Введение в культуру in vitro и in vivo видов рода Passiflora L. тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, кандидат наук Кириллов, Алексей Александрович
- Специальность ВАК РФ03.01.06
- Количество страниц 140
Оглавление диссертации кандидат наук Кириллов, Алексей Александрович
СОДЕРЖАНИЕ
Введение
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1 История интродукции пассифлор
1.2 Особенности распространения и экологии представителей рода Passiflora
1.3 Ресурсный потенциал пассифлор в культуре
1.4 Восприимчивость к галловой нематоде как проблема практической интродукции пассифлор в условия защищенного грунта
1.5 Использовании прививки в производстве маракуйи
1.6 Микроклональное размножение пассифлор
1.7 Систематика и молекулярная филогения пассифлор
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
ГЛАВА 3. ВВЕДЕНИЕ ПАССИФЛОР В КУЛЬТУРУ IN VITRO
3.1 Изолирование и стерилизация первичных эксплантов
3.2 Клональное микроразмножение пассифлор
3.3 Влияние регуляторов роста и минерального состава питательной среды на коэффициент размножения
3.4 Получение интактного материала пассифлор с помощью прививки
3.6 Укоренение in vitro и адаптация растений-регенерантов к условиям in vivo
ГЛАВА 4. ВВЕДЕНИЕ ПАССИФЛОР В КУЛЬТУРУ IN VIVO
4.1 Общая характеристика коллекции
4.2 Особенности адаптации пассифлор к оранжерейной культуре
ГЛАВА 5. ОЦЕНКА УСТОЙЧИВОСТИ ПАССИФЛОР К ГАЛЛОВЫМ НЕМАТОДАМ
к
5.1 Восприимчивость пассифлор к галловым нематодам
5.2 Влияние способа прививки и типа подвоя на рост и развитие некоторых видов и сортов пассифлор
ГЛАВА 6. ФИЛОГЕНЕТИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ
6.1 Таксономическая характеристика коллекции
6.2 Характеристика исследуемых участков генома
6.3 Филогенетические связи видов рода Passiflora
ВЫВОДЫ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЕ
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», 03.01.06 шифр ВАК
Эколого-биологические особенности и репродуктивная биология видов и сортов Citrus в условиях лимонария (г. Уфа)2022 год, кандидат наук Билалова Эльвира Гизаровна
Размножение Laburnum anagyroides Medik. в условиях in vivo и in vitro при интродукции в Нижнем Поволжье2022 год, кандидат наук Тимофеева Светлана Николаевна
Биологические особенности представителей рода Lonicera L. в условиях интродукции на Южном берегу Крыма2018 год, кандидат наук Браилко Валентина Анатольевна
Особенности морфогенеза и размножения in vitro некоторых представителей рода Rhododendron L.2015 год, кандидат наук Зайцева, Юлианна Геннадьевна
Формирование и комплексное изучение коллекции клематисов (род Clematis L.): биотехнологические и молекулярно-генетические аспекты2008 год, кандидат биологических наук Коротков, Олег Игоревич
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Введение в культуру in vitro и in vivo видов рода Passiflora L.»
ВВЕДЕНИЕ
Род Passiflora L. - крупнейший в семействе Passifloraceae и включает 575 видов (Jorgensen et al., 2012), распространенных, главным образом, в тропиках и субтропиках Нового Света, 22 вида происходят из Юго-Восточной Азии, Австралии и Океании. Почти все пассифлоры являются травянистыми или одревесневающими лазающими лианами, 10 видов представлены кустарниками и невысокими деревьями, ещё реже среди них встречаются однолетние травы (Killip, 1938; Feuillet, MacDougal, 2007). Род богат эндемичными редкими видами (Ocampo et al., 2010). Большой ресурсный потенциал рода Passiflora, включающего декоративные, плодовые и лекарственные виды, до настоящего времени полностью не раскрыт.
Крупные коллекционные фонды ботанических садов являются живым генным банком для выявления и отбора ресурсно-значимых видов растений, проведения биотехнологических работ в области микроклонального размножения и оздоровления, а также для длительного хранения генетического материала in vitro (Litz et al., 2005; Черевченко и др., 2008). Сегодня микроклональное размножение разработано для небольшого числа видов и сортов пассифлор (Faria, Segura, 1997; Alexandre et al, 2008; Pinto et al., 2010; Paikrao et al., 2012), в том числе, для плодовых сортов P. edulis Sims и красивоцветущих сортов P. 'Guglielmo Betto', Р. 'Manta P. x allardii Lynch, (Pipino et al., 2008, 2010; Braglia et al., 2009). Основные трудности введения в культуру in vitro связаны с сильной эндофитной контаминацией первичных эксплантов. Поиск приемов, позволяющих уменьшить заражение материнских растений и добиться стабильной стерильной культуры, является ключом к успешному культивированию и длительному хранению in vitro полезных и редких видов пассифлор.
В оранжерейных условиях также имеется ряд трудностей, связанных с поддержанием стабильной культуры пассифлор. Это, прежде всего, отсутствие устойчивости большинства видов к галловым нематодам. Разработка экологически приемлемых методов борьбы с этим вредителем без использования пестицидов (прививка на устойчивые к галловой нематоде подвои) является одним из биотехнологических приемов защиты растений, что особенно актуально в условиях защищенного грунта.
В коллекционных фондах Главного ботанического сада РАН в настоящее время представлены 16 из 17 секций пассифлор (Kirillov, 2013), что даёт возможность использовать коллекционные растения для проведения таксономических исследований. Молекулярно-филогенетические работы, опубликованных за последние 10 лет (Muschner et al., 2003, 2012; Yockteng, Nadot, 2003; Hansen et al., 2006; Paikrao et al., 2010), с высокой степенью поддержки показали монофилетичность рода и подтвердили его деление на четыре подрода. Однако отношения на уровне отдельных секций и серий всё ещё остаются неясными.
Цель работы; Целью исследования является создание устойчивой культуры видов рода Passiflora in vitro и in vivo с использованием живого коллекционного фонда.
Были поставлены следующие задачи;
1. разработка протоколов клонального микроразмножения ресурсных видов;
2. изучение влияния подвоя на степень эндофитной контаминации интактных растений;
3. оптимизация биорегуляторов для разработки протоколов микроклонирования;
4. проведение скрининга видов и сортов пассифлор на устойчивость к галловой нематоде с отбором устойчивых форм и оптимизацией прививочных технологий;
5. уточнение внутриродовых отношений с использованием высоко вариабельного межгенного спейсера trnH-psbA на основе изучения коллекционного материала;
6. создание крупнейшей на территории России коллекции видов и сортов представителей рода Passiflora в условиях защищенного грунта и выявление связи между таксономической принадлежностью и устойчивостью к галловой нематоде.
Научная новизна. Установлено, что в роде Passiflora прививка на устойчивые подвои - эффективный способ понижения эндофитной контаминации в культуре in vitro. Впервые получены данные о степени резистентности 65 видов и двух сортов пассифлор к южной галловой нематоде Meloidogyne incognita Kofoid et White и выявлены резистентные особи 9 видов. Впервые проведён филогенетический анализ таксонов рода Passiflora на основе межгенного спейсера trnH-psbA участка хпДНК, включивший 42 вида. Показано, что подрод Passiflora разделяется на две монофилетические группы. В первую входят секции Stipulata Feuillet & J. M. MacDougal, Tacsonia (Juss.) Feuillet & J. M. MacDougal и Calapathanthus Harms, во вторую Tiliifolia Feuillet & J. M. MacDougal, Coccínea Feuillet & J. M. MacDougal, Passiflora, Laurifolia Killip ex Cervi и Quadrangularis Feuillet & J. M. MacDougal. Найден новый для науки вид пассифлоры P. effusa nom. provis.
Практическая значимость. Создана крупнейшая в России коллекция видов и сортов Passiflora, включающая 149 видов, 6 разновидностей и 31 сорт. Получены два новых декоративных сорта пассифлор. Разработана технология размножения in vitro для трёх видов пассифлор, имеющих ресурсное значение или подпадающих под категорию исчезающих видов IUCN. Банк in vitro (ГБС РАН) пополнен редкими и исчезающими видами. Разработана новая технология оздоровления интактного материала путём прививки на резистентные виды и показано её влияние на дальнейшее
развитие растений-регенерантов в стерильной культуре. Оптимизирована методика прививки пассифлор в связи с биоморфологическими особенностями лиановидного стебля. Определено влияние способа прививки и вида подвоя на прохождение фенологических фаз и на морфометрические показатели in vivo. Впервые в России создан банк ДНК пассифлор, представленный 168 образцами.
Апробация работы. Материалы диссертации были представлены автором в докладах на российских и зарубежных конференциях: «Фундаментальные и прикладные аспекты современной биологии» (Томск, 2010 г.), «Биоморфологические чтения к 150-летию со дня рождения X. Раункиера» (Киров, 2010 г.), ежегодный конкурс научно-исследовательских работ молодых учёных ГБС РАН (2011 г.), «Дендрология, цветоводство и садово-парковое строительство» (Ялта, 2012 г.) и на заседаниях отдела тропических и субтропических растений ГБС РАН (2011-2012 г.).
Структура и объём работы. Диссертация состоит из введения, 6 глав, выводов, списка литературы, включающего 241 источника, в том числе 175 на иностранных языках и приложения. Работа изложена на 135 страницах текста, включая 15 таблиц и 25 рисунков.
Публикации. По материалам диссертации опубликовано 7 научных работ, в том числе 2 статьи в журналах, входящих в перечень ВАК и 1 статья в зарубежном журнале.
Благодарности. Автор выражает искренние благодарности своему научному руководителю Г.Л. Коломейцевой за всестороннюю помощь в проведении исследования, а также О.И. Молкановой, И.Г. Мещерскому, И.В. Ширниной, И. А. Шанцеру, В.Н. Чижову, М.Т. Кръстеву и B.JI. Шелейковскому за ценные советы и помощь в работе. Также мои искренние благодарности Dr. J. MacDougal и Dr. J. Vanderplank за помощь в идентификации пассифлор. Отдельная благодарность моей семье и друзьям за помощь и понимание.
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 История интродукции пассифлор
Первые сведения о культуре пассифлор (страстоцветов) теряются глубоко в доколумбовой эпохе развития Америки, о чём свидетельствуют археологические находки на территории США. Алгонкинские индейцы возделывали страстоцвет мясо-красный (Passiflora incarnata L.) ради съедобных плодов, а побеги употребляли в лечебных целях (Gremillion, 1989). Первое литературное упоминание о пассифлорах встречается в историко-географической рукописи Педро Сьезы Де Леона «Хроники Перу» (1553), где он даёт детальное описание плодов Р. ligularis Juss. и мест произрастания этого вида (Ulmer, MacDougal, 2004).
