Иммунный ответ рыб - объектов аквакультуры на вакцинацию против бактериальных заболеваний тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.10, кандидат биологических наук Гусева, Наталья Владимировна

• Гусева, Наталья Владимировна
• кандидат биологических наук
• 1998

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Гусева, Наталья Владимировна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА!. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1. Иммунная система рыб.

2. Иммуномодулирующие факторы.

3. Вакцинация рыб как биологический способ модуляции иммунного ответа

4. Распространение подвижных аэромонад в природе и характеристика вызываемых ими заболеваний.

5. Факторы патогенности подвижных аэромонад.

6. Иммунопрофилактика заболеваний, вызываемых подвижными аэромонадами

7. Распространение Aeromonas salmonicida в природе и характеристика вызываемых ею заболеваний.

8. Факторы патогенности Aeromonas salmonicida.

9. Иммунопрофилактика заболеваний, вызываемых A. salmonicida

10. Распространение Vibrio anguillarum в природе и характеристика заболевания.

11. Факторы патогенности Vibrio anguillarum.

12. Иммунопрофилактика заболевания, вызываемого

Vibrio anguillarum.

ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

ГЛАВА III. ИММУННЫЙ ОТВЕТ РЫБ НА ВВЕДЕНИЕ ВЮС-2 И

3-1,3-ГЛЮКАНА.

1. Иммунный ответ карпа на введение препаратов.

Гематологические показатели.

Иммунологические показатели.

Продукция антител.

Адгезия бактерий к эпидермальной слизи рыб

Бактерицидная активность слизи и сыворотки рыб.

Фагоцитарная активность клеток селезенки рыб

Активность миграции макрофагов в слизистую конечного отдела кишечника рыб.

Результаты гистологических исследований.

Результаты определения защитного эффекта препаратов.

Определение ЛД » культур A. hydrophila и A. sobria

Защитный эффект ВЮС-2 и (3 - 1,3 - глюкана при экспериментальном аэромонозе карпа

2. Иммунный ответ радужной форели.

Гематологические показатели.

Иммунологические показатели

Продукция антител.

Бактерицидная активность эпидермальной слизи рыб.

Адгезия бактерий к эпидермальной слизи рыб.

Фагоцитарная активность клеток селезенки рыб.

Активность лизоцима сыворотки и слизи рыб.

Активность миграции макрофагов в слизистую конечного отдела кишечника рыб .„.

Результаты гистологических исследований.:.

Результаты определения защитного эффекта препаратов.

Заражение радужной форели высокими концентрациями

V. anguillarum

Заражение радужной форели низкими концентрациями

V. anguillarum

ГЛАВА IV. ИММУННЫЙ ОТВЕТ РАЗЛИЧНЫХ ВОЗРАСТНЫХ ГРУПП

КАРПА НА ВАКЦИНАЦИЮ ВЮС-2.

Специфический иммунный ответ различных возрастных групп карпа на вакцинацию ВЮС-2 в экспериментальных условиях.

Иммунный ответ различных возрастных групп карпа на вакцинацию ВЮС-2 в производственных условиях.

ГЛАВА V. ОСОБЕННОСТИ ИММУННОГО ОТВЕТА РЫБ НА ВАКЦИНАЦИЮ БАКТЕРИНОМ FUROGEN * И ВАКЦИНОЙ ВЮС-2.

Продукция агглютинирующих антител сыворотки крови рыб.

Продукция преципитирующих антител эпидермальной слизи рыб.

Уровень преципитирующих антител сыворотки иммунизированных рыб к экстраклеточным продуктам A. salmonícída

Защитный эффект вакцины и бактерина при экспериментальном фурункулезе.

ГЛАВА VI. СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ ИММУННОГО ОТВЕТА

РАДУЖНОЙ ФОРЕЛИ НА ВВЕДЕНИЕ ВАКЦИНЫ ВЮС-2 И . р - 1,3 - ГЛЮКАНА ПРИ ПОДОСТРОМ И ХРОНИЧЕСКОМ.

Т-2-МИКОТОКСИКОЗЕ. И

Гематологические показатели.

Гематологические показатели "чистых" контрольных групп.

Гематологические показатели при подостром Т-2-м и кото кс и козе.

Гематологические показатели при хроническом Т-2-микотоксикозе

Активность фагоцитоза клеток селезенки радужной форели.

Активность фагоцитоза клеток селезенки рыб "чистых" контрольных групп.

Фагоцитарная активность клеток селезенки рыб при подостром

Т-2-микотоксикозе.

Фагоцитарная активность клеток селезенки рыб при хроническом

Т-2-микотоксикозе.

ГЛАВА VII. ПРОТЕКТИВНЫЕ СВОЙСТВА ВАКЦИНЫ ВЮС-2 ПРОТИВ

НЕКОТОРЫХ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ

Протективные свойства вакцины ВЮС-2 против экспериментального вибриоза лососевых, вызванного V. anguillarum.

Протективные свойства вакцины ВЮС-2 при энтеросептическом заболевании смешанной этиологии ремонтно-маточного стада канального сома

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Иммунный ответ рыб - объектов аквакультуры на вакцинацию против бактериальных заболеваний»

За последние десятилетия во многих странах мира заметно увеличилось использование рыбы, являющейся важным источником обеспечения человека легко-усваиваемой белковой пищей. Усилившийся промысел в морях привел к оскудению рыбных запасов и уменьшению в нем отдельных наиболее ценных объектов, ранее доминировавших в уловах. В то же время лишь 5 % от общего объема добываемой рыбы и морепродуктов используется в наиболее ценном свежем виде (Мамонтов и ДР-, 1997).

В современных условиях четко обозначилась необходимость активного развития как пресноводной, так и морской аквакультуры .

Однако выращивание рыбы в промышленных условиях сопряжено с воздействием разнообразных стрессовых факторов, таких как резкие колебания температуры воды (физические); дефицит кислорода, накопление в воде аммиака и других метаболитов, высокие уровни органического загрязнения, сублетальные дозы тяжелых металлов и токсических веществ (химические); использование кормов низкого качества, недокорм, частая смена рациона (кормовые); травмы, ушибы (травматические); стресс, вызванный хендлингом - перевозка, переуплотненные посадки, тотальные обловы и другие рыбоводные операции ( Ведемейер и др., 1981; Головин, 1987, Конев, 1997).

Любые изменения, происходящие в среде обитания, отражаются на физиологическом состоянии и общей резистентности рыб и способствуют развитию возбудителей инфекционных и инвазионных болезней (Ванятинский и др., 1979; Бауер и др., 1981). В аквакультуре все чаще появляются новые, ранее не известные заболевания, приводящие не только к снижению общей продуктивности, но и к массовой гибели рыбы (Рудиков, Грищенко, 1985; Каховский, 1990; Борисенко, 1991). Потери в случае возникновения эпизоотии бактериальных заболеваний, таких как фурункулез, вибриоз, иерсиниоз и других, достигают 70-100 % (Бауер, 1983; Austin, Austin, 1993; Newman, 1993; Noga, 1995).

На основании вышеизложенного, можно сделать вывод, что в условиях высокоинтенсивной аквакупыуры контроль инфекционных заболеваний приобретает особо важное значение. В настоящее время с этой целью используется шесть основных методов, включающих в себя : высокую культуру выращивания рыбы (Austin, Austin, 1989); получение генетически устойчивых к тому или иному заболеванию породных групп и отдельных видов (Илясов 1989; Cipriano, 1998); полноценное кормление (Щербина, 1975; Durve, Love!!, 1932; Щербина и др., 1992); предотвращение распространения заболеваний посредством введения карантинов и наложения ограничений на перемещение инфицированной рыбы; вакцинация (Ellis, 1988; Newman, 1993); использование широкого спектра антибактериальных препаратов (Austin, Austin, 1993).

Из всех известных методов наиболее широкое распространение до последнего времени имело использование антимикробных препаратов как для наружного (формалин, малахитовый зеленый, хлорамин Т и др.), так и для внутреннего применения (антибиотики, нитрофураны, сульфаниламиды и др.) ( Бауер и др., 1977,81; Warren, 1980; Рудиков, Грищенко, 1985). Однако, в связи с высокой стоимостью препаратов, краткосрочной защитой, существующими ограничениями по продаже рыбы, подвергавшейся лечению, снижением их эффективности в результате появления антибиотикоустойчивых микроорганизмов и существованием явной опасности для человека и окружающей среды, в последние десятилетия все большее внимание уделяется вакцинации, как. одному из наиболее эффективных и экологически чистых методов профилактики заболеваний рыб.

Многочисленные работы по изучению иммунитета рыб, факторов патогенное rw возбудителей и иммунопрофилактике позволили создать высокоэффективные внкцины и иммуностимулирующие препараты (Anderson, 1997; Evelyn, 1997). В настоящее время в мировой рыбоводной практике широко используются бакгерины против таких заболеваний лососевых как вибриоз, вызываемый бактериями Vibrio anguHlarum, V. ■ ordafii, V. salmonicida, и фурункулез, вызываемый Aeromonas salmonicida. Ведутся работы над созданием вакцин против бактериальной почечной болезни (Renibacterium salmortinarum) w риккетсиальной септицемии (Pisciíick&ísm salmonis) лососевых, кишечной септицемии канального сома (Edwardsiella híaluri), энтерококковой септицемии (Ent&rococcus seríolicida) и пастереллеза (Pasteur&lla pisíicída) морских рыб. В 1988 году в лаборатории ихтиопатологми ВНИИПРХ совместно с биохимиками Карельского научного центра РАН создана вакцина ВЮС-2 против аэромоиоза (бактериальной геморрагической септицемии) рыб, показавшая высокую степень защиты как в лабораторных, так и производственных испытаниях (Юхименко и др., 1396, 1998). Несмотря на полученные положительные результаты;, влияние отдельных антигенов и вакцин на иммунную систему рыб, а также специфичность вызываемого ими иммунитета остаются до конца не изученными, а зачастую и неизвестными. Имеющиеся es доступной нам литературе данные в большинстве случаев характеризуют лишь продукцию специфических антител на введение» той или иной вакцины и уровень вызываемой ею защиты. Не менее важным, на наш взгляд, является изучение эффективности вакцинации на фоне стрессовых факторов, связанных с искусственным выращиванием рыбы.

На основании вышеизложенного, цель работы заключалась в изучении имму-ногоикых спийстн вакцины ВЮС-2 при оптимальных условиях содержания рыбы м на фоке иммуносупрессирующих факторов мкчм^ t ього ответа различных водов рыб на ее введение, а также в оценке защитно« о н чедокта вакцины против некоторых бактериальных заболеваний в сравнении с широко используемыми в зарубежной аква-культуре коммерческими иммуностимулирующими препаратами

Для достижения поставленной цели предстояло решить следующие задачи:

1. Изучить неспецифический иммунный ответ карпа ( Cyprinus carpió L) w радужной форели (Oncorhynchus rnykiss) к<* пгмдепие вакцины ВЮС-2 и (3 -1,3 глюкана.

