Взаимодействие алкилоксибензолов - ауторегуляторных d1-факторов микроорганизмов с ДНК тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.07, кандидат биологических наук Давыдова, Ольга Константиновна

• Давыдова, Ольга Константиновна
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Давыдова, Ольга Константиновна

Список сокращений.

Введение.

Глава 1. Обзор литературы. Ауторегуляторные dj-факторы микроорганизмов и возможность их воздействия на генетический аппарат бактериальной клетки.

1.1. Многообразие внеклеточных ауторегуляторных di-факторов микроорганизмов и их влияние на бактериальную клетку.

1.2. Основные закономерности взаимодействия низкомолекулярных лигандов с ДНК.

Глава 2. Материалы и методы исследований.

2.1. Объекты исследования. Приготовление образцов.

2.2. Оптические методы.

2.2.1. Измерение спектров поглощения.

2.2.2. Регистрация спектров люминесценции.

2.2.3. Термическая денатурация ДНК и измерение оптической плотности.

2.3. Капиллярная вискозиметрия.

2.4. Электрофорез в агарозном геле.

2.5. Методы микроскопии.

2.5.1. Атомно-силовая микроскопия.

2.5.2. Сканирующая электронная микроскопия.

2.6. Методы статистической обработки результатов.

Глава 3. Доказательства взаимодействия ауторегуляторных с^-факторов с

3.1. Гипохромный эффект при взаимодействии di-факторов с ДНК

3.2. Определение характера взаимодействия di-факторов с ДНК люминесцентным методом.

3.3. Визуализация комплексов ДНК с di-факторами.

3.4. Количественная оценка связывания молекул di-факторов с ДНК.

3.5. Конформационный В—>А-переход молекул ДНК в присутствии di-факторов при изменении относительной влажности.

Глава 4. Устойчивость ДНК к экстремальным воздействиям в присутствии di-факторов.

4.1. Изменение температуры плавления ДНК в присутствии dr факторов.

4.2. Чувствительность ДНК к УФ-облучению в присутствии dr факторов.

4.2.1. Влияние УФ-облучения на линейные молекулы ДНК в присутствии di4>aKTopoB.

4.2.2. Влияние УФ-облучения на кольцевые молекулы ДНК в присутствии dj.факторов.

4.3 Длительное сохранение физико-химических свойств ДНК в присутствии dj. факторов.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Взаимодействие алкилоксибензолов - ауторегуляторных d1-факторов микроорганизмов с ДНК»

Общая характеристика работы

Актуальность темы исследования

Ауторегуляторные di-факторы микроорганизмов, по своей химической природе относящиеся к производным алкилоксибензолов (АОБ), в последние десятилетия стали предметом интенсивного изучения (Демкина Е.В., Соина B.C., Эль-Регистан Г.И., 2000, Мулюкин A.JL и др., 2005).

Первым из выявленных механизмов влияния АОБ на метаболическую активность и физиологическое состояние бактериальных клеток стало их взаимодействие с мембранными липидами (Эль-Регистан Г.И. и др., 1979, Reusch R.N., Sadoff H.L., 1983), следствием чего является увеличение микровязкости цитоплазматической мембраны, изменение её проницаемости для моновалентных ионов и следующее за этим обезвоживание клетки (Капрель-янц А.С. и др., 1985). Эффект взаимодействия АОБ с ферментными белками (Беспалов М.М. и др., 2000) проявляется в изменении скорости катализа с одновременным существенным повышением устойчивости белковых глобул к различным экстремальным воздействиям (Колпаков А.И., 2000). На клеточном уровне результатом взаимодействия АОБ с биополимерами и надмолекулярными структурами является контроль обменных процессов, включая выраженное ингибирование метаболизма и образование цистоподобных покоящихся форм микроорганизмов (Эль-Регистан Г.И. и др., 1979), характеризующихся повышенной резистентностью к различным стрессорным воздействиям (Пронин С.В. и др., 1982, Демкина Е.В. и др., 2000).

В то же время, как формирование анабиотического состояния, так и повышение стрессоустойчивости клеток, предполагают стабилизацию основного носителя генетической информации - ДНК - с приобретением ей устойчивости к повреждающему воздействию широкого спектра абиотических и биотических факторов (Setlow Р., 1995, Azam Т.A. et al., 1999). При этом АОБ в силу особенностей своего химического строения являются одними из достаточно вероятных кандидатов на эту роль.

Однако, имеющиеся данные как о возможности взаимодействия АОБ с ДНК, так и о результатах подобного контакта до настоящего времени немногочисленны, а иногда и противоречивы. С одной стороны, описан повреждающий эффект АОБ на ДНК, включающий Си(П)-зависимое расщепление ДНК с ингибированием её репарации (Starck S.R., Deng J.Z., Hecht S.M., 2000), а также мутагенное действие АОБ на клетки про- и эукариот (Маргулис А.Б. и др., 2005). С другой стороны, хорошо документированным является антимутагенное действие АОБ (Gasiorowski К., Brocos В., 2001), а также связываемый с их воздействием эффект компактизации нуклеоида в покоящихся бактериальных клетках (Мулюкин A.J1. и др., 2005), сопровождающийся изменением эла-стовязкости ДНК.

В пользу актуальности исследования взаимодействия АОБ с ДНК говорят и перспективы применения полученных результатов для совершенствования методов направленного воздействия па метаболические процессы в бактериальных клетках и их генетический аппарат. Кроме того, актуальным представляется и исследование процессов формирования функциональных надмолекулярных структур на основе ДНК и АОБ, потенциально востребованных в таких перспективных областях как биотехнология и биоинженерия.

Цель и задачи исследования

Цель работы - исследование взаимодействия алкилоксибензолов - химических аналогов ауторегуляторных di-факторов микроорганизмов с ДНК, а также оценка последствий подобного взаимодействия.

Для достижения этой цели были поставлены и последовательно решены следующие задачи:

1. Изучить возможность прямого взаимодействия алкилоксибензолов -химических аналогов ауторегуляторных di-факторов микроорганизмов, различающихся строением и биологической активностью, с ДНК.

2. Визуализировать результат взаимодействия структурно различных АОБ с ДНК.

3. Определить конформационное состояние ДНК в присутствии структурно различающихся АОБ при изменении относительной влажности.

4. Исследовать влияние АОБ на чувствительность ДНК к экстремальным факторам (температура, УФ-облучение), а также динамику изменения физико-химических свойств ДНК в водных растворах в присутствии АОБ.

Научная новизна

На основании анализа ряда физико-химических характеристик ДНК в присутствии синтетических аналогов ауторегуляторных di-факторов микроорганизмов впервые установлен факт прямого взаимодействия между этими молекулами, что расширяет список биополимеров бактериальной клетки, способных устанавливать контакт с АОБ.

Изучение флуоресцентных характеристик структурно различных АОБ в присутствии ДНК, а также поведения флуоресцентного зонда пирена в смесях ДНК-АОБ показали, что взаимодействие между данными молекулами может вести к формированию вокруг ДНК гидрофобного окружения. Впервые показано, что в результате взаимодействия одного из наиболее биологически активных АОБ - гексилрезорцина - на ДНК формируются устойчивые мицелло-подобные наноструктуры. При этом развивающееся во времени увеличение подобных образований и их слияние в более крупные агрегаты соответствует картине компактизации нуклеоида бактериальной клетки при воздействии АОБ.

