Оценка воздействия потенциальных загрязнителей на световые реакции фотосинтеза в присутствии гуминовых веществ тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.08, кандидат наук Габбасова Дилара Тагировна

• Габбасова Дилара Тагировна
• кандидат наук
• 2018

Оглавление диссертации кандидат наук Габбасова Дилара Тагировна

Введение

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Общая характеристика процесса фотосинтеза

1.2. Характеристика флуоресценции хлорофилла растений

1.3. Природа быстрой флуоресценции хлорофилла растений

1.4. Природа замедленной флуоресценции хлорофилла растений

1.5. Методы измерения флуоресценции хлорофилла

1.5.1. Регистрация индукции флуоресценции хлорофилла

1.5.2. Модулированная флуоресценция хлорофилла

1.6. Роль гуминовых веществ в природе

1.7. Токсическое воздействие соединений хрома

1.8. Токсическое воздействие наноалмазов детонационного синтеза

1.9. Токсическое воздействие наночастиц серебра

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материалы исследования

2.2. Методы исследования

2.2.1. Регистрация световых кривых фотохимического и нефотохимического тушения на флуориметре Water-PAM

2.2.2. Регистрация флуоресценции хлорофилла на флуориметре Aquapen-C

2.2.3. Регистрация индукционных кривых быстрой, замедленной флуоресценции и редокс превращения Р700 (пигмент ФС I) на М-РЕА-2

2.2.4. Регистрация кинетики окисления и восстановления пигмента Р700 реакционного центра ФС

2.2.5. Спектральный анализ

2.2.6. Определение размера наночастиц

2.2.7. Программное обеспечение

69

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ОБСУЖДЕНИЕ

3.1. Оценка влияния гуминовых веществ на световые реакции фотосинтеза зеленых микроводорослей Зсепейезшт quadricauda

3.2. Начальные нарушения фотоситетического аппарата у микроводоросли Phaeodactylum МсвгпиШш в присутствии ионов хрома

3.3. Изменение устойчивости микроводоросли Scenedesmus quadricauda при добавлении гуминовых веществ в присутствии ионов хрома

3.4. Влияние наноалмазов детонационного синтеза на световые реакции фотосинтеза микроводоросли Scenedesmus quadricauda

3.5. Влияние наноалмазов детонационного синтеза на световые реакции фотосинтеза растений пшеницы Тп^^т aestivum Ь. в присутствии гуминовых веществ

3.6. Влияние наночастиц серебра на микроводоросли Scenedesmus quadricauda и изменение их устойчивости при разных режимах добавления гуминовых веществ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК УСЛОВНЫХ СОКРАЩЕНИЙ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Оценка воздействия потенциальных загрязнителей на световые реакции фотосинтеза в присутствии гуминовых веществ»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность исследования. В современных условиях значительный интерес представляет исследование токсичности различных загрязняющих веществ, в том числе, современных наноматериалов (Смуров, 2003; Терехова с соавт., 2014; Филенко, 1988; Черных, Сидоренко, 2003). Наряду с такими известными загрязнителями окружающей среды как тяжелые металлы и ионы хрома, широкое распространение приобрели и наночастицы (НЧ). Стремительное развитие нанотехнологий приводит к увеличению выброса различных наночастиц в среду, где их судьба и поведение неизвестны (Голохваст с соавт., 2012; Шайтан, 2011). Уникальные свойства НЧ, такие как высокая удельная поверхность и подвижность, может привести к неожиданным для здоровья человека последствиям и опасности для окружающей среды. Наночастицы серебра широко используются в медицине, текстиле, красках, в качестве пищевых добавок, упаковочной тары для продуктов питания. Из-за относительно дешевого производства, наноалмазы (ДНА) производимые путем детонационного синтеза используются в качестве горюче-смазочных материалов, в авиа-и автомобилестроение, медицине, химической промышленности. Данные вещества могут существенно влиять на фототрофные организмы, обеспечивающие энергией все экосистемы. Уменьшить токсическое воздействие этих веществ могут природные детоксиканты - гуминовые вещества. Гуминовые вещества (ГВ) присутствуют во всех природных средах и выполняют ряд экологических функций как в естественных, так и в антропогенных экосистемах (Якименко; 2016; Kulikova, 2005; et а1., 2016). ГВ могут повышать доступность

питательных веществ, положительно влиять на физико-химические и биологические свойства почвы, а также существенно изменять поведение токсикантов путем связывания их в нетоксичные комплексы или влияя на процессы окисления-восстановления токсикантов (Перминова с соавт., 2004; КИаЫ, Ба^, 2011; Ра^еу et а!., 2003).

Одним из общепринятых индикаторов устойчивости состояния растительного компонента экосистем, является оценка эффективности процессов фотосинтеза в ответ на воздействия окружающей среды. Фотосинтез лежит в основе всех экосистем и представляет сложную систему преобразования энергии света, состоящую из двух фотосистем (ФС II и ФС I), осуществляющих нециклический электронный транспорт с разложением воды и выделением кислорода, образованием НАДФН2 и АТФ. Нарушения в первичных процессах фотосинтеза отражаются в изменениях флуоресценции хлорофилла а. В настоящее время развиваются методы анализа световых и индукционных кривых флуоресценции, позволяющих на интактных объектах следить за основными стадиями фотосинтетической электрон-транспортной цепи. (Гольцев c соавт., 2014; Маторин, Рубин, 2012; Strasser et. а1., 2010). В настоящее время измерения кинетики индукции флуоресценции все шире используются в исследованиях экологического мониторинга.

Однако исследований по воздействию ионов хрома и современных наноматериалов на световые реакции фотосинтеза микроводорослей и растений в присутствии ГВ практически не проводились.

Целью настоящей работы являлось изучение особенностей действия ионов хрома, НЧ алмаза и серебра на световые реакции фотосинтеза микроводорослей и высших растений и выявление изменений их устойчивости в присутствии ГВ различного происхождения с использованием современных флуоресцентных методов.

Для достижения поставленной цели решали следующие задачи:

1. Оценить влияние ГВ черноземных почв на световые реакции фотосинтеза микроводорослей Scenedesmus quadricauda.

2. Выявить начальные нарушения фотосинтетического аппарата у микроводорослей Phaeodactylum tricornutum и Scenedesmus quadricauda в присутствии ионов хрома и изменение их устойчивости при добавлении ГВ с использованием параметров флуоресценции.

3. Изучить влияние ДНА на световые реакции фотосинтеза

микроводорослей Зсепейезшт quadricauda и растений пшеницы ТгШеиш ав8Иуиш Ь в присутствии различных ГВ.

4. Исследовать токсическое действия НЧ серебра на микроводоросли Scenedesmus quadricauda и изменение устойчивости при разных режимах добавления ГВ.

5. Определить наиболее чувствительные параметры индукции флуоресценции хлорофилла для использования в экологическом мониторинге загрязнений в окружающей среде.

Научная новизна. Впервые с использованием параметров индукции флуоресценции установлено, что ГВ обладают стимулирующим воздействием на световые реакции фотосинтеза микроводорослей & quadricauda. ГВ ускоряли электронный транспорт (Фео), стимулировали максимальную фотохимическую эффективность ФС II (Бу/Бм), эффективность кислородвыделяющего комплекса (Бу/Бо) и индекс производительности (Р1Авэ). Показано влияние ГВ на фотосинтетические мембраны клеток. Гуминовые кислоты (ГК) обладают более выраженным стимулирующим воздействием по сравнению с фульвокислотами (ФК), что, по-видимому, связано с относительной обогащенностью структуры ГК ароматическими фрагментами и, как следствие, большим сродством к мембранам клеток.

Впервые при одновременной регистрации индукционных кривых быстрой и замедленной флуоресценции, а также редокс-состояния Р700 у морских водорослей Р. tricornutum и пресноводных & quadricauda в присутствии ионов хрома было показано, что одно из первых мест воздействия соединений шестивалентного хрома локализовано на акцепторной части ФС II между переносчиками и рВ. При высоких концентрациях ионов хрома отмечено влияние на донорную часть ФС II. Обнаружена активация циклического транспорта электронов в присутствии ионов хрома. Показано, что токсикологический эффект ионов хрома снижался в присутствии ГВ.

При исследовании влияния НЧ серебра и алмаза на микроводоросли & quadricauda было обнаружено, что они могут ингибировать эффективность

фотосинтеза микроводорослей на акцепторной части ФС II. Это отражено в снижении таких параметров флуоресценции как максимальная фотохимическая эффективность ФС II (Бу/Бм), эффективность КВК (Бу/Бо), электронный транспорт (Фео), индекс производительности (Р^авб). При исследовании НЧ серебра, синтезированные с ГВ, наблюдали возрастание токсического эффекта на микроводоросли & quadricauda. Впервые выявлено, что ДНА проникают в растения пшеницы Triticum aestivum Ь и проявляют токсичность в условиях повышенного освещения, что ведет к уменьшению переноса электрона между акцепторами Ра и рв и нарушению формирования трансмембранного потенциала. В присутствии ГК наблюдался детоксифицирующий эффект, который в первую очередь определялся изменениями дзета-потенциала ДНА.

Положения диссертации, выносимые на защиту:

- установлено положительное влияние ГВ на световые реакции фотосинтеза микроводорослей;

- определены области начальных нарушений фотосинтетического аппарата в присутствии ионов хрома, НЧ алмаза и серебра;

- доказано повышение устойчивости реакции фотосинтеза микроводорослей в присутствии ГК к действию ионов хрома, НЧ алмаза и серебра;

- определены параметры индукции флуоресценции хлорофилла для экологического мониторинга загрязнений в окружающей среде.

Теоретическая и практическая значимость работы. В данной диссертационной работе были изучены особенности действия ионов хрома и современных токсикантов: ДНА и НЧ серебра на световые реакции фотосинтеза микроводорослей, высших растений и защитные свойства ГВ различного происхождения.

Предложен способ оценки влияния ГВ, сочетания ГВ и токсикантов на световые реакции фотосинтеза микроводорослей и растений с использованием параметров индукции флуоресценции хлорофилла. Определены наиболее чувствительные параметры флуоресценции (Р^авб, Фео, Бу/Бо), которые могут быть использованы в экологическом биомониторинге для определения влияния

различных токсикантов и ГВ на фотосинтезирующие организмы. Показатель флуоресценции (F0) с успехом может быть использован в биотестировании для оценки влияния токсикантов на ростовые процессы микроводорослей.

Материалы диссертации могут быть внедрены в учебный процесс по дисциплинам «Экология» и «Охрана окружающей среды и рациональное использование природных ресурсов».

Полученные результаты использовали в учебном процессе при проведении практикума по экологической биофизике на Звенигородской станции МГУ и большого практикума кафедры биофизики МГУ.

Метод флуоресценции хлорофилла был внедрен в исследования по биотестированию в лабораторию экотоксикологического анализа почв (ЛЭТАП) на факультете почвоведения МГУ.

Апробация работы. Результаты работы представлены в следующих научных конференциях: 4-я международная конференция СНГ МГО по гуминовым инновационным технологиям «От молекулярного анализа гуминовых веществ - к природоподобным технологиям» (Москва, 2017); II всероссийская научная конференция молодых ученых «Комплексные исследования Мирового океана» (Москва, 2017); всероссийская научно-практическая конференция с международным участием «Морские биологические исследования: достижения и перспективы», приуроченная к 145-летию Севастопольской биологической станции (Севастополь, 2016); международный симпозиум «Биодиагностика и оценка качества природной среды: подходы, методы, критерии и эталоны сравнения в экотоксикологии» (Москва, 2016); 10-я международная конференция «Углерод: фундаментальные проблемы науки, материаловедение, технология» (Троицк, 2016); 3-й международный симпозиум «Nanomaterials and the Environment» (Moscow, 2016); конференция Математика Компьютер Образование 2016 (Москва, 2016); V съезд биофизиков России (Ростов-на-Дону, 2015).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 15 работ, в том числе 5 статей в рецензируемых изданиях, рекомендованных ВАК Минобрнауки РФ и 3 в цитируемых в международных базах данных Scopus, Web of Science,

ЯБО, а одна из них опубликована в высокорейтинговом журнале.

Исследования выполнялись при поддержке по грантам РФФИ: «Поиск границ нормы для биоиндикационных показателей фитопланктона в многофакторных экспериментах с лабораторными альгоценозами» (15-04-02601), «Метод поиска экологически обоснованных границ классов качества для объективной классификации природных экосистем» (15-04-02129).

ГЛАВА 1.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1. Общая характеристика процесса фотосинтеза

Фотосинтез - наиболее важный биоэнергетический процесс на Земле, благодаря которому возможны само существование жизни и функционирование биосферы. Используя солнечную энергию, фотосинтезирующие организмы производят углеводы и другие органические соединения из СО2 и воды. Фотосинтез происходит в растениях, водорослях и некоторых бактериях, в том числе в сине-зеленых водорослях (Гольцев с соавт., 2014; Заворуева с соавт., 2011; Заядан, Маторин, 2015; Ильяш, Маторин, 2007).

В растениях этот процесс происходит в хлоропластах, внутри которых находятся строма и тилакоиды (Плеханов, Чемерис, 2003). В мембранах тилакоидов осуществляется световая фаза фотосинтеза, в то время как строма содержит ферменты, необходимые для темновой фазы фотосинтеза (цикла Калвина-Бенсона) (Рисунок 1).

