Фотосенсибилизированное образование и дезактивация синглетного молекулярного кислорода и их роль в биологических системах тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.02, доктор биологических наук Егоров, Сергей Юрьевич

• Егоров, Сергей Юрьевич
• доктор биологических наук
• 2007

Оглавление диссертации доктор биологических наук Егоров, Сергей Юрьевич

Список сокращений

Введение

Часть I. Обзор литературы

Глава 1. Фотосенсибилизируемые процессы в живых клетках, инициируемые с участием кислорода

Глава 2. Синглетный кислород, триплетные молекулы фотосенсибилизаторов и их роль в фотоокислительных процессах в живых клетках

Глава 3. Фотосенсибилизированное образование и дезактивация 'Ог компонентами биологических систем

Цели и задачи исследования.

Основные положения, выносимые на защиту

Часть II. Методы и объекты исследования

Часть III. Результаты исследования и их обсуждение

Глава 1. Фотосенсибилизированная люминесценция хОг в клетках, тканях и моделях мембран

Глава 2. Эффективность фотосенсибилизированного образования ]Ог в моделях биологических мембран

Глава 3. Оценка скорости дезактивации ]Ог в биологических системах на основании оценки констант скорости тушения xOi компонентами мембран и цитоплазмы живых клеток.

Глава 4. Исследование первичных реакций фотодинамического повреждения хлоропластов при участии триплетных возбужденных молекул фотосенсибилизаторов и 'Ог

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Фотосенсибилизированное образование и дезактивация синглетного молекулярного кислорода и их роль в биологических системах»

Интенсивное освещение окрашенных пигментированных клеток и тканей живых существ способно вызывать их фотодеструктивные изменения и гибель, инициировать фотоокислительный стресс, фотоингибирование, вызывать мутации и другие повреждения нативных процессов жизнедеятельности. Наиболее вероятные интермедиаты первичной стадии фотоокисления - активные формы кислорода (АФК): молекулы синглетого ислорода, радикалы «Ог", «НОг, «ОН, перекись водорода, а также возбужденные синглетные и триплетные молекулы пигментов, радикалы и перекиси липидов и др. Эти существенно различные по химической активности молекулы способны разрушать органические молекулы, клетки и ткани, инициируя деструктивные процессы. Для понимания механизмов фотодинамических, фотоинформационных и фотопротекторных процессов и их места в метаболизме и жизнедеятельности организмов необходимо детальное исследование роли отдельных активных молекул в живых системах и их моделях.

Настоящая работа посвящена исследованию роли главным образом синглетного кислорода ('02) и возбужденных триплетных состояний молекул пигментов, которые с одной стороны, инициируют фотоокислительный стресс за счет участия в фотоокислительных деструктивных реакциях, а с другой могут определять многообразные фотоинформационные и фоторегуляторные процессы в живых клетках. [81еэ е1 а1., 2004-2005]. Предполагается, что именно необходимость предотвращения губительного действия фотоокислительного стресса, обусловленного указанными активными молекулами, привела к выработке эффективных фотопротекторных механизмов в клетках живых существ, которые особенно развиты в пигментированных, например, фотосинтезирующих, зрительных и других окрашенных клетках.

В классических фотохимических исследованиях [Kautsky, 1939; Теренин, 1943-1947, Foote, 1964-1979] высказано предположение, что основным путем образования одной из наиболее химически активных возбужденных 1 эВ форм кислорода -'СЬ - является перенос энергии от фотосенсибилизаторов в л возбужденном триплетном состоянии (Р) на молекулярный кислород. Однако прямых доказательств участия этого процесса в инициировании фото динамических реакций in vivo не было. Существенным успехом в исследовании роли 'Ог в инициации фотобиохимических процессов было открытие явления собственной фосфоресценции 'Ог в органических растворителях [Красновский, 1976] и воде [Красновский, 1979; Khan, 1979], которое позволило получать неинвазивным путём (без введения дополнительных химических акцепторов 'Ог) достоверную информацию о свойствах в системах любой сложности.

К моменту начала данного исследования (1982 г.) была накоплена обширная информация о свойствах 'Ог, полученная методом химических ловушек (акцепторов 'Ог). Однако достоверность этой информации во многих случаях вызывала сомнение в виду недостаточной специфичности химических ловушек и их способности вступать в реакции не только с 'Ог, но и с другими активными формами кислорода, свободными радикалами и электронно-возбужденными состояниями молекул. Измерения, основанные на регистрации фосфоресценции 'Ог, были выполнены главным образом с использованием ограниченного круга органических растворителей, в которых время жизни '02 наиболее велико (10 и более мс). Эти исследования убедительно показали важность фосфоресцентного метода для фотобиологических исследований (Красновский, 1976-1982). В частности, было установлено, что основные биологические пигменты: хлорофиллы, бактериохлорофиллы, порфирины и ретинали способны эффективно генерировать и тушить синглетный кислород в этих средах. Получены точные значения констант скорости тушения '02 жирными кислотами и липидами и многими органическими молекулами. Однако были сделаны лишь первые шаги в анализе фосфоресценции ]02 в органических средах с малым временем жизни 'Ог, воде, моделях мембран, а измерения in vivo полностью отсутствовали.

Таким образом, имевшаяся экспериментальная информация и новый исследовательский подход, основанный на измерении собственной фосфоресценции 'Ог, определили выбор стратегии исследования и сделали возможным выполнение настоящей работы. Имевшаяся информация показывала, что наиболее актуален анализ участия !Ог в таких процессах как фотодинамическая терапия опухолей с участием водорастворимых порфиринов, агрегатов и комплексов с моноклональными антителами, фотодеструкция фотосинтетического аппарата растений и бактерий, фотоиндуцированный катарактогенез, фотоинформационные и фоторегуляторные процессы, инициируемых флавинами и птеринами, фотопротекторные и фоторегуляторные реакции с участием широкого круга физиологически активных веществ и антиоксидантов и ряд других. С другой стороны, требовалось развитие экспериментальных подходов с целью проведения измерений в модельных системах, наиболее приближенных к живым клеткам и тканям, а также собственно in vivo, что требовало существенного развития методик проведения экспериментов и усовершенствования измерительной техники. Подробно цели и задачи этого исследования изложены в заключение обзора литературы.

Часть I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Биофизика», Егоров, Сергей Юрьевич

ВЫВОДЫ

1. Разработаны и созданы новые методы и экспериментальные установки для изучения кинетических и спектральных характеристик '02 в водных растворах, суспензиях клеток и их моделях. Разработан комплекс методов для измерения времени жизни '02, квантовых выходов генерации '02 и констант скоростей тушения '02 биологически важными соединениями, компонентами живых клеток, лекарственными препаратами и другими веществами в водных средах на основе применения импульсных лазерных генераторов и измерения фосфоресценции '02 методами разрешенного во времени счета фотонов.

2. На основе исследования затухания люминесценции после лазерных вспышек определены кинетические характеристики фотосенсибилизированного '02, определены скорости затухания люминесценции и времена жизни в водных растворах (Н20 и Б20), органических растворителях, моделях биологических мембран и суспензиях клеток. Доказан существенный (в 21,6 раза) изотопный эффект в 020 по сравнению с Н20.

3. Водорастворимые порфирины и их полимерные производные способны эффективно фотосенсибилизировать образование '02 в водных растворах и моделях биологических мембран, причем эффективность генерации '02 выше в липофильной фазе, в которой мономерные звенья порфиринов менее ассоциированы. Эти имеют важное значение при разработке основанных на порфиринах противоопухолевых препаратов.

4. Хлорофиллы, бактериохлорофиллы природного происхождения и ряд их химических производных эффективно сенсибилизируют образование '02 в мономерном состоянии как в органических растворителях, так и в моделях клеточных мембран: мицеллярных растворах, суспензиях липосом, твердых полимерных пленках. Агрегация пигментов приводят к снижению эффективности фотосенсибилизирован-ного образования '02, что, по-видимому, связано со снижением эффективности образования триплетных состояний и переноса энергии на молекулы кислорода Тушение фотосенсибилизированного '02 хлорофиллом а, бактериохлорофиллами и их производными высокоэффективно, при этом вклад актов тушения, приводящих к разрушению указанных пигментов мал, что соответствует представлениям о фундаментальной фотопротекторной роли указанных липофильных пигментов in vivo.

5. Обнаружена высокая эффективность фотосенсибилизированной генерации '02 в водных растворах водорастворимых порфиринов, фурокумаринов, птеринов, флавинов, их производных, что указывает на возможность участия фотосенсибилизированного '02 в процессах, сенсибилизируемых этими фотосенсибилизаторами in vivo и in vitro, включая фотодинамическую терапию раковых и иных заболеваний, фотоповреждение кожных покровов, фотодинамические и фотоинформационные процессы.

6. На основе исследования тушения люминесценции *02 водорастворимыми соединениями, входящими в состав живых клеток установлено, что наиболее активны белки, некоторые аминокислоты (триптофан, гистидин), полисахариды, восстановленные пиридин-нуклеотиды и аскорбат, который может играть роль протектора насыщенных водой компонентов хлоропластов от окисления '02. Указанные вещества отвечают за существенное сокращение времени жизни и дальности пробега молекул '02 в цитоплазме и водных компонентах живых клеток.

7. Показано, что стационарная концентрация триплетных молекул хлорофилла коррелирует со скоростью фотодеструкции хлорофилла в хлоропластах и листьях нормальных и мутантных растений, существенно различавшихся по фотоустойчивости, что соответствует представлению об определяющей роли триплетных молекул хлорофилла и 'Ог в фотодеструкции пигментного аппарата хлоропластов. Защитная функция каротиноидов в хлоропластах растений, по-видимому, определяется преимущественно их способностью тушить триплетные молекулы хлорофилла, а не 'Ог. Полученные данные свидетельствуют о том, наиболее вероятными сенсибилизаторами образования 'Ог в хлоропластах являются коротковолновые формы хлорофилла и протохлорофилл, тогда как длинноволновые формы хлорофилла существенно менее активны.

8. Показано, что фосфоресценция синглетного кислорода наблюдается при фотовозбуждении широкого круга объектов: от водных растворов пигментов до моделей мембран и целых клеток. Фотосенсибилизаторами образования 'Ог могут служить экзогенные и эндогенные красители разной структуры (порфирины, флавины, фурокумарины, фталоцианины, и другие). В тоже время показано, что целый ряд природных водорастворимых и липофильных соединений являются высокоактивными тушителями ]02 и участвуют в защите живых систем от повреждения 'Ог- Это позволяет полагать, что является естественным участником метаболизма живых клеток, а эффективность его образования и дезактивации имеет очевидное физиологическое значение. Методы, основанные на измерении фотосенсибилизированной фосфоресценции 'Ог, могут быть использованы для первичного тестирования фотосенсибилизаторов, перспективных для использования в био-, нано, и медицинских технологиях и фармакологии, например, при разработке эффективных лекарственных препаратов и методов опухолевой и антимикробной фотодинамической терапии.

Работа поддержана грантами Российского фонда фундаментальных исследований (96-03-34 100а, 98-03-32071а, 01-03-32821а, 04-03-32223а).

Автор выражает искреннюю благодарность и признательность своему консультанту профессору Александру Александровичу Красновскому, впервые в мировой практике измерившему фосфоресценцию фотосинтетических пигментов и люминесценцию синглетного кислорода в конденсированной среде. Именно благодаря его исследованиям и открытиям, усилиям по внедрению этих методов и разработке ряда разделов фотобиологии, фотохимии и фотофизики стало возможным настоящее исследование. С огромной благодарностью автор вспоминает своего первого научного руководителя академика Александра Абрамовича Красновского, общение с которым оказало определяющее влияние на формировании автора как исследователя и преподавателя высшей школы. Автор благодарит профессоров Феликса Федоровича Литвина и Андрея Борисовича Рубина за полезные замечания, советы и критику, высказанные при обсуждении работы. Автор благодарит Ю.В. Ковалева за многолетнее сотрудничество и помощь в измерениях фосфоресценции. Особую благодарность хотелось бы выразить профессору Б.Б. Дзантиеву и В.А. Русову, благодаря наставлениям и советам которых сформировался интерес автора к биологии и экспериментальной фотобиологии.

С огромной благодарностью автор вспоминает помощь и поддержку, оказанную автору Натальей Николаевной Дроздовой во время многолетней совместной работы в Институте биохимии им. А.Н. Баха РАН.

Автор выражает благодарность своим соавторам, совместно с которыми были проведены экспериментальные исследования, которые легли в основы настоящей работ, коллективам и руководству биологического факультета и кафедры физико-химической биологии Московского университета, Учебно-научного международного лазерного центра университета, Института биохимии РАН, оказавшим неоценимую помощь и поддерживавших автора в его работе. Эксперименты, проведенные в рамках данного исследования, были поддержаны грантами РФФИ, Международного научного фонда (18Р), предприятием «Флуор» (Беларусь). Автор благодарит Е.Г. Куреллу и Т.В. Пугачеву, а также профессора Б.Рёдер за совместную экспериментальную работу и за помощь, оказанную при проведении ряда измерений. Благодарю А.Ф. Миронова, А.Н. Нижника и Г.В. Пономарева за предоставление синтетических порфиринов, А. Майстера, X. Загромски и А. Фалуды-Даниель за семена мутантных растений.

283

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В результате наших исследований показано, что фосфоресценция '02 может обнаружена у широкого круга объектов, начиная от водных растворов пигментов и моделей мембран вплоть до целых клеток. Фотосенсибилизаторами образования '02 могут служить как эндогенные и экзогенные пигменты и красители, находящиеся в клеточных мембранах или растворенные в водной фазе (например, мономерные молекулы хлорофиллов, протохлорофилл, бактериохлорофиллы; водорастворимые порфирины, их ковалентные конъюгаты и полимеры, флавины, кинуренины, фурокумарины, лекарства, промышленные красители, фталоцианины и др.).

Полученные результаты также указывают на перспективность использования метода измерения фотосенсибилизированной фосфоресценции '02 для разработки тест-систем для отбора фотодинамических сенсибилизаторов и изучения их свойств. Широкий диапазон исследованных систем позволяет заключить, что предложенные методы могут представлять интерес для дальнейших фундаментальных исследований, а также для развития новых направлений в области изучения наноструктур и создания нанотехнологий (липосомы, мембранные структуры), при проектировании систем, работающих в условиях высокой освещенности или предназначенных для биологической или химической конверсии энергии света.

Хорошо известно, что в нативных живых системах возникновению и действию АФК препятствуют мощные фотопротекторные антиоксидантные системы и механизмы. Сюда можно отнести как механизмы, обеспечивающие высокий уровень эффективного преобразования оптической энергии по основному пути (например, при фотосинтезе - передача энергии возбуждения на реакционный центр и эффективная работа ЭТЦ), так и собственно фотопротекторы и антиоксиданты. Важно отметить, что эффективная работа биохимических машин клетки всецело зависит от сохранения и поддержания структурного порядка и целостности этих систем. Как показали измерения, проведенные с хлоропластами и листьями диких, мутантных и зеленеющих растений, генетические и структурные нарушения (отсутствие компонентов фотосистем, неполная сборка систем на ранних стадиях зеленения и т.п.) приводят к резкому росту выхода триплетного состояния хлорофилла, что, следовательно, пропорционально увеличивает выход и, как следствие, фотолабильность клеток. Одновременно, по-видимому, возрастает и выход других АФК за счет реакций с участием '02 и процессов типа I (Роо1е). Наши данные показывают, что фотогенерация !02, по-видимому, также может участвовать в действии фотодинамических гербицидов (протохлорофилл), фотоаллергических реакциях, возникать при фототоксических реакциях (флавины, птерины) и ряде других соединений, при развитии катаракты (кинуренины). Последнее подчеркивает, что использование оптических фотопротекторов, поглощающих ультрафиолет, и, возможно, лекарственных офтальмологических препаратов - тушителей !02 -важно для профилактики указанного заболевания.