Е. Kugler, L. King (2004) отмечают, что уже с момента появления первых зарисовок цветков пассифлор в Европе «их описание стало переплетаться с религиозными и мистическими трактовками, так как различные части цветка фактически символизировали распятие Христа на кресте». Церковным учёным и секретарём мальтийского ордена Giacomo Bosio было составлено подробное описание цветка, где он отмечает элементы страданий в каждой части растения. Согласно его представлениям, тычинки были бичами, андрогинофор олицетворял колонну для бичевания, столбики пестиков символизировали гвозди, 5 кроваво-красных пятен у основания цветка были пятью ранами, 72 нити кроны были шипами на терновом венке, листья олицетворяли острые копья, а 30 нектарников на нижней поверхности листа означали тридцать серебряников, ради которых Иуда предал Христа. Считается, что такое толкование цветка послужило косвенным знаком испанским конкистадорам для обращения американских индейцев в католическую веру. Среди последующих работ встречаются и другие трактовки символики цветка. Предполагается, что в 1753 году Карл Линней, в своём знаменитом труде Species Plantarum, куда он включил 24 известных
тогда вида пассифлор, использовал слово 'Passiflora' («flos» - "цветок", «passio» - "страсть"), как неоспоримое название рода.
В культуре пассифлоры известны с 1612 года. Р. incarnata L. был первым видом пассифлоры, введённым в культуру в Париже (Ulmer, MacDougal, 2004). Чуть позже, в 1625 году, был интродуцирован Р. caerulea L., а за ним последовали Р.foetida L., Р. laurifolia L., Р. lutea L., Р. suberosa L. и другие виды.
Пассифлоры были чрезвычайно популярны в Викторианской Англии, после чего интерес к ним в значительной мере угас и возобновился только 90-х годах XX века, что подтверждается появлением обширной специализированной литературы и многочисленных дискуссионных онлайн групп. В 1992 году группой американских и европейских ботаников было организовано «Международное общество пассифлористов» (Passiflora Society International), работа которого направлена на популяризацию пассифлор в культуре, сохранение и распространение редких и исчезающих видов. На общей волне возрастающего интереса увеличилось и число энтузиастов, которые вводят в культивирование виды, привезённые из своих экспедиций (Ulmer, MacDougal, 2004). Нередко среди них оказываются и новые виды.
Прошло около 140 лет (1612) после того, как пассифлоры появились в Европе и о них узнали в России (Kirillov, 2013). Первое упоминание о пассифлорах, выращиваемых на территории Российской Империи, можно встретить в перечне растений Аптекарского огорода в Санкт-Петербурге, составленного в 1749 году огородником Девидом Бером в его отчёте для Медицинской канцелярии. С того момента и до 1793 года в каталогах оранжерейных растений и списках растений, отведённых для продаж частным лицам, упоминается только два вида Passiflora pentaphylla flore roseo clavato (Р. caerulea) и Passiflora hederae hirsute folio flore albo {P. foetida). В более поздних списках 1816 и 1817 гг. можно найти, по крайней
мере, 6 видов страстоцветов: Р. caerulea, P. serratifolia L., P. murucuja L., Р. holosericea L., Р. subpeltata Ortega, Р. suberosa.
Будучи популярным растением парадных комнат в домах российской интеллигенции, пассифлора получило название «Кавалерская звезда», которое сохранилось до наших дней, за его сходство с одной из главных наград царской России - звездой ордена Святого апостола Андрея Первозванного.
Наиболее крупная коллекция пассифлор того времени принадлежала министру народного просвещения графу Алексею Разумовскому. В перечне растений 1812 года, составленном его главным садовником Фишером указывается 22 вида пассифлор: P. alata Curtis, P. angustifolia, P. laurifolia, P. serratifolia, P. glauca, P. caerulea, P. caerulea tenuifolia hort., P. peltata, P. lutea, P. ciliaris, P.foetida, P. rubra Lam., P. tuberosa, P. biflora, P. holosericea L, P. adiantifolia, P. perfoliata, P. suberosa, P. minima, P. hirsute, P. ciliaris, P. incarnata. Именно оттуда страстоцветы уже попадали в остальные ботанические сады России.
В 1812 году Р. caerulea была введена в культуру в Никитском ботаническом саду (Улейская, 1996) и до сих пор остаётся единственным зимующим страстоцветом открытого грунта. В дальнейшем там же были введены в культуру Р. biflora Lam., P. serratifolia, P. alata, P. aurantia G. Forster, P. ciliata Ait., P. caerulea tenuifolia hort. и P. holosericea L., а чуть позднее в 1818 году P. rubra и P. edulis Sims. Некоторые из этих видов были рекомендованы к выращиванию в открытом грунте в летнее время.
В 19 веке страстоцветы появились в декоративной культуре субтропиков Кавказа. Поначалу они выращивались в парках, ботанических садах и оранжереях, но ко второй половине 20 века P. incarnata и Р. caerulea стали дичать и распространились по городским улицам и пригородам.
Нарастающая роль Р. incarnata в мировой фармацевтической промышленности привели к испытанию Р. incarnata на
сельскохозяйственных полигонах Советского Союза. В 1963 гг. И.М Рабиновичем была защищена кандидатская диссертация «Пассифлора инкарнатная в условиях влажных субтропиков Грузинской ССР (биологические основы культуры)». Кроме того, географические испытания Р. incarnata проводились в Батумском ботаническом саду Академии Наук Грузинской ССР, в Тбилиси, в ряде мест влажных субтропиков Абхазии и Краснодарского края, а также в Сухуми (Гульрипши) на опытной станции ВИРа, близ г. Гагра, на опорном пункте Главного ботанического сада АН СССР, на мысе Пицунда и в Сочи (Дендрарий) (Муравьева и др., 1964). В интродукционном питомнике и на полях Кобулетского совхоза Лекрастреста Минздрава СССР до сих пор существуют действующие плантации Р. incarnata.
Широко пассифлора применяется в озеленении городов юга России. В Сочи растения Р. caerulea успешно плодоносят и дают самосев.
Представительная коллекция страстоцветов была также собрана в БИН им. В.Л.Комарова РАН, где сегодня культивируется более 40 видов и гибридов этих растений (Арнаутов и др., 2003).
Особую популярность страстоцвет получил в Украине. Сегодня местными селекционерами получены ряд декоративных и плодовых сортов внутривидовой и межвидовой гибридизации на основе Р. incarnata, Р. edulis, Р. cincinnata и Р. tucumanensis. Такие сорта народной селекции, как 'Intucu', 'Faraon', 'Blue Skies', 'Bytention' и 'Byte' широко представлены в садах местных любителей.
1.2. Особенности распространения и экологии представителей рода
Passiflora
Лиановидная жизненная форма, являясь интегральным элементом сукцессионной динамики лесов, определила стратегию выживания пассифлор в лесном сообществе. Первичные тропические леса
характеризуются относительно низкой плотностью лиан, где они взрослее, но малочисленнее по сравнению с вторичными лесами. Выживание лиановидных пассифлор зависит от появления прогалин в лесном пологе, чему предшествуют оползни, ураганы, старение деревьев первых ярусов и пр. Так, в первичных лесах семена P. vitifolia Kunth прорастают только тогда, когда поверхность почвы на лесных прогалинах прогревается солнечными лучами не менее трёх часов в день (Gentry, 1981; Plowes, 2006). Анализ мест обитаний пассифлор показывает, что одревесневающие или полуодревесневающие виды растут по линии древостоя и уходят со временем в лесной полог, в то время как более мелкие травянистые виды приурочены к открытым пространствам и предпочитают в качестве опоры травы и невысокие кустарники (Delanoe, 1993). И те и другие часто стелятся по дорожному полотну, нередко при этом зацветают. Некоторые виды приурочены к берегам мелких ручьёв или более крупных водотоков. Почти все виды пассифлор гелиофиты (Cervi, 1997). У большинства видов нет выраженного периода покоя, и они готовы развить обильную биомассу и обильно зацвести в любой момент. Например, цветение P. jussieui Feuillet во Французской Гвиане можно наблюдать как в сухое, так и во влажное время года (Feuillet, 1989). В то же время имеются и виды с выраженным периодизмом цветения и побегообразования, например P. pittierii Mast., которая в засушливых лесах Коста-Рики начинает активный рост и цветение с наступлением периода засухи (Longino, 1986).
Прокладывание новой инфраструктуры в недрах тропических лесов сопровождается обильным расселением лиан, в том числе и пассифлор. Некоторые новые для науки виды, такие как P. davidii Feuillet, P. trialata Feuillet & J.M. MacDougal, P. paraquensis Holm-Niels. & Lawesson, были обнаружены именно таким образом. Устойчивость пассифлор к антропогенной нагрузке определяется стратегиями привлечения опылителей,
склонностью к зоо- и орнитохорному распространению семян, быстрым ростом и лёгкой укореняемостью побегов.
Во многом эколого-ценотические стратегии пассифлор, как и большинство видов тропических сообществ, мало изучены. Всё ещё отсутствуют сводки по видовому составу многих тропических регионов. Положение также усугубляется чрезвычайно слабой изученностью биологии многих видов. Нет данных о положении редких видов в сукцессии, их репродуктивной биологии и способах распространения. Известны случаи, когда вид описан по единственному гербарному образцу.
Пассифлоры часто являются эндемиками в районах с высоким биоразнообразием. Ocampo et al. (2013) показали, что 81 % всего разнообразия пассифлор в Колумбии сосредоточены в горных районах в зоне кофейных плантаций, т. е. в густонаселенных и нарушенных участках, вне охраняемых территорий. Кроме того, высокий уровень видового состава пассифлор очень точно соответствует отдельным экотипами. На основе критериев, разработанных IUCN, было показано, что 10% всего разнообразия колумбийских Passifloraceae имеет экстремально высокий риск исчезновения в природе (CR), а 6,1% - очень высокий (VU) или высокий (EN). Более того, четыре из 16 видов с CR критерием являются эндемиками. Jorgensen et al. (2009), изучая географическое распространение пассифлор и оценивая уровень вероятности их исчезновения в природе, сделали предварительные выводы о том, что 40% видов, принадлежащих подроду Decaloba, уязвимы или находятся под угрозой вымирания. 34% видового разнообразия пассифлор Коста-Рики попадают под две категории максимального риска исчезновения в природе CR и EN (Estrada, Rodriges, 2009). Estrada, Rodriges (2009) объясняют это узким ареалом обитания, низкой численностью особей и повышением рекреационной нагрузки.
Кроме общих мер по сохранению биоразнообразия пассифлор, включающих развитие национальных парков, заповедников, заказников и
пр., предложены современные интегрированные подходы с введением общих правил для разработки новых сельскохозяйственных угодий с учётом расположения зон отдыха и управления водными ресурсами (Осашро et al., 2007, 2013).
