Исследование влияния всасывания антидиуретического гормона в кишечнике у крыс на функции почки тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.13, кандидат медицинских наук Гао, Цзе

• Гао, Цзе
• кандидат медицинских наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Гао, Цзе

Введение

Глава 1. Обзор литературы

1.1. Механизм действия вазопрессина в почке

1.2. Источники поступления в кровь вазопрессина и механизмы регуляции его секреции

Глава 2. Материал и методы

Глава 3. Результаты

3.1. Исследование реакции почки крыс на водную нагрузку и инъекцию 43 аргинин-вазопрессина и его аналогов

3.1.1. Выведение водной нагрузки у крыс натощак

3.1.2. Реакция почки на внутримышечную инъекцию аргинин-вазопрессина и его 47 аналогов после введения водной нагрузки у крыс натощак

3.1.3. Исследование реакции почки крыс на водную нагрузку и инъекцию аргинин-вазопрессина и аргинин-вазотоцина при стандартном режиме кормления

3.2. Исследование реакции почки крыс на водную нагрузку и введение в желудок аргинин-вазопрессина и его аналога

3.2.1. Реакция почки на водную нагрузку и введение в желудок 92 аргинин-вазопрессина у крыс натощак

3.2.2. Реакция почки на водную нагрузку и введение в желудок 100 аргинин-вазотоцина у крыс натощак

3.2.3. Реакция почки на водную нагрузку и введение в желудок 107 лизин - вазопрессин, десмопрессин, изотоцин и окситоцин у крыс натощак

3.2.4. Исследование реакции почки крыс на водную нагрузку и введение 114 в желудок аргинин-вазопрессина и десмопрессина при стандартном режиме кормления

3.3. Влияние одновременного введения аргинин-вазопрессина и глюкозы в желудочно-кишечный тракт на антидиуретическую реакцию почки крыс 3. 4. Влияние апротинина на функцию почки крыс при введении в желудок аргинин-вазопрессина

3.5. Влияние церебрекса, диклофенака и антагонистов Vi-, и Уг-рецепторов на действие аргинин-вазотоцина на функции почки крыс

Глава 4. Обсуждение

Глава 5. Выводы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Исследование влияния всасывания антидиуретического гормона в кишечнике у крыс на функции почки»

Актуальность проблемы. Согласно существующим представлениям белки и полипептиды в желудочно-кишечном тракте разрушаются пептидазами в процессе пищеварения до аминокислот, ди- и трипептидов которые при участии переносчиков всасываются клетками тонкой кишки в кровь (Adibi, 1997; Тимофеева и др., 2000). В условиях патологии при дефиците пептидных гормонов нейрогипофиза обычно их вводят внутримышечно или интраназально. В то же время имеются некоторые данные, которые противоречат этому утверждению, к ним относятся факты о всасывании белков (Мазо и др., 1989), использование минирина, лекарственной формы DDAVP, для применения per os. Недавно было показано, что антидиуретический эффект АВП может быть воспроизведен не только при инъекции гормона крысе, но и при его введении зондом в изолированную по методу Тири-Велла петлю кишки (Наточин и др., 2003). Очевидно, что изучение возможности всасывания в кишке естественных гормонов, являющихся циклическими нонапептидами, представляет физиологический интерес и может качественно изменить представление о всасывании пептидов в тонкой кишке. В экспериментах существенно было проанализировать условия всасывания естественных гормонов нейрогипофиза в желудочно-кишечном тракте здоровых животных.

Цель исследования. Проверка в прямом эксперименте возможности всасывания в кишечнике АВП и его естественных аналогов и изучение их влияния на функции почки у крыс.

Задачи исследования.

1) Исследование влияния АВП, АВТ, ЛВП, окситоцина и изотоцина на осморегулирующую функцию почки крыс при их введении парентерально и per os.

2) Исследование влияния пищевого режима на всасывание АВП в желудочно-кишечном тракте у крыс.

3) Исследование влияния глюкозы на всасывание АВП в желудочно-кишечном тракте крыс.

4) Исследование влияния апротинина на всасывание АВП при введении в желудочно-кишечный тракт у крыс.

5) Исследование роли простагландинов, Vi- и Уг-рецепторов в реализации у крыс натрийуретического эффекта АВТ.

Научная новизна.

1) В опытах на крысах впервые показано, что при введении per os зондом в желудок аналоги АВП (АВТ, ЛВП) всасываются и оказывают антидиуретическое действие.

2) Впервые показано, что при внутримышечной инъекции АВТ в отличие от АВП оказывает у крыс не только антидиуретическое, но и натрийуретическое действие.

3) Впервые показано, что в условиях обычного пищевого режима реакция почки крыс на введение водной нагрузки в объеме 5% к массе тела носит характер волюморегулирующего ответа, а натощак - осморегулирующей реакции.

4) Глюкоза не влияет на всасывания АВП в кровь из желудочно-кишечного тракта у крыс.

5) Впервые показано, что введение в желудочно-кишечный тракт вместе с АВП ингибитора протеаз апротинина усиливает антидиуретическую реакцию.