Наши измерения, в согласии с данными других авторов, показали, что многие липо- и водорастворимые компоненты растительной клетки в той или иной мере участвуют в защите клеточных структур от фотоповреждения, выполняя функцию антиоксидантов. Среди таких соединений следует выделить каротиноиды и, как ни парадоксально, хлорофиллы и бактериохлорофиллы. Последние сочетают свойство эффективно генерировать '02 (квантовый выход около 70%), так и дезактивировать 102 с высокой активностью, близкой активности каротина. Среди водорастворимых соединений следует отметить соли аскорбата и восстановленные нуклеотиды, триптофан, гистидин, меланины и оммохромы, полипептиды, а-токоферол и ряд других. В то же время нами установлено, что защитное действие некоторых дипептидов (карнозин), по-видимому, не определяется их способностью тушить ]02, а вероятнее связано с другими свойствами таких соединений.

Для понимания взаимосвязи процессов возникновения '02 и его участия в повреждении живых клеток важным является тот факт, что время жизни тл (а, соответственно, и 1Л - дальность пробега '02 за это время) определены величиной этих параметров в воде - основном компоненте живых объектов. Время жизни '02 в Н20 существенно меньше, чем в большинстве известных растворителей и составляет по нашим оценкам 3,2±0,2 мкс, что близко к тл в липидах. Однако, высокоэффективные тушители *02 способны существенно сократить тл, ограничивая пробег '02 в определенных клеточных компартментах. Так расчеты, выполненные с использованием значений констант скоростей тушения '02 кд, полученных в нашей и других лабораториях [Красновский, мл., 1983-2004], показали, что 1Л в насыщенных эффективными фотопротекторами тилакоидах мембран хлоропластов и в цитоплазме близок или несколько выше толщины биомембраны, тогда как в воде и чистом липиде этот пробег, примерно, в 20 раз больше. Наиболее вероятно, что при коротком пробеге, мишенью '02 могут быть молекулы, находящиеся в ближайшей окрестности его возникновения (молекулы хлорофилла, каротиноиды, другие компоненты фотосинтетической системы). В связи с этим особенна важна способность каротиноидов и хлорофиллов тушить '02 без разрушения молекул тушителя (физический тип тушения).

Относительно высокий пробег '02 в водных и органических средах важен при рассмотрении фотосенсибилизированной генерации '02 для целей опухолевой и антимикробной ФДТ. В последнем случае краситель может быть адсорбирован на поверхности клеточной стенки или растворен в удалении от мембраны клетки, вызывая повреждение на расстоянии действия, производимого АФК (в частности, 'Ог). Наши измерения показали, что мономерные молекулы водорастворимых порфиринов эффективно генерируют 'Ог. Их ковалентные коньюгаты с моноклональными антителами к раковым антигенам также сохраняют высокую активность, что может быть использовано для повышения эффективности ФДТ. Важно отметить, что растворимые в воде димеры и олигомеры порфиринов в водной фазе почти не генерируют '02, тогда как в липидной фазе они высокоэффективны. Учитывая, что именно такие производные в настоящее время используются в ФДТ, этот факт важен для понимания механизма их фототоксического действия. Следует отметить, что перечисленные факты указывают на перспективность использования люминесцентного метода анализа 'СЬ для первичного отбора препаратов, перспективных для ФДТ, а также для повышения эффективности этого метода (например, при разработке методов ФДТ, основанных на прямом оптическом возбуждении молекул кислорода ИК-лазерами). Возможно, применение развитой в данном исследовании методологии к анализу действия слабых доз оптического излучения также окажется перспективным.

Значительный пробег 'Ог в водных растворах и мембранах подтверждает предположение о том, что эта возбужденная молекула может выполнять также функцию переносчика информации (медиатора) в живых клетках (Sies) [Klotz, Sies, 2002; 2003]. При этом важно, что ограниченность пробега 'СЬ десятками-сотнями нанометров определяет радиус дальнодействия этого медиатора, делая возможным передачу информации лишь в ограниченном пространстве вблизи источника 'Ог (фотосенсибилизатора или ферментативной или иной системы), локализованного, например, на внутренней поверхности мембраны клетки или клеточной органеллы.

Таким образом, среди изученных полифункциональных и широко распространенных биологически важных веществ многие способны сенсибилизировать образование или тушить х02, а некоторые сочетают эти свойства, а дальность пробега молекул ]02 говорит об их способности вызывать существенные повреждения. Можно считать, что уровень образования и дезактивации и триплетных молекул природных фотосенсибилизаторов является важной характеристикой биохимического и физиологического статуса живых клеток и тканей наравне с другими общепринятыми показателями. Целесообразно учитывать указанные характеристики при анализе устойчивости живых организмов к неблагоприятным воздействиям в условиях высокой освещенности, а также для характеристики вновь создаваемых генетически модифицированных клеток и организмов. Учитывая то, что фотосенсибилизированное образование '02 может существенно влиять на содержание активных форм кислорода в живых клетках, можно заключить, что фотозависимые процессы могут оказывать влияние на изменение и деградацию живых клеток, влияя на процессы жизнедеятельности и развития организмов, включая такие фундаментальные биологические процессы как апоптоз и феноптоз.

Важным фактом кажется то, что ключевые пигменты, отвечающие за преобразование энергии при фотосинтезе - хлорофиллы и бактериохлорофиллы - сочетают в себе способность генерации и тушения ]02. Можно предположить, что формирование фотосинтетического аппарата на основе пигментов с таким сочетанием свойств является важным фактом для понимания эволюции фотосинтеза. Таким образом, можно заключить, что {02, возникающий в процессе фотосенсибилизированных реакций, является вероятным фактором естественного отбора, а выработка устойчивости организмов к действию

0г участвовала в эволюции и формировании ряда клеточных структур современных представителей флоры и фауны.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Егоров, Сергей Юрьевич, 2007 год

1. Akhlynina T.V., Jans D.A., Rosenkranz A.A., Statsyuk N.V., Balashova 1.Y., Toth G., Pavo I., Rubin A.B., Sobolev A.S. Nuclear targeting of chlorine e6 enhances its photosensitizing activity//J. ofBiolog. Chem. 1997. Vol. 272. No. 33. P. 20328-20331.

2. Allen M. B. Absorption spectra, spectrophotometry and action spectra. In: Photophysiology. N. Y. 1964. Vol. I, h. 83-110.

3. Aloisi G. G., Elisei F., Moro S., Miolo G., Dall'Acqua F. Photophysical properties of the lowest excited singlet and triplet states of thio-and seleno-psoralens //Photochemistry and Photobiology. 2000. Vol. 75 P. 506513

4. Anderson I. C., Robertson D. S. Role of carotenoids in protecting chlorophyll from photodestruction. Plant Physics. 1960. Vol. 35. № 4. P. 531534.

5. Anderson S. M., Krinsky N. J., Stone M. J., Clagett D. C. Effect of singlet oxygen quenchers on oxidative damage to liposomes initiated by photosensitization or by radiofrequency discharge //Photochem. and Photobiol. 1974. Vol. 20. № l.P. 65-69.

6. Arnon D. I., Allen M. B., Whatley F. R. Photosynthesis by isolated chloroplasts. IV. General concept and comparison of three photochemical reactions// Biochim. et Biophys. Acta. 1956. Vol. 20. № 3. P. 449-461.

7. Arnon D. I., Chain R. K. Role of oxygen in ferredoxin-catalyzed cyclic phosporilation. // FEBS Letters. 1977. Vol. 82. № 2. P. 449-461.

8. Asada K., Kiso K., Yoshikawa K. Univalent redaction of molecular oxygen by spinach chloroplasts on illumination// J. of Biol. Chem. 1974. Vol. 249.№ 7. P. 2175-2171.

9. Aubry J. M., Rigandy J., Cuong N. K. Kinetic studies of self-sensitized photooxygenation in H20 and D20 of a water soluble rubren derivative. //Photochem. Photobiol. 1981. Vol. 33. № 2. P. 155-158.

10. Avron M. Photophosphorilation by swiss-chard chloroplasts// Biochim. et Biophys. Acta. 1960. Vol. 40. № 2. P. 257-272.

11. Axelsson L. The photostability of different chlorophyll forms in dark grown leaves of wheat. I. Stability to high intensity red light of forms appearing after photoreduction of photochlorophyllide// Physiol. Plantarum. 1976a. Vol. 38. № 4. P. 327-332.

12. Axelsson L. The photostability of different chlorophyll forms in dark grown leaves of weat. II. Reaction kinetics for the photodecomposition of the 684-form and 673-form. // Physiol. Plantarum. 1976b. Vol. 38. № 4. P. 333-336.

13. Axelsson L. The photostability of different chlorophyll forms in dark grown leaves of weat. // Physiol. Plantarum. 1981. Vol. 53. № 2. P. 131-138.

14. Axelsson L., Dahllen C., Ryberg H. The function of carotenoids during chloroplast development. V. Correlation between carotenoid content, ultra structure and chlorophyll bto chlorophyll aratio. // Physiol. Plantarum. 1982. Vol. 55. №2. P. 111-116.

15. Baker A., Kanofsky J.R. Direct observation off singlet oxygen phosphorescence at 1270 nm from LI270 leukemia cells exposed to protoporphyrin and light // ABB 1991.-Vol. 286. P. 70-75.

16. Ballou D., Palmer G., Massey V. Direct demonstration superoxide anion production during the oxidation of reduced flavin and of its catalytic decomposition by erythrocuprein// Biochem. Biophys. Res. Communs. 1969. Vol. 36. № 6. P. 898-904.

17. Barber J., Andersson B . Too much of a good thing: light can be bad for photosynthesis. // Trends Biochem. Sci. 2002. Vol. 17. P. 61-66.

18. Batzri S., Korn E.D. Single bilayer liposomes prepared without sonication // BBA. 1973. Vol. 298. P. 1015-1019.

19. Beier R. C., Oertly E. H. Psoralem and other linear furocoumarins as phytoalexins in celery.// Phytochem. 1983. Vol. 22. № 11. P. 2592-2597.

20. Bensasson R.V., Frederiksen J., Rougee M., Lexa D., Harrit N. Correlations between the rate constant of singlet oxygen quenching by imidazole derivatives and anti-inflammatory activity in rats.// Mol. Pharmacol. 1992. Vol. 42. P. 718-722.

21. Bilski P., Kukielczak B.M., Chegnell C.F. Photoproduction and direct detection of singlet molecular oxygen ('02) in keratinocytes stained with rose Bengal // Photoch. Photobiol. 1998. Vol. 66. P. 657-658.

22. Blokhina 0., Virolainen E., Fagerstedt K. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review. // Annals of Botany. 2003. Vol. 91. P. 179-194.

23. Blum H.F / Photodynamic action and diseases caused by light. 1964. NY: Hafner Publ. Co.

24. Bodannes R. C., Chan P. C. Ascorbic acid as scavenger or singlet oxygen. // FEBS Letters. 1979. Vol. 105. № 2, P. 195-196.

25. Boldyrev A.A., Severin S.E. Effects of carnosine, a specific component of striated muscle, on muscle and other tissues // Biomed. Sci. 1991. Vol.2. P. 91-94.

26. Boldyrev A.A., Kurella E.G., Stvolinsky S.L. Biological Role of carnosine metabolism in excitable tissues: speculations and facts //Patophysiology. 1994. Vol. 1. P. 215-219.

27. Borland, C.F.; McGarvey, D.J.; Truscott, T.G.; Codgell, R.J.; Land, E.J. Photophysical studies of bacteriochlorophyll-a and bacteriopheophytin-a— singlet oxygen generation // J. Photochem. Photobiol. B. Biol. 1987. Vol. 1. P. 93-101.

28. Bowers P. G., Porter G. Quantum Yields of triplet formation in solutions of chlorophyll // Proc. Roy. Soc. L. 1967. Vol. A296. P. 435-441.

29. Bradley D.G., Kim H.J., Min D.B. Effects, quenching mechanisms, and kinetics of water soluble compounds in riboflavin photosensitized oxidation of milk. // J Agric Food Chem. 2006. Vol. 54. P. 6016-6020.

30. Breton J., Mathis P. Mise en evidence de l'etal triplet de la chlorophyll dans des lamellas chloroplastiques. // Comptes Rendus Acad. Sc. D. 1970. Vol. 271. № 13. P. 1094-1096.

31. Britton G. Carotenoid biosynthesis in higher plant // Physiol. Veg. 1982,v.20, № 4, p. 735-755.

32. Brown S.B., Shillcock M., Jones P. Equilibrium and kinetic studies of the aggregation of porphyrins in. aqueous solution. // Biochem. J. 1976. Vol. 153. P. 279-285.

33. Butler W. L. Energy transfer in developing chloroplasts. //Biochem. Biophys. Res. Communs. 1960. Vol. 2. № 6. P. 419-422.

34. Butler W. L. Chloroplast development: energy transfer and structure. //Arch, of Bioch. and Biophys. 1961. Vol. 92. № 2. P. 287-295.

35. Butorina D.A., Bashtanov M.E., Krasnovsky A.A., Jr., Priezzev A.V. Effect of blood plasma on laser-excited singlet oxygen phosphorescence in aqueous buffer solutions of water-soluble porphyrins // SPIE Proceedings. 2000. Vol. 4001. P. 385-389.

36. Butorina D.N., Krasnovsky A.A., Jr., Bashtanov M.E., Egorov S.Yu., Prieszev A.V. Kinetics of laser-induced phosphorescence of singlet molecular oxygen in aqueous porphyrin solutions // SPIE Proceedings, 2001. Vol. 4241. P. 317-323.

37. Byteva I. M., Gurinovitch G. P. Sensitized luminescence of oxygen in solutions. //J. of Luminescence, 1979. Vol. 21. № 1. P. 17-20.

38. Byteva I. M., Gurinovitch G. P., Golomb O. L., Karpov V. V. Photosensitized luminescence of singlet oxygen in polymeric films. //Chem. Phys. Letters. 1983. Vol. 97. № 2. P. 167-169.

39. Callahan P.M., Cotton T.M. Assignment of bacteriochlorophyll a ligation state from absorption and resonance Raman spectra//JACS. 1987. Vol. 109. P. 7001-7005.

40. Cannistraro S., Van de Vorst A., Jori G. EPR studies on singlet oxygen, production by porphyrins.// Photochem. Photobiol. 1978. Vol. 28. P. 257.

41. Canti G., Ricci L., Ferrario A., Franco P., Marelli O., Andreoni A., Cubeddu R., Nicolin A. Photodynamic therapy in vitro and in vivo with hematoporphyrin derivative and laser // Neoplasma. 1987. Vol. 34. P. 61-66.

42. Carraro C., Pathak M.A. Studies on the nature of in vitro and in vivo photosensitization reactions by psoralens and porphyrins //J. Invest. Dermatol. 1988. Vol. 90. P. 267-275.

43. Chahidi C., Aubailly M., Momzikoff A., Bazin M. , Santus R. //Photochem. Photbiol. 1981. Vol. 33. P. 641-649.

44. Chauvet J. P., Villan F., Viovy R. Photooxidation of chlorophyll and pheophytin. Quenching of singlet oxygen and influence of the micellar structure. //Photochem. Photobiol. 1981. Vol. 34. № 5. P. 557-565.

45. Chou P.T., Khan A.U. L-ascorbic acid quenching of singlet delta molecular oxygen in aqueous media: generalized antioxidant property of vitamin C. // Biochem. Biophys. Res. Communs. 1983. Vol. 115. № 3. P. 932-937.

46. Chou P.T., Khan A.U. Solvation emission spectral peaks of singlet molecular oxygen. // Chem. Phys. Letters . 1984. Vol. 103. № 4. P. 281-284.

47. Chow W.S. Photoprotection and photoinhibitory damage // Adv. Molecular Cell. Biol. 1994. Vol. 10. P. 151-196.

48. Chuannong Z., Chi S., Deng J., Liang J,. Jori G., Milanesi C. Apoptosis of mouse MS-2 fibrosarcoma cells induced by photodynamic therapy with Zn(II)-phthalocyanine // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 1996. Vol. 33. P. 219-223.

49. Cox G., S., Bobillier C., Wihtten D. G. Photooxidation and singlet oxygen sensitization by protoporphyrin IX and its photooxidation products. // Photochem. and Photobiol. 1982. Vol. 36. № 4. P. 401-407.

50. Critchley C. Studies on the mechanism of photoinhibition in higher plants, I. Effects of high light intensity on chloroplast activities in cucumber adapted to low light // Plant Physiol. 1981. Vol. 67. № 6. P. 1161-1165.