Явление полного исчезновения вида в естественных местах произрастания при сохранении его только в условиях культуры или натурализации за пределами ареала - явление довольно обычное. Например, P. cremastantha Harms - эндемичный вид из Колумбии, описанный в 1922 году, ни разу не был обнаружен в этой местности вплоть до 2013 года и в течение всех этих лет считался вымершим (Escobar, 1988). Три года назад единственное растение этого вида было обнаружено группой колумбийских ботаников растущим возле дома фермера, который выращивал его исключительно ради сладких плодов с мелкими семенами. Спустя три года во время следующего посещения этой фермы оказалось, что семья покинула дом, а место произрастания вида было разрушено. Никаких новых растений P. cremastantha в близлежащем районе обнаружено не было. Из семян, собранных во время первой экспедиции, в ботаническом саду Боготы удалось получить цветущие экземпляры, которые сегодня остаются единственными представителями вида P. cremastantha в мировой флоре. Этот пример показывает, что одной из приоритетных мер охраны пассифлор является сохранение видов ex situ, а создание коллекций тропических и субтропических растений в защищенном грунте умеренных широт помогает сохранить генофонд этих редких растений.
Классификация рода недавно претерпела изменения (Feuillet, MacDougal, 2003). Были выделены четыре подрода - Astrophea, Deidamioides, Passiflora и Decaloba, коррелирующие со способами опыления, что, как считается, имеет большое значение при интерпретации эволюционной истории рода (Krosnick, 2009).
Подрод Astrophea, состоит приблизительно из 57 южноамериканских кустарниковых и деревовидных видов с выраженной каулифлорией. Цветки опыляются, главным образом, пчелами и колибри, окрашены в оранжевый, розовый или красный цвет, с одним или двумя рядами толстых нитей короны и гипантий трубчатой формы.
Виды подрода Deidamioides характеризуется наличием от 2 до 4 серий нитей короны и белесыми цветками с широким гипантием. Опыляются пчёлами.
Орнитофильный способ опыления при помощи колибри - наиболее распространён в подроде Passiflora, где несколько таксономических групп имеют общую морфологию цветка: красные или розовые трубчатые цветки, часто висячие, с короткими, иногда редуцированными до бугорков, нитями короны и длинным андрогинофором (Bawa, 1990). Энтомофилия широко представлена в подроде Passiflora, но наиболыпе значение имеет в подроде Decaloba.
Виды, опыляемые пчелами, характеризуются расширенными и чашеобразными цветками с коротким андрогинофором. Нити короны, вероятно, играют основную роль визуального привлечения, а также действуют в качестве посадочной платформы (McDougal, 1994). 8 видов пассифлор характеризуются хироптерофильным способом опыления (Jorgensen et al., 2012) и присутствуют в трёх подродах - Passiflora {Р. mucronata Lam. (Sazima & Sazima), Deidamioides (P. contracta Vitta, P. ovalis Veil, ex M. Roem.) и Decaloba (Ppenduliflora Bertero ex DC.) (Kay, 2001). Типичными чертами цветков этих видов является отсутствие яркой пигментации, сильный неприятный запах, высокое содержание нектара и ночное цветение (Lindberg, Olesen, 2001).
Род также известен своими широкими коэволюционными связями. Одним из таких случаев является взаимодействия пассифлор с бабочками рода Heliconius (Gilbert, 1971; 1982). Сравнительные филогенетические
анализы коэволюции бабочек и пассифлор показали высокую скорость эволюционных преобразований тех и других (Jiggins et al., 1996; Brower, 1997). Бабочки Heliconius взаимодействуют с пассифлорами на двух уровнях: в качестве опылителей и листогрызущих вредителей (Gilbert, MacDougal, 2000).
Ряд эволюционных приспособлений был приобретен пассифлорами в ответ на повреждения бабочками-геликонидами. Первая особенность -мимикрия: листья некоторых видов пассифлор часто напоминают по форме и текстуре листья растений-хозяев, служащих опорой для их лиановидных стеблей (Brown, Lawton, 1991). Вторая особенность - гетерофилия: различия формы листовых пластинок у ювенильных и генеративно-зрелых растений. Третья особенность - несовпадение ареалов у видов с листьями одинаковой формы.
Еще одним примечательным вариантом мимикрии является имитация яиц бабочек. Различают две группы выростов - 1) разрастание эпидермальных тканей листьев, прилистников, брактей, чашелистиков (MacDougal, 2003) и 2) появление недоразвитых цветков на усиках, являющихся модифицированными цветоножками (Williams, Gilbert, 1981). В роли ложных яиц, образующихся из структур листовой природы, часто выступают черешковые (P. phoenicea, Р. davidií), листовые (P. boenderi) или прилистниковые (Р. rufostipulata, Р. actinia) экстрафлоральные нектарники, в то время как в роли имитатора яиц на усиках выступают недоразвитые цветки (P. arbelaezii).
Муравьи также вступают в симбиоз с пассифлорами, питаясь нектаром из экстрафлоральных нектарников, которые образуются не только на вегетативных, но и на генеративных органах растений (Hossaert-McKey et al., 2001; Apple, Feener, 2001; Varassin et al., 2001). При этом муравьи служат косвенной защитой пассифлор, контролируя численность листогрызущих
насекомых, увеличивая таким образом число образовавшихся плодов и семян (Wirth, Leal, 2001).
1.3. Ресурсный потенциал пассифлор в культуре
Род известен широким ресурсным потенциалом. Более 60 видов возделываются ради съедобных плодов, из которых получают ароматные соки, либо употребляют в свежем виде (Martin, Nakasone, 1970). В качестве съедобной части плода выступают сочные и ароматные ариллусы, однако у видов P. quadrangularis и P. alata съедобен также и мезокарпий, хотя он зачастую безвкусный.
Плоды четырёх видов (P. ligularis, P. edulis var. flavicarpa, P. edulis var. edulis и P. tripartita var. mollissima (Kunth) Holm-Niels. & P. Jorg.) получают в промышленном масштабе, они широко экспортируются и доступны на отечественном и европейском рынках (Van den Eynden, 2003; Yockteng et al., 2011). Ещё 10-15 видов возделывают в крупном масштабе (например, Р. nitida, P. popenovii Killip, P. alata, P. quadrangularis, P. maliformis). Остальные плодовые виды пассифлор выращивают лишь в области естественного произрастания или используют как естественный ресурс (например, P. actinia Hook., P. gabrielliana Vanderpl., P. nigradenia Rusby, P. pergrandis Holm-Niels. & Lawesson, P. vitifolia, P. miniata, P. ambigua Hemsl.).
P. edulis - наиболее известный и популярный вид, называемый «маракуйя», «пейшенфрут» или «пурпурная гранадилла». Сегодня выведено более ста сортов на его основе. Основные направления селекции маракуйи -выведение столовых сортов, повышение урожайности, склонности к самоопылению, повышение устойчивости к поражению нематодами. Наибольшее распространение получили сорта P. edulis cv. 'Common Purple', P. edulis cv. 'Sevick Selection', P. edulis cv. 'Frederisk', P. edulis cv. 'Perfecta' и P. edulis cv. 'Norpholk'. Все эти сорта комбинируют достоинства P. edulis f. edulis и P. edulis f. flavicarpa в различной степени. Последние селекционные
достижения привели к появлению сортов с более высоким содержанием целлюлозы (до 59 %), крупных плодов до 170 г или высокой урожайностью (до 55-65 тонн с гектара) (Vanderplank, 2000; Ulmer et al., 2004).
Различают две формы Р. edulis - Р. edulis f. edulis и Р. edutis f. flavicarpa. Р. edulis f. edulis отличается повышенной устойчивостью к низким температурам, культивируется в тропических регионах в пределах 600-2000 м над уровнем моря. В Кении продуктивные плантации располагаются на высоте до 2500 м. В плодоношение вступает на второй год после посева семян и сохраняет постоянную урожайность в течение 5-6 лет. Ежегодная урожайность с гектара считается относительно низкой и составляет 10-15 тонн. Плоды шаровидной или яйцевидной формы достигают диаметра 4-5 см. Средний вес плода составляет 35 г. Ариллусы отличаются сильным ароматом, они темно-жёлтого цвета и занимают около 35 % веса плода (Ulmer et al., 2004; Yockteng et al., 2011).
Плоды используют для приготовления поливитаминных соков, спиртных напитков, йогуртов, мороженого и кондитерских изделий. Ценность сока и клетчатки определена содержанием в них аскорбиновой кислоты, сахара, каротина, рибофлавина и полезных минералов. Из семян получают масло светло-жёлтого цвета, обладающее приятным вкусом, которое используют как в кулинарии, так и в лакокрасочной промышленности.
Похожие диссертационные работы по специальности «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», 03.01.06 шифр ВАК
Совершенствование технологии ускоренного размножения винограда методом in vitro и применение регуляторов роста в условиях in vitro и in vivo1999 год, доктор сельскохозяйственных наук Батукаев, Абдулмалик Абдулхамидович
Биологические особенности чайно-гибридных роз коллекции Никитского ботанического сада2018 год, кандидат наук Плугатарь Светлана Алексеевна
Оценка зимостойкости и декоративности родительских сортов и гибридов Syringa vulgaris L. в условиях лесостепи Алтайского края2014 год, кандидат наук Синогейкина, Галина Эдуардовна
Хозяйственно-биологическая оценка мандарина в Республике Абхазия2016 год, кандидат наук Сабекия, Дима Амиранович
Совершенствование технологии размножения in vitro, условий адаптации и доращивания жимолости съедобной2016 год, кандидат наук Семенова Наталья Александровна
Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Кириллов, Алексей Александрович, 2013 год
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Аврорин Н. А. Акклиматизация и фенология //Бюлл. ГБС. - 1953. - №. 16.-С. 20-25.
2. Аврорин Н.А. Диалектическое единство организма и среды интродукции растений //Переселение растений на Полярный Север: В. -1967.-С. 270-276.
3. Ахатов А.К., Ганнибал Ф.Б., Мешков Ю.И., Джалилов Ф.С., Чижов В.Н., Игнатов А.Н., Полищук В.П., Шевченко Т.П., Борисов Б.А., Стройков Ю.М., Белошапкина О.О. Болезни и вредители овощных культур и картофеля Москва, Товарищество научных изданий КМК, 2013 г. С. 463
4. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе //М.: ФБК-ПРЕСС. - 1999. - Т. 160. - С. 3.
5. Бутенко Р. Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М. - 1964. 350 с.
6. Высоцкий В.А. Биотехнологические методы в системе производства оздоровленного посадочного материала и селекции плодовых и ягодных растений . Дисс. Докт. наук//Москва. - 1998. - 321 с.
7. Гамбург К.З., Рекославская Н. И., Швецов С. Г. Ауксины в культурах тканей и клеток растений. - Наука. Новосибирск, 1990. 243 с.
8. Головкин Б. Н. История интродукции растений в ботанических садах. -М: Из-во Московского Университета, 1981. - 125 с.
9. Горницкая И.П. Интродукция тропических и субтропических растений, ее теоретические и практические аспекты //Донецк: Донеччина. - 1995. -304с.
10. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта: с основами статистической обработки результатов исследований. - Агропромиздат, 1985. - С. 351. П.Долгих Ю. И. Сомаклональная изменчивость растений и возможности ее
практического использования (на примере кукурузы): дис. - М.: Автореф. дис.... д-ра биол. наук, 2005. 385 с. 12. Зайцев Г. Н. Биометрический анализ в биологии. - М: Изд-во Московского университета, 1982. - 157 С.