Установлено влияние химических аналогов ауторегуляторных dp факторов микроорганизмов на конформационную подвижность ДНК при уменьшении относительной влажности, результатом которого является замедление В—>А-перехода в присутствии метилрезорцина и его ускорение в присутствии тирозола и гексилрезорцина, что может быть одной из причин метаболической инертности ДНК в покоящихся клетках микроорганизмов.

Выявлено повышение температуры плавления ДНК в присутствии АОБ, а также защитное действие последних на линейные и кольцевые молекулы ДНК при УФ-облучении, что является экспериментальным объяснением высокой УФ- и терморезистентности покоящихся форм микроорганизмов, образование которых индуцируется АОБ. Показан факт длительного сохранения вязкостных и электрофоретических свойств полимерных молекул ДНК в водных растворах в присутствии ауторегуляторных di-факторов, что моделирует процесс консервации генетического материала в цитозоле покоящихся клеток микроорганизмов.

Практическая значимость

Полученные результаты, свидетельствующие о формировании вокруг нитей ДНК оболочек из химических аналогов ауторегуляторных di-факторов микроорганизмов, изолирующих их от водного окружения, потенциально могут быть использованы в нескольких областях современной микробиологии, биохимии и биоинженерии, а именно:

- при разработке методик консервации генетического материала бактериальных клеток, позволяющих сохранять их ДНК в нативных условиях;

- при создании частиц для трансфекции и доставки лекарственных препаратов или плазмидной ДНК в клетки про- и эукариот.

Одной из возможных технологий также является способ получения надмолекулярных композитов из молекул гексилрезорцина и ДНК, характеризующихся взаимноупорядоченным расположением, на который получено решение о выдаче патента на изобретение по заявке №2005110818/13 от 13.04.2005.

На защиту выносятся следующие положения:

1. Алкилоксибензолы - химические аналоги ауторегуляторных dr факторов микроорганизмов взаимодействуют с ДНК. Это взаимодействие носит различный характер в зависимости от химического строения ф-факторов, их молярного соотношения с ДНК и времени совместной инкубации. При определённых условиях в присутствии одного из ауторегуляторных di-факторов (гексилрезорцина) на нитях ДНК образуются упорядоченные надмолекулярные структуры.

2. Взаимодействие с химическими аналогами ауторегуляторных dr факторов влияет на скорость конформационного В—*А-перехода ДНК при снижении относительной влажности воздуха и оказывает протективное действие на ДНК, заключающееся в повышении температуры её плавления, защите от УФ-облучения и замедлении гидролитических процессов.

Публикации

Основные результаты изложены в 12 печатных работах, в числе которых 4 статьи в рецензируемых журналах, рекомендуемых ВАК для публикации результатов диссертационных исследований.

Апробация работы

Результаты исследований обсуждались на международной конференции «Молодая наука - XXI веку» (Иваново, 2001); III, VI и VIII международных конференциях «Опто-, наноэлектроника, нанотехнологии и микросистемы» (Ульяновск, 2001, 2004 и 2006), III межрегиональной конференции молодых учёных «Стратегия взаимодействия микроорганизмов и растений с окружающей средой» (Саратов, 2006), международной конференции «Физиология микроорганизмов в природных и экспериментальных системах» (Москва, 2006).

Структура и объём диссертации

Диссертация состоит из введения, четырёх глав, заключения, списка использованной литературы из 194 источников, включает 127 страниц машинописного текста, в том числе 28 рисунков и 4 таблицы.

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Давыдова, Ольга Константиновна

Выводы

1. Показано прямое взаимодействие алкилоксибензолов -химических аналогов ауторегуляторных di-факторов микроорганизмов с ДНК, результат которого зависит от их химической структуры и используемой концентрации и проявляется в изменении комплекса физико-химических свойств данного биополимера.

2. Установлен факт агрегации молекул гексилрезорцина вокруг нитей ДНК, регистрируемый при концентрациях ниже его критической концентрации мицеллообразования и ведущий к формированию вокруг ДНК гидрофобного окружения.

3. Визуализированы надмолекулярные образования, формирующиеся на нитях ДНК в присутствии гексилрезорцина и исследована динамика их роста, согласующаяся с процессом компактизации нуклеоида в покоящихся клетках микроорганизмов, образование которых инициируется АОБ.

4. Выявлено влияние алкилоксибензолов различной структуры на конформационный В—>А-переход в молекулах ДНК при уменьшении относительной влажности воздуха, выражающееся в его замедлении в присутствии метилрезорцина и ускорении в присутствии тирозола и гексилрезорцина, что является одним из объяснений биологической инертности ДНК в покоящихся клетках микроорганизмов.

5. Зафиксировано увеличение температуры плавления ДНК в присутствии химических аналогов ауторегуляторных di-факторов, что является одним из механизмов формирования высокого уровня терморезистентности покоящихся клеток микроорганизмов.

6. Обнаружен эффект защиты линейных и кольцевых молекул ДНК от повреждающего действия УФ-излучения в присутствии химических аналогов ауторегуляторных di-факторов микроорганизмов.

7. Показано длительное сохранение физико-химических свойств ДНК в водных растворах в присутствии алкилоксибензолов, моделирующее консервацию генетического материала бактериальных клеток при переходе в покоящееся состояние.

Заключение

На протяжении двух последних десятилетий интенсивно исследуются процессы образования покоящихся форм микроорганизмов, обеспечивающих их длительное сохранение в среде обитания в неоптимальных условиях. Важным прорывом в данном направлении явилось выявление ведущей роли в этом процессе ауторегуляторных di-факторов, по своей химической природе относящихся к алкилоксибензолам.

Представленный в настоящей работе материал, по нашему мнению, существенно дополняет имеющиеся сведения о природе образования покоящихся форм, а именно объясняет события, происходящие при этом с генетическим аппаратом бактериальных клеток. Разумеется, мы не утверждаем, что полностью изучены все особенности взаимодействия dr факторов с ДНК. Скорее наоборот, полученные результаты создают основу для проведения дальнейших фундаментальных и прикладных исследований, в первую очередь, направленных на разработку методик консервации генетического материала, а также создание частиц для трансфекции и доставки ДНК в клетки про- и эукариот.

Обобщая полученные при проведении данной работы результаты, ещё раз обратим внимание на следующие основные моменты.

Исследование взаимодействия ауторегуляторных di-факторов, представленных АОБ, с ДНК методом спектрофотометрии показало, что спектры поглощения растворов АОБ в присутствии ДНК проявляют гипохром-ный эффект, заключающийся в уменьшении поглощения смеси по сравнению с суммой спектров отдельных компонентов. Подобный гипохромизм нарастал с увеличением времени инкубации растворов, концентрации АОБ, а также зависел от химического строения последних. Объяснением наблюдаемых спектральных изменений может являться усиление структурированности в поглощающей системе, анализ которой должен внести окончательную ясность в характер взаимодействия между молекулами ДНК и di-факторов.

