Эволюционные адаптации корнеголовых ракообразных (Rhizocephala) к взаимодействию с нервной системой десятиногих ракообразных (Decapoda) тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Лянгузова Анастасия Дмитриевна

• Лянгузова Анастасия Дмитриевна
• кандидат наук
• 2025

Оглавление диссертации кандидат наук Лянгузова Анастасия Дмитриевна

Оглавление

Введение

Актуальность работы и степень разработанности темы исследования

Цель и задачи работы

Научная новизна исследования

Теоретическая и практическая значимость работы

Основные положения, выносимые на защиту

Степень достоверности и апробация результатов

Публикации

Структура и объём диссертации

Личный вклад автора

Благодарности

Обзор литературы

1. Паразитизм среди ракообразных (Arthropoda: Pancrustacea: "Crustacea")

2. Морфология интерны

2.1 Общая организация интерны

2.2 Тканевая организация интерны

2.3 Строение мышечной системы

2.4 Функциональная роль интерны

3. Морфология экстерны

4. Жизненный цикл корнеголовых

4.1 Кентрогонидный вариант жизненного цикла

4.2 Личинки самцов "Kentrogonida"

4.3 Акентрогонидный вариант жизненного цикла

5. Эволюция корнеголовых

6. Взаимодействие корнеголовых с хозяевами

6.1 Морфологические изменения

6.2 Линочный цикл

6.3 Паразитарная кастрация

6.4 Влияние на другие ткани и органы

6.5 Изменение поведения заражённых десятиногих

6.6 Молекулярные механизмы паразито-хозяинных отношений

6.7 Взаимодействие корнеголовых с нервной системой хозяина 43 Материал и методы

1. Сбор материала

2. Гистология 47 Трансмиссионная электронная микроскопия 48 Конфокальная лазерная сканирующая микроскопия

Результаты

1. Паразито-хозяинная система сем. Sacculinidae — настоящие крабы (Brachyura)

1.1 Строение трофических столонов

1.2 Общее строение инвазивных столонов — бокаловидных органов

1.3 Ультраструктура бокаловидных органов

1.4 Структура нервной ткани заражённых крабов

2. Паразито-хозяинная система сем. Polyasidae — настоящие крабы (Brachyura)

2.1 Строение трофических столонов Polyascus polygeneus

2.2 Строение инвазивных столонов P. polygeneus

2.3 Ультраструктура нейропиль-ассоциированных столонов

P. polygeneus

2.3.1 Столоны 1 типа

2.3.2 Столоны 2 типа

2.3.3 Столоны 3 типа 74 2.3.4. Мышечные элементы в столонах P. polygeneus

2.4 Нервная ткань хозяина вблизи нейропиль-ассоциированных столонов

2.5 Потенциальные соединения, участвующие в паразито-хозяинном взаимодействии, выявленные с помощью иммуногистохимии и конфокальной микроскопии

2.6 Паразито-хозяинная система Parasacculina pilosella — водорослевый краб Scyra aff. ferox

2.7 Двойное заражение крабов Scyra aff. ferox корнеголовыми Sacculina pugettiae (Sacculinidae) и Parasacculina pilosella (Polyascidae)

3. Паразито-хозяинная система сем. Thompsoniidae ("Akentrogonida") — настоящие крабы (Brachyura) на примере Diplothylacus sinensis и Portunuspelagicus

3.1 Строение трофических столонов

3.2 Строение инвазивных нейропиль-ассоциированных столонов 88 Обсуждение

1. Общие особенности строения инвазивных столонов

2. Мышечная система интерны представителей сем. Sacculinidae и Polyascidae

3. Особенности расположения и строения бокаловидных органов

4. Особенности строения нейропиль-ассоциированных столонов

4.1. Строение нейропиль-ассоциированных столонов сем. Polyascidae

4.2. Строение нейропиль-ассоциированных столонов Diplothylacus sinensis

5. Взаимодействие корнеголовых с организмом хозяина (в т.ч. с его нервной системой)

5.1 Влияние корнеголовых на нервную систему заражённых хозяев

5.2 Взаимодействие «акентрогонид» с нервной системой хозяина

6. Общие эволюционные тенденции в строении инвазивных столонов корнеголовых

Заключение

Выводы

Список литературы

Введение

Актуальность работы и степень разработанности темы исследования

Rhizocephala Müller, 1862 — группа высокоспециализированных паразитических раков, которые заражают других ракообразных, в частности, представителей группы Decapoda Latreille, 1802 (H0eg, 1995; H0eg, Lützen, 1995; Walker, 2001). По сравнению со свободноживущими представителями "Crustacea" тело взрослого организма корнеголовых раков сильно модифицировано (Bresciani, H0eg, 2001; Alvarez et al., 2010; Miroliubov, 2017; Arbuzova et al., 2022). Взрослые ризоцефалы не наследуют от личинки никаких органов и тканей, в результате чего их тело не может быть гомологизировано с другими ракообразными (H0eg, 1995; H0eg, Lützen, 1995). На дефинитивной стадии развития у ризоцефал отсутствуют какие-либо признаки сегментации, пищеварительный тракт, специализированные выделительная и кровеносная системы. Тело взрослой самки состоит из двух функциональных отделов: экстерны и интерны (H0eg, 1995; Walker, 2001; Waiho et al., 2021). Экстерна — это мешкообразное образование, вынесенное за пределы тела хозяина и участвующее в реализации репродуктивной функции (Alvarez et al., 2010; Nour Eldeen et al., 2019; Arbuzova et al., 2023). В экстерне находятся самцы корнеголовых, редуцированные до состояния сперматогенной ткани (H0eg, 1987a; Glenner, Hoeg, 1994; Lützen et al., 1996). Интерна самки — система разветвлённых трофических столонов, располагающихся в гемоцеле хозяина (Bresciani, H0eg, 2001; Miroliubov, 2017; Miroliubov et al., 2019; Arbuzova et al., 2022). Столоны интерны обеспечивают трофическую функцию и осуществляют взаимодействие с организмом хозяина (Lenel, 1954; Payen et al., 1983b; Rubiliani, 1985).

Одной из слабо изученных, но не менее интригующих, проблем биологии ризоцефал являются механизмы взаимодействия между корнеголовыми и их хозяевами, заражёнными ракообразными. Тем не менее, известны фенотипические проявления влияния корнеголовых, выражающиеся в изменении морфологии, физиологии и поведения инфицированных особей (H0eg, 1995; Takahashi, Matsuura, 1994; Alvarez et al., 2002; Waiho et al., 2021; Feng et al., 2023; Toyota et al., 2023). У инфицированных десятиногих приостанавливается линочный цикл (Takahashi, Matsuura, 1994; Alvarez et al., 1995), также заражение ризоцефалами зачастую приводит к паразитарной стерилизации хозяев (Potts, 1906; H0eg, 1995; Bateman et al., 2017). Для крабов-самцов характерен феномен феминизации — их абдомен сильно расширяется (Yamaguchi,

Aratake, 1997; Kristensen et al., 2012; Toyota et al., 2023), появляются паттерны поведения, характерные для самок, ухаживающих за собственным потомством (Rasmussen, 1959; Vazquez-Lopez et al., 2006; Larsen et al., 2013; Vazquez-Lopez et al., 2019).

Важную роль во влиянии на организм хозяина, по-видимому, играют специализированные столоны, врастающие в ганглии брюшной нервной цепочки заражённых особей (Nielsen, 1970a; Rubiliani, Payen, 1979). Дистальная часть таких столонов видоизменена в чашеподобную структуру — бокаловидные органы, которые, вероятно, представляют собой основное место взаимодействия корнеголовых с хозяином (Miroliubov et al., 2020). Подобный феномен был описан для представителей трёх семейств ризоцефал: Peltogastridae (Peltogaster paguri Rathke, 1842), Peltogasterellidae (Peltogasterella gracilis (Boschma, 1927)) и Sacculinidae (Sacculina carcini Thompson, 1836). У всех изученных видов дистальная часть столонов, ассоциированных с брюшной нервной цепочкой хозяев, преобразована в бокаловидные органы, находящиеся в зоне расположения тел нейронов и глиальных клеток (Miroliubov et al., 2020). Пелтогастриды и пелтогастереллиды паразитируют на представителях Anomura (Ichikawa, Yanagimachi, 1957; Jung et al., 2019; H0eg et al., 2020), в брюшной нервной цепочке которых выделяют слившийся ганглий переона и сегментарные ганглии плеона (Paul, 2003). Столоны интерны в таком случае проникают в несколько первых плеональных ганглиев хозяев (Nielsen, 1970; Miroliubov et al., 2020). Представители сем. Sacculinidae заражают в основном настоящих крабов, Brachyura (Lützen et al., 2018), у которых происходит слияние ганглиев переона и плеона в единую вентральную ганглиозную массу, расположенную в переона хозяина. Именно в ней и расположены бокаловидные органы саккулинид (Rubiliani, Payen, 1979; Payen et al., 1981).

Подробное описание строения бокаловидных органов (с применением гистологических методов и трансмиссионной электронной микроскопии) было выполнено лишь для базальных представителей корнеголовых, Peltogaster paguri из сем. Peltogastridae и Peltogasterella gracilis из сем. Peltogasterellidae (Miroliubov et al., 2020). В случае S. carcini бокаловидные органы были описаны только на гистологическом уровне (Rubiliani, Payen, 1979). Столоны интерны Polyascus planus (Boschma, 1933) из сем. Polyascidae, врастающие в нервную ткань инфицированных крабов, можно обнаружить на фотографиях гистологических срезов, представленных в работе Хсиао с

соавторами (Hsiao et al., 2016). Эти столоны отличны по своей морфологии от бокаловидных органов, однако авторы не описывают их строение.

Таким образом, столоны ризоцефал, ассоциированные с брюшной нервной цепочкой, характерны, как минимум, для представителей четырёх семейств корнеголовых. При этом подробные описания, необходимые для сравнительного морфологического и эволюционного анализа, имеются только у базальных семейств Rhizocephala (Peltogastridae и Peltogasterellidae), паразитирующих на Anomura (Miroliubov et al., 2020).

Молекулярно-генетические исследования, посвящённые филогении и таксономии корнеголовых, значительно изменили традиционные представления о взаимоотношениях внутри этой группы паразитических ракообразных (H0eg et al., 2019, 2020). Так, некоторые семейства были упразднены (Lernaeodiscidae), а некоторые (в том числе Peltogasterellidae и Polyascidae) выделены впервые. Более того, полиасциды оказались сестринской группой по отношению к большинству «акентрогонид». «Акентрогониды» — группа из нескольких семейств с неразрешёнными филогенетическими отношениями, в т.ч. включающая сем. Thompsoniidae. Для «акентрогонид» характерен видоизменённый жизненный цикл, им также приписывают меньшее воздействие на хозяев (Jespersen, Lützen, 1992). Морфологические подтверждения для обособления сем. Polyascidae найдены не были (H0eg et al., 2020). Более того, у представителей «акентрогонид» строение интерны практически не изучено, а её столоны, ассоциированные с брюшной нервной цепочкой, не описаны вовсе.

Кроме того, практически ничего неизвестно о том, каким образом нервная ткань хозяина реагирует на проникновение столонов. В полости бокаловидных органов Peltogasterella gracilis описана дегенерация нервной ткани, при этом нервная ткань снаружи бокаловидного органа не подвержена каким-либо изменениям (Miroliubov et al., 2020). В случае Peltogaster paguri на ультраструтурном уровне нервная ткань в целом выглядит неповреждённой (Miroliubov et al., 2020). В случае S. carcini было отмечено повреждение ткани при проникновении столонов, но в данной работе была исследована лишь гистология ткани вентральной ганглиозной массы (Rubiliani, Payen, 1979). Таким образом, необходимы дальнейшие исследования строения нервной ткани у здоровых и заражённых особей в разных паразито-хозяинных системах, в т.ч. не только у хозяев-раков-отшельников, но и у хозяев-крабов.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Эволюционные адаптации корнеголовых ракообразных (Rhizocephala) к взаимодействию с нервной системой десятиногих ракообразных (Decapoda)»

Цель и задачи работы

Цель: выявить основные эволюционные тенденции, характерные для инвазивных столонов ризоцефал, взаимодействующих с нервной системой хозяев.

Для выполнения данной цели были поставлены следующие задачи:

1. Описать общий план строения инвазивных столонов у представителей сем. Sacculinidae: Sacculina pugettiae Shiino, 1943; Polyascidae: Polyascus polygeneus (Lützen & Takahashi, 1997, Parasacculinapilosella (Van Kampen & Boschma, 1925) и Thompsoniidae: Diplothylacus sinensis (Keppen, 1877).

2. Проанализировать морфологическое разнообразие мест контакта с нервной системой десятиногих раков у рассматриваемых представителей корнеголовых.

3. Выявить потенциальные механизмы взаимодействия корнеголовых с нервной тканью десятиногих раков.

4. Оценить разнообразие строения инвазивных столонов в контексте современной филогении паразитов. Выделить вероятные пути эволюционной специализации этих столонов.

Научная новизна исследования

Нами впервые были описаны ассоциированные с нервной системой хозяина столоны корнеголовых из сем. Polyascidae (Polyascus polygeneus (Lützen & Takahashi, 1997), Parasacculina pilosella (Van Kampen & Boschma, 1925); представители "Kentrogonida") и сем. Thompsoniidae (Diplothylacus sinensis (Keppen, 1877), представитель "Akentrogonida"). У этих видов ризоцефал столоны, врастающие в брюшную нервную цепочку, не преобразованы в бокаловидные органы и расположены не только в зоне тел нейронов, но и в нейропиле ганглия и нервах заражённых хозяев. В работе также впервые были предложены термины для обозначения различных столонов, врастающих в нервную ткань: инвазивные (любые столоны, расположенные в нервной ткани) и нейропиль-ассоциированные столоны (столоны, не модифицированные в бокаловидные органы). Кроме того, мы впервые выдвинули предположение об утрате бокаловидных органов у полиасцид и «акентрогонид», что, по-видимому, может быть апоморфией для данной клады корнеголовых.

Мы также впервые охарактеризовали места контакта столонов паразита с брюшной нервной цепочкой заражённых ракообразных на ультраструктурном уровне для представителей сем. Sacculinidae и Polyascidae. На основании полученных данных

были выделены признаки, по-видимому, общие для инвазивных столонов ризоцефал и отличающие их от столонов, локализованных в гемоцеле. К таким признакам относятся строение кутикулы, наличие мультиламеллярных телец и большого количества разнообразных везикул. Кроме того, в инвазивных столонах клетки аксиального слоя либо отсутствуют, либо значительно модифицированы по сравнению с клетками трофических столонов. Мы также впервые показали присутствие серотонина серотонина именно в инвазивных столонах, что позволило предположить участие данного нейротрансмиттера в регуляции паразито-хозяинных отношений.

Теоретическая и практическая значимость работы

Специализированные столоны корнеголовых врастают в нервную ткань хозяина. При этом морфология этих инвазивных столонов варьирует в зависимости от таксономической принадлежности вида. Полученные в работе результаты проливают свет на эволюцию подобных сайтов контакта с нервной системой. Так, инвазивные столоны, по-видимому, играли решающую роль во взаимодействии с хозяином, на основе которого шло освоение новых групп хозяев (с Апотига — на другие группы ракообразных, в т.ч. ВгаЛуига, Stomatopoda и Cirripedia). Строение инвазивных столонов, таким образом, вероятно, отражает этот эволюционный путь, в ходе которого бокаловидные органы были заменены на нейропиль-ассоциированные столоны.

Кроме того, нами было описано участие глиальных клеток в ответе на врастание столонов в нервную ткань крабов, что подтверждает их активное участие в иммунных процессах у десятиногих. При этом разрушения непосредственно нервных клеток не происходит, что указывает на вероятный значительный уровень интеграции корнеголовых с нервной системой хозяина. Исследование подобных систем важно в том числе для изучения функционирования нервной системы как таковой.

Не менее важны ризоцефалы и для прикладных исследований. Подавляющее большинство видов корнеголовых паразитирует на десятиногих раках, многие из которых являются важными объектами промысла, или разводятся в аквакультурных хозяйствах. При высокой плотности популяции хозяев экстенсивность инвазии корнеголовых может достигать значительных уровней. В совокупности со способностью ризоцефал вызывать паразитарную кастрацию это может приводить к существенному сокращению численности хозяев, замедлению темпов роста и восстановления численности, что наносит большой экономический ущерб. Более того, активное развитие аквакультурных хозяйств и промысловой добычи видов-хозяев

корнеголовых ставит перед исследователями задачи по разработке средств защиты промысловых популяций, предотвращению их заражения и распространения паразитов.

С другой стороны, ризоцефалы могут быть использованы для контроля численности видов-интродуцентов. Так, многие виды десятиногих, заселяя новые местообитания, могут наносить ущерб нативному сообществу. Благодаря способности корнеголовых вызывать паразитарную кастрацию заражённых особей эти паразиты могут служить регуляторами численности интродуцентов. Основные положения, выносимые на защиту

1. В организации инвазивных столонов можно выделить общие для всех представителей Rhizocephala признаки, указывающие на значительную перестройку и специализацию столонов при проникновении в ганглии десятиногих раков.