2. Оценить специфический и ивыiei мифический иммунный ответ различных возрастных групп карпа на вакцинацию ВЮС-2 в экспериментальных и производственных условиях.

3. Сравнить эффект бактерина Furogen* и ВЮС-2 на иммунный ответ кумжи

Salmo trutta) и защитное действие препарат oí * про i иш фурункулеза.

4. Изучить иммуннный ответ радужной форели на введение вакцины ВЮС-2 и Э -1,3 глюкана при подостром и хроническом Т-2-микотоксикозе.

5. Определить защитный эффект вакцины ВЮС-2, против вибриоза лососевых, вызываемого бактерией \ffbm апдиШагит, и знтеросептического заболевания смешанной этиологии ремонтно-маточной группы канального сома.

Я до глубины своего сердца благодарна своим родителям |Гусгпу Нпадимиру Сергеевичу и Гусевой Галине Семеновне, а также своей сестре

Одинцовой Елене Владимировне, оказавшим мне огромную помощь в подготовке и выполнении работы и поддержавших меня в этот период.

Я выражаю признательность своему руководителю Юхименко Людмиле Никольские, предоставившей мне возможность работы с вакциной ВЮС-2 и вдохновившей меня на ее выполнение.

Я выражаю особую благодарность Циприано Рокко Кармин и Форд Ларисе Анн, давшим мне правильное представление об иммунологии и вакцинологии рыб и оказавшим мне большую помощь при выполнении и написании диссертации, а таюке Галашу Владимиру Тимофеевичу за помощь в проведении экспериментов, подготовке и чтении гисгопропарелог'.

Мне также хотелось бы поблагодарить всех сотрудников лаборатории ихтио-патологии ВНИИПРХ, национальной лаборатории здоровья рыб США, кафедры охраны рыб и дикой природы и экспериментальной базы Хагерман университета штата Айдахо (США) за всестороннюю помощь и поддержку в период проведения экспери ментальн ых работ.

Заключение диссертации по теме «Ихтиология», Гусева, Наталья Владимировна

ВЫВОДЫ

1. В процессе выращивания карпа и лососевых рыб, являющихся основными объектами аквакультуры, наиболее массовые потери вызываются заболеваниями бактериальной этиологи и (аэромоноз, вибриоз, фурункулез и др.), что требует внедрения более эффективных, а главное экологически чистых методов профилактики, одним из которых является использование вакцин м иммуностимулирующих i/ •/ препаратов.

2. Вакцина ВЮС-2 является сильнейшим активатором неспецифического гуморального и клеточного иммунитета различных видов рыб, что проявляется в активации антителообразования, лизоцима, бактерицидной активности слизи и сыворотки, адгезии бактериальных патогенов к эпидермальной слизи, миграции макрофагов в конечный отдел кишечника рыб, фагоцитоза, выработки лейкоцитов, в том числе нейтрофилов и моноцитов, а также в гиперплазии и гипертрофии слизистых клеток эпидермиса.

3. Пик выработки антител, специфичных к ВЮС-2, у карпа различных возрастных групп (годовики, двухгодовики, трехгодовики) при оптимальной температуре содержания наступает через 6 недель после вакцинации. В возрастном аспекте наибольшая продукция антител отмечается у двухгодовиков, а наименьшая - у трех-годовиков.

4. В производственных условиях специфические к вакцине антитела регистрируются в сыворотке вакцинированных карпов в течение 17 месяцев.

5. Вакцина ВЮС-2 не стимулирует продукцию антител к Aeromonas salmonicida у кумжи (Salmo fruta), а также не активизирует факторы клеточного и гуморального иммунитета карпа (Cyprinus carpió) против данного патогена.

6. Вакцина ВЮС-2 и в меньшей степени р-1,3-глкжан сглаживают негативный эффект стресса, вызванного поступлением Т-2-микотоксина в организм рыб, и позволяют поддерживать физиологический баланс в организме.

7. Микотоксикозы значительно снижают эффективность вакцинации и иммунизации рыб, оказывая негативное влияние как на гематологические, так и на иммунологические показатели.

8. ВЮС-2 обладает ярко выраженными защитными свойствами против вибриоза лососевых, вызываемою Vibrio anguidarum, обеспечивая 70 % защиту рыбы при экспериментальном заражении.

9. Протективные свойства ВЮС -2 проявляются в случае инфекционных заболеваний смешанной этиологии, вызванных представителями бактериальных семейств Vibrionaceae и Enierobacíeriaceae.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Вакцина ВЮС-2 может быть использована не только с целью профилактики аэромоноза (бактериальной геморрагической септицемии) рыб, но и для повышения устойчивости лососевых к вибриозу.

2. Для получения максимального эффекта от вакцинации и/или иммунизации рыбы необходимо исключить\ снизить негативное воздействие стрессовых нагрузок.

3. Вакцина ВЮС-2 может быть использована в качестве актидотного препарата в случае возникновения Т-2-микотоксикозов.

4. На основании того, что длительность специфического иммунного ответа карпа на введение вакцины ВЮС-2 в производственных условиях составляет 1 - 1,5 года, по истечении указанного срока целесообразно проводить ревакцинацию данного вида рыб.

5. Контрольные отборы проб для оценки уровня неспецифического иммунного ответа рыб на вакцинацию необходимо проводить на 15-20 день после введения ВЮС-2.

6. Отборы сывороток от вакцинированных рыб с целью изучения специфического иммунного ответа на ВЮС-2 необходимо проводить регулярно начиная с 6-7-ой недели после инъецирования.

7. Для определения титров антител, специфичных к ВЮС-2, наиболее оптимальным методом является реакция торможения гемагглютинации.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Научные исследования последних 30 лет в области разработки мер профилактики и борьбы с бактериальными болезнями рыб, наносящими значительный ущерб аквакультуре, позволили создать высокоэффективные вакцины против фурункулеза и вибриоза лососевых, йерсиниоза канального сома (Evelyn, 1997), ввести в производство такие иммуностимуляторы, как глюканы, хитозан, левамизол, витамины Е и С и другие (Anderson, 1997). Проводятся работы по изучению реакции иммунной системы рыб на введение тех или иных препаратов. Однако несмотря на значительный прогресс, достигнутый в данной области при характеристике новых вакцин и иммуностимуляторов, многие исследователи ограничиваются лишь отдельными параметрами иммунной системы рыб, не принимая во внимание реакцию других. В большинстве случаев изучение их иммуногенных свойств проходит без сравнения с уже используемыми в практике.

В результате проведенных исследований был широко охарактеризован иммунный ответ рыб разных видов на введение вакцины ВЮС-2 и коммерческих препаратов, применяемых в рыбоводстве для повышения имунного статуса рыб и защиты их от бактериальных инфекций

Краткая характеристика защитного эффекта исследованных препаратов при заражении рыбы бактериальными патогенами и изменений в иммунном статусе рыб в ответ на их введение приведены в таблице 31.

При исследовании неспецифического иммунного ответа на введение ВЮС-2 в экспериментах на карпе и радужной форели для сравнения нами был использован ß~ 1,3- глкжан, применяемый в аквакультуре для активной стимуляции неспецифического иммунного ответа рыб (Anderson, 1997). Так, например, известно, что инъецирование или скармливание глюканов радужной форели вызывает усиление выработки лейкоцитов периферической крови (Jeney, Anderson, 1993; Siwicki et aL, 1993; Robertsen etai., 1994).

Защитный эффект исследованных препаратов и их влияние на иммуннологические показатели рыб

Показатель Вид рыб / Препарат

Карп Радужная форель Кумжа Канальный сом

ВЮС-2 (3-1,3-глкжан ВЮС-2 ¡3-1,3-глюкан ВЮС-2 Ригодеп * ВЮС-2 Левомицетин

1 2 3 4 5 6 7 8 9

Индекс защиты при заражении,% 64,8 - 66,8 0 66,7 0 6,6 6,6 100 81,5

35,1 х 35,5-45,0х

Атитела к А. Иус1горМ1а + + + + + Нд Нд Нд Нд

Антитела к А. 5а1топкйс1а + + - - ¥ + + Нд Нд

Антитела к ¥. апдиШагит Нд Нд - - Нд Нд Нд Нд

ФЧ А. пус!горЫ1а + + + - - Нд Нд Нд Нд

ФЧ А. 5а1тошс!с1а - - - - Нд Нд Нд Нд

ФЧ V. апдиЖагит Нд Нд - - Нд Нд Нд Нд

ЧА А, Иус1горИПа + + + + + + Нд Нд Нд Нд

ЧА А. 5а1топю1с1а - - + + Нд Нд Нд Нд

ЧА У.апдиШагит Нд Нд + + Нд Нд Нд Нд

Адгезия А. И. к слиз^ + + + + + Нд Нд Нд Нд

Адгезия А. за1т. к слизи + + + + Нд Нд Нд Нд

Адгезия У.апд. к слизи Нд Нд + + Нд Нд Нд Нд

Миграция макрофагов + -Г + + + Нд Нд Нд Нд со

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Гусева, Наталья Владимировна, 1998 год

1. Афанасьев В.И. Источники возбудителя аэромоноза рыб. // Тр. ВНИИ эксп. ветеринарии, 1984, № 60, С. 109-113.

2. Бауер О.Н., Мусселиус В.А., Стрелков Ю.А. Болезни прудовых рыб., М. : Легкая и пищевая прошить, 1981, 320 с.

3. Безгачина Т. В. Диагностика вибриоза радужной форели в аквакультуре // Автореферат диссертации на соиск. уч. ст. канд. биол. наук., М.:1998, 23 с.

4. Борисенко В.Ф. Свойства аэромонад и их значение в' интенсивно эксплуатируемых рыбоводных прудах //Дисс. канд. биол, наук, М: 1991, 165 с.

5. Ванятинский В.Ф., Мирзоева Л.М., Поддубная А. В. Болезни рыб., М.: Пищевая и легкая пром-ть, 1979, 232 с.

6. Ведемейер Г.А., Мейер Ф.П., Смит Л. Стресс и болезни рыб., М.: Легкая и пищевая пром-ть, 1981, 127 с.

7. Вихман А.А. Системный анализ мммунофшиологической реактивности рыб в условиях аквакупьтуры., М.: Экспедитор, 1996, 176 с.