В то же время, определенные акценты в этом вопросе расставило проведенное нами изучение взаимодействия АОБ с ДНК с использованием метода флюориметрии, позволившее зарегистрировать развивающееся во времени смещение максимума флюоресценции АОБ в коротковолновую область с одновременным увеличением интенсивности. При этом подобные изменения, интерпретируемые как уменьшение полярности «ячейки» в которой находится флуорофор, свидетельствуют в пользу взаимодействия ал-кильных радикалов с внутренними гидрофобными областями молекулы ДНК.

Введение в данную систему флуоресцентного зонда пирена, спектральные характеристики которого обладают высокой чувствительностью к гидрофобности микроокружения, позволило получить и дополнительные свидетельства в пользу подобного характера взаимодействия АОБ с ДНК. При этом в присутствии наиболее активного АОБ - гексилрезорцина было зарегистрировано изменение соотношения интенсивностей вибронных компонент спектра пирена, развивающееся при концентрациях ГР существенно уступающих его ККМ. Т.о. общий результат изучения флуоресцентных характеристик АОБ при взаимодействии с ДНК может быть интерпретирован как формирование мицеллоподобных наноструктур из молекул АОБ вокруг нити ДНК, выступающей в этом случае в качестве своеобразного «катализатора» мицеллобразования.

Непосрественная визуализация подобных структур была проведена нами с помощью метода АСМ, позволившего зафиксировать образование на нитях ДНК сферических мицеллоподобных структур из молекул ГР. Дальнейшее же увеличение времени инкубации раствора ДНК+ГР вело к слиянию образуемых ими комплексов в утолщенные разветвлённые образования, объединяемые в точках пересечения описанными выше мицеллоподобными наноструктурами. При этом принципиально важно, что наблюдаемая картина оказывалась визуально сходной с явлением компактизации нуклеоида в покоящихся клетках бактерий, образование которых индуцируется АОБ.

На основании описанных выше результатов гипотетическая модель взаимодействия между макромолекулой биополимера и низкомолекулярными АОБ развивается в три основных этапа. На первом этапе (часы, сутки) происходит комплексообразование ДНК с АОБ, в основном, за счёт взаимодействий алкильных радикалов АОБ с гидрофобными участками макромолекулы. На втором этапе (к 2-3 неделе) в локусах формирования комплексов ДНК-АОБ, происходит локальное повышение концентрации АОБ, превышающую его ККМ, что результируется в образовании на ДНК видимых в АСМ мицеллоподобных наноструктур. В данном случае, однако, речь идет об особенностях этого процесса, происходящего не в растворе при достижении ККМ, а при ее локальном превышении в отдельных участках линейной молекулы ДНК, которые становятся своеобразными «ядрами конденсации» для молекул АОБ. На последнем третьем этапе на поздних сроках инкубации аранжированные низкомолекулярным лигандом (АОБ) молекулы ДНК начинают взаимодействовать друг с другом, что приводит к формированию утолщенных и протяженных структур, состоящих из множества параллельно расположенных нитей ДНК, что визуализируется на микрофотографиях как компактизация ДНК.

Прикладные аспекты полученных результатов определяются возможностью создания упорядоченных надмолекулярных композитов на основе молекул АОБ и ДНК, представляющих собой «кабельные» структуры, в составе которых молекулы ДНК характеризуются взаимно упорядоченным параллельным расположением, будучи объединёнными единым «чехлом» из молекул АОБ (положительное решение о выдаче патента на изобретение на «Способ получения надмолекулярных композитов» по заявке №2005110818/13 от 13.04.2005). При этом потенциальной сферой использования подобных композитов является их применение в ряде биотехнологических и нанотехнологических устройств, а также создание на их основе частиц для трансфекции.

Полученные результаты, свидетельствующие о прямом взаимодействии АОБ с ДНК с формированием надмолекулярных комплексов также явились основанием для постановки вопроса о последствиях подобного взаимодействия для конформационного состояния ДНК, а также её устойчивости к некоторым экстремальным воздействиям.

Изучение конформационных изменений в молекуле ДНК при снижении относительной влажности методом ИК-спектроскопии позволило констатировать различный характер подобных изменений в присутствии АОБ. При этом оценка интенсивности В—>А перехода позволила сделать вывод о его замедленном характере в присутствии MP и более быстром в присутствии Т. На этом фоне особенность эффекта ГР является то, что он оказывал стимулирующее действие на В—» А переход ДНК при низких значениях относительной влажности. Биологическая значимость полученных результатов подтверждается тем, что конформация ДНК определяет биологическую активность данной макромолекулы in vivo. В вегетативных клетках ДНК преимущественно находится в В-форме, при превращении же клеток в споры (один из видов покоящегося состояния) она переходит в свою А-конформацию, характеризующуюся повышенной устойчивостью к ряду внешних факторов. Таким образом, поиск веществ, способных модифицировать интенсивность В—» А перехода представляется одним из подходов к управлению функциональным состоянием бактериальных клеток.

Изучение процесса термической денатурации ДНК в присутствии АОБ позволило зарегистрировать повышение тугоплавкости ДНК, зависящее от химической структуры АОБ, их концентрации и времени совместной инкубации с ДНК. Полученные данные хорошо согласуются с представлениями о высоком уровне терморезистентности покоящихся форм микроорганизмов, переход в которые индуцируется АОБ.

Ещё одним важным абиотическим фактором устойчивость к которому значима для длительного сохранения микроорганизмов является ультрафиолетовое облучение. При этом основной мишенью для ультрафиолета как раз и является ДНК, интенсивно поглощающая в данном диапазоне длин волн. В присутствии АОБ различные по происхождению ДНК характеризовались повышенным уровнем устойчивости к УФ-облучению. В качестве возможных механизмов протекторного действия АОБ следует указать возможность их экранирующего действия, а также меньшую чувствительность А-формы ДНК к УФ, возникающей в присутствии АОБ.

На завершающем этапе исследования были проанализированы некоторые физико-химические свойства ДНК и комплексов ДНК+АОБ при их длительной инкубации в водных растворах, что моделировало нахождение генетического материала в цитозоле покоящихся клеток. Происходящие в этих условиях процессы традиционно связываются с возможностью спонтанного гидролиза фосфодиэфирных связей в сахарофосфатном остове ДНК, ведущее к распаду биополимера на короткоцепочечные фрагменты. Данные о вязкостных свойствах растворов и электрофоретической подвижности ДНК в присутствии АОБ показали их стабилизирующее действие, заключающееся в сохранении исследуемых физико-химических характеристик. Выраженность подобного эффекта вновь зависела от концентрации и особенностей химического строения АОБ. При этом длительная консервация ДНК в присутствии АОБ представляется ещё одним из необходимых условий для сохранения бактериальной клетки в покоящемся состоянии.

