Исследование участия подтипов рецепторов вазопрессина в ионорегулирующей функции почек крыс тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.01, кандидат наук Голосова Дарья Викторовна

• Голосова Дарья Викторовна
• кандидат наук
• 2017

Оглавление диссертации кандидат наук Голосова Дарья Викторовна

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ЭФФЕКТЫ НОНАПЕПТИДОВ НЕЙРОГИПОФИЗА В ЦЕЛОМ ОРГАНИЗМЕ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

1.1. Гормоны нейрогипофиза у позвоночных

1.2. Регуляция синтеза и секреции аргинин-вазопрессина и окситоцина

1.3. Рецепторы нейрогипофизарных нонапептидов

1.4. Аналоги гормонов нейрогипофиза и агонисты рецепторов вазопрессина, используемые в клинической практике 31 ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Объект исследования

2.2. Формы физиологического эксперимента

2.3. Лабораторные методы исследования

2.4. Формулы и расчеты

2.5. Статистическая обработка данных

2.6. Химические реактивы 41 ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1. Влияние аргинин-вазопрессина и аргинин-вазотоцина на экскрецию катионов почкой крыс

3.2. Выведение ионов и воды почкой in vivo при селективной стимуляции V-рецепторов

3.2.1. Изучение эффекта селективной стимуляции V^-рецепторов на выведение ионов и воды почкой крыс

3.2.2. Изучение экскреции ионов натрия при стимуляции V^-рецепторов на фоне блокады каналов и транспортеров натрия в нефроне

3.2.2.1. Изучение экскреции ионов натрия при стимуляции V^-рецепторов на фоне блокады Na, Cl-котранспортера гипотиазидом

3.2.2.2. Изучение экскреции ионов натрия при стимуляции V^-рецепторов на фоне блокады эпителиальных натриевых каналов

3.2.2.3. Изучение экскреции ионов натрия при стимуляции V^-рецепторов на фоне блокады Na, K, 2С1-котранспортера

3.2.2.4. Сравнительная оценка эффекта агониста V^-рецепторов, дезамино-вазотоцина и фуросемида на экскрецию ионов натрия почкой

3.2.3. Исследование экскреции катионов почкой крыс при селективной стимуляции У2-рецепторов

3.2.4. Исследование эффекта инъекции калийуретического нонапептида при блокаде У1ь-рецепторов селективным антагонистом

3.3. Исследование роли различных подтипов У-рецепторов на осмо- и ионовыделительную функции почки при нагрузке гипертоническим раствором ^С1

3.3.1. Исследование изменения экскреции катионов и воды при гиперосмии, вызванной гипернатриемией

3.3.2. Изучение и оценка эффекта селективной блокады У1а- и У2-рецепторов на выведение катионов при гиперосмии, вызванной гипернатриемией

3.3.3. Изучение эффекта введения дезамино-вазотоцина, фуросемида и агониста У1а-рецепторов в поддержании водно-солевого баланса при гиперосмии, вызванной гипернатриемией

3.4. Подходы к оценке эффективности применения салуретических средств 94 ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ 98 ВЫВОДЫ 109 СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ 110 СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ВВЕДЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Исследование участия подтипов рецепторов вазопрессина в ионорегулирующей функции почек крыс»

Актуальность проблемы

Основные представления о принципах функциональной организации системы регуляции водно-солевого обмена были разработаны на рубеже 50-60-х гг ХХ века [217, 260, 277] и сохранились в своей основе до настоящего времени [170]. Аргинин-вазопрессин, антидиуретический гормон, был синтезирован в 1954 г дю Винье [261]. К концу ХХ столетия стало ясно, что физиологические эффекты этого нонапептида зависят от стимуляции нескольких подтипов его рецепторов [251], которые сохранились в эволюции с высокой степенью гомологии [30, 39, 163, 269]. К настоящему времени у млекопитающих описано несколько подтипов рецепторов аргинин-вазопрессина (V1a, V1b, V2), установлена их молекулярная организация [26] и выяснена локализация в мембранах клеток почечных канальцев [117, 118, 251, 253]. Каждый подтип V-рецепторов опосредует специфические функции одного гормона. Разработаны селективные агонисты и антагонисты рецепторов вазопрессина, которые успешно используются в клинике. Селективный антагонист V1a-рецепторов - релковаптан, показал хорошие результаты при лечении пациентов с болезнью Рейно, дисменореей, при повышенном тонусе матки. Селективный Vlb-антагонист, неливаптан, оказывал положительный эффект при лечении больных с психическими нарушениями [251]. Синтезирован ряд доступных для клинической практики аналогов с селективным действием на Vla-рецепторы [193]. Vla-агонисты нашли применение в клинике для лечения различных шоковых состояний, в том числе в терапии синдрома диссеминированного внутрисосудистого свертывания [193]. Агонист V2-рецепторов, десмопрессин, используется в терапии несахарного диабета [87].

Механизмы, за счет которых аргинин-вазопрессин осуществляет антидиуретическое и вазопрессорное действия, хорошо изучены. С одной стороны, этот гормон при взаимодействии с V2-рецепторами приводит к усилению реабсорбции осмотически свободной воды за счет увеличения проницаемости собирательных трубок благодаря встраиванию в апикальную мембрану клеток аквапорина-2. С другой стороны, аргинин-вазопрессин проявляет вазоконстрикторный эффект при связывании с Vla-рецепторами, расположенными на эндотелии сосудов, и способен повышать артериальное давление вследствие. Эти данные были подтверждены экспериментами как in vivo, так и in vitro. Напротив, эксперименты in vitro и in vivo, предназначенные для изучения эффекта аргинин-вазопрессина на транспорт натрия, дают результаты, которые не согласуются между собой. В экспериментах с микропункцией нефрона и на изолированных канальцах было показано, что аргинин-вазопрессин увеличивает

реабсорбцию ионов натрия [97, 112], эффект, который должен приводить к уменьшению экскреции натрия с мочой in vivo. Однако, как показали эксперименты на животных и человеке, инфузия аргинин-вазопрессина приводит не к снижению, а к усилению экскреции натрия [98, 134 , 169]. Поскольку аргинин-вазопрессин увеличивает артериальное давление за счет Via-опосредованного сосудосуживающего эффекта, усиление экскреции натрия, если оно происходит в нормальных условиях, скорее должно способствовать его снижению.

Было показано, что введение аргинин-вазопрессина в дозах, превышающих антидиуретические, приводит к усиленной экскреции ионов натрия, при этом данное действие гормона резко снижается при инъекции антагониста Via-рецепторов [218]. Используемый для терапии ночного энуреза препарат, десмопрессин, селективный агонист V2-рецепторов, усиливает выведение ионов калия [23, 262]. Однако введение селективного агониста Vib-рецепторов усиливает экскрецию калия в экспериментах in vivo и не влияет на транспорт воды в почке [287]. Непептидные антагонисты V2-рецепторов - мозаваптан, ликсиваптан, сатаваптан, толваптан - вызывают водный диурез, но также усиливают экскрецию ионов натрия почками [113]. Вероятно, комбинированные эффекты аргинин-вазопрессина на V-рецепторы осуществляются в зависимости от концентрации гормона в плазме крови.

Исследование эффекта селективной стимуляции различных подтипов V-рецепторов при использовании техники микроперфузии канальцев, а также при применении микропункционных методов, не дает ответа на вопрос о роли V-рецепторов в поддержании ионного гомеостаза, поскольку эффект стимуляции рецепторов может быть неодинаковым в клетках разных популяций нефронов. Представляется необходимым исследовать роль различных подтипов V-рецепторов в регуляции экскреции ионов почкой в экспериментах in vivo. Эти данные в современной литературе отсутствуют. Для исследования этой проблемы представляет интерес оценить изменения водно-солевого гомеостаза не только при действии аргинин-вазопрессина, но и его аналогов, а также исследовать характер возможных сдвигов ионного баланса при селективной стимуляции разных подтипов V-рецепторов. Решению этой задачи посвящена настоящая работа.

Цель исследования

Изучение эффекта селективной стимуляции подтипов V-рецепторов в экспериментах in vivo на выделение различных катионов (натрий, калий, магний, кальций) почкой крыс.

Задачи исследования

1. Исследование эффекта стимуляции Via-рецепторов, Vib-рецепторов, V2-рецепторов естественными гормонами нейрогипофиза (аргинин-вазопрессин, аргинин-вазотоцин) и селективными агонистами на экскрецию катионов (натрий, калий, магний и кальций) почкой крыс.

2. Изучение эффекта фармакологической блокады каналов и транспортеров ионов в мембранах клеток канальцев нефрона (Na, K, 2С1-котранспортер, Na, Cl-котранспортер и ENaC) на транспорт катионов в почке на фоне селективной стимуляции Via-рецепторов.

3. Изучение эффекта антагониста Vib-рецепторов на экскрецию ионов калия при усиленном калийурезе на фоне введения калийуретического нонапептида.

4. Исследование эффекта антагонистов Via-рецепторов и V2-рецепторов при гиперосмии, вызванной гипернатриемией, на выведение катионов почкой.

5. Разработка нового клиренсового метода оценки эффекта нонапептидов при селективной стимуляции Via-рецепторов и салуретических средств на состояние водно-электролитного гомеостаза.

Научная новизна

Впервые установлен высокий диуретический и натрийуретический эффект стимуляции Via-рецепторов при инъекции селективного агониста [РЬе2-11е3-Огп8]-вазопрессина, сопоставимый с действием фуросемида, одного из самых сильных диуретиков.

Впервые охарактеризована роль стимуляции Via- и V2-рецепторов в изменении выведения катионов натрия почкой при гиперосмии, вызванной гипернатриемией. Антагонист Via-рецепторов усиливает реабсорбцию ионов натрия в начальных отделах дистального сегмента нефрона, а антагонист V2-рецепторов уменьшает в них реабсорбцию ионов натрия, что приводит к повышению осмотического концентрирования мочи. Усиленная реабсорбция осмотически свободной воды происходит за счет увеличенного притока жидкости к дистальным частям канальцев и создания высокого осмотического градиента в мозговом веществе почки. Сочетание уменьшения реабсорбции ионов натрия при стимуляции V^-рецепторов и усиления реабсорбции осмотически свободной воды, вследствие активации V2-

рецепторов, ускоряет удаление избытка солей натрия, калия, магния, кальция, что способствует восстановлению водно-электролитного баланса.

Предложен новый вариант расчета клиренса катионов, что позволяет оценить физиологический эффект агонистов V-рецепторов, гормонов и салуретических средств, с учетом содержания каждого изучаемого катиона во внеклеточной жидкости.

Теоретическая и практическая значимость работы

Впервые показана специфика функциональных эффектов стимуляции различных подтипов V-рецепторов в почке in vivo. Полученные данные могут быть использованы для создания препаратов, селективно активирующих разные подтипы V-рецепторов и избирательно влияющих на транспорт отдельных ионов и воды в почке. Эти препараты могут быть показаны для терапии пациентов с электролитными расстройствами, при нарушении баланса натрия, калия, магния, кальция. В клинической практике необходим подход для лечения отеков, дисбаланса отдельных ионов в крови. Полученные нами результаты свидетельствуют о возможности разработки новых пептидов, снижающих выведение воды и усиливающих выведение ряда ионов почкой. В настоящей работе представлен вариант применения селективного агониста Via-рецепторов при гипернатриемии, ускоряющий экскрецию ионов натрия. Показан эффект введения антагониста Vib-рецепторов, который селективного снижает экскрецию ионов калия в почке, при усиленном калийурезе. Нонапептиды с различной способностью стимулировать Via-, Vib- и V2-рецепторы могут рассматриваться в качестве перспективных терапевтических средств при лечении пациентов с нарушениями водно-электролитного баланса.

Необходимость прогностической оценки эффекта лекарственной терапии при профилактике нарушений электролитного баланса требует адекватных способов оценки состояния пациентов и эффективности фармакотерапии. Подход к решению этой проблемы нашел выражение в разработке метода расчета эффекта действующего вещества с использованием клиренсовых формул с учетом не только концентрации данного катиона в сыворотке крови, но и общего содержания во внеклеточной жидкости. Новый подход отличается от стандартного при изучении экскреции катионов и характеризует селективные изменения ионного баланса при действии физиологически активного вещества на почку, возможные побочные эффекты из-за неравномерной потери отдельных ионов. Полученные данные могут быть использованы в лекциях и на семинарах в курсах физиологии, фармакологии и фармакотерапии для студентов высших учебных заведений.

Положения, выносимые на защиту

1. Аргинин-вазопрессин усиливает реабсорбцию осмотически свободной воды, а при повышении его дозы приводит к увеличению выведения ионов натрия и снижению экскреции ионов магния с мочой.

2. В одинаковых с аргинин-вазопрессином дозах аргинин-вазотоцин вызывает более выраженный натрийурез. Натрийуретический эффект аргинин-вазотоцина опосредован взаимодействием с Vla-рецепторами. Введение Vla-антагониста [Phe2-Ile3-Om8]-вазопрессина на фоне инъекции аргинин-вазотоцина приводит к снижению экскреции ионов натрия.

