Заместительная пластика мочевых путей препаратами из коллагена I типа тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.01.23, кандидат наук Камалов Давид Михайлович

• Камалов Давид Михайлович
• кандидат наук
• 2017

Оглавление диссертации кандидат наук Камалов Давид Михайлович

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ЗАМЕЩАЮЩАЯ ПЛАСТИКА МОЧЕВЫХ ПУТЕЙ: СОВРЕМЕННОЕ СОСТОЯНИЕ ВОПРОСА (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

1.1 Пластика мочевых путей с использованием собственных тканей организма

1.1.1 Уретеропластика

1.1.2 Цистопластика

1.1.3 Уретропластика

1.2 Использование биоинженерных конструкций для расширяющей пластики мочевых путей

1.2.1 Разработка основы для формирования биоинженерных конструкций (скаффолдов)

1.2.1.1 Биологические скаффолды

1.2.1.2 Синтетические скаффолды

1.2.1.3 Комбинированные скаффолды

1.2.2 Биоинженерные конструкции для пластики мочевых путей

1.2.2.1 Использование стволовых клеток

1.2.2.2 Использование паракринных факторов стимуляции регенерации

ГЛАВА 2. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1 Сравнительная оценка биоинертности мембран из бычьего и свиного коллагена 1-го типа

2.1.1 Реакция тканей на имплантат из бычьего коллагена

2.1.2 Реакция тканей на имплантат из свиного коллагена

2.2 Сравнительная оценка способности к интеграции в ткань мочевого пузыря мембран из бычьего или свиного коллагена 1 -го типа после замещения ими дефекта стенки органа

2.2.1 Имплантация мембраны из бычьего коллагена

2.2.2 Имплантация мембраны из свиного коллагена

2.3 Результаты пластики уретры трубчатым коллагеновым протезом

2.4 Результаты заместительной пластики мочевого пузыря коллагеновым

имплантатом

2.5 Клиническое наблюдение заместительной пластики мочеточника

коллагеновым трубчатым протезом

2.5.1 Обсуждение клинического наблюдения

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Выводы

Практические рекомендации

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Заместительная пластика мочевых путей препаратами из коллагена I типа»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования. В урологической практике нередки ситуации, когда необратимо повреждается один из участков мочевых путей — мочеточник, мочевой пузырь, мочеиспускательный канал. Возникает необходимость замены поврежденного сегмента другим материалом для восстановления функции мочеиспускания. Несмотря на значительные успехи, достигнутые в этой области, многие проблемы, связанные с реконструктивно-заместительной пластикой мочевыводящих путей, по-прежнему остаются актуальными [33, 45, 48, 50, 60, 160].

Протяженные стриктуры мочеточника, которые невозможно ликвидировать с использованием местных тканей (лоскутная пластика, уретеро-уретеро-анастомоз, операция Боари), вынуждает использовать другие методы, основным из которых является кишечная пластика с использованием изолированного сегмента тонкой кишки на сосудистой ножке [22, 21, 56, 62]. Альтернативные методы уретеропластики (использование слизистой ротовой полости, аппендикса, тканеинженерных конструкций, эндопротезирование) проходят только экспериментальные исследования или имеют очень ограниченный клинический опыт применения [10, 12, 21, 58].

Кишечная пластика также является основным методов замещения мочевого пузыря, как при его полном удалении при раке мочевого пузыря, так и при обширных его резекциях при доброкачественных заболеваниях (интерстициальном цистите, нейрогенном мочевом пузыре, рефрактерном гиперактивном мочевом пузыре и др.) [24, 25, 28, 68, 86, 135; 176]. С этой целью используют сегменты тонкой, толстой или прямой кишки, илео-цекального угла, большой кривизны желудка на сосудистой ножке.

Однако, помимо высокой травматичности кишечной пластики мочеточника и мочевого пузыря, а также высокого риска развития хирургических осложнений, существует и проблема развития мочевой инфекции, камней мочевого резервуара, рака в пересаженном отделе кишки, а также метаболических нарушений,

связанных с различной функцией слизистой оболочки пересаженного сегмента кишки или желудка и слизистой оболочки мочевых путей [86, 116, 213].

Не менее важной проблемой, несмотря на ее многолетние исследования, остается лечение протяженных стриктур уретры. Наиболее часто используемые варианты операции — замещение зоны стриктуры слизистой полости рта, кожным или кожно-фасциальным лоскутом, в том числе на сосудистой ножке с микрохирургическим анастомозированием кровеносных сосудов [33, 53, 55, 208]. Основными отрицательными моментами этих операций была сложность выполнения, особенно при микрохирургической реваскуляризации трансплантатов, высокая частота образования стриктур и облитераций анастомозов, частое формирование мочевых свищей, а при использовании кожных лоскутов — рост волос в неоуретре [1, 54, 174]. Эндопротезирование уретры с имплантацией в область стриктуры нитиноловых сетчатых протезов носит паллиативный характер и, как правило, используется как вспомогательный метод лечения [42].

В связи с этим изучается вопрос об альтернативных вариантах заместительной пластики мочевых путей как с использованием специально обработанных аллогенных и ксеногенных тканей, так и искусственно созданных заменителей стенки органа. С этой целью испытывались мышечно-апоневротический лоскут брюшной стенки, сальник на ножке, аллотрансплантаты мочевого или желчного пузыря, сегмент брюшины, лиофилизированный трансплантат твердой мозговой оболочки, синтетические протезы или лишенные клеток биологические материалы [15, 32, 192]. Однако при экспериментальном изучении этих методов наблюдали неудовлетворительные результаты, обусловленные склерозированием и сморщиванием трансплантатов, приводящие к стриктуре и облитерации неоуретры и сморщиванию реконструированного мочевого пузыря.

Одним из перспективных материалов является коллаген, выделенный из тканей животных, достоинствами которого считают отсутствие токсических и канцерогенных свойств, слабую антигенность, высокую механическую прочность

и устойчивость к тканевым ферментам, регулируемую скорость лизиса в организме, способность образовывать комплексы с биологически активными веществами, стимуляцию регенерации собственных тканей организма [18, 87]. Особенность белков данного класса — их филогенетическое родство у разных видов животных и человека, что позволяет использовать ксеногенный коллаген для разработки биоматриц [34]. Коллаген считают одним из наиболее перспективных материалов временного направляющего каркаса для регенерации за счет постепенного замещения прилежащими собственными тканями организма, что выгодно отличает его от синтетических полимерных материалов, используемых в реконструктивной хирургии [19].

Имеются публикации об экспериментальных исследованиях, свидетельствующих о перспективности использования препаратов на основе коллагена для пластики уретры и мочевого пузыря [60, 87, 119, 194]. Однако они носят единичный характер и связаны с использованием различных препаратов коллагена, что требует накопления данных по этому вопросу. В частности, нет сведений о влиянии источника коллагена на его биоинертные свойства. Кроме того, эксперименты на крупных лабораторных животных и единичные клинические исследования на ограниченном числе пациентов, которым провели цистопластику бесклеточной коллагеновой мембраной, показали неоднозначный результат. Наряду с хорошей приживляемостью бесклеточные коллагеновые мембраны не обеспечивали ожидаемого увеличения объема мочевого пузыря и уменьшения его ригидности, что было связано с замещением коллагенового каркаса преимущественно соединительной тканью при слабой регенерации мышечной ткани [85, 87, 91, 123].

В связи с этим, актуальным остается вопрос стимуляции васкуляризации и врастания клеток из окружающих тканей в имплантированный коллагеновый каркас для формирования полноценной стенки мочевого пузыря. С этой целью ряд авторов предлагают включать в состав мембран фактор роста эндотелия сосудов (VEGF) изолированно [128] или в комплексе с гиалуроновой кислотой [99], комплекс полигликолиевой кислоты, гликолиевой кислоты и амниотической

мембраны человека [114], основной фактор роста фибробластов [88], а также стволовые клетки [87].

Степень разработанности темы. В последние годы в литературе все чаще появляются сообщения о применении препаратов из коллагена для заместительной пластики мочевых путей [60, 194]. Однако, эти исследования носят единичный характер, выполнены на различных экспериментальных животных и с использованием различных типов мембран [87, 119]. Имеющиеся публикации об экспериментальных исследованиях, свидетельствующих о перспективности использования препаратов на основе коллагена, недостаточно освещают тему выбора источника коллагена, модели заместительно-пластических операций, а и имеющиеся функциональные результаты носят неоднозначный характер [85, 87, 91, 123].

Таким образом, тема диссертации представляется весьма актуальной и находится в сфере интересов многих исследовательских центров, однако, ряд вопросов, касающихся стимуляции регенерации поврежденных тканей путем имплантации биоинженерных конструкций остается малоисследованным, что и послужило основанием для выполнения данного исследования.

Цель исследования: изучение возможности использования мембран из коллагена I типа для заместительной пластики мочевых путей, без и с включением в их состав кондиционированной среды культивирования мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани человека.

Задачи исследования:

1. Сравнить выраженность воспалительной реакции стенки мочевого пузыря и окружающих тканей при подшивании к его стенке мембран, изготовленных из коллагена I типа, выделенного из тканей свиньи и крупного рогатого скота.

2. Провести сравнительную оценку способности свиных и бычьих коллагеновых мембран инкорпорироваться в состав стенки мочевых путей после заместительной пластики.

3. Оценить гистологические изменения в зоне имплантации свиных и бычьих коллагеновых мембран, как в прилежащих отделах стенки мочевого

пузыря и уретры, так и в имплантатах.

4. Изучить влияние включения в состав коллагеновых мембран кондиционированной среды культивирования мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани человека на регенерацию новообразованной стенки мочевого пузыря после его резекции.

5. Оценить выраженность васкуляризации и клеточный состав имплантированных в мочевой пузырь коллагеновых мембран, содержащих и не содержащих кондиционированную среду культивирования мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани человека.

6. Сравнить функциональное состояние резецированного мочевого пузыря после заместительной цистопластики коллагеновой мембраной, содержащей и не содержащей кондиционированную среду культивирования мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани человека, а также при простом ушивании резецированного мочевого пузыря.