В результате чрезвычайно сложного, многоступенчатого процесса, часть энергии поглощенного фотона сохраняется для энергетического метаболизма клетки в виде стабильной химической энергии органических соединений. Обобщенно процесс фотосинтеза можно описать следующей упрощенной формулой (Гольцев с соавт., 2014):

С02 + Н20 + световая энергия ^ СН20 + 02.

Поглощение, трансформация и сохранение энергии в процессе фотосинтеза включают четыре основных этапа.

1. Поглощение света и перенос энергии по пигментной антенне к активным центрам.

2. Транспорт электронов (первичное разделение зарядов в активных центрах и передача электрона от возбужденного пигмента реакционного центра к акцептору, например феофитину).

3. Стабилизация энергии «возбужденных» электронов с помощью окислительно-восстановительных реакций (фотосинтетический транспорт электронов) и синтез АТФ и НАДФН.

4. Синтез и экспорт стабильных продуктов фотосинтеза.

Рисунок 1. Две фазы фотосинтеза и их взаимодействие в рамках хлоропласта. Фаза, зависящая от света (световая фаза), происходит в тилакоидах, в них образуются соединения, обладающие силой ассимиляции (НАДФН и АТФ), которые используются в темновой, не зависящей от света фазе (цикл Кальвина-Бенсона). Во время темновой фазы в строме происходит редукция СО2 до сахаров (органические соединения) (Гольцев с соавт., 2014).

Несмотря на большое разнообразие в организации фотосинтетического аппарата различных типов и классов фотосинтезирующих организмов (хлоропласты, хроматофоры, отдельные тилакоиды, различия в наборе пигментов и т.д.), существует удивительная универсальность в структуре первичных этапов трансформации световой энергии в химическую. Начальный этап фотосинтеза -световая стадия, в ходе которой осуществляется поглощение и фотохимическое преобразование энергии света (Рисунок 2). У растений световая стадия протекает в тилакоидных мембранах хлоропластов с участием пяти типов надмолекулярных белков и пигмент-белковых комплексов. Два из них, хлорофилл-белковые комплексы первой и второй фотосистем (ФС I и ФС II), несут реакционные центры (РЦ), в которых происходит первичная конверсия световой энергии, а также молекулы хлорофилла а. Последние выполняют функции внутренней

п гл

антенны и обеспечивают эффективную миграцию энергии в пределах комплекса к РЦ (Гольцев с соавт., 2014).

Два типа центров, относящихся к ФС I и ФС II, объединены в единую систему с помощью переносчиков электронов и протонов вместе с комплексом цитохромом Ь6/£ В фотосистеме I поглощение энергии используется для переноса электронов к низкопотенциальному акцептору, который через ряд переносчиков восстанавливает НАДФ+. Фотосистема II включает в себя РЦ и другие компоненты, участвующие в окислении воды, выделении молекулярного кислорода, переносе протонов и электронов, восстанавливающих реакционные центры ФС I.

ФС II окисляет воду, что сопровождается выделением кислорода. Окисление воды катализируется кислородвыделяющим комплексом (КВК), представляющим собой один из главных компонентов ФС II. Вода является источником электронов и протонов, а в качестве побочного продукта в результате фотолиза воды образуется кислород, выделяющийся в наружную среду. Поскольку эта реакция является практически единственным источником кислорода на нашей планете, важность ее трудно переоценить (Маторин, Алексеев, 2013).

кислород-а ыд«ляющии комплекс

Внутреннее пространство хлоропласта

Рисунок 2. Тилакоидная мембрана с четырьмя интегральными мембранными белковыми комплексами (ФС I, ФС II, цитохром Ь6/ и АТФ-синтаза) связана с циклом Кальвина в строме, кислород выделяющий комплекс, ФС I - фотосистема

I, ФС II - фотосистема II, Р680 - Хл реакционного центра ФС II, PQ и PQH2 -пластохинон и восстановленный пластохинон, комплекс цитохрома Ъб/, РС -пластоцианин, FeS - связанный железо-серный акцептор ФС I, Р700 - Хл (А11еп е1 а1., 2011).

Еще один комплекс - светособирающий (ССК), содержащий хлорофилл и другие пигменты - не участвует в электрон-транспортных реакциях, но играет важную роль в поглощении квантов света и в передаче энергии света на фотосистемы.

Ассиметрия расположения основных электрон-транспортных комплексов в тилакоидных мембранах создает структурную основу для направленного трансмембранного переноса электронов, сопряженного с накоплением протонов и образованием электрохимического градиента протонов (ЛцН), на тилакоидных мембранах. Энергизация тилакоидных мембран, происходящая в результате трансмембранного переноса электронов и протонов, обеспечивает образование АТФ за счет активности АТФ-сопрягающего комплекса (Маторин, Рубин, 2012).

Поглощение света антенным комплексом фотосистемы I приводит к возбуждению и окислению хлорофилла реакционного центра Р700, при этом положительная дырка Р700+ закрывается в результате окисления пластоцианина, подводящего электроны от фотосистемы II. При возбуждении Р700 отдает один электрон на первичный акцептор А0, после чего электрон по градиенту редокс-потенциала переносится на филлохинон (А1) и комплекс 4Бе-48 -кластеров, обозначаемых как Бх, Ба, БЬ. С этих кластеров происходит одноэлектронное восстановление ферредоксина, который в свою очередь восстанавливает НАДФ+ при участии ферредоксин-НАДФ+-оксидоредуктазы. Электронный транспорт от воды к НАДФ+ называется нециклическим и его результатом является восстановление НАДФН и синтез АТФ. В тилакоидной мембране возможен также циклический перенос электронов вокруг фотосистемы I, связанный с созданием только протонного градиента и синтезом АТФ. Образованные в световой стадии фотосинтеза НАДФН и АТФ затем используются в биохимических реакциях,

протекающих в строме хлоропласта, и связанных с фиксацией СО2 в цикле Кальвина-Бенсона (Маторин, Алексеев, 2013).

1.2. Характеристика флуоресценции хлорофилла растений

Солнечная энергия (свет), достигающая поверхности листьев в виде потока фотонов, поглощается молекулами фотосинтезирующих пигментов, главным образом хлорофилла светособирающих комплексов. В этих комплексах (также называемыми антеннами) поглощенная энергия в виде электронного возбуждения молекул красителя может передаваться к реакционным центрам ФС II и ФС I и использоваться для запуска фотохимических реакций (Рубин, 2013). Не вся поглощенная энергия используется на фотосинтез, известная часть переносимой по антенне энергии возбуждения не достигает реакционного центра, а теряется в виде тепла или испускается в виде флуоресценции хлорофилла (Рисунок 3).

поглощенная энергия РЛИ = фотохимия + тепло + флуоресценция

флуоресценция 3-5 %

Рисунок 3. Пути расходования световой энергии, получаемой листьями. ФАР - фотосинтетически активная радиация, УФ - ультрафиолетовое излучение, ДК - дальний красный свет, близкая инфракрасная область, ИК - инфракрасное излучение (Гольцев с соавт., 2014).

Флуоресценция хлорофилла а представляет собой вторичное излучение световой энергии, поглощенной молекулой хлорофилла (БЬгаЬег е1 а1., 1995). Часть поглощенной энергии, которая теряется для процесса фотосинтеза в виде флуоресценции, мала и, хотя составляет только от 3 % до 5 %, является для нас источником важной информации (Рисунок 3). Флуоресценция хлорофилла а во время фотосинтеза является мерой энергии поглощаемых квантов света, которые

не были использованы в процессе фотосинтеза, и не были рассеяны в виде тепла. При нормальной и эффективной работе фотосинтетических реакций интенсивность флуоресценции хлорофилла а остается низкой, а любое нарушение процесса фотосинтеза понижает его эффективность, что приводит к значительному увеличению флуоресценции (Маторин, Рубин, 2012).

После поглощения фотона валентный электрон в молекуле хлорофилла переходит на более высокий энергетический уровень. При поглощении кванта фиолетового или синего излучения энергия синглетного уровня выше, чем в случае возбуждения красным светом. Эти переходы происходят за время порядка фемтосекунды (10-15 с), а за время около 10-13 с молекула рассеивает часть избыточной энергии в виде тепла и переходит на нижний энергетический уровень электроного возбуждения (Рисунок 4). Пребывание в нижнем электронном возбужденном состоянии не длится слишком долго, так как возбуждение молекул хлорофилла имеет тенденцию быстро (примерно за 10-9 с) вернуться в основное состояние, а энергия может быть потеряна в результате теплообмена или флуоресценции квантов (Хшах = 685 нм). Остальная энергия используется для работы фотосинтетического транспорта электронов, который начинается, когда, мигрируя по антенне возбуждение, достигает молекулы хлорофилла, находяящейся в реакционном центре ФС II или ФС I (Погосян, 2006).

Флуоресценция хлорофилла всегда осуществляется с нижнего возбужденного состояния и, следовательно, излучается только красный свет, хотя хлорофилл поглощает излучение и в более коротковолновом диапазоне, достигая при этом более высокого энергетического возбужденного состояния молекулы (Корнеев, 2002). Максимум излучения флуоресценции хлорофилла а расположен в более длинноволновой области спектра, чем максимум поглощения хлорофилла (Рисунок 5). Максимальная флуоресценция молекул хлорофилла в растворе петролейного эфира наблюдается при 668 нм, а максимум поглощения приходится на 663 нм (сдвиг Стокса). В листьях максимум флуоресценции при комнатной температуре наблюдается около 685 нм, а простирается спектр флуоресценции до 800 нм (Антал, 2000; Маторин, Алексеев, 2013).

Рисунок 4. Изменение уровня энергии в молекуле хлорофилла а при поглощении света и возвращении в исходное состояние (модифицированно по http: //en.wikipedia.org/ wiki/Image).

В листьях хлорофилл а в среднем содержится в три раза больше, чем хлорофилла b. В здоровых листьях растений флуоресценция излучается практически только молекулами хлорофилла а, находящимися преимущественно в ФС II (Strasser et al., 1995). Хлорофилл b передает почти 100 % энергии возбуждения на хлорофилл а. Следовательно, флуоресценция излучается хлорофиллом а в сотни раз чаще, чем хлорофиллом b. Флуоресценции хлорофилла использовалась для оценки действия различных ингибиторов электронного транспорта в световой фазе фотосинтеза, таких как диурон (DCMU) (3-(3,4-дихлорфенил)-1,1 -диметилмочевины), паракват (^№-диметил-4,4'-дипиридил дихлорида) или нигерицин. DCMU использовали, чтобы блокировать электронный транспорт после Qa, комбинируя это воздействие с замораживанием

объекта до температуры 77 К. Такой подход оказался полезным в последние десятилетия исследований фотосинтетического аппарата (Strasser et а1., 2004).

668 нм

700 800

длина волны, X (нм)

Рисунок 5. Спектр флуоресценции хлорофилла (Гольцев с соавт., 2014).

В условиях очень низких температур (77 К) спектр излучения флуоресценции хлорофилла показывает ясные полосы, характерные для антенных комплексов ФС II и ФС I, давая информацию об обмене и распределении энергии между двумя фотосистемами (Strasser et а!., 2004). При температуре 77 К в спектре излучения флуоресценции наблюдаются три пика: 685, 695 и около 735 нм. Первые два относятся к ФС II, тогда как излучение при 735 нм происходит от ФС I. Величина каждого максимума флуоресценции хлорофилла при 77 К зависит от уровня фосфорилирования антенного комплекса ССКП. В состоянии 2 ССКП не фосфорилирован. В этом состоянии отношение интенсивности Фл хлорофилла при 685 и 695 нм к интенсивности флуоресценции при 735 нм значительно ниже, чем в состоянии 1, когда ССКП фосфорилирован (Гольцев с соавт., 2014).

В 1931 году Каутским и Хиршем впервые была описана обратная связь между активностью флуоресценции хлорофилла и фотосинтетического аппарата (при фиксированной потере тепла). Они заметили, что их соотношение позволяет нам использовать данные измерений параметров флуоресценции хлорофилла для

описания реакций фотосинтеза и, в частности, фотохимической эффективности ФС II. Один из распространенных флуорометрических методов заключается в определении доли энергии, используемой в фотохимических процессах (фотохимическое тушение) и энергии, которая теряется в виде тепла (нефотохимическое тушение), и на этой основе оценивать эффективность процесса преобразования энергии ФАР в реакциях световой фазы фотосинтеза. Выход флуоресценции хлорофилла (фр) определяется как отношение числа испускаемых фотонов флуоресценции к общему количеству поглощенных квантов ФАР. Это можно рассчитать по следующей формуле:

Фр = ——— , (1)

где фр - квантовый выход флуоресценции; к^ ка и кр - константы скоростей излучения квантов флуоресценции, внутренней конверсии энергии возбуждения в тепло и фотохимической реакции соответственно (БЬгаЬег е1 а1., 1995).

1.3. Природа быстрой флуоресценции хлорофилла растений

Индукция флуоресценции хлорофилла имеет место, когда после затемнения исследуемого фотосинтезирующего объекта в течение примерно 30 минут объект освещается (облучение в области ФАР) (Shreiber, 2004). Наблюдается внезапное увеличение флуоресценции хлорофилл а, а затем медленное снижение интенсивности индуцированной флуоресценции. Это явление впервые описал Каутский в 1931 году, поэтому оно называется «эффектом Каутского». Индукционная кривая флуоресценции представляет собой изменения эмиссии флуоресценции хлорофилла в фотосинтезирующем объекте (Strasser et al., 2010). Ее можно разделить на быструю фазу (около 1 с), которая включает в себя реакции световой фазы фотосинтеза, и медленную фазу (продолжающуюся несколько минут), в которой доминируют процессы, связанные с регуляцией ферментативных реакций по синтезу АТФ и НАДФН, необходимых для ассимиляции CO2 в строме хлоропластов (Гольцев с соавт., 2016).

