Исследование питания массовых видов морских литоральных беспозвоночных методами липидных и биогеохимических маркеров тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.04, кандидат биологических наук Хардин, Александр Сергеевич

• Хардин, Александр Сергеевич
• кандидат биологических наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Хардин, Александр Сергеевич

1. ВВЕДЕНИЕ.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1. Мелководные бентосные сообщества залива Восток (район и объекты исследования).

2.2. Трофическая экология объектов изучения.

2.2.1. Хитоны.

2.2.2. Брюхоногие моллюски.

2.2.3. Двустворчатые моллюски.

2.2.4. Морские звезды.

2.3. Краткие сведения о систематике и биосинтезе жирных кислот (ЖК).

2.3.1. Номенклатура ЖК.

2.3.2. Биосинтез ЖК.

2.4. Исследование питания морских организмов методом маркерных ЖК.

2.4.1. Принципы метода маркерных ЖК.

2.4.2. Маркерные ЖК морских организмов-продуцентов.

2.4.2.1. ЖК бактерий.

2.4.2.2. ЖК микроводорослей.Щ.

2.4.2.3. ЖК макроводорослей и трав Щ?.

2.4.3. Состав ЖК организмов-консументов.

2.4.3.1. ЖК хитонов.

2.4.3.2. ЖК брюхоногих моллюсков.

2.4.3.3. ЖК двустворчатых моллюсков.

2.4.3.4. ЖК морских звезд.

2.5. Изучение морских пищевых цепей методом природных соотношений стабильных изотопов.

3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

3.1. Биологические объекты.

3.1.1. Отбор проб микропланктона.

3.1.2. Сбор и предварительная обработка беспозвоночных.

3.1.3. Анализ содержимого пищеварительного тракта хитонов.

3.1.4. Кормление мидий М. trossulus монокультурами микроводорослей.

3.1.5. Культивирование микроводорослей.

3.1.6. Краткосрочное голодание мидий М. trossulus.

3.1.7. Долгосрочное голодание мидий С. grayanus.

3.2. Лабораторное оборудование.

3.3. Методы обработки липидного материала.

3.3.1. Экстракция общих липидов.

3.3.2. Приготовление метиловых эфиров жирных кислот (МЭЖК).

3.4. Хроматографические методы.

3.4.1. Тонкослойная хроматография.

3.4.3. Газо-жидкостная хроматография МЭЖК.

3.5. Изотопная масс-спектрометрия.

3.6. Статистическая обработка результатов.

4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ.

4.1. Сезонная динамика структуры сообщества фитопланктона залива Восток.

4.2. Сезонная динамика состава ЖК фитопланктона залива Восток.

4.3. Состав ЖК беспозвоночных животных.

4.3.1. ЖК хитонов.

4.3.2. ЖК брюхоногих моллюсков.

4.3.3. ЖК двустворчатых моллюсков.

4.3.4. ЖК морских звезд.

4.4. Закономерности влияния пищевой специализации консументов на состав ЖК и стабильных изотопов этих организмов.

4.4.1. Определение пищевого спектра хитонов по содержимому пищевого комка и составу ЖК тканей пищеварительного тракта.

4.4.2. Зависимость состава ЖК и стабильных изотопов углерода брюхоногих и двустворчатых моллюсков от их пищевой специализации.

4.4.3. Зависимость состава ЖК морских звезд от пищевой специализации.

4.4.4. Изменения в составе ЖК моллюска М. trossulus, связанные с питанием монокультурами микроводорослей.

4.4.5. Влияние голодания на состав ЖК М. trossulus.

4.4.6. Изменение состава жирных кислот С. grctyanus при длительном голодании

4.4.7. Применение метода стабильных изотопов для изучения питания беспозвоночных.

5. ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Исследование питания массовых видов морских литоральных беспозвоночных методами липидных и биогеохимических маркеров»

Питание морских организмов является важной и активно разрабатываемой областью современных экологических исследований. В морских экосистемах количество и доступность пищи в значительной мере определяют распределение и численность популяций организмов. Физиология морских животных тесно связана с видовыми особенностями питания, которые зависят от места вида в пищевой цепи и способов добывания пищи (Одум, 1986). Трофическая структура сообщества является одним основных факторов, обеспечивающих естественное биоразнообразие и устойчивое функционирование сообщества как целостной функциональной единицы, тесно взаимодействующей с другими сообществами (Кусакин, 1994). Определение трофической структуры морских экосистем, в частности, динамики и биологической трансформации органического вещества, возможно только на основе знаний о пищевой стратегии организмов и пищевых ресурсов изучаемых биоценозов (Cubit, 1984). Трофический уровень, который занимает организм в конкретном сообществе можно определить по информации о составе пищи (пищевом спектре) данного вида.

Традиционно состав пищи морских организмов определяют по содержимому пищеварительного тракта животных или их экскрементов. Этот метод (метод пищевого комка) основан на идентификации пищи по непереваренным элементам, таким как, например, хитин или скелет жертвы. При этом значительную долю источников пищи, которые не оставляют в пищеварительном тракте крупных твердых остатков (бактерии, многие микроводоросли, желатинообразный зоопланктон и др.) определить весьма проблематично (Graeve et al., 1994; Pond, Sargent, 1998; Nelson et al., 2002). Как отмечает Цихон-Луканина (1987), основные показатели, которые используются в исследованиях питания водных организмов (скорость потребления, усвояемость и калорийность пищи) часто не дают полной картины из-за низкой точности исходных данных. Также следует отметить, что только на основании данных анализа пищевого комка крайне сложно дать количественную оценку переноса органических веществ по звеньям пищевой цепи.

Особую сложность представляет изучение питания бентосных организмов. Выяснить природу органических остатков, определить относительный вклад первичных продуцентов в формирование вторичной продукции морских донных сообществах только на основании анализа содержимого желудка практически невозможно.

Развитие аналитических методов позволило преодолеть эти трудности и с высокой точностью следить за потоками вещества и энергии в морских экосистемах. В последнее время в исследованиях пищевых взаимоотношений организмов водных экосистем, все шире используют новые методы, основанные на применении биохимических и биогеохимических «маркеров». К «маркерам» такого типа относят компоненты, которые передаются по пищевым цепям от продуцентов к консументам в неизменном виде (Sargent et al., 1987). Сравнивая содержание маркеров в организмах-продуцентах и консументах, можно судить о вкладе различных источников органического вещества в питание отдельных видов морских организмов.