6) Впервые показано, что натрийуретический ответ почки крыс на инъекцию АВТ не связан с активацией Vi- и У2-рецепторов.

Научно-практическая значимость работы. Результаты диссертации используются в курсах лекций по физиологии, читаемых на медицинском факультете Санкт-Петербургского государственного университета. Положения, выносимые на защиту.

1) При введении крысам per os зондом в желудок гормоны нейрогипофиза (АВП, АВТ, ЛВП) всасываются и оказывают антидиуретическое действие.

2) При внутримышечной инъекции АВТ в отличие от АВП оказывает у крыс не только антидиуретическое, но и натрийуретическое действие.

3) В условиях обычного пищевого режима реакция почки крыс на водную нагрузку носит характер волюморегулирующего ответа, а натощак -осморегулируюшего.

4) При введении 1%-го раствора глюкозы в желудок в сочетании с введением АВП или инъекции АВП глюкоза не влияет на реакцию почки на АВП.

5) Введение в желудочно-кишечный тракт вместе с АВП ингибитора протеаз апротинина усиливает антидиуретическую реакцию у крыс.

6) Увеличение экскреции натрия с мочой, вызванное внутримышечным введением крысам 0,05 нмоль АВТ, не связано с активацией Vi- и Уг-рецепторов. Апробация работы. Результаты исследования доложены и обсуждены на 6-й и 7-й Всероссийских медико-биологических конференциях молодых исследователей «Человек и его здоровье» (Санкт-Петербург, 2003 г. и 2004 г.), на Всероссийской конференции с международным участием, посвященной 175-летию со дня рождения Ф.В.Овсянникова «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург, 2003 г.), на XIX Съезде Физиологического общества им. И.П. Павлова (Екатеринбург, Россия, 2004 г).

Публикации. По теме диссертации опубликованы 2 статьи в реферируемых журналах и 5 тезисов докладов.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 177 страницах машинописного текста, состоит из введения, обзора литературы, характеристики материала и методов исследования, 5 глав результатов исследования, обсуждения результатов, выводов, списка литературы, включающего 160 источников. Диссертация иллюстрирована 34 таблицами и 109 рисунками.

Заключение диссертации по теме «Физиология», Гао, Цзе

1. Изучение антидиуретической активности нонапептидов нейрогипофиза позвоночных показало, что после парентерального введения крысам линии Вистар АВП, АВТ, ЛВП, но не изотоцина, увеличивают реабсорбцию осмотически свободной воды в почке.2. После введения АВП, АВТ и ЛВП зондом в желудок крыс они оказывают антидиуретическое действие и усиливают реабсорбцию осмотически свободной воды в почке.3. При парентеральном введении крысе АВТ, но не АВП, оказывает не только антидиуретическое, но и выраженное натрийуретическое действие.4. Установлены отличия ответа почки крыс на введение в желудок воды в объеме 5% к массе тела в зависимости от пищевого режима: в условиях обычного кормления реакция на водную нагрузку носит характер волюморегулирующей, а натощак - осморегулирующей.5. Введение глюкозы или маннита вместе с АВП в желудочно-кишечный тракт не влияет на всасывание нонапептида в кровь крыс.6. Введение в желудочно-кишечный тракт вместе с АВП ингибитора протеаз апротинина усиливает антидиуретическую реакцию.7. Внутримышечное введение крысам 0,05 нмоль АВТ на фоне блокады Vi-

или Уг-рецепторов показано, что увеличение экскреции натрия с мочой не связано с участием Vi- и Уг-рецепторов.8. Натрийуретический ответ почки крысы на инъекцию АВТ не связан с изменением секреции простаноидов.9. Полученные результаты свидетельствуют о возможности всасывания в кишечнике крыс кольцевых нонапептидов с сохранением антидиуретической гормональной активности.Приношу искреннюю и глубокую благодарность Юрию Викторовичу НАТОЧИНУ, которому я обязана за повседневное научное руководство и помощь, оказанную при выполнении этой работы

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Гао, Цзе, 2004 год

1. Боголепова А.Е., Кузнецова А.А., Лукичев Б.Г., Наточин Ю.В., Папаян А.В., Пруцкова недостаточности. Н.П., Рябов СИ., Шахматова Е.И. Исследование роли простагландина Е 2 в регуляции мочеотделения при хронической почечной недостаточности и ночном энурезе. Нефрология. 2001. Т.5. №4. 15-

2. Вандер .„Физиология почек: Пер. с англ. СПб. Питер. 2

3. Великанова Л.К. Осморецепторы. Новосибирск. Наука. 1985. 88С. Гинецинскгш А.Г. Физиологические механизмы водно-солевого равновесия. М. Л. Изд-во АН СССР. 1963. 426С. Дани М.Днс. Почечные простагландины. Почечная эндокринология. Ред. М.Дж.Данн. М. Медицина. 1987. 11-

4. Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Фадеев В.В. Эндокринология. М. Медицина. 2000. 632С. Иванова Л.Н. Антидиуретический гормон. В кн.: Физиология почки и водно-солевого обмена. В сер. Основы современной физиологии. СПб. Наука. 1993. 46-

