Гигиена выращивания телят при использовании микронизированной рисовой шелухи в условиях скотоводческого комплекса тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.05, кандидат наук Зенков Константин Федорович

• Зенков Константин Федорович
• кандидат наук
• 2016

Оглавление диссертации кандидат наук Зенков Константин Федорович

Ведение

1. Обзор литературы

1.1. Современные технологии содержания телят

1.2. Особенности роста и развития телят

1.3. Использование энтеросорбентов в ветеринарии

1.4. Механизм действия сорбентов приготовленных из рисовой шелухи и область их применения

2. Собственные исследования

2.1. Материалы, место, условия и схема проведения исследований

2.2. Методы исследований

2.2.1. Методы зоогигиенических исследований

2.2.2. Методы биотестирования на простейших и кроликах

2.2.3. Методы клинических и зоотехнических исследований

2.2.4. Методы гематологических исследований

2.2.5. Методы копрологических исследований

2.2.6. Методы статистических исследований

2.2.7. Методы изучения физических свойств сорбентов

2.2.8. Методы изучения бактерицидных свойств сорбентов

2.2.9. Метод измерения частиц на анализаторе размеров Camsizer XT

2.4. Результаты собственных исследований

2.4.1. Физические и механические свойства АДК

2.4.2. Результаты проведения реакции простейших организмов на исследуемый АДК

2.4.3. Результаты исследования бактерицидных свойств АДК

2.4.4. Результаты исследования токсичности и ранозаживляющих свойств АДК и МРШ на коже кроликов

2.4.5. Изучение безвредности алиментарного скармливания АДК крысам

а. Состояние микроклимата в виварии для содержания лабораторных

крыс

б. Показатели клинического состояния, динамика роста и развития подопытных лабораторных крыс

в. Результаты гематологических исследований подопытных лабораторных крыс

г. Результаты копрологических исследований подопытных лабораторных крыс

д. Результаты послеубойного осмотра и массометрии тушек и органов подопытных крыс

2.4.6. Изучение детоксикационных свойств АДК на крысах при экспериментальном отравлении сулемой

а. Показатели клинического состояния, динамика роста и развития подопытных лабораторных крыс

б.Результаты гематологических исследований подопытных лабораторных крыс

г. Результаты послеубойного осмотра, массометрии тушек и органов подопытных крыс

2.4.7. Влияние скармливания МРШ и АДК на организм цыплят-бройлеров,

в условиях вивария

а. Состояние микроклимата в виварии для содержания подопытных цыплят-бройлеров

б. Показатели клинического состояния, динамика роста и развития подопытных цыплят-бройлеров

в. Результаты гематологических исследований подопытных цыплят-бройлеров

г. Результаты копрологических исследований подопытных цыплят-бройлеров

д. Результаты послеубойного осмотра и массометрии тушек и органов подопытных цыплят-бройлеров

2.4.8. Научно-производственный опыт по изучению влияния скармливания МРШ на организм телят, содержащихся группами (1 серия)

а. Состояние микроклимата в телятнике для группового содержания животных

б. Показатели клинического состояния, динамика роста и развития подопытных телят при групповом содержании

в. Результаты гематологических исследований подопытных телят при групповом содержании

г. Результаты копрологических исследований подопытных телят при групповом содержании

2.4.9. Научно-производственный опыт по влиянию скармливания МРШ на организм телят, содержащихся в телятнике павильонного типа в индивидуальных клетках на глубокой подстилке (2 серия)

а. Состояние микроклимата в телятнике павильонного типа с клетками

для индивидуального содержания на глубокой подстилке

б. Показатели клинического состояния, динамика роста и развития подопытных телят при индивидуальном содержании в телятнике павильонного типа

в. Результаты гематологических исследований подопытных телят при индивидуальном содержании в телятнике павильонного типа

г. Результаты копрологических исследований подопытных телят при индивидуальном содержании в телятнике павильонного типа

2.4.10. Расчет экономической эффективности включения МРШ в рацион телят

3. Обсуждение полученных результатов исследования

4. Заключение

5. Практические предложения производству

6. Список литературы

7. Приложения

Приложение А

Приложение Б

Приложение В

Приложение Г

Приложение Д

Приложение Е

Приложение Ж

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Гигиена выращивания телят при использовании микронизированной рисовой шелухи в условиях скотоводческого комплекса»

Ведение

Актуальность темы. Продовольственная безопасность - это обеспеченность населения страны экологически чистыми и полезными для здоровья продуктами питания по научно - обоснованным нормам и доступным ценам. Скотоводство - одна из отраслей современного животноводства на которую возложена важнейшая задача по получению продуктов питания, таких как молоко и мясо, а так же многих других продуктов для перерабатывающей промышленности. Эффективность скотоводства закладывается в период получения и выращивания телят, которые менее приспособлены к условиям внешней среды, с недостаточно выраженными защитно-приспособительными функциями (Смирнов А.М. 2012, Тюрин В.Г., Кочиш И.И., Потемкина Н.Н. 2015), и определяется их жизнеспособностью, здоровьем, ростом, развитием, затратами на кормление, уход и лечение.

Одно из условий успешного развития скотоводства является выращивание здоровых телят с учетом ветеринарно-гигиенических требований для цепочки: «корм ^ условия содержания ^ охрана ферм от заноса возбудителей болезней ^ получение и сохранность телят ^ качество и переработка продукции ^ охрана окружающей среды ^ здоровье человека» (Волков Г.К. 2003, Семёнов В.Г., Никитин Д.А. 2012).Однако, интенсивная промышленная система содержания, неполноценное кормление, выращивание в условиях нарастающего экологического и технологического прессинга на организм не всегда позволяют получать максимальную продуктивность, обусловленную высоким генетическим потенциалом теленка (Кузнецов А.Ф. 2007, Стекольников А.А. 2015, Племяшов К.В. 2015). Поэтому в настоящие время разрабатываются различные приемы, системы, ветеринарные препараты для повышения продуктивности и естественной резистентности животных. Одним из таких приемов является использование современных энтеросорбентов при выращивании телят.

Энтеросорбенты - это вещества различной структуры, осуществляющие связывание и выведение из желудочно-кишечного тракта с лечебной и

профилактической целью эндогенных и экзогенных веществ, надмолекулярных структур и клеток.

Особый интерес у исследователей к природным сорбентам. Сырьем для них могут служить отходы деревоперерабатывающей и пищевой промышленности, плодовые косточки, покровы семян. Преимуществом сырья растительного происхождения является его естественный возобновляемый характер. Однако данное сырье обладает низкой поглотительной способностью, поэтому необходима его модификация, которая предполагает обработку подходящими реагентами, термообработку при различных условиях, дополнительное измельчение (микронизация). Одним из видов такого сырья является рисовая шелуха -практически неутилизируемый отход сельского хозяйства. При очистке зерна риса на крупозаводах образуются десятки тонн отходов в виде плодовых оболочек (шелухи, лузги), представляющие собой качественное сырье для получения полифункциональных материалов с широким спектром применения.

Микронизированная рисовая шелуха (МРШ) - новый ветеринарный сорбент, изготавливаемый из натурального сырья, которое прошло процесс измельчения на роторно-вихревых мельницах. В состав шелухи входит определенный набор компонентов, из которых 28-30% - неорганические, с преобладающим содержанием активного диоксида кремния, что позволяет рассматривать микронизированную рисовую шелуху в качестве сорбента (Сергиенко В.И., Земнухова Л.А., Егоров А.Г., Шкорина Е.Д., Василюк Н.С. 2004, Кузнецов А.Ф., Половцевм, Осипов Ю.Г., Краснов А.А., Галилеев С.М., Белов И.В. 2014).

Кормовая добавка МРШ представляет собой порошок светло -желтого цвета, полученного путем микронизации, процесса измельчения рисовой шелухи на роторно-вихревой мельнице до номинальной крупности 50-200 мкм. При этом средневзвешенная массовая крупность порошка (более 50%) составляет 10-20 мкм.

Выраженные сорбционные свойства микронизированной рисовой шелухи позволяют связывать и выводить из организма через желудочно-кишечный тракт с лечебной и профилактической целью экзогенные (попавших с кормом, водой) и эндогенные (образовавшихся внутри) вещества, надмолекулярные структуры и клетки, оказывать положительное влияние на обменные процессы, стимулировать неспецифическую резистентность и, как следствие, улучшать общее состояние животных.

Поэтому, исследования по изучению влияния сорбента МРШ на организм телят, а также ветеринарно-гигиеническую оценку его использования в скотоводстве в качестве корректора обмена веществ и естественных защитных сил, считаем актуальными и своевременными.

Цель настоящей работы - изучение эффективности алиментарного применения микронизированной рисовой шелухи телятам в качестве энтеросорбента.

Для достижения цели нами были поставлены следующие задачи:

1. Изучить токсико-биологическое влияние активного диоксида кремния и микронизированой рисовой шелухи, получаемых из отходов рисоперерабатывающей промышленности на организм простейших и кожу кролика;

2. Изучить в условии вивария на лабораторных крысах безвредность активного диоксида кремния, приготовленного из рисовой шелухи;

3. Изучить детоксикационные свойства активного диоксида кремния (АДК) на лабораторных крысах при экспериментальном отравлении сулемой;

4. Изучить в условии вивария влияние алиментарного применения активного диоксида кремния и микронизированной рисовой шелухи на организм цыплят-бройлеров;

5. Изучить факторы и закономерности формирования параметров микроклимата в помещении секционного телятника для группового

содержания животных и телятника павильонного типа для содержания животных в индивидуальных клетках на глубокой подстилке;

6. Изучить влияние алиментарного применения микронизированной рисовой шелухи на рост и развитие, продуктивность, а также некоторые копрологические, клинические и гематологические показатели телят при содержании в традиционном телятнике в клетках для группового содержания;

7. Изучить влияние алиментарного применения микронизированной рисовой шелухи на рост и развитие, продуктивность, а также некоторые копрологические, клинические и гематологические показатели телят при содержании в телятнике павильонного типа в клетках для индивидуального содержания на глубокой подстилке;

8. Определить экономическую эффективность применения сорбента-микронизированная рисовая шелуха в скотоводстве.

Научная новизна. Впервые комплексно изучена безвредность и токсичность активного диоксида кремния и микронизированной рисовой шелухи, полученной из отходов рисоперерабатывающей промышленности, на простейших микроорганизмах (Paramecium caudatum), лабораторных крысах и кроликах. Изучены детоксикационные свойства активного диоксида кремния при экспериментальных отравлениях сулемой лабораторных крыс.