В темноте все фотосинтетические реакционные центры «открыты» и могут быть возбуждены и все электронные переносчики ФС II находятся в окисленном состоянии (Погосян, 2006). Это условие меняется при освещении растения. На момент включения фотохимически активного освещения (AL, от англ. actinic light - доза света, которая вызывает фотохимические изменения) начинается быстрая фаза индукции флуоресценции. Интенсивность AL, как правило, определяется на уровне от 200 до 500 мкмоль квантовм-2-с-1. Даже за несколько наносекунд можно регистрировать быстрое нарастание интенсивности флуоресценции хлорофилла. Измерения значения флуоресценции хлорофилла в первой точке индукции должны быть завершены не более чем за 40 мкс (на индукционной кривой - точка O). Эта величина называется начальной флуоресценцией (Fo), которая в основном связана с потерями энергии в процессе ее переноса по пигментной антенне к реакционному центру ФС II. Увеличение выхода флуоресценции хлорофилла от F0 до Fp проходит в несколько этапов и зависит от

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Габбасова Дилара Тагировна, 2018 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Антал, Т. К. Исследование продукционных характеристик фитопланктона с помощью погружного флуоресцентного зонда: дис. канд. биол. наук: 03.02.08, 03.00.02/ Антал Тарас Корнелевич - М, 2000. - 125 с.

2. Габбасова, Д. Т. Использование параметров быстрой флуоресценции хлорофилла для оценки влияния ионов хромата на микроводоросли / Д. Т. Габбасова, Ф. Ф. Протопопов, Н. П. Тимофеев, Д. Н. Маторин // Биодиагностика и оценка качества природной среды: подходы, методы, критерии и эталоны сравнения в экотоксикологии: Материалы международного симпозиума и школы, МГУ, 25-28 октября 2016 г. - М.: ГЕОС, 2016. - С. 328 -330.

3. Габбасова, Д. Т. Изучение влияния бихромата калия на морские микроводоросли РЬаеоёас1у1иш МсогпиШш / Д. Т. Габбасова, Д. Н. Маторин, А. А. Алексеев, Н. П. Тимофеев // Конференция КИМО-2017. - М, 2017. - С. 334-335.

4. Габбасова, Д. Т. Оценка воздействия ионов хромата на морские микроводоросли РЬаеоёас1у1иш МсогпиШш / Д. Т. Габбасова, Д. Н. Маторин, И. В. Конюхов, Н. Х. Сейфуллина, Б. К. Заядан // Микробиология. - 2017. - Т. 86. - № 1. - С. 62-71.

5. Голохваст, К. С. Атмосферные взвеси и экология человека / К. С. Голохваст, П. Ф. Кику, Н. К. Христофорова // Экология человека. - 2012. - № 10. - С. 5-10.

6. Гольцев, В. Н. Использование переменной флуоресценции хлорофилла для оценки физиологического состояния фотосинтетического аппарата растений / В. Н. Гольцев, М. Х. Каладжи, М. Паунов, В. Баба, Т. Хорачек, Я. Мойски, С. И. Аллахвердиев // Физиология растений. - 2016. - Т. 63. - № 6. - С. 881-908.

7. Гольцев, В. Н. Переменная и замедленная флуоресценция хлорофилла а -теоретические основы и практическое приложение в исследовании растений / В. Н. Гольцев, М. Х. Каладжи, М. А. Кузманова, С. И. Аллахвердиев. - Ижевск: Институт компьютерных исследований, 2014. -220 с.

8. Долматов, В. Ю. Детонационные наноалмазы / В. Ю. Долматов. - Санкт-Петербург. Из-во: НПО «Профессионал», 2011. - 534 с.

9. Жмур, Н. С. Государственный и производственный контроль токсичности вод методами биотестирования в России. / Н. С. Жмур. - М.: Межд. Дом Сотр., 1997. - 116 с.

10. Заворуева, Е. Н. Лабильность первой фотосистемы фототрофов в различных условиях окружающей среды / Е. Н. Заворуева, В. В. Заворуев, С. П. Крум. -Красноярск: Сибирский федеральный университет, 2011. - 152 с.

11. Заядан, Б. К. Биомониторинг водных экосистем на основе микроводорослей / Б. К. Заядан, Д. Н. Маторин. - М.: Изд-во «Альтекс», 2015. - 252 с.

12. Ильяш, Л. В. Особенности пространственного распределения фитопланктона залива Нячанг Южно-Китайского моря в период интенсивных осадков / Л. В. Ильяш, Д. Н. Маторин // Океанология. - 2007. - Т. 47. - № 6. - С. 847-856.

13. Корнеев, Д. Ю. Информационные возможности метода индукции флуоресценции хлорофилла / Д. Ю. Корнеев. - К.: «Альтерпрес», 2002. - 188 с.

14. Куликова, Н. А. Защитное действие гуминовых веществ по отношению к растениям в водной и почвенной средах в условиях абиотических стрессов: дис. д-ра. биол. наук: 03.00.27, 03.02.08 / Куликова Наталья Александровна - М, 2008.

- 302 с.

15. Мамырбаев, А. А. Токсикология хрома и его соединений / А. А. Мамырбаев.

- Актобе, 2012. — 284 с.

16. Маторин, Д. Н. Действие фенолов на параметры флуоресценции хлорофилла и реакции Р700 зеленой водоросли БсепеёевшиБ чиаёпсаиёа / Д. Н. Маторин, С. Е. Плеханов, Л. Б. Братковская, О. В. Яковлева, А. А. Алексеев // Биофизика. - 2014. - Т. 59. - № 3. - С. 458-465.

17. Маторин, Д. Н. Флуоресценция хлорофилла для биодиагностики растений / Д. Н. Маторин, А. А. Алексеев. - Москва: «Альтекс», 2013. -400 с.

18. Маторин, Д. Н. Флуоресценция хлорофилла высших растений и водорослей / Д. Н. Маторин, А. Б. Рубин. - М. Ижевск: Институт компьютерных исследований, 2012. - 256 с.

19. Накани, Д. В. Действие цинка, хрома и кадмия на интенсивность фотосинтеза в краткосрочных экспериментах / Д. В. Накани, М. Н. Корсак // Биологические науки. - 1976. - № 9. - С. 23-28.

20. Новикова, Л. Н. Структурные особенности и биологическая активность гуминовых кислот угля / Л. Н. Новикова, Т. Е. Чеченина, Ю. Н. Яковлева, Р. М. Островская, Д. Ф. Кушнарев, В. А. Серышев // Почвоведение. - 2001. - № 3. - C. 333-337.

21. Осипов, В. А. Зависимость флуоресцентных параметров микроводорослей от факторов среды, включая антропогенные загрязнения дис. канд. биол. наук: 03.02.08, 03.00.02/ Осипов Владимир Алексеевич. - М, 2006.- 69 с.

22. Перминова, И. В. Гуминовые вещества в контексте зеленой химии / И. В. Перминова, Д. М. Жилин // Зеленая химия в России. М. - 2004. - С. 146-162.

23. Погосян, С. И. Способ флуорометрического определения параметров фотосинтеза фототрофных организмов, устройство для его осуществления и измерительная камера. / С. И. Погосян, Ю. В. Казимирко, Д. Н. Маторин, Г. Ю. Ризниченко, А. Б. Рубин. Патент 2354958, от 13.09.2006, зарегистрирован до 13.09.2026.

24. Плеханов, С. Е. Раннее токсическое действие цинка, кобальта и кадмия на фотосинтетическую активность зеленой водоросли Chlorella pyrenoidosa Chick S-39 / С. Е. Плеханов, Ю. К. Чемерис // Биологический бюллетень. - 2003. - Т. 30. -№ 5. - С. 506-511.

25. Рубин, А. Б. Биофизика / А. Б. Рубин. - М.-Ижевск: Изд-во ИКИ-РХД, 2013 Т. 1-3. - 968 с.

26. Руководство по определению методом биотестирования токсичности вод, донных отложений, загрязняющих веществ и буровых растворов. Министерство природных ресурсов РФ. РЭФИА. НИА. - М.: Природа, 2002. - 117 с.

27. Смуров, А. В. Основы экологической диагностики / А. В. Смуров. - Москва: Ойкос, 2003.- 188 с.

28. Терехова, В. А. Экотоксикологическая оценка биосорбента нефти с целью сертификации / В. А. Терехова, И. Б. Арчегова, Ф. М. Хабибуллина, В. Г. Пугачев, Л. Г. Тулянкин // Экология и промышленность России. - 2006. - № 3. - С. 34-37.

29. Терехова, В. А. Биотест-системы для задач экологического контроля / В. А. Терехова, В. М. Вавилова, Л. П. Воронина, Д. В. Гершкович, В. И. Ипатова, Е. Ф. Исакова, С. В. Котелевцев, Т. О. Попутникова, А. А. Рахлеева, Т. А. Самойлова, О. Ф Филенко // методические рекомендации по практическому использованию стандартизованных тест-культу - М. Доброе слово, 2014. - 48 с.

30. Тодоренко, Д. А. Характеристики световых реакций фотосинтеза при воздействии токсических веществ: дис. канд. биол. наук: 03.02.08, 03.00.02 / Тодоренко Дарья Алексеевна - М, 2017. - 129 с.

31. Тодоренко, Д. А. Изучение токсичности сульфата меди и наночастиц серебра с использованием флуоресценции микроводорослей Бсепеёевшш диаёпсаиёа / Д. А. Тодоренко, Д. Н. Маторин, А. А. Алексеев, Д. И. Тунгатарова, В. С. Орлова // Вестник РУДН, серия экология и безопасность жизнедеятельности. - 2014. - № 1. - С. 25-32.

32. Федосеева, Е. В. Практическая экотоксикология: оценка биочувствительности биотест-культур: Учебное пособие / Е. В. Федосеева, Н. Ю. Сапункова, В. А. Терехова // М.: ГЕОС, 2016. - 54 с.

33. Филенко, О. Ф. Водная токсикология / О. Ф. Филенко - М.: Изд. Черноголовка, 1988. - 156 с.

34. Христева, Л. А. Участие гуминовых кислот и других органических веществ в питании высших растений / Л. А. Христева // Почвоведение - 1953. - № 10. - С. 46-59.

35. Черных, Н. А. Экологический мониторинг токсикантов в биосфере / Н. А. Черных, С. Н. Сидоренко. - Изд-во Рос. ун-та дружбы народов, 2003.- 430 с.

36. Шайтан, К. В. Основы нано- и биобезопасности / К. В Шайтан. - М.: Изд. НОУДПО. Институт АйТи, 2011. -128 с.

37. Якименко, О. С. Применение гуминовых продуктов в РФ: результаты полевых опытов (обзор литературы) / О. С. Якименко // Живые и биокосные системы. - 2016. - № 18. - С. 4.

38. Allen, J. F. Induction of a Mehler reaction in chloroplast preparations by methyl viologen and by ferredoxin: effects on photosynthesis by intact chloroplasts / J. F. Allen // Plant Science Letters. - 1978. - V.12. - P.161 -167.

39. Ahamed, M. Silver nanoparticles induced heat shock protein 70, oxidative stress and apoptosis in Drosophila melanogaster/ M. Ahamed, R. Posgai, T. J. Gorey, M. Nielsen, S. M. Hussain, J. J. Rowe // Toxicology and Applied Pharmacology. - 2010. -V. 242. - №. 3. - P. 263-269.

40. Aizdaicher, N. A. The influence of hexavalent chromium salt on the population growth, cell morphology, and physiological parameters of the benthic microalga Attheya ussurensis Stonik, Orlova, Crawford, 2006 (BACILLARIOPHYTA) in culture / N. A. Aizdaicher, Markina Z. V. // Russian Journal of Marine Biology. - 2011. - V. 37. - №. 4. - P. 291-296.

41. Ali, N. Inhibition of photosystem II photochemistry by Cr is caused by the alteration of both D1 protein and oxygen evolving complex / N. Ali, D. Dewez, O. Didur, R. Popovic // Photosynthesis research. - 2006. - V. 89. - №. 2-3. - P. 81-87.

42. Ali, D. Sensitivity of freshwater pulmonate snail Lymnaea luteola L., to silver nanoparticles / D. Ali, P. G. Yadav, S. Kumar, H. Ali, S. Alarifi, A. Harrath // Chemosphere. - 2014. - V. 104. - P. 134-140.

43. Angel, B. M. The impact of size on the fate and toxicity of nanoparticulate silver in aquatic systems/ B. M. Angel, G. E. Batley, C. V. Jarolimek, N. J. Rogers //Chemosphere. - 2013. - V. 93. - №. 2. - P. 359-365.

44. Appenroth, D. Chromate nephrotoxicity in developing rats. Significance of Cr (VI) reduction in rat kidney tissue / D. Appenroth, M. Friedrich, K. H. Friese, H. Braunlich // Journal of trace elements and electrolytes in health and disease. - 1991. -

V. 5. - №. 1. - P. 53-57.

45. Appenroth, K. J. Multiple effects of Chromate on the photosynthetic apparatus of Spirodela polyrhiza as probed by OJIP chlorophyll a fluorescence measurements / K. J. Appenroth, J. Stockel, A. Srivastava, R. J. Strasser // Environmental Pollution. - 2001. - V. 115. - №. 1. - P. 49-64.