51. Crute J. J., Warn A. F., Bambara R. A., Murant R. S., Gipson S. L., Hils R. Inhibition of mammalian DNA-polymerase by hematoporphyrin derivative and photoradiation // Cancer Research. 1986. Vol. 46. P. 153-159.

52. Dahl T.A., Midden W.R., Hartman P.E. Some prevalent biomolecules as defenses against singlet oxygen damage // Photochem. Photobiol. 1988. Vol. 47. P. 357-362.

53. Dairou J., Vever-Bizet Ch., Daniel B. Self-association of disulfonated deuteroporphyrin and its esters in aqueous solution and photosensitized production of singlet oxygen by the dimers // Photochemistry and Photobiology. 2002. Vol. 75. P. 229-236.

54. Daub M. E., Hangarter R. P. Light-induced production of singlet oxygen and superoxide by the fungal toxin, cercosportin. // Plant Physiol. 1983. Vol. 73. №3. P. 855-857.

55. D'Auria M., Bonini C., Emanuele L., Ferri R. Singlet oxygen-mediated degradation of lignin Isolation of oxidation products from steam-exploded lignin from straw // Journal of Photochemistry and Photobiology A: Chemistry. 2002. Vol. 147. P. 153-156.

56. Davila J.; Harriman A. hotoreactions of macrocyclic dyes bound to human serum albumin //Photochem. Photobiol. 1990. Vol. 51. P. 9-19.

57. De Mol N. G., Beijerbergen van Henegouwen G. M. J. Relation between some photobiological properties of furocoumarins and their extent of singlet oxygen production. // Photochem. and Photobiol. 1981. Vol. 33. № 6. P. 815-820.

58. Dedic R., Svoboda A., Psenchik J., Lupinkova L., Komenda J., Hala J. Time and spectral resolved phosphorescence of singlet oxygen and pigments in photosystem II particles // Journal of Luminescence. 2003. Vol. 102-103. P. 313-317.

59. Devasagayam T.P.A., Werner T., Ippendorf H., Martin H.D., Sies H. Synthetic carotenoids, novel polyene polyketones and new capsorubinisomers as efficient quenchers of singlet molecular oxygen //Photochem. Photobiol. 1992. Vol. 55. P. 511-514.

60. Dhinsa R. S., Plumb- Dhinsa P.L., Reid D. M. Leaf senescence and lipid peroxidation: effects of some phytohormones and scavengers of free radicals and singlet oxygen. // Physiol. Plantarum. 1982. Vol. 56. № 4. P. 453457.

61. Dillon J., Spector A., Nakanishi K. Identification of P-carbolines isolated from fluorescent human lens proteins // Nature. 1976. Vol. 259. P. 422423.

62. Dougherty T. J. Photodynamic therapy // Photo-dynamic Therapy of Tumors and Other Diseases. 1985. Eds G. Jori., CPerria (Padova: Libreria Progetto) P. 267-279.

63. Dougherty T. J. Photosensitizers. Therapy and detection of malignant tumors //Photochemistry and Photobiology. 1987a. Vol. 45. P. 879889.

64. Dougherty T. J., Kaufman J. E., Goldfarb A., Weishaupt K R., Boyle D., Mittleman A. Photoradiation therapy for treatment of malignant tumors // Cancer Research. 1978. Vol. 38. P. 2626-2635.

65. Dougherty T. J., Potter W. R., Weishaupt K. R., An overview of the status of photoradiation therapy // Porphyrin Localization and Treatment of Tumors. 1984 Eds D. R. Doiron., C. J. Gomer. New York: Alan Liss. P. 301.

66. Dougherty, T. J. Studies on the structure of porphyrins contained in Photofrin II. // Photochem. Photobiol. 1987b. Vol. 46. P. 569-573.

67. Eales L. Porphyrins in clinical chemistry // The Porphyrins. 4. Physical Chemistry. Part B. 1979, Ed. D Dolphin. New York: Academic Press. P. 665-802.

68. Egorov S.Yu. and Krasnovsky A.A., Jr. Direct luminescence study of singlet molecular oxygen in systems of biological importance // Abstracts of the 11th Int. Congress on Photobiology. Kyoto. Japan. Sept. 7-12. 1992. -Kyoto: 1992. P. 261.

69. Egorov S.Yu. and Krasnovsky A.A., Jr. Laser-induced luminescence of singlet molecular oxygen. Generation by drugs and pigments of biological importance // SPIE Proceedings (Laser Applications in Life Sciences). 1990. Vol. 1403. P. 611-621.

70. Egorov S.Yu. and Krasnovsky A.A., Jr. Photogeneration of singlet molecular oxygen by plant cell pigments under laser pulses // Proceedings of XV Int. Pigment Cell Conference. London. 26-30 September, 1993. -London: 1993. P. 219.

71. Egorov S.Yu., Krasnovsky A.A., Jr. Generation of Singlet Molecular Oxygen ('02) by Monomeric and Aggregated Forms of Porphyrin // The International Conference on Photodynamic Therapy. 1989. Bulgaria. Sophia. Book of Abstracts. -Sophia: 1989. P. 191p.

72. Ehrenshaft M.,- Chung K-R., Jenns A.E., Daub M.E. Functional characterization of SOR1, a gene required for resistance to photosensitizing toxins in the fungus Cercospora nicotianae // Curr. Genet. 1999. Vol. 34. P. 478^85.

73. El-Agamey A., Love G.M., McGarver D.J., Martensen A., Phillip D.M., Truscott T.G., Young A.J. Carotenoid radical chemistry and antioxidant/pro-oxidant properties // Arch. Biochem. Biophys. 2004. Vol. 230. P. 37-48.

74. Emiliani C., Delmelle M. The lipid solubility of porphyrins, modulates their phototoxicity in membrane models // Photochem. Photobiol. 1983. Vol. 37. P. 487-490.

75. Engvall E. Enzyme immunoassay: ELISA and EMIT // Methods in Enzymology. 1980. Vol. 70. P. 413-439.

76. Epstein J.H. Phototoxicity and photoallergy //Semin. Cutan. Med. Surg. 1999. Vol. 18. P. 274-284.

77. Fabo E. On the nature of the blue-light photoreceptor: still an open question. // Blue-light syndrom. H. Senger ed. Berlin. 1980. P. 185-204.

78. Faludi-Daniel A., Amesz J., Nagy A. H. P 700 oxidation and energy transfer in normal maize and carotenoid-deficient maize. // Biochim. et Biophys. Acta. 1970. Vol. 197. № 1. P. 60 68.

79. Faludi-Daniel A., Nagy A. H. Lability of photosystem II in chloroplasts of carotenoid deficient maize leaves. // Proceedings of the 2nd international congress on photosynthesis research. Stresa,1971. Hauge. 1972. Vol.2. P. 1653 1658.

80. Faludi-Daniel A., Nagy A. H., Nagy A. The ratio of chlorophyll a to chlorophyll b in normal and mutant maize leaves. //Acta Botanica Academiae Scientiarum Hungaricae. 1968. Vol. 14. № 1 2. P. 17 - 27.

81. Firey P. A., Jones T.W., Jori G., Rodgers M.A.J. Photoexcitation of zinc phthalocyanine in mouse myeloma cells: observation of triplet states but not of singlet oxygen// Photochem. Photobiol. 1988. Vol. 48. P. 357-360.

82. Flint S. D., Jordan P. W., Caldwell M. M. Plant protective response to enhanced UV-B radiation under field conditions: leaf optical properties and photosynthesis. // Photochem. and Photobiol. 1985. Vol. 41. № 1. P. 95 99.

83. Foote C. S. Mechanism of photosensitized oxidation // Science. 1968. Vol. 162. № 3857. P. 963 970.

84. Foote C. S. Quenching of singlet oxygen. // Singlet oxygen. N. Y. 1979. P. 139-173.

85. Foote C. S., Chang Y. C., Denny R. W. Chemistry of singlet oxygen. X. Caratenoid quenching parallels biological protection. // J. Amer. Chem. Soc. 1970. Vol. 92. № 17. P. 5216 5218.

86. Foote С. S., Ching Т. -Y., Geller G. G. Chemistry of singlet oxygen, XVIII. Rates of reaction and quenching of a-tocopherol and singlet oxygen. // Photochem. and Photobiol. 1974. Vol. 20. № 6. P. 511 513.

87. Foote C. S., Denny R. W. Chemistry of singlet oxygen, VII. Quenching by p- carotene. // J. Amer. Chem. Soc. 1968. Vol. 90. № 22. P. 6233 -6235.

88. Foote C. S., Wexler S. Singlet oxygen. A probable intermediate in photosensitized autooxidation. // J. Amer. Chem. Soc. 1964. Vol. 86. № 18. P. 3880-3881.

89. Foote C.S., Definition of Type I and Type II Photosensitized Oxidation // Photochem. Photobiol. 1991. Vol. 54. P. 659.

90. Foote C. S. Light, oxygen and toxicity // Pathology of Oxygen. 1982. Ed. A Prator. New York: Academic Press. P. 21-44.

91. Foote, C.S. Photosensitized oxygenations and the role of singlet oxygen. //Acc. Chem. Res. 1968. Vol. 1. P. 104-110.

92. Foyer C., Rowell J., Walker D. Measurement of the ascorbic acid content of spinach leaf protoplasts and chloroplasts during illumination // . Planta. 1983. Vol. 157. № 3. P. 239 244.

93. French C. S., Young V. K. The fluorescence spectra of red algae and the transfer of energy from phycoerethrin to phycocyanin and chlorophyll. J. Gen. Physiol., 1951. Vol. 35, № 6, p. 873 890.

94. Friemel H., Brock J. / Grunlagen der Immunologic 1983. Berlin: Academie-Verlag. P. 49.

95. Fritz B. J., Ninnemann H. Photoreactivation by triplet flavin and photoinactivation by singlet oxygen of Neurospora crassa nitrate reductase. // Photochem. Photobiol. 1985. Vol. 20. № 41. P. 39 45.

96. Furbank R. T., Badger M. R., Osmond C. B. Photoreduction of oxygen in mesophyll chloroplasts of C4 plants. A model system for studing an vivo Mehler reaction. // Plant Physich 1983. Vol. 73. № 4. P. 1038 1041.

97. Furhob J. H. Smith K. M. / Porphyrins and metalloporphyrins. 1975. Ed. by K. M. Smith. Amsterdam. P. 771-810.

98. Galland, P. H. Senger. Flavins as possible blue-light photoreceptors, // G. H. Holmes (ed.). Photoreceptor evolution and function. 1991. London: Academic Press. P. 65-124.

99. Gantchev T, Gotchev G, Shopova M Hematoporphyrin type I (free radical) photosensitizing reactions in liposomes.// Stud Biophys. 1989. Vol. 131. P. 7-20.

100. Ghosh S. K. Destruction of chlorophyll in rice necrosis mosaic virus infected rice leaves // Indian J. Microbiol. 1982. Vol. 22. P. 37-40.

101. Goedheer J. C. Effect of changes in chlorophyll concentration of photosynthetic properties. I. Fluorescence and absorption of greening bean leaves. // Biochim. et Biophys. Acta. 1961. Vol. 57. № 3. P. 494 504.

102. Goodwin T. W. The biochemistry of carotenoids. London, N. Y.: Chapman and Hall. 1980. Vol. 1. 377 C.

103. Goosey J.D., Zigler J.S., Jr., Kinoshita J.H. Cross-linking of lens crystallins in a photodynamic system: a process mediated by singlet oxygen //Science. 1980. Vol. 208. P. 1278-1280.

104. Gorman A. A., Rodgers M. A. J. Lifetime and reactivity of singlet oxygen in aqueous micellar system: a pulsed nitrogen laser study. // Chem. Phys. Letters. 1978. Vol. 55. № 1. P. 152 154.

105. Gorman A. A., Rodgers M. A. Singlet molecular oxygen // Chem. Soc. Rev. 1981. Vol. 10. № 2. P. 205 231.

106. Grossweiner L. I., Blum A., Goyal G. C. Photophysics and photochemistry of hematoporphyrin., hematoporphyrin derivative and uroporphyrin I // Methods in Porphyrin Photosensitization 1985. Ed. D. Kessel. New York: Plenum Press. P. 181-192.

107. Gurinovich G. P., Salokhiddinov K. I. Luminescence of singlet oxygen generated in fluorescence quenching of aromatic molecules in solution. // Chem. Phys. Letters. 1982. — Vol. 85. № 1. P. 9 -11.

108. Hader, D.-P., Brodhun. B. // J. Plant Physiol. 1991. Vol. 137. P. 641-646.

109. Hall D. O. Nomenclature for insolated chloroplasts. // Natur. New Biology. 1972,

110. Halliwell B. Ascorbic acid and illuminated chloroplasts. In: Ascorbic acid: chemistry, metabolism and uses. //Advances in chem. series. P. A. Seib, H. Tolbert eds. Washington: 1982. Vol. 200. P. 263 274.

111. Hanamoto C.M., Castelfranco P.A. Separation of Monovinyl and Divinyl Protochlorophyllides and Chlorophyllides from Etiolated and

112. Phototransformed Cucumber Cotyledons // Plant. Physiol. 1983. Vol. 73. №1. P. 79-81.

113. Hanasaki Y., Ogawa S., Fukui S. The correlation between active oxygens scavenging and antioxidative effects of flavonoids.// Free Radic. Biol. Med. 1994. Vol. 16. P. 845-850.

114. Harvaux M., Kloppstech K. The protective functions of carotenoid and flavonoid pigments against excess visible radiation at chilling temperature investigated in Arabidopsis npq and tt mutants. // Planta. 2001. Vol. 213. P. 95366.

115. Hasan, T., Ortel, B., Moor, A. C. E., Pogue, B.W. Photodynamic Therapy Of Cancer //Holland Frei Cancer Medicine. 2003 .BC Dekker Inc. Capter 40. P. 605-622.

116. Hasselt P. P., Berlo H. A. C. Photooxidative damage to photosynthetic apparatus during chilling // Physiol. Plantarum. 1980. Vol. 50. № l.P. 52-56.

117. Hasty N., Merkel P. B., Randlick P., Kearns D. R. Role of azide in singlet oxygen reactions: reaction of azide with singlet oxygen. // Tetrahedron Letters. 1972. Vol. 13. № 1. P. 49 52.

118. Havaux M., Tardy F. Thermostability and photostability of photosystem II in leaves of the chlorina-f2 barley mutant deficient in light-harvesting chlorophyll a/b protein complexes //Plant Physiol. 1997. Vol. 113. P. 913-923.

119. Heath R. L., Packer L. Photoperoxidation in isolated chloroplasts. I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Arch. Biochem. and Biophys., 1968. Vol. 125, № 1, p. 189 198.

120. Heber U. Freezing injury and uncoupling of phosphorylation from electron transport in chloroplasts // Plant Physiol. 1967. Vol. 42. P. 1343-1350.

121. Heber U., Bilger W., Bligny R., Lange O.L. Phototolerance of lichens, mosses and higher plants in an alpine environment: analysis of photoreactions // Planta. 2000. Vol. 211. P. 770-780.

122. Heber U. Irrungen, Wirrungen? The Mehler reaction in relation to cyclic electron transport in C3 plants // Photosynthesis Research. 2002. Vol. 73. P. 223-231.

123. Heber U., Lange O.L., Shuvalov V.A. Conservation and dissipation of light energy as complementary processes: homoiohydric and poikilohydric autotrophs. // J Exp Bot. 2006. Vol. 57. P. 1211-23.

124. Heelis, P., Kim. S.-T., Okamura, T., Sancar, A. The photo repair of pyrimidine dimers by DNA photolyase and model systems // J. Photochem. Photobiol B: Biol. 1993. Vol. 17. P. 219-228.

125. Hideg E., Ogawa K., Kalai T., Hideg K. Singlet oxygen imaging in Arabidopsis thaliana leaves under photoinhibition by excess photosynthetically active radiation // Physiologia Plantarum. 2001. Vol. 112P. 10-14.

126. Hillemanns P., Weingandt H., Baumgartner R., Diebold J., Xiang W., Stepp H Photodetection of cervical intraepithelial neoplasia using 5-aminolevulinic acid-induced porphyrin fluorescence // Cancer. 2000. Vol. 88. P. 2275-2282.

