Антиоксидантная система семенников крыс при физических нагрузках разной интенсивности тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.04, кандидат биологических наук Чигринский, Евгений Александрович

  • Чигринский, Евгений Александрович
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 2010, Омск
  • Специальность ВАК РФ03.01.04
  • Количество страниц 150
Чигринский, Евгений Александрович. Антиоксидантная система семенников крыс при физических нагрузках разной интенсивности: дис. кандидат биологических наук: 03.01.04 - Биохимия. Омск. 2010. 150 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Чигринский, Евгений Александрович

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1: ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Свободнорадикальные процессы и их биологическая роль.

1.2. Образование активированных кислородных метаболитов при катаболизме пуриновых мононуклеотидов.

1.3. Свободнорадикальные процессы и антиоксидантная защита при физических нагрузках и других гипоксических состояниях.

1.4. Применение рибозы при гипоксических состояниях.

1.5. Роль селена в функционировании антиоксидантной'системы.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Характеристика подопытных животных и дизайн исследования.

2.2. Моделирование физических нагрузок у крыс.

2.3; Схема исследования влияния-экзогенных веществ на антиоксидантную систему при чрезмерных физических нагрузках.

2.4. Забор материала и подготовка проб для исследования.

2.5. Методы исследования.49г

2.5.1. Проведение биохимического анализа крови и семенников.

2.5.2. Проведение иммуноферментного анализа.

2.5.3. Проведение гематологических исследований.

2.6. Статистический анализ полученных данных.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Состояние антиоксидантной системы и инкреция тестостерона. у крыс при разных режимах физической нагрузки.

3.1.1. Работоспособность крыс при оптимальных и чрезмерных физических нагрузках.

3.1.2. Состояние окислительных процессов у крыс при разных режимах физической нагрузки.

3.1.3. Антиоксидантная защита эритроцитов при разных режимах физической нагрузки.

3.1.4. Состояние антиоксидантной защиты в семенниках крыс, подверженных оптимальным и чрезмерным физическим нагрузкам.

3.1.5. Взаимосвязь показателей характеризующих состояние антиоксидантной системы в крови и семенниках при чрезмерных физических нагрузках.

3.1.6. Состояние инкреторной функции семенников при разных режимах физической нагрузки.

3.2. Состояние антиоксидантной системы и инкреция тестостерона у крыс при чрезмерных нагрузках на фоне введения рибозы.

3.2.1. Влияние рибозы на работоспособность крыс.

3.2.2. Влияние рибозы на окислительные и антиокислителные процессы у крыс в условиях чрезмерных физических нагрузок.

3.2.3. Состояние антиоксидантной системы в семенниках крыс при чрезмерных физических нагрузках на фоне введения рибозы.

3.2.4. Влияние экзогенной рибозы на секрецию тестостерона в условиях чрезмерных физических нагрузок.

3.3. Антиоксидантная защита и инкреция тестостерона у крыс при чрезмерных физических нагрузках на фоне введения селенита натрия.

3.3.1. Влияние селенита натрия на работоспособность крыс.

3.3.2. Влияние селенита натрия на окислительные и антиокислителные процессы у крыс в условиях чрезмерных физических нагрузок.

3.3.3. Влияние селенита натрия на антиоксидантную систему семенников крыс при чрезмерных физических нагрузках.

3.3.4. Влияние селенита натрия на инкрецию тестостерона в условиях чрезмерных физических нагрузок.

ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ.

ВЫВОДЫ.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Биохимия», 03.01.04 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Антиоксидантная система семенников крыс при физических нагрузках разной интенсивности»

Актуальность работы. Чрезмерные физические нагрузки (ЧФН), превышающие адаптационные возможности организма и приводящие к их истощению нередко встречаются'в практике физической культуры, спорта,.в военном деле, на тяжелом производстве, в том числе и сельскохозяйственном, например, при длительных перегонах животных (Антонов, 2009; Корнякова и др., 2009; Роженцов, Полевщиков, 2006; Kavazis et al., 2004; Schuback, Essen-Gustavsson, 2000; Sewani-Rusike et al., 2000). ЧФН приводят к снижению спортивных результатов, производительности труда, появлению переутомления; развитию предпатологических состояний в различных системах организма (Бровкина и др., 2008; Moir et al., 2010; Podhorska-Okolow et al., 2006; Somani, Husain 1996), в том числе органах репродуктивной системы (Aitken, Roman, 2008; Aksoy et al., 2006; Hackney et al., 2005; Mànna ét al., 2003).

Негативное их воздействие на организм- связывают со многими факторами. В- литературе имеются разрозненные сведения об изменении уровня ряда биохимических показателей при этом состоянии. Данные об/ увеличении в крови концентрации лактата при физических нагрузках высокой интенсивности приведены в работах (Гришина и др., 2008; Дементьева, 2003; Мохан и др., 2001; Cochran et al., 2010; Goto, 2009; Lucia et al., 2001; Mori et al., 1999), Р-оксибутирата - (Макарова, Холявко, 2006; Теркотт и др., 1998), мочевины - (Макарова, Холявко, 2006; Kraemer et al., 2009; Lima, 2001), креатинина и триглицеридов. - (Давыдович, 2009). В« исследованиях (Hellstein et al., 2004; Tullson et al1., 1996) отмечено возрастание в крови спортсменов гипоксантина и мочевой кислоты после интенсивной физической нагрузки. Уровень урикемии не возвращался к норме даже 10 часов спустя (Hellstein et al., 2004).

Воздействие на организм ЧФН сопровождается нарушением инкреторной функции семенников, о чем свидетельствует уменьшение в крови концентрации тестостерона (Cormack et al., 2008; Grandys et al., 2009; Hackey et al., 2003; Hu et al., 2008; Jankowska et al., 2009; Lucia et al., 2001). Недостаточная выработка последнего приводит к нарушению сперматогенеза (Aitken, Roman, 2008; Mingoti et al., 2003). Однако до сих пор нет ясного понимания механизмов метаболических нарушений, происходящих в этих условиях как в целостном организме, так и в семенниках (Hackney et al., 2005; Lane et al., 2010). Эти механизмы могут быть связаны с острым нарушением метаболизма пуринов (ОНМП), описанным впервые на модели клинической смерти и реанимации (Киреев, Конвай, 1976). В дальнейшем было установлено, что ОНМП является типовым патологическим процессом, развивающимся при различных гипоксических состояниях (Золин, 2001; Конвай, Золин, 2003; Конвай, 2009). Суть ОНМП заключается в усилении катаболизма аденозинтрифосфата до гипоксантина и дальнейшего его окисления до мочевой кислоты. Этот процесс сопряжен с усиленной генерацией ксантиноксидазой активированных кислородных метаболитов (АКМ), истощающих антиоксидантную систему (АОС) и приводящих к чрезмерной липопероксидации мембранных структур в. различных органах (Конвай, Золин, 2003). Не исключено, что ОНМП и перекисное окисление липидов (ПОЛ), индуцированное им, является пусковым фактором в нарушении эндокринной функции семенников при ЧФН. Поскольку АКМ и продукты ПОЛ обезвреживаются антиоксидантной системой, актуальным является изучение ее функционирования в семенниках при ЧФН.

В научной литературе недостаточно данных об ОНМП, сопряженных с ним свободнорадикальных процессах и антиоксидантной защите семенников, а также их влиянии на инкрецию тестостерона в условиях ЧФН.

Цель работы: охарактеризовать антиоксидантную систему семенников крыс при физических нагрузках разной интенсивности и выявить ее взаимосвязь с окислительными процессами и инкрецией тестостерона.

Задачи исследования:

1. Изучить состояние антиоксидантной защиты семенников и инкреции ими тестостерона в условиях физических нагрузок разной интенсивности.

2. Установить взаимосвязь между показателями, характеризующими состояние окислительных, антиокислительных процессов и инкрецию тестостерона в крови и семенниках, при чрезмерных физических нагрузках.

3. Оценить окислительные процессы, антиоксидантную защиту и инкреторную функцию семенников крыс, подвергшихся чрезмерным физическим нагрузкам на фоне введения рибозы.

4. Изучить изменение активности процессов, перекисного окисления липидов, состояние антиоксидантной защиты и эндокринной функции семенников в условиях чрезмерных физических нагрузок при введении в организм крыс селенита натрия.

Научная новизна исследования. Установлено, что чрезмерные физические нагрузки приводят к повышению интенсивности в семенниках крыс свободнорадикальных процессов, снижению уровня восстановленного глутатиона, подавлению активности супероксиддисмутазы, каталазы, глутатионпероксидазы, глутатионредуктазы и глюкозо-6фосфатдегидрогеназы, а также к уменьшению секреции, тестостерона данными органами. Впервые установлено, что-экзогенная рибоза обладает гонадопротекторным эффектом в условиях ЧФН. Благодаря введению данного углевода в организм усиливается реутилизация пуриновых мононуклеотидов, ' улучшается работа пентозного цикла семенников, снижается интенсивность ПОЛ и нормализуется секреция половых гормонов. Установлено, что введение селенита натрия- при. ЧФН способствует улучшению работы АОС семенников, нормализации окислительных процессов и эндокринной функции данных органов.

