.1.2.3. Методы лабораторной диагностики классической чумы свиней.

3.1.2.4. Методы определения напряжённости иммунитета против классической чумы свиней.

3.1.2.5. Определение форм течения болезни.

3.1.2.6. Статистические методы обработки результатов.•.

3.2. Результаты исследований.

3.2.1. Природно-географические и экономические условия развития свиноводства Волгоградской области, имеющие эпизоотологическое значение при 1 классической чуме домашних свиней и диких кабанов.

3.2.2. Локализация и популяция диких кабанов.

3.2.3. Эволюция классической чумы среди домашних свиней и диких кабанов.47 •

3.2.3.1. Общая эпизоотическая ситуация и главные индикаторы проявления классической чумы свиней в период с 1980-2003 г.г. в РФ и Волгогра- • декой области.

3.2.3.2. Районированние, инцидентность и географическая локализация t . вспышек КЧС среди домашних свиней и диких кабанов.

3.2.4. Эпизоотологические и клинико-патологические характеристики вспышек классической чумы свиней в свиноводческих хозяйствах с различной плотностью содержания животных.

3.2.5. Эпизоотологическая характеристика вспышки классической чумы свиней в свинокомплексе промышленного типа ( ЗАО «Краснодонский»).

3.2.5.1. Общая производственно-экономическая характеристика хозяйства.

3.2.5.2. Обнаружение вспышки КЧС.

3.2.5.3. Ретроспективные эпизоотологические исследования.

3.2.5.4. Исследование напряжённости поствакцинального иммунитета у свиней против классической чумы.

3.2.6. Вирусологический мониторинг, установление источников вируса КЧС в неблагополучных хозяйствах и путей его передачи.

3.2.7. Экономический ущерб и эффективность стратегии ликвидации КЧС в свинокомплексах закрытого типа.

3.2.8. Вспышки КЧС среди диких кабанов с передачей вируса домашним свиньям и противоэпизоотические мероприятия.

3.2.9. Усовершенствование ветеринарно-санитарных мероприятий против КЧС

4. Обсуждение.lOf)

5. Выводы.

6. Практические предложения.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Классическая чума свиней: территориальное распределение и анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области»

1.1. Актуальность работы

Благодаря огромным усилиям, прилагаемым государственной ветеринарной службой для контроля классической чумы свиней (КЧС) к концу 90-х годов 20-го века число вспышек в РФ значительно сократилось - с 67 в 1995 г, до 6 и 1 в 2003 и 2004 годах соответственно. Несмотря на сложившуюся в последние годы благоприятную эпизоотическую ситуацию КЧС по-прежнему представляет наибольшую экономическую опасность для стабильного ведения свиноводства во всех типах хозяйств и в первую очередь, промышленных свинокомплексах. Так, за период развития индустриального ' t л „ . свиноводства и применение стратегии систематической вакцинации, вирус I был занесён в 17 крупных свиноводческих хозяйств и комплексов с поголовьем от 50 до 216 тыс. голов. Это указывает на то, что существующие меры ветеринарно-санитарных и профилактических мероприятий пока не обеспечивают гарантированную защиту свиноводческих хозяйств от заноса вируса.

Данные эпизоотологических наблюдений свидетельствуют о длительной циркуляции вируса КЧС у свиней в крупных свинокомплексах и среди диких кабанов, приводящей к стационарности и природной очаговости болезни (15, 28, 45), при этом возможный период времени и все механизмы сохранения вируса в указанных популяциях точно не установлены и полностью неизвестны.

Волгоградская область является крупнейшим аграрным регионом южного федерального округа страны, где свиноводство является одной из наиболее важных отраслей животноводства. За период 1992 - 2003 гг. была установлена 21 вспышка КЧС в племенных, средних и мелкотоварных кресть-янско-фермерских хозяйствах и свинокомплексе ЗАО «Краснодонский», которые значительно осложнили эпизоотическую ситуацию и производственно-экономические отношения, поэтому актуальность болезни для ветеринарной службы и производителей свинины в области очевидна.

Заключение диссертации по теме «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», Стариков, Александр Михайлович

5. Выводы

1. Ретроспективный анализ инцидентности вспышек КЧС, периодов неблагополучия 18 районов и годовых показателей превалентности на 100 тыс. животных свидетельствуют о значительных масштабах распространения и энзоотичности болезни на территории Волгоградской области.

2. Установленная связь между количеством вспышек и типом свиноводческих хозяйств показала, что наиболее высокий риск заноса вируса КЧС имеет место для открытых крестьянско-фермерских (88,1%), невысокий (5,1-5,9%) для закрытых специализированных и самый низкий (2%) для племенных.

3. В изолированных свиноводческих хозяйствах закрытого типа интенсивные эпизоотологические показатели отличаются от таковых в открытых, крестьянско-фермерских. Так в последних, заболеваемость, смертность и летальность значительно выше и составляет 25%, 14,5% и 58,6%, и 14%, 4% и 31% соответственно.

4. Уровни эпизоотологических показателей при вспышках болезни в популяциях свиней с высокой плотностью (в хозяйствах закрытого типа) часто не совпадают с клиническими симптомами и патолого-анатомическими изменениями, что значительно влияет на интервал между заносом вируса в хозяйство и подозрением КЧС. В хозяйствах открытого типа он составлял 1-2 недели, в хозяйствах закрытого типа - от 3-5 недель до 4-х месяцев, что в целом, влияет на время постановки окончательного диагноза и эффективность противоэпизоотических мероприятий.

5. При проведении противоэпизоотических мероприятий в неблагополучном по КЧС промышленном свинокомплексе однократная экстренная вакцинация в дозе 10000 ИмД50/Животное с частичным убоем свиней в неблагополучных помещениях имеет лишь кратковременное положительное влияние (около 2-х месяцев), но не предотвращает циркуляцию полевого вируса.