Научная новизна. Получены приоритетные данные о биологических свойств мембран из коллагена 1-го типа выделенных из тканей свиней и крупного рогатого скота. Выявлены преимущества использования мембран из свиного коллагена. Доказано, что включение в состав коллагеновой мембраны кондиционированной среды культивирования мезенхимальных стволовых клеток человека способствует более полноценной эпителизации имплантата, ускорению его реваскуляризации, более полноценной регенерации мышечного слоя новообразованной стенки мочевого пузыря и препятствует инкрустации солей мочи на неэпителизированной внутренней поверхности. Выявлено более полноценное восстановление функционального объема органа и его комплаентность, оцененные методом инфузионной цистометрии, при включении в состав мембраны кондиционированной среды культивирования мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани человека. Доказана возможность клинического применения коллагенового имплантата для заместительной пластики мочеточника.

Теоретическая и практическая значимость. Доказана эффективность

использования методики цистопластики для изучения пригодности различных коллагеновых биоматериалов материалов для заместительной пластики мочевых путей. Определен оптимальный вид коллагена, вызывающий минимальную воспалительную реакцию окружающих тканей, который может быть рекомендован для изготовления материала для цистопластики. Обоснована целесообразность включения в состав коллагеновых мембран кондиционированной среды культивирования мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани человека для обеспечения полноценной регенерации стенки мочевого пузыря и сохранения ее функции. Проведена апробация заместительной пластики мочевых путей в клинике с использованием биопротеза мочеточника из коллагена I типа. Сформулированы рекомендации по дальнейшим исследованиям возможности использования коллагеновых материалом для расширяющей цистопластики, в том числе и в клинической практике.

Методология и методы исследования. Экспериментальные исследования проведены на 48 Ново-Зеландских кроликах-самцах массой 3-3,5 кг, в возрасте 4-5 месяцев. Животных содержали в стандартных условиях вивария на рационе из специального комбикорма с неограниченным доступом к воде. Все эксперименты проводили с соблюдением принципов Европейской конвенции о гуманном отношении к животным. Опыты обязательно проводились в условиях общего обезболивания. Эвтаназию животных производили избыточным введением наркотического вещества (тиопентала натрия).

Исследование состояло из 2 этапов. На первом этапе оценивали биологическую совместимость и способность интегрироваться в ткани мочевого пузыря 2 вариантов мембран из коллагена 1 -го типа, изготовленных из тканей крупного рогатого скота (бычий коллаген) или из тканей свиньи, с целью выбора наиболее подходящего варианта коллагенового материала. Для этого коллагеновые мембраны подшивали к наружной стенке мочевого пузыря (12 кроликов по 6 животных в каждой группе) или замещали ими сформированный дефект стенки (18 кроликов, по 9 животных в каждой группе) и через определенные интервалы времени оценивали выраженность тканевой реакции на имплантат при

макроскопической оценке и гистологическом исследовании ткани мочевого пузыря.

На втором этапе оценивали возможность использования препаратов коллагена 1-го типа для заместительной пластики мочеиспускательного канала и мочевого пузыря. В опытах с пластикой уретры коллагеновую трубку вшивали в области дефекта уретры, образовавшегося после ее пересечения и расхождения краев (4 кролика). При заместительной пластике мочевого пузыря коллагеновой мембраной замещали дефект стенки мочевого пузыря, образовавшийся после его резекции. При этом в части опытов использовали стандартную коллагеновую мембрану (5 кроликов), а в других экспериментах — мембрану с включенной в ее состав кондиционированной средой культивирования мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани человека (МСК ЖТ), содержащей комплекс факторов роста, цитокинов и других сигнальных молекул, способный стимулировать регенерацию новообразованной стенки мочевого пузыря (5 кроликов).

Контролем к этой части исследований служили опыты, в которых выполняли только резекцию мочевого пузыря с его ушиванием (4 кролика).

Таким образом, было проведено 6 серий экспериментов.

1-я серия - сравнительная оценка биосовместимости препаратов коллагена 1-го типа, изготовленного из тканей крупного рогатого скота (бычий коллаген) и свиней на модели их подшивания к наружной стенке мочевого пузыря;

2-я серия - сравнительная оценка способности к интеграции в ткань мочевого пузыря мембран, изготовленных из бычьего или свиного коллагена 1 -го типа после замещения ими дефекта его стенки;

3-я серия - изучение возможности заместительной пластики уретры трубчатым препаратом коллагена 1 -го типа;

4-я серия - оценка возможности использования нативных мембран из свиного коллагена 1 -го типа для заместительной пластики мочевого пузыря после его резекции;

5-я серия - оценка коллагеновых мембран, содержащих кондиционированную среду культивирования мезенхимальных стволовых клеток

жировой ткани человека в качестве материала для заместительной пластики мочевого пузыря после его резекции;

6-я серия - резекция мочевого пузыря с его ушиванием. Из эксперимента животных выводили на 3-и, 7-е, 14-е, 21-е и 30-е сутки после операции. Распределение животных по сериям и срокам наблюдения представлено в Таблице. 1.

Таблица 1 — Распределение животных по сериям и срокам наблюдения

Серии опытов Сроки наблюдения (дни) Всего кроликов

3 7 14 21 30

1-я серия 4 4 4 - - 12

2-я серия - 6 6 6 18

3-я серия - - 2 2 - 4

4-я серия - - - - 5 5

5-я серия - - - - 5 5

6 серия - - - - 4 4

Всего 4 10 14 6 14 48

Коллагеновые мембраны были изготовлены по следующей методике. Стерильный прозрачный нейтральный раствор коллагена 1-го типа, выделенного из тканей животных («ВИСКОЛЛ», производство ООО «Имтек», Россия), в объеме 1 мл помещали в стерильную культуральную чашку с площадью поверхности 2 см2. Затем чашку перемещали в С02-инкубатор и инкубировали при +370 С до тех пор, пока не формировался гидрогель, который в дальнейшем подвергали сушке в асептических условиях при температуре от +200 С до +250 С в течение 7 дней. Процесс сушки считали полностью завершенным, когда гидрогель переходил в форму жесткого стеклоподобного материала. Полученные таким образом мембраны расфасовывали в индивидуальную стерильную упаковку с соответствующей маркировкой (Рисунок 1).

МСК выделяли из подкожного жирового отложения здоровых доноров обоих полов, полученного при проведении малого хирургического вмешательства под местной анестезией или в ходе плановых хирургических операций. Полученный в результате операции биоматериал в стерильных условиях

Рисунок 1 — Внешний вид стерильной упакованной коллагеновой мембраны

ламинарного бокса измельчали сосудистыми ножницами до консистенции суспензии мелких (размером не более 2 мм3) кусочков и смешивали с растворами ферментов коллагеназы I типа (200 ед/мл, «Worthington Biochemical», США) и диспазы (40 ед/мл, «Sigma», Германия) при соотношении объема ткани (в мл) к объему ферментативного раствора (в мл) 1:2. Образец инкубировали при 37°C в течение 30-45 мин при постоянном встряхивании. По окончании инкубации добавляли равный объем среды роста МСК и центрифугировали при 200 g в течение 8 мин. Белесый поверхностный слой, состоящий из зрелых адипоцитов и кусочков ферментативно необработанной ткани, удаляли с помощью вакуумного насоса, а осадок, состоящий из клеток стромы жировой ткани, клеток сосудистой стенки и крови, суспендировали в стерильной деионизированной воде для лизирования эритроцитов. Чтобы восстановить осмотическое давление, добавляли соответствующий объем 10-кратного фосфатного буфера, а затем фильтровали через нейлоновые фильтры с размером пор 100 мкм («BD Falcon Cell Strainer», США) и центрифугировали при 200 g 5 мин. Супернатант удаляли, а осадок ресуспендировали в среде, поддерживающей рост недифференцированных мезенхимных прогениторных клеток человека (Advance Stem Cell Basal Medium, далее - AdvanceSM, «HyClone», США), содержащей 10% смеси факторов роста (Advance Stem Cell Growth Supplement, «HyClone») и 100 Ед/мл

пенициллина/стрептомицина («HyClone»). Выделенные клетки высаживали на чашки Петри («Corning», США) в концентрации 5х104/см3 и инкубировали в СО2-инкубаторе (5% СО2; 95% воздуха) при 37°С. На следующий день в чашках меняли среду для удаления не прикрепившихся клеток. Смену среды проводили каждые 2-3 дня; при достижении 70-80% конфлюента клетки рассаживали в соотношении 1:3 с использованием раствора QTase (HyClone). Жизнеспособность клеток оценивали путем окраски клеток раствором трипанового синего и подсчета количества живых и мертвых клеток с помощью счетчика клеток (Cell Counter, «Invitrogen», США).

Для получения кондиционированной среды МСК ЖТ 4-5 пассажа, достигшие 80% конфлюента, промывали трехкратно раствором Хэнкса («ПанЭко», Россия). К чашкам добавляли среду DMEM-LG. Клетки культивировали в течение 7 дней, после чего кондиционированную среду собирали, очищали от клеточного дебриса путем центрифугирования в течение 10 мин при 300g, затем концентрировали в 50 раз с помощью ультрафильтрации через мембраны из регенерированной целлюлозы с указанным отсечением 10 кДа в центрифужных картриджах («Millipore», США).

Для получения биоматериала смешивали 2,5% свиной стерильный нейтральный коллагеновый гель («ИМТЕК», Россия) с образцами концентрированной в 50 раз КС МСК ЖТ в соотношении по объему 4:1. Затем инкубировали смесь при +4°С в течение 2 часов. Полученный раствор равномерно распределяли на дне лунки 24-луночного планшета с площадью поверхности около 2 см2, помещали планшет в С02-инкубатор и инкубировали при +37°С в течение 30 минут, пока не сформируется гидрогель. Приготовленный гидрогель в планшете высушивали в асептических условиях при температуре +37°C до полного высыхания. Процесс сушки считали полностью завершенным, когда гидрогель переходил в форму жесткого стеклоподобного материала. Контрольные мембраны готовили по такому же протоколу, добавляя вместо КС МСК ЖТ соответствующее количество среды DMEM-LG.

Все операции на кроликах проводили в условиях наркоза. Для наркоза использовали смесь препаратов Золетил 100 производства Virbac S.A. и XylaVET professional (ксилавет инъекционный) производства Pharmamagist Kft в соотношении 2:1. Рабочий раствор доводили до концентрации Золетила 30 мг/мл добавлением физиологического раствора. Полученный раствор вводили в концентрации 1мл/кг внутримышечно.

Для профилактики инфекционных осложнений вводили антибиотик (амоксиклав 200 мг внутривенно однократно).

