Дыхание запасающих органов растений и его регуляция в ходе онтогенеза тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, доктор биологических наук Шугаев, Александр Григорьевич

• Шугаев, Александр Григорьевич
• доктор биологических наук
• 2003

Оглавление диссертации доктор биологических наук Шугаев, Александр Григорьевич

ВВЕДЕНИЕ.

Глава I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Особенности структурной организации и окислительной активности дыхательной цепи митохондрий растений.

1.1.1. Система ферментов, участвующих в окислении НАД(Ф)Н

1.1.1.1. Выделение, очистка, субъединичный состав и некоторые свойства комплекса I митохондрий растений.

1.1.1.2. Устойчивое к ротенону окисление НАД(Ф)Н матрикса.

1.1.1.3. Окисление цитозольного (экзогенного) НАД(Ф)Н.

1.1.2. Сукцинат-убихинон-оксидоредуктаза (комплекс II).

1.1.3. Цитохромный путь окисления.

1.1.3.1. Комплекс III и цитохром с выполняют в митохондриях двойную функцию.

1.1.3.2. Цитохром с- оксидаза (комплекс IV) основная, но не единственная оксидаза в дыхательной цепи растений.

1.1.4. Альтернативный CN-резистентный путь окисления.

1.1.4.1. Структурная организация альтернативной оксидазы (АО).

1.1.4.2. Регуляция активности альтернативного пути окисления.

1.1.4.3. Возможная физиологическая роль АО.

1.2. Регуляция транспорта электронов в дыхательной цепи митохондрий растений в условиях in vivo и in vitro.

1.2.1. Регуляция дыхания митохондрий со стороны аденилатов

- явление дыхательного контроля.

1.2.2. Контроль дыхания и ЦТК отношением НАД/НАДН в матриксе.

1.2.2.1. Особенности регуляции окисления НАДН и маната в митохондриях растений.

1.2.2.2. Изменение содержания кофермента НАД в матриксе митохондрий растений.

1.2.3. Инактивация СДГ оксалоацетатом - физиологический контроль дыхания мтохондрий в низкоэнергизованном состоянии.

1.2.4. «Монополизация» ЭТЦ митохондрий при совместном окислении субстратов.

1.2.5. Механизмы транспорта К+ и их роль в регуляции объема матрикса и функциональной активности митохондрий.

1.3. Онтогенетические изменения функциональной активности митохондрий.

1.3.1. Роль митохондрий в процессах старения и апоптоза клеток животных.

1.3.2. Прорастание семян и функциональная активность митохондрий.

1.3.3. Возрастные изменения метаболической активности митохондрий в корнях проростков сои.

1.3.4. Климактерический подъем дыхания при созревании сочных плодов.

1.4. Особенности углеводного и дыхательного метаболизма запасающих органов и их возможная роль в накоплении и сохранении ассимилятов.

1.4.1. Метаболизм сахарозы в корне сахарной свеклы.

1.4.2. Особенности дыхания запасающих органов и выделенных из них митохондрий.

ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ РАБОТЫ

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

Глава II. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Глава III. ВОЗРАСТНЫЕ ИМЕНЕНИЯ ИНТЕНСИВНОСТИ ДЫХАНИЯ И АКТИВНОСТИ МИТОХОНДРИАЛЬНЫХ ОКСИДАЗ В ДОНОРНЫХ И АКЦЕПТОРНЫХ ТКАНЯХ В УСЛОВИЯХ IN VIVO

3.1. Смена путей митохондриального окисления в период начального формирования запасающих органов.

3.2. Сезонные изменения активности митохондриальных ок-сидаз в листьях сахарной свеклы.

3.3. Изменение интенсивности дыхания ткани корнеплода сахарной свеклы в ходе его роста.

3.4. Уровень аденилатов (АТФ и АДФ) в ткани корнеплода сахарной свеклы.

Глава IV. ИЗМЕНЕНИЕ ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ АКТИВНОСТИ МИТОХОНДРИЙ КОРНЕПЛОДА САХАРНОЙ СВЕКЛЫ В ХОДЕ ОНТОГЕНЕЗА.

4.1. Сравнительная характеристика окислительной и фосфо-рилирующей активности митохондрий корнеплода сахарной и дикой свеклы.

4.2. Окисление сукцината митохондриями корнеплода сахарной свеклы на различных этапах онтогенеза растений.

4.3. Окисление малата и других НАД-зависимых субстратов митохондриями корнеплода в ходе онтогенеза.

4.4. Активность ФЕП-карбоксилазы в ткани корнеплода сахарной свеклы на протяжении 1-го года вегетации растений.

4.5. Уровень ротенон- и CN-резистентного дыхания в митохондриях корнеплода и его изменения в ходе онтогенеза.

Глава V. ПЕРЕСТРОЙКА МЕХАНИЗМА РЕГУЛЯЦИИ ДЫХАНИЯ МИТОХОНДРИЙ КОРНЕПЛОДА САХАРНОЙ СВЕКЛЫ В ХОДЕ ОНТОГЕНЕЗА.

5.1. Регуляция окисления сукцината в митохондриях, выделенных из корнеплода на протяжении онтогенеза.

5.2. Изменение содержания кофермента НАД в митохондриях корнеплода сахарной свеклы в ходе онтогенеза и его влияние на окислительную активность органелл.

5.3. Конкурентные отношения при совместном окислении субстратов в митоходриях корнеплода.

5.3.1. Совместное окисление субстратов в митохондриях гипокотиля клещевины.

Глава VI. МЕХАНИЗМЫ ТРАНСПОРТА КАЛИЯ В МИТОХОНДРИЯХ КОРНЕПЛОДА И ЕГО РОЛЬ В РЕГУЛЯЦИИ ОБЪЕМА МАТРИКСА И ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ АКТИВНОСТИ ОРГАНЕЛЛ

6.1. Пассивное набухание митохондрий корнеплода сахарной свеклы в растворах КС1 и его ингибирование АТФ.

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

АО - альтернативная CN-резистентная оксидаза митохондрий растений

АФК - активные формы кислорода

БСА - бычий сывороточный альбумин

ГАМК - у-аминомасляная кислота

ДТТ - дитиотрейтол

ДФИ - дифениленйод

МДГ - малатдегидрогеназа

М.Э. - малик-энзим

OA - оксалоацетат / ЩУК - щавелевоуксусная кислота ОТЭ - обратный транспорт электронов

РмитоКатф ~ чувствительный к АТФ К+ канал в митохондриях растений

PCD (ЗГК) - запрограммированная смерть (гибель) клеток, апоптоз

PUMP - разобщающий белок митохондрий растений

СГК - салицилгидроксамовая кислота

СДГ - сукцинатдегидрогеназа

СК - салициловая кислота

ТПФ - тиаминпирофосфат ТТФА - теноилтрифторацетон ЦО - цитохромоксидаза ЦРД - цианидрезистентное дыхание

Vait - максимальная активность АО (альтернативного пути окисления) Vcyt - максимальная активность цитохромного пути vait - доля (вклад) АО в дыхание ткани в физиологических условиях Vres - остаточное, неингибируемое в присутствии СГК + KCN дыхание Vt -общая скорость поглощения кислорода тканью

Pair доля альтернативного пути (от 0 до 1), вовлеченная в дыхание ткани pcyt- то же для цитохромного пути

FCCP - карбонилцианид-п-трифторметоксифенилгидразон

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Дыхание запасающих органов растений и его регуляция в ходе онтогенеза»

Онтогенезом принято называть весь комплекс последовательных и необратимых изменений жизнедеятельности и структуры растений, от его возникновения из зиготы или вегетативной почки и до естественной смерти (Чайлахян с соавт., 1973). Все стадии или этапы онтогенеза: эмбриогенез, прорастание, молодость, созревание, репродукция, старение и, как сейчас выясняется, смерть осуществляются на основе генетической программы, которая, в свою очередь, разворачивается в зависимости от внешних условий, например, световых и температурных. С определенными изменениями эта программа повторяется в ходе развития отдельных органов растения и может реализовываться с разной скоростью в различных органах одного и того же растения: листьях, плодах или клубнях (Мокроносов, 1981). Необходимой составной частью этой программы на клеточном уровне является формирование, поддержание и регуляция на протяжении онтогенеза функциональной активности субклеточных структур и органелл (митохондрий, хлоропластов), а вместе с ними основных физиологических процессов растительных клеток: дыхания, фотосинтеза, транспорта, передачи сигнала и т.д., включая накопление ассимилятов в запасающих органах. Одной из главных задач современной физиологии растений является установление основных закономерностей индивидуального развития организма, включая изучение возрастной перестройки метаболизма в клетках, тканях и органах с различной специализацией и уровнем дифференциации. Наряду с изучением работы генетического аппарата клетки несомненнную значимость имеют исследования возрастных изменений энергетического обмена клетки.

Традиционный интерес к изучению физиологии и биохимии дыхания запасающих органов, в частности, корнеплода сахарной свеклы -основного объекта исследований в данной работе, обусловлен тем, что дыхание, с одной стороны, является конкурентом сахаронакопления, расходуя поступающие в корнеплод ассимиляты. С другой стороны, очевидна и необходимость дыхания как поставщика энергии и углеродных скелетов для обеспечения процессов роста и активного транспорта Сахаров через мембраны (Рубин с соавт., 1960, Курсанов, 1976, Курсанов с соавт., 1989, Getz, Klein, 1995). Известно, что дыхание запасающих органов имеет ряд особенностей, в частности, его интенсивность резко снижена по сравнению с другими органами растений, например, листьями или корнями, при этом окислительная активность митохондрий, выделенных из этих органов, отличалась не столь существенно (Day et al., 1980). В этой связи высказывается предположение, что активность митохорндрий в интактных запасающих органах каким-то образом ограничена (Day et al., 1980, см. раздел 1.4.2). Однако тогда возникает другая проблема. Известно, например, что в период сахаронакопления (у сахарной свеклы) происходит интенсивный рост корнеплода (Курсанов, Павлинова, 1967), который нуждается в энергии и промежуточных метаболитах, поставляемых митохондриями. Поэтому, представляется весьма маловероятной, способность клеток корнеплода расти и накапливать сахара с практически неработающими митохондриями. Чтобы разрешить это противоречие необходимо допустить, что дыхание запасающих тканей меняется в ходе онтогенеза, при этом возможны изменения функциональной активности митохондрий. Действительно, было показано, что структура митохондрий и других клеточных органелл подвергается существенным изменениям в ходе онтогенеза корнеплода (Холодова, Болякина, 1974, 1977). В то же время, исследования функциональной активности митохондрий, а тем более механизмов ее регуляции в ходе онтогенеза корнеплода сахарной свеклы или других вегетирующих запасающих органов, практически отсутствуют.

В литературе имеются сведения о существенных возрастных изменениях активности митохондрий животных. Так, например, в разное время выдвигались концепции старения, в основу которых были положены необратимые нарушения с возрастом энергетических процессов в митохондриях вследствие: дефицита дыхательных субстратов или повышенного их расходования (Богацкая, 1968), токсического действия активных форм кислорода (АФК) на генетический аппарат и мембраны митохондрий (Harman, 1983, Lenaz, 1998, Скулачев, 1999), реорганизации митохондриальной ДНК (Richter, 1988, Осивац, Хаманн, 1999). Большой интерес в настоящее время вызывает вопрос об участии митохондрий в процессе апоптоза - запрограммированной смерти клеток (Susin et al., 1998, раздел 1.3.1).

Ряд возрастных изменений функциональной (окислительной и фосфорилирующей) активности митохондрий был обнаружен и у растений. Показано, что структурно-функциональные изменения в митохондриях происходят, при прорастании семян (Azcon-Bieto et al., 1989, раздел 1.3.2), в период созревания некоторых плодов (раздел 1.3.4), в ходе роста корней (Miller et al., 1998, раздел 1.3.3) и листьев (Lennon et al., 1995), а также в процессе апоптоза клеток растений (Ванюшин, 2001, Robson, Vanlerberghe, 2002). Многократно показанное в подобных исследованиях изменение основных параметров дыхания, активности и даже структуры митохондрий растений и животных, в ответ на изменение функционального состояния организма под влиянием внешних (стресс) и внутренних (возраст, специфика метаболизма) факторов относится к фундаментальным физиологическим явлениям (Кондрашова, 1969, 1971, 1972, 1991, Семихатова, 1969, Жолкевич, 1972, Вартапетян с соавт., 1972, Рубин, Ладыгина, 1974, Звягильская с соавт., 1983, Lenaz, 1998, Susin et al., 1998). Исследование механизма этого явления представляет несомненный интерес и предполагает изучение сложной иерархии регуляторных систем дыхания.

Известно, что регуляция дыхания любого живого организма, в том числе растения, проявляется на всех уровнях его организации (субклеточном, клеточном, органном) и на всех этапах его жизнедеятельности (онтогенеза). В настоящее время основное внимание исследователей направлено на изучение регуляции функций митохондрий (Mackenzie, Mcintosh, 1999). Регуляция функциональной активности митохондрий базируется на изменении активности входящих в их состав ферментов, и осуществляется на генном, метаболитном и мембранном уровнях. При этом потенциальные возможности основных ферментных систем митохондрий к окислению субстратов и генерации энергии, как правило, намного превышают реальную скорость дыхания и потребности клеток в энергии, следовательно, клетка, если она хочет жить экономно (что, по-видимому, особенно важно для клеток запасающих тканей) должна обладать способностью контролировать потребление энергодающих субстратов (Рэкер, 1979). Основные представления о механизмах контроля дыхания со стороны энергопотребляющих и других процессов клеточного метаболизма, которые в основном будут интересовать нас в данной работе, были разработаны при изучении животных объектов. В частности, была установлена центральная роль аденилатной системы (или уровня АДФ и фосфата в клетке) в регуляции скорости дыхания животных тканей -дыхательный контроль и создано представление о метаболических состояниях ЭТЦ (Chance, Williams, 1956). В работах М.Н.Кондрашовой (1969,а,б, 1971, 1972) было разработано положение о более тонких изменениях метаболического состояния митохондрий, связанных с торможением сукцинатдегидрогеназы щавелевоуксусной кислотой (оксалоацетатом). Традиционно большое внимание уделяется изучению роли катионов (К , Са ) в регуляции объема матрикса и активности локализованных здесь ферментов (Ленинджер, 1966, Halestrap, 1989, 1990, McCormac et al., 1990, Garlid, 1996, Bernardi, 1999, Pozzan, Rizzuto, 2000). Исследования влияния аденилатов, катионов и других эффекторов на метаболическую активность митохондрий растений (Зайцева, 1979, Moore et al., 1994, Pastore et al., 1999, Affortit et al., 2001) имеют значительную ценность для выяснения роли подобных систем в регуляции дыхания клеток растений.

В этой связи следует отметить, что уникальные особенности организации дыхательной цепи (ЭТЦ) и системы переносчиков метаболитов в митохондриях растений (Douce, Neuburger, 1989), предполагают наличие специфических систем регуляции функциональной активности этих органелл. В частности, наряду с 4 мультиферментными комплексами переноса электронов (I-IV), а также другими компонентами, необходимыми для синтеза АТФ в соответствии с хемиосмотической теорией, ЭТЦ растений содержит альтернативные переносчики электронов (Siedow, Umbach, 1995, Vanlerberghe, Mcintosh, 1997, Moller, 1997). Постулируется, что наличие альтернативных путей переноса электронов в ЭТЦ митохондрий растений, шунтирующих все пункты энергетического сопряжения, придает ей большую гибкость и способствует адаптации дыхания к изменению условий внешней среды (Mackenzie, Mcintosh. 1999). Предполагается, что функционирование, альтернативной CN-резистентной оксидазы (раздел 1.1.4) в митохондриях растений препятствует образованию активных форм кислорода (АФК) дыхательной цепью в условиях высокого фосфатного потенциала (Wagner, Moore, 1997, Maxwell et al., 1999), а также способствует трансформации и даже утилизации углеводов, если клетка оказывается не в состоянии их полезно использовать или запасти (Palmer, 1976, 1979, Lambers, 1980, 1985). Тем не менее, несмотря на достигнутые в последнее время очевидные успехи, механизмы регулирующие дыхание растений остаются малоизучены, а имеющиеся фактические данные противоречивы (Millenaar et al., 1999, 2001).