127. Hohl. N., Galland. P., Senger, H Altered flavin patterns in photobehavioral mutants of Phycomyces blakesleeanus.// Photochem. Photobiol. 1992b. Vol. 55. P. 247-255.

128. Hohl. N., Galland. P., Senger, H. Altered pterin patterns in photobehavioral mutants of Phycomyces blakesleeanus // Photochem. Photobiol. 1992a. Vol. 55. P. 239-245.

129. Horvath G., Faludi-Daniel A. Formation and compartmentation of leaf carotenoids in normal and mutant maize. // Proceedings of the 2nd international congress on photosynthesis research. Stresa, 1971. Hauge, 1972. Vol. 3. P. 2443-2449.

130. Houssier C., Sauer K. Optical properties of the protochlorophyll pigments I. Isolation, characterization, and infrared spectra //BBA. 1969. Vol. 182. №3. P. 476-491.

131. Hurst J. R., McDonalds J.D., Schuster C. B. Lifetime of singlet oxygen in solution directly determined by laser spectroscopy // J. Amer. Chem. Soc. 1982. Vol. 104. № 7. P. 2065 2067.

132. Imbrie C. W., Murphy T. M., Mechanism of photoinactivation of plant plasma membranes ATP-ase // Photochem. and Photobiol. 1984. Vol. 40. № 2. P. 243 248.

133. Iriyama K., Ogura N., and Takamiya A.A Simple Method for Extraction and Partial Purification of Chlorophyll from Plant Material, Using Dioxane //J. Biochem (Tokyo). 1974. Vol. 76. P. 901-904.

134. Ito T. Cellular and subcellular mechanisms of photodynamic action: the 102 hypothesis as a driving force in recent research. // Photochem. Photobiol. 1978. Vol. 28. № 4/5. P. 493 508.

135. Jen J. J., Mackinney G. On the photodecomposition of chlorophyll in vitro. II. Intermediates and breakdown products. // Photochem. and Photobiol. 1970a. Vol. 11. №5. P. 303 -308.

136. Jen J. J., Mackinney G. On the photodecomposition of chlorophyll in vitro. I. Reaction rates. // Photochem. and Photobiol. 1970b. Vol. 11. № 5. P. 277 302.

137. Jenny T. A., Turro N. J. Solvent and deuterium isotope effects on the lifetime of singlet oxygen determined by direct emission spectroscopy at 1.27 mem. // Tetrahedron Letters. 1982. Vol. 23. № 29. P. 1923 2926.

138. Jones L. W., Kok B. Photoinhibition of chloroplast reaction. I. Kinetics and action spectra. // Plant. Physiol. 1966. Vol. 41. № 6. P. 1037 -1043.

139. Jori G., Brown S.B. Photosensitized inactivation of microorganisms // Photochem. Photobiol. Sci. 2004. Vol. 3 . P. 403-405.

140. Juzeniene A., Juzenas P., Ma L.W, Iani V., Moan J. Topical application of 5-aminolaevulinic acid, methyl 5-aminolaevulinate and hexyl 5-aminolaevulinate on normal human skin. // Br. J. Dermatol. 2006. Vol. 155. P. 791-799.

141. Kalyanasundaram K., Neumann-Spallart M. Photophysical and redox properties of water-soluble porphyrins in aqueous media // J. Phys. Chem. 1982. Vol. 86. P. 5163-5169.

142. Kandler O., Sironval C. Photooxidation processes in normal green Chlorella cells. II Effects of metabolism. // Biochim. et Biophys. Acta. 1959. Vol. 33. № l.P. 207-215.

143. Kanofsky J. R. Near infra-red emission in the catalase-hydrogen peroxide system: a reevalution. // J. Amer. Chem. Soc. 1984. Vol. 106. № 15. P. 4277 4278.

144. Kanofsky J.R. Quenching of singlet oxygen by human plasma // Photohem.Photobiol. 1990. Vol.51 No. 33. P. 299-303.

145. Kanofsky J.R. Quenching of singlet oxygen by human red cell ghosts // Photochem. Photobiol. 1991. Vol. 53.No. 1. P. 93-99.

146. Kanofsky J.R., Sima P. Singlet oxygen production from the reactions of ozone with biological molecules.// J. Biol. Chem. 1991. Vol. 266. P. 9039-9042.

147. Kats J. J., Norris J. R., Shipman L. L. Models for reaction-center and antenna chlorophyll. In: Chlorophyll proteins, reaction-center and photosynthetic members. J. M. Olson,G., Hind eds. N. Y.: Upton. 1976. P. 1655.

148. Kats J. J., Shipman L. L., Norris J. R. Structure and function of photoreaction center chlorophyll. // Chlorophyll organization and energy transfer in photosynthesis. Amsterdam. 1979. P. 1-34.

149. Kaufman S., Singletterry C. R. The critical range for formation by an oil-dispersible soap in hydrocarbon solvent. // J. Colloid. Sci. 1952. Vol. 7. № 5. P. 453-464.

150. Keene J.P., Kessel D., Land E.J., Redmond R.W., Truscott T.G. Direct detection of singlet oxygen sensitized by haematoporphyrin and related compounds // Photochem. Photobiol. 1986. Vol. 43. P. 117-120.

151. Kessel D. Hematoporphyrin and HPD: photophysics, photopchemistry and phototheraphy// Photochem. and Photobiol., 1984. Vol. 39, №6, p. 851 -859.

152. Kessel D. Porphyrin localizing phenomena // Advanced Experimental Medicine. 1983. Vol. 160. P. 115-127.

153. Kessel D. Sites of photosensitization by derivatives of hematoporphyrin // Photochemistry and Photobiology. 1986. Vol. 44. P. 489494.

154. Kessel D., Choi T. H. Tumor-localizing components of the porphyrin preparation hematoporphyrin derivatives // Cancer Research. 1983. Vol. 43. P. 1994-1999.

155. Khan A. U. Enzyme system generation of singlet (.Ag) molecular oxygen observed directly by 1.0 1.8 |um luminescence spectroscopy. // J of Amer. Chem. Soc. 1983. Vol. 105. № 24. P. 7195 - 7197.

156. Khan A. U. Theory of electron transfer generation and quenching of singlet oxygen ('X+g and 'Ag) by superoxide anion. The role of water in the dismutation of* 0"2 //J. Amer. Chem. Soc. 1977. Vol. 99. № 2. P. 370 371.

157. Khan A. U., Gebauer P., Hager P. Chloroperoxidase generation of singlet ('Ag) molecular oxygen observed directly by spectroscopy in the 1-to 1.6 \m region. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. Vol. 80. № 17. P. 5195 -5197.

158. Khan A. U., Kasha M. Direct spectroscopic observation of singlet oxygen emission at 1268 nm excited by sensitizing dues of biological interest in liquid solution // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1979. Vol. 76. № 12. P. 6047 -6049.

159. Khavari-Nejad R.A., Inactivation of ribulose-l,5-hiphosphate carboxylase by flavin mononucleotid in light // Photosynthetica, 1984. Vol. 18. № 3. P. 350- 356.

160. Klimov V.V. Discovery of pheophytin function in the photosynthetic energy conversion as the primary electron acceptor of Photosystem II // Photosynthesis Research, 2003. Vol. 76. P. 247-253.

161. Klimov V.V., Krasnovsky A.A. Pheophytin as the primary electron acceptor in Photosystem II reaction centers // Photosynthetica. 1981. Vol. 15: P. 592-609.

162. Klotz L.O. Oxidant-Induced Signaling: Effects ofPeroxynitrite and Singlet Oxygen // Biol. Chem. -2002. Vol. 383. -P. 443 - 456.

163. Klotz L.O., Kroncke K.D., Sies H. Singlet oxygen-induced signaling effects in mammalian cells //Photochem. Photobiol. Sci. 2003. Vol. 2. P. 88-94.

164. Knowles A., Mautner G. N. The flavin-sensitized photooxidation of nucleotides. // Photochem. and Photobiol. 1972. Vol. 15. № 2. P. 199 207.

165. Knox J.P., Dodge A. D. Singlet oxygen and plants. // Phytochemistry. 1985. Vol. 24. № 5. P. 889 896.

166. Kobayashi K. Effect of sodum azide on the photodynamic induction of genetic changes in yeast. // Photochem. Photobiol. 1978. Vol. 28. № 4/5. P. 535 538.

167. Koch J. L., Oberlander R. M., Tamas I. A., Germain J. L., Ammodson D. B. S. Evidence of singlet oxygen participation in the chlorophyll-sensitized photooxidation of indoleacetic acid. // Plant Physiol. 1982. Vol. 70. №2. P. 414-417.

168. Koenig F., McGovern F.J., Larne R., Enquist H., Schomacker K.T., Deutsch T.F. Diagnosis of bladder carcinoma using protoporphyrin IX fluorescence induced by 5-aminolaevulinic acid. // BJU Int. Vol. 1999. Vol. 83. P. 129-135.

169. Kohen R., Misgav R., Ginsburg I. The SOD like activity of copper: carnosine, copper: anserine and copper : homocarnosine complexes // Free Rad. Res. Com. 1991. Vol. 12-13. P. 179-185.

170. Kohl F. G. Untersuchungen über das Carotin und sein physiologische Bedeutung in der Pflanze. Berlin: Gedruder Borntrager. 1902. P. 9-11.

171. Koka P., Song P.-S. Protection of chlorophyll aby carotenoid from photodynamic decomposition. //Photochem. Photobiol. 1978. Vol. 28. № 4/5. P. 509-516.

172. Kolnhäuser A. Molecular Aspects of Phototoxicity //Annals of the New York Academy of Sciences. 1980. Vol. 346. P. 398-414.

173. Kovalev D., Gross E., Ktinzner N., Koch R., Timoshenko V.Yu., Fujii M. Resonant Electronic Energy Transfer from Excitons Confined in Silicon Nanocrystals to Oxygen Molecules // Physical Review Letters. 2002. Vol. 89, No 13. P. 137401-1—137401-4.

174. Kramarenko G.D., Hummel S.G., Martin S.M., Buettner G.R. Ascorbate Reacts with Singlet Oxygen to Produce Hydrogen Peroxide // Photochem. Photobiol. -2006. Vol. 82. - No. 6. -P. 1634-1637.

175. Kramer H., Mathis P. Quantum yield and rate of formation of carotenoid triplet state in photosynthetic structures. // Biochim. et Biophys. Acta. 1980. Vol. 593. № 2. P. 319 329.

176. Krasnovsky A. A., Jr. Delayed fluorescence and phosphorescence of plant pigments. // Photochem. Photobiol. 1982. Vol. 36. № 6. P. 433 441.

177. Krasnovsky A. A., Jr. Photoluminescence of singlet oxygen in pigment solution. // Photochem. and Photobiol. 1979. Vol. 29. № 1. P. 29 36.

178. Krasnovsky A. A., Jr. Quantum yield of photosensitized luminescence and radiative lifetime of singlet (.Ag) molecular oxygen in solutions. // Chem. Phys. Letters. 1981. Vol. 81. № 3. P. 443 445.

179. Krasnovsky A. A., Jr., Kagan V.E., Minin А.А. Quenching of singlet oxygen luminescence by fatty acids and lipids. Contribution of physical and chemical mechanisms. // FEBS Letters. 1983. Vol. 155. № 2. P. 233 236.

180. Krasnovsky A. A., Jr., Kovalev Yu.V., Egorov S.Yu. Singlet Oxygen and Photodestruction of Chloroplasts // Book of Abstracts of 16 Conference of FEBO/Moscow. 1983. P. 250.

181. Krasnovsky A. A., Jr., Lebedev N. N., Litvin F. F. Phosphorescence and Delayed fluorescence of chlorophyll and its precursors in solution, leaves and chloroplasts at 77*K. // Studia biophys. 1977. Vol. 65. № 2. P. 81 89.

182. Krasnovsky A.A., Jr. and Egorov S.Yu. Study of chlorophyll triplet state and singlet molecular oxygen involvement in chloroplast photodestruction // Photosynthesis Research. 1992. Vol. 3.34. No 1. P. 173.

183. Krasnovsky A.A., Jr. Singlet molecular oxygen in photobiochemical systems: IR phosphorescence studies // Membr. Cell Biol. 1998. Vol. 12. P. 665-690.

184. Krasnovsky A.A., Jr. Singlet molecular oxygen: mechanisms of formation and paths of deactivation in photosynthetic systems // Biophysics. Vol. 39. No. 2. P. 197-211.

185. Krasnovsky A.A., Jr., Egorov S.Yu. Quenching of singlet molecular oxygen by biomolecules in aqueous media // Proceedings of Laser Applications in Life Sciences-94, 26.06-2.07.1994, Minsk, Belarus. -Minsk: 1994. P. 21 IP.

186. Krasnovsky A.A., Jr., Sukhorukov V.L., Egorov S.Yu., Potapenko A. Ya. Generation and quenching of singlet molecular oxygen by furocoumarins. Direct luminescence measurements // Studia biophysica, 1986. Vol. 114. № 1-3. P. 149-158.

187. Krieger-Liszkay A. Singlet oxygen production in photosynthesis // J. Experim. Botany. 2005. Vol. 56. P. 337-346.

188. Krinsky N. I. Biological roles of singlet oxygen. //Singlet oxygen. Wasserman, R. W. Murray eds. N. Y. 1979 P. 597-641.

189. Krinsky N. I. The biological properties of carotenoids // Pure Appl. Chem. 1994. Vol. 66. P. 1003-1010.

190. Krinsky N. I. The protective function of carotenoid pigments. //Photophysiology. N. Y. 1968. P. 123-196.

191. Krinsky N.I. Carotenoids as antioxidants.//Nutrition. 2001. Vol. 17. P. 815-817.

192. Krinsky N.I., Yeum K.J. Carotenoid-radical interactions //Biochem. Biophys. Res. Commun. 2003. Vol. 305. P. 754-760.

193. Krishnamurthy M. Sutter J. R. Kinetic and Equilibrium Study of the Monomer-Dimer Reaction of Tetrakis-(p-(trimethylammonio)phenyl) porphinato.silver(III) in Aqueous Medium // Inorg. Chem. 1985. Vol. 24. P. 1943.

194. Lambert, C.R.; Reddi, E.; Spikes, J.D.; Rodgers, M.A.J.; Jori, G. The effects of porphyrin structure and aggregation state on photosensitized processes in aqueous and micellar media//Photochem. Photobiol. 1986. Vol. 44. P. 595-601.

195. Latimer P., Bannister T.T., Rabinovich E. Quantum yields of fluorescence of plant pigments. Science, 1956. Vol. 124, № 3222, P. 585- 586.

196. Lerman S., Mandal K., Misra B., Schechter A., Schenck J. Phototoxicity involving the ocular lens: in vivo and in vitro studies. // Photochem Photobiol. 1991. Vol. 53. P. 243-247.

197. Lin C., Robertson D.E., Ahmad M., Raibekas A.A., Jorns M.S., Dutton P. L., Cashmore A.R. Association of flavin adenine dinucleotide with the Arabidopsis blue light receptor CRY1 // Science. 1995. Vol. 269: P. 968-970.

198. Lindig B. A., Rodgers M. A. J. Laser photolysis studies of singlet molecular oxygen in aqueous micellar dispersions. // J. Phys. Chem. 1979. Vol. 83. № 13. P. 1683- 1688.

199. Lindig B. A., Rodgers M. A. J., Schaap A. P. Determination of the lifetime of singlet oxygen in D20 using 9,10-anthracenedipropionic acid, a water-soluble probe. // J. of Amer. Chem. Soc. 1980. Vol. 102. № 17. P. 55905593.

200. Lindig B.A., Rodgers M.A.J. Rate parameters for the quenching of singlet oxygen by water-soluble and lipid-soluble substrates in aqueous and micellar systems. //Photochem. Photobiol. 1981. Vol. 33. P. 627-634.

201. Macpherson, A.N., Telfer A., Barber J., Truscott T.G. Direct detection of singlet oxygen from isolated Photoystem II reaction centers // BBA. 1993. Vol. 1143. P. 301-309.

202. Maisch T., Szeimies R. Jori G., Abels Ch. Antibacterial photodynamic therapy in dermatology // Photochem. Photobiol. Sci. 2004. Vol. 3.P. 907-917.

