Взаимодействие ядерного актина и NAP57/дискерина с белками, специфически связывающими сателлитную ДНК тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.25, кандидат биологических наук Кукалев, Александр Сергеевич

  • Кукалев, Александр Сергеевич
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 2004, Санкт-Петербург
  • Специальность ВАК РФ03.00.25
  • Количество страниц 93
Кукалев, Александр Сергеевич. Взаимодействие ядерного актина и NAP57/дискерина с белками, специфически связывающими сателлитную ДНК: дис. кандидат биологических наук: 03.00.25 - Гистология, цитология, клеточная биология. Санкт-Петербург. 2004. 93 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Кукалев, Александр Сергеевич

1 СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ.

1. ВВЕДЕНИЕ.

1.1. Цели и задачи исследования.

1.2. Основные положения, выносимые на защиту.

2. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР.

2.1 Организация генома эукариот.

2.2. Особенности организации сателлитных ДНК.

2.3. Белки, специфически связывающие сатДНК.

2.4. Гетерохроматин.

3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

3.1 Биохимические методы.

3.1.1. Получение препарата ядерного матрикса.

3.1.2. Получение ядерного экстракта из клеток культуры HeLa.

3.1.3. Аффинная очистка актин-связывающих белков наДНКазе I.

3.1.4. Аффинная очистка ядерного актина.

3.1.5. Получение и использование радиоактивно меченных фрагментов аминокислотной последовательности белка SAF-A/hnRNP U.

3.1.6. Изучение степени аффиности пептидов к ядерному актину.

3.1.1. SDS-электрофорез и окрашивание гелей.

3.2 Молекулярные методы.

3.2.1. Плазмиды.

3.2.2. Выделение плазмидной ДНК, электрофорез ДНК.

3.2.3. Полимеразная цепная реакция (ПЦР).

3.2.4. Праймеры.

3.2.5. Клонирование фрагментов ДНК.

3.3. Иммунологические методы.

3.3,1. Антитела.

3.3.2. Получение политональных антител.

3.3.3. Иммунопреципитация.:.

3.3.4. Иммуноблотинг.

3.4. Цитологические методы.

3.4.1. Культивирование клеток.

3.4.2. Использование диотиобис-сукцингшидилпропионата.

3.4.3. Трансфекция клеток культуры.

3.4.4. Синхронизация клеток.

3.4.5. Иммунофлуоресценция.

3.4.6. Микроинъекции.

3.4.7. Выявление сайтов транскрипции.

3.5. Методы компьютерного анализа.

РЕЗУЛЬТАТЫ.

4.1 Получение и тестирование поликлональных антител против белка NAP5 7/D yskerin.

4.2. Локализация белков ШРР140 и NAP57/Dyskerin.

4.3. Внутриядерная локализация белка NAP57/Dyskerin.

4.4. Локализация белка NAP57 и РНК-геликазы р68 семейства DEAD.

4.5. Доменный анализ первичной последовательности белка SAF-A/hnRNPU.

4.6. Изучение функциональной активности и характера локализации отдельных доменов белка SAF-A, меченных GFP.

4.7. Белок SAF-A взаимодействует с ядерным Р-актином in vitro и in vivo

4.8. Локализация белка SAF-A и ядерного актина в интерфазных и митотических клетках.

4.9. Белок SAF-A взаимодействует с Р-актином в ядре через С-концевой домен белка.

4.10. Белок SAF-A взаимодействует с Р-актином в ядре через пяти аминокислотную последовательность QRTQK на С-конце.

4.11. Комплекс SAF-A с Р-актином необходим для транскрипции РНК-полимеразойII.

5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

ВЫВОДЫ.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Гистология, цитология, клеточная биология», 03.00.25 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Взаимодействие ядерного актина и NAP57/дискерина с белками, специфически связывающими сателлитную ДНК»

Со структурной точки зрения, классический конститутивный гетерохроматин представляет собой повторяющиеся последовательности тандемно расположенных мономеров сателлитных ДНК (сатДНК), ассоциированные со специфическими белками. У высших эукариот последовательности сатДНК концентрируются в центромерных и теломерных районах хромосом, однако их функциональная роль в процессе реализации генетической информации до сих пор не ясна.

Достоверно известно, что сатДНК, образующие центромеру, обеспечивают формирование кинетохора, корректное спаривание и разделение хромосом в ходе митотического и мейотического делений клетки. Прицентромерные блоки сатДНК необходимы для правильной ассоциации сестринских хроматид.

В интерфазный период сатДНК участвует в трехмерной организации интерфазного ядра (Razin et al., 1995; Manuelidis, 1997), определяющую транскрипционный паттерн клетки. Известно, что характер распределения центромер в ядре меняется в ходе клеточного цикла (Ferguson, Ward, 1992) и эмбрионального развития (Longo et al., 2003). Изменение положения центромер в ядрах нейронов происходит при изменении транскрипционной активности при росте аксонов в условиях in vitro (Chon, De Boni, 1996). Хорошо известна способность центромерного гетерохроматина ингибировать транскрипционную активность генов, при ассоциации последних с районами гетерохроматина. С другой стороны, ингибирование РНК-полимеразы II приводит к деконденсации прицентромерного гетерохроматина (Haaf, Ward, 1996). Недавние исследования показали прямую связь между формированием гетерохроматина и постгранскрипционной регуляцией генной активности посредством механизма RNA interference (RNAi) (Agrawal et al., 2003), подтверждая участие гетерохроматиновых районов хромосом в метаболизме молекул РНК.

Активность сатДНК должна определяться белковыми факторами, способными специфически распознавать последовательности сатДНК в ядре интерфазной клетки. Между тем, белки связывающие сатДНК изучены недостаточно полно. Известные сатДНК-связывающие белки определены с помощью сыворотки аутоиммунных больных (Moroi et al., 1980; Earnshaw, Rothfield, 1985), либо методом ретардации в геле (Lobov et al., 1998), основанным на изменении подвижности ДНК-белкового комплекса в ПААГ.