Обобщённые представления о выявленных нами эффектах, обнаруживаемых при взаимодействии ДНК с АОБ, а также возможные объяснения их возникновения приведены в табл. 4.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Давыдова, Ольга Константиновна, 2006 год

1. Aaronson S. Chemical Communication at the Microbial Level. Florida: CRC Press, Inc. Boca Raton. 1981. V.l. P. 189; V.2. P. 203.

2. Хохлов A.C. Низкомолекулярные микробные ауторегуляторы. M. Наука. 1988, С. 270.

3. Олескин А.В. Надорганизменный уровень взаимодействия в микробных популяциях//Микробиология. 1993. Т.62. № 3. С.389-403.

4. Oleskin A.V. Social behaviour of microbial populations // J. Basic Microbiol.1994. V.34.N6. P.425-439.

5. Смирнов С.Г. Этология бактерий новое направление в исследовании прокариотов // Физико-химические исследования патогенных энтеро-бактерий в процессе культивирования. Иваново. ИвГУ. 1985. С.5-10.

6. Олескин А.В., Ботвинко И.В., Цавкелова Е.А. Колониальная организация и межклеточная коммуникация у микроорганизмов // Микробиология. 2000. Т. 69. № 3. С. 309-327.

7. Shapiro J.A. The significances of bacterial colony patterns // BioEssays.1995. V. 17. N7. P. 597-607.

8. Gray K.M. Intercellular communication and group behavior in bacteria // Trends Microbiol. 1997. V.5. N 5. P.184-188.

9. Олескин А.В. Экологически важные свойства популяций микроорганизмов // Соросовский образовательный журнал. 2001. Т.7. № 8. С. 7-12.

10. Whittaker R. Н., Feeny P. P. Allelochemics: chemical interactions between species // Science. 1971. V. 171. P. 757—770.

11. Law J.H., Regnier F.E. Pheromones // Annu. Rev. Biochem. 1971. V. 40. P. 533-548.

12. Светличный В.А., Эль-Регистан Г.И., Романова А.К., Дуда В.И. Характеристики ауторегуляторного фактора d2, вызывающего автолиз клеток Pseudomonas carboxydoflava и Bacillus cereus // Микробиология. 1983. Т.52. № 1. С.33-38.

13. Бухарин О.В., Гинцбург А.Л., Романова Ю.М., Эль-Регистан Г.И. Механизмы выживания бактерий. М.: Медицина. 2005. С. 367.

14. Запрометов М.Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука. 1993. С. 272.

15. Рогинский В.А. Фенольные антиоксиданты: реакционная способность и эффективность. М.: Наука. 1988. С. 247.

16. Kozubek A., Tyman J.H.P. Resorcinolic lipids, the natural non-isoprenoid phenolic amphiphiles and their biological activity // Chem. Rev. 1999. V. 99. №1. P. 1-31.

17. Батраков С.Г., Эль-Регистан Г.И., Придачина H.H., Ненашев В.А., Козлова А.Н., Грязнова М.Н., Золотарёва И.Н. Тирозол ауторегуляторный фактор dj дрожжей Saccharomyces cerevisiae // Микробиология. 1993. Т. 62. №4. С. 633-638.

18. Reusch R.N., Sadoff H.L. 5-n-Alkylresorcinols from encysting Azotobacter vinelandii: isolation and characterization. // J. Bacteriol. 1979. V. 139. P. 448-453.

19. Reusch R.N., Sadoff H.L. Novel lipid components of the Azotobacter vinelandii cyst membrane. //Nature. 1983. V. 302. P.268-270.

20. Su C.-J., Reusch R.N., Sadoff H.L. Isolation and characterization of several unique lipids from Azotobacter vinelandii cyst. // J. Bacterid. 1981. V. 147. P. 80-90.

21. Батраков С.Г., Придашина H.H., Кругляк Е.Б., Новогрудская Е.Д. Фенольные липиды из Azotobacter chroococcum // Хим. прир. соед. 1977. №4. С. 494-499.

22. Осипов Г.А., Эль-Регистан Г.И., Светличный В.А., Козлова А.Н., Дуда

23. B.И., Капрельянц А.С., Помазанов В.В. Химическая природа ауторегу-ляторного фактора dl в Pseudomonas carboxydoflava // Микробиология. 1985. Т. 54. С. 186-190.

24. Tsuge N., Mizokami М., Imai S., Shimazu A., Seto H. Adipostatins A and B, new inhibitors of glycerol-3phospate dehydrogenase // J. Antibiot. 1992. V. 45. P. 886-891.

25. Эль-Регистан Г.И., Акилова Н.А., Хохлова Ю.М., Дужа М.В., Комарова Г.В. Ауторегуляторы начальных стадий развития Rhodotorula gracilis // Реферат научных сообщений 3-й Всес. биохим. съезда. Рига. 1974. Т.2.1. C.16.

26. Эль-Регистан Г.И., Козлова А.Н., Комарова Г.В., Дужа М.В., Конова И.В., Красильников Н.А. Биология лучистых грибков. М.: «Наука». 1975. С.130.

27. Демкина Е.В., Соина B.C., Эль-Регистан Г.И., Звягинцев Д.Г. Репродуктивные покоящиеся формы Arthrobacter globiformis // Микробиология. 2000. Т. 69. №3. С. 377-382.

28. Демкина Е.В., Соина B.C., Эль-Регистан Г.И. Образование покоящихся форм Arthrobacter globiformis в автолизирующихся суспензиях // Микробиология. 2000. Т. 69. №3. С. 383-388.

29. Пронин С.В., Эль-Регистан Г.И., Шевцов В.В., Дуда В.И. Устойчивость покоящихся цистоподобных форм Bacillus cereus к воздействию высокой температуры, ультрафиолетовых лучей и низкомолекулярных спиртов //Микробиология. 1982. Т. 51. №2. С. 314-317.

30. Браун Г., Уолкен Дж. Жидкие кристаллы и биологические структуры. -М.: Мир. 1982. С. 190.

31. Халатур П.Г. Самоорганизация полимеров // Соросовский образовательный журнал. 2001. Т. 7. №4. С. 36-43.

32. Дуда В.И., Королёв Ю.Н., Эль-Регистан Г.И., Дужа М.В., Телегин H.J1. Распределение и пространственная упорядоченность молекул биополимеров в покоящихся бактериальных спорах // Микробиология. 1978. Т. 47. №4. С. 750-755.

33. Бабусенко Е.С., Эль-Регистан Г.И., Градова Н.Б., Козлова А.Н., Осипов Г.А. Исследование мембранотропных ауторегуляторных факторов ме-танокисляющих бактерий // Успехи химии. 1991. Т. 60. №11. С. 23622372.

34. Комолова Г.С., Горская И.А., Каверинская Т.В., Шевелева И.Д. Влияние алкилрезорцина на дыхание, синтез нуклеиновых кислот и белка в изолированных тимоцитах//Биохимия. 1989. Т. 54. №11. С. 1847-1851.

35. Stasiuk М., Kozubek A. Modulation of 5-n-alkylresorcinol hemolytic properties by divalent cations. Dependence of the effect of cations on alkylresorci-nol structure // Cellular & Molecular Biology Letters. 1997. V. 2. P. 77-87.

