Влияние низкоинтенсивного электромагнитного излучения на ракообразных: на примере Daphnia magna Straus тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.08, кандидат наук Воробьева, Ольга Владимировна

• Воробьева, Ольга Владимировна
• кандидат наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат наук Воробьева, Ольга Владимировна

Оглавление

Введение

Глава 1. Обзор литературы

1.1. Биологические особенности Daphnia magna Straus

1.2. Оптические особенности тканей организма

1.3. Действие электромагнитных полей на организмы

1.4. Влияние лазерного и светодиодного излучения на биообъекты

14.1. Применение лазерного и светодиодного облучения в медицине. 14 1.4.2 Действие лазерного и светодиодного облучения на биообъекты

1.5. Сравнение эффектов лазерного и светодиодного излучения

1.6. Предполагаемые механизмы действия облучения на биообъекты

2.1. Содержание лабораторных культур Daphnia magna

2.2. Приготовление кормовой культуры Chlorella sp

2.3. Проведение экспериментов

Глава 3. Результаты и обсуждение

3.1. Плодовитость Daphnia magna в лабораторной культуре в зависимости от сезона и некоторых внешних условий

3.2. Влияние облучения на плодовитость, размеры тела и качество рожденного потомства Daphnia magna

3.2.1. Светодиодное облучение красным светом

3.2.3. Лазерное облучение

3.3. Эффект действия потенциально токсичных веществ на облученных рачков

3.4. Действие светодиодного облучателя СДМ-01 на рачков при экранировании светового потока

Заключение

Выводы

Список используемых сокращений

Список литературы

Приложение

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние низкоинтенсивного электромагнитного излучения на ракообразных: на примере Daphnia magna Straus»

Введение

Биотестирование, являясь методом контроля химического

загрязнения, одновременно может найти применение при оценке

вредоносного действия физических факторов, в частности -

электромагнитного излучения. Одними из возможных источников такого

излучения являются лазеры и светоизлучающие диоды. Достижения

лазерных и светодиодных технологий все чаще применяются в

медицинской практике. Высокоэнергетические лазерные воздействия

используются в качестве световых скальпелей, низкоэнергетические, в

сочетании с фотосенсибилизаторами - применяют для разрушения раковых

опухолей (Владимиров, 1999, Генина 2012). Маломощные излучения

лазеров используют при лечении заболеваний опорно-двигательного

аппарата, в стоматологии, пульмонологии, кардиологии (Чудновский и др,

2002). Поскольку лазерный луч теряет свойство когерентности при

прохождении через ткани (Кару и др, 1982, Klebanov et al., 2005),

решающими параметрами для облучения оказываются спектральная

плотность и длина волны (Чудновский и др, 2002). Поэтому наряду с

лазерным воздействием широкое применение находит и некогерентное

облучение с использованием светодиодных приборов. Наибольшее

применение получили светодиодные и лазерные источники с излучением в

красной и инфракрасной частях спектра, облучение которыми может

оказывать позитивное влияние при определенных дозах (Plavskii et all,

2008, Tuner et all, 1999, Karu, 2007, Бриль и др, 2008). Исследования по

влиянию лазерного и светодиодного облучения проводилось на разных

уровнях организации живого. Исследованы действия облучения на вирусы

(Леонова и др., 1997), клетки крови, эмбрионы (Аверьянова и др., 1991,

Шкуратов и др., 1997), целые организмы (Фельдман, Крутик, 2006) разного

таксономического положения, относящиеся к различным трофическим

4

уровням. Несмотря на большое количество работ, описывающих положительные эффекты от облучения красным и инфракрасным светом, появляется все больше публикаций об отсутствии положительного результата, вплоть до развития побочных эффектов (Борисенко, 1997, Кару, 2000). В частности показано, что действие НИЛИ (низко интенсивного лазерного излучения) зависит от стадии развития эмбриона рыб (Uzdensky, 2001). Облучение гелий-неоновым лазером увеличивало продуктивность при облучении икры на стадии гаструляции и эмбриональной моторики и негативно влияло при облучении на стадии органогенеза. По данным ряда авторов (Кару, 2000, Ding, 1998), применение неоптимальных параметров воздействия может не только не привести к желаемому позитивному эффекту, но и вызвать угнетение жизненно важных функций организма. В связи с этим, актуальной задачей является исследование закономерностей биологических эффектов низкоинтенсивного облучения, включая его отдаленные последствия для организмов. Одним из возможных путей ее решения является проведение опытов на тест-объектах с коротким жизненным циклом, в частности, на рачках Daphnia magna, которые используются в сертифицированных токсикологических испытаниях.

В связи с этим целью работы послужило исследование влияния лазерного и светодиодного облучения на морфо-функциональные показатели ракообразных в ряду поколений на примере пресноводного рачка Daphnia magna Straus. В ходе ее реализации были поставлены следующие задачи:

1. Предварительно определить суммарную плодовитость дафний в лабораторной культуре в связи с сезоном года и такими условиями окружающей среды как температура, атмосферное давление, длина

светового дня, а также плотность потока солнечного излучения в 10-см диапазоне длин волн;

2. Исследовать влияние низкоинтенсивного лазерного и светодиодного облучения на плодовитость, линейные размеры тела и качество потомства рачков в ряду поколений;

3. Исследовать эффект совместного действия предварительного светодиодного облучения и хронического действия потенциально токсичных веществ на рачков в хронических испытаниях;

4. Оценить возможную роль сопутствующих влияний светодиодного источника, в частности, электромагнитных полей, генерируемых прибором, в эффектах от облучения дафний.