46. Austin, C. A. Distribution and accumulation of 10 nm silver nanoparticles in maternal tissues and visceral yolk sac of pregnant mice, and a potential effect on embryo growth / C. A. Austin, G. K. Hinkley, A. R. Mishra, Q. Zhang, T. H. Umbreit, M. W. Betz, B. Wildt, B. J. Casey, S. Francke-Carroll, S. M. Hussain, S. M. Roberts, K. M. Brown, P. L. Goering // Nanotoxicology. - 2016. - V. 10. - №. 6. - P. 654-661.

47. Babu, T. S. Synergistic effects of a photooxidized polycyclic aromatic hydrocarbon and copper on photosynthesis and plant growth: evidence that in vivo formation of reactive oxygen species is a mechanism of copper toxicity / T. S. Babu, J. B. Marder, S. Tripuranthakam, D. G. Dixon, B. M Greenberg // Environmental Toxicology and Chemistry. - 2001. - V. 20. - №. 6. - P. 1351-1358.

48. Badun, G. A. Increase in the specific radioactivity of tritium-labeled compounds obtained by tritium thermal activation method / G. A. Badun, M. G. Chernysheva, A. L. Ksenofontov // Radiochimica Acta International journal for chemical aspects of nuclear science and technology. - 2012. - V. 100. - №. 6. - P. 401-408.

49. Baldotto, L. E. B. Performance ofVitoria'pineapple in response to humic acid application during acclimatization / L. E. B. Baldotto, M. A. Baldotto, V. B. Giro, L. P. Canellas, F. L. Olivares, R. Bressan-Smith // Revista Brasileira de Ciencia do Solo. -2009. - V. 33. - №. 4. - P. 979-990.

50. Basiuk, V. A. Systemic phytotoxic impact of as-prepared carbon nanotubes in long-term assays: a case study of Parodia ayopayana (Cactaceae) / V. A. Basiuk, E. V. Basiuk, S. Shishkova, J. G. Dubrovsky // Science of Advanced Materials. - 2013. - V. 5. - №. 10. - P. 1337-1345.

51. Barnard, A. S. Diamond standard in diagnostics: nanodiamond biolabels make their mark / A. S. Barnard //Analyst. - 2009. - V. 134. - №. 9. - P. 1751-1764.

52. Bassi, M. Effects of chromium (VI) on two freshwater plants, Lemna minor and Pistia stratiotes. 1. Morphological observations / M. Bassi, M. G. Corradi, M. Realini // Cytobiosis. - 1990. - V. 62. - №. 248. - P. 27-38.

53. Batista, D. How do physicochemical properties influence the toxicity of silver nanoparticles on freshwater decomposers of plant litter in streams? / D. Batista, C. Pascoal, F. Cassio // Ecotoxicology and environmental safety. - 2017. - V. 140. - P. 148-155.

54. Behra, R. Bioavailability of silver nanoparticles and ions: from a chemical and biochemical perspective / R. Behra, L. Sigg, M. J. Clift, F. Herzog, M. Minghetti, B. Johnston, B. Rothen-Rutishauser // Journal of the Royal Society Interface. - 2013. - V. 10. - №. 87. - P. 20130396.

55. Bishnoi, N. R. Effect of chromium on photosynthesis, respiration and nitrogen fixation in pea (Pisum sativum L.) seedlings / N. R. Bishnoi, L. K. Chugh, S. K. Sawhney // Journal of plant physiology. - 1993. - V. 142. - №. 1. - P. 25-30.

56. Blaser, S. A. Estimation of cumulative aquatic exposure and risk due to silver: contribution of nano-functionalized plastics and textiles / S. A. Blaser, M. Scheringer, M. MacLeod, K. Hungerbuhler // Science of the total environment. - 2008. - V. 390. -№. 2-3. - P. 396-409.

57. Blinova, I. Toxicity of two types of silver nanoparticles to aquatic crustaceans Daphnia magna and Thamnocephalus platyurus / I. Blinova, J. Niskanen, P. Kajankari, L. Kanarbik, A. Kakinen, H. Tenhu, A. Kahru // Environmental Science and Pollution Research. - 2013. - V. 20. - №. 5. - P. 3456-3463.

58. Bronick, C. J. Soil structure and management: a review / C. J. Bronick, R. Lal // Geoderma. - 2005. - V. 124. - №. 1. - P. 3-22.

59. Bulychev, A. A. Effects of far-red light on fluorescence induction in infiltrated pea leaves under diminished ApH and A9 components of the proton motive force / A. A. Bulychev, V. A. Osipov, D. N. Matorin, W. J. Vredenberg // J. Bioenerg. Biomembr. - 2013. - V. 45. - №. 1. - P. 37-45.

60. Cacco, G. Effect of nitrate and humic substances of different molecular size on

kinetic parameters of nitrate uptake in wheat seedlings / G. Cacco, A. Giovanni, G. Emilio, A. Gelsomino, M. Sidari // J. Plant Nutr. Soil Sci. - 2000 - V.163 - №3 - P. 313-320.

61. Calvo, P. Agricultural uses of plant biostimulants / P. Calvo, L. Nelson, J. W. Kloepper // Plant and Soil. - 2014. - V. 383. - №. 1-2. - P. 3-41.

62. Canellas, L. P. Physiological responses to humic substances as plant growth promoter / L. P. Canellas, F. L. Olivares //Chemical and Biological Technologies in Agriculture. - 2014. - V. 1. - №. 1. - P. 3.

63. Canellas, L. P. Humic acids isolated from earthworm compost enhance root elongation, lateral root emergence, and plasma membrane H+-ATPase activity in maize roots / L. P. Canellas, F. L. Olivares, A. L. Okorokova-Façanha, A. R. Facanha // Plant physiology. - 2002. - V. 130. - №. 4. - P. 1951-1957.

64. Carletti, P. Protein expression changes in maize roots in response to humic substances / P. Carletti, A. Masi, B. Spolaore, P. P. De Laureto, M. De Zorzi, L. Turetta, S. Nardi // Journal of chemical ecology. - 2008. - V. 34. - №. 6. - P. 804.

65. Cesco, S. Uptake of 5 9 Fe from soluble 5 9 Fe-humate complexes by cucumber and barley plants / S. Cesco, M. Nikolic, V. Romheld, Z. Varanini, R. Pinton // Plant and Soil. - 2002. - V. 241. - №. 1. - P. 121-128.

66. Chang, H. C. Development and use of fluorescent nanodiamonds as cellular markers / H. C. Chang // Nanodiamonds. - Springer US, 2010. - P. 127-150.

67. Chang, Y. R. Mass production and dynamic imaging of fluorescent nanodiamonds / Y. R. Chang, H. Y. Lee, K. Chen, C. C. Chang, D. S. Tsai, C. C. Fu, H. C. Chang // Nature nanotechnology. - 2008. - V. 3. - №. 5. - P. 284-288.

68. Chen, Y. Effects of humic substances on plant growth / Y. Chen, T. Aviad //Humic substances in soil and crop sciences: Selected readings. - 1990. - №. humicsubstances. - P. 161-186.

69. Chernysheva, M.G. Humic substances alter the uptake and toxicity of nanodiamonds in wheat seedlings / M. G. Chernysheva, I.Yu. Myasnikov, G.A. Badun,

D.N. Matorin, D.T. Gabbasova, A.I. Konstantinov, V.I. Korobkov, N.A. Kulikova // Journal of Soils and Sediments. - 2016. - P. 1-12.

70. Choi, O. Role of sulfide and ligand strength in controlling nanosilver toxicity / O. Choi, T. E. Clevenger, B. Deng, R. Y. Surampalli, L. Ross Jr, Z. Hu // Water research. -2009. - V. 43. - №. 7. - P. 1879-1886.

71. Choi, J. E. Induction of oxidative stress and apoptosis by silver nanoparticles in the liver of adult zebrafish/ J. E. Choi, S. Kim, J. H. Ahn, P. Youn, J. S. Kang, K. Park, D. Y. Ryu // Aquatic Toxicology. - 2010. - V. 100. - №. 2. - P. 151-159.

72. Chung, K. H. Vertical distribution and characteristics of soil humic substances affecting radionuclide distribution / K. H. Chung, G. S. Choi, H. S. Shin, C. W. Lee // Journal of environmental radioactivity. - 2005. - V. 79. - №. 3. - P. 369-379.

73. Collin, B. Environmental release, fate and ecotoxicological effects of manufactured ceria nanomaterials / B. Collin, M. Auffan, A. C. Johnson, I. Kaur, A. A. Keller, A. Lazareva, J. C. White // Environmental Science: Nano. - 2014. - V. 1. - №. 6. - P. 533-548.

74. Conine, A. L.Variable toxicity of silver nanoparticles to Daphnia magna: effects of algal particles and animal nutrition / A. L. Conine, P. C. Frost // Ecotoxicology. -2017. - V. 26. - №. 1. - P. 118-126.

75. Contreras, E. Q. Size-dependent impacts of silver nanoparticles on the lifespan, fertility, growth, and locomotion of Caenorhabditis elegans / E. Q. Contreras, H. L. Puppala, G. Escalera, W. Zhong, V. L. Colvin //Environmental toxicology and chemistry. - 2014. - V. 33. - №. 12. - P. 2716-2723.

76. Croteau, M. N. Silver bioaccumulation dynamics in a freshwater invertebrate after aqueous and dietary exposures to nanosized and ionic Ag / M. N. Croteau, S. K. Misra, S. N. Luoma, E. Valsami-Jones // Environmental science and technology. -2011. - V. 45. - №. 15. - P. 6600-6607.

77. Croue, J. P. Characterization and copper binding of humic and nonhumic organic matter isolated from the South Platte River: Evidence for the presence of nitrogenous binding site / J. P. Croue, M. F. Benedetti, D. Violleau, J. Leenheer // Environ. Sci.

Technol. - 2003 - V.37 - №2 - P. 328-336.

78. Dahoumane, S. A. Protein-functionalized hairy diamond nanoparticles / S. A. Dahoumane, M. N. Nguyen, A. Thorel, J. P. Boudou, M. M. Chehimi, C. Mangeney // Langmuir. - 2009. - V. 25. - №. 17. - P. 9633-9638.

79. Dallakyan, G. A. Inactivation of potassium dichromate toxic action on the growth of microalgae using shungite / G. A. Dallakyan, S. I. Pogosyan, V. I. Ipatova, I. V. Ageeva // Toxicological Review. - 2014. - V. 128. - №. 5. - P. 34-38.

80. Dantas, B. F. Effect of humic substances and weather conditions on leaf biochemical changes of fertigated guava tree, during orchard establishment / B. F. Dantas, M. S. Pereira, , L. D. S. Ribeiro, J. L. T. Maia, L. H. Bassoi // Revista Brasileira de Fruticultura. - 2007. - V. 29. - №. 3. - P. 632-638.

81. Delgado, A. Phosphorus fertilizer recovery from calcareous soils amended with humic and fulvic acids / A. Delgado, A. Madrid, S. Kassem, L. Andreu, M. D. C. Del Campillo // Plant and Soil. - 2002. - V. 245. - №. 2. - P. 277-286.

82. Didur, O. Alteration of chromium effect on photosystem II activity in Chlamydomonas reinhardtii cultures under different synchronized state of the cell cycle / O. Didur, D. Dewez, R. Popovic // Environmental Science and Pollution Research. -2013. - V. 20. - №. 3. - P. 1870-1875.

83. Dimkpa, C. O. Silver nanoparticles disrupt wheat (Triticum aestivum L.) growth in a sand matrix / C. O. Dimkpa, J. E. McLean, N. Martineau, D. W. Britt, R. Haverkamp, A. J. Anderson // Environmental science and technology. - 2013. - V. 47. - №. 2. - P. 1082-1090.

84. Dobbss, L. B. Bioactivity of chemically transformed humic matter from vermicompost on plant root growth / L. B.Dobbss, L. Pasqualoto Canellas, F. Lopes Olivares, N. Oliveira Aguiar, L. E. P. Peres, M. Azevedo, A. R. Facanha // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2010. - V. 58. - №. 6. - P. 3681-3688.

85. Doody, M. A. Differential antimicrobial activity of silver nanoparticles to bacteria Bacillus subtilis and Escherichia coli, and toxicity to crop plant Zea mays and beneficial B. subtilis-inoculated Z. mays / M. A. Doody, D. Wang, H. P. Bais, Y. Jin //

Journal of Nanoparticle Research. - 2016. - V. 18. - №. 10. - P. 290.

86. Dudal, Y. Accounting for natural organic matter in aqueous chemical equilibrium models: a review of the theories and applications / Y. Dudal, F. Gerard // Earth Sci. Rev. - 2004 - V.66 - P. 199-216.

87. Dworak, N. Genotoxic and mutagenic activity of diamond nanoparticles in human peripheral lymphocytes in vitro / N. Dworak, M. Wnuk, J. Zebrowski, G. Bartosz, A. Lewinska // Carbon. - 2014. - V. 68. - P. 763-776.

88. Efroymson, R. Toxicological benchmarks for screening contaminants of potential concern for effects on terrestrial plants: 1997 Revision / R. Efroymson // Oak Ridge National Laboratory, US Department of Energy. Oak Ridge, Tennessee. November. -1997.

89. Eyheraguibel, B. Effects of humic substances derived from organic waste enhancement on the growth and mineral nutrition of maize / B. Eyheraguibel, J. Silvestre, P. Morard // Bioresource technology. - 2008. - V. 99. - №. 10. - P. 42064212.