Таким образом, исследование возрастных особенностей митохондриального дыхания и механизмов его регуляции, необходимо для выяснения роли окислительного и энергетического обмена запасающих органов в выполнении ими основной функции - накопления ассимилятов, их сохранения и использования на следующий вегетационный сезон.

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Шугаев, Александр Григорьевич

ВЫВОДЫ

1. Установлена положительная корреляция между функциональной активностью митохондрий и напряженностью основных энергопотребляющих физиологических процессов (роста и сахаронакопления), протекающих в корнеплоде сахарной свеклы на протяжении онтогенеза. Митохондрии интенсивно растущего корнеплода (возраст растений 55 - 90 дней) характеризуются высокой скоростью фосфорилирования и окисления субстратов ЦТК (в особенности, сукцината и малата). Митохондрии зрелого и, особенно, хранящегося в состоянии вынужденного покоя корнеплода находятся в низкоэнергизованном состоянии, характеризующемся низкой скоростью дыхания и синтеза АТФ.

2. В период активного роста корнеплода и накопления в нем сахарозы скорость дыхания контролируется аденилатами (дыхательный контроль), а в ткани корнеплода обнаружен максимальный уровень АТФ и высокое отношение АТФ/АДФ. При замедлении роста запасающего органа, к концу 1-го года вегетации и, особенно, при хранении зрелого корнеплода аденилатный контроль не является ведущим механизмом регуляции интенсивности дыхания и ключевую роль в контроле дыхания играет ограничение активности дегидрогеназ ЦТК. При этом происходит ограничение активности СДГ оксалоацетатом и активности НАД-зависимых дегидрогеназ ЦТК низким уровнем пула пиридиннуклеотида (НАД) в матриксе.

3. Характерной особенностью функционирования дыхательной цепи митохондрий запасающих органов растений (клубень картофеля, корнеплод свеклы) является низкая активность альтернативной CN-резистентной оксидазы (АО). На примере картофеля впервые показано, что формирование запасающей ткани сопровождается сменой доминирующих митохондриальных оксидаз. АО вносит основной вклад (до 60%) в дыхание столонов. Однако, на начальном этапе образования клубня участие АО в дыхании запасающей ткани резко снижается и основной вклад в поглощение кислорода вносит уже активность цитохромоксидазы. Низкая активность АО в митохондриях запасающих органов повышает КПД процесса окислительного фосфорилирования (коэффициент АДФ/О) и эффективность контроля дыхания со стороны аденилатов (ДК), что в итоге способствует более экономному расходованию в дыхании притекающих ассимилятов.

4. Установлено, что в составе ЭТЦ митохондрий корнеплода сахарной свеклы помимо комплекса I функционируют, по меньшей мере, две альтернативные ротенон-резистентные НАД(Ф)Н-дегидрогеназы, катализирующие окисление экзогенного (цитозольного), а также эндогенного (матриксного) НАД(Ф)Н.

5. Впервые в митохондриях растений выявлен и изучен механизм, регулирующий одновременное поступление в дыхательную цепь восстановительных эквивалентов от различных дегидрогеназ ЭТЦ. Установлено, что особенностью функционирования ЭТЦ митохондрий растущего корнеплода является жесткий контроль активности «внешней» НАД(Ф)Н-дегидрогеназы, катализирующей окисление экзогенного (цитозольного) НАД(Ф)Н, со стороны СДГ, а также комплекса I (при окислении малата) по типу «взаимного ингибирования» и доминирования более активной дегидрогеназы. При этом окисление сукцината или малата на 80-90% тормозило окисление экзогенного НАД(Ф)Н. В митохондриях зрелого и хранящегося корнеплода сукцинат не оказывал влияние1 на окисление экзогенного НАД(Ф)Н вследствие ингибирования СДГ.

6. Установлено, что проявление конкурентных отношений и субстратного предпочтения при совместном окислении субстратов в митохондриях растений зависит не только от режима работы дыхательной цепи (состояние 3, 4 или разобщенное) и активности дегидрогеназ ЭТЦ (в частности, активности СДГ), как в митохондриях животных, но и от мощности АО. В митохондриях проростков клещевины, характеризующихся высокой активностью АО, сукцинат, имеющий кинетические преимущества, лишь незначительно тормозил окисление экзогенного НАД(Ф)Н. При этом скорость дыхания существенно зависела от количества вовлеченных в дыхание дегидрогеназ ЭТЦ. При ингибировании АО торможение сукцинатом окисления экзогенного НАД(Ф)Н в митохондриях гипокотиля клещевины существенно усиливалось.

7. Установлено, что окисление одного из основных субстратов ЦТК

- яблочной кислоты, происходит в митохондриях корнеплода с участием двух ферментов: малик-энзима (М.Э.) и малатдегидрогеназы (МДГ). Впервые показано, что активность этих ферментов изменяется на различных этапах развития корнеплода: митохондрии молодого корнеплода окисляют малат преимущественно с участием М.Э., зрелого и хранящегося

- МДГ. Высокая активность М.Э. в митохондриях растущего корнеплода способствует использованию малата в качестве основного дыхательного субстрата на данном этапе онтогенеза. Доминирующая активность малатдегидрогеназы является необходимым условием повышения уровня оксалоацетата и ингибирования СДГ в митохондриях зрелого и покоящегося корнеплода.

8. Впервые установлено, что содержание кофермента НАД в матриксе митохондрий растущего корнеплода свеклы было в несколько раз выше, чем в митохондриях хранящегося (соответственно, 7.5 и 2.5 нмоль/мг белка). Показано, что низкий уровень кофермента ограничивал скорость окисления НАД-зависимых субстратов и инактивировал ротенон-нечувствительную НАДН-дегидрогеназу в митохондриях хранящегося корнеплода. На основании собственных и литературных данных, впервые сформулирована и экспериментально обоснована гипотеза о существовании нового, по-видимому, специфичного для растений, механизма регуляции дыхания и активности НАД-зависимых дегидрогеназ ЦТК, суть которого заключается в изменении концентрации кофермента НАД в матриксе. Важным элементом этого механизма является изменение внутримитохондриального объема.

9. Впервые на митохондриях растений показана и частично охарактеризована работа К+-унипортера, обеспечивающего селективный, чувствительный к АТФ, транспорт калия в матрикс (по градиенту концентрации или под влиянием Д\|/) и высокоамплитудное набухание митохондрий корнеплода свеклы в растворах КС1. Полученые результаты свидетельствуют также о функционировании в этих органеллах чувствительного к хинину К+/Н+-антипортера, который катализирует удаление К+ из матрикса и сжатие набухших в КС1 митохондрий в присутствии АТФ. Постулируется центральная роль этих механизмов в

257 регуляции объема митохондрий растений, в том числе, митохондрий запасающих органов.

10. Изучено влияние сопряженного с дыханием набухания в растворе КС1 на функциональную активность митохондрий, выделенных из корнеплода сахарной свеклы на различных этапах онтогенеза. Установлено, что транспорт калия эффективно разобщает процесс окислительного фосфорилирования и, по-видимому, может использоваться для сброса избыточных восстановительных эквивалентов в митохондриях растущего корнеплода, выполняя, таким образом, роль отсутствующей АО. Наряду с этим, в митохондриях зрелого и покоящегося корнеплода накопление К+ в матриксе и увеличение внутримитохондриального объема приводит к резкому падению скорости окисления малата и других НАД-зависимых субстратов ЦТК, вследствие снижения концентрации НАД в матриксе.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Шугаев, Александр Григорьевич, 2003 год

1. Акименко В.К. 1989. Альтернативные оксидазы микроорганизмов,- М.:1. Изд-во «Наука». 263с.

2. Андреев И.М. 1993. Роль осмотических факторов в контроле вакуолярнойаккумуляции Сахаров в запасающих клетках высших растений. -Физиология растений. Т. 40. С. 323 326.

3. Богацкая Л.Н. 1968. Приспособительные возможности стареющегоорганизма. Киев : Изд-во «Наукова думка». 131с.

4. Болякина Ю.П. 1986. Ультраструктурные особенности запасающейпаренхимы корня сахарной свеклы в связи с сахаронакоплением. Автореф. канд. дисс. ИФР, М. 22с.

5. Болякина Ю.П., Холодова В.П. 1974. Некоторые особенности ультраструктуры запасающей паренхимы корней сахарной свеклы. -Физиология растений. Т. 21. С.573 577.

6. Болякина Ю.П., Холодова В.П. 1977. Деструктивные изменения клетокзапасающей паренхимы корня сахарной свеклы второго года вегетации.- Физиология растений. Т. 24. С. 933-940.

7. Ванюшин Б.Ф. 2001. Апоптоз у растений. Успехи биологическойхимии. Т. 41. С. 3-38.

8. Варакина Н.Н., Хавкин Э.Е. 1974. Формирование метаболических системв растущих клетках растений. Онтогенез. Т. 5. С. 61 -69.

9. Вартапетян Б.Б., Андреева И.Н., Маслова И.П. 1972. Ультраструктурамитохондрий в условиях аноксии и повышенных температур. -Физиология растений. Т. 19. С. 1105 1111.

10. Виноградов А.Д. 1985. Сукцинатдегидрогеназа. Успехи биологическойхимии. XXVI. М.: Изд-во «Наука». С. 64 82.

11. Виноградов А.Д. 1986. Сукцинат-убихинон редуктазный участок дыхательной цепи. Биохимия. Т. 51. С. 1944 - 1973.

12. Войников В.К., Тимина М.А. 1983. Зависимость активности сукцинатдегидрогеназ митохондрий озимой ржи от температуры и концентрации сукцината. Физиология растений. Т. 30. С. 365 - 370.

13. Головко Т.К. 1999. Дыхание растений. С.-П. Изд-во «Наука». 205с.

14. Дубинина И.М. 1969. Инвертаза и ее индуцирование в корневой системесахарной свеклы. Физиология растений. Т. 16. С. 981 - 987.

15. Епринцев А. Т., Попов В.Н. 1999. Ферментативная регуляция метаболизма ди- и трикарбоновых кислот в растениях. Воронеж: Изд-во Воронежского ун-та. 192с.

16. Жолкевич В.Н. 1972. Энергетика дыхания высших растений в условияхводного дефицита. М.: Изд-во «Наука». 230с.

17. Зайцева М. Г. 1979. Участие элементов минерального питания в регуляции дыхания растений. Автореф. докт. дисс. ИФР, М. 36с.

18. Зайцева М.Г., Зубкова Н.К. 1979. Накопление и потеря катионовмитохондриями при изменении их метаболических состояний. -Физиология растений. Т. 26. С. 1085.

19. Зайцева М.Г., Касумова И.В. 2001. Окисление различных субстратовмитохонриями в зависимости от концентрации осмотика в среде. -Физиология растений. Т. 48. С. 62-68.

20. Зайцева М.Г., Титова З.В. 1974. Оксалоацетатное торможение в митохондриях корней пшеницы. -Физиология растений. Т.21. С.229 -237.

21. Звягильская Р.А. 1991. Структура и функциональная активность дрожжевых митохондрий. Итоги науки и техники. Сер. Биологическая химия. М.: ВИНИТИ. Т. 36. 172с.

22. Звягильская Р.А., Зеленщикова В .А., Уральская J1.A., Котельникова А.В.1981. Изучение дыхательной системы Endomyces magnusii. Свойства клеток, выращенных на глицерине. Биохимия. Т. 46. С. 3 -10.

23. Звягильская Р.А., Зеленщикова В.А., Бурбаев Д.Ш. 1983. Обратныйперенос электронов в митохондриях дрожжей Endomyces magnusii, выращенных на сахарозе. Биохимия. Т. 48.С.3-10.

24. Звягильская Р.А., Зеленщикова В.А., Бурбаев Д.Ш. Котельникова А.В.1982. Новые данные об обратном переносе электронов в дыхательной цепи дрожжевых митохондрий: индукция обратного переноса экзогенным НАДН. Докл. АН СССР. Т. 263. С. 491 - 493.

25. Зеленщикова В.А., Бурбаев Д.Ш., Звягильская Р.А. 1983. Обратныйперенос электронов в митохондриях дрожжей Endomyces magnusii, выращенных на глицерине. Биохимия. Т. 48. С. 186 -192.

26. Зыкова В.В., Колесниченко А.В., Войников В.К. 2002. Участие активныхформ кислорода в реакции митохондрий растений на низкотемпературный стресс. Физиология растений. Т. 49. С. 302 - 310.

27. Игамбердиев А.У., Фалалеева М. И. 1994. Выделение и характеристикасукцинатдегидрогеназного комплекса митохондрий растений. -Биохимия. Т. 59. С. 1198 1206.

28. Колесниченко А.В., 2002. Роль белка холодового шока БХШ 310 ибелков его семейства в защите растений от низкотемпературного стресса. Автореф. докт. дисс. СИФИБР, Иркутск. 51с.

29. Кондрашова М.Н. 1969, а. Возможное биологическое значениеограничения окисления сукцината щавелевоуксусной кислотой В сб. «Митохондрии. Биохимические функции в системе клеточных органелл». М.: Изд-во «Наука». С. 23 - 29.

30. Кондрашова М.Н. 1969, б. Метаболические состояния митохондрий иосновные физиологические состояния живой ткани. В кн. «Свойства и функции макромолекул и макромолекулярных систем». М.: Изд-во «Наука», С. 135 139.

31. Кондрашова М.Н. 1971. Градации метаболического состояния митохондрий и реактивность ткани. В сб. «Митохондрии. Структура и функции в норме и патологии». М.: Изд-во «Наука». С. 23 - 40.

32. Кондрашова М.Н. 1972. Накопление и использование янтарной кислотыв митохондриях. В сб.: Митохондрии. Молекулярные механизмы ферментативных реакций. М.: Изд-во «Наука». С. 151 -170.

33. Кондрашова М.Н. 1985. Двигатель живого.- В сб. «Проблемыбиоэнергетики», М.: Изд-во «Знание». С. 17-38.

34. Кондрашова М.Н. 1987. Структурно-кинетическая организация циклатрикарбоновых кислот при активном функционировании митохондрий. Биофизика. Т. 34. С. 450 - 458.

35. Кондрашова М.Н. 1991. Взаимодействие процессов переаминирования иокисления карбоновых кислот при разных функциональных состояниях ткани. Биохимия. Т. 56. С. 388 - 405.

36. Кондрашова М.Н., Ахмеров Р.Н., Григоренко Е.В., Федотчева Н.И.,

37. Миронова Г.Д. 1986. Торможение окисления янтарной кислоты как причина снижения теплопродукции при спячке. В кн.: Эволюционные аспекты гипобиоза и зимней спячки. Д.: Изд-во «Наука». С. 55 - 60.

38. Кондрашова М.Н., Григоренко Е.В. 1981. Защита от стресса на уровнемитохондрий. Развитие щавелевоуксусного ограничения дыханиямитохондрий при продолжительном стрессе и введении серотонина. Препринт ОНТИ НЦБИ, Пущино. 16с.

39. Котельникова А.В., Звягильская Р.А. 1973. Биохимия дрожжевыхмитохондрий. М.: Изд-во «Наука». 240с.

40. Курсанов A.JI. 1976. Транспорт ассимилятов в растении. М.: Изд-во1. Наука». 646с.

41. Курсанов А.Л., Павлинова О.А. 1967. Сахаронакопление как функцияростовых процессов в корне сахарной свеклы. Физиология растений. Т. 14. С. 21-28.

42. Курсанов A.JI., Прасолова М.Ф., Павлинова О.А. 1989. Пути превращения сахарозы в корне сахарной свеклы в связи с его аттрагирующей функцией. Физиология растений. Т. 36. С. 629 -641.