Одной из главных групп химических веществ во всех морских организмах, являются жирные кислоты (ЖК); их состав уникален для большинства таксонов животных и растений. Некоторые из кислот передаются по пищевым цепям без изменений и служат биохимическими маркерами пищи (метод маркерных ЖК) (Sargent et al., 1987; Kharlamenko et al., 1995). Также успешно применяется биогеохимический метод, который основан на определении пропорции между природными стабильными изотопами углерода, азота или серы — метод изотопных маркеров (Boschker, Middelburg, 2002). Разные источники первичной продукции в морских экосистемах имеют различный изотопный состав, как углерода, так и азота. Это дает возможность определять источники органического вещества с более низких трофических уровней. Как показали исследования последних лет, для идентификации путей передачи органического вещества в водных экосистемах наиболее эффективным оказалось комплексное применение классических методов и новых подходов: методов маркерных ЖК и изотопных маркеров (Kharlamenko et al., 2001).

Таким образом, одной из актуальных задач современной экологии является комплексное применение методов маркерных ЖК и изотопных маркеров для изучения питания бентосных мелководных организмов с целью определения трофической структуры морских экосистем, а также динамики и трансформации органического вещества в этих системах.

Цель работы: изучить сезонную динамику видовой структуры фитопланктона и дать характеристики пищевых связей массовых видов донных беспозвоночных мелководных бухт залива Петра Великого Японского моря использованием липидных и изотопных биомаркеров.

Задачи исследования.

1. Установить связь между сезонной сменой видового состава и содержанием маркерных ЖК фитопланктона залива Восток.

2. Определить состав ЖК массовых видов беспозвоночных животных (хитоны, брюхоногие моллюски, двустворчатые моллюски, морские звезды) мелководных бухт залива Петра Великого; определить изменчивость состава ЖК мидии Crenomytilus grayanus от места обитания.

3. Определить влияние состава ЖК пищи на состав ЖК тканей мидии Mytilus trossulus при кормлении в искусственных условиях; изучить изменение состава ЖК тканей мидий М. trossulus и С. grayanus при голодании.

4. Определить и уточнить пищевую специализацию массовых видов хитонов, брюхоногих и двустворчатых моллюсков и морских звезд в районах исследования с применением метода маркерных ЖК и соотношения стабильных изотопов 13С/12С и 15N/14N.

Автор выражает искреннюю благодарность сотрудникам ИБМ ДВО РАН: за помощь в определении видового состава фитопланктона — Морозовой Т.В., помощь в определении состава пищи хитонов — к.б.н. Ивановой М.Б., культивирование микроводорослей — к.б.н. Айздайчер Н.А. и помощь в определении соотношения стабильных изотопов углерода — Кияшко С.И. Мы бы хотели особо отметить неоценимую помощь к.б.н. Латышева Н.А., касающиеся методологии применения биохимических подходов в изучении питания морских организмов.

Заключение диссертации по теме «Биохимия», Хардин, Александр Сергеевич

5. ВЫВОДЫ

1. Изменение содержания маркерных ЖК сетного планктона залива Восток Японского моря отражает сезонное изменение в его составе. Обнаружено, что состав маркерных ЖК фитопланктона отражает его видовой состав. Предложено использовать анализ ЖК планктона для предварительной экспресс-оценки биомассы диатомовых микроводорослей и группового состава планктона.

2. Определён состав ЖК пищеварительной системы 5-ти видов хитонов Ischnochiton hakodadensis, Lepidozona albrechti, Tonicella granulata, Mopalia retifera, Placiphorella borealijaponica. Содержание маркерных ЖК хитонов отражало их пищевую стратегию, что было подтверждено анализом пищевого комка животных. Было показано, что L. albrechti не является всеядным животным, а предпочитает пищу животного происхождения.

3. Выполнен анализ состава ЖК 6-ти видов брюхоногих и 5-ти видов двустворчатых моллюсков залива Восток. Установлено, что в тканях хищных брюхоногих (Nucella heyseana, Cryptonatica jantostoma) содержание ЖК-маркеров зоофагии достоверно выше.

4. Показано, что мидия Mytilus trossulus предпочтительно усваивает ПНЖК n-З серии. Установлено также, что М. trossulus и Crenomytilus grayanus обладают способностью контролировать в тканях содержание липидов и ПНЖК в условиях голодания.

5. Исследован состав ЖК печеночных выростов 7 видов морских звезд залива Восток. Методом маркерных ЖК установлена пищевая специализация этих видов морских звезд.

6. Методом соотношения стабильных изотопов углерода показано, что фитопланктон является доминирующим источником углерода для Metridium senile, М. trossulus, Ruditapes philippinarum, Protothaca euglypta и N. heyseana. Методом соотношения стабильных изотопов азота показано, что консументами второго порядка являются М. senile и Asterias amurensis, в то время как Acmaea pallida, Tegula rustica и М. trossulus являются консументами первого порядка.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Хардин, Александр Сергеевич, 2004 год

1. Адрианов А.В., Кусакин О.Г. Таксономический каталог биоты залива Петра

2. Великого Японского моря // Владивосток: Дальнаука. 1998. 349 с.

3. Багдасарян К.Г., Ахвелидиани Е.Г., Татишвили К.Г., Жгенти Е.М., Казахашвили

4. Ж.Р., Тактакипшили И.Г., Мусхелишвили Л.В., Квалиашвили Г.А., Бадзошвили Ц.И. Справочник по экологии морских двустворок // М.: Наука. 1966. 352 с.

5. Беклемишев В.Н. Основы сравнительной анатомии беспозвоночных // М.: Наука.1964. Т. 1.432 с.

6. Васьковский В.Е., Светашев В.И., Хотимченко С.В. Избирательное расщепление ипоглощение липидов в пищеварительном тракте морского ежа Strongylocentrotus intermedins II Журн. эвол. биохим. физиол. 1982. Т. 18. С. 519-522.

7. Даутов С.Ш. Морфофункциональные аспекты пищевого поведения в онтогенеземассовых видов морских звезд Японского моря // Дисс. на соиск. уч. степ, к.б.н. Владивосток. 1984. 155 с.

8. Евтушенко З.Е., Челомин В.П. Биохимический состав: Липиды // Приморскийгребешок. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1986. С. 114-115.