2. Инвазивные столоны корнеголовых ракообразных можно разделить на два типа: бокаловидные органы и нейропиль-ассоциированные столоны. При этом инвазивные столоны обладают специфическими морфологическими признаками, характерными для разных семейств Rhizocephala. Подобные отличия могут указывать на различающиеся механизмы воздействия на нервную ткань хозяина.

3. Воздействие ризоцефал на нервную систему хозяев, вероятно, происходит за счёт взаимодействия с глиальными клетками, вплотную оплетающими инвазивные столоны паразита, а также в результате регуляции распределения уровня серотонина в нервной ткани.

4. В эволюции корнеголовых, вероятно, произошла замена бокаловидных органов, расположенных в области тел нейронов, на многочисленные нейропиль-ассоциированные столоны. Бокаловидные органы были утрачены у общего предка сем. Polyascidae и кроновых «акентрогонид».

5. Присутствие инвазивных столонов у всех изученных видов корнеголовых, наряду с особенностями их строения, указывает на исключительную роль инвазивных столонов в регуляции взаимоотношений ризоцефал со своими хозяевами.

Степень достоверности и апробация результатов

Представленные в работе результаты были получены с использованием традиционных морфологических методов: гистологии, трансмиссионной электронной микроскопии и конфокальной лазерной сканирующей микроскопии. Использование такого спектра методик позволило комплексно исследовать строение инвазивных столонов у 4 видов корнеголовых ракообразных. Большая часть представленных в диссертации результатов были опубликованы в зарубежных высокорейтинговых журналах.

Кроме того, материалы работы были представлены на нескольких российских и международных конференциях.

Беломорская студенческая научная сессия — 2019 (Санкт-Петербург, 2019) Беломорская студенческая научная сессия — 2020 (Санкт-Петербург, 2020) Международный молодежный научный форум «ЛОМОНОСОВ-2021» (Москва, 2021) The 5th International Congress on Invertebrate Morphology (ICIM-5) — 2022 (Vienna, 2022) 3th Young Researcher Meeting Morphology — 2022 (online, 2022) Беломорская студенческая научная сессия — 2023 (Санкт-Петербург, 2023) The Crustacean Society Summer meeting — 2024 (Taipei, 2024)

Публикации

По теме диссертации опубликовано 4 статьи в журналах, рекомендованных ВАК РФ и индексируемых международными базами данных научного цитирования Scopus и Web of Science Core Collection; 7 тезисов в трудах конференций.

Структура и объём диссертации

Работа состоит из введения, 4 глав, заключения, выводов и списка литературы. Основная часть работы изложена на 157 страницах, содержит 34 рисунка и 1 таблицу. Список литературы включает 280 наименований (4 на русском языке).

Личный вклад автора

Основная идея работы — сравнительный эволюционный анализ инвазивных столонов корнеголовых — была сформулирована автором самостоятельно. Сбор

большей части материала, вскрытие заражённых ракообразных и фиксация паразитов были осуществлены также ею. Практически все представленные результаты (гистологические и ультратонкие срезы, криосрезы) получены автором самостоятельно. В трёх из четырёх статей соискательница — первый автор, а большая часть работы (не менее 75-78 %) проведена ею.

Исключение составляют сборы части материала по Sacculina pugettiae Shiino, 1943 (выполнены к.б.н. А.А. Миролюбовым и С.А. Илюткиным) и малайзийские сборы Diplothylacus sinensis (выполнены к.б.н. А.А. Миролюбовым). Кроме того, конфокальные изображения вентральной ганглиозной массы берегового краба Hemigrapsus sanguineus (De Haan, 1835), заражённых Polyascus polygeneus, и гистологические срезы двойного заражения Scyra aff. ferox (Ohtsuchi & Kawamura, 2019) были получены к.б.н. А.А. Миролюбовым.

Благодарности

В первую очередь я бы хотела поблагодарить моего научного руководителя — к.б.н. Миролюбова Алексея Александровича, давшего мне возможность обрести какой-то смысл в жизни — в интересной и захватывающей работе, позволяющей потихоньку открывать частички мироздания на примере одной небольшой паразито-хозяинной системы. Я также благодарна А.А Миролюбову за наши поддерживающие отношения, обсуждения эволюции ризоцефал и всё-всё-всё. Я искренне надеюсь, что наша "dream team" будет продолжать работать сообща, несмотря на географическую удалённость друг от друга. Я признательна к.б.н. Андрею Александровичу Добровольскому (28.05.1939-16.07.2019), без которого тема корнеголовых не была реализована на кафедре зоологии беспозвоночных СПбГУ. Мне бы хотелось поблагодарить к.б.н. Дарью Юрьевну Крупенко и д.б.н., профессора Кирилла Владимировича Галактионова за поддержку в ходе выполнения данной работы и ценные комментарии относительно некоторых её аспектов. Я также хотела бы выразить свою искреннюю признательность д.б.н., профессору Андрею Игоревичу Грановичу, благодаря которому моя более ранняя защита диссертации стала возможна, за его терпение к моей сумасбродности и всестороннюю поддержку в ходе тяжёлых 2023-2024 годов. Мне хотелось бы сказать спасибо к.б.н. Ольге Михайловне Корн, без которой невозможен был бы сбор большей части материала и сотрудничество с которой радовало и добавляло энтузиазма во время наших полевых сборов на станции «Восток». Наконец, я хотела бы поблагодарить своего

близкого друга — к.б.н., Кремнева Георгия Артуровича, за помощь с вычиткой текста диссертации и автореферата.

За 8 лет в нашей «ракологической» команде было задействовано большое количество людей, каждому из которых я признательна за их вклад и участие в командной работе: Станиславу Александровичу Илюткину, Наталье Алексеевной Арбузовой, Екатерине Павловне Ласковой, Зьмщеру Матачу, Даше Максимовне Голофеевой и Никите Евгеньевичу Лапшину. Я также хотела бы поблагодарить весь коллектив кафедры зоологии беспозвоночных СПбГУ и лаборатории по изучению паразитических червей и протистов за ценные комментарии и разнообразную помощь, оказываемую в ходе моего обучения в СПбГУ и реализации грантов РНФ. В особенности мне бы хотелось выделить Елизавету Рустамовну Гафарову, мою близкую подругу, Владимира Александровича Крапивина, сотрудницу кафедры эмбриологии СПбГУ и интерна Okinawa Institute of Science and Technology Людмилу Олеговну Полюшкевич, а также Степана Дмитриевича Иванова, аспиранта БИН РАН, поддержавших меня в трудные периоды моей жизни.

Работы была выполнена при поддержке нескольких грантов, в том числе РФФИ № 18-34-00727, РНФ № 21-74-00018 и РНФ № 24-24-00133. Материал собран на базе ННЦБМ ДВО РАН «Восток» в Японском море. Гистологические и ультратонкие срезы были получены с использованием оборудования НП СПбГУ, РЦ «Развитие молекулярных и клеточных технологий». Криосрезы были сделаны на базе ЦКП «Таксон» ЗИН РАН (http://www.ckp-rf.ru/ckp/3038/), а конфокальные изображения получены в РЦ «Микроскопии и микроанализа» НП СПбГУ.

Работа в текущем её виде не была бы представлена, если бы не помощь людей, не связанных с академической средой. Так, я хотела бы поблагодарить свою семью: родителей, Наталью Григорьевну и Дмитрия Юрьевича Лянгузовых; дедушку, Юрия Степановича Лянгузова; тётю, Наталью Юрьевну Иванову; и младшую сестрёнку, Анну Дмитриевну Лянгузову, за их всестороннюю моральную и финансовую поддержку. Кроме того, в последние четыре года мою стабильность поддерживали регулярные тренировки по айкидо, и я признательна, в первую очередь, Морихэю Уэсибе (яп. ffi^

за создание этой системы, а также своему сенсею, шихану айкидо, 6 дан, Владимиру Тагировичу Тагирову и коллеге по боевому искусству Павлу Петровичу Финогееву. Неоценимый вклад в данную диссертацию также внесли мои домашние

любимцы: кошка Иджи и кот Грей. Я также благодарна «Линзе» и всем её сотрудникам и обитателям (в особенности Ривалю Рашитову и Ивану Кузнецову) за моральную поддержку в течение последнего года подготовки текста диссертации.

Обзор литературы 1. Паразитизм среди ракообразных (Arthropoda: Pancrustacea: "Crustacea")

Ракообразные — богатая видами группа многоклеточных животных, представители которой занимают все экологические ниши (Castro et al., 2016). Среди "Crustacea" многие группы независимо переходили к паразитическому образу жизни (Smit et al., 2019). Большая часть ракообразных-паразитов ассоциирована с хозяевами, обитающих в морских или пресных водоёмах (Balian et al., 2008; Whiteley, 2011; Poore, Thiel, 2020), за исключением пятиусток (Pentastomida), освоивших наземную среду (Self, 1969; Christoffersen, Assis, 2013).

Морфологические адаптации к паразитическому образу жизни у ракообразных могут включать: редукцию или полную потерю конечностей, слияние сегментов вплоть до полной их утраты и, в том числе, полное преображение тела взрослого организма (Smit et al., 2019). Часть систем органов и тканей (в первую очередь это относится к половой системе) у паразитических раков может быть гипертрофирована (Trilles, Hipeau-Jacquotte, 2012). Кроме того, для многих паразитических ракообразных характерен ярко выраженный половой диморфизм (Williams, Bunkley-Williams, 2019). Самки ведут паразитический образ жизни, а самцы либо отмирают сразу после оплодотворения, либо, будучи карликовыми, постоянно связаны с организмом взрослой женской особи.

Представители "Crustacea" могут заселять самые разные участки тела живых организмов (Smit et al., 2019). Эктопаразиты обитают на поверхности тела хозяина, заселяя широкий спектр беспозвоночных и позвоночных животных (Boxshall, Lincoln, 1983; Hopla et al., 1994). Некоторые крупные таксоны ракообразных, например, карповые вши (Branchiura), ведут исключительно эктопаразитический образ жизни (Poly, 2008; Neethling, Avenant-Oldewage, 2016). Эндопаразиты связаны в основном с полостью тела животных-хозяев (Smit et al., 2019; Martin et al., 2022). Некоторые паразитические ракообразные (представители Isopoda, Pentastomida) обитают в начальных отделах пищеварительной и дыхательной системы позвоночных (Lavrov et al., 2004; Williams, Boyko, 2012; Christoffersen, Assis, 2013). Кроме того, для "Crustacea" может быть характерен мезопаразитизм, причём в основном этот термин применяют к

паразитическим Copepoda (Hirose, Uyeno, 2014, 2016). Передняя часть тела мезопаразита проникает в ткани хозяина, а задняя остаётся связана с внешней средой.

Далее будет представлен краткий обзор некоторых таксонов паразитических ракообразных, претерпевших наиболее значительные морфологические перестройки.

Среди веслоногих ракообразных (Copepoda) многократно и независимо происходил переход к паразитическому образу жизни (Bresciani, 1986; Johnson et al., 2004). Свободноживущие копеподы являются важнейшим компонентом планктонных и бентосных сообществ (St0ttrup, 2000; Ki0rboe, 2011), а паразитические — заражают широкий спектр хозяев (от губок до иглокожих и рыб, а также морских млекопитающих) и паразитируют на разных участках их тела (Johnson et al., 2004). Эктопаразиты (например, представители сем. Caligidae) сохраняют признаки свободноживущих родственников, такие как сегментированные тело, разделенное на тагмы, и конечности (Balian et al., 2008; Smit et al., 2019). Мезопаразитические копеподы (например, семейства Pennellidae, Sphyriidae, Herpyllobiidae, некоторые Chitonophilidae) видоизменены гораздо сильнее (Lützen, 1964; Tunnicliffe et al., 2008; Smit et al., 2019; Dippenaar, Sebone, 2022). Внутренний отдел тела самки, эндосома, расположен внутри хозяина, а внешний отдел, эктосома, постоянно связан с внешней средой (Марченков, 2001). Эндосома выполняет трофическую функцию, поглощая питательные вещества из крови или полости тела хозяина. Эктосома содержит репродуктивные органы. Эндопаразитические копеподы (например, семейства Philichthyidae, Iveidae, Chordeumiidae, некоторые Chitonophilidae) видоизменены наиболее сильно: их трофический и репродуктивный отдел тела расположены внутри организма хозяина (0stergaard, Bresciani, 2000; Huys et al., 2002; Tung et al., 2014; Couto, Paschoal, 2021). Как эндопаразиты, так и эндосома мезопаразитов зачастую развивают трофическую систему трубкообразных столонов, распространяющуюся в ткани и органы хозяина.

Таксон Thecostraca объединяет необычных представителей ракообразных: как паразитов, так и свободноживущих прикреплённых организмов (Pérez-Losada, Ho0eg, et al., 2012; Ewers-Saucedo et al., 2019). Переход к паразитическому образу жизни в пределах этой группы происходил независимо и несколько раз. Исключительно паразитическими формами представлены как базальные таксоны — Facetotecta, Ascothoracida — так и кроновые, Rhizocephala (Pérez-Losada et al., 2012; H0eg et al., 2012;

Ewers-Saucedo et al., 2019). Acrothoracica и Thoracica — ведущие прикрепленный образ жизни организмы-фильтраторы (Lin et al., 2016; H0eg et al., 2009). Для большинства Thecostraca характерно наличие свободноплавающей личинки, которая в результате метаморфоза даёт начало взрослому организму — прикреплённой или паразитической форме.

К Thecostraca также относят эктопаразитических ракообразных из группы Tantulocarida, обладающих сложным жизненным циклом и заражающих в основном бентосных раков (Boxshall, Lincoln, 1983; Petrunina et al., 2014; Petrunina et al., 2018). Паразитирующая стадия и партеногенетического, и амфимиктического поколения представлена личинкой тантулюсом, прикрепляющейся к поверхности тела хозяина (Huys et al., 1993). Личинка прокалывает покровы рачка с помощью стилета, в результате чего в покровах образуется отверстие. Передняя кишка тантулюса разрастается до системы питающих столонов, расположенных в гемоцеле хозяина (Petrunina et al., 2018).

Базальные текостраки, Facetotecta, описаны и известны исключительно по свободноживущим личиночным стадиям — науплиусам и y-циприсам (Grygier et al., 2019; Kolbasov et al., 2021; Pérez-Losada et al., 2002). На паразитический образ жизни фацетотект указывает способность циприсов этих ракообразных после обработки экдизоном давать начало ипсигону — червеобразной стадии, сходной с вермигоном — инвазивной стадии корнеголовых раков (Glenner et al., 2008; Dreyer et al., 2023).

Мешкогрудые раки, Ascothoracida, представляют собой группу исключительно паразитических ракообразных, заражающих коралловых полипов и иглокожих (Вагин, 1976; Poulin, Hamilton, 1997; Pérez-Losada et al., 2002). Среди аскоторацид есть экто-, мезо- и эндопаразитические формы. Тело эктопаразитических самок (например, представители рода Synagoga Norman, 1888) заключено в мантию, образующую двустворчатый карапакс, и разделено на голову и сегментированную грудь (Grygier, Ohtsuka, 1995; Kolbasov et al., 2019; Kolbasov et al., 2020). В мантии расположена пищеварительная и половая система животного. У мезо- и эндопаразитов (наиболее модифицированные представители — Dendrogaster Knipovich, 1890 и Ulophysema Brattstrom, 1936) утрачиваются тагмозис и сегментация, а мантия разрастается (Grygier, 1981; Bresciani, Jespersen, 1985). За счет покровов последней происходит поглощение питательных веществ из тела хозяина.

Среди морских желудей и морских уточек (Thoracica) примеры паразитизма редки (Long, Waggoner, 1993; Kolbasov et al., 2016; Sabadel et al., 2022). В теле свободноживущих морских уточек выделяют прикрепленную к субстрату ножку, на которой расположено остальное тело животного (цефалон и торакс). С последним связаны выводковая камера и питающие конечности — торакоподы, называемые усоножками (Chan, 2001; Pérez-Losada et al., 2014). У паразитических морских уточек (рода Anelasma Darwin, 1852 и Rhizolepas Day, 1939) грудные конечности редуцированы, а для питания используется преобразованная в систему трофических столонов ножка, погружённая в тело хозяина (Day, 1939; Ommundsen et al., 2015; Rees et al., 2019; Sabadel et al., 2022; Watanabe et al., 2023).