43. Ленинджер А. 1966. Митохондрии. Молекулярные основы структуры ифункции. -М.: Изд-во «Мир». 314с.

44. Ленинджер А. 1974. Биохимия. М.: Изд-во «Мир». 958с.

45. Меденцев А.Г., Аринбасарова А.Ю., Акименко В.К. 1999. Регуляция ифизиологическая роль цианидрезистентной оксидазы у грибов и растений. Биохимия. Т. 64. С. 1457- 1472.

46. Метлицкий Л.В., Салькова Е.Г. 1984. Биохимическая природа старениярастительных тканей (на примере сочных плодов). В кн.: Биохимия иммунитета, покоя, старения растений (Ред., Березин И.В.) М.: Изд-во «Наука». С. 181 - 206.

47. Мокроносов А.Т. 1981. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М.: Издво «Наука». 196с.

48. Обручева Н.В. 1965. Физиология растущих клеток. М.: Изд-во «Наука».111с.

49. Обручева Н.В., Ковадло JI. С. 1985. Два этапа усиления дыханияпрорастающих семян гороха по мере увеличения их оводненности. -Физиология растений. Т. 32. С. 753 761.

50. Оканенко А.С. 1968. Биология и селекция сахарной свеклы. М.: Изд-во1. Колос». 775с.

51. Осивац Х.Д., Хаманн А. 1997. Реорганизация ДНК и биологическоестарение. Биохимия. Т. 62. С. 1491 - 1502.

52. Павлинова О.А. 1971. Метаболизм сахарозы в свекловичном корне.

53. Физиология растений. Т. 18. С. 722 730.

54. Павлинова О.А. 1976. Метаболизм сахарозы и сахаронакопление в корнесахарной свеклы. Физиол. и биохим. культ, растений. Т. 8. С.451 -455.

55. Павлинова О.А., Холодова В. П. 1985. Биохимические и мембранныеаспекты сахаронакопления. В сб.: Новые направления в физиологии растений. М.: Изд-во «Наука». С. 252 - 274.

56. Ракитин Ю.В. 1955. Ускорение созревания плодов. М.: Изд-во АН1. СССР. 168с.

57. Рубин Б.А., Любарская JI.C., Гулидова И.В. 1960. Физиологобиохимические особенности сахарной свеклы. М.: Изд-во АН СССР. 112с.

58. Рубин Б.А., Ладыгина М.Е. 1974. Физиология и биохимия дыханиярастений. М.: Изд-во Моск. ун-та. С. 354 493.

59. Рэкер Э. 1979. Биоэнергетические механизмы: новые взгляды. М.: Издво «Мир». 216с.

60. Семихатова О.А. 1969. Смена дыхательных систем. JL: Изд-во1. Наука». 124с.

61. Скулачев В.П. 1962. Соотношение окисления и фосфорилирования вдыхательной цепи. М.: Изд-во АН СССР, 156с.

62. Скулачев В.П. 1969. Аккумуляция энергии в клетке. М.: Изд-во1. Наука». 440с.

63. Скулачев В.П. 1989. Энергетика биологических мембран. М.: Изд-во1. Наука». 564с.

64. Скулачев В.П. 1996. В своем межмембранном пространстве митохондрия таит «белок самоубийства», который, выйдя в цитозоль, вызывает апоптоз. Биохимия. Т. 61. С. 2060 - 2063.

65. Скулачев В.П. 1997. Старение организма особая биологическаяфункция, а не результат поломки сложной живой системы: биохимическое обоснование гипотезы Вейсмана. Биохимия. Т. 62. С. 1491 - 1502.

66. Скулачев В.П. 2001. Явления запрограммированной смерти. Митохондрии, клетки и органы: роль активных форм кислорода. -Соросовский образовательный журнал. Т. 7. С. 4 -10.

67. Титова З.В. 1977. Регуляция дыхания растительных митохондрий внорме и при пониженной температуре. Автореф. канд. дисс, ИФР, М. 24с.

68. Туркина М.В., Соколова С.В. 1971. Методы определения моносахаридови олигосахаридов. В сб. Биохимические методы в физиологии растений. М.: Изд-во «Наука», С. 7 - 34.

69. Чайлахян М.Х., Аксенова Н.П., Кефели В.И. 1973. О терминологиионтогенеза растений. М.: Изд-во «Наука», 39с.

70. Шольц К.Ф., Островский Д.Н. 1965. Ячейка для амперометрическогоопределения кислорода. Лаб. Дело. № 6. С. 375 - 379.

71. Шугаев А.Г. 1990. Сопряженное с дыханием набухание в КС1 митохондрий корнеплода сахарной свеклы. Биохимия. Т. 55. С. 731 - 736.

72. Шугаев А.Г. 1990,а. Окислительная активность митохондрий, выделенных из корнеплодов сахарной свеклы второго года вегетации. -Физиология растений. Т. 37. С. 263 270.

73. Шугаев А.Г. 1991. Некоторые особенности структурной организации иокислительной активности дыхательной цепи митохондрий растений. Успехи современной биологии. Т. 52. С. 178 - 191.

74. Шугаев А.Г. 1999. Альтернативная CN-резистентная оксидаза митохондрий растений: структурная организация, механизмы регуляции активности, возможная физиологическая роль. Физиология растений. Т. 46. С. 307 - 320.

75. Шугаев А.Г., Выскребенцева Э.И. 1982. Выделение интактных митохондрий из корнеплода сахарной свеклы. Физиология растений. Т. 29. С. 799-803.

76. Шугаев А.Г., Выскребенцева Э.И. 1985. Действие ротенона на окисление НАД-зависимых субстратов митохондриями корнеплода сахарной свеклы. Физиология растений. Т. 32. С. 1071 - 1078.

77. Шугаев А.Г., Выскребенцева Э.И. 1988. Сукцинат «монополизирует»дыхательную цепь митохондрий растущих корнеплодов сахарной свеклы. Физиология растений. Т. 35. С. 421 - 428.

78. Шугаев А.Г., Выскребенцева Э.И. 1994. Конкурентные отношения присовместном окислении экзогенного НАД(Ф)Н и интермедиатовцикла трикарбоновых кислот в митохондриях корнеплода сахарной свеклы. Физиология растений. Т. 41. С. 49 - 55.

79. Adams Р.В. 1970. Effect of adenine nucleotide on the respiration of carrotroot slices. Plant Physiol. V. 45. P. 495 - 499.

80. Adams J.M., Cory S. 1998. The bcl-2 protein family: arbiters of cell survival.- Science. V. 281. P. 1322 -1325.

81. Affourtit C., Krab K., Moore A.L. 2001. Control of plant mitochondrialrespiration. Biochim. Biophys. Acta. V. 1504. P. 58 - 69.

82. Agius S.C., Bykova N.Y., Igamberdiev A.U., Moller I.M. 1998. The internalrotenon-insensitive NADPH dehydrogenase contributes to malate oxidation by potato tuber and pea leaf mitochondria. Physiol. Plant. V. 104. P. 329-336.

83. Akimitsu K., Kohmoto K., Otani H., Nishimura S. 1989. Host-specific effectsof toxin from the rough lemon pathotype of Alternaria alternata on mitochondria. Plant physiol. V. 89. P. 925 - 931.

84. Almeida A.M., Jarmuszkiewicz W., Khomsi H., Arruda P., Vercesi A.E.,

85. Sluse F.E. 1999. Cyanide-resistant, Atp-synthesis-sustained, and uncoupling-protein-sustained respiration during postharvest ripening of tomato fruit. Plant Physiol. V. 119. P. 1323 - 1329.

86. Arron G.P., Edwards G. 1979. Oxidation of reduced nicotinamid adenindinucleotid phosphate by plant mitochondria. Can. J. Biochem. V. 57. P. 1392-1399.

87. Asahi Т., Nishimura M. 1974. Regulatory function of malate dehydrogenaseisoenzymes in the cotyledons of mung bean. J. Biochem. V. 73. P. 217 -225.

88. Atkin O.K., Westbeek M.H.M., Cambridge M.L., Lambers H., Pons T. 1997.1.af respiration in ligth and darkness. A comparison of slow- and fast-growing poa spesies. Plant Physiol. V. 113. P. 961 - 965.

89. Azcon-Bieto J., Lambers H., Day D.A. 1983. Respiratory properties ofdeveloping bean and pea leaves. Aust. J. Plant Physiol. V. 10. P. 237 -245.

90. Azcon-Bieto J., Salom C.I., Mackie N.D., Day D.A. 1989. The regulation ofmitochondrial activity during greening and senescence of soybean cotyledons. Plant Physiol. Biochem. V. 27. P. 827 - 836.

91. Bahr J.T., Bonner W.D. 1973. Cyanide-insensitive respiration. I. The steadystates of skunk cabbage spadix and bean hypocotyl mitochondria. J. Biol. Chem. V. 248. P. 3441 - 3445.

92. Ball K.L., Green J.H., Rees T.A. 1991. Glycolysis at the climacteric ofbananas. Eur. J. Biochem. V. 197. P. 265 - 269.

93. Bartoli C.S., Pastore G.M., Foyer C.H. 2001. Ascorbate biosynthesis inmitochondria is linked to the electron trasport chain between complex III and IV. Plant Physiol. V. 123. P. 335 - 343.

94. Baum G., Lev-Yadum S., Fridmann Y., Arazi Т., Katsnelson H., Zik M.,

95. Fromm H. 1996. Calmodulin binding to glutamate decarboxylase is required for regulation of glutamate and GABA metabolism and normal development of plants. EMBO J. V. 15. P. 2988 - 2996.

96. Beavis A.D., Garlid K.D. 1990. Evidence for the allosteric regulation of themitochondrial K+/H+ antiporter by matrix protons. J. Biol. Chem. V. 265. P. 2538-2545.

97. Beavis A.D., Lu Y., Garlid K.D. 1993. On the regulation of K+ uniport inintact mitochondria by adenine nucleotides and nucleotide analogs. J. Biol. Chem. V. 268. P. 997 - 1004.

98. Beevers H. 1979. Microbodies in higher plants. Ann. Rev. Plant Physiol. V.30. P. 159- 193.

99. Bendall D.S., Bonner W.D. 1971. Cyanide-insensitive respiration in plantmitochondria. Plant Physiol. V. 47. P. 236 - 245.

100. Bennett A.B., Smith G.M., Nichols B.G. 1987. Regulation of climactericrespiration in ripening avocado fruit. Plant Physiol. V. 83. P. 973 - 976.

101. Bernardi P. 1999. Mitochondrial transport of cations: channels, exchangers,and permeability transition. Phys. Rev. V. 79. P. 1127 - 1155.

102. Bernardi P., Basso E., Colonna R., Costantini P., Di Liza F., Ericsson O.,

103. Fontanic E., Forte M., Ichas F., Massari S., Nicolli A., Petronilli V., Scorrano L. 1998. Perspectives on the mitochondrial permeability transition. Biochim. Biophys. Acta. V. 1365. P. 200 - 206.

104. Bingham I.J., Stevenson E.A. 1995. Causes and location of non-specificeffects of SHAM on 02 uptake by wheat roots. Physiol. Plant. V. 93. P. 427-434.

105. Bleecker A.B. 1999. Ethylene perception and signalling: an evolutionaryperspective. Trends Plant Sci. Y. 4. P. 269 - 274.

106. Bligny R., Douce R. 1977. Mitochondrial of isolated plant cells (Acerpseudoplatanus L.) II. Coper deficiency effects on cytochrome с oxidase and oxygen uptake.- Plant Physiol. V. 60. P. 675 679.

107. Bodenstein-Lang J., Buch A., Follmann H. 1989. Animal and plantmitochondria contain specific thioredoxins. FEBS Lett. V. 258. P. 22 -26.

108. Bown A., Shelp B. 1997. The metabolism and functions of y-aminobutyricacid. Plant Physiol. V. 115. P. 1 - 5.

109. Bradford M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation ofmicrogram quentities of protein utilising the principle of protein-dye binding. Analyt. Biochem. V. 72. P. 248 - 254.

110. Braisfold M.A., Thompson A.G., Kaderbhai N., Beechey R.B. 1986.

111. Pyruvate metabolism in castore-bean mitochondria. Biochem. J. V. 239. P. 355 - 361.

112. Brand M.D., Murphy M.P. 1987. Control of electron flux through therespiratory chain in mitochondria and cells. Biol. Rev. V. 62. P. 141 -193.

113. Brandt U. 1997. Proton-traslocation by membrane-bound NADH:ubiguinone-oxidoreductase (complex I) through redox-gated ligand conduction. -Biochim.Biophys.Acta. V. 1318. P. 79-91.

114. Braun H.-P., Emmermann M., Kruft V., Schmitz U.K. 1992. The generalmitochondrial processing peptidase from potato is an integral part of cytochrome с reductase of the respiratory chain. EMBO J. V. 11. P. 3219-3227.

115. Braun H.-P., Schmitz U.K. 1995. Are the "core" proteins of themitochondrial bcj complex evolutionary relicts of a processing protease? Trends Bichem. Sci. V. 20. P. 171 - 175.

116. Braun H.-P., Schmitz U.K. 1992. Affinity purification of the cytochrome сreductase from potato mitochondria. Eur. J. Biochem. V. 208. P. 761 -767.

117. Brierley G.P., Davis M.N., Jung D.W. 1988. Respiration-dependentcontraction of swollen heart mitochondria. Partisipation of the K+/H+ antiporter. J. Bioenerg. Biomembr. V. 20. P. 229 - 242.

118. Brierley G.P., Jung D.W. 1988. antiport in mitochondria. J.

119. Bioenerg. Biomembr. V. 20. P. 193 209.

120. Brierley G.P., Jurkovwitz M.S., Farooqui Т., Jung D.W. 1984. K+/H+antiport in heart mitochondria. J. Biol. Chem. V. 259. P. 14672 - 14678.

121. Brinkman F.G., van der Plas L.H.W., Verleur J.D. 1973. Purine nucleotidelevels in potato tuber tissue and its mitochondrial fraction after wounding. Z. Pflanzenphysiol. V. 57. P. 364 - 372.

122. Buchanan B.B. 1991. Regulation of C02 assimilation in oxygenicphotosynthesis: the ferredoxin/thiredoxin system. Perspective on its discovery, present status, and future development Arch. Biochem. Biophys. V. 288. P. 1-9.

123. Budde R.I.R., Randall D.D. 1990. Pea leaf mitochondrial pyruvatedehydrogenase complex is inactivated in vivo in a light-dependent manner. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 87. P. 673 - 676.

124. Buhanan-Wollaston V. 1997. The molecular biology of leaf senescence. J.

125. Exp. Bot. V. 48. P. 181 199.

126. Bukhov N.G., Bondar V.V., Drosdova I.S. 1995. The effect of blue or redlight on ATP and ADP content in primary barley leaves. Planta. V. 196. P. 211 - 216.

127. Burbaev D.S., Vakhnina L.V., Zoz N.N. 1988. Three iron-sulfur centers ofpea mitochondria. Biochim. Biophys. Acta. V. 936. P. 289 - 293.

128. Burke J.J., Siedow J.N., Moreland D.E. 1982. Succinate dehydrogenase. Apartial purification from mung bean hypocotyls and soybean cotyledons. Plant Physiol. V. 70. P. 1577 -1581.

129. Bykova N.V., Moller I.M. 2001. Involvement of matrix NADP turnover inthe oxidation of NAD+-linked substrates by pea leaf mitochondria. -Physiol. Plant. V. 111. P. 448 456.

130. Bykova N.V., Rasmusson A.G., Igamberdiev A.E., Garderstrom P., Moller

131. M. 1999. Two separate transhydrogenase activities are present in plant mitochondria Biochem. Biophys. Res. Commun. V.265. P. 106 - 111.