3. Инъекция Vla-агониста [Pmp1-Tyr(Me)2]-вазопрессина усиливает экскрецию ионов натрия, калия, магния и кальция. Высокий натрийуретический эффект нонапептидного регулятора сопоставим с действием максимально эффективной дозы фуросемида.

4. Введение V2-агониста (десмопрессин) контрольным крысам не изменяет экскрецию ионов натрия, но усиливает выведение ионов калия и снижает экскрецию ионов магния. Инъекция V2-антагониста [Pmp1-DIle2-Ile4]-вазопрессина животным с гиперосмией приводит к усилению экскреции ионов натрия, магния и осмотически свободной воды.

5. Введение дезамино-аргинин-вазотоцина селективно усиливает экскрецию калия почками крыс. Инъекция антагониста Vlb-рецепторов (неливаптан) снижает калийуретический эффект дезамино-аргинин-вазотоцина до исходного (контрольного) уровня.

6. Оценка эффекта диуретических средств проведена с использованием новых клиренсовых методов, которые учитывают общее содержание изучаемых катионов во внеклеточной жидкостной фазе.

Апробация работы

Результаты исследования доложены и обсуждены на XVIII Международной медико-биологической конференции молодых исследователей, посвященной двадцатилетию медицинского факультета СПбГУ (Санкт-Петербург, 2015), 11-ом Всемирном конгрессе по нейрогипофизарным гормонам WCNH-2015 (Квинстаун, Новая-Зеландия, 2015), IX Всероссийской конференции «Нейроэндокринология-2015», посвященной 90-летию А. Л.Поленова (Санкт-Петербург, 2015), Всероссийской конференции «Современные проблемы физиологии высшей нервной деятельности, сенсорных и висцеральных систем», посвященной 90-летию со дня основания Института физиологии им. И. П. Павлова РАН (СПб-Колтуши, 2016), совместном заседании Американского Физиологического общества и Физиологического общества (Великобритания) «Physiology-2016» (Дублин, Ирландия, 2016), V Съезде

физиологов СНГ (Сочи—Дагомыс, 2016), XV Всероссийском совещании с международным участием и VIII Школе по эволюционной физиологии, посвященных памяти академика Л. А. Орбели и 60-летию ИЭФБ РАН (Санкт-Петербург, 2016), международной конференции «Experimental biology-2017» (Чикаго, США, 2017), XXIII Съезде Физиологического общества им. И. П. Павлова (Воронеж, 2017).

По теме диссертации опубликовано 19 работ, в том числе 5 статей в рецензируемых научных журналах из перечня изданий, рекомендованных Высшей аттестационной комиссией для публикации материалов диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук.

Личный вклад автора

Все экспериментальные данные, приведенные в диссертационной работе, получены лично автором или при его непосредственном участии. Автор проводил статистическую обработку полученных данных, осуществлял их анализ и обобщение, принимал участие в подготовке публикаций по материалам работы.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 134 страницах и состоит из введения, обзора литературы, характеристики материала и методов исследования, 4 глав результатов исследования, обсуждения результатов, выводов, списка литературы, включающего 27 отечественных и 270 иностранных источников. Диссертация иллюстрирована 29 таблицами и 33 рисунками

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

МЕХАНИЗМ ДЕЙСТВИЯ ВАЗОПРЕССИНА И ОКСИТОЦИНА: РЕЦЕПТОРЫ НЕЙРОГИПОФИЗАРНЫХ ГОРМОНОВ

Механизм регуляции водно-солевого обмена в эволюции позвоночных постепенно усложнялся: изменялось строение выделительных органов и систем [36], направленных на поддержание баланса воды и натрия - основного внеклеточного катиона, чья концентрация у большинства животных обеспечивает объем внутрисосудистой жидкости. Происходила смена нонапептидов: вместо аргинин-вазотоцина у млекопитающих секретируется аргинин-вазопрессин, за исключением свиней и некоторых сумчатых. В нонапептидах нейрогипофиза Ile был заменен на Phe в 3 положении в молекуле аргинин-вазопрессина, Arg - на Leu в 8 положении в молекуле окситоцина, который также секретируется в нейрогипофизе. В настоящем обзоре литературы будут рассмотрены современные представления об эффекте нейрогипофизарных гормонов, аргинин-вазопрессина и окситоцина, и механизме их действия.

1.1. Вазопрессин, окситоцин и их аналоги у позвоночных

Оливер и Шафер в 1895 г в экспериментах при внутривенном введении экстрактов гипофиза, щитовидной железы и селезенки собаке продемонстрировали, что экстракт гипофиза способен повышать артериальное давление [173]. В 1909 г сэр Генри Дейл показал, что экстракт задней доли гипофиза вызывает сокращение матки у кошки [7]. Данное активное начало позже получило название окситоцин (от греч. юку^ - сильный, токох^ - схватки) "ускоряющий роды". В начале ХХ столетия [175, 207] стало известно, что введение экстракта задней доли гипофиза способствует секреции молока молочной железой. Антидиуретическое свойство этого экстракта было открыто в 1913 г [95, 263]. В этом же году Ван ден Велден использовал антидиуретическое действие вытяжки гипофиза на ненаркотизированных животных и на людях, которые страдали несахарным диабетом, в 1924 был подтвержден антидиуретический эффект этого вещества [32]. Долгое время считали, что вазопрессорный и антидиуретический эффекты вызывают разные вещества. Эти вещества впоследствии были названы антидиуретическим гормоном и вазопрессином (от латинских слов vas - сосуд и presso - давлю). После того как было установлено наличие прессорного и окситотического факторов в нейрогипофизе [139], неоднократно принимались попытки выделения в химически чистом виде данных веществ. Только в 50-х гг ХХ столетия структура аргинин-вазопрессина [84, 240] и окситоцина [84, 239, 261] была определена. Дю Виньё установил последовательность из 9 аминокислот и осуществил синтез окситоцина и аргинин-

вазопрессина [82], за что в 1955 г получил Нобелевскую премию в области химии. В настоящее время изучены гормоны нейрогипофиза десятков видов животных и синтезировано более сотни аналогов вазопрессина и окситоцина, что позволяет охарактеризовать некоторые особенности их структуры и биологической активности. Суперсемейство вазопрессин/окситоцин включает аргинин-вазопрессин, лизин-вазопрессин, окситоцин и другие схожие пептиды, представленные как у позвоночных, так и у беспозвоночных [201].

Гены, кодирующие вазопрессин-подобные пептиды и их рецепторы, появились более 700 млн лет назад у представителей животного мира [6, 126]. Типичное строение молекул-предшественников вазопрессин-подобных пептидов, от которых стала развиваться группа нонапептидов, уже было характерно для представителей Archametazoa [115]. У беспозвоночных, как и у бесчелюстных, обнаружен только один пептид этого суперсемейства -либо группы вазопрессина, либо группы окситоцина [159]. Большинство бесчелюстных синтезируют только аргинин-вазотоцин, который является предшественником большой группы нонапептидов. Предполагается, что гены окситоцина и аргинин-вазопрессина появились вследствие дубликации общего гена-предшественника у бесчелюстных около 500 млн лет назад в Ордовикском периоде [7, 116]. В эволюции позвоночных продублировался единственный анцестральный ген, который кодировал предшественника вазопрессин-подобной молекулы, что привело к формированию двух линий развития в суперсемействе вазопрессин/окситоцин: в то время как первичный ген продолжал кодировать вазопрессин-подобные молекулы, другой ген кодировал окситоцин-подобные молекулы. Вазопрессин-подобные нонапептиды участвуют в регуляции осмотического гомеостаза, в то время как окситоцин усиливает секрецию молока молочной железой, сокращение матки, секрецию пролактина, оказывает влияние на различные поведенческие реакции [81, 198].

Молекула-предшественник представлена 9 аминокислотами, которые сохраняются на всем протяжении эволюции у представителей позвоночных, с заменой в 3 и 8 положениях (Таблица 1). У костистых рыб произошла точечная мутация в гене, кодирующем окситоцин-подобные пептиды, что привело к синтезу изотоцина. В развитии ранних тетрапод ген, кодирующий изотоцин, также мутировал, что привело к синтезу окситоцина. Аргинин-вазопрессин появился у млекопитающих, вследствие точечной мутации аргинин-вазотоцина с последующей точечной мутацией этой молекулы у свиней, у которых Arg заменился на Lys в 8 положении с формированием лизин-вазопрессина. У некоторых сумчатых (род Macropus) точечная мутация привела к образованию фенипрессина с заменой аминокислоты Tyr на Phe во 2 положении. У короткохвостых кенгуру (род Setonix) в нейрогипофизе вырабатывается мезотоцин и лизин-вазопрессин. У амфибий и рептилий вырабатывается мезотоцин и аргинин-вазотоцин. У некоторых лягушек и жаб, помимо вазотоцина и мезотоцина, секретируется

гидрин 2 (Таблица 1), у Xenopus laevis секретируется 11-членный пептид (Cys-Tyr-Ile-Gln-Asn-Cys-Pro-Arg-Gly-Lys-Arg-OH), гидрин 1 [3]. У птиц секретируется окситоцин и аргинин-вазотоцин. Аргинин-вазотоцин - нонапептид нейрогипофиза низших позвоночных, рыб, рептилий, амфибий и птиц, который принимает участие в осмотической регуляции [36]. АВТ -гормон нейрогипофиза низших позвоночных, птиц, рептилий, который участвует в регуляции осмотического гомеостаза. У бесхвостых амфибий АВТ увеличивает проницаемость для воды клеток эпителия мочевого пузыря и кожи, способствуют активному транспорту в них ионов натрия [3, 5, 7] и увеличивает проницаемость для воды мочевого пузыря у лягушек [274, 293, 290].

Вопрос о наличии аргинин-вазотоцина у млекопитающих остается спорным. Ввиду схожего структурного строения аргинин-вазопрессина и аргинин-вазотоцина, использование иммуноферментного анализа для определения нонапептидов в биологических жидкостях затруднено. Показано, что аргинин-вазотоцин был определен у млекопитающих [44, 158], в том числе у человека в гестационном периоде в гипофизе [215]. Однако нельзя исключить, что процесс идентификации нонапептидов осложняет их связь с белками в циркулирующей крови. В настоящее время для точного определения концентрации нонапептидов в плазме крови используют радиоиммунный анализ [141], который применяют лишь в некоторых лабораториях по всему миру.

Таблица 1 . Формулы нонапептидов нейрогипофиза.

Название Формула нонапептида

Молекула-предшественник Cys-Tyr-•-Gln-Asn-Cys-Pro-•-Gly-NH2

Мезотоцин Cys-Tyr-Пe-Gln-Asn-Cys-Pш-Пe-Gly-NH2

Изотоцин Cys-Tyr-Пe-Ser-Asn-Cys-Pro-Пe-Gly-NH2

Аргинин-вазотоцин Cys-Tyr-Пe-Gln-Asn-Cys-Pш-Arg-Gly-NH2

Гидрин 2 Cys-Tyr-Пe-Gln-Asn-Cys-Pш-Arg-Gly-OH

Окситоцин Cys-Tyr-Пe-Gln-Asn-Cys-Pш-Leu-Gly-NH2

Аргинин-вазопрессин Cys-Tyr-Phe-Gln-Asn-Cys-Pro-Arg-Gly-NH2

Лизин-вазопрессин Cys-Tyr-Phe-Gln-Asn-Cys-Pro-Lys-Gly-NH2

Фенипрессин Cys-Phe-Phe-Gln-Asn-Cys-Pro-Arg-Gly-NH2

Аргинин-вазопрессин и окситоцин - гормоны нейрогипофиза большинства млекопитающих. Кольцевая структура молекулы нонапептида имеет 2 ß-поворота, гидрофобную часть молекулы формирует наиболее протяженная ее сторона, начиная с Phe. Эта часть молекулы гормона вносит основной вклад в определение аффинности. Линейная часть молекулы гидрофильна [206]. Нейрогипофизарные горомоны - циклические нонапептиды, состоящие из 9 аминокислот, с дисульфидным мостиком между остатками Cys в 1 и 6 положениях, который формирует так называемое кольцо [4, 5, 6]. Такое строение приводит к тому, что молекула представляет собой 6-аминокислотную циклическую часть и СООН-терминалный а-амидный 3-членный хвост (Рисунок 1). В зависимости от аминокислоты в 8 положении нонапептиды относят к окситоциновому или вазопрессиновому семейству. Вазопрессиновое семейство содержит основные аминокислоты (Lys, Arg), семейство окситоциновых нонапептидов - нейтральные аминокислоты (Ile, Leu). Ile в позиции 3 обеспечивает взаимодействие с окситоциновыми рецепторами, Lys и Arg в 8 положении служат для взаимодействия с рецепторами вазопрессина. Различия в полярности этих аминокислотных остатков необходимы для стимуляции соответствующих рецепторов [6, 30, 31, 63].

