Влияние загрязнения серебром на биологические свойства почв Юга России тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.08, кандидат наук Цепина Наталья Игоревна
Цепина Наталья Игоревна
кандидат наук
2020
- Специальность ВАК РФ03.02.08
- Количество страниц 144
Оглавление диссертации кандидат наук Цепина Наталья Игоревна
ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. ВОЗДЕЙСТВИЕ СЕРЕБРА НА СОСТОЯНИЕ ЭКОСИСТЕМ
1.1. Источники поступления серебра в экосистемы
1.2. Влияние загрязнения серебром на растительный и животный мир водных экосистем
1.3. Влияние загрязнения серебром на растительный и животный мир наземных экосистем
1.4. Влияние серебра на здоровье человека
1.5. Трансформация серебра в почве
1.6. Формы нахождения серебра в почве
1.7. Физико-химические свойства серебра и его соединений
1.8. Влияние загрязнения серебром на экологическое состояние экосистем
1.9. Охрана почв от химического загрязнения
ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Черноземы обыкновенные тяжелосуглинистые
2.2. Бурые лесные кислые почвы
2.3.Серопески (черноземы обыкновенные супесчаные)
ГЛАВА 3. МЕТОДИКА И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
3.1. Методика модельных исследований
3.2. Методы определения экологических и биологических свойств почв
3.3. Расчет интегрального показателя биологического состояния почвы (ИПБС)
3.4. Обработка полученных результатов
ГЛАВА 4. ВЛИЯНИЕ ЗАГРЯЗНЕНИЯ СЕРЕБРОМ НА БИОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ПОЧВ ЮГА РОССИИ
4.1. Сравнительная оценка устойчивости к загрязнению серебром разных почв Юга России
4.1.1. Общая численность бактерий
4.1.2. Ферментативная активность
4.1.3. Активность каталазы
4.1.4. Активность дегидрогеназ
4.1.5. Фитотоксические свойства
4.1.6. Изменение интегрального показателя биологического состояния почв
4.2. Динамика изменения биологических показателей чернозема обыкновенного тяжелосуглинистого при загрязнении серебром
4.2.1. Общая численность бактерий и обилие бактерий рода А2о1оЪаМег
4.2.2. Активность каталазы
4.2.3. Активность дегидрогеназ
4.2.4. Фитотоксические свойства
4.2.5. Изменение интегрального показателя биологического состояния почв
4.3. Сравнительная оценка экотоксичности разных химических форм соединений серебра
4.3.1. Изменение общей численности бактерий и обилия бактерий рода Аю1оЪас(ег чернозема обыкновенного тяжелосуглинистого при загрязнении разными химическими формами соединений серебра
4.3.2. Изменение активности каталазы чернозема обыкновенного тяжелосуглинистого при загрязнении разными химическими формами соединений серебра
4.3.3. Изменение активности дегидрогеназ чернозема обыкновенного тяжелосуглинистого при загрязнении разными химическими формами соединений серебра
4.3.4. Изменение показателей фитотоксичности черенозема обыкновенного тяжелосуглинистого при загрязнении разными химическими формами соединений серебра
4.3.5. Изменение интегрального показателя биологического состояния (ИПБС) чернозема обыкновенного тяжелосуглинистого при загрязнении разными химическими формами соединений серебра
4.4. Оценка информативности и чувствительности биологических показателей при загрязнении разными химическими формами соединений серебра
4.5. Региональные предельно допустимые концентрации (рПДК) серебра в черноземах обыкновенных тяжелосуглинистых, серопесках (черноземах обыкновенных супесчаных) и бурых лесных кислых почвах
Список литературы
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Экология (по отраслям)», 03.02.08 шифр ВАК
Биодиагностика экотоксичности теллура и таллия в почвах Юга России2024 год, кандидат наук Евстегнеева Наталья Андреевна
Оценка экотоксичности наночастиц тяжелых металлов (Cu, Zn, Ni, Fe) по биологическим показателям состояния почв2019 год, кандидат наук Тимошенко Алена Николаевна
Влияние загрязнения нанопорошками оксидов Co, Ni, Cu, Zn, Ti, Fe, Al, Si на состояние чернозема обыкновенного и сельскохозяйственных растений2020 год, кандидат наук Вардуни Владимир Марэнович
Изменение эколого-биологических свойств почв Юга России при загрязнении фтором, бором, селеном, мышьяком2005 год, кандидат биологических наук Попович, Анна Александровна
Влияние мелиорантов на биологическое состояние чернозема при нефтезагрязнении2018 год, кандидат наук Минникова, Татьяна Владимировна
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние загрязнения серебром на биологические свойства почв Юга России»
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность исследования. Технофильность серебра за последние полвека растет по экспоненте и по прогнозу Н.С. Касимова и Д.В. Власова (2012) в ближайшие годы будет только увеличиваться. Основными антропогенными источниками загрязнения серебром окружающей среды, в том числе почв, являются выбросы теплоэлектростанций при сжигании угля (Кизильштейн, Левченко, 2003; Крылов, 2012; Nriagu, 1979; Nordberg, Fowler, 1986; Xing et al. 2004), работа предприятий цветной и черной металлургии (Медведская, 2009), цементных заводов (Пашкевич, 2015), хранение мусора на полигонах твердых бытовых отходов (Щербакова, 2013), производство фото- и электротехнических материалов (Eisler, 1996), применение пестицидов (Stampoulis et al., 2009), использование осадков сточных вод в качестве удобрений (Michels et al., 2017) и др. Кроме того в результате развития нанотехнологий в сфере производства медицинских и потребительских товаров все чаще источниками загрязнения окружающей среды являются наночастицы серебра (Pal et al., 2007; Sillen et al., 2015;Girilal et al., 2015; Eivazi et al., 2018).
Токсичность серебра установлена для большинства живых организмов: бактерий (Beddow et al., 2014; Samarajeewa et al., 2017; Singh et al., 2018), растений (Fernandes et al., 2017; Tripathi et al., 2017; Galazzi, Arruda, 2018), животных (Jiravova et al., 2016; Sun et al., 2016; Das et al., 2018) и человека (Gaillet, Rouanet, 2015; Hadrup et al., 2018). Механизмы токсичности заключаются во взаимодействии серебра с различными белками (Cao, Liu, 2010; Gomathi et al., 2017; Reidy et al., 2013). Как и у других тяжелых металлов, это вызывает ингибирование активности ферментов и снижение проницаемости биологических мембран (Hussain et al., 2005; Michels et al., 2017; Sun et al., 2016), повреждение ДНК (Sayeda, Soliman, 2017; Sharma et al., 2014), нарушение метаболизма (Liu et al., 2018; Sharma et al., 2014) и некроз клеток (Sun et al., 2016).
В то же время, экологические последствия загрязнения почв серебром исследованы в значительно меньшей степени, чем свинцом, кадмием, ртутью и другими тяжелыми металлами (Водяницкий, 2008; Kolesnikov et 2019). Соответственно, актуальным представляется выявление закономерностей влияния серебра на состояние почв в зависимости от дозы и химической формы соединений серебра, продолжительности загрязнения, установление пределов устойчивости разных по своим генетическим свойствам почв к загрязнению серебром, нормирование содержания серебра в почвах.
Цель работы — исследовать влияние загрязнения серебром на биологические свойства почв Юга России.
Задачи исследования:
1. Установить закономерности изменения биологических свойств почв в зависимости от параметров загрязнения: концентрации серебра в почве, формы химического соединения, длительности загрязнения. Дать оценку степени чувствительности и информативности разных биологических показателей при загрязнении почв серебром для их использования в мониторинге, диагностике и нормировании.
2. Сравнить устойчивость к загрязнению серебром почв Юга России, существенно различающихся по генетическим свойствам, определяющим подвижность в них серебра: черноземов обыкновенных, бурых лесных почв и серопесков.
3. Разработать региональные предельно допустимые концентрации серебра в черноземах обыкновенных, бурых лесных почвах и серопесках.
Основные защищаемые положения:
1. Загрязнение серебром оказывает негативное влияние на
биологические свойства почв. На степень снижения численности бактерий,
активности ферментов и показателей фитотоксичности существенно влияют
такие параметры загрязнения как содержание серебра в почве и
продолжительность загрязнения, а химическая форма соединения серебра
существенного влияния не оказывает. Установлена обратная зависимость
6
между концентрацией серебра и уровнем биологической активности почв. Экотоксическое действие серебра наиболее сильно проявляется на 10-е и 30-е сутки после загрязнения, на 90-е сутки наблюдается тенденция к восстановлению всех биологических свойств почв.
2. По степени устойчивости к загрязнению серебром почвы Юга России, существенно различающиеся по генетическим свойствам, определяющим подвижность в них серебра, образуют следующий ряд: чернозем обыкновенный > серопески > бурая лесная почва.
3. Разработаны региональные предельно допустимые концентрации (рПДК) серебра в черноземах обыкновенных (Haplic Chernozems Calcic) — 4,4 мг/кг, серопесках (Haplic Arenosols Eutric) — 0,9 мг/кг и бурых лесных почвах (Haplic Cambisols Eutric) — 0,8 мг/кг.
Научная новизна работы. Впервые установлены закономерности изменения биологических свойств в зависимости от основных параметров загрязнения почв серебром, таких как количество серебра в почве, химической формы соединения серебра, длительности загрязнения. Установлены пределы устойчивости и дана сравнительная оценка буферности к загрязнению серебром черноземов обыкновенных, бурых лесных почв и серопесков, то есть почв Юга России, существенно различающихся по генетическим свойствам, обуславливающим подвижность в них тяжелых металлов, в том числе серебра. Дана оценка биологических показателей чернозема по степени чувствительности и информативности к загрязнению серебром. Разработаны региональные предельно допустимые концентрации (рПДК) серебра в черноземах обыкновенных, бурых лесных почвах и серопесках.
Практическая значимость. Результаты могут быть использованы при оценке экологического состояния почв и наземных экосистем, загрязненных серебром, разработке методов мониторинга, диагностики и нормировании загрязнения почв серебром, прогнозировании последствий и экологических
рисков загрязнения, определении путей и способов санации почв.
7
Исследование соответствует приоритетным направлениям науки в Российской Федерации. Полученные результаты используются в учебном процессе в Южном федеральном университете.
Личный вклад автора. Диссертационные исследования проведены в 2017-2020 гг. Формулировка цели и задач, выбор объектов и методов исследования проведены автором совместно с научным руководителем. Лабораторные модельные эксперименты и аналитические исследования выполнены автором лично. Анализ и обобщение полученных результатов, формулировка выводов и защищаемых положений были сделаны автором лично при участии научного руководителя.
Апробация диссертации. Результаты исследования были представлены на Международных научных конференциях: «Экология и биология почв» (Ростов-на-Дону, 2017), «Современное состояние черноземов» (Ростов-на-Дону, 2018), «Теоретические и технологические основы биогеохимических потоков веществ в агроландшафтах» (Ставрополь, 2018), «Актуальные проблемы экологии и природопользования» (Ростов-на-Дону, 2018), «Экология и природопользование» (Ростов-на-Дону, 2019), «Экология и мелиорация агроландшафтов: перспективы и достижения молодых ученых» (Волгоград, 2019), «Актуальные вопросы экологии и природопользования» (Ростов-на-Дону, 2020).
Соответствие паспорту специальности. Диссертация соответствует паспорту специальности 03.02.08 - Экология в разделе «Факториальная экология - исследование влияния абиотических факторов на живые организмы в природных и лабораторных условиях с целью установления пределов толерантности и оценки устойчивости организмов к внешним воздействиям», и разделе «Прикладная экология» в части «исследование влияния антропогенных факторов на экосистемы различных уровней с целью разработки экологически обоснованных норм воздействия хозяйственной деятельности человека на живую природу».
Публикации. По теме диссертации опубликовано 10 научных работ, из них 1 статья в журнале, входящем в базы данных международных индексов научного цитирования Web of Science и Scopus, 3 статьи в журналах, входящих в Перечни рецензируемых научных изданий ЮФУ и ВАК. Доля участия автора в публикациях составляет 80%.
Структура и объем диссертации. Объем диссертационной работы 144 страницы. Диссертация состоит из введения, шести глав, выводов, списка литературы. Работа содержит 8 таблиц, 18 рисунков. Список литературы включает 292 источника, из них 205 на иностранных языках.
Финансовая поддержка исследования. Исследование выполнено при финансовой поддержке ведущей научной школы Российской Федерации (НШ-3464.2018.11, НШ-2511.2020.11) и Министерства образования и науки Российской Федерации (№ 5.5735.2017/8.9; № 0852-2020-0029).
Благодарности. Автор выражает глубокую признательность и приносит искреннюю благодарность своему научному руководителю, заведующему кафедрой экологии и природопользования ЮФУ, д.с.-х.н., профессору С.И. Колесникову за оказанную помощь при написании диссертации, д.г.н., профессору К.Ш. Казееву за ценные советы по написанию исследовательской работы, к.б.н., с.н.с. Т.В. Минниковой, Л.В. Судьиной, к.б.н., с.н.с. А.А. Кузиной за консультации и помощь при выполнении экспериментов и постоянную поддержку, к.б.н., доценту Ю.В. Акименко и всем сотрудникам кафедры экологии и природопользования Южного федерального университета.