Впервые изучено влияние АДК и МРШ на организм лабораторных животных (крысы, цыплята) в условиях вивария и были разработаны дозы и схемы применения микронизированной рисовой шелухи для телят.

Впервые в условиях интенсивного беспастбищного ведения скотоводства комплексно изучено влияние алиментарного применения микронизированной рисовой шелухи при выращивании телят. Доказано, что применение микронизированной рисовой шелухи по специальной схеме с учетом возраста и технологии содержания телят, оказывало положительное влияние на основные клинические, копрологические, гематологические показатели животных. Впервые

определена экономическая эффективность и практическая целесообразность использования микронизированной рисовой шелухи в условиях интенсивного ведения скотоводства. Получен комплексный фактический материал о влиянии микронизированной рисовой шелухи на организм телят.

Практическая значимость. Доказано детоксикационное действие активного диоксида кремния при экспериментальных отравлениях сулемой лабораторных животных. Разработаны и предложены эффективные схемы применения микронизированной рисовой шелухи, связанные с критическими периодами физиологического развития телят и особенностями технологии их содержания, по которыммикронизированную рисовую шелуху скармливают в виде взвеси вместе с молозивом и молоком из расчета 0,2 гна 1 кг массы тела один раз в сутки - три дня, затем перерывтри дня в течение двух недель, а затем перерыв две недели.

Установлено, что применение микронизированной рисовой шелухи в соответствии с рекомендованной схемой и дозой способствует коррекции обмена веществ в организме, улучшению показателей естественной резистентности и продуктивности, а также снижению процента заболеваемости.

Методология и методы исследований. Методология настоящей работы связана с изучением приемов повышения естественной резистентности организма телят, с разработкой новых схем использования современных сорбентов (АДК и МРШ) для общепрофилактических целей при разных технологиях их беспастбищного содержания в условиях скотоводческого комплекса в Ленинградской области, а так же изучение безвредности, токсичности и детоксикационных свойств активного диоксида кремния и микронизированной рисовой шелухи. При выполнении настоящей работы был использован комплекс различных специальных методов, включая: зоогигиенические, микробиологические, токсикологические, ветеринарно-санитарные, клинические и статистические методы. В основе этих методов лежат физические, химические, ветеринарно-биологические методы исследования и ветеринарно-санитарная

оценка воздушной среды, где находятся животные, а также методы исследования и оценка зданий для содержания телят группами или в индивидуальных клетках на глубокой подстилке.

Реализация результатов исследований. Научные разработки и положения диссертационного исследования внедрены в производственный процесс скотоводческого комплекса ЗАО «Племенной завод имени Тельмана» и используются при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий для студентов факультета ветеринарной медицины, факультета ветеринарно-санитарной экспертизы и факультета биоэкологии ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины»; используются при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий на кафедре кормления и гигиены животных института биотехнологий ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный аграрный университет»; используются при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий на кафедре зоотехнии ФГБОУ ВО «Калининградский государственный технический университет»

Апробация работы. Научные положения, выводы и рекомендации работы доложены, обсуждены и одобрены на II международном ветеринарном конгрессе VetistanbulGroup - 2015г, Санкт-Петербург, Россия; на международной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ, 2013г;67 - международной научной конференции молодых ученых и студентов СПбГАВМ, 2013г; международной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ, 2014г; международной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ, 2015г; 69 - международной научной конференции молодых ученых и студентов СПбГАВМ, 2015г; международной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ, 2016г. XII Всероссийская научно-практическая конференция молодых

ученых, аспирантов и студентов «Молодежь и инновации», посвященная 85-летию ФГБОУ ВО Чувашской ГСХА. Научные положения, выносимые на защиту:

1. Результаты изучения физико-сорбционных и механических свойств новых микронизированных продуктов, получаемых из рисовой шелухи: АДК и МРШ.

2. Токсикологическая оценка микронизированных продуктов АДК и МРШ на простейших микроорганизмах и коже кроликов.

3. Оценка безвредности и токсичности использования АДК и МРШ на лабораторных животных (крысы, цыплята-бройлеры кросса РОСС-308).

4. Результаты исследование детоксикационных свойств активного диоксида кремния (АДК) при экспериментальном отравлении лабораторных крыс сулемой.

5. Технология и гигиена содержания телят в условиях скотоводческого комплекса в Ленинградской области.

6. Разработка режимов использования микронизированной рисовой шелухи (МРШ) и влияние её алиментарного применения на организм телят.

Публикация результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 1 2 научных работ:

1. Зенков, К.Ф. Влияние некоторых энтеросорбентов на рост и развитие крыс /А.Ф. Кузнецов, К.Ф. Зенков //Материалы международной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ. -2013. - С. 38-39

2. Зенков, К.Ф. Зоогигиеническая оценка применения микронизированной рисовой лузги на организм птицы / К.Ф. Зенков // Материалы 67-й международной научной конференции молодых ученых и студентов СПбГАВМ. - 2013. - С. 39 - 41

3. Зенков, К.Ф. Зоогигиеническая оценка применения микронизированной рисовой лузги, модифицированной препаратом «Монклавит-1»/ К.Ф. Зенков // Актуальные проблемы ветеринарной медицины. - 2013. С. 23 - 26

4. Зенков, К.Ф. Влияние микронизированной рисовой шелухи на некоторые гематологические показатели телят /А.Ф. Кузнецов, К.Ф. Зенков // Материалы международной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ. - 2014.- С. 25-27

5. Зенков, К.Ф. Оценка влияния скармливания микронизированных минеральных добавок на гематологические показатели у телят/А.Ф. Кузнецов, К.Ф. Зенков //Материалы международной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ. -2015. - С. 24-26

6. Зенков, К.Ф.Влияние микронизированной рисовой шелухи на рост и развитие телят / К.Ф. Зенков // Материалы 69-й международной научной конференции молодых ученых и студентов СПбГАВМ. - 2015. - С. 41 - 42

7. Зенков, К.Ф. Использование микронизированной рисовой шелухи в кормлении телят/ А.Ф. Кузнецов, К.Ф. Зенков, А.А. Краснов // Актуальные проблемы ветеринарной медицины. - 2015. С. 14 - 17

8. Зенков, К.Ф. Оценка влияния сорбента на основе диоксида кремния на организм телят / К.Ф. Зенков // Материалы II международного ветеринарного конгресса Vetistanbul Group - 2015. С. 490-491

9. Зенков, К.Ф. Словарь зоогигиенических и ветеринарно-санитарных терминов / А.Ф. Кузнецов, К.Ф. Зенков,В.В. Ачилов, Г.С. Никитин// СПб., Издательство ФГБОУ ВО «СПбГАВМ», 2015. - С. 56

10. Зенков, К.Ф. Биологическая оценка применения диоксида кремния на организм лабораторных крыс/ А.Ф. Кузнецов, К.Ф. Зенков, В.В. Ачилов, Г.С. Никитин // Вестник ветеринарии, 2013. - С. 50-54

11. Зенков, К.Ф. Влияние аморфного диоксида кремния и его модификации при введении их в рацион цыплят / А.Ф. Кузнецов, К.Ф. Зенков, В.В. Ачилов, Г.С.

Никитин // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии -2014. - С. 139-143

12. Зенков, К.Ф. Зоогигиеническая оценка влияния скармливания микронизированной рисовой шелухи телятам / А.Ф. Кузнецов, К.Ф. Зенков, А.А. Краснов // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии-2014. - С. 184 - 187.

Структура и объем диссертации. Работа включает следующие разделы: введение (8 с.), обзор литературы (35 с.), собственные исследования (69 с), обсуждение результатов исследований (10 с.), выводы (4 с.), предложения производству (1с.), список литературы (26 с.) и приложения (8 с.). Диссертация изложена на 172 страницах компьютерного исполнения, содержит 29 таблиц и 17 рисунков. Список литературы включает 242 источников, в том числе 36 зарубежных.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1. Современные технологии содержания телят

Эффективность скотоводства закладывается в период получения и выращивания телят, определяется их жизнеспособностью, здоровьем, ростом, развитием, затратами на кормление, уход и лечение. Однако интенсивная промышленная система содержания, неполноценное кормление, выращивание в условиях постоянного стресса не всегда позволяет получать максимальную продуктивность, обусловленную высоким генетическим потенциалом теленка (Стекольников А.А. 2009, Кузнецов А.Ф., Семенов В.Г 2005,Муромцев А.Б 2014, Смирнов А.М. 2012, Тюрин В.Г., Кочиш И.И., Потемкина Н.Н. 2015). Следует очень внимательно организовывать выращивание телят, чтобы при минимальных затратах труда и эффективном расходе кормов обеспечить максимальный рост и развитие телят и заложить основу для получения высокопродуктивных животных (Кузнецов А.Ф., Михайлов Н.А., Карцев П.С. 2013).

Одной из важнейших и актуальных проблем, имеющих большое практическое значение, является создание животным условий содержания, отвечающих биологическим потребностям их организма (Смирнов А.М. 2009, Асрутдинова Р.А., Ларцева С.А. 2012,Коболёва С.А2001).Однако в условиях интенсификации молочного скотоводства, при большой плотности размещения животных на относительно малых площадях, часто при безвыгульном содержании, одной из трудных и важных проблем остается повышение устойчивости животных к различным негативным воздействиям внешней среды, которые еще более усиливаются, поскольку оздоравливающее действие солнца и свежего воздуха практически исключается. Поэтому на современном этапе ведения животноводства возникает необходимость в более тщательном нормировании всех параметров воздушной среды, определяющих в своей совокупности микроклимат помещений (Кочиш И.И., Калюжный Н.С., Волкова

Л.А., Нестеров В.В. 2008 ДементьевЕ.П.2006, Галиев А.И., Софронов В.Г., Данилова Н.И. 2011).

Температура воздуха в животноводческом помещении - это основной фактор, который оказывает максимальное влияние на процессы терморегуляции телят и других сельскохозяйственных животных. От раздражения поверхностных рецепторов зависит глубина и частота дыхания, скорость циркуляции крови, интенсивность окислительных реакций и обмена веществ в организме (Кузнецов А.Ф. 2007).

Реакции на различные показатели температуры воздуха взрослого поголовья крупного рогатого скота и телят отличаются и характеризуются морфологическими и функциональными особенностями организма (Кузнецов А.Ф. 1978, Соколов Г.А. 1998).