Рисунок 1. Структура аргинин-вазопрессина.

Обозначения: красным цветом выделен дисульфидный мостик между остатками СуБ.

1.2. Регуляция синтеза и секреции аргинин-вазопрессина и окситоцина

Синтез вазопрессина происходит в несколько этапов. У млекопитающих в нейросекреторных ядрах, помимо аргинин-вазопрессина, секретируется окситоцин [83, 232, 264]. Концепция нейросекреции была основана на открытии больших гранулярных клеток, которые впоследствии были названы крупноклеточными нейронами и были найдены в гипоталамусе костистых рыб Phoxinus laevis [208]. Процесс нейросекреции включает синтез гормонов и их накопление в нейросекреторных гранулах и перикарионе, движение гранул по нервным волокнам и их хранение в терминалях аксонов в нейрогипофизе до освобождения в сосудистое русло под влиянием соответствующих импульсов. В начале 70-х годов XX столетия стало известно, что синтез нонапептидов нейрогипофиза осуществляется в ядрах гипоталамуса [202] в виде молекул-предшественников [110, 172], транспортируемых со специфическими белками-переносчиками нейрофизинами по аксонам нейронов в заднюю долю гипофиза [45, 46, 47, 101], где гормоны депонируются и секретируются в кровь. У человека найдено 2 нейрофизина, у некоторых животных, в том числе у свиней - 3 [241, 266]. Cys в 1 и Tyr во 2 положении в молекуле окситоцина и аргинин-вазопрессина необходимы для связи с нейрофизинами. Предшественник окситоцина (препро-окситоцин) связывается с нейрофизином-Г Предшественник аргинин-вазопрессина происходит из молекулы-предшественника, который начинается с сигнальной части, отделяемой Aln от про-вазопрессина, состоит из 164 аминокислот и имеет массу 17423 кДa [94]. Он представляет собой сигнальный пептид, аргинин-вазопрессин, нейрофизин II и копептин (Рисунок 2). Копептин - гликопептид из 39 аминокислот, является С-концевой частью прогормона вазопрессина, секретируется в эквимолярном вазопрессину количестве, остается стабильным несколько суток [164].

Рисунок 2. Строение молекулы-предшественника аргинин-вазопрессина.

Пептид-предшественник синтезируется в крупноклеточных нейронах, поступает в эндоплазматический ретикулум, где удаляется сигнальный пептид и добавляется углеводородная цепь. Дополнительный пострансляционный процессинг происходит во время транспорта к терминали аксона в задней доле гипофиза, где ферментативно отщепляются аргинин-вазопрессин, копептин и нейрофизин II, которые сохраняются в нейросекреторных

гранулах, пока не поступят специфические стимулы для секреции в кровь кальций-опросредованным экзоцитозом [4].

Окситоцин синтезируется в первую очередь крупноклеточными нейросекреторными клетками в гипоталамических паравентрикулярном и супраоптическом ядрах. Аксоны клеток поступают в заднюю долю гипофиза, где окситоцин высвобождается в системное циркуляторное русло таким же путем, как и аргинин-вазопрессин. Крупноклеточные нейроны секретируют нонапептиды из перикариона, дендритов и/или аксонных терминалей [140, 142]. Аргинин-вазопрессин секретируется в паравентрикулярном, дополнительном, супраоптическом ядрах, также его секреция выявлена в супрахиазматическом ядре [69, 70, 157, 223]. Нейроны супраоптического ядра дают проекции в паравентрикулярное ядро [213], обнаружено существование двусторонних связей между ними [48, 75]. В опытах на хомяках [166] и в экспериментах на крысах [69, 223] была отмечена проекция нейронов супрахиазматичекого ядра в паравентрикулярное. Окситоцин секретируется не только из окончаний аксонов в гипофизе, но он также высвобождается из дендритов или клеточных тел в гипоталамусе [146, 171].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Голосова Дарья Викторовна, 2017 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. 125I—labelled d(CH2)5[Tyr(Me)2,Thr4,Tyr-NH29]OVT: a selective oxytocin receptor ligand / J. Elands, C. Barberis, S. Jard [et al.] // Eur. J. Pharmacol. - 1988. - Vol. 147, N 2. - P. 197207.

2. 1-deamino-8-D-arginine vasopressin: a new pharmacological approach to the management of haemophilia and von Willebrand's disease / P. M. Mannucci, F. I. Pareti, Z. M. Ruggeri [et al.] // Lancet. - 1977. - Vol. 309, N 8017. - P. 869-872.

3. Acher R. Adaptive evolution of water homeostasis regulation in amphibians: vasotocin and hydrins / R. Acher // Biol. Cell. - 1997. - Vol. 89. - P. 283-291.

4. Acher R. Dynamic processing of neuropeptides / R. Acher, J. Chauvet, Y. Rouille // J. Mol. Neurosci. - 2002. - Vol. 18, N 3. - P. 223-228.

5. Acher R. La structure de la vasopressine de boeuf / R. Acher, J. Chauvet // Biochim. Biophys. Acta. - 1953. - Vol. 12, N 3. - P.487-488.

6. Acher R. Man and the chimaera. Selective versus neutral oxytocin evolution / R. Acher, J. Chauvet, M. T. Chauvet // Adv. Exp. Med. Biol. - 1995. - Vol. 395. - P. 615-627.

7. Acher R. Molecular evolution of biologically active polypeptides / R. Acher // Proc. R. Soc. Lond. Biol. Sci. - 1980. - Vol. 210, N 1178. - P. 21-43.

8. Activity of the hypothalamo-hypophyseal-adrenocortical system in prenatally stressed female rats in a model of post-traumatic stress disorder / N. E. Ordyan, S. G. Pivina, V. I. Mironova [et al.] // Neurosci. Behav. Physiol. - 2016. - Vol. 46, N 5. - P. 552-558.

9. Acute and chronic hyperglycemic effects of vasopressin in normal rats: involvement of V1a receptors / C. Taveau, C. Chollet, D. G. Bichet [et al.] // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. -2017. - Vol. 312, N 3. - P. 127-135.

10. Amico J. A. Clearance studies of oxytocin in humans using radioimmunoassay measurements of the hormone in plasma and urine / J. A. Amico, J. S. Ulbrecht, A. G. Robinson // J. Clin. Endocrinol. Metab. - 1987. - Vol. 64, N 2. - P. 340-345.

11. An K. W. Cloning and expression of aquaporin 1 and arginine vasotocin receptor mRNA from the black porgy, Acanthopagrus schlegeli: effect of freshwater acclimation / K. W. An, N. N. Kim, C. Y. Choi // Fish Physiol. Biochem. - 2008. - Vol. 34, N 2. - P. 185-194.

12. Anatomical and functional evidence for a role of arginine-vasopressin (AVP) in rat olfactory epithelium cells / G. Levasseur, C. Baly, D. Grebert [et al.] // Eur. J. Neurosci. - 2004. -Vol. 20, N 3. - P. 658-670.

13. Ando Y. Luminal vasopressin modulates transport in the rabbit cortical collecting duct / Y. Ando, K. Tabei, Y. Asano // J. Clin. Invest. - 1991. - Vol. 88, N 3. - P. 952-959.

14. Antinatriuretic effect of vasopressin in humans is amiloride sensitive, thus ENaC dependent / A. Blanchard, M. Frank, G. Wuerzner [et al.] // Clin. J. Am. Soc. Nephrol. - 2011. - Vol. 6. - P. 753-759.

15. Antoni F. A. Novel ligand specificity of pituitary vasopressin receptors in the rat / F. A. Antoni // J. Neuroendocrinol. - 1984. - Vol. 39, N 2. - P. 186-188.

16. Arginine vasopressin (AVP): a review of its historical perspectives, current research and multifunctional role in the hypothalamo-hypophysial system / F. Rotondo, H. Butz, L. V. Syro [et al.] // Pituitary. - 2016. - Vol. 19, N 4. - P. 345-355.

17. Arrestin effects on internalization of vasopressin receptors / D. Bowen-Pidgeon, G. Innamorati, H. M. Sadeghi [et al.] // Mol. Pharmacol. - 2001. - Vol. 59, N 6. - P. 1395-1401.

18. Assad N. I. Oxytocin, functions, uses and abuses: a brief review / N. I. Assad, A. K. Pandey, L. Sharma // Theriogenology Insight. - 2016. - Vol. 6, N 1. - P. 1-17.

19. Association of beta-arrestin with G protein-coupled receptors during clathrin-mediated endocytosis dictates the profile of receptor resensitization / R. H. Oakley, S. A. Laporte, J. A. Holt [et al.] // J. Biol. Chem. - 1999. - Vol. 274, N 45. - P. 32248-33257.

20. Atrial natriuretic peptide and oxytocin induce natriuresis by release of cGMP / T. Soares, T. Coimbra, A. Martins [et al.] // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. - 1999. - Vol. 96, N 1. - P. 278-283.

21. Atrial natriuretic peptide inhibits a cation channel in renal inner medullary collecting duct cells / D. B. Light, E. M. Schwiebert, K. H. Karlson [et al.] // Science. - 1989. - Vol. 243, N 4889. - P. 383-385.

22. Atrial natriuretic peptide, oxytocin, and vasopressin increase guanosine 3',5'-monophosphate in LLC-PK1 kidney epithelial cells / D. C. Leitman, V. L. Agnost, R. M. Catalano [et al.] // J. Endocrinol. - 1988. - Vol. 122, N 4. - P. 1478-1485.

23. Aunsholt N. Plasma half-life of DDAVP in uraemic patients / N. Aunsholt, H. Vilhardt, E. Schmidt // Acta Pharmacol. Toxicol. (Copenh). - 1986. - Vol. 59, N 4. - P. 332-333.

24. Autoradiographic localization of vasopressin and oxytocin binding sites in rat kidney / E. Tribollet, C. Barberis, J. J. Dreifuss [et al.] // Kidney Int. - 1988. - Vol. 33, N 5. - P. 959-965.

25. AVP-independent high osmotic water permeability of frog urinary bladder and autacoids / Y. V. Natochin, R. G. Parnova, E. I. Shakhmatova [et al.] // Pflugers Arch. - 1996. - Vol. 433, N 1. - P. 136-145.

26. Axial heterogeneity of vasopressin-receptor subtypes along the human and mouse collecting duct / M. Carmosino, H. L. Brooks, Q. Cai [et al.] // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2007.

- Vol. 292, N 1. - P. 351-360.

27. Ball S. G. Vasopressin and disorders of water balance: the physiology and pathophysiology of vasopressin / S. G. Ball // Ann. Clin. Biochem. - 2007. - Vol. 44, N 5. - P. 417431.

28. Bankir L. Antidiuretic action of vasopressin: quantitative aspects and interaction between V1a and V2 receptor-mediated effects / L. Bankir // Cardiovasc. Res. - 2001. - Vol. 51, N 3.

- P. 372-390.

29. Bao A. M. The stress system in depression and neurodegeneration: focus on the human hypothalamus / A. M. Bao, G. Meynen, D. F. Swaab // Brain Res. Rev. - 2008. - Vol. 57, N 2. - P. 531-553.

30. Barberis C. Structural bases of vasopressin/oxytocin receptor function / C. Barberis, B. Mouillac, T. Durroux // J. Endocrinol. - 1998. - Vol. 156, N 2. - P. 223-229.

31. Barberis C. Vasopressin and oxytocin receptors in the central nervous system / C. Barberis, E. Tribollet // Crit. Rev. Neurobiol. - 1996. - Vol. 10, N 1. - P. 119-54.

32. Barbour H.G. Some effects of posterior pituitary on water metabolism / H.G. Barbour // Yale J. Biol. Med. - 1932. - Vol. 4, N 6. - P. 797-805.

33. Barratt T. M. Extracellular fluid in individual tissues and in whole animals: the distribution of radiosulfate and radiobromide / T. M. Barratt, M. Walser // J. Clin. Invest. - 1969. -Vol. 48, N 1. - P. 56-66.

34. Barrett L. K. Vasopressin: mechanisms of action on the vasculature in health and in septic shock / L. K. Barrett, M. Singer, L. H. Clapp // Crit. Care Med. - 2007. - Vol. 35, N 1. - P. 3340.

35. Bazua-Valenti S. Physiological role of SLC12 family members in the kidney / S. Bazua-Valenti, M. Castaneda-Bueno, G. Gamba // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2016. - Vol. 311, N 1. - P. 131-144.

36. Bentley P. J. Endocrines and osmoregulation. A comparative account in vertebrates / P. J. Bentley. - Berlin: Springer, 2002. - 292 P.

37. Biban P. Vasopressin and terlipressin in neonates and children with refractory septic shock / P. Biban, M. Gaffuri // Curr. Drug Metab. - 2013. - Vol. 14, N 2. - P. 186-192.