Последний метод наиболее эффективен, поскольку позволяет точно определить специфичность распознавания использованных в качестве зонда последовательностей ДНК. Так с помощью метода ретардации в геле был установлен специфический характер взаимодействия РНК-геликазы р68 семейства DEAD с последовательностями альфоидной ДНК (а-сатДНК) человека и минорного сателлита (миСат) мыши (Podgornaya et al., 2003; Enukashvily et al., 2005), а также взаимодействия ядерного белка SAF-A/hnRNP U с мажорным сателлитом мыши (маСат) (Lobov et al., 2000; 2001).

Предметом настоящего исследования стало изучение белковых комплексов, в состав которых входят РНК-геликаза р68 и белок SAF-A/hnRNP U.

1.1. Цели и задачи исследования

Целью настоящей работы являлось изучение взаимодействия ассоциированных с сателлитными ДНК белков SAF-A/hnRNP U и РНК-геликазы р68 с нехроматиновыми белками - ядерным fJ-актином и белком N АР5 7/Dyskerin.

Были поставлены следующие задачи:

1. Получить антитела, специфически узнающие белок NAP57.

2. Изучить внутриклеточную локализацию сатДНК-связывающих и сопутствующих им белков.

3. Подтвердить взаимодействие пар молекулярных партнеров (геликаза p68/NAP-57 и SAF-A/p-актин) in vivo и in vitro

4. Идентифицировать необходимые для формирования белковых комплексов аминокислотные последовательности.

5. Определить функции изучаемых белковых комплексов.

Похожие диссертационные работы по специальности «Гистология, цитология, клеточная биология», 03.00.25 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Гистология, цитология, клеточная биология», Кукалев, Александр Сергеевич

выводы

1. Внутриядерная локализация белка NAP57/Dyskerin не зависит от фаз клеточного цикла и может быть разделена на два типа: ядрышковая и нуклеоплазменная.

2. Белок NAP57/Dyskerin специфически взаимодействует in vitro с РНК-геликазой р68 семейства DEAD, колокализуясь с ней во внутриядерных хранилищах факторов сплайсинга (спеклах) in vivo.

3. Белок SAF-A специфически взаимодействует с (3-актином в ядре, образуя единый комплекс с РНК-полимеразой II.

4. Белок SAF-A взаимодействует с ядерным (3-актином через пятиаминокислотную последовательность: глутамин-аргинин-треонин-глутамин-лизин на С-конце аминокислотной последовательности SAF-А.

5. Комплекс SAF-A с р-актином необходим для транскрипции РНК-полимеразой II.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Кукалев, Александр Сергеевич, 2004 год

1. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. 1984. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. М., Мир, 479 с.

2. Agrawal N., Dasaradhi P.V.N, Mohmmed A., Malhotra P., Bhatnagar R.K., and Mukherjee S.K. 2003. RNA interference: biology, mechanism and applications. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 67: 657-685.

3. Alexandrov I., Kazakov A., Tumeneva I., Shepelev V., and Yurov Y. 2001. Alpha-satellite DNA of primates: old and new families. Chromosoma. 110: 253266.

4. Altschul S.F., Gish W., Miller W., Myers E.W., and Lipman D.J. 1990. Basic local alignment search tool. J. Mol. Biol. 215: 403-410.

5. Altschul S.F., Madden T.L., Schaffer A.A., Zhang J., Zhang Z., Miller W., and Lipman D.J. 1997. Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs. Nucleic Acids Res. 25: 3389-3402.

6. Amor D.J., Kalitsis P., Sumer H., and Choo K.H.A. 2004. Building the centromere: from foundation proteins to 3D organization. Trends Cell Biol. 14: 359-368.

7. Andrin C. and Hendzel M.J. 2004. F-actin dependent insolubility of chromatin modifying components. J. Biol. Chem., in press (published on-line on April 13, 2004).

8. Barcelo F., Pons J., Petitpierre E., Baijau I., and Portugal J. 1997. Polymorphic curvature of satellite DNA in three subspecies of the beetle Pimelia sparsa. Eur. J. Biochem. 244: 318-324.

9. Barsacchi-Pilone G., Batistoni R., Andronico F., Vitelli L., and Nardi I. 1986. Heterochromatic DNA in Triturus (Amphibia, Urodela). I. A satellite DNA component of the pericentric C-bands. Chromosoma. 93: 435-446.

10. Bateman A., Birney E., Cerruti L., Durbin R., Etwiller L., Eddy S.R., Griffiths J.S., Howe К.L., Marshall M., and Sonnhammer E .L. 2 002. The Pfam protein families database. Nucleic Acids Res. 301: 276-280.

11. Belgrader P., Siegel A.J., and Berezney R. 1991. A comprehensive study on the isolation and characterization of the HeLa S3 nuclear matrix. J. Cell Sci. 98: 281291.

12. Benfante R., Landsberger N., Tubiello G., and Badaracco G. 1989. Sequence-directed curvature of repetitive Alul DNA in constitutive heterochromatin of Artemia franciscana. Nucleic Acids Res. 17: 8273-8282.

13. Berger В., Wilson D.B., Wolf E., Tonchev Т., Milla M., and Kim P.S. 1995. Predicting coiled coils by use of pairwise residue correlations. Proc. Natl. Acad. Sci. 92: 8259-8263.

14. Bernstein E., Kim S.Y., Carmell M.A., Murchison A.P., Alcorn H., Li M.Z., Mills A.A., Elledge S.J., Anderson K.V., and Hannon K.J. 2003. Dicer is essential for mouse development. Nat. Genet. 35: 215-217.

15. Bettinger B.T., Gilbert D.M., and Amberg D.C. 2004. Actin up in the nucleus. Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. 5: 410-415

16. Bootsma D., Budke L., and Vos O. 1963. Studies on synchronous division of tissue culture cells initiated by excess thymidine. Exp. Cell. Res. 33: 301-309.

17. Bouvet P., Diaz J.J., Kindbeiter K., Madjar J.J., and Amalric F. 1998. Nucleolin interacts with several ribosomal proteins through its RGG domain. J. Biol. Chem. 273: 19025-19029.

18. Bridger J.M., Kill I.R., and Lichter P. 1998. Association of pKi-67 with satellite DNA of the human genome in early G1 cells. Chrom. Res. 6: 13-24.