9. Жукова Н.В. Неметиленразделенные жирные кислоты морских двустворчатыхмоллюсков: распределение по тканям и классам липидов // Ж. эволюц. биохим. и физиол. 1992. Т. 28, N 4. С. 434-440.

10. Золотарев В.Н. Склерохронология морских двустворчатых моллюсков // Киев:

11. Наукова думка. 1989.112 с.

12. Коновалова Г.В. Сезонная характеристика фитопланктона в Амурском заливе

13. Японского моря // Океанология. 1972. Т. 12. С. 123-128.

14. Кияшко С.И. Изучение потоков углерода в морских экосистемах по природнымсоотношениям стабильных изотопов (13С/12С) // Биол. Моря. 1987. № 5. С. 3-12.

15. Кияшко С.И., Харламенко В.И., Имбс А.Б. Соотношение стабильных изотопов ижирные кислоты как маркеры источников пищи беспозвоночных-грунтоедов // Биология моря. 1998. Т. 24, № 3. С. 169-174.

16. Костина Е.Е., Спирина И.С., Янкина Т.А. Распределение макробентоса на литорализалива Восток Японского моря // Биология моря. 1996. Т. 22, № 2. С. 81-88.

17. Кусакин О.Г. Биологическое разнообразие в морских прибрежных экосистемах

18. Дальнего Востока в связи с их устойчивостью // Вестник ДВО РАН. 1994. № 1. С. 85-94.

19. Кусакин О.Г. Литоральные сообщества // Биология океана. Т. 2. М.: Наука. 1977. С.111.133.

20. Латышев Н.А., Кусакин О.Г., Светашев В.И., Кияшко С.И. Определение спектрапитания литорин при антропогенном загрязнении жирами с помощью липидных и изотопных маркеров // Доклады Академии наук. 1999. Т. 366, №5. С. 715-717.

21. Латышев Н.А., Хардин А.С., Кияшко С.И. Жирные кислоты как маркеры пищевыхисточников морских звезд // Доклады Академии наук. 2001. Т. 380, № 5. С. 711713.

22. Левин B.C. Питание мелководных голотурий и его влияние на донные осадки //

23. Санкт-Петербург: Политехника. 1999.247 с.

24. Одум Ю. Экология // М.: Мир. 1986. Т. 1. С. 142-152.

25. Погребов В.Б., Кашенко В.П. Донные сообщества твердых грунтов залива Восток

26. Японского моря // Биологические исследования залива Восток. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1976. С. 63-86.

27. Ромашина Н.А., Жукова Н.В., Шеина В.П. Липиды и жирные кислоты съедобноймидии, выращиваемой в заливе Посьет Японского моря // Биология моря. 1987. № 3. С. 14-17.

28. Ромашина Н. А. Морские беспозвоночные как источник эйкозапентаеновой и другихполиненасыщенных кислот // Биология моря. 1983. № 1. С. 66-68.

29. Селин Н.И. Взаимоотношения между хищным брюхоногим моллюском Nucellaheyseana Dunker и мидией Mytilus edulis Linne II Моллюски: Систематика, экология и закономерности распространения. Л.: Наука. 1983. С. 183-184.

30. Селина М.С. Фитопланктон залива Восток Японского моря // Автореф. дис. канд.биол. наук. Владивосток: Дальнаука. 1998.25 с.

31. Скарлато О.А. Двустворчатые моллюски умеренных вод северо-западной части

32. Тихого океана // JL: Наука. 1981.480 с.

33. Стоник И.В., Орлова Т.Ю. Летне-осенний фитопланктон в Амурском заливе

34. Японского моря // Биология моря. 1998. Т. 24. С. 205-211.

35. Хардин А. С., Айздайчер Н. А., Латышев Н. А. Изменения состава жирных кислотгепатопанкреаса моллюска Mytilus trossulus Gould связанные с питанием микроводорослями // Биология моря, 2003. Т. 29. № 6. С. 424-428.

36. Хотимченко С.В. Липиды морских водорослей-макрофитов и трав // Владивосток.:1. Дальнаука. 2003.234 с.

37. Цихон-Луканина Е. А. Трофология водных моллюсков // М.: Наука. 1987.175 с.

38. Шадрин Н.В., Гульбин В.В. Питание и пищевое поведение хищного брюхоногомоллюска Nucella heyseana взаливе Петра Великого Японского моря // Экология. 1994. № 4. С. 46-53.

39. Achituv Y., Brickener I., Erez J. Stable carbon isotope ratios in Red Sea barnacle

40. Cirripidia) as an indicator of their food source // Mar. Biol. 1997. Vol. 130. P. 243247.

41. Ahlgren G., Gustafsson I., Borberg M.H. Fatty acid and chemical composition offreshwater microalgae // J. Phycol. 1992. Vol. 28. P. 38-50.

42. Allen C.E., Tyler P.A., Van Dover C.L. Lipid composition of the hydrothermal vent clam

43. Calyptogena pacifica (Mollusca: Bivalvia) as a trophic indicator // J. Mar. Biol. U. K. 2001.Vol. 81. P. 817-821.

44. Allen C.F., Good P., Holton R.W. Lipid composition of clanidium // Plant Physiology.1970. Vol. 46. P. 748-751.

45. Allen Copley C.E., Tyler P.A., Varney M.S. Lipid profiles of hydrothermal vent shrimps //

46. Cahiers de Biologie Marine. 1998. Vol. 39. P. 229-231.

47. Allen W.V. Fatty-acid synthesis in the echinoderms: Asterias rubens, Echinus esculentusand Holothuriaforskali II J. mar. biol. Ass. U.K. 1968. Vol. 4. P. 521-533.

48. Anderson J. M. Studies on the cardiac stomach of a starfish Patiria minata (Brandt) // Biol.

49. Bull, 1959. Vol. 117. P. 185-201.

50. Araki G. S. On the physiology of feeding and digestion in the sea star Patiria minata II

51. PhD Dissert. Stanford Univ. 1964. 182 p.

52. Arima K. S., Hamata S., Miyakawa Y. Feeding behavior of the starfish to the bivalves //

53. Scient. Rep. Hokkaido. Fish. Expl. Sta. 1972. Vol. 14. P. 63-69.

54. Arts M.T., Ackman R.G., Holub B.J. "Essential fatty acids" in aquatic ecosystems: acrucial link between diet and human health and evolution // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2001. Vol. 58. P. 122-137.