ГЛАВА 1. ВОЗДЕЙСТВИЕ СЕРЕБРА НА СОСТОЯНИЕ ЭКОСИСТЕМ
1.1. Источники поступления серебра в экосистемы
Существуют природные и антропогенные источники тяжелых металлов (ТМ) в почвах (Кабата-Пендиас, Пендиас 1989). Природными источниками ТМ являются выветривание горных пород и минералов, эрозионные процессы, вулканическая деятельность (Богдановский, 1994; Герасимовский, 1969; Ковда, 1985). К антропогенным источникам относятся промышленность, котельные и мусоросжигающие установки, влияние автотранспорта, сельского хозяйства и другие (Большаков, 1978; Дмитриев, 1995; Израэль, 1984; Кирпатовский, 1974; Обухов, 1988). Наиболее значимые отрасли промышленности, способствующие загрязнению ТМ, являются тепловые электростанции (ТЭС), черная и цветная металлургия, добыча твердого и жидкого топлива, горно-обогатительные комплексы, стекольное, керамическое, электротехническое и другое производство (Бондарев, 1976; Ильин, 1991; Кикнавелидзе, 1988; Матвеев, 1997). В условиях быстрой урбанизации и индустриализации в течение последних нескольких десятилетий поступление ТМ в сельскохозяйственные почвы увеличилось благодаря интенсивной деятельности человека, связанной с использованием удобрений и пестицидов (Иванова, 1987; Карпова, 1990; Foy, 1978; Huang et al., 2015). В крупных городах с развитой многоцелевой промышленностью для окружающей среды характерно наличие не одного загрязнителя, а целых ассоциаций ТМ, при этом их воздействие на живые организмы носит комбинированный характер и суммарно увеличивается (Митрохин, 2001; Ревич, 2007).
На поверхность почвы ТМ поступают в форме оксидов, сульфатов, сульфидов и т.д. Основным источником поступления оксидов ТМ в окружающую среду являются предприятия по переработке руды и предприятия цветной металлургии (Горбатов,1983; Цаплина,1994). Лучше всего в загрязненных почвах исследованы 11 тяжелых металлов и
металлоидов: Cu, Zn, Pb, Ni, Cd, Cr, As, Mn, Co, Hg, Se. При этом, остальные ТМ (46 металлов) изучены в гораздо меньшей степени, несмотря на то, что среди них имеются токсичные: Ba, V, Tl (Водяницкий, 2011). Ион серебра является одной из наиболее токсичных форм ТМ, его превосходит только ртуть и, следовательно, относится к классу наивысшей токсичности вместе с кадмием, хромом (VI), медью и ртутью. Однако, удивительно, что токсичность серебра была исследована после всех других ТМ (Ratte, 1999).
Как известно, технофильность серебра за последние 50 лет растет с экспоненциальной скоростью и, по прогнозам, в ближайшее время будет только увеличиваться (Касимов, Власов, 2012). Тем не менее, сведений о содержании серебра в загрязненных почвах недостаточно, поэтому исследование данного элемента является важной задачей экологов и почвоведов. В загрязненных почвах содержание серебра по данным различных источников составляет от 8 мг/кг (Kabata-Pendias, 2010), 9 мг/ кг (Jones et al., 1986), 19,5 мг/кг (Асылбаев, Хабиров, 2013), 23 мг/кг (Пузанов и др., 2015), 35,9 мг/кг (Yildirim, Sasmaz, 2017), до 7000 мг/кг в почвах рудных месторождений (Дружинин, Карелина, 2008).
Существуют как природные, так и антропогенные источники
поступления серебра в окружающую среду. К природным источникам
относится вуканическая деятельность (Stimac et al., 1996). Основными
антропогенными источниками загрязнения серебром окружающей среды, в
том числе почв, являются выбросы теплоэлектростанций при сжигании угля
(Кизильштейн, Левченко, 2003; Крылов, 2012; Nordberg, Fowler, 1986; Nriagu,
1979; Xing et al. 2004), предприятий цветной и черной металлургии
(Медведская, 2009), цементных заводов (Пашкевич, Алексеенко, 2015),
полигоны твердых бытовых отходов (Щербакова, 2013), производство фото -
и электротехнических материалов (Eisler, 1996), обработка полей и
сельскохозяйственных угодий препаратами на основе серебра, в качестве
стимуляторов роста растений (Monica, Cremonini, 2009; Steinitz, Bilavendran,
2011) и ингибиторов фитопатогенов (Alavi, Dehpour, 2010), использование
11
осадков сточных вод в качестве удобрений и другие (Gottschalk, Nowack ,2009; Michels et al., 2017). Известно, что при сжигании угля в атмосферу поступает 50% от общей массы, содержащегося в нем серебра (Кизильштейн, Левченко, 2003). За период с 1952 по 1999 гг. Китай потреблял всего 18,4 млрд. тонн угля, за это время могло быть произведено путем сжигания угля около 3864 тонн серебра (Xing et al. 2004). В Дюнкерке, где работает сталелитейный завод, доминируют загрязнители, в ассоциации с железом, такие как Tl, Cs,Ba, Ag, Cu, Se, Mn, Pb (Водяницкий, Шоба, 2015). В Германии ежегодно производится 2 млн. тонн сухого осадка сточных вод с городских очистных сооружений. Около 30% ила используется как удобрение для сельскохозяйственных угодий (Schlich et al., 2013b). Концентрации серебра в удобрении по всему Китаю колеблются от 0,64 до 7,47 мг/кг, что в среднем составляет 3,58 мг/кг (Wua et al., 2018). Количество элемента в сельскохозяйственных культурах, в основном зависит от водного режима почвы и вида растений — например, при использовании ила в качестве удобрений концентрация серебра в пшенице составляли от 4,87 до 20,8 мкг/кг и были выше, чем в рисе (Wua et al., 2018). В окружающую среду серебро поступает в различных формах и соеденениях: в форме сульфатов, сульфидов (Ratte, 1999; Smith, Carson, 1977), а в последнее время в форме наночастиц (Girilal et al., 2015; Eivazi et al., 2018).
Наночастицы серебра являются наиболее часто используемыми в
потребительских товарах. Наноматериалы на основе наночастиц серебра
обладают мощными антибактериальными свойствами (Morones et al., 2005),
что делает их пригодными для производства пищевых контейнеров,
косметики, медицинских расходных материалов (бинты, хирургические
халаты, перевязочные материалы для ран), текстиля, лакокрасочных
покрытий, фильтров для воды, электроприборов (Blaser et al., 2008; Carbone
et al., 2016; Lombi et al., 2014; Monteiro et al., 2011; Ovais et al., 2018; Praveena
et al., 2018; Wijnhoven et al., 2009). Биоциды на основе серебра используют
для обработки помещений и строительных материалов с целью снижения
12
грибкового и бактериального роста (Ogar et al., 2015). Несомненно, это приводит к увеличению производства и, как следствие, увеличению рисков загрязнения окружающей среды. Производство инженерных наноматериалов в мире возрастет с 2 тыс. тонн в 2004 году до более 58 тыс. тонн в год в период с 2011 по 2020 год (Khanna, 2016).
Наночастицы серебра в окружающую среду поступают во время синтеза, переработки или утилизации продукции на их основе (Hedberg et al. ,2014; Künniger et al.,2014; Lombi, et al.2014). Мировое потребление наночастиц серебра составляет от 360 до 450 тонн в год (Lazareva, Keller, 2014; Zhang et al.,2016). В связи с широким использованием продукции на основе наночастиц серебра увеличивается риск загрязнения почвенного покрова и поверхностных вод (Benn, Westerhoff , 2008; Gottschalk et al.,2011; Kaegi et al., 2010; Nowack et al., 2012), поскольку элемент в такой форме способен выщелачиваться из исходного материала (Benn,Westerhoff, 2008; Geranio et al., 2009; Kaegi et al., 2010). Если токсическое действие широкого ряда металлов и нефтепродуктов на состояние почв России изучено многими авторами, то воздействие серебра и его соединений на почвы изучено недостаточно Minnikova et al., 2017).
1.2. Влияние загрязнения серебром на растительный и животный мир
водных экосистем
Серебро является вторым наиболее токсичным металлом для водных
организмов после ртути (Moreno-Gañido et al., 2015). Находясь в различных
формах, данный элемент способен оказывать влияние на растительный и
животный мир водных экосистем. В литературных источниках встречаются
данные о токсичности серебра для рыб (Bilberg et al., 2010; Griffitt et al.,
2012). Форель, подвергнутая воздействию AgNO3, накапливала большие
количества Ag в жабрах и плазме, демонстрировала прогрессивные потери
Na и Cl в плазме и имела повышенные концентрации глюкозы (Rose-Janes,
Playle, 2000). Экотоксичность для эмбрионов рыб проявляется в
фрагментации ДНК, снижении антиоксидантной защиты, и, как следствие, в
пороках развития и увеличении смертности (Sayeda, Solimanb, 2017), что,
вероятно, обусловлено окислительным стрессом и генотоксичностью
наночастиц. При исследовании токсического действия сферических и
плоских наночастиц Ag на эмбрионы рыб данио (Danio rerio) было
установлено, что нанопластины были более вредными, чем наносферы,
однако оба типа частиц показали более выраженный токсический эффект,
чем ионы серебра (AgNO3) (Abramenko et al., 2018). Ракообразные были
более чувствительны к наночастицам серебра (EC50<0,1 мг/ л), чем рыбы
(EC50 = 7,1 мг /л) (Kahm, Duborn-guie^ 2010; Ashgari et al., 2012).
Экотоксичность серебра заключалась в повышении смертности
ракообразных (Amphibalanus amphitrite и Artemia salina) (Gambardella et al.,
2015). В исследовании, проведенном I. Blinova с соавторами (2013), нитрат
серебра проявил большую экотоксичность в отношении ракообразных
(Daphnia magna и Thamnocephalus platyurus), чем наночастицы. Серебро в
наноформе оказывало токсическое воздействие на все этапы развития
эмбрионов морского ежа (Strongylocentrotus droebachiensis) (Magesky,
Pelletier, 2015), у иглокожих (Paracentrotus lividus) снижалась подвижность
сперматозоидов (Gambardella et al., 2015). Экотоксичность проявлялась в
14
обездвиживании эфира медуз стрекающих (Aurelia aurita), которые оказались наиболее чувствительными видами (Gambardella et al., 2015). Исследования, проведенные с пресноводными олигохетами (Lumbriculus variegatus), которые подвергались воздействию сульфида серебра Ag2S (444 мг/кг) в течение 28 дней, показали, что биоаккумуляции серебра практически нет (Hirsch, 1998). Причиной, очевидно, была низкая биодоступность почти нерастворимого сульфида серебра.
Многочисленные исследования токсического воздействия серебра на
организмы в водной среде показали, что серебро оказывает сильное
губительное воздействие на водоросли (Marshall et al., 2005; Moreno-Garrido
et al., 2015). Примечательно, что одной из групп водных организмов,
наиболее затронутых при изучении влияния наночастиц серебра, были
водоросли. Это наблюдение заслуживает внимания, поскольку планктонные
микроводоросли, как первичные производители, являются ключевым
компонентом пищевой цепи в водных экосистемах. Кроме того, многие виды
водорослей служат непосредственно в качестве источника пищи для
зоопланктона, который впоследствии потребляется другими
беспозвоночными или рыбами. Изменения в структуре и продуктивности
сообщества водорослей могут вызывать прямые структурные изменения в
остальной части экосистемы и / или косвенно влиять на экосистему, влияя на
качество воды (Nyholm, Petersen 1997). Экотоксичность наночастиц серебра
заключалась в снижении роста водорослей (Dunaliella tertiolecta, Skeletonema
costatum) (Gambardella et al., 2015). Водоросли обладают необычайным
потенциалом накопления растворенных (<0,2 мкм размер частиц) тяжелых
металлов, особенно серебра. Поглощение, транслокация и накопление
наночастиц серебра в клетках зависят от клеточной структуры,
проницаемости, а также размера частиц (Carlson et al., 2008; Li et al., 2015).
Клеточная стенка водорослей работает как полупроницаемое сито и
задерживает более крупные частицы серебра, позволяя переход более мелких
(Navarro et al., 2008). Небольшой размер частиц и большая площадь
15
поверхности позволяют им проходить через поры клеточной стенки и в
конечном итоге достигать плазматической мембраны (Samberg et al., 2011).
Сообщалось, что из-за влияния наночстиц серебра на клетки водорослей
вновь образовавшиеся поры гораздо больше, чем предыдущие, и это может
спровоцировать увеличение поглощения наночастиц в клетках водорослей
(Navarro et al., 2008). Размеры пор в клеточной стенке, через которые может
пропускаться одна наночастица, составляют от 5 до 20 нм. Однако
взаимодействие с наночастицами создает новые, более крупные поры в
клеточной стенке и, следовательно, повышает эффективность прохождения
частиц внутрь клетки (Carlson et al., 2008). После перехода через клеточную
стенку наночастицы серебра (AgNPs) входят в плазматическую мембрану
(Leonardo et al., 2015; Navarro et al., 2008). Кроме того, ионные каналы или
транспортные белки также могут использоваться наночастицами как способ
входа в клеточную мембрану (Mueller, Nowack, 2008). После входа в клетку
наночастицы присоединяются к различным клеточным органеллам,
например, к эндоплазматическому ретикулуму, телам Гольджи и
эндолизосомальной системе, происходит набухание эндоплазматического
ретикулума и вакуолярные изменения. После достижения клеточных
органелл происходит нарушение обменных процессов, усиливается
производство реактивных форм кислорода и изменяются биохимические
процессы в клетке (Miao et al., 2010). Наночастицы серебра в различных
концентрациях проявляют токсические эффекты, поскольку высвобождают
ионы серебра, оказывая неблагоприятное воздействие на сообщество
водорослей. Структурные и функциональные свойства клетки водорослей
могут быть подвержены серьезным изменениям, которые вызванны этими
наночастицами. Экотоксичность индуцируется за счет снижения содержания
хлорофилла, жизнеспособного количества клеток, увеличения количества
реактивных видов кислорода и перекисного окисления липидов (Dewez,
Oukarroum, 2012; Li et al., 2015; Marshall et al., 2005; Miao et al., 2010).
Уменьшается воспроизводство водорослей, потому что клетки все чаще
16
подвергаются окислительному стрессу (Ribeiro et al., 2014; Roh et al., 2009). И как следствие происходит значительное уменьшение объема морской биопленки и биомассы (Fabrega et al., 2011). При сравнении токсичности различных форм серебра, по результатам многочисленных исследований показано, что наночастицы серебра более токсичны для водорослей по сравнению с ионами металлического серебра (Marshall et al., 2005; Moreno-Garrido et al., 2015; Ribeiro et al., 2014; Roh et al., 2009). При исследовании токсичности наночастиц серебра различных размеров (10, 20, 40, 60 и 80 нм) для клеток бактерий, дрожжей, водорослей, ракообразных и млекопитающих in vitro авторами был отмечено, что более мелкие наночастицы обладают большей экотоксичностью, чем более крупные. Однако нитрат серебра оказался токсичнее всех протестированных AgNPs (Ivask et al., 2014).