19. Burd CG, Dreyfuss G. 1994. Conserved structures and diversity of functions of RNA-binding proteins. Science. 265: 615-21

20. Burger F., Daugeron M.C., and Linder P. 2000. DbplOp, a putative RNA helicase from Saccharomyces cerevisiae, is required for ribosome biogenesis. Nucleic Acids Res. 28:2315-2323.

21. Cadwell C., Yoon H.-J., Zebarjadian Y., and Carbon J. 1997. The yeast nucleolar protein CBF5p is involved in rRNA biosynthesis and Interacts genetically with the RNA polymerase I transcription factor RRN3. Mol. Cell Biol. 17: 6175-6183.

22. Chan W.Y., Liu Q.R., Borjigin J., Busch H., Rennert O.M., Tease L.A., and Chan P.K. 1989. Characterization of the cDNA encoding human nucleophosmin and studies of its role in normal and abnormal growth. Cell. 56: 379-390.

23. Chen J.L. and Greider C.W. 2004. Telomerase RNA structure and function: implications for dyskeratosis congenita. Trends Biochem. Sci. 29: 183-192.

24. Cheutin Т., McNairn A.J., Jenuwein Т., Gilbert D.M., Singh P.B., and Misteli T. 2003. Maintenance of stable heterochromatin domains by dynamic HP1 binding. Science. 299: 721-725.

25. Chon V. and De Boni U. 1996. Spatial repositioning of centromeric domains during regrowth of axons in nuclei of murine dorsal root ganglion neurons in vitro. J. Neurobiol. 31: 325-332.

26. Choo K.H., Vissel В., Nagy A., Earle E., and Kalitsis P. 1991. A survey of the genomic distribution of alpha satellite DNA on all human chromosomes, and derivation of a new consensus sequence. Nucleic Acids Res. 19: 1179-1182.

27. Choo K.H.A. 1997. The Centromere, Oxford-NY-Tokio, Oxford University Press, p. 403.

28. Choo K.H.A. Centromerization. 2000. Trends Cell Biol. 10: 182-188.

29. Cooper K. F., Fisher R. В., and Tyler-Smith C. 1993. Structure and sequences adjacent to the centromeric alphoid satellite DNA array on' the human Y chromosome. J. Mol. Biol. 230,787-799.

30. Craig J.M., Earnshaw W.C., and Vagnarelli P. 1999. Mammalian centromere: DNA sequence, protein composition, and role in cell cycle progression. Exp. Cell Res. 246: 249-262.

31. Csink A.K. and Henikoff S. 1998. Something from nothing: the evolution and utility of satellite repeats. Trends Genet. 14: 200-204.

32. Davis M, Hatzubai A, Andersen JS, Ben-Shushan E, Fisher GZ, Yaron A, Bauskin A, Mercurio F, Mann M, Ben-Neriah Y. 2002. Pseudosubstrate regulation of the SCF(beta-TrCP) ubiquitin ligase by hnRNP-U. Genes Dev. 164: 439-51.

33. Dawe R.K. and Cande W.Z. 1996. Induction of centromeric activity in maize by suppressor of meiotic drive 1. Proc. Natl. Acad. Sci. USA93: 8512-8517.

34. De la Cruz J., Kressler D., and binder P. 1999. Unwinding RNA in Saccharomyces cerevisiae: DEAD-box proteins and related families. Trends Biochem. Sci. 24: 192-198.

35. Dong F., Miller J.T., Jackson S.A., Wang G.L., Ronald P.C., and Jiang J. 1998. Rice (Oryza s ativa) centromeric regions consist of complex DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95: 8135-8140.

36. Doshi P., Kaushal S., Benyajati C., and Wu C.I. 1991. Molecular analysis of the responder satellite DNA in Drosophila melanogasten DNA bending, nucleosome structure, and Rsp-binding proteins. Mol. Biol. Evol. 8: 721-741.

37. Dundr M. and Misteli T. 2001. Functional architecture in the cell nucleus. Biochem. J. 356, 297-310.

38. Earle E., Saxena A., MacDonald A., Hudson D.F., Shaffer L.G., Saffery R., Cancilla M.R., Cutts S.M., Howman E., and Choo K.H. 2000. Poly(ADP-ribose) polymerase at active centromeres and neocentromeres at metaphase. Hum. Mol. Genet. 9: 187-194

39. Earnshaw W.C. and Rothfield N. 1985. Identification of a family of human centromere proteins using autoimmune sera from patients with scleroderma. Chromosoma. 91: 313-321.

40. Egly J.M., Miyamoto N.G., Moncollin V., and Chambon P. 1984. Is actin a transcription initiation factor for RNA polymerase В? EMBO J. 3: 2363-2371.

41. Eggert M, Michel J, Schneider S, Bornfleth H, Baniahmad A, Fackelmayer FO, Schmidt S, Renkawitz R. 1997. The glucocorticoid receptor is associated with the RNA-binding nuclear matrix protein hnRNP U. J Biol Chem. 272: 28471-28478.

42. Enukashvily N.I., Lobov I.B., Kukalev A.S., and Podgornaya O.I. 2000. A nuclear matrix protein related to intermediate filaments proteins is a member of the complex binding alphoid DNA in vitro. Cell Biol. Int. 24: 483^92.

43. Fanti L., Berloco M., Piacentini L., and Pimpinelli S. 2003. Chromosomal distribution of heterochromatin protein 1 (HP1) in Drosophila: a cytological map of euchromatic HP1 binding sites. Genetica. 117: 135-147.

44. Fanti L., Giovinazzo G., Berloco M., and Pimpinelli S. 1998. The heterochromatin protein 1 (HP1) prevents telomere fusions in Drosophila melanogaster. Mol. Cell. 2: 1-20.

45. Ferguson M. and Ward D.C. 1992. Cell cycle dependent chromosomal movement in pre-mitotic human T-lymphocyte nuclei. Chromosoma. 101: 557-565.

46. Festenstein R., Pagakis S.N., Hiragami K., Lyon D., Verreault A., Sekkali В., and Kioussis D. 2003. Modulation of heterochromatin protein 1 dynamics in primary mammalian cells. Science. 299: 721-725.

47. Figueroa J., Saffrich R., Ansorge W., and Valdivia M. 1998. Microinjection of antibodies to centromere protein CENP-A arrests cells in interphase but does not prevent mitosis. Chromosoma. 107: 397-405.