Глава 1. Обзор литературы 1.1. Биологические особенности Daphnia magna Straus

Ракообразные - типичные представители зоопланктона и ключевой компонент цепей питания в водоемах (Константинов, 1986). Ветвистоусые ракообразные широко применяются в водной токсикологии в качестве тест-объектов. Наиболее часто используются виды сем. Daphnidae (Daphnia magna Straus, 1820, D. longispina Müller, 1776, D. carinata King, 1852, D.pulex L., 1758, Leydig, 1860, Simocephalus vetulus Müller, 1776, Ceriodaphnia affinis Lilljeborg, 1900), из сем. Moinidae (Moina macrocopa Straus, 1820) и некоторые другие.

Впервые дафний в качестве индикатора токсичности воды предложил использовать Науманн (Naumann, 1934). В 1944 Андерсон разработал методику краткосрочных (24-96 часов) экспериментов (Anderson, 1944). Критерии токсичности и основы методики использования гидробионтов разработал Н.С. Строганов (Строганов, Колосова, 1971).

В настоящее время дафнии как обязательные тест-организмы внесены в методики определения предельно допустимых концентраций токсических веществ (Методика определения токсичности воды и водных вытяжек из почв, осадков сточных вод, отходов по смертности и изменению плодовитости дафний ФР 1.1.39.2007-03-222). Характерными чертами дафний, определяющими их широкое применение, являются легкость культивирования в лабораторных условиях, круглогодичное размножение, высокая чувствительность ко многим токсикантам, широкая распространенность и короткий жизненный цикл.

Рачки вида D. magna повсеместно распространены на территории России, обитают в стоячих и слабопроточных водоемах (Смирнов, 1975), переносят осолонение до 6 %о, являются типичными бетамезосапробами.

Оптимальное содержание кислорода для дафнии составляет 7-8 мг/л, хотя они способны переносить снижение концентрации 02 до 2 мг/л. Оптимальные значения рН составляют 7,0 - 8,0, однако временные изменения рН в пределах 5,8 - 9,0 не подавляют жизнедеятельность дафнии.

Половозрелые самки дафний достигают длины 6 мм, самцы 2 мм. При температуре 20±2°С созревание наступает на 5-7 сутки от рождения. Эмбриональное развитие обычно длится 3-4 суток. При партеногенетическом размножении вымет молоди происходит каждые 2-3 дня. В лабораторных условиях самцы появляются при недостаточном освещении, снижении температуры, концентрации растворенного кислорода, голодании (Методические указания по установлению эколого -рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ) загрязняющих веществ для воды водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение, 1998).

Снаружи тело дафнии покрыто прозрачным хитиновым панцирем,

створки которого на вентральной стороне образуют щель. Край панциря с

дорзальной стороны вытянут в шип. Тело нечетко сегментировано на

головной, торакальный (грудной) и абдоминальный (брюшной) отделы.

Впереди под головным отделом находится пара антеннул с осязательными

щетинками. Антеннулы более развиты у самцов, нежели у самок (рис. 1).

По бокам головы расположены пара антенн, необходимых для

скачкообразного передвижения рачков в толще воды. В торакальном

отделе имеется 5 пар грудных ножек. Их многочисленные щетинки

образуют «сито», на котором отфильтровываются частицы пищи. Грудные

ножки служат для фильтрации воды, питания и дыхания. Частота

движения торакальных конечностей зависит от внешних факторов, таких

как состав воды, плотность взвеси, температура (МсМасЬоп, 1968).

Абдоминальный отдел тела не имеет конечностей, но снабжен парой

каудальных когтей. На дорзальной стороне торакального отдела

8

расположено сердце. Частота сердечных сокращений дафний также зависит от внешних факторов и является чувствительным параметром для определения токсичности среды (Ingle, et al., 1937, Baylor, 1942, Кулагина, 2011). Большую часть года в природных условиях популяция дафний существует в виде партеногенетических самок. Партеногенетические яйца развиваются с одним делением созревания без редукции числа хромосом (Смпирнов, 1975). Переход к половому размножению происходит при наступлении неблагоприятных условий (Fries, 1964, Buikema, 1968).

Рисунок 1. Строение Daphnia magna Straus: а - самка, б - самец, в -внешний вид эфиппиума. 1 - антенна, 2 - сложный глаз, 3 - антеннула, 4 -грудные ножки, 5 - яичник, 6 - створки панциря, 7 - каудальные когти, 8 -постабдомен, 9 - хвостовые щетинки, 10 - выводковая камера, 11 - сердце, 12 - кишечник, 13 - печеночные выросты (по РД 118-02-90)

Половая система представлена парными гонадами - яичниками у самок и семенниками у самцов, расположенными по обеим сторонам кишечника. Эмбриональное развитие рачков протекает в выводковой

i

и

i о.