Методика подшивания коллагеновой мембраны к стенке мочевого пузыря. После соответствующей подготовки операционного поля проводили нижнесрединную лапаротомию и в рану выводили мочевой пузырь. При необходимости для полной мобилизации мочевого пузыря пересекали соединительнотканные связки, соединяющие пузырь с боковыми стенками брюшной полости, а также отделяли перивезикальную жировую ткань.

На наружной поверхности мочевого пузыря выбирали бессосудистый участок и подшивали коллагеновую мембрану отдельными узловыми швами атравматической нитью « Vicryl» 4/0. Обычно накладывали 6 узловых швов на равном расстоянии (Рисунок 2).

Рисунок 2 — Внешний вид коллагеновой мембраны, подшитой к наружной стенке мочевого пузыря

После этого мочевой пузырь погружали в брюшную полость и ушивали лапаротомную рану, используя непрерывный обвивной шов для ушивания мышечной стенки и отдельные узловые швы на кожу атравматической нитью «Vicryl» 2/0.

Методика замещения коллагеновой мембраной дефекта стенки мочевого пузыря. После введения в наркоз катетеризировали мочевой пузырь по уретре для эвакуации мочи и определения исходной функциональной емкости мочевого пузыря. В бессосудистой зоне иссекали участок стенки органа размером примерно 2 х 2 см, что соответствовало размерам коллагеновой мембраны (Рисунок 3А). Мембрану вшивали в область дефекта непрерывным обвивным швом с использованием атравматической нити «Vicryl» 4/0 (Рисунок 3Б).

Рисунок 3 — Внешний вид резецированного мочевого пузыря, подготовленного к имплантации мембраны (А) и после ее имплантации (Б)

Мочевой пузырь помещали в брюшную полость и ушивали лапаротомную рану двухрядным швом: непрерывный обвивной шов на мышечную стенку и отдельные узловые швы на кожу с использованием атравматической нити «Vicryl» 2/0. Мочевой пузырь дренировали уретральным катетером.

Методика резекции мочевого пузыря с его ушиванием. В этих опытах производили резекцию мочевого пузыря, как в предыдущих сериях, но образовавшийся дефект ушивали непрерывным обвивным швом атравматической нитью «Vicryl» 4/0. Дальнейший ход операции — как в других сериях.

Методика пластики уретры трубчатым коллагеновым протезом. В опытах с

пластикой уретры катетеризировали ее полиэтиленовым катетером; рассекали кожу препуция и слизистую оболочку полового члена и выделяли уретру, которую брали на держалку (Рисунок 4А). Катетер временно удаляли. Подготавливали трубчатый коллагеновый протез (Рисунок 4Б), после чего уретру пересекали. В образовавшийся после расхождения краев дефект помещали коллагеновый имплантат, который анастомозировали на вновь введенном катетере с краями уретры, используя отдельные узловые швы атравматичной нитью «Vicryl» 4/0 (Рисунок 4В). Кожную рану ушивали отдельными узловыми швами нитью «Vicryl» 4/0.

Рисунок 4 — Этапы пластики уретры кролика коллагеновым имплантатом

Оценка результатов пластики мочевых путей. В заданные сроки животных вновь вводили в наркоз. В опытах с цистоплатикой выполняли лапаротомию, проводили макроскопическую оценку состояния мочевого пузыря и окружающих

тканей, выполняли функциональные исследования и в конце эксперимента удаляли мочевой пузырь для гистологического исследования. В опытах с уретропластикой после визуального осмотра области операции выполняли уретрографию или фистулографию, после чего удаляли уретру с имплантатом для гистологического исследования.

В опытах с цистопластикой при визуальном осмотре области операции обращали внимание на выраженность спаечного процесса мочевого пузыря с окружающими тканями, наличие экссудата в брюшной полости, внешний вид мочевого пузыря (степень гиперемии, отечность, ригидность стенки), а также коллагеновой мембраны. После удаления и вскрытия мочевого пузыря отмечали степень гиперемии и отечности слизистой оболочки, прилегающей к имплантированной мембране, визуально оценивали площадь мембраны, не покрытой уротелием, а также отмечали наличие или отсутствие инкрустации мембраны солями и образование конкрементов.

В опытах с уретропластикой оценивали состояние наружных тканей, наличие мочевых свищей.

Для оценки состояния нижних мочевых путей в ряде исследований выполняли уретроцистографию с 76% верографином. В опытах с уретропластикой при выявлении мочевого свища выполняли фистулографию.

Функциональные исследования проводили как на интактном мочевом пузыре до начала манипуляций на нем, так и через 1 месяц после цистопластики.

Исследования начинали с определения функциональной емкости мочевого пузыря. Для этого мочевой пузырь пунктировали в области верхушки внутривенным кубитальным катетером G20 и через него опорожняли мочевой пузырь. После этого мочевой пузырь постепенно наполняли физиологическим раствором до начала подтекания жидкости по уретре или до начала активного мочеиспускания. Объем введенного при этом раствора считали функциональным объемом мочевого пузыря.

В процессе наполнения мочевого пузыря регистрировали также динамику внутрипузырного давления. Эти данные использовали для расчета показателя

«объем/давление», характеризующего комплаентность мочевого пузыря.

Для дальнейших исследований к поверхности мочевого пузыря подшивали 2 хлорсеребряных электрода по обе стороны от имплантированной мембраны. С помощью этих электродов на специально разработанной высокочувствительной аппаратуре регистрировали малые колебания биоимпеданса и анализировали с помощью Фурье-преобразования их частотный спектр с помощью оригинального программного обеспечения. При одновременной регистрации внутрипузырного давления через катетер, соединенный с электроманометром, с помощью этой методики можно оценивать состояние кровообращения в изучаемой области стенки мочевого пузыря, а также функциональное состояние детрузора, в том числе его возбудимость и спонтанную активность, не связанную с актом мочеиспускания, что является признаком детрузорной гиперактивности.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Камалов Давид Михайлович, 2017 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Бабыкин, А. В. Реконструктивная хирургия протяженных стриктур уретры у мужчин : автореф. дисс. ... канд. мед. наук :14.00.40 / Бабыкин Антон Васильевич. — М., 2008. — 26 с.

2. Биосовместимость матриксов для тканевой инженерии из поли-3-оксибутирата и его композитов, полученных методом электроформования / Жаркова Н.Н, Староверова О.В., Воинова В.В., Андреева Н.В. [и соавт.] // Биомедицинская химия. — 2014. — Т. 60. — № 5. — С. 553-560.

3. Влияние ботулинического токсина на вегетативную регуляцию нормального и обструктивного мочевого пузыря у крыс / Мудрая И.С., Ибрагимов А.Р., Кирпатовский В.И., Ревенко С.В. [и соавт.] // Экспериментальная и клиническая урология. — 2011. — № 4. — С. 23-27.

4. Влияние ботулинического токсина на функциональную регуляцию мочевого пузыря у крыс при инфравезикальной обструкции / Ибрагимов А.Р., Мудрая И.С., Кирпатовский В.И., Ревенко С.В. [и соавт.] // Вестник российского научного центра рентгенорадиологии Минздрава России. — 2011. — Т. 4. — №11. — С. 128-143.

5. Возможности тканевой инженерии в лечении стриктур мочеиспускательного канала / Аляев Ю.Г., Винаров А.З., Григорьев Н.А., Безруков Е.А. [и соавт.] // Сеченовский вестник. — 2012. — №1 (7). — С. 16-20.

6. Волков, А.В. Тканевая инженерия: новые перспективы развития медицины /А.В. Волков // Гены и клетки. — 2005. — №1. — С. 57-63.

7. Гвасалия, Б.Р. Тканевая инженерия в хирургии мочеиспускательного канала / Гвасалия Б.Р., Щеплев П.А. // Лечащий врач. — 2009. — №8. — С. 5-6.

8. Горбунова, В.Н. Коллагены и коллагеновые гены / Горбунова В.Н., Кадурина Т.Н. // Медицинская генетика. — 2006. — Т. 5. — №6. — С. 3-10.

9. Гоцадзе, Д.Т. Отдалённые результаты континентного отведения мочи на кожу в детубуляризированный тонкокишечный резервуар / Д.Т. Гонцадзе // Урология. — 2003. — №4. — С. 18-22.

10. Гулиев, Б.Г. Отдаленные результаты эндопротезирования мочеточника / Гулиев Б.Г., Загазежев А.В. // Экспериментальная и клиническая урология. — 2015. — № 2. — С. 64-67.

11. Динамика морфофункциональных преобразований слизистой оболочки артифициального тонкокишечного мочевого пузыря в отдаленные сроки после операции / Семенякин И.В., Шевлюк Н.Н., Васильченко М.И., Зеленин Д.А. // Астраханский медицинский журнал. — 2013. — Т. 8. — №1. — С. 229-232.

12. Заместительная пластика протяженных стриктур мочеточника аутотрансплантатом буккальной слизистой / Трапезникова М.Ф., Базаев В.В., Шибаев А.Н., Лукьянчиков А.Г. [и соавт.] // Урология. — 2014. — №2. — С. 1619.

13. Заместительная уретропластика с использованием тканеинженерной конструкции на основе децеллюляризированной сосудистой матрицы и аутологичных клеток слизистой оболочки щеки: первый опыт / Глыбочко П.В., Аляев Ю.Г., Николенко В.Н., Шехтер А.Б. [и соавт.] // Урология. — 2015. — №3. — С. 4-10.

14. Илеоцистопластика при инвазивном раке мочевого пузыря / Павлов В.Н., Галимзянов В.З., Кутлияров Л.М. [и соавт.] // Онкоурология. — 2009. — № 4. — С. 37-41.

15. Использование искусственного коллагенового материала с целью замещения мочевого пузыря в эксперименте / Оччархаджиев С.Б., Даренков С.П. Кудрявцев Ю.В. [и соавт.] // Четвертый Международный урологический симпозиум. — Нижний Новгород. — 2005. — 129 с.

16. Ишемия тазовых органов как самостоятельный патогенетический фактор развития доброкачественной гиперплазии предстательной железы и дисфункции мочевого пузыря / Кирпатовский В.И., Мудрая И.С., Мкртчян К.Г., Ревенко С.В. [и соавт.] // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. — 2014. — Т. 158. — №12. — С. 676-680.

17. Камнеобразование в кишечных мочевых резервуарах / Атдуев В.А., Абрамов Д.В., Строганов А.Б., Сеничев А.А. [и соавт.] // Медицинский альманах. — 2008. — № 5. — С. 120-121.