Практическая значимость работы. Данные об изменении биохимических показателей в крови и семенниках крыс и корреляции между ними, изложенные в диссертации, могут послужить основой при разработке биохимических тестов для оценки состояния репродуктивной системы у человека и животных, находящихся в условиях ЧФН. Данные о* влиянии рибозы и селенита натрия на функционирование семенников в условиях ЧФН могут быть использованы для- разработки методов лечения тестикулярной недостаточности у человека и животных, подвергающихся физическим нагрузкам высокой интенсивности. Положения, выносимые на защиту:

1. Чрезмерные физические нагрузки приводят к повышению интенсивности в семенниках крыс свободнорадикальных процессов, угнетению антиоксидантной системы и уменьшению инкреции тестостерона данными органами.

2. Введение рибозы- крысам при чрезмерных физических нагрузках снижает интенсивность катаболизма пуринов и свободнорадикальных процессов в семенниках, повышает антиоксидантную защиту и инкрецию тестостерона.

3. Введение селенита натрия крысам; подвергшимся чрезмерным физическим нагрузкам,. снижает интенсивность перекисного окисления липидов в семенниках, повышает эффективность антиоксидантной защиты, сохраняет их эндокринную функцию.

Апробация работы. Основные- материалы диссертации доложены и представлены на 12-й и 13-й всероссийской научно-практической конференции молодых ученых «Проблемы, совершенствования^ физической* культуры, спорта и олимпизма» (Омск, 2007, 2008), международном-форуме по проблемам науки, техники и образования «III тысячелетие - новый мир» (Москва,.2009), 2-й международной дистанционной научной конференции и • конкурсе проектов «Инновации в медицине» (Курск, 2009), межрегиональной1 научно-практической конференции «Инновационные технологии диагностики и лечения в здравоохранении» (Омск, 2009), 14-й, 15-й и 16-й конференциях профессорско-преподавательского состава и аспирантов Омского государственного аграрного университета (Омск, 2008, 2009, 2010).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 12 научных работ, в том числе 2 в журналах, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки РФ. Получено свидетельство ФГУП «ВНТИЦ» на интеллектуальный продукт № 73200800072 «Величина груза и объем нагрузки при вынужденном плавании крыс как средство моделирования физических нагрузок в биологических исследованиях».

Объем и структура диссертации. Работа изложена на 150 страницах машинописного текста, содержит 19 таблиц и 21 рисунок. Состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов исследования, обсуждения результатов исследования, выводов и библиографического списка, который включает 328 источников.

Похожие диссертационные работы по специальности «Биохимия», 03.01.04 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Биохимия», Чигринский, Евгений Александрович

выводы

1. Чрезмерные физические нагрузки приводят к повышению интенсивности в семенниках свободнорадикальных процессов, снижению уровня восстановленного глутатиона, торможению активности ферментов антиоксидантной системы, а также к уменьшению инкреции тестостерона данными органами.

2. Между показателями, характеризующими окислительные, антиокислительные процессы и инкрецию тестостерона в крови и семенниках крыс, находящихся под действием чрезмерных физических нагрузок, существует тесная взаимосвязь.

3. Введение рибозы крысам, подвергшимся чрезмерным физическим нагрузкам, снижает в семенниках интенсивность свободнорадикальных процессов, предотвращает истощение фонда восстановленного глутатиона, снижение активности ферментов антиоксидантной защиты и торможение инкреции тестостерона данными органами.

4. Введение крысам селенита натрия при чрезмерных физических нагрузках повышает эффективность антиоксидантной защиты и снижает выраженность липопероксидации мембранных структур клеток семенников, сохраняет их эндокринную функцию.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Чигринский, Евгений Александрович, 2010 год

1. Антонов A.B. Перекисное окисление липидов у спортивных лошадей при тренинге // С.-х. биол. 2009. - № 2. - С. 65-68.

2. Бровкина И.Л., Лосенок С.А., Прокопенко Л.Г. Тромбоэритроцитарная иммуносупрессия и ее коррекция стабилизаторами клеточных мембран при интенсивных физических нагрузках // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. — 2008. — № 2. — С. 20-22.

3. Ванин А.Ф. Оксид азота в биомедицинских исследованиях // Вестн. РАМН. 2000. - № 4. - С. 3-5.

4. Вировец O.A. О повышенных потерях макро- и микроэлементов при занятиях спортом и целесообразности их компенсации биологически активными добавками // Вопр. питания. 2009. — Т. 78, № 2. — С. 67—71.

5. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Соросовский образовательный журнал. 2000. - Т. 6, № 12. - С. 13-19.

6. Владимиров Ю.А. Активные формы кислорода и азота: значение для диагностики, профилактики и терапии // Биохимия. — 2004. — Т. 69, № 1.-С. 5-7.

7. Владимиров Ю.А., Проскурнина Е.В. Свободные радикалы и клеточная хемилюминесценция // Усп. биол. химии. 2009. — Т. 49. - С. 341-388.

8. Власова С.Н., Шабунина Е.И., Переслегина И. А. Активность глутатионзависимых ферментов эритроцитов при хронических заболеваниях печени у детей // Лаб. дело. 1990. - № 8. - С. 19-21.

9. Волков Н.И., Несен Э.Н., Осипенко A.A. Биохимия мышечной деятельности. Киев: Олимпийская литература, 2000. - 504 с.

10. Вьюшина A.B. Влияние пренатального стресса на процессы окислительной модификации белков и активность Zn-Cu-супероксиддисмутазы в головном мозге крыс: дис. . канд. биол. наук. -СПб, 2006.-122 с.

11. Гацура В.В. Фармакологическая коррекция энергетического обмена ишемизированного миокарда. М.: Антекс, 1993. - 252 с.

12. Гмошинский И.В., Мазо B.K. Селен в питании: краткий обзор // Medicina Altera. 1999. - № 4. - С. 18-22.

13. Голубев А.Г. Изнанка метаболизма // Биохимия. 1996. - Т. 61, № 11.-С. 2018-2939.

14. Голубкина H.A., Папазян Т.Т. Селен в питании: растения, животные, человек. М.: Печатный город, 2006. - 254 с.

15. Гришина Е.В., Хаустова, Я.В., Погорелова В.Г. Ускорение утилизации лактата под влиянием гипоксена после напряженной мышечной работы // Бюл. экспер. биол. 2008. - Т. 145, № 2. - С. 158-161.

16. Дементьева И.И. Мониторинг концентрации лактата и кислородного статуса для диагностики и коррекции гипоксии у больных в критическом состоянии // Клин. лаб. диагн. 2003. - № 3. - С. 25-32.

17. Дубинина Е.Е. Роль активных форм кислорода в качестве сигнальных молекул в метаболизме тканей при состояниях окислительного стресса // Вопр. мед. химии. 2001. - Т. 47, № 6. - С. 561-581.

18. Зенков Н.К., Меныцикова Е.Б., Вольский H.H., Козлов В. А. Внутриклеточный окислительный стресс и апоптоз // Усп. совр. биол. -1999. Т. 119, № 5. - С. 440^50.

19. Зенков Н.К., Ланкин В.З., Меныцикова Е.Б. Окислительный стресс: Биохимические и патофизиологические аспекты. — М.: Наука /Интерпериодика, 2001. 340 с.

20. Золин П.П., Конвай В. Д. Механизмы нарушений метаболизма гипоксантина в печени реанимированных крыс // Бюл. экспер. биол. — 1997.-Т. 124, № 12.-С. 629-631.

21. Золин П.П. Постреанимационные нарушения обмена гипоксантина и-их коррекции: дис. . канд. мед. наук. Челябинск, 2001. - 250 с.

22. Золин П.П., Лебедев В.М., Конвай В. Д. Математическое моделирование биохимических процессов с применением регрессионного анализа. Омск: Изд-во Омск. гос. ун-та, 2009. - 344 с.

23. Кашапова И.Ю. Митохондриальные белки-разобщители и действие супероксид-радикала Has митохондрии почек и печени крыс: дис. . канд. биол. наук. Воронеж, 2008. — 128*с.

24. Кленова H.A. Биохимические механизмы дезинтеграции эритроцитов человека: дис. . д-ра биол. наук. — Тюмень, 2003. — 271 с.

25. Кольман Я., Рём К.-Г. Наглядная биохимия: пер. с нем. М.: Мир, 2000.-469 с.

26. Кольтовер В'.К. Свободнорадикальная теория старения: исторический очерк // Усп. геронтол. 2000.' - № 4. - С. 33-40.

27. Комов В.П., Шведова В.Н. Биохимия. М.: Дрофа, 2004. - 638 с.

28. Конвай В.Д. Нарушение пуринового обмена в печени в постреанимационном периоде и его профилактика: дис. . д-ра мед. наук. Томск, 1988. - 426 с.

29. Конвай В.Д. Острое нарушение метаболизма пуринов как фактор ишемического повреждения // Омск, научн. вестн. 2009. - № 1. - С. 45-48.

30. Конвай В.Д., Золин П.П. Роль острого нарушения метаболизма пуринов в развитии постреанимационной патологии печени // Омск, научн. вестн. 2003. - № 3. - С. 168-172.