48. Fitzgerald D.J., Dryden G.L., Branson E.C., Williams J.S., and Anderson J.N. 1994. Conserved patterns of bending in satellite and nucleosome positioning DNA. J. Biol. Chem. 269: 21303-21314.

49. Fomproix N. and Percipalle P. 2004. An actin-myosin complex on actively transcribing genes. Exp. Cell Res. 294: 140-148.

50. Fowler К J., Hudson D., Salamonsen L.A., Edmonson S., Earle E., Sibson M.C., and Choo K.H.A. 2000. Uterine dysfunction and genetic modifiers in centromereprotein B-deficient mice. Genome Res. 10: 30-41.

51. Fukagawa T. 2004. Centromere DNA, proteins and kinetochore assembly in vertebrate cells. Chromosome Res. 12: 557-567.

52. Fukagawa Т., Nogami M., Yoshikawa M., Ikeno M., Okazaki Т., Takami Y., Nakayama Т., and Oshimura M. 2004. Dicer is essential for formation of the heterochromatin structure in vertebrate cells. Nat. Cell Biol. 6: 784-791.

53. Fukuda Y. and Nishikawa S. 2003. Matrix attachment regions enhance transcription of a downstream transgene and the accessibility of its promoter region to micrococcal nuclease. Plant Mol. Biol. 51: 665-675.

54. Gabler S, Schutt H, Groitl P, Wolf H, Shenk T, Dobner T. 1998. E1B 55-kilodalton-associated protein: a cellular protein with RNA-binding activity implicated in nucleocytoplasmic transport of adenovirus and cellular mRNAs. J Virol 7210: 7960-7971.

55. Gaff C., du Sart D., Kalitsis P., Iannello R., Nagy A., and Choo K.H. 1994. A novel nuclear protein binds centromeric alpha satellite DNA. Hum. Mol. Genet. 3: 711-716.

56. Gilbert N., and Allan J. 2001. Distinctive higher-order chromatin structure at mammalian centromeres. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98: 11949-11954.

57. Gilbert N., Boyle S., Fiegler H., Woodfine K., Carter N.P., and Bickmore W.A. 2004. Chromatin Architecture of the Human Genome: Gene-Rich Domains Are Enriched in Open Chromatin Fibers. Cell: 118: 555-566.

58. Gimelli G., Zuffardi O., Giglio S., Zeng C., and He D. 2000. CENP-G in neocentromeres and inactive centromeres. Chromosoma. 109: 328-333.

59. Goldberg I.G., Sawhney H., Pluta A.F., Warburton P.E., and Earnshaw W.C.1996. Surprising deficiency of CENP-B binding sites in African green monkey alpha-satellite DNA: implications for CENP-B function at centromeres. Mol Cell Biol. 16:5156-5168.

60. Gonsior S.M., Platz S., Buchmeier S., Scheer U., Jockusch B.M., and Hinssen H. 1999.Conformational difference between nuclear and cytoplasmic actin as detected by a monoclonal antibody. J. Cell Sci. 112: 797-809.

61. Haaf T. and Ward D.C. 1994. Structural analysis of a-satellite DNA and centromere proteins using extended chromatin and chromosomes. Hum. Mol. Genet. 3: 697-709.

62. Haaf T. and Ward D.C. 1996. Inhibition of RNA polymerase II transcription causes chromatin decondensation, loss of nucleolar structure, and dispersion of chromosomal domains. Exp. Cell Res. 224: 163-173.

63. Hall I.M., Shankaranarayana G.D., Noma K., Ayoub N., Cohen A., and Grewal S.I.H. 2002. Establishment and maintenance of a heterochromatin domain. Science. 297: 2232-2237

64. Haukenes G., Szilvay A.M., Brokstad K.A., Kanestrom A., and Kalland K.H.1997. Labeling of RNA transcripts of eukaryotic cells in culture with BrUTP using a liposome transfection reagent (DOTAP). Biotechniques. 22: 308-312.

65. He D., Zeng C., Woods K., Zhong L., Turner D., Busch R.K., Brinkley B.R., and Busch H. 1998. CENP-G: a new centromeric protein that is associated with the alpha-1 satellite DNA subfamily. Chromosoma. 107: 189-197.

66. Heiss N.S., Girod A., Salowsky R., Wiemann S., Pepperkok R., and Poustka. 1999. A Dyskerin localizes to the nucleolus and its mislocalization is unlikely to play a role in the pathogenesis of dyskeratosis congenita. Hum. Mol.Genet. 8: 2515-2524.

67. HenikoffS, Ahmad K, and Malik HS. 2001. The Centromere Paradox: Stable Inheritance with Rapidly Evolving DNA. Science. 293: 1098-1102.

68. Hibino Y., Tsukada S., and Sugano N. 1993. Properties of a DNA-binding protein from rat nuclear scaffold fraction. Biochem. Biophys. Res. Commun. 197: 336-342.

69. Hibino Y., Tsukada S., and Sugano N. 1997. Purification and characterization of a DNA binding protein in a nuclear scaffold fraction from rat ascites hepatomacells. Carcinogenesis. 18: 707-713.

70. Holmes-Davis R. and Comai L. 2001. The matrix attachment regions (MAR) associated with the heat shock cognate 80 gene (HSC80) of tomato represent specific regulatory elements. Mol. Genet. Genomics. 266: 891-898.

71. Holmquist G.P. 1989. Evolution of chromosome bands: molecular ecology of non-coding DNA. J. Mol. Evol. 28: 469-486.

72. James T.C. and Elgin S.C.R. 1986. Identification of nonhistone chromosomal protein associated with heterochromatin in Drosophila and its gene. Mol. Cell. Biol. 6: 3862-3872.

73. Jean P., Hartung M., Mirre C., andStahlA. 1983. Association of centromeric heterochromatin with the nucleolus in mouse Sertoli cells. Anat. Rec. 205: 375380.

74. Jiang W., Middleton K., Yoon H.J., Fouquet C., and Carbon J. 1993. An essential yeast protein, CBF5p, binds in vitro to centromeres and microtubules. Mol. Cell Biol. 13: 4884-4893.

75. Jolly C., Metz A., Govin J., Vigneron M., Turner B.M., Khochbin S., and Vourc'h, C. 2004. Stress-induced transcription of satellite III repeats. J. Cell Biol. 164: 25-33.

