Диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.02, кандидат ветеринарных наук Войтова, Ксения Васильевна

• Войтова, Ксения Васильевна
• кандидат ветеринарных наук
• 2011

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Войтова, Ксения Васильевна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ.

1 .ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 Характеристика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.

1.1.1. Историческая справка.

1.1.2. Характеристика возбудителя.

1.1.3. Структура и функционирование генома вируса.

1.1.4. Антигенные и генетические подгруппы вируса.

1.2. Эпизоотологические данные.

1.3. Особенности патогенеза, клинических признаков и патоморфоло-гических изменений при респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.

1.3.1. Патогенез.

1.3.2. Клинические признаки.

1.3.3. Патоморфологические изменения.

1.4. Диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.

1.4.1. Выделение вируса в культурах клеток.

1.4.2. Серологическая диагностика.

1.4.3. Разработка и применение полимеразой цепной реакции для диагностики РСИ КРС.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции»

Актуальность темы. В настоящее время в России возрастает удельный вес хозяйств, занимающихся производством молока. В некоторых из них в результате завоза высокопродуктивного скота молочных пород из других стран происходит сосредоточение большого числа животных на ограниченных территориях. Высокая молочная продуктивность коров часто сопровождается нарушением обмена веществ и другой патологией, приводящей, в частности, к рождению слабого молодняка, подверженного различным болезням (А.Г. Шахов и соавт., 2000; Ю.Н. Федоров, 2006).

Респираторные болезни крупного рогатого скота являются одной из наиболее важных причин экономического .ущерба в индустрии молочного скотоводства, приводя к падежу или снижению скорости роста больных животных, затратам на лечение, диагностические и профилактические мероприятия (Н.Н. Крюков и соавт., 1976; В.А. Мищенко и соавт., 2000; Н.Ю. Басова, 2002; К.П. Юров и соавт., 2003; А.Г. Глотов и соавт., 2008; Н.Р. Будулов, 2009; Б.О. Вгуэоп, 2000; К.А. Вк^еп & а1., 2002).

Одним из многих этиологических агентов респираторных болезней крупного рогатого скота является респираторно-синцитиальный вирус (РСВ КРС), относящийся к семейству Рагатухоу1Пс1ае, роду Рпеитоу1гт. Восприимчив скот всех возрастных групп, но чаще болеют телята с одного до шестимесячного возраста (А.Р.АпШшб е! а1., 2010; ВЖ Вгоёегзеп, 2010), однако болезнь может возникать у коров (М. ЕЬ/апс1ег, 1996). Вирус может вызывать бронхиты, интерстициальную пневмонию и эмфизему легких самостоятельно, но главным его свойством является иммуносу-прессия и формирование предрасположенности к возникновению бактериальных пневмоний, т.к. течение болезни часто осложняется условно-патогенной микрофлорой {РаБЫигеИа ярр.) или микоплазмами, что влияет на характер патологоанатомических изменений (Ь.Е. Ьагееп, 2000; Ь.В. СогЬеП et а1, 2007).

Болезнь регистрируется во всех странах мира с интенсивным типом ведения животноводства (T.R. Ames, 1993; L.E. Larsen, 2000; S. Hagglund, 2005; B.W. Brodersen, 2010; С. Luzzago et al., 2010). Первые сообщения о болезни в нашей стране относятся к 1975 году (В.В. Гуненков и соавт., 1975). Изучению болезни и разработке средств и методов диагностики были посвящены работы Г.А. Халенева (1976), A.B. Васильева и соавт. (1988), И.Я. Строгановой (1989) и других.

В настоящее время актуальным является изучение эпизоотической ситуации по респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота (РСИ КРС) в хозяйствах по производству молока, особенно с наличием импортированного скота, а также разработка высокоэффективных методов диагностики болезни с целью совершенствования противоэпизо-отических мероприятий.

Вирус относится к числу нестойких и обладает слабой способностью к размножению в культурах клеток, поэтому вирусологическая диагностика болезни, малоэффективна (EJ. Dubovi, 1993; L.E. Larsen, 2000). В связи с этим преимущество имеют молекулярные методы исследования, в частности, полимеразная цепная реакция (ОТ-ПЦР) (S. Hagglund, 2005; J-F. Valarcher et al., 2007).

Разработка ОТ-ПЦР для выявления PCB КРС во многих странах началась в конце прошлого столетия. Чаще мишенями для амплификации являлись участки относительно или высоко консервативных генов, кодирующих протеины F или G вируса. Были разработаны различные варианты реакции, основанной на обратной транскрипции: в обычном электрофорез-ном формате, гнездовая ПЦР и ПЦР в режиме реального времени.

В литературе имеются сообщения о выявлении вируса при помощи ОТ-ПЦР в инфицированных культурах клеток1 (R. D. Oberst et al.,1993), а также пробах биоматериала от больных животных (S. Vilcek et al., 1994; L.E. Larsen et al,1999; V. Valentovä et al., 2003; R.S. Almeida et al., 2005;

М. Вохиэ ег а1., 2005; М. НакЪуеЫуап <А а1., 2005; № УакгсИег еЬ а1., 2007; О. Агщеп е1 а1., 2009; Е. Типвй et а1., 2009).

На момент начала наших исследований в РФ законченных разработок в этом направлении не было.

Дель и задачи исследований. Целью работы являлась разработка полимеразной цепной реакции для диагностики респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота и изучение ее диагностической и экономической эффективности.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить распространение респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота в хозяйствах региона Сибири с учетом наличия в них импортированного и местного скота по результатам серологических исследований;

2. Провести подбор праймеров и оптимальных параметров проведения диагностической ОТ-ПЦР, определить ее чувствительность и специфичность, а также - влияние сроков хранения вируссодержащей суспензии и выделенной РНК вируса при различных температурных режимах на пригодность к исследованию в ОТ-ПЦР;

3. Изучить диагностическую и экономическую эффективность ОТ-ПЦР в производственных условиях^: установить частоту выявления РСВ в моноварианте и в ассоциациях с бактериями семейства Pasteurellaceae.

Научная новизна. Показано широкое распространение РСИ КРС в хозяйствах региона Сибири с интенсивным типом ведения молочного животноводства. Разработана ОТ-ПЦР с праймерами на ген гликопротеина Б, показана ее высокая эффективность при диагностике болезни в производственных условиях. Определены оптимальные сроки хранения вируссодержащей суспензии и выделенной РНК вируса при различных температурных режимах. Изучена частота выявления вируса в моноварианте и в ассоциациях бактериями семейства Pasteure¡laceae.