31. Конвай В.Д., Воронов О.Э. Роль острого нарушения метаболизма пуринов в развитии повреждений, вызванных криодиструкцией ворот печени // Омск, научн. вестн. 2007. - № 2. - С. 18-23.

32. Корнякова^ В:В., Конвай, В.Д:, Рейс Б.А., Дятлова А.Ю. Утомление после чрезмерных физических нагрузок: механизмы- развития, коррекция // Теор. и практ. физич. культуры. 2009: - № 3. - С. 23-25.

33. Королюк М.А.,. Иванова Л.И., Майорова ИТ. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело. 1988. - № 1. - С. 16-19.

34. Корякин М.В., Акопян' A.C. Структурный анализ причин мужского бесплодия // Молекулярные исследования мужской субфертильности / Иод ред. A.A. Николаева. Астрахань, 2000. - С. 19-41.

35. Костромитиков H.A., Суменков Е.А. Определение- глутатиона фотоколориметрическим методом исследования // Вестн. РАСХН. — 2005:-№5.-С. 69-70.

36. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Глутатион митохондрий // Биохимия. 2007. - Т. 72, № 7. - С. 856-859.

37. Кулинский> В.И., Колесниченко Л.С. Система глутатиона I. Синтез, транспорт, глутатионтрансферазы, глутатионпероксидазы // Биомед. химия. 2009. - Т. 55, № 3. - С. 255-277.

38. Кулинский В.И., Колесниченко JI.C. Глутатион ядра клетки и его функции // Вопр. биол. мед. фарм. химии. — 2010. — № 5. С. 3-5.

39. Лущак В.И. Свободнорадикальное окисление белков и его связь с функциональным состоянием организма // Биохимия. 2007. - Т. 72, № 8.-С. 995-1017.

40. Макарова Г.А., Холявко Ю.А. Лабораторные показатели в практике спортивного врача. М.: Советский спорт, 2006. - 200 с.

41. Меерсон Ф.З., Пшенникова М.Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам. М.: Медицина, 1988. - 251 с.

42. Меныцикова Е.Б., Ланкин В.З., Зенков Н.К. и др. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты. М.: Фирма «Слово», - 2006. -556 с.

43. Меныцикова Е.Б., Зенков Н.К., Ланкин В.З. и др. Окислительный стресс: патологические состояния и заболевания. Новосибирск: APTA, 2008. - 248 с.

44. Михайлов С.С., Фактор Э.А. Влияние физической нагрузки на интенсивность перекисных процессов в организме спортсмена // Физкультура и спорт. 1990. - № 3. - С. 20-23.

45. Мохан Р., Глессон М., Глинхафф П.Л. Биохимия мышечной деятельности и физической тренировки. Киев: Олимпийская литература, 2001. - 296 с.

46. Николаев A.A., Луцкий Д.Л., Ложкина Л.В. и др. Применение селена для коррекции субфертильности у мужчин // Урология. 1999.* - № 4. -С.29-32.

47. Новоселов C.B. Новые тиоловые оксидоредуктазы систем тиоредоксина и глутаредоксина. Их роль в регуляции окислительно-восстановительного баланса клетки: дис. . д-ра. биол. наук. Пущино, 2008.- 170 с.

48. Одинаев Ш.Ф., Краснокупская A.B. Влияние селена; на липидный обмен и перекисное окисление липидов у жителей* высокогорных районов // Клин, геронтол. —2005; Т. 11, № 2. - С. 51-53.

49. Панин Л.Е., Потеряева О.Н., Атучина Н.ВПоляков Л.М. Содержание . аполипопротеинов А-1,.В и Е при интенсивной физической нагрузке и в восстановительный период. 1998. - Т. 126, № 12 - 615-617.

50. Панин Л.Е., Усынин И.Ф., Хощенко O.M. Роль аполипопротеина А-1 в реализации, анаболического действия стероидных гормонов // Пробл. э11докринол. 2002. - № 6. - С. 45-48.

51. Пат. 2169568 Российская Федерация; МПК7 А61К31/70, А61Р43/00. Средство для коррекции ¡энергетического обмена / Конвай В. Д. Золин 11.П.; заявитель, и; патентообладатель Омская, гос. мед. акад. — № 98114046/14 ; заявл. 14.07.1998'; опубл. 27.06:2001.

52. Петри А. Наглядная статистика в медицине. — Mi: Из-во ГЭОТАР-Медиа, 2003.- 144 с.

53. Петрович: Ю:А., Подорожная^ Р:П: Сёленоэнзимыг. и другие селенопротеиды; и» их биологическое значение. // Усп. совр. биол. — 1981.- Т. 91, № 1.-С. 127-142.

54. Платонов А.Е. Статистическишанализ в медицине и, биологии: задачи, терминология,, логика, компьютерные методы. М.: Из-во РАМН, 2000. - 52 с.

55. Попова И.Е. Изучение структурных свойств эритроцитов крови новорожденных при окислительном стрессе, вызванном гипоксией: дис. . канд. биол. наук. Воронеж, 2007. - 250 с.

56. Проскуряков С.Я., Габай В.Л., Коноплянников А.Г. Некроз — активная, управляемая форма программируемой клеточной гибели // Биохимия. -2002. Т. 67, № 4. - С. 467-491.

57. Рашба Ю.Э., Наглер Л.Г., Вартанян Л.С. и др. Является ли ксантиноксидаза универсальным источником супероксидных радикалов при ишемических и реперфузионных повреждениях? // Бюл. экспер. биол. 1990. - № 6. - С. 548-550.

58. Рашиди М.Р., Сорураддин М.Х., Терзаде Ф., Фжоуйбен А. Ксантиноксидаза в водно-органических смесях: каталитическая активность и термостабильность // Биохимия. 2009. — Т. 74, № 1. - С. 124-130.

59. Роженцов В.В., Полевщиков М:М. Утомление при занятиях физической культурой и спортом: проблемы, методы исследования. М.: Советский спорт, 2006. - 280 с.

60. Самуилов В.Д., Олескин A.B., Лагунова E.Mi Программируемая клеточная смерть // Биохимия. 2000. - Т. 65, № 8. - С. 1029-1046.

61. Селютина С.Н., Селютин А.Ю., Паль А.И. Модификация определения концентрации ТБК-активных продуктов сыворотки крови // Клин. лаб. диагн. 2000. - № 2. - С. 8-10.

62. Сирота Т.В. Новый подход в исследовании процесса аутоокисления адреналина и использование его для измерения активности супероксиддисмутазы // Вопр. мед. химии. 1999. - Т. 45. - С. 263-272.

63. Скулачев В.П. Старение организма особая биологическая функция, а не результат поломки сложной живой системы: биохимическое обоснование гипотезы Вейсмана // Биохимия. — 1997. — Т. 62. № 11. - С. 1394—1399.

64. Скулачев В.П. Старение как атавистическая программа, которую можно попытаться отменить // Вестн. РАН. 2005. - Т. 75. № 9. -С.831-843.

65. Скулачев В.П. Попытка биохимиков атаковать проблему старения: «Мегапроект» по проникающим ионам. Первые итоги и перспективы // Биохимия. 2007. - Т. 72, № 12. - С. 1700-1714.

66. Строев Е.А., Бухов В.А., Окороков В.Г. Значение определения рибозы в крови методом газожидкостной хроматографии при ишемической болезни сердца // Клин. лаб. диагн; 2001. - № 5. - С. 23-24.

67. Сумбаев В.В: Влияние восстановителей-антиоксидантов и кофеина на* активность ксантиндегидрогеназы // Укр. биохим. журн. 1999. - Т. 71, №3.-С. 39-43.

68. Суханова Г.А., Серебров В.Ю. Биохимия клетки. Томск: Чародей, 2000.- 184 с.

69. Тепбергенов С.О. Ферменты метаболизма пуриновых, нуклеотидов в оценке функциональной полноценности иммунитета // Биомед. химия.- 2005. Т. 51, № 2. - С. 199-205.

70. Тренева М.В. Показатели уровня тревожности и концентрации продуктов перекисного окисления липидов у спортсменов вциклических и ациклических видах спорта // Вести. ЮУрГУ. Сер., образован;, здравоохран., физич. культура. 2008. - № 4. - С. 125-126.

71. Тренева' М.В;, Львовская Е.И. Соотношение уровня тревожности, процессов перекисного окисления, липидов и активности некоторых ферментов у спортсменов в циклических и ациклических видах спорта // Теор. и практ. физич. культуры. 2008. - № 4. - С. 31-34.

72. Узбеков М.Г., Бубнова Н.И., Куликова Г.В. Влияние пренатального воздействия свинца на активность супероксиддисмутазы мозга и печени плодов крыс // Бюл. экспер. биол. 2007. - Т. 144, № 12. - С. 632-634.

73. Фактор Э.А. Перекисное окисление при физических нагрузках и его коррекция экзогенными антиоксидантными с целью повышения физической работоспособности спортсмена: дис. . д-ра биол. наук. -СПб., 1995. -338 с.