132. Cai J., Jones D.P. 1998. Superoxid in apoptosis. Mitochondria generationtriggered by cytochrome с loss. J. Biol. Chem. V. 273. P. 11401 -11404.

133. Capaldi R.A., Gonzalez D., Halphen D., Zhang Y.-Z., Yanamura W. 1988.

134. Complexity and tissue specificity of the mitochondrial respiratory chain. J. Bioenerg. Biomembr. V. 20. P. 291 -311.

135. Casolo V., Braidot E., Chiandussi E., Macri F., Vianello A. 2000. The roleof mild uncoupling and non-coupled respiration in the regulation of hydrogen peroxide generation by plant mitochondria.- FEBS Lett. V. 474. P. 53 -57.

136. Casolo V., Zancani M., Macri F., Vianello A. 1998. Coordinate control by

137. Mg of the phosphorylative activity and the succinate dehydrogenase of higher plant mitochondria. Plant Sci. V. 136. P. 149 - 157.

138. Casolo V., Micolini S., Macri F., Vianello A. 2002. Pyrophosphate importand synthesis by plant mitochondria. Physiol. Plant. V. 114. P. 516 -523.

139. Chance В., Hollunder G. 1961. The interaction of energy an electron transferreactions in mitochondria. —J. Biol. Chem. V. 236. P. 1545 1548.

140. Chance В., Williams G.R. 1956. The respiratory chain and oxidativephosphorylation. -Edv. Enzymol. V. 17. P. 65 134.

141. Chang C., Shockey J.A. 1999. The ethylene-response pathway: signalperception to gene regulation. Curr. Opinion Plant Biol. V. 2. P. 352 -358.

142. Chapman E., Wright L.C., Raison J.K. 1979. Seasonal changes in structureand function of mitochondrial membranes of artichoke tubers. A requisite for surviving low temperatures during dormancy. —Plant Physiol. V. 63. P. 363-366.

143. Chauveau M., Lance C. 1991. Purification and partial characterization oftwo soluble NAD(P)H dehydrogenases from Arum maculatum mitochondria.- Plant Physiol. V. 95. P. 934 942.

144. Chauveau M., Tuguet C. 1985. Changes in structure and activities of Arummaculatum mitochondria during spadix development. Biol. Cell. V. 53. P. 51-60.

145. Chivasa S., Murphy A.M., Naylor M., Carr J.P. 1997. Salicylic acidinterferes with tobacco mosaic virus replication via a novel salicylhydroxamic acid-sensitive mechanism. Plant Cell. V. 9. P. 547 -557.

146. Cholewa E, Cholewinski A.J., Shelp B.J., Snedden W.S., Bown A.W. 1997.

147. Cold shock-stimulated y-aminobutyric acid synthesis is mediated by anincrease in cytosolic Ca , not by increase in cytosolic H . Can. J. Bot. V. 75. P. 375 -382.

148. Considine M.J., Oliver D., Whelan J. 2001. The expression of alternativeoxidase and uncoupling protein during fruit ripening in mango. Plant Physiol. V.126. P. 1619 - 1629.

149. Cook N.D., Cammack R. 1984. Purification and characterization of therotenone-insensitive NADH dehydrogenase of mitochondria from Arum maculatum. Eur. J. Biochem. V. 141. P. 573 - 577.

150. Coperland L., Turner J.F. 1987. The regulation of glucolysis and the pentosephosphate pathway. In: The Biochemistry of Plants. A comprehensive Treatise. V. 11 (Ed. Davies D.D.), San Diego e.a.: Academic Press. P. 107- 128.

151. Costa A.D.T., Nantes I.L., Jezek P., Leite A., Arruda P., Vercesi A.E. 1999.

152. Plant uncoupling mitochondrial protein activity in mitochondria isolated from tomatoes at different stages of ripening J. Bioenerg. Biomembr. V. 31. P. 527-533.

153. Costantini P., Chernyak B.V., Petronilli V., Bernardi P. 1996. Modulation ofthe mitochondrial permeability transition pore by pyridine nucleotides and dithiol oxidation at two separate sites. J. Biol. Chem. V. 271. P. 6746-6751.

154. Cottingham I.R., Moore A.L. 1984. Partial purification and properties of theexternal NADH dehydrogenase from cuckoo-pint (Arum maculatum) mitochondria. Biochem. J. V. 224. P. 171 - 179.

155. Cottingham I.R., Moore A.L. 1988. Analysis of NADH dehydrogenasesfrom plant mung bean (Phaseolus aureus). mitochondrial membranes onnon-denaturing polyacrylamide gels and purification of Complex I by band excision. Biochem J. V.254. P.303 -305.

156. Cowley R.C., Palmer J.M. 1980. Interaction between exogenous NADHoxidase and succinate oxidase in Jerusalem artichoke (.Helianthus tuberosus) mitochondria. J. Exp. Bot. V. 31. P. 199 - 207.

157. Dangl J.L., Dietrich R.A., Richberg M.H. 1996. Death don't have no mercy:cell death programs in plant-microbe interactions. The Plant Cell. V. 8. P. 1793 - 1807.

158. Day D.A., DeVos O.C., Wilson D., Lambers H. 1985. Regulation ofrespiration in the leaves and roots of two lolium perenne populations with contrasting mature leaf respiration rstes and crop yields. Plant Physiol. V. 78. P. 678 - 683.

159. Day D.A., Dry I.B., Soole K.L., Wiskich J.T., Moore A.L. 1991. Regulationof alternative pathway activity in plant mitochondria. Deviations from Q-pool behaviour during oxidation of NADH and quinols. Plant physiol. V. 95. P. 948-953.

160. Day D.A., Hanson J.B. 1977. On methods for isolation of mitochondriafrom etiolated shoots. Plant Sci. Lett. V. 11. P. 99 - 104.

161. Day D.A., Krab K., Lambers H.5 Moore A.L., Siedow J.N., Wagner A.M.,

162. Wiskich J.T. 1996. The cyanide-resistant oxidase: to inhibit or not to inhibit, that is the question. Plant Physiol. V. 110. P. 1-2.

163. Day D.A., Millar A.H., Wiskich J.T., Whelan J. 1994. Regulation ofalternative pathway activity by pyruvate in soybean mitochondria. -FEBS Lett. V. 329. P. 259 262.

164. Day D.A., Moore A.L., Wiskich J.T., Azcon-Bieto J. 1988. The regulationof nonphosphorylating electron transport pathways in soybean cotyledon mitochondria and its implications for fat metabolism. Plant Physiol. V. 86. P. 1199-1204.

165. Day D.A., Neuburger M., Douce R., Wiskich J.T. 1983. Exogenous NAD+effects on plant mitochondria. A reinvestigation of the transhydrogenase hypothesis. Plant Physiol. V. 73. P. 1024 - 1027.

166. Day D.A., Wiskich J.T. 1984 Transport processes of isolated plantmitochondria. Physiol. Veg. V. 22. P. 241 - 261.

167. De Virvill J.D., Moreau F., Denis M. 1994. Proton to electron stoihiometryof the cytochrome с oxidase proton pump in plant mitoplast. Plant Physiol. Biochem. V. 32. P. 85 - 92.

168. De Yries S., Grivell L.A. 1988. Purification and characterization of arotenone-insensitive NADH-Q6 oxidoreductase from mitochondria of Saccharomyces cerevisiae.- Eur. J. Biochem. V. 176. P. 377 384.

169. Degli Esposti M., Flammini E., Zannoni D. 1985. Functional characteristicsand partial purification of the ubiquinol-cytochrome с oxidoreductase from higher plant mitochondria (Helifnthus tuberosus). Plant Physiol. V. 77. P. 758-764.

170. Denis M., Richaud P. 1985. Cytochrome с oxidase in plant mitochondria.

171. Electron transfer after flash photolysis at low temperature of the CO-bound half-reduced complex. Eur. J. Biochem. V. 147. P. 533 - 539.

172. Dion M., Chamberland H., St.-Michel С., Plante M., Darvean A., Lafontaine

173. J.G., Brisson L.F. 1997. Detection of a homologue of bcl-1 in plant cells. -Biochem. Cell. Biol. V. 75. P. 457 461.

174. Divan J.J., Harley Т., Sanadi D.R. 1988. Reconstitution of transmembrane

175. K+ transport with a 53 kilodalton mitochondrial protein. Biochem. Biophys. Res. Commun. V. 153. P. 224 - 230.

176. Dixon L.K., Forde B.G., Forde J., Leaver C.J. 1980. Mitochondrialbiogenesis in cotyledons of V.faba during germination. In: Organization and Expression Mitochondrial Genome. (Ed., Dixon L.K.) Amsterdam e.a.,: Ediburgh Univ. Press. P. 365 - 368.

177. Dizengremel P., Tuguet C. 1984. Changes in respiration and mitochondrialactivity in cotyledons from imbibition to senescence. Physiol. Yeg. V. 22. P. 687-700.

178. Douce R., Bonner W.D. 1972. Oxaloacetate control of Krebs cycle inpurified plant mitochonria. Biochem. Biophys. Res. Commun. V. 47. P. 619-624.

179. Douce R., Christensen E.L., Bonner W.D. 1972. Preparation of intact plantmitochondria. Biochim. Biophys. Acta. V. 275. P. 148 - 160.

180. Douce R, Manella C.F., Bonner W.D. 1973. The external NADHdehydrogenases of intact plant mitochondria. Biochim. Biophys. Acta. V. 292. P. 105-116.

181. Douce R., Neuburger M. 1989. The uniqueness of plant mitochondria.

182. Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. V. 40. P. 371 414.

183. Douce R., Neuburger M., Givan C.V. 1986. Regulation of siccinateoxidation by NAD+ in mitochondria purified from potato tubers. -Biochim. Biophys. Acta. V. 850. P. 64-71.

184. Drury R.E., McCollum J.P., Carrison S.A. 1968. Properties of succinateoxidation in tomato fruit mitochondria. Plant Physiol. V. 43. P. 248 -254.

185. Dry I.B., Wiskich J.T. 1982. Role of the external ATP/ADP ratio in thecontrol of plant mitochondria respiration. Arch. Biochem. Biophys. V. 217. P. 72-79.

186. Dry I.B., Bryce J.H., Wiskich J.T. 1987. Regulation of mitochondrialrespiration. In: The Biochemistry of Plants. A comprehensive Treatise. V. 11. (Ed., Davies D.D.), San Diego, e.a.: Academic Press. P. 213 - 252.

187. Dry I.B., Day D.A., Wiskich J.T. 1983. Preferential oxidation of glycine bythe respiratory chain of pea leaf mitochondria. FEBS Lett. V. 158. P. 154- 158.

188. Duque P., Arrabaca J.D. 1999. Respiratory metabolism during cold storageof apple fruit. II. Alternative oxidase is induced at the climacteric. -Physiol. Plant. V. 107. P. 24 31.

189. Ebbighausen H., Chen J., Heldt H.W. 1985. Oxaloacetete traslocator in plantmitochondria. Biochim. Biophys. Acta. V. 810. P. 184 - 199.

190. Edman K., Ericson I., Moller I.M. 1985. The regulation of exogenous

191. NAD(P)H oxidation in spinach (Spinacia oleracea) leaf mitochondria by pH and cations. Biochem. J. V. 232. P. 471 - 477.

192. Ehrenshaft M., Brambl R. 1990. Respiration and mitochondrial biogenesisin germinating embryos of maize. Plant Physiol. V. 93. P. 295 - 304.

193. Elthon Т.Е., Mcintosh L. 1986. Characterization and solubilization of thealternative oxidase of Sauromatum guttatum mitochondria. Plant Physiol. V. 82. P. 1 - 6.

194. Elthon Т.Е., Mcintosh L. 1987. Identification of the alternative terminaloxidase in higher plant mitochondria. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 84. P. 8399-8403.

195. Elthon Т.Е., Nickels R.L., Mcintosh L. 1989. Monoclonal antibodies to thealternative oxidase of higher plant mitochondria. Plant Physiol. V. 89. P. 1311 - 1317.

196. Emmermann M., Braun H.-P., Schmitz U.K. 1993. The two high molecularweight subunits of cytochrome с reductase from potato are immunologically related to the mitochondrial processing enhancing protein. Biochim. Biophys. Acta. V. 1142. P. 306 - 310.

197. Eriksson A.-C., Glasser E. 1992. Mitochondrial processing proteinase: Ageneral processing proteinase of spinach leaf mitochondrial is a membrane bound enzyme. - Biochim. Biophys. Acta. V. 1140. P. 208 -214.

198. Eriksson A.-C., Sjoling S., Glasser E. 1996. Characterization of thebifunctional mitochondrial processing peptidase (MPP)/6c/ complex in Spinacia oleracea. J. Bioenerg. Biomembr. V. 28. P. 283 - 290.

199. Esashi Y., Kusuyama K., Tazaki S. 1981. Necessity of a balance between

200. CN-sensitive and CN-resistant respiration for the germination of cocklebur seed. Plant Cell Physiol. V. 22. P. 65 - 71.

201. Evan G., Littlewood T. 1998. A matter of life and cell death. Science. V.281.P. 1317-1321.

202. Ferranti R., Silva M.M., Kowaltowski A.J. 2003. Mitochondrial ATPsensitive K+ channel opening decreases reactive oxygen species generation. FEBS Lett. V. 536. P. 51 - 55.

203. Fieuw S., Willenbrink J. 1987. Sucrose phosphate synthase in sugar plants

204. Beta vulgaris L.). J.Plant.Physiol. V. 131. P. 153 - 162.

205. Forward D. 1983. Respiration: a holistic approach to metabolism. In: Plant

206. Physiology. A Treatis.V. 7. (Eds., Stewart F.C., Bidwell P.S.) New York e.a.: Acad Press. P. 459 509.

207. Frendlund K.M., Rasmusson A.G., Moller I.M. 1991. Oxidation of external

208. NAD(P)H by purified mitochondria from fresh and aged red beetroots (Beta vulgaris L.). Plant Physiol. V. 97. P. 99 - 103.

209. Frenkel C. 1984. Factors regulating the respiratory upsarge in developingstorage tisues. In: The Physiology and Biochemistry of Plant Respiration. (Ed., Palmer J.M.) Cambridg, London: Camgridge Univ. Press. P. 33 -46.

210. Gallois P., Makashima Т., Hecht V., Despres В., Laudie M., Nishimoto Т.,

211. Cooke R. 1997. An Arabidopsis thaliana cDNA complementing a hamster apoptosis suppresor mutant. Plant J. V. 11.P. 1325- 1331.

212. Gardestrom P. 1987. Adenylate ratios in the cytosol, chloroplasts andmitochondria of barley leaf during photosynthesis at different carbon dioxide concentration. FEBS Lett. V. 212. P. 114 -118.

213. Gardestrom P., Lernmark U. 1995. The contribution of mitochondria toenergetic metabolism in photosynthetic cell. J. Bioenerg. Biomembr. V. 27. P. 415-421.

214. Gardestrom P., Edvards G.E. 1983. Isolation of mitochondria from leaftissue of Panicum miliaceum, a NAD-malic enzyme type C4 plant. Plant Physiol. V. 71. P. 24-29.

215. Garlid K.D. 1980. On the mechanism of regulation of the mitochondrial

216. K+/tf exchanger. J. Biol. Chem. V. 255. P. 11273 -11279.

217. Garlid K.D. 1996. Cation transport in mitochondria the potassium cycle.

218. Biochim. Biophys. Acta. V. 1275. P. 123 126.

219. Garlid K.D., Beavis A.D., Ratkje S.K. 1989. On the nature of ion leaks inenergy-transducing membrane. Biochim. Biophys. Acta. V. 976. P. 109 - 120.

220. Garlid K.D., Orosz D.E., Modriansky M., Vassanelli S., Jezek P. 1996. Onthe mechanism of fatty acid-induced proton transport by mitochondrial uncoupling protein. J. Biol. Chem. V. 271. P. 2615 - 2620.