38. Bioavailability and pharmacokinetics of sublingual oxytocin in male volunteers / A. N. De Groot, T. B. Vree, Y. A. Hekster [et al.] // J. Pharm. Pharmacol. - 1995. - Vol. 47, N 7. - P. 571575.

39. Birnbaumer M. Vasopressin receptors / M. Birnbaumer // Trends Endocrinol. Metab. -2000. - Vol. 11, N 10. - P. 406-410.

40. Blaine J. Renal control of calcium, phosphate, and magnesium homeostasis / J. Blaine, M. Chonchol, M. Levi // Clin. J. Am. Soc. Nephrol. - 2015. - Vol. 10, N 7. - P. 1257-1272.

41. Bonjour J. P. Plasma concentrations of ADH in conscious and anesthetized dogs / J. P. Bonjour, R. L. Malvin // Am. J. Physiol. - 1970. - Vol. 218, N 4. - P. 1128-1132.

42. Bonny O. Calcium reabsorption in the distal tubule: regulation by sodium, pH, and flow / O. Bonny, A. Edwards // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2013. - Vol. 304, N 5. - P. 585-600.

43. Bourque C. W. Central mechanisms of osmosensation and systemic osmoregulation / C. W. Bourque // Nat. Rev. Neurosci. - 2008. - Vol. 9, N 7. - P. 519-531.

44. Bowie E. P. Immunocytochemical evidence for the presence of arginine vasotocin in the rat pineal gland / E. P. Bowie, D. C. Herbert // Nature. - 1976. - Vol. 261, N 5555. - P. 66.

45. Brinton R. D. Vasopressin in the mammalian brain: the neurobiology of a mnemonic peptide / R. D. Brinton // Prog. Brain Res. - 1999. - Vol. 119. - P. 177-199.

46. Brownstein M. J. Neurophysin biosynthesis in normal rats and in rats with hereditary diabetes insipidus / M. J. Brownstein, H. Gainer // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. - 1977. - Vol. 74, N 9. - P. 4046-4049.

47. Brownstein M. J. Synthesis, transport, and release of posterior pituitary hormones / M. J. Brownstein, J. T. Russell, H. Gainer // Science. - 1980. - Vol. 207, N 4429. - P. 373-378.

48. Buijs R. M. Intra- and extrahypothalamic vasopressin and oxytocin pathways in the rat / R. M. Buijs // Cell Tissue Res. - 1978. - Vol. 192, N 3. - P. 423-435.

49. Burnatowska-Hledin M. A. Vasopressin V1 receptors on the principal cells of the rabbit cortical collecting tubule. Stimulation of cytosolic free calcium and inositol phosphate production via coupling to a pertussis toxin substrate / M. A. Burnatowska-Hledin, W. S. Spielman // The J. Clin. Invest. - 1989. - Vol. 83, N 1. - P. 84-89.

50. Cantiel H. F. Atrial natriuretic factor and cGMP inhibit amiloride-sensitive Na+ transport in the cultured renal epithelial cell line, LLC-PK1 / H. F. Cantiello, D. A. Ausiello // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1986. - Vol. 134, N 2. - P. 852-860.

51. Central ANG II-receptor antagonists impair cardiovascular and vasopressin response to hemorrhage in rats / W. J. Lee, E. K. Yang, D. K. Ahn [et al.] // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. - 1995. - Vol. 268, N 6. - P. 1500-1506.

52. Chan W. Y. Natriuretic action of neurohypophysial peptides: effects of agonists and antagonists and implication of natriuretic receptor / W. Y. Chan, V. J. Hruby // J. Pharmacol. Exp. Ther. - 1988. - Vol. 246, N 2. - P. 597-602.

53. Chan W. Y. Natriuretic, diuretic and anti-arginine-vasopressin (ADH) effects of two analogs of oxytocin: [4-leucine]-oxytocin and [2,4-diisoleucine]-oxytocin / W. Y. Chan, V. Du Vigneaud // J. Pharmacol. Exp. Ther. - 1970. - Vol. 174, N 3. - P. 541-549.

54. Chan W. Y. Renal prostaglandins and natriuretic action of oxytocin and vasopressin in rats / W. Y. Chan // J. Pharmacol. Exp. Ther. - 1988. - Vol. 246, N 2. - P. 603-609.

55. Cheek D. B. The distribution of sodium and chloride and the extracellular fluid volume in the rat / D. B. Cheek, C. D. West, C. C. Golden // J. Clin. Invest. - 1957. - Vol. 36, N 2. - P. 340351.

56. Chini B. Agonist selectivity in the oxytocin/vasopressin receptor family: new insights and challenges / B. Chini, M. Manning // Biochem. Soc. Trans. - 2007. - Vol. 35, N 4. - P. 737-741.

57. Chini B. Tyr115 is the key residue for determining agonist selectivity in the V1a vasopressin receptor / B. Chini, B. Mouillac, Y. Ala, // EMBO J. - 1995. - Vol. 14, N 10. - P. 21762182.

58. Ciura S. Hypertonicity sensing in organum vasculosum lamina terminalis neurons: a mechanical process involving TRPV1 but not TRPV4 / S. Ciura, W. Liedtke, C. W. Bourque // J. Neurosci. - 2011. - Vol. 31, N 41. - P. 14669-14676.

59. Ciura S. Transient receptor potential vanilloid 1 is required for intrinsic osmoreception in organum vasculosum lamina terminalis neurons and for normal thirst responses to systemic hyperosmolality / S. Ciura, C. W. Bourque // J. Neurosci. - 2006. - Vol. 26, N 35. - P. 9069-9075.

60. Clara E. M. Renal regulation of calcium, phosphate, and magnesium / E. M. Clara, P. A. Friedman // Acid-base and electrolyte disorders: a companion to Brenner & Rector's The Kidney. -Du Bose T.D., Hamm L.L. (Eds.). Philadelphia: Saunders, 2002. - Chapter in the book. - P. 435-452.

61. Clark T. G-Protein coupled receptors: answers from simulations / T. Clark // Beilstein J. Org. Chem. - 2017. - Vol. 13. - P. 1071-1078.

62. Clerget M. Quantitative reverse transcription and polymerase chain reaction analysis of oxytocin and vasopressin receptor mRNAs in the rat uterus near parturition / M. Clerget, J. Elalouf, G. Germain // Mol. Cell. Endocrinol. - 1997. - Vol. 136, N 1. - P. 79-89.

63. Co-evolution of ligand-receptor pairs in the vasopressin/oxytocin superfamily of bioactive peptides / R. E. van Kesteren, C. P. Tensen, A. B. Smit [et al.] // J. Biol. Chem. - 1996. -Vol. 271, N 7. - P. 3619-3626.

64. Comparative pharmacology of bovine, human and rat vasopressin receptor isoforms / M. Andrés, A. Peña, S. Derick [et al.] // Eur. J. Pharmacol. - 2004. - Vol. 501, N 1-3. - P. 59-69.

65. Conformation and dynamics of 8-Arg-vasopressin in solution / E. Haensele, L. Banting, D. C. Whitley [et al.] // J. Mol. Model. - 2014. - Vol. 20, N 11. - P. 2485.

66. Conklin D. J. Pharmacological characterization of arginine vasotocin vascular smooth muscle receptors in the trout (Oncorhynchus mykiss) in vitro / D. J. Conklin, M. P. Smith, K. R. Olson // Gen. Comp. Endocrinol. - 1999. - Vol. 114, N 1. - P. 36-46.

67. Conserved sensory-neurosecretory cell types in annelid and fish forebrain: insights into hypothalamus evolution / K. Tessmar-Raible, F. Raible, F. Christodoulou [et al.] // Cell. - 2007. -Vol. 129, N 7. - P. 1389-1400.

68. Cowley Jr A. W. Evidence and quantification of the vasopressin arterial pressure control system in the dog / A. W. Cowley Jr, S. J. Switzer, M. M. Guinn // Circ. Res. - 1980. - Vol. 46, N 1. - P. 58-67.

69. Cui L. N. Glutamate and GABA mediate suprachiasmatic nucleus inputs to spinal-projecting paraventricular neurons / L. N. Cui, E. Coderre, L. P. Renaud // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. - 2001. - Vol. 281, N 4. - P. 1283-1289.

70. Dai J. Distribution of vasopressin and vasoactive intestinal polypeptide (VIP) fibers in the human hypothalamus with special emphasis on suprachiasmatic nucleus efferent projections / J. Dai, D. F. Swaab, R. M. Buijs // J. Comp. Neurol. - 1997. - Vol. 383. - P. 397-414.

71. Dale H. H. The action of extracts of the pituitary body / H. H. Dale // Biochem. J. -1909. - Vol. 4, N 9. - P. 427-447.

72. de Keyzer Y. The pituitary V3 vasopressin receptor and the ectopic corticotropin syndrome / Y. de Keyzer, E. Clauser, X. Bertagna // Curr. Opin. Endocrinol. Diabetes Obes. - 1996. -Vol. 3, N 2. - P. 125-131.

73. Deamino-8-D-arginine vasopressin shortens the bleeding time in uremia / P. M. Mannucci, G. Remuzzi, F. Pusineri [et al.] // N. Engl. J. Med. - 1983. - Vol. 308, N 1. - P. 8-12.

74. Delpire E. Na+-K+-2 Cl-cotransporter / E. Delpire, K. B. Gagnon // E. Delpire, K. B. Gagnon; K. L. Hamilton, D. C. Devor (Eds.). - New York: Springer, 2016. - Part I, Chapter 11. - P. 375-400.

75. Dendritic peptide release mediates interpopulation crosstalk between neurosecretory and preautonomic networks / S. J. Son, J. A. Filosa, E. S. Potapenko [et al.] // Neuron. - 2013. - Vol. 78, N 6. - P. 1036-1049.

76. Development of a cytochemical assay for plasma vasopressin: application to studies on water loading normal man / P. H. Baylis, C. Pippard, G. V. Gill [et al.] // Clin. Endocrinol. - 1986. -Vol. 24, N 4. - P. 383-393.

77. Different localization and regulation of two types of vasopressin receptor messenger RNA in microdissected rat nephron segments using reverse transcription polymerase chain reaction / Y. Terada, K. Tomita, H. Nonoguchi [et al.] // J. Clin. Invest. - 1993. - Vol. 92, N 5. - P. 2339-2345.

78. Differential distribution of the vasopressin V2 receptor along the rat nephron during renal ontogeny and maturation / J. M. Sarmiento, P. Ehrenfeld, C. C. Anazco [et al.] // Kidney Int. -2005. - Vol. 68. - P. 487-496.

79. Differential effects of ADH on sodium, chloride, potassium, calcium and magnesium transport in cortical and medullary thick ascending limbs of mouse nephron / M. Wittner, A. di Stefano, P. Wangemann [ et al.] // Pflugers Arch. - 1988. - Vol. 412, N 5. - P. 516-523.

80. Disordered structural ensembles of vasopressin and oxytocin and their mutants / E. Yedvabny, P. Nerenberg, C. So [et al] // J. Phys. Chem. B. - 2015. - Vol. 119, N 3. - P. 896-905.

81. Donaldson Z. R. Oxytocin, vasopressin, and the neurogenetics of sociality / Z. R. Donaldson, L. J. Young // Science. - 2008. - Vol. 322, N 5903. - P. 900-904.

82. du Vigneaud V. A synthetic preparation possessing biological properties associated with arginine-vasopressin / V. du Vigneaud, D. T. Gish, P. G. Katsoyannis // J. Am. Chem. Soc. -1954. - Vol. 76. - P. 4751-4752.

83. du Vigneaud V. The sequence of amino acids in oxytocin, with a proposal for the structure of oxytocin / V. du Vigneaud, C. Ressler, S. Trippett // J. Biol. Chem. - 1953. - Vol. 205, N 2. - P. 949-957.

84. Durham D. A. Carrier-mediated transport of labeled oxytocin from brain to blood / D. A. Durham, W. A. Banks, A. J. Kastin // Neuroendocrinol. - 1991. - Vol. 53, N 5. - P 447-452.

85. Dynamic interaction of human vasopressin/oxytocin receptor subtypes with G proteincoupled receptor kinases and protein kinase C after agonist stimulation / K. Berrada, C. L. Plesnicher, X. Luo [et al.] // J. Biol. Chem.. - 2000. - Vol. 275, N 35. - P. 27229-27237.

86. Early appearance and transient expression of vasopressin receptors in the brain of rat fetus and infant. An autoradiographical and electrophysiological study / E. Tribollet, M. Goumaz, M. Raggenbass [et al.] // Brain Res. Dev. Brain Res. - 1991. - Vol. 58, N 1. - P. 13-24.

87. Effect of a synthetic analogue of vasopressin in animals and in patients with diabetes insipidus / I. Vavra, A. Machova, V. Holecek [et al.] // Lancet. - 1968. - Vol. 291, N 7549. - P. 948952.