74. Фисенко В.М;, Зориков П.С., Хасина; Э.И. Влияние шума на физическую работоспособность и- ее: оптимизация адаптогенами // Естеств. и техн. наукш 20091 -№ 5. - С. 109-1131

75. Харгривз М; Углеводный метаболизм в скелетных мышцах при физических нагрузках; // Метаболизм в процессе, физической деятельности / Под; ред. М. Харгривза. Киев:; Олимпийская литература, 1998. - С. 52-83.

76. Черданцев Д.В., Винник Ю.С., Каспаров Э.В. и др. Диагностика и лечение окислительного! стресса, при остром панкреатите. -Красноярск: АРТЭ, 2002. 148 с.

77. Чигринский Е.А. О возможных пусковых механизмах апоптоза в семенниках при чрезмерных физических нагрузках // Мед. науки. -2010. -№2.-С. 46-48.

78. Ширяева А.П. Функциональное, состояние дыхательной^ цепи, митохондрий^ гепатоцитов, крыс при; экспериментальном; токсическом? гепатите: дис— канд. биол. наук. — СПб, 2008. 122 с.

79. Шульгин К.К. Получение и свойства глутатионпероксидазы // Прикл. биохим. микробиол. 2008. - Т. 44, №" 3. - С. 276-280.

80. Эллиот В., Эллиот Д. Биохимия и молекулярная биология. М.: Изд-во НИИ биомед. химии РАМН, 2000. - 367 с.

81. Acharya U.R., Mishra М., Parto J., Panda M.K. Effect of vitamins С and E on spermatogenesis in mice exposed to cadmium // Reprod. Toxicol. 2008. -Vol. 25, № l.-P. 84-88.

82. Aitken R.J., de Iuliis G.N. Origins and consequences of DNA damage in male germ cells // Reprod. Biomed. Online. 2007. - Vol. 14. - P. 727-733.

83. Aitken R.J., Roman S.D. Antioxidant systems and oxidative stress in the testis // Molecular mechanisms in, spermatogenesis. Newcastle: Landes Bioscience and Springer sciense + Business media, 2008. - P. 154—171.

84. Aksoy H., Yapanoglu Т., Aksoy Y. et al: Dehydroepiandrosterone treatment attenuates reperfusion injury after testicular torsionand detorsion in rats // J., Pediatr. Surg. 2007. - Vol. 42, №40. - Pi 17404 744.

85. Aksoy Y., Yapanoglu Т., Aksoy H. et al. Effects of endurance training on antioxidant' defense mechanisms and lipids peroxidation in testis of rats // Arch. AndroL 2006. - Vol. 52, № 4. - P. 319-323.

86. Al-Bekairi A.M., Shah' A.H., Ghaudhry. M.A., Qureshi S. Uric acid as an inhibitor of biochemical changes induced by cyclophosphamide in mice // Toxicol. Lett.- 1991.-Vol. 58,№ l.-P. 69-75.

87. Almaas R., SundarT.B., Rootwelt T. et al. Plasma hypoxanthine reacts more abruptly to changes in oxygenation than base- deficit and uric acid in newborn piglets // J. Perinat. Med. 1997. - Vol. 25; № 4. - P. 353-360.

88. Amara S., Abdelmelek H., Garrel C. et al. Preventive effect of zinc against cadmium-induced oxidative stress in the rat testis // J. Reprod. Dev. 2008. -Vol. 54, №2.-P. 129-134.

89. Amin A. Ketoconazole-induced testicular damage in rats reduced by Gentiana extract // Exp: Toxicol. Pathol: 2008. - Vol. 59, № 6. - P: 377384.

90. Anbalagan J., Sashi A.M., Vengatesh G. et al. Mechanism! underlying transient gestational-onsethypothyroidism-indyced impaiment of posttesticular sperm maturation in adult rats // Fertil. Steril. 2010. - Vol. 93, № 8. -P. 2491-2497.

91. Arch J.R.S., Newsholm E. The control of the metabolism and the hormonalrole of adenosine // Essay Biochem. 1978. - Vol. 14.- P. 82123.

92. Ardais A.P., Santos F.W., Nogueira C.W: Ebselen attenuates cadmium-induced testicular damage in mice?// J: Appli Toxicol: 2008; - Vol. 28, № 3.-P. 322-328. ,

93. Atessahin A., Karahan I., Turk G. et al. Protective role of lycopene on cisplatin-induced changes; in sperm characteristics, testicular, damage and oxidative stress in rats // Reprod. Toxicol. 2006. - Vol. 21. - P. 42-47.

94. Bagchi G., Waxman D.J. Toxicity of ethylene glycol monomethyl ether: impact on testicular/gene expression^ Int. J. Androl. 2008! - Vol; 31v№ 2.-P. 269-274.

95. Behne D., Weiler H., Kyriakopolos A. Effects of selenium deficience on testicular morphology and function in rats // J. Reprod. Fertil. 1996. - Vol. 106, №2.-P. 291-297.

96. BerardiJ.M., Ziegenfuss T.N. Effects of ribose supplementation on repeated sprint performance in men // J. Strength Cond. Res. 2003. - Vol. 17, № 1. -P. 47-52.

97. Berry C.E., Hare J.M. Xanthine oxidoreductase and cardiovascular disease: Molecular mechanisms and pathophysiological implications // J. Physiol. -2004. Vol. 555. - P. 589-606.

98. Bertelsmann H., Behne D., Kyriakopoulos A. Studies with regard to the apoptosis of testicular germ cells, in rats fed a diet enriched with polyunsaturated Fatty acids. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2009. - Vol. 1171.-P. 372-376.

99. Bloomer R.J. Effect of exercise on oxidative stress biomarkers // Adv. Clin. Chem. 2008. - Vol. 46. P. 1-50.

100. Boitani C., Puglisi R. Selenium, a key element in spermatogenesis and male, fertility // Adv. Exp. Med. Biol. 2008. - Vol. 636. - P. 65-73.

101. Boonstra J., Post J.A. Molecular events associated with reactive oxygen species and cell cycle progression in mammalian cells // Gene. 2004. -Vol. 337.-P. 1-13.

102. Bork P., Sander C., Valencia A. Convergent evolution of similar enzymatic function on different protein folds: the hexokinase, ribokinase, and galactokinase families of sugar kinases // Protein Sci. 1993. - Vol. 2, № 1. -P. 31-40.

103. Borutaite V., Brown G.C. Nitric oxide induced apoptosis via hydrogen peroxide, but necrosis via energy and thiol depletion // Free Radic. Biol. Med. 2003. - Vol. 35. - P. 1457-1468.

104. Bolouri-Moghaddam M.R. Le Roy K., Xiang L. et al. Sugar signalling and antioxidant network connections in plant cells // FEBS J. 2010. - Vol. 277, №9.-P. 2022-2037.

105. Brancaccio P., Lippi G., Mffulli N. Biochemical markers of muscular damage // Clin. Chem. Lab. Med. 2010. - Vol. 48, № 6. - P. 757-767.

106. Broedbaek K., Poulsen H.E., Weimann A. et al. Urinary excretion of biomarkers of oxidatively damaged DNA and RNA in hereditary hemochromatosis // Free Radic. Biol. Med. 2009. - Vol. 47. - P. 12301233.

107. Brookes P.S., Yoon Y., Robotham J.L. et al. Calcium, ATP, and ROS: a mitochondrial love-hate triangle // Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 2004. -Vol. 287.-P. 817-833.

108. Buhl M.R. Purine metabolism in ischemic kidney tissue // Dan. Med. Bull. -1982. Vol. 29, № 1. - P. 1-26.

109. Burk R.F., Hill K.E. Regulation of selenoproteins // Annu. Rev. Nutr. -1993.-Vol. 13.-P. 65-89.

110. Burk R.F., Hill K.E. Selenoprotein P: an extracellular protein with unique physical characteristics and a role in selenium homeostasis // Annu Rev. Nutr. 2005. - Vol. 25. - P. 215-235.

111. Burk R.F., Hill K.E. Selenoprotein P-expression, functions, and roles in mammals // Biochim. Biophys. Acta. 2009.' - Vol. 1790, № 11. - P. 14411447.

112. Byczkowski J.Z., Gessner T. Biological role of superoxide ion-radical // Int. J. Biochem. 1998. - Vol. 20. - P. 569-580.

113. Bykova M., Titova N., Sharma R., Agarwal A. Glutathione and glutathione-dependent enzymes in sperm and seminal plasma from infertile men // Fertil. Ster. 2007. - Vol. 88. - P. 366-367.

114. Camici M., Micheli V., Ipata P:L., Tozzi M.G. Pediatric neurological syndromes and; inborn errors of purine metabolism // Neurochem. Int. — 2010 Vol. 56, № 3. - P. 367-378.

115. Cappelli K., Felicetti M., Capomaccio S. et.al. Exercise induced stress in horses: selectiomof the most stable reference genes for quantitative RT-PCR normalization // BMC Mol. Biol. 2008. - Vol. 9. - P. 49.

116. Carlson B.A., Schweizer U., Perella C. et al. The selenocysteine tRNA-, STAF-binding region is essential for adequate selenocysteine tRNA status, selenoprotein expression and early age survival of mice // Biochem. J. -2009. Vol. 418, № i.p; 61-71.