6. Положительная линейная регрессия между смертностью и количеством восприимчивых поросят даёт основание считать низкую популяцион-ную устойчивость (40% и ниже) фактором эпизоотологического риска для возникновения КЧС в случае заноса полевого вируса и одной из причин вторичных вспышек, как в угрожаемой зоне (очаге), так и в зонах наблюдения.

7. Из всего количества первичных вспышек КЧС, установленных в Волгоградской области в 1981-2004 гг. лидирующими факторами заноса КЧС в хозяйства закрытого типа были передача вируса контаминированным транспортом (13%) и закупка инфицированных ремонтных свиней (6%); в хозяйства открытого типа - скармливание необезвреженных помоев (28%), контакт с обслуживающий персоналом (6%) и связь с инфицированными дикими кабанами (13%).

8. Установленные вспышки КЧС среди диких кабанов обусловили новый региональный эпизоотологический фактор риска для домашних свиней и организацию проведения противоэпизоотических мероприятий для предотвращения природной очаговости болезни на территории Волгоградской области.

9. Основные положения усовершенствования стратегии профилактики и ликвидации КЧС в закрытых хозяйствах (свинокомплексах) должны включать:

- для благополучных - регулярные вирусологические диагностические исследования и серологический мониторинг популяционного иммунитета у репродуктивных животных и поросят групп доращивания;

- для неблагополучных - увеличение срока карантина до 2- месяцев и выполнение режима вакцинации при использовании повышенных доз

300 ИмД 5о/животное) в течение периода карантина и не менее 6-ти месяцев после его отмены с соблюдением необходимых ветеринарно-санитарных огра

6. Практические предложения:

- «Рекомендации по профилактике и мерам борьбы с классической чумой свиней в свиноводческих хозяйствах (предприятиях) и среди диких кабаР нов на территории Волгоградской области», утверждённый начальником Управления ветеринарии Волгоградской области 11.11.2004 г, которые используются ветеринарными специалистами областного и районного звена при ежегодном планировании противоэпизоотических мероприятий против инфекционных болезней животных;

- схема мониторинга КЧС при подозрении и установлении болезни (в период карантина и посткарантинный период) в промышленных свиноводческих комплексах.

Заключение

Классическая чума свиней (КЧС) - высоко контагиозная мультиси-стемная геморрагическая вирусная болезнь свиней, которая может проявляться в виде острого, подострого или хронического, медленного течения, но может также протекать не замеченной. Существующая стратегия вакцинации и карантина, как основных противоэпизоотических мероприятий, в целом влияет на поддержание относительного благополучия области (и страны) по КЧС, но полностью не ограничивает распространение вируса среди популяции домашних свиней и кабанов и энзоотичность болезни является актуальной проблемой. Пока трудно предсказать, как будет развиваться эпизоотология КЧС в будущем, но имеющийся опыт борьбы и полученные результаты, обосновывающие проведение постоянного мониторинга, увеличение прививной дозы, периода вакцинации и срока карантина в благополучных хозяйствах и при вспышках КЧС в комбинации с регулярной оральной вакцинацией кабанов, могут быть базой для совершенствования нормативных документов и разработки государственной программы предотвращения распространения вируса, а в будущем, полной ликвидации КЧС на территории Волгоградской области и в целом по стране.

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Стариков, Александр Михайлович, 2005 год

1. Бабкин В.М. Особенности течения, диагностики и профилактики классической чумы свиней: дис. . канд. вет. наук: 16.00.03. Покров, 1993.- 131 с.

2. Бакулов И.А., Книзе А.В, Котляров В.М. и др. Система эпизоотологического мониторинга особо опасных, экзотических, малоизученных, вАничений.том числе зооантропонозных болезней животных. М., 2001.- 72 с.

3. Васильев А.П. Разработка твёрдофазного иммуноферментного анализа для прямого обнаружения антигенов вируса классической чумы свиней: автореф. дис. .канд. биол. наук. Покров, 2005. - 28 с.

4. Вишняков И.Ф. Диагностика вирусных болезней животных: состояние и перспективы // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: труды международной научно практической конференции/ГНУ ВНИИВВиМ. - Покров, 1992.- С. 221-230.

5. Вишняков И.Ф. Средства диагностики вирусных болезней животных: состояние и перспективы // Классическая чума свиней неотложные проблемы науки и практики / ГНУ ВНИИВВиМ. - Покров, 1995.'-.С. 45-49.

6. Воробьёв А.В. Земельные ресурсы Волгоградской области. Волгоград: «Станица-2», 1997. -. 132 с.

7. Воробьёв А.В. Поселения Волгоградской области. Волгоград: «Ста-ница-2», 2001.-315 с.

8. Гусев А.А., Дрыгин В.В. Совершенствование диагностической работы в ветеринарных лабораториях России // Современные аспекты ветеринарной патологии животных: материалы научной конференции / ВНИИЗЖ. Владимир, 1998. - С. 14-18.

9. Джупина С.И., Прудников С.И. Особенности классической чумы свиней в Сибири // Ветеринария, 1995. №8. - С. 8-12.

10. Джупина С.И. Роль диких животных в эпизоотологии классических инфекций сельскохозяйственных животных и меры контроля эпизоотического процесса // Болезни и паразиты диких животных. М., 1992.-С. 20-26.

11. Джупина С.И. Классическая чума свиней. Эпизоотический процесс и его контроль. М., 2000. - 172 с.

12. Егоров А.Н. Опыт борьбы с болезнями диких животных и профилактика эпизоотии на охраняемой территории // Болезни и паразиты диких животных. М., 1992. - С. 50-56.

13. Жеетерев В.И., Мищанин В.А. Чурбанова Г.Н. и др. Возможность экспресс-защиты свиней от заболевания КЧС // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: материалы научной конференции / ВНИИВВиМ. Покров, 1992. - С. 104.

14. Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации классической чумы свиней: утв. Главным управлением ветеринарии МСХ СССР 30 марта 1990г.

15. Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации классической чумы диких кабанов в охотничьих хозяйствах: утв. Главным управлением ветеринарии ГК СМ СССР по продовольствию и закупкам 24 октября 1990 г.

16. Кадастр неблагополучных пунктов по классической чуме свиней в Российской Федерации (1973-1996гг.). Покров, 1997.- 36 с.

17. Коломыцев А.А., Вишняков И.Ф., Жеетерев В.И. Международное совещание по проблеме "Меры контроля классической чумы свиней в Европе среди диких кабанов"// Вестник Российской академии с/х наук.- 1998. №6. -С. 21-23.

18. Коломыцев А.А. Особенности эпизоотического процесса классической чумы свиней и совершенствование мер борьбы: дис. . д-ра вет. наук: 16.00.03 Покров, 2003. -347 с.

19. Корицкая М. А. Иммунобиологические свойства вакцинного штамма КС вируса классической чумы свиней: автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 2005. - 28 с.

20. Куриннов В.В. Эпизоотологические, клинические и диагностические исследования при классической чуме свиней // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 1999. - № 1. - С. 42-45.

21. Куриннов В.В. Средства и методы дифференциальной лабораторной диагностики классической чумы свиней // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 1999. - № 3. - С. 55-59.

22. Ломанов И.К., Борисов Б.П., Володина О.А. Ресурсы основных видов охотничьих животных и охотничьи угодья России (1991-1995 г.г.). -М., ЦНИЛ, 1996.-226 с.

23. Ломанов И.К. Численность основных видов охотничьих животных на территории Российской Федерации по данным государственной службы учёта охотничьих ресурсов России: статистические данные. М.; ЦНИЛ. - 1998.-20 с.

24. Ломанов И.К. Состояние охотничьих животных в Российской Федерации / ГУ Центрохотконтроль. М., 2004. - Вып. 6. - 213 с.

25. Лутовинов В.И. Биолого-экологический анализ охотничьих угодий и болезней диких и домашних животных Новгородской области: автореф. дис. . канд. биол. наук. Покров, 2004. - 26 с.

26. Макаров В.В., Джупина С.И., Коломыцев А.А. Классическая чума свиней-особенности эпизоотического процесса и проблемы на современном этапе // Аграрная Россия. -2001. №3. - С. 42-48.

27. Мищенко Н.К. Разработка культуральной вирусвакцины для специфической профилактики КЧС: автореф.дис. . докт. вет.наук. -М., 1981.-29 с.

28. Непоклонов Е.А. Классическая чума свиней: разработка методов лабораторной диагностики и средств специфической профилактики: автореф. дис. . докт. биол. наук. М., 2000. -46 с.

29. Николаева Н. Структура и свойства вируса классической чумы свиней: автореф. дис. . канд. биол. наук. Владимир, 1983. -20 с. .

30. Основные показатели развития животноводства Российской Федерации в 1990-2002 годах / МСХ РФ. М., 2003. -335 с.

31. Павлов В.Г. Роль ассоциативных и смешанных инфекций в патологии свиней // Вет. пробл. в промышл. свиноводстве .- Киев, 1983. С. 1920.

32. Павлов В.Х. Вирусоносительство при классической чуме свиней у домашних и диких свиней и их роль как источников возбудителя инфекции: дис. . канд. вет. наук. Покров, 1989. -215 с.

33. Панова Н.Е. Вирусоносительство у свиней в стационарном очаге классической чумы: эпизоотологические, вирусологические и иммунологические аспекты: автореф. дис. . канд. вет. наук. Новосибирск, 2001.- 17 с.

34. Попов В.И. Разработка и усовершенствование средств и способов специфической профилактики классической чумы свиней: дис. док. вет.наук: 16.00.03. Покров, 1981.-479 с.

35. Прудников С.И. Современные особенности проявления эпизоотического процесса классической чумы свиней в хозяйствах Сибири и Дальнего Востока: автореф. дис. . докт. вет. наук. Новосибирск, 1997. - 43 с.

36. Рекомендации о мероприятиях по предупреждению и ликвидации классической чумы свиней у кабанов в охотничьих хозяйствах: ут-вержд. Департаментом ветеринарии МСХ РФ 12 августа 1999г.

37. Семенихин А.Л., Вишняков И.Ф. Состояние и перспективы мер борьбы с классической чумой свиней // Классическая чума свиней неотложные проблемы науки и практики: материалы научно-практической конференции / ВНИИВВиМ. - Покров, 1995.- С. 16-22.

38. Сергеев В.А. Вирусные вакцины. Киев: Урожай, 1993. - 368 с.

39. Сергеев В.А., Непоклонов Е.А., Алипер Т.И. Классическая чума свиней в промышленном свиноводстве // Ветеринария. 2001. - № 9. - С. 10-15.

40. Сосов Р.Ф., Глушков А.А. Методические указания по применению статистических методов в эпизоотологии. М., 1974. - 67 с.

41. Состояние ветеринарного обслуживания в 1998 году. / МСХ и П РФ, Департамент ветеринарии. Москва, 1998. - 21 с. .

42. Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьёв Б.Г., Фомина Н.В. Вирусные болезни животных / ВНИТИБП. М., 1998.- 928 с.

43. Толокнов А.С., Егорова А.И., Пронин И.А. и др. Опыт ликвидации классической чумы свиней на свинокомплексе «Ильиногорский» Нижегородской области // материалы конференции посвященной 100-летию открытия вируса ящура. Владимир, 1997. - С. 103-104.

44. Хрипунов Е.М., Евсеева С.Д., Жеетерев В.И. Диагностика и профилактика классической чумы свиней у диких кабанов // Вестник охотоведения. 2004. - Т. 1. - №1. - С. 65-69.

45. Шарнин В.Н. Делаем ставку на эффективность // Промышленное и племенное свиноводство.- 2004. №1. - С. 4-9.