камере, расположенной на дорзальной стороне тела. Помимо легкости в культивировании, дафнии имеют еще ряд преимуществ перед другими ракообразными, использующимися в качестве тест-объектов. Из-за крупных размеров за ними удобно вести наблюдения, изучая показатели размножения, так как хорошо заметны патологические отклонения -абортирование яиц, эмбрионов, уродства. Также легко производить измерения размеров тела.

1.2. Оптические особенности тканей организма

Одними из важных оптических свойств тканей организма являются интенсивное рассеивание излучения в видимой и ближней инфракрасной (ИК) области спектра, а также его избирательное поглощение естественными хромофорами, такими как гемоглобин и меланин (Welch, 1992, Muller et al., 1993). Причиной рассеяния и преломления света является пространственная неоднородность структур ткани (наличие клеточных мембран, ядер клеток, органелл). Рассеяние, также как и поглощение, зависит от длины волны излучения. В ультрафиолетовом (УФ) диапазоне поглощение определяется содержанием белка, в инфракрасном (ИК) - содержанием воды. Для большинства тканей в организме рассеяние преобладает над поглощением (Зимняков, Тучин, 2002). Установлено, что коэффициенты оптического отражения тканей являются переменными параметрами и зависят от анатомического строения ткани, пола и возраста обследуемого пациента, а также вида излучения (Григорьянц, Евстигнеев, 2012).

В спектральной области 650 - 1200 нм практически отсутствует поглощение излучения у биообъектов, что является причиной существования так называемого «окна биологической прозрачности» (рис. 2).

water Hb

НЬ02 Melanin

_I_■ ■ J_«_t_ь_

0 1SOO 2000

Рисунок 2. Окно биологической прозрачности - из Huang et al., 2009 1.3. Действие электромагнитных полей на организмы

Электромагнитные поля (ЭМП) являются фоновым компонентом среды обитания организмов, в присутствии которого происходила эволюция органического мира. Живые организмы адаптированы к естественному фону ЭМП. Экранирование природного магнитного поля приводит к нарушению нормального развития организмов. В частности, показано, что «нулевое» магнитного поле снижает адгезивные свойства и жизнеспособность первичных эмбриональных фибробластов мыши в культуре in vitro (Осипенко и др. 2008).

Из-за усиления антропогенного влияния происходит увеличение нагрузки полей на организмы. При этом появляются электромагнитные излучения (ЭМИ) с длинами волн, имеющими искусственное происхождение - например, миллиметрового диапазона (Куклев, 2001).

§2 та

0,1

ГГ

0.01

_ i i "

400 €00 800 1000 1200 1400 160

wavelength {nmj

Спектры интенсивности некоторых техногенных источников могут существенно отличаться от сложившегося естественного ЭМ фона.

Действие ЭМП исследуется на разных объектах. Так, выявлено что переменные магнитные поля с амплитудами, близкими к естественным (10 нТл) угнетает размножение бактерий Е. соИ (Ачкасова, 1984). После обработки монослоя Е.соИ магнитным полем, происходит уменьшение диаметра колоний при общей стимуляции клеточного роста (ВаЬиБЬклпа е1 а1., 2005).

Влияние ЭМП показано, в том числе, на гидробионтах. Показано, что электромагнитное излучение на частоте мобильной связи (1 ГГц) с диапазоном плотности потока энергии (5-50 мкВт/см2) вызывало снижение спонтанной двигательной активности у инфузорий Бри'озШпит атЫ^иит. При этом эффект возникал скачкообразно при достижении определенного времени воздействия и не возрастал при дальнейшем увеличении времени экспозиции. Негативный эффект проявлялся при плотности потока энергии - 5 мкВт/см , что в 2 раза ниже предельно допустимого уровня (Сарапульцева и др, 2009, Сарапульцева, Иголкина, 2011).

Магнитные поля оказывают также влияние на пресноводных

ракообразных. Так, при действии магнитного поля с частотой 500 Гц

наблюдалось снижение выживаемости и замедление созревания дафний

(Крылов, 2007, Крылов, 2008). При действии магнитного поля во время

ювенильного периода у дафний, происходил сбой программы

репродукции, что выражалось в увеличении доли нежизнеспособного

потомства и снижении размеров новорожденных рачков. Проводились

исследования по влиянию низкочастотного магнитного поля на частоту

сердцебиения дафний (Усанов, 2006). При действии магнитными полями с

частотами, близкими к частоте сердцебиения дафнии, существенно

увеличивается ЧСС, что наблюдается и в случае помещения рачков в воду,

12

на которую предварительно подействовали магнитным полем с частотой, близкой к частоте ее сердцебиения. Установлено, что длительное пребывание дафний в магнитном поле с индукцией 25 мТл и частотой 6 Гц не оказывает существенного влияния на выживаемость рачка, однако плодовитость дафний увеличивается в среднем в 2 раза по сравнению с контрольной группой (Усанов, 2008).

Магнитные поля снижают токсическое действие фенола на дафний. Гибель дафний, помещенных в растворе фенола при действии переменного магнитного поля, наступает позднее, чем в растворе фенола, не подвергнутого действию магнитного поля (Усанов и др., 2007, 2008).