8. Волкова О.В., Елецкий Ю.К. Основы гистологии с гистологической техникой, ЕУ1: Медицина, 1982, 304 с.

9. Временное наставление по применению сухой вакцины против бактериальной геморрагической септицемии и аэромоноза рыб ( в порядке широкого производственного испытания в 1996-1998 гг.), № 13-4-2/604, от 13.05.1996 г., 1996, 2 с.

10. Галаш В.Т. Токсико-биологическое действие трихотеценовых микотоксинов на карпа и предельно доппустимая концентрация Т-2 токсина в карповых комбикормах // Дисс. канд. биол. наук., М.: 1988., 198 с.

11. Герхард Ф. Методы общей бактериологии., М: Мир, 1984, Т. 3., 264 с.

12. Головин ПЛ. Стресс у рыб. // Тр. Зоол. ин-та. АН СССР, Л.: 1987, Т. 171, С.22.32.

13. Головина H.A. Методы гематологических исследований в ихтиопатологи-ческой практике. // ЭИ Сер. Рыбохоз. исгюльз. внутренних водоемов, М.: ЦНИИТ-ЭРХ, 1979, Вып 4, С. 8 18.

14. Гончаров Г.Д., Микряков В.Р. Влияние малых концентраций фенола на анти-телообразование у карпов. // Вопросы водной токсикологии., ML: Наука, 1970, С. 171175.

15. Грищенко Л.И., Рудиков Н И. Проблемы патологии и иммунитета при инфекционных болезнях рыб. // Итоги науки и техники. Ихтиология., М.: 1985, Т. 1., С. 190 -207.

16. Егоров A.M. Практикум по микробиологии. М: Издательство Московского Унта., 1976, 307 с.а

17. Заботкина Е.А., Микряков В. Р. Реакция иммунокомпетентных органов карпа на присутствие в воде карбофоса. II В сб.: Итога научно-практических работ в их-тиоппатологии. М.: МИ Комиссия, 1997, С 52-54.

18. Золоторева И.М., Заплечникова Э.Н. Выделение бактерий Aeromonas salmoni-cida у дальневосточной кеты и горбуши. // Тез. докл. IV Всесоюз. совещ. по научно-тех. проблемам марикультуры, Владивосток, 1983, С. 86-87

19. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб, М: Легкая и пищевая пром-ть, 1983,184 с.

20. Илясов Ю.И., Симонов В.М., Вихман A.A., Осташевский A.A., Шарт Л.А. Оценка эффективности селекции карпа на устойчивость к краснухе в экспериментальных и полевых условиях . II Тр. ВНИИПРХ, Вып 58, 1989, С. 34-40.

21. Илясов Ю.И., Шарт Л.А. Формирование гомозиготной украинско-ропшинской внутрипородной группы краснухоустойчивого карпа. // Тр. ВНИИПРХ, Вып. 70, 1993, С 3-7.

22. Иммунология: методы исследований // Под редакцией И. Лефковитеа и Б. Перниса, М. Мир, 1983, 339 с.

23. Каховский А.Е. Профилактика болезней рыб бактериальной этиологии в интенсивно эксплуатируемых рыбоводных прудах // Автореф. дисс. канд. биол. наук., М.: 1991, 20 с.

24. Конев Н.В. Нормальная микрофлора рыб и ее роль в возникновении бактериальных заболеваний, вызванных стрессом. // Научные тетради, № 4, 1997, 44 с.

25. Кравченко Л.В., Левицкая А.Б., Авреньева Л.И., Кранаускас А.Э., Люкова Г.В. Биохимические, гематологические и иммунологические критерии оценки хронического Т-2 -микотоксикоза у мышей. // Вопр. питания, №4, 1985,С. 60-64.

26. Кульберг А.Я. Регуляция иммунного ответа., М.: Медицина, 1986, 209 с. Кульберг А.Я. Молекулярная иммунология, М.: Высшая школа, 1985, 237 с. Лабинская A.C. Микробиология с техникой микробиологических исследований., М.: Медицина, 1978, 392 с.

27. Лакин Биометрия М.: Высшая школа, 1990, 346 с.

28. Ларцева Л.В. Рыбы и гидробионты переносчики возбудителей инфекционных болезней человека. // Рыбное хозяйство. Болезни рыб, Вып 1., М: ВНИЙЗРХ,1996, С. 1-32.

29. Ларцева Л.В. Санитарно-микробиологический мониторинг промысловых рыб Волго-Каспийского региона II Тез. докл. I конгресса ихтиологов России, Астрахань,1997, С. 437.

30. Лиманский В.В., Яржомбек A.A., Бекина E.H., Андронников С.Б. Инструкция по физиолого-биохимическим анализам рыбы., М.: ВНИИПРХ, 1984, 60 с.

31. Лукьяненко В.И. Иммунология рыб : врожденный иммунитет., М.: Агропромиз-дат, 1989, 271 с.

32. Мамонтов Ю.П., Сечин Ю.Т., Гепецкий М.Е. Развитие пресноводной аквакуль-туры предприятиями и организациями Росрыбхоза. // Рыбное хозяйство., Аквакуль-тура, Вып.1., М.: ВНИИЭРХ, 1997, С. 12-16.

33. Микряков В.Р. Закономерности формирования приобретенного иммунитета у рыб. , Рыбинск, 1990, 151 с.

34. Микряков В.Р., Лапирова Т.В. Влияние карбофоса на картину белой icpoiswкарпа И В сб.: Итога научно-практических работ в ихтиопатологии, М.: МИ Комиссия, 1997, С. 72-73.

35. Незлин Р.С. Строение и биосинтез антител., М: Наука, 1972, 312 с.

36. Радин И.Д. Микробиологический контроль санитарного состояния рыбохо-зяйственных водоемов., М.: Колос, 1976, 5 с.

37. Ройт А. Основы иммунологии., ML: Мир, 1991, 322 с.

38. Руд и ков Н.И., Грищенко Л.И. Микрофлора и бактериальные болезни рыб // Итоги науки и техники. Ихтиология, М.: 1985, Т. 1., С. 93-148.

39. Рухляда В.В. Действие Т-2 токсина на организм овец. II Ветеринария, №5, 1983, С. 61-62.

40. Саноцкий И.В. Методы определения токсичности и опасности химических веществ., М: Медицина, 1970, 344 с.

41. Тутельян В. А., Левицкая А.В., Лященко В.А., Сходова С.А. Сравнительное изучение влияния Т-2 и HT-2-микотоксинов на клеточный и гуморальный иммунитет. // Гигиена и санитария, № 4, 1985, С. 66-68.

42. Хоулт Д. Краткий определитель бактерий Берги., М.: Мир, 1980, 496 с.

43. Швец Н.М., Бугаев A.M., Иванова Г.М. Микробиологический метод профилактики аэромоноза карпа. // Тез. докл. IX Всесоюз. совещ. по паразитам и болезням рыб., Л.: ГосНИОРХ, 1990, С. 142-143.

44. Щербина М.А. Физиологическая оценка питательности искусственных кормов для рыб. // Вопросы ихтиологии, 1975, Т. 15, Вып.2, С. 338-345

45. Щербина М.А., Кисилев А.Ю., Касаткина А.Е. Выращивание карпа в прудах (кормление), Минск: Урожай, 1992, 136 с.

46. Ыун А.Е-, Щипина B.C. Диагностика вибрмоза рыб. // Ветеринария, 1979, 11, С. 40-43

47. Юхименко Л.Н. Бактериальная геморрагическая септицемия рыб и ее профилактика. // Тез. докл. российско-амер. симпозиума "Аквакультура и здоровье рыб", Москва, 1998, С. 179-180

48. Юхименко Л.Н., Викторова В.Ф. Методические указания по определению патогенности аэромонад по степени ДНК-азной активности., М.: ВНИИПРХ, 1987, 3 с.

49. Юхименко Л.Н., Койдан Г.С. Современное состотояние проблемы аэромоноза рыб // Рыбное хоз-во., Болезни рыб, 1997, № 2 , С. 1-9

50. Юхименко Л.Н., Викторова В.Ф, Лобунцов К.А., Сун Дя З.Н.И., Заплечникова Э.Н. Профилактика фурункулеза лососевых // Тез. докл. IV Всесоюз. совещ. по на-учи-техн. проблемам марикультуры, Владивосток, 1983, С. 92.

51. Юхименко Л.Н., Викторова В.Ф., Ляшенко Е.В. Изучение этиологии кожных язв карпа // Рыбное хозяйство., Болезни рыб, Вып 4, М.: ЦНИИТЭРХ, 1981, С. 12-14

52. Юхименко Л.Н., Викторова В.Ф., Марченко А.Т. Вибриоз радужной форели в пресной воде // Рыбное хоз-во, Вып 5, М.: ЦНИИТЭРХ, 1987, С. 1-5

53. Юхименко, К.А. Лобунцов, В.Ф. Викторова, И.М. Золоторева, Э.Н. Заплечникова, З.Н.И Сун Дя. Итоги изучения Aeromonas salmonicida, выделенных от дальнево сточных лососей. //Тр. ВНИИПРХ, Вып. 40, 1982, С. 44-53.

54. Abe P.M. Certain chemical and immunological properties of the endotoxin from Vibrio anguillarum., M.Sc. Thesis, Oregon State Univer., Corralis, USA, 1972, 107 p

55. Aklaghi M., Munday B.L., Quentel C. Passive immunization against vibriosis by parenteral, oral and immersion routes. In: Gudding R., Lillehaug A., Midthyng P.J., Broun

56. F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargeri, 1997, Vol 90, P.438

57. Amend D.F. Potency testing of fish vaccines. // Dev. Biol. Standard., V 49, N1, 1981, P. 447 454.

58. Amend D.F., Johnson K.A. Current status and future needs of Vibrio anguillarurn bacterins. // In: Anderson D.P., Hennessen W. (eds): Inter. Sympos. Fish Biol.: Sérodiagnostics and Vaccines, Dev. Biol. Stand., Basel Karger, 1981, V. 49, P. 403-417.

59. Anderson D.P. Diseases of fish: Fish immunology. Snieszko S.F., Axelrod H.R. (eds), T.F.H. Publications, N.J., 1974, 239 p.

60. Anderson D.P. Adjuvants and immunostimuiants for enhancing vaccine potency in fish. // In: Gudding R., Lillehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol 90, P. 257-267.

61. Anderson D P., Conroy D A. Vibrio diseases in fishes. In: Snieszko S.F. (ed): Symposium on diseases of fishes and shellfishes., Washington D.C., Amer. Fish. Soc. Special Publication, N5, 1970, P. 266-272.