Авторы утверждают, что телята, выращиваемые в плохо вентилируемых, холодных, со сквозняками помещениях, имеют продуктивность до 40% ниже, болеют в 2-3 раза чаще, а расход кормов на единицу продукции увеличивается на 12-35% (Белопольский А.Е., Кузнецов А.Ф., Сафронов Е.Н., 2015).

Серьёзную опасность для телят представляет не только низкая и высокая температура, но и их резкие колебания (Серов В.М., Шилов А.И., Енин Ю.М. 2002, Сидорович М.А. 2003)

Хусаинов В.Р., Фенченко Н.Г., Кинзягулов В.Х. (2005), Кузнецов А.Ф., Михайлов Н.А., Карцев П.С. (2013) считают, что в помещении для новорожденных телят оптимальная температура воздуха это 18 - 20оС. В то же время Захаров П.Г. (1998) считает, что в профилактории должно быть 17 - 20оС, а Левахин В.И. и др.(2002) говорят о 15°С

В соответствии с нормами технологического проектирования предприятий крупного рогатого скота (НТП 1-99) и методическими рекомендациями по технологическому проектированию ферм и комплексов крупного рогатого скота (РД-АПК 1.10-01.02-10) температура воздуха в телятнике-профилактории должна составлять - 17оС

Влияние температуры очень тесно связано с адаптацией крупного рогатого скота к влажности воздуха, которая при отсутствии эффективной и правильно функционирующей вентиляции может варьироваться от 65 до 98%.

Современные ученые утверждают, что привесы телят, которые содержатся в помещениях с высокой влажностью, снижаются на 10-20% (Зайцев А.М., Жильцов А.В., Шавров А.В. 1986), а так же отмечается повышение температуры тела, учащение пульса, ухудшение состояния кожного и шерстного покрова (Волкова С., Мелешкина С., Ануфриев А. 2005)

Также, установлено, что в помещениях с высокой влажностью накопление в воздушной среде вреднодействующих газов и микроорганизмов происходит значительно быстрее.

В соответствии с нормами технологического проектирования предприятий крупного рогатого скота (НТП 1-99) и методическими рекомендациями по технологическому проектированию ферм и комплексов крупного рогатого скота (РД-АПК 1.10-01.02-10) минимальная относительная влажность в телятнике-профилактории должна составлять 40%, максимальная - 75%.

Движение воздушного потока в комплексе с температурой и влажностью оказывает значительное влияние на организм животных. Подвижность воздуха в помещении напрямую зависит от системы вентиляции и уровня воздухообмена (Кузнецов А.Ф, Михайлов Н.А., Карцев П.С. 2013).

В соответствии с нормами технологического проектирования предприятий крупного рогатого скота (НТП 1-99) и методическими рекомендациями по технологическому проектированию ферм и комплексов крупного рогатого скота (РД-АПК 1.10-01.02-10) расчетная скорость движения воздуха в телятнике-профилактории должна составлять 0,3 м/с; допустимая в теплый период года - 0,5 м/с.

Газовый состав воздуха - важнейший показатель микроклимата животноводческих помещений.

Воздух закрытых животноводческих помещений по газовому составу значительно отличается от атмосферного воздуха. С гигиенической точки зрения наиболее опасными для здоровья животных является аммиак и сероводород. Доказано, что даже небольшая концентрация этих газов, способствует снижению естественной резистентности и продуктивности телят на 25-30% и увеличивает количество болезней, особенно легочных. Аммиак, попадая в верхние дыхательные пути, вызывает кашель, слезотечение, раздражение слизистых оболочек, что способствует возникновению респираторных заболеваний. В крови, образует с гемоглобином щелочной гематин; блокируя дыхательную функцию крови. В повышенных концентрациях аммиак может вызвать отек легких и паралич дыхательного центра.

Сероводород, соединяясь с тканевыми щелочами, образует сульфид натрия, который, попадая в кровь, гидролизуется, освобождая сероводород.

Негативное влияние заключается в воздействии на нервную систему, дыхательный центр, пищеварительный тракт и в общем отравлении организма. В крови сероводород связывает железо гемоглобина, образуя сернистое железо. Наличие в воздухе сероводорода в концентрации более 0,01% вызывает аритмию, ослабление тонов сердца, сужение зрачков, рвоту. При концентрации данного газа свыше 1 мг/л гибель наступает мгновенно (Зайцев А.М., Жильцов А.В., Шавров А.В. 1986, Dechamps К1987).

Диоксид углерода играет большую роль в жизни животных, являясь раздражителем дыхательного центра. Однако установлено, что длительное содержание в закрытых помещениях в условиях повышенного содержания газа (более 1%) приводит к хроническому отравлению, снижению окислительных процессов, тонуса нервной системы, концентрации эритроцитов и гемоглобина, уровня резистентности и продуктивности (Авылов Ч.К., Денисов А.А. 2001; Серов В.М., Шилов А.И., Енин Ю.М. 2002; Кузнецов А.Ф. 1978).

В соответствии с нормами технологического проектирования предприятий крупного рогатого скота (НТП 1-99) и методическими рекомендациями по

технологическому проектированию ферм и комплексов крупного рогатого скота (РД-АПК 1.10-01.02-10) для телят концентрация диоксида углерода должна

-5

составлять 0,20%, аммиака - не более 10 мг/м , сероводорода - «следы».

Освещенность животноводческого помещения - это главный раздражающий фактор, играющий важную биологическую роль в жизни любого животного и вместе с другими факторами внешней среды, оказывает значительное влияние на рост, развитие, обмен веществ, продуктивность и другие функции организма (Балашов В.В., Буяров В.С. 2013).

Концентрация поголовья животных в помещении, способ их содержания и кормления влияет на уровень микробной обсемененности воздуха. Источниками патогенных микроорганизмов и вирусов являются больные животные, а также скрытые бактерио- и вирусоносители.

В результате действия негативных факторов окружающей среды и ухудшения экологической обстановки существенно изменилось состояние здоровья животных. Кроме того длительное пребывание их в закрытых помещениях с неблагоприятными микроклиматом, без инсоляции и ультрафиолетового облучения обуславливает понижение резистентности, что способствует нарушению установившегося в процессе эволюции динамического равновесия между макроорганизмом и микробами (Никитин Д.А., Семенов В.Г. 2012, Карцев П.С. 2013).

При увеличении количества микробиоты в воздухе животноводческих помещений содержание у-глобулиновой фракции белка в сыворотке крови и ее бактерицидная активность снижаются, а фагоцитарная активность лейкоцитов, наоборот, повышается.

-5

Установлено, что если в 1 м накапливается до 600 тыс. микробных тел, а количество БГКП составляет 6 - 8%, то у телят наблюдаются желудочно-кишечные заболевания уже на 2 - 3 сутки жизни.

Для получения высокой продуктивности при интенсивном беспастбищном ведении животноводства необходимо решение вопросов по созданию на

предприятиях оптимальных зоотехнических и ветеринарно-санитарных режимов в условиях содержания, кормления и профилактики заболеваний животных, основанных на анализе организационно-производственной деятельности животноводческого предприятия с учетом отдельных несовершенств (Фролов

A.Н., Завьялов О.А.,Ласыгина Ю.А. 2015). При этом обеспечение условий содержания, отвечающих биологическим потребностям организма животных, приобретает большое значение, особенно когда речь идет о выращивании телят (Кузнецов А.Ф., Карцев П.С. 2013, Ларцева С.А, Асрутдинова Р.А., Кудрин М.Р. 2011, Куликова Н 2010, Лысов В.Ф. 1988, Плященко С.И. 1991, Коболёва С.А 2001)

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Зенков Константин Федорович, 2016 год

\ /

\ /

\ /

> к /

V У

\

—^

4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16

Рисунок 11 -Корреляция температуры воздуха в виварии и температуры

атмосферного воздуха

Давление воздуха изменялось незначительно, и соответствовало атмосферному давлению. Наличие аммиака и сероводорода при помощи универсального газоанализатора не обнаруживали. Для освещения использовали естественное оконное освещение.

Влажность воздуха в помещении составляла 70%- 90%, в среднем 75%, что является оптимальной относительной влажностью для содержания лабораторных крыс.

б. Показатели клинического состояния, динамика роста и развития

подопытных лабораторных крыс

За животными вели ежедневные наблюдения, где учитывали индивидуальные изменения в росте и развитии, в поведение, потреблении корма и воды. Во время проведения опыта клиническое состояние крыс оценивалось по окраске видимых слизистых оболочек, состоянию волосяного покрова,

координации движения, частоте мочеиспускания и окраске мочи, частоте деффикации, реакции на тактильные и звуковые раздражители. Все выше названные показатели за весь период наблюдения были физиологичны, патологических отклонений не наблюдали и практически визуально были одинаковыми во всех трех группах.

Показатели роста и развития живой массы лабораторных крыс фиксировали каждые 3-4 дня, результаты представлены в таблице8.

Таблица 8 - Показатели роста и развития подопытных лабораторных крыс

Сутки Показатели Подопыт. гр. № 1(ОР+АДК) Подопыт. гр. № 2(ОР+ Зоо-Верад) Контр.гр.

1 Живая масса, г 58,83±1,66 70,83±2,24 58,60±1,66

1-5 Абсолютный среднесуточный прирост живой массы, г 1,16±0,04 1,21±0,03 1,14±0,04

Относительный прирост живой массы, % 9,68 7,85 9,99

Интенсивность прироста живой массы, % 9,18 7,52 9,49

5 Живая масса, г 64,68±2,68* 76,86±3,68* 61,30±1,87

5-6 Абсолютный среднесуточный прирост живой массы, г 3,51±0,10 3,65±0,11 5,04±0,15

Относительный прирост живой массы, % 5,77 5,26 8,37

Интенсивность прироста живой массы, % 5,60 5,15 8,02

6 Живая масса, г 68,19±3,08* 80,52±3,45* 66,34±3,53

6-8 Абсолютный среднесуточный прирост живой массы, г 3,20±0,13 2,77±0,09 5,35±0,16

Относительный прирост живой массы, % 9,36 7,38 16,56

Интенсивность прироста живой массы, % 8,92 7,10 15,37

8 Живая масса, г 74,59±2,34* 86,07±3,30* 77,05±3,08

Продолжение таблицы 8

Сутки Показатели Подопыт. гр. № 1 (ОР+АДК) Подопыт. гр. № 2 (ОР+ Зоо-Верад) Контр.гр.