18. Коллаген в медицине и косметологии / Е.В. Щукина [и соавт.] // Натуральная фармакология и косметология. — 2005. — № 4. — С. 29-34.

19. Коллаген в технологии лекарственных форм / Л.А. Иванова [и соавт.] — М.: Медицина, 1984. — 112 с.

20. Комяков, Б.К. Лапароскопический уретероцистанастомоз при стриктурах тазового отдела мочеточника / Комяков Б.К., Гулиев Б.Г. // Урология. — 2015. — № 3. — С. 64-70.

21. Комяков, Б.К. Реконструктивные операции у больных с протяженными дефектами тазовых отделов мочеточников / Комяков Б.К., Очеленко В.А. // Урология. — 2014. — №4. — С. 16-20.

22. Комяков, Б.К. Технические особенности кишечной пластики мочеточников. Часть 1: левосторонняя илеоуретеропластика / Комяков Б.К. // Урология. — 2016. — №2. — С. 4-9.

23. Лелявин, К.Б., Профилактика послеоперационных осложнений в хирургии рака мочевого пузыря / Лелявин К.Б., Дворниченко В.В., Халмуратов О.Т. // Сибирский онкологический журнал. — 2010. — № 1. — С. 6970.

24. Лопаткин, Н.А. Радикальное лечение инвазивного рака мочевого пузыря / Н.А. Лопаткин, С.П. Даренков, И.В. Чернышев // Урология. — 2003. — №4. — С. 3-8.

25. Лоран, О.Б. Диагностика и лечение интерстициального цистита у женщин / Лоран О.Б., Зайцев А.В., Липский B.C. — Саратов: Приволжское книжное издательство, 2001. — 191 с.

26. Лоран, О.Б. Реконструктивная урология: достижения и перспективы / О.Б. Лоран // Consilium Medicum. — 2014. — Т. 16. — №12. — С. 35-37.

27. Матвеев, Б.П. Рак мочевого пузыря / Б.П. Матвеев. — М., 2001.

28. Матвеев, Б.П. Результаты оперативного лечения больных раком мочевого пузыря / Матвеев Б.П., Фигурин К.М. // Урология и нефрология. — 1997. — №2. — С. 25-28.

29. Морфология коллагеновых матриксов для тканевой инженерии (биосовместимость, биодеградация, тканевая реакция) / Шехтер А.Б., Гуллер А.Е., Итранов Л.П., Истранова Е.В. [и соавт.] // Архив патологии. — 2015. — Т. 77. — №6. — С. 29-38.

30. Морфофункциональные особенности вариантов артифициального мочевого пузыря из сегментов желудочно-кишечного тракта при долгосрочном его функционировании / Бодарева Н.В. [и соавт.] // Научное обозрение. — 2013. — №9. — С. 448-452

31. Николаева, Е.Д. Биополимеры для клеточной и тканевой инженерии / Николаева Е.Д. // Журнал сибирского федерального университета. Серия: Биология. — 2014. — Т. 7. — №2. — С. 222-233.

32. Омочев, Г.М. Субтотальная аллотрансплантация мочевого пузыря : автореф. дис. ...канд. мед. наук : 14.00.27 / Омочев Гаджи Магомедович. — М., 1978. — 22 с.

33. Оперативное лечение стриктур и облитераций уретры / Коган М.И., Красулин В.В., Митусов В.В., Шангичев А.В. [и соавт.] // Урология. — 2015. — №2. — С. 17-23.

34. Опыт применения коллагеновых повязок и губок Метуракол в хирургической практике / А.Н. Бегма [и соавт.] // РМЖ. - 2014. - №17. - С. 12481253.

35. Осложнения после цистэктомии и их лечение / Семенякин И.В., Васильченко М.И., Зеленин Д.А., Яшин Е.А. // Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. — 2012. — № 4-1. — С. 84-86.

36. Осложнения радикальной цистэктомии с орто- и гетеротопической кишечной пластикой (обзор литературы) / Даренков С.П., Кривобородов Г.Г.,

Котов С.В., Дзитиев В.К. [и соавт.] // Вестник Российского государственного медицинского университета. — 2013. — № 4. — С. 49-53.

37. Особенности вегетативной регуляции функции и кровоснабжения мочевого пузыря и предстательной железы у старых крыс с возрастной гиперплазией предстательной железы в патогенезе ДГПЖ и СНМП / Кирпатовский В.И., Мудрая И.С., Мкртчян К.Г., Кабанова И.В. [и соавт.] // Экспериментальная и клиническая урология. — 2013. — № 4. — С. 10-15.

38. Оценка интрамурального кровотока и нейрогенной регуляции в интактном и гипертрофированном мочевом пузыре крыс с помощью гармонического анализа биоимпеданса / Кирпатовский В.И., Мудрая И.С., Ревенко С.В., Нестеров А.В. [и соавт.] // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. — 2012. — Т. 153. — №4. — С. 422-426.

39. Оценка методов отведения мочи после радикальной цистэктомии. Васильченко М.Н., Забелин М.В., Семенякин И.В., Зеленин Д.А. [и соавт.] // Хирургическая практика. — 2014. — №4. — С. 44-48.

40. Оценка специфических характеристик стриктуры уретры по данным медицинского учреждения Узбекистана республиканского значения / Акилов Ф.А., Рахмонов О.М., Алиджанов Ж.Ф., Мирхамидов Д.Х. [и соавт.] // Урология. — 2015. — №6. — С. 30-34.

41. Пластика мочеиспускательного канала с использованием аутологичных кератиноцитов на биодеградирующем матриксе у детей с проксимальными формами гипоспадии / Файзулин А.К., Поддубный И.В., Кононов А.В., Врублевский С.Г. [и соавт.] // Андрология и генитальная хирургия. — 2016. — Том 17. — № 2. С. 85-97.

42. Применение временных нитиноловых эндопротезов с полиуретановым покрытием в лечении стриктуры уретры / Курбатов Д.Г., Мартов А.Г., Дубский С.А., Лепетухин А.Е. [и соавт.] // Урология. — 2016. — №1. — С. 82-85.

43. Применение различных вариантов кишечной пластики мочевого пузыря и модифицированных операций в лечении инвазивного рака мочевого

пузыря / Дубровин В.Н., Табаков А.В., Мельник Г.А., Шакиров Р.Р. [и соавт.] // Медицинский альманах. — 2008. — № 5. — С. 128-129.

44. Профилактика и лечение поздних осложнений после кишечной пластики мочевого пузыря / Галимзянов В.З., Казихинуров А.А., Кутлияров Л.М., Загитов А.Р. [и соавт.] // Урология. — 2009. — № 1. — С. 50-55.

45. Результаты ортотопической пластики мочевого пузыря желудком и подвздошной кишкой / Комяков Б.К., Новиков А.И., Фадеев В.А., Зубань О.Н. [и соавт.] // Урология. — 2007. — № 6. — С. 23-29.

46. Результаты применения разрабатываемых биологически активных материалов на основе коллагена для замещения тканевых дефектов в эксперименте / Кулакова К.В., Бугров С.Н., Алейник Д.Я., Стручков А.А. // Технологии живых систем. — 2013. — Т. 10. — №8. — С. 59-64.

47. Севастьянов, В.Н. Клеточно-инженерные конструкции в тканевой инженерии и регенеративной медицине / В.Н. Севастьянов // Вестник трансплантологии и искусственных органов. — 2015. — Т. 15. — № 2. — С. 127130.

48. Серняк, П.С Первый опыт формирования идеального мочевого пузыря и индиана-резервуара у больных раком мочевого пузыря / Серняк П.С., Серняк Ю.П., Егоров СВ. // Материалы Всероссийского пленума урологов. — 1994. —101-102.

49. Синдром болезненного мочевого пузыря/интерстициальный цистит: современные подходы к диагностике и лечению / Зайцев А.В., Шаров М.Н., Ибрагимов Р.А., Нахрапов Д.И. [и соавт.] // Врач скорой помощи. — 2015. — №7. — С. 32-42.

50. Ситдыков, Э.Н. Формирование артифициального кишечного мочевого пузыря / Э.Н. Ситдыков, М.Э Ситдыкова // Урология и нефрология. — 1993. — №2. — С.31-34.

51. Современный взгляд на проблему интерстициального цистита / Лоран О.Б., Синякова Л.А., Митрохин А.А., Плесовский А.М. [и соавт.] // Медицинский совет. — 2011. — №11-12. — С. 15-19.

52. Сравнительная клиническая и морфофункциональная оценка тонко-, толстокишечного и желудочного артифициальных мочевых резервуаров в разные сроки функционирования / Аничков Н.М., Комяков Б.К., Бодарева Н.В., Сергеев А.В, [и соавт.] // Урология. — 2013. — № 1. — С. 24-28.

53. Сравнительная частота и факторы риска рецидива стриктуры уретры при различных методах оперативного лечения / Пушкарь Д.Ю., Живов А.В., Лоран О.Б., Карпович А.В. [и соавт.] // Андрология и генитальная хирургия. — 2012. — Т. 13. — №4. — С. 37-44.

54. Сравнительные характеристики способов деривации мочи после цистэктомии при инвазивном раке мочевого пузыря / Братчиков О.И., Бабенко В.В., Шумакова Е.А. [и соавт.] // Рак мочевого пузыря: Тез. докл. XI Межд. науч.-практ. конф. — Харьков. — 2003. — С. 87-89.

55. Стриктура уретры: современное состояние проблемы (обзор литературы) / Синельников Л.М., Протощак В.В., Шестаев А.Ю., Карпущенко Е.Г. [и соавт.] // Экспериментальная и клиническая урология. — 2016. — № 2. — С. 80-87.

56. Технические особенности кишечной пластики мочеточников. Часть 2: правосторонняя илеоуретеропластика / Комяков Б.К., Гулиев Б.Г., Очеленко В.А., Ал-Аттар Т.Х. [и соавт.] // Урология. — 2016. — № 3. — С. 4-9.

57. Тканевая инженерия в урологии, новые возможности для реконструкции мочевого пузыря / Муравьев А.Н., Орлова Н.В., Блинова М.Н., Юдинцева Н.М. // Цитология. — 2015. — Т. 57. — № 1. — С. 14-18.

58. Тканевая инженерия мочеточника: трудности и перспективы / Глыбочко П.В., Аляев Ю.Г., Винаров А.З., Бутнару Д.В. [и соавт.] // Урология. — 2015. — №3. — С. 88-92.