62. Anderson, D.P., Dixon, O.W. Fish Biologies Guide: Regimenting protocols for the production and use of aritisera, antigens and other reagents for fish disease sérodiagnostics. // U.S. Fish and Wildlife Service, Kearneysviile, 1989, 215 p.

63. Anderson D.P., Jersey G. Responses to in vitro and in vivo immunostimulations with Aeromonas salmonictda O antigen bacterins in rainbow trout (Oncorhynchus mykkis) //Fish. Shellf. Immunol., V1, N3, 1991, P. 251-260.

64. Anderson D.P., Siwicki A.K. Duration of protection against Aeromonas salmonicida in brook trout immunostimulated with glucan or chitosan by injection or immersion. II Prog. Fish.-Cult., N. 56, 1994, P. 258-261.

65. Anderson D. P., Dixon O. W., Van Ginkel F.W. Supression of bath immunization in rainbow trout by contaminant bath pretreatments. // Vet. Med., N 12, 1984, P. 289-293

66. Antipa R. Field testing of injected Vibrio anguillarum bacterins in pen reared Pacific salmon. //J. Fish Res. Brd. Can., N33, 1976, P. 1291-1296.

67. Antipa R., Gould R., Amend D.F. Vibrio anguillarum vaccination of sockeye salmon, Oncorhynchus nerka (Walbaum) by direct and hyperosmotic immertion. // J. Fish Dis., V3, N 2, 1980, P. 161-165.

68. Aruajo R.M., Arribas R.M., Lucena F., Pares R. Disrtibution of mesophilic aeromonads in temperate aquatic habitats relationship with faecal indicators. // Wat. Sci. Tech., N21, 1989, P. 247-250.

69. Austin B.I., Austin D.A. Bacterial Fish Pathogens, Disease in Farmed and wild fish, 2nd ed. Chichester Ellis Norwood Ltd., 1987, 364 p.

70. Austin B.I. , Austin D.A. Bacterial Fish Pathogens, ed 2, New York: Ellis Horwood, 1993, 384 p.

71. Baba T., Imamura J., Izawa K., Ikeda K. Immune protection in carp, Cyprinus carpio L, after immunization with Aeromonas hydrophila crude lipopolysaccharide // J. Fish Dis., V11, N2, 1988., P. 237-244.

72. Bagge J., Bagge O. Vibrio anguillarum som arsag tie ulcussygdom has tarsk (Gadus callaris, Linne). // Notdisk Veterinarmedicine, N 8, 1956, P. 481-492

73. Barnett R.R., Akindele T., Orte C., Shephard K.L. Eosinophilic granulocytes in the epidermis of Oreochromis mossambicus gill flaments studied in situ. // J. Fish. Biol., ¥49, N2, 1996, P. 148-156.

74. Barrow J. Social behavior in freshwater fish and its effect on resistance to tiypanosomes. // Proc. Nat. Acad. Sci., N 41, 1955, P. 676-679

75. Baudin-Laurencin F., Tongtrongpiros J. Some results of vaccination against vibriosis in Brittany. In: Ahne W (ed) : Fish Diseases. Third COPRAQ-Session, Berlin, Springer-Verlag, Berlin & New York, 1980, P. 60-68

76. Betoulle S., Troutaud D., Khan N., Deschaux P. Antibody response, cortisoiemia and prolactinemia in rainbow trout.//C.R. Acad. Sei., N. 318, 1995, P. 677-681

77. Bjdrnsdottir R., Egget 6., Wilsen R., Jorgensen T. O. The A-laier protein of Aeromonas salmonicida future characterisation and a new isolation procedure. II J. Fish Dis., V15, N. 1, 1992, P. 105-118.

78. Blazer V.S. Serum lysozyme and spontaneous hemolytic activity: a species comparison. // National Biological Service, Keameysville, 1997, 16 p.

79. Blazer V S., Wolke R.E. Effect of diet on the immune response of rainbow trout (Salmo gairdneri). II Can. J. Fish. Aquat. Sei, V41, l\! 2, 1984, P. 1244-1247.

80. Biy J.E. The ontogeny of the immune system in the viviparous teleost Zoarces viviparus L. In: Manning M.J., Tatner M.F. (eds): Fish Immunology, London: Academic Press, 1985, P. 327-342.

81. Bly J.E., Clem L.W. Temperature-mediated processes in teleost immunity, in vitro immunosupression induced by in vivo low temperature in channel catfish. // Vet. Immun. Immunopath., V 28, N 1, 1991, P. 365 377.

82. Bly J.E., Quiniou S.M.-A., Clem L.W. Environmental effects on fish immune mechanisms. In: Gudding R., Lillehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol 90, P . 33-44.

83. Bootland L.M., Dobos P., Stevenson R.M.V. Fry age and size effects on immerfion immunisation of brook trout, Salvelinus fontinalis Mitchell against infectious pancreatic necrosis virus. //J. Fish Dis, V13, N1, 1990, P. 113-126

84. Bootsma R., Fijan N., Blommaert J. Isolation and identification of the causative agent of carp erythrodermatitis. //Veterinarski Archiv., N47, 1977, P. 291-302.

85. Boiman J.W., Manning M.J. Histogenesis of the lymphoid organs in the carp, Cyprinus carpio L, and the ontogenenic development of allograft reactivity. II J. Fish BioL, V 19, N4, 1981, P. 403-414.

86. Boulanger Y., Lallier R., Cousineau G. Isolation of enterotoxicogenic Aeromonas from fish. //Can. J. Microbiol., V. 23, N 1, 1977, P. 1161-1164.

87. Braaten B.A., Hodgins H.O. Protection of steelhead trout (Salmo gairdneri) againstvibriosis with living low-virulence strain of Vibrio anguillarum.// J. Fish Res. Brd. Can., V 33, N2, 1976, P. 845-947.

88. Brian IM., Trust T.J. Molecular analysis of an A-protein secretion mutant A. salmonicida reveals a surface layer specific protein secretion pathway. // J. Molecular Biol., V. 248, N 2, 1995, P. 316-371

89. Bricknell I.R., Bowden T., Lomax J., Ellis A.E. Antibody response and protection of Atlantic salmon (Salmo salar) immunised with an extracellular polysaccharide of Aeromonas salmonicida. // Fish Shellf. Immunol., V. 7, N. 1, 1997, P. 1-16.

90. Bucke D. Investigation into the cause of an epizootic in perch (Perga Fluvia tilis L). In: O'Hara K. (ed) Proceeding of the First British Freshwater Fish Conference, London: Jancseen Services, 1979, P. 45.

91. Buckley U.T., Halasa L.N., Lund K.D., Maclntyre S. Purification and some properties of the hemolytic toxin aerolysin. // Can. J. Biochem., V 56, N 1, 1981, P. 430435.

92. Bullock G.L., Conroy D.A. Vibrio diseases. In: Snieszki S.F., Axelrod H.K. (eds).

93. Diseases of fishes, 2Ä, Bacterial diseases of fish, Jersey Sity, N.Y., T.F.H. Publications, 1971, P. 42-50.

94. Burke V.J., Robinson J., Gracey ML, Peterson D., Partridge K. Isolation of Aeromonas sp. from metropolitan water supply: seasonal correlation with clinical isolates. II Appl. Envir. Microbiol., V48, N 1, 1988 a, P. 361-366.

95. Burke V.J., Robinson J., Gracey M., Peterson D., Meyer N., Halley V. Isolation of Aeromonas sp. from an unchlorinated domestic water supply. // Appl. Envir. Microbiol., V 48, N1, 1988 b., P. 367-370.

96. Cahill M.M. Bacterial flora of fishes: review. // Micröb. Ecol., V 19., N 1, 1990, P.21.41.

97. Candan. A., Hucuker M.A., Karatas S. Motile aeromonad septicaemia in Salmo . salar cultured in the Black Sea in Turkey. // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol., V 15, N 6, 1995, P. 195-197.

98. Cecchini S., Terova G., Saroglia M., Jeney Z., Jeney G., Caricato G., Filippi G.

99. Effect of vitamin C enrichment in seabass (Dicentrarchus labrax) larvae, orí their response to infective and saline challenges. //Presiding of VIII. Inter. EAFP Conf., Edinburg, UK, 1997., P. 123

100. Chabot J.D. Proteases of Aeromonas hydrophila: identification, characterization, and relation to virulence. // MS. Thesis. Louisiana State Univ., Baton Rouge, LA, 70803, 1987, 156 p.

101. Cipriano R.C. Furunculosis in brook trout: Infection by contact exposure // Prog. Fish. Cul., V44 , N 1, 1982, P. 12-14.

102. Cipriano R.C. Immunization of brook trout (Salvelinus fontinalis) against Aeromonas salmonicida: Immunogenecity of virulent and avirulent isolates and protective ability of different antigens. // Can. J. Fish. Aqua. Sci, V 39, N 2, 1982, P. 218-221.

103. Cipriano R.C., Bullock G.L., Pyíe S.W. Aeromonas hydrophila and motile aero monad septicemia of fish. // Fish Dis. Leaflet., N 68, 1984, 45 p.

104. Cipriano R.C., Hearfwell C.IVI. Susceptibility of salmonids to furunculosis:differences between serum and mucus responses against Aeromonas salmonicida. // Trans. Amer. Fish. Sci., N 115, 1986, P. 83-88

105. Cipriano R.C., Griffin G.R., Lidgerding B.C. Aeromonas salmonicida: Relationshipbetween extracellular growth products and isolate virulence. // Can. J. Fish. Aquat Sci., V 38, N 2, 1981, P. 1322-1326.

106. Cipriano R.C., Morrison J.K., Starliper C.E. immunization of salmónida against the fish pathogen Aeromonas salmonicida. //J. World IViariculi Soc.,V 114, N 2, 1983, P. 201211.

107. Cipriano R.C., Pyle S.W. Adjuvant-dependent immunity and the agglutinin response of fishes against Aeromonas salmonicida, cause of furunculosis. // Can. J. Fish.

108. Aquai. Sci., V42, N2, 1985, P. 1290- 1295.

109. Cipriano R.C., Starliper C.E. Immersion and injection vaccination of salmonids against furunculosis with avirulent strain of Aeromonas salmonicida. // Prog. Fish Cult., ¥44, N2, 1982, P. 167-169.

110. Chabot J.D., Thune R.L. Proteases of Aeromonas hydrophila complex // J. Fish Dis., ¥14, N 2, 1991, P. 171-184.

111. Chang S., Secombes C. J. Activation of rainbow trout macrophages.// J. Fish Bio!., ¥31, Suppl. A., 1987, P. 51-56.

112. Chart H., Shaw D.H., Ishiguro E.E., Trust T.J. Structural and immunochemical homoge-necity of Aeromonas salmonicida lypopolisaccharide. // J. Bact., V 158, N 1, 1984, P. 16-22.