203. Malkin S. Delayed luminescence. // Primary processes photosynthesis. Amsterdam. 1977. P. 349-431.

204. Manderfeld M.M., Schafer H.W., Davidson P. M., Zottola E.A. Isolation and identification of antimicrobial furocoumarins from parsley. //J. Food Prot. 1997. Vol. 60. P. 72-77.

205. Marsh K.L., Connolly J.S. Effects of solvent on the rate of bacteriochlorophyll a photo-oxidation // J. Photochem. 1984. Vol. 25. P. 183195.

206. Martin C.B., Wilfong E., Ruane P. , Goodrich R., Platz M. An action spectrum of the riboflavin-photosensitized inactivation of Lambda phage. //Photochem Photobiol. 2005. Vol. 81. P. 474-480.

207. Massey V., Palmer G., Ballou D. On the reaction of redused flavins and flavoproteins with molecular oxygen. // Flavins and flavoproteins. H. Kamin ed. Baltimore, London. 1971. P. 349-361.

208. Matheson I. B. C., Lee J. Chemical reaction rates of amino acids with singlet oxygen. // Photochem. and Photobiol. 1979. Vol. 29. № 5. P. 879881.

209. Mathews-Roth M. M., Wilson T., Fuijmori E., Krinsky N. Carotenoid chromophore length and protection against photosensitization. // Photochem. Photobiol. 1974. Vol. 19. № 3. P. 217-222.

210. Mathis P. Triplet-triplet energy transfer from chlorophyll "a" to carotenoids in solution and in chloroplasts. // Progress in photosynthesis research. Tubingen. 1969. Vol. 2. P. 818-822.

211. Mathis P. , Kleo. The triplet state of (3 -carotene and of analog polyenes of different length. // Photochem. Photobiol. 1973. Vol. 18. № 4. P. 343-346.

212. Mehler A. H. Studies on reaction of illuminated chloroplasts. I. Mechanism of the reduction of oxygen and other Hill reagents.// Arch. Biochem. and Biophys. 1951. Vol. 33. № 1. P. 65-67.

213. Mendes J., Casto-Poceiro J. Furocoumarins from Angelica pachycarpa.// Phytochem. 1983. Vol. 22. № 11. P. 2599-2601.

214. Merkel P. B., Kearns D. R. Radiationless decay of singlet oxygen in solution. An experimental and theoretical study of electronic-to-vibrational energy transfer.// J. Amer. Chem. Soc. 1972a. Vol. 94. № 21. P. 7244 7253.

215. Merkel P. B., Kearns D. R. Remarkable solvent effects on the lifetime of oxygen. //J. of Amer. Chem. Soc., 1972b. Vol. 94, № 3, P. 1029 -1030.

216. Merkel P. B., Nilsson R., Kearns D. R. Kearns D. R. Deuterium effect on singlet oxygen lifetime. A new test on singlet oxygen reactions. // J. Amer. Chem. Soc. 1972. Vol. 94. № 3. P. 1030 1031.

217. Merzlyak M.N., Hendry G.A.F. Free radical metabolism, pigment degradation and lipid peroxidation in leaves during Senescence // Proc.Royal.Soc.Edingurg. 1994. Vol. 102B. P. 459-471.

218. Merzlyak M.N., Solovchenko A.E., Smagin A.I., Gitelson A.A. Apple flavonolos during fruit adaptation to solar radiation: spectral features and technique for non-radiative assessment // J. Plant Physiol. 2005. Vol. 162. P. 151-160.

219. Mew D., Wat C. K., Towers G. H. N., Levy J. G. Photo-immunotherapy treatment of animal tumors with tumor-specific monoclonal antibody-hematoporphyrin conjugates // Journal of Immunological Methods. 1983. Vol. 130. P. 1473-1477.

220. Michaeli A., Feitelson J. Reactivity of singlet oxygen toward amino acids and peptides //Photochem. Photobiol. 1994. Vol. 59. P. 284-289.

221. Miflin B. J., Hageman R. H. Demonstration of photophosphorilation by maize chloroplasts. // Plant Physiol. 1963. Vol. 38. № l.P. 66-70.

222. Miller R. W., Rapp U. The oxidation of catechols by reduced flavins and denydrogenases, An electron spin resonance study of the kinetics and initial products of oxidation. // J. Biol. Chem. 1973. Vol. 248. № 17. P. 6048 6090.

223. Mishra R.K., Mishra N.P. , Kambourakis S., Orfanopoulos M., Ghanotakis D.F. Generation and trapping of singlet oxygen during strong illumination of a Photosystem II core complex // Plant Science. 1996. Vol. 115. P. 151-155.

224. Miskoski S., Garcia N.A. Influence of the peptide bond on the singlet molecular oxygen-mediated ('C^ 'Ag.) photooxidation of histidine and methionine dipeptides. A kinetic study. //Photochem. Photobiol. 1993. Vol. 57. P. 447-452.

225. Moan J. On the diffusion length of singlet oxygen in cells and tissues //J. Photochem. Photobiol. B. 1990. Vol. 6. P. 343-347.

226. Moan J. The photochemical yield of singlet oxygen from porphyrins in different states of aggregation // Photochem. Photobiol. 1984. Vol. 39. P. 445

227. Moan J., Christensen T., Somer S. The main photo-sensitizing components of hematoporphyrin derivative // Cancer Letters. 1982. Vol. 15. P. 161-166.

228. Moan J., Rimington C., Evensen J F., Western A. Binding of porphyrins to serum proteins // Methods in Porphyrin Photosensitization. 1985 Ed. D Kessel. New York: Plenum Press. P. 193-206.

229. Monger T. D., Parson W. W. Singlet-triplet fusion in Rhodopseudomones sphaeroides chromatophores. A probe of the organization of the photosynthetic apparatus. // Biochim. et Biophys. Acta. 1977. Vol. 460. №3. P. 393 -407.

230. Moore T, A., Song P.-S. A model for biological quantum conversion involving the photooxidative dephosphorilati on of menadiol diphosphate. // Photochem. Photobiol. 1969. Vol. 10. № 1. P. 13-22.

231. Muller-Breitkreutz K., Mohr H., Briviba K., Sies H. Inactivation of viruses by chemically and photchemically generated singlet molecular oxygen // J. Photochem. Photobiol. B. 1995. Vol. 3. P. 63-70.

232. Nagano T., Fridowich I. Does the xanthine oxidase reaction generate singlet oxygen? //Photochem. and Photobiol., 1985. Vol. 41, № 1, P. 33-37.

233. Niedre M. J., Yu C. S., Patterson M.S., Wilson B.C. Singlet oxygen luminescence as an in vivo photodynamic therapy dose metric: validation in normal mouse skin with topical amino-levulinic acid //British Journal of Cancer. 2005 Vol. 92. P. 298-304.

234. Niedre M., Patterson, Wilson B.C. Direct near-infrared luminescence detection of singlet oxygen generated by photodynamic therapy in cells in vitro and tissues in vivo // Photochem. Photobiol. 2002. Vol. 75. P. 382391.

235. Nilsson R., Merkel P. B., Kearns D. R. Unambiquous evidence for the participation of singlet oxygen ('Ag) in photodynamic oxydation of amino acids. // Photochem. and Photobiol. 1972. Vol. 16. № 2. P. 117-124.

236. Nonell S., Redmond R.W. On the determination of quantum yields for singlet molecular oxygen photosensitization // J. Photochem. Photobiol. 1994. Vol. 22. P. 171-182.

237. Nultsch W., Benedetti P. A., Gualtieri P. Microspectrophotometric investigation of photobleaching in Anabaena variabilis cells and heterocysts and its prevention by sodium azide. // Z. Pflanzenphysiol. 1983. Vol. 111. № 4. P. 327-332.

238. Osmond B., Badger M., Maxwell K., Bjorkman O., Leegood R. Too many photons: photorespiration, photoinhibition and photooxidation // Trends in Plant Science. 1997. Vol. 2. P. 119-121.

239. Ostrovsky M.A., Sakina N.L., Dontsov A.E. An antioxidative role of ocular screening pigments //Vision Res. 1987. Vol. 27. P. 893-899.

240. Paietta J., Sargent M. L. Modification of blue light photoresponses by riboflavin analogs in Neurospora crassa. // Plant Physiol. 1983. Vol. 72, № 3, P. 764-766.

241. Palozza P. , Serini S., Nicuolo F.D., Calviello G. Modulation of apoptotic signaling by carotenoids in cancer cells // Arch. Biochem. Biophys. 2004. Vol. 230. P. 104-109.

242. Parker J.G. Optical monitoring of singlet oxygen during photodynamic treatment of tumors // IEEE Circ. Devices Mag. 1987. №1. P. 1021.

243. Parker J.G., Stanbro W. D. Optical determination of collisional lifetime of singlet oxygen 02 ('02) in acetone and deuterated acetone. // J. Amer. Chem. Soc. 1982. Vol. 104. № 7. P. 2067 2069.

244. Parker J.G., Stanbro W. D. Optical determination of the rates of formation and decay of 02 ('02) in H20, D2O and other solvents. //J. of Photochem. 1984. Vol. 25. № 5. P. 545-547.

245. Parson W.W., Cogdell R.J. The primary biochemical reaction of bacterial photosynthesis // Biochim. et Biophys. Acta. 1975. Vol. 416. № l.P. 105 149.

246. Pasternack R.F., Huber P. R., Boyd P., Engasser G., Francesconi L., Gibbs E., Fasella P. , Venturo G. C. Hinds L. deC. On the agrégation of meso substituted water soluble porphyrins // J. Am. Chem. Soc. 1972. Vol. 94. P. 4511-4517.

247. Pathak M.A., Joshi P. C. Production of active oxygen species ('02 and 02".) by psoralens and ultraviolet radiation (320-400 nm). // Biochim Biophys Acta. 1984. Vol. 798. P. 115-126.

248. Patterson, M. S., B. C Wilson, R. Graff In vivo tests of the concept of photodynamic threshold dose in normal rat liver photosensitized by aluminum chlorosulphonated phthalocyanine. // Photochem. Photobiol. 1990. Vol. 51. P. 343-349.

249. Pavlov A.R., Revina A.A., Dupin A.M., Boldyrev A.A., Yaropolov A.I. The mechanism of interaction of carnosine with superoxide radicals in water solutions // Biochem. Biophys. Acta 1993. Vol. 1157. P. 304-312.

250. Percival M.P., Dodge A. D. Photodynamic effects of rosa Bengal on sentescent flax cotyledons. J. Experim. Bot.,1983. Vol. 34, № 138, P. 47 51.

251. Petering, H.G., Schmitt, J.A. Studies in Pterine Chemistry. I. 2-Amino-4-hydroxy-6- polyhydroxyalkylpterines// J. Am. Chem. Soc. 1949. Vol. 71. P. 3977-3981.

252. Peters G., Rodgers M.A. J. Single-electron transfer from NADH analogues to singlet oxygen.// Biochim. et Biophys. Acta. 1981a. Vol. 637. № 1. P. P. 43-52.

253. Peters G., Rodgers M.A. J. Time-resolved determination of deuterium isotope effects on 02('Ag) lifetimes of solutions. //J. Amer. Chem. Soc. 1981b. — Vol. 103. № 22. P. 6759-6761.

254. Pflederer, W. // Folates and Pterins (Blaksley, R. L., and Benkovich, S. G. eds.) 1985. Vol. 2. New York : Wiley Interscience. P. 43-114.

255. Pirie A. Glutathione peroxidase in lens and a source of hydrogen peroxide in aqueous humour // Biochem. J. 1965. Vol. 96. P. 244-253.

256. Poppe W., Grosswiner L.I. Photodynamic sensitization by 8-methoxypsoralen via singlet oxygen mechanism.-. Photochem. and Photobiol., 1975. — Vol. 22, № 5, P. 217- 219.

257. Potapenko A. Ya., Moshnin M. V., Krasnovsky A. A., Jr., Sukhorukov V. L. Dark oxidation of unsaturated lipids by the photooxidized 8-methoxypsoralen.// Z. Naturforsch. 1982. B. 37c. H. 1. S. 70-74.

258. Powles S. B., Bjorkman O. Photoinhibition of photosynthesis: effect on chlorophyll fluorescence at 77k in intact leaves and in chloroplast membranes of Nerium oleander. // Planta. 1982. Vol. 156. № 2. P. 97 -107.

259. Rabinovich H.D., Fridovich I. Superoxide radicals,superoxide dismutases and oxygen toxity in plants. // Photochem. and Photobiol. 1983. Vol. 37. № 6. P. 679-690.

260. Rajagopalan, K.V. Novel aspects of the biochemistry of the molybdenum cofactor// Adv. Enzymol. Rel. Areas Mol. Biol. 1991. Vol. 64. P. 215-290.

261. Rebeiz C. A., Montazer-Zouhoor A., Hopen H. J.,Wu S. M. Photodynamic herbicides: 1. Concept and phenomenology. // Enzyme Microb. Technol. 1984. Vol. 6. № 9. P. 390-401.

262. Reddi E., Jori G., Rodgers M. A. J., Spikes J. D. Flash-photolysis studies of hemato-and corpo-porphyrins in homogeneous and microheterogeneous aqueous dispersions. // Photochem. and Photobiol. 1983. Vol. 38. № 6. P. 639-645.

263. Roder B. Photosensitizing properties of phorbides // J Photochem Photobiol B. 1990. Vol. 5. P. 519-521.

264. Rodgers M.A.J., Snowden P. T. Lifetime of '(>2 in liquid water as determinated by time resolved infrared luminescence measurements. // J. of Amer. Chem. Soc. 1982. Vol. 104. № 20. P. 5541-5543.

265. Rooney M. L. Ascorbic acid as a photooxidation inhibitor. // Photochem. and Photobiol. 1983. Vol. 38. № 5. P. 619 -621.

266. Rosen H., Klebanoff S. Formation of singlet oxygen by the myeloperoxidase mediated antimicrobial system. // J.Biol.Chem. 1977. Vol. 252. P. 4803-4810.

267. Rougee M., Bensasson R.V., Land E.J., Pariente R. Deactivation of singlet molecular oxygen by thiols and related compounds, possible protectors against skin photosensitivity. //Photochem Photobiol. 1988. Vol. 47. P. 485-489.

268. Ryabchikov Yu.V., Belogorokhov I.A., Vorontsov A.S., Osminkina L.A., Timoshenko V.Yu., Kashkarov P. K. Dependence of the singlet oxygen photosensitization efficiency on morphology of porous silicon // Phys. Stat. Sol. 2007. In press.

269. Sa E Melo M.T., Averbeck D., Bensasson R.V., Land E.J., Salet C. Some furocoumarins and analogs: comparison of triplet properties in solution with photobiological activities in yeast. // Photochem Photobiol. 1979. Vol. 30. P. 645-651.

270. Sagromsky H. Ein Beitrag zur physiologichen Charakteriseierung von der chlorophyll b-freien Mutant von Hordeum vulgare. // Biochem. Physiol. Pflanzen. 1978. Bd. 173. H.2. S. 146-159.

271. Sanear A.J. Structure and function of DNA photolyase // Biochemistry. 1994. Vol. 33. P. 2-9.

272. Sarna T., Duleba A., Korytowski W., Swartz H. Interaction of melanin with oxygen.//Arch. Biochem. Biophys. 1980. Vol. 200. P. 140-148.

273. Sconfienza C., Van de Vorst A., Jory G. Type I and type II mechanisms in the photooxidation in presence and absence of sodium dodecyl sulphate micelles//Photochem. Photobiol. 1980. P. 351-357.

274. Scurlock R., Rougee M., Bensasson R.V. Redox properties of phenols, their relationships to singlet oxygen quenching and to their inhibitory effects on benzo(a)pyrene-induced neoplasia //Free Radical Res. Commun.1990. Vol. 8. P. 251-258.

275. Seki T., Nozu K., Kondo S. Differential causes of mutation and killing in Escherichia coli after psoralen plus light treatment: monoadducts and cross-links.//Photochem Photobiol. 1978. Vol. 27. P. 19-24

276. Senebier J. Experiences sur Taction de la lumiere solaire dans la vegetation. / Geneve: Magnet, 1788. 446 P.

277. Senger Y. The effect of blue light on plants and microorganisms. // Photochem. and Photobiol. 1982. Vol. 35. № 6. P. 911-920.