5. Кеттайл В.М., Арки Р.А. Патофизиология эндокринной системы. Пер. с англ. М. Бином. СПб. Невский диалект. 2001. 336С. Кокосов А.Н. (ред.) Основы пульмонологии. Руководство для врачей. М. Медицина. 1

6. Константинова М.С., Наточин Ю.В. Гормоны нейрогипофиза вазопрессин и окситоцин. В кн. Физиология эндокринной системы. (Руководство по физиологии.) Л. Наука. 1979. 90-

7. Кузнецова А.А., Наточин Ю.В., Папаян А.В. Клиническая эффективность коррекции функции почки десмопрессином в лечении ночного энуреза у детей. Рос. вестник перинатол. и педиатр. 1999. №2. 50-

8. Мазо В.К., Морозов И.А., Ширина Л.К Всасывание белковых макромолекул в желудочно-кишечном тракте млекопитающих. Усп. физиол. наук. 1989. Т.20. №3. 65

9. Москалев Ю.И. Минеральный обмен. М. Медицина. 1985. 288С. 166

10. Наточин Ю.В. Основы физиологии почки. Л. Медицина. 1982. 208С. Наточин Ю.В. Эволюция водно-солевого обмена и почки. Эволюционная физиология. Ч. 2. Л., Наука, 1983. 371-

11. Наточин Ю.В. Вазопрессин. В кн.: Физиология почки и водно-солевого обмена. В сер. Основы современной физиологии. СПб. Наука. 1993. 449-

12. Наточин Ю.В. Почка. Справочник врача. СПб: Изд-во СПбГУ, 1997. 208С. Наточин Ю.В. Новое о природе регуляций в организме человека. Вестник РАН. 2000. Т.70. №1. 21-

13. Наточин Ю.В. Архитектура физиологических функций: тот же фундамент, новые грани. Рос. физиолог, журн. им. И.М.Сеченова. 2002. 88(2). 129-

14. Наточин Ю.В., Кузнецова А.А. Ночной энурез как проявление аутакоидоза. Тер. арх. 1997. №12. 67-

15. Наточин Ю.В., НемцовВ.К, Эмануэль B.JI. Биохимия крови и диагностика. СПб. 1

16. Наточин Ю.В., Пруцкова Н.П. Всасывание функционально активного аргинин вазопрессина в тонкой кишке лягушки. ДАН. 2004. Т.394. №5. 700-

17. Наточин Ю.В., Пруцкова НИ, Шахматова Е.И. Динамика увеличения осмотической проницаемости и восстановления водонепроницаемости мочевого пузыря лягушки. Рос. Физиол. журн. 2001. Т.87. №.8. 1095-1

18. Наточин Ю.В., Пруцкова НИ, Шахматова ЕЙ., Груздков А.А., Громова Л.В. Исследование возможности всасывания интактных нонапептидов в изолированной тонкой кишке крыс in vivo. ДАН. 2003. Т.388. №.4. 558-

19. Наточин Ю.В., Рябое СИ., Каюков И.Г., Лаврова Е.А., Шахматова Е.И., Эммануэль В.И. Показатели водно-солевого гомеостаза и их вариабельность. Физиология человека. 1980. Т.60. №4. 647-

20. Наточин Ю.В., Григорьев А.И., Буравкова Л.Б., Ларина ИМ., Лруг/кова Н.П, Шахматова Е.И. Антидиуретическая реакция почек человека и крысы при пероральном введении аргинии-вазопрессина и десмопрессина всасывания интактных нанопептидов в изолированной тонкой кишке крыс. Рос. физиол. журн. им. И.М.Сеченова. 2003. Т. 89. №2. 184-

21. Наточин Ю.В., Шахматова Е.И. Исследование возможности всасывания антидиуретического гормона в изолированной тонкой кишке крысы. Бюлл. экспер. биол. и мед. 2004. Т. 137. №1. 4-7. 167

22. Поленов А.Л. Гипоталамическая нейросекреция. Л. Наука. 1968. 159С. Пруткова Н.П. Анализ роли аутакоидов в регуляции проницаемости для воды эпителия мочевого пузыря лягушки. Нефрология и диализ. 2003. Т.5. №3. 239-

23. Пруцкова Н.П., Шахматова Е.И., Наточин Ю.В. Изучение функциональной роли Vi- и Уг-рецепторов апикальной и базолатеральной мембран клеток эпителия мочевого пузыря лягушки. Рос. физиол. журн. им. И.М.Сеченова. 2000. Т.86. №1. 76-

24. Родионова Е.А., Наточин Ю.В. Влияние вазотоцина и простагландина Ег на всасывание воды и ионов в толстой кишке травяной лягушки. Рос. физиол. журн. им. И.М.Сеченова. 2002. Т.88. №5. 634-

25. Селиверстова Е.В., Шахматова Е.И., Комиссарчик Я.Ю., Пруг/кова Н.П., Снигиревская Е.С., Наточин Ю.В. Иммуноцитохимическая локализация вазопрессина при его всасывании клетками эпителия тонкой кишки крысы. Цитология. 2004. №11. 953 -