113. Chen D., Ainsworth A.J. Glucari administration potentates immune defense mechanisms of channel catfish, Ictalurus punctatus Rafinesgue.// J. Fish Dis.s V 15, N 3 , 1992, P. 295- 304.

114. Chen Q., Actis L.A., Tolmasky M.E., Crosa J.N. Chromosame mediated 2, 3-dihydroxybenzoic acid in a precursor in the biosyntesis of the plasmid-mediated sidephoreanguibactin in Vibrio anguillarum. // Bacterio!., V 176, 6, 1994, P. 4226-4234.

115. Chung S., Secombes C.J. Activation of rainbow trout macrophages. // J. Fish Biol., ¥31 A, N 1, 1987, P. 51-56

116. Collazos M.E., Barriga C., Ortega E. Influence of the temperatures upon the proliferative response of lymphocytes of tench (Ilea tinea L.) during winter and summer. // Сотр. Immun. Microbiol. Infect. Dis., V 18, N1, 1995, P. 209-214

117. Collins V.G. Recent studies of bacterial pathogens of freshwater fish. // Wat. Treat. Exam, INS 19,1970, P. 3-13

118. Conchas R.D., Lemos M.L., Barja J.L., Toranzo A.E. Distribution of piasmid- andchromosome-madiated iron uptake systems in Vibrio anguillarum strains of different origin. // App. Envir. Microbiol., V 57, N 4, 1991, P. 2956-2962

119. Conchas R.D., Toranzo A.E., Mazay R., Lemos M.L Loss of virulence in Vibrio anguillarum 02 strains defective in the chromosomal iron uptake system . // Prosidings of Vth Inter. Colloguim on Pathology in Marine Aquaculture (PAMAQ 5), 1992, P. 37.

120. Congleton J., Sun B. Interferon-like activity produces by anterior kidney leucocytes of rainbow trout stimulated in vitro by infectious hematopoetic necrosis virus or Poly l:C. // Dis. Aquat. Org., V 25, N2, 1996., P. 185-195.

121. Cossarini-Dunier M. Effect of different adjuvants on the humoral immune response of rainbow trout. // Dev. Comp. Immun., V. 9., N1, 1985, P. 141-146.

122. Dalsgaard I. Characterization of atypical Aeromonas salmonicida isolated from ulcerated dab ( Limanda limanda).// Abstracts of International symposium on aquatic animal health.,Seattle, USA, 1994, P. W. 2-6,

123. Davidson G.A., Ellis A.E., Secombes C.J. Cellular response of leucocytes isolated from the gut of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) // J. Fish Dis., V 14, N5, 1991, P. 651-659.

124. Davis J.F., Hayasaka S.S. Pathogenic bacteria associated with american ells, Anquilla rostrata Le Sueur. It J. Fish Biol., V23, N6, 1983, P. 557-564.

125. Dec C., Angelidis P., Boudin-Laurencin F. Effect of oral vaccination against vibriosis in turbot, Scophthalmus maximum (!.), and sea bass, Dicentrarchus labrax (L.). // J. Fish Dis., V 13, N 4, 1990, P. 369-376.

126. Densmore C.L. Bacterial kidney disease and its effect on the salmonid immune response.// PhD dissertation, Virginia Polytech. Inst, and State Univer., Blacksburg, V., USA, 1997, 154 p.

127. Devesa S., Toranzo A.E., Barja J.L. First report of vibriosis in turbot (Scophthalmusmaximus) cultured in Northwestern Spain. In: Ellis A.E. (ed): Fish and Shellfish Pathology, London: Academic Press, 1985, P. 131-140.

128. Di Luzio N.R. Lysozyme, glucan-activated macrophages and neoplasia. // J. Reticuloendothelial Society, N 26, 1979, P. 67-81.

129. Dogett T.A., Harris J.E. The ontogeny of gut-associated lymphoid tissue in Oreochronis mossambicus. // J. Fish Biol., V 31 Suppl A., N 1, 1987, P. 23-27.

130. Dooiey J.S.G., Lallier R., Trust T.J. Surface antigens of virulent strains of Aeromonas hydrophila. // Vet. Immun. Immunopath., V 12, N 1, 1986, P. 339-344

131. Dorson M. Role and characterization of fish antibody. II Dev. Biol. Stand, V 49, N 1, 1981, P. 307-319

132. Duff D.C.B. The oral immunization of trout against Bacterium salmonicida. // J. Immun., N 44, 1942, P. 87-94.

133. Ellis A.E. The leukocytes of fish: a review. // J. Fish Biol., V 11, N 3, 1977, P. 453491

134. Ellis A.E. The Immunology of Teleosts. Fish Pathology., London , Academic Press, 1978., 92 p.

135. Ellis A.E. Inhibition of the Aeromonas salmonicida extracellular protease by a2 -macroglobulin in the serum of rainbow trout. // Microb. Pathogenesis, V. 3, N 1, 1987, P.167.177.

136. Ellis A. E. Fish vaccination., New York, Academic Press, 1988, 255 p.

137. Ellis A.E. Immunization with bacterial antigens: Furunculosis . In: Gudding R.,

138. Ulehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol 90, P. 107-116.

139. Ellis A. E., Hasting T.S., Munro A.L.S. The role of Aeromonas salmonicida extracellular products in the pathology of furunculosis. // J. Fish Dis., V 4, N 1, 1981, P. 41-51.

140. Emmerich R., Weibel E. Ueber eine durch Bakterien erzengte seuche unter der Forellen. // Archives fur Hygiene and Bacteriologie., N21, 1894, P.1-21.

141. Engstad R.E., Robertsen, B., Frivold E. Yeast glucan induces increase in activity of lysozyme and complement-mediated hemolytic activity in Atlantic salmon blood. // Fish & Shellfish Immun., V 2, N 3, 1992, P. 287 297.

142. Espelid S., Lokken G.B., Steiro K., Bogwald J. Effect of Cortisol and stress on the immune system in Atlantic salmon (Salmo salar L.). // Fish Shellf. Immun., V 6, N 1, 1996, P.95-110

143. Evelyn T.P.T. A historial review of fish vaccinology. In: Gudding R., Lillehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997,1. Vol 90, P. 3-12. ■

144. Fabre-Domerque J.P. On a disease of fish. // Compte Rendu Memoranda du Societe Biologue Paris, N 42., 1890, P. 127-129.

145. Finco-Kent D. The in-vivo and in-vitro cellular response of channel catfish, Ictalurus punctatus, to strains of Aeromonas hydrophila. // Master's Thesis. Louisiana State Univ., Baton Rouge, USA, 1986, 112 p.

146. Ford L.A. Evaluation of Aeromonas hydrophila virulence factors: their role in natural epizootics and their use as potential imrnunogens. // PhD Dissertation., Louisiana State Univ., Baton Rouge, Louisiana, USA, 1990, 225 p.

147. Ford L.A. Detection of Aeromonas salmonicida from water using filtration method. // Aquacul., V 122, N 1, 1994, P. 1-7.

148. Ford L.A., Cipriano R.C., Penniston T.K., Epizootic of furunculosis in paddlefish , Polidonton spatula, Procciding . II Int. Assoc. Aquatic Anim. Med. V25. - 1994. - P. 12121218

149. Ford L.A., Thune R.L. S-layer positive motile aerornonads isolated form channel catfish. // J. Wild!. Dis., V27, N 6, 1991, P. 557-561.

150. Ford L.A., Thune R.L. Immunization of channel catfish with a crude, acid-extractedpreparation of motile aerornonads S-layer protein. II Biomedical Lett., V47, W 1, 1992, P. 355-362

151. Forel F. Red disease of trout. // Bull Soc. Vand. Sci. Nat., Lausanne, N9, 1868, P.599.608

152. Galash V.T., Guseva N.V. In vitro effects of T-2 toxin and Ochratoxin A on pronephric cells of carp, Cyprinus carpio. II FHS Newsletter, V. 24, N. 2, 1996, P. 1-3.

153. Garduno R.A., Phipps B.M., Kay W.W. Physical and functional S-layer reconstitution in Aeromonas salmonicida. II J. Bad., V 117, N 5, 1995, P. 2684-2694.

154. Garrison R.L. Vibrio immunization studies Development of a bacterin and'oral immunization procedure to control vibriosis of juvenile salmonids reared in saltwater. II Ann. Prog. Rep., AFS-67-2., Oregon Dep. Fish Wild!., 1975, 37 p.

155. Garvey J.S., Cremer N.E., Susdorf D.E. Methods in immunology 3rd ed., W.A. Benjamin, Inc., Reading Massachusetts, 1977, 545 p

156. Georgopoulou U., Sire M.F., Vernier J.M. Immunological demonstration of intestinal absorption and digestion of protein macromolecules in the trout (Salmo gairdnery). // Cell Tissue Res., V 245, N1, 1986, 387-395

157. Georgopoulou U., Vernier J.M. Local immunological response in posterior intestinal segment of the rainbow trout after oral administration of macromolecules. // Dev. Com p. immun., V10, N 1, 1986, P. 529 -537

158. Giorgetii G., Ceschia G. Vibriosis in rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, In fresh water in Northeeastern Italy II J. Fish Dis., V 5, N 1, 1982, P. 125-130

159. Goldes S.A., Ferguson H.W., Daoust P.Y., Moccia R.D. Phagocytosis of the inert suspended clay kariolin by the gilis of rainbow trout, Salmo gairdneri. 1/3. Fish Dis., V9, N 2, 1986, P. 147-152.

160. Goodrish T.D. Regulatory Harmonization - A vaccine industry perspective. In: Gudding R., Lillehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol 90, P. 355-361.

161. Graham S., Jeffries A.H., Secombes C.J. A novel assay to detect macrophage bactericidal activity in fish: factors influencing the killing of Aeromonas salmonicida. // J. Fish Dis., V 11, N 3, 1988, P. 386-396.

162. Grindle B. Lysozyme from rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, as an antibacterial agent against fish pathogen. // J. Fish Dis., V 12, N 1, 1989, P. 95-104.

163. Grindle B., Lie O., Poppe T., Salte R. Species and individual variation in lysozyme activity in fish of interest in aquaculture. II Aquacul., V 18, N 3, 1988, P. 299-304.

164. Gudmundsdottir B.K Comparison of extracellular proteases prodused by Aeromonas salmonicida strains isolated from various fish species. // J. Appl. Bacter., V80, H 1, 1996, P. 105-113

165. Gudmundsdottir B.K, Hasting T.S., Ellis A.E. Isolation of a new toxic protease from a strain of Aeromonas salmonicida subspecies achromogeries. // Dis. Aquat. Org., V 9, N 2, 1990, P. 199-208.