13. Зайцев Г.Н. Математический анализ биологических данных. — Наука Публишерс, 1991.
14. Зайцев Г.Н., Былов В.Н. Математическая статистика в экспериментальной ботанике. - Наука, 1984.
15. Зиновьева C.B., Чижов В.Н., Приданников М.В., Субботин С.А., Рысс А.Ю., Хусаинов Р.В. Фитопаразитические нематоды России (2012) М.: Товарищество научных изданий КМК. 386 е., 388 илл.
16. Кармишина Н.М. Опыт интродукции тропических и субтропических растений в ботанический сад АН УзССр: Автореф. дис. ...канд. биол. наук. -Ташкент.-1988.-С. 23.
17. Катаева Н. В., Бутенко Р. Г. Клональное микроразмножение растений. -Наука, 1983.
18. Кириллов A.A. Коллекция рода Passiflora L. Фондовой оранжереи Главного ботанического сада РАН // Материалы Всероссийской научной конференции «Биоморфологические чтения к 150-летию со дня рождения X. Раункиера». - Киров: ВГГУ, 2010 г. - С.330-342.
19. Кириллов A.A. Особенности плодообразования у некоторых видов Passiflora L. в оранжерейных условиях. // Материалы Международной научной конференции "Дендрология, цветоводство и садово-парковое строительство", посвященное 200-летию НБС. 2012 г. - Ялта, С. 59.
20. Кириллов A.A. Чижов В.Н. Скрининг образцов коллекции пассифлоры на устойчивость к галловым нематодам // Гавриш - М. - 2012.
21. Кириллов A.A., Коломейцева Г.Л. Образование ариллусов у Passiflora L. в связи со способом опыления // Науч. ведомости Белгор. гос. ун-та. Естественные науки.- 2011.- № 3.- Вып. 14/1.- С. 280-283..
22. Кириллов A.A., Коломейцева Г.Л. Предпосылки создания в России национальной коллекции страстоцветов и её сохранение в культуре ex situ II Материалы конференции «Фундаментальные и прикладные аспекты современной биологии». - Томск: ТГУ, 2010 г. - С. 37-39.
23. Кръстев М.Т. Бондорина И.А. Протос С.А. Оценка регенерационного процесса в зоне срастания сосны горной {Pinus mugo Turra) на сосну обыкновенную {Pinus sylvestrus L.) 11 Материалы конференции Ботанические сады в современном мире: теоретические и практические исследования. М.: КМК, 2011, с. 361-366.
24. Кръстев М.Т. Рентгенографический метод изучения прививок. Оценка и прогнозирование // Автореф. дисс. док. биол. Наук. - М.- 1993. - 50с.
25. Кръстев М.Т., Бондорина И.А., Прививка как способ изменения декоративных качеств древесных лиственных растений // Бюлл. гос. Никитского ботанического сада, Ялта. 2003. Вып. 88. С. 79-81.
26. Кръстев М.Т., Кириллов A.A., Протас С.А. Анатомия прививки представителей рода Passiflora L. // Бюлл. ГБС РАН. - 2012.
27. Кузнецова, Г. В., Дарикова, Ю. А., Савва, Ю. В., Ваганов, Е. А., & Грачев, А. М. (2010). Прививки кедровых сосен как объект исследований. Хвойные бореальной зоны, 27.
28. Малеев В. П. Теоретические основы акклиматизации. - Издание Всесоюзного Института Растениеводства, 1933.
29. Матвеева М.А. Защита растений от нематод. М.: Наука, 1989. 150 с.
30. Молканова О.И., Горбунов Ю.Н. Сохранение редких и исчезающих растении в банке меристем ГБС РАН // Биологическое разнообразие. Интродукция растений: Тез. докл. 3-ей Межд. науч. конф. СПб., 2003- С. 42.
31. Молканова О.И., Коновалова Л.Н., Стахеева Т.С., Васильева О.Г. Разработка и совершенствование биотехнологических методов размножения и сохранения полезных и редких растений // Биотехнология овощных, цветочных и малораспространенных культур. Сборник научных трудов международной научно-практической конференции. Москва, 2004. С. 227231.
32. Молодожников М, М., Рабинович И. М, Интродукция пассифлоры инкарнатной в субтропиках Грузинской ССР, Всесоюзное совещание по
интродукции растений, Главный Ботанический сад. Академии наук СССР, февраль 1964 г., Москва.
33. Муравьева Д. А. Асеева С.З., Рабинович И.М., Биологические особенности в развитии пассифлоры инкарнатной и ее гистология, Ученые записки Пятигорского государственного фарм, ин-та, т. VI, 1964.
34. Рабинович И.М, Пассифлора инкарнатная — новое лекарственное растение, Ботанический журнал, т. Х1ЛШ1, № 6,: стр. 881 — 775, изд-Академии наук СССР, Москва—Ленинград, 1963.
35. Рабинович И.М. Новый седативный препарат из пассифлоры инкарнатной, Вопросы фармакогнозии, ч, 2, Ленинград, 1964 г.
36. Раздорский В.Ф. Анатомия растений // М.: Советская наука, 1949. 524с.
37. Тахтаджян А.Л. Жизнь растений //Т. - 1981. - Т. 5. - С. 107-112.
38. Тахтаджян А.Л. Система и филогения цветковых растений. -Александер Довельд, 1966.
39. Улейская Л.И. Перспективы интродукции страстоцвета {Passiflora L.) в Никитском ботаническом саду // Труды первой всероссийской конференции по ботаническому ресурсоведению. Спб., 1996. С. 135-136.
40. Фурст Г., Богданов Б. Раневые реакции тканей секреторной системы коры в прививках сосны румелийской на сосну обыкновенную // Лесоведение. - 1976. - N 3. - с.74-83.
41. Черевченко Т.М., Лаврентьева А. Н., Иванников Р. В. Биотехнология тропических и субтропических растений in vitro II Черевченко TM, Лаврентьева АН, Иванников PB-Киев: Наукова думка. - 2008.
42. Эсау К. Анатомия семенных растений // Кн. 2. М.: 1980, Мир, 229-558 с.
43. Abascal К., Yarnell Е. Nervine herbs for treating anxiety //Alternative & Complementary Therapies. - 2004. - T. 10. - №. 6. - C. 309-315.
44. Agha M., Dexheimer J. Etude ultrastructurale de la différenciation des elements conducteurs dans une culture de tissue de Passiflora quadrangularis L. Cals cultives a l'obscurité II Cytologia. - 1979. - T. 44. - C. 615-31.
45. Aguirre A., Severin C., Busilacchi H., Gattuso M., Di Sapio O., & Gattuso S. Field culture of micropropagated Passiflora caerulea L. histological and chemical studies //Boletín Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas. - 2008. - T. 7.
46. Akhondzadeh S., Naghavi H, Shayeganpour A, Rashidi A, Khani M. Passionflower in the treatment of generalized anxiety: a pilot double-blind randomized controlled trial with oxazepam //Journal of Clinical Pharmacy and Therapeutics. - 2001. - T. 26. - №. 5. - C. 363-367.
47. Alexandre R., Couto F., Dias J., Otoni W., Mendes R., & Cecon P. In vitro organogenesis of passion fruit {Passiflora edulis Sims. f. flavicarpa Deg.) affected by irradiance, sucrose and explant position //Plant Cell Culture e Micropropagation. - 2008. - T. 4.
48. Ambasta S. P., Ramachandran K., Kashyapa K., & Chand R. The useful plants of India. Publications & Information Directorate //CSIR, New Delhi. - 1986. -C. 55-56.
49. Anand S., Jayakumar E., Jeyachandran R., Nandagobalan V., Doss A. Direct Organogenesis of Passiflora foetida L. through Nodal Explants //Plant Tissue Culture and Biotechnology. - 2012. - T. 22. - №. 1. - C. 87-91.
50. Apple J., Feener D.H. 2001. Ant visitation of extrafloral nectarines of Passiflora: the effects of nectary attributes and ant behavior on patterns in facultative ant-plant mutualisms //Oecologia -2001. - T. 127. C. 409-416.
51. Ayensu E., Stern W. Systematic anatomy and ontogeny of the stem in Passifloraceae. -1964.
52. Barbosa P., Valvassori S., Bordignon J., Kappel V., Martins,M., Gavioli E., Reginatto F. The aqueous extracts of Passiflora alata and Passiflora edulis reduce anxiety-related behaviors without affecting memory process in rats // Journal of medicinal food. - 2008. - T. 11. - №. 2. - C. 282-288.
53. Bawa K.S. Plant-pollinator interactions in tropical rain forests //Annual Review of Ecology and Systematics. - 1990. - T. 21. - C. 399-422.
54. Becerra D., Forero A., Gongora G. Age and physiological condition of donor plants affect in vitro morphogenesis in leaf explants of Passiflora edulis f. flavicarpa //Plant cell, tissue and organ culture. - 2004. - T. 79. - №. 1. - C. 8790.
55. Bendini A., Cerretani L., Pizzolante L., Toschi T.G., Guzzo, F., Ceoldo, S., Levi M. Phenol content related to antioxidant and antimicrobial activities of Passiflora spp. extracts //European Food Research and Technology. - 2006. - T. 223.-№. l.-C. 102-109.
56. Bendini A., Cerretani L., Pizzolante L., Toschi T.G., Guzzo F., Ceoldo, S., Levi, M. Phenol content related to antioxidant and antimicrobial activities of Passiflora spp. extracts //European Food Research and Technology. - 2006. - T. 223.-№. l.-C. 102-109.
57. Bessis R. Grape vine physiology: the contribution of culture in vitro //Experientia. - 1986. - T. 42. -№. 8. - C. 927-933.
58. Biasi L., Falco M., Rodriguez A., Mendes B. Organogenesis from internodal segments of yellow passion fruit //Scientia Agricola. - 2000. - T. 57. - №. 4. - C. 661-665.
59. Biricolti S., Chiari A. Meristem culture and micrografting of Passiflora edulis f edulis //Advances in Horticultural Science. - 1994. - №. 3. - C. 171-176.
60. Birner J., Nicolls J. Passicol, an antibacterial and antifungal agent produced by Passiflora plant species: preparation and physicochemical characteristics //Antimicrobial agents and chemotherapy. - 1973. - T. 3. -№. l.-C. 105-109.
61. Breedt H. Better granadilla cultivars envisaged //Neltropika. - 1997.
62. Brower A. The evolution of ecologically important characters in Heliconius butterflies (Lepidoptera: Nymphalidae): a cladistic review //Zoological Journal of the Linnean Society. - 1997. - T. 119. -№. 4. - C. 457-472.
63. Brown V.K., Lawton J.H., Grubb P. J. Herbivory and the evolution of leaf size and shape [and discussion] //Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. - 1991. - T. 333. - №. 1267. - C. 265272.