36. Kozubek A., Gubernator J., Przeworska E., Stasiuk M. Plarosomes, novel efficient phospolipid-amphiphile vesicles for drug delivery // Acta Biochimica Polonica. 2000. V. 47. №3. P. 639-649.

37. Марголис Л.Б., Бергельсон Л.Д. Липосомы и их взаимодействие с клетками. М.: Наука. 1986. С. 240.

38. Kozubek A. Interaction of alkylresorcinols with proteins // Acta Biochim Pol. 1995. V. 42. №2. P. 241-246.

39. Марголис А.Л., Шерстюк С.Ф., Изумрудов В.А. Швядас В.Ю., Зезин А.Б., Кабанов В.А. Фазовые превращения в растворах полиэлектроли-товых комплексов как модель спорообразования // Доклады АН СССР. 1983. Т. 272. № 1.С. 230-233.

40. Степаненко И.Ю. Изучение роли алкилоксибензолов в стрессовом ответе микроорганизмов. Автореф. дис. . канд. биол. наук. М.: ИНМИ РАН, 2005.

41. Kamal-Eldin A., Pouru A., Eliasson C., Aman P. Alkylresorcinols as antioxidants: hydrogen donation and peroxyl radical-scavenging effects // Journal of the Science of Food and Agriculture. 2001. V. 81. №3. P. 353-356.

42. Hladyszowski J., Zubik L., Kozubek A. Quantum Mechanical and Experimental Oxidation Studies of Pentadecylresorcinol, Olivetol, Orcinol and Re-sorcinol // Free Rad. Res. 1998. V. 28. P. 359-368.

43. Gasiorowski K., Szyba K., Brokos В., Kozubek A. Antimutagenic activity of alkylresorcinols from cereal grains. 1996. Cancer Letters. V. 106. P. 109115.

44. Gasiorowski K., Brocos B. DNA repair of hydrogen peroxide-induced damage in human lymphocytes in the presence of four antimutagens. A study with alkaline single cell gel electrophoresis (comet assay) // Cell. Moll. Biol. Lett. 2001. V. 6. P. 897-911.

45. Маргулис А.Б., Ожиганова И.В., Бушманова O.B., Колпаков А.И., Ильинская О.Н. Гексилрезорцин как индуктор хромосомных аберраций в клетках периферической крови мышей // Генетика. 2005. Т. 41. №8. С. 1045-1048.

46. Прозоров А.А. Рекомбинантные перестройки генома бактерий и адаптация к среде обитания // Микробиология. 2001. Т. 70. №5. С. 581-594.

47. Головлёв В.Л. Метастабильность фенотипа у бактерий // Микробиология. 1998. Т. 59. №2. С. 149-155.

48. Милько Е.С., Егоров Н.С. Гетерогенность популяции бактерий и процесс диссоциации. -М.: Изд-во МГУ. 1991. С. 143.

49. Дорошенко Е.В., Лойко И.Г., Ильинская О.И., Колпаков A.M., Горнова И.В., Эль-Регистан Г.И. Характеристика диссоциантов Bacillus cereus, штамм 504 //Микробиология. 2001. Т. 70. №6. С. 811-819.

50. Ильинская О.Н., Колпаков А.И., Шмидт М.А., Дорошенко Е.В., Мулю-кин А.Л., Эль-Регистан Г.И. Роль бактериальных ауторегуляторов роста группы алкилоксибензолов в ответе стафилококков на стрессовые воздействия //Микробиология. 2002. Т. 71. №1. С. 23-29.

51. Ильинская О.Н., Колпаков А.И., Зеленихин П.В., Круглова З.Ф., Чой-даш Б., Дорошенко Е.В., Мулюкин А.Л., Эль-Регистан Г.И. Влияние ау-тоиндукторов анабиоза на геном микробной клетки // Микробиология. 2002. Т. 71. №2. С. 194-199.

52. Hecht S.M. Naturals products that cleave DNA // Pure & Appl. Chem. 1989. V. 61. №3. P. 577-580.

53. Scannell R.T., Barr J.R., Murty V.S., Reddy K.S., Hecht S.M. DNA Strand Scission by Naturally Occurring 5-Alkylresorcinols // J. Am. Chem. Soc. 1988. V. 110. P. 3650-3651.

54. Lytollis W., Scannell R.T., An H., Murty V.S., Reddy K.S., Barr J.R., Hecht S.M. 5-Alkylresorcinols from Hakea trifurcate That Cleave DNA // J. Am. Chem. Soc. 1995. V. 117. P. 12683-12690.

55. Barr J.R., Murty V.S., Yamaguchi K., Singh S., Smith D.H., Hecht S.M. 5-Alkylresorcinols from Hakea amplexicaulis That Cleave DNA // Chem. Res. Toxycol. 1988. V. 1. P. 204-207.

56. Singh U.S., Scannell R.T., An H., Carter B.J., Hecht S.M. DNA Cleavage by Di- and Trihydroxyalkylbenzenes. Characterization of Products and the

57. Roles of 02, Cu(II), and Alkali //J. Am. Chem. Soc. 1995. V. 117. P. 1269112699.

58. Starck S.R., Deng J.Z., Hecht S.M. Naturally occurring alkylresorcinols that mediate DNA damage and inhibit its repair // Biochemistry. 2000. V. 39. №9. P. 2413-2419.

59. Deng J.Z., Starck S.R., Hecht S.M. bis-5-Alkylresorcinols from Panopsis rubescens that inhibit DNA polymerase beta // J. Nat. Prod. 1999. V. 62. №3. P. 477-480.

60. Маргулис А.Б. Низкомолекулярные ауторегуляторные соединения как триггерные молекулы стресса у бактерий. Автореф. дис. . канд. биол. наук. Казань: КГУ, 2005.

61. Кнорре Д.Г., Мызина С.Д. Биологическая химия. М.: Высш. шк. 1998. С.479.

62. Фрайфелдер Д. Физическая биохимия. Применение физико-химических методов в биохимии и молекулярной биологии. -М.: Мир. 1980. С. 584.

63. Дерябин Д.Г. Цитология про- и эукариотов. М: Академия. 2005. С. 239.

64. Филиппович Ю.Б. Основы биохимии. М. Высш. шк. 1993. С. 496.

65. Владимиров Ю.А., Рощупкин Д.И., Потапенко А.Я., Деев А.И. Биофизика.-М.: Медицина. 1983. С. 272.

66. Благой Ю.П. Взаимодействие ДНК с биологически активными веществами (ионами металлов, красителями, лекарствами) // Соросовский образовательный журнал. 1998. № 10. С. 18-24.

67. Зенгер В. Принципы структурной организации нуклеиновых кислот. -М.: Мир. 1987. С. 584.

68. Москва В.В. Водородная связь в органической химии // Соросовский образовательный журнал. 1999. № 2. С. 58-64.

69. Сорокин В.А. Взаимодействие ионов двухвалентной меди с природной ДНК и ее мономерами // Биофизика. 1994. Т. 39. Вып. 6. С. 993-1004.