Известно, что ионы серебра ингибируют ферменты для циклов P, S и N нитрифицирующих бактерий: на 39% для фосфатазы при 10 мкмоль / г, на 96% для арилсульфатазы в концентрации 25 мкмоль/г, и на 93% для уреазы при 5 мкмоль/г (Ratte,1999). Известно, что для аммиачно-окисляющих бактерий (АОБ), наночастицы серебра в 45 раз токсиченее наночастиц железа. Они способны прикрепляться к поверхности бактерий, уменьшая тем самым проницаемость мембраны. Концентрация серебра, равная 30 мг/л, способствует снижению активности аммиачно-окисляющие бактерий на 90%, для снижения активности АОБ на 50% доза составила 10,75 мг/л. (Michels et al. 2017). Ионы серебра оказались более токсичны для бактерий (Pseudomonasputida) чем наночастицы серебра (Dams et al., 2011).
1.3. Влияние загрязнения серебром на растительный и животный мир
наземных экосистем
В связи с интенсивным ростом и развитием нанотехнологий, в последние годы значительно возрасло и продолжает нарастать поступление наночастиц серебра в окружающую среду (Khanna, 2016). При этом их влияние на растения, животных и микроорганизмы, как следствие, приводит к нарушению баланса в экосистеме. В последние годы увеличилось количество исследований, изучающих экотоксичность и биодоступность серебра для живых организмов в почвенной среде. Однако исследования такого рода остаются редкими, по сравнению с исследованиями, изучающими экотоксичность этого элемента в водной среде.
Известно, что ионы серебра являются очень токсичными для живых организмов (Ratte, 1999). Влияние серебра на наземных животных исследовано в основном на лабораторных моделях. По словам C. Sun с соавторами (2016) наночастицы серебра способствуют увеличению активности генерации внутриклеточных активных форм кислорода (АФК) и каспазы в астроцитах головного мозга крысы, приводя к запрограммированной гибели клеток, в то время как ионы серебра нарушают целостность клеточной мембраны и в основном вызывают некроз клеток. Наночастицы серебра (AgNPs) вызывают нейровоспаление, вызывая секрецию множества цитокинов. При исследовании нейротоксичности в астроцитах головного мозга крысы ионы серебра были значительно более токсичными, чем наночастицы. Было так же обнаружено повышенное содержание серебра в печени птиц, питающихся загрязненной серебром пищей (Ratte, 1999). Известно, что почвенные организмы являются индикаторами изменений, которые происходят в почве в результате антропогенного влияния, и показателями ее качества.
Серебро оказывало токсическое воздействие на выживание, рост, и размножение дождевого червя (Lumbricus rubellus) (Heckmann et al., 2011;
Makama et al., 2016; Schlich et al., 2013a; Shoults-Wilson et al., 2011a, 2011b;
18
Tsyusko et al., 2012). Дождевые черви, подвергшиеся воздействию нитрата серебра (AgNO3), накапливают значительно более высокие концентрации серебра Ag, чем те, которые подвергаются воздействию наночастиц серебра (Shoults-Wilson et al. 2011). В исследовании J.M. Beglinger и C.J. Ruffing (1998) Lumbricus rubellus подвергались воздействию сульфида серебра в концентрации 2000 мг/кг почвы в течение 14 дней, и никаких побочных эффектов не наблюдалось. Известен случай, когда наночастицы серебра в почвенной среде ингибировали рост и размножение нематод (Caenorhabditis elegans) (Moon et al., 2019).
Похожие диссертационные работы по специальности «Экология (по отраслям)», 03.02.08 шифр ВАК
Изменение эколого-биологических свойств чернозема обыкновенного при загрязнении тяжелыми металлами второго класса опасности (Mo, Co, Cr, Ni)2006 год, кандидат биологических наук Евреинова, Алена Владимировна
Изменение эколого-биологических свойств чернозема обыкновенного при загрязнении тяжелыми металлами2008 год, кандидат биологических наук Пономарева, Светлана Викторовна
Влияние сочетанного химического и электромагнитного загрязнения на биологические свойства почв2013 год, кандидат наук Мазанко, Мария Сергеевна
Изменение эколого-биологических свойств почв юга России при загрязнении нефтью2009 год, кандидат биологических наук Азнаурьян, Диана Карповна
Оценка устойчивости почв аридных экосистем к химическому загрязнению2020 год, кандидат наук Дауд Рама Мухаммад
Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Цепина Наталья Игоревна, 2020 год
Список литературы
1. Акименко Ю.В., Казеев К.Ш., Колесников С.И. Устойчивость микробоценоза чернозема обыкновенного североприазовского к загрязнению антибиотиками // Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Серия: Естественные науки. 2016. №1(189). С. 39-44.
2. Алексеенко В.А. Алексеенко А.В. Химические элементы в геохимических системах. Кларки почв селитебных ландшафтов: монография Ростов н/Д: Издательство Южного федерального университета, 2013. 380 с.
3. Антропогенная эволюция черноземов / Под ред. акад. РАСХН А.П. Щербакова и канд. биол. наук И.И. Васенева. Воронеж: ВГУ. 2000. 415 с.
4. Асылбаев И.Г., Хабиров И.К. Концентрация химических элементов в почвах и породах Республики Башкортостан // Вестник Ульяновской ГСХА. 2013. № 2. С.11-16.
5. Бабьева М.А., Зенова Н.К. Биология почв. М.: Изд-во МГУ, 1989. 336 с.
6. Бакинова, Т.И Почвы Республики Калмыкия. Элиста / Т.И. Бакинова., И.П. Воробьева., Е.А. Зеленская.- Изд - во СКНцВШ, 1999. -116 с.
7. Безуглова О.С., Маркова Г.А. Почвенно-экологическая ситуация в городе Железноводске // Живые и биокосные системы. 2017. - № 21. -С. 1-15.
8. Бирюкова О.А., Божков Д.В., Носов В.В. Сравнительная характеристика методов определения содержания подвижного фосфора в черноземе обыкновенном карбонатном // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2014. № 103. С. 632-643.
9. Богдановский Г.А. Химическая экология. М.: Изд-во МГУ, 1994. 237 с.
10. Большаков В.А., Гальпер Н.Я., Клименко Г.А., Лычкина Т.И. Загрязнение почв и растительности тяжелыми металлами. М.: Гидрометеоиздат 1978.49 с.
11. Бондарев Л.Т. Ландшафты, металлы и человек. М.:Мысль, 1976. 153 с.
12. Вальков В.Ф. Генезис почв Северного Кавказа. Ростов н/Д: Изд-во Ростовского университета, 1977. 159 с.
13. Вальков В.Ф., Казеев К.Ш., Колесников С.И. Почвы Юга России. Ростов-на-Дону: Изд-во «Эверест», 2008. 276 с.
14. Вальков В.Ф., Казеев К.Ш., Колесников С.И. Почвы юга России: классификация и диагностика. Ростов н/Д: Изд-во СКНЦ ВШ, 2002. 168 с. 322
15. Водяницкий Ю. Н. Тяжелые металлы и металлоиды в почвах. М.: ГНУ Почвенный институт им. В. В. Докучаева РАСХН, 2008. 86 с.
16. Водяницкий Ю.Н. Об опасных тяжелых металлах/металлоидах в почвах. Бюллетень Почвенного института имени В.В. Докучаева. 2011. № 68. С. 56-82. doi.org/10.19047/0136-1694-2011-68-56-82.
17. Водяницкий Ю.Н., Шоба С.А. Магнитная восприимчивость как индикатор загрязнения тяжелыми металлами городских почв (Обзор литературы) // Вестник Моск. Ун-та Сер. 17. Почвоведение. 2015. № 1. С.13-20.
18. Вольский Н.Н., Селедцов В.И., Любимов Г.Ю. Иммуномодулирующие свойства коллоидного серебра // Коллоидное серебро. Физико-химические свойства. Применение в медицине. Новосибирск: Ин-т катализа им. Г.К. Борескова, Сиб. Отд. РАН. , 1992. С. 31-52.
19. Галстян А.Ш. Унификация методов исследования активности ферментов почв // Почвоведение. - 1978. - №2. - С.107-114.
20. Герасимовский В.И. Геохимия Илимауссакского щелочного массива (юго-западная Гренландия) / В.И. Герасимовский. М.: Наука, 1969. — 174 с.
21. Гигиеническая оценка почвы населенных мест (методические указания)/ Сысина А.Н., Марциновский Е.М..-М.: Минздрав России, 1999.-55 с.
22. Глазовская М.А. Геохимия природных и техногенных ландшафтов СССР. М.: Высш. шк., 1988. 328 с.
23. Головлёв А.А., Головлёва Н.М. Почвы Чечено-Ингушетии. - Грозный: Книга, 1991.-352 с.
24. Горбатов В.С. Трансформация соединений цинка, свинца, кадмия в почвах. Дис. ... канд. Биол. Наук. М., 1983. 163 с.
25. Горбов С.Н., Безуглова О.С., Алексикова А.С., Тагивердиев С.С., Дубинина М.Н., Шерстнев А.К. Содержание и распределение тяжелых металлов и мышьяка в почвах Ростова-на-Дону // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 4. С. 1-14.
26. Дауд Р.М., Колесников С.И., Кузина А.А., Казеев К.Ш., Акименко Ю.В. Влияние модельного загрязнения селеном на биологические свойства аридных почв юга России // Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Серия: Естественные науки. 2019. № 2. С. 90-96.
27. Денисова Т.В., Казеев К.Ш., Колесников С.И., Вальков В.Ф. Изменение ферментативной активности и фитотоксических свойств почв Юга России под влиянием СВЧ-излучения // Агрохимия, 2011. № 6. С. 4954.
28. Денисова Т.В., Колесников С.И. Влияние СВЧ-изучения на ферментативную активность и численность микроорганизмов почв Юга России // Почвоведение. 2009. № 4. С. 479-483.
29. Дегтярева Е. Т., Жулидова А. Н. Почвы Волгоградской области -Волгоград: Ниж.-Волж. кн. изд-во, - 1970. - 319 с.
30. Дмитриев Е.А. Математическая статистика в почвоведении. М.: Изд-во МГУ, 1995. 320 с.
31. Дружинин А.В., Карелина Е.В. Основные типы промышленных месторождений серебра // Вестник РУДН: Серия инженерные исследования. 2008. № 1. С. 35-41.
32. Зайцева О.Е. Особенности накопления микроэлементов в плаценте и пуповине при нормальной и осложненной гестозом беременности -автореферат Дисс... .канд .мед. наук / Зайцева О. Е - М.,2006 г.
33. Иванова A.C. Медь в почвах садовых агроценозов Крыма // Агрохимия. 1987. №10. С.76-82.
34. Израэль Ю.А. Экология и контроль состояния природной среды и пути их решения / Ю.А. Израэль. — Л.: Гидрометеоиздат, 1984. 560 с.
35. Ильин В.Б. Тяжелые металлы в системе почва — растение. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1991. 151 с.
36. Кабата-Пендиас А., Пендиас Х. Микроэлементы в почвах и растениях. М.: Мир, 1989. 439 с.
37. Казеев К.Ш., Колесников С.И., Акименко Ю.В., Даденко Е.В. Методы биодиагностики наземных экосистем. Ростов-на-Дону: Издательство ЮФУ.- 2016. - 356 с.
38. Казеев К.Ш. Опыт применения ферментативной активности в оценке экологического состояния почв природных и нарушенных территорий // Биодиагностика и оценка качества природной среды: подходы, методы, критерии и эталоны сравнения в экотоксикологии: М.: ГЕОС, 2016. С. 91-99.
39. Казеев К.Ш., Колесников С.И., Вальков В.Ф. Биологическая диагностика и индикация почв: методология и методы исследований. Ростов н/Д: Изд-во РГУ, 2003. 204 с.
40. Карпова Е. А., Потатуева Ю. А. Кадмий в почвах, растениях, удобрениях //Химизация сельского хозяйства, 1990, №2, с. 44-47.
41. Касимов Н. С. и др. Эколого-геохимические оценки городов // Вестник Моск. ун-та. Сер. 5. География. - 1990. - No 3. - С. 3-12.
42. Касимов Н.С., Власов Д.В. Технофильность химических элементов в начале XXI века// Вестник Московского Университета Сер. 5. География. 2012. N1. С. 15 - 22.
43. Касимов Н.С., Перельман А.И. Геохимические принципы эколого-географической систематики городов // Экогеохимия городских ландшафтов. / Под ред. Н.С. Касимова - М., 1995. - С. 20-36.
44. Кизильштейн Л.Я., Левченко С.В. Элементы примеси и экологические проблемы угольной энергетики // Теплоэнергетика. - 2003. - 12. -С.14-19.
45. Кикнавелидзе Т. А. Загрязнение почв тяжелыми металлами вокруг промышленных предприятий Восточной Грузии // Тяжелые металлы в окружающей среде и охрана природы: Матер. II Всесоюз. Конф. М.:, 1988 41, с. 92-96.
46. Кирпатовский И.П. Охрана природы: Справочник. М.: Химия, 1974. 207 с.
47. Классификация и диагностика почв СССР. М., «Колос», 1977.
48. Ковда В.А. Биогеохимия почвенного покрова. - М.: Наука, 1985.- 263с.
49. Колесников С.И. Агроэкологические аспекты загрязнения почв тяжелыми металлами // Диссертация на соискание ученой степени доктора сельскохозяйственных наук. Ростов-на-Дону, 2001. 329 с.
50. Колесников С.И., Евреинова А.В., Казеев К.Ш., Вальков В.Ф. Изменение эколого-биологических свойств чернозема обыкновенного при загрязнении тяжелыми металлами второго класса опасности (Сг, Со, М, Мо) // Почвоведение. 2009. № 8. С. 1007-1013.