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные результаты создают перспективы использования ОТ-ПЦР в диагностике РСИ КРС в качестве основного вирусологического метода в комплексе с серологическими исследованиями, что будет способствовать оптимизации противоэпизоотических мероприятий.

Материалы диссертации представляют теоретическую и практическую ценность, так как дают возможность расширить научные знания относительно роли РСВ в этиологии респираторных болезней крупного рогатого скота на крупных молочных комплексах. Они могут быть использованы при дальнейшем изучении эпизоотологии, патогенеза РСИ КРС и смешанных вирусно-бактериальных инфекций, протекающих по синергетиче-скому типу.

Внедрение полученных результатов. Материалы диссертации использованы при разработке рекомендаций: «Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота», утвержденных подсекцией «Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» от-* деления ветеринарной медицины Россельхозакадемии (протокол №1 от 26.01.2010 г.)

Основные положения диссертационной работы использованы при разработке научно-технической документации на «Тест-систему для выявления вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции» (Свидетельство о Госрегистрации № ПВР-1-8.9/02499).

Апробация полученных результатов. Материалы диссертационной работы доложены на: международной научно-практической конференции, посвященной 40-летию ВНИиТИБП, «Научные основы производства биологических препаратов», Щелково, 2009; II Сибирском ветеринарном конгрессе «Актуальные вопросы ветеринарной медицины», Новосибирск, 2010; XIV международной научно-практической конференции молодых учёных и специалистов «Молодость, талант, знания агропромышленному комплексу России», посвященной 80-летию УГАВМ, Троицк, 2009; VI международной научной конференции молодых учёных, посвященной 40-летию СО Россельхозакадемии «Новейшие направления развития аграрной науки в работах молодых ученых», Краснообск, 2010; XIII Международной научно- практической конференции «Аграрная наука — сельскохозяйственному производству Монголии, Сибири и Казахстана», Новосибирск, 2010; VII всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Молекулярная диагностика — 2010», Москва, 2010г.

Публикация результатов исследований. По теме диссертации опубликовано 10 научных работ, в том числе 3 — в журналах, рекомендованных ВАК Минобразования и науки Российской Федерации («Ветеринария», «Сибирский вестник сельскохозяйственной науки», «Вестник Крас-ГАУ»).

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 120 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения, выводов, практических предложений, приложения. Работа иллюстрирована одним рисунком и 10 таблицами. Список литературы включает 246 источников, в том числе 188 зарубежных.

Заключение диссертации по теме «Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов», Войтова, Ксения Васильевна

4. ВЫВОДЫ

1. Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота широко распространена в молочных хозяйствах Сибири и носит энзоотический характер, Серопозитивность животных к вирусу в среднем по трем административным территориям находилась в пределах 38,4-66,6%%. У взрослого скота она достигала 76,3-86,7%%, а у молодняка до 6 месяцев 20,4%- 29,9%%. В среднем у 54,3 -92,6% телят до 30 дней отсутствовали колостральные антитела к вирусу. Титры антител у телят достоверно повышались к возрасту 12 месяцев и старше, свидетельствуя о переболева-нии в возрасте 4-10 месяцев.

2. Средние титры антител к вирусу у животных в хозяйствах с наличием импортированного скота были выше, чем у животных без него. В период вспышек болезни циркуляция вируса среди, животных разных половозрастных групп, происходила более активно, особенно среди нетелей, завезенных по импорту, ,и коров (нетели — 5,4±0,43 lg2; коровы — 5,1±0,02 lg2). При вспышках болезни сероконверсию к вирусу чаще выявляли у телят в возрасте 4-6 месяцев и коров (4 - 32 кратное повышение титров антител). Уровень сероконверсии к вирусу РСИ в хозяйствах с наличием импортного скота был более высоким (до 256-кратного).

3. Диагностическая ОТ-ПЦР с праймерами, комплементарными последовательностям высоко консервативного гена гликопротеина F PCB КРС, обладала высокой чувствительностью и специфичностью. Она достоверно выявляла РНК исследованных штаммов вируса. В результате амплификации кДНК вируса синтезировался фрагмент 381 п.о. Чувствительность реакции составила 10"5 ТЦД5о/мл. Выделенная РНК, используемая в качестве положительного контроля ОТ-ПЦР, сохраняла свою активность в течение 2-10 месяцев при минус 18°С.

4. Методом ОТ-ПЦР установлено, что к инфицированию вирусом восприимчивы все половозрастные группы животных. В среднем вирус присутствовал в 15,4% исследованных проб биоматериала, полученных от крупного рогатого скота при вспышках болезни. Частота выявления генома вируса от телят до 6-месячного возраста составила 19,7%, а от коров 16,1% при наличии признаков острых респираторных заболеваний, эмфизематозных поражений легких и интерстициальной бронхопневмонии. Выявление генома вируса в 4,5% проб биоматериала от телят до 10-дневного возраста свидетельствовало о вовлечении их в эпизоотический процесс.

5. Вирус чаще выявляли в пробах трахеального и бронхиального экссудатов (45,8%), бронхов (33,3%), легких (20,0%), легочных лимфатических узлов (20,0%), слизистой трахеи и бронхов (14,3%), носовых выделений (13,3%) животных с наличием признаков острых респираторных болезней. Наиболее достоверное выявление генома вируса в пробах биоматериала происходило при их отборе на ранних стадиях развития респираторных болезней и транспортировке в лабораторию не дольше 24 часов с однократной заморозкой и оттаиванием, либо в контейнерах с транспортной средой в охлажденном виде.

6. РСВ КРС в моноварианте присутствовал в 14,6%, РаяСеигеНа ти1-^с1с1а - в 9,2%, а Маппкетш каето1уйса — 11,4% проб биоматериала от больных животных. Одновременное выделение трех возбудителей в одной пробе было равным 9,9%.

7. ОТ-ПЦР экономически эффективнее микрометода выделения вируса в культуре клеток в 7,8 раза, а по срокам постановки в 22,5 - 37,5 раза. Время исследования 50 проб биоматериала составляло 48 часов, что по срокам постановки превосходило традиционный метод выделения вируса в 37,5 раз (45- 75 суток и более).

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. В крупных хозяйствах молочного направления, неблагополучных по респираторным болезням крупного рогатого скота, необходимо проводить диагностические исследования с целью установления этиологической роли респираторно-синцитиального вируса согласно методическим рекомендациям «Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота», утвержденным подсекцией «Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии (протокол № 1 от 26.01.2010 г.);

2. Для диагностики болезни использовать «Тест-систему для выявления вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции» (Свидетельство о Госрегистрации № ПВР-1-8.9/02499) в комплексе с серологическими методами исследований.