46. Шиков А.Т., Гришок Л.П. Экологические и эпизоотологические особенности классической чумы диких кабанов // Классическая чума свиней неотложные проблемы науки и практики: материалы научно-практической конференции / ВНИИВВиМ. - Покров, 1995. - С 37-38.

47. Albina Е. CSF epidemios surveillance in French wild boars. // Measures to Control Classical Swine Fever in European Wild Boar. Italy, Perugia, 1998. - P. 68-75.

48. Annual reports of OIE reference laboratories and collaborating centers / Office International des Epizooties. 1997. - P. 10.

49. Aynaud J.M. Edite de la multiplication "in vitro" d'un clone du virus de la peste porcine // Rech. Veter. 1968. - P. 25-36.

50. Aynaud J.M. Peste porcine classique: les facteus d'identification in vitro (marqueurs genetiques) du virus en relation avec le pouvoir pathogene pour le pore / Aynaud J.M., Galicher C., Lombard J. // Annals Rech.Vet. 1972. - Vol. 3. - P.209-235.

51. Aynaud M., Classical Swine Fever and Related Viral Infections // Martinus Nijhod. Boston, 1988. - P. 165-180.

52. Bakkali Z. Preparation of diagnostic of pestiviruses by biomolecular methods / Bakkali Z., Gonzague M., Burger C. And Cruciere. / Proc. Sec. Symp. On Pestiviruses. Lion, 1992. - P. 227- 229.

53. Batza H.J. Neue Wege einer Qberregionalen Seuchenbekampfung am Beispil der Schweinepest // Zuchtungkunde. 1996. - Vol. 68, № 6. - P; 451-468.

54. Becher P. Futher characterization of Border Disease Virus isolates: evidence for the more than three species within the genus pestivirus / Becher P., Konig M., Paton D.J., Thiel H.J. // Virology, 1995. - Vol. 209. - P. 200-206.

55. Belak S., Ballagipordany A. Application of the Polymerase Chain-Reaction (PCR) in Veterinary Diagnostic Virology // VETERINARY RESEARCH COMMUNICATIONS, 1993. - Vol. 17. - Iss. 1. - P. 55-72.

56. Biront P., Leunen J. Vaccines // Classical Swine Fever and Related Viral Infections / Biront P., Leunen J. / edited by B. Liess, Boston, 1988. - P. 181-200.

57. Bodon L. Occurrence of contaminanting viruses in various swine fever virus streins // Acta Vet. Acad. Sci. 1975. - Vol.25. - P. 291-296.

58. Bruderer U. Combined testing of serum samples for antigen and antibody yields optimal detection of classical swine fever / Bruderer U., Depner K.R., Plagemann R. // Thid ESVV Symposium on Pestivirus Infections. -Lelystad, 1996.-P. 144-147.

59. Caij A. Potential use of monoclonal antibodies recognizing structural and non-structural hog cholera virus proteins as diagnostics tools / Caij A., et al. // Proc. Sec. Symp. on Pestiviruses, Lion, 1992. - P. 219-222.

60. Caij A. Production and characterization on monoclonal antibodies against hog cholera virus / Caij A., et al. / /Arch. Virology, 1993. Vol. 131. - P. 185-192.

61. Canal C.W. Differentiation of classical swine fever virus from ruminant pestiviruses by reverse transcription and polymerase chain reaction (RT OCR) / Canal C.W., et al. // Vet. Microbiol. 1996. - Vol. 48. - P. 373379.

62. Carbrey E.A. Diagnostic procedurs // Classical Swine Fever and Related Viral Infactions, ed.by Liess B. Boston, 1988. - P.99-114.

63. Carbrey E.A. Natural infection of pigs with bovine viral diarrhea virus and its differential diagnosis from hog cholera / Carbrey E.A. et al. //Am.Vet.Med.Assoc. 1976. - Vol.169. - P. 1217-1219.

64. CEDITEST Differentiation of pestiviruses by an immunoperoxidase test, using monoclonal antibodies against hog cholera virus (classical swine fever virus-CSFV), ID-DIO. Lelystad, 1996.

65. Chenut G. Oral immunisation of swine with a classical swine fever vaccine (Chinese strain) and transmission studies in rabbits and sheep / Chenut, G, et al. // Vet. Microbiol. 1999. - Vol. 64. - P. 265-276.

66. Cole C.G. History of hog cholera research in the US Department of Agriculture 1884-1960 / Cole C.G., et al. // Agriculture Information Bulletin. -1962.-No. 241.-USDA.

67. Collett M.S., Recent Advances in Pestivirus Research / Collett M.S., et al. // J.Jen.Virol. 1989. - V.70. - part 2. - P. 253-260.

68. Collett M.S. Molecular genetics of pestiviruses / Collett M.S., et al. // Сотр. Immun. Microbiol. Infect. Dis., 1992. - Vol. 15, № 3. - P. 145-154.

69. Corthier G. Activite antigenique comparee de deux togavirus: le virus de lapeste porcine et le virus de la maladie des muqueuses / Corthier G., et al. // Ann. Rech. Vet. 1974. - Vol. 5. - P. 373-393.

70. Council Directive 2001/89 EC on Community measures for the control of Classical Swine Fever (80 12X11 EEC). Official Journal of the European Communities, L 316, 1. 12. 2001.

71. Dahle J. Neutralizing antibody development following sequential inoculation of pigs with strains of bovine viral diarrhea virus and hog cholera virus / Dahle J., Liess В., Frey H.R. // Vet. Med. 1987. - В 34. - P. 729-739.

72. Darbyshire J.H. A serological relationship between swine fever and mucosal disease of cattle // Vet.Rec. I960. - Vol. 72. - P. 331-334.

73. De las Mulas J.M. Immunohistochemical detection of hog cholera viral glycoprotein 55 in paraffin-embedded tissues / De las Mulas J.M. et al. // Vet. Diagn. Invest. 1997. - Vol. 9. - P. 16-20.