278. Sheel I.D., Perone V. B., Larkin P. L., Kupel R. F. The isolation and characterization of two phytotoxic furocoumarins (psoralens) from diseased celery.// Biochemistry. 1963. Vol. 2. № 5. P. 1127-1131.

279. Shibata V.A. Spectroscopic studies chlorophyll formation in intact leaves. //J. of Biochem. 1957. Vol. 44. № 3. P. 147-173.

280. Shimizu O., Watanabe J., Imakubo K. Photon-counting technique facilitates both time- and spectral-resolved measurements of near-IR emission ofsinglet oxygen ('Ag) in aqueous solution. // J. Physics Soc. 1997. Japan. Vol. 66. No l.P. 268-269.

281. Shuvalov V.A., Amesz J., Duysens L.N.M. Picosecond charge separation upon selective excitation of the primary electron donor in reaction center of Rhodopseudomonas viridisll // Biochim. et biophys. acta. 1986a. Vol. 851. P. 327-330.

282. Shuvalov V.A., Duysens L.N.M. Primary electron transfer reactions in modified reaction centers from Rhodobacter sphaeroides //Proc. Nat. Acad. Sci. US. 1986b. Vol. 83. P. 1690-1694.

283. Shuvalov V.A., Klevanik A. V., Sharkov F.V., Kryukov P. G., Bacon K.E. Pikosecond spectroscopy of photosystem I reaction centers // FEBS Letters. 1979. Vol. 107 . № 2. P. 313-316.

284. Shuvalov V.A., Klimov V.V. The primary photoreactions in the complex cytochrome-P890 P760 (bacteriopheophytin-760) of Chromatium minutissimum at low redoxpotentials//Biochim. et biophys. acta. 1976. Vol. 440. P. 587-599.

285. Shuvalov V.A., Yakovlev A.G. Coupling of nuclear wavepacket motion and charge separation in bacterial reaction centers // FEBS Letters. 2003. Vol. 540 P. 26-34.

286. Sielewiesiuk J. Chlorophyll photodestruction in biomolecular lipid membranes. // Studia Biophys. 1983. Vol. 96. № 2. P. 117-120.

287. Sironval C., Kandler O. Photooxidation processes in normal green Clorella cells. I. The bleaching process. // Biochim. et Biophys. Acta, 1958. Vol. 29, № 2, P. 359-368.

288. Sironval C., Michel-Wolwertz M. R., Madsen A. On the nature and possible functions of the 673- and 684- nm forms in vivo of chlorophyll // Biochim. Biophys. Acta. 1965. Vol. 94. P. 344-354.

289. Skvonsen E., Snyder J.W., Lambert J.D.C., Ogilby P. R. Lifetime and diffusion of singlet oxygen in a cell. // Phys. Chem. Lett. 2005. Vol. 109. P. 8570-8573.

290. Slawinska D., Slawinski J., Ciesla L. The inhibition of peroxyradical-induced chemiluminescence by melanins. // Physiol. Chem. Phys. Med. NMR. 1983. Vol. 15. P. 209-222.

291. Smirnoff N., Conklin P. L., Loewus F.A. Biosynthesis of ascorbic acid in plants: a renaissance. // Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology. 2001. Vol. 52. P. 437^167.

292. Sobolev A.S., Jans D.A., Rosenkranz A.A. Targeted intracellular delivery of photosensitizers//Progress in Biophysics & Molecular Biology. 2000. Vol. 73. P. 51-90.

293. Soh N. Recent advances in fluorescent probes for the detection of reactive oxygen species. // Anal Bioanal Chem. 2006. Vol. 386. P. 532-543.

294. Song P. -S. Chemistry of flavins in their exited state. // In: Flavins and flavoproteins. H. Kamin ed. Baltimore, London, 1971. P. 37-61.

295. Song P. -S. Spectroscopic and photochemical characterization of flavoproteins and caratenoproteins as a blue light photoreceptors. In: Blue-light syndrom. H. Senger sd. Berlin, 1980, P. 157-186.

296. Song P. -S., Moore T. A. Mechanism of photodephosphorilation of menadiol diphosphate. A model for biquantum conversion. // J. of Amer. Chem. Soc., 1968. Vol. 90, № 23, P. 6507 6514.

297. Sparrow, J.R., Zhou, J., Cai, B. DNA is a target of the photodynamic effects elicited in A2E-laden RPE by blue-light illumination // Invest Ophthalmol. Vis. Sci. 2003. Vol. 44. P. 2245-2251.

298. Spector A., Wang G.M., Wang R.R. Photochemically induced cataracts in rat lenses can be prevented by AL-3823A, a glutathione peroxidase mimic.// Proc Natl Acad Sci USA. 1993. Vol. 90. P. 7485-7489.

299. Spikes J. D. Phthalocyanines as photosensitizers in biological systems and for photodynamic therapy of tumors // Photochemistry and Photobiology. 1986. Vol. 43. P. 691-699.

300. Srivasava J.S., Tsutsui M. Preparation and purification of tetrasodium meso-tetra(/?-sulfophenyl)porphine. An easy procedure. // J. Org. Chem. 1973. Vol. 38. P. 2103-2107.

301. Stratton S.P., Liebler D.C. Determination of singlet oxygen-specific versus radical-mediated lipid peroxidation in photosensitized oxidation of lipid bilayers: effect of beta-carotene and alpha-tocopherol. //Biochemistry. 1997. Vol. 36. P. 12911-20.

302. Stupishina Y., Cherezov S., Gusev N. The properties of water and hydrogen deuterium exchange under structural reconstruction of chloroplast proteins, // Studia Biophys. 1982. Vol. 91. № 1. P. 69-70.

303. Suzuki R., FuJita Y. Caratenoid photobleaching induced by the action of photosynthetic center II: DCMU-sensitivity. // Plant and Cell Physiol. 1977. Vol. 18. №3. P. 625-631.

304. Szigeti Z., Vagujfalvi D. Protection of chlorophyll against photobleaching by reduction. // Photobiochem. and Photobiophys. 1984. — Vol. 7. № l.P. 103-109.

305. Takahama U., Nishimura M. Formation of singlet molecular oxygen in illuminated chloroplasts. Effects on photoinactivation and lipid peroxidation. // Plant and Cell Physiol. 1975. v. 16. № 4. P. 737-748.

306. Takahama U. Supression of lipid peroxidation by p carotene in illuminated chloroplasts: evidence for (3- carotene as a quencher of singlet molecular oxygen in chloroplasts. // Plant and Cell Physiol. 1978. Vol. 19. № 8. P. 1565-1569.

307. Takahama U. Stimulation of lipid peroxidation and carotenoid photobleaching by deuterium oxide in illuminated chloroplast fragments: participation of singlet molecular oxygen in the reaction. // Plant and Cell Physiol. 1979. Vol. 20. № 1. P. 213-218.

308. Takahama U. Supression of carotenoid photobleaching be kaempferol in isolated chloroplasts. // Plant and Cell Physiol. 1982. Vol. 23. № 5. P. 859-861.

309. Takahama U. Effects of deuterium oxide and free radicals scavengers on carotenoid photobleaching in spinach chloroplasts. // Plant and Cell Physiol. 1983a v. 24. № 3. P. 495-500.

310. Takahama U. Supression of lipid peroxidation by quercetin and its glucosides in spinach chloroplasts. //Photochem. and Photobiol. 1983b. Vol. 38. № 3. P. 363 367.

311. Takahama U. O2- -dependent and -independent photooxidation of quercetin in the presence and absence of riboflavin and effects of ascorbate on the photooxidation. // Photochem Photobiol. 1985. Vol. 42. P. 89-91.

312. Takahama U., Oniki T. A peroxidase/phenolics/ascorbate system can scavenge hydrogen peroxide in plant cells // Physiologia Plantarum. 1997a. Vol. 101. P. 845-852.

313. Takahama U. Enhancement of the peroxidase-dependent oxidation of dopa by components of vicia leaves // Phytochemistry. 1997b. Vol. 46. P. 427-432.

314. Takahama U., Oniki T. Flavonoids and some other phenolics as substrates of peroxidase: physiological significance of the redox reactions //Journal of Plant Research. 2000. Vol. 113 P. 301-309.

315. Takahama U., Hirota S., Yamamoto A., Oniki T. Oxygen uptake during the mixing of saliva with ascorbic acid under acidic conditions: possibility of its occurrence in the stomach // FEBS Letters. 2003. Vol. 550. P. 64-68.

316. Tanielian C., Golder Z. Quenching of singlet oxygen by sensitizer in dye-sensitized photojxygenation. // Photochem. and Photobiol. 1981. Vol. 34. №3. P. 411-414.

317. Tanielian C., Golder L., Wolff C. Production and quenching of singlet oxygen by the sensitizer in dye-sensitized photo-oxygenations// J. Photochem. 1984. Vol. 25. P. 117

318. Tanielian Ch., Schweitzer C., Mechin R., Wolff Ch. Quantum yield of singlet oxygen production by Monomeric and aggregated forms of hematoporphyrin derivative // Free Radical Biology & Medicine. 2001. Vol. 30. -No. 2. P. 208-212

319. Telfer A., Dhami S., Bishop S.M., Phillips D., Barber J. P-Carotene quenches singlet oxygen formed by isolated Photosystem II reaction centres, // Biochemistry. 1994. Vol. 33. P. 14469-14474 .

320. Thomas C., MacGiss R.S., Miller G.C., Pardini R.S. Photoactivation of hypericin generates singlet oxygen in mitochondria and inhibits succinoxidase // Photochem. Photobiol. 1992. Vol. 55. P. 47-53.

321. Thomas A.H., Lorente C., Capparelli A.L., Pokhrel M.R., Braun A.M., Oliveros E. Fluorescence of pterin, 8-formylpterin, 6-carboxypterin and folic acid in aqueous solution: pH effects //Photochem. Photobiol. Sci. 2002. Vol. l.P. 421-426.

322. Thomas A.H., Lorente C., Capparelli A.L., Martinez C.G., Braun A.M., Oliveros E. Singlet oxygen production by pterin derivatives in aqueous solutions //Photochem. Photobiol. Sci. 2003. Vol. 2. P. 245-250.

323. Thomas C., Pardini R.S. Oxygen dependence of hypericin-induced phototoxicity to EMT6 mouse mammary carcinoma cells // Photochem. Photobiol. 1992. Vol. 55. P. 831-837.

324. Touyz R.M. Reactive Oxygen Species, Vascular Oxidative Stress, and Redox Signaling in Hypertension What Is the Clinical Significance? // Hypertension. 2004. Vol. 44. P. 248-252.

325. Treadwell G. E., Jr., Metzler D.E. Photoconversion of riboflavin to lumichrome in plant tissues. // Plant Physiol. 1972. Vol. 49. № 6. P. 991-993.

326. Truscott T.G. The photochemistry of haematoporphyrin and some related species // J. Chem. Soc., Faraday Trans. 1986. Vol. 2. №12. P. 21772181.

327. Turay J., Hambright P. Data-Gupta N. Intermolecular association of natural and synthetic water soluble porphyrins // J. inorg. nucl. Chem. 1978. Vol.40. P. 1687-1688.

328. Vacek K., Naus J., Svaboda M., Vavrinec E., Kaplanova M., Hala J. Fluorescence polarisation spectra of chlorophyll amolecules in oriented polymer matrix. // Studia Biophys. 1977. — Vol. 62. № 3. P. 201 207.

329. Van der Rest M., Gingras G. The Pigment Complement of the Photosynthetic Reaction Center Isolated from Rhodospirillum rubrum // J. Biol. Chem. 1974. Vol. 249. P. 6446 6453.

330. Van Ginkel G., Raison J.K. Light-induced formation of.oxygen radicals in system containing chlorophyll. // Photochem. Photobiol.1980. Vol. 32. № 6. P. 793-798.

331. Vargas M.A., Maurino S.G., Maldanado J. M., Aparicio P. J. Photoinactivation of spinach nitrate reductase sensitized by flavin mononucleotid . Evidence for the involvoment of singlet oxygen. // Photochem. and Photobiol. 1982. Vol. 36. № 2. P. 223 228.

332. Vedaldi D., Dall'Acqua F., Gennaro A., Rodighiero G. Photosensitized effects of furocoumarins: the possible role of singlet oxygen.// Z Naturforsch C. 1983. Vol. 38. P. 866-869.

333. Vladimirov Yu. A., Olenev V. I., Suslova T.B., Cheremishina Z.P. Lipid peroxidation in mitichondrial members. // Advances in lipid research. N.Y. 1980. Vol. 17. P. 173-249.

334. Walter G., Shalygo, N.V. Location and fate of protoporphyrin IX accumulated in etiolated leaves and roots of Zea mays L. and Pisum sativum L. // J. Photochem. Photobiol. 1997. Vol. 40. P. 175-182.

335. Weishaupt K.R., Dougherty T.J., Potter W.R. // Purified hematoporphyrin derivative for diagnosis and treatment of tumors and method. 1984 PCT/W0.84/01382. CI. C07D209/58; 31/40.

336. Weser U., Pashen W., Yonnes M. Singlet oxygen and superoxide dismutase (cuprein). // Biochim. et Biophys. Acta. 1975. Vol. 66. № 2.P. 769 -777.

337. Wilkinson, F.; Helman, W. P.; Ross, A. B. Quantum yields for the photosensitized formation of the lowest electronically excited singlet state of molecular oxygen in solution //J. Phys. Chem. Ref.Data 1993. Vol. 22. P. 113262.

338. Wilson T., Fuijmori E., Krinsky N. I. Carotenoid chromophore lengh and protection against photosensitization. // Photochem. Photobiol. 1974. Vol. 19. №3. P. 217-222.

339. Yamashita K.K., Konishi K., Iton M., Shibata K. Photobleaching of carotenoid related to the electron transport in chloroplasts. // Biochim. et Biophys. Acta. 1969. Vol. 172. № 3. P. 511 524.

340. Yamauchi R., Matsushita S. Light-induced lipid peroxidation in isolated cloroplasts and role of a-tocopherol. // Agric. Biol. Chem. 1979. Vol. 43. № 10. P. 2157-2161.

341. Yoshikawa T., Naito Y., Kondo M. Antioxidant therapy in digestive diseases // J. Nutr. Sci. Vitaminol. 1993. Vol. 39. P. 35-41.

342. Zebger I., Snyder J.W., Andersen L.K., Poulsen, L., Gao, Z., Lambert, J.D.C., Kristiansen, U., Ogilby, P. R. Direct Optical Detection of Singlet Oxygen from a Single Cell //Photochem. Photobiol. 2004. Vol. 79. P. 319-322.

343. Zenk M.H. Untersuchungen zum Phototropismus der Avena Koleoptile: 1. Photooxydation in vivo. // Z. Pflansen-physiol. 1967. B.56. H. 1. S. 57-59.

344. Zeug A., Zimmermann J., Rôder В., Gabriela Lagorio M., San Román E. Microcrystalline cellulose as a carrier for hydrophobic photosensitizers in water // Photochem. Photobiol. Sci. 2002. Vol. 1. P. 198-203.

345. Zigman S. Lens UVA photobiology // J Ocul Pharmacol Ther. 2000. Vol. 16. P. :161-165.

346. Андреев А.Ю., Кушнарева Ю.Е., Старков А.А. Метаболизм активных форм кислорода в митохондриях (Обзор) //Биохимия. 2005. Т. 70. С. 246-264.

347. Бабьева И.П., Чернов И.Ю. Биология дрожжей. / М.: Товарищество научных изданий КМК. 2004. 221 с.

348. Бекина Р. М., Лебедева А.Ф., Гусейнова В. Е. Активация адениннуклеотидами восстановления кислорода в электрон-транспортной цепи // Доклады АН СССР. -1981. Т. 257. № 3. С. 760-763.

349. Бекина Р. М., Шувалова В. А., Лысенко Г. Г., Мошенцева В. Н., Лебедева А. Ф. Исследование механизма фотоокислительных превращений органических кислот в хлоропластах // Физиол. растен. 1975. Т. 22. № 4. С. 680-687.

350. Бекина Р. М., Красновский А. А. Хранение изолированных хл opon ластов без изменения активности фотофосфорилирования. //Биохимия, 1968. Т. 33. Вып. I. С. 178-171.