55. Auel H., Harjes M., Darocha R., Stubing D., Hagen W. Lipid biomarkers indicate differentecological niches and trophic relationships of the arctic hyperiid amphipods Themisto abyssorum and T. libellula II Polar Biology. 2002. Vol. 25, Iss 5. P. 374-383.

56. Bayne B.L. Marine mussels: their ecology and physiology // Cambridge University Press.1976. 506 p.

57. Bell M.V., Dick J.R., Pond D.W. Octadecapentaenoic acid in Raphydophyte alga,

58. Heterosigma akashiwo I I Phytochemistry. 1997. Vol. 45, № 2. P. 303-306.

59. Birkely S.R., Grahl-Nielsen O., Gulliksen B. Temporal variations and anatomicaldistributions of fatty acids in the bivalve Mya truncata, L. 1758, from Isfjorden, Spitsbergen // Polar Biol. 2003. Vol. 26. P. 83-92.

60. Boolootian R.A. On growth and reproduction in the chiton Mopalia muscosa of Santa

61. Monica Bay // Helgolander wiss Meeresuntersuchungen. 1964. Vol. 11, № (3-4). P. 186-199.

62. Borgeson C.E., Kurtti T.J., Munderloh U.G., Blomquist G.J. Insect tissues, notmicroorganisms, produce linoleic-acid in the house cricket and the american cockroach // Experientia. 1991. Vol. 47, № 3, P. 238-241.

63. Bowman J.P., Mccammon S.A., Brown V., Nichols D.S., Mcmeekin T.A. Diversity andassociation of psychrophilic bacteria in Antarctic sea-ice // Applied and Environmental Microbiology. 1997. Vol. 63, Iss 8. P. 3068-3078.

64. Boschker H.T.S., Middelburg J.J. Stable isotopes and biomarkers in microbial ecology //

65. FEMS Microbiology Ecology. 2002. Vol. 40. P. 85-95.

66. Bougrier S., Hawkins A.J.S., Heral M. Preingestive selection of different microalgalmiture in Crassostrea gigas and Mytilus edulis, analysed be flow cytometry H Aquaculture. 1997. Vol. 150. P. 123-134.

67. Bradshaw S.A., CThara S.C.M., Corner E.D.S., Eglinton G. Effects on dietary lipids of themarine bivalve Scrobicularia plana feeding in different modes // J. of the Marine Biol. Ass. of the U. K. 1991. Vol. 71, Iss. 3. P. 635-653.

68. Bullett D.S.M. Deep-sea holoturians // Oceanogr. Mar. Biol. 1991. Vol. 29. P. 259-317.

69. Busse H.-J., Denner E.B.M. Classification and identification of bacteria: currentapproaches to an old problem. Overview of methods used in bacterial systematics // Journal of Biotechnology. 1996. Vol. 47. P. 3-38.

70. Caers M., Coutteau P., Sorgeloos P. Dietary impact of algal and artificial diets, fed atdifferent feeding rations, on the growth and fatty acid composition Tapes philippinarum (L.) spat // Aquaculture. 1999. Vol. 170. P. 307-322.

71. Carreau J.P., Dubacq J.P. Adaptation of a macroscale method to the micro-scale for fattyacid methyl trans-esterification of biological lipid extracts // J. Chromatogr. 1978. Vol. 151. P. 384-390.

72. Carrie R.H., Mitchell L., Black K.D. Fatty acids in surface sediment at the Hebridean shelfedge, west of Scotland // Organic Geochemistry. 1998. Vol. 29, Iss. 5-7. P. 1583-1593.

73. Childress J.J., Fisher C.R., The biology of hydrothermal vent animals physiology,biochemistry and autotrophic symbiosis // Oceanography and Marine Biology. 1992. Vol. 30. P. 337-441.

74. Cobelas M.A., Lechado J.Z. Lipids in microalgae. A review I. Biochemistry // Informacion.1989. Vol. 40, Fasc. 2, P. 118-145.

75. Connor M.S. Niche apportionment among the chiton Cyanoplax hartwegii and Mopaliamuscosa and the limpets Collisella limatula and C. pelta under the brown alga Pelvetia fascigiata II The Veliger. 1975. Vol. 18. P. 9-17.

76. Cubit J.D. Herbivory and the seasonal abundance of algae on a high intertidal rocky shore

77. Ecology. 1984. Vol. 65. P. 1904-1917.

78. Dame R.F. Ecology of marine bivalves. An ecosystem approach // NY.: CRC Press. 1996.272 p.

79. Davies M.S., Hawkins S.J., Jones H.D.J Pedal mucus and its influence on the microbialfood supply of two intertidal gastropods, Patella vulgata (L.) and Littorina littorea (L.) // Exp. Mar. Biol. Ecol. 1992. Vol. 161, Iss. 1. P. 57-77.

80. Demoreno J.E.A., Brenner R.R., Moreno V.J., Pollero R.J. Lipids and fatty acids of themussel (Mytilus platensis Dorbigny) from south-atlantic waters // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1980. Vol 48, Iss. 3. P. 263-276.

81. DeNiro M.J., Epstein S. Influence of diet on the distribution of nitrogen isotopes in animals

82. Geochim. Cosmochim. Acta. 1981. Vol. 45, Iss. 3. P. 341-351.

83. DeNiro M.J., Epstein S. Mechanism of carbone isotope fractionation associated with lipidsynthesis // Science. 1977. Vol. 197. P. 261-263.

84. Dunstan G.A., Baillie H.J., Barrett S.M., Volkman J.K. Effect of diet on the lipidcomposition of various marine species from southern Australian coastal waters // Сотр. Biochem. Physiol. 1996. Vol. 91. P. 165-169.

85. Dunstan G.A., Volkman J.K., Jeffrey S.W., Barrett S.M. Biochemical composition ofmicroalgae from the green algal classes Chlorophyceae and Prasinophyceae. 2. Lipid classes and fatty acids // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1992. Vol. 161. P. 115-134.

86. Dunstan G.A., Volkman J.R., Barret S.M., Leroi J.M., Smith F. Essential polyunsaturatedfatty acid from 14 species of diatom (Bacillariophyceae) // Phytochemistry. 1994. Vol. 35. P. 155-161.