166. Gudmundsdottir B. K., Magnadottir B. Protection of Atlantic salmon (Salmo salar L.) against an experimental infection of Aeromonas salmonicida ssp. achromogenes. II Fish Shellf. Immunol., V 7, N 1, 1997, P.55-69.

167. Jeney G., Anderson, D.P. Glucan injection or bath exposure given along or in combination with a bacterin enhance the non-specific defense mechanisms in rainbow trout ( Oncorhynchus mykiss). //Aquaculture., V 116, N 3, 1993, P. 315-329

168. Jeney G., GaSeotti ML, Volpatti D., Jeney Z., Anderson D.P. Prevention of stress in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed diets containing different doses of glucan. II Aquacul., V 154., N 1, 1997, P. 1-15

169. Jonson K.A., Flynn J.K., Amend D.F. Duration of immunity in salmonids vaccinated by direct immertion with Yersinia ruckeri and Vibrio anguillarum bacterins. // J. Fish Dis., V 5., N 2, 1982 b„ P. 207-213

170. Jorgensen J.B., Sharp G.J.E., Secombes J., Robe risen B. Effect of a yeast-cell-wall glucan on the bactericidal activity of rainbow trout macrophages. // Fish Shellfish Immun., V3, N 3, 1993, P. 267-277.

171. Jorgensen J.B., Lunde H., Robersen B. Peritoneal and head kidney cell response to intraperitoneally injected yeast glucan in Atlantic salmon (Salmo salar L ). // J. Fish Dis., V 16, N 4, 1993, P. 313-325.

172. Hacking M.A., Budd J. Vibrio infection in tropical fish in a freshwater aquarium. // J.

173. Wild!. Dis., V 7, N 2, 1971, P. 273-280.

174. Harris J.E., Watson A., Hunt S. Histohemical anaiisis of mucus cells in the epidermis of broun trout, Salmo truta L. //J. Fish Biol., V 5, N 3, 1973, P. 345-351

175. Hart S., Wrathmell A.B., Harris J.E., Grayson T.H. Gut immunology of fish: a review. // Dev. Camp. Immun., V 12, N 1, 1988, P. 453 -480.

176. Hirst I.D., Ellis A. E. Iron-regulated outer membrane proteins of Aeromonas salmonicida are important protective antigens in Atlantic salmon against furunculosis. It Fish Shellf. Immun., ¥14, N 1, 1994, P. 118-122.

177. Hirst I.D., Ellis A.E. Utilization of transferrin and salmon serum as sources of iron by typical and atypical strains of Aeromonas salmonicida. II Microbiol., V 142, N 3, 1996, P. 1543-1550.

178. Hirst I.D., Hasting T.S., Ellis A.E. Utilisation of haem compounds by Aeromonas salmonicida. II J. Fish Dis., V 17, N 4, 1994, 365-373.

179. Kajita Y., Sakai M., Atsuta S., Kabayashi M. The immunomodulatory effects of levamisole on rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. II Fish. Pathol., V25, N 1, 1990, P.93 -98.

180. Kaitao T., Aoki T., Fukudome M., Kawano K., Wada Y., Mizuno Y. Serotyping of Vibrio angguillarum isolated from diseased freshwater fish in Japan. II J. Fish Dis., V 6, N 2, 1983, P. 171-181.

181. Kanai K., Takagi Y. Alpha hemolitic toxin of Aeromonas hydrophila produced in vivo. If Fish Pathol., V 21, N 4, 1986, P. 245-250

182. Kawahara E., Kusuda R. Location of Pasteurella piscicida antigen in tissue of yellowtail Seriofa guinqueradiata vaccinated by immertion. // Nippon Suissan Gakkaishi, N54, 1988, P. 1101-1105

183. Kawahara E., Tomohiro V., Setsuro N. Injection vaccination of white-spotted char,

184. Salvelinus leucomaenis, against furunculosis with Aeromonas salmonicida salmolisin. // Gyobyo Kenkyu, V3, N26 (1), 1991, P. 17-20.

185. Kawai K., Kusuda R., Itami T. Mechanisms of protection in ayu vaccinated for vibriosis. // Fish Pathol., V 15, N 4, 1981, P. 257-262

186. Kawai K., Kusuda R. Efficacy of the polysaccharide vaccine against vibriosis in cultured ayu. // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish., V49., N4, 1983, P. 511-514.

187. Kitao T., Eshima T., Youshida T. Analisis of protective mechanisms in cultured ayu Plecoglossus altivelis Temminck and Schlegel administered Vibrio vaccine by immertion method. //J. Fish Dis., V14., N 4, 1991, P. 375-382.

188. Klontz G.W., Anderson D.P. Oral immunization of salmonids: a review. In: Snieszko S.F. (ed) Symposium on Diseases of fishes and shellfishes, Special Publication N5 Amer. Fish. Soc., 1970, P. 16-20.

189. Kostrynska M., Dooley J.S.G., Shimujo T., Sakata T., Trust T.J. Antigenic diversity of the S-layer proteins from pathogenic strains of Aeromonas hydrophila and Aeromonas veronii biotype sobria. //J. Bact., V 174, N 1, 1992, P. 40-47.

190. Kracke, R.R. Color Atlas of hematology, J.B. Lippuncott Co., Philadelphia and London., 1947, 204 p.

191. Krantz G.E., Redecfiff J.M., Heist C.E. Immune response of trout to Aeromonas salmonicida. Part 1. Development of agglutining antibodies and protective immunity. // Prog. Fish. Cult, V26, N 1, 1964, P. 3-10.

192. Krovacek K., Faris A., Ahne W., Mansson I. Adhesion of Aeromonas hydrophila and Vibrio anguillarum to fish cells and to mucus-coated glass slides. // FEMS Microbiology letters, V 42, N 1, 1987, P. 85 87.

193. MacMillan J.K., Santucci T. Seasonal trends in intestinal bacterial flora of farmraised channel catfish. II J. Aquat. Anim. Health, V 2, N 5, 1990, P. 217-222

194. Mancini G., Carbonara A.O., Heremans J.F. Immunochemical quantitation ofantigens by single radial immunodifusion. // immunochemistry, N 2, 1865, P. 235-254.

195. Matsuyama H., Mangindaan R.E.P., Yano T. Protective effect of schizophyllan and scleroglucan against Streptococcus sp. infection in yellowtail (Serióla quinqueradiata). // Aquaculture, V 101, N. 2, 1992, P. 197-203.

196. Mattheis T. Das Vorkommen von Vibrio anguillarum in Ostscefischen. // Zentraiblatt fur Fischerei N.F., N 12, 1964, P. 259-263.

197. McCarthy D.H., Amend D.F., Johnson K.A., Bloom J.V. Aeromonas salmonicida: determination of an antigen associated with protective immunity and evaluation of an experimental bacterin. // J. Fish Dis., V 6, N 3, 1989, P. 155-174.

198. Merino S., Alber T.S., Thomas J.M. Aeromonas salmonicida resistance to complement mediated killing. // Infec. Immun., V62, N 9, 1994, P. 5483-5490.

199. Michel C. Furunculosis in salmonids: Vaccination attemts in rainbow trout (Salmo gairdneri) // Can. J. Fish. Aquat. Sei., V 37, N 8, 1979, P. 746-750.

200. Muiswinkel N.B., Wiegertjes G.F. Immune responses after injection vaccination of fish. In: Gudding R., Lillehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol 90, P. 55-59.

201. Munn C.B. Production and properties of a haemolytic toxin by Vibrio anguillarum. In: Ahne W. (ed) Fish diseases, Third COPRAQ-Session, Berlin, Springer-Verlag, 1980, P. 69-74.

202. Munro A L S., Cauld J.A. Scottish fish farms annual production survey, 1996., Scottish Ofiice, Marine Laboratory, Aberdeen, 1997, 35 p.

203. Munro A.L.S., Hastings T.S. Furunculosis. // In: Inglis V., Roberts R.J., Bromage N.

204. Nakanishi T., Ototake M. Antigen uptake and immune responses after immertion vaccination. In: Gudding R., Lillehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol 90 , pp 59-68.

205. Nduthu D.I., Colgunoun D. Motile aeromonads associated with rainbow trout (Onchoryrichus mykiss) mortality in Kenya. // Bui. Eur. Assoc. Fish Pathol., V18, N1, 1998, P. 7-10.

206. Newman S.G. Aeromonas hydrophila: a review with emphasis on its role in fish disease. In: Symposium International de Tallories, Tallories, France, 1983, P. 87-115.

207. Newman S.G. Bacterial vaccines for fish. // Ann. Rev. Fish Dis., 1993., P. 145-185

208. Nieto T.P., Ellis A.E. Characterization of extracellular methalo- and serine-proteases of Aeromonas hydrophila strain B Q1 . // J. Gen. Microbii., V 132, N 3, 1986, P. 1975-1979.

209. Nikl L, Albright L.J., Evelyn T.P.T. Influence seven immunostimulants on the immune response of coho salmon to Aeromonas salmonicida. // Dis. of Aquat. Org., V 12, N 1, 1991, P.7-12

210. Nonaka M., Sakai S.N., Takahashi M. The complement system in rainbow trout (Salmo gairdneri). II. Purification and characterization of the fifth component (C5). // J. immun., N 126, 1931, P. 1495-1498.

211. Nonaka M., Fuji T., Kaidoh T., Sakai S.N., Nonaka ML, Yamaguchi N., Takahashi M. Purification of a lamprey complement protein hamologous to the third component of the mammalian complement system. // J. Immun., N133, 1984 a, P. 3242-3249.

212. Nowotny . A. Basic exercises in Immunochemistry: A laboratory manual. // Springer-Verlag., New York, NY., 1969, P. 3-5.

213. Noga E. J. Fish Diseases: diagnosis and treatment., St. Louis: Mosby-Year Book Inc., 1995, 367 p.

214. Norqvist A., Hagstrom A., Wolf-Watz H. Protection of rainbow trout (Salmo gairdneri) against vibriosis and furunculosis by use of attenuated strains of Vibrio angguiflarum. // Appl. Environ. Microbiol., V 55 , N 6 , 1989, P. 1400-1405.

215. Nougaurede P., Sochon E., Vuillaume A. Isolation of Aeromonas salmonicidasubspecies salmonicida in farmed turbot (Psetta maxima) in France. // Bull Eur. Assoc. Fish Pathol., V 10, N 11, 1992, P. 139-140.