351. Белл Л. Н. /Энергетика фотосинтезирующей растительной клетки. М.:Наука,1980. 333с.

352. Белогуров A.A., Зуев A.B., Завильгельский Г.Б. Репарация моноаддуктов и диаддуктов 8-метоксипсоралена у бактериофагов и бактерий //Молекулярная биология. 1976. Т. 10. С. 857 867.

353. Беляева О. Б., Карнеева Н. В., Стадничук И.Н., Литвин Ф. Ф. Динамика биосинтеза нативныхЗ форм хлорофилла от начальных стадий до завершения процесса зеленения этиолированных листьев. Биохимия, 1975, Т. 40 № 5, с.951-961.

354. Болдырев A.A. // Биохимические аспекты электрохимического сопряжения / 1977 М.: МГУ.

355. Болдырев A.A. Карнозин / М.: Издательство Московского университета. 1998. 320 с.

356. Брок И. Иммунологические методы / Под. ред. Г.Фримеля. -М. 1987. 390с.

357. Быстрова М.И Сафронова И.А., Красновский A.A. Изучение молекулярной организации агрегированных форм протохлорофилла в твердых пленках// Мол. биол. 1982. Т. 16. №2. С. 291-301.

358. Быстрова М.И Сафронова И.А., Красновский A.A. Сперальные эффекты превращения протохлорофиллида//Мол. биол. 1985. Т. 19. №4. С. 915-925.

359. Бытева И. M., Голомб О. Л., Гуринович Г. П., Карпов В. В. Участие молекулярного синглетного кислорода в процессе ускоренного выцветания красителей. Журнал прикладн. спектроскопии, 1982. Т. 36, № 5. С. 770-776.

360. Бытева И. М., Салохиддинов К.И. Тушение люминисценции кислорода акцепторами и донорами электронов. Оптика и спектроскопия, 1980, Т. 49, вып. 4. С. 707-713.

361. Варфоломеев С.Д., Зайцев C.B., Ильина М.Д., И.В. Березин Кинетика и механизм инактивации изолированных хлоропластов // Мол. биол. 1975. Т. 9. С. 893-902.

362. Васильев Р.Ф., Цаплев Ю.Б. Хемилюминесценция, создаваемая светом // Успехи химии. 2006. Т. 75. С. 1103-1118.

363. Венедиктов Е. А., Красновский А. А., мл. Генерация и тушение люминесценции синглетного молекулярного кислорода антрахиновыми красителями // Оптика и спектроскопия. 1982. Т. 52. № 3. С. 567-569.

364. Венедиктов Е. А., Красновский А. А., мл. Эффективность генерации синглетного молекулярного кислорода порфиринами// Журн. прикладной спектроскопии. 1982. Т. 36. № I. с. 152-154.

365. Волынец А. П., Прохорчук Р. А. /Ароматические соединения -продукты и регуляторы фотосинтеза. Минск: Наука и техника. 1983. 157с.

366. Воробьева Л. М., Красновский А. А. Фотохимически активная форма хлорофилла в листьях и ее превращения // Биохимия. 1956. Т. 21. вып. I. С. 126-136.

367. Воскресенская Н. П. Фотосинтез и спектральный состав света. /М.: Наука. 1965.311с.

368. Гамаюнова М. С., Кочубей С. М., Островская Л. К., Рейнгард Т. А., Силаева А. М. Фотохимические системы хлоропластов

369. Гостимский С. А., Ежова Т. А., Маторин Д. М. Генетический контроль фотосинтеза у Pisum sativum L. //Физиология растений. 1981. Т. 28. № 2. с.269-279.

370. Граник С. Механизм фотосинтеза. // Тр. V Международного биохим. конгр. 1962. М.: Изд-во АН СССР. С. 184-195.

371. Гуринович Г. П., Салохиддинов К.И. Генерация !Дё-кислорода при тушении синглетных и триплетных состояний многоатомных молекул. //Доклады АН СССР. 1981. Т. 261. № 3. С. 596-599.

372. Гуринович Г. П., Севченко А.Н., Соловьев К. Н. Спектроскопия хлорофилла и родственных соединений. /Минск: Наука и техника. 1968. 517с.

373. Гуринович Г.П., Пецольд О.М., Бытева И.М. //Биофизика. 1974. Т. 19. С. 249.

374. Джагаров Б.М., Гуринович Г.П. Механизмы релаксоционных процессов в молекулах хлорофилла и родственных соединений// Возбужденные молекулы. Кинетика превращений / JL: Наука. 1982. С. 5988.

375. Джагаров Б.М., Салохиддинов К.И. //Оптика и спектроскопия. 1981. Т. 51. С. 841.

376. Джагаров Г. П., Сагун Е. И., Бондарев С. JL, Гуринович Г.П. Влияние молекулярной структуры на процессы безызлучательной дезактивации низших возбужденных состояний порфиринов // Биофизика. 1977. Т. 22. с.565-570.

377. Донцов A.A., Красновский A.A., мл., Егоров С.Ю., Островский М.А. Тушение синглетного кислорода меланином // II Всесоюзная конференция «Биоантиоксидант», 14-16 мая 1986 г., Черноголовка. /Тезисы докладов. Том II. Черноголовка (Моск.обл.). 1986. С. 85.

378. Донцов А.Е. //Журнал, эволюц. биохим. и физиол. 1981. Т. 17.1. С. 53.

379. Дроздова H.H., Вычегжанина И.В., Шубин B.B. Сравнительное изучение агрегации бактериофеофитинов//Биофизика. 1980. Т. 25. С. 423427.

380. Егоров С.Ю. Исследование первичных механизмов фотодеструкции пигментного аппарата хлоропластов растений // Автореферат на соискание ученой степени кандидата биологических наук М.: МГУ. 1985.24 с.

381. Егоров С.Ю., Красновский A.A. мл., Сафронова И.А., Быстрова М.И., Красновский A.A. Фотогенерация синглетного молекулярного кислорода пигментами-предшественниками хлорофилла // Доклады АН СССР (биофизика). 1988. Т. 299. № 5. С. 1266-1270.

382. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл, К. Вацек, П. Панчошка. Фотосенсибилизированная хлорофиллом люминесценция синглетного кислорода в пленках полистирола. Кинетика затухания после лазерной вспышки// Биофизика, 1984, Т. 29, № 6. С. 921-922.

383. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл. Генерация синглетного кислорода в моделях биологических мембран // Труды V Всесоюзного совещания по фотохимии, Суздаль, 19-21 февраля 1985 г, ч. II. /Суздаль: 1985. С. 349.

384. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл. Люминесценция кислорода в водных растворах // Молодые ученые и основные направления развития современной биологии. М.: МГУ, Ч. 1. Депонировано в ВИНИТИ, 16 марта 1984, №1506-84Деп.

385. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл. Люминесценция синглетного кислорода в моделях биологических мембран // Труды 1 Всероссийской конференции фотобиологов. Пущино 28-30 мая 1996 г. /Пущино: 1996. С. 95.

386. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл. Тушение синглетного молекулярного кислорода компонентами сред, используемых для выделения и исследования фотосинтетической активности хлоропластов // Физиология растений. 1986. Т. 33. № 1. С. 10-14.

387. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл. Фотосенсибилизированная люминесценция кислорода при импульсном лазерном возбуждении. Кинетика затухания в водных растворах // Биофизика, 1983, Т. 28, № 3. С. 497-498.

388. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл., Кулаковская Л.И. Исследование механизма фотодеструкции хлоропластов: участие триплетного состояния хлорофилла // Физиология растений. 1985. Т. 32, № 4. С. 668-673.

389. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл., Бабижаев М.А., Шведова A.A. Фотосенсибилизированная генерация синглетного молекулярного кислорода эндогенными веществами хрусталика глаза // Биофизика. 1987. Т. 32. № 1.С. 169-171.

390. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл., Донцов А.Е., Островский М.А. Тушение синглетного молекулярного кислорода экранирующими пигментами меланинами и оммохромами // Биофизика. 1987. Т. 32. № 4. С. 685-686.

391. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл., Назарова Н.В., Ярцев Е.И. Фотогенерация синглетного молекулярного кислорода в водных и спиртовых растворах // Биофизика. 1986. Т. 31. № 2. С. 342-343.

392. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл., Назарова Н.В., Ярцев Е.И., Пономарев Г.В. Фотогенерация синглетного кислорода водорастворимыми порфиринами // Биофизика. 1987. Т. 32. № 6. С. 982993.

393. Егоров С.Ю., Красновский A.A., мл., Сухоруков B.JL, Потапенко А.Я. Фотосенсибилизированное фурокумаринами образование синглетного кислорода в водных и спиртовых растворах // Биофизика. 1986. Т. 31. № 1.С. 154-156.

394. Егоров С.Ю., Курелла Е.Г., Болдырев A.A., Красновский A.A., мл. Тушение синглетного молекулярного кислорода карнозином и анзерином //Биоорганическая химия. 1992. Т. 18. № 1. С. 142-144.

395. Егоров С.Ю., Мааллем М., Красновский A.A. мл., Хачатурова Г.Т., Кричевский Т.Е. Фотосенсибилизированная генерация синглетного молекулярного кислорода дибензпиренхиноном // Доклады АН СССР (физическая химия). 1990. Т. 315. №5. С. 1152-1155.

396. Егорова С.Г., Иевлева Е.С., Киркин А.Ф., Коханова И.Д. Характеристика моноклональных антител к клеткам аденокарциномы легкого человека. // Цитология. 1988. Т. 30. № 9. С. 1129-1130.

397. Егорова С.Г., Новакова М., Мойсенович М.М., Могилевский И.Л. Характеристика моноклональных антител к меланоме кожи человека. // Вестник Московского университета. 1995. Сер. 17. Биология. Вып. 1. С. 66-68.

398. Жиров В.К., Мерзляк М.Н., Кузнецов Л.В. Перекисное окисление мембранных липидов холодостойких растений при повреждении отрицательными температурами. // Физиология растен. 1982. Т. 29. вып.6. С. 1045-1052.

399. Зенькевич Э. И., Кочубеев Г. А., Кульба А. М. Спектроскопические и фотохимические свойства пигментов, связанных с белком//Биофизика, 1981. Т. 26. № 3. С. 389-393.

400. Зоров Д. Б., Банникова С.Ю., Белоусов В. В., Высоких М.Ю., Зорова Л.Д., Исаев Н.К., Красников Б.Ф., Плотников Е.Ю. Друзья или враги. Активные формы кислорода и азота (обзор) //Биохимия.2005. Т.70. С. 265-272.

401. Иванов A.B., Захаров С.Д. Светокислородный эффект в клетках и перспективы его применения в терапии опухлей //Квантовая электроника. -1999. Т. 29. №12. С. 192 -214.

402. Иванов А., Ревазова Е., Брызгалов И., Сорокина Ю., Себастиан Дж., Келлер Г., Ватсон Дж. Низкосиловое лазерное облучение стимулирует рост человеческой опухоли // Бюлл. экспериментальной биологии и медицины. 2001а. Т. 132. № 8. С. 195-196.

403. Иванов A.B., Корочкин И.М., Захаров С.Д. Светокислородная терапия: принципы и возможности // Медицинская физика. 20016. №11. -С.25-26.

404. Иванов A.B., Захаров С.Д. Ионизирующее и неионизирующее (оптическое) облучение. Сравнение эффектов и закономерностей // Медицинская физика. 2001 в. №11. С. 24-25.

405. Иванов A.B., Решетников A.B., Дмитриев A.A., Градюшко А.Т., Швец В.И., Пономарев Г.В. // Материалы второго съезда фотобиологов России. Пущино. 8-12 июня 1998 . С . 362-364.

406. Кириллова Г.В. Синтез и свойства мезодиметиламинометил и ß-алкоксиэтил порфиринов. // Дисс. на соискание уч. степ. канд. хим. наук. 1983. М.:ИРЕА.

407. Клебанов Г.И., Чичук Т.В., Осипов А.Н., Владимиров Ю.А. Роль продуктов перекисного окисления липидов в механизме действия лазерного облучения на лейкоциты крови человека // Биофизика. 2005. Т. 50. С. 862-866.

408. Койфман О.И., Семейкин A.C., Березин Б.Д. Методы получения и модификации простейших синтетических порфиринов// Порфирины: структура, свойства, синтез. /М.: Наука. 1985С.205-238.

409. Комолов К.Е., Сенин И.И., Филиппов П.П. Зрительная трансдукция и ионы кальция// Биофизика. 2004. Т. 49. Вып. 2. С. 265-277.

410. Кормановский А. Я., Синещеков В. А., Иванов И. И. Разрушение нативных форм хлорофилла и смешанного пигментного комплекса хлорофилл каротиноид при действии синглетного кислорода. Научн. докл. высш. школы. Биологические науки. 1984а. № 2. С. 30-38.

411. Кормановский А. Я., Тунгарова Д. И., Иванов И. И. Фотодеструкция пигментов и а-токоферола в липосомах со встроенными пигмент- белковыми комплексами фотосистемы I. //Физиология растений. 19846. Т. 31. вып. I. С. 202-204.

412. Красновский A.A., мл., Баштанов М.Е., Дроздова H.H. Егоров С.Ю. Фотосенсибилизированная генерация мономолей и димолей синглетного кислорода в химических системах // Информационный бюллетень РФФИ. 1996. Т. 4. № 3. С. 586.

413. Красновский A.A. , мл., Егоров С.Ю. Генерация синглетного кислорода в моделях биологических мембран // Труды 5 Всесоюзного совещания по фотохимии. Суздаль, 1984 г. / Суздаль: 1984. Ч. II. С. 349.

414. Красновский A.A. мл., Неверов К.В., Егоров С.Ю., Редер Б. Фотофизические параметры феофорбида а: фосфоресценция и генерация синглетного кислорода // Оптика и спектроскопия. 1988. Т. 64. № 4. С. 790795.

415. Красновский A.A., Воробьева Л. М., Пакшина Е. В. Исследование активной формы хлорофилла у растений различных систематических групп // Физиология растений. 1957. Т. 4. вып.2. С. 124133.

416. Красновский A.A., Кособуцкая Л. М. Активная форма хлорофилла в коллоидных растворах вещества зеленых листьев и ее обратимые фотохимические превращения // Доклады АН СССР. 1955. Т. 104. № 3. с.440-443.

417. Красновский A.A., Кособуцкая Л. М. Различные состояния хлорофилла в листьях растений. // Доклады АН СССР. 1953. Т. 91. № 2. С. 343 346.

418. Красновский A.A., Кособуцкая Jl. M., Войниковская K.K. Активные и неактивные формы протохлорофилла и бактериохлоророфилла в фотосинтезирующих организмах // Доклады АН СССР. 1953. Т. 92. № 6 с.1201-1204.

419. Красновский A.A., мл. Люминесцентный анализ триплетных состояний хлорофиллов. // Acta Physica et Chemica. Szeged. Hungaria. Nova Series. 1977a. T. 23. F. 1. P. 147-154.

420. Красновский A.A., мл. Люминесценция при фотосенсибилизированном образовании '02 в растворах // В кн.: Возбужденные молекулы. Кинетика превращений. /Л.: 1982. С. 32-50.

421. Красновский A.A., мл. Люминесценция синглетного кислорода в растворах сенсибилизаторов. // Журн. прикладн. спектроскопии. 1980. Т. 32. № 5. с. 842-856.

422. Красновский A.A., мл. Определение излучательного времени жизни ^-состояния кислорода в растворах//Доклады АН СССР. 1981. Т. 257. №6. С. 1360-1362.

423. Красновский A.A., мл. Синглетный кислород в фотобиологических процессах. Дисс. на соискание уч. степени доктора биол. наук. /М„ МГУ, 1983, 317л.

424. Красновский A.A., мл. Синглетный кислород и механизм фотодинамического действия порфиринов // Успехи химии порфиринов. -2001.-С. 191-216.

425. Красновский A.A., мл. Фото динамическое действие и синглетный кислород // Биофизика. 2004. Т. 49. Вып. 2. С. 305-321.

426. Красновский A.A., мл. Фотолюминесценция синглетного кислорода в растворах хлорофиллов и феофитинов // Биофизика. 1977. Т. 22. № 5. С. 927 928.