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Войтова, Ксения Васильевна, 2011 год

1. Азаренко, B.C. Результаты серологических исследований на вирусные заболевания органов дыхания / B.C. Азаренко, В.А. Демидов, Т.П. Плавник // Ветеринарная наука — производству: труды БелНИВИ т. 9. Минск, 1973.-С. 12-16.

2. Архипов, Н.И. Патологоанатомическая диагностика вирусных болезней животных: справочное издание / Н.И. Архипов, С.Ф. Чевелев, Г.И. Брагин и др.. Москва: Колос, 1984. - 399 с.

3. Баженов, К.С. Распространение вирусов прагриппа-3 и респира-торно-синцитиальной инфекции среди телят на откорме в осенне-зимний период / К.С. Баженов // Бюллетень ВИЭВ. Москва, 1983. - Вып. 50. -С. 6 - 8.

4. Басова, Н.Ю. Респираторные болезни молодняка крупного рогатого скота инфекционной этиологии в условиях Северного Кавказа: автореф. дис. д-ра ветеринар, наук / Н.Ю. Басова. Краснодар, 2002. — 42 с.

5. Бостанджиева, Р. Чувствительност на клетьчните культури към го-вяждия респираторно-синцитиален вирус / Р. Бостанджиева //Вет. Мед. Науки,- 1986. — №2. С. 12-18.

6. Бостанджиева, Р. Культивирование и диагностика респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота: автореф. дис. . канд. биол. наук / Р. Бостанджиева. София, 1987. - 27 с.

7. Будулов, Н.Р. Респираторные болезни крупного рогатого скота в Дагестане: автореф. дис. . д-ра ветеринар, наук / Н.Р. Будулов. Краснодар; 2009. - 43 с.

8. Васильев; A.B. PHFA в серодиагностике респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота / A.B. Васильев, Н.Г. Осидзе, В.Н. Сюрин и др. // Ветеринария. 1988. - №10. - С. 33 - 34.

9. Воронин, Е.С. Вирусные респираторные инфекции крупного рогатого скота в промышленных комплексах / Е.С. Воронин, A.A. Конопаткин // Лекции для слушателей факультета повышения квалификации. — Москва, 1982. 29 с.

10. Генчев, Г. Энзоотии респираторных заболеваний телят с признаками респираторно-синцитиального вируса / Г. Генчев //21 Всемирный вет. конгресс. -Москва, 1979. т. 3.- 101 с.

11. Глотов, А.Г. Распространение вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота / А.Г. Глотов, Т.И. Глотова, О.Г. Петрова и др. // Ветеринария. 2002. - №3. - С. 17 - 21.

12. Глотов, А.Г. Респираторные болезни телят вирусно-бактериальной этиологии / А.Г. Глотов, Т.И. Глотова // Рос. акад. с.-х. наук Сиб. отд-ние, Ин-т эксперимент. Ветеринарии Сибири и Дальнего Востока. Новосибирск: Агрос. - 2008. - 258 с.

13. Глотов, А.Г. Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота / А.Г. Глотов, Т.И. Глотова // Ветеринария. — 2009. — № 11.— С. 18-23.

14. Грязин, В.Н. Вирусные респираторные заболевания телят и меры борьбы с ними: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук / В.Н. Грязин. — Новосибирск, 1983. 20 с.

15. Гуненков, В.В. Респираторно-синцитиальная инфекция/ В.В. Гу-ненков, Г.А. Халенев, В.Н. Сюрин // Животноводство и ветеринария т. 8 -Москва, 1975. С.70 - 76.

16. Джупина, С.И. Методы эпизоотологического исследования и теория эпизоотического процесса / С.И. Джупина Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1991.- 142 с.

17. Казанцев, А.П. Справочник по инфекционным болезням / А.П. Казанцев, В.С. Матковский // 3-е изд., перераб. и доп. Москва: Медицина, 1986. - 350с.

18. Кочиш, Т.М. Разработка набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе: автореф. дис. . канд. биол. наук / Т.М. Кочиш. Щелково, 2004. - 23 с.

19. Крюков, H.H. Вирусные респираторные болезни крупного рогатого скота / H.H. Крюков, З.Ф. Зудилина, С.И. Евдокимов // Ветеринария. — 1976. №6. — С. 111 - 113.

20. Мартынов, Ю.В. Выделение PCB от телят с респираторным синдромом: патогенез, лечение и профилактика болезней жвачных животных в Западной Сибири / Ю.В. Мартынов, М.И. Орлов // Омск. -1985. т- С. 22 24.

21. Матвеева, И.Н. Промышленные технологии изготовления компонентов моно- и комплексных диагностикумов инфекционных заболеваний животных: автореф. дис. . д-ра биол. наук / И.Н. Матвеева. Кащинцево, 2008.-24 с.

22. Матвеева, И.Н. Тест-система ИФА для определения антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота / И.Н. Матвеева, Д.П. Кузнецов, C.B. Кузнецова и др. // Ветеринария и кормление. 2006. - № 6. - С.28 - 29.

23. Матвеева, И.Н. Получение антигена респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота для использования в ИФА / И.Н. Матвеева // Ветеринария. 2007. - № 11. - С. 49 - 51.

24. Метревели, Т.Д. Биологические свойства вируса и серологическая диагностика PC-инфекции крупного рогатого скота: автореф. дис. .канд. биол. наук / Г.Д. Метревели. Москва, 1989. — 19 с.

25. Метревели, Г.Д. Современная диагностика залог успешной борьбы с PC-инфекцией крупного рогатого скота / Т.Д. Метревели, В.В.Гуненков //Тез. докл. Всесоюзн. науч. конф. по проблемам эпизоотологии. -Казань, 1983. - С. 91 - 94 с.

26. Методические указания по лабораторной диагностике пастерел-лезов животных и птиц. Министерство сельского хозяйства. — Москва, 1992. - 16 с.

27. Методические рекомендации по оценки социально-экономической эффективности применения метода биочип-диагностики во фтизиатрии Министерство здравоохранения и социального развития Российской Федерации - Москва, 2009. - 22 с.