8-11 Абсолютный среднесуточный прирост живой массы, г 4,90±0,14 6,81±0,27 4,28±0,15

Относительный прирост живой массы, % 19,34 23,85 17,63

Интенсивность прироста живой массы, % 17,59 21,31 16,08

11 Живая масса, г 89,30±4,36 106,54±5,9* 89,93±4,49

11-14 Абсолютный среднесуточный прирост живой массы, г 4,29±0,22 4,72±0,23 4,00±0,0

Относительный прирост живой массы, % 14,36 13,45 13,47

Интенсивность прироста живой массы, % 13,40 12,67 12,62

14 Живая масса, г 102,12±3,76 120,73±4,0* 101,94±3,05

14-18 Абсолютный среднесуточный прирост живой массы, г 4,28±0,24 4,51±0,35 2,90±0,15

Относительный прирост живой массы, % 17,22 15,30 11,53

Интенсивность прироста живой массы, % 15,82 14,19 10,88

18 Живая масса, г 119,35±3,58* 139,04±4,38* 113,45±3,24

Среднесуточный привес за весь период 3,36±0,15 3,79±0,17 3,21±0,14

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении

показателей подопытной и контрольной группы.

За весь период наблюдения (18 суток) среднесуточный прирост живой массы в подопытной группе №1 составил 3,36 г, что на 4,7% выше, чем в контрольной. Однако в подопытной группе №2 этот показатель был 3,79 г в сутки, что на 18,1 % выше, чем в контрольной группе.

Более высокий показатель среднесуточного прироста живой массы крыс во второй группе - можно объяснить тем, что Зоо-Верад более богат минеральным

составом, чем АДК. АДК практически представлен только аморфным диоксидом кремния.

в. Результаты гематологических исследований подопытных лабораторных

крыс

До начала эксперимента все подопытные животные имели практически одинаковые гематологические показатели. В конце эксперимента, через 18 суток наблюдений лабораторные крысы были подвергнуты эвтаназии, после чего у них была взята кровь для исследования. Клинический анализ крови от подопытных крыс представлен в таблице9.

Таблица 9 - Клинико-гематологические показатели крови лабораторных крыс

Показатели Подопыт. гр. № 1 (ОР+АДК) Подопыт. гр. № 2 (ОР+ Зооверад) Контр.гр.

Лейкоциты (WBC),109/n 3,9±0,23 4,3±0,22 5,6±0,28

Эритроциты (RBC),1012An 6,5±0,33 6,8±0,34 7,0±0,35

Гемоглобин (HGB), г/л 107±2,14 98±1,96 108±2,16

Гематокрит (HCT), % 44,2±1,32 42±0,84 46,9±0,94

Тромбоциты (PLT), 109/л 360±10,8 228±6,84 420±12,6

Тромбокрит (PCT), % 0,320±0,01 0,204±0,01 0,390±0,01

Корпускулярный объем (MCV), 1015/л(фл) 68±2,04 66±2,64 67±2,68

Среднее содержание HGB в эритроците (MCV), пг 16,5±0,50 14,4±0,43 15,4±0,50

Средняя конц. HGB в эритроците (MCHC), г/л 24,2±0,73 21,8±0,65 23,0±0,69

На рисунке 12 представлено отношение клинико-гематологических показателей крови подопытных лабораторных крыс к клинико-гематологическим показателям крови крыс из контрольной группы.

160 140 120 100 80 60 40 20 0

к<0

^ / у ✓ /

111 в 11111

111 в 111 в в

/

^ ^ <$? £ £

/ ^ ^

сЯ

Контрольная гр

Подопыт. гр. № 1 (ОР+АДК)

Подопыт. гр. №2 (ОР+Зоо-Верад)

сЯ

Рисунок 12 - Отношение клинико-гематологических показателей крови крыс из подопытных групп к показателям крыс из контрольной группы

Лейкограмма крови лабораторных крыс представленав таблице 10. Таблица 10 - Лейкограмма крови лабораторных крыс

Показатели Подопыт. гр. № 1 (ОР+АДК) Подопыт. гр. № 2 (ОР+ Зоо-Верад) Контр.гр.

Миелоциты, % 0 0 0

Юные, % 0 0 0

Палочко ядерные нейтрофилы, % 5 1 3

Сегментоядерные нейтрофилы, % 19 11 15

Эозинофилы, % 4 3 0

Базофилы, % 0 0 0

Моноциты, % 2 1 2

Лимфоциты, % 70 84 80

Некоторые биохимические показатели крови от подопытных крыс представлены в таблице 11.

Таблица 11 - Биохимические показатели сыворотки крови лабораторных крыс

Показатели Подопыт. гр. № 1 (ОР+АДК) Подопыт. гр. № 2 (ОР+ Зооверад) Контр. гр.

Мочевина, мкмоль/л 3,19±0,10 2,2±0,07 3,67±0,11

Билирубин, мкмоль/л 3,2±0,10 2,9±0,09 4,1±0,12

АЛТ, МЕ/л 86,9±2,61* 74,9±2,25 72,5±2,16

АСТ, МЕ/л 167,9±5,037 268,1±8,04* 226,7±6,80

Холестерин, моль/л 2,04±0,06 2,7±0,08 2,54±0,08

*Примечание: статистическая достоверность р<0,05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

Биохимические показатели лабораторных крыс относительно контрольной группы изображены на рисунке 13

Рисунок 13 - Отношение биохимических показателей крови крыс из подопытных группы к показателям крыс из контрольной группы

Анализ клинической картины крови показал, что добавка к основному рациону АДК и Зоо-Верада, в целом, положительно сказывался на таких показателях крови, как количество эритроцитов. Но, в группе №1 крысам, которой добавляли АДК отмечали в лейкограмме увеличение палочко ядерных и сегментоядерных нейтрофилов (соответственно на 66,7 и 26,7%), при

одновременном снижении лимфоцитов (на 30%) - по сравнению с контрольной группой. В группе №2 (где скармливали Зоо-Верад) отмечено снижение нейтрофилов, при одновременном понижении лимфоцитов, по сравнению с контролем. При изучении биохимических показателей крови - в подопытных группах (№1 и №2) зафиксировали снижение мочевины, билирубина, аланинаминотрансферазы, по сравнению с контрольной группой.

Однако в первой подопытной группе, которой скармливали АДК показатель аспартатаминотрансферазы, холистерина был ниже, чем в контрольной группе и во второй подопытной группе крыс. Все эти данные подтверждают положительный эффект добавления АДК для крыс первой подопытной группы.

г. Результаты копрологических исследований подопытных лабораторных

крыс

Через 18 суток проведения эксперимента у крыс был взят кал для исследований результаты, которого соответствовали анализам кала здоровых животных. Установлено, что в подопытной группе № 1 (ОР+АДК) - рН кала составляла 6,3, в подопытной группе № 2 (ОР+Зооверад) - pH - 6,5, а в контрольной группе - 6,8. Количество детрита во всех группах достигало трех +. Содержание жирных кислот в подопытной группе № 1 (ОР+АДК), так же как и в контрольной группе составило три +, а в подопытной группе № 2 (ОР+Зооверад), только два +. Нейтральный жир во всех группах присутствовал на два +. Мыла в подопытной группе № 1 (ОР+АДК) встречались единично, а в подопытной группе № 2 (ОР+Зооверад) и контрольной группе мыла обнаружены на один +.Зерна крахмала обнаружили только в контрольной группе. Количество непереваримой клетчатки, по группам был одинаковым и составлял один +. Что же касается переваримой клетчатки, то в образцах кала встречалась единично во всех группах. Наличие пигментов крови выявлено не было. Количество клеток кишечного эпителия в слизи в подопытных группах было единичное, а в контрольной -умеренное количество. Мышечные и соединительные волокна в кале всех трех

групп обнаружены не были. Количество микрофлоры в образцах кала подопытных групп было среднее, в то время как в контрольной группе - большое.

Анализируя полученные результаты анализа кала лабораторных крыс из подопытных и контрольной групп, можно утверждать об отсутствии негативного влияния скармливания изучаемых сорбентов на процессы пищеварения крыс, и следует отметить тенденцию к улучшению некоторых их показателей.

д. Результаты послеубойного осмотра и массометрии тушек и органов

подопытных крыс

По истечении срока подопытного периода животные были подвергнуты эвтаназии. Было проведено патологоанатомическое вскрытие тушек крыс подопытных и контрольной группы. Результаты вскрытия показали, что визуальных различий во внутренних органах у крыс всех трех групп отмечено не было, все органы соответствовали органам здоровых животных.

Кроме того, при вскрытии была проведена массометрия некоторых внутренних органов убитых крыс. Этот материал предоставлен в таблице 12.

Таблица 12 - Массометрия внутренних органов убитых крыс

Показатели Подопыт. гр. № 1 (ОР+АДК) Подопыт. гр. № 2 (ОР+ Зооверад) Контр. гр.

Живая масса, г 152,59±4,1* 157,44±7,37* 133,46±8,25

Масса тушки (после обескровливания), г 142,47±3,27* 158,91±4,32* 109,12±3,15

Относительная масса тушки после обескровливания к живой массе, % 93,36±3,54* 94,91±3,13* 96,14±2,88

Масса сердца, г 0,49±0,01 0,54±0,05 0,40±0,02

Масса легких, г 1,14±0,04 1,89±0,08 1,14±0,03

Масса желудка, г 2,06±0,1 3,35±0,2 2,48±0,13

Масса кишечника, г 15,81±0,08 20,76±0,54 11,31±0,44

Масса селезенки, г 0,86±0,03 0,54±0,03 0,68±0,02

Масса левой почки, г 0,78±0,04 0,97±0,06 0,62±0,04

Масса правой почки, г 0,74±0,03 0,95±0,03 0,62±0,02

Общая масса почек, г 1,52±0,08 1,92±0,1 1,24±0,8

Продолжение таблицы 12

Масса печени, г 7,37±0,24 7,01±0,23 4,98±0,25

Общая масса внутренних органов, г 29,25±1,35 36,01±1,04 22,08±0,73

Отношение органов к тушке, % 20,53±0,52 37,94±0,95 20,27±0,56

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

Относительная масса: сердца, легких, желудка, почек - была меньше в 1-й подопытной группе, где скармливали АДК, что подтверждает эффективное детоксикационное и сорбирующее свойство АДК.

Анализируя весь полученный материал можно сделать вывод, что включение АДК в рацион кормления крыс не оказывал отрицательного воздействия на их организм. Было выявлено положительное влияние на рост и развитие этих животных, а так же на внутренние органы, на некоторые показатели клинической картины крови и на показатели биохимических процессов.