87. Edlung A., Nichols P.D., Roffey R., White D.C. Extractable and lipopolysaccharide fattyacid and hydroxy acid profiles from Desulfovibrio species // J. Lipid Res. 1985. Vol. 26. P. 982-988.

88. Falk-Petersen S., Hagen W., Kattner G., Clarke A., Sargent J.R. Lipids, trophicrelationships, and biodiversity in Arctic and Antarctic krill // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2000. Vol. 57. P. 178-191.

89. Falk-Petersen S., Sargent J.R., Kwasniewski S., Gulliksen В., Millar R.-M. Lipids and fattyacids in Clione limacina and Limacina helicina in Svalbard waters and the Arctic Ocean: trophic implications // Polar. Biol. 2001. Vol. 24. P. 163-170.

90. Falk-Petersen S., Hopkins C.C.E., Sargent J.R. Trophic relationships in the pelagic, Arcticfood web // In: Barnes M., Gibson R.N. (Eds). Trophic relationships in the marine environment. Aberdeen University Press. 1990. Aberdeen. P. 315-333.

91. Farmanfarmaian A. The controversial echinoid heart and hemal system functioneffectiveness in respiratory exchange // Сотр. Biochem. Physiol. 1968. Vol. 24. P. 855-863.

92. Feder H. M., Christensen A. M. Aspects of asteroid biology // In: R. A. Boolootian (Eds.).

93. Physiology of Echinodermata. 1966. P. 87-127.

94. Ferguson J.C. The annual cycle of fatty acid composition in starfish // Сотр. Biochem.

95. Physiol. 1976. Vol. 54. P. 2459-2462.

96. Flanzy J., Boudon M., Zeger C., Phihet J. Application of Carbowax 20-M as an opentubular liquid phase in analysis of nutritionally important fats and oils // J. Chromatogr. Sci. 1976. Vol. 14. P. 17-24.

97. Folch J., Lees N., Sloan-Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification oftotal lipid // J. Biol. Chem. 1957. Vol. 226. P. 497-509.

98. Foster G.G., Hodgson A.N. Consumption and apparent dry matter digestibility of sixintertidal macroalgae by Turbo sarmaticus (Mollusca: Vetigastropoda: Turbinidae) // Aquaculture. 1998. Vol. 167. P. 211-227.

99. Freites L., Labarta U., Fernandez-Reiriz M.J. Evolution of fatty acid profiles of subtidaiand rocky shore mussel seed (Mytilus galloprovincialis, Lmk.). Influence of environmental parameters // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2003. Vol. 268. P, 185-204.

100. Fry В., Scalan R.S., Parker P.L. Stable carbon isotope evidence for 2 sources of organicmatter in coastal sediments seagrasses and plankton // Geochim. Cosmochim. Acta. 1977. Vol. 41. P. 1875-1877.

101. Fry В., Sherr E.B. Delta C13 measurements as indicators of carbon flow in marine andfresh-water ecosystems // Cont. Mar Sci. 1984. Vol. 27. P. 13-47.

102. Fullarton J.G., Dando P.R., Sargent J.R., Southward A.J. Southward E.C. Fatty acids ofhydrothermal vent Ridgeia piscesae and inshore bivalves containing symbiotic bacteria // J. Mar. Biol. Assoc. UK. 1995. Vol. 75. P. 455^68.

103. Fullarton J.G., Wood A.P., Sargent J.R. Fatty acid composition of lipids from sulfuroxidizing and methylotrophic bacteria from Thyasirid and Lucinid bivalves // J. Mar. Biol. Assoc. UK. 1995. Vol. 75, Iss. 2. P. 445^54.

104. Fulton F.T The diet of the chiton Mopalia lignose (Gould, 1846) // The Veliger. 1975. Vol.18. P. 38-41.

105. Gardner D., Riley J.P. The component fatty acids of the lipids of some species of marineand freshwater molluscs // J. Mar. Biol. Ass. U.K. 1972. Vol. 52. P. 827-838.

106. Gosling E.M. Bivalve Molluscs: biology, ecology and culture // Blackwell Science Inc.2003.443 p.

107. Graeve M., Kattner G., Hagen W. Diet-induced changes in the fatty-acid composition ofarctic herbivorous copepods experimental-evidence of trophic markers // J. Exp. Mar. Biol, and Ecol. 1994. Vol. 182. P. 97-110.

108. Graeve M., Kattner G., Pipenburg D. Lipids in arctic benthos: does the acid and alcoholcomposition reflect feeding and trophic interactions? // Polar Biology. 1997. Vol. 18. P. 53-61.

109. Goulletquer P. A bibliography of the manila clam Tapes philippinarum // IFREMER-URAPC, RIDVR-97.02/RA/ La Tremblade. 1997. 122 p.

110. Guillard R.R.L., Ryther J.H. Studies of marine planktonic diatoms. I. Cyclotella nana

111. Hustedt, and Detonula confervacea (Cleve) Gran. // Can. J. Microbiol. 1962. Vol. 8. P. 229-239.

112. Gunstone F.D., Harwood J.L., Padley F.B. The Lipid Handbook // NY.: CRC Press. 1994.1273 p.

113. Hargrave B.T. The utilization of benthic microflora by Hialella azteca (Amphipoda) //

114. Journal Animals Ecology. 1970. Vol. 39. P. 427-437.

115. Harwood J.L. Fatty acid metabolism // Ann. Rev. Plant Phys. Plant Molec. Biol. 1988. Vol.39. P. 101-138.

116. Hatanaka M., Kosaka M. Biological studies on the population of the starfish Asteriasamurensis in Senday Bay // J. Agric. Res. 1959. Vol. 4. P. 159-158.

117. Hayashi K., Kishimura H. Content and composition of diacyl glyceryl ethers in the pyloricceca and ovaries of the asteroids Solaster paxillatus and Asterias amurensis II Fisheries Sci. 1997 Vol. 63, Iss. 3. P. 945-949.

118. Hayashi K. Eicosapentaenoic acid rich triglycerides of scallop hepatopancreas // Nippon

119. Suisan Gakkaishi. 1988. Vol. 54, Iss. 8. P. 1449.

120. Hayashi К., Yamada M. Studies on the component fatty acids in the giant ezo scallop //

121. Bulletin of the Faculty of Fisheries, Hokkaido University. 1975. Vol. 26, Iss. 2. P. 182191.

122. Hopkins T. S., Crozier G. F. Observations on asteroid echinoderm fauna occuring in theshallow water of southern California (intertidal to 60 meters) // Bull. South. Calif. Acad. Sci., 1966. Vol. 65. P. 129-145.