70. Благой Ю.П., Галкин В.Л., Гладченко Г.О. и др. Металлокомплексы нуклеиновых кислот в растворах. Киев: Наукова думка. 1991. С. 225.

71. Карасёв В.Е., Бабий А.П. Комплексы Cu(II) с дегидратированной спиральной ДНК // Электронный журнал «Исследовано в России», 2003, Т.6, С. 1038-1048. http://zhurnal.ape.relarn.ru/articles/1998/003.pdf

72. Шишниашвили Д.М., Лысцов В.Н., Мошковский Ю.Ш. Об изменениях вторичной структуры ДНК под действием ионов палладия. В сб. Кон-формационные изменения биополимеров в растворах. М.: Наука. 1973. С. 207.

73. Поляничко A.M., Чихиржина Е.В., Андрущенко В.В., Виезер Г., Воробьёв В.И. Спектральные исследования структуры комплексов ДНК сл Iионами Мп в УФ- и ИК-диапазонах // Биофизика. 2005. Т. 50. Вып. 5. С. 810-817.

74. Андроникашвили Э.Л. Малигнизация и изменение некоторых физико-химических свойств биомакромолекул и надмолекулярных структур // Биофизика. 1987. Т. 23. С. 782-799.

75. Бурилков В.Н., Крочик Г.М. Биологическое действие лазерного излучения. Институт хим. генетики. Кишенев: Штиинца, 1989. С. 101.

76. Благой Ю.П., Сорокин В.А., Валеев В.А. Спектральное исследование связывания оснований ДНК с ионами магния и кальция // Молекулярная биология. 1980. Т. 14. Вып.З. С. 595-605.

77. Bielawski К., Bielawska A., Bartulewicz D., Rozanski A. Molecular modeling of the interaction of carbocyclic analogues of netropsin and distamycin with d(CGCGAATTCGCG)2 // Acta Biochimica Polonica. 2000. V. 47. № 3. P. 855-866.

78. Kraubauer R., Fischerlander S., Allen S., Gaub H.E. Mechanical fingerprints of DNA drug complexes // Single Mol. 2002. V. 3. P. 97-103.

79. Ouameur A., Tajmir-Riahi H. Interactions with Biogenic Polyamines and Cobalt(III)hexamine Studied by Fourier Transform Infrared and Capillary Electrophoresis // J. Biol. Chem. 2004. V. 279. № 40. P. 42041-42054.

80. Jary D., Sikorav J.L. Cyclization of globular DNA. Implications for DNA-DNA interactions in vivo // Biochemistry. 1999. V. 38. P. 3223-3227.

81. Lin Z., Wang C., Feng X., Liu M., Li J., Bai C. The observation of the local ordering characteristics of spermidine- condensed DNA: atomic force microscopy and polarizing microscopy studies // Nucl. Acids Res. 1998. V. 26. P. 3228-3234.

82. Стручков B.A., Стражевская Н.Б. Структурные и функциональные аспекты ядерных липидов нормальных и опухолевых клеток // Биохимия. 2000. Т. 65. Вып. 5. С. 620-643.

83. Шабарчина Л.И., Сухоруков Б.И., Шванева Н.В., Коломийцева И.К. // Биофизика. 1975. Т. 20. С. 366-370.

84. Manzoli F.A., Muchmore J.H., Bonora В., Sabioni A., Stefoni S. Interaction between sphingomyelin and DNA // Biochim. Biophys. Acta. 1972. V. 277. P. 251-255.

85. ЮО.Алесенко A.B., Пантаз Э.А., Пушкарёва М.Ю., Русакова С.А., Филиппова Г.Н. //Биохимия. 1993. Т. 58. С. 461-470.

86. Ю1.Шенгелия М.Г., Гачава М.М., Царцидзе М.А., Ламсадзе Б.А. // Биол. науки. 1984. № И. С. 34-36.

87. Жданов Р.И., Дьячков Е.П., Стручков В.А., Стражевская Н.Б., Дьячков П.Н. ДНК-связанные липиды: моделирование взаимодействия ДНК со стеариновой и ненасыщенными жирными кислотами // Известия АН. Серия химическая. 2003. № 9. С. 1794-1800.

88. Стручков В.А., Стражевская Н.Б. ДНК-связанные липиды: состав и возможные функции //Биохимия. 2000. Т. 58. Вып. 8. С. 1154-1175.

89. Сухоруков Б.И., Петров А.И., Казарян P.JL, Кувичкин В.В. Изучение комплексообразования ДНК с катионными амфифильными молекулами методом флуоресцентного зонда // Биофизика. 2000. Т. 45. Вып. 2. С. 245-253.

90. Скуридин С.Г., Дембо А.Т., Ефимов B.C., Евдокимов Ю.М. Жидкокристаллические фазы комплексов ДНК с синтетическими поликатионами // Доклады академии наук. 1999. Т. 365. № 3. С. 400-402.

91. Bloomfield V.A. DNA condensation by multivalent cations // Biopolimers. 1997. V. 44. P. 269-282.

92. Ю8.Тейф В.Б., Ландо Д.Ю. Конденсация ДНК, вызванная адсорбцией ли-гандов. Минск: Технопринт. 2003. С. 116-128.

93. Sikorav J.L., Church G.M. Complementary recognition in condensed DNA: accelerated DNA renaturation//J. Mol. Biol. 1991. V. 222(4). P. 1085-108.

94. Jary D., Sikorav J.L. Cyclization of globular DNA. Implications for DNA-DNA interactions in vivo // Biochemistiy. 1999. V. 38(11). P. 3223-3227.

95. J. Kindt, S. Tzlil, A. Ben-Shaul, and W. M. Gelbart DNA packaging and ejection forces in bacteriophage // Proc. Natl. Acad. USA. 2001. V. 98. P. 13671-13674.

96. Cockell M., Gasser S.M. Nuclear compartments and gene regulation // Curr. Opin. Genet. Develop. 1999. V. 9. P. 199-205.

97. Dobrucki, J., and Darzynkiewicz, Z. Chromatin condensation and sensitivity of DNA in situ to denaturation during cell cycle and apoptosis. A confocal microscopy study // Micron. 2001. V. 32 (7). P. 645-652.

98. Minsky A., Shimoni E., Frenkiel-Krispin D. Stress, order and survival // Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. 2002. V. 3 (1). P. 50-60.

99. S. Levin-Zaidman, J. Englander, E. Shimoni, AK. Sharma, KW. Minton, Minsky A. Ringlike structure of the Deinococcus radiodurans genome: A key to radioresistance? // Science. 2003. V. 299 (5604) P. 254-256.

100. Azam T.A., Iwata A., Nishimura A., Veda S., Ischihama A. Growth phase-dependent variation in protein composition of the Escherichia coli nucleoid // J. Bacteriol. 1999. V. 181. №20. P. 6361-6370.

101. Setlow P. Mechanisms for the prevention of damage to DNA in spores of Bacillus species // Annu. Rev. Microbiol. 1995. V. 49. P. 29-54.

102. Лохман Э.-Р., Михелер А. Связывание органических красителей с нуклеиновыми кислотами и фотодинамический эффект.- В кн.: Физико-химические свойства нуклеиновых кислот. М.: Мир. 1976. С.233-273.