88. Effects of plasma volume and osmolality on secretion of atrial natriuretic peptide and vasopressin in man / K. Kamoi, F. Sato, O. Arai, M. Ishibashi [et al.] // Acta Endocrinol. - 1988. -Vol. 118, N 1. - P. 51-58.

89. Elands J. [3H]-[Thr4, Gly7] OT: a highly selective ligand for central and peripheral OT receptors / J. Elands, C. Barberis, S. Jard // Am. J. Physiol. - 1988. - Vol. 254, N 1 Pt 1. - P. 31-38.

90. Ellison D. H. Physiology and pathophysiology of diuretic action / D. H. Ellison // Seldin and Giebisch's the Kidney. - 2013. - Vol. 1. - P. 1353-1404.

91. Ellison D. H. Thiazide effects and adverse effects: Insights from molecular genetics / D. H. Ellison, J. Loffing // Hypertension - 2009. - Vol. 54, N 2. - P. 196-202.

92. Endothelium-derived relaxing factor inhibits transport and increases cGMP content in cultured mouse cortical collecting duct cells / B. A. Stoos, O. A. Carretero, R. D. Farhy [et al.] // The J. Clin. Invest. - 1992. - Vol. 89, N 3. - P. 761-765.

93. Evidence that atypical vasopressin V2 receptor in inner medulla of kidney is V1b receptor / M. Saito, A. Tahara, T. Sugimoto [et al.] // Eur. J. Pharmacol. - 2000. - Vol. 401, N 3. - P. 289-296.

94. Expression of the vasopressin and oxytocin genes in human hypothalami / E. Mohr, M. Hillers, R. Ivell [et al.] // FEBS Lett. - 1985. - Vol. 193, N 1. - P. 12-16.

95. Farini F. Diabete insipido ed opoterapia / F. Farini // Gazz Osped Clin. - 1913. - Vol. 34. - P. 1135-1139.

96. Farley D. Fetal assessment during pregnancy / D. Farley, D. J. Dudley // Pediatr. Clin. North Am. - 2009. - Vol. 56, N 3. - P. 489-504.

97. Fenton R. Mouse models and the urinary concentrating mechanism in the new millennium / R. Fenton, M. Knepper // Physiol. Rev. - 2007. - Vol. 87, N 70. - P. 1083-1112.

98. Forsling M. The effect of vasopressin and oxytocin on glomerular filtration rate in the conscious rat: contribution to the natriuretic response / M. Forsling, M. Judah, R. Windle // J. Endocrinol. - 1994. - Vol. 141. - P. 59-67.

99. Functional and pharmacological characterization of the first specific agonist and antagonist for the V1b receptor in mammals / C. Serradeil-Le Gal, S. Derick, G. Brossard [et al.] // Stress. - 2003. - Vol. 6, N 3. - P. 199-206.

100. Functional selective oxytocin-derived agonists discriminate between individual G protein family subtypes / M. Busnelli, A. Sauliere, M. Manning [et al.] // J. Biol. Chem. - 2012. -Vol. 287, N 6. - P. 3617-29.

101. Gainer H. Biosynthesis and axonal transport of rat neurohypophysial proteins and peptides / H. Gainer, Y. Sarne, M. J. Brownstein // J. Cell Biol. - 1977. - Vol. 73, N 2. - P. 366-381.

102. Gamba G. Thick ascending limb: the Na+:K+:2Cl- co-transporter, NKCC2, and the calcium-sensing receptor, CaSR / G. Gamba, P. A. Friedman // Pflugers Arch. - 2009. - Vol. 458, N 1. - P. 61-76.

103. Gamba G. Vasopressin regulates the renal Na+-Cl- cotransporter / G. Gamba // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2010. - Vol. 298, N 3. - P. 500-501.

104. Gazis D. Elimination of infused arginine-vasopressin and its long-acting deaminated analogue in rats / D. Gazis, W. H. Sawyer // J. Endocrinol. - 1978. - Vol. 78, N 2. - P. 179-186.

105. Gazis D. Estimation of plasma half-lives of vasopressin analogs from vasopressor responses by curve-fitting / D. Gazis, W. H. Sawyer // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. - 1978. - Vol. 157, N 4. - P. 584-589.

106. Gender difference in kidney electrolyte transport. I. Role of AT1a receptor in thiazide-sensitive Na+-Cl- cotransporter activity and expression in male and female mice / J. Li, R. Hatano, S. Xu [et al.] // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2017. - Vol. 313, N 2. - P. 505-513.

107. Giguere V. Vasopressin potentiates cyclic AMP accumulation and ACTH release induced by corticotropin-releasing factor (CRF) in rat anterior pituitary cells in culture / V. Giguere, F. Labrie // J. Endocrinol. - 1982. - Vol. 111, N 5. - P. 1752-1754.

108. Gillies G. E. Corticotropin releasing activity of the new CRF is potentiated several times by vasopressin / G. E. Gillies, E. A. Linton, P. J. Lowry // Nature. - 1982. - Vol. 299, N 5881. -P. 355-357.

109. Gimpl G. The oxytocin receptor system: structure, function, and regulation / G. Gimpl, F. Fahrenholz // Physiol. Rev. - 2001. - Vol. 81, N 2. - P. 629-683.

110. Ginsburg M. Production, release, transportation and elimination of the neurohypophysial hormones / M. Ginsburg // Neurohypophysial hormones and similar polypeptides / M. Ginsburg. - Berlin: Springer Berlin Heidelberg, 1968. - Chapter in the book. - P. 286-371.

111. Goncharevskaya O. A. Modulation of the effect of arginine-vasopressin on water and ion transport in the newt early distal tubule and frog urinary bladder by V1 -antagonists / O. A. Goncharevskaya, E. I. Shakhmatova, Y. V. Natochin // Pflugers Arch. - 1995. - Vol. 430. - P. 10041011.

112. Gottschalk C. W. Micropuncture study of the mammalian urinary concentrating mechanism: evidence for the countercurrent hypothesis / C. W. Gottschalk, M. Mylle // Am. J. Physiol. - 1959. - Vol. 196, N 4. - P. 927-936.

113. Greenberg A. Vasopressin receptor antagonists / A. Greenberg, J. G. Verbalis // Kidney Int. - 2006. - Vol. 69, N 12. - P. 2124-2130.

114. Holmes C. L. Science review: vasopressin and the cardiovascular system part 1 -receptor physiology / C. L. Holmes, D. W. Landry, J. T. Granton // Crit. Care. - 2003. - Vol. 7. - P. 427-434.

115. Hoyle C. H. V. Neuropeptide families and their receptors: evolutionary perspectives / C. H. V. Hoyle // Brain Res. - 1999. - Vol. 848, N 1. - P. 1-25.

116. Hyodo S. Vasopressin / S. Hyodo // Handbook of hormones. Comparative endocrinology for basic and clinical research. - S. Hyodo; Y. Takei, H. Ando, K. Tsutsui (Eds.). - 1st edn. - Tokyo: Elsevier, 2016. - Subchapter 6A. - P. 41-43.

117. Immunohistochemical localization of the vasopressin V1b receptor in the rat brain and pituitary gland: anatomical support for its involvement in the central effects of vasopressin / F. Hernando, O. Schoots, S. J. Lolait [et al.] // J. Endocrinol. - 2001. - Vol. 142, N 4. - P. 1659-1668.

118. Immunohistochemical localization of V2 vasopressin receptor along the nephron and functional role of luminal V2 receptor in terminal inner medullary collecting ducts / H. Nonoguchi, A. Owada, N. Kobayashi [et al.] // The J. Clin. Invest. - 1995. - Vol. 96, N 4. - P. 1768-1778.

119. Influence of oxytocin on renal hemodinamics and sodium excretion / K. P. Conrad, M. Gellali, W. G. North [et al.] // Ann. N. Y. Acad. Sci. - 1993. - Vol. 689, N 1. - P.346-362.

120. Innamorati G. Phosphorylation and recycling kinetics of G protein-coupled receptors / G. Innamorati, H. Sadeghi, M. Birnbaumer // J. Recept. Signal. Transduct. Res. - 1999. - Vol. 19, N 1-4. - P. 315-326.

121. Innamorati G. Transient phosphorylation of the V1a vasopressin receptor / G. Innamorati, H. Sadeghi, M. Birnbaumer // J. Biol. Chem. - 1998. - Vol. 273, N 12. - P. 7155-7161.

122. Inoue T. Physiological effects of vasopressin and atrial natriuretic peptide in the collecting duct / T. Inoue, H. Nonoguchi, K. Tomita // Cardiovasc. Res. - 2001. - Vol. 51, N 3. - P. 470-480.

123. Insel T. R. The challenge of translation in social neuroscience: a review of oxytocin, vasopressin, and affiliative behavior / T. R. Insel // Neuron. - 2010. - Vol. 65, N 6. - P. 768-779.

124. Insulin, oxytocin, and vasopressin stimulate protein kinase C activity in adipocyte plasma membranes / J. J. Egan, J. Saltis, S. A. Wek [et al.] // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. - 1990. -Vol. 87. - P. 1052-1056.

125. Intranephron localization and regulation of the V1a vasopressin receptor during chronic metabolic acidosis and dehydration in rats / Y. Tashima, Y. Kohda, H. Nonoguchi [et al.] // Pflugers Arch. - 2001. - Vol. 442, N 5. - P. 652-661.

126. Jackson E. K. Vasopressin and other agents affecting the renal conservation of water / E. K. Jackson // Goodman and Gilman's The pharmacological basis of therapeutics. - L. L. Brunton, J. S. Lazo, K. L. Parker (Eds.). - 11th edn. - New York: McGraw-Hill, 2001. - Section V, chapter 30.

- P.771-788.

127. Jagadeesh J. S. Vasopressin receptors and drugs: a brief perspective / J. S. Jagadeesh, N. S. Muthiah, M. Muniappan // Glob. J. Pharmacol. - 2014. - Vol. 8, N 1. - P.80-83.

128. Jard S. Vasopressin and oxytocin receptors: an overview / S. Jard, J. Elands, A. Schmidt [et al.] // Progress in Endocrinology. - H. Imura, K. Shizume. - Amsterdam: Elsevier, 1988.

- Chapter in the book. - P. 1183-1188.

129. Kalra A. Vasopressin receptor antagonists: from pivotal trials to current practice / A. Kalra, V. Maharaj, S. Goldsmith // Curr. Heart Fail. Rep. - 2014. - Vol. 11. - P. 10-18.

130. Kam P. C. A. Vasopressin and terlipressin: pharmacology and its clinical relevance / P. C. A. Kam, S. Williams, F. F. Y. Yoong // Anaesthesia. - 2004. - Vol. 59, N 10. - P. 993-1001.

131. Kasson B. G. Arginine vasopressin in the testis: an intragonadal peptide control system / B. G. Kasson, E. Y. Adashi, A. J. W. Hsueh // Endocr. Rev. - 1986. - Vol. 7, N 2. - P. 156-168.

132. Kendrick K. M. Cerebrospinal fluid and plasma concentrations of oxytocin and vasopressin during parturition and vaginocervical stimulation in the sheep / K. M. Kendrick, E. B. Keverne, M. R. Hinton // Brain Res. Bull. - 1991. - Vol. 26, N 5. - P. 803-807.

133. Knepper M. A. Molecular physiology of water balance / M. A. Knepper, T. -H. Kwon, S. Nielsen // The N. Engl. J. Med. - 2015. - Vol. 372, N 14. - P. 1349-1358.

134. Kompanowska-Jezierska E. Mechanism of vasopressin natriuresis in the dog: role of vasopressin receptors and prostaglandins / E. Kompanowska-Jezierska, C. Emmeluth, L. Grove // Am. J. Physiol. - 1998. - Vol. 274, N 6 Pt.2. - P. R1619-R1625.

135. Kutina A. V. Role of vasopressin in the regulation of renal sodium excretion: interaction with glucagon-like peptide-1 / A. V. Kutina, D. V. Golosova, A. S. Marina [et al.] // J. Neuroendocrinol.-2016. - doi: 10.1111/jne.12367.

136. Labelling of vasopressin and oxytocin receptors from the human uterus / M. Tence, G. Guillon, S. Bottari [et al.] // Eur. J. Pharmacol. - 1990. - Vol. 191, N 3. - P. 427-436.

137. Landgraf R. Vasopressin release within the supraoptic and paraventricular nuclei of the rat brain: osmotic stimulation via microdialysis / R. Landgraf, M. Ludwig // Brain Res. - 1991. - Vol. 558, N 2. - P. 191-196.

138. Leighton K. M. Arginine vasopressin response to anaesthesia produced by halothane, enflurane and isoflurane / K. M. Leighton, S. L. Lim, N. Wilson // Can. Anaesth. Soc. J. - 1982. -Vol. 29, N 6. - P. 563-566.

139. Leng G. Intranasal oxytocin: myths and delusions / G. Leng, M. Ludwig // Biol. psychiatry. - 2016. - Vol. 79, N 3. - P. 243-250.