221. Garlid K.D., Paucek P., Yarov-Yarovoy V., Sun X., Schindler P.A. 1996.

222. The mitochondrial KAtp channel as a receptor for potassium channel openers. J. Biol. Chem. V. 271. P. 8796 -8799.

223. Garlid K.D., Resta D.J., Beavis A.D., Martin W.H. 1986. On the mechanismby which dicyclohexylcarbodiimide and quinine inhibit K+ transport in rat liver mitochondria. J. Biol. Chem. V. 261. P. 1529 - 1533.

224. Gemel J., Randall D.D. 1992. Light regulation of leaf mitochondrialpyruvate dehydrogenase complex. Role of photorespiratory carbon metabolism. Plant Physiol. V 100. P. 908 -914.

225. Getz H.P., Klein M. 1995. Characterization of sucrose transport and sucroseinduced H+ transport on the tonoplast of red beet (Beta vulgaris L.) storage tissue. Plant Physiol. V. 107. P. 459 - 467.

226. Gonzalez-Meier M., Ribas-Carbo M, Giles L., Siedow J.N. 1999. The effectof growth and measurement temperature on the activity of the alternative respiratory pathway. Plant Physiol. V. 120. P. 765 - 772.

227. Goodenough P.W. 1986. A review of the role of ethylene in biochemicalcontrol of ripening in tomato fruit. Plant Growth Regul. V. 4. P. 125 — 206.

228. Green D.R., Reed J.C. 1998. Mitochondria and apoptosis. Science. V. 281.1. P. 1309- 1312.

229. Gregory P., Eearle E.D., Gracen U.E. 1980. Effect of purified mays race Ttoxin on the structure and function of corn mitochondria and protoplasts. Plant Physiol. V. 66. P. 477 -481.

230. Groen A., Wanders R., Westehoff H., van den Meer R., Tager J.M. 1982.

231. Quantification of the contribution of various steps to the control of mitochondrial respiration. J. Biol. Chem. V. 257. P. 2754 - 2757.

232. Gutman M. 1980. Electron flux through the mitochondrial ubiquinone.

233. Biochim. Biophys. Acta. V. 594. P. 53 84.

234. Halestrap A.P. 1987. The regulation of the oxidation of fatty acids and othersubstrates in rat heart mitochondria by changes in the matrix volume induced by osmotic strenth, valinomycin and Ca . Biochem. J. V. 244. P. 159- 164.

235. Halestrap A.P. 1989. The regulation of the matrix volume of mamalianmitochondria in vivo and in vitro and its role in the control of mitochondrial metabolism. Biochim. Biophys. Acta. V. 973. P. 355 -382.

236. Halestrap A.P., Davidson A.M., Potter W.D. 1990. Mechanisms involved in the hormonal regulations of mitochondrial function through changes in the matrix volume. Biochim. Biophys. Acta. V. 1018. P. 278 - 281.

237. Hanning I., Baumgarten K., Schott K., Heldt H.W. 1999. Oxaloacetatetransport into plant mitochondria. Plant Physiol. V. 119. P. 1025 -1031.

238. Hanning I., Heldt H.W. 1993. On the function of mitochondrial metabolismduring photosynthesis in spinach (Spinacea oleracea L.) leaves. Plant Physiol. V. 103. P. 1147- 1154.

239. Harbinson J. 1994. The responses of thylakoid electron transport and lightutilization efficiency to sink limitation of photosynthesis. In: Photoinhibition of Photosynthesis (Eds. Barker N.R., Bowyer J.R.) Oxford: BIOS Sci. Publ. P. 273 - 295.

240. Harman D. 1983. Free radical theory of aging: consequences ofmitochondrial aging. Age. V. 6. P. 86- 94.

241. Harman D. 1988. Free radical in aging. Mol. Cell. Biol. V. 155 - 161.

242. Hatch M.D., Agostino A.A., Burnell J.N. 1988. Photosynthesis inphosphoenolpyruvate casboxykinase-type C4 plants: activity and role of mitochondria in bundle sheath cells. Arch. Biochem. Biophys. V. 261. P. 357-367.

243. Hatefi У. 1985. The mitochondrial electron transport and oxidativephosphorylation system.- Ann. Rev. Biochem. V. 54. P. 1015 1069.

244. Hawker J.S., Laties G.G. 1963. Nicotiamide adenine dinucleotide in potatotuber slices in relation to respiratory changes with age. Plant Physiol. V. 38. P. 498-500.

245. Hawkesford M.J., Liddel A.D., Leaver C.J. 1989. Subunit composition ofcytochrome с oxidase in mitochondria of Zea mays. Plant Physiol. V. 91. P. 1535- 1542.

246. Heber U., Heldt H.W. 1981. The chloroplast envelope: struture, function androle in leaf metabolism. --Ann. Rev. Plant Physiol. V. 32. P. 139 168.

247. Heineke D., Riens В., Grosse H., Hoferichter P., Peter U., Fugge U.-I., Heldt

248. H.W. 1991. Redox transfer across the inner chloroplast envelope membrane. Plant Physiol. V. 95. P. 1131-1137.

249. Henry M.F., Nyns E-J. 1975. Cyanide-insensitive respiration: an alternativemitochondrial pathway. Sub-Cell. Biochem. V. 4. P. 1 - 65.

250. Hensley J.B., Hanson J.B. 1975. The action of valinomycin in uncouplingcorn mitochondria. Plant Physiol. V. 56. P. 13-18.

251. Herz U., Schroder W., Liddell C.J., Brennike A., Grohmann L. 1994.

252. Purification of the NADH: ubiquinone oxidoreductase (complex I) of the respiratory chain from the inner mitochondrial membrane of Solanum tuberosum. J. Biol. Chem. V. 269. P. 2263 - 2269.

253. Hill S.A., Rees T.A. 1994. Fluxes of carbohydrate metabolism in ripeningbananas. Planta. V. 192. P. 52 - 60.

254. Hiser C., Mcintosh L. 1990. Alternative oxidase of potato is an integralmembrane protein syntesized de novo during aging of tuber slices. —Plant Physiol. V. 93. P. 312-318.

255. Hobson G.E. 1981. Changes in mitochondrial composition and behaviour inrelation to dormancy. Ann. Apll. Biol. V. 98. P. 541 - 544.

256. Hobson G.E., Davies J.N. 1977. Mitochondrial activity and carbohydratelevels in tulip bulbs in relation to cold triatment. J. Exp. Bot. V. 28. P. 559-568.

257. Hoefnagel M., Wiskich J.T. 1996. Alternative oxidase activity and theubiquinone redox level in soybean cotyledon and arum spadix mitochondria during NADH and succinate oxidation. Plant Physiol. V. 110. P. 1329- 1335.

258. Hoefnagel M.H.N., Atkin О. K., Wiskich J.T. 1998. Interdependencebetween chloroplasts and mitochondria in the light and the dark. -Biochim. Biophys. Acta. V. 1366. P. 235 255.

259. Hoefnagel M.H.N., Miller A.H, Wiskich J.T, Day D.A. 1995. Cytochromeand alternative respiratory pathways compete for electrons in the presence of pyruvate in soybean mitochondria. Arch. Biochem. Biophys. V. 318. P. 394-400.

260. Holden M.J, Sze H. 1989. Effect of Helminthosporium maydis race T toxinon electron transport in susceptible corn mitochondria and prevention of toxin actions by dicyclohexylcarbodiimide. Plant Physiol. V. 91. P. 1296-1302.

261. Holmgren A. 1985. Thioredoxin. Ann. Rev. Biochem. V. 54. P. 237 - 271.

262. Holmgren A. 1989. Thioredoxin and glutaredoxin systems. J. Biol. Chem.1. Y. 264. P.13963 13966.

263. Hubbard N.L. 1990. Role of sucrose phosphate synthase in sucrosebiosynthesis in ripening bananas and its relationship to the respiratory climacteric. Plant Physiol. V. 94. P. 201 - 208.

264. Imaseki H. 1999. Control of ethylene synthesis and metbolism. In:

265. Biochemistry and Molecular Bilogy of Plant Hormones (Eds., Hoyka H., Hall M.A., Libbenda K.R.) Amsterdame e.a.: Elsevier. P. 209 245.

266. Inoe I., Negase H., Kishi K., Hiquti T. 1991. ATP-sensitive K+ channel inthe mitochondrial inner membrane. Nature. V. 352. P. 244 - 247.

267. Iossa S., Mollica M.P., Lionetti L., Barletta A., Liverini G. 1998. Rat livermitochondrial respiratory capacities in the transition from weaning to adulthood. -Mech. Age. Dev. V. 100. P. 59 66.

268. Ito Y., Saisho D., Nakazono M., Tsutsumi N., Hirai A. 1997. Transcriptlevels of tandem-arranged alternative oxidase genes in in rice are increased by low temperature. Gene. V. 203. P. 121 - 129.

269. Jabs T. 1999. Reactive oxygen intermediates as mediators of programmedcell death in plants and animals. Biochem. Pharmacol. V. 57. P. 231 -245.

270. Jakobus W.E., Moreadith R.W., Vandegaer K.M. 1982. Mitochondrialrespiratory control. Evidence against the regulation of respiration byextramitochondrial phosphorylation potentials or by ATP/ADP ratios. J. Biol. Chem. V. 257. P. 2397 - 2402.

271. Jakson C., Moore A. 1979. Isolation of intact higher-plant mitochondria.1.: Plant Organelles (Ed. Moore A.) Chichester, New York e.a,: Academic Press. P. 1 -12.

272. James W.O., Elliott D.C. 1955. Cyanide-resistant mitochondria from spadixof an arum. Nature. V. 175. P. 89.

273. Jarmuszkiewicz W., Almeida A.M., Vercesi A.E., Sluse F.E., Sluse-Gofford

274. C.M. 2000. Proton re-uptake partitioning between uncoupling protein and ATP synthase during benzohydroxamic acid-resistant state 3 respiration in tomato fruit mitochondria. J. Biol. Chem. V. 275. P. 13315 - 13320.

275. Jeffery D., Goodenough P.W., Weitzman P.D.J. 1986. Enzyme activities inmitochondria from ripening tomato fruit. —Planta. V. 168. P. 390 394.

276. Jenner H.L., Winning B.M., Millar A.H., Tomplison K.L., Learvar C.J., Hill

277. S.A. 2001. NAD malic enzyme and control of carbohydrate metabolism in potato tubers. —Plant Physiol. V. 126. P. 1139 -1149.

278. Jezek P., Costa A.D.T., Vercesi A.E. 1996. Evidence for anion-translocatingplant uncoupling mitochondrial protein in potato mitochondria. J. Biol. Chem. V. 271. P. 32743 - 32748.

279. Jezek P., Engstova H., Zackova M., Vercesi A.E., Costa A.D.T., Arruda P.,

280. Garlid K.D. 1998. Fatty acid cycling mechanism and mitochondrial uncoupling proteins. Biochim. Biophys. Acta. V. 1365. P. 319 - 327.

281. Jha A.K., Singh A.K., Prasad U.S. 1990. Respiratory metabolism in Litchichinesis Sonn durihg fruit ripening and senescence. Indian J. Exp. Biol. V. 28. P. 537-541.

282. Jimenez A., Hernandez J.A., Pastori G., del Rio L.A., Sevilla F. 1998. Roleof the ascorbate-glutatione cycle of mitochondria and peroxisomes in the senescence of pea leaves. Plant Physiol. V. 118. P. 1327 - 1335.

283. John I., Drake R., Farrel A., Cooper W., Lee P., Horton P., Grierson D.1995. Delayed leaf senescence in ethylene-deficient ACC-oxidase antisense tomato plants: molecular and physiological analysis. Plant J. V. 7. P. 483-490.

284. Jones A. 2000. Does mitochondria integrate cellular stress and regulateprogrammed cell death? Trends Plant Sci. V. 5. P. 225 - 230.

285. Journet E.-P., Bonner W.D., Douce R. 1982. Glutamate metabolismtriggered by oxaloacetate in intact plant mitochondria. Arch. Biochem. Biophys. V. 214. P. 366-375.

286. Jung D.W., Brierley G.P. 1979. Swelling and contraction of potatomitochondria. Plant Physiol. V. 64. P. 948 - 953.

287. Jung D.M., Brierley G.P. 1986 Matrix magnesium and the permeability ofheart mitochondria to potassium ion. J. Biol. Chem. V. 261. P. 6408 -6415.

288. Kaufman B.T., Kaplan N.O. 1960. Mechanism of depletion of mitochondrialpyridine nucleotides. Biochim. Biophys. Acta. V. 39. P. 332 - 335.

289. Kavanagh N.I., Ainscow E.K., Brand M.D. 2000. Calcium regulation ofoxidative phosphorylation in rat skeletal muscle mitochondria. Biochim. Biophys. Acta. V. 1457. P. 57 -70.

290. Kessler A., Brand M.D. 1994, a. Localisation of the sites of action ofcadmium on oxidative phosphorylation in potato tuber mitochondria using top-down elasticity analysis. Eur. J. Biochem. V. 225. P. 897 -906.

291. Kessler A., Brand M.D. 1994,b. Effect of cadmium on the control andinternal regulation of oxidative phosphorylation in potato tuber mitochondria. Eur. J. Biochem. V. 225. P. 907 - 922.

292. Kessler A., Diolez P., Brinkmann. K, Brand M.D. 1992. Characterization ofthe control of respiration in potato tuber mitochondria using top-down approach of metabolic control analysis. Eur. J. Biochem. V. 210. P. 775 -784.

293. Klann E.M., Hall В., Bennett A.B. 1993. Expression of acid invertase genecontrols sugar composition in tomato (Lycopersicon) fruit. —Plant Physiol. V. 103. P. 863 -870.

294. Klann E.M., Hall В., Bennett A.B. 1996. Antisense acid invertase (TIV 1)gene controls sugar composition in tomato (Lycopersicon) fruit. Plant Physiol. V. 112. P. 1321 -1330. .

295. Klein R.R., Burke J.J. 1984. Separation procedure and partialcharacterization of two HAD(P)H dehydrogenases from cauliflower mitochondria. Plant Physiol. V. 76. P. 436 - 441.

296. Klingenberg M. 1974. Nicotinamide adenine dinucleotides (NAD, NADP,

297. NADH, NADPH). Spectrophotometric and fluorimetric methods. In: Methods of enzymatic analysis, V. 4. (Ed. Bergmeyer H.U.), New York: Academic Press. P. 2045 2059.

298. Klingenberg M. 1979. The ferricyanide method for elucidating the sidednessof membrane-bound denydrogenase. Met. Enzymol. V. 56. P. 229 -233.

299. Klingenberg M. 1980. The ADP-ATP translocation in mitochondrialmembrane potential controlled transport. J. Membr. Biol. V. 56. P. 97 -105.

300. Kluck R.M., Bossy-Wetzel E., Green D.R., Newmeyer D.D. 1997. Therelease of cytochrome с from mitochondria: a primary site for bcl-2 regulation of apoptosis. Science. V. 275. P. 1132 -1136.

301. Koeppe D.E., Kox J.K., Malone C.P. 1978. Mitochondrial heredity: adeterminant in the toxic response of maize to the insecticide methomyl. -Science. V. 201. P. 1227-1229.

302. Kowaltowski A.J., Costa A.D.T., Vercesi A.E. 1998. Activation of thepotato plant uncoupling mitochondrial protein inhibits reactive oxygen spesies generation by the respiratory chain. FEBS Lett. V. 425. P. 213 -216.

303. Krebs H. A. 1969. Rate control of the tricarboxylic acid cycle. Enzyme1. Regul. V. 8. P. 353-395.

304. Krebs H. A. 1973. Puridine nucleotides and rate control. Symp. Soc. Exp.1. Biol. V. 27. P. 299-318.

305. Kroger A., Klingenberg M. 1973. The kinetics of the redox reactions ofubiquinone related to the electron-transport activity in the respiratory chain. Eur. J. Biochem. V. 34. P. 358 - 368.