103. Морошкина Е.Б., Сафьянникова М.Г. Взаимодействие ДНК с соединениями феназинового ряда // Биофизика. 1999. Т. 44. № 3. С. 425-429.

104. Li H.J., Crothers D.M. Relaxation studies of proflavine-DNA complex: the kinetics of an intercalation reaction // J. Mol. Biol. 1969. V. 39. P. 461-477.

105. Wakelin L.P.G., Waring M.G. Kinetics of drug-DNA interaction. Dependence of the binding mechanism on structure of the ligand // J. Mol. Biol. 1980. V. 144. P. 183-214.

106. Coury J.E., Anderson J.R., McFail-Isom L., Williams L.D. and Bottomley L.A. Scanning Force Microscopy of Small Ligand-Nucleic Acid Complexes: Tris(o-phenanthroline)ruthenium(II) as a Test for a New Assay // J. Am. Chem. Soc. 1997. 119. P. 3792-3796.

107. Lerman L.S. Structural considerations in the interaction of DNA and acridi-nes // J. Mol. Biol. 1961. V.3.P. 18-30.

108. Gale E.F., Cundliffe F., Reynolds P.E., Richmond M.H., Waring M.J. The molecular Basis of Antibiotic Action. 1972. London: Wiley. P. 102-115.

109. Waring M.J. DNA modification and cancer // Ann. Rev. Biochem. 1981. V. 50. P. 159-92.

110. Berman H.M., Young P.R. The interaction of intercalating drugs with nucleic acids//Annu. Rev. Biophys. Bioeng. 1981. V. 10. P. 87-114.

111. Lee S.L., Debenedetti P.G., Errington J.R., Pethica B.A., Moore D.J. Calo-rimetric and Spectroscopic Study of DNA at Low Hydration // J. Phis. Chem. B. 2004. V. 108. № 9. P. 3098-3106.

112. Сканирующая зондовая микроскопия биополимеров / Под ред. И.В. Яминского. -М.: Научный мир, 1997. С. 87.

113. Reichmann М.Е., Rice S.A., Tomas С.A., Doty P. A further examination of the molecular weight and size of the desoxypentose nucleic acid. // J. Amer. Chem. Soc. 1954. V.76. P. 3047-3053.

114. Молекулярная клиническая диагностика. Методы: Пер. с англ. / Под ред. С. Херрингтона, Дж. Макги. М.: Мир, 1999. С. 558.

115. Falk В.М., Hartman, К.A., Lord, R.C. Hydration of deoxyribonucleic acid. A spectroscopic study of the effect of hydration on the structure of deoxyribonucleic acid // J. Am. Chem. Soc. 1963. V. 85. P. 391-394.

116. Рабек Я. Экспериментальные методы в химии полимеров: в 2-х частях. Ч. 1.-М.: Мир. 1983. С. 384.

117. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот / Под ред. Ю.С. Лазуркина. М.: Наука, 1967. - С. 343.

118. Волькенштейн М.В. Молекулярная биофизика. Т.1 -М.: Наука. 1975. С. 616.

119. Кочетков И.К., Будовский Э.И., Свердлов Е.Д., Симукова Н.А. Турчин-ский М.Ф., Шибаев В.Н. Органическая химия нуклеиновых кислот. 1970. М.: Химия. С. 720.

120. Ашмарин И.П. Молекулярная биология. Избранные разделы. 1974. М.: Медицина. С. 360.

121. Галь Э., Медьеши Г., Верецкеи Л. Электрофорез в разделении биологических макромолекул: Пер. с англ. -М.: Мир, 1982. С.448.

122. Маниатис Т. и др. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование: Пер. с англ. М.: Мир, 1984. С. 480.

123. MO.Engel A., Schoenenberger С.A., Miiller D.J. High resolution imaging of native biological sample surfaces using scanning probe microscopy // Current Opinion in Structural Biology. 1997. №7. P. 279-284.

124. Engel A., Lyubchenko Y. and Miiller D. Atomic force microscopy: a powerful tool to observe biomolecules at work // Trends in Cell Biology. 1999. №9. P. 77-80.

125. You H.X., Lowe C.R. Progress in the application of scanning probe microscopy to biology // Current Opinion in Biotechnology. 1996. №7. P. 78-84.

126. Geisler В., Noll F., Hampp N. Nanodissection And Noncontact Imaging Of Plasmid DNA With An Atomic Force Microscope // Scanning. -2000. V. 22. P. 7-11.

127. Bustamante C., Vesenka J., Tang C., Rees W., Guthold M., Keller R. Circular DNA Molecules imaged in air by scanning force microscopy // Bioochemistry. 1992. -№ 31. - P. 22-26.

128. Галлямов M.O., Яминский И.В. Сканирующая зондовая микроскопия нуклеиновых кислот. М.: Центр перспективных технологий, 1998. - С. 20.

129. Murray M.N., Hansma H.G., Bezanilla М., Sano Т., Ogletree D.F., Kolbe W., Smith C.L., Cantor C.R., Sengler S., Hansma P.K., Salmeron M. Atomic force microscopy of biochemically tagged DNA // Proc.Natl.Acad.Sci. USA. 1993. №90. P.811-3814.

130. Вудраф Д., Делчар Т. Современные методы исследования поверхности.-М.: Мир. 1989. С. 568.

131. Фелдман JL, Майер Д. Основы анализа поверхности и тонких пленок. -М.: Мир. 1989. С. 342.

132. Основы аналитической электронной микроскопии. / под ред. Дж. Грена. Дж. И. Гольштейна, Д.К. Джоя, А.Д. Ромига. М.: Металлургия, 1990. С. 584.

133. Векшин H.JI. Фотоника биологических структур. Пущино: ОНТИ НЦБИ АН СССР, 1988. С. 164.

134. Tinoco I. // J. Amer. Chem. Soc. 1960. V. 82. № 18. P. 4785-4790.

135. Лакович Дж. Основы флуоресцентной спектроскопии. Пер. с англ. М.: Мир. 1986. С. 496.

136. Добрецов Г.Е. Флуоресцентные зонды в исследовании клеток, мембран и липопротеинов. 1989. М.: Наука. С. 276.

137. Гаврилов В.Б., Конев С.В., Калоша И.И. Люминесцентные свойства пи-ронового красного нового молекулярного зонда для исследования белков // Журнал прикладной спектроскопии. 1999. Т. 66. № 3. С. 369374.

138. Kalyanasundaram К., Thomas J.K. Environmental Effects on Vibronic Band Intensities in Pyrene Monomer Fluorescence and Their Application in Studies of Micellar Systems // Journal of the American Chemical Society. 1977. Vol. 99. № 7. P. 2039-2044.

139. Ильинская О.Н., Колпаков А.И., Зеленихин П.В., Круглова З.Ф., Чойдаш Б., Дорошенко Е.В., Мулюкин А.Л., Эль-Регистан Г.И. Влияние аутоин-дуктооров анабиоза бактерий на геном микробной клетки // Микробиология. 2002. Т. 71. №2. С. 194-199.