140. Leng G. Kappa-opioid restraint of oxytocin secretion: plasticity through pregnancy / G. Leng, S. Dye, R. J. Bicknell // J. Neuroendocrinol. - 1997. - Vol. 66, N 6. - P. 378-383.

141. Leng G. Measuring oxytocin and vasopressin: bioassays, immunoassays and random numbers / G. Leng, N. Sabatier // J. Neuroendocrinol. - 2016. - Vol. 28, N 10. - P. 1-13.

142. Leng G. Physiological pathways regulating the activity of magnocellular neurosecretory cells / G. Leng, C. H. Brown, J. A. Russell // Prog. Neurobiol. - 1999. - Vol. 57, N 6. - P.625-655.

143. Localization and pharmacological characterization of high affinity binding sites for vasopressin and oxytocin in the rat brain by light microscopic autoradiography / E. Tribollet, C. Barberis, S. Jard [et al.] // Brain Res. - 1988. - Vol. 442, N 1. - P. 105-118.

144. Lolait S. J. Molecular biology of vasopressin receptors / S. J. Lolait, A. M. O'Carroll, M. J. Brownstein // Ann. N. Y. Acad. Sci. - 1995. - Vol. 29, N 771. - P. 273-292.

145. Long-term effects of vasopressin on the subcellular localization of ENaC in the renal collecting system / D. Sauter, S. Fernandes, N. Goncalves-Mendes [et al.] // Kidney Int. - 2006. -Vol. 69, N 6. - P. 1024-1032.

146. Ludwig M. Dendritic release of vasopressin and oxytocin / M. Ludwig // J. Neuroendocrinol. - 1998. - Vol. 10, N 12. - P. 881-896.

147. Ludwig M. Functional role of intrahypothalamic release of oxytocin and vasopressin: consequences and controversies / M. Ludwig // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. - 1995. - Vol. 268, N 4. - P. 537-545.

148. Magnocellular axons in passage through the median eminence release vasopressin / M. C. Holmes, F. A. Antoni, G. Aguilera [et al.] // Nature. - 1986. - Vol. 319, N 6051. - P. 326-329.

149. Malvin R. L. Antidiuretic hormone levels in some cetaceans / R. L. Malvin, J. P. Bonjour, S. H. Ridgway // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. - 1971. - Vol. 136, N 4. - P. 1203-1205.

150. Mannucci P.M. Management of von Willebrand disease in developing countries / P. M. Mannucci // Semin. Thromb. Hemost. - 2005. - Vol. 31, N 5. - P. 602-609.

151. McCann S. Neuroendocrine control of body fluid homeostasis / S. McCann, J. Gutkowska, J. Antunes-Rodrigues // Braz. J. Med. Biol. Res. - 2003. - Vol. 36, N 2. - P. 165-181.

152. McKinley, M. J. Thirst / M. J. McKinley // Handbook of neuroscience for the behavioral sciences. In 2 vol. Vol.2. - J. T. Cacioppo (Ed.). - Hoboken: JohnWiley and Sons, 2009. -Part V, chapter 35. - P. 680-709.

153. Mechanism of 1-deamino-arginine vasotocin induced natriuresis in rats / T. A. Karavashkina, A. V. Kutina, E. I. Shakhmatova [et al.] // Gen. Comp. Endocrinol. - 2011. - Vol. 170, N 3. - P. 460-467.

154. Mechanism of plasminogen activator and factor VIII increase after vasoactive drugs / P. M. Mannucci, M. Aberg, I. M. Nilsson [et al.] // Br. J. Haematol. - 1975. - Vol. 30, N 1. - P. 8193.

155. Mechanisms of renal effects of different agents stimulating production of cGMP / S. Grandes, M. J. Gallego, A. Riesco [et al.] // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. - 1991. - Vol. 261, N 4 Pt 2. - P. 1109-1114.

156. Mice genetically deficient in vasopressin V1a and V1b receptors are resistant to jet lag / Y. Yamaguchi, T. Suzuki, Y. Mizoro [et al.] // Science. - 2013. - Vol. 342, N 6154. - P. 85-90.

157. Michell R. H. Hormonal stimulation of phosphatidylinositol breakdown with particular reference to the hepatic effects of vasopressin / R. H. Michell, C. J. Kirk, M. M. Billah // Biochem. Soc. Trans. - 1979. - Vol. 7, N 5. - P. 861-865.

158. Milcu S. M. Biological and chromatographic characterization of a polypeptide with pressor and oxytocic activities isolated from bovine pineal gland / S. M. Milcu, S. Pavel, C. Neacsu // J. Endocrinol. - 1963. - Vol. 72, N 4. - P. 563-566.

159. Minakata H. Oxytocin/vasopressin and gonadotropin- releasing hormone from cephalopods to vertebrates / H. Minakata // Ann. N. Y. Acad. Sci. - 2010. - Vol. 1200, N 1. - P. 3342.

160. Modi M. E. The oxytocin system in drug discovery for autism: animal models and novel therapeutic strategies / M. E. Modi, L. J. Young // Horm. Behav. - 2012. - Vol. 61, N 3. - P. 340-350.

161. Molecular and functional characterization of V1b vasopressin receptor in rat adrenal medulla / E. Grazzini, A. M. Lodboerer, A. Perez-Martin [et al.] // J. Endocrinol. - 1996. - Vol. 137, N 9. - P. 3906-3914.

162. Molecular cloning, pharmacological characterization, and histochemical distribution of frog vasotocin and mesotocin receptors / S. Acharjee, J. L. Do-Rego, D.Y. Oh [et al.] // J. Mol. Endocrinol. - 2004. - Vol. 33, N 1. - P. 293-313.

163. Molecular pharmacology of AVP and OT receptors and therapeutic potential / C. Barberis, D. Morin, T. Durroux [et al.] // Drug News Perspect. - 1999. - Vol. 12, N 5. - P. 279-292.

164. Morgenthaler N. Copeptin: a biomarker of cardiovascular and renal function / N. Morgenthaler // Congest. Heart Fail. - 2010. - Vol. 16, N 1. - P. 37-44.

165. Morla L. New insights into sodium transport regulation in the distal nephron: role of G-protein coupled receptors / L. Morla, A. Edwards, G. Crambert // World J. Biol. Chem. - 2016. -Vol. 7, N 1. - P. 44-63.

166. Munch I. C. Light-induced c-Fos expression in suprachiasmatic nuclei neurons targeting the paraventricular nucleus of the hamster hypothalamus: phase dependence and immunochemical identification / I. C. Munch, M. Moller, P. J. Larsen // J. Comp. Neurol. - 2002. - Vol. 442, N 1. - P. 48-62.

167. Nacartocin - analogue of oxytocin with enhanced natriuretic properties: natriuretic and hemodynamic characteristics / P. Hrbas, J. Skopkova, J. Zicha [et al.] // Endocrinol. Exp. - 1984. -Vol. 18, N 2. - P. 117-24.

168. Natochin Y. V. Nocturnal enuresis: correction of renal function by desmopressin and diclofenac / Y. V. Natochin, A. A. Kuznetsova // Pediatr. Nephrol. - 2000. - Vol. 14, N 1. - P. 42-47.

169. Natriuretic response of the rat to plasma concentrations of arginine vasopressin within the physiological range / R. J. Balment, M. J. Brimble, M. L. Forsling [et al.] // J. Physiol. - 1984. -Vol. 352. - P. 517-526.

170. Navar L. G. The legacy of Homer W. Smith: mechanistic insights into renal physiology / L. G. Navar // J. Clin. Invest. - 2004. - Vol. 114, N 8. - P. 1048-50.

171. Neumann I. D. Involvement of the brain oxytocin system in stress coping: interactions with the hypothalamo-pituitary-adrenal axis / I. D. Neumann // Prog. Brain Res. - 2002. - Vol. 139. -P.147-162.

172. Nucleotide sequence of cloned cDNA encoding bovine arginine vasopressin-neurophysin II precursor/ H. Land, G. Schütz, H. Schmale [et al.] // Nature. - 1982. - Vol. 295, N 5847. - P. 299-303.

173. Oliver G. The physiological effects of extracts of the suprarenal capsules / G. Oliver, E. A. Schäfer // J. Physiol. - 1895. - Vol. 18, N 3. - P. 230-276.

174. Opposite effects of oxytocin on water intake induced by hypertonic NaCl or polyethylene glycol administration / A. Bernal, J. Mahia, C. Mediavilla [et al.] // Physiol. Behav. -2015. - Vol. 141. - P. 135-142.

175. Ott I. The action of infundibulum upon mammary secretion / I. Ott, J. C. Scott // Proc. Soc. Exp. Biol. - 1910. - Vol. 8. - P. 48-49

176. Oxytocin and vasopressin agonists and antagonists as research tools and potential therapeutics / M. Manning, A. Misicka, A. Olma [et al.] // J. Neuroendocrinol. - 2012. - Vol. 24, N 23. - P. 609-628.

177. Oxytocin and vasopressin in children and adolescents with autism spectrum disorders: sex differences and associations with symptoms / M. Miller, K. L. Bales, S. L. Taylor [et al.] // Autism Res. - 2013. - Vol. 6, N 2. - P. 91-102.

178. Oxytocin and vasopressin receptors in bovine endometrium and myometrium during the estrous cycle and early pregnancy / A. R. Fuchs, O. Behrens, H. Helmer [et al.] // J. Endocrinol. -1990. - Vol. 127, N 2. - P. 629-636.

179. Oxytocin as an antidiuretic hormone. II. Role of V2 vasopressin receptor / C. Chou, S. DiGiovanni, A. Luther [et al.] // Am. J. Physiol. - 1995. - Vol. 269, N 1 Pt. 2. - P. 78-85.

180. Oxytocin induces apical and basolateral redistribution of aquaporin-2 in rat kidney / U. Jeon, K. Joo, K. Na [et al.] // Nephron Exp. Nephrol. - 2003. - Vol. 93, N 1. - P. 36-45.

181. Oxytocin mediates atrial natriuretic peptide release and natriuresis after volume expansion in the rat / M. A. Haanwinckel, L. K. Eliast, A. L. Favaretrot [et al.] // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. - 1995. - Vol. 92. - P. 7902-7906.

182. Palmer B. Vasopressin receptor antagonists / B. Palmer // Curr. Hypertens. Rep. -2015. - Vol. 17, N 1. - P. 1-9.

183. Pancreatic vasopressin V1b receptors: characterization in In-R1-G9 cells and localization in human pancreas / V. Folny, D. Raufaste, L. Lukovic [et al.] // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. - 2003. - Vol. 285, N 3. - P. 566-576.

184. Peptide and non-peptide agonists and antagonists for the vasopressin and oxytocin V1a, V1b, V2 and OT receptors: research tools and potential therapeutic agents / M. Manning, S. Stoev, B. Chini [et al.] // Prog. Brain Res. - 2008. - Vol. 170. - P. 473-512.

185. Pharmacology, clinical efficacy and safety of terlipressin in esophageal varices bleeding, septic shock and hepatorenal syndrome / F. H. Saner, A. Canbay, G. Gerken [et al.] // Expert Rev. Gastroenterol. Hepatol. - 2007. - Vol. 1, N 2. - P. 207-217.

186. Physiologic studies of antidiuretic hormone by its direct measurement in human plasma / J. Czaczkes, C. R. Kleeman, M. Koenig [et al.] // J. Clin. Invest. - 1964. - Vol. 43, N 8. - P. 16251640.

187. Physiological responses and expression of arginine vasotocin receptor, prolactin and prolactin receptor mRNA in olive flounder Paralichthys olivaceus during osmotic stress / K. W. An, H. S. Shin, M. I. An [et al.] // Mar. Freshw. Behav. Physiol. - 2008. - Vol. 41, N 3. - P. 191-203.

188. Pittman Q. J. Neurohypophysial peptides: gatekeepers in the amygdala / Q. J. Pittman, S. J. Spencer // Trends Endocrinol. Metab. - 2005. - Vol. 16, N 8. - P. 343-344.

189. Quamme G. A. Epithelial magnesium transport and regulation by the kidney / G. A. Quamme, C. de Rouffignac // Front. Biosci. - 2000. - Vol. 5. - P. 694-711.

190. Quamme G. Renal magnesium handling: new insights in understanding old problems / G. Quamme // Kidney Int. - 1997. - Vol. 52, N 5. - P. 1180-1195.

191. Rapid accumulation of inositol phosphates in isolated rat superior cervical sympathetic ganglia exposed to V1-vasopressin and muscarinic cholinergic stimuli / E. A. Bone, P. Fretten, S. Palmer [et al.] // Biochem. J. - 1984. - Vol. 221. - P. 803-811.