Сестринская группа к Thoracica — корнеголовые ракообразные — облигатные паразиты других представителей "Crustacea" (H0eg, 1995; H0eg, Lützen, 1995; Pérez-Losada et al., 2002; Ewers-Saucedo et al., 2019). Среди паразитических раков (как внутри таксона Thecostraca, так и за его пределами) ризоцефалы представляют одну из самых сильно модифицированных групп паразитов (Walker, 2001; Waiho et al., 2021). Науплиусы и циприсы корнеголовых морфологически схожи с личинками характерными для свободноживущих Cirripedia — морских уточек и жёлудей Thoracica (H0eg et al., 1998; Pérez-Losada et al., 2009). Паразитирующая стадия ризоцефал — взрослая самка — сильно видоизменена в результате адаптации к эндопаразитическому образу жизни (H0eg, 1995; Bresciani, H0eg, 2001; Miroliubov, 2017). В теле самки выделяют два отдела: экстерна — наружная временная структура, внутри которой развиваются личинки, и интерна — внутренняя часть, представленная разветвлённой сетью столонов и выполняющая трофическую функцию (Bresciani, H0eg, 2001; Alvarez et al., 2010; Miroliubov, 2017; Arbuzova et al., 2022, 2023). Самцы ризоцефал редуцированы до сперматогенной ткани, встроенной в экстерну самки (H0eg, 1987a; Glenner, Hoeg, 1994; Lützen et al., 1996). Таким образом, у взрослых особей отсутствуют конечности, сегментация, пищеварительная, выделительная системы; более того, к взрослым особям ризоцефал неприменимы понятия осей тела (H0eg, 1995; Miroliubov et al., 2019; Arbuzova et al., 2023).

Корнеголовые ракообразные паразитируют на других представителях "Crustacea" (H0eg, 1995; Waiho et al., 2021). Представители самых базальных семейств используют в качестве хозяев десятиногих из группы Anomura (Jung et al., 2019; H0eg et

al., 2020). Более продвинутые группы корнеголовых освоили в качестве хозяев настоящих крабов (Decapoda: Brachyura), других представителей "высших раков" (Caridea, Stomatopoda, Cumacea и др.), а также морских желудей (Thecostraca: Thoracica: Balanomorpha) (Glenner, Hebsgaard, 2006; H0eg et al., 2019).

Одной из примечательных особенностей корнеголовых является их способность к паразито-хозяинному манипулированию, выражающемуся в значительной модификации морфологии, физиологии и поведения заражённых особей хозяев (Rasmussen, 1959; Innocenti et al., 2003; Kristensen et al., 2012; Waiho et al., 2021; Feng et al., 2023). Столоны интерны, вероятно, опосредуют паразито-хозяинные отношения, в т.ч. благодаря наличию специализированных сайтов контактов с нервной системой (Nielsen, 1970; Rubiliani, Payen, 1979; Miroliubov et al., 2020). При этом имеющиеся данные о механизмах паразито-хозяинного взаимодействия весьма разрознены и были получены только для очень ограниченного набора видов. Так, места контакта с нервной системой подробно морфологически охарактеризованы только у корнеголовых из сем. Peltogastridae и Peltogasterellidae, паразитирующих на раках-отшельниках (Nielsen, 1970a; Miroliubov et al., 2020); столоны, врастающие в нервную ткань, описаны для сем. Sacculinidae, использующих в качестве хозяев настоящих крабов (Rubiliani, Payen, 1979; Payen et al., 1981). Значительное влияние на хозяев оказывают, согласно опубликованным работам, именно корнеголовые из когда-то обширного семейства Sacculinidae (Rasmussen, 1959; Phillips, Cannon, 1978; Andrieux et al., 1981; Larsen et al., 2013; Tobias et al., 2021). О молекулярных механизмах взаимодействия между корнеголовыми и хозяевами-ракообразными также известно очень мало, а имеющиеся данные касаются в основном саккулинид (Waiho et al., 2020; Blakeslee et al., 2021; Tobias et al., 2021). Таким образом, по имеющимся в литературе сведениям практически невозможно сделать какие-либо предположения об эволюционных направлениях взаимодействия корнеголовых с нервной системой хозяев.

Более того, представления об эволюции внутри Rhizocephala претерпели сильные изменения с появлением молекулярных методов анализа и построением новой филогении (H0eg et al., 2019, 2020). В результате были выделены новые семейства и рода корнеголовых, а таксоны Kentrogonida и Akentrogonida оказались полифилетичны (Рисунок 1). Данные группы были выделены на основе особенностей реализации жизненного цикла: у самок «кентрогонид» присутствует стадия кентрогона (H0eg, 1985;

Glenner, Hoeg, 1994; Glenner et al., 2000; Glenner, 2001), а у «акентрогонид» нет (H0eg, 1990; H0eg, Rybakov, 1992; Lützen et al., 1996; Glenner et al., 2010). Существенные различия присутствуют и в морфологии экстерн ризоцефал из этих групп (Jespersen, Lützen, 1992; Alvarez et al., 2010; Glenner et al., 2010; H0eg et al., 2020). Помимо этого, как считалось, заражение «кентрогонидами» приводит к более значительным изменениям в организме хозяина (Jespersen, Lützen, 1992; Lützen, Jespersen, 1992; H0eg, 1995). «Кентрогониды» заражают исключительно представителей Decapoda (причём более базальные представители — в основном Anomura, а более продвинутые — Brachyura), а «акентрогониды» паразитируют на более широком спектре хозяев-ракообразных (H0eg et al., 2019).

Рисунок 1. Филогенетическое дерево Rhizocephala (по статье H0eg et а1., 2020). Семейства, представители которых были использованы в работе, выделены цветом. Справа подписаны бывшие подотряды корнеголовых ракообразных. др. — другие.

Ещё одно значительное видоизменение таксономии касается семейства Sacculinidae (в основном паразиты настоящих крабов), содержавшего наибольшее число видов (Glenner, Hebsgaard, 2006; H0eg et al., 2020). Саккулиниды распались на два семейства: собственно, Sacculinidae и неродственное им сем. Polyascidae (стоит отметить, что представители обеих групп способны значительно влиять на организм

заражённых крабов). Сем. Polyascidae оказалось сестринской кладой к большинству "акентрогонид", а родственным саккулинидам — сем. Parthenopeidae, паразитов креветок-призраков и лобстеров (H0eg et al., 2020). Сем. Mycetomorphiidae (паразиты креветок), которое по морфологии экстерн сближали с «акентрогонидами» (продвинутой группой), стало сгруппировано с практически самым базальным семейством Peltogastridae, паразитов в основном представителей Anomura (H0eg et al., 2019). Более точные отношения между указанными кладами оказались неразрешёнными (Рисунок 1). Таким образом, первыми хозяевами корнеголовых, по-видимому, были представители Anomura, но каким образом шла дальнейшая эволюция группы и как менялись (если менялись) места контакта с нервной системой хозяев остаётся неизученным (Glenner, Hebsgaard, 2006; H0eg et al., 2019, 2020).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Лянгузова Анастасия Дмитриевна, 2025 год

Список литературы

1. Вагин, В. Л. Мешкогрудые раки Ascothoracida. / Л. В. Вагин // — Казань: Изд-во Казанского Университета. — 1976 — 141 с.

2. Лапшин, Н. Е. Интеграция в нервную систему хозяина и структура интерны представителя паразитических ракообразных Lernaeodiscus sp. (Cirripedia: Rhizocephala): выпускная квалификационная работа бакалавра. / Н. Е. Лапшин // Санкт-Петербург: Санкт-Петербургский Государственный университет — 2021. — 39 с.

3. Лянгузова, А. Д. Морфо-функциональная дифференциация интерны корнеголовых ракообразных и характер взаимодействия модифицированных столонов с нервной системой хозяина: выпускная квалификационная работа магистра. / А.Д. Лянгузова // Санкт-Петербург: Санкт-Петербургский Государственный университет. — 2022. — 108 с.

4. Марченков, А. В. Особенности паразитизма веслоногих и корнеголовых раков. / А. В. Марченков // Паразитология. — 2001. — T. 35. — №. 2 — С. 89-97.

5. Adamo, S. A. Modulating the Modulators: Parasites, Neuromodulators and Host Behavioral Change. / S. A. Adamo // Brain, Behavior and Evolution. — 2002. — T. 60. — №. 6. — C. 370-377. https://doi.org/10.1159/000067790

6. Adamo, S. A. Parasites: Evolution's neurobiologists. / S. A. Adamo // Journal of Experimental Biology. — 2013. — T. 216. — №. 1. — C. 3-10. https://doi.org/10.1242/jeb.073601

7. Alvarez, F. Osmoregulatory disturbances induced by the parasitic barnacle Loxothylacus texanus (Rhizocephala) in the crab Callinectes rathbunae (Portunidae). / F. Alvarez, G. Alcaraz, & R. Robles // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. — 2002. — T. 278. — №. 2. — C. 135-140. https://doi.org/10.1016/S0022-

0981(02)00330-1

8. Alvarez, F. Anatomy of virgin and mature externae of Loxothylacus texanus, parasitic on the dark blue crab Callinectes rathbunae (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala: Sacculinidae). / F. Alvarez, J. L. Bortolini, & J. T. H0eg // Journal of Morphology. — 2010. — T. 271. — №. 2. — C. 190-199. https://doi.org/10.1002/jmor.10790

9. Alvarez, F. The effects of parasitism by the barnacle Loxothylacuspanopaei (Gissler) (Cirripedia: Rhizocephala) on growth and survival of the host crab Rhithropanopeus harrisii (Gould) (Brachyura: Xanthidae). / F. Alvarez, A. H. Hines, & M. L. Reaka-Kudla // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. — 1995. — T. 192. — №. 2. — C. 221-232. https://doi.org/10.1016/0022-0981(95)00068-3

10. Andrieux, N. Métabolisme protéique et parasitisme chez le crabe Carcinus maenas. Effets de Sacculina carcini (Crustacé, Rhizocéphale) sur les protéines sériques et épidermiques de l'hôte. / N. Andrieux, C. Herberts, & J. D. Frescheville // Canadian Journal of Zoology. — 1980. — T. 58. — №. 4. — C. 580-585. https://doi.org/10.1139/z80-081

11. Andrieux, N. Relations hote-parasite entre les Crustacés Carcinus et Sacculina carcini: Effet d'extraits de parasite et de l'hémolymphe de crabe infesté sur le protéinogramme de crabes sains. / N. Andrieux, C. Herberts, & J. De Frescheville // Annales de Parasitologie Humaine et Comparée. — 1981. — T. 56. — №. 4. — \. 441-448. https://doi.org/10.1051/parasite/1981564441

12. Antel, J. P. Glial Cells as Regulators of Neuroimmune Interactions in the Central Nervous System. / J. P Antel, B. Becher, S. K. Ludwin, A. Prat, & F. J. Quintana // The Journal of Immunology. — 2020. — T. 204. — №. 2. — C. 251-255. https://doi .org/10.4049/j immunol.1900908

13. Arbuzova, N. A. Functional role of lacunar and muscular systems in the externa of

Peltogasterella gracilis (Cirripedia: Rhizocephala). / N. A. Arbuzova, A. D. Lianguzova, S. A. Iliutkin, E. P. Laskova, E. R. Gafarova, & A. A. Miroliubov // Journal of Morphology. — 2023. — T. 284. — №. 10. — e21635. https://doi .org/10.1002/jmor.21635

14. Arbuzova, N. A. Muscular system of Peltogasterella gracilis - A rhizocephalan with the modular type organization of interna. / N. A. Arbuzova, A. D. Lianguzova, N. E. Lapshin, E. P. Laskova, & A. A. Miroliubov // Zoologischer Anzeiger. — 2022. — T. 297. — C. 1-7. https://doi.org/10.1016/jjcz.2022.01.004

15. Austin, P. J. The neuro-immune balance in neuropathic pain: Involvement of inflammatory immune cells, immune-like glial cells and cytokines. / P. J. Austin, &

G. Moalem-Taylor // Journal of Neuroimmunology. — 2010. — T. 229. — №. 1-2. — C. 26-50. https://doi.org/10.1016/jjneuroim.2010.08.013

16. Bacqué-Cazenave, J. Serotonin in animal cognition and behavior. / J. Bacqué-Cazenave, R. Bharatiya, G. Barrière, J. P. Delbecque, N. Bouguiyoud, G. Di Giovanni, D. Cattaert, & P. De Deurwaerdère // International Journal of Molecular Sciences. — 2020. — T. 21. — №. 5. — C. 1-23. https://doi.org/10.3390/ijms21051649

17. Bakker, T. C. M. Adaptive parasitic manipulation as exemplified by acanthocephalans. / T. C. M. Bakker, J. G. Frommen, & T. Thunken // Ethology. — 2017. — T. 123. — №. 11. — C. 779-784. https://doi.org/10.1111/eth.12660

18. Balian, E. V. Freshwater Animal Diversity Assessment. / E. V. Balian, C. Lévêque,

H. Segers, & K. Martens // Springer Netherlands. — 2008 https://doi.org/10.1007/978-1-4020-8259-7

19. Barquilla, A. Trypanosome TOR as a major regulator of cell growth and autophagy. / A. Barquilla, & M. Navarro // Autophagy. — 2009. — T. 5. — №. 2. — C. 256-258.

https://doi.org/10.4161/auto.5.2.7591

20. Bateman, A. W. Barnacles vs bullies: Modelling biocontrol of the invasive European green crab using a castrating barnacle parasite. / A. W. Bateman, A.Buttenschon, K. D. Erickson, & N. G. Marculis // Theoretical Ecology. — 2017. — T. 10. — №. 3. — C. 305-318. https://doi.org/10.1007/s12080-017-0332-5

21. Baudoin, M. Host Castration as a Parasitic Strategy. / M. Baudoin // Evolution. — 1975. — T. 29. — №. 2. — C. 335. https://doi.org/10.2307/2407221

22. Belgrad, B. A. Rhizocephalan infection modifies host food consumption by reducing host activity levels. / B. A. Belgrad, & B. D. Griffen // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. — 2015. — T. 466. — C. 70-75. https://doi.org/10.1016/jjembe.2015.02.011

23. Berenreiterovâ, M. The distribution of Toxoplasma gondii cysts in the brain of a mouse with latent toxoplasmosis: Implications for the behavioral manipulation hypothesis. / M. Berenreiterovâ, J. Flegr, A. A. Kubena, & P. Nemec // PLoS ONE.

— 2011. — T. 6. — №. 12. — e28925. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0028925

24. Bergum, H. O. T. A morphological study of the parasitic barnacle. / H. O. T. Bergum

— Берген: Университет Бергена. — 2016.

25. Biron, D. G. Host-parasite molecular cross-talk during the manipulative process of a host by its parasite. / D. G. Biron, & H. D. Loxdale // Journal of Experimental Biology. — 2013. — Т. 216. — №. 1. — С. 148-160. https://doi.org/10.1242/jeb.073825

26. Bishop, R. K. Morbid behaviour of the commercial sand crab, Portunus pelagicus (L.), parasitized by Sacculina granifera Boschma, 1973 (Cirripedia: Rhizocephala). / R. K. Bishop, & L. R. G. Cannon // Journal of Fish Diseases. — 1979 — Т. 2. — №. 2. — С. 131-144. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.1979.tb00150.x

27. Blakeslee, A. M. H. Invasion of the body snatchers: The role of parasite introduction in host distribution and response to salinity in invaded estuaries. / A. M. H. Blakeslee, D. L. Pochtar, A. E. Fowler, C. S. Moore, T. S. Lee, R. B. Barnard, K. M. Swanson, L. C. Lukas, M. Ruocchio, M. E. Torchin, A. W. Miller, G. M. Ruiz, & C. K. Tepolt // Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. — 2021. — T. 288. — №. 1953. — C. 1-10. https://doi.org/10.1098/rspb.2021.0703

28. Bocquet-Vedrine, J. Monographie de Chthamalophilus delagei J. Bocquet-Vedrine, Rhizocephale parasite de Chthamalus stellatus (Poli). / J. Bocquet-Vedrine // Cahiers de Biologie Marine. — 1961. — T. 2. — C. 459-589.

29. Boillat, M. Neuroinflammation-Associated Aspecific Manipulation of Mouse Predator Fear by Toxoplasma gondii. / M. Boillat, P. M. Hammoudi, S. K. Dogga, S. Pages, M. Goubran, I. Rodriguez, & D. Soldati-Favre // Cell Reports. — 2020. — T. 30. — №. 2. — C. 320-334. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2019.12.019

30. Boone, E. J. Characterization of settlement cues used by the rhizocephalan barnacle Loxothylacus texanus. / E. J. Boone, A. A. Boettcher, T. D. Sherman, & J. J. O'Brien // Marine Ecology Progress Series. — 2003. — T. 252. — C. 187-197. https://doi.org/10.3354/meps252187

31. Bortolini, J. L. Hepatopancreas alteration of the blue crab Callinectes sapidus by the rhizocephalan barnacle Loxothylacus texanus. / J. L. Bortolini, & F. Alvarez // Journal of Invertebrate Pathology. — 2008. — T. 99. — №. 3. — C. 354-356. https://doi.org/10.1016/jjip.2008.08.004

32. Boschma, H. Briarosaccus callosus, a new genus and new species of a rhizocephalan parasite of Lithodes agassizii Smith. / H. Boschma // Proceedings of the United States National Museum. — 1930. — T. 76. — C. 1-8.