64. Bueno dos Reis L., Silva M., Passos A., Peixoto O., Lopes P., Lani E., & Otoni W. Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of passionfruit species: Passiflora cincinnata and P. edulis f. flavicarpa //International Symposium on Biotechnology of Temperate Fruit Crops and Tropical Species 738. - 2005. - C. 425-431.
65. Cancino G.C., Davey M.R., Lowe K.C., Power J.B. Shoot regeneration from leaf and root explants of Passiflora mollissima //Journal of Experimental Botany. -1998.-T. 49.-C. 87.
66. Cancino G., Gill M., Anthony P., Power J., Lowe K, Davey M. Micropropagation of Tropical Fruits: Beneficial Effects of Non-Ionic Surfactants //I International Symposium on Acclimatization and Establishment of Micropropagated Plants 616. - 2001. - C. 353-358.
67. Carvalho M.J., Pedrosa, T.N., Guilhon-Simplicio F., Nunez C.V., Ohana D.T., Pereira M.M., Silva. Estudo farmacognóstico e atividade in vitro sobre a coagula?äo sanguínea e agrega9äo plaquetária das folhas de Passiflora nitida Kunth (Passifloraceae). Acta Amazónica - 2010. - V. 40, P. 199-206, 2010.
68. Cervi A. Passifloraceae do Brasil: estudo do género Passiflora L., subgénero Passiflora. - Fontqueria XLV, 1997.
69. Chaves R., Junqueira N., Manica I., Peixoto J., Pereira A., Fialho J. Enxertia de maracujazeiro-asedo em estacas herbaceas enraizadas de especies de passifloras nativas //Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal - SP. - 2004. - V.26. - № 1. P. 120-123.
70. Chaves R., Junqueira N., Manica I., Peixoto J., Pereira A., & Fialho J. Enxertia de maracujazeiro-azedo em estacas herbáceas enraizadas de espécies de passifloras nativas. - Congresso brasilieiro de fruticultura, 17., 2002, Beiern. Os novos desafíos da fruticultura brasileira: anais. Beiern: Sociedade Brasileira de Fruticultura, 2002. 1 CD ROM.
71. Chopra R. N., Nayar S. L. Glossary of Indian medicinal plants. - 1956.
72. Coleta M., Batista M., Campos M., Carvalho R., Cotrim M., Lima T., Cunha A. Neuropharmacological evaluation of the putative anxiolytic effects of
Passiflora edulis Sims, its sub-fractions and flavonoid constituents //Phytotherapy Research. - 2006. - T. 20.-№. 12.-C. 1067-1073.
73. Couceiro M. Organogênese in vitro em segmentos de hipocötilo de maracujazeiro amarelo (Passiflora edulis f. flavicarpa Deg.). Viçosa, Minas Gérais, UFV, 2002. 95p : ahc. - Tese de mestrado.
74. Cusset G. Les passifloracées asiatiques //Adansonia. - 1967. - T. 7. - №. 2. -C. 371-385.
75. de Candolle A.P. Passifloraceae. // Mémoires de la Société de Physique et d'Histoire Naturelle de Geneve - 1822. -V.l. -P. 435.
76. de Candolle A.P. Passifloreae // Prodr. Syst. Nat. -1828. - V.3. - P. 321-338.
77. de Figueiredo Carvalho M. A., Paiva R., Alves E., Nogueira R.C., Stein V. C., de Castro, E. M., Vargas, D. P. Morphogenetic potential of native passion fruit {Passiflora gibertii NE Brown.) calli //Brazilian Journal of Botany. - 2013. - T. 36.-№. 2.-C. 141-151.
78. De Melo N.F., Cervi A.C., Guerra M. Karyology and cytotaxonomy of the genus Passiflora L.(Passifloraceae) //Plant Systematics and Evolution. - 2001. - T. 226.-№. 1-2.-C. 69-84.
79. de Wilde W. The systematic position of tribe Paropsieae, in particular the genus Ancistrothyrsus, and a key to the genera of Passifloraceae //Blumea. - 1971. -T. 19.-№. l.-C. 99-104.
80. de Wilde W. The indigenous old world passifloras //Blumea. -1972. - V.20. -C. 227-250.
81. Delanoe O. Phytogeographie et organization de la diversite genetique dans le genre Passiflora //Actes du colloque international de Phytogéographie tropicale. Paris, juin 1993.-C. 77 -85.
82. Dhawan K., Dhawan S., Chhabra S. Attenuation of benzodiazepine dependence in mice by a trisubstituted benzoflavone moiety of Passiflora incarnata Linneaus: a non-habit forming anxiolytic //J Pharm Pharm Sei. - 2003. -T. 6. - №. 2.-C. 215-222.
83. Dhawan K., Dhawan S., Sharma A. Passiflora: a review update // Journal of Ethnopharmacology. - 2004. - T. 94. - №. 1. - C. 1-23.
84. Dornelas M., Vieira C. Tissue culture studies on species of Passiflora //Plant Cell, Tissue and Organ Culture. - 1994. - T. 36. - №. 2. - C. 211-217.
85. Doss A., Doss P. A., Dhanabalan R. em In Vitro Antimicrobial Activity of Extracts of Passiflora edulis (Passifloraceae) and Sphaeranthus indicus (Asteraceae) //Ethnobotanical Leaflets. - 2008. - T. 2008. - №. 1. - C. 99.
86. Doyle J.J. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue //Phytochem bull. - 1987. - T. 19. - C. 11-15.
87. Drew R. In vitro culture of adult and juvenile bud explants of Passiflora species //Plant Cell, Tissue and Organ Culture. - 1991. - T. 26. - №. 1. - C. 23-27.
88. d'Utra Vaz F., Santos A., Manders G., Cocking E., Davey M., Power J. Plant regeneration from leaf mesophyll protoplasts of the tropical woody plant, passionfruit {Passiflora edulis f. flavicarpa Degener.): the importance of the antibiotic cefotaxime in the culture medium //Plant Cell Reports. - 1993. - T. 12. -№. 4.-C. 220-225.
89. Escobar L. A new subgenus and five new species in Passiflora (Passifloraceae) from South America //Annals of the Missouri Botanical Garden. -1989.-C. 877-885.
90. Escobar L. Passifloraceae: Passiflora, subgeneros: Tacsonia, Rathea, Manicata y Distephana II Flora de Colombia. - 1988. - №. 10. - C. 1-138.
91. Escobar L. Two new species and a key to Passiflora subg. Astrophea //Systematic botany. - 1994. - C. 203-210.
92. Faria J., Segura J. In vitro control of adventitious bud differentiation by inorganic medium components and silver thiosulfate in explants of Passiflora edulis f. flavicarpa Hin vitro cellular & developmental biology-plant. - 1997. - T. 33. -№. 3. - C. 209-212.
93. Faria J., Segura J. Micropropagation of yellow passionfruit by axillary bud proliferation //HortScience. - 1997. - T. 32. - №. 7. - C. 1276-1277.
94. Felismino D. Morphological and histological evaluation of in vitro morphogenic responses from hypocotyledonary segments of passionfruit as affected by expiant position, orientation and polarity: Ph.D., - 2005.- Universidade Federal de Vicosa, Vicosa, MG, Brazil.
95. Felter H., Lloyd J. King's American dispensatory. - Eclectic Medical Publications, 1983.
96. Fernando J., Vieira M., Machado S., Appezzato-da-Gloria, B. Fernando J. A. et al. New insights into the in vitro organogenesis process: the case of Passiflora //Plant Cell, Tissue and Organ Culture. - 2007. - T. 91. - №. 1. - C. 37-44.
97. Ferreira F.R., Oliveira J.C., Sâo José A. R. Germoplasma de Passiflora //A cultura do maracuja no Brasil. - 1991.
98. Ferreres F., Sousa C., Valentao P., Andrade P., Seabra R., Gil-Izquierdo A. New C-deoxyhexosyl flavones and antioxidant properties of Passiflora edulis leaf extract //Journal of agricultural and food chemistry. - 2007. - T. 55. - №. 25. - C. 10187-10193.
99. Feuillet C. - 1989 - Diversity and distribution of Guianan Passifloraceae. In: Tropical forests, Eds L.B. Holm-Nielsen; Nielsen I.C. 81 H. BALSLN, Academic Press, London: 31 1-318
100. Feuillet C. A new series and three new species of Passiflora subgenus Astrophea from the Guianas //Brittonia. - 2002. - T. 54. - №. 1. - C. 18-29.
101. Feuillet C., MacDougal, J. A new infrageneric classification of Passiflora L. (Passifloraceae) // Passiflora - 2004. -V. 13. -C. 34-38.
102. Feuillet C., MacDougal J. Passifloraceae //Flowering Plants- Eudicots. -Springer Berlin Heidelberg, 2007. - C. 270-281.
103. Fraccaroli M., Nicoletti S., Maltese F., Choi Y.H., Guzzo F., Levi M., Verpoorte R. Pre-analytical method for metabolic profiling of plant cell cultures of Passiflora garckei //Biotechnology letters. - 2008. - T. 30. - №. 11. - C. 20312036.
104. Fujita Y., Hara Y., Ogino T., Suga C. Production of shikonin derivatives by
t,
cell suspension cultures of Lithospermum erythrorhizon //Plant Cell Reports. -1981.-T.1. - C. 59-60.
105. Gamborg O., Miller R., Ojima K. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells //Experimental cell research. - 1968. - T. 50. - №. 1. -C. 151-158.
106. Gentry A. Distributional patterns and an additional species of the Passiflora vitifolia complex: Amazonian species diversity due to edaphically differentiated communities //Plant Systematics and Evolution. - 1981. - T. 137. - №. 1-2. - C. 95-105.
107. Gilbert L. E. The coevolution of a butterfly and a vine //Sci Am. - 1982. - T. 247.-№. 8.-C. 102-107.
108. Gilbert L. Butterfly-plant coevolution: Has Passiflora adenopoda won the selectional race with heliconiine butterflies? //Science. - 1971. - T. 172. - №. 3983.-C. 585-586.
109. Gilbert L., MacDougal J. Passiflora microstipula, a new species of Passifloraceae from Southeast Mexico //Lundellia. - 2000. - №. 3. - C. 1-5.
110. Gloria B., Vieira M., Dornelas M. Anatomical studies of in vitro organogenesis induced in leaf-derived explants of passionfruit //Pesquisa Agropecuaria Brasileira. - 1999. - T. 34. - №. 11. - C. 2007-2013.
111. Green P.S. Passiflora in Australasia and the Pacific //Kew Bulletin. - 1972. -T. 26.-№. 3.-C. 539-558.
112. Gremillion, K. The development of a mutualistic relationship between humans and maypops (.Passiflora incarnata L.) in the southeastern United States //J. Ethnobiol. - 1989. - T. 9. - C. 135-155.
113. Guzzo F., Ceoldo S., Andreetta F., Levi, M. In vitro culture from mature seeds of Passiflora species //Scientia Agricola. - 2004. - T. 61. - №. 1. - C. 108113.
114. Hair J. Beuzenberg E. Contributions to a chromosome atlas of the New
Zealand flora. 2 //New Zealand Journal of Science -1959. - T.2. - №1.-C.148-156.