192. Receptors for neurohypophyseal hormones along the rat nephron: 125I-labelled d(CH2)5[Tyr(Me)2, Thr4, Orn8, Tyr-N29 ] vasotocin binding in microdissected tubules / A. Ammar, A. Schmidt, B. Semmekrot [et al.] // Pflugers Arch. - 1991. - Vol. 418. - P. 220-227.

193. Receptor-specific antagonists of vasopressin and oxytocin / M. Manning, S. Stoev, W. Y. Chan [et al.] // Ann. N. Y. Acad. Sci. - 1993. - Vol. 689, N 1. - P. 219-232.

194. Regulation of the abundance of renal sodium transporters and channels by vasopressin / C. A. Ecelbarger, G. H. Kim, J. B. Wade [et al.] // Exp. Neurol. - 2001. - Vol. 171, N 2. - P. 227234.

195. Regulation of thick ascending limb transport by vasopressin / M. Knepper, G. Kim, P. Fernández-Llama [et al.] // J. Am. Soc. Nephrol. - 1999. - Vol. 10, N 3. - P. 628-634.

196. Richard P. Central effects of oxytocin / P. Richard, F. Moos, M. J. Freund-Mercier // Physiol. Rev. - 1991. - Vol. 71, N 2. - P. 331-370.

197. Rivier C. Modulation of stress-induced ACTH release by corticotropin-releasing factor, catecholamines and vasopressin / C. Rivier, W. Vale // Nature. - 1983. - Vol. 305, N 5932. -P. 325-327.

198. Roch G. J. Evolution of GnRH: diving deeper / G. J. Roch, E. R. Busby, N. M. Sherwood // Gen. Comp. Endocrinol. - 2011. - Vol. 171, N 1. - P. 1-16.

199. Rojas-Vega L. Mini-review: regulation of the renal NaCl cotransporter by hormones / L. Rojas-Vega, G. Gamba // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2016. - Vol. 310, N 1. - P. 10-14.

200. Role of NKCC in BK channel-mediated net K+ secretion in the CCD / W. Liu, C. Schreck, R. A. Coleman [et al.] // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2011. - Vol. 301, N 5. - P. 10881097.

201. Role of the disulfide bridge and the C-terminal tripeptide in the antidiuretic action of vasopressin in man and the rat / J. H. Cort, O. Schück, J. Stribrna [et al.] // Kidney Int. - 1975. - Vol. 8, N 5. - P. 292-302.

202. Sachs H. Evidence for a precursor in vasopressin biosynthesis / H. Sachs, Y. Takabatake // J. Endocrinol. - 1964. - Vol. 75, N 6. - P. 943-948.

203. Saito M. 1-desamino-8-D-arginine vasopressin (DDAVP) as an agonist on V1b vasopressin receptor / M. Saito, A. Tahara, T. Sugimoto // Biochem. pharmacol. - 1997. - Vol. 53, N 11. - P. 1711-1717.

204. Sam R. Understanding hypernatremia / R. Sam, I. Feizi // Am. J. Nephrol. - 2012. -Vol. 36, N 1. - P. 97-104.

205. Sands J. M. Water, water everywhere: a new cause and a new treatment for nephrogenic diabetes insipidus / J. M. Sands // J. Am. Soc. Nephrol. - 2016. - Vol. 27, N 7. - P. 1872-1874.

206. Sawyer W. H. Synthetic analogs of oxytocin and the vasopressin / W. H. Sawyer, M. Manning // Annu. Rev. Pharmacol. - 1973. - Vol. 13, N 1. - P. 5-17.

207. Schafer E. A. The action of animal extracts on milk secretion / E. A. Schafer, K. Mackenzie // Proc. Royal Soc. - 1911. - Vol. 84, N 568. - P. 16-22.

208. Scharrer E. Die lichtempfindlichkeit blinder elritzen (Untersuchungen über das zwischenhirn der fische I.) / E. Scharrer // J. Comp. Physiol. A Neuroethol. Sens. Neural. Behav. Physiol. - 1928. - Vol. 7, N 1. - P. 1-38.

209. Separate receptors mediate oxytocin and vasopressin stimulation of cAMP in rat inner medullary collecting duct cells / E. T. Wargent, W. J. Burgess, J. F. Laycock [et al.] // Exp. Physiol. -1999. - Vol. 84, N 1. - P. 17-25.

210. Share L. Rate of disappearance of arginine vasopressin from circulating blood in the dog / L. Share // Am. J. Physiol. - 1962. - Vol. 203, N 6. - P. 1179-1181.

211. Sharman A. Vasopressin and its role in critical care / A. Sharman, J. Low // CEACCP. - 2008. - Vol. 8, N 4. - P. 134-137.

212. Siegel A. J. Fatal water intoxication and cardiac arrest in runners during marathons: prevention and treatment based on validated clinical paradigms / A. J. Siegel // Am. J. Med. - 2015. -Vol. 128, N 10. - P. 1070-1075.

213. Silverman A. J. The descending afferent connections of the paraventricular nucleus of the hypothalamus (PVN) / A. J. Silverman, D. L. Hoffman, E. A. Zimmerman // Brain Res. Bull. -1981. - Vol. 6, N 1. - P. 47-61.

214. Skopkova J. The effect of AVP and DGAVP on the exploratory activity of rats / J. Skopkova, J. Lat, I. Dvorska // Peptides. - 1987. - Vol. 8, N 5. - P. 785-90.

215. Skowsky W. R. Fetal neurohypophyseal arginine vasopressin and arginine vasotocin in man and sheep / W. R. Skowsky, D. A. Fisher // Pediatr. Res. - 1977. - Vol. 11, N 5. - P. 627-630.

216. Slizgi G. R. Studies on the nature and mechanism of the diuretic activity of the opioid analgesic ethylketocyclazocine / G. R. Slizgi, J. H. Ludens // J. Pharmacol. Exp. Ther. - 1982. - Vol. 220, N 3. - P. 585-591.

217. Smith H.W. Principles of renal physiology / H.W. Smith. - New York: Oxford University Press, 1956. P. 237.

218. Sodium excretion in response to vasopressin and selective vasopressin receptor antagonists / J. Perucca, D. G. Bichet, P. Bardoux [et al.] // J. Am. Soc. Nephrol. - 2008. - Vol. 19, N 9. - P. 1721-1731.

219. Soloff M. S. Vasopressin and oxytocin receptors on plasma membranes from rat mammary gland: demonstration of vasopressin receptors by stimulation of inositol phosphate formation, and oxytocin receptors by binding of a specific 125I-labeled oxytocin antagonist, d(CH2)51 [Tyr(Me)2, Thr4,Tyr-NH29]OVT / M. S. Soloff, M. A. Fernstrom, M. J. Fernstrom // Biochem. Cell Biol. - 1989. - Vol. 67, N 2-3. - P. 152-162.

220. Sterns R. H. Disorders of plasma sodium - causes, consequences, and correction / R. H. Sterns // N. Engl. J. Med. - 2015. - Vol. 372, N 1. - P. 55-65.

221. Structure, function, and phylogeny of [Arg8] vasotocin receptors from teleost fish and toad / S. Mahlmann, W. Meyerhof, H. Hausmann [et al.] // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. - 1994. -Vol. 91, N 4. - P. 1342-1345.

222. Subcellular localization and internalization of the vasopressin V1b receptor / A. Kashiwazaki, Y. Fujiwara, H. Tsuchiya [et al.] // Eur. J. Pharmacol. - 2015. - Vol. 765. - P. 291-299.

223. Suprachiasmatic vasopressin to paraventricular oxytocin neurocircuit in the hypothalamus relays light reception to inhibition of feeding behavior / P. Santoso, M. Nakata, Y. Ueta [et al.] // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. - 2017. - doi: 10.1152/ajpendo.00338.2016.

224. Sutherland E. W. Studies on the mechanism of hormone action / E. W. Sutherland // Science. - 1972. - Vol. 177, N 4047. - P. 401-408.

225. Synthesis of new vasotocin analogues: effects on renal water and ion excretion in rats / A. Kutina, A. Marina, I. Eliseev [et al.] // J. Pept. Sci. - 2013. - Vol. 19, N 5. - P. 268-276.

226. The basic and clinical pharmacology of nonpeptide vasopressin receptor antagonists / M. Thibonnier, P. Coles, A. Thibonnier [et al.] // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. - 2001. - Vol. 41, N 1. - P. 175-202.

227. The cloned vasopressin V1a receptor stimulates phospholipase A2, phospholipase C, and phospholipase D through activation of receptor-operated calcium channels / E. M. Briley, S. J. Lolait, J. Axelrod [et al.] // Neuropeptides. - 1994. - Vol. 27, N 1. - P. 63-74.

228. The human V3 pituitary vasopressin receptor: ligand binding profile and density-dependent signaling pathways / M. Thibonnier, J. A. Preston, N. Dulin [et al.] // J. Endocrinol. - 1997.

- Vol. 138, N 10. - P. 4109-4122.

229. The long and the short cycle. Alternative intracellular routes for trafficking of G-protein-coupled receptors / G. Innamorati, C. Le Gouill, M. Balamotis [et al.] // J. Biol. Chem. -2001. - Vol. 276, N 16. - P. 13096-13103.

230. The physiological and pathophysiological functions of renal and extrarenal vasopressin V2 receptors / K. V. Juul, D. G. Bichet, S. Nielsen [et al.] // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2014. -Vol. 306. - P. F931-F940.

231. The pituitary V3 vasopressin receptor and the corticotroph phenotype in ectopic ACTH syndrome / Y. de Keyzer, F. Lenne, C. Auzan [et al.] // J. Clin. Invest. - 1996. - Vol. 97, N 5. - P. 1311-1318.

232. The synthesis of oxytocin / V. du Vigneaud, C. Ressler, J. M. Swan [et al.] // J. Am. Chem. Soc. - 1954. - Vol. 76. - P. 3115-3121.

233. Thibonnier M. Characterization of human platelet vasopressin receptors / M. Thibonnier, J. M. Roberts // J. Clin. Invest. - 1985. - Vol. 76, N 5. - P. 1857-1864.

234. Thibonnier M. Characterization of vasopressin receptors of rat urinary bladder and spleen / M. Thibonnier, R. M. Snajdar, J. P. Rapp // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. - 1986. -Vol. 251, N 1 Pt. 2. - P. 115-120.

235. Thibonnier M. Cytoplasmic and nuclear signaling pathways of V1-vascular vasopressin receptors / M. Thibonnier, A. L. Bayer, Z. Leng // Regul. Pept. - 1993. - Vol. 45, N 1-2.

- P. 79-84.

236. Thibonnier M. G-protein coupling of human platelet V1 vascular vasopressin receptors / M. Thibonnier, T. Goraya, L. Berti-Mattera // Am. J. Physiol. - 1993. - Vol. 264, N 5 Pt 1. - P. 1336-1344.

237. Three-site mechanism for agonist/antagonist selective binding to vasopressin receptors / N. Saleh, G. Saladino, F. L. Gervasio [et al.] // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. - 2016. - Vol. 55, N 28.

- P.8008-8012.

238. Toney G. M. Hyperosmotic activation of CNS sympathetic drive: implications for cardiovascular disease / G. M. Toney, S. D. Stocker // J. Physiol. - 2010. - Vol. 588, N 18. - P. 33753384.

239. Tuppy H. The amino-acid sequence in oxytocin / H. Tuppy // Biochim. Biophys. Acta.

- 1953. - Vol. 11, N 3. - P. 449-450.

240. Turner R. A. The purification and the amino acid content of vasopressin preparations / R. A. Turner, J. G. Pierce, V. du Vigneaud // J. Biol. Chem. - 1951. - Vol. 191, N 1. - P. 21-28.

241. Uttenthal L. O. The isolation of three neurophysins from porcine posterior pituitary lobes / L. O. Uttenthal, D. B. Hope // Biochem. J. - 1970. - Vol. 116, N 5. - P. 899-909.

242. Vaccari C. Comparative distribution of vasopressin V1b and oxytocin receptor messenger ribonucleic acids in brain / C. Vaccari, S. J. Lolait, N. L. Ostrowski // J. Endocrinol. -1998. - Vol. 139, N 19. - P. 5015-5033.

243. Van Kerrebroeck P. Terminology, epidemiology, etiology, and pathophysiology of nocturia / P. Van Kerrebroeck, K. E. Andersson // Neuroul. Urodyn. - 2014. - Vol. 33, Suppl. 1. - P. s2-s5.

244. Vandesande F. Identification of the vasopressin producing and of the oxytocin producing neurons in the hypothalamic magnocellular neurosecretory system of the rat / F. Vandesande, K. Dierickx // Cell Tissue Res. - 1975. - Vol. 164, N 2. - P. 153-162.

245. Vasopressin and oxytocin receptors in vagina, myometrium, and oviduct of rabbits / M. Maggi, A. D. Genazzani, S. Giannini [et al.] // J. Endocrinol. - 1988. - Vol. 122, N 6. - P. 29702980.