306. Kromer S. 1995. Respiration during photosynthesis. Ann. Rev. Plant

307. Physiol. Plant Mol. Biol. V. 46. P. 45 70.

308. Kromer S., Heldt H.W. 1991,b. Respiration of pea leaf mitochondria andredox transfer between the mitochondrial and extramitochondrial compartment. Biochim. Biophys. Acta. V. 1057. P. 42 - 50.

309. Kromer S., Malmberg G, Gardestrom P. 1996. Regulation of the supply ofcytosolic oxaloacetate for mitochondrial metabolism via phosphoenolpyruvate carboxylase in barley leaf protoplasts. Biochim. Biophys. Acta. Y. 1289. P. 343 - 350.

310. Laloi M, Klein M, Riesmeier J.W, Muller-Rober B, Fleury C, Bouillaud

311. F, Ricguier D. 1997. A plant cold-induced uncoupling protein. Nature. Y. 389. P. 135 - 136.

312. Lambers H. 1980. The physiological significance of cyanide-resistantrespiration in higher plants. Plant Cell Environ. V. 3. P. 293 - 302.

313. Lambers H. 1982. Cyanide-resistant respiration: a non-phosphorylatingelectron transport pathway acting as an energy overflow. Physiol. Plant. V. 55. P. 478-485.

314. Lambers H, Day D.A., Azcon-Bieto J. 1983. Cyanide-resistant respirationin root and leaves. Measurements with intact tissues and isolated mitochondria. Physiol. Plant Y. 58. P. 148 - 154.

315. Lam E, Kato N, Lawton M. 2001. Programmed cell death, mitochondriaand the plant hypersensitive response. Nature. V. 411. P. 848 - 853.

316. Lambowitz A.M., Sabourin J.R, Bertrand H, Nickels R.L, Mcintosh L.1989. Immunological identification of the alternative oxidase in Neuraspora crassa mitochondria. Mol. Cell Biol. V. 9. P. 1362 - 1364.

317. Lance C. 1974. Respiratory control and oxidative phosphorylation in arummitochondria. Plant Sci. Lett. V. 2. P. 165 - 171.

318. Lance С., Chauveau M., Dizengremel P. 1985. The cyanide-resistantpathway of plant mitochondria. In : Encyclopedia of Plant Physiology, New Series (Douce R., Day D. A. Eds.), Berlin: Springer-Verlag. V. 18. P. 202 - 247.

319. Lance C., Rustin P. 1984. The central role of malate in plant metabolism.

320. Physiol. Veg. V. 22. P . 625 641.

321. Laties G.G. 1964. The onset of tricarboxylic acid cycle activity with aging inpotato slices. Plant Physiol. V. 39. P. 654 - 663.

322. Laties G.G. 1982. The cyanide-resistant alternative path in higher plantrespiration. Ann. Rev. Plant Physiol. V. 33. P. 519 - 555.

323. Lee A.-C., Zizi M., Blachly-Dyson E., Colombini M. 1994, (3-NADHdecreases the permeability of the mitochondrial outer membrane to ADP by a factor of 6. J. Biol. Chem. V. 269. P. 30974 - 30980.

324. Lenaz G. 1998. Role mitochondria in oxidative stress and ageing.

325. Biochim. Biophys. Acta. V. 1366. P. 53 67.

326. Lenaz G., D'Aurelio M., Pich M.M., Genova M., Ventura В., Bovina C.,

327. Formiggini G., Paretti-Castelli G. 2000. Mitochondrial bioenergetics in aging. Biochim. Biophys. Acta. V. 1459. P. 397 - 404.

328. Lennon A.M., Neueschwander U.H., Ribas-Carbo M., Giles L., Ryals J.A.,

329. Siedow J.N. 1997. The effects of salicylic acid and TMV infection upon the alternative oxidase of tobacco. Plant Physiol. V. 115. P. 783 - 791.

330. Lennon A.M., Pratt J., Leach G., Moore A.L. 1995. Developmentalregulation of respiratory activity in pea leaves. Plant Physiol. V. 107 . P. 925 - 932.

331. Leterme S., Boutry M. 1993. Purification and preliminary characterizationof mitochondrial complex I (NADH: ubiquinone reductase) from broad bean (Viciafaba L.). Plant Physiol. V. 102. P. 435 - 443.

332. Li X., Hegazy M.G., Mahdi F., Jezek P., Garlid K.D. 1990. Purification of areconstitutively activ K /H+ antiporter from rat liver mitochondria. J. Biol. Chem. V. 265. P. 15316- 15322.

333. Liden A.C., Akerlund H.E. 1993. Induction and activation of the alternativeoxidase of potato tuber mitochondria Physiol. Plant. V. 87. P. 134 - 141.

334. Lin T-J., Sled V. D., Ohnishi Т., Brennike A., Grohmann L. 1995. Analysisof the iron-sulfur clusters within the complex I (NADH: ubiquinone oxidoreductase) isolated from potato tuber mitochondria. Eur. J. Biochem. V. 230. P. 1032 - 1036.

335. Linnane A.W., Mazzakis S., Ozawa J., Tanaka M. 1989. Mitochondrial

336. DNA mutation as an important contribution to ageing and degenerative diseases. Lancet. V. 1. P. 642 - 645.

337. Longo G.P., Longo C.D. 1975. Development of mitochondrial activities ingerminating maize seedlings. Plant Sci. Lett. V. 5. P. 339 - 346.

338. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. 1951. Proteinmeasurement with the folin phenol reagent. J. Biol. Chem. V. 193. P. 265-275.

339. Luethy M.N., Hayes M.K., Elthon Т.Е. 1991. Partial purification andcharacterization of three NAD(P)H dehydrogenases from Beta vulgaris mitochondria. Plant Physiol. V. 97. P. 1317- 1322.

340. Luethy M.N., Thelen J.J., Knudten A.F., Elthon E. 1995. Purification,characterization, and submitochondrial localization of a 58-kilodalton NAD(P)H-dehydrogenase. Plant Physiol. V. 107. P. 443 - 450.

341. Luster D.G., Fites R.C. 1987. An abbreviated method for the isolation ofmitochondria from storage tissues of oil seedlings. —Physiol. Plant. V. 70. P. 622-625.

342. Mackenzie S., Mcintosh L. 1999. Higher plant mitochondria. The Plant1. Cell. V. 11. P. 571 -585.

343. MacRae E., Quick W.P., Benker C., Stitt M. 1992. Carbohydrate metaboismduringpostharvest ripenninginkiwifruit. -Planta. V. 188. P. 314-323.

344. Maeshima M., Asahi T. 1978. Purification and characterization of sweetpotato cytochrome с oxidase. Arch. Biochem. Biophys. V. 187. P. 423 -430.

345. Majander A., Finel M., Wikstrom M. 1994. Diphenyleneiodonium inhibitsreduction of iron-sulfur clusters in the mitochondrial NADH-ubiquinone oxidoreductase (complex I). J. Biol. Chem. V. 269. P. 21037 - 21042.

346. Manella C.A. 1985. The outer membrane of plant mitochondria. In:

347. Encyclopedia of Plant Physiology. V. 18. (Douce R., Day D.A. Eds.) Berlin: Springer-Verlag. P. 107- 109.

348. Manella C.A., Wang Q. 1989. Permeability of the mitochondrial outermembrane to organic cations. Biochem. Biophys. Acta. V. 981. P. 363 -366.

349. Martin W.H., Beavis A.D., Garlid K.D. 1984. Identification of an 82000dalton protein responsible for K+/H+ antiport in rat liver mitochondria. J. Biol. Chem. V. 259. P. 2062 - 2065.

350. Martin W.H., Resta D.J., Garlid K.D. 1986. Kinetics of imhibition andbonding of dicyclohexylcarbodiimide to the 82000-dalton mitochondrial K+/H+ antiporter. J. Biol. Chem. V. 257. P. 9252 - 9254.

351. Maxwell D.P., Wang Y., Mcintosh L. 1999. The alternative oxidase lowersmitochondrial reactive oxigen species production in plant cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 96. P. 8271 - 8276.

352. McCabe Т., Finnegan P.M., Millar A.H., Day D.A., Welan J. 1998.

353. Differential expression of alternative oxidase genes in soybean cotyledons during postgerminative development. Plant Physiol. V. 118. P. 675 -682.

354. McCormack J.G., Denton R.M. 1986. Ca as a second messenger withinmitochondria. Trends in Biochem. Sci. Y. 11. P. 258 - 262.

355. McDonnell E., Farrar J.F. 1993. Respiratory characteristics of isolatedbarley mitochondria and intact barley roots. J. Exp. Bot. V. 44. P. 1485 - 1490.

356. Mcintosh L. 1994. Molecular biology of the alternative oxidase. Plant

357. Physiol. V. 105. P. 781 -786.

358. Meeuse B.J.D. 1975. Thermogenic respiration in aroids. Ann. Rev. Plant

359. Physiol. V. 26. P. 117-126.

360. Mehdy M. 1994. Active oxygen species in plant defense against pathogens.-PlantPhysiol. V. 105. P. 467-472.

361. Melo A.M.P., Robers Т.Н., Moller I.M. 1996. Evidence for the presence oftwo rotenone-insensitive NAD(P)H dehydrogenases on the inner surface of the inner membrane of potato tuber mitochondria. Biochim. Biophys. Acta. V. 1276. P. 133 - 139.

362. Melo-Oliveira R., Oliveira I.C., Coruzzi G.M. 1996. Arabidopsis mutantanalysis and gene regulation define a nonredundant role for glutamate dehydrogenase in nitrogen assimilation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 93. P. 4718-4723.

363. Menz R.J., Day D.A. 1996,a. Purification and characterization of aninducible NAD(P)H dehydrogenase from red beetroot mitochondria. -Plant Physiol. V. 112. P. 607-613.

364. Menz R.J., Day D.A. 1996,b. Purification and characterization of a 42-kDarotenone-insensitive NAD(P)H dehydrogenase from plant mitochondria. -J. Biol. Chem. V. 271. P. 23117 23120.

365. Millar A.H., Atkin O.K., Lambers H., Wiskich J.T., Dry D.A. 1995. Critiqueof the use of inhibitors to estimate partitioning of electrons between mitochondrial respiratory pathways in plants. Physiol. Plant. V. 95. P. 523 -532.

366. Millar A.H., Hoefnagel M.H.N., Day D.A., Wiskich J.T. 1996. Specificity ofthe organic acid activation of alternative oxidase in plant mitochondria. -Plant Physiol. V. 111. P. 613 618.

367. Millar A.H., Day D.A. 1997. Alternative solution to radical problems.

368. Trends Plant Sci. V. 2. P. 289 290.

369. Millar A.H., Atkin O.K., Menz R.I., Henry В., Farguhar G., Day D.A. 1998.

370. Analysis of respiratory chain regulation in roots of soybean seedlings. -Plant Phyiol. V. 117. P. 1083 1093.

371. Millenaar F.F., Benschop J.J., Wagner A.M., Lambers H. 1998. The role ofthe alternative oxidase in stabilizing the in vivo reduction state of the ubiquinone pool and the activation state of the alternative oxidase. Plant Physiol. Y. 118. P. 599-607.

372. Millenaar F.F., Gonzalez-Meier M.A., Fiorani F., Welschen R., Ribas-Carbo

373. M., Siedow J.N., Wagner A.M., Lambers H. 2001. Regulation of alternative oxidase activity in six wild monocotyledonous species. An in vivo study at the whole root level. Plant Physiol. V. 126. P. 376 - 387.

374. Millhouse J, Wiskich J.T., Beevers H 1983. Metabolite oxidation andtransport in mitochondria of endosperm from germinating castor bean. -Aust. J. Plant Physiol. V. 10. P. 167 177.

375. Minagava S, Sakajo S, Komuyama Т., Yoshimoto A. 1990. A 36-kDamitochondrial protein is responsible for cyanide-resistant respiration in Hansenula anomala. -FEBS Lett. V. 264. P. 149 152.

376. Mitchell P. 1966. Chemiosmotic coupling in oxidative and photosyntheticphosphorylation. Biol. Rev. V. 41. P. 441 - 502.

377. Mitchell P. 1975. Proton motive redox mechanism of the cytochrome b/cicomplex in the respiratory chain: proton motive ubiguinone cycle FEBS Lett.V. 56. P. 1- 6.

378. Moller I.M. 1997. The oxidation of cytosolic NAD(P)H by external

379. NAD(P)H dehydrogenases in the respiratory chain of plant mitochondria. Physiol. Plant. V. 100. P. 85 - 90.

380. Moller I.M. 2001. Plant mitochondria and oxidative stress. Electrontransport, NADPH turnover and metabolism of reactive oxygen spesies. -Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol.

381. Moller I.M, Berczi A, van der Plas L.H.W, Lambers H. 1988.

382. Measurement of the activity and capacity of the alternative pathway in intact plant tissues: identification of problems and possible solutions. -Physiol. Plant. Y. 72. P. 642 649.

383. Moller I.M, Palmer J.M. 1984. Regulation of the tricarboxylic acid cycleand organic acid metabolism. In: The Physiology and Biochemistry of Plant Respiration (Ed. Palmer J.M.) Cambridge, London: Cambridge Univ. Press. P. 105- 122.

384. Moller I.M., Rasmusson A.G. 1998. The role of NADP in the mitochondrialmatrix. Plant Sci. V. 3. P. 21 -27.

385. Moore A.L., Bonner W.D. 1978. The determination of proton motive forceduring cyanide-insensitive respiration in plant mitochondria. Arch. Biochem. Biophys. V. 186. P. 298 - 306.

386. Moore A., Bonner W.D. 1982. Measurements of membrane potentials inplant mitochondria with the safranine method. Plant Physiol. V. 70. P. 1271 - 1276.

387. Moore A.L., Dry I.B., Wiskich J.T. 1991. Regulation of electron transport inplant mitochondria under state 4 conditions. Plant Physiol. V. 95. P. 34 -40.

388. Moore A.L., Gemel J., Randall D. 1993. The regulation of pyruvatedehydrogenase activity in pea leaf mitochondria. Plant Physiol. V. 103. P. 1431 - 1435.

389. Moore A.L., Leach G., Witehouse D.G., van den Bergen C.W.M., Wagner

390. A.M., Krab K. 1994. Control of oxidative phosphorylation in plant mitochondria: the role of non-phosphorylating pathways. Biochim. Biophys. Acta. V. 1187. P. 145 - 151.

391. Moore A.L., Rich P. 1985. Organization of the respiratory chain andoxidative phosphorylation. In : Encyclopedia of Plant Physiology, New series, V. 18. (R. Douce, D.A. Day, eds), Berlin:Springer-Verlag. P. 134 — 172.

392. Moore A.L., Siedow J.N. 1991. The regulation and nature of the cyanideresistant alternative oxidase of plant mitochondria. Biochim. Biophys. Acta. V. 1059. P. 121-140.

393. Morohashi Y. 1986. Patterns of mitochondrial development in reserve ofgerminated seeds. A survey. Plant Physiol. V. 66. P. 653 - 658.

394. Morohashi Y., Shimokoriyama M. 1975. Development of glycolytic andmitochondrial activities in the early phase of germination of Phaseolus mungo suds. J. Exp. Bot. V. 26. P. 932 - 938.

395. Morrell S., Rees T.A. 1986. Sugar metabolism in developing tubers of

396. Solanum tuberosum.- Phytochemistry. V. 25. P. 1579 1585.

397. Murphy T.M., Auh C.-K. 1996. The superoxide synthases of plasmamembrane preparations from cultured rose cells. Plant Physiol. V. 110. P. 621 -629.

398. Nakashima R. A., Garlid K.D. 1982. Quinine inhibition of Na+ and K+transport provides evidens for two cation exchangers in rat liver mitochondria. J. Biol. Chem. V. 257. P. 9252 - 9254.