51. Колесников С.И., Казеев К.Ш., Вальков В.Ф. Влияние загрязнения тяжелыми металлами на эколого-биологические свойства чернозема обыкновенного // Экология. 2000. № 3. С. 193-201.
52. Колесников С.И., Казеев К.Ш., Вальков В.Ф. Экологическое состояние и функции почв в условиях химического загрязнения. Ростов н/Д: Изд-во Ростиздат, 2006. 385 с.
53. Колесников С.И., Тимошенко А.Н., Казеев К.Ш., Акименко Ю.В., Мясникова М.А. Оценка экотоксичности наночастиц меди, никеля и цинка по биологическим показателям чернозема // Почвоведение. 2019. N8. С. 986-992.
54. Колесников С.И., Ярославцев М.В., Спивакова Н.А., Казеев К.Ш. Сравнительная оценка устойчивости биологических свойств черноземов юга России к загрязнению Cr, Cu, Ni, Pb в модельном эксперименте // Почвоведение. 2013. N2. С. 195. doi: 10.7868/S0032180X13020081.
55. Крылов Д.А. Негативное воздействие микроэлементов, содержащихся в углях, в золошлаковых отвалах и в золе-уносе угольных ТЭС, на окружающую среду и здоровье людей: Препринт НИЦ «Курчатовского института». М., 2012. 37с.
56. Ладонин Д.В., Решетников С.И., Садовникова Л.К., Нежданова А.А. Активность ионов меди в загрязненных и фоновых почвах в условиях модельного эксперимента // Почвоведение. 1994. № 8. С. 46-52.
57. Матвеев Н. М., Павловский В. А., Прохорова Н. В. Экологические
основы аккумуляции тяжелых металлов сельскохозяйственными растениями в лесостепном и степном Поволжье. Изд-во «Самар. ун-та», 1997 год, 215 с.
58. Медведская О.О. Исследование комплексного влияния металлургических предприятий на экологическое состояние г. Новокузнецка // Записки горного института. 2009. С. 173-175.
59. Минкина Т.М., Манджиева С.С., Чаплыгин В.А., Назаренко О.Г., Максимов А.Ю., Замулина И.В., Бурачевская М.В., Сушкова С.Н. Аккумуляция тяжелых металлов разнотравной степной растительностью по данным многолетнего мониторинга // Аридные экосистемы. 2018. Т. 24. № 3 (76). С. 43-55.
60. Минкина Т.М., Федоров Ю.А., Невидомская Д.Г., Польшина Т.Н.,
Манджиева С.С., Чаплыгин В.А. Тяжелые металлы в почвах и
114
растениях устья реки Дон и побережья Таганрогского залива // Почвоведение. 2017. № 9. С. 1074-1089.
61. Минникова Т.В., Сушкова С.Н., Манджиева С.С., Минкина Т.М., Колесников С.И. Оценка влияния бенз(а)пирена на биологическую активность чернозема Ростовской области // Известия Томского политехнического университета. Инжиниринг георесурсов. - 2019. - Т. 330. - № 12. - С. 91-102.
62. Митрохин О.В. Оценка транслокального загрязнения как составная часть социально-гигиенического мониторинга / О.В. Митрохин // Здоровье населения и среда обитания. 2001. - № 9. - С. 11-14.
63. Мищенко В.П. Токсичные металлы и беременность / Российский вестник перинатологии и педиатрии. 1997. №6. С.59.
64. Мосин О.В., Игнатов И. Коллоидное серебро в бионанотехнологии // Биотехносфера. 2012. № 5-6(23-24). С. 49-55.
65. Обухов А.В. Влияние колларгола на иммунные реакции in vitro // Коллоидное серебро. Физико-химические свойства. Применение в медицине. Новосибирск: Ин-т катализа им. Г.К. Борескова, Сиб. Отд. РАН. , 1992. Т. 53. С. 53-56.
66. Обухов А.И., Ефремова JI.JI. Охрана и рекультивация почв, загрязненных тяжелыми металлами // Тяжелые металлы в окружающей среде и охрана природы: Тез. докл. /2 Всес.конф. М., 1988 4.1. С.23-26.
67. Пашкевич М.А., Алексеенко А.В. Мониторинг загрязнения почв в районе воздействия ОАО «Новоросцемент» // Горный информационно -аналитический бюллетень (научно-технический журнал). 2015. С. 369375.
68. Попович А.А. Изменения эколого-биологических свойств почв юга России при загрязнении фтором // Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Естественные науки. 2005. №4. С. 95.
69. Приваленко В.В. Геохимическая оценка экологической ситуации в г. Ростове-на-Дону. Ростов-на-Дону, 1993. 167 с.
70. Пузанов А.В., Бабошкина С.В, Алексеев И.А, Салтыков А.В. Особенности накопления и распределения тяжелых металлов и мышьяка в системе огородные почвы-овощные культуры в районе строительства космодрома «Восточный» (Бассейн р. Зея, Амурская область) // Агрохимия. 2015. № 2. С. 86-96.
71. Ревич Б.А. «Горячие точки» химического загрязнения окружающей среды и здоровье населения России / под ред. В.М. Захарова. — М.: Акрополь, Общественная палата РФ, 2007. — 192 с.
72. Реутова, Н.В. Мутагенный потенциал ряда тяжелых металлов. / Н.В. Реутова // Экологическая генетика. 2015. Т. 13. № 3. С. 70-75.
73. Рощин А.В., Орджоникидзе Э.К. Серебро - некоторые аспекты его токсикокинетики // Гигиена труда и проф. заболеваний.1984. №10. С. 31-52.
74. Сазыкина М.А., Сазыкин И.С., Хаммами М.И., Кудеевская Е.М., Селиверстова Е. Ю. Биосенсорный анализ антропогенного загрязнения донных отложений Нижнего Дона // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. - 2016. - Т.12. - № 1. - С. 5-11.
75. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 2.1.4.1074-01(с изменениями от 7 апреля 2009 г.,25 февраля,28 июня 2010г.,2 апреля 2018г.) / Минздрав России. М.,2002. 62 с.
76. Сидоренко Г.И., Кутепов Е.Н. Проблемы изучения и оценки состояния здоровья населения. / Г.И Сидоренко, Е.Н. Кутепов // Гиг. и сан. - 1994. - №8. - С.33-36.
77. Строганова М.Н., Мягкова А.Д., Прокофьева Т.В. Роль почв в горо-де // Почвоведение. 1997 . №1 С. 96-101.
78. Судьина Л.В., Цепина Н.И., Минникова Т.В., Колесников С.И. Влияние
загрязнения висмутом на фитотоксичность почв юга России. Ученые
116
записки Крымского федерального университета имени В. И. Вернадского Биология. Химия. 2019. № 3. С. 110-121.
79. Теплая Г.А. Тяжелые металлы как фактор загрязнения окружающей среды (Обзор литературы) // Астраханский вестник экологического образования- 2013.- № 1 (23). С. 182-192.
80. Хазиев Ф.Х. Методы почвенной энзимологии. М.: Наука, 1990.189 с.
81. Цаплина М.А. Транформация и транспорт оксидов свинца, кадмия и цинка в дерново - подзолистой почве // Почвоведение. 1994. № 1. С. 4550.
82. Цепина Н.И., Судьина Л.В., Минникова Т.В., Колесников С.И. Влияние загрязнения серебром на активность каталазы черноземов, бурых лесных почв и серопесков // Ученые записки Крымского федерального университета им. В.И. Вернадского. Биология. Химия. - 2020 - Т. 6 (72), N0. 2. - С.259-266. ёо1: 10.37279/2413-1725-2020-6-2-259-266
83. Шеуджен А.Х. , Хурум Х.Д., Лебедовский И.А. Микроэлементы и формы их соединений в почвах Кубани. Майкоп: Полиграфиздат, 2008. 56 с.
84. Шеуджен А.Х. Агрохимия чернозема / А. Х. Шеуджен.- Майкоп: Полиграф - Юг, 2015. 232 с.
85. Шеуджен А.Х. Биогеохимия. Майкоп: ГУРИПП «Адыгея» , 2003. 1028 с.
86. Щербакова Е. В. Экологическое состояние почв и техногенных грунтов свалки города Славянска-на-Кубани // Экологические проблемы промышленных городов: сб. науч. тр. Саратов, 2013. С.106-107.
87. Яковлев А.С., Гучок М.В. Вопросы комплексной оценки и нормирования в области охраны окружающей природной среды // Нормативное и методическое обеспечение экологического мониторинга и контроля в пределах зоны антропогенного воздействия хозяйствующих субъектов на окружающую среду. - М.: Изд-во МГУ, 2007. - С. 10-18.
88. Abd-Alla M. H., Nafady N.A., Khalaf D. M. Assessment of silver nanoparticles contamination on faba bean-Rhizobium leguminosarum bv. viciae-Glomus aggregatum symbiosis: Implications for induction of autophagy process in root nodule Agriculture // Ecosystems & Environment. 2016. V. 218. P. 163-177. doi.org/10.1016/j.agee.2015.11.022.
89. Abramenko N. B. , Demidova T. B., Abkhalimov E.V., Ershov B. G., Krysanov E. Y., Kustov L. M. Ecotoxicity of different-shaped silver nanoparticles: Case of zebrafish embryosl // Journal of Hazardous Materials. 2018. V. 347. P. 89-94. doi: 10.1016/j.jhazmat.2017.12.060.
90. Akimenko Yu.V., Kazeev K. Sh., Kolesnikov S.I. Assessment of Chernozem Environmental and Agricultural Capabilities' Resistance to Antibiotic Contamination // Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. Vol. 9 (7). 2017. P. 1031-1034.
91. Alavi S., Dehpour A. Evaluation of the nanosilver colloidal solution in comparison with the registered fungicide to control greenhouse cucumber downy mildew disease in the north of Iran // Acta Hortic. 2010. № 877. P. 1643-1646. doi.org/10.17660/ActaHortic.2010.877.226.
92. Anjum N.A., Gill S.S., Duarte A.C., Pereira E., Ahmad I. Silver nanoparticles in soil-plant systems // Journal of Nano Research. 2013. V. 15. P. 1-26. doi: 10.1007 / s11051-013-1896-7.
93. Aquatic Toxicology. 2000 V. 51(1). P. 1-18. doi:10.1016/s0166-445x(00)00103-x.
94. Ashgari S., Johari S.A., Lee J.H., Kim Y.S., Jeon Y.B., Choi H.J., Moon M.C., Yu J. The toxicity of various silver nanoparticles for silver ions in Daphnia magna // Journal of Nanobiotechnology. 2012. V. 10. № 14. doi.org/10.1186/1477-3155-10-14.
95. Aslani F., Bagheri S., Muhd Julkapli N., Juraimi A.S., Hashemi F.S.G., Baghdadi A. Effects of engineered nanomaterials on plants growth: An overview // Scientific World Journal. 2014. V. 2014. P. 28. doi: 10.1155/2014/641759.
96. ATSDR (1990) Toxicological profile for silver. Atlanta, Georgia, United States Department of Health and Human Services, Toxic Substances and Disease Control Agency (TP-90-24).
97. Aueviriyavit S., Phummiratch D., Maniratanachote R. Mechanistic study on the biological effects of silver and gold nanoparticles in
CaCO-2 cells -
induction of the Nrf2/HO-1 pathway by high concentrations of silver nanoparticles // Toxicology Letters. 2014. V. 224. N1. P.73-83. doi: 10.1016/j.toxlet.2013.09.020.
98. Beddow J., Stolpe B., Cole P., Lead J.R., Sapp M., Lyons B.P., Colbeck I., Whitby C. Effects of engineered silver nanoparticles on the growth and activity of ecologically important microbes // Environmental Microbiology Reports.2014. Vol. 6 (5). - P. 448-458.
99. Beer C., Foldbjerg R., Hayashi Y., Sutherland D.S., Autrup H. Toxicity of silver nanoparticles-Nanoparticle or silver ion? // Toxicology Letters. 2012. V. 208. P. 286-292. doi: 10.1016/j.toxlet.2011.11.002.
100. Beglinger J.M., Ruffing C.J. 1998. Effects of silver sulfide on the terrestrial earthworm. Proceedings, 5th Argentum International Conference on the Transport, Fate, and Effects of Silver in the Environment, Hamilton, ON, Canada, September 28-October 1, 1997.
101. Behra R., Sigg L., Clift M.J.D., Herzog F.,Minghetti M., Johnston B., Rothen-Rutishauser B. Bioavailability of silver nanoparticles and ions: from a chemical and biochemical perspective // Journal of the Royal Society Interface. 2013. V. 10. № 87. P. 1-15. doi: org/10.1098/rsif.2013.0396.
102. Benn T., Cavanagh B., Histovski K., Posner J.D., Westerhoff P. The release of nanosilver from consumer products used in the home // Journal of Environmental Quality. 2010. V. 39. N6. P. 1875-82.
103. Benn T.M., Westerhoff P. Nanoparticle silver released into water from commercially available sock fabrics // Environmental Science & Technology. 2008. V. 42. P. 4133-4139. doi: 10.1021/es7032718.
104. Benoit R., Wilkinson K.J, Sauvé S. Partitioning of silver and chemical speciation of free Ag in soils amended with nanoparticles // Chemistry Central Journal. 2013. V. 7. N 75. doi: 10.1186/1752-153X-7-75.
105. Bezuglova O.S., Gorbov S. N., Tischenko S. A., Aleksikova A. S., Tagiverdiev S. S., Sherstnev A. K., Dubinina M. N. Accumulation and migration of heavy metals in soils of the Rostov region, south of Russia // Journal of Soils and Sediments. 2016. 16 (4). P. 1203-1213.
106. Bilberg K, Malte H, Wang T, Baatrup E. Silver nanoparticles and silver nitrate cause respiratory stress in Eurasian perch ( Perca fluviatilis ) // Aquatic Toxicology. 2010. V. 96. P. 159-165. doi.org/10.1016/j.aquatox.2009.10.019.