59. Функциональная взаимосвязь и общность регуляции мочевого пузыря и предстательной железы / Кирпатовский В.И., Баблумян А.Ю., Мудрая И.С., Кабанова И.В. [и соавт.] // Экспериментальная и клиническая урология. — 2015. — №3. — С. 18-21.

60. Экспериментальное обоснование создания гибридной матрицы и тканеинженерной конструкции на основе сетки из полилактогликолида и реконструированного коллагена с целью последующей заместительной уретропластики / Глыбочко П.В., Аляев Ю.Г., Шехтер А.Б., Винаров А.З. [и соавт.] // Урология. — 2015. — № 6. — С. 5-13.

61. Электроформование функциональных материалов для биомедицины и тканевой инженерии / Иноземцева О.А., Сальковский Ю.Е., Северюхина А.Н., Видяшева Н.В. [и соавт.] // Успехи химии. — 2015. — Т. 84. — № 3. — С. 251274.

62. Энтеропластика протяженных стриктур мочеточника туберкулезного и другого генеза / Зубань О.Н., Скорняков С.Н., Арканов Л.В., Новиков Б.И. [и соавт.] // Урология. — 2014. — №4. — С. 10-15.

63. A comparative study of lingual mucosal graft urethroplasty with buccal mucosal graft urethroplasty in urethral stricture disease: An institutional experience / Pal D.K., Gupta D.K., Ghosh B., Bera M.K. // Urol Ann. — 2016. — N. 8(2). — P. 157-62.

64. A Multi-institutional Evaluation of the Management and Outcomes of Long-segment Urethral Strictures / Warner J.N., Malkawi I., Dhradkeh M., Joshi P.M. // Urology. — 2015. — N. 85(6). — P. 1483-7.

65. A nanomedicine approach to effectively inhibit contracture during bladder acellular matrix allograft-induced bladder regeneration by sustained delivery of vascular endothelial growth factor / Xiong Q., Lin H., Hua X., Liu L. [et al] // Tissue Eng. Part. A. — 2015. — N. 21(1-2). — P. 45-52.

66. A nonhuman primate model for urinary bladder regeneration using autologous sources of bone marrow-derived mesenchymal stem cells / Sharma A.K., Bury M.I., Marks A.J., Fuller N.J. [et al] // Stem. Cells. — 2011. — N. 29(2). — P. 241-50.

67. A population of progenitor cells in the basal and intermediate layers of the murine bladder urothelium contributes to urothelial development and regeneration /

Colopy S.A., Bjorling D.E., Mulligan W.A., Bushman W. // Dev. Dyn. — 2014. — N. 243(8). — P. 988-98.

68. Abdel-Azim, M.S. Gastrocystoplasty in patients with an areflexic low compliant bladder / M.S. Abdel-Azim, A.M. Abdel-Hakim // Eur. Urol. — 2003. — №44 (2). — P.260-265.

69. Adamowicz J. Conditioned medium derived from mesenchymal stem cells culture as a intravesical therapy for cystitis interstitials / Adamowicz J., Pokrywczynska M., Drewa T. // Med. Hypotheses. — 2014. — N. 82(6). — P. 670-3.

70. Adamowicz, J. Tissue engineering of urinary bladder - current state of art and future perspectives / Adamowicz J., Kowalczyk T., Drewa T. // Cent. European J. Urol. — 2013. — N. 66(2). — P. 202-6.

71. Adipose-derived Stem Cells Counteract Urethral Stricture Formation in Rats / Castiglione F., Dewulf K., Hakim L., Weyne E. [et al.] // Eur. Urol. — 2016. — May 3.

72. Aerosol transfer of bladder urothelial and smooth muscle cells onto demucosalized colonic segments for bladder augmentation: in vivo, long term, and functional pilot study / Hidas G., Lee H.J., Bahoric A., Kelly M.S. [et al.] // J. Pediatr. Urol. — 2015. — N. 11(5). — P. 260.

73. Alberti, C. Quick note on tissue engineering-based surgical measures to treat patients with neurogenic bladder-due detrusor/sphincter dyssynergia / Alberti C. // Ann. Ital. Chir. — 2015. — N. 86(3). — P. 252-7.

74. Alberti, C. Whyever bladder tissue engineering clinical applications still remain unusual even though many intriguing technological advances have been reached? / Alberti C. // G. Chir. — 2016. — N. 37(1). — P. 6-12.

75. Albertsen P.C. Modified S-pouch neobladder vs ileal conduit and a matched control population: a quality-of-life survey / P.C. Albertsen / J.Urol.-2005.-№174(1). - P.274.

76. An acellular biologic scaffold does not regenerate appreciable de novo muscle tissue in rat models of volumetric muscle loss injury / Aurora A., Roe J.L., Corona B.T., Walters T.J. // Biomaterials. — 2015. — N. 67. — P. 393-407.

77. Analysis of Early Complications After Radical Cystectomy: Results of a Collaborative Care Pathway / S. Chang [et al.] // J. Urol. - 2002. - №167. - P. 20122016.

78. Anterior urethra reconstruction with lateral lingual mucosa harvesting Technique / Zhang K., Zhou S., Zhang Y., Xu Y. [et al.] // Urology. — 2016. — N. 90. — P. 208-12.

79. Application of bladder acellular matrix in urinary bladder regeneration: the state of the art and future directions / Pokrywczynska M., Gubanska I., Drewa G., Drewa T. // Biomed. Res. Int. — 2015. — P. 613439.

80. Application of different scaffolds for bladder wall regeneration: the bladder as a natural bioreactor / Kajbafzadeh A.M., Esfahani S.A., Sadeghi Z., Elmi A. [et al.] // Tissue Eng. Part. A. — 2012. — N. 18 (7-8). — P. 882-7.

81. Atala, A. Tissue engineering of human bladder / Atala A. // Br. Med. Bull. — 2011. — N. 97. — P. 81-104.

82. Augmentation cystoplasty using decellularized vermiform appendix in rabbit model / Sabetkish N., Kajbafzadeh A.M., Sabetkish S., Tavangar S.M. // J. Pediatr. Surg. — 2014. — N. 49(3). — P. 477-83.

83. Augmentation cystoplasty: Urodynamic and metabolic outcomes at 10-year follow-up / Cheng K.C., Kan C.F., Chu P.S., Man C.W. / Int. J. Urol. — 2015. — N. 22(12). — P. 1149-54.

84. Augmentation enterocystoplasty without reimplantation for patients with neurogenic bladder and vesicoureteral reflux / Zhang H.C., Yang J., Ye X., Hu H.F. // Kaohsiung J. Med. Sci. — 2016. — N. 32(6). — P. 323-6.

85. Autologous cell seeded biodegradable scaffold for augmentation cystoplasty: phase II study in children and adolescents with spina bifida / Joseph D.B., Borer J.G., De Filippo R.E., Hodges S.J. [et al.] // J. Urol. — 2014. — N. 191(5). — P. 1389-95.

86. Biers, S.M. The past, present and future of augmentation cystoplasty / Biers S.M., Venn S.N., Greenwell T.J. // BJU Int. — 2012. — N. 109(9). — P. 1280-93.

87. Biomatrices for bladder reconstruction / Lin H.K., Madihally S.V., Palmer B., Frimberger D. [et al.] // Adv. Drug Deliv. Rev. — 2015. — N. 82-83. — P. 47-63.

88. Bladder acellular matrix conjugated with basic fibroblast growth factor for bladder regeneration / Chen W., Shi C., Hou X., Zhang W. [et al.] // Eng. Part. A. — 2014. — N. 20(15-16). — P. 2234-42.

89. Bladder Acellular Matrix Grafts Seeded with Adipose-Derived Stem Cells and Incubated Intraperitoneally Promote the Regeneration of Bladder Smooth Muscle and Nerve in a Rat Model of Bladder Augmentation / Zhe Z., Jun D., Yang Z., Mingxi X. [et al] // Stem Cells Dev. — 2016. — Vol.1. — N. 25(5). — P. 405-14.

90. Bladder augmentation in rabbits with anionic collagen membrane, with or without urotelial preservation. Cistometric and hystologic evaluation / Lepper F., Ramos T., Trindade Filho J., Vale F. [et al.] // International Braz. J. Urol. — 2002. — Vol. 28 (5). — P. 464-470.

91. Bladder augmentation using acellular collagen biomatrix: a pilot experience in exstrophic patients / Pediatr Caione P., Boldrini R., Salerno A., Nappo S.G. // Surg. Int. — 2012. — N. 28(4). — P. 421-8.

92. Bladder augmentation using tissue-engineered autologous oral mucosal epithelial cell sheets grafted on demucosalized gastric flaps / Watanabe E., Yamato M., Shiroyanagi Y., Tanabe K. [et al.] // Transplantation. — 2011. — Vol. 15. — N. 91(7). — P. 700-6.

93. Bladder calculi in the augmented bladder: a follow-up study of 160 children and adolescents / Kisku S., Sen S., Karl S., Mathai J. [et al.] // J. Pediatr. Urol. — 2015. — N. 11(2). — P. 66.

94. Bladder muscular wall regeneration with autologous adipose mesenchymal stem cells on three-dimensional collagen-based tissue-engineered prepuce and biocompatible nanofibrillar scaffold / Kajbafzadeh A.M., Tourchi A., Mousavian A.A., Rouhi L. [et al.] // J. Pediatr. Urol. — 2014. — N. 10(6). — P. 1051-8.

95. Bladder reconstruction using scaffold-less autologous smooth muscle cell sheet engineering: early histological outcomes for autoaugmentation cystoplasty /

Talab S.S., Kajbafzadeh A.M., Elmi A., Tourchi A. [et al.] // BJU Int. — 2014. — N. 114(6). — P. 937-45.

96. Bladder regeneration using a smart acellular collagen scaffold with growth factors VEGF, FGF2 and HB-EGF / Roelofs L.A., Oosterwijk E., Kortmann B.B., Daamen W.F. [et al.] // Tissue Eng. Part. A. — 2016. — N. 22(1-2). — P. 83-92.

97. Bladder smooth muscle cells differentiation from dental pulp stem cells: future potential for bladder tissue engineering. stem / Song B., Jiang W., Alraies A., Liu Q. [et al.] // Cells Int. — 2016. — doi: 10.1155/2016/6979368.

98. Bladder tissue engineering: a literature review / Lam Van Ba O., Aharony S., Loutochin O., Corcos J. // Adv. Drug Deliv. Rev. — 2015. — N. 82-83. — P. 31-7.