399. Nakayama N., Sugimoto I., Asahi T. 1980. Presence in dry pea cotyledonsof soluble succinate dehydrogenase that is assembled into the mitochondrial membrane during seed imbibition. Plant Physiol. V. 65. P. 229 -234.

400. Nawa Y., Asahi T. 1973. Biochemical studies on development ofmitochondria in pea cotyledons during the early stage of germination. -Plant Physiol. V. 51. P. 833- 838.

401. Neuburger M. 1985. Preparation of plant mitochondria, criteria forassesment of mitochondrial integrity and purity, survival in vitro. In:

402. Encyclopedia of Plant Physiology. New Series. V. 18 (Douce R., Day D.A., eds), Berlin: Springer-Verlag. P.6 23.

403. Neuburger M., Day D.A., Douce R. 1985. Transport of NAD+ in percollpurified potato tuber mitochondria. Inhibition of NAD+ efflux by N-4-azido-2-nitrophenyl-4-aminobutyryl-3-NAD+.- Plant Physiol. V. 78. P. 405-410.

404. Neuburger M., Douce R. 1983. Slow passive diffusion of NAD betweenintact isolated plant mitochondria and suspending medium.-Biochem. J. V. 216. P. 443-450.

405. Nicholls D., Gray H.J., Lindberg O. 1972. Mitochondria from hamsterbrown-adipose tissue. Regulation of respiration in vitro by variations in volume of the matrix compartment. -Eur. J. Biochem. V. 31. P. 526- 533.

406. Nooden L.D., Guiamet J.J., John I. 1997. Senescence mechanisms.

407. Physiol. Plant. V. 101. P. 746 653.

408. Obenland D., Diethelm R., Shibles R., Stewart C. 1990. Relationship ofalternative respiratory capacity and alternative oxidase amount during soybean seedling growth. Plant Cell Physiol. V. 31. P. 897 - 901.

409. Oestreicher C., Hoque P., Singer T.P. 1973. Regulation of succinatedehydrogenase in higher plants. II. Activation by substrates, reduced coenzyme Q, nucleotides and anions. Plant Physiol. V. 52. P. 622 - 626.

410. Oliver D.J., Neuburger M., Bourguignon J., Douce R. 1990. Glycinmetabolism by plant mitochondria. Physiol. Plant. V. 80. P. 487 - 491.

411. Padmasree K., Raghavendra A.S. 1998. Interaction with respiration andnitrogen metabolism.-In: Photosynthesis. A comprehensive Treatise. (Ed. Raghavendra A.S.), Cambridge: Cambridge Univ. Press. P. 197 211.

412. Padovan A.C., Dry D.A., Wiskich J.T. 1989. An analysis of the control ofphosphorylation-coupled respiration in isolated plant mitochondria. -Plant Physiol. V. 90. P. 928 933.

413. Palmer J.M. 1979. The "uniqueness" of plant mitochondria. Biochem. Soc.1. Trans. V. 7. P. 246 252.

414. Palmer J.M. 1984. The operation and control of the respiratory chain. In:

415. The physiology and Biochemistry of Plant Respiration (Ed., Palmer J.M) Cambridge, London: Cambridge Univ. Press. P. 123 140.

416. Palmer J.M., 1976. The organization and regulation of electron transport inplant mitochondria. Ann. Rev. Plant Physiol. V. 27. P. 133 - 157.

417. Palmer J.M., Arron G.P. 1976. The influence of exogenous nicotinamideadenine dinucleotide-on the oxidation of malate by Jerusalem artichoke mitochondria. J. Exp. Biol. V. 27. P. 418 - 430.

418. Palmer J.M., Moller I.M. 1982. Regulation of NAD(P)H dehydrogenases inplant mitochondria. Trends in Biochem. Sci. V. 7. P. 258 - 261.

419. Palmer J.M., Schwitzguebel J.-P., Moller I.M. 1982. Regulation of malateoxidation in plant mitochondria. Responce to rotenone and exogenous NAD+. Biochem. J. V. 208. P. 703 -711.

420. Palmieri F., De Pinto V. 1990. Purification and properties of the voltagedependent anion channel of the outer mitochondrial membrane. J. Bioenerg. Biomembr. V. 21. P. 417 - 425.

421. Papa S. 1996. Mitochondrial oxidative phosphorylation changes in the lifespan. Molecular aspects and physiopathological implications. Biochim. Biophys. Acta. V. 1276. P. 628 - 632.

422. Parsons H.L., Yip J.Y.H., Vanlerberghe G.C. 1999. Increased respiratoryrestriction during phosphate-limitied growth in transgenic tobacco cells laking alternative oxidase. Plant Physiol. V. 121. P. 1309 - 1320.

423. Pascal N., Dumas R., Douce R. 1990. Comparison of the kinetic behaviourtoward pyridine nucleotides of NAD+-linked dehydrogenases from plant mitochondria. Plant Physiol. V. 94. P. 189 -193.

424. Pascal N., Douce R. 1993. Effect of iron deficiency on the respiration ofsycamore (Acer pseudoplatanus L.) cell. Plant Physiol. V. 103. P. 1329 - 1338.

425. Passarella S., Palmieri F., Quagliariello E . 1977. The transport ofoxaloacetete in isolated mitochondria. Arch. Bichem. Biophys. V. 47. P. 619-624.

426. Pastore D., Stoppelli M.C., DiFonzo N., Passarella S. 1999. The existance of

427. K+ channel in plant mitochondria. J. Biol. Chem V. 274. P. 26683 -26689.

428. Paucek P., Yarov-Yarovoy V., Sun X., Garlid K.D. 1996. Inhibition of themitochondrial KATP channel by long-chain acyl-CoA esters and activation by guanine nucleotides. J. Biol. Chem. V. 271. P. 32084 - 32088.

429. Peiffer W.F., Ingle R.T., Ferguson-Miller S. 1990. Struturally unique plantcytochrome с oxidase isolated from wheat germ. A rich source of plant mitochondrial enzymes. Biochemistry. V. 29. P. 8696 - 8701.

430. Petite P. 1984. Mitochondria from the mesophyll cells of Zea mays leaves.

431. J. Plant Physiol. V. 116. P. 351 364.

432. Petronilli V., Cola C., Bernardi P. 1993. Modulation of the mitochondrialcyclosporine A-sensitive permeability transition pore. J. Biol. Chem. V. 268. P. 1011 - 1016.

433. Plaxton W.C. 1996. The organization and regulation of plant glycolysis.

434. Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. V.47. P. 185 214.

435. Pollak J.K., Sutton R. 1980. The differentiation of animals mitochondriaduring development. Trends. Biochem. Sci. V. 5. P. 23 - 27.

436. Poorter H., van der Werf A., Atkin O.K., Lambers H. 1991. Respiratoryenergy requirement of roots vary with the potential growth rate of a plant species. Physiol. Plant. V. 83. P. 469 - 475.

437. Popov V.N., Simonian R.A., Skulachev Y.P., Starkov A.A. 1997. Inhibitionof the alternative oxidase stimulates H202 production in plant mitochondria. -FEBS Lett. V. 415. P. 87 90.

438. Pozzan Т., Rizzuto R. 2000. The renaissance of mitochondrial calciumtransport. Eur. J. Biochem. V. 267. P. 5269 - 5273.

439. Poyton R.O., McEven J.E. 1996. Crosstalk between nuclear andmitochondrial genomes. Ann. Rev. Biochem. V. 62. P. 563 - 607.

440. Prasad Т.К., Andeson M.D., Stewart C.R. 1994. Acclimation, hydrogenperoxide, and abscisic acid protect mitochondria against irreversible chilling injury in maize seedlings. Plant Physiol. V. 105. P. 619 - 627.

441. Puntarulo S, Galleano M, Sanches R.A, Boveris A. 1991. Superoxideanione and hydrogen peroxide metabolism in soybean embrionic axes during germination Biochim. Biophys. Acta. V. 1074. P. 277 -283.

442. Purvis A.C. 1997. Role of the alternative oxidase in limiting superoxideproduction by plant mitochondria. Physiol. Plant. V. 100. P. 165 - 170.

443. Purvis A.C, Shewfelt R.L. 1993. Does the alternative pathway amelioratechilling injury in sensitive plant tissues? Physiol. Plant. V.88. P.712 -718.

444. Purvis A.C, Shewfelt R.L. 1994. Superoxide production by mitochondriaisolated from green bell frut. Physiol. Plant. V. 94. P. 743 - 749.

445. Purvis J.L, Greenspan M.D. 1965. Energy-linked incorporation ofdiphosphopyridine nucleotides into rat liver mitochondria- Biochim. Biophys. Acta. V.99. P. 191-194.

446. Ragan С. I, Cottingham I.R. 1985. The kinetics of quinone pools in electrontransport. Biochem. Biophys. Acta. V. 811. P. 13-31.

447. Raison J. K. 1973. Temperature-induced phase changes in membrane lipidsand their influence on metabolic regulation. Symp. Soc. Exp. Biol. N. XXVII. P. 485-512.

448. Rappoport S.M, Schewe T.S. 1986. The maturational breakdown of mitochondria in reticulocytes.- Biochim. Biophys. Acta. V. 864. P. 471- 495.

449. Rasmusson A.G, Fredlund K.M, Moller I.M. 1993. Purification of arotenone-insensitive NAD(P)H dehydrogenase from the inner surface of inner membrane of red beetroot mitochondria. Biochim. Biophys. Acta. V. 1141.P. 107-110.

450. Rasmusson A.G., Heiser V., Zabaleta E., Brennicke A., Grohmann L. 1998.

451. Physiological, biochemical and molecular aspects of mitochondrial complex I in plants. Biochim. Biophys. Acta. V. 1364. P. 101 - 111.

452. Rasmusson A.G., Meadel-Hartvig J., Moller I. M., Wiskich J. T. 1994.1.olation of the rotenone-sensitive NADH-ubiquinone reductase (complex I) from red beet mitochondria. Plant Physiol. V. 90. P. 607 -615.

453. Rasmusson A.G., Moller I.M. 1990 NADP-utilizing enzymes in the matrixof plant mitochondria. Plant Physiol. V. 94. P. 1012 - 1018.

454. Rasmusson A.G., Moller I.M. 1991. NAD(P)H dehydrogenases on the innersurface of the inner mitochondrial membrane studied using inside-out submitochondrial particles. Plant Physiol. V. 83. P. 357 - 365.

455. Rees T.A., Brysce J.H., Wilson P.M., Green J.M. 1983. Role and location of

456. NAD malic enzyme in the termogenic tissues of Araceae. Arch. Biochem. Biophys. V. 227. P. 511 - 521.

457. Rees T.A., Hill S.A. 1994. Metabolic control analysis of plant metabolism.

458. Plant Cell Environ. V. 17. P. 587 521.

459. Rhoads D.M., Mcintosh L. 1991. Isolation and characterization of cDNAclone encoding an alternative oxidase protein of Sauromatum guttatum (Shott). Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V.88. P. 2122 - 2126.

460. Rhodes M.J.C. 1980. Respiration and senescence of plant organs. In: The

461. Biochemistry of Plants. A comprehensive Treatis. V. 2. (Ed., Davies D.D.) Ney York e.a.,: Academic Press. P. 419 462.

462. Ribas-Carbo M., Aroca R., Gonzalez-Meier M.A., Irigoyen J.J., Sanchez

463. Diaz M. 2000. The electron partitioning between the cytochrome and alternative respiratory pathways during chilling recovery in twocultivars of maize differing in chilling sensitivity. Plant Physiol. V. 122. P. 199-204.

464. Ribas-Carbo M., Berry J.A., Azcon-Bieto J., Siedow J.N. 1994. The reactionof the plant mitochondrial cyanide-resistant alternative oxidase with oxygen. Biochim. Biophys. Acta. V. 1188. P. 205 - 212.

465. Ribas-Carbo M., Berry J.A., Yakir D., Giles L., Robinson S.A., Lennon

466. A.M., Siedow J.N. 1995. Electron partitioning between the cytochrome and alternative pathways in plant mitochondria. Plant Physiol. V. 109. P. 829-837.

467. Rich P.R., Bonner W.D. 1978. The sites of superoxide generation in higherplant mitochondria. Arch. Biochem. Biophys. V. 188. P. 206 - 213.

468. Rich P.R., Moore A.L. 1976. The involvement of the protomotiveubiquinone cycle in the respiratory chain of the higher plants and its relation to the branch point of the alternative pathway- FEBS Lett. V.65.P.339^42.

469. Rich P.R., Moore A.L., Ingledew W.J., Bonner W. D. 1977. EPR studies onhigher plant mitochondria. Ubisemiquinone and its relation to the alternative respiratory oxidations. Biochim. Biophys. Acta. V. 462. P. 501-514.

470. Richter C. 1988. Do mitochondrial DNA fragments promote cancer andaging? FEBS Lett. V. 241. P. 1-5.

471. Ringler R.L., Singer T.P. 1959. Studies on the mitochondrial aglycerophosphate dehydrogenase. I. Reaction of the dehydrogenase with electron acceptors and the respiratory chain. J. Biol. Chem. V. 234. P. 2211 -2217.

472. Roberts J.K.M. 1987. NMR in plant biochemistry. In: The Biochemistry of

473. Plants. A comprehensive Treatise. V. 13. (Ed. Davies D.D.), San Diego e.a.: Academic Press. P. 181 -227.

474. Roberts Т.Н., Rasmusson A.G., Moller I.M. 1996. Platanetin and 7-iodoacridone-4-carboxylic acid are not specific inhibitors of respiratory NAD(P)H dehydrogenases in potato tuber mitochondria. Physiol. Plant. V. 96. P. 262-267.

475. Robson C.A., Vanlerberghe G.C. 2002. Transgenic plant cells lackingmitochondrial alternative oxidase have increased susceptibility to mitochondria-dependent and -independent pathways of programmed cell death. Plant Physiol. V. 129. P. 1908 - 1920.

476. Roe В., Davies P.L., Bruemmer S.H. 1984. Pyruvate metabolism duringmaturation of hamlin oranges. Phytochemistry. V. 23. P. 713 - 717.

477. Ruffner H.P., Possner D., Rast D.M. 1984. The physiological role of malicenzyme in grape ripening. Planta. V. 160. P. 444 - 448.

478. Rustin P., Moreau F., Lance C. 1980. Malate oxidation in plantmitochondria via malic enzyme and cyanide-insensitive electron transport pathway. Plant Physiol. V. 66. P. 229 - 252.

479. Rustin P., Queiroz-Claret C. 1985. Changes in oxidative properties of

480. Kalanchoe Blossfeldiana leaves mitochondria during development of crassulacean acid metabolism. Planta. V. 164. P. 415 - 422.

481. Sabar M., Paepe R., Kouchkovsky Y. 2000. Complex I impairement,respiratory compensations, and photosynthetic decrease in nucleare and mitochondrial male sterile mutants of Nicotiana sylvestris. Plant Physiol. V. 124. P. 1239 - 1249.

482. Sakajo S., Minagava N., Komuyama Т., Yoshimoto A. 1991. Molecularcloning of cDNA for antimycin A-inducible mRNA and its role in cyanide-resistant respiration in Hansenula anomala. Biochim. Biophys. Acta. V. 1090. P. 102 - 108.

483. Satyanarayan V., Nair P.M. 1990. Metabolism, enzymology and possibleroles of 4-aminobutyrate in higher plants Phytochemistry. V. 29. P. 367-375.

484. Schwitzguebel J.-P. 1983. Aging and respiration: Neurospora crassa as amodel. Physiol. Veg. Y. 21. P. 151 - 166.

485. Seymore A-M.L., Harmsen E., Radda G.K. 1987. Is ADP the primaryregulator of respiation in the heart? -Biochem. Soc. Transact. V.15. P.710 712.

486. Shigenaga M.K., Hagen T.M., Ames B.N. 1994. Oxidative damage andmitochondrial decay in aging. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 91. P. 10771 -10778.