90. Evangelou, M. W. H. The influence of humic acids on the phytoextraction of cadmium from soil / M. W. H. Evangelou, H. Daghan, A. Schaeffer // Chemosphere. -2004. - V. 57. - №. 3. - P. 207-213.

91. Fabrega, J. Silver nanoparticles: behaviour and effects in the aquatic environment / J. Fabrega, S. N. Luoma, C. R. Tyler, T. S. Galloway, J. R. Lead // Environment international. - 2011. - V. 37. - №. 2. - P. 517-531.

92. Fabrega, J. Silver nanoparticle impact on bacterial growth: effect of pH, concentration, and organic matter / J. Fabrega, S. R. Fawcett, J. C. Renshaw, J. R. Lead //Environmental science and technology. - 2009. - V. 43. - №. 19. - P. 7285-7290.

93. Fu, C. C. Characterization and application of single fluorescent nanodiamonds as cellular biomarkers / C. C. Fu, H. Y. Lee, K. Chen, T. S. Lim, H. Y. Wu, P. K. Lin, W. Fann // Proceedings of the National Academy of Sciences. - 2007. - V. 104. - №. 3. -P. 727-732.

94. Gao, J. I. E. Dispersion and toxicity of selected manufactured nanomaterials in natural river water samples: effects of water chemical composition / J. I. E. Gao, S. Youn, A. Hovsepyan, V. L. Llaneza, Y. Wang, G. Bitton, J. C. J. Bonzongo // Environmental science and technology. - 2009. - V. 43. - №. 9. - P. 3322-3328.

95. Garcia, A. C. Involvement of hormone-and ros-signaling pathways in the beneficial action of humic substances on plants growing under normal and stressing conditions / A. C. Garcia, M. Olaetxea, L. A. Santos, V. Mora, R. Baigorri, M. Fuentes, J. M. Garcia-Mina // BioMed research international. - 2016. - V. 4. - №. 5. - P. 16-22.

96. Garcia-Mina, J. M. Metal-humic complexes and plant micronutrient uptake: a study based on different plant species cultivated in diverse soil types / J. M. Garcia-Mina, M. C. Antolin, M. Sanchez-Diaz //Plant and Soil. - 2004. - V. 258. - №. 1. - P. 57-68.

97. Gholami, H. The alleviating effects of humic substances on photosynthesis and yield of Plantago ovate in salinity conditions / H. Gholami, S. Samavat, Z. O. Ardebili // International Research Journal of Applied and Basic Sciences. - 2013. - V. 4. - №. 7. -P. 1683-1686.

98. Giloni-Lima, P. C. A study of the effects of chromium exposure on the growth of Pseudokirchneriella subcapitata (Korshikov) hindak evaluated by central composite design and response surface methodology / P. C. Giloni-Lima, D. Delello, M. L. Cremonez, M. N. Eler, V. A. Lima, E. L. Espindola // Ecotoxicology. - 2010. - V. 19. -№. 6. - P. 1095-1101.

99. Gimrin, K. M. Phosphorus and humic acid application alleviate salinity stress of pepper seedling / K. M. Gimrin, O. Turkmen, M. Turan, B. Tuncer // African Journal of Biotechnology. - 2010. - V. 9. - №. 36. - P. 34-39.

100. Goltsev, V. Delayed fluorescence in photosynthesis / V. Goltsev, I. Zaharieva, P. Chernev, R.J. Strasser // Photosynth. Res. - 2009. - V. 101. -№. 2-3. - P. 217-232.

101. Gottschalk, F. Environmental concentrations of engineered nanomaterials: review of modeling and analytical studies / F. Gottschalk, T. Y. Sun, B. Nowack // Environmental Pollution. - 2013. - V. 181. - P. 287-300.

102. Graber, E. R. Atmospheric HULIS: How humic-like are they? A comprehensive and critical review / E. R. Graber, Y. Rudich // Atmospheric Chemistry and Physics. -2006. - V. 6. - №. 3. - P. 729-753.

103. Gunsolus, I. L. Effects of humic and fulvic acids on silver nanoparticle stability, dissolution, and toxicity / I. L. Gunsolus, M. P. Mousavi, K. Hussein, P. Buhlmann, C. L. Haynes // Environ. Sci. Technol. - 2015. - V. 49. - №. 13. - P. 8078-8086.

104. Guppy, C. N. Competitive sorption reactions between phosphorus and organic matter in soil: a review / C. N. Guppy, N. W. Menzies, P. W. Moody, F. P. Blamey // Soil Research. - 2005. - V. 43. - №. 2. - P. 189-202.

105. Hager, A. Role of the plasma membrane H+-ATPase in auxin-induced elongation growth: historical and new aspects/ A. Hager // Journal of plant research. - 2003. - V. 116. - №. 6. - P. 483-505.

106. Halim, M. Potential availability of heavy metals to phytoextraction from contaminated soils induced by exogenous humic substances / M. Halim, P. Conte, A. Piccolo // Chemosphere. - 2003. - V. 52. - №. 1. -P. 265-275.

107. Hamers, R. J. Molecular and biomolecular monolayers on diamond as an interface to biology / R. J. Hamers, J. E. Butler, T. Lasseter, B. M. Nichols, J. N. Russell, K. Y. Tse, W. Yang // Diamond and related materials. - 2005. - V. 14. - №. 3. - P. 661-668.

108. Hartl, A. Protein-modified nanocrystalline diamond thin films for biosensor applications / A. Hartl, E. Schmich, J. A. Garrido, J. Hernando, S. C. Catharino, S. Walter, M. Stutzmann // Nature materials. - 2004. - V. 3. - №. 10. - P. 736.

109. Hens, S. C. Nanodiamond bioconjugate probes and their collection by electrophoresis / S. C. Hens, G. Cunningham, T. Tyler, S. Moseenkov, V. Kuznetsov, O. Shenderova // Diamond and related materials. - 2008. - V. 17. - №. 11. -P. 18581866.

110. Hong, S. Interaction of poly (amidoamine) dendrimers with supported lipid bilayers and cells: hole formation and the relation to transport / S. Hong, A. U. Bielinska, A. Mecke, B. Keszler, J. L. Beals, X. Shi, M. M. Banaszak Holl //

Bioconjugate chemistry. - 2004. - V. 15. - №. 4. - P. 774-782.

111. Hope, A. B. Electron transfers amongst cytochrome f, plastocyanin and photosystem I: kinetics and mechanisms / A. B. Hope // Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics. - 2000. - V. 1456. - №. 1. - P. 5-26.

112. Horcsik, Z. T. Effect of chromium on photosystem 2 in the unicellular green alga, Chlorella pyrenoidosa / Z. T. Horcsik, L. Kovacs, R. Laposi, I. Meszaros, G. Lakatos, G. Garab // Photosynthetica. - 2007. - V. 45. - №. 1. - P. 65-69.

113. Huang, L. C. L. Adsorption and immobilization of cytochrome c on nanodiamonds / L. C. L. Huang, H. C. Chang //Langmuir. - 2004. - V. 20. - №. 14. - P. 5879-5884.

114. Hui, Y. Y. Quantifying the number of color centers in single fluorescent nanodiamonds by photon correlation spectroscopy and Monte Carlo simulation / Y. Y. Hui, Y. R. Chang, T. S. Lim, H. Y. Lee, W. Fann, H. C. Chang //Applied Physics Letters. - 2009. - V. 94. - №. 1. - P. 013104.

115. Hui, Y. Y. Nanodiamonds for optical bioimaging / Y. Y. Hui, C. L. Cheng, H. C. Chang // Journal of Physics D: Applied Physics. - 2010. - V. 43. - №. 37. - P. 374021.

116. Inaba, S. Effects of dissolved organic matter on toxicity and bioavailability of copper for lettuce sprouts / S. Inaba, C. Takenaka // Environment International. - 2005.

- V. 31. - №. 4. - P. 603-608.

117. Jassby, A. D. Mathematical formulation of the relationship between photosynthesis and light for phytoplankton/ A. D. Jassby, T. Platt // Limnol. Oceanogr.

- 1976. - V.21. - P.540-547.

118. Jiang, H. S. Physiological analysis of silver nanoparticles and AgNO3 toxicity to Spirodela polyrhiza / H. S. Jiang, M. Li, F. Y. Chang, W. Li, L. Y. Yin // Environmental Toxicology and Chemistry. - 2012. - V. 31. - №. 8. - P. 1880-1886.

119. Jindo, K. Root growth promotion by humic acids from composted and non-composted urban organic wastes / K. Jindo, S. A. Martim, E. C. Navarro, F. Perez-Alfocea, T. Hernandez, C. Garcia, L. P. Canellas // Plant and Soil. - 2012. - V. 353. -№. 1-2. - P. 209-220.

120. Jones, M. N. Colloidal properties of humic substances / M.N. Jones, N.D. Bryan // Adv. Colloid Interface Sci. - 1998 - V.78 - P. 1-48.

121. Juganson, K. Mechanisms of toxic action of silver nanoparticles in the protozoan Tetrahymena thermophila: From gene expression to phenotypic events / K. Juganson, M. Mortimer, A. Ivask, S. Pucciarelli, C. Miceli, K. Orupold, A. Kahru // Environmental Pollution. - 2017. - V. 225. - P. 481-489.

122. Kang, S. J. Titanium dioxide nanoparticles trigger p53-mediated damage response in peripheral blood lymphocytes / S. J. Kang, B. M. Kim, Y. J. Lee, H. W. Chung // Environmental and molecular mutagenesis. - 2008. -V. 49. - №. 5. - P. 399-405.

123. Kato, H. Preparation and characterization of stable dispersions of carbon black and nanodiamond in culture medium for in vitro toxicity assessment / H. Kato, A. Nakamura, M. Horie, S. Endoh, K. Fujita, H. Iwahashi, S. Kinugasa // Carbon. - 2011.

- V. 49. - №. 12. - P. 3989-3997.

124. Kaur, I. P. Potential of solid lipid nanoparticles in brain targeting / I. P. Kaur, R. Bhandari, S. Bhandari, V. Kakkar // Journal of Controlled Release. - 2008. - V. 127. -№. 2. - P. 97-109.

125. Kaveh, R. Changes in Arabidopsis thaliana gene expression in response to silver nanoparticles and silver ions / R. Kaveh, Y. S. Li, S. Ranjbar, R. Tehrani, C. L. Brueck, B. Van Aken // Environmental science and technology. - 2013. - V. 47. - №. 18. - P. 10637-10644.

126. Kennedy, A. J. Impact of organic carbon on the stability and toxicity of fresh and stored silver nanoparticles / A. J. Kennedy, M. A. Chappell, A. J. Bednar, A. C. Ryan, J. G. Laird, J. K. Stanley, J. A. Steevens // Environmental science and technology. - 2012.

- V. 46. - №. 19. - P. 10772-10780.

127. Khaled, H. Effect of different levels of humic acids on the nutrient content, plant growth, and soil properties under conditions of salinity / H. Khaled, H. A. Fawy // Soil and Water Research. - 2011. - V. 6. - №. 1. - P. 21-29.

128. Khalida, Z. Use of chlorophyll fluorescence to evaluate the effect of chromium on activity photosystem II at the alga Scenedesmus obliquus / Z. Khalida, A. Youcef, B.

Zitouni, Z. Mohammed, P. Radovan // Int. J. Res. Rev. Appl. Sci. - 2012. - V. 12. - №. 2. - P. 304-314.

129. Khan, S. Influence of lead and cadmium on the growth and nutrient concentration of tomato (Lycopersicum esculentum) and egg-plant (Solanum melongena) / S. Khan, N. N. Khan //Plant and Soil. - 1983. - V. 74. - №. 3. -P. 387-394.

130. Kim, S. Oxidative stress-dependent toxicity of silver nanoparticles in human hepatoma cells / S. Kim, J. E. Choi, J. Choi, K. H. Chung, K. Park, J. Yi, D. Y. Ryu // Toxicology in vitro. - 2009. - V. 23. - №. 6. - P. 1076-1084.

131. Kim, J. S. Antimicrobial effects of silver nanoparticles / J. S. Kim, E. Kuk, K. N. Yu, J. H. Kim, S. J. Park, H. J. Lee, Y. K. Kim // Nanomedicine: Nanotechnology, Biology and Medicine. - 2007. - V. 3. - №. 1. - P. 95-101.

132. Kim, S. Silver nanoparticle-induced oxidative stress, genotoxicity and apoptosis in cultured cells and animal tissues / S. Kim, D. Y. Ryu // Journal of Applied Toxicology. - 2013. - V. 33. - №. 2. - P. 78-89.

133. Klaine, S. J. Nanomaterials in the environment: behavior, fate, bioavailability, and effects / S. J. Klaine, P. J. Alvarez, G. E. Batley, T. F. Fernandes, R. D. Handy, D. Y. Lyon, J. R. Lead //Environmental toxicology and chemistry. - 2008. - V. 27. - №. 9. - P. 1825-1851.

134. Kong, X. L. High-affinity capture of proteins by diamond nanoparticles for mass spectrometric analysis / X. L. Kong, L. C. L. Huang, C. M. Hsu, W. H. Chen, C. C. Han, H. C. Chang // Analytical chemistry. - 2005. - V. 77. - №. 1. - P. 259-265.

135. Kulikova, N. A. Estimation of uptake of humic substances from different sources by Escherichia coli cells under optimum and salt stress conditions by use of tritiumlabeled humic materials / N. A. Kulikova, I. V. Perminova, G. A. Badun, M. G. Chernysheva, O. V. Koroleva, E. A. Tsvetkova // Applied and environmental microbiology. - 2010. - V. 76. - №. 18. - P. 6223-6230.