33. Bower, S. M. Morphology of the Externa of Briarosaccus callosus Boschma

(Rhizocephala) and the Relationship with Its Host Lithodes aequispina Benedict (Anomura). / S. M. Bower, & N. A. Sloan // The Journal of Parasitology. — 1985. — T. 71. — №. 4. — C. 455-463. https://doi.org/10.2307/3281537

34. Boxshall, G. A. Tantulocarida, a New Class of Crustacea Ectoparasitic on other Crustaceans. / G. A. Boxshall, & R. J. Lincoln // Journal of Crustacean Biology. — 1983. — T. 3. — №. 1. — C. 1-16. https://doi.org/10.2307/1547849

35. Bresciani, J. The fine structure of the integument of free-living and parasitic copepods. / J. Bresciani // Acta Zoologica. — 1986. — T. 67. — №. 3. — C. 125145. https://doi.org/10.1111/j.1463-6395.1986.tb00857.x

36. Bresciani, J. Comparative ultrastructure of the root system in rhizocephalan barnacles (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala) / J. Bresciani, & J. T. H0eg // Journal of Morphology. — 2001. — T. 249. — №. 1. — C. 9-42.

https://doi .org/10.1002/j mor.1039

37. Bresciani, J. The Ultrastructure of the Integument of Ulophysema oeresundense Brattstrom, 1936 (Crustacea, Ascothoracica). / J. Bresciani, & A. Jespersen // Journal Of Crustacean Biology. — 1985. — T. 5. — №. 1. — C. 146-159.

38. Bubak, A. N. The stalk-eyed fly as a model for aggression - is there a conserved role for 5-HT between vertebrates and invertebrates? / A. N. Bubak, M. J. Watt, J. D. W. Yaeger, K. J. Renner, & J. G. Swallow // Journal of Experimental Biology. — 2020. — T. 223. — №. 1. — jeb132159. https://doi.org/10.1242/jeb.132159

39. Castro, P. Treatise on Zoology — Anatomy, Taxonomy, Biology. The Crustacea, Volume 9 Part C (2 vols): Brachyura. / P. Castro, P. Davie, D. Guinot, F. Schram, & C. Von Vaupel Klein. // Лейден: BRILL. — 2016. — Т. 6. — Ч. C. https://doi.org/10.1163/9789004190832

40. Caveney, S. Ancestry of neuronal monoamine transporters in the Metazoa. / S.

Caveney, W. Cladman, L. Verellen, & C. Donly // Journal of Experimental Biology.

— 2006. — T. 209. — №. 24. — C. 4858-4868. https://doi.org/10.1242/jeb.02607

41. Cezilly, F. Host-manipulation by parasites: Towards a neuroethological approach? / F. Cezilly // Ideas in Ecology and Evolution. — 2009. — T. 2 — C. 7-8. https://doi.org/10.4033/iee.2009.2.2.c

42. Chan, B. K. K. Studies on Tetraclita Squamosa and Tetraclita Japonica (Cirripedia: Thoracica). I: Adult Morphology. / B. K. K. Chan // Journal of Crustacean Biology.

— 2001. — T. 21. — №. 3. — C. 616-630. https://doi.org/10.1163/20021975-99990163

43. Chan, B. K. K. The evolutionary diversity of barnacles, with an updated classification of fossil and living forms. / B. K. K. Chan, N. Dreyer, A. S. Gale, H. Glenner, C. Ewers-Saucedo, M. Pérez-Losada, G. A. Kolbasov, K. A. Crandall, & J. T. H0eg // Zoological Journal of the Linnean Society. — 2021. — T. 193. — №. 3. — C. 789846. https://doi.org/10.1093/zoolinnean/zlaa160

44. Chan, B. K. K. Distribution, adult morphology, and larval development of Sacculina sinensis (Cirripedia: Rhizocephala: Kentrogonida) in Hong Kong coastal waters. / B. K. K. Chan, D. Y. N. Poon, & G. Walker // Journal of Crustacean Biology. — 2005.

— T. 25. — №. 1. — C. 1-10.

45. Chassard-Bouchaud, C. On the Fine Structure of the Regressing Ecdysial Glands of Carcinus maenas L. (Crustacea Decapoda) Parasitized by Sacculina carcini Thompson. / C. Chassard-Bouchaud, & M. Hubert // Cell Tissue Research. — 1976.

— T. 167. — C. 351-361.

46. Chaves da Silva, P. G. Adult Neurogenesis in the Crayfish Brain: The Hematopoietic Anterior Proliferation Center Has Direct Access to the Brain and Stem Cell Niche. / P. G. Chaves da Silva, J. L. Benton, D. C. Sandeman, & B. S. Beltz // Stem Cells and

Development. — 2013. — Т. 22. — №. 7. — С. 1027-1041. https://doi.org/10.1089/scd.2012.0583

47. Chaves da Silva, P. G. The Crustacean Central Nervous System in Focus: Subacute Neurodegeneration Induces a Specific Innate Immune Response. / P. G. Chaves da Silva, C. L. Correa, S. L. de Carvalho, & S. Allodi // PLoS ONE. — 2013. — Т. 8. — №. 11. — e80896. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0080896

48. Chen, H.-Y. Interaction between the parasitic barnacle Polyascusplanus (Cirripedia: Rhizocephala) and its brachyuran host Metopograpsus thukuhar during the development of the externa of the parasite: Control of the gonadal development and vitellogenin synthesis of the host. / H.-Y. Chen, C.-H. Lee, C.-C. Tsai, H.-C. Liu, S.-L. Yang, & C.-Y. Lee. // Frontiers in Marine Science. — 2022. — T. 9. — 1073459. https://doi.org/10.3389/fmars.2022.1073459

49. Christoffersen, M. L. A systematic monograph of the Recent Pentastomida, with a compilation of their hosts. / M. L. Christoffersen, & J. E. D. Assis // Zoologische Mededelingen. — 2013. — T. 87. — 206 c.

50. Collis, S. A.. The Morphology of the Naupliar Stages of Sacculina carcini (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / S. A. Collis, & G. Walker // Acta Zoologica. — 1994. — T. 75. — №. 4. — C. 297-303. https://doi.org/10.1111/j.1463-6395.1994.tb00966.x

51. Cools, R. Serotonin and Dopamine: Unifying Affective, Activational, and Decision Functions. / R. Cools, K. Nakamura, & N. D. Daw // Neuropsychopharmacology. — 2011. — T. 36. — №. 1. — C. 98-113. https://doi.org/10.1038/npp.2010.121

52. Cornet, S. Immune depression induced by acanthocephalan parasites in their intermediate crustacean host: Consequences for the risk of super-infection and links with host behavioural manipulation. / S. Cornet, N. Franceschi, A. Bauer, T. Rigaud, & Y. Moret // International Journal for Parasitology. — 2009. — T. 39. — №. 2. —

C. 221-229. https://doi.org/10.1016Zj.ijpara.2008.06.007

53. Corral, J. M. Differences in the parasitic effects of a bopyrid isopod and rhizocephalan barnacle on the portunid crab, Charybdis bimaculata. / J. M. Corral, Y. Henmi, & G. Itani // Parasitology International. — 2021. — T. 81. — 102283. https://doi .org/10.1016/j.parint.2021.102283

54. Couto, J. V. Two new species of Colobomatus Hesse, 1873 (Crustacea: Philichthyidae) parasitic in the interorbital canals of Holocentrus spp. (Holocentriformes: Holocentridae) in the South Atlantic Ocean. / J. V. Couto, & F. Paschoal // Systematic Parasitology. — 2021. — T. 98. — №. 5-6. — C. 753-764. https://doi .org/10.1007/s11230-021-10009-1

55. Cragnolini, A. Regional brain susceptibility to neurodegeneration: What is the role of glial cells? / A. Cragnolini, G. Lampitella, A. Virtuoso, I. Viscovo, F. Panetsos, M. Papa, & G. Cirillo // Neural Regeneration Research. — 2020. — T. 15. — №. 5. — C. 838-842. https://doi.org/10.4103/1673-5374.268897

56. da Silva, R. C. Toxoplasma gondii: Host-parasite interaction and behavior manipulation. / R. C. da Silva, & H. Langoni // Parasitology Research. — 2009. — T. 105. — №. 4. — C. 893-898. https://doi.org/10.1007/s00436-009-1526-6

57. Day, J. H. A new cirripede parasite—Rhizolepas annelidicola, nov. hen. et sp. / J. H. Day // Proceedings of the Linnean Society of London. — 1939. — T. 151. — №. 2. — C. 64-79.

58. Dippenaar, S. M. Morphology of Three Sphyrion (Copepoda: Siphonostomatoida: Sphyriidae) Species Infecting Teleost Fishes off South Africa with the First Description of Males of Two Species. / S. M. Dippenaar, & M. M. Sebone // Diversity. — 2022. — T. 14. — №. 11. — 929 c. https://doi.org/10.3390/d14110929

59. Dreyer, N. Single-specimen systematics resolves the phylogeny and diversity

conundrum of enigmatic crustacean y-larvae. / N. Dreyer, F. Palero, M. J. Grygier, B. K. K. Chan, & J. Olesen // Molecular Phylogenetics and Evolution. — 2023. — T. 184. — 107780. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2023.107780

60. Ellen, C. W. Modulatory actions of dopamine and serotonin on insect antennal lobe neurons: Insights from studies in vitro. / C. W. Ellen, & A. R. Mercer // Journal of Molecular Histology. — 2012. — T. 43. — №. 4. — C. 401-404.

https://doi .org/10.1007/s10735-012-9401-7

61. Ewers-Saucedo, C. Towards a barnacle tree of life: Integrating diverse phylogenetic efforts into a comprehensive hypothesis of thecostracan evolution. / C. Ewers-Saucedo, C. L. Owen, M. Pérez-Losada, J. T. H0eg, H. Glenner, B. K. K. Chan, & K. A. Crandall // PeerJ. — 2019. — T. 7. — e7387. https://doi.org/10.7717/peerj.7387

62. Fabritius, H. O. Functional adaptation of crustacean exoskeletal elements through structural and compositional diversity: A combined experimental and theoretical study. / H. O. Fabritius, A. Ziegler, M. Friák, S. Nikolov, J. Huber, B. H. M. Seidl, S. Ruangchai, F. I. Alagboso, S. Karsten, J. Lu, A. Janus, M. Petrov, L. F. Zhu, P. Hemzalová, S. Hild, D. Raabe, & J. Neugebauer // Bioinspiration and Biomimetics. — 2016. — T. 11. — №. 5. — 055006. https://doi.org/10.1088/1748-3190/11/5/055006

63. Fazhan, H. Sexual dimorphism in mud crabs: A tale of three sympatric Scylla species. / H. Fazhan, K. Waiho, Y. Fujaya, N. Rukminasari, H. Ma, & M. Ikhwanuddin // PeerJ. — 2021. — T. 9. — C. 1-18. https://doi.org/10.7717/peerj.10936

64. Fazhan, H. Gonadal Degeneration and Hepatopancreas Alteration in Orange Mud Crab Scylla olivacea Infected With Sacculina beauforti (Crustacea; Rhizocephala; Sacculinidae). / H. Fazhan, K. Waiho, H. Glenner, J. H. Z. Moh, M. Hassan, & M. Ikhwanuddin // Frontiers in Marine Science. — 2020. — T. 7. — 534443.

https://doi.org/10.3389/fmars.2020.534443

65. Fazhan, H. Predicting the sacculinid Sacculina beauforti infection status of the orange mud crab Scylla olivacea by discriminant analysis. / H. Fazhan, K. Waiho, H. B. Wee, M. A. Surzanne, H. Ma, & M. Ikhwanuddin // Aquaculture. — 2018. — T. 491. — C. 128-134. https://doi .org/10.1016/j.aquaculture.2018.03.009

66. Feng, C. Transcriptome analysis of germ cell changes in male Chinese mitten crabs (Eriocheir sinensis) induced by rhizocephalan parasite, Polyascus gregaria. / C. Feng, J. Zhang, J. Bao, D. Luan, N. Jiang, & Q. Chen // Frontiers in Marine Science. — 2023. — T. 10. — 1144448. https://doi.org/10.3389/fmars.2023.1144448

67. Fitches, C. E. Parasitological studies: On the structure, biology and taxonomy of Nucellicola kilrymontis gen. et. sp. nov., (Crustacea: Copepoda) parasitic in Nucella lapillus (L.), (Gastropoda: Prosobranchia). / C. E. Fitches // CeHT-AHgpyc: University of St. Andrews. — 1966 — 217 c.

68. Fossat, P. Anxiety-like behavior in crayfish is controlled by serotonin. / P. Fossat, J. Bacqué-Cazenave, P. De Deurwaerdere, J.-P. Delbecque, & D. Cattaert. // Science. — 2014. — T. 344. — №. 6189. — C. 1293-1297. https://doi.org/10.1126/science.1248811

69. Freeman, M. R. Glial cell biology in Drosophila and vertebrates. / M. R. Freeman, & J. Doherty // Trends in Neurosciences. — 2006. — T. 29. — №. 2. — C. 82-90. https://doi.org/10.1016/j.tins.2005.12.002

70. Gagliardino, J. Insulin Release and Glucose Changes Induced by Serotonin. / J. Gagliardino, L. Zieher, F. Iturriza, R. Hernández, & R. Rodríguez // Hormone and Metabolic Research. — 1971. — T. 3. — №. 3. — C. 145-150. https://doi.org/10.1055/s-0028-1094165

71. Glazer, L. Hemocyanin with phenoloxidase activity in the chitin matrix of the crayfish

gastrolith. / L. Glazer, M. Tom, S. Weil, Z. Roth, I. Khalaila, B. Mittelman, & A. Sagi // Journal of Experimental Biology. — 2013. — T. 216. — №. 10. — С. 1898-1904. https://doi.org/10.1242/jeb.080945

72. Glenner, H. Cypris metamorphosis, injection and earliest internal development of the Rhizocephalan Loxothylacuspanopaei (Gissler). Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala: Sacculinidae. / H. Glenner // Journal of Morphology. — 2001. — T. 249. — №. 1. — С. 43-75. https://doi.org/10.1002/jmor.1040

73. Glenner, H., & Hebsgaard, M. B. (2006). Phylogeny and evolution of life history strategies of the Parasitic Barnacles (Crustacea, Cirripedia, Rhizocephala). / H. Glenner, & M. B. Hebsgaard // Molecular Phylogenetics and Evolution. — 2006. — T. 41. — №. 3. — С. 528-538. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2006.06.004

74. Glenner, H. Metamorphosis in the Cirripedia Rhizocephala and the homology of the kentrogon and trichogon. / H. Glenner, & J. T. Hoeg // Zoologica Scripta. — 1994. — T. 23. — №. 2. — С. 161-173. https://doi.org/10.1111/j.1463-6409.1994.tb00382.x

75. Glenner, H. A Scenario for the Evolution of the Rhizocephala. / H. Glenner, & J. T. H0eg // В Modern Approaches to the Study of Crustacea. — Нью-Йорк: Springer — 2002. — С. 301-310. https://doi.org/10.1007/978-1-4615-0761-1_42

76. Glenner, H. Induced metamorphosis in crustacean y-larvae: Towards a solution to a 100-year-old riddle. / H. Glenner, J. T. H0eg, M. J. Grygier, & Y. Fujita // BMC Biology. — 2008. — T. 6. — №. 1. — 21. https://doi.org/10.1186/1741-7007-6-21

77. Glenner, H. Cypris Ultrastructure, Metamorphosis and Sex in Seven Families of Parasitic Barnacles (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / H. Glenner, J. T. H0eg, A. Klysner, & B. B. Larsen // Acta Zoologica. — T. 70. — №. 4. — С. 229-242. https://doi.org/10.1111/j.1463-6395.1989.tb00936.x

78. Glenner, H. Invasive vermigon stage in the parasitic barnacles Loxothylacus texanus

and L. panopaei (Sacculinidae): Closing of the rhizocephalan life-cycle. / H. Glenner, J. T. H0eg, J. J. O'Brien & T. D. Sherman // Marine Biology. — 2000. — T. 136. — №. 2. — C. 249-257. https://doi.org/10.1007/s002270050683

79. Glenner, H. The monophyletic origin of a remarkable sexual system in akentrogonid rhizocephalan parasites: A molecular and larval structural study. / H. Glenner, J. T. H0eg, J. Stenderup, & A. V. Rybakov // Experimental Parasitology. — 2010. — T. 125. — №. 1. — C. 3-12. https://doi.org/10.1016/j.exppara.2009.09.019

80. Goddard, J. H. R. Host specificity of Sacculina carcini, a potential biological control agent of the introduced European green crab Carcinus maenas in California. / J. H. R. Goddard, M. E. Torchin, A. M. Kuris, & K. D. Lafferty // Biological Invasions. — 2005. — T. 7. — №. 6. — C. 895-912. https://doi.org/10.1007/s10530-003-2981-0

81. Grygier, M. J. A representative of the genus Dendrogaster (Cirripedia: Ascothoracica) parasitic in an Antarctic starfish. / M. J. Grygier // B Antarctic Research Series. — American Geophysical Union. — 1981. — T. 32. — C. 1-15. https://doi.org/10.1029/AR032p0001

82. Grygier, M. J. A new internal structure of nauplius larvae: A "ghostly" support sling for cypris y left within the exuviae of nauplius y after metamorphosis (Crustacea: Thecostraca: Facetotecta). / M. J. Grygier, J. T. H0eg, N. Dreyer, & J. Olesen // Journal of Morphology. — 2019. — T. 280. — №. 8. — C. 1222-1231. https://doi.org/10.1002/jmor.21026