26. Aikawa Т., Kasahara Т., Uchiyama M. Circadian variation of plasma arginine vasopressin concentration, or arginine vasopressin in enuresis. Scand. J. Urol. Nephrol. Suppl. 1999. N.202. P.47-49. 168 mechanisms and metabolic

27. Ando Y., Tabei K., Ascmo Y. Luminal vasopressin modulates transport in the rabbit cortical collecting duct. J. Clin. Invest. 1991. Vol.88. К З P.952-

28. Antiines-Rodrigues J., de CaElias L.L., Valenca MM., Mc Cann S.M. Neuroendocrine control of body fluid metabolism. Physiol. Rev. 2004. Vol.84. N.l. P. 169-

29. Balduini C.L., Noris P., Belletti S., Spedini P., Gamba G. In vitro and in vivo effects of desmopressin on platelet function. Haematologica. 1999. Vol.84. N.10. P. 891-

30. BaylisC, BIcmtzRC. Glomerular hemodynamics. News Physiol. Sci. 1986. Vol.1. P. 86-

31. Bentley P.J. In: Endocrines and osmoregulation. A comparative account of the regulation of water and salt in vertebrates. Berlin, Heidelberg, New. York. Springer. 1

32. Bondy C.A., Gainer H., Russel J.T. Effects of stimulus frequency and potassium channel blockade on the secretion of vasopressin Neuroendocrinology. 1987. Vol.46. P. 258-

33. Borges E.L., de Fatima Leite M., Barbosa A.J., Alves J.B. Route of jejunal absorption of trypsin demonstrated by immunofluorescence. Histochem. J. 2002. Vol.34. N.l 1-12. P.525-

34. Bourque C.W. Intraterminal recordings from the rat neurohypophysis in vitro. J. Physiol. 1990. Vol.421. P.247-

35. Bourque C.W., Oliet S.H. Osmoreceptors in the central nervous system. Annu. Rev. Physiol. 1997. Vol.59. P.601-

36. Bradford A.D., TerrisJM., Ecelbarger C.A., Klein J.D., Sands J.M., Chou C.L., Knepper M.A. 97- and 117-kDa forms of collecting duct urea transporter UT-Al are due to different states of glycosylation. Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2001. Vol.281. N.l. F133-

37. Breyer M Jacobson H., Hebert R. Cellular mechanisms of prostaglandin E 2 and vasopressin interactions in the collecting duct. Kidney. Int. 1990. Vol.38. P.618-

38. Burgess W.J., Balment R.J., BeckJ.S. Effects of luminal vasopressin on intracellular calcium in microperfused rat medullary thick ascending limb. Renal Physiol. Biochem. 1994. N.17. P.l-

39. Carlson S.H., Beitz A., Osborn J.W. Intragastric hypertonic saline increases vasopressin and central Fos immunoreactivity in conscious rats. Am. J. Physiol. 1997. 272(3Pt 2): R750-

40. Carlson S.H., Wess J.M. Hepatic denervation does not affect plasma vasopressin response to intragastric hypertonic saline in conscious rats. Am. J. Physiol. 1999. 277(lPt 1): E161-167. and oxytocin from the neurohypophysis. 169

41. Cherney D.Z., Zevallos G., Oreopoulos D., Halperin M.L. A physiological analysis of hyponatremia: implications for patients on peritoneal dialysis. Perit. Dial. Int. 2001. Vol.21. N.l.P.7-

42. Conigrave A.D., Young J.A. Function of intestine. In: Greger R, Windhorst U (eds). Comprehensive human physiology: from cellular mechanisms to integration. Vol.

43. Springer, Berlin. 1996. P.1259-1287 Correia A.G., Denton KM., Evans KG. Effects of activation of vasopressin-Vi-receptors on regional kidney blood flow and glomerular arteriole diameters. J. Hypertens. 2001. Vol.19 (3 Pt 2). P.649-

44. Dantzler W.H. Comparative physiology of the vertebrate kidney. Berlin etc.: Springer Verlag, 1989. 198P. De Rouffignac C, Roinel N.. ElaloufJ.M. Comparative effects of peptide hormones on water and electrolyte transport along the proximal and distal tubules of the mammalian nephron. New insights in vertebrate kidney function. Brown J.A., Balment R.J., Rankin. J. С (eds.). Cambrige Univ. Press, NY. 1993. P.281-

45. Djelidi S., Fay M Cluzeaud F., Thomas-Soumarmon A., Bonvalet J.P., Farman K, BlotChabaudM. Vasopressin stimulates long-term net chloride secretion in cortical collecting duct cells. FEBS. Lett. 1999. Vol.460. N.3. P. 533-

46. Douglas W.W. Mechanism of release of neurohypophysial hormones: stimulus-secretion coupling. Handbook of physiology. Sect.