246. Vasopressin antagonists allow demonstration of a novel type of vasopressin receptor in the rat adenohypophysis / S. Jard, R. C. Gaillard, G. Guillon [et al.] // Mol. pharmacol. - 1986. - Vol. 30, N 2. - P. 171-177.

247. Vasopressin dependent adenylate cyclase in single segments of rabbit kidney tubule / M. Imbert, D. Chabardes, M. Montegut [et al.] // Pflugers Arch. - 1975. - Vol. 357, N 3. - P. 173186.

248. Vasopressin increases Na-K-2Cl cotransporter expression in thick ascending limb of Henle's loop / G. H. Kim, C. A. Ecelbarger, C. Mitchell [et al.] // Am. J. Physiol. Renal Physiol. -1999. - Vol. 276, N 1. - P. 96-103.

249. Vasopressin induces phosphorylation of the thiazide-sensitive sodium chloride cotransporter in the distal convoluted tubule / N. B. Pedersen, M. V. Hofmeister, L. L. Rosenbaek [et al.] // Kidney Int. - 2010. - Vol. 78, N 2. - P. 160-169.

250. Vasopressin regulation of sodium transport in the distal nephron and collecting duct / M. Kortenoeven, N. Pedersen, L. Rosenbaek [et al.] // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2015. - Vol. 309, N 4. - P. 280-299.

251. Vasopressin V1a and V1b receptors: from molecules to physiological systems / T. A. Koshimizu, K. Nakamura, N. Egashira [et al.] // Physiol. Rev. - 2012. - Vol. 92, N 4. - P. 1813-1864.

252. Vasopressin V1a, V1b and V2 receptors mRNA in the kidney and heart of the renin transgenic TGR(mRen2)27 and Sprague Dawley rats / A. Gozdz, E. Szczepanska-Sadowska, K. Szczepanska [et al.] // J. Physiol. Pharmacol. - 2002. - Vol. 53, N 3. - P. 349-357.

253. Vasopressin V2 receptor expression along rat, mouse, and human renal epithelia with focus on TAL / K. Mutig, A. Paliege, T. Kahl [et al.] // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2007. - Vol. 293. - P. 1166-1177.

254. Vasopressin V2 receptor stimulation reduces sodium excretion in healthy humans / L. Bankir, S. Fernandes, P. Bardoux [et al.] // J. Am. Soc. Nephrol. - 2005. - Vol. 16, N 7. - P. 19201928.

255. Vasopressin: behavioral roles of an "original" neuropeptide / H. K. Caldwell, H. J. Lee, A. H. Macbeth [et al.] // Prog. Neurobiol. - 2008. - Vol. 84, N 1. - P. 1-24.

256. Vasopressin-mediated regulation of epithelial sodium channel abundance in rat kidney / C. A. Ecelbarger, G. H. Kim, J. Terris [et al.] // Am. J. Physiol. Renal Physiol. - 2000. - Vol. 279, N 1. - P. F46-F53.

257. Vasotocin analogues with selective natriuretic, kaliuretic and antidiuretic effects in rats / A. Kutina, A. Marina, E. Shakhmatova [et al.] // Regul. Pept. - 2013. - Vol. 185. - P. 57-64.

258. Vâvra I. Antidiuretic action of 1-deamino-[8-D-arginine]-vasopressin in unanesthetized rats / I. Vâvra, A. Machovâ, I. Krejci // J. Pharmacol. Exp. Ther. - 1974. - Vol. 188, N 1. - P. 241-247.

259. Verbalis J. G. Oxytocin produces natriuresis in rats at physiological plasma concentrations / J. G. Verbalis, M. P. Mangione, E. M. Stricker // J. Endocrinol. - 1991. - Vol. 128, N 3. - P.1317-1322.

261. Vigneaud V. Enzymatic cleavage of glycinamide from vasopressin and a proposed structure for this pressor-antidiuretic hormone of the posterior pituitary / V. du Vigneaud, H. C. Lawler, E. A. Popenoe // J. Am. Chem. Soc. - 1953. - Vol. 75, N 19. - P. 4880-4881.

262. Vilhardt H. Basic pharmacology of desmopressin: a review / H. Vilhardt // Clin. Drug Investig. - 1990. - Vol. 2, Suppl. 5. - P. 2-8.

263. Vongraven D. Die nierenwirkung von hypophysenextrakten menschen / D. Vongraven // Berl. Klin. Wochenscgr. - 1913. - Vol. 50. - P. 2083-2086

264. Wallis M. Molecular evolution of the neurohypophysial hormone precursors in mammals: comparative genomics reveals novel mammalian oxytocin and vasopressin analogues / M. Wallis // Gen. Comp. Endocrinol. - 2012. - Vol. 179, N 2. - P. 313-318.

265. Warne J. M. Cloning and characterization of an arginine vasotocin receptor from the euryhaline flounder Platichthys flesus / J. M. Warne // Gen. Comp. Endocrinol. - 2001. - Vol. 122, N 3. - P. 312-319.

266. Watkin W. B. Demonstration of neurophysin in the hypothalamo-neurohypophysial system of the normal and dehydrated rat by the use of cross-species reactive anti-neurophysins / W. B. Watkins, J. J. Evans // Cell Tissue Res. - 1972. - Vol. 131, N 2. - P. 149-170.

267. Wu J. Magnesium : the forgotten electrolyte / J. Wu, A. Carter // Aust. Prescr. - 2007. -Vol. 30, N 4. - P. 102-105.

268. Zimmerman E. A. Hypothalamic neurons secreting vasopressin and neurophysin / E. A. Zimmerman, A. G. Robinson // Kidney Int. - 1976. - Vol. 10, N 1. - P. 12-24.

269. Zingg H. H. The oxytocin receptor / H. H. Zingg, S. A. Laporte // Trends Endocrinol. Metab. - 2003. - Vol. 14, N 5. - P. 222-227.

270. Zingg H. H. Vasopressin and oxytocin receptors / H. H. Zingg // Baillieres Clin. Endocrinol. Metab. - 1996. - Vol. 10, N 1. - P. 75-96.

271. Влияние аналогов вазотоцина на выведение ионов Na+, K+, Mg2+ почкой крыс / Ю. В. Наточин, Т. А. Канашкина, Е. И. Шахматова [и др.] // Эксперимен. клин. фаркмакол. -2008. - Т. 71, № 2. - С. 32-35.

272. Влияние аналогов пептидных гормонов при пероральном и парентеральном введении на транспорт воды и ионов в почке / А. В. Кутина, Д. В. Голосова, А. С. Марина [и др.] // Рос. физиол. журн. им. И М. Сеченова. - 2016 - Т. 102, № 10. - С. 1185-1194.

273. Влияние нонапептидов нейрогипофиза и их аналогов на экскрецию магния почкой крыс / А. В. Кутина, Т. А. Каравашкина, Д. В. Голосова [и др.] // Журн. эвол. биохим. и физиол. - 2014. - Т. 50, №6. - С. 435-439.

274. Влияние олеамида на транспорт воды и ионов натрия в осморегулирующих органах позвоночных / Е. И. Шахматова, А. Е. Боголепова, М. В. Дубина [и др.] // Журн. эвол. биохим. и физиол. - 2015. - Т. 51, № 6. - С. 444-448.

275. Влияние селективных агонистов V1a, V2 и V1b рецепторов на транспорт натрия в почке крыс/ Д. В. Голосова, А. В. Кутина, Т. А. Каравашкина [и др.] // Бюлл. экспер. биол. и мед. -2015 - Т. 60, № 12. - C. 712-715.

276. Гао Ц. Эволюционные преимущества участия вазопрессина вместо вазотоцина в регуляции водно-солевого обмена у млекопитающих / Ц. Гао, Ю. В. Наточин // Журн. эвол. биохим. и физиол. - 2004. - Т. 40, № 2. - С. 168-172.

277. Гинецинский А. Г. Физиологические механизмы водно-солевого равновесия: монография / А. Г. Гинецинский. - Л.: «Изд-во Академии наук СССР», 1963. - с.576.

278. Голосова Д. В. Новый вариант расчета клиренса катионов почкой крыс в оценке эффекта стимуляции V1a-рецепторов / Д. В. Голосова, Ю. В. Наточин // Бюлл. экспер. биол. и мед. - 2017 - Т. 163, № 6. - С. 664-667.

279. Гомеостаз кальция и фосфора: норма и патология / А. В. Смирнов, В. Л. Эмануэль, М. М. Волков [и др.] // Клинико-лабораторный консилиум. - 2010. - № 5. - с. 32-43.

280. Замена L-аргинина^) на D-аргинин^) устраняет натрийуретическое действие аналогов вазотоцина у крыс / А. В. Кутина, И. И. Елисеев, М. И. Титов [и др.] // Докл. АН. -2008. - Т. 422, № 4. - С. 564-567.

281. Иванова Л. Н. Вазопрессин молекулярные основы антидиуретического эффекта / Л. Н. Иванова // Рос. физиол. журн. им. И М. Сеченова. - 2011. - Т. 97, № 3 - С. 235-262.

282. Избирательное действие на выделение катионов и воды почкой крыс аналогов вазотоцина с заменой аминокислот в 4, 7, и 8-м положениях / А. В. Кутина, И. И. Елисеев, М. И. Титов [и др.] // Рос. физиол. журн. им. ИМ. Сеченова. - 2009. - Т. 95, № 3. - С. 204-214.

283. Калийуретический нонапептид / А. В. Кутина, А. С. Марина, М. И. Титов [и др.] // Докл. АН. - 2012. - Т. 444, № 3. - С. 339-342.

284. Канашкина Т. А. Влияние 1-дезамино-1монокарб-аргинин-вазотоцина на выделение ионов натрия и воды почками крыс / Т. А. Канашкина, Е. И. Шахматова, Ю. В. Наточин // Бюлл. экспер. биол. и мед. - 2007. - Т. 143, № 5. - С. 494-496.

285. Константинова М. С. Гормоны нейрогипофиза - вазопрессин и окситоцин. В кн.: Физиология эндокринной системы (Руководство по физиологии) / М. С. Константинова, Ю. В. Наточин. - Л.: Наука, 1979. - С. 90-119.

286. Кутина А. В. Сходство натрийуретического и качественные различия гидроуретического действия 1-дезамино-аргинин-вазотоцина и фуросемида у крыс / А. В. Кутина, Ю. В. Наточин // Эксперим. и клинич. фармакология. - 2010. - Т. 73, № 5. - С. 19-22.

287. Кутина А. В. Участие У1ь-рецепторов вазопрессина в регуляции экскреции ионов калия почками крысы / А. В. Кутина, А. С. Марина, Ю. В. Наточин // Докл. АН. - 2014. - Т. 459, № 6. - С. 762-764.

288. Мельницкая А. В. Структурно-функциональная организация транспорта №+ в эпителиальных системах. Эпителиальные Ка+-каналы / А. В. Мельницкая, З. И. Крутецкая, О. Е. Лебедев // Цитология. - 2006. - Т. 48, № 10. - С. 817-840.

289. Наточин Ю. В. Биохимия крови и диагностика / Ю. В. Наточин, В. И. Немцов, В. Л. Эмануэль. - СПб.: Клиническая больница РАН, 1993. - 149 с.

290. Наточин Ю. В. Динамика увеличения осмотической проницаемости и восстановления водонепроницаемости мочевого пузыря лягушки / Ю. В. Наточин, Н. П. Пруцкова, Е. И. Шахматова // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. - Т. 87. - С. 1095-1105.

291. Наточин Ю. В. Механизмы регуляции деятельности почки / Ю. В. Наточин // Физиология водно-солевого обмена и почки / под ред. Ю.В. Наточина. - СПб.: Наука, 1993. -С. 447-494.

292. Наточин Ю. В. Почка. Справочник врача / Ю. В. Наточин. - СПб: Изд-во С.-Петерб. ун-та, 1997. - 208 с.

293. Наточин Ю. В. Роль простагландина Е2 в восстановлении водонепроницаемости эпителия мочевого пузыря лягушки после действия вазотоцина / Ю. В. Наточин, Н. П. Пруцкова, Е. И. Шахматова // Докл. АН. - 2001. - Т. 376. - С. 553.

294. Наточин Ю. В. Транспорт воды и натрия в осморегулирующих организмах: автореф. дис. доктора биол. наук: 27.11.1967 / Ю. В. Наточин. - Л., 1967. - 35 с.

295. Наточин Ю. В. Физиология почки: формулы и расчеты / Ю. В. Наточин. - Л.: «Наука», 1974. - 60 с.

296. Физиологический способ восстановления осмотического гомеостаза у крыс при гипернатриемии / Д. В. Голосова, А. В. Кутина, Т. А. Каравашкина [и др.] // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. - 2015 - Т. 101, №7. - С. 804-811.

297. Эмануэль В. Л. Лабораторная диагностика заболеваний почек / В. Л. Эмануэль -СПб: Изд-во С.-Петерб. гос. мед. ун-та им. И. П. Павлова, 2004. - 227 с.