99. Bladder tissue engineering: tissue regeneration and neovascularization ofHA-VEGF-incorporated bladder acellular constructs in mouse and porcine animal models / Loai Y., Yeger H., Coz C., Antoon R. [et al.] // J. Biomed. Mater. Res. A. — 2010. — Vol. 15. — N. 94(4). — P. 1205-15.

100. Bone marrow derived cells facilitate urinary bladder regeneration by attenuating tissue inflammatory responses / Bury M.I., Fuller N.J., Wethekam L., Sharma A.K. // Cent. European J. Urol. — 2015. — N. 68(1). — P. 115-20.

101. Bouhout, S. A Novel and Faster Method to Obtain a Differentiated 3-Dimensional Tissue Engineered Bladder // Bouhout S., Goulet F., Bolduc S. // J. Urol. — 2015. — N. 194(3). — P. 834-41.

102. Bouhout, S. Maintenance of bladder urothelia integrity and successful urothelialization of various tissue-engineered mesenchymes in vitro / Bouhout S., Tremblay J., Bolduc S. // In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. — 2015. — N. 51(9). — P. 922-31.

103. Buccal mucosa ureteroplasty for the treatment of complex ureteric injury / Sadhu S., Pandit K., Roy M.K., Bajoria S.K. // Indian J. Surg. — 2011. — N. 73(1). — P. 71-2.

104. Cavernous hemangioma of the bladder: an additional case managed by partial cystectomy and augmentation cystoplasty / Lahyani M., Slaoui A., Jakhlal N., Karmouni T. [et al.] // Pan. Afr. Med. J. — 2015. — Vol. 13. — N. 22. — P. 131.

105. Cell Therapy for Stress Urinary Incontinence / Hart M.L., Izeta A., Herrera-Imbroda B., Amend B. [et al.] // Tissue Eng. Part. B. Rev. — 2015. — N. 21(4). — P. 365-76.

106. Cell-seeded tubularized scaffolds for reconstruction of long urethral defects: a preclinical study / Orabi H., AbouShwareb T., Zhang Y., Yoo J.J. [et al.] // Eur. Urol. — 2013. — N. 63(3). — P. 531-8.

107. Characterization of urine-derived stem cells obtained from upper urinary tractfor use in cell-based urological tissue engineering / Bharadwaj S., Liu G., Shi Y., Markert C. [et al.] // Tissue Eng. Part. A. — 2011. — N. 17(15-16). — P. 2123-32.

108. Cheng, H.L. Monitoring tissue development in acellular matrix-based regeneration for bladder tissue engineering: multiexponential diffusion and T2* for improved specificity / Cheng H.L., Loai Y., Farhat W.A. // NMR Biomed. — 2012. — N. 25(3). — P. 418-26.

109. Chung, E. Stem-cell-based therapy in the field of urology: a review of stem cell basic science, clinical applications and future directions in the treatment of various sexual and urinary conditions / E. Chung // Expert Opin. Biol. Ther. — 2015. — N. 15(11). — P. 1623-32.

110. Coadministration of platelet-derived growth factor-BB and vascular endothelial growth factor with bladder acellular matrix enhances smooth muscle regeneration and vascularization for bladder augmentation in a rabbit model / Zhou L., Yang B., Sun C., Qiu X. [et al.] // Tissue Eng. Part. A. — 2013. — N. 19(1-2). — P. 264-76.

111. Co-delivery of VEGF and bFGF via a PLGA nanoparticle-modified BAM for effective contracture inhibition of regenerated bladder tissue in rabbits / Jiang X., Lin H., Jiang D., Xu G. [et al.] // Sci. Rep. — 2016. — N. 8;6. — P. 20784.

112. Combined injection of three different lineages of early-differentiating human amniotic fluid-derived cells restores urethral sphincter function in urinary

incontinence / Chun S.Y., Kwon J.B., Chae S.Y., Lee J.K. [et al.] // BJU Int. — 2014. — N. 114(5). — P. 770-83.

113. Comparative Outcomes and Perioperative Complications of Robotic Vs. Open Cystoplasty and Complex Reconstructions / Cohen A.J., Brodie K., Murthy P., Wilcox D.T., Gundeti M.S. // Urology. — 2016. — N. 18.

114. Comparing supportive properties of poly lactic-co-glycolic acid (PLGA), PLGA/collagen and human amniotic membrane for human urothelial and smooth muscle cells engineering / Sharifiaghdas F., Naji M., Sarhangnejad R., Rajabi-Zeleti S. // Urol. J. — 2014. — Vol. 8. —N. 11(3). — P. 1620-8.

115. Complications after bladder augmentation in children / Molina C.A., Lima G.J., Cassini M.F., Andrade M.F. [et al.] // Acta Cir. Bras. — 2016. — N. 31. — Suppl. 1. — P. 8-12.

116. Complications after use of gastric segments for lower urinary tract reconstruction / Castellan M., Gosalbez R., Bar-Yosef Y., Labbie A. // Urol. — 2012. — N. 187(5). — P. 1823-7.

117. Constructs of electrospun PLGA, compressed collagen and minced urothelium for minimally manipulated autologous bladder tissue expansion / Ajalloueian F., Zeiai S., Fossum M., Hilborn J.G. // Biomaterials. — 2014. — N. 35(22). — P. 5741-8.

118. Cystectasy and rehabilitation training for treatment of neurogenic bladder dysfunction with hyperreflexia / Li L., Fan Y., Li H., Zhang Q. [et al.] // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. — 2016. — N. 30(2). — P. 224-8.

119. Different bladder defects reconstructed with bladder acellular matrix grafts in a rabbit model / Zhu W.D., Xu Y.M., Feng C. [et al.] // Urologe A. — 2011. — N. 50(11). — P. 1420-5.

120. Do mesenchymal stem cells modulate the milieu of reconstructed bladder wall? / Pokrywczynska M., Jundzill A., Bodnar M., Adamowicz J. [et al.] // Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz). — 2013. — N. 61(6). — P. 483-93.

121. Dugi, D.D. 3rd. Urethroplasty for Stricture Disease: Contemporary Techniques and Outcomes / Dugi D.D. 3rd, Simhan J., Morey A.F. // Urology. — 2016. — N. 89. — P. 12-8.

122. Engineered insulin-like growth factor-1 for improved smooth muscle regeneration / Lorentz K.M., Yang L., Frey P., Hubbell J.A. // Biomaterials. — 2012. — N. 33(2). — P. 494-503.

123. Evaluation of biomaterials for bladder augmentation using cystometric analyses in various rodent models / Tu D.D., Seth A., Gil E.S., Kaplan D.L. [et al.] // J. Vis. Exp. — 2012. — N. 9. — P. 66.

124. Evaluation of electrospun bioresorbable scaffolds for tissue-engineered urinary bladder augmentation / Del Gaudio C., Vianello A., Bellezza G., Maula V. [et al.] // Biomed Mater. — 2013. — N. 8(4):045013.

125. Evaluation of viability and proliferative activity of human urothelial cells cultured onto xenogenic tissue-engineered extracellular matrices / Davis N.F., Callanan A., McGuire B.B., Flood H.D. [et al.] // Urology. — 2011. — N. 77(4) — P. 1007.

126. Evaluation of xenogenic extracellular matrices as adjuvant scaffolds for the treatment of stress urinary incontinence / Davis N.F., Coakley D.N., Callanan A., Flood H.D. [et al.] // Int. Urogynecol. J. — 2013. — N. 24(12). — P. 2105-10.

127. Experimental assessment of bladder regeneration by collagen membrane scaffolds / Ma C., Chen W., Jia W., Guo Y. [et al.] // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. — 2014. — N. 28(6). — P. 773-6.

128. Expression of VEGF and collagen using a latex biomembrane as bladder replacement in rabbits / Domingos A.L., Garcia S.B., Bessa Junior Jd, Cassini M.F. [et al.] // Int. Braz. J. Urol. — 2012. — N. 38(4). — P. 536-43.

129. Extended ureteral stricture corrected with appendiceal replacement in a kidney transplant recipient / Adani G.L., Pravisani R., Baccarani U., Bolgeri M. [et al.] // Urology. — 2015. — N. 86(4). — P. 840-3.

130. Fabrication and biocompatibility evaluation of polyurethane- acellular matrix composite scaffold in vitro and in vivo / Xiao Y., Zhang J., Lu Y., Yuan H.

[et al] // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. — 2015. — N. 29(8). — P. 1016-21.

131. Garriboli M. Regenerative medicine in urology / Garriboli M., Radford A., Southgate J. // Eur. J. Pediatr. Surg. — 2014. — N. 24(3). — P. 227-36.

132. Gastrocystoplasty and chronic renal failure: an acid-base metabolism study / L.G. DeFreitas Filho [et al.] // J. Urol. — 2001. — N. 166(1). — P. 251-254.

133. Gopinath, C. Cell-Based Therapies in Lower Urinary Tract Disorders / Gopinath C., Ponsaerts P., Wyndaele J.J. // Cell Transplant. — 2015. — N. 24(9). — P. 1679-86.

134. Grafts of porcine small intestinal submucosa seeded with cultured homologous smooth muscle cells for bladder repair in dogs / Rossetto V.J., da Mota L.S., Rocha N.S., Miot H.A. [et al.] // Acta Vet. Scand. — 2013. — N. 7. — P. 55-39.

135. Health-related quality of life after radical cystectomy for bladder cancer: a comparison of ileal conduit and orthotopic bladder replacement / Hara I., Miyake H., Hara S. [et al.] // BJU Int. — 2002. — N. 89. — P. 10.

136. Human umbilical mesenchymal stem cells-seeded bladder acellular matrix grafts for reconstruction of bladder defects in a canine model / Yuan H., Zhuang Y., Xiong J., Zhi W. [et al.] // PLoS One. — 2013. — N. 20. — P. 8.

137. Human urinary bladder regeneration through tissue engineering - an analysis of 131 clinical cases / Pokrywczynska M., Adamowicz J., Sharma A.K., Drewa T. // Exp. Biol. Med. (Maywood). — 2014. — N. 239(3). — P. 264-71.

138. Human Urine-derived Stem Cells Seeded Surface Modified Composite Scaffold Grafts for Bladder Reconstruction in a Rat Model / Lee J.N., Chun S.Y., Lee H.J., Jang Y.J. [et al] // J. Korean Med. Sci. — 2015. — N. 30(12). — P. 1754-63.