83. Grygier, M. J. New Species of Synagoga (Crustacea: Ascothoracida) from Plankton off Okinawa, Japan, with a SEM Study of the Carapace. / M. J. Grygier, & S. Ohtsuka // Publications of the Seto Marine Biological Laboratory. — 1995. — T. 36. — №. 56. — C. 293-311. https://doi.org/10.5134/176250

84. Hall, S. R. Parasitic castration: A perspective from a model of dynamic energy

budgets. / S. R. Hall, C. Becker, & C. E. Caceres // Integrative and Comparative Biology. — 2007. — T. 47. — №. 2. — C. 295-309. https://doi.org/10.1093/icb/icm057

85. Hamilton, T. J. Acute fluoxetine exposure alters crab anxiety-like behaviour, but not aggressiveness. / T. J. Hamilton, G. T. Kwan, J. Gallup, & M. Tresguerres // Scientific Reports. — 2016. — T. 6. — №. 1. — 19850. https://doi.org/10.1038/srep19850

86. Hariri, M. Biogenesis of Multilamellar Bodies via Autophagy. / M. Hariri, G. Millane, M.-P. Guimond, G. Guay, J. W. Dennis, & I. R. Nabi // Molecular Biology of the Cell. — 2000. — T. 11. — №. 1. — C. 255-268. https://doi.org/10.1091/mbc.11.L255

87. Hartnoll, R. G. Parasitic Castration of Macropodia Longirostris (Fabricius) By a Sacculinid. / R. G. Hartnoll / Crustaceana. — 1962. — T. 4. — №. 4. — C. 295-300. https://doi.org/10.1163/156854062X00265

88. Hartnoll, R. G. The effects of sacculinid parasites on two Jamaican crabs. / R. G. Hartnoll // Journal of the Linnean Society of London, Zoology. — 1967. — T. 46. — № 310. — C. 275-295. https://doi.org/10.1111/j.1096-3642.1967.tb00509.x

89. Hawkes, C. R. Growth of Alaskan Blue King Crabs, Paralithodes Platypus (Brandt), Parasitized By the Rhizocephalan Briarosaccus Callosus Boschma. / C. R. Hawkes, T. R. Meyers, & T. C. Shirley // Crustaceana. — 1987. — T. 52. — №. 1. — C. 7884. https://doi.org/10.1163/156854087X00088

90. Helluy, S. Parasitic manipulation: Further considerations. / S. Helluy, & J. C. Holmes // Behavioural Processes. — 2005. — T. 68. — №. 3. — C. 205-210. https://doi.org/10.1016Zj.beproc.2004.08.011

91. Helluy, S. Effects of Microphallus papillorobustus (Platyhelminthes: Trematoda) on serotonergic immunoreactivity and neuronal architecture in the brain of Gammarus

insensibilis (Crustacea: Amphipoda). / S. Helluy, & F. Thomas // Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. — 2003. — T. 270. — №. 1515. — C. 563-568. https://doi.org/10.1098/rspb.2002.2264

92. Helluy, S. Parasitic manipulation and neuroinflammation: Evidence from the system Microphalluspapillorobustus (Trematoda) — Gammarus (Crustacea). / S. Helluy, & F. Thomas // Parasites & Vectors. — 2010. — T. 3. — №. 1. — 38. https://doi.org/10.1186/1756-3305-3-38

93. Hiller, A. (2015). Description of two new species of Indo-Pacific Thylacoplethus and a new record of Thompsonia japonica (Rhizocephala: Akentrogonida: Thompsoniidae) from hermit, porcelain, and mud crabs (Decapoda) based on morphological and molecular data. / A. Hiller, J. D. Williams, & C. B. Boyko // Journal of Crustacean Biology. — 2015. — T. 35. — №. 2. — C. 202-215. https://doi.org/10.1163/1937240X-00002330

94. Hirose, E. Histopathology of a Mesoparasitic Hatschekiid Copepod In Hospite: Does Mihbaicola sakamakii (Copepoda: Siphonostomatoida: Hatschekiidae) Fast Within the Host Fish Tissue? / E. Hirose, & D. Uyeno // Zoological Science. — 2014. — T. 31. — №. 8. — C. 546-552. http://dx.doi.org/10.2108/zs140064

95. Hirose, E. Regional differentiation of the cuticular surface structure in the mesoparasitic copepod cardiodectes shini (Siphonostomatoida: Pennellidae) on a pygmy goby. / E. Hirose, & D. Uyeno. // Invertebrate Survival Journal. — 2016. — T. 13. — C. 134-139. https://doi.org/10.25431/1824-307X/isj.v13i1.134-139

96. H0eg, J. T. TEM studies on the lattice organs of cirripede cypris larvae (Crustacea, Thecostraca, Cirripedia). / J. T. H0eg, B. Hosfeld, & P. G. Jensen // Zoomorphology. — 1998. — T. 118. — №. 4. — C. 195-205. https://doi.org/10.1007/s004350050069

97. H0eg, J. T. Cypris Settlement, Kentrogon Formation and Host Invasion in the

Parasitic Barnacle Lernaeodiscusporcellanae (Müller) (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / J. T. H0eg // Acta Zoologica. — 1985a. — T. 66. — №. 1. — C. 145. https://doi.org/10.1111/j.1463-6395.1985.tb00645.x

98. H0eg, J. T. Male cypris settlement in Clistosaccuspaguri Lilljeborg (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / J. T. H0eg // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. — 1985b. — T. 89. — №. 2-3. — C. 221-235. https://doi.org/10.1016/0022-0981(85)90128-5

99. H0eg, J. T. Male cypris metamorphosis and a new male larval form, the trichogon, in the parasitic barnacle Sacculina carcini (Crustacea: Cirripedia: rhizocephala). / J. T. H0eg // Philosophical Transactions of the Royal Society of London. B, Biological Sciences. — 1987a. — T. 317. — №. 1183. — C. 47-63. https://doi.org/10.1098/rstb.1987.0047

100. H0eg, J. T. The relation between cypris ultrastructure and metamorphosis in male and female Sacculina carcini (Crustacea, Cirripedia). / J. T. H0eg // Zoomorphology. — 1987b. — T. 107. — №. 5. — C. 299-311. https://doi.org/10.1007/BF00312176

101. H0eg, J. T. "Akentrogonid" Host Invasion and an Entirely New Type of Life Cycle in the Rhizocephalan Parasite Clistosaccus Paguri (Thecostraca: Cirripedia). / J. T. H0eg // Journal of Crustacean Biology. — 1990. — T. 10. — №. 1. — C. 37-52. https://doi.org/10.1163/193724090X00230

102. H0eg, J. T. The anatomy and development of the rhizocephalan barnacle Clistosaccus paguri Lilljeborg and relation to its host Pagurus bernhardus (L.). / J. T. H0eg // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. — 1992. — T. 58. — №. 1. — C. 87-125.

103. H0eg, J. T. The biology and life cycle of the Rhizocephala (Cirripedia). / J. T.

H0eg // Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. — 1995. — T. 75. — №. 3. — C. 517-550. https://doi.org/10.1017/S0025315400038996

104. H0eg, J. T. Cypris morphology in the barnacles Ibla and Paralepas (Crustacea: Cirripedia Thoracica) implications for cirripede evolution. / J. T. H0eg, Y. Achituv, B. K. K. Chan, K. Chan, P. G. Jensen, & M. Pérez-Losada // Journal of Morphology. — 2009. — T. 270. — №. 2. — C. 241-255. https://doi.org/10.1002/jmor.10684

105. H0eg, J. T. Comparative morphology and phylogeny of the family Thompsoniidae (Cirripedia, Rhizocephala, Akentrogonida), with descriptions of three new genera and seven new species. / J. T. H0eg, & J. Lützen // Zoologica Scripta. — 1993. — T. 22. — №. 4. — C. 363-386. https://doi.org/10.1111/j.1463-6409.1993.tb00365.x

106. H0eg, J. T. Life cycle and reproduction in the Cirripedia, Rhizocephala. / J. T. H0eg, & J. Lützen // Oceanography and Marine Biology: an Annual Review. — 1995.

— T. 12. — №. 43. — C. 427-485.

107. H0eg, J. T. Metamorphosis in Balanomorphan, Pedunculated, and Parasitic Barnacles: A Video-Based Analysis. / J. T. H0eg, D. Maruzzo, K. Okano, H. Glenner, & B. K. K. Chan // Integrative and Comparative Biology. — 2012. — T. 52. — № 3.

— C. 337-347. https://doi.org/10.1093/icb/ics053

108. H0eg, J. T. The unusual floatation collar around nauplii of certain parasitic barnacles (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / J. T. H0eg, O. S. Müller, & A. V. Rybakov // Marine Biology. — 2004. — T. 144. — №. 3. — C. 483-492. https://doi.org/10.1007/s00227-003-1225-2

109. H0eg, J. T. A new molecular phylogeny-based taxonomy of parasitic barnacles (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / J. T. H0eg, C. Noever, D. A. Rees,

K. A. Crandall, & H. Glenner // Zoological Journal of the Linnean Society. — 2020.

— T. 190. — №. 2. — С. 632-653. https://doi.org/10.1093/zoolinnean/zlz140

110. H0eg, J. T. Unravelling the Evolutions of the Rhizocephala: A Case Study for Molecular-Based Phylogeny in the Parasitic Crustacea. / J. T. H0eg, D. J. Rees, P. C. Jensen, & H. Glenner // В Parasitic Crustacea. — Нью-Йорк: Springer International Publishing. — T. 3. — С. 387-419. https://doi.org/10.1007/978-3-030-17385-2_9

111. H0eg, J. T. Revision of the Rhizocephala Akentrogonida (Cirripedia), with a List of All the Species and a Key to the Identification of Families. / J. T. H0eg, & A. V. Rybakov // Journal of Crustacean Biology. — 1992. — T. 12. — №. 4. — С. 600609.

112. H0eg, J. T. Development and Taxonomy of the Mycetomorphidae and the Significance of Their Reproductive System in Rhizocephalan Evolution (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / J. T. H0eg, & A. V. Rybakov // Zoologischer Anzeiger.

— 1995. — T. 234. — №. 4. — С. 253-269.

113. Hoek, R. M. Altered gene expression in the host brain caused by a trematode parasite: Neuropeptide genes are preferentially affected during parasitosis. / R. M. Hoek, R. E. Van Kesteren, A. B. Smit, M. De Jong-Brink, & W. P. M. Geraerts // Proceedings of the National Academy of Sciences. — 1997. — T. 94. — №. 25. — С. 14072-14076. https://doi.org/10.1073/pnas.94.25.14072

114. Hoggarth, D. D. The Effects of Parasitism By the Rhizocephalan, Briarosaccus Callosus Boschma On the Lithodid Crab, Paralomis Granulosa (Jacquinot) in the Falkland Islands. / D. D. Hoggarth // Crustaceana. — 1990. — T. 59. — №. 2. — С. 156-170. https://doi.org/10.1163/156854090X00633

115. Hopla, C. E. Ectoparasites and classification. / C. E. Hopla, L. A. Durden, & J. E. Keirans // Revue Scientifique et Technique de l'OIE. — 1994. — T. 13. — №. 4.

— C. 985-1017. https://doi.Org/10.20506/rst.13.4.815

116. Hsiao, C. J. Metabolic effects of parasitization by the barnacle Polyascus plana (Cirripedia: Rhizocephala: Sacculinidae) on a grapsid host, Metopograpsus thukuhar. / C. J. Hsiao, Y. I. Wu, T. A. Tung, G. Y. Wang, J. Y. Toullec, S. T. Liu, W. S. Huang, & C. Y. Lee // Diseases of Aquatic Organisms. — 2016. — T. 119. — №. 3. — C. 199-206. https://doi.org/10.3354/dao03000

117. Huber, R. Serotonin and aggressive motivation in crustaceans: Altering the decision to retreat. / R. Huber, K. Smith, A. Delago, K. Isaksson, & E. A. Kravitz // Proceedings of the National Academy of Sciences. — 1997. — T. 94. — №. 11. — C. 5939-5942. https://doi.org/10.1073/pnas.94.11.5939

118. Hubert, M. Anatomie comparée des racines des rhizocéphales Sacculina carcini Thompson et Loxothylacuspanopei (Gissler) parasites respectifs des brachyoures Carcinus maenas (L.) et Rhithropanopeus harrisii (Gould); étude ultrastructurale des racines libres. / M. Hubert, G. G. Payen, & C. Chassard-Bouchaud // Canadian Journal of Zoology. — 1979. — T. 57. — №. 7. — C. 1479-1486. https://doi.org/10.1139/z79-192

119. Huys, R. The Tantulocaridan Life Cycle: The Circle Closed? / R. Huys, G. A. Boxshall, & R. J. Lincoln // Journal of Crustacean Biology. — 1993. — T. 13. — №. 3. — C. 432-442. https://doi.org/10.2307/1548786

120. Huys, R. Brooding in cocculiniform limpets (Gastropoda) and familial distinctiveness of the Nucellicolidae (Copepoda): Misconceptions reviewed from a chitonophilid perspective. / R. Huys, P. J. Lôpez-Gonzâlez, E. Roldân, & A. A. Luque // Biological Journal of the Linnean Society. — 2002. — T. 75. — №. 2. — C. 187217. https://doi.org/10.1111/j.1095-8312.2002.tb01422.x

121. Ichikawa, A. The Sexual Nature of a Rhizocephalan, Peltogasterella socialis. /

A. Ichikawa, & R. Yanagimachi // ^ШШ^^Ш^Шй^. — 1957. — T. 13. — № 1-4. — С. 384-389.

122. Innocenti, G. Observations on the agonistic behavior of the swimming crab Charybdis longicollis Leene infected by the rhizocephalan barnacle Heterosaccus dollfusi Boschma. / G. Innocenti, N. Pinter, & B. S. Galil // Canadian Journal of Zoology. — 2003. — T. 81. — №. 1. — С. 173-176. https://doi.org/10.1139/z02-226

123. Innocenti, G. Notes on the behaviour of the portunid crab Charybdis longicollis Leene parasitized by the rhizocephalan Heterosaccus dollfusi Boschma. / G. Innocenti, M. Vannini, & B. S. Galil // Journal of Natural History. — 1998. — T. 32. — №. 10-11. — С. 1577-1585. https://doi.org/10.1080/00222939800771111

124. Jespersen, Â. Thompsonia dofleini, a colonial akentrogonid rhizocephalan with dimorphic, ova- or sperm-producing, externae (Crustacea, Cirripedia). / Â. Jespersen, & J. Lützen // Zoomorphology. — 1992. — T. 112. — №. 2. — С. 105116. https://doi.org/10.1007/BF01673811

125. Johnson, S. C. A Review of the Impact of Parasitic Copepods on Marine Aquaculture. / S. C. Johnson, J. W. Treasurer, S. Bravo, & K. Nagasawa // Zoological Studies. — 2004. — T. 43. — №. 2. — 229-243.

126. Jung, J. Diversity of Parasitic Peltogastrid Barnacles (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala) on Hermit Crabs in Korea. / J. Jung, R. Yoshida, & W. Kim // Zoological Studies. — 2019. — T. 58. — №. 33 — 18 p.