2.4.6. Изучение детоксикационных свойств АДК на крысах при экспериментальном отравлении сулемой

Нами было изучено влияние АДК на организм лабораторных крыс при экспериментальном отравлении сулемой, который добавляли в корм крысам подопытных групп №1 и №2 в корм в количестве ЛД50 = 37мг/кг корма. Все крысы, содержались в виварии, и кормовой рацион их был в виде смеси перемолотых семян злаковых и бобовых культур (овес, пшеница, ячмень, просо, кукуруза, горох), фруктов и овощей, семена подсолнечника, дрожжей, минеральных веществ и витаминов.

Контрольная группа получала основной рацион. Подопытная группа №1 получала основной рацион + сулема (ЛД50 = 37мг/кг корма). Подопытная группа №2 получала основной рацион + АДК + сулема (ЛД50 = 37мг/кг корма). Доза АДК составляла 2,4г на 1 кг корма.

Кормовая смесь задавалась один раз в сутки каждой группе животных в дозе равной 40 г. Эксперимент длился 13 суток.

а. Показатели клинического состояния, динамика роста и развития

подопытных лабораторных крыс

У подопытных животных изучали, так же как и в предыдущем опыте, показатели роста и развития их организма, клинические и биохимические показатели крови, а так же проводили изучение кала и массометрию внутренних органов. Результаты изучения роста и развития у крыс данного опыта представлены в таблице 13. Взвешивание проводили каждые 2-3 дня.

Таблица 13 - Показатели роста и развития подопытных крыс за время проведения

опыта

Показатели Подопыт.гр.№1(ОР+ сулема+АДК) Подопыт.гр.№2( ОР+сулема) Контр гр. (ОР)

Начало опыта Живая масса (г) 106,15±5,8* 127,02±6,3* 56,04±3,1

Конец опыта Живая масса (г) 107,91±5,9* 113,73±6,2* 84,22±4,6

За весь опытный период Абс. среднесут. прирост массы, г +0,13±0,01* - 1,02±0,04* +2,18±0,06

Отн. Среднесут. прирост массы, % + 1,65* - 10,46* +50,28

Интенсивность прироста (%) + 1,64* - 11,04* +40,18

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

Среднесуточный прирост живой массы одной крысы в контрольной группе составил 2,88г. Характер изменений живой массы крыс (их среднесуточные привесы в динамике) был различен. Этот показатель в граммах был следующим: на 1-3 сутки опыта он составил: в контрольной группе (ОР) - плюс 2,99, в первой подопытной группе (ОР+сулема+АДК) - минус 0,01, во второй подопытной группе (ОР+сулема) - минус 0,89.На 4-6 сутки соответственно: в контрольной

группе (ОР) - плюс 0,9; в первой подопытной группе (ОР+сулема+АДК) - минус 1,2; во второй подопытной группе (ОР+сулема)- минус 2,38.На 7-9 сутки: в контрольной группе (ОР) - плюс 5,10; в первой подопытной группе (ОР+сулема+АДК) - плюс 2,50; во второй подопытной группе (ОР+сулема)-минус 0,35.На 10-11 стуки: в контрольной группе (ОР) - плюс 0,62; в первой подопытной группе (ОР+сулема+АДК) -минус 1,03; во второй подопытной группе (ОР+сулема)- минус 1,23. На 12-3-13 сутки: в контрольной группе (ОР) -плюс 4,60; в первой подопытной группе (ОР+сулема+АДК) - плюс 0,78; во второй подопытной группе (ОР+сулема)- плюс 0,70.

Эти данные подтверждают происходящую перестройку в организме крыс под воздействием только сулемы (подопытная группа № 2) и сулемы и АДК (подопытная группа № 1)

б.Результаты гематологических исследований подопытных лабораторных

крыс

Клинико-гематологические показатели крови у подопытных крыс представлены в таблице 14.

Таблица 14 - Клинико-гематологические показатели лабораторных крыс

Показатели Подопыт.гр.№ 1 (ОР +сулема+АДК) Подопыт.гр.№2 (ОР+сулема) Контр гр.(ОР)

Лейкоциты (WBC),109/n 4,4±0,50 6,5±0,40* 3,8±0,50

Эритроциты (RBC),1012/n 4,8±0,80 5,9±0,70* 4,1±0,60

Гемоглобин (HGB), г/л 141±8,90* 137±9,10* 92±5,80

Гематокрит (HCT), % 34 39 28

Тромбоциты (PLT), 109/л 272±12,8 238±10,9 273±13,70

Тромбокрит (PCT), % 0,225 0,201 0,197

Корпускулярный объем (MCV), 1015/л(фл) 69±1,07 66±1,75 67±1,54

Среднее содержание HGB в эритроците (MCV), пг 29,3±1,56 23,2±1,61 26,7±153

Средняя концентрация HGB в эритроците (MCHC), г/л 42,6±2,31 35,2±1,54 39±1,59

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

На рисунке 14 представлено отношение клинико-гематологических показателей крови подопытных лабораторных крыс к клинико-гематологическим показателям крови крыс из контрольной группы.

180 160 140 120

100 80 60 40 20 0

Р

Л* X» .о* л? <р-

¿Я .О"

/ У / / * / / /

5х <еГ

я; £

^ У*

Подопыт.гр.№1(ОР+сулема+АДК) Подопыт.гр.№2 (ОР+сулема) Контр гр. (ОР)

сЯ

Рисунок 14 - Отношение клинико-гематологических показателей крови крыс из подопытных групп к показателям крыс из контрольной группы

Лейкограмма подопытных животных представлена в таблице 15.

Таблица 15 - Лейкограмма крови лабораторных крыс

Показатели Подопыт.гр.№ 1 (ОР +сулема+АДК) Подопыт.гр.№ 2 (ОР+сулема) Контр гр. (ОР)

Миелоциты, % 0 0 0

Юные, % 0 0 0

Палочкоядерные нейтрофилы, % 1±0,02 0,0±0,00 1±0,03

Сегментоядерные нейтрофилы, % 32±0,95 36±1,05 31±0,90

Эозинофилы, % 2±0,04 2±0,05 2±0,06

Базофилы, % 0 0 0

Моноциты, % 1±0,02 1±0,01 5±0,14

Лимфоциты, % 64±1,90 61±1,80 51±1,50

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении

показателей подопытной и контрольной группы.

Некоторые биохимические показатели крови от подопытных крыс представлены в таблице 16, а их отношение к показателям из контрольной группы на рисунке 15.

Таблица 16 - Биохимические показатели сыворотки крови лабораторных крыс

Показатели Подопыт.гр.№1(ОР+ сулема+АДК) Подопыт.гр.№2 (ОР+сулема) Контр гр. (ОР)

Мочевина, мкмоль/л 3,67±0,28* 6,12±0,53 5,88±0,42

Билирубин, мкмоль/л 7,8±0,75 9,4±0,82 8,3±0,61

АЛТ, МЕ/л 70±3,90 51,1±2,90* 94,2±3,80

АСТ, МЕ/л 247,4±21 239,4±23 284,6±22

Холестерин, моль/л 2,5±0,10 1,32±0,20 2,3±0,10

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении

показателей подопытной и контрольной группы.

11 II II III 1

1 II

1 1

Опыт.гр.№1(ОР+сулема+АДК) Опыт.гр.№2 (ОР+сулема) Контр гр. (ОР)

Мочевина Билирубин

АЛТ

АСТ

Холестерин

Рисунок 15 - Отношение биохимических показателей крови крыс из подопытных групп к показателям крыс из контрольной группы

Исследования крови показали, что при ртутной интоксикации крыс добавка АДК положительным образом сказывалась на таких показателях, как содержание эритроцитов, гемоглобина, тромбоцитов, лимфоцитов, аланинаминотрансферазы, аспартатаминотрансферазы и холестерина.

г.Результаты послеубойного осмотра, массометрии тушек и органов

подопытных крыс

При вскрытии в обеих подопытных группах наблюдались признаки хронического отравления сулемой. Все органы были взвешены, результаты представлены в таблице 17.

Таблица 17 - Массометрия внутренних органов убитых крыс

Показатели Подопыт.гр.№1(ОР +сулема+АДК) Подопыт.гр.№2 (ОР+сулема) Контр гр.(ОР)

Живая масса, г 109,31±4,65* 115,28±7,64* 88,40±4,42

Масса тушки (после обескровливания), г 102,66±5,33* 110,23±5,51* 83,63±4,51*

Общая масса внутренних органов,г 19,20±0,67* 18,68±0,46* 16,10±0,38*

Масса сердца, г 0,45 0,43 0,4

Масса легких, г 1,03 1,28 0,71

Масса желудка, г 1,26 1,38 1,11

Масса кишечника, г 10,03 8,98 8,43

Масса селезенки, г 0,44 0,52 0,46

Масса левой почки, г 0,78 0,92 0,51

Масса правой почки, г 0,78 0,87 0,51

Масса печени, г 4,44 4,32 3,97

Относительная масса печени к тушке, % 4,31 3,96 4,75

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

Относительная масса внутренних органов убитых крыс (в % к массе тушки) в контрольной группе составила 19,25%, в подопытной группе №1 18,63 %, в подопытной группе № 2 - 17,24 %. В опытах по изучению детоксикационных свойств сорбента АДК показали, что в группе крыс, которым в рацион вводили сулему и АДК относительные среднесуточные приросты массы тела составляли 1,65 %, а интенсивность прироста была 1,64 %; тогда как в группе № 1 (где в основной рацион была добавлена только сулема) выше названные показатели были со знаком минус: минус 10,46 % и минус 11,04 %.Все показатели по исследованию крови, а так же по патологоанатомическим данным подтверждают положительный детоксикационный эффект АДК при экспериментальном ртутном отравлении у крыс.

Анализируя полученный конкретный материал можно отметить, что сорбционная способность АДК при отравлении сулемой выражается достаточно хорошо. Лабораторные крысы при отравлении сулемой и одновременной дачей

АДК все выживали и дали абсолютные среднесуточные приросты массы тела: плюс 0,13 г, тогда как в группе, где АДК не применяли, прироста не было, а наоборот, отмечали этот показатель с минусом (минус 1,02 г/сутки).