Облучение дафний ЭМИ на частоте 42,25 ГГц не вызывало изменения выживаемости рачков, но снижало плодовитость и увеличивало чувствительность к действию токсикантов (Гапочка и др., 2012). При этом чувствительность зависела от стадии онтогенеза. На ранних стадиях чувствительность к действию токсиканта не изменялась при действии предварительного облучения. Предварительное облучение и интоксикация на стадии половозрелости приводило к увеличению плодовитости.

Проводились эксперименты и по влиянию магнитных полей на микроводоросли. Показано, что магнитное поле оказывает стимулирующее действие на Scenedesmus, повышая скорость роста культуры (Усанов и др., 2009).

Электромагнитное излучение крайне высокочастотного (КВЧ) диапазона (42,2 ГГц, 100 мкВт/см в режиме импульсной модуляции с частотой следования импульсов 1000 Гц) оказывало негативное действие на гаметы и зародыши морского ежа Strongylocentrotus intermedins. При облучении уменьшалось количество оплодотворенных яйцеклеток и

снижалась выживаемость эмбрионов на ранних стадиях развития до плутеуса (Vareshin, 2007).

МП могут оказывать воздействие на эмбриогенез рыб, приводя к снижению размерно-весовых показателей и повышению доли молоди с аномалиями (Крылов, Чеботарева, 2006). Наиболее чувствительными к действию ЭМП являются периоды от оплодотворения до гаструляции (снижение размерно-весовых параметров) и от гаструляции до вылупления (увеличение процента аномальных особей). Воздействие полями на вылупившиеся эмбрионы не оказывало значимых эффектов (Чеботарева и др., 2009).

1.4. Влияние лазерного и светодиодного излучения на биообъекты

Первыми исследователями, открывшими и описавшими стимулирующий эффект лазерного облучения, была группа ученых из Венгрии (Mester et al., 1968). Облучая мышей, лишенных волосяного покрова, светом низкоинтенсивного рубинового лазера (Х=694 нм), они наблюдали увеличение скорости отрастания шерсти мышей. Впоследствии стимуляцию волосяных фолликул подтверждали и другие исследователи при облучении различными лазерными и светодиодными источниками в красной и инфракрасной областях спектра (Satino et al., 2003, Phil Sang Chung et al., 2005, Wikramanayake et al., 2012).

14.1. Применение лазерного и светодиодного облучения в медицине

В настоящее время спектр применения лазерных и светодиодных

источников в медицинской практике очень широк. Одним из параметров,

определяющих область применения лазеров, является мощность

14

излучения. Высокоэнергетические лазерные воздействия используются в хирургии, маломощные лазеры в сочетание с фотосенсибилизаторами используются в фотодинамической терапии, низкоинтенсивные используют для профилактики и лечения ряда заболеваний.

В лазерной хирургии применяются лазеры с большой мощностью излучения. Механизм воздействия основан на испарении воды и коагуляции тканей организма лазерным лучом. При поглощении излучения лазера происходит преобразование основной доли энергии в тепло, а из-за слабого проникновения излучения в ткань практически вся энергия выделяется в слое толщиной десятки-сотни микрон. При этом происходит локальный разогрев ткани, приводящий к разрушению, или термическому некрозу клеток и тканей (Шахно, 2012).

В настоящее время в хирургии наиболее широко используются С02 -лазеры с длиной волны 10,6 мкм. Наряду с ними находят применение и СО-лазеры с длиной волны излучения в диапазоне 5,10 - 5,60 мкм, проникающие на большую глубину в ткани. Вследствие этого улучшается коагуляция нижележащих кровеносных сосудов (Евтушенко, Аристов, 2003).

Фотодинамическая терапии раковых опухолей (ФДТ) основана на способности некоторых типов раковых клеток накапливать экзогенные фотосенсибилизаторы, такие как гематопорфирин и его производные, фталоцианины, хлорины (Hayata, 1982, Dougherty et al., 1990, Dougherty et al., 1992, Jori, Reddi, 1993, Генина 2012, Шахно, 2012). При облучении ткани с накопленным экзогенным фотосенсибилизатором низкоэнергетическим источником видимого света в присутствии кислорода происходит разрушение раковых клеток (Dougherty et al., 1978).

Световое облучение ткани с экзогенным фотосенсибилизатором переводит его в возбужденное состояние, энергия которого передается на другие молекулы (Гельфонд, 2007). В результате образуется атомарный кислород, обладающий цитотоксичным действием, или другие свободные радикалы, что приводит к повреждению белков, нуклеиновых кислот, и липидных мембран (Weishaupt, 1976, Buettner, Oberly, 1980), происходит повреждение клеток, в результате чего развивается апоптоз и некроз тканей (Медведев и др, 2006). Из-за слабой адсорбции сенсибилизаторов здоровыми клетками, они практически не повреждаются (Henderson B.W., Dougherty, 1992).

Предполагается, что помимо прямого поражения клеток, происходит окклюзия сосудов опухолей, вызванная фотодинамическим воздействием. При поражении эндотелиальных клеток происходит закупорка сосуда. После проведения ФДТ происходит выброс эйкозаноидов, включая тромбоксан и гистамин, а также фактора некроза опухолей, который может вносить свой вклад в развитие окклюзии сосудов (Fingar, 1996).

Для проведения фотодинамической терапии применяются разные источники света, от широкополосного света ламп накаливания или дуговых ламп до монохроматического света лазеров (Медведев и др., 2006).