47. Endocrinololy. Washington: Amer. Physiol. Soc, 1974. Vol.4. part.l. P. 191-

48. Djurhuus J.C, Rittig S. Current trends, diagnosis, and treatment of enuresis. Eur. Urol. 1998.

50. Fernandez N., Martinez M.A., Garcia Villalon A.L., Monge L., Dieguez G. Cerebral vasoconstriction produced by vasopressin in conscious goats: role of vasopressin V(l) and V(2) receptors and nitric oxide. Br. J. Pharmacol. 2001. Vol.132. N.8. P. 1837-1

51. Fjellestad-Paidsen A., dAgay Abensour L., Hoglund P., Rambaud J.C. Bioavailability of 1deamino-8-D-arginine vasopressin with an enzyme inhibitor (aprotinin) from the small intestine in healthy volunteers. Eur. J. Clin. Pharmacol. 1996. Vol.50. P. 491-495. 170

52. Ganapathy V., LeibachF.H. Peptide transporters. Curr. Opin. Nephro. Hypertens. 1996. N.5. P. 395-

53. Goncharevskaya O.A., Shakhmatova E.I., Natochin Y.V. Modulation of the effect of argininevasopressin on water and ion transport in the newt early distal tubule and frog urinary bladder by Vantagonists. Eur. J. Physiol. 1995. N.430. P. 1004-1

54. Gondim E.L., Liu J.H., Costa V.P., Weinreb R.N. Exogenous vasopressin influences intraocular pressure via the V(l) receptors. Curr. Eye. Res. 2001. Vol.22. N.4. P. 295-

55. Goodson J.L., Bass A.H Forebrain peptides modulate sexually polymorphic vocal circuitry. Nature. 2000. N403(6771). P.769-

56. Greger R. Renal handling of the individual solutes of glomerular filtrate. Windhorst U (eds). Comprehensive human physiology. Springer: Berlin, Heidelberg. 1996. Vol.2. P.1517-1

57. Greger R. Comprehensive human physiology. Windhorst U (eds). Berlin. Heidelberg: Springer. 1996. Vol.1. N.2.2528P. Gross P. Correction of hyponatremia. Semin. Nephrol. 2001. Vol.21. N.3. P.269-

58. Gross P., RichterD., Robertson G.L. Vasopressin. Ed. John Libbey Eurotext. 1

59. Paris. Guillette L.J.Jr., Gross T.S., Matter J.M., Palmer B.D. Arginine vasotocin-induced prostaglandin synthesis in vitro by the reproductive tract of the viviparous lizard Sceloporus jarrovi. Prostaglandins. 1990. V. 39. T. 1. P. 39-

60. HansellP., Goransson V., OdlindC., GerdinB., HallgrenR. Hyaluronan content in the kidney in different states of body hydration. Kidney Int. 2000. Vol.58. P.2061-2

61. Hansell P., Marie C, Alcorn D., Goransson V., Johnsson C, Hallgren R. Renomedullary interstitial cells regulate hyaluronan turnover depending on growth media osmolality suggesting arole in renal water handling. Acta Physiol. Scand. 1999. Vol.165. P.115-

62. Hatton G.I. Some well-kept hypothalamic secrets disclosed. Fed. Proc. 1983. Vol.42. P.28692

63. Hayashi H, Suzuki Y. Regulation of intracellular pH during H-coupled oligopeptide absorbtion in enterocytes from guinea pig ileum. J. Physiol. (Lond). 1998. Vol.511. P.573-

64. Hebert R,, Jacobson H. and Breyer M. PGE2 inhibits AVP-induced water flow in cortical collecting ducts by protein kinase activation. Am. J. Renal Fluid Electrolyte Physiol. 1990. N.259.P.F318-F

65. Honda K. Mechanisms controlling neurohypophysial hormone release in the rat. J. Reprod. Dev. 2003. Vol.49. N.l.P.1-11. 171

66. Ivanova L.N., Melidi NN. Effects of vasopressin on hyaluronate hydrolase activities and water permeability in the frog urinary bladder. Eur. J. Physiol. 2001. Vol.443. N.l. P.72-

67. Jackson E.K. Vasopressin and other agents affecting the renal conservation of water. The pharmacological basis of therapeutics. New York 1996. P. 715-

68. Jung J.S., Bhat R.V., Preston G.M., Guggino W.B., Baraban J.M., Agre P. Molecular characterization of an aquaporin cDNA from brain: candidate osmoreceptor and regulator of water balance. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. Vol.91. N.26. P. 13052-13

69. Kamoi K., Kurokawa I., Kasai N. et al. Asymptomatic hyponatremia due to inappropriate secretion of antidiuretic hormone as the first sign of a small cell lung cancer in an elderly man. Intern. Med. 1998. Vol.37. N l l P. 950-

70. Kobashi M., Adachi A. Effect of hepatic portal infusion of water on water intake by waterdeprived rats. Physiol. Behav. 1992. Vol.52. N.5. P. 885-

71. Klussmann K, Tamma G., Lorenz D., Wiesner В., Marie K., Hofinann F., Aktories K., Valenti G, Rosenthal W. An inhibitory role of Rho in the vasopressin-mediated translocation of aquaporin-2 into cell membranes of renal principal cells. J. Biol. Chem. 2001. Vol.276. N.23. P.20451-20