139. Husmann, D.A. Long-term complications following bladder augmentations in patients with spina bifida: bladder calculi, perforation of the augmented bladder and upper tract deterioration / Husmann D.A. // Transl. Androl. Urol. — 2016. — N. 5(1). — P. 3-11.

140. Identification of different phenotypes of interstitial cells in the upper and deep lamina propria of the human bladder dome / Gevaert T., Vanstreels E., Daelemans D., Franken J. / The journal of urology. — 2014. — Vol. 192. — Issue 5. — P. 1555-1563.

141. IGF-1-containing multi-layered collagen-fibrin hybrid scaffolds for bladder tissue engineering / Vardar E., Larsson H.M., Engelhardt E.M., Pinnagoda K. [et al] // Acta Biomater. — 2016. — Vol. 1. — N. 41. — P. 75-85.

142. Impact of bladder-derived acellular matrix, growth factors, and extracellular matrix constituents on the survival and multipotency of marrow-derived mesenchymal stem cells / Antoon R., Yeger H., Loai Y., Islam S. [et al] // J. Biomed. Mater. Res. A. — 2012. — N. 100(1). — P. 72-83.

143. In vitro comparative evaluation of recombinant growth factors for tissue engineering of bladder in patients with neurogenic bladder / Yang B., Zhou L., Peng B., Sun Z. [et al] // J. Surg. Res. — 2014. — N. 186(1). — P. 63-72.

144. In vitro evaluation of endothelial progenitor cells from adipose tissue as potential angiogenic cell sources for bladder angiogenesis / Zhou L., Xia J., Qiu X., Wang P. [et al] // PLoS One. — 2015. — Vol. 23. — N. 10(2).

145. In vivo regeneration of bladder muscular wall using decellularized colon matrix: an experimental study / Kajbafzadeh A.M., Khorramirouz R., Sabetkish S., Ataei Talebi M. [et al] // Pediatr. Surg. Int. — 2016. — N. 32(6). — P. 615-22.

146. Injection of dental pulp stem cells promotes healing of damaged bladder tissue in a rat model of chemically induced cystitis / Hirose Y., Yamamoto T., Nakashima M., Funahashi Y. [et al.] // Cell Transplant. — 2016. — N. 25(3). — P. 425-36.

147. In-vivo autologous bladder muscular wall regeneration: application of tissue-engineered pericardium in a model of bladder as a bioreactor / Kajbafzadeh A.M., Esfahani S.A., Talab S.S., Elmi A. [et al.] // Pediatr. Urol. — 2011. — N. 7(3). — P. 317-23.

148. Is the poly (L-lactide-co-caprolactone) nanofibrous membrane suitable for urinary bladder regeneration? / Pokrywczynska M., Jundzill A., Adamowicz J., Kowalczyk T. [et al.] // PLoS One. — 2014. — Vol. 27. — N. 9(8).

149. Jerman, U.D. Amniotic membrane scaffolds enable the development of tissue-engineered urothelium with molecular and ultrastructural properties comparable to that of native urothelium / Jerman U.D., Veranic P., Kreft M.E. // Tissue Eng. Part. C. Methods. — 2014. — N. 20(4). — P. 317-27.

150. Jerman, U.D. Epithelial-mesenchymal interactions in urinary bladder and small intestine and how to apply them in tissue engineering / Jerman U.D., Kreft M.E., Veranic P. // Tissue Eng. Part. B. Rev. — 2015. — N. 21(6). — P. 521-30.

151. Kang, M. Generation of bladder urothelium from human pluripotent stem cells under chemically defined serum- and feeder-free system / Kang M., Kim H.H., Han Y.M. // Int. J. Mol. Sci. — 2014. — Vol. 25. — N. 15(5). —P. 7139-57.

152. Kim, J.H. Treatment of bladder dysfunction using stem cell or tissue engineering technique / Kim J.H., Lee H.J., Song Y.S. // Korean J. Urol. — 2014. — N. 55(4). — P. 228-38.

153. Kloskowski, T. Artificial urinary conduit construction using tissue engineering methods / Kloskowski T., Pokrywczynska M., Drewa T. // Cent. European J. Urol. — 2015. — N. 68(1). — P. 109-14.

154. Laparoscopic onlay lingual mucosal graft ureteroplasty for proximal ureteral stricture: initial experience and 9-month follow-up / Li B., Xu Y., Hai B., Liu B. [et al] // Int. Urol. Nephrol. — 2016. — N. 48(8). — P. 1275-9.

155. Long ureteric stricture replacement by buccal mucosa graft: an Armenian experience case series report. / Tsaturyan A., Akopyan K., Levonyan A., Tsaturyan A. // Cent. European J. Urol. — 2016. — N. 69(2). — P. 217-20.

156. Long-term functional outcome and late complications of studer's ileal neobladder / T. Tanaka [et al] // Jpn. J. Clin. Oncol. - 2005. - №23. - P. 110-119.

157. Long-term histological and mucin alterations in the neobladder mucosa following urinary bladder augmentation or substitution with gastrointestinal segment /

Kispal Z.F., Kardos D., Jilling T., Kereskai L. [et al.] // J. Pediatr. Urol. — 2015. — N. 11(6). — P. 349.

158. Ma, D. Research progress of cell sheet technology and its applications in tissue engineering and regenerative medicine / Ma D., Ren. L, Mao T. // Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi. — 2014. — N. 31(5). — P. 1164-7.

159. Management of long-segment and panurethral stricture disease / Martins F.E., Kulkarni S.B., Joshi P., Warner J. [et al] // Adv. Urol. — 2015. — 853914. doi: 10.1155/2015/853914.

160. Mitchell, M.E. Augmentation cystoplasty implantation of artificial urinary sphincter in men and women and reconstruction of the dysfunctional urinary tract / Mitchell M.E., Rink R.C., Adams M.C. // Campbell's Urology. — 1997. — N. 3. — P. 2630-2716.

161. New amniotic membrane based biocomposite for future application in reconstructive urology / Adamowicz J., Pokrywczynska M., Tworkiewicz J., Kowalczyk T. [et al.] // PLoS One. — 2016. — Vol. 14. — N. 11(1).

162. Objective long-term evaluation after bladder autoaugmentation with rectus muscle backing / Djordjevic M.L., Vukadinovic V., Stojanovic B., Bizic M. [et al.] // J. Urol. — 2015. — N. 193. — P. 1824-9.

163. Polyesterurethane and acellular matrix based hybrid biomaterial for bladder engineering / Horst M., Milleret V., Noetzli S., Gobet R. [et al.] // J. Biomed. Mater. Res. B. Appl. Biomater. — 2015. — N. 16.

164. Preoperative risk factors predicting complications rates of augmentation cystoplasty using the modified clavien classification system in pediatric population / Telli O., Ozcan C., Hamidi N., Karagoz M.A. [et al.] // Urology. — 2016. — N. 19.

165. Quality of life evaluation of patients with neurogenic bladder submitted to reconstructive urological surgeries preserving the bladder / Lima D.X., Pires C.R., Santos A.C., Mendes R.G. [et al] // Int. Braz. J. Urol. — 2015. — N. 41(3). — P. 542-6.

166. Reconstructing full-length ureteral defects using a spiral bladder muscle flap with vascular pedicles / Li Y., Li C., Yang S., Song C. [et al.] // Urology. — 2014. — N. 83(5). — P. :1199-204.

167. Regenerative medicine strategies for treating neurogenic bladder / Yoo J.J., Olson J., Atala A., Kim B. // Int. Neurourol. J. — 2011. — N. 15(3). — P. 109-19.

168. Renal capsule for augmentation cystoplasty in canine model: a favorable biomaterial? / Salehipour M., Mohammadian R., Malekahmadi A., Hosseinzadeh M. [et al.] // Int. Braz. J. Urol. — 2016. — N. 42(2). — P. 383-8.

169. Review of appendiceal onlay flap in the management of complex ureteric strictures in six patients / Duty B.D., Kreshover J.E., Richstone L., Kavoussi L.R. // BJU Int. — 2015. — N. 115(2). — P. 282-7.

170. Risk of malignancy after augmentation cystoplasty: A systematic review / Biardeau X., Chartier-Kastler E., Roupret M., Phé V. // Neurourol. Urodyn. — 2016. — N. 35(6). — P. 675-82.

171. Risk of urethral stricture recurrence increases over time after urethroplasty / Han J.S., Liu J., Hofer M.D., Fuchs A. [et al.] // Int. J. Urol. — 2015. — N. 22(7). — P. 695-9.

172. Sack, B.S. Silk Fibroin Scaffolds for Urologic Tissue Engineering / Sack B.S., Mauney J.R., Estrada C.R. Jr. // Curr. Urol. Rep. — 2016. — N. 17(2). — P. 16.

173. Scaffolds for whole organ tissue engineering: Construction and in vitro evaluation of a seamless, spherical and hollow collagen bladder construct with appendices / Hoogenkamp H.R., Pot M.W., Hafmans T.G., Tiemessen D.M. [et al.] // Acta Biomater. — 2016. — N. 14.

174. Schreiter, F. Die zweizeitige Meshgraft-Urethroplastik / Schreiter F. // Plastisch-rekonstruktive Chirurgie in der Urologie. — 1999. — P. 355-361.

175. Seeding homologous adipose-derived stem cells and bladder smooth muscle cells into bladder submucosa matrix for reconstructing the ureter in a rabbit model / Meng L.C., Liao W.B., Yang S.X., Xiong Y.H. [et al.] // Transplant. Proc. — 2015. — N. 47(10). — P. 3002-11.

176. Shreck, E. Indications for augmentation cystoplasty in the era of onabotulinumtoxin / Shreck E., Gioia K., Lucioni A. // Curr. Urol. Rep. — 2016. — N. 17(4). — P. 27.

177. Smooth muscle precursor cells derived from human pluripotent stem cells for treatment of stress urinary incontinence / Wang Z., Wen Y., Li Y.H., Wei Y. [et al.] // Stem. Cells Dev. — 2016. — Vol. 15. — N. 25(6). — P. 453-61.

178. Smooth muscle progenitor cells derived from human pluripotent stem cells induce histologic changes in injured urethral sphincter / Li Y., Wen Y., Wang Z., Wei Y. [et al.] // Stem Cells Transl. Med. — 2016. — N. 26.

179. Sopko N.A. Use of regenerative tissue for urinary diversion / Sopko N.A., Kates M., Bivalacqua T.J. // Curr. Opin. Urol. — 2015. — N. 25(6). — P. 578-85.