Лазерная терапия основана на использовании низкоинтенсивных

источников света, облучение которыми приводит к стимуляции функций

организма. В лазерной терапии применяются различные лазерные и

светодиодные аппараты со средней мощностью излучения в видимом и

ближнем инфракрасном диапазонах от 0,001 до 0,15 Вт, с амплитудой от

0,005 до 20 Вт, с дозами воздействия не превышающими 10 Дж/см

(Илларионов, 1994). При этом максимальная эффективность достигается

при применении сверхнизких интенсивностей (меньших 1 мВт/см ),

16

небольших мощностей излучения (единицы мВт) и коротком времени воздействия - секунды и десятки секунд (Новоселова и др., 2006, 2007, Чудновский и др., 2002, Каги, 2007). При больших дозах положительный эффект лазерного излучения сменяется угнетением, что служит основным препятствием для широкого применения лазерной терапии (НашЬНп, Оегшс1оуа, 2006).

Наиболее часто использующиеся в клинической практике способы доставки лазерного излучения (ЛИ) к тканям организма можно условно разделить на два типа. Первый - непосредственная доставка облучения к очагу воздействия - внутривенное лазерное воздействие на кровь (Ерофеев и др., 1985, Корочкин и др., 1989), экстракорпоральное воздействие на кровь (Карандашев и др., 1994), облучение жидкостей, в том числе крови (Евтушенко, Аристов, 2003), подведение излучения к патологическому очагу с помощью эндоскопической техники (Кожекин и др., 1995). Второй тип - облучение через кожные покровы - транскутанное воздействие на болевую точку или проекцию органа (Илларионов, 1994), воздействие на точки акупунктуры, надвенное воздействие на кровь (Утц, Волнухин. 1998).

Выбор доз облучения при проведении сеансов осуществляется несколькими методами. Один из них - реакция сосудов микроциркулятурного русла (Владимиров, 2006). Выделяют следующие диапазоны интенсивностей облучения:

Активация микроциркуляторного кровообращения происходит при интенсивности до 10 Дж/см2. При интенсивности 10-30 Дж/см2 происходит обратимая дисфункция сосудов, а при интенсивностях больше 30 Дж/см2 -необратимые расстройства (Козлов и др., 1993).

Облучение с длиной волны в диапазоне 600-700 нм используют для воздействия на поверхностные слои эпидермиса. Длины волн между 700 и 770 нм, по-видимому, не оказывают большого влияния на живые системы. Диапазон длин волн между 780 и 950 нм используют для проникновения в более глубокие слои ткани (Hamblin, Demidova, 2006). Главная причина использования источников, излучающих в красной и ближней ИК областях спектра, заключается в том, что в этих областях гемоглобин не поглощает излучение и свет может проникать глубже в толщу живой ткани (Владимиров, 2004).

Есть данные, свидетельствующие о том, что терапевтический эффект излучения усиливается в магнитном поле. Это происходит за счет разрушения связей между ионами, молекулами воды и ионами и препятствования их рекомбинации. Применение в клинике НИЛИ в сочетании с действием переменного магнитного поля (ПМП) получило название магнитолазерной терапии (Генина, 2012).

1.4.2 Действие лазерного и светодиодного облучения на биообъекты

Эффект действия НИЛИ исследуется на многих биологических объектах на молекулярном, субклеточном, клеточном и организменном уровнях (Кару, 2000, Кару, 2001, Владимиров и др., 2004, Бриль и др., 2006,).

Показано, что облучение красным и инфракрасным светом может оказывать позитивные эффекты при определенных дозах (Tuner et all, 1999, Karu, 2007, Бриль и др, 2008, Plavskii et all, 2008). Максимальная эффективность терапевтического действия излучения показана при применении сверхнизких интенсивностей (меньше 1 мВт/см2), небольших

мощностей излучения (единицы мВт) и коротком времени воздействия (Чудновский и др, 2002).

НИЛИ в диапазоне 633-890 нм оказывает вирусостатическое действие, что проявляется в снижении инфекционной активности и способности индуцировать интерферон (Чудновский и др., 2002). Инфракрасное облучение увеличивает выживаемость икры рыб и стимулирует рост и размножение высших водных растений (Фельдман, Крутик, 2006). Однократное облучение приводит к увеличению количества вылупившихся личинок, выживаемости эмбрионов вьюна Misgurnus fossilis и ускоренному росту мальков (Аверьянова, 1991), позитивно влияет на жизнеспособность спермиев моллюсков и иглокожих, увеличивая их активность (Шкуратов и др, 2007), улучшает состояние потомства рачков Daphnia magna (Осипова и др., 2011). Облучение оплодотворенной икры осетровых рыб приводит к значительному повышению жизнестойкости рыб, увеличению их размерных и весовых параметров, повышению терморезистентности, а также токсикоустойчивости (Plavskii et. al., 2008).