76. Kalitsis P., Fowler K.J., Earle E., Hill J., and Choo K.H. 1998. Targeted disruption of mouse centromere protein С gene leads to mitotic disarray and early embryo death. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95: 1136-1141.

77. Kiledjian M. and Dreyfuss G. 1992. Primary structure and binding activity of thehnRNP U protein: binding RNA through RGG box. EMBO J. 11: 2655-2664.

78. Kim M.K. and Nikodem V.M. 1999. hnRNP U inhibits carboxy-terminal domain phosphorylation by TFIIH and represses RNA polymerase II elongation. Mol. Cell Biol. 19: 6833-6844.

79. Kipling D. and Warburton P.E. 1997. Centromeres, CENP-B and Tigger too. Trends Genet. 13: 141-145.

80. Kipling D., Mitchell A.R., Masumoto H., Wilson H.E., Nicol L., and Cooke H.J. 1995. CENP-B binds a novel centromeric sequence in the Asian mouse Mus caroli. Mol. Cell. Biol. 15: 4009-4020.

81. Kipling D., Wilson H., Mitchell A., Taylor В., and Cooke H. 1994. Mouse centromere mapping using oligonucleotide probes that detect variants of the minor satellite. Chromosoma. 103: 46-55.

82. Kipp M., Gohring F., Ostendorp Т., Van Drunen C.M., Van Driel R., Przybylsky M., and Fackelmayer F.O. 2000a. SAF-box, a conserved protein domain that specifically recognizes scaffold attachment region DNA. Mol. Cell Biol. 20: 7480-7489.

83. Kipp M., Schwab B.L., Przybylski M., Nicotera P., and Fackelmayer F.O. 2000b. Apoptotic cleavage of scaffold attachment factor A (SAF-A) by caspase-3 occurs at a noncanonical cleavage site. J. Biol. Chem. 275: 5031-5036.

84. Kiseleva E., Drummond S.P., Goldberg M.W., Rutherford S.A., Allen T.D., and Wilson K.L. 2004. Actin- and protein-4.1-containing filaments link nuclear pore complexes to subnuclear organelles in Xenopus oocyte nuclei. J. Cell Sci. 117: 2481-2490

85. Kit S. 1961. Equilibrium sedimentation in density gradients of DNA preparations from animal tissues. J. Mol. Biol. 3: 711-716.

86. Kitagawa K. and Hieter P. 2001. Evolutionary conservation between budding yeast and human kinetochores. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2: 678-687.

87. Kodama H., Saitoh H., Tone M., Kuhara S., Sakaki Y., and Mizuno S. 1987. Nucleotide sequences and unusual electrophoretic behavior of the W chromosome-specific repeating DNA units of the domestic fowl, Gallus gallus domesticus. Chromosoma. 96:18-25.

88. Kramer J.A., Singh G.B., and Krawetz S.A. 1996. Computer-assisted search forsites of nuclear matrix attachment. Genomics. 33: 305-308.

89. Krauss S.W., Heald R., Lee G., Nunomura W., Gimm J.A., Mohandas N., and Chasis J.A. 2002. Two distinct domains of protein 4.1 critical for assembly of functional nuclei in vitro. J. Biol. Chem. 277: 44339-44346.

90. Kuznetsova I.S., Prusov A.N., Enukashvily N.I., Podgornaya O.I. 2004. New type of the mouse centromeric satellite DNAs. Chrom. Res. 12: 1-17.

91. Lachner M., O'Carroll D., Rea S., Mechtler K., and Jenuwein T. 2001. Methylation of histone H3 lysine 9 creates a binding site for HP1 proteins. Nature. 410: 116-120.

92. Laemmli U.K. 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227(259): 680-685.

93. Lafontaine D.L.J, and Tollervey D. 1998. Birth of the snoRNPs: the evolution of the modification-guide snoRNAs. Trends Biochem. Sci. 23: 383-388.

94. Lafontaine D.L.J., Bousquet-Antonelli C., Henry Y., Caizergues-Ferrer M., and Tollervey D. 1997. The box H+ACA snoRNAs carry CBF5p, the putative rRNA pseudouridine synthase. Genes Dev. 12: 527-537.

95. Lamond A.I., Spector D.L. 2003. Nuclear speckles: a model for nuclear organelles. Nat. Mol. Cell Biol. 4: 605-612.

96. Lee C., Wevrick R.,- Fisher R.B., Ferguson-Smith M.A., and Lin C.C. 1997. Human centromeric DNAs. Hum. Genet. 100: 291-304

97. Leger I., Guillaud M., Krief В., and Brugal G. 1994. Interactive computer-assisted analysis of chromosome 1 colocalization with nucleoli. Cytometry. 16: 313-323.

98. Lermontova I., Hudakova S., Schubert V., Manteuffel R., Schlesier В., Tewes A., and Schubert I. 2004. Cloning and functional characterization of plant kinetochore proteins. Chrom. Res. 12. suppl. 1: 19.

99. Lin C.Y., Li C.C., Huang P.H., and Lee F.J.S. 2002. A developmentally regulated ARF-like 5 protein (ARL5), localized to nuclei and nucleoli, interacts with heterochromatin protein 1. J. Cell Sci. 115: 4433-4435.

100. Linder P. 2000. Dead-box proteins. Curr. Biol. 10, R887.

101. Lo A.W., Craig J.M., Saffery R., Kalitsis P., Irvine D.V., Earle E., Magliano D.J., and Choo K.H: 2001. A 330 kb CENP-A binding domain* and alteredreplication timing at a human neocentromere. EMBO J. 20: 2087-2096.

102. Lo A.W., Liao G.C., Rocchi M., and Choo K.H. 1999. Extreme reduction of chromosome-specific alpha-satellite array is unusually common in human chromosome 21. Genome Res. 9: 895-908.

103. Lobov I.B., Mitchell A.R., and Podgornaya O.I. 1998. A specific mouse satellite-binding protein of nuclear matrix. Mol. Biol. (Moscow, Engl, transl.) 32: 1056-1061.

104. Lobov I.B., Tsutsui K., Mitchell A.R., and Podgornaya O.I. 2000. Specific interaction of mouse major satellite with MAR-binding protein SAF-A. Eur. J. Cell Biol. 79: 839-849.