74. Degert D. Monoclonal Antibodies to Bovine Viral Diarrhea Virus Cross Reactivities to Field Isolates and Hog Cholera Virus Strains / Degert D. et al. // Can. J. Vet.Res. - 1994. - Vol. 58. - P. 71-74.

75. Dekker A. Six antigenic groups within the genus pestivirus as identified by cross-neutralisation assay / Dekker A., Wensvoort G., Terpstra C. // Vet. Microbiol. 1995.- Vol. 47, №3-4.-P. 317-329.

76. Depner K.R. Evaluation of the enzyme-linked immunosorbent assay for the rapid screening and detection of classical swine fever virus antigen in blood of pigs / Depner K.R. et al. // Rev. sci.tech. Off. int. Epiz. 1995. - №14. -P. 677-689.

77. Depner K.R. Classical swine fever in wild boar (Sus scrofa) experimental infections and viral persistence / Depner K.R. et al. //Dtsch. Tierarztl. Wochenschr. Vol. 102. - P. 381- 384.

78. Depner K.R. Sensitivity of antigen ELISA in used in the CSF diagnostics / Depner K.R. et al. // Diagnostic procedures and measures to control classical swine fever in domestic pigs and the european wild boar. Pulawy, 1996. - P. 61-63.

79. Depner K.R. Influence of breed-related factors on the course of classical swine fever virus infection / Depner K.R. et al. // Vet.Rec. 1997. Vol. 140. - P. 506-507.

80. Depner K. Survival of classical swine fever virus in the wild boar population. Measures to Control Classical Swine Fever in European Wild Boar .Italy, Perugia, 1998. P. 53. ?

81. Depner K.R., Kern, В., Liess B. Epidemiologische Relevanz der Persistenz von KSP Virus beim Schwarzwild (Sus scrofa sp.), Amtstierarztlicher Di-enst und Lebensmittelkontrolle 5 I, 1998. - P. 244-248.

82. DIAGNOSTIC PROCEDURES FOR THE CONFORMATION OF DIFFERENTIAL OF CLASSICAL SWINE FEVER // Counsul Directive of 22 January 1980 introduction Community measures for the control of

83. Classical Swine Fever, 91/685 Counsul Directive of December 1991, ANNEX 1.

84. Diagnostic Procedures and Measures to Control Classical Swine Fever in Domestic Pigs and European Wild Boar. Pulawy, 1996. - P. 145.

85. Done S.H. Congenital infection of pigs with ruminant-type pestiviruses//Сотр. Pathol. 1994. - Vol.111, №2. - P. 151-163.

86. Dunne H.W. Hog cholera // Diseases of Swine (Eds Dunne HW and Leman A.D) 4th Edition Iowa State University Press, Ames. Iowa, 1975. -P. 189-255.

87. Edvards S. The development of an international referens panel of monoclonal antibodies for the differentiation of hog cholera virus from pestiviruses / Edvards S., Moenning V. and Wensvoort G. // Vet. Microbiol. -1991. -№29. P. 101-108.

88. Edwards S. Antigenic differences among pestiviruses / Edwards S. Paton D.// Vet. Clin. North. Am. Food Anim. Pract. 1995. - Vol. 11, №3. -P. 563-577.

89. Edwards S. Classical swine fever: the global situation Veterinary Microbiology // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 103-119.

90. Ehrensperger F. Immunological aspects of the infection // Classical Swine Fever and Related Viral Infections edited by В Liess. - Boston, 1988.-P. 143-164.

91. Ellis P.R. The economics of swine fever control and eradication in Diagnosis and Epizootology of Classical Swine Fever // Comm. European Communities. 1976. - P. 236-248.

92. EU COUNCIL DIRECTIVE 80/217/EEC of 22 January 1980, introducing community measures for the control of classical swine fever //Official jornal of the European Communities. 1980. - Vol. 47. - P. 11-23.

93. EU COUNCIL DIRECTIVE 2001/89/EC of 23 October 2001 on Community measures for the control of classical swine fever. CONSLEG: 2001L0089 —01/05/2004.

94. Final report on research project 96HS022 / Commission decision 96/553/EC. Commission European Community, VI/6311/98-EN.

95. Fletcher, W.O. A Field trial to determine the feasibility of delivering oral vaccines to wild swine / Fletcher, W.O., et al. // J. Wildlife Dis. -1990.-Vol. 26.-P. 502-510.

96. Francki R.I.B. Classification and nomenclature of viruses / Francki R.I.B. et al. //Fifth Report of the International Committee on Taxonomy ofp viruses. Wien & New York, 1991.

97. Grebennicova T.V., PCR detection of classical swine fever virus vaccine strain in blood of immunized animals / Grebennicova T.V., et al. // Therd ESVV Symposium on Pestivirus Infections. Lelystad, 1996.1. P. 135-139.

98. Greiser-Wilke I., Structure and presentation of a database in the world wide web of the CSF virus isolates held at the EU reference laboratory / Greiser-Wilke I., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 131-136.

99. Hanson, R.P. Origin of hog cholera // J. Am. Vet. Med. Assoc. -1957.-Vol. 131. P. 211-218.

100. Harding J.D.J. Congenital tremors in piglets and their relation to swine fever / Harding J.D.J., Done J.T., and Darbyshire J.H. // Vet. Rec. -1966.-Vol. 79.-P. 388-390.

101. Harding M. Revers Transcriptase PCR Assay for Detection of Hog Cholera Virus / Harding M., et al. // Clin.Microbiol. 1994. Vol. 32, № 10. - P. 2600-2602.

102. Have P. Detection of antibodies against swine fever virus by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) // Acta vet. Scand. 1984. - № 25. -P. 462-465.