180. Stein, R. Bladder augmentation and urinary diversion in children and adolescents / Stein R., Wessel L., Michel M.S. // Urologe A. — 2016. — N. 55(1). — P. 44-52.

181. Supportive features of a new hybrid scaffold for urothelium engineering / Naji M., Rasouli J., Shakhssalim N., Dehghan M.M. [et al.] // Arch. Med. Sci. — 2015. — Vol. 25. — N. 11(2). — P. 438-45.

182. Temporal expression of hyaluronic acid and hyaluronic acid receptors in a porcine small intestinal submucosa-augmented rat bladder regeneration model / Mondalek F.G., Fung K.M., Yang Q., Wu W. [et al.] // World J. Urol. — 2015. — N. 33(8). — P. 1119-28.

183. Tetronic®-based composite hydrogel scaffolds seeded with rat bladder smooth muscle cells for urinary bladder tissue engineering applications / Sivaraman S., Ostendorff R., Fleishman B., Nagatomi J. // J. Biomater. Sci. Polym. Ed. — 2015. — N. 26(3). — P. 196-210.

184. The long-term results of temporary urethral stent placement for the treatment of recurrent bulbar urethral stricture disease? / Temeltas G., Ucer O., Yuksel M.B., Gumus B. [et al] // Int. Braz. J. Urol. — 2016. — N. 42(2). — P. 351-5.

185. The orthotopic T pouch ileal neobladder: experience with 209 patients / J.P. Stein [et al.] // J. Urol. — 2004. — N. l72(2). — P. 584-587.

186. The promotion of functional urinary bladder regeneration using antiinflammatory nanofibers / Bury M.I., Fuller N.J., Meisner J.W., Hofer M.D. [et al.] // Biomaterials. — 2014. — N. 35(34). — P. 9311-21.

187. The role of genetically modified mesenchymal stem cells in urinary bladder regeneration / Snow-Lisy D.C., Diaz E.C., Bury M.I., Fuller N.J. [et al.] // PLoS One. — 2015. — Vol. 23. — N. 10(9).

188. The use of bi-layer silk fibroin scaffolds and small intestinal submucosa matrices to support bladder tissue regeneration in a rat model of spinal cord injury / Chung Y.G., Algarrahi K., Franck D., Tu D.D. [et al.] // Biomaterials. — 2014. — N. 35(26). — P. 7452-9.

189. The use of mesenchymal stem cells in bladder augmentation / Leite M.T., Freitas-Filho L.G., Oliveira A.S., Semedo-Kuriki P. [et al.] // Pediatr. Surg. Int. — 2014. — N. 30(4). — P. 361-70.

190. Time-dependent bladder tissue regeneration using bilayer bladder acellular matrix graft-silk fibroin scaffolds in a rat bladder augmentation model / Zhao Y., He Y., Zhou Z., Guo J.H. [et al.] // Acta Biomater. — 2015. — N. 23. — P. 91-102.

191. Tissue engineered tubular construct for urinary diversion in a preclinical porcine model / Geutjes P., Roelofs L., Hoogenkamp H., Walraven M. [et al.] // J. Urol. — 2012. — N. 188(2). — P. 653-60.

192. Tissue engineering and autologous transplant formation: practical approaches with resorbable biomaterials and new cell culture techniques / Sittinger M., Bujia J., Rotter N. [et al.] // Biomaterials. — 1996. — N. 17(3). — P. 237-242.

193. Tissue engineering of bladder using vascular endothelial growth factor gene-modified endothelial progenitor cells / Chen B.S., Xie H., Zhang S.L., Geng H.Q. [et al.] // Int. J. Artif. Organs. — 2011. — N. 34(12). — P. 1137-46.

194. Tissue engineering of diseased bladder using a collagen scaffold in a bladder exstrophy model / Roelofs L.A., Kortmann B.B., Oosterwijk E., Eggink A.J. [et al] // BJU Int. — 2014. — N. 114(3). — P. 447-57.

195. Tissue engineering of rat bladder using marrow-derived mesenchymal stem cells and bladder acellular matrix / Coutu D.L., Mahfouz W., Loutochin O., Galipeau J. [et al.] // PLoS One. — 2014. — Vol. 1. — N. 9(12).

196. Tissue engineering of the bladder—reality or myth? A systematic review / Sloff M., Simaioforidis V., de Vries R., Oosterwijk E. [et al.] // J. Urol. — 2014. — N. 192(4). — P. 1035-42.

197. Tissue performance of bladder following stretched electrospun silk fibroin matrix and bladder acellular matrix implantation in a rabbit model / Huang J.W., Xu Y.M., Li Z.B., Murphy S.V. [et al.] // J. Biomed. Mater. Res. A. — 2016. — N. 104(1). — P. 9-16.

198. Tissue-engineered conduit using bladder acellular matrix and bladder epithelial cells for urinary diversion in rabbits / Liao W.B., Song C., Li Y.W., Yang S.X. [et al.] // Chin. Med. J. (Engl). — 2013. — N. 126(2). — P. 335-9.

199. Tissue-engineered tubular graft for urinary diversion after radical cystectomy in rabbits / Liao W., Yang S., Song C., Li Y. [et al.] // J. Surg. Res. — 2013. — Vol. 15. — N. 182(2). — P. 185-91.

200. Tissue-engineered tubular substitutions for urinary diversion in a rabbit model / Meng L., Liao W., Yang S., Xiong Y. [et al.] // Exp. Biol. Med. (Maywood). — 2016. — N. 241(2). — P. 147-56.

201. Tissue-engineered urinary conduits / Kates M., Singh A., Matsui H., Steinberg G.D. [et al.] // Curr. Urol. Rep. — 2015. — N. 16(3). — P. 8.

202. Transplantation of human adipose-derived mesenchymal stem cells on a bladder acellular matrix for bladder regeneration in a canine model / Hou X., Shi C., Chen W., Chen B. [et al.] // J. Biomed. Mater. — 2016. — Vol. 13. — N. 11(3).

203. Tubularized urethral replacement using tissue-engineered peritoneum-like tissue in a rabbit model / Gu G.L., Xia S.J., Zhang J., Liu G.H. [et al.] // Urol. Int. — 2012. — N. 89(3). — P. 358-64.

204. Turner, W.S. Tissue engineering: construction of a multicellular 3D scaffold for the delivery of layered cell sheets / Turner W.S., Sandhu N., McCloskey K.E. // J. Vis. Exp. — 2014. — N. 3;(92).

205. Urethral reconstruction using bone marrow mesenchymal stem cell- and smooth muscle cell-seeded bladder acellular matrix / Li C.L., Liao W.B., Yang S.X[et al] // Transplant. Proc. — 2013. — N. 45(9). — P. 3402-7.

206. Urethroplasty for treatment of long anterior urethral stricture: buccal mucosa graft versus penile skin graft-does the stricture length matter? / Hussein M.M., Almogazy H., Mamdouh A., Farag F. [et al.] // Int. Urol. Nephrol. — 2016. — N. 11.

207. Urethroplasty using autologous urethral tissue-embedded acellular porcine bladder submucosa matrix grafts for the management of long-segment urethral stricture in a rabbit model / Chun S.Y., Kim B.S., Kwon S.Y., Park S.I. [et al.] // J. Korean Med. Sci. — 2015. — N. 30(3). — P. 301-7.

208. Urethroplasty with abdominal skin grafts for long segment urethral strictures / Meeks J.J., Erickson B.A., Fetchev P. [et al.] // J. Urol. — 2010. — N. 183(5). — P. 1880-4.

209. Urine-derived stem cells for potential use in bladder repair / Qin D., Long T., Deng J., Zhang Y. // Stem Cell. Res. Ther. — 2014. — Vol. 28. — N. 5(3). — P. 69.

210. Urodynamic changes after bladder augmentation surgery in paediatric patients with myelomeningocele due to neurogenic bladder / Zaragoza Torres R.I., Galarza-Flores M.E., Gómez-Castellanos J.C., Barrera-de León J.C. // Cir. Cir. — 2016. — N. 84(2). — P. 115-20.

211. Using porcine acellular collagen matrix (pelvicol®) in bladder augmentation: experimental study / Ayyildiz A., Nuhoglu B., Huri E., Ozer E. [et al.] // International Braz. J. Urol. — 2006. — Vol. 32 (1). — N. 88-93.

212. Valsangkar, R.S. Extended partial cystectomy with augmentation cystoplasty in urachal adenocarcinoma: An oncologically favorable but underutilized alternative to radical cystectomy / Valsangkar R.S., Rizvi S.J., Goyal N.K. // Urol. Ann. — 2016. — N. 8(3). — P. 369-71.

213. Veeratterapillay, R. Augmentation cystoplasty: Contemporary indications, techniques and complications / Veeratterapillay R., Thorpe A.C., Harding C. // Indian J. Urol. — 2013. — N. 29(4). — P. 322-7.

214. VEGF-Loaded Nanoparticle-Modified BAMAs Enhance Angiogenesis and Inhibit Graft Shrinkage in Tissue-Engineered Bladder / Jiang X., Xiong Q., Xu G., Lin H. [et al.] // Ann. Biomed. Eng. — 2015. — N. 43(10). — P. 2577-86.

215. Wang, Y. Histologic and functional outcomes of small intestine submucosa-regenerated bladder tissue / Wang Y., Liao L. // BMC Urol. — 2014. — Vol. 23. — N. 14. — P. 69.

216. Wezel, F. Plasticity of in vitro-generated urothelial cells for functional tissue formation / Wezel F., Pearson J. // Southgate J. Tissue Eng. Part. A. — 2014. — N. 20(9-10). — P. 1358-68.

217. Wiafe, B. Stem cell therapy: current applications and potential for urology / Wiafe B., Metcalfe P.D., Adesida A.B. // Curr. Urol. Rep. — 2015. — N. 16(11). — P. 77.

218. Yamany, T. Formation and regeneration of the urothelium / Yamany T., Van Batavia J., Mendelsohn C. // Curr. Opin. Organ. Transplant. — 2014. — N. 19(3). — P. 323-30.

219. Yu, A. Bone marrow mesenchymal stem cell therapy for voiding dysfunction / Yu A., Campeau L. // Curr. Urol. Rep. — 2015. — N. 16(7). — P. 49.

220. Zhang, F. Tissue engineered cystoplasty augmentation for treatment of neurogenic bladder using small intestinal submucosa: an exploratory study / Zhang F., Liao L. // J. Urol. — 2014. — N. 192(2). — P. 544-50.