105. Lobov I.B., Tsutsui K., Mitchell A.R., and Podgornaya O.I. 2001. SAF-A and lamin В binding specificity in vitro correlates with the satellite DNA bending state. J. Cell Biochem. 83: 218-229.

106. Longo F., Garagna S., Merico V., Orlandini G., Gatti R., Scandroglio R., Redi C.A., and Zuccotti M. 2003. Nuclear localization of NORs and centromeres in mouse oocytes during folliculogenesis. Mol. Reprod. Dev. 66: 279-290.

107. Lupas A., Van Dyke M., and Stock J. 1991. Predicting coiled coils from protein sequences. Science. 252:1162-1164.

108. Ma X., Zhao X., and Yu Y.T. 2003. Pseudouridylation of U2 snRNA in S. cerevisiae is catalyzed by an RNA-independent mechanism. EMBO J. 22: 1889-1897.

109. Mahtani M.M. and Willard H. 1998. Physical and genetic mapping of the human X chromosome centromere: repression of recombination. Genome Res. 8:100-110.

110. Makalowski W. 2001. The human genome structure and organization. Acta Biochimica Polonica. 48: 587-598.

111. Marciniak R.A., Johnson F.B., and Guarente L. 2000. Dyskeratosis congenita, telomeres and human ageing. Trends Genet. 16: 193-195.

112. Martinez-Balbas A., Rodriguez-Campos A., Garcia-Ramirez M., Sainz J., Carrera P., Aymami J., and Azorin F. 1990. Satellite DNAs contain sequences that induced curvature. Biochemistry. 29: 2342-2348.

113. Martins R.P., Ostermeier G.C., and Krawetz S.A. 2004. Nuclear matrix interactions at the human protamine domain: a working model of potentiation. J.B.C., in press, published on Sept 27, 2004 as Manuscript No. M409415200.

114. Masumoto H., Masukata H., Muro Y., Nozaki N., and Okazaki T. 1989. A human centromere antigen (CENP-B) interacts with a short specific sequence in alphoid DNA, a human centromeric satellite. J. Cell Biol. 109: 1963-1973.

115. McGough A., Pope В., Chiu W., and Weeds A. 1 997. Сofilin сhanges the twist of F-actin: implications for actin filament dynamics and cellular function. J. Cell Biol. 138:771-781.

116. Meier U.T. and Blobel G. 1994. NAP57, a mammalian nucleolar protein with putative homolog in yeast and bacteria. J. Cell Biol. 127: 1505-1514.

117. Millonig R., Salvo H., and Aebi U. 1 988. Probing actin polymerization by intermolecular cross-linking. J. Cell Biol. 106: 785-796.

118. Mintz P.J., Patterson S.D., Neuwald A.F., Spahr C.S., and Spector D.L. 1999. Purification and biochemical characterization of interchromatin granule clusters. EMBOJ. 18: 4308-4320.

119. Mitchell A.R. 1996. The mammalian centromere: its molecular architecture. Mutat. Res. 372: 153-162.

120. Mochizuki Y., He J., Kulkarni S., Bessler M., and Mason P.J. 2004. Mouse DYSKERIN mutations affect accumulation of telomerase RNA and small nucleolar RNA, telomerase activity, and ribosomal RNA processing. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 101:10756-10761.

121. Montoya G., Svensson C., Luirink J., and Sinning I. 1997. Crystal structure of the NG domain from the signal-recognition particle receptor FtsY. Nature. 385: 365-368.

122. Moroi Y„ Peebles C., Fritzler M.J., Steigerwald J., and Tan E.M. 1980. Autoantibody to centromere (kinetochore) in scleroderma sera. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77: 1627-1631.

123. Mortillaro M. J. and Berezney R. 1998. Matrin CYP, an SR-rich cyclophilin that associates with the nuclear matrix and splicing factors. J. Biol. Chem. 273: 8183-8192.

124. Nakamura K., Ikeda Y., Iwakami N., Hibino Y., and Sugano N. 1991. Bending of a highly repetitive component in rat nuclear DNA. Biochem. Int. 25: 355-362.

125. Nichols R.C., Wang X.W., Tang J., Hamilton B.J., High F.A., Herschman H.R., and Rigby W.F. 2000. The RGG domain in hnRNP A2 affects subcellular localization. Exp. Cell Res. 2562: 522-532.

126. Oei S.L., Griesenbeck J., and Schweiger M. 1997. The role of poly(ADP-ribosyl)ation. Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 131: 127-173.

127. Olave I. A., Reek-Peterson S. L., and Crabtree G. 2002. Nuclear actin and actin-related proteins in chromatin remodelling. Annu. Rev. Biochem. 71: 755781.

128. Olson M. O., Dundr M., and Szebeni A. 2000. The nucleolus: an old factory with unexpected capabilities. Trends Cell Biol. 10: 189-196.

129. Pederson T. and Aebi U. 2002. Actin in the nucleus: what form and what for? J. Struct. Biol. 140: 3-9.

130. Pendleton A., Pope В., Weeds A., and Koffer A. 2003. Latrunculin В or ATP depletion induces cofilin-dependent translocation of actin into nuclei of mast cells. J. Biol. Chem. 278: 14394-14400.

131. Percipalle P., Fomproix N., Kylberg K., Miralles F., Bjorkroth В., Daneholt

132. В., and Visa N. 2003. An actin-ribonucleoprotein interaction is involved in transcription by RNA polymerase II. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1 00: 64756480.

133. Percipalle P., Jonsson A., Nashchekin D., Karlsson C., Bergman Т., Guialis A., and Daneholt, B. 2002. Nuclear actin is associated with a specific subset of hnRNP A/B-type proteins. Nucl. Acid Res. 30:1725-1734.

134. Percipalle P., Zhao J., Pope В., Weeds A., Lindberg U., and Daneholt B. 2001. Actin bound to the heterogeneous nuclear ribonucleoprotein hrp36 is associated with Balbiani ring mRNA from the gene to polysomes. J. Cell Biol. 153: 229-236.