28. Мищенко, В.А. Особенности респираторных инфекций телят /

29. B.А. Мищенко, A.A. Гусев, О.И. Сухарев и др. // Ветеринария. 2000. - №9. - С. 5 - 6.

30. Мищенко, В.А. Проблема респираторных смешанных инфекций молодняка КРС / В.А. Мищенко // Актуальные проблемы инфекционной патологии животных: материалы междунар. науч.-практ. конф., 30-31 октября 2003 г. Владимир, 2003. - С.72 - 77.

31. Муравьев, В.Н. Изучение динамики эпизоотологического процесса при респираторно-кишечных заболеваниях телят /H.H. Муравьев, Г.В. Усма-нова, A.A. Бурдов // Сб. науч. тр. Москва: MB А, 1983. - С. 9 - 11.

32. Науменков, В.И. Вопросы этиологии и динамики эпизоотического процесса при вирусных пневмоэнтеритах телят / В.И. Науменко // Ветеринария. 1994. - №2. - С. 23 - 24.

33. Обухов, И.Л. Применение полимеразной цепной реакции в ветеринарии / И.Л. Обухов, А.Н. Панин // Аграрная Россия. — 2002. №2.1. C. 62 64.

34. Петрова, О.Г. Острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота в племенных хозяйствах среднего Урала и оптимизация системы противоэпизоотических мероприятий: автореф. дис. . д-ра ветеринар, наук / О.Г. Петрова. Москва, 2002. - 47 с.

35. Петрова, О.Г. Острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота в Свердловской области /О.Г. Петрова, А.Т. Татарчук, Н.Л. Сапожникова и др. // Ветеринария. — 2002. — № 2. — С. 11 15.

36. Природа, этиологическая структура, патогенез, диагностика массовых желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят и меры борьбы с ними / Э.А. Шегидевич и др. // Труды ВИЭВ. 2003. - №73. — С. 15 - 22.

37. Пыталев, П.Н. Эпизоотологический надзор за важнейшими инфекциями крупного рогатого скота; автореф. дис. . канд. ветеринар, наук / П.Н. Пыталев. Москва, 1996. - 21 с.

38. Саики, Р. Полимеразная цепная реакция / Р. Саики, У. Гиленстен, Г. Эрлих // Анализ генома. Методы; под ред. К. Дейвиса. Москва: Мир, 1990.-С. 176- 189.

39. Строганова, И.Я. Культивирование респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота с целью получения диагностических препаратов: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук / И.Я. Строганова. — Москва, 1988. -20 с.

40. Сюрин, В.Н. Частная ветеринарная вирусология: справочная книга /В.Н. Сюрин, Н.В. Фомина; отв. ред. АМЯрных. — Москва: Колос, 1979. 472 с:

41. Федоров, Ю.Н. Иммунный статус и инфекционные болезни новорожденных телят и поросят / Ю.Н. Федоров // Ветеринария. 2006. — №11. -С. 3-5.

42. Халенев, Г.А. Респираторно-синцитиальная, реовирусная и рино-вирусная инфекция крупного рогатого скота: лекция 15-я / Г.А. Халенев,

43. B.В. Гуненков // Моск. вет. академия. Москва, 1977. - С. 3 - 9.

44. Харламбиев, Х.Е. Изоляция респираторно-синцитиальния вируса от телят с респираторным заболеванием / Х.Е. Харламбиев, Р. Бостанджиева, Г.К. Георгиев, Б. Мигов // Вет. мед. науки. — 1984. №2 —1. C. 3 7.

45. Шаматава, Н. М. Пастереллез. /Н.М. Шаматава // Инфекционные болезни крупного рогатого скота. -М.: Колос. — 1974. С. 157 - 169.

46. Шахов, А.Г. Нарушение обмена веществ у стельных коров / А.Г. Шахов, В.Т. Самохин // Материалы круглого стола отд. ветеринар, медицины РАСХН. Москва, 2000. - С.10 - 14.

47. Шахов, А.Г. Этиология, терапия и профилактика болезней молодняка сельскохозяйственных животных / А.Г. Шахов, С.М. Сулейманов // Материалы коорд. совещ. Воронеж, 1995. - 12 с.

48. Шегидевич, Э.А. Роль пастерелл в респираторной патологии овец и крупного рогатого скота: автореферат дис. . д-ра ветеринар, наук / Э.А. Шегидевич. Москва, 1993. - 42 с.

49. Шкиль, Н.А. Экологический подход к обоснованию методов профилактики болезней молодняка / Н.А. Шкиль, М.Н. Шадрина и др. // Материалы науч.-практ. конф. — Томск, 2002. — С. 92 96.

50. Юров, К.П. Профилактика инфекционных болезней телят / К.П. Юров, А.Ф. Шуляк// Материалы науч.-практ. конф. — Новосибирск, 2001. — С. 9-10.

51. Ames, T. R. The epidemiology of BRSV infection / T.R. Ames // Veterinary Medicine. 1993. -Vol. 88. - P. 881 - 884.

52. Aim, K. Acute BRSV infection in young AI bulls: effect on sperm quality / K. Aim, E. Koskinen, S. Vahtiala, M. Andersson // Reprod Domest Anim. 2009. - Vol. 44. - P. 456 - 459.

53. Almeida, R.S. Detection of bovine respiratory syncytial virus in experimentally infected balb/c mice / R.S. Almeida , H.G. Domingues, L.T. Coswing, R.C.F. D'Arce, R.F. de Carvalho, C.W. Arns // Vet. Res. 2004. -Vol. 35.-P. 189- 197.

54. Almeida, R.S., BRSV subgroup B is circulating in Brazil. / R.S. Almeida, H.G. Domingues, F.R. Spliki, L.E. Larsen, S. Hâgglund, S. Belâk // The Veterinary Record — 2005.

55. Andrews, A.H. Respiratory disease. / A.H. Andrews, R. Blowey, H. Boyd, R. Eddy // Bovine Medicine: Diseases and Husbandry of Cattle. Blackwell Scientific Publications, Oxford: 2004. - P. 286 - 293.

56. Antonis, A.F.G. Vaccine-Induced Immunopathology during Bovine Respiratory Syncytial Virus Infection: Exploring the Parameters of Pathogenesis/ -A.F.G. Antonis, R.S. Schrijver, F. Daus // Journal of Virology. 2003. - Vol. 77. -P. 12067- 12073.

57. Atreya, P.L. The NS2 protein of human respiratory syncytial virus is a protein inhibitor of minigenome transcription and RNA replication / P.L. Atreya, M.E. Peeples, P.L. Collins // J. Virol. 1998. - Vol. 72. - P. 1452 - 1461.