487. Shonbaum G.R., Bonner W.D., Storey B.T., Bahr J.T. 1971. Specificinhibition of the cyanide-insensitive respiratory pathway in plant mitochondria. Plant Physiol. V. 47. P. 124 - 128.

488. Sidhu A., Beattie D.A. 1982. Purification and polypeptide characterizationof complex III from yeast mitochondria. J. Biol. Chem. V. 257. P. 7879-7886.

489. Siedow J.N, Moore A.L. 1993. A kinetic model for the regulation ofelectron transfer through the cyanide-resistant pathway in plant mitochondria. Biochim. Biophys. Acta. V. 1142. P. 165 - 174.

490. Siedow J.N, Umbach A.L. 1995. Plant mitochondrial electron transfer andmolecular biology Plant Cell. V. 7. P. 821 - 831.

491. Skubatz H, Meeuse B.J.D, Bendich A. 1991. Oxidation of proline andglutamate by mitochondria of the inflorence of voodoo lily (Sauromatum guttatum). Plant Physiol. V. 91. P. 530-535.

492. Skulachev V.P. 1994. Lowering of the intracellular 02 concentration as aspecial function of respiratory systems of the cells. Biochemistry. 1994. V. 59. P. 1910-1912.

493. Skulachev V.P. 1996. Why are mitochondria involved in apoptosis?

494. Permeability transition pores and apoptosis as selective mechanism to eliminate superoxide producing mitochondria. FEBS Lett. V. 397. P. 7-10.

495. Skulachev V.P. 1997. Membrane-linked systems preventing superoxideformation. Biosci. Rep. V. 17. P. 347 - 366.

496. Slater E.C, Rosing J, Mol A. 1973. The phosphorylation potentialgenerated by respirating mitochondria.-Biochim. Biophys. Acta. V. 292. P.534-553.

497. Sluse F.E, Almeida A.M., Jarmuszkiewicz W, Vercesi A.E. 1998. Freefatty acids regulate the uncoupling protein and alternative oxidase activities in plant mitochondria. FEBS Lett. V. 433. P. 237 - 240.

498. Sluse F.E, Jarmuszkiewicz W. 2002. Uncoupling proteins outside theanimal and plant kingdoms: functional and evolutionary aspects. -FEBS Lett. V. 510. P. 117- 120.

499. Sohal R.C., Sohal B.H. 1991. Hydrogen peroxide release by mitochondriaincreases during aging. Mech. Age. Dev. V. 57. P. 187 - 192.

500. Solomos T. 1977. Cyanide-resistant respiration in higher plants. Ann. Rev.

501. Plant. Physiol. V. 28. P. 279 297.

502. Solomos T. 1983. Respiration and energy metabolism in senescing planttissues. In: Post-Harvest Physiology and Crop Preservation. Proc. NATO Adv. Study Inst., Sounion. P. 61 98.

503. Solomos Т., Laties G.G. 1974. Similarities between the actions of ethyleneand cyanide in initiating the climacteric and ripening of avocados. -Plant Physiol. V. 54. P. 506 511.

504. Solomos Т., Laties G.G. 1976. Effect of cyanide and ethylene on therespiration of cynide-sensitive and cyanide-resistant plant tissues. -Plant Physiol. V. 58. P. 47 -50.

505. Solomos Т., Malhota S.S., Prasad V.S., Malhotra S.K., Spenser M. 1972.

506. Biochemical and structural changes in mitochondria and other cellular components of pea cotyledons during germination. Can. J. Biochem. V. 50. P. 725-737.

507. Sonnewald U., Hajirezaei M.R., Kossman J., Heyer M., Willmitzer L. 1997.1.creased tuber size resulting from expressing of a yeast invertase. -Nature Biotechnology. V. 15. P. 794 797.

508. Soole K. L., Dry I. D., Wiskich J.T. 1991. Partial purification andcharacterization of complex I, NADH: ubiquinone reductase, from the inner membrane of beetroot mitochondria. Plant Physiol. V. 98. P. 588-594.

509. Soole K.L., Dry I.B., James A.T., Wiskich J.T. 1990. The kinetics of NADHoxidation by complex I of isolated plant mitochondria. Physiol. Plant. V. 80. P. 75-82.

510. Soole K.L., Dry I.B., Wiskich J.T. 1986. The responce of isolated plantmitochondria to external nicotinamid adenine dinucleotid. Plant Physiol. V. 81. P. 587-592.

511. Soole K.L., Menz R.I. 1995. Functional molecular aspects of the NADHdehydrogenases of plant mitochondria. J. Bioenerg. Biomembr. V. 27. P. 397-406.

512. Spalding M.H., Arron G.P., Edwards G.E. 1980. Malate decarboxylation inisolated mitochondria from the crassulacean acid metabolism plant Sedumpraealtum. Arch. Biochem. Biophys. V. 199. P. 448 - 456.

513. Splittstoesser W.E. 1967. Synthesis of malate by carrot and beet root tissuesincubated with bicarbonate-14C and distribution of 14C within the malate molecule. Proc. Amer. Soc. Hort. Sci. V. 90. P. 235 - 238.

514. Splittstoesser W.E., Stewart S.A. 1970. Distribution and isoenzymes ofaspartate aminotransferase in cotyledons of germinating pumpkins. -Plant Physiol. V. 23. P. 1119 -1126.

515. Stewart C.R., Martin B.A., Reding L., Cerwick S. 1990. Respiration andalternative oxidase in corn seedling tissues during germination at different temperatures. Plant Physiol. V. 92. P. 755 - 760.

516. Stitt M. 1998. Pyrophosphate as an energy donor in the cytosol of plant cell:an enigmatic alternative to ATP. -Bot. Acta. V. 111. P. 167- 175.

517. Stitt M., Lilley R.M., Heldt H.W. 1982. Adenine nucleotide levels in thecytosol, chloroplasts, and mitochondria of wheat leaf protoplasts. -Plant Physiol. V. 70. P. 971 -977.

518. Storey В.Т. 1976. Respiratory chain of plant mitochondria. XVIII. Point ofinteraction of the alternate oxidase with the respiratory chain. Plant Physiol. V. 58. P. 521 -525.

519. Sturm A. 1999. Invertase. Primary structures, functions and roles in plantdevelopment and sucrose partitioning. Plant Physiol. V. 121. P. 1-7.

520. Susin S.A., Zamzami N., Kroemer G. 1998. Mitochondria as regulators ofapoptosis: doubt no more. Biochim. Biophys. Acta. V. 1366. P. 151 -165.

521. Tang G.-Q., Luscher M., Sturm A. 1999. Antisense repression of vacuolarand cell wall invertase in transgenic carrot alters early plant development and sucrose partitioning.- Plant Cell. V. 11. P. 177- 189.

522. Tauberger E., Hoffman-Benning S., Fleischer-Notter H., Willmitzer L.,

523. Fisahn J. 1998. Impact of invertase overexpression on cell size, stach granule formation and cell wall properties during tuber development in potatoes with modified carbon allocation patterns. J.Exp. Bot. V. 50. P. 477 -486.

524. Taylorson R.B., Hendriks S.B. 1977. Dormancy in seeds. Ann. Rev. Plant

525. Physiol. V. 28. P. 331 -354.

526. Theologis A., Laties G.G. 1978. Relative contribution of cytochromemediated and cianide-resistant electron transport in fresh and aged potato slices. Plant Physiol. V. 62. P. 232 - 237.

527. Thompson J.E., Legge R.L., Barber R.F. 1987. The role of free radicals insenescence and wounding. New Phytol. V. 105. P. 317 - 344.

528. Tobin A., Dierdjour В., Journet E., Neuburger M., Douce R. 1980. Effect of

529. NAD+ on malate oxidation in intact plant mitochondria. Planta. V. 142. P. 83 -90.

530. Tobin A., Givan C.V. 1984. Adenine nucleotide regulation of malateoxidation in isolated mung bean hypocotyl mitohondria. Plant Physiol. V. 76. P. 21 -25.

531. Trumpover B.L. 1976. Evidence for a proton motive Q cycle mechanism ofelectron transport through the cytochrome b-cj complex. Biochem. Biophys. Res. Commun. V. 70. P. 73 - 80.

532. Trumpover B.L., Gennius R.B. 1994. Energy transduction by cytochromecomplexes in mitochondrial respiration: the enzymology of coupling electron transport to transmembrane proton translocation. Ann. Rev. Biochem. V. 63. P. 675-716.

533. Tucker M.L., Laties G.G. 1984. Interrelationship of gene expresion,polysome prevalence and respiration during ripening of ethylene and/or cyanide treated avocado fruit, Per sea americana cultivar Hass. Plant Physiol. V. 74. P. 307-315.

534. Tucker S.J, Gribble E.M., Zhao C., Trapp S., Aschcroft F.M. 1997.

535. Nature. V. 387. P. 179- 180.

536. Ueda K., Matsuo M., Tanabe K., Morita K., Kioka N., Amachi T. 1999.

537. Comparative aspects ot the function and mechanism of SUR1 and MDR1 proteins. Biochim. Biophys. Acta. V. 1461. P. 305 -313.

538. Vanlerberghe G.C., Mcintosh L. 1992. Low growth temperature increasesalternative pathway capacity and alternative oxidase protein in tobacco. Plant Physiol. V. 100. P. 115 -119.

539. Vanlerberghe G.C., Vanlerberghe A.E., Mcintosh L. 1994. Moleculargenetic alteration of plant respiration: silencing and overexpression of alternative oxidase in transgenic tobacco. Plant Physiol. V. 106. P. 1503- 1510.

540. Vanlerberghe G.C., Vanlerberghe A.E., Mcintosh L. 1997. Moleculargenetic evidence of the ability of alternative oxidase to support respiratory carbon metabolism. Plant Physiol. V. 113. P. 657 - 661.

541. Vanlerberghe G. C., Mcintosh L. 1994. Mitochondrial electron transportregulation of nuclear gene expression: studies with the alternative oxidase gene of tobacco. Plant Physiol. V. 105. P. 867 - 874.

542. Vanlerberghe G. C., Mcintosh L. 1996. Signals regulating the expression ofthe nuclear gene encoding alternative oxidase of plant mitochondria. -Plant Physiol. V. 111. P. 589-595.

543. Vanlerberghe G. C., Mcintosh L. 1997. Alternative oxidase: from gene tofunction. Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. V. 48. P. 703 -734.

544. Vanlerberghe G.C., Robson C.A., Yip J.Y.H. 2002. Induction ofmitochondrial alternative oxidase in response to a cell signal pathway down-regulating the cytochrome pathway prevents programmed cell death. Plant Physiol. V. 129. P. 1829 -1842.

545. Vercesi A.E., Martins I.S., Silva M.A.P., Leite H.M.F. 1995. PUMPingplants. Nature. V. 375. P. 24.

546. Vianello A., Marci F. 1999. Proton pumping pyrophosphatase from higherplant mitochondria. Physiol. Plant. V. 105. P. 763 - 768.

547. Von Korff R.W. 1967. Changes in metabolic control sites of rabbit heartmitochondria. Nature. V. 214. P. 23 - 26.

548. Wagner A.M. 1995. A role of oxygen species as second messenger in theinduction of alternative oxidase gene expression in Petunia hybrida cells. FEBS Lett. V. 368. P. 339 - 342.

549. Wagner A.M., Krab K. 1995. The alternative respiration pathway in plants:role and regulation. Plant Physiol. V. 95. P. 318 - 325.

550. Wagner A.M., Kraak M.H.S., Emmerik W.A.M., van der Plas L.H.W. 1989.

551. Respiration of plants mitochondria with various substrates: alternative pathway with NADH and TCA cycle substrates. Plant Physiol. Biochem. V. 27. P. 837 - 845.

552. Wagner A.M., Moore A.L. 1997. Structure and function of the plantalternative oxidase: its putative role in the oxygen defense mechanism.- Biosci. Rep. V.17. P. 319 333.

553. Wagner A.M., van der Bergen C.W.M., Wincenjusz H 1995. Stimulation ofthe alternative pathway by succinate and malate. Plant Physiol. V. 108. P. 1035- 1042.

554. Wedding R.T., Black M.K., Pap D. 1976. Malate dehydrogenase and NADmalic enzyme in the oxidation of malate by sweet potato mitochondria.- Plant Physiol. V. 58. P. 740 -743.

555. Wedding R.T. 1989. Malic enzymes of higher plants. Characteristics,regulation, and physiological function. Plant Physiol. V. 90. P. 367 -371.

556. Weiss H., Friedrich T, Hofhaus G, Preis D. 1991. The respiratory-chain

557. HADH dehydrogenase (complex I) of mitochondria. Eur. J. Biochem. V. 197. P. 563 -576.

558. Whitehouse D.G, Fricaud A.-C, Moore A. L. 1989. Role of nonohmity inthe regulation of electron transport in plant mitochondria. Plant Physiol. V. 91. P. 487-492.

559. Wilson D.F, Owen C, Mela L. 1973. Control of mitochondrial respirationby the phosphate potential. Biochem. Biophys. Res. Commun. V. 53. P. 326-333.

560. Winkler M.N, Mawson B.T, Thorpe T.A. 1994. Alternative andcytochrome pathway respiration during shoot bud formation in cultivared Pinus radiata cotyledons.-Physiol. Plant. V. 98. P. 144-151.

561. Winning B.M, Bourguignon J, Leaver С J. 1994. Plant mitochondrial

562. NAD+-dependent malic enzyme, cDNA cloning, deduced primary structure of the 59- and 62-kDa subunits, import, gene complexity and expression analysis. J. Biol. Chem. V. 269. P. 4780 - 4786.

563. Wiskich J.T. 1980. Control of the Krebs cycle. In: The Biochemistry of

564. Plants. A comprehensive Treatis. V. 2. (Ed, Davies D.D.) New York, London : Academic Press. P. 243 278.

565. Wiskich J.T, Bonner W.D. 1963. Preparation and properties of sweet potatomitochondria. Plant Physiol. V. 38. P. 594 - 604.

566. Wiskich J.T., Day D.A. 1982. Malate oxidation, rotenone-resistance andalternative path activity in plant mitochondria. Plant Physiol. V. 70. P. 959 - 964.

567. Wong A., Cortopassi G.A. 1999. Mitochondria in organismal aging anddegeneration. Biochim. Biophys. Acta. V. 1410. P. 183 - 193.

568. Yang J., Liu X., Bhalla K., Kim C.N., Ibrado A.M., Cai J, Peng T-I., Jones

569. D., Wang X. 1997. Prevention of apoptosis by Bcl-2: release of cytochrome с from mitochondria bloked. Science. V. 275. P. 1129 — 1132.

570. Yip J.Y.H., Vanlerberghe G. 2001. Mitochondrial alternative oxidase acts todampen the generation of active oxygen species during a period of rapid respiration induced to support a rate of nutrient uptake. Physiol. Plant. V. 112. P. 327-333.

571. Zizi M., Forte M., Blachy-Dyson E., Colombini M. 1994. NADH regulatesthe gating of VDAC, the mitochondrial outer membrane channel. J. Biol. Chem. V. 269. P. 1614-1616.

572. Zorov D.B. 1996. Mitochondrial damage as a source of diseases and aging: astrategy of how to fight these. Biochim. Biophys. Acta. V. 1275. P. 10-15.

573. Zottini M., Mandolino G., Zannoni D. 1993. Oxidation of external

574. NAD(P)H by mitochondria from taproots and tissue cultures of sugar beet (Beta vulgaris). Plant Physiol. V. 102. P. 579 - 585.

575. Zrenner R., Schuler K., Sonnewald U. 1996. Soluble acid invertasedetermines the hexose-to-sucrose ratio in cold-stored potato tubers. -Planta. V. 198. P. 246-252.

576. Хочу выразить Искреннюю благодарность всем моим коллегам по лаборатории транспорта метаболитов за внимание и помощь в работе, за доброжелательность и сотрудничество, которые я постоянно ощущаю на протяжении более 20 лет работы в лаборатории.