2.4.7. Влияние скармливания МРШ и АДК на организм цыплят-бройлеров, в

условиях вивария

В данном опыте изучали влияние АДК и МРШ, приготовленных из рисовой шелухи - отходов рисоперерабатывающей промышленности по технологии ООО «Новые технологии дисперсных систем» на специальных роторно-вихревых мельницах, на цыплят. Использовали цыплят бройлеров кросса РОСС-308 в возрасте 21 сутки. Были сформированы 3 группы цыплят. Группа № 1-к основному рациону цыплят добавляли МРШ. Группа№2 - ей скармливали АДК. Группа № Збыла контрольной, которой скармливали только основной рацион.

Все испытуемые сорбенты добавляли к основному рациону в пропорции 1 г препарата на 1 кг корма. В кормлении цыплят использовали комбикорм, изготовленный по рецепту № ПК 5-1Г 1570, предназначенный для бройлеров от 1 до 5 недель, изготовленный на ЗАО «Гатчинский ККЗ». Его состав: пшеница, шрот соевый, кукуруза, шрот подсолнечный, рыбная мука, кукурузный зародыш, масло растительное, премикс П5 старт, Ь-Лизин, моногидрохлорид, ЭЬ-Метионоин, фосфат дефторированный, Монокальцийфосфат, Ь-Треонин, Холин-хлорид, 60%, сода пищевая, лактацид, соль поваренная, известняковая мука. Обменная энергия, не менее 300 Ккал/100г.В рецепт введены лекарственные препараты: Альбак 15% 300,0г/т; ферменты: Роксазим 02 100,0 г/т, Натуфос 10000 50,00 г/т.Гарантированные показатели качества: Влажность до 14%; Сырой протеин от 21,30%; Сырой жир от 4,40%; Сырая клетчатка до 4,90%; Лизин от 1,28%; Метионин и цистин от 0,88%; Кальций от 0,78% до 1,05%; Фосфор от 0,56% до 0,82%; Натрий от 0,12% до 0,20%; Натрия хлорид от 0,25% до 0,45%.Доза кормления цыплят за сутки составляла 70-90г в зависимости от массы тела и возраста. Кормили птицу два раза в сутки, утром и вечером в одно и то же

время. Поение обеспечивали вволю из специальных поилок для птиц. Птицу содержали в виварии по две головы в клетке, расположенные блоком, на высоте 1 м над полом в специальном виварии для животных. Птице обеспечивали необходимые зоогигиенические условия: температура воздуха, влажность воздуха, подвижность воздуха и световой режим. Все параметры ухода были одинаковыми для всех групп. Сроки наблюдения с адаптационным периодом составили 23 суток. Скармливание сорбентов осуществляли в возрасте с 28 по 32 сутки, затем перерыв 5 суток (скармливали только основной рацион), затем вновь вводили в основной рацион испытуемые сорбенты (возраст) с 37 по 42 сутки, а в возрасте с 42 по 44 сутки скармливали основной рацион. В возрасте 44 суток цыплята-бройлеры были подвергнуты эвтаназии.

За подопытный период изучаемые кормовые добавки в основной рацион вводили дважды: первый раз - после адаптации в течение 5-и суток, затем перерыв 5 суток и снова скармливание кормовых добавок в течение 4-х суток и убой через 2-е суток. Целью этих исследований было определить безвредность прерывистого скармливания АДК и МРШ цыплятам-бройлерам.

а. Состояние микроклимата в виварии для содержания подопытных

цыплят-бройлеров

Всех лабораторных цыплят-бройлеров кросса РОСС-308 содержали в специальном просторном, хорошо освещенном, легко проветриваемом виварии кафедры ветеринарной гигиены и санитарии ФГБОУ ВО «СПбГАВМ», который имел длину - 4,45 м, ширину 3,30 м и высоту 2,45 м. Птицы были распределены на группы и размещены в клетках, расположенные блоком на высоте 1 м над полом. Температура воздуха в виварии для содержания цыплят-бройлеров кросса РОСС-308, всегда находилась в рамках установленных зоогигиенических норм, резких перепадов отмечено не было, наблюдались незначительные колебания в пределах 20 - 26оС. Разница температуры атмосферного воздуха и воздуха в виварии изображена на рисунке 16.

30 25 20 15 10 Температура атмосферного воздуха

5 0 -5 -10 -15 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19

Рисунок 16 - Разница температуры воздуха в виварии и температуры

атмосферного воздуха

Влажность воздуха в помещении составляла 60%- 70%, в среднем 65%, что является оптимальной относительной влажностью для содержания цыплят-бройлеров.

Давление воздуха в виварии изменялось незначительно, и соответствовало давлению атмосферного воздуха. Содержание аммиака и сероводорода органолептическим способом обнаружено не было.

Непосредственно в клетках для содержания цыплят-бройлеров кросса РОСС-308 в зависимости от высоты расположения температура изменялась в диапазоне от 22,6оС до 24,5о С. Освещенность от 204 лк до 790 лк. Присутствие вреднодействующих газов, таких как аммиак и сероводород обнаружено не было во всех клетках. Концентрация углекислого газа не превышала 0,456 %.

Световой режим организовали, используя лампы накаливания и инфракрасные лампы различной мощности, оснащенные электронным таймером отключения.

б. Показатели клинического состояния, динамика роста и развития

подопытных цыплят-бройлеров

В течение всего опыта все животные были клинически здоровые. Окраска слизистых: без изменений. Состояние перьевого покрова: хорошее. Координация движений нормальная, вынужденных поз не наблюдалось. Частота мочеиспускания и дефекации нормальной кратности, кал нормальной, для птицы, плотности, имел специфический запах. Реакция на звуковые и тактильные раздражения были без изменений. Тонус мышц: нормальный, судорог не отмечалось. Замена пухо-перьевого покрытия происходило в соответствии с возрастом, и разницы по этому показателю во всех группах не было отмечено, сохранность цыплят во всех группах была 100%.Показатели роста и развития цыплят-бройлеров, с расчетами их абсолютного среднесуточного прироста массы их тела, относительного прироста и интенсивности прироста за весь период наблюдения представлены в таблице 18.

Цифровой материал возрастной динамики живой массы цыплят показывает, что в конце подопытного периода (возраст 44 суток) цыплята контрольной группы весили 2120±60,3 г, а в первой подопытной группе, которой добавляли МРШ, 2062±56,5 г, или меньше на 58 г или на 3,15 % по сравнению с контрольной группой. Во второй подопытной группе, которой добавляли в комбикорм АДК, средняя живая масса тела цыплят составляла 2009±68,2 г, что на 111 г или на 8,2 % меньше, чем в контроле. Однако среднесуточный абсолютный прирост массы цыплят в период с 28 суток до 44 суток в контрольной группе составил 69,69 г, а в первой подопытной группе - 76,50 г, что на 10 г или 3% выше, чем в контрольной; во второй подопытной группе -71,80 г, что на 1,63 г или 5,5% выше, чем в контроле.

Таблица № 18 - Показатели роста и развития подопытных цыплят бройлеров, в

динамике

Возраст Показатели Подопыт. гр.№1 (ОР+МРШ) Подопыт. гр.№2 (ОР+АДК) Контр.гр.№ 3(ОР)

28 суток Живая масса, г 802 859 1005

44 суток Живая масса, г 2062±56,5 2009±68,2 2120±60,3

За весь период: возраст с 28 до 44 Абсолютный среднесуточный прирост живой массы, г 76,50±2,59 71,80±1,83 69,69±1,14

Относительный прирост живой массы, % 152,62 133,88 110,95

Интенсивность прироста живой массы, % 86,56 80,20 71,36

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

Представленные цифровые и графические данные роста и развития цыплят-бройлеров показывают, что ритмы роста и изменения живой массы цыплят, среднесуточных приростов, интенсивности прироста связаны с цикличностью и возрастом птицы, их живой массы тела и введением в рацион изучаемых биологических активных добавок.

Таким образом, итоговые данные за весь период исследования при прерывистом включении АДК и МРШ в рацион цыплят-бройлеров, доказывают эффективность использования этих сорбентов, судя по показателям абсолютного и относительного среднесуточного прироста, и интенсивности прироста. Анализируя динамику живой массы цыплят и среднесуточных приростов массы их тела, можно отметить, что в контрольной группе цыплят наивысшие среднесуточные привесы были в возрасте 35-37 суток - 100 г, а наименьшие в возрасте 42-44 суток -20 г. У цыплят первой подопытной группы, где к основному рациону добавляли микронизированную рисовую шелуху, наивысшие среднесуточные привесы были в возрасте 35-37 суток, так же как и в контрольной группе и составили 111 г, а наименьшие в возрасте 4244 суток- 69,5 г.У цыплят второй подопытной группы, которой скармливали

АДК, максимальные среднесуточные привесы были отмечены так же в возрасте 35-37 суток - 88 г, однако наименьшие привесы были отмечены в возрасте 3742 суток - 64,2.Следует отметить, что изменение среднесуточных приростов массы тела цыплят имели колебательный характер, определяемый как онтогенетическими и другими ритмами развития, так и воздействием применяемых нами сорбентов- МРШ и АДК. Полученные данные убедительно показывают, что за весь период опыта(возраст 44 суток) наибольшие показатели приростов были отмечены в подопытной группе №1, где к основному рациону добавляли микронизированную рисовую шелуху составили 76,50г - абсолютный, 152,62г - относительный и 86,56г - интенсивность прироста. Наименьшие значения этих показателей, по сравнению со всеми группами, были отмечены в группе №3 (контрольная группа, где скармливали только основной рацион) и составили 69,69г - абсолютный, 110,95г -относительный и 71,36г - интенсивность прироста. Полученный цифровой материал позволяет утверждать о целесообразности прерывистого алиментарного применения МРШ и АДК в рационах цыплят-бройлеров.

в. Результаты гематологических исследований подопытных цыплят-

бройлеров

По окончанию опыта у всех цыплят была взята кровь для биохимического и клинического исследований. Результаты клинического анализа крови (количество эритроцитов, лейкоцитов, содержание гемоглобина, СОЭ и цветовой показатель) представлены в таблице 19.

Таблица 19 - Результаты клинического анализа крови цыплят бройлеров.