108
115. Hall R., Drew R., Higgins C., Dietzgen R. Efficient organogenesis of an Australian passionfruit hybrid (Passiflora edulis x Passiflora edulis var. flavicarpa) suitable for gene delivery //Australian Journal of Botany. - 2000. - T. 48. -№. 5. - C. 673-680.
116. Hamilton M.B. Four primer pairs for the amplification of chloroplast intergenic regions with intraspecific variation //Molecular Ecology. - 1999. - T. 8.
117. Hansen A. 2004. Systematic studies in Passiflora L. (Passifloraceae). Ph. D. Dissertation. Austin, Texas: The University of Texas.
118. Hansen A., Gilbert B., Simpson S., Downie A. Cervi R.K. Jansen. Phylogenetic relationships and chromosome number evolution in Passiflora //Systematic Botany. - 2006. -T. 31.-№. l.-C. 138-150.
119. Hansen A., Escobar L., Gilbert L., Jansen R. Paternal, maternal, and biparental inheritance of the chloroplast genome in Passiflora (Passifloraceae): implications for phylogenetic studies //American Journal of Botany. - 2007. - T. 94. - №. l.-C. 42-46.
120. Harms H. Beiträge zur Kenntnis der amerikanischen Passifloraceen. II //Repertorium novarum specierum regni vegetabilis. - 1923. - T. 19. - №. 4-7. -C. 56-60.
121. Harms Passiflora. In: Engler, A., Prantl, K. (Ed.), Die naturlichen pflanzenfamilien //Duncker and Humblot. -1925.- V. 21.- C. 470-507.
122. Hearn D.J. Adenia (Passifloraceae) and its adaptive radiation: phylogeny and growth form diversification //Systematic Botany. - 2006. - T. 31. - №. 4. - C. 805-821.
123. Hearn D. J. 2004. Growth form evolution in Adenia (Passifloraceae) and a model of the evolution of succulence. Ph.D. Dissertation, University of Arizona, Tucson.
124. Holm-Nielsen L. B., Jorgensen P. M. Passiflora tryphostemmatoides and its allies //Phytologia. - 1986. - T. 60.
125. Holm-Nielsen L.B., Lawesson J.E. New species of Passiflora subgenus Passiflora from Ecuador //Annals of the Missouri Botanical Garden. - 1987. - C. 497-504.
126. Hossaert-McKey M., Orivel J., Labeyrie E., Pascal L., Delabie J. H., Dejean A. Differential associations with ants of three co-occurring extrafloral nectary-bearing plants //Ecoscience. - 2001. - T. 8. - №. 3. - C. 325-335.
127. Huelsenbeck J. P., & Ronquist F. MRBAYES: Bayesian inference of phylogenetic trees //Bioinformatics. - 2001. - T. 17. - №. 8. - C. 754-755.
128. Isutsa D. Rapid micropropagation of passion fruit {Passiflora edulis Sims.) varieties //Scientia horticulturae. - 2004. - T. 99. - №. 3. - C. 395-400.
129. Jiggins, C., McMillan W., Neukirchen, W., Mallet J. What can hybrid zones tell us about speciation? The case of Heliconius erato and H. himera (Lepidoptera: Nymphalidae) //Biological Journal of the Linnean Society. - 1996. - T. 59. - №. 3. -C. 221-242.
130. Jorgensen P.M., Sheth S., Consiglio T., Jimenez I. (2009) Assessing conservation status of Passiflora. http://www.mobot.org/mobot/research/passiflora/conservation.shtml. Accessed 13 Feb 2009
131. Jorgensen P. (2009) Preliminary conservation status of accepted species in Passiflora subg. Decaloba: http://www.mobot.org/mobot/research/passiflora/conservation status accepted species.shtml. Accessed 29 Mar 2009.
132. Jorgensen P., Muchhala N., MacDougal J. Passiflora unipétala, a New Bat-pollinated Species of Passiflora supersect. Tacsonia (Passifloraceae) //Novon: A Journal for Botanical Nomenclature. - 2012. - T. 22. - №. 2. - C. 174-179.
133. Junqueira N.T, Lage D.D., Braga M.F., Peixoto J.R., Borges T.A., Andrade, S.D. Reaçâo a doenças e produtividade de um clone de maracujazeiro-azedo propagado por estaquia e enxertia em estacas herbáceas de Passiflora silvestre //Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal. - 2006. - T. 28. - №. 1. - C. 97100.
134. Kantharajah A.S., Dodd W.A. In vitro micropropagation of Passiflora edulis (purple passionfruit) //Annals of Botany. - 1990. - T. 65. - №. 3. - C. 337-339.
135. Kawata, K., Ushida, C., Kawai, F., Kanamori, M., & Kuriyama, A. Micropropagation of passion fruit from subcultured multiple shoot primordia //Journal of Plant Physiology. - 1995. - T. 147. - №. 2. - C. 281-284.
136. Kay E. E. Floral evolutionary ecology of Passiflora (Passifloraceae): subgenera Murucuia, Pseudomurucuja and Astephia : ahc. - Saint Louis University, 2003.
137. Kay E. Observations on the pollination of Passiflora penduliflora //Biotropica. - 2001. - T. 33. - №. 4. - C. 709-713.
138. Khiet B.L., Thi N.N., Huyen P.X., Nhut D.T. Primary study of cell suspension culture of yellow passion fruit {Passiflora edulis F. flavicarpa) //Proc. Int. Workshop Biotechnol. Agrie. - 2006. - C. 20-21.
139. Killip E. P. The American species of Passifloraceae //The American species of Passifloraceae. - 1938. - №. 407.
140. Kirillov A.A. Passiflora collection of the Main Botanical Garden, Russia. 2013. Passiflora Vol.23, №1: 3-13.
141. Kishore K., Pathak K. A., Shukla R. Soft wood grafting in purple passion fruit {Passiflora edulis) //Indian Journal of Agricultural Sciences. - 2009. - T. 79. -№. 6.-C. 472-475.
142. Klaas A., Olson M. Spatial distributions of cytoplasmic types and sex expression in Alaskan populations of Silene acaulis //International Journal of Plant Sciences.-2006.-T. 167.-№. 2.-C. 179-189.
143. Ko S.W., Wong C.K., Woo S.C. A simplified method of embryo culture in rice of Oryza sativa L //Bot. Bull. Acad. Sin. - 1983. - T. 24. - C. 97-101.
144. Koch, R. C., Zanette, F., Biasi, L. A., & Possamai, J. C. Micropropagation of Passiflora actinia Hooker //Revista Científica Rural. - 2001. - T. 6. - C. 150-157.
145. Komathi S, Rajalakshmi G, Savetha S., Ayyappadas M.P. In vitro regeneration of Passiflora foetida 1. //Journal of research in Biology. -2011. -T. 8. -C. 653-659.
146. Kress W., Wurdack K., Zimmer E., Weigt L., Janzen D. Use of DNA barcodes to identify flowering plants //Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2005. - T. 102. - №. 23. - C. 83698374.
147. Krosnick S.E. Phylogenetic relationships and patterns of morphological evolution in the Old World species of Passiflora (subgenus Decaloba: supersection Disemma and subgenus Tetrapathaea) : mc. - Ohio State University, 2006.
148. Krosnick S.E., Freudenstein J.V. Monophyly and floral character homology of Old World Passiflora (subgenus Decaloba: supersection Disemma) //Systematic botany. -2005.-T. 30.-№. l.-C. 139-152.
149. Krosnick S.E., Harris E.M., Freudenstein J.V. Patterns of anomalous floral development in the Asian Passiflora (subgenus Decaloba: supersection Disemma) //American journal of botany. - 2006. - T. 93. - №. 4. - C. 620-636.
150. Krosnick S.E., Porter-Utley K.E., MacDougal J.M., Jorgensen P.M., McDade L.A. New Insights into the Evolution of Passiflora subgenus Decaloba (Passifloraceae): Phylogenetic Relationships and Morphological Synapomorphies //Systematic Botany. - 2013. - T. 38. -№. 3. - C. 692-713.
151. Krosnick S., Ford A., Freudenstein, J. Taxonomic revision of Passiflora subgenus Tetrapathea including the monotypic genera Hollrungia and Tetrapathea (Passifloraceae), and a new species of Passiflora //Systematic Botany. - 2009. - T. 34.-№. 2.-C. 375-385.
152. Kuriyama A., Ushida C., Kawata K., Mmaesa M. Effect of chlorsulfiiron on morphogenetic and disordered cell division in cultures of Passiflora edulis //Journal of plant growth regulation. - 1998. - T. 17. - №. 3. - C. 173-178.
153. Lehtonen S., Myllys L., Huttunen S. Phylogenetic analysis of non-coding plastid DNA in the presence of short inversions //Phytotaxa. - 2009. - T. 1. - C. 320.
154. Lima A.A., Caldas R.C., Cunha M.A., Santos F.H. Avaliaçâo de porta-enxertos e tipos de enxertia para o maracujazeiro-amarelo //Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal. - 1999. - T. 21. - №. 3. - C. 318-321.
155. Lindberg A., Olesen J. The fragility of extreme specialization: Passiflora mixta and its pollinating hummingbird Ensifera ensifera //Journal of Tropical Ecology. - 2001. - T. 17. - №. 2. - C. 323-329.
156. Linsmaier E. M., Skoog F. Organic growth factor requirements of tobacco tissue cultures //Physiologia plantarum. - 1965. - T. 18. - №. 1. - C. 100-127.
157. Litz R. E. (ed.). Biotechnology of fruit and nut crops [electronic resource]. -CABI, 2005. -№. 29.
158. Lombardi S. P., Passos I. R. D., Nogueira, M. C., Appezzato-da-Glória, B. In vitro shoot regeneration from roots and leaf discs of Passiflora cincinnata mast //Brazilian Archives of Biology and Technology. - 2007. - T. 50. - №. 2. - C. 239-247.
159. Longino J.T. A negative correlation between growth and rainfall in a tropical liana//Biotropica. - 1986. - C. 195-200.
160. Lucchesini M., Mingozzi M., Mensuali-Sodi A. Callus formation and shoot regeneration of Passiflora incarnata L. from seed explants //Agricoltura mediterránea. - 2003. - T. 133. -№. 1. - C. 72-80.
161. MacDougal J.M. Passiflora boenderi (Passifloraceae), a new egg-mimic passionflower from Costa Rica //Novon. - 2003. - C. 454-458.
162. MacDougal J.M. Passiflora malletii, a new species in section Decaloba (Passifloraceae) from Mesoamerica //Annals of the Missouri Botanical Garden. -1989. - T. 76. - №. 4. - C. 1172-1174.
163. MacDougal J.M. Passiflora sanctae-mariae in Series Luteae (Passifloraceae), a New Species and Series in Subgenus Decaloba //Novon. -1995.-C. 48-51.
164. MacDougal J.M. Revision of Passiflora subgenus Decaloba section Pseudodysosmia (Passifloraceae) //Systematic Botany Monographs. - 1994. - C. 1-146.