216. Olivier G., Evelyn T.P.T., Lallier R. Immunogenicity of vaccines from virulent and avirulent strains of Aeromonas salmonicida. // J. Fish Dis., V 8, N 1, 1985, P. 43-55.

217. Osborne J.A., Fensch G.E., Charba J.F. The abudance of Aeromonas hydrophila, at lake harney on the St. Jonhas river with respect to red sore disease in striped mullet (Mugigl cephalus L). // Fl. Sci., V 52, N 3, 1989, P. 171-177.

218. Ototake ML, Iwama G.K., Nakanishi T. The uptake of bovine serum albumin by the skin of bath immunized fish. // Fish Shellf. I mmun., V 6, N 4, 1996, P. 321-333.

219. Ourth D.P. Secretory IgM, Lysozyme and lymphocytes in the skin mucus of the channel catfish, Ictalurus punctatus. It Dev. Comp. Immun., V 4, N 1, 1980, P. 65-74

220. Pedersen K., Larsen J.L. First report of outbreak of furunculosis in turbot Scophthalmus maximus caused by Aeromonas salmonicida subs, salmonicida in Denmark. // Bull of Europ. Ass. of Fish Pathol., V16, N 4, 1996, P. 129-134

221. Peters G., Hong L.Q. Gill structure and blood electrolyte level in European ells under stress. In Ellis A. E. (ed): Fish and Shellfish Pathology, London, Academic Press, 1985, P. 183-198.

222. Pickering A.D. The distribution of mucous cells in the epidermis of the brown trout, Salmo truta (L.) and the char, Salvenus alpinus (L.)// J. Fish Biol., V 6, N 2, 1974, P.111.118.

223. Pickering A.D., Maccy D.J. Structure, histochemistry and the effect of handling on the mucous cells of the epidermis of the char, Salvelinus alpinus. II J. Fish Biol., V 10, N 6,. 1977, P. 505-515

224. Piganeili J.D., Zhang J.A., Christensen J.M., Kaattari S.L. Enteric coated microspheres as an oral method for antigen delivery to salmonids. // Fis Shellf. Immun., V 4, N 2., 1994, P. 179-188

225. Plumb J. A. Immunization of warm water fish against five important pathogens. In: De Kinkelin, Michel C. ( Editors) Symposium on Fish Vaccination O.I.E. Paris, 1984, P.199.227

226. Plumb J.A., Wize M.L., Rogers W.Ä. Modulatory effects of temperatures on antibody response and specific resistance to Edwardsiella ictaluri. // Vet. Immun. Immunopath., V 12, N 4, 1986, P. 297-304

227. Post G. Response of rainbow trout (Salmo gairdnen) to antigens of Aeromonas hydrophila.// J. Fish. Res. Brd. Can., V. 23., N 6, 1966., P. 1487-1494.

228. Poston H., Coffin J., Conbs G. Biological effects of dietary T-2-toxin on rainbow trout, Salmo gairdnen.// Aquat. Toxicol., Vol. 2., N 2, 1982, P. 79-88.

229. Price N.C., Banks R.M., Campbell C.M., Duncan D., Stevens L. The specificity of the major (70 kDa) protease secreted by Aeromonas salmonicida. II J. Fish Dis., V. 13, N 1, 1890, P. 49 -58.

230. Ramadan A., Nehal A.A., Moustafa M.M., Samy A.M. The effect of ascogen on the immune response of Tilapia fish to Aeromonas hydrophila vaccine. // Fish Shellf. Immun., V4, N2, 1994, P. 159-165.

231. Ramos F., Smith A. C-reactive protein (CRP) test for the detection of early diseases in fishes. // Aqucuit., V 14., N 3, 1978, P. 261- 266

232. Rijkers G.T., Frederix-Walters E.M.N., Van Muiswinkel W.B. The immune system of Cyprinid fish. Kinetics and temperature dependance of antibody producing cells in carp (Cyprinus carpió). // immun., V 41, N 1, 1980, P. 91-97

233. Roberts R. tabofaiory methods, London, Baillier-Tindoll, 1978, 245 p.

234. Robertsen B., Rorstad G., Engstad R., Raa J. Enhancement of non-specific disease resistance in Atlantic salmon, Salmo salar L., by a glucan from Saccharomyces carevistae cell walls. // J. Fish Dis., V 13, N 4, 1990, P. 391-400.

235. Robertsen B., Engstad R.E., Jorgensen J.B. ß- Glucans as immunostimulants in fish. II In: JA. Stolen, T.C. Fletcher (eds): Modulators of fish immune responses Vol 1., Fair Haven, NJ., SOS publications, 1994, P. 83-99.

236. Rogers C.J., Austin B. Oral immunisation against furunculosis: an evaluation of two field trials, in: Manning M.J., Tatner ÍVf.F. (eds) Fish Immunology., London: Academic Press, 1985, P. 185-194.

237. Rogers W.A., Dehai Xu. Protective immunity indused by commertiaf Vibrio vaccine in hibrid stripped bass. // J. Aquat. Anim. Health., V 4, N 4, 1992., P. 303-305

238. Rombout J.H.W.M. Immunological importance of the second gut segment of carp. II. Characterization of mucosal leukocytes. //J. Fish Biol., V 35 , N 2 , 1989, P. 167 178.

239. Rombout J.H.W.M. Immunological importance of the second gut segment of carp. Ill Sys temic and/or mucosal immune responses after immunization with soluble or particulate antigen. II J. Fish Biol., V 35, N 2, 1989, P. 179- 186

240. Rombout J.H.W.M., Block L.J., Lamers C.H.J., Egbert Z. immunization of carp (Cyprinus carpio) with Vibrio anguillarum bacterium: indications for a common mucosal immune system. // Dev. Comp. Immun., V 10, H 1, 1986, P.341-351

241. Rombout J.H.W.M., Van Der Berg, A.A. Immunological importance of the second gut segment of carp. I Uptake and processing of antigens by epithelial cells and macrophages. // J. Fish Biol., V 35 N 1, 1989, P. 13-22

242. Rombout J.H.W.M., Taverne-Thiele A.J., Villena M.I. The gut-associated lymphoid tissue (GALT) of carp (Cyprinus carpio L.): an immunocytochemical analysis. // Develop. Comp. Immun., V 17, N 1, 1993, P. 55-66

243. Roogel-Gaillard C., Chilmonczyk S., de Kinkelin P. In vitro induction of interferon-like 3.cW\iy from rainbow trout leucocytes stimulated by Edtveg virus. // Fish Shelif. Immun., V3, N 4, 1993, P. 383-394

244. Rorstad G., Aasjord P.M., Robeilsen B. Adjuvant effect of a yeast glucan in vaccines against furunculosis in Atlantic salmon L. II Fish Shelif. Immun., V 3, N 4, 1993, P. 179-100.

245. Rose J.IVL, Houston C.W., Kurosky A. Bioactivity and immunological characterization -of a cholera-toxin-cross-reactive cytolytic enterotoxin from Aeromonas hydrophila. // Infec. Immunity, V.57, M.4., 1989, P. 1170-1176

246. Quentel C., Vigneulle M. Antigen uptake and immune response after oral vacciantion. In: Gudding R., I.illehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol 90, P. 69-78

247. Sakai D.K., Kimura T. Relationship between agglutinative properties of Aeromonas sairnonicida strains isolated from fish in Japan and their resistance to mechanisms of host defense. // Fish Pathol., V 20, N 1, 1985, P. 9-21.

248. Sakai M., Atsuta S., Kobayashi M. Efficacy of immertion vaccine against hemolytic streptococcal disease in raibow trout, Salmo gairdnery. // Fish Pathol., V 23, N 6, 1989, P. 269-270

249. Santos Y., Baudin I., Nuner S., Gravningen K., Toranzo A.E. Protection of turbot, Scophthalmus maximus (L) and rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Richardson), against vibriosis using two different vaccines. // J. Fish Dis., V 14, N 5, 1991, P.407-411

250. Santos Y., Paras F., Bandin I., Toranzo A.E. Analysis of antigens present in theextracellular products and cell surface of Vibrio anguillarum serotypes 01, 02 and 03. // Appl. Environ. Microbiol., V 61, N 7, 1995, P. 2493-2498.

251. Schaperclaus W. Pseudomonas punctata als Krank heitserreger bei Fischen. // Zeitung fur Fischerei., N28, 1930, P. 289-370.

252. Schaperclaus W. Die Verhtung der infectiosen Bauchwassersucht des karpens duch Imorfuns und Behandling arot Medikamenten. // Deuysch. Fisch. Ztg., N 1, 1954, P. 102-108

253. Schaperclaus W. Probeme der karpfenimmunitat Gegenuber Aeromonas punctata und Fragen der antigenen struktur des bakteriums. II Z. Fish. Hilfwiss., N 5, 1967, P. 129130

254. Shamado T., Sakazaki R., Horigone K., Uesaka Y., Niwano K. Production of cholera-like enterotoxin by Aeromonas hydrophila. // Jap. J. Med. Sei. Biol., N 37, 1984, P. 141-144

255. Sharp G.J.E., Secombes C.J. The role of reactive oxygen species in the killing of the bacterial pathogen Aeromonas salmonicida by rainbow trout macrophages. // Fish Sheilf. Immun. -V 3, N 2, 1993, P. 119-129.

256. Shieh H. S. Vaccination of Atlantic salmon, Salmo salar L, against furunculosis with prote-ase from an virulent strain of Aeromonas salmonicida // J. Fish Biol., V 27, N 2, 1985, P. 97-101.

257. Shotts E.B., Hsu T.C., Waltman W. D. Extracellular proteolytic activity of Aeromonas hydrophila complex. //J. Fish Pathol., ¥20, N 1,1985, P. 37-44.

258. Siwicki A.K., Anderson D.P., Dixon O.W. In vitro immunostimulation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) spleen cells with levamisole. // Dev. Com. Immunol., V 14, N4, 1990, P. 231-237.

259. Siwicki A.K., Anderson D.P., Rumsey G.l. Dietary intake of i mm unosti mutants byrainbow trout affects non-spesific immunity and protection against furunculosis. // Vet. Immun. Immunopath., V 32, N 2, 1994, P. 125-139.

260. Smith P.D. Vaccination against vibriosis. In: Ellis A.E. (ed): Fish vaccination., New York, Academic Press, 1988, P. 67-84

261. Smith P.D. , McCarthy D.H., Paterson W.D. Futher studies on furunculosis vaccination. In: Ahe W. (ed) Fish Diseases. Third COPRAQ-Session, Berlin, SpringerVerlag, 1980, P. 113-119.