Показатели Подопыт. гр.№1 (ОР+МРШ) Подопыт. гр.№2 (ОР+АДК) Контр.гр.№3 (ОР)

Лейкоциты (WBC),10y/л 21,25±1,26* 17,5±0,68 13,75±0,57

Эритроциты (RBC),1012/л 9,0±0,32 15,4±0,12* 10,6±0,81

Гемоглобин (ВОБ), г/л 216±9,65* 196±7,34 160±4,0

СОЭ, мм/ч 2 1 1,5

Цветной показатель 2,0 0,76 0,9

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

По результатам клинического анализа крови цыплят бройлеров содержание

эритроцитов было наибольшим в подопытной группе №2 (ОР+АДК)-

12

15,4±0,12х10 /л. Количество эритроцитов, в относительном процентном соотношении к контрольной группе было: в первой подопытной группе, которой в комбикорм вводили МРШ - 85 %, во второй подопытной группе, которой вводили в корм АДК - 145 %. По количественному показателю лейкоцитов, по сравнению с контрольной группой, это выглядело следующим образом: в первой подопытной группе - 154%, во второй подопытной группе - 127%. Более высокое содержание гемоглобина отмечалось в подопытных группах №1, №2 по сравнению с контрольной группой - 135%, 122% соответственно. СОЭ во второй подопытной группе был несколько ниже по сравнению с контролем, а в первой подопытной группе, наоборот, несколько выше, чем в контрольной группе. Цветной показатель был выше в первой подопытной группе, а во второй подопытной группе - ниже, чем в контрольной группе.

Полученный материал свидетельствует о том, что такие показатели состояния организма цыплят, как количество эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, СОЭ, показателя цветности в подопытных группах которым скармливали МРШ и АДК, не ухудшались, а наоборот, имели тенденцию к увеличению их в пределах физиологической нормы, что в целом положительно влияет на состояние животного организма.

Содержание общего белка и его фракций в сыворотке крови цыплят представлены в таблице 20.

Таблица 20 - Содержание общего белка и его фракций в сыворотке крови цыплят _бройлеров._

Показатели Ед. измер. Подопыт. гр.№1 (ОР+МРШ) Подопыт. гр.№2 (ОР+АДК) Контр.гр.№3 (ОР)

Общий белок г/л 30,00±0,89* 22,40±0,54 23,10±0,54

Альбумины % 29,40 35,16 29,19

г/л 8,82±0,34* 7,87±0,32 6,74±0,28

а-глобулины % 10,30 20,10 19,32

г/л 3,09±0,15 4,50±0,32 4,46±0,33

Р-глобулины % 16,50 19,10 10,50

г/л 4,95±0,24* 4,27±0,13* 2,42±0,09

у-глобулины % 43,80 26,54 40,99

г/л 13,14±0,33* 5,94±0,18* 9,46±0,33

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

На рисунке 17 изображено отношения белковых фракций крови в подопытных и контрольной группе.

Рисунок 17 - Соотношение белковых фракций в подопытных и контрольной

группах

Табличные и графические результаты биохимического исследования сыворотки крови цыплят бройлеров, показали, что максимальное количество общего белка было отмечено в подопытной группе №1 (ОР+МРШ)-30,00 г/л (129 % по сравнению с контрольной группой). Значения общего белка в подопытной группе №2 (ОР+АДК) и в контрольной группе №3(ОР) отличались незначительно. Содержание альбуминов в подопытной группе № 2 (ОР+АДК) было достоверно выше, а в подопытной группе № 1 (ОР+МРШ) практически не отличалось от контрольной группы. Показатели содержания а-глобулинов были практически одинаковые во всех группах. Содержание Р-глобулинов, было достоверно выше во всех подопытных группах, по сравнению с контрольной. А содержание у-глобулинов было достоверно выше в подопытной группе № 1 (ОР+МРШ), чем в контрольной группе, однако в подопытной группе № 2 (ОР+АДК) отмечается снижение этого показателя по сравнению с контрольной группой. Результаты биохимического анализа крови цыплят представлены в таблице 21.

Таблица 21 -Результаты биохимического анализа крови цыплят бройлеров.

Показатели Подопыт. гр.№1 (ОР+МРШ) Подопыт. гр.№2 (ОР+АДК) Контр.гр.№3 (ОР)

Билирубин общ., моль/л 3,76±0,15 10,68±0,32 1,88±0,09

Мочевина, моль/л 3,02±0,13 3,52±0,25 3,2±0,17

АЛТ, МЕ/л 8,15±0,34 11,4±0,34 1,3±0,06

АСТ, МЕ/л 9±0,45 12,46±0,45 10,1±0,33

Холестерин, моль/л 3,32±0,14 5,9±0,24 2,95±0,25

Представленный цифровой материал свидетельствует что, показатель АЛТ был ниже у цыплят контрольной группы, которой скармливали только основной рацион. Максимальный уровень АЛТ был отмечен в подопытной группе №2 (ОР+АДК). Показатель содержания АСТ у цыплят в подопытной группе №2 (ОР+АДК) так же был максимальным. Мочевина и холестерин во всех трех группах был примерно на одном уровне. Все изменения были в пределах физиологических норм и характеризовались определённым биохимическим

гомеостазом. У цыплят всех групп было изучено состояние естественной (неспецифической) резистентности по бактерицидной и лизоцимной активности сыворотки крови (БАСК и ЛАСК). Полученные показатели представлены в таблице 22.

Таблица 22 - Показатели неспецифической резистентности организма цыплят

Показатели Подопыт. гр.№1 (ОР+МРШ) Подопыт. гр.№2 (ОР+АДК) Контр.гр.№3 (ОР)

ЛАСК, % лизиса 15 16 14

БАСК, % лизиса 74,1 76,1 72,15

Лизоцимная и бактерицидная активность сыворотки крови у цыплят первой подопытной группы были выше, чем в контрольной группе, соответственно, на 7% и 2 %.Во второй подопытной группе ЛАСК и БАСК имели максимальные значения среди трех групп, соответственно, на 14% и 5,5 %, относительно контрольной группы. Анализируя полученный цифровой материал, можно сделать вывод, что исследуемые кормовые добавки МРШ и АДК не оказывают негативного влияния на гематологические показатели цыплят бройлеров.

Скармливание МРШ и АДК оказывают определенное влияние на клинические показатели крови подопытных птиц, способствуют увеличению общего белка в сыворотке крови, оказывают влияние на протеинограмму.

г. Результаты копрологических исследований подопытных цыплят-

бройлеров

Копрологические исследования были проведены в конце подопытного периода у цыплят в возрасте 44 суток. Макроскопические исследования показали, что по цвету, помёт у цыплят между группами не отличался. Консистенция - мягкая. Запах - слабокислый. Величина рН различалась незначительно. Содержание белка в помёте подопытных групп оценивалось, как

следы. Наличие пигментов крови в подопытных группах не обнаружено.Наличие детритов, растительной клетчатки (переваримой и непереваримой), крахмальных зёрен, общее количество жировых элементов, нейтрального жира, жирных кислот, мылов - было зафиксировано в пределах физиологической нормы и свидетельствовало об определенном воздействии на копрограмму испытуемых кормовых добавок МРШ и АДК. Наличие йодофильных микроорганизмов в помёте не были обнаружены ни в одной группе. Однако наличие кокков в помёте контрольной группы - отмечено, как 95 %, в то время, как в подопытных группах наличие кокков составляло 90%.Наличие грибов, кишечных паразитов и простейших - не зафиксировано.

Исследуемые кормовые добавки МРШ и АДК не оказывали негативного влияния на копрограмму цыплят бройлеров кросса РОСС-308 в возрасте 44 суток, а наоборот способствовали снижению массы внутренних органов, оказывали положительное влияние на некоторые гематологические, капрологические показатели организма

д. Результаты послеубойного осмотра и массометрии тушек и органов

подопытных цыплят-бройлеров

В возрасте 44 суток произведена эвтаназия цыплят бройлеров кросса РОСС-308.При ветеринарном осмотре птицы установили, что окраска слизистых была без изменений. Состояние перьевого покрова: хорошее. Повреждений кожного покрова не отмечено. Кожа тушек птицы желтоватого цвета с розовым оттенком, без синих пятен. На коже головы и шеи наличие поражений обнаружено не было, цвет гребня и сережек светло-розовый. Клюв глянцевый, сухой, упругий. В ротовой полости патологических образований не обнаружено. При осмотре печени и селезенки отметили, что они не увеличены, консистенция плотная, цвет соответствует органам здорового животного, наличие узелков, очагов некроза, кровоизлияний не обнаружено. В мускульном и железистом желудке кровоизлияний нет. Сердце плотное, кровоизлияний в сердечной сорочке нет,

жидкости нет. Состояние серозных оболочек без патологических изменений. Консистенция мяса - плотная, волокна ярко выражены. Была проведена проба варки: бульон имел приятный аромат, посторонних запахов не было, прозрачный с желтоватым оттенком, на поверхности наблюдались большие жировые капли. На основании вышеизложенного можно сделать вывод, что тушки птиц пригодны к пищевому назначению и относятся к столовому мясу, которое отвечает техническим условиям.

В таблице 23 представлены результаты массометрии внутренних органов цыплят.

Таблица 23 - Массометрия внутренних органов у тушек цыплят бройлеров

Показатели Подопыт. гр.№1 (ОР+МРШ) Подопыт. гр.№2 (ОР+АДК) Контр.гр.№3 (ОР)

Живая масса, г 2062±59,68* 2009±44,27* 2120±53,60

Масса тушки (после обескровливания), г 2001±70,0 * 1995±82,3 * 2049±79,69

Общая масса внутренних органов,г 185,37±8.33* 184,4±10,30* 205,35±11,47

Масса сердца, г 9,92 7,58 12,7

Масса желудка, г 48,69 48,06 53,93

Масса кишечника, г 87,65 87,39 97,79

Масса селезенки, г 2,03 2,65 2,5

Масса печени, г 37,08 38,72 38,43

*Примечание: статистическая достоверность р<0.05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

Цифровой материал показывает, что масса тушки, обескровленной, с внутренними органами, но без пера, в первой подопытной группе составляла 2001±70,0 г (меньше, чем в контрольной группе на 48 г), во второй подопытной группе - 1995±82,3 (меньше, чем в контрольной на 54 г).

Однако, выход тушки (отношение массы тушки к живой массе цыплёнка) в контрольной группе составил - 96,65%, в первой подопытной группе - 97,04%, во второй подопытной группе - 99,30%.Общая масса внутренних органов была наибольшей в контрольной группе- 205,35 г, в первой подопытной группе -

185,37 г, во второй подопытной группе 184,4 г.Масса печени была наименьшей в первой подопытной группе - 37,08 г (1,85% к массе тушки), в контрольной группе, которой скармливали только основной рацион - 38,43 г (1,88% к массе тушки), во второй подопытной группе - 38,72 г (1,94% к массе тушки).