72. Komissarchik Y.Y., Snigirevskaya E.S., Shakhmatova E.I., Natochin Yn.V. Ultrastructural correlates of the antidiuretic hormone-dependent and antidiuretic hormone-independendent increase in osmotic in the frog urinary bladder epithelium. Cell. Tissue. Res. 1998. Vol.293. P.517-

73. Koushanpour E., Kriz W. Renal physiology. New York: Springer. 1986. 390P. Kovdch L, Lichardus B. Vasopressin: disturbed secretion and its effects. Dordrecht. Kluwer. 1

74. Kwvahara M Shinbo I., Sato K., Terada Y, Marumo E, Sasaki S. Transmembrane helix 5 is critical for the high water permeability of aquaporin. Biochemistry. 1999. Vol.38. N.49. P. 16340-16

75. Kuznetsova A.A., Shakhmatova Е.1., Pnttskova N.P., Natochin Y.V. Possible role of prostaglandins in pathogenesis of nocturnal enuresis in children. Scand. J. Urol. Nephrol. 2000. Vol.34. N.l. P. 27-

76. Kwon Т.Н., Hager H., Nejsum L.N., Andersen M.L., Frokiaer J., Nielsen S. Physiology and pathophysiology of renal aquaporins. Semin. Nephrol. 2001. Vol.21. N.3. P. 231-

77. Laski M.E., Pressley T.A. Aquaporin mediated water flux as a target for diuretic development. Semin. Nephrol. 1999. Vol.19. N.6. P. 533-550. 172

78. Leng G., Mason W.T., Dyer R.G. The supraoptic nucleus as for osmoreceptor. Neuroendocrinololy. 1982. Vol. 34. P. 75-81. Li J., Hidalgo I.J. Molecular modeling study of structural requirements for the oligopeptide transporter. J. Drug Target. 1996. N.4. P. 9-

79. Lind R W., Johnson A.K. Central and peripheral mechanisms mediating angiotensin-induced thirst. Exp. Brain Res. Berlin, Heidelberg: Springer Verlag. 1982. P.353-364. Liu H., TangR., Pan W.S., Zhang Y, Liu H. Potential utility of various protease inhibitors for improving the intestinal absorption of insulin in rats. J. Pharm Pharmacol. 2003. Vol.55. N l l P. 1523-1

80. Loichot C, Krieger J.P., Be Jong W., NisatoD., ImbsJ.L., BarthelmebsM. High concentrations of oxytocin cause vasoconstriction by activating vasopressin VIA receptors in the isolated perfused rat kidney. Naunyn Schmiedebergs Arch. Pharmacol. 2001. Vol.363. N.4. P. 369-

81. LudwigM., Horn Т., Callahan M.F., Grosche A., Morris M., LandgrqfR. Osmotic stimulation of the supraoptic nucleus: central and peripheral vasopressin release and blood pressure. Am. J. Physiol. 1994. 266(3 Pt 1). P. 351-

82. Mackenzie В., Loo D.D., Fei Y., Liu W.J., Ganapathy V., Leibach F.H., Wright E.M. Mechanisms of the human intestinal FT-coupled oligopeptide transporter hPEPTl. J. Biol. Chem. 1996. Vol. 271. P.5430-5

83. Matthews D.M. Mechanisms of peptide transport. Beirt Infusionther Klin Ernahr. 1987. N. 17. P. 6-

84. MorathR, Klein Т., Seyberth H.W., Nusing RM. Immunolocalization of the four prostaglandin E2 receptor proteins EP1, EP2, EP3, and EP4 in human kidney. J. Am. Soc. Nephrol. 1999. Vol.10. N.9. P.1851-1

85. Morimoto B.H., Chuang C.C., Koshland D.E.Jr. Molecular cloning of a member of a new class of low-molecular-weight GTP-binding proteins. Genes Dev. 1991. 5(12B). P. 2386-2

86. Natochin Yu. V. Vasopressin: A search for the mechanism of increased water permeability. In: Sov. Sci. Rev. F. Physiol. Gen. Biol. Harwood Acad. Publ. 1994. Vol.7. P. 85 -

87. Natochin Yu. V., Bogolepova A.E., Kuznetsova A.A., Shakhmatova EI Vol.34. P. 327-

88. Study of the role of prostaglandin E 2 in urine flow regulation in chronic renal failure. Scand. J. Urol. Nephrol. 2000, 173

89. Natochm Y.V., Parnova R.G., Shakhmatova EJ. et al AVP-independent high osmotic water permeability of frog urinary bladder and autacoids. Eur. J. Physiol. 1996. Vol.433. P. 136-

90. Natochin Y.V., Shakhmatova E.L Vasopressin Vl-antagonist increases the hydroosmotic response to arginine vasopressin in frog urinary bladder. Eur. J. Physiol. 1992. Vol.421. P. 406

91. Natochin Yn.V., Shakhmatova E.L, Komissarchik Ya.Yn. et al. Prostaglandin-dependent osmotic water permeability of the frog and trout urinary bladder. Сотр. Biochem. Physiol. 1998. 121 A. P. 59-