58. Babiuk, L.A. Viral-bacterial synergistic interaction in respiratory disease. / L.A. Babiuk, M.J. Lawman, H.B. Ohmann // Advanced Virus Research — 1988.-Vol. 35.-P. 219 -249.

59. Baker, J.C. Seroepizootiologic study of bovine respiratory syncytial virus in a dairy herd /J.C. Baker, T.R Ames, R.J. Markham // American Journal of Veterinary Research 1986. - Vol. 47. - P. 240 -245.

60. Baker, J.C. Study on the etiologic role of bovine respiratory syncytial virus in pneumonia of dairy calves / J.C. Baker, R.E. Werdin, T.R. Ames, R.J.F. Markham, V.L. Larsen // JAVMA 1986. - Vol. 189. - P. 66 - 70.

61. Baker, J.C. The characteristics of respiratory syncytial viruses / J.C. Baker // Vet. Med. 1993. - Vol. 88. - P. 1190 - 1195.

62. Baker, J.C. Bovine respiratory syncytial virus/ J.C. Baker//Veterinary Clinics of North America Food Animal Practice. -1997. Vol. 13. - P. 425 -454.

63. Beaudeau, F. Spatial patterns of bovine corona virus and bovine respiratory syncytial virus in the Swedish beef cattle population / F. Beaudeau, C. Bjorkman, S. Alenius, J. Frossling // Acta. Vet. Scand. 2010. - Vol. 21. - P. 33.

64. Beaudeau, F. Associations between bovine coronavirus and bovine respiratory syncytial virus infections and animal performance in Swedish dairy herds / F. Beaudeau, A. Ohlson, U. Emanuelson // J. Dairy. Sci. — 2010. — Vol. 93.-P. 1523- 1533.

65. Belak, S. Application of the polymerase chain reaction (PCR) in veterinary diagnostic virology / S. Belak, A. Ballagi-Pordany // Veterinary Research Communications 1993a. - Vol. 17. - P. 55 - 72.

66. Belak, S. Experiences on the application of the polymerase chain reaction in a diagnostic laboratory / S. Belak, A. Ballagi-Pordany // Molecular and Cellular Probes. 1993b. - Vol. 7. - P. 241 - 248.

67. Belak, S. Molecular diagnosis of animal diseases: some experiences over the past decade / S. Belak, P. Thoren // Expert Review of Molecular Diagnostics-2001.-Vol. 1.-P. 434 443.

68. Belanger, F. Electron microscopic evidence for bridges between bovine respiratory syncytial virus particles / F. Belanger, L. Berthiaume, R. Alain, G. Lussier, M. Trudel // J. Gen. Virol. 1988. - Vol. 69. - P. 1421 - 1424.

69. E.B. Belknap // Vet. Med. 1993. - Vol. 88. - P. 886 - 887.

70. Belknap, E.B., Experimental respiratory syncytial virus infection in calves and lambs / E.B. Belknap, D.K. Ciszewski, J.C. Baker // Journal of Veterinary Diagnostic Investigation 1995. - Vol. 7. - P. 285 - 298.

71. Bengtsson, B. Respiratoriska virus projekt, panorama och be-hindlingsstrategier / B. Bengtsson, S. Viring //In: Veterinarmote, Uppsala, Sweden-2000.-P. 153 - 158.

72. Blount, R.E. Recovery of cytopathogenic agent from chimpanzees with coryza / R.E. Blount, Jr., J.A. Morris, R.E. Savage // Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine 1956. - Vol. 92 - P. 544 - 549.

73. Bossert, B. Nonstructural proteins NS1 and NS2 of bovine respiratory syncytial virus bloc activation of interferon regulatory factor 3 / B. Bossert, S. Marozin,'K.-K. Conzelmann // J. Virol. 2003. - Vol. 77. - P. 8661 - 8668.

74. Boxus, M. Real Time RT-PCR for the detection and quantitation of bovine respiratory syncytial virus./ M. Boxus, C. Letellier, P. Kerkhofs // J. Virol. Methods. 2005. - Vol. 125. - P. 30.

75. Brodersen, B.W. Bovine respiratory syncytial virus. / B.W. Brodersen. // Vet Clin North Am Food Anim. Pract. 2010. - Vol. 26. - P. 323 - 333.

76. Brogden, K.A. Polymicrobial Diseases / K.A. Brogden, J.M. Guthmiller // J. Virol. 2002. - P. 328.

77. Bryson, D.G. Observations on outbreaks of respiratory disease in housed calves(l) Epidemiological, clinical and microbiological findings / Bryson, D.G., J.B. McFerran, H.J. Ball, S.D. Neill // The Veterinary Record 1978a. -Vol. 103.-P. 485-89.

78. Bryson, D.G. Observations on outbreaks of respiratory disease in housed calves(2) Pathological and microbiological findings / Bryson, D.G., J.B. McFerran, H.J. Ball, S.D. Neill // The Veterinary Record 1978b. - Vol. 103. -P. 503 -509.

79. Bryson, D.G. Respiratory syncytial virus pneumonia in young calves: clinical and pathologic findings / D.G. Bryson, M.S. McNulty, E.F. Logan, P.F. CushV/Am. J. Vet. Res. 1983. - Vol. 44. - P. 1648- 1655.

80. Bryson, D.C. Ultrastructural features of alveolar lesions in induced respiratory syncytial virus pneumonia of calves / D.C. Biyson, S. McConnell, M. McAliskey, M.S. McNulty // Vet. Pathol. 1991. - Vol. 28. - P. 286 - 292.

81. Biyson, D.G. Necropsy findings associated with BRSV pneumonia / D.G. Bryson//Vet. Med. 1993. - Vol. 88.- P. 894 - 899.

82. Bunt, A.A. Virus taxonomy, Eigth report of the International Committee on Taxonomy of Virus / A. A. Bunt, R.G. Milne, T. Sayaya, M. Verbeek, H.J. Vetten, H.J. Walsh, C.M. FWquet, M.A. Mayo, J. Maniloff, U. Desselberger // London. 2005 - P. 655 - 671.

83. Cane, P.A. Identification of variable domains of the attachment (G) protein of subgroup A respiratory syncytial virus / P.A. Cane, D.A. Matthews, C.R. Pringle//J. Gen. Virol. 1991. - Vol. 72.-P. 2091 - 2096.

84. Chang, J. Respiratory syncytial virus infection suppresses lung CD8+T-cell effector activity and peripheral CD8+T-cell memory in the respiratory tract / J. Chang, T.J. Braciale // Nat. Med. 2000. - Vol. 8. - P. 54 - 60.