127. Ki0rboe, T. What makes pelagic copepods so successful? / T. Ki0rboe // Journal of Plankton Research. — 2011. — T. 33. — №. 5. — С. 677-685. https://doi.org/10.1093/plankt/fbq159

128. Kiser, D. The reciprocal interaction between serotonin and social behaviour. / D. Kiser, S.-B. Steemer, I. Branchi, & J. R. Homberg // Neuroscience &

Biobehavioral Reviews. — 2012. — T. 36. — №. 2. — C. 786-798. https://doi .org/10.1016/j. neubiorev.2011.12.009

129. Kolbasov, G. A. Collecting and processing thoracican, acrothoracican, and rhizocephalan cirripedes. / G. A. Kolbasov, B. K. K. Chan, & J. T. H0eg // Journal of Crustacean Biology. — 2016. — T. 36. — №. 5. — C. 752-760. https://doi.org/10.1163/1937240X-00002469

130. Kolbasov, G. A. Naupliar development of Facetotecta (Crustacea: Thecostraca) and the nature of the first nauplius instar in the Crustacea — pro et contra the Hexanauplia concept. / G. A. Kolbasov, A. S. Petrunina, N. Dreyer, A. A. Prudkovsky, J. Olesen, B. K. K. Chan, & J. T. H0eg // Organisms Diversity & Evolution. — 2021. — T. 21. — № 1. — C. 209-230. https://doi.org/10.1007/s13127-021-00479-y

131. Kolbasov, G. A. A new species of Synagoga (Crustacea, Thecostraca, Ascothoracida) parasitic in an antipatharian from Green Island, Taiwan, with notes on its morphology. / G. A. Kolbasov, A. S. Petrunina, M.-J. Ho, & B. K. K. Chan // ZooKeys. — 2019. — T. 876. — C. 55-85. https://doi.org/10.3897/zookeys.876.35443

132. Kolbasov, G. A New Species of Waginella (Crustacea: Thecostraca: Ascothoracida) Parasitic on a Stalked Crinoid From Tasman Sea, With Notes on Morphology of Related Genera. / G. Kolbasov, A. Savchenko, W. Newman, & B. Chan // Frontiers in Marine Science. — 2020. — T. 8. — 616001. https://doi.org/10.3389/fmars.2021.616001

133. Korn, O. M. Phylogenetic position, complete larval development and larval sexual dimorphism in a rhizocephalan barnacle, Lernaeodiscus rybakovi sp. nov. (Cirripedia: Rhizocephala: Peltogastridae), parasitizing the crab Pachycheles stevensii

Stimpson, 1858 (Decapoda: Anomura: Porcellanidae). / O. M. Korn, D. D. Golubinskaya, D. J. Rees, H. Glenner, & J. T. H0eg // Zoologischer Anzeiger. — 2020. — T. 287. — С. 178-197. https://doi.org/10.1016/jjcz.2020.06.005

134. Korn, O. M. The second rhizocephalan species, Lernaeodiscus kasyanovi sp. nov. (Cirripedia: Rhizocephala: Peltogastridae), parasitizing the porcellanid crab Pachycheles stevensii Stimpson, 1858 (Decapoda: Anomura: Porcellanidae), from Russian waters of the Sea of Japan. / O. M. Korn, D. D. Golubinskaya, D. J. Rees, H. Glenner, & J. T. H0eg// Marine Biodiversity. — 2021. — T. 51. — №. 5. — 79. https://doi.org/10.1007/s12526-021-01211-x

135. Kristensen, T. The selective advantage of host feminization: A case study of the green crab Carcinus maenas and the parasitic barnacle Sacculina carcini. / T. Kristensen, A. I. Nielsen, A. I. J0rgensen, K. N. Mouritsen, H. Glenner, J. T. Christensen, J. Lützen, & J. T. H0eg // Marine Biology. — 2012. — T. 159. — №. 9. — С. 2015-2023. https://doi.org/10.1007/s00227-012-1988-4

136. Kutchko, K. M. Metazoan innovation: From aromatic amino acids to extracellular signaling. / K. M., Kutchko & J. Siltberg-Liberles // Amino Acids. — 2013. — T. 45. — № 2. — С. 359-367. https://doi.org/10.1007/s00726-013-1509-x

137. Lafferty, K. D. Parasitic castration: The evolution and ecology of body snatchers. / K. D. Lafferty, & A. M. Kuris // Trends in Parasitology. — 2009. — T. 25. — №. 12. — С. 564-572. https://doi.org/10.1016/j.pt.2009.09.003

138. Lafferty, K. D. Comparing mechanisms of host manipulation across host and parasite taxa. / K. D. Lafferty, & J. C. Shaw // Journal of Experimental Biology. — 2013. — T. 216. — №. 1. — С. 56-66. https://doi.org/10.1242/jeb.073668

139. Lajoie, P. The lipid composition of autophagic vacuoles regulates expression of multilamellar bodies. / P. Lajoie, G. Guay, J. W. Dennis, & I. R. Nabi // Journal of

Cell Science. — 2005. — T. 118. — №. 9. — C. 1991-2003. https://doi.org/10.1242/jcs.02324

140. Lange, S. The colleteric glands in Sacculinidae (Crustacea, Cirripedia, Rhizocephala): An ultrastructural study of ovisac secretion. / S. Lange // Contributions to Zoology. — 2002. — T. 70. — №. 4. — C. 229-242.

141. Larsen, M. H. Influence of infection by Sacculina carcini (Cirripedia, Rhizocephala) on consumption rate and prey size selection in the shore crab Carcinus maenas. / M. H. Larsen, J. T. H0eg, & K. N. Mouritsen // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. — 2013. — T. 446. — C. 209-215. https://doi.org/10.1016/jjembe.2013.05.029

142. Lashaise, F. The molting gland of crustaceans: Localization, activity, and endocrine control (A review). / F. Lashaise, A. Le Roux, M. Hubert, & R. Lafont // Journal of Crustacean Biology. — 1993. — T. 13. — №. 2. — C. 198-234.

143. Lavrov, D. V. Phylogenetic position of the Pentastomida and (pan)crustacean relationships. / D. V. Lavrov, W. M. Brown, & J. L. Boore // Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. — 2004. — T. 271. — №. 1538. — C. 537-544. https://doi.org/10.1098/rspb.2003.2631

144. Lee, K. S. Serotonin-dependent kinetics of feeding bursts underlie a graded response to food availability in C. elegans. / K. S. Lee, S. Iwanir, R. B. Kopito, M. Scholz, J. A. Calarco, D. Biron, & E. Levine // Nature Communications. — 2017. — T. 8. — №. 1. — 14221. https://doi.org/10.1038/ncomms14221

145. Lenel, R. Absorption of carotenoid pigments from Carcinus maenas Pennat by its parasite Sacculina carcini Thompson. /R. Lenel // Comptes rendus hebdomadaires des seances de l'Academie des sciences. — 1954. — T. 238. — №. 8. — C. 948-949.

146. Lianguzova, A. D. Tricks of the puppet masters: Morphological adaptations to

the interaction with nervous system underlying host manipulation by rhizocephalan barnacle Polyascuspolygeneus. / A. D. Lianguzova, N. A. Arbuzova, E. P. Laskova, E. R. Gafarova, E. A. Repkin, D. A. Matach, I.K. Enshina, & A. A. Miroliubov // PeerJ. — 2023. — T. 11, e16348. https://doi.org/10.7717/peerj.16348

147. Lianguzova, A. D. Specialised rootlets of Sacculinapilosella (Rhizocephala: Sacculinidae) used for interactions with its host's nervous system. / A. D. Lianguzova, S. A. Ilyutkin, O. M. Korn, & A. A. Miroliubov // Arthropod Structure & Development. — 2021. — T. 60. — 101009. https://doi.org/10.1016/j.asd.2020.101009

148. Lianguzova A.D. Two in one: A case study of two rhizocephalan species invading the nervous tissue of one host. / A. D. Lianguzova, L. O. Poliushkevich, E. P. Laskova, D. D. Golubinskaya, N. A. Arbuzova, A. M. Petruniak & A. A. Miroliubov // Journal of Zoology — 2024. https://doi.org/10.1111/jzo.13242

149. Lin, H.-C. Phylogenetic relationships of Darwin's "Mr. Arthrobalanus": The burrowing barnacles (Cirripedia: Acrothoracica). / H.-C. Lin, G. A. Kobasov, & B. K. K. Chan // Molecular Phylogenetics and Evolution. — 2016. — T. 100. — С. 292302. https://doi.org/10.1016Zj.ympev.2016.03.016

150. Long, D. J. The ectoparasitic barnacle Anelasma (Cirripedia, Thoracica, Lepadomorpha) on the shark Centroscyllium nigrum (Chondrichthyes, Squalidae) from the Pacific sub-Antarctic. / D. J. Long, & B. M. Waggoner // Systematic Parasitology. — 1993. — T. 26. — С. 133-136.

151. Lützen, J. A revision of the family Herpyllobiidae, (parasitic copepods) with notes on hosts and distribution. / J. Lützen // Ophelia. — 1964. — T. 1. — №. 2. — С. 241-274. https://doi.org/10.1080/00785326.1964.10416282

152. Lützen, J. Interna structure and nucleus formation in Sacculina polygenea

(Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala: Sacculinidae). /J. Lützen // Crustacean Research. — 2002. — T. 31. — С. 39-46.

153. Lützen, J. Spermatogonia Implantation by Antennular Penetration in the Akentrogonid Rhizocephalan Diplothylacus sinensis. / J. Lützen, J. T. H0eg, & Â. Jespersen // Zoologischer Anzeiger. — 1996. — T. 234. — №. 96. — С. 201-207.

154. Lützen, J. Life history of Sacculina carcini Thompson, 1836 (Cirripedia: Rhizocephala: Sacculinidae) and the intermoult cycle of its host, the shore crab Carcinus maenas (Linnaeus, 1758) (Decapoda: Brachyura: Carcinidae). / J. Lützen, K. H. Jensen, & H. Glenner // Journal of Crustacean Biology. — 2018. — T. 38. — №. 4. — С. 413-419. https://doi.org/10.1093/jcbiol/ruy044

155. Lützen, J. A Study of the Morphology and Biology of Thompsonia littoralis (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / J. Lützen, & Â. Jespersen // Acta Zoologica.

— 1992. — T. 73. — №. 1. — С. 1-23. https://doi.org/10.1111/j.1463-6395.1992.tb00944.x

156. Lützen, J. Morphology and biology of Polysaccus japonicus (Crustacea, Rhizocephala, Akentrogonida, Polysaccidae, fam. N.), a parasite of the ghost-shrimp Callianassa japonica. / J. Lützen, & T. Takahashi // Zoologica Scripta. — 1996. — T. 25. — №. 2. — С. 171-181. https://doi.org/10.1111/j.1463-6409.1996.tb00157.x

157. Machâcek, T. Nitric oxide and cytokine production by glial cells exposed in vitro to neuropathogenic schistosome Trichobilharzia regenti. / T. Machâcek, L. Panskâ, H. Dvorâkovâ, & P. Horâk // Parasites & Vectors. — 2016. — T. 9. — №. 1.

— 579. https://doi.org/10.1186/s13071-016-1869-7

158. Martin, S. Genomic Adaptations to an Endoparasitic Lifestyle in the Morphologically Atypical Crustacean Sacculina carcini (Cirripedia: Rhizocephala). / S. Martin, P. Lesny, H. Glenner, J. Hecht, A. Vilcinskas, T. Bartolomaeus, & L.

Podsiadlowski // Genome Biology and Evolution. — 2002. — T. 14. — №. 10. — evac149. https://doi.org/10.1093/gbe/evac149

159. Martin-Vega, D. 3D virtual histology at the host/parasite interface: Visualisation of the master manipulator, Dicrocoelium dendriticum, in the brain of its ant host. / D. Martin-Vega, A. Garbout, F. Ahmed, M. Wicklein, C. P. Goater, D. D. Colwell, & M. J. R. Hall // Scientific Reports. — 2018. — T. 8. — №. 1. — 8587. https://doi.org/10.1038/s41598-018-26977-2

160. Mazaud, D. Transcriptional Regulation of the Glutamate/GABA/Glutamine Cycle in Adult Glia Controls Motor Activity and Seizures in Drosophila. / D. Mazaud, B. Kottler, C. Gon9alves-Pimentel, S. Proelss, N. Tüchler, C. Deneubourg, . Yuasa, C. Diebold, H. Jungbluth, E. C. Lai, F. Hirth, A. Giangrande, & M. Fanto // The Journal of Neuroscience. — 2019. — T. 39. — №. 27. — C. 5269-5283. https://doi.org/10.1523/JNEUR0SCI.1833-18.2019

161. Melendez, A. Autophagy Genes Are Essential for Dauer Development and Life-Span Extension in C. elegans. / A. Melendez, Z. Talloczy, M. Seaman, E.-L. Eskelinen, D. H. Hall, & B. Levine // Science. — 2003. — T. 301. — №. 5638. — C. 1387-1391. https://doi.org/10.1126/science.1087782

162. Mendl, M. Animal Behaviour: Emotion in Invertebrates? / M. Mendl, E. S. Paul, & L. Chittka // Current Biology. — 2011 — T. 21. — №. 12. — C. 463-465. https://doi.org/10.1016/jxub.2011.05.028

163. Mesquita, S. R. Biochemical and locomotor responses of Carcinus maenas exposed to the serotonin reuptake inhibitor fluoxetine. / S. R. Mesquita, L. Guilhermino, & L. Guimaraes // Chemosphere. — 2011. — T. 85. — №. 6. — C. 967-976. https://doi.org/10.1016Zj.chemosphere.2011.06.067

164. Miroliubov, A. A. Muscular system in interna of Peltogaster paguri

(Rhizocephala: Peltogastridae). / A. A. Miroliubov // Arthropod Structure & Development. — 2017. — T. 46. — №. 2. — C. 230-235. https://doi.org/10.1016Zj.asd.2016.11.005

165. Miroliubov, A. A. Muscular system in the interna of Polyascuspolygenea and Sacculinapilosella (Cirripedia: Rhizocephala: Sacculinidae). / A. A. Miroliubov, I. E. Borisenko, M. A. Nesterenko, O. M. Korn, A. D. Lianguzova, S. A. Ilyutkin, N. E. Lapshin, & A. A. Dobrovolskij // Invertebrate Zoology. — 2019. — T. 16. — №. 1. — C. 48-56. https://doi.org/10.15298/invertzool.16.1.06

166. Miroliubov, A. A. The interna of the rhizocephalan Peltogaster reticulata: Comparative morphology and ultrastructure. / A. A. Miroliubov, A. D. Lianguzova, S. A. Ilyutkin, N. A. Arbuzova, N. E. Lapshin, & E. P. Laskova // Arthropod Structure & Development. — 2022. — T. 70. — C. 101-190. https://doi.org/10.1016/j.asd.2022.101190

167. Miroliubov, A. Specialized structures on the border between rhizocephalan parasites and their host's nervous system reveal potential sites for host-parasite interactions. / A. Miroliubov, I. Borisenko, M. Nesterenko, A. Lianguzova, S. Ilyutkin, N. Lapshin, & A. Dobrovolskij. // Scientific Reports. — 2020. — T. 10. — №. 1. — 1128. https://doi.org/10.1038/s41598-020-58175-4

168. Miroliubov, A. Histological description of specialized rootlets of the akentrogonid rhizocephalan Diplothylacus sinensis (Keppen, 1877) (Thompsoniidae) invading nervous ganglia of the blue swimming crab Portunuspelagicus. / A. Miroliubov, A. Lianguzova, K. Waiho, H. Fazhan, & G. R. N. Gusti-Afiz // Zoologischer Anzeiger. — 2023 — T. 303. — C. 33-37. https://doi.org/10.1016/jjcz.2023.01.006

169. Moroz, L. L. Neural versus alternative integrative systems: Molecular insights

into origins of neurotransmitters. / L. L. Moroz, D. Y. Romanova, & A. B. Kohn // Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. — 2021. — T. 376. — №. 1821. — 20190762. https://doi.org/10.1098/rstb.2019.0762

170. Mosienko, V. Exaggerated aggression and decreased anxiety in mice deficient in brain serotonin. / V. Mosienko, B. Bert, D. Beis, S. Matthes, H. Fink, M. Bader, & N. Alenina // Translational Psychiatry. — 2012. — T. 2. — №. 5. — C. 122-122. https://doi.org/10.1038/tp.2012.44

171. Mouritsen, K. N. The effect of Sacculina carcini infections on the fouling, burying behaviour and condition of the shore crab, Carcinus maenas. / K. N. Mouritsen, & T. Jensen / Marine Biology Research. — 2006. — T. 2. — №. 4. — C. 270-275. https://doi.org/10.1080/17451000600874752

172. Nagler, C. The bigger, the better? Volume measurements of parasites and hosts: Parasitic barnacles (Cirripedia, Rhizocephala) and their decapod hosts. / C. Nagler, M. K. Hornig, J. T. Haug, C. Noever, J. T. H0eg, & H. Glenner // PLoS ONE. — 2017. — T. 12. — № 7. — e0179958. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0179958

173. Neethling, L. A. M. Branchiura—A compendium of the geographical distribution and a summary of their biology. / L. A. M. Neethling, & A. Avenant-Oldewage // Crustaceana. — 2016. — T. 89. — №. 11-12, C. 1243-1446. https://doi.org/10.1163/15685403-00003597

174. Nesterenko, M. From head to rootlet: Comparative transcriptomic analysis of a rhizocephalan barnacle Peltogaster reticulata (Crustacea: Rhizocephala). / M. Nesterenko, & A. Miroliubov // F1000Research. — 2023. — T. 11. — C. 583. https://doi .org/10.12688/f1000research.110492.2

175. Newman, W. A. Evolution of cirripedes and their major groups. / W. A.

Newman // Barnacle Biology. — 1987. — С. 3-42. https://doi.org/10.1201/9781315138053-1

176. Nielsen, S.-O. The effects of the rhizocephalan parasites Peltogaster paguri Rathke and Gemmosaccus sulcatus (Lilljeborg) on five species of paguridan hosts (Crustacea Decapoda). / S.-O. Nielsen // Sarsia. — 1970. — T. 42. — №. 1. — С. 1732. https://doi.org/10.1080/00364827.1970.10411160

177. Noever, C. First 3D reconstruction of the rhizocephalan root system using MicroCT. / C. Noever, J. Keiler, & H. Glenner // Journal of Sea Research. — 2016.

— T. 113. — С. 58-64. https://doi.org/10.1016Zj.seares.2015.08.002

178. Nour Eldeen, M. F. Histomorphological investigation of the mature externa of Heterosaccus dollfusi (Crustacea, Rhizocephala). / M. F. Nour Eldeen, M. M. El Gamal, K. M. Abdelsalam, F. A. Shoukr, & M. H. Mona // Zoomorphology. — 2019.