135. Pestic-Dragovich L., Stojiljkovic L., Philimonenko A.A., Nowak G., Ke Y., Settlage R.E., Shabanowitz J., Hunt D.F., Hozak P., and de Lanerolle P. 2000. A myosin I isoform in the nucleus. Science. 290: 337-341.

136. Peters AH. 2004. Plastitity of hstone methylation states during mammalian meiosis. Chrom Res. 12, s. 1: 109.

137. Peterson C.L., Zhao Y., and Chait B.T. 1998. Subunits of the yeast SWI/SNF complex are members of the actin-related protein (ARP) family. J. Biol. Chem. 273: 23641-23644.

138. Pietras D., Bennet 1С., Siracusa L., Woodworth-Gutai M., Chapman V., and Gross K. 1983. Construction of a small Mus musculus repetitive DNA library: identification of a new satellite sequence in Mus musculus. Nucleic Acids Res. 11: 6965-6983.

139. Podgornaya O.I., Voronin A.P., Enukashvily N., Matveev I.V., and Lobov I.B. 2003. Structure-specific DNA-binding proteins as the foundation for 3-dimensional chromatin organization. Int. Rev. Cytol. 224: 227-296.

140. Radic M.Z., Lundgren K., and Hamkalo B.A. 1987. Curvature of mouse satellite DNA and condensation of heterochromatin. Cell. 50: 1101-1108.

141. Razin S.V., Gromova I.I., and Iarovaia O.V. 1995. Specificity and functional significance of DNA interaction with nuclear matrix: new approach to clarify the old questions. Int. Rev. Cytol. 162B: 405-448.

142. Reeves R., and Nissen M.S. 1990. The A.T-DNA-binding domain of mammalian high mobility group I chromosomal proteins. A novel peptide motif for recognizing DNA structure. J. Biol. Chem. 265: 8573-8582.

143. Reinhart В. J., and В artel D.P. 2002. Small RNAs correspond to centromere heterochromatic repeats. Science. 297: 1831.

144. Romanova L.Y., Deriagin G.V., Mashkova T.D., Tumeneva I.G., Mushegian A.R., Kisselev L.L., and Alexandrov I.A. 1996. Evidence for Selection in Evolution of Alpha Satellite DNA: The Central Role of CENP-B/pJa Binding Region. J. Mol. Biol. 261: 334-340.

145. Romig H., Fackelmayer F. O., Renz A., Ramsperger U., and Richter A. Characterization of SAF-A, a novel nuclear DNA-binding protein from HeLa cells with high affinity for nuclear matrix/scaffold attachment DNA elements. EMBO J. 11: 3431-3440.

146. Rungger D., Rungger-Brandle E., Chaponnier C., and Gabbiani G. 1979. Intranuclear injection of anti-actin antibodies into Xenopus oocytes blocks chromosome condensation. Nature. 282(5736): 320-321.

147. Saffery R., Irvine D.V., Griffiths В., Kalitsis P., and Choo K.H. 2000. Human centromeres and neocentromeres show identical patterns distribution patterns of >20 functional important kinetochore-associated proteins. Hum. Mol. Genet. 9: 175-185.

148. Saitoh H., Harata M., and Mizuno S. 1989. Presence of female-specific bent-repetitive DNA sequences in the genomes of turkey and pheasant and their interactions with W-protein of chicken. Chromosoma. 98: 250-258

149. Saitoh N., Spahr C.S., Patterson S.D., Bubulya P., Neuwald A.F., and Spector D.L. 2004. Proteomic analysis of interchromatin granule clusters. Mol. Biol. Cell. 15: 3876-3890.

150. Schmidt M.H.H., Broil R., Bruch H.-P., Finniss S., Bogler O., and Duchrow M. 2004. Proliferation marker pKi-67 occurs in different isoforms with various cellular effects. J. Cell. Biochem. 91: 1280-1292

151. Schnedl W., Breitenbach M., and Stranzinger G. 1977. Mithramycin and DAPI: a pair о f fluorochromes specific for GC-and AT-rich DNA respectively.1. Hum. Genet. 36: 299-305.

152. Schultz J., Milpetz F., Bork P., and Ponting C. 1998. SMART, a simple modular architecture research tool: identification of signaling domains. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 9511: 5857-5864.

153. Sheer U., Hinssen H., Franke W.W, and Jockush B.M. 1984. Microinjection of actin-binding proteins and actin antibodies demonstrates involvement of nuclear actin in transcription of lampbrush chromosomes. Cell. 39: 111-122.

154. Shelby R.D., Vafa O., and Sullivan K. 1997. Assembly of CENP-A into centromeric chromatin requires a cooperative array of nucleosomal DNA contact sites J. Cell Biol. 136: 501-513.

155. Shen X., Mizuguchi G., Hamiche A., and Wu C. 2000. A chromatin remodelling complex involved in transcription and DNA processing. Nature. 406(6795): 541-544.

156. Song Z., Zeng X., Wang M., Liu W., Huang В., and Hao S. 2004. Unpolymerized nuclear actin is involved in the activation of CSF-1 gene transcription. Cell Biol. Int. 28: 511-516.

157. Stapulionis R., Kolli S., and Deutscher M.P. 1997. Efficient mammalian protein synthesis requires an intact F-actin system. J. Biol. Chem. 272: 2498024986.

158. Steinmetz M.O., Hoenger A., Tittmann P., Fuchs K.H., Gross H., and Aebi U. 1998. An atomic model of crystalline actin tubes: combining electron microscopy with X-ray crystallography. J. Mol. Biol. 278: 703-711.

159. Steinmetz M.O., Stoffler D., Hoenger A., Bremer A., and Aebi U. 1997. Actin: from cell biology to atomic detail. J. Struct. Biol. 119: 295—320.

160. Stitou S., Diaz de la Guardia R., Jimenez R., and Burgos M. 1999. Isolation of a species-specific satellite DNA with a novel CENP-B-like box from the North African rodent Lemniscomys barbarus. Exp. Cell Res. 250: 381-386.

161. Strauss F. and Varshavsky A. 1984. Aprotein binds to a satellite DNA repeat at three specific sites that would be brought into mutual proximity by DNA folding in the nucleosome. Cell. 37: 889-901.