165. MacDougal J.M., Hansen A.K. A new section of Passiflora, subgenus Decaloba (Passifloraceae), from Central America, with two new species //Novon. -2003. - C. 459-466.
166. Mader G., Zamberlan P.M., Fagundes N.J., Magnus T., Salzano F.M., Bonatto S.L., Freitas L.B.. The use and limits of ITS data in the analysis of intraspecific variation in Passiflora L.(Passifloraceae) //Genetics and molecular biology. - 2010. - T. 33. - №. 1. - C. 99-108.
167. Maldonado J. Utilizado de porta-enxertos do género Passiflora para maracujazeiro-amarelo {Passiflora edulis Sims f. flavicarpa Deg.) //Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal. - 1991. - T. 13. -№. 2. - C. 51-54.
168. Manach C., Scalbert A., Morand C., Remesy C., Jimenez L. Polyphenols: food sources and bioavailability //The American journal of clinical nutrition. -2004. - T. 79. - №. 5. - C. 727-747.
169. Manicom B., Ruggiero C., Ploetz R. C., Goes A.D. Diseases of passion fruit //Diseases of tropical fruit crops. - 2003. - C. 413-441.
170. Martin F.W., Nakasone H.Y. The edible species of Passiflora IIEconomic Botany. - 1970. - T. 24. - №. 3. - C. 333-343.
171. Masters M.T. XIX. Contributions to the Natural History of the Passifloraceas //Transactions of the Linnean Society of London. - 1871. - T. 27. - №. 4. - C. 593-645.
172. Masters M. T. 1872. Passifloraceae. Flora Brasiliensis. - 1872. - T. 13. - №. 106-128.-C. 529-628.
173. Menezes J.M. T., Oliveira J.D., Ruggiero C., Banzatto D.A. Avalia9äo da taxa de pegamento de enxertos de maracujá-amarelo sobre espécies tolerantes á" morte prematura de plantas //Científica, Sao Paulo. - 1994. - T. 22. - №. 1. - C. 95-104.
174. Mensuali-Sodi A., Lucchesini M., Maltinti S., Serra G., Tognoni F. Leaf senescence in tissue culture of Passiflora incarnata L.: the role of ethylene //Advances in Plant Ethylene Research. - Springer Netherlands, 2007. - C. 151152.
175. Mensuali-Sodi A., Lucchesini M., Pacifici S., Maltinti S., Tognoni F.
Mensuali-Sodi A. et al. Caratterizzazione del microambiente e suoi effetti sul
mantenimento in vitro di Passiflora incarnata L //Colture artifi. - 2007. - C. 165.
114
176. Menzel C.M., Winks C.W., Simpson D.R. Fruits: tropical and subtropical. -NayaProkash, 1990.
177. Mingozzi M., Lucchesini M., Mensuali-Sodi A. In vitro propagation of Passiflora incarnata //Colture Protette. - 2003. - T. 32.
178. Mohamed M. E., Hicks R. G., Blakesley D. Shoot regeneration from mature endosperm of Passiflora foetida //Plant cell, tissue and organ culture. - 1996. - T. 46. - №. 2.-C. 161-164.
179. Mohanasundari C., Natarajan D., Srinivasan K., Umamaheswari S., Ramachandran A. Antibacterial properties of Passiflora foetida L.-a common exotic medicinal plant //African Journal of Biotechnology. - 2007. - T. 6. -№. 23.
180. Mondall N. K., Mojumdar A., Chatterje S. K., Banerjee A., Datta J.K., Gupta S. Antifungal activities and chemical characterization of Neem leaf extracts on the growth of some selected fungal species in vitro culture medium //Journal of Applied Sciences and Environmental Management. - 2009. - T. 13. - №. 1. - C. 49-53.
181. Montefusco-Pereira C.V., de Carvalho M. J., Boleti A.P., Teixeira L.S., Matos H.R., Lima, E.S. Antioxidant, Anti-inflammatory, and Hypoglycemic Effects of the Leaf Extract from Passiflora nitida Kunth //Applied biochemistry and biotechnology. - 2013. - C. 1-12.
182. Monteiro A.C., Higashi E.N., Gonclves A.N., Rodrigues, A.P. A novel approach for the inorganic medium com-A novel approach for the inorganic medium components for micropropagation of yellow passionfruit (Passiflora edulis Sims. f. flavicarpa Deg.) //vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. -2000. -T.36.-C. 527-531.
183. Muñoz Jáuregui A.M.; Ramos-Escudero D.F.; Alvarado-Ortiz Ureta C,. Castañeda,B. Evaluación de la capacidad antioxidante y contenido de compuestos fenólicos en recursos vegetales promisorios //Rev. Soc. Quím. Perú. - 2007. - T. 73. -№. 3. - C. 142-149.
184. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures //Physiologia plantarum. - 1962. - T. 15. - №. 3. - C. 473-497.
185. Muschner V.C., Lorenz A. P., Cervi A. C., Bonatto S. L., Souza-Chies T. I., Salzano F. M., Freitas L. B. A first molecular phylogenetic analysis of Passiflora (Passifloraceae) //American Journal of Botany. - 2003. - T. 90. - №. 8. - C. 12291238.
186. Muschner V.C., Zamberlan P.M., Bonatto S.L., Freitas L.B. Phylogeny, biogeography and divergence times in Passiflora (Passifloraceae) //Genetics and molecular biology. - 2012. - T. 35. - №. 4. - C. 1036-1043.
187. Muschner V., Lorenz-Lemke A., Vecchia M., Bonatto S., Salzano F., Freitas L. Differential organellar inheritance in Passiflora's (Passifloraceae) subgenera //Genetica. - 2006. - T. 128.-№. 1-3.-C. 449-453.
188. Nicolls J. M. Antifungal activity in Passiflora species //Annals of Botany. -1970. -T. 34. -№. l.-C. 229-237.
189. Nogueira F., Roncatto G., Ruggiero C., Oliveira J.C., Malheiros E.B. Seedling production of yellow passion fruit by hypocotyledonary grafting on seven species on passifloras //Revista Brasileira de Fruticultura. - 2011. - T. 33. - №. 1. -C. 237-245.
190. Ocampo J., Coppens D'Eeckenbrugge G., Jarvis A. Distribution of the Genus Passiflora L. Diversity in Colombia and Its Potential as an Indicator for Biodiversity Management in the Coffee Growing Zone //Diversity. - 2010. - T. 2. -№. 11.-C. 1158-1180.
191. Ocampo P.J., d'Eeckenbrugge G.C., Restrepo M., Jarvis A., Salazar M., Caetano C. Diversity of Colombian Passifloraceae: biogeography and an updated list for conservation //Biota Colombiana. - 2013. - T. 8. - №. 1. - C. 1-46.
192. Oliveira J.C., Ruggiero C., Nakamura K., Baptista M. Comportamento de Passiflora edulis enxertado sobre P. giberti N.E. Brown. In: Anais 7 Congresso Brasileiro de Fruticultura //Sociedade Brasileira de Fruticultura, Florianópolis. -1984.-P.989-993.
193. Otoni W.C., Dias Casali V.W., Davey M.R., Power J.B. Regenera9äo de plantas de maracujazeiro (Passiflora coccinea Aubl.) a partir de protoplastos derivados de mesófilo //Revista Ceres. - 1995. - T. 42. - C. 461-468.
194. Ozarowski M. Influence of the physico-chemical factors, plant growth regulators, elicitors and type of explants on callus cultures of medicinal climbers of Passiflora L //Herba Polonica. - 2011. - T. 57. - №. 4.
195. Pace C. Compara9äo de quatro métodos de enxertia para o maracujazeiro-amarelo Passiflora edulis f. flavicarpa Deg //Congresso brasileiro de fruticultura. -1983.-T. 7. — C. 983-988.
196. Pacheco G., Garcia R., Lugato D.,Vianna M., Mansur E. Plant regeneration, callus induction and establishment of cell suspension cultures of Passiflora alata Curtis //Scientia Horticulturae. - 2012. - T. 144. - C. 42-47.
197. Paikrao, H. M., Patil, A. S., Gaikwad, V. J., Dhore, R. D., Ambulkar, P. S., Ahirkar, K. K., Bande, S. N. Comparative phylogenetic analysis of Passiflora based on protein marker chloroplast expressed glutamine synthetase (ncpGS) and ribosomal protein S4 (rpS4) //Journal of Advanced Bioinformatics Applications and Research.-2010.-T. l.-№. l.-C. 1-6.
198. Passos I.D., Matos G.D., Meletti,L. M.M., Scott, M.D., Bernacci L.C., Vieira M.A. Utilizado do ácido giberélico para a quebra de dorméncia de sementes de Passiflora nitida Kunth germinadas in vitro //Revista Brasileira de Fruticultura. - 2004. - T. 26. - №. 2. - C. 380-381.
199. Patil A.S., Paikrao H.M. //Global J Res. Med. Plants & Indigen. Med.| Volume.-2012.-T. l.-№. 10.-C. 485-495.
200. Pfeiffer H. Beitrage zur kausalen Begründung der abnormen Verdickungsschemata der Pflanzenachsen. //Schcininsland Festschrift. Pp.41-44.
201. Pinto A.P., Monteiro-Hara A.C., Stipp L.C., Mendes B.M. In vitro organogenesis of Passiflora alata Hin Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. - 2010. - T. 46. - №. 1. - C. 28-33.
202. Pinto D.L., Barros B.A., Viccini L.F., Campos J.M., Silva M.L., Otoni W.C.
Ploidy stability of somatic embryogenesis-derived Passiflora cincinnata Mast.
117
plants as assessed by flow cytometry //Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). - 2010. -T. 103.-№. l.-C. 71-79.
203. Pipino L., Braglia L., Giovannini A., Fascella G., Mercuri A. In Vitro Regeneration and Multiplication of Passiflora Hybrid "Guglielmo Betto" //Protocols for In Vitro Propagation of Ornamental Plants. - Humana Press, 2010. -C. 153-162.
204. Pipino L., Braglia L., Giovannini A., Fascella G., Mercuri A. In vitro regeneration of Passiflora species with ornamental value //Propagation of Ornamental Plants. - 2008. - T. 8. - №. 1. - C. 47-49.
205. Pires M.C., Yamanishi O.K., Peixoto J.R., Junqueira N.T.V., Sousa M.A. Grafting of australian purple passion fruit progenies in different native species //Revista Brasileira de Fruticultura. - 2009. - T. 31. - №. 3. - C. 823-830.
206. Plowes R. Tropical forest landscape dynamics: population consequences for neotropical lianas, genus Passiflora. - 2006.
207. Porter-Utley K.E. Passiflora tacanensis, a new species of Passiflora subgenus Decaloba supersection Cieca from Mexico //Brittonia. - 2007. - T. 59. -№. l.-C. 25-28.
208. Porter-Utley K.E. Revision of Passiflora subgenus Decaloba supersection Cieca (Passifloraceae) : /mc. - University of Florida, 2003.