136. Kulikova, N. A. Mitigating activity of humic substances: direct influence on biota / N. A. Kulikova, E. V. Stepanova, O. V. Koroleva // Use of humic substances to remediate polluted environments: from theory to practice. - Springer, Dordrecht, 2005.

- P. 285-309.

137. Kungolos, A. Bioavailability and toxicity of heavy metals in the presence of natural organic matter / A. Kungolos, P. Samaras, V. Tsiridis, M. Petala, G. Sakellaropoulos // Journal of Environmental Science and Health Part A. - 2006. - V. 41. - №. 8. - P. 1509-1517.

138. Kwak, J. I. Multispecies toxicity test for silver nanoparticles to derive hazardous concentration based on species sensitivity distribution for the protection of aquatic ecosystems / J. I. Kwak, R. Cui, S. H. Nam, S. W. Kim, Y. Chae, Y. J. An // Nanotoxicology. - 2016. - V. 10. - №. 5. - P. 521-530.

139. Lazar, D. The polyphasic chlorophyll a fluorescence rise measured under high intensity of exciting light / D. Lazar //Functional Plant Biology. - 2006. - V. 33. - №. 1.

- P. 9-30.

140. Lazar, D. Models of chlorophyll a fluorescence transients / D. Lazar, G. Schansker // Photosynthesis in silico. - Springer, Dordrecht. - 2009. - P. 85-123.

141. Lead J. R., Wilkinson K. J. Aquatic colloids and nanoparticles: current knowledge and future trends / J. R. Lead, K. J. Wilkinson //Environmental Chemistry. -2006. - V. 3. - №. 3. - P. 159-171.

142. Leclerc, S. Bioaccumulation of Nanosilver by Chlamydomonas reinhardtii Nanoparticle or the Free Ion? / S. Leclerc, K. J. Wilkinson // Environmental science and technology. - 2013. - V. 48. - №. 1. - P. 358-364.

143. Lima, R. Silver nanoparticles: a brief review of cytotoxicity and genotoxicity of chemically and biogenically synthesized nanoparticles / R. Lima, A. B. Seabra, N. Duran // Journal of Applied Toxicology. - 2012. - V. 32. - №. 11. - P. 867-879.

144. Liu, J. Ion release kinetics and particle persistence in aqueous nano-silver colloids / J. Liu, R. H. Hurt // Environ. Sci. Technol. - 2010. - V. 44. - №. 6. - P. 2169-2175.

145. Liu, K. K. Biocompatible and detectable carboxylated nanodiamond on human cell / K. K. Liu, C. L. Cheng, C. C. Chang, J. I. Chao // Nanotechnology. - 2007. - V. 18. - №. 32. - P. 325102.

146. Liu, Q. Damage of PS II during senescence of Spirodela polyrrhiza explants under long-day conditions and its prevention by 6-benzyladenine / Q. Liu, Y. Zhu, H. Tao, N. Wang, Y. Wang // Journal of plant research. - 2006. - V. 119. - №. 2. - P. 145152.

147. Long, T. C. Nanosize titanium dioxide stimulates reactive oxygen species in brain microglia and damages neurons in vitro / T. C. Long, J. Tajuba, P. Sama, N. Saleh, C. Swartz, J. Parker, B. Veronesi // Environmental Health Perspectives. - 2007. - V. 115. - №. 11. - P. 1631.

148. Lupinkova, L. Oxidative Modifications of the Photosystem II D1 Protein by Reactive Oxygen Species: From Isolated Protein to Cyanobacterial Cells / L. Lupinkova, J. Komenda // Photochemistry and Photobiology. - 2004. - V. 79. - №. 2. -P. 152-162.

149. Malcom, R. E. Humic substances and phosphatase activities in plant tissues / R.E. Malcom, D. Vaughan // Soil Biol. Biochem. - 1979 - V.11 - P. 65-72.

150. Marcon, L. Cellular and in vivo toxicity of functionalized nanodiamond in Xenopus embryos / L. Marcon, F. Riquet, D. Vicogne, S. Szunerits, J. F. Bodart, R. Boukherroub // Journal of Materials Chemistry. - 2010. - V. 20. - №. 37. - P. 80648069.

151. Masciandaro, G. Humic substances to reduce salt effect on plant germination and growth / G. Masciandaro, B. Ceccanti, V. Ronchi, S. Benedicto, L. Howard // Communications in soil science and plant analysis. - 2002. - V. 33. - №. 3-4. - P. 365378.

152. Matorin, D. N. Effect of silver nanoparticles on the parameters of chlorophyll fluorescence and P700 reaction in the green alga Chlamydomonas reinhardtii / D. N. Matorin, D. A. Todorenko, N. K. Seifullina, B. K. Zayadan, A. B. Rubin // Microbiology. - 2013. - V. 82. - №. 6. - P. 809-814.

153. Maynard, A. D. Safe handling of nanotechnology / A. D. Maynard, R. J. Aitken, T. Butz, V. Colvin, K. Donaldson, G. Oberdorster, S. S. Tinkle // Nature. - 2006. - V. 444. - №. 7117. - P. 267.

154. McGuinness, L. P. Quantum measurement and orientation tracking of fluorescent nanodiamonds inside living cells / L. P. McGuinness , Y. Yan, A.Stacey, D. A. Simpson, L. T. Hall, D. Maclaurin, R. E. Scholten // Nature nanotechnology. - 2011. -V. 6. - №. 6. - P. 358-363.

155. Mendonc, E. Effects of diamond nanoparticle exposure on the internal structure and reproduction of Daphnia magna / E. Mendonc, M. Diniz, L. Silva, I. Peres, L. Castro, J. B. Correia, A. Picado // Journal of hazardous materials. - 2011. - V. 186. -№. 1. - P. 265-271.

156. Merdy, P. Modeling metal-particle interactions with an emphasis on natural organic matter / P. Merdy, S. Huclier, L.K. Koopal // Environ. Sci. Technol. - 2006 - P. 7954-7466.

157. Mogilnaya, O. A. Growth and bioluminescence of luminous bacteria under the action of aflatoxin B1 before and after its treatment with nanodiamonds / O. A. Mogilnaya //Applied biochemistry and microbiology. - 2010. - V. 46. - №. 1. - P. 3337.

158. Mohan, N. In vivo imaging and toxicity assessments of fluorescent nanodiamonds in Caenorhabditis elegans / N. Mohan, C. S. Chen, H. H. Hsieh, Y. C. Wu, H. C. Chang // Nano letters. - 2010. - V. 10. - №. 9. - P. 3692-3699.

159. Mohanty, P. Application of low temperatures during photoinhibition allows characterization of individual steps in photodamage and the repair of photosystem II / P. Mohanty, S. I. Allakhverdiev, N. Murata // Photosynthesis research. - 2007. - V. 94. -№. 2-3. - P. 217-224.

160. Montemurro, F. Anaerobic digestates application on fodder crops: effects on plant and soil / F. Montemurro, S. Canali, G. Convertini, D. Ferri, F. Tittarelli, C. Vitti // Agrochimica. - 2008. - V. 52. - №. 5. - P. 297-312.

161. Moreda-Pineiro, A. New trends involving the use of ultrasound energy for the extraction of humic substances from marine sediments / A. Moreda-Pineiro, A. Bermejo-Barrera, P. Bermejo-Barrera // Analytica Chimica Acta. - 2004. - V. 524. -№. 1. - P. 97-107.

162. Morsomme, P. The plant plasma membrane H+-ATPase: structure, function and regulation / P. Morsomme, M. Boutry // Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Biomembranes. - 2000. - V. 1465. - №. 1. -P. 1-16.

163. Mosley, R. The effects of humates on remediation of hydrocarbon and salt contaminated soils / R. Mosley, I. Morris- Mosley // 5th International Petroleum Environmental Conference, New Mexico. - 1998. - P. 5-14.

164. Mouneyrac, C. Fate and effects of metal-based nanoparticles in two marine invertebrates, the bivalve mollusc Scrobicularia plana and the annelid polychaete Hediste diversicolor / C. Mouneyrac, P. E. Buffet, L. Poirier, A. Zalouk-Vergnoux, M. Guibbolini, C. Risso-de Faverney, H. Perrein-Ettajni // Environmental Science and Pollution Research. - 2014. - V. 21. - №. 13. - P. 7899-7912.

165. Muscolo, A. IAA detection in humic substances / A. Muscolo, S. Cutrupi, S. Nardi //Soil Biology and Biochemistry. - 1998. - V. 30. - №. 8. - P. 1199-1201.

166. Muscolo, A. The auxin-like activity of humic substances is related to membrane interactions in carrot cell cultures / A. Muscolo, M. Sidari, O. Francioso, V. Tugnoli, S. Nardi // Journal of chemical ecology. - 2007. - V. 33. - №. 1. - P. 115-129.

167. Nair, P. M. G. Physiological and molecular level effects of silver nanoparticles exposure in rice (Oryza sativa L.) seedlings / P. M. G. Nair, I. M. Chung // Chemosphere. - 2014. - V. 112. - P. 105-113.

168. Nardi, S. Physiological effect of humic substances on higher plants / S. Nardi, D. Pizzeghello, A. Muscolo, A. Vianello // Soil Biol. Biochem. - 2002 - V.34 - P. 15271536.

169. Nardi, S. Biological activities of humic substances / S. Nardi, P. Carletti, D. Pizzeghello, A. Muscolo // Biophysico-chemical processes involving natural nonliving organic matter in environmental systems. - 2009. - V. 2. - №.1. - P. 309-335.

170. Nardi, S. Biological activity of humus / S. Nardi, G. Concheri G. Dell'Agnola // Humic substances in terrestrial ecosystems. Elsevier, Amsterdam. - 1996. - P. 361-406.

171. Nardi, S. Plant biostimulants: physiological responses induced by protein

hydrolyzed-based products and humic substances in plant metabolism / S. Nardi, D. Pizzeghello, M. Schiavon, A. Ertani // Scientia Agricola. - 2016. -V. 73. - №. 1. - P. 18-23.

172. Navarro, E. Environmental behavior and ecotoxicity of engineered nanoparticles to algae, plants, and fungi / E. Navarro, A. Baun, R. Behra, N. B. Hartmann, J. Filser, A. J. Miao, L. Sigg // Ecotoxicology. - 2008. - V. 17. - №. 5. - P. 372-386.

173. Navarro, E. Toxicity of silver nanoparticles to Chlamydomonas reinhardtii / E. Navarro, F. Piccapietra, B. Wagner, F. Marconi, R. Kaegi, N. Odzak, R. Behra // Environmental science and technology. - 2008. - V. 42. - №. 23. - P. 8959-8964.

174. Nishiyama, Y. Singlet oxygen inhibits the repair of photosystem II by suppressing the translation elongation of the D1 protein in Synechocystis sp. PCC 6803/ Y. Nishiyama, S. I. Allakhverdiev, H. Yamamoto, H. Hayashi, N. Murata // Biochemistry. - 2004. - V. 43. - №. 35. - P. 11321-11330.

175. Novikova, I. P. Effect of K2Cr2O7 on the photosynthetic activity and mobility of Euglena gracilis Klebs cells / I. P. Novikova, T. V. Parshikova, V. V. Vlasenko, I. B. Zubenko // International Journal on Algae. - 2007. - V. 9. - №. 3. - P. 49-63.

176. Olaetxea, M. Root-Shoot Signaling crosstalk involved in the shoot growth promoting action of rhizospheric humic acids / M. Olaetxea, V. Mora, A. C. Garcia, L. A. Santos, R. Baigorri, M. Fuentes, J. M. Garcia-Mina // Plant signaling and behavior. -2016. - V. 11. - №. 4. - P. e1161878.

177. Orlov, D. S. Soil organic matter and protective functions of humic / D. S. Orlov, L. K. Sadovnikova // Use of Humic Substances to Remediate Polluted Environments: From Theory to Practice. - 2005. - P. 37.

178. Orlova, O. V. Humic substances of composts from municipal solid wastes as a promising plant growth stimulator / O. V. Orlova, I. A. Arkhipchenko // Russian Agricultural Sciences. - 2009. - V. 35. - №. 3. - P. 175-178.

179. Oukarroum, A. Inhibitory effects of silver nanoparticles in two green algae, Chlorella vulgaris and Dunaliella tertiolecta / A. Oukarroum, S. Bras, F. Perreault, R. Popovic // Ecotoxicology and Environmental Safety. - 2012. - V. 78. - P. 80-85.

180. Ouni, Y. The role of humic substances in mitigating the harmful effects of soil salinity and improve plant productivity / Y. Ouni, T. Ghnaya, F. Montemurro, C. Abdelly, A. Lakhdar // International Journal of Plant Production. - 2014. - V. 8. - №. 3.

- P. 353-374.

181. Pal, S. Does the antibacterial activity of silver nanoparticles depend on the shape of the nanoparticle? A study of the gram-negative bacterium Escherichia coli / S. Pal, Y. K. Tak, J. M. Song // Applied and environmental microbiology. - 2007. - V. 73. - №. 6.

- P. 1712-1720.

182. Pandey, A. K. Role of humic acid entrapped calcium alginate beads in removal of heavy metals / A. K. Pandey, S. D. Pandey, V. Misra, S. Devi // Journal of hazardous materials. - 2003. - V. 98. - №. 1. - P 177-181.

183. Perevedentseva, E. Characterizing protein activities on the lysozyme and nanodiamond complex prepared for bio applications / E. Perevedentseva, P. J. Cai, Y. C. Chiu, C. L. Cheng // Langmuir. - 2010. - V. 27. - №. 3. - P. 1085-1091.