123. Howell K.L., Pond D.W., Billett D.S., Tyler P.A. Feeding ecology of deep sea seastars

124. Echinodermata: Asteroidea): a fatty-acid biomarker approach // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2003. Vol. 255. P. 193-206.

125. Ino Т., Sagara J., Hamada S., Tamakawa M. On the spawning season of the starfish

126. Asterias amurensis, in Tokyo Bay // Bull. Jap. Soc. Scient. Fish. 1955. Vol. 21. P. 3236.

127. Jangoux M., Lawrence J.M. Echinoderm Nutrition // Rotterdam: Balkema. 1982. 483 p.

128. Jarzebski A., Falkowski L., Polak L., Wenne R. Microgeographic differentiation in thelipid-composition of the bivalve Macoma balthica from the gulf of Gdansk (Southern Baltic) // Marine Biology. 1986. Vol. 91, Iss. 1. P. 27-31.

129. Johns J.D., Nickols P.D., Perry G.J. Fatty acid components of 9 species of mollusks of thelittoral zone from Australian waters // Сотр. Biochem. Physiol. 1980. Vol. 65B. P. 207-214.

130. Joseph J.D. Lipid composition of marine and estuarine invertebrates. Mollusca // Prog.1.pid Res. 1982. Vol. 21. P. 109-153.

131. Kanazawa A., Teshima S.-I., Kazuo O. Relationship between essential fatty acidrequirements of aquatic animals and the capacity for bioconversion of linolenic acid to highly unsaturated fatty acids // Comp.Biochem. Physiol. 1979. Vol.63B. P.295-298.

132. Kaneniwa M., Okamoto J., Takagi T. Fatty acids in Asteroidea. Occurrence of unusual 5olefinic acids // Сотр. Biochem. Physiol. 1987. Vol. 87B, № 4. P. 1037-1040.

133. Kattner G., Hagen W., Graeve M., Albers C. Exceptional lipids and fatty acids in thepteropod Clione limacina (Gastropoda) from both polar oceans // Marine Chemistry. 1998. Vol. 61. P. 219-228.

134. Kharlamenko V.I., Zhukova N.V., Khotimchenko S.V., Svetashev V.I., Kamenev G.M.

135. Fatty acids as markers of food sources in a shallow-water hydrothermal ecosystem (Kraternaya Bight, Yankich Island, Kurile Islands) // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1995. Vol. 120. P. 231-241.

136. Khotimchenko S.V., Vaskovsky V.E. Distribution of C20 polyenoic fattya acids in redmacrophytic algae // Botanica Marina. 1990. Vol. 33, Iss. 11. P. 525-528.

137. Kim Y.S. Selective feeding on the several bivalve molluscs by starfish, Asterias amurensis1.tken // Bull. Fac. Fish. Hokkaido Univ. 1969. Vol. 19. P. 244-249.

138. Kluytmans J.H., Boot J.H., Oudejans R.C.H.M., Zandee D.I. Fatty-acid synthesis inrelation to gametogenesis in the mussel Mytilus edulis-L II Сотр. Biochem. Physiol. B. 1985. Vol. 81. P. 959-963.

139. Langer P.D. Diet analysis for three subtidal coexisting chitons from the Northwestern

140. Atlantic (Mollusca: Polyplacophora) // The Veliger. 1983. Vol. 25, Iss. 4. P. 370-377.

141. Lee R.F., Nevenzel J.C., Paenho G.A. Importance of wax esters and other lipids in themarine food chain: phytoplankton and copepods // Mar. Biol. 1971. Vol. 9. P. 99-108.

142. Lee R.F., Patton J.S. Alcohols and Waxe // In: Ackman R.G. (Ed.), Marine Biogenic1.pids, Fats and Oils. Vol. 1. CRC Press. FL. 1989. P. 73-102

143. Leonardos N., Lucas I.A.N. The use of larval fatty acids as an index of growth in Mytilusedulis L-larvae//Aquaculture. 2000. Vol. 184, Iss. 1-2. P. 155-166.

144. Leveille J-C., Amblard C., Bourdier G. Fatty acids as specific algal markers in a lacustrianphytoplankton // J. Plankt. Res. 1997. Vol. 19. P. 469-490.

145. Lovern J.A. The lipids of marine organisms // Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev. Ed: H.

146. Barnes. George Allen and Unwin Ltd., London. Vol. 2. P. 169-191.

147. Luckens P.A. Predation and intertidal zonation at Asamushi // Bull. Mar. Biol. Sta.

148. Asamushi. 1970. Vol. 14. P. 33-52.

149. Mahlenberg F., Riisgard H.U. Effeciency of particle retention in 13 species of suspensionfeeding bivalves // Ophelia. 1978. Vol. 17. P. 239-246.

150. Medina A.R., Grima E.M., Gimenez A.G., Gonzalez M.J.I. Downstream processing ofalgal polyunsaturated fatty acids // Biotechnology Advances. 1998. Vol. 16, № 3. P. 517-580.

151. Meziane Т., Bodineau L., Retiere C., Thoumelin G. The use of lipid markers to definesources of organic matter in sediment and food of the intertidal salt-marsh-flat ecosystem of Mont-Saint-Michel Bay, France // J. Sea Res. 1997. Vol. 38. P.47-58.

152. Montero P.M.S., James A.J., Sholto-Douglas A., Field J.G. The 13C trophic positionisotope spectrum as a tool to define and quantify carbon pathways in marine food webs // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1991. Vol. 78. P. 33-40.

153. Moule A.L., Wilkinson S.G. Polar lipids, fatty acids and isoprenoid quinones of

154. Alteromonas putrefaciens (Shewanella putrefaciens) II Sys. App. Microbiol. 1987. Vol. 9. P. 192-198.

155. Murphy K.J, Mooney B.D., Mann N.J., Nichols P.D., Sinclair A.J. Lipid, FA, and sterolcomposition of New Zealand green lipped mussel (Perna canaliculus) and Tasmanian blue mussel (Mytilus edulis) // Lipids. 2002. Vol. 37. P. 587-595.