92. Nielsen S., Chou C.L., Marples D., Christensen E.L, Kishore B.K., and Knepper M.A. Vasopressin increases water permeability of kidney collecting duct by including translocation of aquaporin-CD water channels to plasma membrane. Proc.Natl. Acad. Sci. USA. 1995. Vol.92. P. 1013-1

93. Nielsen S, FrokiaerJ, Marples D, Kwon Т.Н., Agre P., Knepper MA. Aquaporins in the kidney: from molecules to medicine. Physiol. Rev. 2002. V. 82. N. 1. P. 205-

94. Nordmann J.J. Stimulus secretion coupling. Progr. Brain Res. 1983. Vol.60. P. 283-

95. Nordmann J.J., Stuenkel E.L. Electrical properties of axons and neurohypophesial nerve terminals and their relationship to secretion in the rat. J. Physiol. 1986. Vol.380. P. 521-

96. Orlqff J., Handler JS. The similarity of effects of vasopressin, adenosine-3,5-phosphate (cyclic AMP) and theophelline on the toad bladder. J. Clin. Invest. 1962. Vol.41. P. 702-

97. Osborn J.W., Collister J.P., Carlson S.H. Angiotensin and osmoreceptor inputs to the area postrema: role in long-term control of fluid homeostasis and arterial pressure. Clin Exp. Pharmacol Physiol. 2000. Vol.27. N.(5-6). P. 443-

98. OzawaT., Tanaka H, Nakano R, Sato M., Lnuzuka Т., Soma Y., Yoshimura N.. Fnkuhara N, Tsuji S. Nocturnal decrease in vasopressin secretion into plasma in patients with multiple system atrophy. J. Neurol. Neurosurg Psychiatry. 1999. Vol.67. N.4. P. 542-

99. Palm C, Gross P. Vrvasopressin receptor antagonists-mechanism of effect and clinical implications in hyponatraemia. Nephrol. Dial. Transplant. 1999. Vol.14. N l l P. 2559-2

100. Pantzar N., Limdin S., Westrom B.R. Different properties of paracellular pathway account for the regional small intestinal permeability to the peptide desmopressin. J. Pharm. Sci. 1995. Vol.84. P. 1245-1

101. Parker K.J., Lee T.M. Central vasopressin administration regulates the onset of facultative paternal behavior in microtus pennsylvanicus. Horm. Behav. 2001. Vol.39. N.4. P.285-294. 174

102. Parrott R.F., Vellncci S.V., Goode J.A. Intravenous lysine vasopressin lowers body temperature in normal and febrile pigs. Peptides. 1999. Vol.20. N.6. P. 753-

103. Pavel S. Presence of relatively high concentration of arginine vasotocin in the cerebrospinal fluid of newborn and infants. J. Clin. Endocrinol. Metab. 1980. Vol.50. P. 271-

104. Polenov A.L., Chetverukhin V.K. Ultrastructural radioautographic analysis of neurogenesis in the hypothalamus of the adult frog, Rana temporaria L., with special reference to physiological regeneration of the preoptic nucleus. П. Types of neuronal cell produced. Cell Tiss. Res. 1993. Vol.271. P. 351-

105. Poulain D.A., Wakerley J.B. Electrophysiology of hypothalamic magnocellular neurons secreting oxytocin and vasopressin. Neuroscience. 1982. Vol.7. N.4. P. 773-

106. Pouzet В., Serradeil-Le Gal C, Bonby N., Maffrand J.P., Le Fur G., Bankir L. Selective blockade of vasopressin V2 receptors reveals significant V2-mediated water reabsorption in Brattleboro rats with diabetes insipidus. Nephrol. Dial. Transplant. 2001. Vol.16. N.4. P. 725

107. Ramwell P. W., Shaw J.E. Biological significance of the prostaglandins. Recent Prog. Horm. Res. 1970. N.26. P. 139-

108. Richard D., Bourque C.W. Atrial natriuretic peptide modulates synaptic transmission from osmoreceptor afferents to the supraoptic nucleus. J. Neurosci. 1996. Vol.16. N.23. P. 75267

109. Risvanis J., Naitoh M, Johnston C.I., Burrell L.M. In vivo and in vitro characterisation of a nonpeptide vasopressin V(1A) and V(2) receptor antagonist (YM087) in the rat. Eur J. Pharmacol. 1999. Vol.381. N.l. P. 23-

110. Robertson G.L., Athar S., Shelton R.L. Osmotic control of vasopressin function. Disturbances in body fluid osmolality. Bethesda. Amer. Physiol. Soc. 1977. P. 125-

111. Roberts P.R., Bumey J.D., Black K.W., Zaloga G.P. Effect of chain length on absorption of biologically active peptides from the gastrointestinal tract. Digestion. 1999. Vol.60. N.4. P. 332

112. Rodrigues R.A., Humphreys M.H. Control of sodium excretion. Textbook of Nephrology. 1995. Vol.1. P. 266-

113. Schlondorff D., Satriano J. Interactions of vasopressin, cAMP and prostaglandins in toad urinary bladder. Amer. J. Physiol. 1985. N.248 (3 Pt 2). P. F454-F