103. Hofmann, M.A. Rapid characterization of new pestivirus strains by direct sequencing of PCR-amplified cDNA from the 5' non-coding region / Hofmann, M.A., Brechtbuehl, K., StaEuber, N. // Arch. Virol. 1994. -Vol. 139.-P. 217-219.

104. Holm-Jensen M. Detection of antibodies against hog cholera virus and bovine viral diarrhoea virus in porcine serum. A comparative examination using CF, PL A and NPLA assays // Acta vet. Scand. 1981. - Vol. 22. -P. 85-98.

105. Jensen H. Detection of antibodies against hog cholera virus in bovine virus diarrhoea virus in porcine serum. A comporative examination using CF, PLA and NPLA assays. // Acta vet. Scand. 1981. - Vol. 22. - P. 85-98.

106. Ishikawa K. Comparison of the entire nucleotide and deduced amino acid sequences of the attenuated hog cholera vaccine strain GPE" and the wild-type parental strain ALD / Ishikawa K., et al. // Arch. Virol. 1995. -Vol. 140.-P. 1385-1391.

107. Kaden V. Oral immunisation of wild boar against classical swine fever: evaluation of the first field study in Germany / Kaden V., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 239-252.

108. Koenen F. Epidemiological characteristics of an outbreak of classical swine fever in an area of highbpig density / Koenen F. et al. // Vet.-Rec. -1996.-Vol. 139. P. 367-372.

109. Komaniwa H. Micro Method for Performing Titration and Neutralization Test of Hog Cholera Virus Established Porcine Kidney Cell Strain / Komaniwa H., Fukusho A. and Shimizu Y. // Natl. Inst. Anim. Health Q. -1981,-Vol. 21.-P. 153-158.

110. Kosmidou A. Differentiation of classicsl swine fever virus (CSFV) strains using monoclonal antibodies against structural glicoproteins / Kosmidou A., et al.//Vet. Microbiol. 1995.-Vol. 47, № 1-2. - P. 111-118.

111. Laddomada A. Incidence and control of classical swine fever in European wild boar// Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 121-130.

112. Laude H. Virus de la peste porcine classique: isolement d'une souche cytolytique a parer de cellules IB-RS- 2 // Ann. Microbiol. 1978. - Vol. 129A.-P. 553-561.

113. Laude H. et Gelfi J. Diagnostic serologique de la peste porcine classique utilisation d'une souche cytolytique pour la recherche des anticorps neutralisants en microplaque // Ann. Rech. Vet. 1980. - Vol. 3. - P. 313319.

114. Laude H. Hog holera virus: arts and facts // Ann Rech Vet. 1987. -Vol. 18. - P. 127-138.

115. Liess B. Untersuchungen uber die Europaische Schweinepest. V. Er-mittlung inapparent infizierten Schvveine in der Ferkelerzeugenbestanden in drei Ortschaften / Liess В., et al. // Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. 1975. -Vol. 88.-P. 397-409.

116. Liess B. Pathogenesis and epidemiology of hog cholera // Ann. Rech. Vet. 1987. - Vol. 18. - P. 139-145.

117. Liess B. Courses of hog cholera virus infection. // Regional biotechnology workshop on diagnosis of classical swine fever. Pulawy, 1994. - P. 1-6.

118. Liu S.T. Rapid detection of hog cholera virus in tissues by the polymerase chain reaction / Liu S.T., et al. // Virol. Meth. 1991. - Vol. 35. - P. 227-236.

119. Lowing P. Classical swine fever virus diversity and evoluation / Lowing P., Ibata G., Needham J., Paton D.// Gen. Virol. 1996. - Vol.77. -P. 1311-1321.

120. Manual of Diagnosis Tests and Vaccin for Terrestrial Animals, 5 th edition. 2004. - 17 p.

121. Matschullat G. Feldinfektion mit ВVD-Virus bein Schwein: Epidemiologic und Diagnostik / Matschullat G. et al. // Deutsche Tierarztliche Wochenschrift. 1994. - Vol. 101, №1. - P. 22-26.

122. Mengeling W.L. Host response to persistent infaction with hog cholera virus / Mengeling W.L., Cheville N.F. // Proc.of 72nd Ann.Meet. US Animal Health Ass. 1968. - P. 283-296.

123. Mengeling W.L. A fluorescent microplaque assay for hog cholera virus. // Arch.Virus. 1968. - Vol. 23. - P. 27-39.

124. Mengeling W.L., Packer R.A. Pathogenesis of chronic hog cholera. Hostresponse / Mengeling W.L., Packer R.A. // Am. J. Vet. Res. 1969. -Vol. 30.-P. 409-417.

125. Measures to Control Classical Swine Fever in European Wild Boar. -Italy, Perugia, 1998. Sala dei Notari-Palazzo Comunale. -145 p.

126. Meyers, G. Classical swine fever virus: recovery of infectious viruses from cDNA constructs and generation of recombinant cytopathogenic defective interfering particles / Meyers G., Thiel H.J., Rumenapf T. // Virol. -1996.-Vol. 70.-P. 1588-1595.

127. Meyers, G. Molecular characterization of pestiviruses / Meyers, G., Thiel, H.J.// Adv. Virus Res. 1996. - Vol. 47. - P. 53-118.

128. Mc. Goldrick A. Closed one-tube reverse transcription nested polymerase chain reaction for the detection of pestiviral RNA with fluorescent probes / Mc. Goldrick A., et al. // Virol. Methods, 1999. - Vol. 79. - P. 85-95.

129. Mihaita, S. Incercari de imunizare pestei porcine cu virus lapinizat ► sub forma de aerosoli (nota I) / Mihaita, S., Popa, M., Albu, T. / Lucrar. Stiint. Inst. Ser. Vacc. Pasteur. Bucaresti, 1962. - Vol. 6 - P. 57-65.

130. Muller T. Testung eines neuen Koders fur die orale Immunisierung des Rotfuchses (Vulpes vulpes) gegen / Muller, T. et al. // Tierarztl. Wschr. 1993.-Vol.106.-P. 41-46.