156. Napier J.A. Plumbing the depths of PUFA biosynthesis: a novel polyketide synthase-likepathway from marine organisms // Trends in Plant Science. 2002. Vol. 7, Iss. 2. P. 5154.

157. Navarro J.M., Leiva G.E., Martinez G., Aguilera C. Interactive effects of diet andtemperature on the scope for growth of the scallop Argopecten purpuratus during reproductive conditioning // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2000. Vol. 247. P. 67-83.

158. Nelson D.C., Fisher C.R., Chemoautotrophic and methanoautotrophic endosymbioticbacteria at deep-sea vents and seeps // In: The microbiology of deep-sea hydrothermal vents, (ed. Karl, D.M.). 1995. P. 125-167.

159. Nelson M.M., Leighton L., Phleger C.F., Nichols P.D. Comparison of growth and lipidcomposition in the green abalone, Haliotis fulgens, provided specific macroalgal diets // Сотр. Biochem. Physiol. B. 2002. Vol. 131. P. 695-712.

160. Nelson M.M., Mooney B.D., Nichols P.D., Phleger C.F. Lipids of Anarctic Oceanamphipods: food chain interactions and the occurrence of novel biomarkers // Mar. Chem. 2001. Vol. 73. P. 53-64.

161. Nichols D.S. Procaryotes and the input of polyunsaturated fatty acids to the marine foodweb // FEMS Microbiol. Lett. 2003. Vol. 219. P. 1-7.

162. Nichols D.S., McMeekin T.A. Biomarker techniques to screen for bacteria that producepolyunsaturated fatty acids //J. Microbiol. Meth. 2002. Vol. 48. P. 161-170.

163. Nichols P.D., Mayberry W.R., Antworth C.P., White D.C. Determination ofmonounsaturated double bond position and geometry in the cellular fatty acids of thepathogenic bacterium Franciella tularensis I I J. Clin. Microbiol. 1985. Vol. 21. P. 738740.

164. Nicol D. Some observations on the hollow curve of distribution // Fla Sci. 1981. Vol. 44. P.118.123.

165. Nojima S. Ecological studies of sea star, Actopecten latespinosus Meissner. I. Survivorshipcurve and life history // Amakusa Mar. Biol. Lab. 1979. Vol. 4. P. 45-65.

166. Owen G. Feeding and digestion in the Bivalvia // Advances in Comparative Physiology and

167. Biochemistry. 1974. Vol. 5. P. 1-35.

168. Paradis M., Ackman R.G. Potential for employing the distribution of anomalous nonmethylene-interrupted dienoic fatty acids in several marine invertebrates as part of food web studies // Lipids. 1977. Vol. 12. P. 170-176.

169. Pazos A.J., Ruiz C., GarciaMartin O., Abad M., Sanchez J.L. Seasonal variations of thelipid content and fatty acid composition of Crassostrea gigas cultured in El Grove, Galicia, NW Spain // Сотр. Biochem. Physiol. 1996. Vol. 114. P. 171-179.

170. Petraitis P.S. Direct and indirect effects of predation, herbivory and surface rugosity onmussel recruitment // Oecologia. 1990. Vol. 83. P. 405-413.

171. Piveteau F., Gandemer G., Baud J.P., Demaimay M. Changes in lipid and fatty acidcompositions of European oysters fattened with Skeletonema costatum diatom for six weeks in ponds // Aquaculture International. 1999. Vol. 7. P. 341-355.

172. Polak L., Falkowski L., Jarzebski A., Wenne R. Seasonal changes in condition and lipidscomposition of the bivalve Macoma balthica L. from the gulf of Gdansk (Southern Baltic) // Сотр. Biochem. Physiol. B. 1987. Vol. 88, Iss. 3. P. 881-885.

173. Pond D.W., Bell M.V., Harris R.P., Sargent J.R. Microplanktonic polyunsaturated fattyacid markers: a mesocosm trial // Estuar.Coast. Shelf Sci. 1998. Vol. 46. P. 61-67.

174. Pond D.W., Sargent J.R. Lipid composition of the pelagic tunicate Dolioletta gegenbauri

175. Tunicata, Thaliacea). // J. Plankton Res. 1998. Vol. 20, Iss. 1. P. 169-174.

176. Rau G.H., Kaplan I.R., Mearns A.J., Olson R.J., Schafer H.A., Young D.R. Animal C13/C-12 correlates with trophic level in pelagic food webs // Ecology. 1983. Vol. 64, Iss. 5. P. 1314-1318.

177. Rawlings B.J. Biosynthesis of fatty acids and related metabolites // Natural Product

178. Reports. 1997. Vol. 14. P. 335-358.

179. Reuss N., Poulsen L.K. Evolution of fatty acids as biomarkers for a natural planktoncommunity. A field study of a sspring bloom and a post-bloom period off West Greenland // Mar. Ecol. 2002. Vol. 141. P. 423-234.

180. Rezanka Т., Volkman J., Slavicek J. and Podojil M. Determination of fatty acids in algaeby capillar gas chromatography-mass spectrometry // J. Chromatography. 1983. Vol. 268. P.71-78.

181. Robb M.F. The diete of the chiton Cyanoplax hartwegii in three intertidal habitat // The

182. Veliger. 1975. Vol. 18. P. 34-37.

183. Rodegker W., Nevenzel J.C. The fatty acid composition of three marine invertebrates //

184. Сотр. Biochem. Physiol. Vol. 11. P. 53-60.

185. Sargent J.R., Eilertsen H.C., Falk-Petersen S., Taasen J.P. Carbon assimilation and lipidproduction in phytoplankton in northern Norwegian fjords // Mar. Biol. 1985. Vol. 85. P.109-116.

186. Sargent J.R., Falk-Petersen S. Ecological investigations on the zooplankton community in

187. Balsfjorden, northern Norway: lipids and fatty acids in Meganyctiphanes norvegica, Thysanoessa raschi and T. inermis during midwinter // Mar. Biol. 1981. Vol. 62. P. 131-137.

188. Sargent J.R., Parkes R.J., Mueller-Harvey I., Henderson R.J. Lipid biomarkers in marineecology // Microbes in the sea. Chichester: Ellis Horwood. 1987. P. 119-138.