117. Chandra A.K., Ghosh- R., Chatteijee: A., Sarkar M: Amelioration» of vanadium-induced testicular toxicity and adrenocortical hyperactivity by vitamin E acetate in.rats // Moli Celll .Biochem. 2007. - Vol. 306, № 1-2. -P. 189-200.

118. Cormack S.J., Newton R.U., McGuigan M.R. Neuromuscular and endocrine responses of elite players to an Australian rules football match // Int. J. Sports Physiol: Perform; 2008. - Vol. 3, № 3. - P. 359-374.

119. Coupland C.A., Ghilvers C.E., Davey G. et al. Risk factors for testicular germ cell tumours by histological tumour type. United Kingdom Testicular Gancer Study Group // Br. J. Cancer. 1999. - Vol. 80, № 11. - P. 18591863.

120. Dammeyer P., Damdimopoulos A.E., Nordman T. et al. Induction of cell membrane protrusions by the N-terminal glutaredoxin domain of a rare splice variant of human thioredoxin reductase 1 // J. Biol. Chem. 2008. -Vol. 283, № 5. - P. 2814-2821.

121. Diemer T., Allen J.A., Hales; K.H:, Hales D.B. Reactive oxygen disrupts mitochondria in MA-10 tumor Leydig:cells and inhibits steroidogenic acute regulatory (StAR) protein and steroidogenesis // Endocrinology. 2003. Vol: 144, № 7. - P. 2882-2891.

122. Dworak M., Diel P., Voss ,S. et al. Intense exercise increases adenosine concentrations in rat brain: implications for a homeo static sleep drive // Neuroscience. - 2007. - Vol: 150, № 4. - P. 789-795.

123. Eghwrudjakpor P.O., Allison: A.B- Oxidative stress following traumatic brain injury: enhancement of endogenous antioxidant defense systems and the promise of improved outcome // Niger. J. Med. 2010. - Vol: 19, № 1./ P. 14—21. '

124. Eliakim A., Portal S., Zadik Z. et al. The effect of a volleyball practice on anabolic hormones and inflammatory markers in elite male and female adolescent players // J. Strength Cond. Res. 2009. - Vol. 23. № 5. - P. 1553-1559.

125. Grandys M., Majerczak J., Duda K. et al: Endurance training of moderate intensity increases testosterone concentration in young, healthy men // Int. J. Sports Med. 2009. - Vol. 30, № 7. - P. 489^95.

126. Erol A. Systemic DNA damage response and metabolic syndrome as a premalignant state // Curr. Mol. Med. 2010. - Vol: 10, № 3. - P. 321-334.

127. Farthing D., Xi L., Gehr L. et al. HPLC determination of a potential biomarker of initial cardiac ischemia using isolated mouse hearts // Biomarkers. 2006. - Vol. 11, № 5. - P. 449M59:

128. Farthing Dl, Gehr L., Karnes H:T. et al. Dose-dependent effects of salicylic acid on post-ischemic ventricular function and. purine efflux in isolated mouse hearts // Biomarkers. 2007. - Vol. 12, № 6. - P. 623-634.

129. Fahrner C.L., Hackney A.C. Effects of endurance exercise on* free testosterone concentration and-the binding affinity of sex hormone binding globulin (SHBG) // Int. J. Sports Med. 1998. - Vol. 19, № 1. - P. 12-15.

130. Feng J.D., Yeung P.K. A simple high-performance liquid chromatography assay for simultaneous measurement of adenosine, guanosine, and theoxypurine metabolites in plasma;// Ther. Drug Monit. 2000: - Vol. 22, № 2.-P. 177 -183. '

131. Ferreira L.F., Reid M.B. Muscle-derived ROS and thiol-regulation in muscle fatigue // J. Appl; Physiol: 2008. - Vol. 104, № 3. - P. 853-860.

132. Flohe L. Selenium in mammalian spermiogenesis//Biol. Chem. 2007. -Vol. 388, № 10. - P. 987-995.

133. Gardner-Thorpe D., O'Hagen C., Young I., Lewis; S J. Dietary supplements of soya flour lower serum testosterone concentrations and improve markers of oxidative stress in men // Eur. J. Clin. Nutr. 2003. - Vol. 57j № 1. -P. 100-106.

134. Gautam- D.K., Misro M.M., Chaki S.P. et a\. hCG treatment raises H202 levels andinducesgermcellapoptosisinrat testis// Apoptosis. 2007. - 12,. №7.-P. 1173-1182.

135. Gavazza M!, Catala A. Melatonin preserves arachidonic; and docosapentaenoic acids during ascorbate-Fe2+ peroxidation of rat testis microsomes and mitochondria // Int. J. Biochem. Cell. Biol! — 2003: Vol. 35.-P. 359-366.

136. Gonzalezjurado J.A., de Teresa C., Molina E. et al. Effects of the consumption of Phlebodium Decumanum on plasma Cortisol- and testosterone levels in subjects participating in an exercise program // Rev. Med. Chil. 2009. - Vol. 137, № 4. - P. 497-503.

137. Gorman M.W., Feigl E.O., Buffïngton C.W. Human plasma ATP concentration // Clin. Chem. 2007. - Vol. 53, № 2. - P. 318-325.

138. Goto K., Ishii N., Kizuka T. et al. Hormonal and metabolic responses to slow movement resistance exercise with different durations of concentric and eccentric actions // Eur. J. Appl. Physiol. 2009. - Vol'. 106, № 5. - P. 731-739.

139. Green H.J., Burnett M.E., Smith P.C. et al. Failure of hypoxia to exaggerate the metabolic stress in working muscle following short-term' training // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2009! - Vol. 297, № 3. - P.* 593604.

140. Gross. M., Reiter S., Zollner N. Metabolism^ of D-ribose administered continuously to healthy persons and to patients with, myoadenylate deaminase deficiency // Klin. Wochensch; 1989.* - Vol. 67, № 23. - P. 1205-1213.

141. Gumieniczek A., Hopkala H., Zabek A. Protective effects of a PPARgamma agonist pioglitazone on anti-oxidative system in. testis of diabetic rabbits // Pharmazie. 2008. - Vol: 63, № 5. - P. 377-378.

142. Guneli E., Tugyan K., Ozturk H. et al. Effect of melatonin on testicular damage in streptozotocin-induced diabetes rats // Eur. Surg. Res. 2008. -Vol. 40, №4.-P. 354-360.

143. Häckney A.C., Szczepanowska E., Viru A.M. Basal testicular testosterone production in endurance-trained men is suppressed7/ Eur. J. ApplPhysiol. -2003.-Vol. 89,№2.-P. 198-201.

144. Hackney A.C., Moore A.W., Brownlee K.K. Testosterone and endurance exercise: development of the «exercise-hypogonadal male condition» // Acta Physiok Hung. 2005. - Vol. 92, № 2. - P: 121-137.

145. Hageman G.J., Lank I., Pennings H.-J. et al. Systemic poly(ADP-ribose) polymerase-1 activation, chronic inflammation, and oxidative stress in cordpatients // Free Radie. Biol. Med. 2003.-Vol. 35, № 2: - P^ 140-148:

146. Hales D.B., Allen J.A., Shankara T. et al. Mitochondrial function' in Leydig cell steroidogenesis // Ann. N. Y. Acad: Sei. 2005. - Vol., 1061. - P. 120 134.

147. Hellsten Y., Tullson P.C., Richter E.A., Bangsbo J. Oxidation of urate in human skeletal muscle during exercise // Free Radie. Biol. Med. 1997. -Vol. 22, № 1-2. - P. 169-74.

148. Hellsten Y., Skadhauge L., Bangsbo J. Effect of ribose supplementation on resynthesis of adenine nucleotides after intense intermittent training in humans // Am. J. Physiol. Regul: Integr. Comp. Physiol. 2004. - Vol. 286. -P. 182-188.

149. Heptinstall S., Johnson A., Glenn J.R., White A.E. Adenine nucleotide metabolism in human blood important roles for leukocytes and erythrocytes // J. Thromb. Haemost. - 2005. - Vol. 3. - P. 2331-2339.

150. Hikim A.P., Lue Y., Yamamoto C.M. et al. Key apoptotic pathways for heat-induced programmed germ cell death in the testis // Endocrinology. -2003,-Vol. 144,№7.-P. 3167-3175.

151. Hikim A.P., Vera Y., Verner D. et al. Involvement of nitric oxide-mediated intrinsic pathway signaling in age-related increase in germ cell apoptosis in male Brown-Norway rats // J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 2005. -Vol. 60, №6.-P. 702-708.

152. Hoffman J.R., Kraemer W.J., Bhasin S. et al. Position stand on androgen and human growth hormone use // J. Strength Cond. Res. 2009. - Vol. 23, № 5 (Suppl.). - S.1-S.59.

153. Homma-Takeda S., Hiraku Y., Ohkuma Y. et al. 2,4,6-trinitrotoluene-induced reproductive toxicity via oxidative DNA damage by its metabolite // Free Radic. Res. 2002. - Vol. 36. - P. 555-566. .

154. Hu G.X., Lian Q.Q., Lin H. et al. Rapid mechanisms of glucocorticoid signaling in the Leydig cell // Steroids. 2008. - Vol. 73, № 9-10. - P. 1018-1024.