— T. 138. — № 4. — С. 463-473. https://doi.org/10.1007/s00435-019-00453-5

179. O'Brien, J. J. Precocious Maturity of the Majid Crab, Pugettia producta, Parasitized by the Rhizocephalan Barnacle, Heterosaccus californicus. / J. J. O'Brien // Biological Bulletin. — 1984. — T. 166. — №. 2. — С. 384-395.

180. O'Brien, J. J. Overriding of the Molt-Inducing Stimulus of Multiple Limb Autotomy in the Mud Crab Rhithropanopeus harrisii by Parasitization with a Rhizocephalan. / J. J. O'Brien, & D. M. Skinner // Journal of Crustacean Biology. — 1990. — T. 10. — №. 3. — С. 440-445.

181. O'Brien, J. J. Effects of Crustacean Parasitic Castrators (Epicaridean Isopods and Rhizocephalan Barnacles) on Growth of Crustacean Hosts. / J. J. O'Brien, & P. Van Wyk // В Crustacean Issues 3 (1st Edition). — 1985.

182. Oguro, C. On the Change caused by Rhizocephalan Parasites in the Hermit-Crab, Eupagurus lanuginosus. / C. Oguro. // ^ШШ^^Ш^Шй^. — 1956. — T.

12. — №. 4. — C. 511-515.

183. Okada, Y. K. Sacculinization in Eriocheir japonicus de Haan, with Remarks on the Occurrence of Complete Sex-reversal in Parasitized Male Crabs. / Y. K. Okada, & Y. Miyashita // Memoirs of the College of Science, Kyoto Imperial University. — 1935. — T. 10. — №. 3. — C. 169-208.

184. Olivier, B. Serotonin: A never-ending story. / B. Olivier // European Journal of Pharmacology. — 2015. — T. 753. — C. 2-18. https://doi.org/10.1016Zj.ejphar.2014.10.031

185. Ommundsen, A. Caught in the act: Phenotypic consequences of a recent shift in feeding strategy of the shark barnacle Anelasma squalicola (Love n, 1844). / A. Ommundsen, C. Noever, & H. Glenner // Zoomorphology. — 2015. — T. 135. — C. 51-65. https://doi.org/10.1007/s00435-015-0296-1

186. Ortega, A. Neurons and Glia Cells in Marine Invertebrates: An Update. / A. Ortega, & T. N. Olivares-Banuelos // Frontiers in Neuroscience. — 2020. — T. 14. — 121 c. https://doi.org/10.3389/fnins.2020.00121

187. 0stergaard, P. Sem and Tem Study of the Integument of Ophioika Sp. (Crustacea, Copepoda). / P. 0stergaard, & J. Bresciani // Journal of Crustacean Biology. — 2000. — T. 24. — №. 4. — C. 674-679.

https://doi .org/10.1163/20021975-99990091

188. Paul, D. H. Neurobiology of the Anomura: Paguroidea, Galatheoidea and Hippoidea. / D. H. Paul // Memoirs of Museum Victoria. — 2003. — T. 60. — №. 1. — C. 3-11. https://doi.org/10.24199/j.mmv.2003.60.2

189. Payen, G. G. Infestations expérimentales de crabes juvéniles par la sacculine. Ultrastructure des racines parasitaires en croissance et relations avec la niasse ganglionnaire ventrale de l'hôte. / G. G. Payen, M. Hubert, Y. Turquier, C. Rubiliani,

& C. Chassard-Bouchaud // Canadian Journal of Zoology. — 1981. — T. 59. — №. 9. — C. 1818-1826. https://doi.org/10.1139/z81-249

190. Payen, G. G. Mise en évidence des fonctions de synthèse, d'absorption et de transfert de substances par les racines des Rhizocéphales Sacculinidae; premières données biochimiques et cytochimiques. / G. G. Payen, C. Rubiliani, M. Hubert, R. Poulhe, Y. Turquier, & C. Chassard-Bouchaud // Zeitschrift für Parasitenkunde. — 1983. — T. 69. — №. 2. — C. 255-269. https://doi.org/10.1007/BF00926961

191. Pérez-Losada, M. The tempo and mode of barnacle evolution. / M. Pérez-Losada, M. Harp, J. T. H0eg, Y. Achituv, D. Jones, H. Watanabe, & K. A. Crandall // Molecular Phylogenetics and Evolution. — 2008. — T. 46. — №. 1. — C. 328-346. https://doi.org/10.1016Zj.ympev.2007.10.004

192. Pérez-Losada, M. Remarkable convergent evolution in specialized parasitic Thecostraca (Crustacea). / M. Pérez-Losada, J. T. H0eg, & K. A. Crandall // BMC Biology. — 2009. — T. 7. — №. 1. — 15. https://doi.org/10.1186/1741-7007-7-15

193. Pérez-Losada, M. Deep Phylogeny and Character Evolution in Thecostraca (Crustacea: Maxillopoda). / M. Pérez-Losada, J. T. Hoeg, & K. A. Crandall // Integrative and Comparative Biology. — 2012. — T. 52. — №. 3. — C. 430-442. https://doi.org/10.1093/icb/ics051

194. Pérez-Losada, M. Reanalysis of the Relationships among the Cirripedia and the Ascothoracida and the Phylogenetic Position of the Facetotecta (Maxillopoda: Thecostraca) Using 18S rDNA Sequences. / M. Pérez-Losada, J. T. H0eg, G. A. Kolbasov, & K. A. Crandall // Journal of Crustacean Biology. — 2002. — T. 22. — №. 3. — C. 661-669. https://doi.org/10.1163/20021975-99990278

195. Pérez-Losada, M. Molecular phylogeny, systematics and morphological evolution of the acorn barnacles (Thoracica: Sessilia: Balanomorpha). / M. Pérez-

Losada, J. T. H0eg, N. Simon-Blecher, Y. Achituv, D. Jones, & K. A. Crandall // Molecular Phylogenetics and Evolution. — 2014. — T. 81. — C. 147-158. https://doi.Org/10.1016/j.ympev.2014.09.013

196. Pérez-Losada, M. Deep phylogeny and character evolution in Thecostraca (Crustacea: Maxillopoda). / M. Pérez-Losada, J. T. H0eg, & K. A. Crandall // Integrative and Comparative Biology. — 2012. — T. 52. — №. 3. — C. 430-442. https://doi.org/10.1093/icb/ics051

197. Perrot-Minnot, M.-J. Anxiety-like behaviour increases safety from fish predation in an amphipod crustacea. / M.-J. Perrot-Minnot, L. Banchetry, & F. Cézilly // Royal Society Open Science. — 2017. — T. 4 — №. 12. — 171558. https://doi.org/10.1098/rsos.171558

198. Perrot-Minnot, M.-J. Multidimensionality in host manipulation mimicked by serotonin injection. / M.-J. Perrot-Minnot, K. Sanchez-Thirion, & F. Cézilly // Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. — 2014. — T. 281. — №1796. — 20141915. https://doi.org/10.1098/rspb.2014.1915

199. Perry, C. J. Studying emotion in invertebrates: What has been done, what can be measured and what they can provide. / C. J. Perry, & L. Baciadonna // Journal of Experimental Biology. — 2017. — T. 220. — №. 21. — C. 3856-3868. https://doi.org/10.1242/jeb.151308

200. Petrunina, A. Anatomy of the Tantulocarida: First results obtained using TEM and CLSM. Part I: tantulus larva. / A. Petrunina, J. H0eg, & K. Gregory // Organisms Diversity & Evolution. — 2018. — T. 18. — C. 459-477. https://doi.org/10.1007/s13127-018-0376-4

201. Petrunina, A. S. Tantulocarida versus Thecostraca: Inside or outside? First attempts to resolve phylogenetic position of Tantulocarida using gene sequences. / A.

S. Petrunina, T.V. Neretina, N.S. Mugue, & G. A. Kolbasov // Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research. — 2014. — T. 52. — №. 2. — С. 100-108. https://doi.org/10.1111/jzs.12045

202. Phillips, W. J. Ecological observations on the commercial sand crab, Portunus pelagicus (L.), and its parasite, Sacculina granifera Boschma, 1973 (Cirripedia: Rhizocephala). / W. J. Phillips, & L. R. G. Cannon // Journal of Fish Diseases. — 1978. — T. 1. — №. 2. — С. 137-149. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.1978.tb00014.x

203. Poly, W. J. Global diversity of fishlice (Crustacea: Branchiura: Argulidae) in freshwater. / W. J. Poly // Hydrobiologia. — 2008. — T. 595. — №. 1. — С. 209212. https://doi.org/10.1007/s10750-007-9015-3

204. Poore, G. C. B. The natural history of the Crustacea. / G. C. B. Poore, & M. Thiel // Oxford university press. — 2020.

205. Potts, F. A. The Modification of the Sexual Characters of the Hermit Crab caused by the Parasite Peltogaster (castration parasitaure of Giard). / F. A. Potts // Quarterly Journal of Microscopical Science. — 1906. — T. 50. — №. 200. — С. 599-622.

206. Poulin, R. Ecological correlates of body size and egg size in parasitic Ascothoracida and Rhizocephala (Crustacea). / R. Poulin, & W. J. Hamilton // Acta Oecologica. — 1997. — T. 18. — №. 6. — С. 621-635.

https://doi .org/10.1016/S1146-609X(97)80047-1

207. Powell, A. Tissue changes in the shore crab Carcinus maenas as a result of infection by the parasitic barnacle Sacculina carcini. / A. Powell, & A. F. Rowley // Diseases of Aquatic Organisms. — 2008. — T. 80. — № 1. — С. 75-79.

http s://doi.org/10.3354/dao01930

208. Ranganathan, R. MOD-1 is a serotonin-gated chloride channel that modulates locomotory behaviour in C. elegans. / R. Ranganathan, S. C. Cannon, & H. R. Horvitz // Nature. — 2000. — T. 408. — №. 6811. — С. 470-475. https://doi.org/10.1038/35044083

209. Rasmussen, E. Behaviour of Sacculinized Shore Crabs (Carcinus maenas Pennant). / E. Rasmussen // Nature. — 1959. — T. 183. — №. 4659. — С. 479-480. https://doi.org/10.1038/183479c0

210. Reedy, M. C. Ultrastructure of Developing Flight Muscle in Drosophila. I. Assembly of Myofibrils. / M. C. Reedy, & C. Beall // Developmental Biology. — 1993a. — T. 160. — №. 2. — С. 443-465. https://doi.org/10.1006/dbio.1993.1320

211. Reedy, M. C. Ultrastructure of Developing Flight Muscle in Drosophila. II. Formation of the Myotendon Junction. / M. C. Reedy, & C. Beall // Developmental Biology. — 1993b. — T. 160. — №. 2. — С. 466-479. https://doi.org/10.1006/dbio.1993.1321

212. Rees, D. J. De novo innovation allows shark parasitism and global expansion of the barnacle Anelasma squalicola. / D. J. Rees, C. Noever, B. Finucci, K. Schnabel, R. E. Leslie, J. Drewery, H. O. Theil Bergum, A. Dutilloy, & H. Glenner // Current Biology. — 2019. — T. 29. — №. 12. — С. 562-563. https://doi.org/10.10167j.cub.2019.04.053

213. Rees, D. J. On the Origin of a Novel Parasitic-Feeding Mode within Suspension-Feeding Barnacles. / D. J. Rees, C. Noever, J. T. H0eg, A. Ommundsen, & H. Glenner // Current Biology. — 2014. — T. 24. — №. 12. — С. 1429-1434. https://doi.org/10.1016/j.cub.2014.05.030

214. Reinhard, E. G. The endoparasitic development of Peltogasterpaguri. / E. G. Reinhard // Journal of Morphology. — 1942. — T. 70. — №. 1. — С. 69-79.

https://doi.org/10.1002/jmor.1050700105

215. Reinhard, E. G. Parasitic Castration of Crustacea. / E. G. Reinhard // Parasitology. — 1956. — T. 107. — С. 79-107.

216. Reinhard, E. G. The spermatogenic nature of the mantle bodies in the aberrant rhizocephalid, Mycetomorpha. / E. G. Reinhard, & J. T. Evans // Journal of Morphology. — 1951. — T. 89. — №. 1. — С. 59-69. https://doi.org/10.1002/jmor.1050890105

217. Reinhard, E. G. The Hermaphroditic Nature of Thompsonia (Crustacea: Rhizocephala) With the Description of Thompsonia cubensis, n. sp. / E. G. Reinhard, & T. C. Stewart // Proceedings of the Helminthological Society of Washington. — 1956. — T. 23. — №. 2. — С. 162-168.

218. Rillich, J. Serotonin Mediates Depression of Aggression After Acute and Chronic Social Defeat Stress in a Model Insect. / J. Rillich, & P. A. Stevenson // Frontiers in Behavioral Neuroscience. — 2018. — T. 12. — 233 c. https://doi.org/10.3389/fnbeh.2018.00233

219. Ritchie, L. E. The Life History of Lernaeodiscus Porcellanae (Cirripedia: Rhizocephala) and Co-evolution With Its Porcellanid Host. / L. E. Ritchie, & J. T. H0eg// Journal of Crustacean Biology. — 1981. — T. 1. — №. 3. — С. 334-347. https://doi.org/10.2307/1547966

220. Robles, R. Oxygen consumption of the crab Callinectes rathbunae parasitized by the rhizocephalan barnacle Loxothylacus texanus as a function of salinity. / R. Robles, F. Alvarez, & G. Alcaraz // Marine Ecology Progress Series. — 2002. — T. 235. — С. 189-194. https://doi.org/10.3354/meps235189

221. Roer, R. The structure and calcification of the crustacean cuticle. / R. Roer, & R. Dillaman // Integrative and Comparative Biology. — 1984. — T. 24. — №. 4. —

С. 893-909. https://doi.Org/10.1093/icb/24.4.893

222. Rubiliani, C. Action of a rhizocephalan on the genital activity of host male crabs: Characterization of a parasitic secretion inhibiting spermatogenesis. / C. Rubiliani // International Journal of Invertebrate Reproduction. — 1983. — T. 6. — №. 3. — С. 137-147. https://doi.org/10.1080/01651269.1983.10510036

223. Rubiliani, C. Response by two species of crabs to a rhizocephalan extract. / C. Rubiliani // Journal of Invertebrate Pathology. — 1985. — T. 45. — №. 3. — С. 304310. https://doi.org/10.1016/0022-2011(85)90108-9

224. Rubiliani, C. Modalités de la destruction des régions neurosécrétrices des crabes Carcinus maenas (L.) et C. mediterraneus Czerniavsky infestés par la Sacculine. / C. Rubiliani, & G. G. Payen // General and Comparative Endocrinology. — 1979. — T. 38. — №. 2. — С. 215-228. https://doi.org/10.1016/0016-6480(79)90209-0

225. Rubiliani-Durozoi, M. Déroulement des gamétogenèses chez les Crabes Carcinus maenas (L.) et C. mediterraneus Czerniavsky parasités par la Sacculine. / M. Rubiliani-Durozoi, C. Rubiliani, & G. G. Payen // International Journal of Invertebrate Reproduction. — 1980. — T. 2. — №. 2. — С. 107-120. https://doi.org/10.1080/01651269.1980.10553346

226. Rybakov, A. V. The chemoreceptive lattice organs in cypris larvae develop from Naupliar Setae (Thecostraca: Cirripedia, Ascothoracida and Facetotecta). / A. V. Rybakov, J. T. H0eg, P. G. Jensen, & G. A. Kolbasov // Zoologischer Anzeiger. — 2003. — T. 242. — №. 1. — С. 1-20. https://doi.org/10.1078/0044-5231-00084

227. Rybakov, A. V. Larval Development in Peltogasterella Studied by Scanning Electron Microscopy (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / A. V. Rybakov, O. M. Korn, J. T. H0eg, & D. Waloszek // Zoologischer Anzeiger. — 2002. — T. 241. —

№. 3. — C. 199-221. https://doi.org/10.1078/0044-5231-00070

228. Sabadel, A. J. M. Unravelling the trophic interaction between a parasitic barnacle (Anelasma squalicola) and its host Southern lanternshark (Etmopterus granulosus) using stable isotopes. / A. J. M. Sabadel, P. Cresson, B. Finucci, & J. Bennett // Parasitology. — 2022. — T. 146. — C. 1976-1984.

https://doi .org/10.1017/S0031182022001299

229. Sanviti, G. Les sacculines (Sacculina carcini Thompson, 1836) de Carcinus mediterraneus et Pachygrapsus marmoratus: Comparaison immunochimique; étude comparée de leur influence sur la composition protéique de l'hémolymphe des deux hôtes. / G. Sanviti, B. Romestand, & J. P. Trilles // Zeitschrift Für Parasitenkunde Parasitology Research. — 1981. — T. 64. — №. 2. — C. 243-251. https://doi.org/10.1007/BF00930501

230. Schmitz, G. Structure and function of lamellar bodies, lipid-protein complexes involved in storage and secretion of cellular lipids. / G. Schmitz, & G. Müller // Journal of Lipid Research. — 1991. — T. 32. — №. 10. — C. 1539-1570. https://doi .org/10.1016/S0022-2275(20)41642-6