427. Красновский A.A., мл. Фотосенсибилизированная люминесценция синглетного кислорода в водных растворах // Биофизика, 1979, Т. 24, № 4. С. 747-748.

428. Красновский A.A., мл. Фотосенсибилизированная люминесценция синглетного кислорода в растворе // Биофизика. 1976. Т. 21. №4. С. 748-749.

429. Красновский A.A., мл., Венедиктов Е. А., Черненко О. И. Тушение синглетного кислорода хлорофиллами и порфиринами. // Биофизика. 1982. Т. 27.вып. 6. С. 966-972.

430. Красновский A.A., мл., Вычегжанина И.В., Дроздова H.H. Генерация и тушение синглетного молекулярного кислорода бактериохлорофиллом и бактериофеофитином а и b //ДАН. 1985. Т. 283. С. 474-477.

431. Красновский A.A., мл., Егоров С.Ю., Баштанов М.Е. Генерация и тушение синглетного молекулярного кислорода в водных и органических средах // Труды 2 всероссийской конференции фотобиологов, Пущино, 812 июня 1998. /Пущино: 1998. С. 97.

432. Красновский A.A., мл., Ковалев Ю. В. Фосфоресценция хлорофилла в листьях и клетках водорослей. //Биофизика. 1978. Т. 23. № 5. С. 920-922.

433. Красновский A.A., мл., Ковалев Ю. В., Лехоцки Э. Люминесцентный анализ триплетных состояний хлорофилла в листьях ячменя с блокированным биосинтезом каротиноидов// Доклады АН СССР. 1981. Т. 256. № 3. С. 726-730.

434. Красновский A.A., мл., Ковалев Ю. В., Фалуды-Даниэль А. Фосфоресценция и замедленная флуоресценция хлорофилла в мутантах кукурузы с нарушенным каротиноидным составом //. Доклады АН СССР. 1980. Т. 251. №5. С. 1264-1267.

435. Красновский A.A., мл., Лебедев H. Н., Литвин Ф.Ф. Обнаружение триплетных состояний хлорофилла и его предшественников в листьях и хлоропластах по фосфоресценции и замедленной флуоресценции при -196*. //Доклады АН СССР. 1975. Т. 225. № 1. С. 207210.

436. Красновский A.A., мл., Лебедев H. Н., Литвин Ф.Ф. Спектральные характеристики фосфоресценции хлорофиллов и феофитинов "а " и "в". // Доклады АН СССР. 1974. Т. 216. № 6. С. 14061409.

437. Красновский A.A., мл., Парамонова Л. И. Взаимодействие синглетного кислорода с каротиноидами. Константы скорости физического и химического тушения. // Биофизика. 1983. Т. 28. № 5. С. 725-729.

438. Красновский A.A., мл., Сухорукое В. Л., Потапенко А. Я. Фотогенерация синглетного кислорода плораленами //Бюлл. эксперим. медицины, 1983, Т. 96, № 9, с.59-61.

439. Красновский A.A., мл., Шапошникова М. Г., Литвин Ф.Ф. Участие синглетного кислорода в фотохемилюминесценции, фотоокислении и фотосенсибилизирующем действии хлорофилла "д". Биофизика, 1974, Т. 19, вып. 4. С. 650-654.

440. Красновский A.A., мл., Шувалов В.А., Литвин Ф.Ф., Красновский A.A. Фосфоресценция и замедленная флуоресценция протохлорофилловых пигментов. // Доклады АН СССР, 1971, Т. 199, № 5. С. 1181-1184.

441. Крицкий М.С., Телегина Т.А. Коферменты и эволюция мира РНК // Успехи биологической химии. 2004. Т.44 С. 341 —364.

442. Кузнецова Г. А. Природные кумарины и фурокумарины. /Л.: Наука. 1967. 248 с.

443. Кузнецова Н.П., Панков Б.С., Чубурова A.C. Порфирии /1981. М.: Медицина.

444. Литвин Ф.Ф., Архипов В.Н., Баштанов М.Е., Беляева О.Б., Егоров С.Ю., Игнатов Н.В., Красновский A.A., мл. Биогенез фотоактивных пигментных комплексов фотосинтеза // Информационный бюллетень РФФИ. 1996, Т. 4, № 4. С. 165.

445. Литвин Ф.Ф., Беляева О. Б., Гуляев Б. А., Синещеков В. А. Организация пигментной системы фотосинтезирующих организмов и ее связь с первичными фотопроцессами. // Проблемы биофотохимии. М. 1973, Т. 49. С. 132-147.

446. Литвин Ф.Ф., Беляева О.Б., Игнатов Н.В. Биосинтез хлорофилла и формирование реакционных центров фотохимических систем фотосинтеза // Успехи биологической химии. 2000. Т. 40. С. 3 —42.

447. Маравин Г.Д., Пономарев Г.В., Шульга A.M. // Химия гетероциклич. соединений. 1987. №2. С. 214.

448. Мерзляк М. Н., Кормановский А. Я., Юферова С. Г., Румянцева В. Б. Окисление пигментов и липидов в изолированных хлоропластах синглетным кислородом, продуцируемым в газовой фазе. //Научн. докл. высш. школы. Биологические науки. 1980. № 12.с. 65-71.

449. Мерзляк М. Н., Плакунова О. В., Гостимский С. А., Румянцева В. Б., Новак К. Фотоокислительный механизм повреждения светочувствительного мутанта Pisum sativum L. Известия АН СССР, 1983, № 4. С. 578-588.

450. Мерзляк М. Н., Соболев A.C. Роль супероксидных анионрадикалов и синглетного кислорода в патологии мембран. В кн.: Итоги науки и техники. Серия биофизика. М., 1975. Т. 5. с. 118-165.

451. Мерзляк М. Н., Юферова С. Г. Окисление липидных компонентов в изолированных хлоропластах под действием света. //Физиология растений. 1975. Т. 22. вып. 5. С. 896-902.

452. Мерзляк М. Н., Юферова С. Г., Соболев A.C. Роль супероксидных анион-радикалов и супероксиддисмутазы в реакциях фотопереокисления липидов изолированных хлоропластов. //Биофизика. 1977.Т. 22.5.С.846-848

453. Мерзляк М.Н. Активированный кислород и окислительные процессы в мембранах растительной клетки // Итоги науки и техники. Сер. Физиология растений. 1989. Т. 6. 167 с.

454. Метлицкий JI. В., Озерецковская О.Л. Биохимия иммунитета растений к инфекционным заболеваниям. //Биохимия иммунитета, покоя, старения растений. М. 1984. С. 9-40.

455. Миронов А.Ф. Фотосенсибилизаторы на основе порфиринов и родственных соединений // Итоги науки и техники. Совр. пробл. лаз. физ. М.: ВИНИТИ. 1990. Т. 3. 224с.

456. Митрофанова А. Н., Мамлеева Н.А. Бенько Е. М., Пряхин А. Н., Лунин В. В. Фотопревращение лигнина в присутствии адсорбированного сенсибилизатора// Журнал физической химии. 1996. Т. 70.С. 51511-1515.

457. Музафаров Е. Н., Руциева P. X., Акулова Е.А., Залетская О.Ю. Влияние флавонов на электронный транспорт и фотофосфорилирование в хлоропластах. //Физиология растений. 1980. Т. 27. вып. 4. С. 677-634.

458. Неверов К.В., Миронов Е.А., Людникова Т.А., Красновский А.А., мл., Крицкий М.С. Фосфоресцентный анализ триплетного состояния птеринов в связи с их фоторецепторными функциями в биохимических системах//Биохимия. 1996. Т. 61. С. 1627-1636.

459. Осипова О.П. Основные требования при выделении хлоропластов. //Методы выделения хлоропластов. 1970. Пущино. С. 7-17.

460. Островский М.А. Молекулярные механизмы повреждающего действия света на структуры глаза и системы защиты от такого повреждения // Успехи биологической химии. 2005. Т. 45. С. 173—204.

461. Павлов А.Р., Ревина А.А., Дупин A.M., Болдырев А.А., Ярополов А.И. Взаимодействие карнозина с супероксидными радикалами в водных растворах // Бюлл. Экспер. Биол.Мед. 1990. Т. 110. С. 391-393.

462. Плетюшкина О.Ю., Фетисова Е.К., Лямзаев К.Г., Иванова О.Ю., Домнина Л.В., Высоких М.Ю., Пустовидко A.B., Алексеевский A.B., Алексеевский Д.А., Васильев Ю.М., Мерфи М.П., Черняк Б.В., Скулачев

463. B.П. Пероксид водорода, образуемый внутри митохондрий, участвует в передаче апоптозного сигнала от клетки к клетке //Биохимия. 2006. Т. 71.1. C. 75-84.

464. Потапенко А .Я., Малахов М.В., Кягова A.A. Фотобиофизика фурокумаринов//Биофизика. 2004. Т. 49. Вып. 2. С. 322-338.

465. Рабинович Е. Фотосинтез: В 3-х Т. /М.: Изд-во иностранной литературы. 1951. Т. I. 648 с.

466. Рабинович Е. Фотосинтез: В 3-х Т. /М.: Изд-во иностранной литературы. 1953. Т. 2. 651 с.

467. Разумовский С. Д. Кислород элементарные формы и свойства. /М., Химия. 1979. 301 с.

468. Решетников A.B., Швец В.И., Пономарев Г.В. Водорастворимые тетрапиррольные фотосенсибилизаторы для фотодинамической терапии рака // Успехи химии порфиринов. 1999 . СПб: НИИ Химии СПбГУ. Т. 2. Гл.4. С. 70-114.

469. Розенкранц A.A., Набатников П.А., Алиев P.A., Янс Д.А., Соболев A.C. Усиление цитотоксического действия при направленной доставке а-эмиттера астата-211 в ядра клеток гепатомы человека//Молекулярная медицина. 2004. № 1. С. 47-55.

470. Рубин А.Б. Биофизика /М.: Высшая школа. 1987. 319 с.

471. Рубин А.Б., Кренделева Т.Е. Регуляция первичных процессов фотосинтеза// Биофизика. 2004. Т. 49. Вып. 2. С. 239-253.

472. Рубин Б. А., Корватовский В. Н., Брагинская О. Б., Пащенко В. 3., Першке X., Тусов В. Б. Динамика электронного возбуждения в пигментном аппарате фотосинтеза. //Молекулярная биология. 1980.Т. 14. № 3. С. 675-684.

473. Рубин Б. А., Мерзляк М. Н., Юферова С. Г. Окисление липидных компонентов в изолированных хлоропластах под действием света. Субстраты и продукты переокисления липидов. Физиология растений. 1976. Т. 23. вып. 2. С. 254-261.

474. Савицкий А.П. Фосфоресцентный иммуноанализ // Успехи биологической химии. -2000 Т.40. -С.309 —328

475. Савицкий А.П., Папковский Д.Б., Березин И.В., Флуоресцентный иммуноанализ: порфирины как новые метки для иммуноанализа // ДАН СССР. 1987. Т. 293. С. 744-748.

476. Салохиддинов К. И., Бытева И. М., Джагаров Б. М. Длительность люминесценции синглетного кислорода в растворах при импульсивном лазерном возбуждении. Оптика и спектроскопия. 1979. Т. 47. №5. С. 881-886.

477. Салохиддинов К. И., Бытева И. М., Гуринович Г. П. Время жизни синглетного кислорода в различных растворителях. //Журн. прикладн. спектроскопии. 1981а. Т. 34. № 5.

478. Салохидцинов К. И., Бытева И. М., Джагаров Б. М., Гуринович Г. П. Исследование сенсибилизированной люминесценции синглетного кислорода в растворах в области 1278 нм. // Журн. прикладн. спектроскопии. 19816. Т. 35. № 2. С. 280-284.

479. Салохидцинов К. И., Бытева И. М. Влияние дейтерирования растворителя и внешнего тяжелого атома на время затухания люминесценции молекулярного кислорода.// Оптика и спектроскопия. 1983а. Т. 55. №3. С. 479-482.

480. Салохидцинов К. И., Джагаров Б. М., Егорова Г. Д. Прямое измерение времени жизни молекулярного кислорода в синглетном 'Ag-состоянии. генерируемого в воде сенсибилизатором порфирином. Оптика и спектроскопия. 19836. Т. 55. вып. I. С. 71-73.

481. Сидорин М.И. О выцветании хлорофилла в отмерших органах и тканях растений. //Труды института физиологии растений АН СССР. 1950. Т. 7. вып. I. С. 115-132.

482. Синещеков O.A., Литвин Ф.Ф. Фоторегуляция движения микроорганизмов // Успехи микробиологии. 1982. вып. 17. с.62-87.

483. Соболев A.C., Розенкранц A.A., Гилязова Д.Г. Подходы к направленной внутриклеточной доставке фотосенсибилизаторов для увеличения их эффективности и придания клеточной специфичности//Биофизика. 2004. Т. 49. Вып. 2. С. 351-379.

484. Соколов В.Г., Егоров С.Ю. Применение неинвазивных оптических методов исследования периферического кровообращения в практическом здравоохранении //Тезисы Международной конференции «Здоровье нации». /М.: МГУ им. М.В. Ломоносова. 2005. С. 59-60.

485. Соловьев К. Н., Дворников С. С., Кнюкшто В. Н., Туркова А. Е. Фосфоренция и состояние хлорофилла в растворах. Журнал прикладн. спектроскопии. 1983. тю 38.№ 1. С. 87-95.

486. Странадко Е.Ф., Иванов A.B. Современное состояние проблемы фотодинамической терапии рака и неопухолевых заболеваний//Биофизика. 2004. Т. 49. Вып. 2. С. 380-383.

487. Теренин А. Н. Фотоника молекул красителей. /Л.: Наука. 1968. С. 616.

488. Тюлина О.В., Каган В.Е., Болдырев A.A. Модулирующий эффект карнозина и родственных соединений на дыхательный взрыв лейкоцитов, активированных сульфатом бария // Бюлл. эксп. биол. мед. 1994. Т. 118. С. 463-466.

489. Уденфринд С. Флуоресцентный анализ в биологии и медицина. / 1965. М.: Мир.

490. Фрадкин Л. И., Доманский В. П., Самойленко А. Г., Шлык А. А. Пигментные системы фотосинтеза в течение первого часа деэтоляции листьев ячменя. //Доклады АН СССР. 1982. Т. 264.№ 3. С. 732-736.

491. Фрадкин Л. И., Шлык А. А. О переносе энергии между каротиноидами и зелеными пигментами. //Биоэнергетика и биологическая спектрофотометрия. /М. 1967. С. 130-140.

492. Фридович И. Радикалы кислорода, пероксид водорода и токсичность кислорода. // Свободные радикалы в биологии. /М. 1979. Т. I. с. 272-314.

493. Фут X. Фотосенсибилизированное окисление и синглетный кислород. // Свободные радикалы в биологии. М. 1979. Т. 2. С. 99-150.

494. Ходасевич Э. В., Мельникова JI. М. Арнаутова J1. И. Исследованние деградации хлорофиллов при "сезонном обесцвечивании хвои". //Хлорофилл. Минск. 1974. С. 357-373.

495. Шлык А. А. Метаболизм хлорофилла в зеленом растении. /Минск: Наука и техника. 1965. 396 с.

496. Шляпинтох В. Я. Свободные радикалы и хемилюминесценция. //Успехи химии. 1968. Т. 35. № 4. с.684-698.

497. Шувалов В. А., Красновский A.A. Изучение фотовосстановления кислорода хлоропластами методом хемилюминесценции люминола и хлорофилла. //Биохимия. 1975. Т. 40. вып. 2. С. 358-367.

498. Шувалов В. А., Красновский A.A. Люминесценция цинк порфиринов в микроорганизмах и растениях: фосфоресценция и замедленная люминесценция. //Молекулярная биология. 1971.Т 5 . вып. 5. С. 698-710.

499. Шувалов В.А. Преобразование солнечной энергии в первичном акте разделения зарядов в реакционных центрах фотосинтеза. / М.: Наука. -2000.-50 с.

500. Яковлев А.Г., Васильева Л.Г., Шкуропатов А.Я., Болгарина Т.И., Шкуропатова В.А., Долгова Т.А., Шувалов В.А. Механизм разделения зарядов и их стабилизации в бактериальных реакционных центрах//Биофизика. 2004. Т. 49. Вып. 2. С. 199-211.