107. Blaser S., Scheringer M., MacLeod M., Hungerbuhler K. Estimation of cumulative aquatic exposure and risk due to silver: contribution of nanofunctionalized plastics and textiles // Science of the Total Environment. 2008. V. 390. № 2-3. P. 396-409. doi: 10.1016/j.scitotenv.2007.10.010.
108. Blinova I., Niskanen J., Kajankari P., Kanarbik L, Kyakinen A., Tenhu H., Pentinen O.-P., Kahru A. Toxicity of two types of silver nanoparticles for aquatic crustaceans Daphnia magna and Thamnocephalus platyurus // Environmental Science and Pollution Research. 2013. V.20. P. 3456 - 3463. doi: 10.1007/s11356-012-1290-5.
109. Borovicka J., Kotrba P. , Gryndler M. , Mihaljevic M. , Randa Z., Rohovec J. , Cajthaml T. , Stijve T. . Dunnh C. E. Bioaccumulation of silver in ectomycorrhizal and saprobic macrofungi from pristine and polluted areas // Science of The Total Environment. 2010. V.408. Iss. 13. P. 2733-2744.
110. Bowen H. J. M., Environmental Chemistry of the Elements, Academic Press, New York, 1979, 333 pp.
111. Brauner C.J., Wood C.M. Effect of long-term silver exposure on survival and ionoregulatory development in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) embryos and larvae, in the presence and absence of added dissolved organic
matter // Comp Biochem Physiol C Comp Pharmacol Toxicol. 2002. V. 133. P. 161-173. doi: 10.1016/s1532-0456(02)00144-8.
112. Butler K.S., Peeler D.J., Casey B.J., Dair B.J., Elespuru R.K. Silver nanoparticles: correlating nanoparticle size and cellular uptake with genotoxicity // Mutagenesis. 2015. Vol. 30 (4). P. 577-591. doi: 10.1093/mutage/gev020.
113. Calder A.J., Dimkpa C.O., McLean J.E., Britt D.W., Johnson W., Anderson A.J. Soil components mitigate the antimicrobial effects of silver nanoparticles towards a beneficial soil bacterium, Pseudomonas chlororaphis O6 // Science of The Total Environment. 2012. V. 429. P. 215-222. doi.org/ 10.1016/j.scitotenv.2012.04.049.
114. Cao C., Huang J., Ca W., Yan C., Liu J., Jiang Y. Effects of Silver Nanoparticles on Soil Enzyme Activity of Different Wetland Plant Soil Systems // Soil and Sediment Contamination: An International Journal. 2017. V. 26. Iss. 5. P. 558-567. doi.org/10.1080/15320383.2017.1363158.
115. Cao H., Liu H. Silver nanoparticles are modified films compared to biomedical infections associated with the device // Wiley Interdiscip. Rev. Nanomed. Nanobiotechnol. 2010. V. 2. P. 670-684. doi: 10.1002 / wnan.113.
116. Carbone M., Donia D. T., Sabbatella G., Riccarda A. Silver nanoparticles in polymeric matrices for fresh food packaging // Journal of King Saud University Science. 2016. V. 28. № 4. P. 273-279.
117. Carbone S., Vittori Antisari L., Gaggia F., Baffoni L., Di Gioia D., Vianello G., Nannipieri P. Bioavailability and biological effect of engineered silver nanoparticles in a forest soil // Journal of Hazardous Material. 2014. V. 280. P. 89-96. doi.org/10.1016/j.jhazmat.2014.07.055.
118. Carlson C., Hussain S.M., Schrand A.M.K., Braydich-Stolle L., Hess K.L., Jones R.L., Schlager J.J. Unique cellular interaction of silver nanoparticles: size-dependent generation of reactive oxygen species // J. Phys. Chemical
reagent. 2008. V. 112. P. 13608-13619. doi: 10.1021 / jp712087m.
121
119. Chen X., Schluesener H.J. Nanosiliver: nanoproduct in medical use // Toxicology Letters. 2008. V. 176. P. 1-12. doi: 10.1016 / j.toxlet.2007.10.00.004.
120. Choi O., Hu, Z. Size-dependent and reactive oxygen species nanoselective toxicity to nitrifying bacteria. Environ. Sci. Technol. 2008. V. 42. P. 45834588. doi: 10.1021 / es703238h.
121. Colman B.P., Arnaout C.L., Anciaux S., Gunsch C.K., Hochella M.F., Jr., Kim B., Lowry G.V., McGill B.M., Reinsch B.C., Richardson C.J. Low concentrations of silver nanoparticles in biosolids cause adverse ecosystem responses under realistic field scenario // PLoS ONE. 2013. V. 8. e57189. doi: 10.1371/journal.pone.0057189.
122. Cornelis G., Thomas D.C.M., McLaughlin M.J., Kirby J.K., Beak D.G., Chittleborough D. Retention and dissolution of engineered silver nanoparticles in natural soils // Soil Science Society of America Journal. 2012. V. 76. P. 891-902. doi: org/10.2136/sssaj2011.0360.
123. Coutris C., Joner E. J., Oughton D. H. Aging and soil organic matter content affect the fate of silver nanoparticles in soil // Science of The Total Environment. 2012. V. 420. P. 327-333. doi:org/10.1016/j.scitotenv.2012.01.027.
124. Crede B. Silber als aussers und inners Antisepticum. //Arch. Klin. chir. (1897) Bd. 55, Heft 4.
125. Cvjetko P., Milosic A., Domijan A-M., Vinkovic Vrcek I., Tolic S., Peharec Stefanie P., Letofsky-Papst I., Tkalec M., Balen B. Toxicity of silver ions and differently coated silver nanoparticles in Allium cepa roots // Ecotoxicology and Environmental Safety. 2017. V. 137. P. 8-28. doi: 10.1016/j.ecoenv.2016.11.009.
126. Cvjetko P., Zovko M., Stefanie P.P., Biba R., Tkalec M., Domijan A.M., Vrcek I.V., Letofsky-Papst I., Sikic S., Balen B. Phytotoxic effects of silver nanoparticles in tobacco plants // Environmental Science and Pollution
Research. 2018. V. 25 (6). P. 5590-5602.
122
127. Dams R.I., Biswas A., Olesiejuk A., Fernandes T., Christofi N. Silver nanotoxicity using a light-emitting biosensor Pseudomonas putida isolated from a wastewater treatment plant // Journal of Hazardous Materials. 2011. V. 195. P. 68-72. doi.org/10.1016/j.jhazmat.2011.08.013.
128. Das P., Barua Sh., Sarkar Sh., Chatterjee S.K., Mukherjee S. , Goswami L., Das S., Bhattacharya Sh., Karak N., Bhattacharya S.S. . Mechanism of toxicity and transformation of silver nanoparticles: Inclusive assessment in earthworm-microbe-soil-plant // Geoderma. 2018. V. 314. P. 73-84.
129. Dewez D., Oukarroum A. The effect of toxicity of silver nanoparticles on the photochemistry of photosystem II of the green alga Chlamydomonas reinhardtii, processed in light and dark conditions // Toxicol. Environ. Chemical reagent. 2012. V. 94 P. 1536-1546. doi: 10.1080 / 02772248.2012.712124.
130. Dietz K.-J., Herth S. Plant nanotoxicology // Trends in Plant Science. 2011. V. 16. P. 582-589. doi: 10.1016/j.tplants.2011.08.003.
131. Eisler R. Silver hazards to fish, wildlife and invertebrates. Synoptic survey. Washington, DC, US Department of the Interior, National Biological Service, Biological Report 32. 1996. 442 p.
132. Eivazi F., Afrasiabi Z., Jose E. Pedosphere Effects of Silver Nanoparticles on the Activities of Soil Enzymes Involved in Carbon and Nutrient Cycling // Pedosphere. 2018. V. 28. Iss. 2. P. 209-214. doi:org/10.1016/S1002-0160(18)60019-0.
133. Fabrega J., Zhang R., Renshaw J.C., Liu W.T., Lead J.R. Effect of silver nanoparticles on natural marine biofilm bacteria // Chemosphere. 2011. V. 85. P. 961 - 966. doi: 10.1016/j.chemosphere.2011.06.066.
134. Feng Q.L., Wu J., Chen G.Q., Cui F.Z., Kim T.N., Kim J.O. A mechanical study of the antibacterial effect of silver on Escherichia coli and Staphylococcus aureus // Journal of Biomedical Materials Research. 2000. V. 52. P. 662-668. doi: 10.1002 / 1097-4636 (20001215) 52: 4 <662 :: AID-JBM10> 3.0.C0; 2-3.
135. Fernandes J.P., Mucha A.P., Francisco T., Gomes C. R., Almeida C. M. R. Silver nanoparticles uptake by salt marsh plants - Implications for phytoremediation processes and effects in microbial community dynamics// Marine Pollution Bulletin. 2017. V. 119. Iss. 1. P. 176-183. doi.org/10.1016/j.marpolbul.2017.03.052.
136. Forstner C., Orton T. G., Wang P., Kopittke P.M., Dennis P.G. Soil chloride content influences the response of bacterial but not fungal diversity to silver nanoparticles entering soil via wastewater treatment processing // Environmental Pollution. 2019. V. 255. Part 2. 113274. doi.org/10.1016/j.envpol.2019.113274.
137. Foy C.D., Chaney R.L., White M.C., The physiology of metal toxicity in plants. Annu. Rev. Physiol. 1978. 29: 511-566.
138. Gaillet S., Rouanet J.M. Silver nanoparticles: Their potential toxic effects after oral exposure and underlying mechanisms - A review // Food and Chemical Toxicology. 2015. V. 77. P. 8-63. doi: 10.1016/j.fct.2014.12.019
139. Galazzi R. M., Arruda M. A. Z. Evaluation of changes in the macro and micronutrients homeostasis of transgenic and non-transgenic soybean plants after cultivation with silver nanoparticles through ionomic approaches // Journal of Trace Elements in Medicine and Biology. 2018. V. 48. P. 181187. doi: org/10.1016/j.jtemb.2018.04.004.
140. Galdiero S., Falanga A., Vitiello M., Cantisani M., Marra V., Galdiero M. Silver nanoparticles are potential antiviral agents // Molecules. 2011. V. 16. P. 8894-8918. doi: 10.3390 / molecules16108894.
141. Gambardella C., Costa E.,Piazza V., Fabbrocini A., Magi E., Faimali M., Garaventa F. Effect of silver nanoparticles on marine organisms belonging to different trophic levels // Marine Environmental Research. 2015. V. 111. P. 41-49. doi: 10.1016/j.marenvres.2015.06.001.
142. Gardea-Torresdey J. L., Rico C. M., White J. C. Trophic transfer, transformation, and impact of engineered nanomaterials in terrestrial
environments // Environmental Science and Technology. 2014. V. 48. P. 2526-2540. doi: 10.1021/es4050665.
143. Geranio L., Heuberger M., Nowack B. The behaviour of silver nanotextiles during washing // Environmental Science & Technology. 2009. V. 43. P. 8113-8118. doi.org/10.1021/es9018332.
144. Girilal M., Krishnakumar V., Poornima P., Fayazd M. A., Kalaichelvane P. T. A comparative study on biologically and chemically synthesized silver nanoparticles induced Heat Shock Proteins on fresh water fish Oreochromis niloticus // Chemosphere. 2015. V. 139. P. 461-468. doi: 10.1016/j.chemosphere.2015.08.005.
145. Gogoi S.K., Gopinath P., Paul A., Ramesh A., Ghosh S.S., Chattopadhyay A. Escherichia coli green fluorescent protein-expressing protein as a model system for studying the antimicrobial activity of silver nanoparticles // Langmuir. 2006. V. 22. P. 9322-9328. doi: 10.1021 / la060661v.
146. Gomathi M. , Rajkumar P.V., Prakasam A., Ravichandran K. Green synthesis of silver nanoparticles using Datura stramonium leaf extract and assessment of their antibacterial activity // Resource-Efficient Technologies. 2017. V.3. P. 280-284. doi:org/10.1016/j.reffit.2016.12.005.
147. Gorbov S. N., Bezuglova O. S., Varduni T. V., Gorovtsov A. V., S. S. Tagiverdiev, Hildebrant Yu. A. Genotoxicity and Contamination of Natural and Anthropogenically Transformed Soils of the City of Rostov on Don with Heavy Metals // Eurasian Soil Science. 2015. Vol. 48. No. 12. P . 13831392.
148. Gottschalk F., Nowack B. The release of engineered nanomaterials to the environment // Journal of Environmental Monitoring. 2011. V. 13. P. 11451155. doi: 10.1039/c0em00547a.
149. Gottschalk F., Sonderer T., Scholz R.W, Nowack B. Modeled environmental concentrations of engineered nanomaterials (TiO2, ZnO, Ag, CNT, Fullerenes) for different regions // Environmental Science & Technology. 2009. V. 43. P. 9216-9222. doi: 10.1021/es9015553.
125
150. Graf C., Vossen D.L., Imhof A., Blaaderen A. A. A General Method for Coating Colloidal Particles with Silica // Langmuir. 2003. V. 19. P. 66936700. doi: 10.1021 / la0347859.
151. Griffitt R.J., Brown-Peterson N.J., Savin D.A., Manning C.S., Boube I., Ryan R.A., Brouwer M. Effects of chronic nanoparticulate silver exposure to adult and juvenile sheepshead minnows ( Cyprinodon variegatus ) // Environmental Toxicology and Chemistry. 2012. V. 31. P. 160-167. doi.org/ 10.1002/etc.709.
152. Guo X., Li Y., Yan J., Ingle T., Jones M.Y., Mei N., Boudreau M.D., Cunningham C.K., Abbas M., Paredes A.M, Zhou T., Moore M.M., Howard P.C., Chen T. Cytotoxicity, depending on size and coverage, and genotoxicity of silver nanoparticles, assessed using standard in vitro assays // Nanotoxicology. 2016. V. 10 (9). P. 1373 - 1384. doi: 10.3109/17435390.2013.855827.
153. Hadrup N., Sharma A.K., Loeschner K. Toxicity of silver ions, metallic silver, and silver nanoparticle materials after in vivo dermal and mucosal surface exposure: A review // Regulatory Toxicology and Pharmacology. 2018. V. 98. P. 257-267. doi: 10.1016/j.yrtph.2018.08.007.