184. Perevedentseva, E. Biomedical applications of nanodiamonds in imaging and therapy / E. Perevedentseva, Y. C. Lin, M. Jani, C. L. Cheng // Nanomedicine. - 2013. -V. 8. - №. 12. - P. 2041-2060.

185. Perreault, F. Dichromate effect on energy dissipation of photosystem II and photosystem I in Chlamydomonas reinhardtii / F. Perreault, N. A. Ali, C. Saison, R. Popovic, P. Juneau // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. - 2009.

- V. 96. - №. 1. - P. 24-29.

186. Pflug, W. Inhibition of malate dehydrogenase by humic acids / W. Pflug, W. Ziechmann // Soil Biol. Biochem. - 1981 - V.13 - P. 293-299.

187. Piccapietra, F. Intracellular silver accumulation in Chlamydomonas reinhardtii upon exposure to carbonate coated silver nanoparticles and silver nitrate / F. Piccapietra, C. G. Allue, L. Sigg, R. Behra // Environmental science and technology. - 2012. - V. 46. - №. 13. - P. 7390-7397.

188. Piccolo, A. Interaction of atrazine with humic substances of different origins and their hydrolysed products / A. Piccolo, G. Celano, C. De Simone // Sci. Total Environ. -

1992 - V.117/118 - P. 403-412.

189. Piotrowicz, S. R. Cadmium, copper and zinc interactions with marine humus as a function of ligand structure / S. R. Piotrowicz, G. R. Harvey, D. A. Boran // Marine Chem. - 1984 - V.14- P.333-346.

190. Pizzeghello, D. Isopentenyladenosine and cytokinin-like activity of different humic substances / D. Pizzeghello, O. Francioso, A. Ertani, A. Muscolo, S. Nardi // Journal of Geochemical Exploration. - 2013. - V. 129. - P. 70-75.

191. Pizzeghello, D. Hormone-like activity of humic substances in Fagus sylvaticae forests / D. Pizzeghello, G. Nicolini, S. Nardi // New Phytologist. - 2001. - V. 151. -№. 3. - P. 647-657.

192. Platt, T. Modeling the productivity of phytoplankton. In: E.D.N.Y. Golberg, J.Willey (eds) The Sea / K.L. Denman, A.D. Jassby // 1977. - P.807-856.

193. Pradhan, A. Can metal nanoparticles be a threat to microbial decomposers of plant litter in streams? / A. Pradhan, S. Seena, C. Pascoal, F. Cassio // Microbial ecology. - 2011. - V. 62. - №. 1. - P. 58-68.

194. Prasad, S. M. Metal-induced inhibition of photosynthetic electron transport chain of the cyanobacterium Nostoc muscorum / S. M. Prasad, J. B. Singh, L. C. Rai, H. D. Kumar // FEMS microbiology letters. - 1991. - V. 82. - №. 1. - P. 95-100.

195. Purtov, K. V. The interaction of linear and ring forms of DNA molecules with nanodiamonds synthesized by detonation / K. V. Purtov, L. P. Burakova, A. P. Puzyr, V. S. Bondar // Nanotechnology. - 2008. - V. 19. - №. 32. - P. 325101.

196. Rady, M. M. A novel organo-mineral fertilizer can mitigate salinity stress effects for tomato production on reclaimed saline soil / M. M. Rady // South African journal of botany. - 2012. - V. 81. - P. 8-14.

197. Rai, M. Silver nanoparticles as a new generation of antimicrobials / M. Rai, A. Yadav, A. Gade // Biotechnology advances. - 2009. - V. 27. - №. 1. - P. 76-83.

198. Rai, V. Effect of chromium accumulation on photosynthetic pigments, oxidative stress defense system, nitrate reduction, proline level and eugenol content of Ocimum

tenuíflorum L / V. Rai, P. Vajpayee, S. N. Singh, S. Mehrotra // Plant science. - 2004. -V. 167. - №. 5. - P. 1159-1169.

199. Ramírez-Díaz, M. I. Mechanisms of bacterial resistance to chromium compounds / M. I. Ramirez-Diaz, C. Diaz-Perez, E. Vargas, H. Riveros-Rosas, J. Campos-Garcia, C. Cervantes // Biometals. - 2008. - V. 21. - №. 3. - P. 321-332.

200. Raven, J. A. Oceanic sinks for atmospheric CO2 / J. A. Raven, P. G. Falkowski //Plant, Cell and Environment. - 1999. - V. 22. - №. 6. - P. 741-755.

201. Reeves, J. F. Hydroxyl radicals (OH) are associated with titanium dioxide (TiO2) nanoparticle-induced cytotoxicity and oxidative DNA damage in fish cells / J. F. Reeves, S. J. Davies, N. J. Dodd, A. N. Jha // Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. - 2008. - V. 640. - №. 1. - P. 113-122.

202. Ren, J. Influences of size-fractionated humic acids on arsenite and arsenate complexation and toxicity to Daphnia magna / J. Ren, W. Fan, X. Wang, Q. Ma, X. Li, Z. Xu, C. Wei // Water research. - 2017. - V. 108. - P. 68-77.

203. Rocchetta, I. Chromium-and copper-induced inhibition of photosynthesis in Euglena gracilis analysed on the single-cell level by fluorescence kinetic microscopy / I. Rocchetta, H. Kupper // New Phytologist. - 2009. - V. 182. - №. 2. - P. 405-420.

204. Rodriguez, M. C. Effects of chromium on photosynthetic and photoreceptive apparatus of the alga Chlamydomonas reinhardtii / M. C. Rodriguez, L. Barsanti, V. Passarelli, V. Evangelista, V. Conforti, P. Gualtieri // Environmental research. - 2007. -V. 105. - №. 2. - P. 234-239.

205. Rohder, L. A. Influence of agglomeration of cerium oxide nanoparticles and speciation of cerium (III) on short term effects to the green algae Chlamydomonas reinhardtii / L. A. Rohder, T. Brandt, L. Sigg, R. Behra // Aquatic toxicology. - 2014. -V. 152. - P. 121-130.

206. Rubio-Retama, J. Synthetic nanocrystalline diamond as a third-generation biosensor support / J. Rubio-Retama, J. Hernando, B. Lopez-Ruiz, A. Hartl, D. Steinmuller, M. Stutzmann, J. Antonio Garrido // Langmuir. - 2006. - V. 22. - №. 13. -P. 5837-5842.

207. Russo, R. O. The use of organic biostimulants to help low input sustainable agriculture / R. O. Russo, G. P. Berlyn // Journal of Sustainable Agriculture. - 1991. -V. 1. - №. 2. - P. 19-42.

208. Rutherford, A. W. Herbicide-induced oxidative stress in photosystem II / A. W. Rutherford, A. Krieger-Liszkay // Trends in biochemical sciences. - 2001. - V. 26. - №. 11. - P. 648-653.

209. Sakurai, H. Adsorption characteristics of a nanodiamond for oxoacid anions and their application to the selective preconcentration of tungstate in water samples / H. Sakurai, N. Ebihara, E. Osawa, M. Takahashi, M. Fujinami, K. Oguma //Analytical sciences. - 2006. - V. 22. - №. 3. - P. 357-362.

210. Salma, I. Chirality and the origin of atmospheric humic-like substances / I. Salma, T. Meszaros, W. Maenhaut, E. Vass, Z. Majer // Atmospheric Chemistry and Physics. -2010. - V. 10. - №. 3. - P. 1315-1327.

211. Sambhy, V. Silver bromide nanoparticle polymer composites: dual action tunable antimicrobial materials / V. Sambhy, M. M. MacBride, B. R. Peterson, A. Sen // Journal of the American Chemical Society. - 2006. - V. 128. - №. 30. - P. 9798-9808.

212. Schrand, A. M. Are diamond nanoparticles cytotoxic? / A. M. Schrand, H. Huang, C. Carlson, J. J. Schlager, E. Osawa, S. M. Hussain, L. Dai // The journal of physical chemistry B. - 2007. - V. 111. - №. 1. - P. 2-7.

213. Schmidlin, L. Identification, quantification and modification of detonation nanodiamond functional groups / L. Schmidlin, V. Pichot, M. Comet, S. Josset, P. Rabu, D. Spitzer // Diamond and Related Materials. - 2012. - V. 22. -P. 113-117.

214. Scown, T. M. Effects of aqueous exposure to silver nanoparticles of different sizes in rainbow trout / T. M. Scown, E. M. Santos, B. D. Johnston, B. Gaiser, M. Baalousha, S. Mitov, R. Aerle // Toxicological Sciences. - 2010. - V. 115. - №. 2. - P. 521-534.

215. Schultz, A. G. Aquatic toxicity of manufactured nanomaterials: challenges and recommendations for future toxicity testing / A. G. Schultz, D. Boyle, D. Chamot, K. J. Ong, K. J. Wilkinson, J. C. McGeer, G. G. Goss // Environmental Chemistry. - 2014. -

V. 11. - №. 3. - P. 207-226.

216. Seyedbagheri, M. M. Influence of humic products on soil health and potato production / M. M. Seyedbagheri // Potato research. - 2010. - V. 53. - №. 4. - P. 341349.

217. Sharma, V. K. Organic-coated silver nanoparticles in biological and environmental conditions: fate, stability and toxicity / V. K. Sharma, K. M. Siskova, R. Zboril, J. L. Gardea-Torresdey // Advances in colloid and interface science. - 2014. - V. 204. - P. 15-34.

218. Shanker, A. K. Speciation dependant antioxidative response in roots and leaves of sorghum (Sorghum bicolor (L.) Moench cv CO 27) under Cr (III) and Cr (VI) stress / A. K. Shanker, G. Pathmanabhan // Plant and soil. - 2004. - V. 265. - №. 1-2. - P. 141151.

219. Shi, J. P. Effect of light on toxicity of nanosilver to Tetrahymena pyriformis / J. P. Shi, C. Y. Ma, B. Xu, H. W. Zhang, C. P. Yu // Environmental toxicology and chemistry. - 2012. - V. 31. - №. 7. - P. 1630-1638.

220. Shreiber, U. Assessment of photosystem II photochemical quantum yield by chlorophyll fluorescence quenching analysis / U. Schreiber, H. Hormann, C. Neubauer, C. Klughammer // Plant Physiology - 1995. - V.22. - P.209-220.

221. Schreiber, U. Pulse-Amplitude (PAM) fluorometry and saturation pulse method / U. Schreiber // In: Papageorgiou G.C. and Govindjee (eds) Chlorophyll fluorescence: A signature of Photosynthesis. Springer. Dordrecht. The Netherlands. - 2004. - P. 279319.

222. Siripattanakul-Ratpukdi, S. Issues of silver nanoparticles in engineered environmental treatment systems / S. Siripattanakul-Ratpukdi, M. Furhacker // Water, Air, and Soil Pollution. - 2014. - V. 225. - №. 4. - P. 1939.

223. Silbajoris, R. Nanodiamond particles induce I1-8 expression through a transcript stabilization mechanism in human airway epithelial cells / R. Silbajoris, J. M. Huang, W. Y. Cheng, L. Dailey, T. L. Tal, I. Jaspers, J. M. Samet // Nanotoxicology. - 2009. -V. 3. - №. 2. - P. 152-160.

224. Singh, S. P. Cadmium induced inhibition of ammonium and phosphate uptake in Anacystis nidulans: interaction with other divalent cations / S. P. Singh, V. Yadava // The Journal of General and Applied Microbiology. - 1984. - V. 30. - №. 2. - P. 79-86.

225. Silva, T. Particle size, surface charge and concentration dependent ecotoxicity of three organo-coated silver nanoparticles: comparison between general linear model-predicted and observed toxicity / T. Silva, L. R. Pokhrel, B. Dubey, T. M. Tolaymat, K. J. Maier, X. Liu // Science of the total environment. - 2014. - V. 468. - P. 968-976.

226. Smirnov, W. Aligned diamond nano-wires: Fabrication and characterisation for advanced applications in bio-and electrochemistry / W. Smirnov, A. Kriele, N. Yang, C. E. Nebel // Diamond and Related Materials. - 2010. - V. 19. - №. 2. - P. 186-189.

227. Smith, B. R. Five-Nanometer Diamond with Luminescent Nitrogen-Vacancy Defect Centers / B. R. Smith, D. W. Inglis, B. Sandnes, J. R. Rabeau, A. V. Zvyagin, D. Gruber, T. Plakhotnik // Small. - 2009. - V. 5. - №. 14. - P. 1649-1653.

228. Solovchenko, A. A novel CO2-tolerant symbiotic Desmodesmus (Chlorophyceae, Desmodesmaceae): acclimation to and performance at a high carbon dioxide level / A. Solovchenko, O. Gorelova, I. Selyakh, S. Pogosyan, O. Baulina, L. Semenova, E. Lobakova // Algal Research. - 2015. - V. 11. - P. 399-410.

229. Srivastava, A. Regulation of antenna structure and electron transport in photosystem II of Pisum sativum under elevated temperature probed by the fast polyphasic chlorophyll a fluorescence transient: OKJIP / A. Srivastava, B. Guisse, H. Greppin, R. J. Strasser // Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetics. - 1997. - V. 1320. - №. 1. - P. 95-106.

230. Srivastava, A. Effect of cadmium on turion formation and germination of Spirodela polyrrhiza L / A. Srivastava, V. S. Jaiswal // Journal of plant physiology. -1989. - V. 134. - №. 3. - P. 385-387.