131. Moennig V. Pestivirus // Vet. Microb. 1990. - Vol. 23. - P. 35-54.

132. Moennig V. The pestiviruses / Moennig V., and Plagemann G.W. // Adv. Virus Res., 1992. - Vol. 41. - P. 53-98.

133. Moennig V. Introduction to classical swine fever virus, disease and control policy // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 93-102.

134. Moormann R.J.M. Molecular cloning and nucleotide sequence of hog cholera virus, strain Brescia and mapping the genomic region encoding envelope protein El / Moormann R.J.M., et al. // Virol. 1990. - Vol. 177. -P. 184-198.

135. Moormann R. The potential use of marker vaccines for classical swine fever / Moormann R., et al. // Therd ESVV Symposium on Pestivirus Infections. Lelystad, 1996. - P. 180- 187.

136. OIE, International Animal Health Code / Office International des Epizooties. Paris, 1998. - P. 147-154.

137. O.I.E. World Animal Health. Paris, 1992-1999. - P. 1993-2000.

138. Paton D.J. An ELISA detecting antibody to conserved pestivirus epitopes / Paton D.J., Edwards S., Wensvoort G. // Virol. Meth. 1991.'- Vol. 31.-P. 315-324.

139. Paton D.J. BVD monoclonal antibodies: relationchip between viral protein specificity and viral strain specificity / Paton D.J., Sands J.J., Roehe P.M. // Arch. Virol. 1991. - Vol. 3. - P. 47-54.

140. Paton D.J. Congenital infection of pigs with ruminant-type pestiviruses / Paton D.J., Done S.H. // Сотр. Pathol. 1994. - Vol. 111, № 2. -P. 151-163.

141. Paton D.J. Infaction of pigs and cattle with bovine viral diarrhea virus on a farm in England / Paton D.J., Simpson V. and Done S.H.// Vet. Rec. -1994.-Vol. 131.-P. 185-188.

142. Paton D.J. A proposed division of the pestivirus genus using monoclonal antibodies, suppored by cross-neutralisation assay and genetic sequencing / Paton D.J., et al. // Vet. Res. 1995. - Vol. 26. - P. 92-109.

143. Paton D.J. Classical swine fever virus: a ring test to evaluate RT-PCR detection methods / Paton D.J., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. -P. 159-174.

144. Pirtle E.C. Relationship between the soluble antigen of hog cholera and bovine viral diarrhoea viruses prepared in tissue culture / Pirtle E.C., Gutekunst D.E. // Vet. Rec., 1964. - Vol. 76. - P. 1177-1180.

145. Pirtle E.C., Kniazeff A.J. Susceptibility of cultured mammalian cells » to infaction with virulent and modified hog cholera viruses / Pirtle E.C.,

146. Kniazeff A.J.// Am. J. Vet. Res. 1968. - Vol. 29. - P. 1033-1040.

147. Plant I.W. Immunological relationship between Border disease, mucosal disease and swine fever / Plant I. W., et al. // Vet. Rec. 1973. - Vol. 92.

148. Report from the scientific veterinary committee on guidelines for a classical swine fever emergency vaccination programme Document VI/7389/94-EN, Comm. EC.

149. Report on Annual Meeting of National Swine Fever Laboratories.

150. Austria, Vienna, 1997. P. 96.

151. Report from the scientific veterinary committee (adopted 17 September 1997) the use of marker vaccines in the control of infectious disease in particular classical swine fever. Document VI/8119/97-AL, Comm. EC.

152. Proceeding of Second Symposium on Pestiviruses. 1-3 okt., 1992, Marcel Merieux, 1993. P. 269.

153. Proceeding of the Third Symposium on Pestiviruses. 19-20 sept., 1996, The Netherlands, Lelystad, 1996. P. 192.

154. Ressang A.A. The diagnosis of hog cholera in the Netherlands / Ressang A.A. and Boer J.L. // Bull.off.int.epiz. 1971. - Vol. 75. - P. 519-531.

155. Ressang A. A. Studies on the pathogenesis of hog cholera .1. Demonstration of hog cholera virus subsiquent to oral exposure // Zbl. Vet. Med. -1973.-Vol.20.-P. 256-271.

156. Roche P.M. Polymerase chain reaction amplification of segments of pestivirus genomes / Roche P.M., Woodward M.J. // Arch. Virol. 1991. -Suppl. 3. - P. 231-238.

157. Rutili, D. Peste suina classica: prove di vaccinazione per via orale con l'impiego di esche, Atti Soc. / Rutili, D., Frescura, Т., Titoli, F. // Ital. Sci. Vet. 1988. - XLII. - P. 789-791.

158. Sakoda Y. A new assay for classical swine fever virus based on cyto-pathogenicity in porcine kidney cell line FS-L3 / Sakoda Y., Yamaguchi O., Fukusho A. // Virol. Meth. 1998. - Vol. 70. - P. 93-101.

159. Saatkampa H.W. Economic aspects of the control of classical swine fever outbreaks in the European Union / Saatkampa H.W., Berentsenb P.B.M., Horst H.S. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 221-237.

160. Sasahara, J. Field experiment of hog cholera vaccine prepared in guinea-pig kidney cell culture / Sasahara, J., et al. // Natl. Inst. Anim. Hllh. 1969,-Quart. 9.-P. 83-91.

161. Saunders G.C. Development and Evaluated of an Enzyme-Labeled Antibody Test for the Rapid Detection of Hog Cholera Antibodies // Am. J. Vet. Res. 1976. - Vol. 38, № 1. - P. 21-25.

162. Shannon A.D. Detection of hog cholera virus antigens in experimentally infected pigs using an antigen-capture ELISA / Shannon A.D., et al. // Vet. Microbiol. 1993. - Vol. 34. - P. 233-248.