209. Rasool S.N., Jaheerunnisa S., Jayaveera K.N., Suresh Kumar C. In vitro callus induction and in vivo antioxidant activity of Passiflora foetida L. leaves //International Journal of Applied research in natural Products. - 2011. - T. 4. - №. l.-C. 1-10.
210. Reed B.M., Sarasan V., Kane M., Bunn E., & Pence V.C. Biodiversity conservation and conservation biotechnology tools //In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. - 2011. - T. 47. - №. 1. - C. 1-4.
211. Rego M. M., Brito S. G., Rego E. R., Costa F. R., & Fortunato F. L. Hypocotyledonary Grafting in Passion Fruit (.Passiflora edulis Sims.) //XXVIII International Horticultural Congress on Science and Horticulture for People (IHC2010): International Symposium on 928. - 2010. - C. 139-144.
212. Reis L.B., Paivaneto V.B., Toledo Picoli E.A., Costa M.G., Rego M.M., Carvalho C.R., Finger F.L., Otoni W.C. Axillary bud development of passionfruit as affected by ethylene precursor and inhibitors //In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. - 2003. - T. 39. - №. 6. - C. 618-622.
213. Ritzinger C. H., Sharma R.D., Junqueira N.T. Nematoides e seu controle. Capitulo 12 // Maracuja producao: aspectos tecnicos. Embrapa Mandioca e Fruticultura (Cruz das Almas, BA)/ Brasilia, - 2002. - (Frutas do Brasil; 15). C.104.
214. Robles M. J. Morphogenetic potential of stem internodes from two passion flower plants, Passiflora edulis var. flavicarpa degener and Passiflora molissima Bailey in vitro //Turrialba (Costa Rica)..(Jul-Set. - 1979. - T. 29. - №. 3. - C. 224228.
215. Robles M. Multiplication vegetative in vitro des bourgeons axillaires de Passiflora edulis var. flavicarpa Degener et de P. mollissima Bailey //Fruits. -1978.-T. 33.
216. Rosa Y.B., Dornelas M.C. In vitro plant regeneration and de novo differentiation of secretory trichomes in Passiflora foetida L.(Passifloraceae) //Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). - 2012. - T. 108. - №. 1. - C. 91-99.
217. Rudnicki M., de Oliveira M.R., Pereira T.D., Reginatto F.H., Dal-Pizzol F., Moreira J.C. Antioxidant and antiglycation properties of Passiflora alata and Passiflora edulis extracts //Food Chemistry. - 2007. - T. 100. - №. 2. - C. 719724.
218. Sanger F., Nicklen S., Coulson A.R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors //Proceedings of the National Academy of Sciences. - 1977. - T. 74. - №. 12. - C. 5463-5467.
219. Scorza R., Janick J. In vitro flowering of Passiflora suberosa L //Journal of the American Society for Horticultural Science. - 1980. - T. 105. - №. 6. - C. 892-897.
220. Shaw J., Lickey E., Beck J., Farmer S., Liu W., Miller J., Small R. The tortoise and the hare II: relative utility of 21 noncoding chloroplast DNA sequences for phylogenetic analysis //American Journal of Botany. - 2005. - T. 92. -№. l.-C. 142-166.
221. Shekhawat M.S. New methods of sterilization of explants and hardening of Cucurbitaceous plants. //Int J.of plant sci., -2007. -T. -№2.- C. 228-230.
222. Shiomi S., Wamocho L. S., Agong S.G. Ripening characteristics of purple passion fruit on and off the vine //Postharvest Biology and Technology. - 1996. -T. 7. - №. l.-C. 161-170.
223. Silva M.L., Pinto D.L.P., Guerra M.P., Floh E.I.S., Bruckner C.H., Otoni W.C. Influence of Antibiotics, Sealing System and Genotype on Shoot Regeneration via Organogenesis in Passion Flowers //VII International Symposium on New Floricultural Crops 1000. - 2011. - C. 445-452.
224. Silva, C.V., Loriato, V.A., Otoni, W.C., Rego, M.M., Rego, E.R. Influence of Antibiotics, Sealing System and Genotype on Shoot Regeneration via Organogenesis in Passion Flowers //VII International Symposium on New Floricultural Crops 1000. - 2011. - C. 445-452.
225. Silva J. K., Cazarin C. B., Colomeu T.C., Batista A.G., Meletti L.M., Paschoal J. A., Zollner, R. Antioxidant activity of aqueous extract of passion fruit {Passiflora edulis) leaves: In vitro and in vivo study //Food Research International. -2013.
226. Silva M., de Assis, A. M., da Rocha, Gasparotto J., Gazola A.C., Costa, G.M., Moreira J.C. Passiflora manicata (Juss.) aqueous leaf extract protects against reactive oxygen species and protein glycation in vitro and ex vivo models //Food and Chemical Toxicology. - 2013. - T. 60. - C. 45-51.
227. Simirgiotis M. J., Schmeda-Hirschmann G., Borquez J., Kennelly E.J. The Passiflora tripartita (Banana Passion) Fruit: A Source of Bioactive Flavonoid C-Glycosides Isolated by HSCCC and Characterized by HPLC-DAD-ESI/MS/MS //Molecules.-2013.-T. 18.-№. 2.-C. 1672-1692.
228. Snow N., MacDougal J.M. New chromosome reports in Passiflora (Passifloraceae) //Systematic Botany. - 1993. - C. 261-273.
229. Snow A. A. Pollination intensity and potential seed set in Passiflora vitifolia //Oecologia. - 1982. -T. 55. -№. 2. -C. 231-237.
230. Speroni E, Billi R, Pellegrino NC, Minghetti A. Role of chrysin in the sedative effects of Passiflora incarnata L //Phytotherapy research. - 1996. - T. 10.
231. Stenzel N.M., Carvalho S.L. (1992) Comportamento do maracujazeiro amarelo (P. edulis f. flavicarpa Deg.) enxertado sobre porta-enxertos. Revista Brasileira de Fruticultura 14, 183-186.
232. Stern V.L., Brizicki G.K. The woods and flora of the Florida Keys. Passifloraceae. //Tropical woods. - 1958. - vol. 109, C. 45-53.
233. Storchova H., Olson M. S. The architecture of the chloroplast psbA-trnH non-coding region in angiosperms //Plant Systematics and Evolution. - 2007. - T. 268.-№. 1-4.-C. 235-256.
234. Storchova H., Olson, M. Comparison between mitochondrial and chloroplast DNA variation in the native range of Silene vulgaris //Molecular Ecology. - 2004. -T. 13. -№. 10. -C. 2909-2919.
235. Tamura K., Dudley J., Nei M., Kumar S. MEGA4: molecular evolutionary genetics analysis (MEGA) software version 4.0 //Molecular biology and evolution. - 2007. - T. 24. - №. 8. - C. 1596-1599.
236. Tokuoka T. Molecular phylogenetic analysis of Passifloraceae sensu lato (Malpighiales) based on plastid and nuclear DNA sequences //Journal of plant research. - 2012. - T. 125. -№. 4. - C. 489-497.
237. Torres R.F. Estudio anatómico en Passiflora lindeniana Tr. et Planch (Passifloraceae) //1980. - 1980.
238. Torres C.M., Investigación en procesos de transformación de sustancias de interés presentes en hojas, tubérculos, semillas y frutos de especies andinas, para generar productos agroindustriales que pueden ser destinados a nivel industrial, medicinal o alimenticio. Segundo Informe Técnico. Jardín Botánico José Celestino Mutis - Subdirección Científica. Bogotá D.C.- 2007.
239. Trevisan F., Mendes B.M. Optimization of in vitro organogenesis in passion fruit (Passiflora edulis f. flavicarpa). //Sei Agric. - 2005. - T. 62. - P. 346-350.
240. Ulmer T., MacDougal J. M., Ulmer B. Passiflora: passionflowers of the world //Portland, Or.: Timber Press 430p.-illus., col. illus.. ISBN. - 2004. - T. 881926485.
241. Van den Eynden V., Cueva E., Cabrera O. Wild foods from southern Ecuador //Economic Botany. - 2003. - T. 57. - №. 4. - C. 576-603.
242. Vanderplank J., 2000. Passion Flowers. MIT Press, Cambridge, MA.
243. Varassin I. G., Trigo J.R. Sazima M. The role of nectar production, flower pigments and odour in the pollination of four species of Passiflora (Passifloraceae) in south-eastern Brazil //Botanical Journal of the Linnean Society. - 2001. - T. 136.-№. 2.-C. 139-152.
244. Vieira M.L., Carneiro M.S. 17.1 Passiflora spp. Passionfruit //General Editor: Gabrielle J. Persley, The Doyle Foundation, Glasgow, Scotland. - 2005. -C. 436.
245. Villiers E.A., Milne D.L. The control of nematodes on passion fruit //Citrus and Sub-tropical Fruit Journal - 1973- №480. - C. 7-13
246. Wang Y.Q. Plant grafting and its application in biological research //Chinese Science Bulletin. - 2011. - T. 56. - №. 33. - C. 3511-3517.
247. Williams K., Gilbert L. Insects as selective agents on plant vegetative morphology: egg mimicry reduces egg laying by butterflies //Science. - 1981. - T. 212.-№. 4493.-C. 467-469.
248. Wirth R., Leal I. R. Does rainfall affect temporal variability of ant protection in Passiflora coccinea? //EcoScience. - 2001. - T. 8. - №. 4. - C. 450-453.
249. Yamashiro T., Landgraf, J.H. Maracujä-a?ü (.Passiflora alata Ait.), porta-enxerto resistente ä fusariose do maracujazeiro {Passiflora edulis f. flavicarpa Deg.). In: Anais 5° Congresso Brasileiro de Fruticultura //Sociedade Brasileira de Fruticultura. Pelotas. -1979. -P. 918-921.
250. Yockteng R., d'Eeckenbrugge G.C., Souza-Chies T.T. Passiflora //Wild Crop Relatives: Genomic and Breeding Resources. - Springer Berlin Heidelberg, 2011.-C. 129-171.
251. Yockteng R., Nadot S. Phylogenetic relationships among Passiflora species based on the glutamine synthetase nuclear gene expressed in chloroplast (ncpGS) //Molecular Phylogenetics and Evolution. - 2004. - T. 31. - №. 1. - C. 379-396.
252. Yockteng R. Nadot S. Infrageneric phylogenies: a comparison of chloroplast-expressed glutamine synthetase, cytosol-expressed glutamine synthetase and cpDNA maturase K in Passiflora //Molecular phylogenetics and evolution. - 2004. - T. 31. - №. 1. - C. 397-402.
253. Yotoko K., Dornelas M., Togni P., Fonseca T., Salzano F., Bonatto S., Freitas L.. Does variation in genome sizes reflect adaptive or neutral processes? New clues from Passiflora //PloS one. - 2011. - T. 6. - №. 3. - C. el8212.
254. Zerbini F., Otoni W., Vieira M. Passionfruit //Compendium of Transgenic Crop Plants. - 2008.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.