Показано положительное влияние предварительного облучения лазерными и светодиодными источниками на токсико- и стрессоустойчивость организмов. Облучение мышей светом гелий-

л

неонового лазера (632,8 нм, 0,2 мВт/см ) в условиях острого токсического

стресса приводит к нормализации продукции цитокинов, оксида азота и

белков теплового шока, снижая, таким образом, токсический эффект

липополисахарида (Новоселова и др., 2007)

Несмотря на большое количество работ, описывающих

положительные эффекты от облучения красным и инфракрасным светом,

появляется все больше публикаций об отсутствии положительного

результата, вплоть до развития побочных эффектов (Борисенко, 1997,

Кару, 2000). В частности показано, что действие НИЛИ зависит от стадии

развития эмбрионов рыб (Uzdensky, 2001). Облучение гелий-неоновым

19

лазером увеличивало продуктивность при облучении икры на стадии гаструляции и негативно влияло при облучении на стадии органогенеза. По данным ряда авторов (Ding, 1998, Кару, 2000), применение неоптимальных параметров воздействия может не только не привести к желаемому позитивному эффекту, но и вызвать угнетение жизненно важных функций организма. При воздействии на целостные живые организмы наблюдается плохая воспроизводимость результатов, различная чувствительность к облучению у разных особей и опасность передозировки (Владимиров, 1999).

1.5. Сравнение эффектов лазерного и светодиодного излучения

Особые свойства лазерного облучения (когерентность, поляризация) отличают его от других монохромных источников освещения. В связи с этим в лазерной терапии возникает вопрос о роли когерентности и поляризации в биологическом действии облучения.

Лазерный луч при прохождении через оптоволокно и кожные покровы, теряет свойство когерентности (Кару и др, 1982, Klebanov et al., 2005, Клебанов и др., 2006), сохраняющееся только на глубине 200300 мкм (Владимиров, 1994). Поэтому считается, что решающими параметрами для облучения оказываются спектральная плотность и длина волны (Чудновский и др, 2002). В связи с чем, помимо лазерных воздействий, широкое применение находит облучение с использованием светодиодных приборов. Наибольшее применение получили светодиодные и лазерные источники с излучением в красной и инфракрасной частях спектра (Непомнящих и др., 1994, Кожекин и др., 1995, Козлов, 1997).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Воробьева, Ольга Владимировна, 2013 год

Список литературы

1. Аверьянова О.В., Бурлаков А.Б., Пащенко В.З., Слепцова JI.A., Тусов В.Б., Туровецкий В.Б. Исследование влияния лазерного излучения на раннее развитие вьюна // Вестник Московского университета. Сер. 16. Биология, 1991. № 1. С. 34-39.

2. Белоусов A.B., Коварский В.А., Мерлин Е.Т., Ястребов Б.С. Ферментативная реакция во внешнем электромагнитном поле // Биофизика, 1993. Т.38, №. 4. С. 619-626.

3. Брилль Г.Е., Будник И.А., Гаспарян JI.B., Савиок Н., Барон Д. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на адгезию и агрегацию тромбоцитов на полистирене при высокой скорости сдвига // Лазерная медицина, 2006. Т. 10, № 1. С. 51-54.

4. Веселовский А.Б., Митрофанов A.C., Сидельников Д.Н., Фокин С.И., Студеникин Л.М., Янтарева Л.И. Роль плотности мощности и длительности воздействия в выборе адекватных доз ИК облучения одноклеточных организмов // Научно-технический вестник информационных технологий, механики и оптики, 2004. №16. С. 217221.

5. Владимиров Ю.А. Лазерная терапия: настоящее и будущее // Соросовский образовательный журнал, 1999. № 12. С.2-8.

6. Владимиров Ю.А. Три гипотезы о механизме действия лазерного облучения на клетки и организм человека. В сб. Эфферентная медицинам.: ИБМХРАМН, 1994. С. 51-67

7. Владимиров Ю.А., Осипов А.Н., Клебанов Г.И. Фотобиологические основы терапевтического применения лазерного облучения обзор // Биохимия, 2004. Т. 69, № 1. С. 103-113.

8. Владимиров, Ю.А., Клебанов Г.И. Молекулярные и клеточные механизмы действия низкоинтенсивного лазерного излучения // Биофизика, 2004. Т. 49, №2. С. 339-50.

9. Волькенштейн М.В. Молекулярная биофизика. - М.: Наука, 1975.416 с.

10.Волькенштейн М.В., Голованов И.Б., Соболев В.М. Молекулярные орбитали в энзимологии. М.: Наука, 1982. - 240 с.

11 .Галковская Г. А., Морозов А. М. Формирование температурных адаптаций у дафний. // Журнал общей биологии, 1981. Т. 42, № 1. С.113-117.

12.Гапочка Л.Д., Тапочка М.Г., Дрожжина Т.С., Исакова Е.Ф., Павлова A.C., Шавырина О.Б. Эффекты облучения культуры Daphnia magna на разных стадиях развития электромагнитным полем миллиметрового диапазона низкой интенсивности // Вестник московского университета. Сер. 16. Биология, 2012. № 2. С. 43-48.

13.Гельфонд Фотодинамическая терапия в онкологии // Практическая онкология, 2007. Т. 8, № 4. С. 204-210.

14.Генина Э.А. Методы биофотоники: Фототерапия. Саратов: Новый ветер, 2012.- 119 с.

15.Гиляров A.M. Динамика численности пресноводных планктонных ракообразных. М.: Наука, 1987. - 189 с.