231. Self, J. T. Biological relationships of the pentastomida; a bibliography on the pentastomida. / J. T. Self // Experimental Parasitology. — 1969. — T. 24. — №. 1. — C. 63-119. https://doi.org/10.1016/0014-4894(69)90222-7

232. Shaw, J. C. Parasite manipulation of brain monoamines in California killifish (Fundulusparvipinnis) by the trematode Euhaplorchis californiensis. / J. C. Shaw, W. J. Korzan, R. E. Carpenter, A. M. Kuris, K. D. Lafferty, C. H. Summers, & 0. 0verli // Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. — 2009. — T. 276. — №. 1659. — C. 1137-1146. https://doi.org/10.1098/rspb.2008.1597

233. Shirley, S. M. Hemolymph responses of Alaskan king crabs to rhizocephalan

parasitism. / S. M. Shirley, T. C. Shirley, & T. R. Meyers // Canadian Journal of Zoology. — 1986. — T. 64. — №. 8. — С. 1774-1781. https://doi.org/10.1139/z86-267

234. Shukalyuk, A. I. Organization of the Interna of the Rhizocephalan Barnacle Peltogasterella gracilis. / A. I. Shukalyuk, S. I. Baiborodin, & V. V. Isaeva // Russian Journal of Marine Biology. — 2001. — T. 27. — №. 2. — С. 113-115. https://doi.org/10.1023/A:1016603532346

235. Shyamal, S. Transcriptomic analysis of crustacean molting gland (Y-organ) regulation via the mTOR signaling pathway. / S. Shyamal, S. Das, A. Guruacharya, D. L. Mykles, & D. S. Durica // Scientific Reports. — 2018. — T. 8. — №. 1. — С. 1-17. https://doi.org/10.1038/s41598-018-25368-x

236. Skalon, E. K. Plasmodium structure of Intoshia linei (Orthonectida). / E. K. Skalon, V. V. Starunov, N. I. Bondarenko, & G. S. Slyusarev // Journal of Morphology. — 2023. — T. 284. — №. 7. — e21602. https://doi.org/10.1002/jmor.21602

237. Slyusarev, G. S. Fine Structure of the Mature Plasmodium of Intoshia variabili (Phylum Orthonectida), a Parasite of the Platyhelminth Macrorhynchus crocea. / G. S. Slyusarev, & D. M. Miller // Acta Zoologica. — 1998. — T. 79. — №. 4. — С. 319-327. https://doi.org/10.1111/j.1463-6395.1998.tb01281.x

238. Smit, N. J. Parasitic Crustacea: State of Knowledge and Future Trends. / N. J. Smit, N. L. Bruce, & K. A. Hadfield // Нью-Йорк: Springer International Publishing. — 2019. — T.3. https://doi.org/10.1007/978-3-030-17385-2

239. Spaziani, E. The biology of Crustacea / E. Spaziani // Орландо: Academic Press — Ред. D. E. Bliss, L. H. Mantel. — 1985 — Т. 9. — 550 с.

240. Sreenivasula Reddy, P. Effect of serotonin on hemolymph glucose regulation

in the fresh water edible crab Oziotelphusa senex senex. / P. Sreenivasula Reddy, & T. Pushpalatha // Aquaculture. — 2007. — T. 266. — №. 1-4. — C. 274-278. https://doi.Org/10.1016/j. aquaculture .2007.02.023

241. St0ttrup, J. G. The elusive copepods: Their production and suitability in marine aquaculture: Copepods in marine aquaculture. / J. G. St0ttrup // Aquaculture Research. — 2000. — T. 31. — №. 8-9. — C. 703-711. https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2000.318488.x

242. Tain, L. Differential influence of Pomphorhynchus laevis (Acanthocephala) on brain serotonergic activity in two congeneric host species. / L. Tain, M.-J. Perrot-Minnot, & F. Cezilly // Biology Letters. — 2007. — T. 3. — №. 1. — C. 69-72. https://doi.org/10.1098/rsbl.2006.0583

243. Takahashi, T. Behavioral manipulation of the shore crab, Hemigrapsus sanguineus by the rhizocephalan barnacle, Sacculinapolygenea. / T. Takahashi, A. Iwashige, & S. Matsuura // Crustacean Research. — 1997. — T. 26. — C. 153-161. https://doi.org/10.18353/crustacea.26.0_153

244. Takahashi, T. Laboratory Studies on Molting and Growth of the Shore Crab, Hemigrapsus sanguineus de Haan, Parasitized by a Rhizocephalan Barnacle. / T. Takahashi, & S. Matsuura // The Biological Bulletin. — 1994. — T. 186. — №. 3. — C. 300-308. https://doi.org/10.2307/1542276

245. Tang, H. A Serpin that Regulates Immune Melanization in the Respiratory System of Drosophila. / H. Tang, Z. Kambris, B. Lemaitre, & C. Hashimoto // Developmental Cell. — 2008. — T. 15. — №. 4. — C. 617-626. https://doi.org/10.1016Zj.devcel.2008.08.017

246. Terwilliger, N. B. Gene expression profile, protein production, and functions of cryptocyanin during the crustacean molt cycle. / N. B. Terwilliger // Invertebrate

Reproduction & Development. — 2012. — T. 56. — №. 3. — C. 229-235. https://doi.org/10.1080/07924259.2011.595972 247. Terwilliger, N. B. Cryptocyanin, a crustacean molting protein: Evolutionary link with arthropod hemocyanins and insect hexamerins. / N. B. Terwilliger, L. Dangott, & M. Ryan / Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. — 1999. — T. 96. — №. 5. — C. 2013-2018. https://doi.org/10.1073/pnas.96.5.2013

248. Thomas, F. Parasitic manipulation: Where are we and where should we go? / F. Thomas, S. Adamo, & J. Moore // Behavioural Processes. — 2005. — T. 68. — №. 3. — C. 185-199. https://doi.org/10.1016Zj.beproc.2004.06.010

249. Tobias, Z. J. C. Invasion history shapes host transcriptomic response to a

body-snatching parasite. / Z. J. C. Tobias, A. E. Fowler, A. M. H. Blakeslee, J. A. Darling, M. E. Torchin, A. W. Miller, G. M. Ruiz, & C. K. Tepolt // Molecular Ecology. — 2021. — T. 30. — №. 17. — С. 4321-4337. https://doi.org/10.1111/mec.16038

250. Tong, R. Neuroendocrine-immune regulation mechanism in crustaceans: A review. / R. Tong, L. Pan, X. Zhang, & Y. Li // Reviews in Aquaculture. — 2022. — T. 14 — №1. — С. 378-398. https://doi.org/10.1111/raq.12603

251. Toyota, K. Sacculina-Induced Morphological Feminization in the Grapsid Crab Pachygrapsus crassipes. / K. Toyota, T. Ito, K. Morishima, R. Hanazaki, & T. Ohira // Zoological Science. — 2023. — T. 40. — № 5. — 367-374. https://doi.org/10.2108/zs230022

252. Trédez, F. Synchronism of naupliar development of Sacculina carcini Thompson, 1836 (Pancrustacea, Rhizocephala) revealed by precise monitoring. / F. Trédez, N. Rabet, L. Bellec, & F. Audebert // Helgoland Marine Research. — 2017.

— T. 70. — №. 1. — С. 1-11. https://doi.org/10.1186/s10152-016-0479-2

253. Trevizan, A. R. Acute Toxoplasma gondii infection alters the number of neurons and the proportion of enteric glial cells in the duodenum in Wistar rats. / A. R. Trevizan, L. C. L. Schneider, E. J. de A. Araujo, J. L. Garcia, N. C. Buttow, G. de A. Nogueira-Melo, & D. de M. G. Sant'Ana // Neurogastroenterology & Motility. — 2019. — T. 31. — №. 3. — e13523. https://doi.org/10.1111/nmo.13523

254. Trilles, J.-P. Symbiosis And Parasitism In The Crustacea. / J.-P. Trilles, & R. Hipeau-Jacquotte // Treatise on Zoology—Anatomy, Taxonomy, Biology. The Crustacea. — Лейден: BRILL. — 2012. — T. 3 — С. 239-317. https://doi.org/10.1163/9789004188259_006

255. Tung, C.-H. A New Copepod With Transformed Body Plan and Unique Phylogenetic Position Parasitic in the Acorn Worm Ptychodera flava. / C.-H. Tung, Y.-R. Cheng, C.-Y. Lin, J.-S. Ho, C.-H. Kuo, J.-K. Yu, & Y.-H. Su // The Biological Bulletin. — 2014. — T. 226. — №. 1. — С. 69-80. https://doi.org/10.1086/BBLv226n1p69

256. Tunnicliffe, V. Parasitization of a hydrothermal vent limpet (Lepetodrilidae, Vetigastropoda) by a highly modified copepod (Chitonophilidae, Cyclopoida). / V. Tunnicliffe, J. M. Rose, A. E. Bates, & N. E. Kelly // Parasitology. — 2008. — T. 135. — №. 11. — С. 1281-1293. https://doi.org/10.1017/S0031182008004721

257. Turlejski, K. Evolutionary ancient roles of serotonin: Long-lasting regulation of activity and development. / K. Turlejski // Acta Neurobiologiae Experimentali. — 1996. — T. 56. — С. 619-636.

258. Urbanska, K. The Secrets of Alternative Autophagy. / K. Urbanska, & A. Orzechowski // Cells. — 2021. — T. 10. — №. 11. — 3241. https://doi.org/10.3390/cells10113241

259. Vazquez-Lopez, H. Effects of the Parasite Loxothylacus texanus on the Agonistic Behavior of the Crab Callinectes rathbunae. / H. Vazquez-Lopez, R. Escamilla-Montes, G. Diarte-Plata, S. Chazaro-Olvera, A. del C. Rodríguez-Varela, J. Franco-Lopez, R. Chavez-Lopez, & Á. Moran-Silva. // International Journal of Zoological Investigations. — 2019. — T. 06. — №. 01. — C. 122-134. https://doi.org/10.33745/ijzi.2020.v06i01.010

260. Vázquez-López, H. (2010). Affectation of Swimming Capacity in Callinectes Rathbunae (Crustacea: Brachyura) Caused by Loxothylacus Texanus (Crustacea: Rhizocephala). / H. Vázquez-López // Research Journal of Fisheries and Hydrobiology. — 2010. — T. 5. — №. 2. — C. 76-80.

261. Vazquez-Lopez, H. Observations on the Behavior of the Dark Crab Callinectes rathbunae Contreras Parasitized with the Rhizocephalan Loxothylacus texanus Boschma. / H. Vazquez-Lopez, F. Alvarez, J. Franco, A. Moran, & S. Chazaro // International Journal of Zoological Research. — 2006. — T. 2. — №. 4. — C. 344-353. https://doi.org/10.3923/ijzr.2006.344.353

262. Waiho, K. Infestation of parasitic rhizocephalan barnacles Sacculina beauforti (Cirripedia, Rhizocephala) in edible mud crab, Scylla olivacea. / K. Waiho, H. Fazhan, H. Glenner, & M. Ikhwanuddin // PeerJ. — 2017. — T. 5. — e3419. https://doi.org/10.7717/peerj.3419

263. Waiho, K. Gonadal transcriptomic analysis of the mud crab Scylla olivacea infected with rhizocephalan parasite Sacculina beauforti. / K. Waiho, H. Fazhan, . Zhang, N. Afiqah-Aleng, J. H. Z. Moh, M. Ikhwanuddin, M. Hassan, M. H. Norainy, & H. Ma // Genomics. — 2020. — T. 112. — №. 5. — C. 2959-2969. https://doi.org/10.1016Zj.ygeno.2020.05.007

264. Waiho, K. Rhizocephalans and their potential impact on crustacean

aquaculture. / K. Waiho, H. Glenner, A. Miroliubov, C. Noever, M. Hassan, M. Ikhwanuddin, & H. Fazhan // Aquaculture. — 2021. — T. 531. — 735876. https://doi.org/10.1016Zj.aquaculture.2020.735876

265. Walker, G. The cypris larvae of Sacculina carcini Thompson (Crustacea: Cirripedia: Rhizocephala). / G. Walker // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. — 1985. — T. 93. — №. 1-2. — С. 131-145. https://doi.org/10.1016/0022-0981(85)90154-6

266. Walker, G. Introduction to the Rhizocephala (Crustacea: Cirripedia). / G. Walker // Journal of Morphology. — 2001. — T. 249. — №. 1. — С. 1-8. https://doi.org/10.1002/jmor.1038

267. Wardle, W. J. Occurrence and Distribution of an Outbreak of Infection of Loxothylacus Texanus (Rhizocephala) in Blue Crabs in Galveston Bay, Texas, With Special Reference to Size and Coloration of the Parasite's External Reproductive Structures. / W. J. Wardle, & A. J. Tirpak // Journal of Crustacean Biology. — 1991. — T. 11. — №. 4. — С. 553-560. https://doi.org/10.2307/1548525

268. Watanabe, H. K. From commensalism to parasitism within a genus-level clade of barnacles. / H. K. Watanabe, D. Uyeno, L. Yamamori, N. Jimi, & C. Chen // Biology Letters. — 2023. — T. 19. — №. 7. — 20220550. https://doi.org/10.1098/rsbl.2022.0550

269. Watling, L. Functional Morphology and Diversity (The Natural History of Crustacea). / L. Watling, & M. Thiel // 2013.

270. Whiteley, N. Physiological and ecological responses of crustaceans to ocean acidification. / N. Whiteley // Marine Ecology Progress Series. — 2011. — T. 430. — С. 257-271. https://doi.org/10.3354/meps09185

271. Williams, E. H. Life Cycle and Life History Strategies of Parasitic Crustacea. /

E. H. Williams, & L. Bunkley-Williams // В Parasitic Crustacea. — Нью-Йорк: Springer International Publishing. — 2019. — T. 3. — С. 179-266. https://doi.org/10.1007/978-3-030-17385-2_5

272. Williams, J. D. The Global Diversity of Parasitic Isopods Associated with Crustacean Hosts (Isopoda: Bopyroidea and Cryptoniscoidea). / J. D. Williams, & C. B. Boyko // PLoS ONE. — 2012. — T. 7. — №. 4. — e35350. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0035350

273. Yamada, S. Ultrastructure and cuticle formation of the carapace in the myodocopan ostracod exemplified by Euphilomedes japonica (Crustacea: Ostracoda). / S. Yamada // Journal of Morphology. — 2019. — T. 280. — № 6. — С. 809-826. https://doi.org/10.1002/jmor.20985

274. Yamaguchi, T. Morphological modifications caused by Sacculina polygenea in Hemigrapsus sanguineus (De Haan) (Brachyura: Grapsidae). / T. Yamaguchi, & H. Aratake // Crustacean Research. — 1997. — T. 26. — С. 125-145. https://doi.org/10.18353/crustacea.26.0_125

275. Yamaguchi, T. Morphological modifications caused by two sacculinid parasites of the grapsid crab Cyclograpsus intermedius. / T. Yamaguchi, H. Aratake, & T. Takahashi // Crustacean Research. — 1999. — T. 28. — С. 134-152. https://doi.org/10.18353/crustacea.28.0_134

276. Yang, C. Transcriptomic analysis of male three-spot swimming crab (Portunus sanguinolentus) infected with the parasitic barnacle Diplothylacus sinensis. / C. Yang, B. Shan, Y. Liu, L. Wang, M. Liu, T. Yao, & D. Sun // Fish & Shellfish Immunology. — 2022. — T. 128. — С. 260-268. https://doi.org/10.1016Zj.fsi.2022.07.074

277. Yoshioka, R. M. A Rhizocephalan Parasite Induces Pervasive Effects on Its

Shrimp Host. / R. M. Yoshioka, S. Brown, N. C. Treneman, J. B. Schram, & A. W. E. Galloway // The Biological Bulletin. — 2023. — T. 244. — № 3. — C. 201-216. https://doi.org/10.1086/729497

278. Zacher, L. S. A field-based study of metabolites in sacculinized king crabs Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815) and Lithodes aequispinus Benedict, 1895 (Decapoda: Anomura: Lithodidae). / L. S. Zacher, L. Horstmann, & S. M. Hardy // Journal of Crustacean Biology. — 2018. — T. 38. — №. 6. — C. 794-803. https://doi.org/10.1093/jcbiol/ruy068

279. Zatylny-Gaudin, C. Differential analysis of the haemolymph proteome of Carcinus maenas parasitized by Sacculina carcini (Cirripedia, Rhizocephala) reveals potential mechanisms of parasite control. / C. Zatylny-Gaudin, O. Hervé, M.-P. Dubos, N. Rabet, J. Henry, K. Liittschwager, & A. Fabienne // Fish & Shellfish Immunology. — 2023. — T. 141. — 109064. https://doi.org/10.1016Zj.fsi.2023.109064

280. Zetlmeisl, C. Parasites of the shore crab Carcinus maenas (L.): Implications for reproductive potential and invasion success. / C. Zetlmeisl, J. Hermann, T. Petney, H. Glenner, C. Griffiths, & H. Taraschewski. // Parasitology. — 2011. — T. 138. — №. 3. — C. 394-401. https://doi.org/10.1017/S0031182010001344