85. Corbeil, L.B. Specificity of IgG and IgE antibody responses to Haemophilus somnus infection of calves / L.B. Corbeil, K.F. Arnold, R. Kimball, L. Berghaus, L.J. Gershwin // Vet Immunol Immunopathol. 2006. - Vol. 15. — P. 191 - 199.

86. Corbeil, L.B. Histophilus somni host-parasite relationships / L.B. Corbeil // Anim. Health. Res. Rev. 2007. - Vol. 8. - P. 151 - 160.

87. Deplanche, M. In vivo evidence for quasispecies distributions in the bovine respiratory syncytial virus genome / M. Deplanche, M. Lemaire, C. Mirandette, M. Bonnet, F. Schelcher, G. Meyer // J. Gen. Virol. 2007. -Vol. 88.-P. 1260- 1265.

88. Dubovi, E.J. Diagnosing BRSV infection: A laboratory perspective / E.J. Dubovi // Veterinary Medicine. 1993. - Vol. 88. - P. 888 - 893.

89. Elazhary, M.A.S.Y. A natural outbreak of bovine respiratory disease caused by bovine respiratory syncytial virus / M.A.S.Y. Elazhary, A. Silim, M. Morin // Cornell. Vet. 1982. - Vol. 72. - P. - 352 - 333.

90. Ellis, J.A. Fatal pneumonia in adult dairy cattle associated with active infection with bovine respiratory syncytial virus / J.A. Ellis, H. Plnlihen, K. West, E. Clark, K. Martin, D. Haines // Can. Vet. J. 1996. - Vol. 3. - P. 103 -105.

91. Ellis, J.A. Update on viral pathogenesis in BRD / J.A. Ellis // Anim. Health. Res. Rev. 2009. - Vol. 10. - P. 149 - 153.

92. Elvander, M. Severe respiratory disease in dairy cows caused by infection with bovine respiratory syncytial virus / M. Elvander // The Veterinary Record-1996.-Vol. 138.-P. 101 105.

93. Freymuth, F. Detection of respiratory syncytial vims by reverse transcription RCR and hybridization with a DNA enzyme immunoassay / F. Freymuth, G. Eugene, A. Varbret // J. Clin. Microbiol. 1995. - Vol. 33. -P. 3352 - 3355.

94. Furze, J.M. Antigenic heterogenicity of the attachment protein of bovine respiratory syncytial virus / J.M. Furze, G. Wertz, G. Taylor // J. Gen. Virol. 1994. - Vol. 75: - P. 363 - 370.

95. Furze, J.M. Antigenically distinct G glucoproteins of BRSV strains shape a high degree of genetic homogeneity /'J.M. Furze, S.R. Roberts, G.W. Wertz, G. Taylor// Virology. 1997. - Vol. 231. - P. 48 - 58.

96. Gaddum, R.M. Recognition of bovine respiratory syncytial virus protein by bovine CD8+T lymphocytes / R.M. Gaddum, R.S. Cook, J.M. Furze, S.A. Ellis, G. Taylor // Immunology 2003. - Vol. 108. - P. 220 - 229.

97. Gaffiiri, A. Serosurvey of roe deer, chamois and domestic sheep in the central Italian Alps / A. Gaffiiri, M. Giacometti, V.M. Tranquillo, S. Magnino, P. Cordioli, P. Lanfranchi // J Wildl Dis. 2006. - Vol. 42. - P. 685 -690.

98. Hall;, G.B; Respiratory • syncytial: .virus: and<i parainfluenzas 'virus-.' I':.

99. C.B. Hall:'//. New England Journal of Medicine — 2001.,— Vol; 344 P: 1917 -' 1928.

100. Himmes, S.R. Bovine respiratory syncytial virus fusion protein gene: sequence analysis of cDNA and expression using a baculovirus vector / S.R. Himes, L.G. Gershwin//J.Gen. Virol.- 1992.-Vol. 73.-P. 1563 1567.

101. Inaba, Y. Nomi virus, a virus isolated from an appearently new epizootic respiratory disease of cattle 7 Y. Inaba, Y. Tanaka, H. Ito, T. Omori, M. Matumoto // Japan. J. Microbiol. 1970. - Vol. 14. —P. 246 - 248:

102. Kargen, A. Recombinant respiratory syncytial virus with deletion of the G or SH genes: G and F proteins bind heparin / A. Kargen, U. Schmidt, U.J; Buchholz // J. Gen. Virol. 2001. - Vol. 82. - P. 631 - 640;

103. Kimman, T.G. Isotype specific ELISAs for the detection of antibodies to bovine respiratory syncytial virus / T.G. Kimman, F. Westenbrink, P.J. Straver,

104. D. Van Zaane, B.E. Schreuder//Res. Vet. Sci. -1987.-Vol. 43. -P. 180 187.

105. Kimman, T.G. Pathogenesis of natural acquired bovine respiratory syncytial virus infection in calves: morphologic and serologic findings / T.G. Kimman, P J. Straver, G.M. Zimmer // Am. J. Vet. Res. 1989. - Vol. 50. -P. 684 - 693.

106. Kingsbury, D.W. Paramyxoviridae and Their Replication. In: Fields Virology / D.W. Kingsbury // Ravens Press. New York 1990. - P. 945 - 962.

107. Kovarcik, K. Respiratory syncytial viruses: pathogenesis, immunology and disease prevention / K. Kovarcik // Vet. Med.-Czech. 1997. - Vol. 42. -P. 256-278.

108. Kovarcik, K. Isolation of bovine respiratory syncytial virus during an outbreak of acute respiratory disease in calves / K. Kovarcik // Vet. Med.-Czech. 1999. - Vol. 44. - P. 121 - 127.

109. Kovarcik, K. The development and application of an indirect ELISA test for the detection of antibodies to bovine respiratory syncytial virus in blood serum / K. Kovarcik // Vet. Med.-Czech. 2001. - Vol. 46. - P. 29 - 34.

110. Koves, B. Isolation of respiratory syncytial (RS) virus from coffle diseased with respiratory symptoms / B. Koves, A. Bartha // Acta. vet. Acad. Sei. hung. 1975. - Vol. 25. - P. 357 - 362.

111. Larsen, L.E. Extensive sequence divergence among bovine respiratory syncytial viruses isolated during recurrent outbreaks in closed herds / L.E. Larsen, K. Tjornehoj, B. Viuff // Journal of Clinical Microbiology 2000. - Vol. 38.-P. 4222-4227.