155. Huang J.Y., Liao J.W., Liu Y.C. et al. Motorcycle exhaust induces reproductive toxicity and testicular interleukin-6 in male rats // Toxicol. Sci. -2008.-Vol. 103,№ l.-P. 137-148.

156. Hurtado de Gatalfo G.E., de Alaniz M:J., Marra C.A. Dietary lipids modify redox homeostasis and steroidogenic status in rat testis // Nutrition. 2008. - Vol. 24, № 7-8. - P. 717-726.

157. Ikeda M., Kodama H., Fukuda J. et al. Role of radical oxygen species in rat testicular germ cell apoptosis induced by heat stress // Biol: Reprod. 1999. -Vol. 61.-P. 393-399.

158. Imai H., Hakkaku N., Iwamoto R. et al. Depletion of selenoprotein GPx4 in spermatocytes causes male infertility in mice // J. Bioll Chem. 2009. - Vol. 284, № 47. - P. 32522-32532.

159. Inan M., Basaran U.N. Dokmeci D. et al. Methylene blue increases contralateral testicular ischaemia-reperfusion injury after unilateral testicular torsion // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2008. - Vol. 35, № 1. - P. 50-54.

160. Bozlu M., Coskun B., Cayan S. et al. Inhibition of poly(adenosine diphosphate-ribose) polymerase decreases long-term histologic damage in testicular ischemia-reperfusion injury // Urology. 2004. - Vol. 63, № 4. -P. 791-795.

161. Ishii T., Matsuki S., Iuchi Y. et al. Accelerated impairment of spermatogenic cells in SOD1-knockout mice under heat stress // Free Radic. Res. 2005. -Vol. 39.-PI 697-705.

162. Ishikawa T. Fujioka H, Ishimura T. et al. Increased-testicular 8-hydroxy-2'-deoxyguanosine in patients with* varicocele // BJU Int: 2007. - Vol. 100, №•4.-P. 863-866.

163. Jaeschke H. Mechanisms, of oxidant stress-induced acute tissue injury // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1995. - Vol. 209. - P. 104-11!.

164. Jankowska E.A., Filippatos G., Ponikowska B: et al. Reduction in circulating testosterone relates to exercise capacity in men with.chronic heart failure // J. Card. Fail. 2009. - Vol. 15, № 5. - P: 442-450.

165. Jin M.H., Hong C.H.,.Lee H.Y. et al: Enhanced TGF-betal is involved in 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD)' induced oxidative stress in C57BL/6 mouse testis // ToxicoK Lett. 2008. - Vol; 178, № 3. - P. 202209.

166. Jinnah H.A., Ceballos-Picot I., Torres R.J.et al. Attenuated variants of Lesch-Nyhan disease // Brain. 2010. - Vol. 133. - P. 671-689.

167. Kasahara E., Sato E.F., MiyoshiM. et al. Role of oxidative stress in» germ-cell apoptosis induced by di(2-ethylhexyl)phthalate // Biochem. J. 2002. -Vol. 365-P. 849-856.

168. Kaushal N., Bansal M.P. Dietary selenium variation-induced oxidative stress modulates CDC2/cyclin B1 expression and apoptosis of germ cells in mice testis // J. Nutr. Biochem. 2007. - Vol. 18, № 8. - P. 553-564.

169. Kavazis A.N., Kivipelto J., Choe H.S. et al. Effects of ribose supplementation on selected metabolic measurements and performance in maximally exercising Thoroughbreds // J. Anim. Sci. 2004. - Vol. 82. - P. 619-625.

170. Kavitha T.S., Parthasarathy C. Sivakumar R. et al. Effects of excess corticosterone on NADPH generating enzymes and glucose oxidation in Leydig cells of adult rats // Hum. Exp. Toxicol. 2006. - Vol. 25, № 3. - P. 119-125.

171. Kawaguchi T., Veech R.L., Uyeda K. Regulation of energy metabolism in macrophages during hypoxia. Roles of fructose 2,6-bisphosphate and ribose 1,5-bisphosphate // J. Biol. Chem. 2001. - Vol. 276, № 30. - P. 2855^ 28561.

172. Kehinde E.O., Anim J.T., Mojiminiyi O.A. et al. Allopurinol provides long-term protection for experimentally induced testicular torsion in a rabbit model // B.J.U. Int. 2005. - Vol. 96. - P. 175-180.

173. Kehr S., Malinouski M., Finney L. et al. X-ray fluorescence microscopy reveals the role of selenium in spermatogenesis // J. Mol. Biol. 2009. -Vol. 389, №5.-P. 808-818.

174. Kerksick C., Rasmussen C., Bowden R. et al. Effects of ribose supplementation prior to and during intense exercise on anaerobic capacity and metabolic markers // Int. J. Sport Nutr. Exerc. Metab. 2005. - Voir 15, №6.-P. 653-664.

175. Kernstock R.M., Girotti A.W. New strategies for the isolation and activity determination of naturally occurring type-4 glutathione peroxidase // Protein Expr. Purif. -2008. Vol. 62, № 2. - P. 216-222.

176. Kinugawa T., Fujita M., Ogino K. et al. Catabolism of adenine nucleotides favors adenosine production following exercise in patients with chronic heart failure // J. Card. Fail. 2006. - Vol. 12, № 9. - P. 720-725.

177. Koc A., Narci A., Duru M. et al. The protective role of erdosteine on testicular tissue after testicular torsion and detorsion // Mol. Cell Biochem. -2005.-Vol. 280, № 1-2.-P. 193-199.

178. Korzeniewski B. AMP deamination delays muscle acidification during heavy exercise and hypoxia // J. Biol. Chem. 2006. - Vol. 281, № 6. - P. 3057-3066.

179. Kowaltowski A.J., Castilho R.S., Vercesi A.E. de Souza-Pinto N.C. Mitochondrial and reactive oxygen species // Free Radic. Biol. Med. 2009. -Vol. 47.-P. 333-343.

180. Kraemer W.J., Hatfield D.L., Volek J.S. et al. Effects of amino acids supplement on physiological adaptations to resistance training // Med. Sci. Sports Exerc. 2009. - Vol. 41, № 5. - P. 1111-1121.

181. Kudo M., Saito Y. Sasaki T. et al. Genetic variations in the HGPRT, ITPA, IMPDH1, IMPDH2, and GMPS genes in Japanese individuals // Drug. Metab. Pharmacokinet. 2009. - Vol. 24, № 6. - P. 557-564.

182. Kumagai A., Kodama H., Kumagai J. et al. Xanthine oxidase inhibitors suppress testicular germ cell apoptosis induced by experimental cryptorchidism // Mol. Hum. Reprod. 2002. - Vol. 8. - P. 118-123.

183. Kuppusamy P., Zweier J.L. Characterization of free radical generation by xanthine oxidase. Evidence for hydroxyl radical generation // J. Biol. Chem. 1989. - Vol. 264. - P. 9880-9884.

184. Lamina S., Okoye C.G. Effect of low intensive continuous training programme on serum uric acid in the non pharmacological management of hypertension: a randomized controlled trial // Niger. J. Med. 2010. - Vol. 19, № 1. - P. 77-86.

185. Lane A.R., Duke J.W., Hackney A.C. Influence of dietary carbohydrate intake on the free testosterone: Cortisol ratio responses to short-termintensive exercise training // Eur. J. Appl. Physiol. 2010. - Vol. 108. - P. 1125-1131.

186. Li D., Yuan C., Gong Y. et al. The effects of methyl tert-butyl ether (MTBE) on the male rat reproductive system // Food Chem. Toxicol. 2008. - Vol. 46, № 7. - P. 2402-2408.

187. Liao W., Cai M., Chen J. et al. Hypobaric hypoxia causes deleterious effects on spermatogenesis in rats // Reproduction. 2010. - Vol. 139, № 6. - P. 1031-1038.

188. Lima F. de Falco V. Baima J. et al. Effect of impact load and active load on borie metabolism and body composition of adolescent athletes // Med. Sci. Sports. Exerc. 2001. - Vol. 33, № 8. - P. 1318-1323.

189. Lucia A., Diaz B., Hovos J. et al. Hormone levels of world class cyclists during the Tour of Spain stage race // Br. J. Sports Med. 2001. - Vol. 35, № 6. - P. 424-430.

190. Ma A. Yang X, Wang Z. et al. Adult exposure to diethylstilbestrol induces spermatogenic cell apoptosis in vivo through increased oxidative stress in male hamster // Reprod. Toxicol. 2008. - Vol. 25, № 3. - P. 367-373.

191. Machado M., Koch A.J., Willardson J.M. et al. Caffeine does not augment markers of muscle damage or leukocytosis following resistance exercise // Int. J. Sports Physiol. Perform. 2010. - Vol. 5, № 1. - P. 18-26.

192. Manna P:, Sinha M. Sil P.C. Protection of arsenic-induced testicular oxidative stress by aijunolic acid // Redox Rep. 2008. - Vol. 13, № 2. - P. 67-77.

193. Marchlewicz M., Wiszniewska B., Gonet B. et al. Increased lipid peroxidation and ascorbic acid utilization in testis and epididymis of rats chronically exposed to lead // Biometals. 2007. - Vol. 20, № 1. - P. 13-19.