16.Гладких С.П., Алексеев Ю.В., Истомин С.П. Триггерные молекулярные механизмы формирования биологических эффектов при низкоэнергетической лазерной терапии В сб. Использование лазеров для диагностики и лечения заболеваний - М.: Изд-во ЛАС, 1996.-стр.7-11.

17.Горбатенкова Е.А., Владимиров Ю.А., Парамонов Н.В., Азизова O.A. Красный свет гелий-неонового лазера реактивирует супероксиддисмутазу // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1989. Т. 57. С. 302-305.

18.Григорьянц А.Г., Евстигнеев А.Р. Полупроводниковые лазерные терапевтические аппараты // Вестник МГТУ им. Н.Э. Баумана. Сер. Машиностроение, 2012. С 156-164.

19.Девятков Н.Д., Зубкова С.М., Лапрун И.Б., Макеева Н.С. Физикохимические механизмы биологического действия лазерного излучения // Успехи современной биологии, 1987. Т.103. С.31-43.

20.Доровских В.А., Бородин Е.А. Влияние низкоэнергетических лазеров на свободнорадикальное окисление липидов в микросомах печени и активность глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и каталазы эритроцитов // Лазерная медицина, 1998, Т.2, №. 2-3. С. 16-20.

21.Евтушенко Г.С., Аристов A.A. Лазерные системы в медицине. 2003г. Томск: -Изд-во Томского политехнического института. -124с.

22.Егоров С.Ю., Таубер А.Ю.ДСрасновский A.A., Нижник А.Н., Нокаль А.Ю., Миронов А.Ф. Фотогененрация синглетного молекулярного кислорода компонентами производного гематопорфирина // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1989. Т.108, № 10. С.440-442.

23.Ерофеев А.В., Зайчиков В.М., Катаев М.И., Куликов В.И. Опыт применения низкоинтенсивного внутривенного лазерного облучения в остром инфаркте миокарда. В кн. Применение лазера в медицине М.: Медицина 1985. С. 7-8.

24.Жмур Н.С. Методика определения токсичности воды и водных вытяжек из почв, осадков сточных вод, отходов по смертности и изменению плодовитости дафний. - 2-е изд., испр. и доп. - М.: АКВАРОС, 2007. - 52 с.

25.Жуманкулов М.С., Шабуневич Л.В., Басиладзе Л.И., Александрова Л.А. Фотореактивация церулоплазмина как один из механизмов действия гелий-неонового лазера на кровь. В кн. Лазеры и медицина М. 1989. С. 73-74.

26.Захаров С.Д., Еремеев Б.В., Перов С.Н., Панасепко М.А. Методы изучения и механизм действия лазерного излучения на эритроциты с участием молекулярного кислорода. В кн. Методы лазерной биофизики и их применение в биологии и медицине. 1989а. С. 59-92.

27.Захаров С.Д., Минц Р.И., Скопинов С.А., Чудновский В.М. Структурная модель неспецифического биостимулирующего действия лазерного излучения: роль слабопоглощающих фоторецепторов и альтерации структурного состояния растворов биомолекул В кн. Действие электромагнитного излучения на биологические объекты и лазерная медицина. Владивосток: ДО АН СССР, 19896. -235с.

28.Захаров С.Д., Скопионов С.А., Чудновский В.М. Первичные механизмы воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения в биологических системах: слабо поглощающие фотоакцепторы и структурное усиление локального фотовоздействия в биологических жидкостях. В кн. Лазеры и медицина М. 1989в. С. 81-82.

29.3емняков Д.А., Тучин B.B. Оптическая томография тканей // Квантовая электроника, 2002. Т.32, № 10. С.849-867.

30.Илларионов В.Е. Основы лазерной терапии. М:Респект, 1992. 122С

31.Исакова Е.Ф. Сезонные изменения фактической плодовитости Daphnia magna Straus в лабораторной культуре // Гидробиологический журнал, 1980. Т. 16, №4. С. 86-89.

32.Исакова Е.Ф., Коломенская Е.Е. Морфологические отклонения у Daphnia magna Straus в поколениях при кратковременном воздействии бихромата калия // Экологические системы и приборы, 2002. №7 С. 31-34.

33.Исакова Е.Ф., Юклеевских М.Ю. Сезонные изменения резистентности лабораторной культуры' Daphnia magna Str. к бихромату калия // Биология внутренних вод, 1998. № 3. С. 76 - 82.

34.Каплан М.А. Лазерная терапия - механизмы действия и возможности // Тезисы международной Конференции "Laesr Health'97" - М.: Техника, 1997, с.88-92.

35.Карандашев В.И., Петухов Е.Б., Финько И.А., Попов Ю.А., Сличенко С.И. Экстракорпоральное облучение полного объема циркулирующей крови низкоэнергетическим гилий-неоновым лазером // Вестник российской академии медицинских наук, 1994. №4. С. 51-54.

36.Кару Т.Й., Календо Г.С., Летохов B.C., Лобко В.В. Зависимость биологического действия низкоинтенсивного видимого света на клетки HeLa от когерентности, длины волны, дозы и режима облучения //Квантовая электроника, 1982. Т.10. С. 1761-1767.

37.Кару Т.Й. Первичные и вторичные клеточные механизмы лазерной терапии. В кн. Низкоинтенсивная лазерная терапия. М.: Техника, 2000. С.71-94.