154. Hashimoto Y., Takeuchi S., Mitsunobu S., Ok Y.S. Chemical speciation of silver (Ag) in soils under aerobic and anaerobic conditions: Ag nanoparticles vs. ionic Ag // Journal of Hazardous Materials. 2017. V. 322. P. 318-324. doi:10.1016 / j.jhazmat.2015.09.001.
155. Heckmann L.H., Hovgaard M.B., Sutherland D.S., Autrup H., Besenbacher F., ScottFordsmand J.J. Limit-test toxicity screening of selected inorganic nanoparticles to the earthworm Eisenia fetida // Ecotoxicology. 2011. V. 20. P. 226-233. doi: 10.1007/s10646-010-0574-0.
156. Hedberg J., Skoglund S., Karlsson M.E., Wold S., Odnevall Wallinder I., Hedberg Y. Sequential studies of silver released from silver nanoparticles in aqueous media simulating sweat, laundry detergent solutions and surface
water // Environmental Science and Technology.2014. V. 48. № 13. P. 7314-7322. doi: 10.1021/es500234y.
157. Hirsch M.P. Availability of silver-borne sludge for crops // Environmental Toxicology and Chemistry. 1998. V. 17. P. 610-624. doi: org/10.1002/etc.5620170413.
158. Huang J., Cao C., Li R., Guan W. Effects of Silver Nanoparticles on Soil Ammonia-Oxidizing Microorganisms Under Temperatures of 25 and 5 °C // Pedosphere. 2018. V. 28. Iss. 4. P. 607-616. doi: org/10.1016/S1002-0160(18)60036-0.
159. Huang Y., Li T., Wu C., He Z., Japenga J., Deng M., Yang X. An integrated approach to assess heavy metal source apportionment in peri-urban agricultural soils // Journal of Hazardous Materials. 2015. V. 299. P. 540549. doi: 10.1016/j.jhazmat.2015.07.041.
160. Hussain S.M., Hess K.L., Gearhart J.M., Geiss K.T., Schlagera J.J. In vitro toxicity of nanoparticles in BRL 3A rat liver cells // Toxicology in Vitro. 2005. V. 19. Iss. 7. P. 975-983. doi: 10.1016/j.tiv.2005.06.034.
161. Iram F., Iqbal M. S. , Athar M. M. , Saeed M. Z., Yasmeen A., Ahmad R. Glucoxylan-mediated green synthesis of gold and silver nanoparticles and their phyto-toxicity study // Carbohydrate Polymers. 2014. V. 104. № 1. P. 29-33. doi: 10.1016 / j.carbpol.2014.01.002
162. Ivask A., Kurvet I., Kasemets K., Blinova I., Aruoja V., Suppi S., Vija H., Kakinen A., Titma T., Heinlaan M., Visnapuu M., Koller D., Kisand V., Kahru A., Size-dependent toxicity of silver nanoparticles to bacteria, yeast, algae, crustaceans and mammalian cells in vitro // PLoS One. 2014. 9. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0102108.
163. Jacobson A.R., McBride M.B., Baveye P., Steenhuis T.S. Environmental factors determining the trace-level sorption of silver and thallium to soils // Sci Total Environ. 2005. V. 345 (1-3). P. 191-205. doi: 10.1016 / j.scitotenv.2004.10.027.
164. Jana D., Mandal A., De G. High-power figure-modifying amplifiers that apply Ag alumina in alumina: a reliable and effective SERS method // ACS Applied Materials & Interfaces. 2012. V. 4. P. 3330-3334. doi: 10.1021 / am300781h.
165. Jiravova J., Tomankova K.B., Harvanova M., Malina L., Malohlava J., Luhova L., Panacek A., Manisova B., Kolarova H. The effect of silver nanoparticles and silver ions on mammalian and plant cells in vitro // Food and Chemical Toxicology. 2016. V. 96. P. 50-61. doi. org/10.1016/j.fct.2016.07.015.
166. Jones K.C, Davies B.E., Peterson P.J. Silver in Welsh soils: Physical and chemical distribution studies // Geoderma . 1986. V. 37. P. 157-174. doi:org/10.1016/0016-7061(86)90028-5.
167. Judy J. D., Kirby J. K., Creamer C., McLaughlin M. J., Fiebiger C., Wright C., Cavagnaro T. R., Bertsch P. M. Effects of silver sulfide nanomaterials on mycorrhizal colonization of tomato plants and soil microbial communities in biosolid-amended soil // Environmental Pollution. 2015. V. 206. P. 256-263. doi.org/10.1016/j.envpol.2015.07.002.
168. Kabata-Pendias A., Trace Elements in Soils and Plants. 4th Edition. Boca Raton, FL: Crc Presspp. 2010. 548 pp.
169. Kaczynski P., Lozowicka B., Hrynko I., Wolejko E. Behaviour of mesotrione inmaize and soil system and its influence on soil dehydrogenase activity // Science Total Environmental. 2016. N571, P.1079-1088, http ://dx.doi.org/10.1016/j.scitotenv.2016.07.100.
170. Kaegi R., Sinnet B., Zuleeg S., Hagendorfer H., Mueller E., Vonbank R., Boller M., Burkhardt M. Release of silver nanoparticles from outdoor facades // Environmental Pollution. 2010. V. 158 P. 2900-2905. doi: 10.1016/j.envpol.2010.06.009.
171. Kaegi R., Voegelin A., Sinnet B., Zuleeg S., Hagendorfer H., Burkhardt M., Siegrist H. Behavior of metallic silver nanoparticles in a pilot wastewater
treatment plant // Environmental Science & Technology. 2011. V. 45. P. 3902-3908. doi: 10.1021/es104189227.
172. Kahru A., Dubourguier H.C .From ecotoxicology to nanoecotoxicology // Toxicology. 2010. V. 269. P. 105 - 119. doi: 10.1016/j.tox.2009.08.016.
173. Kazeev K.Sh., Kozun' Yu.S., Kolesnikov S. I. Applying an integral index to evaluate the spatial differentiation of biological properties of soils along an aridity gradient in the South of Russia // Contemporary Problems of Ecology. Vol. 8.No. 1. 2015. pp. 91-98.
174. Khanna V. K. "Nanomaterials and their Properties," in Integrated Nanoelectronics. (New Delhi: Springer). 2016. P. 25-41.
175. Kim B, Park C.S., Murayama M, Hochella M.F. Discovery and characterization of silver sulfide nanoparticles in final wastewater products // Environmental Science & Technology. 2010. V. 44. P. 7509-7514.
176. Kim J.S., Kuk E., Yu K.N., Kim J.H., Park S.J., Lee H.J., Kim S.H., Park Y.K., Park Y.H., Hwang C., Kim Y., Lee Y., Jeong D.H., Cho M. Antimicrobial effects of silver nanoparticles // Nanomedicine. 2007. V. 3. P. 95-101. doi: 10.1016 / j.nano.2006.12.001.
177. Kim J.Y., Kim K.T., Lee B.G., Lim B.J., Kim S.D. Developmental toxicity of Japanese medaka embryos by silver nanoparticles and released ions in the presence of humic acid // Ecotoxicol Environ Saf. 2013. V. 92. P. 57-63. doi: 10.1016/j.ecoenv.2013.02.004.
178. Kim S. W., Jung J. H., Lamsal K., Kim Y. S., Min J. S., Lee Y. S. Antifungal effects of silver nanoparticles (AgNPs) against various plant pathogenic fungi // Mycobiology. 2012. V. 40. P. 53-58. doi:10.5941/MYCO.2012.40.1.053.
179. Klaine S.J., Alvarez P.J.J., Batley G.E., Fernandes T.F., Handy R.D., Lyon D.Y., Mahendra S., McLaughlin M.J., Lead J. R. Nanomaterials in the environment: behavior, fate, bioavailability and consequences // Environmental Toxicology and Chemistry. 2008. V. 27. P. 1825-1851. doi: org/10.1897/08-090.1.
180. Klitzke S., Metreveli G., Peters A., Schaumann G.E., Lang F. The fate of silver nanoparticles in soil solution -Sorption of solutes and aggregation // Science of the Total Environment. 2015. V. 535. P. 54-60. doi:org/10.1021/es103946g.
181. Kolesnikov S.I., Evreinova A.V., Kazeev K.Sh., and Val'kov V.F. Changes in the Ecological and Biological Properties of Ordinary Chernozems Polluted by Heavy Metals of the Second Hazard Class (Mo, Co, Cr, and Ni) // Eurasian Soil Science. 2009. V. 42. N. 8. P. 936-942. doi: 10.1134/S1064229309080122
182. Kolesnikov S.I., Kazeev K. Sh., Val'kov V.F, Ponomareva S.V. Ranking of Chemical Elements According to Their Ecological Hazard for Soil // Russian Agricultural Sciences. 2010. V. 36. N. 1. P. 32-34.
183. Kolesnikov S.I., Kazeev K.Sh., Akimenko Yu.V. Development of regional standards for pollutants in the soil using biological parameters // Environmental Monitoring and Assessment. 2019. N 191. P. 544.
184. Kolesnikov S.I., Kazeev K.Sh., Val'kov V.F. Effects of Heavy Metal Pollution on the Ecological and Biological Characteristics of Common Chernozem // Russian Journal of Ecology. 2000. V.31 N 3. P. 174-181.
185. Kolesnikov S.I., Kazeev K.Sh., Valkov V.F. Ecological Functions of Soils and the Effect of Contamination with Heavy Metals // Eurasian Soil Science. 2002. № 12. P. 1335-1340.
186. Kolesnikov S.I., Kazeev K.Sh., Valkov V.F. The Effect of heavy metal contamination on the microbial system in chernozem // Eurasian Soil Science. 1999. N 4. P. 459-465.
187. Kolesnikov S.I., Popovich A.A., Kazeev K.Sh., Val'kov V.F. The Influence of Fluorine, Boron, Selenium, and Arsenic Pollution on the Biological Properties of Ordinary Chernozems // Eurasian Soil Science. 2008. V. 41. N 4. p. 400-404. doi: 10.1134/S1064229308040066.
188. Kolesnikov S.I., Tsepina N.I., Sudina L.V., Minnikova T.V., Kazeev K.Sh.,
Akimenko Yu.V. Silver ecotoxicity estimation by the soils state biological
130
indicators // Applied and Environmental Soil Science. 2020. P. 1-9. doi: 10.1155/2020/1207210.
189. Kolesnikov S.I., Yaroslavtsev M.V., Spivakova N.A., Kazeev K.Sh. Comparative Assessment of the Biological Tolerance of Chernozems in the South of Russia towards Contamination with Cr, Cu, Ni, and Pb in a Model Experiment // Eurasian Soil Science. 2013. V. 46. N 2. P. 176-181.
190. Künniger T., Gerecke A.C., Ulrich A., Huch A., Vonbank R., Heeb M., Wichser A., Haag R., Kunz P., Faller M. Release and environmental impact of silver nanoparticles and conventional organic biocides from coated woodenfa?ades // Environ. Pollut. 2014. V. 184. P. 464-471. doi: 10.1016/j.envpol.2013.09.030.
191. Kuramae E., Gamper H., van Veen J., Kowalchuk G. Soil and plant factors driving the community of soil-borne microorganisms across chronosequences of secondary succession of chalk grasslands with a neutral pH // Microbiology Ecology. 2011. V. 77. Iss. 2. P. 285-294. doi:org/10.1111/j.1574-6941.2011.01110.
192. Lazareva A., Keller A.A. Estimating potential life cycle releases of engineered nanomaterials from wastewater treatment plants // ACS Sustainable Chemistry & Engineering. 2014. V. 2. P. 1656-1665. http://dx.doi.org/10.1021/sc500121w.
193. Leonardo T., Farhi E., Pouget S., Motellier S., Boisson A.M., Banerjee D., Rebeille F., den Auwer C., Rivasseau C. Silver accumulation in the green microalga Coccomyxa actinabiotis: toxicity, in situ speciation, and localization studied using synchrotron XAS, XRD, and TEM // Environmental Science & Technology. 2015. V. 50. P. 359-367. doi: 10.1021 / acs.est.5b03306.
194. Levard C., Hotze E.M., Lowry G.V., Brown G.E. Environmental transformations of silver nanoparticles: impact on stability and toxicity // Environmental Science & Technology. 2012. V. 46(13). P. 6900-6914. doi: 10.1021/es2037405.
195. Levy S. B., Marshall B. Worldwide Antibacterial Resistance: Causes, Problems and Reactions // Native Medicine. 2004. V. 10. P. 122-129. doi: 10.1038 / nm1145.
196. Li X., Schirmer K., Bernard L., Sigg L., Pillai S., Behra R. Silver nanoparticle toxicity and association with the alga Euglena gracilis // Environ. Sci. Nano. 2015. V. 2. P. 594-602.
197. Liu J., Hurt R.H. Ion release kinetics and particle persistence in aqueous nanosilver colloids // Environmental Science & Technology. 2010. V. 44. № 6. P. 2169-2175. doi: org/10.1021/es903555.7.
198. Liu W., Zeng Z., Chen A., Zeng G., Xiao R., Guo Zh., Yi F., Huang Zh., He K., Hu L.Toxicity effects of silver nanoparticles on the freshwater bivalve Corbicula fluminea // Journal of Environmental Chemical Engineering. 2018. V. 6. Iss.4. P. 4236-4244. doi:org/10.1016/j.jece.2018.06.032.
199. Liu Y., Zeng G., Zhong H., Wang Z., Liu Z., Cheng M., Liu G., Yang X., Liu S. Effect of rhamnolipid solubilization on hexadecane bioavailability: enhancement or reduction? // Journal Hazardous Materials. 2017. N 322. P.394-401. http://dx.doi.org/10.1016/jjhazmat.2016.10.025.