112. Larsen, L. E. Bovine Respiratory Syncytial Virus (BRSV): A review / L. E. Larsen // Acta. vet. scand. 2000. - Vol. 41. - P. 1 - 24.

113. Larsen, L.E. Bovine respiratory syncytial virus (BRSV) pneumonia in beef calf herds despite vaccination / L.E. Larsen, C. Tegtmeier, E. Pedersen // Acta. Veterinaria Scandinavia 2001. - Vol. 42. - P. 113 - 121.

114. Lehmkuhl, H.D. Characterization and identification of a bovine respiratory syncytial virus isolated from Young Calves / H.D. Lehmkuhl, P.M. Cough, D.E. Reed // An. J. veter. Res. 1979. - Vol. 40. - P. 124 - 126.

115. Lekeux, P. Respiratory syncytial virus pneumonia in Friesian calves: physiological findiags / P. Lekeux, J. Verhoeff, R. Hajer, H.J. Breukink // Res. in veter. Sc. 1985. - Vol. 39.

116. Lekeux, P. Bovine respiratory disease complex: an European perspective / P. Lekeux // Bov. Pract. 1995. - Vol. 29. - P. 71 - 75.

117. Luzzago, C. Bovine respiratory syncytial virus seroprevalence and risk factors in endemic daiiy cattle herds / C. Luzzago, V. Bronzo, S. Salvetti, M. Frigerio, N. Ferrari // Vet Res Commun. 2010. - Vol. 34. - P. 19 - 24.

118. Mallipeddi, S:K. Sequence variability of the glycoprotein gene of bovine respiratory syncytial virus / S.K. Mallipeddi, S.K. Samal // J. Gen. Virol. -1993. Vol. 74. - P. 2001 - 2004.

119. Mallipeddi, S.K. Mapping the domains on the phosphoprotein bovine respiratory syncytial virus required for N-P interaction using a two-hybrid system / S.K. Mallipeddi, B. Lupiani, S.K. Samal // J. Gen. Virol. 1996. - Vol. 77. -P. 1019- 1023.

120. Mcintosh, K. Respiratoiy Syncytial Viruses. In: Fields Virology / K. Mcintosh, R.M. Chanock // Raven Press. New York 1990. - P. 1045 - 1074.

121. Meyer, G. Human and bovine respiratory syncytial virus vaccine research and development / G. Meyer, M. Deplanche, F. Schelcher // Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2008. - Vol. 31. - P. 191 - 225.

122. Miller, A.L. Respiratory syncytial virus-induced chemokine production: linking viral replication to chemokine production in vitro and in vivo / A.L. Miller, T.L. Bowlin,N.W.Lukacs//J. Infect. Dis.-2004.-Vol. 189.-P. 1419-1430.

123. Morris, J.A. Recovery of cytopathogenic agent from chimpanzees with corysa / J.A. Morris, R.E. Blount, R.E. Savage // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1956. - Vol. 92. - P. 544 - 549.

124. Motha, M.X. Prevalence of IBR, PI 3, BRS and BCV infections in the dairy cattle population of New Zealand / M.X. Motha, M.F. Hansen // New Zealand Veterinaiy Journal 1998. - Vol. 46. - P. 239 - 240.

125. Openshaw, P.J. Immunopathogenesis of vaccine-enhanced RSV disease / P.J. Openshaw, F.J. Culley, W. Olszewska // Vaccine 2001. - Vol. 20. -P. 27-31.

126. Ortman, K. Use of antimicrobial drugs in Swedish dairy calves and replacement heifers / K. Ortman, C. Svensson // The Veterinary Record 2004. -Vol. 154.-P. 136- 140.

127. Paccaud, M.F. A respiratory syncytial virus of bovine origin / M.F. Paccaud, C. Jacquier // Arch. Ges. Virusforsch. 1970. - Vol. 303. — P. 27 - 42.

128. Pastey, M.K. Structural and sequence comparison of bovine respiratory syncytial virus fusion protein / M.K. Pastey, S.K. Samal // Virus Res. — 1993. Vol. 29. - P. 195 - 202.

129. Pastey, M.K. Nucleotide sequence analysis of the non-structural NS1 (1C) and NS2 (IB) protein genes of bovine respiratory syncytial virus / M.K. Pastey, S.K. Samal // Gen. Virol. 1995. - Vol. 76. - P. 193 - 197.

130. Pastey, M.K. Analysis of bovine respiratory syncytial virus envelope glycoproteins in cell fusion / M.K. Pastey, S.K. Samal // J. Gen. Virol. 1997. -Vol. 78.-P. 1885- 1889.

131. Patel, J.R. Evaluation of efficacy of an inactivated vaccine against bovine respiratory syncytial virus in calves with maternal antibodies / J.R. Patel, S.A. Didlick // American Journal of Veterinary Research 2004. — Vol. 65. -P. 417-421.

132. Paton, A.W. Rapid detection of respiratory syncytial virus in nasopharyngeal aspirates by reverse transcription and polymerase chain amplification-/ A.W. Paton, J.C. Paton, A.P. Collins // J. Clin. Microbiol. 1992. - Vol. 30. -P. 901 - 904.

133. Perino, L.J. A review of bovine respiratory disease vaccine field efficacy / L.J. Perino, B.D. Hunsaker // Bovine Practitioner — 1997. Vol. 31 -P. 59 - 66.

134. Pirie, H.M. Acute fatal pneumonia in calves due to respiratory syncytial virus / H.M. Pirie, L. Petrie, E.M. Allan, C.R. Pringle // Vet. Res. 1981. -Vol. 109.-P. 87-89.

135. Pospisil, L. Isolation and Identification of a Bovine Respiratory Syncytial Virus in Czechoslovekia / L. Pospisil, J. Menik, L. Valicek // Acta. Vet. Brno. 1978. - Vol. 47. - P. 79 - 86.

136. Prozzi, D. Antigenic and molecular analyses of the variability of bovine respiratory syncytial virus G glycoprotein / D. Prozzi, K. Walrayens, J.P. Langedijk, F. Daus, J.A. Kramps, J.J. Letesson // J. Gen. Virol. — 1997. Vol. 78.-P. 359-366.

137. Rudd, B.D. differential role for TLR3 in respiratory syncytial virus-induced chemokine expression / B.D. Rudd, E. Burstein, C.S. Duckett, X. Li, N.W. Lukacs // J. Virol. 2005. - Vol. 79. - P. 3350 - 3357.

138. Salt, J.S. Efficacy of a quadrivalent vaccine against respiratory diseases caused by BHV-1, PI3V, BVDV and BRSV in experimentally infected calves / J.S. Salt, S.J. Thevasagayam, A. Wiseman, A.R. Peters // Vet. J. 2007. -Vol. 174. -P. 616-626.