162. Sugimoto K, Yata H, Muro Y, and Himeno M. 1994. Human centromere protein С (CENP-C) is a DNA-binding protein which possesses a novel DNAbinding motif. J. Biochem. (Tokyo) 116: 877-881

163. Sugimoto K., Shibata A., and Himeno M. 1998. Nucleotide specificity at the boundary and size requirement of the target sites recognized by human centromere protein В (CENP-B) in vitro. Chromosome Res. 6: 133-140

164. Suzuki N., Nakano M., Nozaki N., Egashira S., Okazaki Т., and Masumoto H. 2004. CENP-B Interacts with CENP-C domains containing Mif2 regions responsible for centromere localization. J. Biol. Chem. 279: 5934-5946.

165. Taniura H, Yoshikawa K. 2002. Necdin interacts with the ribonucleoprotein hnRNP U in the nuclear matrix. J Cell Biochem. 84: 545-55.

166. Therkelsen A. J.,- Nielsen A, • and Kolvraa S. 1997. Localisation of the classical DNA satellites on human chromosomes as determined by primed in situ labelling (PRINS). Hum. Genet. 100: 322-326.

167. Trowell H.E., Nagy A., Vissel В., and Choo K.H.A. 1993. Long-range analyses of the centromeric regions of human chromosomes 13, 14, and 21: identification of a narrow domain containing two key centromeric DNA elements. Hum. Mol. Genet 2: 1639-1649.

168. Uchiyama S, Kobayashi S, Takata H, Ishihara T, Sone T, Nirasawa T, Takao T, Matsunaga T and Fukui K. 2004. Proteomic analysis of human metaphase chromosome. Chrom Res. 12, s. 1: 166.

169. Ulanovsky L.E. and Trifonov E.N. 1987. Estimation of wedge components in curved DNA. Nature 326: 720-722.

170. Verdel A., Jia S., Gerber G., Sugiyama Т., Gygi S., Grewal S.I.S., and Moazed D. 2004. RNAi-Mediated Targeting of Heterochromatin by the RITS Complex. Science. 303: 672-676.

171. Vig B.K. and Willcourt M. 1998. Decondensation of pericentric heterochromatin alters the sequence of centromere separation in mouse cells. Chromosoma. 107: 417-423.

172. Vissel B. and Choo K.H.A. 1989. Mouse major (gamma) satellite is highlyconserved and organized into extremely long tandem arrays: implications for recombination between nonhomologous chromosomes. Genomics. 5: 407-414.

173. Volpi T.A., Kidner C., Hall I.M., Teng G., Grewal S.I., and Martienssen R.A. 2002. Regulation of heterochromatic silencing and histone H3 Iysine-9 methylation by RNAi. Science. 297: 1833-1837.

174. Waselle L, Coppola T, Fukuda M, Iezzi M, El-Amraoui A, Petit С and Regazzi R. 2003. Involvement of the Rab27 Binding Protein Slac2c/MyRIP in Insulin Exocytosis. Mole Biol Cell 14:4103-4113

175. Wevrick R. and Willard H. F. 1991. Physical map of the centromeric region of human chromosome 7: relationship between two distinct alpha satellite arrays. Nucleic Acids Res. 19: 2295-2301.

176. Wichman HA, Van den Bussche RA, Hamilton MJ, Baker RJ. 1992. Transposable elements and the evolution of genome organization in mammals. Genetica. 86: 287-93.

177. Whitelaw C.B.A., Grolli S., Accornero P., Donofrio G., Farini E., and Webster J. 2000. Matrix attachment region regulates basal P-lactoglobulin transgene expression. Gene. 244: 73-80.

178. Willard H.F. 1991. Evolution of alpha satellite. Curr. Opin. Genet. Dev. 1: 509-514.

179. Willard H.F. and Waye J.S. 1987. Chromosome-specific subsets of human alpha satellite DNA: analysis of sequence divergence within and between chromosomal subsets and evidence for an ancestral pentameric repeat. J Mob Evol 25:207-217.

180. Wong A.K. and Rattner J.B. 1988. Sequence organization and cytological localization of the mouse minor satellite of mouse. Nucleic Acids Res. 16: 11645-11661.

181. Wong A.K., Biddle F.G., and Rattner J.B. 1990. The chromosomal distributionof the major and minor satellite is not conserved in the genus Mus. Chromosoma. 99: 190-195.

182. Wu H. and Crothers D.M. 1984. The locus of sequence-directed and protein induced DNA bending. Nature. 308: 509-513.

183. Yan P.Y., Eulenstein O., Vingron M., and Bork P. 1998. Towards detection of orthologues in sequence databases. Bioinformatics. 14: 285-289.

184. Zebarjadian Y., King Т., Fournier M.J., Clarke L., and Carbon J. 1999. Point mutations in yeast CBF5 can abolish in vivo pseudouridylation of rRNA. Mol. Cell Biol. 19: 7461-7472.

185. Zechel K. 1980. Isolation of polymerization-competent cytoplasmic actin by affinity chromatography on immobilized DNAse I using formamide as eluant. Eur. J. Biochem. 110: 343-348.

186. Zhang S., Kohler C., Hemmerich P., and Grosse F. 2004. Nuclear DNA helicase II (RNA helicase A) binds to an F-actin containing shell that surrounds the nucleolus. Exp. Cell Res. 293: 248-258.

187. Zhao K., Wang W., Rando O.J., Xue Y., Swiderek K., Kuo A., and Crabtree G.R. 1998. Rapid and phosphoinositol-dependent binding of the SWI/SNF-like BAF complex to chromatin after T lymphocyte receptor signaling. Cell. 95: 625636.

188. Zhao X., Li ZH, Terns RM, Terns MP and Yu UT. 2002. An H/ACA guide RNA directs U2 pseudouridylation at two different sites in the branchpoint recognition region inXenopus oocytes. RNA. 8:1515-1525.

189. Zhen Y.Y., Libotte Т., Munck M., Noegel A.A., and Korenbaum E. 2002.

190. NUANCE, a giant protein connecting the nucleus and actin cytoskeleton. J. Cell Sci. 115: 3207-3222.

191. Zong R.T., Das C., and Tucker P.W. 2000. Regulation of matrix attachment region-dependent, lymphocyte-restricted transcription through differential localization within promyelocytic leukemia nuclear bodies. EMBO J. 19: 41234133.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.