200. Lombi E., Donner E., Scheckel K.G. Sekine R., Lorenz C., Von Goetz N., Nowack B. Silver speciation and release in commercial antimicrobial textiles as influenced by washing // Chemosphere. 2014. V. 111. № 2. P. 352-358. doi: 10.1016/j.chemosphere.2014.03.116.
201. Lowry G.V., Espinasse B.P., Badireddy A.R., Richardson C.J., Reinsch B.C., Bryant L.D., Bone A.J., Deonarine A., Chae S., Therezien M., Colman B.P., Hsu-Kim H., Bernhardt E.S., Matson C.W., Wiesner M.R. Long-term transformation and fate of manufactured ag nanoparticles in a simulated large scale freshwater emergent wetland // Environmental Science & Technology. 2012a. V. 46. P. 7027-7036.
202. Ma X., Geiser-Lee J., Deng Y., Kolmakov A. Interactions between engineered nanoparticles (ENPs) and plants: Phytotoxicity, uptake and
accumulation // Science of the Total Environment. 2010. V. 408 P. 30533061. doi: 10.1016/j.scitotenv.2010.03.031
203. Magesky A., Pelletier E. Toxicity mechanisms of ionic silver and polymer-coated silver nanoparticles with interactions of functionalized carbon nanotubes on early development stages of sea urchin // Aquatic Toxicology. 2015. V. 167. P. 106-123. doi: org/10.1016/j.aquatox.2015.07.011.
204. Makama S, Pilla J, Undas A, Dimmers V.J., Peters R., Puntes V.F., Van De Brink N.V. Properties of affecting silver nanoparticles Lumbricus rubellus, located in the soil // Environ Pollut. 2016. V. 218. P. 870-878. doi: 10.1016/j.envpol.2016.08.016.
205. Marshall J. A., RossT., Pyecroft S., Hallegraeff G. Superoxide production by marine microalgae -ii. Towards understanding ecological consequences and possible functions // Marine Biology. 2005. V. 147. P. 541-549.
206. Maurer-Jones M.A., Gunsolus I.L., Murphy S.J., Haines C.L. Toxicity of engineered nanoparticles in the environment // Anal. Chemical reagent. 2013. V. 85. P. 3036-3049. doi: 10.1021 / ac303636s.
207. Maynard A.D., Warheit D.B., Philbert M.A. The new toxicology of sophisticated materials: Nanotoxicology and beyond // Toxicological Sciences. 2011. V. 120. P. 109-129. doi: 10.1093/toxsci/kfq372.
208. Miao A.J., Luo Z., Chen C.S., Chin W.C., Santschi P.H., Quigg A. Intracellular uptake: a possible mechanism for the toxicity of silver nanoparticles for the freshwater alga Ochromonas danica // PLOS ONE. 2010. V. 5 (12). e15196. doi: 10.1371 / journal.pone.0015196.
209. Michels C., Perazzoli S., Soares M. Inhibition of the enriched culture of ammonium-oxidizing bacteria by two different nanoparticles: silver and magnetite // Common environment science. 2017. V. 586. P. 995-1002. doi: 10.1016/j.scitotenv.2017.02.080.
210. Minkina, T.M., Pinskii, D.L., Zamulina, I.V., Nevidomskaya, D.G., Gulser,
C., Mandzhieva, S.S., Bauer, T.V., Morozov, I.V., Sushkova, S.N.,
Kizilkaya, R. Chemical contamination in upper horizon of Haplic
133
Chernozem as a transformation factor of its physicochemical properties // Journal of Soils and Sediments. 2018. Vol. 18 (6). pp. 2418-2430.
211. Mohan Y.M., Lee K., Premkumar T., Geckeler K.E. Hydrogel networks as nanoreactors: a new approach to silver nanoparticles for antibacterial applications // Polymer. V. 48. P. 158-164. doi: 10.1016 / j.polymer.2006.10.045.
212. Monica R.C., Cremonini R. Nanoparticles and higher plants // Caryologia. 2009. V. 62. Iss. 2. P. 161-165. doi: 10.1080/00087114.2004.10589681.
213. Monteiro D.R., Gorup L. F., Silva S., Negri M., de Camargo E.R., Oliveira R., Barbosa D.B., Henriques M. Silver colloidal nanoparticles: antifungal effect against adhered cells and biofilms of Candida albicans and Candida glabrata // Biofouling. 2011. V. 27. Iss. 7. P. 711- 719. doi.org/10.1080/08927014.2011.599101.
214. Moon J., Kwak J. I., An Y.J. The effects of silver nanomaterial shape and size on toxicity to Caenorhabditis elegans in soil media // Chemosphere. 2019. V. 215. P. 50-56. doi.org/10.1016/j.chemosphere.2018.09.177.
215. Moreno-Garrido I., Perez S., Blasco J. Toxicity of silver and gold nanoparticles on marine microalgae // Marine Environmental Research. 2015. V. 111. P. 60-73. doi: 10.1016/j.marenvres.2015.05.008.
216. Morones J.R., Elechiguerra J.L., Camacho A., Holt K., Kouri J.B., Ramirez J.T., Yacaman M.J. The bactericidal effect of silver nanoparticles // Nanotechnology. 2005. V. 16. P. 2346-2353. doi: 10.1088/09574484/16/10/059.
217. Mousavi M.P.S., Gunsolus I. L., Pérez De Jesús C. E., Lancaster M., Hussein K., Haynes C. L., Bühlmann P. Dynamic silver speciation as studied with fluorous-phase ion-selective electrodes: Effect of natural organic matter on the toxicity and speciation of silver // Science of the Total Environment. 2015. V. 537. P. 453-461. doi: 10.1016/j.scitotenv.2015.07.151.
218. Mueller N.C., Nowack B. Exposure modeling of engineered nanoparticles in the environment // Environmental Science & Technology. 2008. V. 42. P. 4447-4453. doi: 10.1021/es7029637.
219. Mura S., Greppi G., Irudayaraj J. Latest Developments of Nanotoxicology in Plants // Nanotechnologies and Plant Sciences. 2015. P. 125-151.
220. Nair R., Varghese S.H., Nair B.G., Maekawa T., Yoshida Y., Kumar D.S. Nanoparticulate material delivery to plants // Plant Science. 2010. V. 179. P. 154-163. doi: 10.1016/j.plantsci.2010.04.012.
221. Nakatsu C.N., Carmosini N., Baldwin B., Beasley F., Kourtev P., Konopka A. Soil Microbial Community Responses to Additions of Organic Carbon Substrates and Heavy Metals (Pb and Cr) // Applied and Environmental Microbiology. 2005. V. 71. P. 7679-7689. doi: 10.1128/AEM.71.12.7679-7689.2005.
222. Navarro E., Baun A., Behra R., Hartmann N.B., Filser J., Miao A.J., Quigg A., Santschi P.H., Sigg L. Ecological behavior and ecotoxicity of engineering nanoparticles of algae, plants and fungi // Ecotoxicology. 2008. V. 17. P. 372-386. doi: 10.1007 / s10646-008-0214-0.
223. Nordberg B., Fowler B., Silver. In: Friberg L., Nordberg G., Vouk V., eds. Handbook on the toxicology of metals. Volume II. Specific metals. New York, NY, Elsevier, G. 1986. P. 521-530.
224. Nowack B., Ranville J.F., Diamond S., Gallego-Urrea J.A., Metcalfe C., Rose J., Horne N., Koelmans A.A., Klaine S.J. Potential scenarios for nanomaterial release and subsequent alteration in the environment // Environmental Toxicology and Chemistry. 2012. V. 31. P. 50-59. doi:10.1002/etc.726
225. Nriagu J. O., Pacyna J. M. Quantitative assessment of worldwide contamination of air, water and soils by trace metals // Nature. 1988. V. 333. P. 134- 139.
226. Nyholm N., Peterson H.G. Laboratory bioassays with microalgae (1997) pp. 226-276.
227. Ogar A., Tylko G., Turnau K. Antifungal properties of silver nanoparticles against indoor mould growth // Science of the Total Environment. 2015. V. 521. P. 305-314. doi: 10.1016/j.scitotenv.2015.03.101.
228. Ovais M., Ahmad I., Khalil A. Mukherjee S., Javed R., Ayaz M., Raza A., Shinwari Z.K.Wound healing applications of biogenic colloidal silver and gold nanoparticles: recent trends and future prospects // Applied Microbiology and Biotechnology. 2018. V. 102. № 10. P. 4305-4318. doi: 10.1007/s00253-018-8939-z.
229. Pal S., Tak Y.K., Song J.M. Does the antibacterial activity of silver nanoparticles affect the shape of the nanoparticle? The study of gramnegative bacteria Escherichia coli // Applied and Environmental Microbiology. 2007. V. 73. P. 1712-1720. doi: 10.1128 / AEM.02218-06.
230. Panda K.K., Achary V.M., Krishnaveni R., Padhi B.K., Sarangi S.N., Sahu S.N., Panda B.B. In vitro biosynthesis and genotoxicity of bioanalysis of silver nanoparticles using plants // Toxicology in Vitro. 2011. V. 25. P. 1097-1105. doi: 10.1016 / j.tiv.2011.03.03.008.
231. Patlolla A.K., Berry A., May L., Tchounwou P.B. Genotoxicity of silver nanoparticles in Vicia faba: an experimental study of environmental monitoring of nanoparticles // International Journal of Environmental Research and Public Health. 2012. V. 9. P. 1649-1662. doi: 10.3390 / ijerph9051649.
232. Peyrot C., Wilkinson K.J, Desrosiers M., Sauvé S. Effects of silver nanoparticles on soil enzyme activities with and without added organic matter // Environmental Toxicology and Chemistry. 2014. V. 33. № 1. P. 115-25. doi: 10.1002/etc.2398.
233. Pittol M.,Tomacheski D., Simöes D. N., Ribeiro V.F., Campomanes Santana R. M. Macroscopic effects of silver nanoparticles and titanium dioxide on edible plant growth // Environmental Nanotechnology, Monitoring & Management. 2017. V. 8. P. 127-133.doi.org/10.1016/j.enmm.2017.07.003.
234. Pope C.A., Burnett R.T., Thun M.J., Calle E.E., Krewsk D.i, Ito K., Thurston G.D. Lung cancer, cardiopulmonary mortality, and long-term exposure to fine particulate air pollution // JAMA. 2002. V. 287 (9). P. 1132-1141. doi: 10.1001/jama.287.9.1132.
235. Praveena S., Karuppiah K., Than L. Potential of cellulose paper coated with silver nanoparticles: a benign option for emergency drinking water filter // Cellulose. 2018. V. 25. P. 2647-2658. doi: 10.1007/s10570-018-1747-x.
236. Qian H., Peng X., Han X., Ren J., Sun L., Fu Z. Comparison of the toxicity of silver nanoparticles and silver ions on the growth of terrestrial plant model Arabidopsis thaliana // Journal of Environmental Sciences. 2013. V. 25. P. 1947-1956. doi: 10.1016/S1001-0742(12)60301-5.
237. Raffin M., Hussain F., Bhatti T.M., Akhter J.I., Hameed A., Hasan M.M. Antibacterial characteristics of silver nanoparticles against E. coli ATCC-15224 // Journal of Materials Science & Technology. 2008. V. 24 P.192-196.
238. Rahmatpour S., Shirvani M., Mosaddeghi M. R., Farshid N., Bazarganipour M. Dose-response effects of silver nanoparticles and silver nitrate on microbial and enzyme activities in calcareous soils // Geoderma. 2017. V. 285. P. 313-322. doi:org/10.1016/j.geoderma.2016.10.006.
239. Rai M., Yadav A., Gade A.Silver nanoparticles as a new generation of antimicrobials // Biotechnology Advances. 2009. V. 27. Iss. 1. P. 76-83. doi.org/10.1016/j.biotechadv.2008.09.002.
240. Ratte H.T. Bioaccumulation and toxicity of silver compounds: a review // Environmental Toxicology and Chemistry. 1999. V. 18. P. 89-108. doi: 10.1002 / etc.5620180112.
241. Reidy B., Haase A., Luch A., Dawson K.A., Lynch I. Mechanisms for the isolation, transformation, and toxicity of silver nanoparticles: a critical review of current knowledge and recommendations for future research and applications // Materials(Basel). 2013. V. 6. N6. P. 2295-2350. doi: 10.3390 / ma6062295.
242. Reinsch B.C., Levard C., Li Z., Ma R., Wise A., Gregory K. B., Brown G. E., Lowry G. V. Sulfidation of silver nanoparticles reduces growth inhibition of Escherichia coli // Environmental Science and Technology. 2012. V.46. P. 6992-7000.
243. Renner H. 1993. Silver, silver compounds and silver alloys. In Elvers B, Hawkins S, Russey W, Schulz G, eds, Ullmann's Encyclopediaof Industrial Chemistry, 5th ed, Vol A24, VCH, Weinheim,Germany
244. Ribeiro F., Gallego-Urrea J.A., Jurkschat K., Crossley A., Hassellöv M., Taylor C., Soares A., Loureiro S. Silver nanoparticles and silver nitrate cause high toxicity to Pseudokirchneriella subcapitata, Daphnia magna and Danio rerio // Science of The Total Environment. 2014. V. 466. Р. 232-241. doi: 10.1016 / j .scitotenv.2013.06.101.
245. Roh J.Y., Sim S.J., Yi J., Park K., Chung K.H, Ryu D.Y., Choi J. Ecotoxicity of silver nanoparticles on the soil nematode Caenorhabditis elegans using functional ecotoxicogenomics // Environmental Science & Technology. 2009. V. 43. Р. 3933-3940. doi: 10.1021 / es803477u.
246. Rose-Janes N.G., Playle R.C. Protection by two complexing agents, thiosulphate and dissolved organic matter, against the physiological effects of silver nitrate to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in ion-poor water //
247. Sah S., Sorooshzadeh A., Rezazadeh H., Naghdibadi H. Effect of nano silver and silver nitrate on seed yield of borage // Journal of Medicinal Plants Research. 2011. V. 5. Р. 706-710.
248. Salama H. Effects of silver nanoparticles in some crop plants, Common bean (Phaseolus vulgaris L.) and corn (Zea mays L.) // Journal of Biotechnology. 2012. V. 3. № 10. Р. 190-197.