194. Masiulis I., Quill T.A., Burk R.F., Herz J. Differential functions of the Apoer2 intracellular domain in selenium uptake and cell signaling // Biol. Chem. 2009. - Vol. 390, № 1. - P. 67-73.

195. Masuoka N., Kubo I. Characterization of xanthine oxidase inhibition by anacardic acids // Biochim. Biophys. Acta. 2004. - Vol. 1688. - P. 245249.

196. Mathews I.I., Erion M.D., Ealick S.E. Structure of human adenosine kinase at 1.5 A resolution // Biochemistry. 1998. - Vol. 37, № 45. - P. 1560715620.

197. McConell G.K., Shinewell J., Stephens T.J. et al. Creatine supplementation reduces muscle inosine monophosphate during endurance exercise in humans // Med. Sci. Sports. Exerc. 2005. - Vol. 37, № 12. - P. 20542061.

198. Mi Y., Zhang C., Taya K. Quercetin protects spermatogonial cells from 2,4-d-induced oxidative damage in embryonic chickens // J. Reprod. Dev. -2007. Vol. 53, № 4. - P. 749-754.

199. Mikami T., Kitagawa J. Intense exercise induces the degradation of adenine nucleotide and purine nucleotide synthesis via de novo pathway in the rat liver // Eur. J. Appl. Physiol: 2006. - Vol. 96, № 5. - P. 543-550.

200. Mingoti G.Z., Pereira R.N., Monteiro C.M. Fertility of male adult rats submitted to forced swimming stress // Braz. J. Med. Biol. Res. 2003. -Vol. 36, №5.-P. 677-681.

201. Moir H., Hughnes M.G., Potter S. et al. Exercise-induced immunosuppression roles of reactive oxygen species and 5-AMP-activated protein kinase dephosphorilation within immune cells // J. Appl. Physiol. -2010. Vol. 108, № 5. - P. 1284-1292.

202. Monticone M., Tonachini L. Tavella S. et al. Impaired expression of genes coding for reactive oxygen species scavenging enzymes in testes of Mtfrl/Chppr-deficient mice // Reproduction. 2007. - Vol. 134, № 3. - P. 483-492.

203. Mori M., Kinugava T., Endo A. Effects of hypoxis exercise conditioning on work capacity, lactate, hypoxanthine and hormonal factors in men // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 1999. - Vol. 26, № 4. - P. 309-314.

204. Mougeot F., Martinez-Padilla J., Webster L.M. et al. Honest sexual signalling mediated by parasite and-testosterone effects on oxidative balance // Proc. Biol. Sci. 2009. - Vol. 276, № 1659. - P. 1093-1100.

205. Murugesan P., Balaganesh M., Balasubramanian K. Arunakaran J. Effects of polychlorinated biphenyl (Aroclor 1254) on steroidogenesis and antioxidant system in cultured adult rat Leydig cells // J: Endocrinol. 2007. - Vol. 192. -P. 325-338.

206. Nakao C., Ookawara T., Sato Y. et al. Extracellular« superoxide dismutase in tissues from obese (ob/ob) mice // Free Radic. Res. 2000: - Vol. 33, № 3. -P. 229-241.

207. Narayana K. An aminoglycoside antibiotic gentamycin induces oxidative stress, reduces antioxidant reserve and"impairs spermatogenesis, in rats // J. Toxicol. Sci. 2008. - Vol. 33, №■ 1. - P. 85-96.

208. Nauseef W.M. Assembly of the phagocyte NADP№ oxidase // Histochem. Cell. Biol. 2004. - Vol. 122. - P. 277-291.

209. Nikolaidis M.G., Jamurtas A.Z., Paschalis V. et ah The effect of muscle-damaging exercise on blood and skeletal muscle oxidative stress: magnitude and time-course considerations // Sports Med. 2008. - Vol. 38, № 7. - P. 579-606.

210. Niviere V., Fontecave M. Discovery of superoxide reductase: an historial perspective // J. Biol. Inorg. Chem. 2004. Vol. 9. P. 379-384.

211. Niwa T. Uremic toxicity of indoxyl sulfate // Nagoya J. Med. Sci. 2010. -Vol. 72, №1-2.-P. 1-11.

212. Norberg E., Orrenius S., Zhivotovsky B. Mitochondrial regulation of cell death: processing of apoptosis-inducing factor (AIF) // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2010. - Vol. 396, № 1. - P. 95-100.

213. Norman B., Nygren A.T., Nowak J., Sabina R.L. The effect of AMPD1 genotype on blood flow response to sprint exercise // Eur. J. Appl. Physiol. -2008.-Vol. 103, №2.-P. 173-180.

214. Okabe H. The role of xanthine dehydrogenase (xanthine oxidase) in ischemia-reperfusion injury in rat kidney // Nippon Jinzo Gakkai Shi. -1996. Vol. 38, № 12. - P. 577-584.

215. Oliveira K. de J., Donangelo C.M., Oliveira A.V. Jr. et al. Effect of zinc supplementation on the antioxidant, copper, and iron status of physically active adolescents // Cell Biochem. Funct. 2009. - Vol. 27, № 3. - P. 162166.

216. Olson G.E., Winfrey V.P., Nagdas S.K. et al. Apolipoprotein E receptor-2 (ApoER2) mediates selenium uptake from selenoprotein P by the mouse testis // J. Biol. Chem. 2007. - Vol. 282, № 16. - P. 12290-12297.

217. Olson G.E., Winfrey V.P., Hill K.E., Burk R.F. Megalin mediates selenoprotein P uptake by kidney proximal tubule epithelial cells // J. Biol. Chem. 2008. - Vol. 283, № 11. - P. 6854-6860.

218. Ozturk A., Baltaci A.K. Mogulkoc R. et al. Effects of zinc deficiency and supplementation on malondialdehyde and glutathione levels in blood and tissues of rats performing swimming exercise // Biol. Trace Elem. Res. -2003. Vol. 94, № 2. - P. 157-166.

219. Parlaktas B.S., Ozyurt B., Ozyurt H. et al. Levels of oxidative stress parameters and the protective effects of melatonin in psychosis model rat testis // Asian J. Androl. 2008. - Vol. 10, № 2. - P. 259-265.

220. Pasquali M.A., Gelain D.P., Zanotto-Filho A. et al. Retinol and retinoic acid modulate catalase activity in Sertoli cells by distinct and gene expression-independent mechanisms // Toxicol. In Vitro. 2008. - Vol. 22, № 5. - P. 1177-1183.

221. Payabvash S., Salmasi A.H., Klumehr S. et al. Salutary effects of N-acetylcysteine on apoptotic damage in a rat model of testicular torsion // Urol. Int. 2007. - Vol. 79; № 3. P. 248-254.

222. Payabvash S., Kiumehr S., Tavangar S.M., Dehpour A.R. Ethyl pyruvate reduces germ cell-specific apoptosis and oxidative stress in rat model of testicular torsion/detorsion // J. Pediatr. Surg. 2008. - Vol. 43, № 4. - P. 705-712.

223. Pedzik A., Paradowski M., Rysz J. Oxidative stress in nephrology // Pol. Merkur. Lekarski. 2010. - Vol. 28, № 163. - P. 56-60.

224. Pekcetin C., Ergur B.U., Kiray M. et al. The protective effects of trimetazidine on testicular, ischemia and reperfusion injury in rats // Pediatr. Surg. Int. 2007. - Vol. 23, № 11. - P. 1113-1118.

225. Peltola V., Huhtaniemi I:, Metsa-Ketela T. et al. Induction of lipid peroxidation during steroidogenesis in the rat testis // Endocrinology. -1996.-Vol. 137.-P. 105-112.

226. Peveler W.W., Bishop P.A., Whitehorn E.J. Effects of ribose as an ergogenic aid // J: Strength. Cond. Res. 2006. - Vol. 20, № 3. - P. 519-522.

227. Podhorska-Okolow M:, DziegieL P., Gomulkiewicz A. et al: Exercise-induced apoptosis in rat kidney is mediated*by both angiotensin II ATI and AT2 receptors // Histol: Histopathol. 2006. - Vol'. 21, № 5: - Pi 459^66.

228. Poon R., Rigden M., Chu I., Valli V.E. Short-term oral toxicity of pentyl ether, 1,4-diethoxybutane, and 1,6-dimethoxyhexane in male rats // Toxicol. Sci. 2004. - Vol. 77, № 1. - P. 142-50.

229. Reid M.B. Free radicals and muscle fatigue: Of ROS, canaries, and the IOC // Free Radic. Biol. Med. 2008. - Vol. 44, № 2. P. 169-179.

230. Renko K., Werner M., Renner-Miiller I., et al. Hepatic selenoprotein P (SePP) expression restores selenium transport and prevents infertility and motor-incoordination in Sepp-knockout mice // Biochem J. 2008. - Vol. 409, №3.-P. 741-749.

231. Roberts M.D., Dalbo V.J., Hassell S.E., Kerksick C.M. The expression of androgen-regulated genes before and after a resistance exercise bout in younger and older men // J. Strength Cond. Res. 2009. - Vol. 23, № 4. - P. 1060-1067.