189. Sargent J.R., Whittle K.J. Lipids and hydrocarbons in the marine food web // In: Longhurst

190. AR (ed) Analysis of marine ecosystems. Academic. London. 1981. P. 491-533.

191. Seed R. Ecology // In: Marine mussels their ecology and physiology. (Ed.: Bayne B.L.).

192. Cambridge University Press. 1976. P. 13-66.

193. Sirenko B.I. The importance of the development of articulamentum for taxonomy ofchitons (Mollusca, Polyplacophora) // Ruthenica. 1997. Vol. 7, Iss. 2. P. 77-89.

194. Skvortzow B.W. Marine littoral diatoms from the bottom of the Sea of Japan // Phillipinic

195. J. Sci. 1932. Vol. 47, № 1. P. 45-53.

196. Sloan N.A. Aspects of the feeding biology of asteroids // Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev.1980. Vol. 18. P. 57-124.

197. Sofer Z.U. Preparation of carbon dioxide for stable carbon isotope analysis of petroleumfractions // Anal. Chem. 1980. Vol. 52. P. 1389-1391.

198. Stumpf P.K. Fatty acid biosynthesis in higher plants // In: Fatty Acid Metabolism and Its

199. Regulation. Ed: S.Numa. New Comprehensive Biochemistry. Amsterdam New York -Oxford.: Elsevier, 1984. Vol. 7. P. 155-179.

200. Surh J., Ryu J. S., Kwon H. Seasonal variations of fatty acid compositions in various

201. Korean shellfish // J. Agr. Food Chem. 2003. Vol. 61, Iss. 6. P. 1617-1622.

202. Svetashev V.I., Vaskovsky V.E. A simplified technique for thin-layermicrochromatography of lipids // J. Chromatogr. 1972. Vol. 67, № 2. P. 376-378.

203. Takagi Т., Eaton C.A., Ackman R.G. Distribution of fatty acids in lipids of the commonatlantic sea urchin Strongylocentrotus droebachiensis // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1980. Vol. 37. P. 195-202.

204. Takagi Т., Toyama Y. Fatty oils from echinoderms and molluscs with a particular referenceto their sterol components // XII Mem. Fac. Eng. Nagoya Univ., 1958, Vol. 8, Chem. Abs., Iss. 52., 15098C.

205. Thompson P.A., Harrison P.J., Whyte J.N.C. Influence of irrdiance on the fatty acicomposition of phytoplankton // J. Phycol. 1990. Vol. 26. P. 278-288.

206. Thompson P.A., Ming-xin Guo, Harrison P.J., Whyte J.N.C. Effects of variation intemperature. II. On fatty acid composition of eight species of marine phytoplankton // J. Phycol. 1992. Vol. 28. P. 488-497.

207. Thresher R.E., Nichols P.D., Gunn J.S., Bruce B.D., Furlani D.M. Seagrass detritus as thebasis of a coastal planktonic food-chain // Limnology And Oceanography. 1992. Vol. 37, Iss. 8. P. 1754-1758.

208. Vander Zanden M.J., Rasmussen J.B. Primary consumer delta C-13 and delta N-15 andthe trophic position of aquatic consumers // Ecology. 1999. Vol. 80, Iss. 4. P. 13951404.

209. Viron C., Saunois A., Andre P., Perly В., Lafosse M. Isolation and identification ofunsaturated fatty acid methyl esters from marine micro-algae // Analytica Chimica Acta. 2000. Vol. 409. P. 257-266.

210. Viso A.C., Marty J.C. Fatty acids from 28 marine microalgae // Phytochemistry. 1993. Vol.34, №6. P. 1521-1533.

211. Volkman J.K., Jeffrey S.W., Nichols P.D., Rogers G.I., Garland C.D. Fatty acid and lipidcomposition of 10 species of microalgae used in mariculture // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1989. Vol. 128. P. 219-240.

212. Volkman J.K., Johns R.B., Gillan F.T., Perry G.J., Bavor Jr.H.J. Microbial lipids of anintertidal sediment. 1. Fatty acids and hydrocarbons // Geochim. Cosmochim. Acta. 1980. Vol. 44. P. 1133-1143.

213. Voogt P.A. Lipid and sterol components and metabolism in Mollusca // N.Y.: Academic1. Press. 1972. P. 245-300.

214. Wada E., Mizutani H., Minagawa M. The use of stable isotopes for food web analysis //

215. Critic.Rev. Food Sci. Nutr. 1991. Vol. 30. P. 361-371.

216. Waldock M.J., Holland N.N. Fatty acid metabolism in young oysters, Crassostrea gigaspolyunsaturated fatty acids // Lipids. 1984.Vol. 19. P. 332-335.

217. Wallis J.G., Watts J.L., Browse J. Polyunsaturated fatty acid synthesis: what will they thinkof next?// Trends in Biochemical Sciences. 2002., Vol. 27, № 9. P. 467-473.

218. Weinert J., Blomquist G.J., Borgeson C.E. De-novo biosynthesis of linoleic-acid in 2 noninsect invertebrates the land slug and the garden snail // Experientia. 1993. Vol. 49, №10. P. 919-921.

219. White D.S., Davis W.M., Nickels J.S., King J.D., Bobbie R.J. Determination of thesedimentary microbial biomass by extractible lipid phosphate II Oecologia. 1986. Vol. 40. P. 51-112.

220. Yazawa K. Production of eicosapentaenoic acid from marine bacteria // Lipids. 1996. Vol.31. P. 297-300.

221. Zhukova N.V. Biosynthesis of non-methylen-interrupted dienoic fatty acids from 14Cacetate in molluscs // Сотр. Biochem. Physiol. 1986. Vol. 83B. P. 643-646.

222. Zhukova N.V., Aizdaicher N.A. Fatty acid composition of 15 species of marine microalgae

223. Phytochemistry. 1995. Vol. 39. P. 351-356.

224. Zhukova N.V., Aizdaicher N.A. Lipid and Fatty acid composition during vegetative andresting stages of the marine diatom Chaetoceros salsugineus II Botanica Marina. 2001. Vol. 44. P. 287-293.

225. Zhukova N.V., Kharlamenko V.I., Svetashev V.I., Rodionov I.A. Fatty acids as markers ofbacterial symbionts of marine bivalve mollusks // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1992. Vol. 162, Iss. 2. P. 253-263.

226. Zhukova N.V., Svetashev V.I. Non-methylene-interrupted dienoic fatty acids in mollusksfrom the Sea of Japan // Сотр. Biochem. Physiol, part B. 1986. Vol. 83, Iss. 3. P. 643646.