139. Samal, S.K. Molecular cloning and sequence analysis of bovine respiratory syncytial virus mRNA encoding the major nucleocapsid protein / S.K. Samal, M. Zamora, T.H. McPhillips, S.B. Mohanty // Vitology. 1991. - Vol. 180.-P. 453 -456.

140. Sausker, E.A. Seroprevalence of OHV-2, BVDV, BHV-1 and BRSV in ranch-raised bison {Bison bison) / E.A. Sausker, N.W. Dyer // J. Vet. Diagn. Invest. 2002. - Vol. 14. - P. 68 - 70.

141. Shanthalingam, S. Bighorn sheep fetal lung cell line for detection of respiratory viruses / S. Shanthalingam, C. Topliff, C.L. Kelling, S. Srikumaran // Can. J. Vet. Res. -2010.-Vol. 74. P. 75 - 77.

142. Smith, M.H. Isolation, characterization, and pathogenicity studies of a bovine respiratory syncytial virus / M.H. Smith, M.L. Frey, R.E. Dierks // Arch. Virol. 1975. - Vol. 47. - P. 237 - 247.

143. Stine, L.C. Sequence conservation in the attachment glycoprotein and antigenic diversity among bovine respiratory syncytial virus isolates / L.C. Stine, D.K. Hoppe, C.L. Kelling //Vet. Microbiol. 1997. - Vol. 54. - P. 201 - 221.

144. Stott, EJ. Respiratory syncytial virus: brief review / E.J. Stott, G. Taylor // Arch. Virol. 1985. - Vol. 84. - P. 1 - 52.

145. Taylor, G. Protective on the fusion protein of respiratory syncytial virus recognized by murine and bovine monoclonal antibodies / G. Taylor, E. J. Stott, J. Furze, J. Ford, P. Sopp // J. Gen. Virol. 1992. - Vol. 73. -P. 2217 - 2223.

146. Taylor, G. DNA vaccination« against respiratory syncytial virus in young calves / G. Taylor, G. Bruce, A.F. Barbet, S.G. Wyld, L.H. Thomas // Vaccine 2005.-Vol. 23.-P. 1242- 1250.

147. Teng, M.N. Identification of the respiratory syncytial virus proteins required for formation and passage of helper-dependent infectious particles / M.N. Teng, P.L. Collins // J: Virol: -1998. Voli 72'. - P;.5707 - 5716.

148. Teng, M.N. Altered growth characteristics of recombinant respiratory syncytial virus which do not produce NS2 protein / M.N. Teng, P.L. Collins // J. Virol. 1999. - Vol. 73. - P. 466 - 473.

149. Thomas, L.H. The possible role of respiratory syncytial virus and Pasteurella spp. in calf respiratory disease / L.H. Thomas, E.J. Stott, P.W. Jones, N.J. Jebbett, A.P. Collins // Vet. Rec. 1980; - Vol. 107. - P. 304 - 307.

150. Trudel, M. Comparison of caprine, human and bovine strains of respiratory syncytial vims / M. Trudel, F. Nadon, C. Belanger, I. Alain, C. Seguin, G. Lussier // Arch. Virol. 1989. - Vol. 107. - P. 141 - 149.

151. Uttenthal, A. Viral aetiology of enzootic pneumonia in Danish dairy herds: diagnostic tools and epidemiology / A. Uttenthal, N.P. Jensen, J.Y. Blom // The Veterinary Record 1996. - Vol. 139. - P. 114 - 117.

152. Valarcher, J.-R. Evolution of bovine respiratory syncytial virus / J.-R. Valarcher, R. Schelcher, H. Bourhy // J. Virol. 2000. - Vol. 74. -P. 10714- 10728.

153. Valarcher, J-R. Bovine Respiratory Syncytial Virus Infection; J-F. Valarcher, G. Taylor // Vet. Res. 2007. - Vol. 8. - P. 153 - 180.

154. Valentova, V. Detection of Bovine Respiratory Syncytial Virus in Cell Cultures by Nested RT-PCR and Use of the Method for Virus Identification in Clinical Samples / V. Valentova, K. Kovalik, I. Pikal // Acta Vet. Brno. -2003.-Vol. 72.-P. 115-122.

155. Valentova, V. Restriction enzyme analysis of RT-PCR amplicons as a rapid method for detection of genetic diversity among bovine respiratory syncytial virus isolates / V. Valentova, A.F. Antonis, K. Kovarcik // Vet. Microbiol.-2005.-P. 1 12.

156. Van der Poel, W.H.M. Respiratory syncytial virus infection in human begins and in cattle / W.H.M. Van der Poel, A. Brand, J.A. Kramps, J.T. Van Oirschot// J. Infect. Dis. 1994. - Vol. 29. - P. 215 - 228.

157. Verhoeff, J. Bovine respiratory syncytial virus infection young dairy cattle: clinical and haematological findinys / J. Vehoeff, M. Van der Ban, A.P.K.M.I. Nieuwstadt // Vet. Rec. 1984. - Vol. 114. - P. 9 - 12.

158. Vilcek, S. Development of Nested PCR Assays for Detection of Bovine Respiratory Syncytial Virus in Clinical Samples/ S. Vilcek, M. Elvander, A.

159. Bllagi-Pordany, S. Belak // Journal of Clinical Microbiology. 1994. - Vol. 32. -P. 2225-2231.

160. Viuff, B. Sites of replication of bovine respiratory syncytial virus in naturally infected calves as determined by in situ hybridization / B. Viuff, A. Ut-tenthal, C. Tegtmeier, S. Alexandersen // Vet. Pathol. 1996. - Vol. 33. -P. 383 -390.

161. Yaegashi, Gr Genetic and antigenic analyses of bovine respiratory syncytial virus detected in Japan / G. Yaegashi, Y. M. Seimiya, Y. Seki, H. Tsunemitsu // J. Vet. Med. Sci. 2005. - Vol. 67. - P. 145 - 150.

162. Ye§ilbag, K. Seroprevalence of bovine respiratory viruses in Northwestern Turkey / K. Ye§ilbag, B. Giingor // Trop Anim Health Prod. 2008. -Vol. 40.-P. 55-60.

163. Zimmer, G. Proteolytic activation of respiratory syncytial virus fusion protein / G. Zimmer, L. Budz, G. Herrler // J. Biol. Chem. 2001. - Vol. 276.-P. 31642-31650.