114. SharrerE, Sharrer B. Neuroendocronology. N.Y. L. Columbia Univ. Press. 1963. 289P. 175

115. ShinboL, FiishimiK., KasaharaM., YamanchiK., SasakiS., ManimoF. Functional analysis of aquaporin-2 mutants associated with nephrogenic diabetes insipidus by yeast expression. Am. J. Physiol. 1999. Nov. 277(5 Pt2). F734-

116. Smith H.W. The kidney. Structure and function in health and disease. New York: Oxford University Press. 1951. 1050P. Smith H. W. Principles of renal physiology. Oxford univ. Press, New York. 1956. 237P. Stribley JM., Carter C.S. Developmental exposure to vasopressin increases aggression in adult prairie voles. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. Vol.96. N.22. P.l 2601-12

117. Sutherland E. W. Studies on the mechanism of hormon action. In: Lindstein J. (Ed.) Nobel lectures in physiology and medicine. Nobel Foundation, World Scientific. Singapore. 1992. P. 5-

118. Szalai C, Triga D., Conner A. C112R, W323S, N317K mutations in the vasopressin V2 receptor gene in patients with nephrogenic diabetes insipidus. Mutations in brief no. Hum. Mutat. 1998. Vol.12. N. 2. P. 137-

119. Tozaki H, Odoriba Т., Iseki Т., Taniguchi Т., Fujita Т., Murakami M Muranishi S., Yamamoto A. Use of protease inhibitors to improve calcitonin absorption from the small and large intestine in rats. J. Pharm. Pharmacol. 1998. Vol.50. N.8. P.913-

120. Thibonnier M, Kilani A., Rahman M„ DiBlasi T.P., Warner K., Smith M.C., Leenhardt A.F., Broiiard R. Effects of the nonapeptide V(l) vasopressin receptor antagonist SR49059 in hypertensive patients. Hypertension. 1999. Vol.34. N.6. P. 1293-1

121. Trinh Trang Tan M.M., Bouby K, Doute M., Bankir L. Effect of long-and short-term antidiuretic hormone availability on internephron heterogeneity in the adult rat. Am. J. Physiol. 1984. 246(6 Pt 2). P. F879-

122. ValeM.R. The role of calcium and cyclic nucleotides in the vasopressin release from the neural lobe: a mode. Rev. med. Univ. fed. Ceara. 1984. Vol.24. N.2. P.45-

123. Verney E.B. The antidiuretic hormone and factors which determine its release. Proc. Roy. Soc. Ser. B. Biol. Sci. 1947. Vol.135. P. 25-

124. Voisin D.L., Chakfe Y., Bourque С W. Coincident detection of CSF Na and osmotic pressure in osmoregulatory neurons of the supraoptic nucleus. Neuron. 1999. Vol.24. N.2. P. 453-

125. Wakerley J.B. Electrophysiology of the central vasopressin system. Vasopressin. Principles and properties. N.Y. Lond. Plenum press. 1987. Ch.5. P.211-

126. Walker R.M., Brown R.S., StqffJ.S. Role of renal prostaglandins during antidiuresis and water diuresis in man. Kidney Int. 1982. N 2 1 P.365-370. 176

127. Wells T. Vesicular osmometers, vasopression secretion and aquaporin-4: a new mechanism for osmoreception. Mol. Cell Endocrinol. 1998. Vol.136. N.2. P. 103-

128. Wells Т., ForslingM.L. Kappa-opioid modulation of vasopressin secretion in conscious rats. J. Endocrinol. 1991. Vol.129. N.3. P. 411-

129. Welner J. Biochemistry of serine protease inhibitors and their mechanisms of action: a review. J. Extra Corpor. Technol. 2003. Vol.35. N.4. P. 326-

130. Wheeler S., Mc Ginn B.J., Lucas M.L., Morrison J.D. Absorption of biologically active peptide hormones from the small intestine of rat. Acta Physiol. Scand. 2002. N.176. P. 203-

131. Yamaguchi K., HamaH., Watanabe K. Possibe roles of prostaglandins in the anteroventral third ventricular region in the hyperosmolality-evoked vasopressin secretion of conscious rats. Exp. Brain Res. 1997. Vol.113. N.2. P. 265-

132. Yarkov A., Montero S., Lemus M., Races de Alvarez Buylla E., Alvarez Buylla R. Arginine vasopressin in nucleus of the tractus solitarius induces hyperglycemia and brain glucose retention. Brain Res. 2001. Vol.902. N.2. P. 212-

133. Yatsu Т., Tomura Y., Tahara A., Wada K., Kusayama Т., Tsukada J., Tanaka A., Iizumi Y., Honda 1С Pharmacology of conivaptan hydrochloride (YM087), a novel vasopressin V1A/V2 receptor antagonist. Nippon Yakurigaku Zasshi. 1999. 114 Suppl. N. 1. P. 113-

134. Yoshitomi K., Kurokawa K. Basolateral and luminal action of vasopressin in the distal nephron segments. In: P. Gross, D. Richter, G.L. Robertson (eds.). Vasopressin. John Libbey Eurotext. Paris. 1993. P.301-310.