231. Stebounova, L. V. Silver nanoparticles in simulated biological media: a study of aggregation, sedimentation, and dissolution / L. V. Stebounova, E. Guio, V. H. Grassian // Journal of Nanoparticle Research. - 2011. - V. 13. - №. 1. - P. 233-244.

232. Stevenson, F. J. Humus chemistry: genesis, composition, reactions / F. J.

Stevenson- John Wiley and Sons, 1994.

233. Strasser, B. J. Measuring fast fluorescence transients to address environmental questions: the JIP-test / B. J. Strasser, R. J Strasser // Photosynthesis: from light to biosphere. - 1995. - P. 977-980.

234. Strasser, R. J. Analysis of the chlorophyll a fluorescence transient / R. J. Strasser, M. Tsimilli-Michael, A. Srivastava // Chlorophyll a fluorescence. - Springer Netherlands. - 2004. - P. 321-362.

235. Strasser, R. J. Simultaneous in vivo recording of prompt and delayed fluorescence and 820 nm reflection changes during drying and after rehydration of the resurrection plant Haberlea rhodopensis / R. J. Strasser, M. Tsimilli-Michael, S. Qiang,V. Goltsev // Biochim. Biophys. Acta. - 2010. - V.1797. - P. 1313-1326.

236. Sun, J. Toxicity of silver nanoparticles to Arabidopsis: Inhibition of root gravitropism by interfering with auxin pathway/ J. Sun, L. Wang, S. Li, L. Yin, J. Huang, C. Chen // Environmental toxicology and chemistry. - 2017. - V. 36. - №. 10. -P. 2773-2780.

237. Tang, Y. The influence of humic acid on the toxicity of nano-ZnO and Zn2+ to the Anabaena sp / Y. Tang, S. Li, Y. Lu, Q. Li, S. Yu // Environmental toxicology. - 2015. - V. 30. - №. 8. - P. 895-903.

238. Thomas, V. In vitro studies on the effect of particle size on macrophage responses to nanodiamond wear debris / V. Thomas, B. A. Halloran, N. Ambalavanan, S. A. Catledge, Y. K. Vohra // Acta biomaterialia. - 2012. - V. 8. - №. 5. - P. 1939-1947.

239. Tisler, J. Fluorescence and spin properties of defects in single digit nanodiamonds / J. Tisler, G. Balasubramanian, B. Naydenov, R. Kolesov, B. Grotz, R. Reuter, M. Borsch // ACS nano. - 2009. - V. 3. - №. 7. - P. 1959-1965.

240. Trevisan, S. Humic substances affect Arabidopsis physiology by altering the expression of genes involved in primary metabolism, growth and development / S. Trevisan, A. Botton, S. Vaccaro, A. Vezzaro, S. Quaggiotti, S. Nardi // Environmental and Experimental Botany. - 2011. - V. 74. - P. 45-55.

241. Trevisan, S. Humic substances induce lateral root formation and expression of the

early auxin-responsive IAA19 gene and DR5 synthetic element in Arabidopsis / S. Trevisan, D. Pizzeghello, B. Ruperti, O. Francioso, A. Sassi, K. Palme, S. Nardi // Plant Biology. - 2010. - V. 12. - №. 4. - P. 604-614

242. Turkmen, O. Calcium and humic acid affect seed germination, growth, and nutrient content of tomato (Lycopersicon esculentum L.) seedlings under saline soil conditions / O. Turkmen, A. Dursun, M. Turan, C. Erdinc // Acta Agriculturae Scandinavica, Section B-Soil and Plant Science. - 2004. - V. 54. - №. 3. - P. 168-174.

243. Turner, S. Determination of size, morphology, and nitrogen impurity location in treated detonation nanodiamond by transmission electron microscopy / S. Turner, O. I. Lebedev, O. Shenderova, I. I. Vlasov, J. Verbeeck, G. Van Tendeloo // Advanced functional materials. - 2009. - V. 19. - №. 13. - P. 2116-2124.

244. Vaijayanthimala, V. The biocompatibility of fluorescent nanodiamonds and their mechanism of cellular uptake / V. Vaijayanthimala, Y. K. Tzeng, H. C. Chang, C. Li // Nanotechnology. - 2009. - V. 20. - №. 42. - P. 425103.

245. Vajpayee, P. Chromium-induced physiologic changes in Vallisneria spiralis L. and its role in phytoremediation of tannery effluent / P. Vajpayee, U. N. Rai, M. B. Ali, R. D. Tripathi, V. Yadav, S. Sinha, S. N. Singh // Bulletin of Environmental Contamination and toxicology. - 2001. - V. 67. - №. 2. - P. 246-256.

246. Van Kooten, O. The use of chlorophyll fluorescence Nomenclature in plant stress physiology / O. Van Kooten, J.F.H. Snel // Photosynthesis Research. - 1990. - V. 25. -P. 147- 150.

247. Varanini, Z. Humic substances and plant nutrition / Z. Varanini, R. Pinton // Progress in botany. - Springer Berlin Heidelberg, 1995. - P. 97-117.

248. Vasconcelos, A. C. Enzymatic antioxidant responses to biostimulants in maize and soybean subjected to drought / A. C. Vasconcelos, X. Zhang, E. H. Ervin, J. D. C. Kiehl // Scientia Agricola. - 2009. - V. 66. - №. 3. - P. 395-402.

249. Van Oosten, M. J. The role of biostimulants and bioeffectors as alleviators of abiotic stress in crop plants / M. J. Van Oosten, O. Pepe, S. De Pascale, S. Silletti, A. Maggio // Chemical and Biological Technologies in Agriculture. - 2017. - V. 4. - №. 1.

- P. 5.

250. Vaughan, D. Influence of humic substances on biochemical processes in plants / D. Vaughan, R.E. Malcom, B.G. Ord // In: Soil organic matter and biological activity -D. Vaughan, R.E. Malcom (Eds.) - Martinus Nijhoff/Junk W Publishers, Dordrecht, 1985 - P. 77-108.

251. Vignati, D. A. L.Temporal decrease of trivalent chromium concentration in a standardized algal culture medium: experimental results and implications for toxicity evaluation / D. A. L. Vignati, M. L. Beye, J. Dominik, A. O. Klingemann, M. Filella, A. Bobrowski, B. J. Ferrari // Bulletin of environmental contamination and toxicology. -2008. - V. 80. - №. 4. - P. 305-310.

252. Volkov, D. S. Elemental analysis of nanodiamonds by inductively-coupled plasma atomic emission spectroscopy / D. S. Volkov, M. A. Proskurnin, M. V. Korobov // Carbon. - 2014. - V. 74. - P. 1-13.

253. Volkov, D. S. Quantification of nanodiamonds in aqueous solutions by spectrophotometry and thermal lens spectrometry / D. S. Volkov, P. I. Semenyuk, M. V. Korobov, M. A. Proskurnin // Journal of analytical chemistry. - 2012. - V. 67. - №. 10.

- P. 842-850.

254. Voznyakovskii, A. P. Environmental issues related to preparation of detonation nanodiamonds. Surface and functionalization / A. P. Voznyakovskii, F. A. Shumilov, A. K. Ibatullina, I. V. Shugalei // Russian Journal of General Chemistry. - 2012. - V. 82. -№. 13. - P. 2253-2255.

255. Vul, A. Y. Absorption and scattering of light in nanodiamond hydrosols / A. Y. Vul, E. D. Eydelman, L. V. Sharonova, A. E. Aleksenskiy, S. V. Konyakhin // Diamond and Related Materials. - 2011. - V. 20. - №. 3. - P. 279-284.

256. Walker, W. M. Effect of lead and cadmium upon the boron, copper, manganese, and zinc concentration of young corn plants / W. M. Walker, J. E. Miller, J. J. Hassett // Communications in Soil Science and Plant Analysis. - 1977. - V. 8. - №. 1. - P. 57-66.

257. Walters, C. Aggregation and dissolution of silver nanoparticles in a laboratory-based freshwater microcosm under simulated environmental conditions / C. Walters, E.

Pool, V. Somerset // Toxicological and Environmental Chemistry. - 2013. - V. 95. - №. 10. - P. 1690-1701.

258. Wang, F. Nanodiamond decorated liposomes as highly biocompatible delivery vehicles and a comparison with carbon nanotubes and graphene oxide / F. Wang, J. Liu // Nanoscale. - 2013. - V. 5. - №. 24. - P. 12375-12382.

259. Wang, P. Characterizing the uptake, accumulation and toxicity of silver sulfide nanoparticles in plants / P. Wang, E. Lombi, S. Sun, K. G. Scheckel, A. Malysheva, B. A. McKenna, P. M. Kopittke // Environmental Science: Nano. - 2017. - V. 4. - №. 2. -P. 448-460.

260. Wang, Z. Humic substances alleviate the aquatic toxicity of polyvinylpyrrolidone-coated silver nanoparticles to organisms of different trophic levels / Z.Wang, J. T. Quik, L. Song, E. J. Van Den Brandhof, M. Wouterse, W. J. Peijnenburg // Environmental toxicology and chemistry. - 2015. - V. 34. - №. 6. - P. 1239-1245.

261. Wee, T. L. Preparation and characterization of green fluorescent nanodiamonds for biological applications / T. L. Wee, Y. W. Mau, C. Y. Fang, H. L. Hsu, C. C. Han, H. C. Chang // Diamond and Related Materials. - 2009. - V. 18. - №. 2. - P. 567-573.

262. Wehling, J. Bactericidal activity of partially oxidized nanodiamonds / J. Wehling, R. Dringen, R. N. Zare, M. Maas, K. Rezwan // ACS nano. - 2014. - V. 8. - №. 6. - P. 6475-6483.

263. Wodala, B. Monitoring moderate Cu and Cd toxicity by chlorophyll fluorescence and P 700 absorbance in pea leaves / B. Wodala, G. Eitel, T. N. Gyula, A. Ordog, F. Horvath // Photosynthetica. - 2012. - V. 50. - №. 3. - P. 380-386.

264. Weng, M. F. Cellular uptake and phototoxicity of surface-modified fluorescent nanodiamonds / M. F. Weng, B. J. Chang, S. Y. Chiang, N. S. Wang, H. Niu // Diamond and Related Materials. - 2012. - V. 22. - P. 96-104.

265. Xiu, Z. M. Differential effect of common ligands and molecular oxygen on antimicrobial activity of silver nanoparticles versus silver ions / Z. M. Xiu, J. Ma, P. J. Alvarez // Environmental science and technology. - 2011. - V. 45. - №. 20. - P. 9003-

9008.

266. Yang, H. L. Humic acid induces apoptosis in human premyelocytic leukemia HL-60 cells / H. L. Yang, Y. C. Hseu, Y. T. Hseu, F. J. Lu, E. Lin, J. S. Lai // Life sciences. - 2004. - V. 75. - №. 15. - P. 1817-1831.

267. Yang, J. H. Direct amination on 3-dimensional pyrolyzed carbon micropattern surface for DNA detection / J. H. Yang, V. Penmatsa, S. Tajima, H. Kawarada, C. Wang // Materials Letters. - 2009. - V. 63. - №. 30. - P. 2680-2683.

268. Yang, S. P. Influence of humic acid on titanium dioxide nanoparticle toxicity to developing zebrafish / S. P. Yang, O. Bar-Ilan, R. E. Peterson, W. Heideman, R. J. Hamers, J. A. Pedersen // Environmental science and technology. - 2013. - V. 47. - №. 9. - P. 4718-4725.

269. Yang, X. Silver nanoparticle behavior, uptake, and toxicity in Caenorhabditis elegans: effects of natural organic matter / X. Yang, C. Jiang, H. Hsu-Kim, A. R. Badireddy, M. Dykstra, M. Wiesner, J. N. Meyer // Environmental science and technology. - 2014. - V. 48. - №. 6. - P. 3486-3495.

270. Yue, Y. Interaction of silver nanoparticles with algae and fish cells: a side by side comparison / Y. Yue, X. Li, L. Sigg, M. J. Suter, S. Pillai, R. Behra, K. Schirmer // Journal of nanobiotechnology. - 2017. - V. 15. - №. 1. - P. 16.

271. Zhao, C. M. Comparison of acute and chronic toxicity of silver nanoparticles and silver nitrate to Daphnia magna / C. M. Zhao, W. X. Wang // Environmental Toxicology and Chemistry. - 2011. - V. 30. - №. 4. - P. 885-892.

272. Zhang, C. Silver nanoparticles in aquatic environments: Physiochemical behavior and antimicrobial mechanisms / C. Zhang, Z. Hu, B. Deng // Water research. - 2016. -V. 88. - P. 403-427.

273. Zhang, Q. Fluorescent PLLA-nanodiamond composites for bone tissue engineering / Q. Zhang, V. N. Mochalin, I. Neitzel, I. Y. Knoke, J. Han, C. A. Klug, Y. Gogotsi // Biomaterials. - 2011. - V. 32. - №. 1. - P. 87-94.

274. Zhang, X. A comparative study of cellular uptake and cytotoxicity of multi-

walled carbon nanotubes, graphene oxide, and nanodiamond / X. Zhang, W. Hu, J. Li, L. Tao, Y. Wei // Toxicology Research. - 2012. - V. 1. - №. 1. - P. 62-68.

275. Zhu, X. Toxicity and bioaccumulation of TiO2 nanoparticle aggregates in Daphnia magna / X. Zhu, Y. Chang, Y. Chen // Chemosphere. - 2010. - V. 78. - №. 3. - P. 209-215.