Абсолютная масса сердца и относительный показатель к массе тушки цыплёнка, в первой подопытной группе - 9,92 г - 0,50%, во второй группе составил 9,24 г - 0,38%, а в контрольной группе - 12,7 г - 0,62%.Масса селезёнки, как органа имеющего отношение к защите организма, была наибольшей в контрольной группе - 2,5 г (0,12% к массе тушки), в первой подопытной группе - 2,03 г (0,10% к массе тушки), а в второй - 2,35 г (0,11 % к массе тушки).Масса кишечника с содержимым, в контрольной группе была максимальной и составляла 97,79 г (4,77% к массе тушки), в первой подопытной - 87,65 г (4,38% к массе тушки), во второй подопытной - 87,39 г (4,38% к массе тушки).Масса железистого желудка во всех группах практически не отличалась.

Объективные данные по массометрии тушек цыплят, позволяют отметить, что живая масса была максимальной в контрольной группе, однако достигнута она была увеличением массы внутренних органов, когда как в подопытных группах масса внутренних органов достоверно была ниже, соответственно применение МРШ и АДК для увеличения мясной продуктивности цыплят бройлеров кросса РОСС-380 считаем целесообразным.

2.4.8. Научно-производственный опыт по изучению влияния скармливания МРШ на организм телят, содержащихся группами (1 серия)

Для изучения влияния МРШ на клинико-физиологическое состояние организма телят было проведено 2 серии научно-производственного опыта в скотоводческом комплексе ЗАО «Племхоз им. Тельмана» Тосненского района Ленинградской области. Объектами исследований в научно-производственной части исследовательской работы были- телята с момента рождения до 120-суточного возраста черно-пестрой породы. Животные в обеих сериях научно-

производственного опыта с 1 по 7 сутки содержались в отдельном помещении профилактория в специальных клетках. Размеры помещения были следующими: длина - 8 м, ширина - 6 м, высота - 2,8 м, количество окон - 1 штук, размером: 1,8х1,1 м. В одном помещении размещено 20 клеток, которые имеют размер 0,8х1,7 м, находящиеся на высоте 0,1 м над полом. С 7 суток жизни животные переводятся в телятник с классическим групповым содержанием. Размеры помещения были следующими: длина - 30 м, ширина - 25 м, высота - 2,8 м. Количество окон - 9 штук, размером: 1,75х1,10 м (4 штуки с одной стороны и 5 с другой). Количество вытяжных шахт - 1 штука. В помещении размещено 8 секций для группового содержания по 8 телят, размером: 5х7 м.

Новорожденным телятам в первый час жизни выпаивают 4 л молозива, затем животных помещают в индивидуальные клетки в профилакторий и в течение 7 дней выпаивают по 2,5 л молока 2 раза в день. Со 2-х суток жизни телятам в клетки ставят кормушку с комбикормом, а с 3-х суток поилки с водой. С 11-х суток жизни телят переводят в телятник для содержания животных группами и начинают выпаивать заменитель цельного молока, а так же устанавливают кормушки с комбикормом.

Для кормления телят используют комбикорм КК-62 20044, произведенный по ГОСТ Р 52254-2004 на комбикормовом заводе Кирова-филиал ОАО «ЛКХП Кирова». Обменная энергия: 11,45 МДж/кг. Состав комбикорма: ячмень, кукуруза, шрот соевый, ячмень голозерный, жмых подсолнечный, сахар, меласса свекловичная, известняковая мука, монокальций фосфат, соль поваренная, лимонная кислота, премикс: П 62-1(0,5%).В кормлении телят используют заменитель цельного молока, который имеет следующий состав: сухая молочная сыворотка, животные жиры (свиной), белковый соевый концентрат, экстрадированная соевая мука подсушенная, пшеничная мука, дрожжи.

В возрасте 1 месяц телятам в рацион вводят премикс П 62-1 (1%), произведенный по ГОСТ 51095-97 в ООО «Никомикс», который имел состав: монокальция фосфат, отруби пшеничные, мел кормовой, соль поваренная экстра,

известняк молотый, магнезит, сера, цинка сульфат, пропиленгликоль, марганца оксид, купарос медный, сукрам 810, масло ванильный аромат 10%, витамин В12, йодат кальция, кобальта карбонат, селенит натрия.

Во время проведения опытов клиническое состояние телят оценивалось по окраске слизистых видимых оболочек, состоянию волосяного покрова, координации движения, объем грудной клетки за лопатками, высота в холке, дыхательные движения, сердцебиение, температура тела, реакции на тактильные и звуковые раздражители. Опыт длился 120 суток.

За животными вели ежедневные наблюдения, учитывали основные показатели роста и развития телят: живая масса, абсолютный среднесуточный прирост живой массы, относительный прирост живой массы и интенсивность прироста живой массы.

Была изучена прерывистая схема дачи МРШ телятам. Было сформировано две группы -подопытная и контрольная из телят, которые содержались в групповых клетках. Подопытной группе с 3-го дня жизни в молоко добавляли сорбент (МРШ) в дозе 0,2 на 1 кг живой массы, затем делали перерыв 3 дня, а далее снова 3 дня добавляли МРШ в молоко, контрольная группа получала только молоко. Выбор данной схемы скармливания МРШ обусловлен физиологическими особенностями развития телят и критическими аспектами технологии содержания и выращивания животных. Скармливание МРШ продолжалась 20 дней. Затем у телят был взят кал для исследования, а так же кровь для клинического и биохимического анализа и было проведено контрольное взвешивание. Наблюдение за животными продолжалось 120 дней.

а. Состояние микроклимата в телятнике для группового содержания

животных

Во время проведения научно-производственного опыта параметры температурно-влажностного режима в помещении профилактория были следующими: средняя температура воздуха была 16,5оС, с колебаниями от 15,3оС

до 18,2оС. Относительная влажность воздуха была в среднем 74% при колебаниях от 69,4% до 79,2%. На протяжении всего подопытного периода скорость движения воздуха не превышала 0,12 м/с. Концентрация вреднодействующих газов находилась в пределах допустимых норм: аммиак - 6 мг/м3 при колебаниях

-5

от 4,1 до 8,2 мг/м , сероводород и угарный газ не был обнаружен, а средняя концентрация углекислого газа составляла 0,10 %. Уровень общей микробной обсемененности в среднем был 26,5 тыс. микробных тел в 1 м3 воздуха. Уровень освещенности непосредственно в клетке с теленком при выключенных искусственных источниках находился в пределах от 32 до 630 лк, среднее значение 110 лк (КЕО=0,91 %).

Во время проведения опыта в помещении с групповым содержанием телят средняя температура воздуха была 14,1о С, с колебаниями от 12,2о С до 16,4о С. Относительная влажность воздуха была в среднем 70,5% при колебаниях от 65,3% до 76,1%. Скорость движения воздуха не превышала 0,20 м/с. Концентрация вреднодействующих газов находилась в пределах допустимых

3 3

норм: аммиак - 7,2 мг/м при колебаниях от 5,1 до 9,3 мг/м , сероводород и оксид углерода не был обнаружен, а средняя концентрация диоксида углерода составляла 0,14 %. Уровень общей микробной обсемененности в среднем был 31,3 тыс. микробных тел в 1 м3 воздуха. Уровень освещенности непосредственно в клетках с телятами при выключенных искусственных источниках находился в пределах от 28 до 580 лк, среднее значение 95 лк (КЕО=0,89%).

б.Показатели клинического состояния, динамика роста и развития подопытных телят при групповом содержании

Во время наблюдения за подопытными телятами было установлено, что все животные реагировали на внешние раздражители, охотно поедали корма. Температура тела, частота пульса и дыхания находились в пределах физиологических норм. За период научно-производственного опыта температура тела животных по всем группам составляла от 38,1±0,15о С до 38,2±0,12о С.

Частота сердечных сокращений и дыхательных движений в минуту от 63,9±2,46 до 65,2±2,48 и от 16,0±0,73 до 16,1±0,60 соответственно.

Волосяной покров у телят был блестящий, эластичный, волос прочно удерживался в коже, кожный покров не имел видимых патологических изменений и повреждений. Слизистые оболочки ротовой, носовой полости, наружных половых органов были бледно-розового цвета, умеренно влажные, блестящие; повреждений и патологических наложений обнаружено не было. Конъюнктива была бледно-розового цвета, с матовым оттенком. Все животные обладали средней упитанностью, вынужденных поз отмечено не было.

Контрольное взвешивание проводили 4 раза с перерывом в 1 месяц. Результаты взвешивания представлены в таблице 24.

Таблица 24 - Результаты контрольного взвешивания телят, содержащихся в

групповых клетках (М±т)

Возраст 1 месяц 2 месяца 3 месяца 4 месяца

Средняя абсолютная масса телят (кг)

Подопытная группа 48,16±1,43* 63,86±1,81* 86,43±2,10* 108,29±3,14*

Контрольная группа 40,33+1,19 52,67±1,38 67,17±1,80 95,00±2,63

Абсолютный среднесуточный прирост живой массы по группе (кг)

Подопытная группа 0,54 0,75 0,73 —

Контрольная группа 0,41 0,48 0,74 —

Относительный среднесуточный при эост по группе (%)

Подопытная группа 34,09 35,51 25,21 —

Контрольная группа 30,88 27,94 33,09 —

Средняя интенсивность прироста по группе (%)

Подопытная группа 28,91 30,01 22,36 —

Контрольная группа 26,56 24,34 27,45 —

*Примечание: статистическая достоверность р<0,05 при сравнении показателей подопытной и контрольной группы.

В конце периода скармливания МРШ в возрасте 1 месяц средняя масса телят в подопытной группе составляла 48,16±1,43 кг, что на 7,83±1,31 кг больше, чем в контрольной, а в возрасте 4-х месяцев средняя масса телят в подопытной группе составляла 108,29±3,14 кг, что на 13,29±2,90 кг больше, чем в контрольной группе. В период скармливания МРШ, а затем еще в течение одного месяца средние показатели по группам абсолютных среднесуточных приростов живой массы, относительных среднесуточных приростов и интенсивности прироста, были выше в подопытной группе.

в.Результаты гематологических исследований подопытных телят при

групповом содержании

Для изучения влияния скармливания микронизированной рисовой шелухи (МРШ) на организм телят (первая серия опытов), которых содержали в групповых клетках, была взята кровь для клинического и биохимического анализа. Результаты представлены в таблице 25.

Таблица 25 - Некоторые результаты анализа крови телят, содержащихся в

групповых клетках (M±m)