140. Нечипуренко Ю.Д., Рябоконь В.Ф., Семёнов С.В., Евдокимов Ю.М. Термодинамические модели, описывающие образование «мостиков» между молекулами нуклеиновых кислот в жидких кристаллах // Биофизика. 2003. Т. 48. Вып. 4. С. 635-643.

141. Евдокимов Ю.М. Жидкокристаллические формы нуклеиновых кислот // Вестник РАН. 2003. Т. 73. № 8. С. 712-721.

142. Жижина Г.П., Олейник Э.Ф. Инфракрасная спектроскопия нуклеиновых кислот// Успехи химии. 1972. Т. 41. № 3. С. 474-511.

143. Mohr S., Sokolov N., Не С., Setlow P. Binding of small acid-soluble spore proteins from Bacillus subtilis chanches the conformation of DNA from В to A // Biochemistry. 1991. Vol. 88. P. 77-81.

144. Иванов В.И., Минченкова JI.E. А-форма ДНК: в поисках биологической роли // Молекулярная биология. 1994. Т.28. С. 1258-1271.

145. Taillander Е., Liquier J. Infrared Spectroscopy of DNA // Methods Enzymol. 1992. V. 211. P. 307-335.

146. Sukhorukov B.I., Montrel M.M. Infrared and X-ray diffraction study of the effect of protonation of DNA on its B-to-A transition // Biophys. Chem. 1990 V. 35(1) P. 47-54.

147. Ghomi M., Letellier R., Liquier J., Taillandier E. Interpretation of DNA vibrational spectra by normal coordinate analysis // Int. J. Biochem. 1990. Vol. 22. № 7. P. 691-699.

148. Поляничко A.M., Чихиржина E.B., Андрущенко B.B., Виезер Г., Воробьёв В.И. Спектральные исследования структуры комплексов ДНК с ионами Мп в УФ- и ИК-диапазонах // Молекулярная биофизика. 2005. Т. 50. Вып. 5. С. 810-817.

149. Ouameur A., Tajmir-Riahi Н. Interactions with Biogenic Polyamines and Cobalt(III)hexamine Studied by Fourier Transform Infrared and Capillary Electrophoresis // J. Biol. Chem. 2004. V. 279. № 40. P. 42041-42054.169. http://www.sigmaaldrich.com

150. Монтрель M.M., Сухоруков Б.И. Влияние ионов водорода на Б-А переход в ДНК // Мол. биол. 1989. Т. 23. № 3. С. 699-707.

151. Семёнов М.А., Сухоруков Б.И., Малеев В.Я. Гидратируются ли азотистые основания в ДНК при низких влажностях // Биофизика. 1981. Т. 26. Вып. 6. С. 979-984.

152. Шабарчина Л.И., Монтрель М.М., Савинцев И.В., Сухоруков Б.И. Кон-формационное состояние ДНК в мультислойной плёнке с катионным амфифилом // Биофизическая химия. 2003. Т. 77. № 11. С. 2068-2074.

153. Карасёв В.Е., Бабий А.П. Комплексы Cu(II) с дегидратированной спиральной ДНК // Электронный журнал «Исследовано в России», 2003, Т.6, С. 1038-1048. http://zhurnal.ape.relarn.ru/articles/1998/003.pdf

154. Ivanov V.I., Minchenkova L.E., Minyat Е.Е., Frank-Kamenetskii M.D., Schyolkina A.K. The В to A transition of DNA in solution // 1974. J.Mol.Biol. V. 87. P. 817-833.

155. Nelson R.G., Johnson W.C. Jr. Conformation of DNA in ethylene glycol // 1970. Biochem. Biophys. Res. Commun. V. 41. № 1. P. 211-216.

156. Green. G., Mahler H. Conformational changes of deoxyribonucleic acid and polydeoxynucleotides in water and ethylene glycol. 1971. Biochemistry. V. 10. P. 2200-2216.

157. Гагуа A.B., Маленков Г.Г., Тимофеев В.П., Дудич И.В. Полярность окружения как фактор, определяющий конформацию ДНК // 1978. Молекулярная биология. Т. 12. № 3. С. 669-675.

158. Давыдова О.В., Каргов С.И., Влияние диэлектрической проницаемости растворителя и концентрации ДНК на процесс ее термической денатурации в водно-органических растворах // Вестн. Моск. Ун-та. Сер. 2. Химия. 1999. Т. 40. №3. С. 152-154.

159. Маргулис А.Б., Ильинская О.Н., Колпаков А.И., Эль-Регистан Г.И. Индукция SOS-ответа клетки под действием ауторегуляторных факторов микроорганизмов // Генетика. 2003. Т. 39. №9. С. 1180-1184.

160. Мулюкин А.Л., Луста К.А., Грязнова М.Н., Козлова А.Н., Дужа М.В., Дуда В.И., Эль-Регистан Г.И. Образование покоящихся форм Bacilluscereus и Micrococcus luteus // Микробиология. 1996. Т. 65. № 6. С. 782789.

161. Громов Б.В., Павленко Г.В. Экология бактерий: Учеб. пособие. Л.:Изд-во Ленинградского ун-та, 1989. 248с.

162. Рубин А.Б. Биофизика, в 2-х томах. М.: Высшая школа, 1987.

163. Tyrrell R.M. Induction of pyrimidine dimers in bacterial DNA by 365nm radiation// Photochem. And photobiol. 1973. - Vol. 17. - №1, - P.69-73.

164. Фрайкин Г.Я., Страховская М.Г., Рубин А.Б., Индуцирорванные све-тотм процессы защиты клеток от фотоповреждений // Биохимия. 2000. Т.65. Вып.6. С.865-875.

165. Pospisilova S., Kypr J. UV Light-induced Duplex-to-duplex Crosslinking of DNA Molecules in Aqueous Ethanol Solutions // Photochemistry and Photo-biology. 1998. Vol. 67. №4. P. 386-390.

166. Фрайкин Г.Я. Механизмы УФ-индуцированных деструктивных и фото-модифицирующих реакций у микроорганизмов / Молекулярные механизмы биологического действия оптического излучения. М.: Наука, 1988.-232 с.

167. Vagel A., Roo E. Alkylresorcinols rare chemicals available in bulk // In-nov. Pharm. Tech. 2004. C.94-95.

168. Степаненко И.Ю., Мулюкин A.JI., Козлова А.Н., Николаев Ю.А., Эль-Регистан Г.И. Роль алкилоксибензолов в адаптации Micrococcus luteus к температурному шоку // Микробиология. 2005. Т. 54. № 1. С. 26-33.

169. Мартиросова Е.И., Карпекина Т.А., Эль-Регистан Г.И. Модификация ферментов естественными химическими шаперонами микроорганизмов // Микробиология. 2004. Т. 73. № 5. С. 708-715.

170. Будкер В.Г., Дегтярёв С.Х., Соколов А.В., Расщепление ДНК, адсорбированной на поверхности фосфолипидных мембран, рестриктазами типа II//Биохимия. 1986. Т.51. №9. С. 1496-1498.