232. Roth S., Rosenbaum P.S. Osinski J. et al. Ischemia induces significant changes in purine nucleoside concentration in the retina-choroid in rats // Exp. Eye. Res. 1997. - Vol. 65, № 6. - P. 771-779.

233. Ru W., Peijie C. Modulation of NKT cells and Thl/Th2 imbalance after alpha-GalCer treatment in progressive load-trained rats // Int. J. Biol. Sci. -2009. Vol. 5, № 4. - P. 338-343.

234. Sahoo D.K., Roy A., Bhanja S., Chainy G.B. Hypothyroidism impairs antioxidant defence system and testicular physiology during development and maturation // Gen. Comp. Endocrinol. 2008. - Vol. 156, № 1. - P. 6370.

235. Saito T., Nishino T. Differences in redox and kinetic properties between NAD-dependent and 02-dependent types of rat liver xanthine dehydrogenase // J. Biol. Chem. 1989. - Vol. 264. - P. 10015-10022.

236. Sattler F.R., Castaneda-Sceppa C., Binder E.F. et al. Testosterone and growth hormone improve body composition^ and muscle performance in older men // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2009. - Vol. 94, № 6. - P. 19912001.

237. Schriever. S.C., Barnes K.M., Evenson J.K. et al. Selenium requirements are higher for glutathione peroxidase-1 mRNA than gpxl activity in rat testis // Exp. Biol. Med. (Maywood). 2009. - Vol. 234, № 5. - P. 513-521.

238. Schuback K., Essen-Gustavsson* B. Persson S.G. Effect of creatine supplementation on muscle metabolic response to a maximal treadmill exercise test in Standardbred horses // Equine Vet. J. 2000. - Vol. 32. - P. 533-540.

239. Shalini S., Bansal M.P. Role of selenium in regulation of spermatogenesis: involvement of activator protein 1 // Biofactors. 2005: - Vol. 23, № 3. - P. 151-162.

240. Shalini ~S., Bansal M.P. Role of selenium in spermatogenesis: differential expression of cjun and cfos in tubular cells of mice testis // Mol. Cell. Biochem. 2006. - Vol. 292, № 1-2. - P. 27-38.

241. Shiraisi K., Shimabukuro T., Naito K. Effects of hemodialysis on testicular volume and oxidative stress in humans // J. Urol. 2008. - Vol. 180, № 2. -P. 644—650.

242. Sikka S.C. Relative impact of oxidative stress on male reproductive function // Curr. Med. Ghem. 2001. - Vol. 8. - P. 851-862.

243. Singh M., Kalla NR., Sanyal S.N. Effect of monensin, a Na+-specific carboxylic ionophore on the oxidative defense system in rat testis // Pharmacol: Rep. 2007. - Vol. 59, № 4. -P. 456-461.

244. Smith R., Kaune H, Parodi D. et al: Increased' sperm DNA damage in patients with varicocele: Relationship with seminal oxidative stress // Hum. Reprod;.-2006;- Vol; 21.- P: 986-993;

245. Stathis C.G., Carey M.F., Snow. R.J. The;influence oftallopurinol on urinary purine loss after repeated sprint exercise in man' // Metabolism. — 2005. -Vol. 54, № 10. P. 1269-1275.

246. Steiner M.C., Evans R., Deacon S.J. et al. Adenine nucleotide loss in the skeletal muscles during exercise in chronic obstructive pulmonary disease // Thorax. 2005. - Vol. 60, № 11. - P: 9324-936.

247. Suzuki S., Yoneyama Y. Maternal plasma hypoxanthine levels in nonpreeclamptic twin pregnancies // Tohoku J. Exp. Med. 2004. - Vol. 203, №4.-P. 349-352.

248. Taneli-F., Vatansever S., Ulman C. et al: The effect of spermatic vessel ligation on testicular nitric oxide levels and germ cell-specific apoptosis in rat testis // Acta Histochem. 2005. - Vol. 106. - P. 459-466.

249. Tang X.Y., Zhang Q., Dai D.Z. et al. Effects of strontium fructose 1,6-diphosphate on expressionof apoptosis-related genes, and oxidative stress in testes of diabetic rats // Int. J. Urol. 2008. - Vol: 15, №3. - P. 251-256.

250. Teitelbaum J.E., Johnson C., Cyr J:St. The use of D-ribose in chronic fatigue syndrome and fibromyalgia: a pilot'study // J. Altern. Complement. Med. -2006. Vol. 12, № 9. p. 857-8621

251. Tramontano F., Malanga M., Farina B. et al. Heat stress reduced poly(ADPR)polymerase expression- in rat testis // Mol. Hum. Reprod. -2000: Vol. 6, № 7.'- P: 575-581.

252. Tullson P.C., Teijung R.L. Adenine nucleotide metabolism in contracting skeletal muscle // Exerc. Sport Sci. Rev. 1991. - Vol. 19. - P. 507-537.

253. Tullson P.C., Bangsbo J., Hellsten Y., Richter E.A. IMP metabolism in human skeletal muscle after exhaustive exetcise // J. Appl. Physiol. 1995. -Vol. 78, № l.-P. 146-152.

254. Tullson P.C., Arabadjis P.G., Rundell K.W., Teijung R.L. IMP reamination to AMP in rat skeletal muscle fiber types // Am. J. Physiol. 1996. - Vol. 270.-P. 1067-1074.

255. Tullson P.C., Rush J.W., Wieringa B., Teijung R.L. Alterations in AMP diaminase activity and kinetics in skeletal muscle of creatine kinase-deficient mice // Am. J. Physiol. 1998. - Vol. 274. - P. 1411-1416.

256. Tunc O., Thompson J., Tremellen K. Improvement in sperm DNA quality using an oral antioxidant therapy // Reprod: Biomed: Online. 2009. - Vol. 18, №6.-P. 761-768.

257. Unsal A., Devrim E., Guven C. et al. Propofol attenuates reperfusion injury after testicular torsion and detorsion // World'J. Urol. 2004. - Vol. 22, № 6.-P. 461-465:

258. Vaithinathan S., Saradha B., Mathur P.P. Methoxychlor induces apoptosis via mitochondria and FasL-mediated pathways in. adult rat testis // Chem. Biol. Interact. 2010. - Vol. 185, № 2. - P. 110-118.

259. Vazquez-Memije M:E., Gapin R., Tolosa A., El-Hafidi M. Analysis of age-associated changes in mitochondrial free radical generation by rat testis // Mol. Cell. Biochem. 2008. - Vol. 307, № 1-2. - P. 23-30.

260. Verratti V., Di Giulio C, Berardinelli F. et al. Pampiniform-plexus and oxidative- stress during- chronic hypoxia and hyperoxia // Int. J: Immunopathol. Pharmacol. 2008. - Vol. 21, № 2. - P. 353-357.

261. Wang: J.S., Lin C.T. Systemic hypoxia promotes lymphocyte apoptosis induced .by oxidative stress during moderate exercise // Eur. J. Appl. Physiol. -2010;-Vol. 108, №2.-P. 371-382.

262. Zanotto-Filho A., Schroder R.,.Moreira J.G. Xanthine oxidase-dependent ROS production mediates vitamin A pro-oxidant effects in cultured Sertoli cells // Free Radic. Res. 2008. - Vol; 42, № 6. - P. 593-601.

263. Zhang K., Shang Y., Liao S. et al. Uncoupling protein 2 protects testicular, germ cells from hyperthermia-induced; apoptosis // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2007. - Vol. 360, № 2. - P. 327-332.

264. Zhang Z., Blake D.R., Stevens C.R. et al. A reappraisal of xanthine dehydrogenase and oxidase in hypoxic reperfusion injury: the role of NADH as an electron donor // Free Radic: Res. 1998: - V. 28;.№ 2. - V. 151-164.

265. Zhao- S., Snow R.J.,: Stathis G.G. et al. Muscle adenine nucleotide metabolism during andl int recovery; fromsmaximali exercise in humans // J. Appl. PhysioK 2000« - Vol; 88j № 5: - PM'516-15191

266. Zhou J.C., Zhao H., Li J.G., et al. Selenoprotein^gene expression in thyroid andlpituitary of young;pigs,is not affected by dietary selenium deficiency or excess//LNutr-2009/-Vol: 139? №6;-P; 1061-1066;

267. Zhu; Q: Emanuele MiA., La, Paglia Ni et: al; Vitamin* E prevents ethanol-induced inflammatory,, hormonal, andi cytotoxic changes in reproductive tissues // Endocrine: 2007. - Vol; 32, №1. - P; 59-68:.

268. Zimmer H-G. Regulation of and intervention into the oxidative pentose phosphate pathway and adenine nucleotide metabolism in the heart // Mol. Gell. Biochem. 1996. - Vol. 160-161. - P. 101-109.

269. Zimmer H:-G. Significance of the 5-phosphoribosyl-1 -pyrophosphate pool for; cardiac;purine; and pyrimidine. nucleotide synthesis: studies withiribose, adenine, inosine, and^orotic acid in rats// Cardiovasc. Drugs. Ther. 1998. Vol. 12.-P. 179-187.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.