163. Shih-Tung Liu. Rapid detection of hog cholera virus in tissues by the polymerase chain reaction / Shih-Tung Liu., et al. //Virol. Meth. 1991. -Vol. 35. - P. 227-236.

164. Smit A.J. Laboratory experience during the classical swine fever virus epizootic in the Netherlands in 1997-1998 / Smit A.J., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol.73. - P. 197-208.

165. Snowdon W.A. The role of disease virus in the control of swine fever / Snowdon W.A. and French E.L. // Diagnosis and Epizootiology of Classical Swine Fever. Comm. of the European Communities, EUR 5486. -1976.-P. 159-183.

166. Stegeman A. The 1997-1998 epidemic of classical swine fever in the Netherlands / Stegeman A., et al. // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 73. - P. 183-196.

167. Szent-Ivanyi T. The history of classical swine fever control in Hungary and experiences with the production and use of C-strain vaccine // Report FAO/CEC Seminar on African Swine Fever and Hog Cholera. Rome, 1984.-Vol. 10. - P. 22-25.

168. Susa, M. Pathogenesis of classical swine fever: B-lymphocyte deficiency caused by hog cholera virus / Susa, M. et al. // Virol. 1992. - Vol. 66.-P. 1171-1175.

169. Terpstra C. Control of swine fever in enzootic areas by regional vaccination for limited periods using C-strain virus // Proc Int Pig Vet Congr., Mexico City, 1982. Vol. 7. - P. 127-135.

170. Terpstra C. Experience with regional vaccination against swine fever in enzootic areas for limited periods using C-strain virus / Terpstra С and Robijns KG. // Tijdschr Diergeneeskd, 1977. Vol. 102. - P. 106-12.

171. Terpstra C. Antibody Response against Swine Fever Following Vaccination with C-Strain Virus / Terpstra C. and Tielen J.M. // Zbl. Vet. Med. В. 1976.-Bd.23.-Heft 10.-P. 809-821.

172. Terpstra C. Epizootiology of swine fever // Vet. Quarterly, 1987. -Vol. 9. - P. 50-60.

173. Terpstra C. Potency control of modified live viral vaccines for veterinary use / Terpstra C. and Kroese A.H. // Vaccine, 1996. - Vol. 14, № 1. -P. 13-18.

174. Thibault J.C. Principle and use of antigen capture ELISA for the diagnosis of classical swine fever. JCT 109/NM le 04/10/94.

175. Thiel H.J. Hog Cholera: Molecular composition of virions from a Pestivirus / Thiel H.J., et al. // Virol. 1991. - Vol. 65, №9. - P. 4705-4712.

176. Trautwein G. Pathology and pathogenesis of the disease. // Classical Swine Fever and Related Viral Infections / edited by B. Liess. Boston,1988.-P. 27-54.

177. Thrusfield M. Veterinary epidemiology Butterworths.- London, Boston, Durban, Singapore, Sydney, Toronto, Wellington, 1986. P. 280.

178. Van Oirchot J.T. A congenital persistent swine fever infaction. I.Clinical and virological observations / Van Oirchot J.T., Terpstra C. A. // Vet. Microbiol. 1977. - Vol. 2. - P. 121-132.

179. Van Oirschot J.T. Description of the virus infection. // Classical Swine Fever and Related Viral Infections / edited by В.- Liess, Boston, 1988. P. 1-25.

180. Van Oirschot, J.T. Hog cholera. / Shaw, B.E, et al. (Eds.) // Diseases Of Swine, 8th Edition. Iowa State University Press.- Iowa, 1999. P. 159172.

181. Van Oirschot J.T. Vaccinology of classical swine fever: from lab to field // Vet. Microbiol. 2003. - Vol. 96, № 4. - P. 367-384.

182. Vilcek S. Genetic variability of classical swine fever virus / Vilcek S. et al. // Virus Research, 1996. - Vol. 43. - P. 137- 147.

183. Wengler G. Family Flaviviridae. Classification and Nomenclature Of Viruses. Fifth report of the International Committee on Taxonomy of Viruses / Wengler G., et al. .- Springer, Berlin, 1991. P. 223-233.

184. Wensvoort G. Classical swine fever. A Changing clinical picture / Wensvoort G., Terpstra C. //Tijdschr. Diergeneesk, 1985. - Vol. 110. - P. 263-269.

185. Wensvoort G. An Enzyme Immunoassay Employing Monoclonal Antibodies and Detecting Specifically Antibodies to Classical Swine Fever Virus / Wensvoort G., Bloemraad M. and Terpstra C. // Vet. Microbiol. -1988.-Vol. 17.-P. 129-140.

186. Wensvoort C. Bovine viral diarrhoea infections in piglets from sows vaccinated against swine fever with contaminated vaccine / Wensvoort C. and Terpstra C. // Res. Vet. Sci., 1988. - Vol. 45. - P. 143-148.

187. Wensvoort G. Characterization of porcine and some ruminant pestiviruses by cross-neutralization / Wensvoort G., Terpstra C., De Kluyver E.P. // Vet. Microbiol. 1989. - Vol. 20. - P. 291-306.

188. Westergaard J.M. Epidemiology of classical swine fever // Diagnostic procedures and measures to control classical swine fever in domestic pigs and the European wild boar. Pulawy, 1996. - P. 119-130.

189. Wirz B. Detection of hog cholera virus and differentiation from other pestiviruses by polymerase chain reaction / Wirz В., et al. // Clin. Microbiol. 1993.-Vol. 31.-P. 1148-1154.

190. Wise G.H. Eradication of hog cholera from the United States //,Prac--tices in Veterinary Public Health and Preventive Medicine in the United States .- Iowa State University Press, 1986. - P. 199-223.

191. Young S.H. The use of supplemental tests in the diagnosis and eradication of hog cholera // Am. Vet. Med. Assoc. 1970. - Vol. 157. - P. 1855-1859.