249. Samarajeewa A.D., Velicogna J.R., Princz J.I., Subasinghe R.M., Scroggins R.P., Beaudette L.A. Effect of silver nano-particles on soil microbial growth, activity and community diversity in a sandy loam soil // Environmental Pollution. 2017. Vol. 220. P. 504-513.
250. Samarajeewa A.D.,Velicogna J. R., Schwertfeger D. M., Jesmer A. H., Princz J. I., Subasinghe R. M., Scroggins R. P., Beaudette L.A. Effect of silver nanoparticle contaminated biosolids on the soil microbial community // NanoImpact. 2019. Vol. 14. 100157. doi:org/10.1016/j.impact.2019.100157.
251. Samberg M.E., Orndorff P.E., Monteiro-Riviere N.A. Antibacterial efficacy of silver nanoparticles of various sizes, surface conditions and synthesis methods // Nanotoxicology. 2011. V. 5. P. 244-253. doi: 10.3109 / 17435390.2010.525669.
252. Sánchez H.U.R., García M.D.A., Bejaran R., Guadalupe M.E.G., Vázquez A.W., Toledano A.C.P., Villasenora O. T. The spatial-temporal distribution of the atmospheric polluting agents during the period 2000-2005 in the Urban Area of Guadalajara, Jalisco, Mexico // Journal of Hazardous Materials. 2009. V. 165. Iss. 1-3. P. 1128-1141.
253. Sayeda Alaa El-Din H., Solimanb Hamdy A.M. Developmental toxicity and DNA damaging properties of silver nanoparticles in the catfish (Clarias gariepinus) // Mutation Research Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. 2017. V. 822. P. 34-40. doi: 10.1016/j.mrgentox.2017.07.002
254. Schlich K., Hoppe M., Kraas M., Schubert J., Chanana M., Hund-Rinke K. Long-term effects of three different silver sulfide nanomaterials, silver nitrate and bulk silver sulfide on soil microorganisms and plants // Environmental Pollution. 2018. V. 242. P. 1850-1859. doi.org/10.1016/j.envpol.2018.07.082.
255. Schlich K., Hund-Rinke K. Influence of soil properties on the effect of silver nanomaterials on microbial activity in five soils // Environmental Pollution. 2015. V. 196. P. 321-330. doi:org/10.1016/j.envpol.2014.10.021.
256. Schlich K., Klawonn T., Terytze K., Hund-Rinke K. Effects of silver nanoparticles and silver nitrate in the earthworm reproduction test // Environ. Toxicol. Chem. 2013a. V. 32 (1). P. 181-188. doi: 10.1002/etc.2030.
257. Schlich K., Klawonn T.,Terytze K., Hund-Rinke K. Hazard assessment of a silver nanoparticle in soil applied via sewage sludge // Environ. Sci. Eur. 2013b. V. 25. № 17. doi.org/10.1186/2190-4715-25-17.
258. Sharma V.K., Siskova K.M., Zboril R., Gardea-Torresdey J.L. Organic-coated silver nanoparticles in biological and environmental conditions: Fate, stability and toxicity // Advances in Colloid and Interface Science. 2014. V. 204. P. 15-34. doi: 10.1016/j.cis.2013.12.002.
259. Shin Y.J, Kwak J.I, An Y.J. Evidence for the inhibitory effects of silver nanoparticles on the activities of soil exoenzymes // Chemosphere. 2012. V 88. №4. P. 524-529. doi: 10.1016/j.chemosphere.2012.03.010.
260. Shoults -Wilson W.A., Reinsh B.B., Tsyusko O.V., Bertsh P.M., Lowry G.V., Unrin J.M. Role of particle size and soil type in The toxicity of silver nanoparticles to worms // Soil Science Society of America Journal. 2011. V. 75. P. 365-377. doi.org/10.2136/sssaj2010.0127nps.
261. Shoults-Wilson W.A., Reinsch B.C., Tsyusko O.V., Bertsch P.M., Lowry G.V., Unrine J.M. Effect of silver nanoparticle surface coating on bioaccumulation and reproductive toxicity in earthworms (Eisenia fetida) // Nanotoxicology. 2011a. V.5. Iss. 3. P. 432-444. doi: org/10.3109/17435390.2010.537382.
262. Shoults-Wilson, W. A., Zhurbich, O. I., McNear, D. H., Tsyusko, O. V., Bertsch, P. M., Unrine, J. M. Evidence for avoidance of Ag nanoparticles by earthworms (Eisenia fetida) // Ecotoxicology. 2011b. V. 20. P. 385-396. doi: 10.1007/s 10646-010-0590-0.
263. Shrestha R., Joshi D. R., Gopali J. et al. Oligodynamic fraction of silver, copper and brass on enteric bacteria isolated from water of Kathmandu Valley // Nepal Journal of Science and Technology. 2009. V. 10. P. 189193.
264. Siddhanta, S., Zheng, C., Narayana, C. and Barman, I. Obstacle to random walk: trehalose microenvironment stimulates predominant absorption of
plasmon nanoparticle endocytes // Chemical agent Sci. 2016. V. 7. P. 37303736. doi: 10.1039 / C6SC00510A.
265. Singh H. Dua J., Singh P., Yi T. H. Extracellular synthesis of silver nanoparticles by Pseudomonas sp. THG-LS1.4 and their antimicrobial application // Journal of Pharmaceutical Analysis. 2018. V. 8. Iss. 4. P. 258264. doi: org/10.1016/j.jpha.2018.04.004.
266. Sinsabaugh R.L., Lauber C.L., Weintrob M. N. Global stoichiometry of soil enzyme activity // Ecology Letters. 2008. V. 11. P. 1252-1264. doi: 10.1111 / j.1461-0248.2008.01245.
267. Smith I., Carson B. Tracking metals in the environment. Volume 2. Silver. Ann Arbor, MI, Ann Arbor Science Publishers. 1977. 469 pp.
268. Steinitz B., Bilavendran A.D. Thiosulfate stimulates growth and alleviates silver and copper toxicity in tomato root cultures // Plant Cell Tissue Organ Cult. 2011. V. 107. P. 355-363. doi: 10.1007/s11240-011-9987-6.
269. Stepniewska Z., Woli'nska A., Ziomek J. Response of soil catalase activity to chromium contamination // Journal of Environmental Sciences. 2009. N2. P.1142-1147. DOI: 10.1016/S1001-0742(08)62394-3.
270. Stimac J., Hickmott D., Abell R., Larocquea A. C. L., Broxtona D.,Gardner J., Chipera S., Wolff J., Gauerke E. Redistribution of Pb and other volatile trace metals during eruption, devitrification, and vapor-phase crystallization of the Bandelier Tuff, New Mexico // Journal of Volcanology and Geothermal Research. 1996. V. 73. Iss. 3-4. P. 245-266. doi:org/10.1016/0377-0273(96)00024-8.
271. Sun C., Yin N., Wen R., Liu W., Jia Y., Hu L., Zhou Q., Jiang G. Silver nanoparticles induced neurotoxicity through oxidative stress in rat cerebral astrocytes is distinct from the effects of silver ions // NeuroToxicology. 2016. V. 52. P. 210-221. doi:org/10.1016/j.neuro.2015.09.007.
272. Tiwari J.N., Tiwari R.N., Kim K.S. Zero, one-dimensional, two-dimensional and three-dimensional nanostructured materials for modern electrochemical
energy devices // Progress in Materials Science. 2012. V. 57. P.724-803. doi: 10.1016 / j.pmatsci.2011.08.00.00.
273. Toth, G., Hermann, T., Da Silva M. R., Montanarella L. Heavy metals in agricultural soils of the European Union with implications for food safety // Environmental Pollution. 2016. V.88. P. 299-309. doi: 10.1016/j.envint.2015.12.017.
274. Tripathi A., Liu S., Kumar S.P., Kumar N., Chandra P.A., Tripathi D.K. , Chauhan K. D., Sahi Sh. Differential phytotoxic responses of silver nitrate (AgNO3) and silver nanoparticle (AgNps) in Cucumis sativus L. // Plant Gene. 2017. V. 11. P. 255-264. doi:org/10.1016/j.plgene.2017.07.005.
275. Tripathi D.K, Singh S., Singh S., Srivastava P.K., Singh V.P., Singh S., Prasad S.M., Singh P.K., Dubey N.K., Pandey A.C., Chauhan D.K. Nitric oxide eliminates the phytotoxicity of silver nanoparticles (AgNps) in Pisum sativum seedlings // Plant Physiology and Biochemistry. 2017b. V. 110. P. 167-177. doi: 10.1016 / j.plaphy.2016.06.06.015.
276. Tripathi D.K., Singh S., Singh S., Pandey R., Singh V.P., Sharma N.C., Prasad S.M., Dubey N.K., Chauhan D.K. An overview on manufactured nanoparticles in plants: Uptake, translocation, accumulation and phytotoxicity // Plant Physiology and Biochemistry. 2017 a. V. 110. P. 2-12. doi: 10.1016/j.plaphy.2016.07.030.
277. Tripathi D.K., Tripathi A., Singh S., Singh Y., Vishwakarma K., Yadav G., Sharma S., Singh V.K., Mishra R.K., Upadhyay R.G., et al. Uptake, accumulation and toxicity of silver nanoparticle in autotrophic plants, and heterotrophic microbes: A concentric review // Frontiers in Microbiology. 2017. V. 8:07. doi: 10.3389/fmicb.2017.00007.
278. Tsyusko O.V., Hardas S.S., Shoults-Wilson W.A., Starnes C.P, Joice G., Butterfield D.A., Unrine J.M. Short-term molecular-level effects of silver nanoparticle exposure on the earthworm Eisenia fetida // Environmental Pollution. 2012. V. 171. P. 249-255. doi: 10.1016/j.envpol.2012.08.003.
279. Vannini C., Domingo G., Onelli E., De Mattia F., Bruni I., Marsoni M., Bracale M. Phytotoxic and genotoxic effects of silver nanoparticles on the germination of wheat seedlings // Journal of Plant Physiology. 2014. V. 171. P. 1142-1148. doi: 10.1016 / j.jplph.2014.05.05.002.
280. Vinkovic T., Novak O., Strnad M., Goessler W., Jurasin DD, Paradikovic N., Vrcek IV Cytokinin response in pepper plants (Capsicum annuum L.) exposed to silver nanoparticles // Environmental Research. 2017. V. 156. P. 10-18. doi: 10.1016/j.envres.2017.03.015.
281. Wang J., Shu K., Zhang L., Si Y. Effects of Silver Nanoparticles on Soil Microbial Communities and Bacterial Nitrification in Suburban Vegetable Soils // Pedosphere. 2017. V. 27. Iss. 3. P. 482-490. doi.org/10.1016/S1002-0160(17)60344-8.
282. Wijnhoven S.W., Peijnenburg W.J., Herberts C.A., Hagens W.I., Oomen A.G., Heugens E.H., Roszek B., Bisschops J., Gosens I., Van de meent D., Dekkers S., De Jong W. H. Nano-silver - a review of existing data and knowledge gaps in assessing risk to humans and the environment. Nanotoxicology. 2009. V. 3. P. 109-138. doi: 10.1080 / 17435390902725914.
283. Wua L. ,Yang L., Wang Z., Cheng M., Lia Z., LiuW., Ma T., Christie P., LuoY. Uptake of silver by brown rice and wheat in soils repeatedly amended with biosolids // Science of The Total Environment. 2018. V. 612. P. 94102. doi: 10.1016/j.scitotenv.2017.08.183.
284. Xing G., Zhu J., Xiong Z. Ag, Ta, Ru, and Ir enrichment in surface soil: Evidence for land pollution of heavy metal from atmospheric deposition // Global Biogeochem Cycles. 2004. V. 18. P. 1-5. doi: 10.1029/2003GB002123.
285. Xu X., Lu X., Han X., Zhao N. Ecological and health risk assessment of metal in resuspended particles of urban street dust from an industrial city in China // Current Science. 2015. V. 108 (1). P. 72-79.
286. Yan C., Huang J., Cao C., Li R., Ma Y., Wang Y. Effects of PVP-coated silver nanoparticles on enzyme activity, bacterial and archaeal community structure and function in a yellow-brown loam soil // Environmental Science and Pollution Research. 2020. V. 27. P. 8058-8070.
287. Yang Y.F, Cheng Y.H., Liao C.M. Nematode-based biomarkers as critical risk indicators on assessing the impact of silver nanoparticles on soil ecosystems // Ecological Indicators. 2017. V. 75. P. 340-351. doi: 10.1016/j.ecolind.2016.12.051.
288. Yasur J., Rani P.U. Environmental effects of nanosilver: impact on castor seed germination, seedling growth, and plant physiology // Environmental Science and Pollution Research. 2013. V. 20. № 12. P. 8636-8648. doi: 10.1007/s11356-013-1798-3.
289. Yildirim D., Sasmaz A. Phytoremediation of As, Ag, and Pb in contaminated soils using terrestrial plants grown on Gumuskoy mining area (Kutahya Turkey) Journal of Geochemical Exploration. 2017. V. 182. Part B. P. 228-234. doi.org/10.1016/j.gexplo.2016.11.005.
290. Yin L., Colman B.P., McGill B.M., Wright J.P., Bernhardt E.S. The effect of silver nanoparticles on the germination and early growth of eleven wetland plants // PLOS ONE. 2012. V. 7. e47674. doi: 10.1371 / journal.pone.0047674.
291. Zhang C., Hu Z., Deng B. Silver nanoparticles in aquatic environments: physiochemical behavior and antimicrobial mechanisms // Water Research. 2016. V. 88. P. 403-427. http:// dx.doi.org/10.1016/j.watres.2015.10.025.
292. Zhang L., Wu L., Si Y., Shu K. Size-dependent cytotoxicity of silver nanoparticles to Azotobacter vinelandii: Growth inhibition, cell injury, oxidative stress and internalization // PLoS ONE. 2018. V. 13. N 12. e0209020. doi.org/10.1371/journal.pone.0209020.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.