262. Song Y., Chen S.N., Kou G.H. Agglutinating antibodies production and protection in ell (Anguilla japónica) inoculated with Aeromonas hydrophila (A. liquefaciens). // J. Fish. Soc. Taiwan., N 4, 1976, P. 25-29.

263. Song Y., Kou G.H. Immune response of ells (Anguilla japónica) against Aeromonas hydrophila and Edwardsiella ariguilli-mortiferum (E.tarda) infection. // Nat. Sei. Cons. Res. Ser., N 3, 1981, P. 107-115.

264. Sopinscka A. Zastosowanie testu transformacji blastyczney lymohocytow w badaniach odpornosci komorkowej u karpi in vitro. II Med. Vet., V. 42, N. 3., 1986, P. 164167.

265. Sovenyi J. F., Bercsenui M., Bakos J. Comparative examination of susceptibility of two genotypes of carp (Cyprinus carpió L.) to infection with Aeromonas salmonicida. // Aquacult., V 70, N 3, 1988, P. 301-308.

266. Spence K.D., Forger J.L., Pilcher K.S. Active and passive immunization of certain salrnonid fishes agaist Aeromonas salmonicida. // Can. J. Microbiol., V 11, N 6, 1965, P. 397-405.

267. Stevenson R.H.W., Allan B.J. Extracellular virulence products in Aeromonas hydrophila diseases in Salmonids // Fish Biology: Sérodiagnostics and Vaccines., Proc. Symp., Leetown, 1981, P. 173-180.

268. Suzuki Y. Neutrophil chemotactic factor in ell blood plasma. // Bull. Jap. Soc. Sei. Fish., N 52, 1986, P.811-816

269. Suzuki Y., Kobayashi IVL, Aida K., Hamgu I. Transport of physiologically active salmon gonadotropin into the circulation in goldfish following oral administration of salmonpiiuatary extract. // J. Comp. Physiol., V 157 B„ N 8, 1988, P. 753-758.

270. Tahir A., Fletcher D.F., Houlihan D.E., Secombes C.J. Effect of short-term exposure to oil-contaminated sediments on the immune response of dab, Limanda limanda L. II Aquatic Toxicol. -V 27, N 1, 1993, P. 71 82.

271. Takahashi Y., Toshiaki I., Kajiwaki T., Bacteriolytic substances in the skin mucus of yellowtail. // Fish Pathol., V 27, N 3, 1992, P. 171-172

272. Tamai T., Shirahata S., IMaguchi T., Sato N., Kimura S., Murakami H. Clonning and expression of flatfish (Paralichthys olivaceus) interferon cDNA. // Biochim. Biophis. Acta., N 1174, 1993 a., P. 182-186

273. Tatner M.F. Natural changes in the immune system of fish. In: Iwama G.K., IMakanishi T. (eds): Fish fisiology, Vancouver: Academic Press, Vol 15, 1996, P. 255-288.

274. Tatner M.F., Manning M.J. The ontogeny of cellular immunity in rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, in relation to the stage of development of the lymphoid organs. // Dev. Comp. Immun., V. 7, N 1, 1983, P. 69-75.

275. Tavolek Inc. Mass immunization of salmonids., Tavolek ink., Redmond, USA, 1978, 4 p.

276. Templin R.J., McMillan D.B. Gut-associated lymphoid tissue of the goldfish, Carrasius auratus. // J. Morphol., V 190, N 1, 1986, P. 9-26.

277. Thornton J.C., Kay W.W. The development of live vaccines for furunculosis lacking A-layer and O-antigen of Aeromonas salmonicida. // Abstracts of International symposium on aquatic animal health, Seattle, 1994, P. 23

278. Thune R.L., Plumb J.A. Effect of dilivery method and antigen preparation of the production of antibody against Aeromonas hydrophila in channel catfish. // Prog. Fish. Cult., V 44, N 1, 1982, P. 53-54

279. Thune R.L., Graham T.E., Riddle CM., Amborski R.L. Extracellular products and endotoxin from Aeromonas hydrophila: effect on age-O-channel catfish. // Trans. Amer. Fish. Soc., N. 111, 1982 a, P. 404-408.

280. Thune R.L., Graham T.E., Riddle C.M., Amborski R.L. Extracellular proteases from Aeromonas hydrophila: partial purification effect on age-O-channel catfish. // Trans. Amer. Fish. Soc., N. 111, 1982 b, P. 404-408

281. Thune R.L., Johnson M.C., Graham T.E., Amborski R.L. Aeromonas hydrophila beta hemolysin: .purification and examination of its role in virulence in O-group channel catfish, Ictalurus punctatus (Rafinesque). //J. Fish Dis., V 9, N 1, 1986, P.55-61.

282. Thune R.L., Stanley L.A., Cooper R.C. Pathogenesis of gram negative bacterial infections in warm water fish. Annual Review of Fish Diseases, V.3, 1993, P. 37-68,

283. Toranzo A.E., Barja J.L. First report of furunculosis in turbot reared in floating cages in northwest of Spain.// Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol.,V 12, U 11, 1992, P. 147-149.

284. Toranzo A.E., Barja A.M. Virulence factors of bacteria pathogenic for coldwater fish. // Ann. Rev. Fish Dis., N 3, 1993, P. 5-36.

285. Toranzo A.E., Baya A.M., Romalde J.L., Hetrick F.l. Association of Aeromonas sobria with mortalities of adult gizzard shad, Dorosoma cepedianum Lesueur. // J. Fish Dis., V 12, N 5, 1989, P. 439-448

286. Toranzo A.E., Santos Y., Barja J.L. Immunisation with bacterial antigens: Vibrio infections. In: Gudding R., Lillehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol 90, P. 93-105.

287. Trust T.J., Khouri A.G., Austen R.A., Ashburner L.D. First isolation in Australia ofatypical Aeromonas salmonicida // FEMS Microb. Lett., V 9, N 1, 1980, P. 39-42.

288. Treasurer J., Cox D. Aeromonas salmonicida infections in wrasse (Labridae), used as clean-er fish, on an Atlantic salmon ( Salmo Salar) farm. // J. Infect. Disease., V 17, N 2, 1994, P. 155-161

289. Vallejo A.N., Miller N.W., Jorgensen T., Clem L.W. Phytogeny of immune recognition: antigen processing/ presentation in channel catfish immune responses to hemocyanins. //Cell Immun., V 130, N4, 1990, P. 364-377.

290. Vallinagagam S., Sukumaran N. Influence of vitamin C on the humoral immune response of tilapia, Oreochromis mossambicus (Peters) infecterd with Pseudomonas spp. //VIII Intern. EAFP Conf., Edinburg, UK, 1997, P. 123

291. Van Loon J.J.A., Van Oostrerom R., Van Muiswinkel W.B. Development of the immune system in carp. In: Solomon J.B. (ed): Aspects of developmental and comparative immunology, Vol 1., Oxford, Pergamon Press., 1981., P. 469-470.

292. Van Muinswirikel W.B., Anderson D.P., Lamers C.H.J. Fish immunology and fish health. In: Manning M.J., Tatner M.F. (eds): Fish immunology, london, Academic Press, 1985, P. 1-8.

293. Vigneulle M. Vaccination par voue orale de la truite arc-en-ciel (Oncorhyncus mykiss Richardson) centre la yersiniose a Yersinia ruckeru. These de Doctorat de I'Universite de Bretagne Occidentale, France, 1991, 145 p.

294. Walsh T P., Gamblin S., Emery D.C., MacGowan A.P., Bennett P.M. Enzyme kinetics and biochemical analysis of Imis, the metallo-p -lactamase from Aeromonas sobria 163 a.//J. Antimicrob. Chemother., V 37, H 5, 1996, P. 423-431.

295. Warr T.P. The addaptive immune system of fish. In: Gudding R., Lillehaug A., Midihyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. Biol. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol SO, P. 15-23.

296. Warren J.W. Diseases of hatchery fish., Ann. Fish Diseases Mannual., USA, 1980,91 p.

297. Weeks B.A., Sommer S.R., Dalton H.P. Chemotactic response of fish macrophages to Legionella pneumophila: correlation with pathogenicity. // Dis. Aquat. Org. V 5, N 1, 1988, P. 35-38.

298. West P.A., Lee J.V. Ecology of Vibrio species, including Vibrio cholerae in natural waters of Kent, England. // J. Appl. Bacteriol., V 52, N 2, 1982, P. 435-448.

299. Whitby P.W., Delany S.G., Coleman G., Munro A.L.S. The occuruence of a 70-kDa serine protease gene in typical and atypical strains of Aeromonas salmonicida. // J. Fish Dis., V 15, N 6, 1992, P. 529-535.

300. Williams D.L., Yaeger R.G., Pretus, H.A., Browder, I.W., McNamee R.B., Jones E.L. Immunization against Trypanosoma cruzi: adjuvant effect of glucan. //Intern. J. Immunophar-mocology., V. 11, N 4, 1989, 403-410.

301. Williamson I. J. F. Furunculosis of the Salmonidae II Fish Brd. Scot. Salm. Fisher., N 5, 1928, P. 1-17

302. Wong G,, Kaattari S.L., Christensen J.M. Effectiveness of an oral enteric coated Vibrio vaccine for use in salmonid fish. // Immun. Investigations., V 21, N 4, 1992, P. 353364.

303. Udey L.K., Fraer J.L. Immunization of fish with bacterins of Aeromonas salmonicida. II Mar. Fishes. Rev., N 40, 1978, P. 12-17.

304. Yano T., Ando, H., Nakao M. Two activation steps of carp complement requiring

305. Ca2> and Mg2+ and an intermediate product in immune hemolisis. // Buil. Jap. Soc. Sci. Fish., N 51, 1988 b, P. 841-846.

306. Yano T., Matsuyama, H., Nakao M. Formation and characterization of an intermediate complex EAC 1,4, 2 in immune hemolisis by carp complement. // Nippon Suisan Gakkaishi., N 54, 1988 c, P. 1997 2000.

307. Yano T., Matsuyama H., Mangindaan R.E.P. Polysaccharide-induced protection of carp, Cyprinus carpio !., against bacterial infection. // J. Fish Dis., V 14, N 6, 1991, P. 577-582

308. Zapata A.G., Torroba M., Alvarez F, Anderson D.P., Dixon O.W., Wisiniewski M. Electron microscopic examination of antigen uptake by salmonid gill after bath immunisation with a bacterin. // J. Fish Biol., V 31, N 3, 1987, P. 209-217.

309. Zapata A.G., Torroba M., Varas A., Jimener E. immunity in fish larvae. In: Gucfding R., Lillehaug A., Midthyng P.J., Broun F. (eds): Fish vaccinology., Dev. BioE. Stand. , Basel, Kargen, 1997, Vol 90, P. 15-22.