38.Кару Т.Й. Клеточные механизмы низко интенсивно^ лазерной терапии //Успехи современной биологии, 2001. Т.121, № 1. С.110-120.

39.Кару Т.Й, Пятибрат J1.B., Москвин C.B., Андреев C.B., Летохов B.C. Исследование влияния степени поляризации лазерного излучения на стимуляцию клеточного метаболизма // Лазерная медицина, 2008. Т. 12, № 1.С. 4-8.

40.Клебанов Г.И., Крейнина М.В., Мархолия М.Г. и др. Лазеротерапия: клиническая эффективность и молекулярно-клеточные механизмы // Медтехника и медизделия, 2003. Т. 13, №2.

41.Клебанов Г.И., Страшкевич И.В., Чичук Т.В., Модестова Т.М., Владимиров Ю.А. Влияние эндогенных фотосенсибилизаторов на лазер-индуцированный прайминг лейкоцитов крови // Биологические мембраны, 1998. Т.15, №3. С.273-285.

42.Клебанов Г.И., Теселкин Ю.О., Бабенкова И.В., Башкуева Т.Ю., Модестова Т.М., Стеклова Л.С., Владимиров Ю.А. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на функциональный потенциал лейкоцитов// Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1997. Т. 123, №4. С. 395-398.

43.Клебанов Г.И., Шураева Н.Ю., Чичук Т.В., Осипов А.Н., Владимиров Ю.А. Сравнительное исследование влияния излучения лазера и светодиодов на перекисное окисление липидов раневого экссудата крыс // Биофизика, 2006. Т. 51, № 2. С. 332-339.

44.Клебанов Г.И., Шураева Н.Ю., Чичук Т.В., Осипов А.Н., Руденко Т.Г., Шехтер А.Б., Владимиров Ю.А. Сравнительное исследование действия лазерного и светодиодного излучения на заживление ран и функциональную активность клеток раневого экссудата // Биофизика, 2005. Т 50, №6. С. 1137-1144.

45.Клебанов Г.И., Ю.А. Владимиров Ю.А. Клеточные механизмы прайминга и активации фагоцитов // Успехи современной биологии, 1999. Т. 119, №5. С. 462-475.

46.Кожекин В.В., Решедько O.A., Ткачев A.M., Жук С.А. Внутривенное лазерное облучение крови и кислородтранспортная функция // Анестезиология и реаниматология, 1995. №1. С.42-43.

47.Козлов В.И. Современные направления в лазерной медицине // Лазерная медицина, 1997. № 1. С. 6-12.

48.Козлов В.И., Буйлин В.А., Самойлов Н.Г., Марков И.И. Основы лазерной физио- и рефлексотерапии. Самара: Киев, 1993 -216с

49.Козлов В.И., Соболева Т.М., Азизов Г.А., Ленькова H.A., Елфимов А.И.,Искакова Ж.Т. Состояние микроциркуляции у больных с артериальной ишемией нижних конечностей в процессе лазеротерапии // Физиологический журнал им. И.М. Сеченова, 1991. Т. 77. С. 55-67.

50.Константинов А. С. Общая гидробиология. М.: Высшая школа, 1986. -470 с.

51.Корочкин И.М., Чапидзе Г.Э., Капустина Г.М., Бохуа М.Р., Марсагинишвили Л.А., Беркинбаев С.Ф., Барбараш О.Л., Катаев М.И. Применение излучения гелий-неонового лазера для лечения острого

инфаркта миокарда. Методические рекомендации М: МЗ РСФСР. 1989.

52.Крылов В.В., Чеботарева Ю.В. Инкубация икры плотвы Rutilus rutilus (L.) в переменном электромагнитном поле частотой 500 Гц вызывает аномалии осевого скелета у сеголеток. Вкн. Экология пресноводных экосистем и состояние здоровья населения. 2006. Оренбург: Димур, С. 80-86.

53.Крылов В.В. Непосредственный и продленный эффекты действия переменного: электромагнитного поля: низкой частоты на продукционные показатели, Daphnia magna.ll Гидробиологический журнал. 2007, т. 43, № 4, с. 76-87.

54.Крылов В.В. Действие переменного электромагнитного поля сверхнизкой и низкой частот на выживаемость, развитие и продукционные показатели Daphnia magna Straus (Crustacea, Cladocera) // Биология внутренних вод, 2008. № 2. С. 33-39.

55.Куклев Ю.И. Физическая экология. М.: Высшая школа, 2001. - 357 с.

56.Кулагина К.В. Исследование зависимости частоты сердечных сокращений Daphnia magna от концентрации пестицидов // Биологические науки, 2011. №3, С. 191-197.

57.Леднев В.В. Биоэффекты слабых комбинированных постоянных и переменных магнитных полей // Биофизика, 1996. Т. 41, № 1. - С.224-231.

58.Леонова Г.Н., Майстровская О.С., Крылова Н.В. Влияние низкоинтенсивных излучений на течение экспериментального клещевого энцефалита // Вопросы вирусологии, 1997. №3. С.129-133.

59.Лесников Л.А., Исакова Е.Ф. Установление максимально допустимой концентрации для ракообразных. Методические указания по установлению эколого-рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ) загрязняющих веществ для водных .объектов, имеющих рыбохозяйственное значение. М.: ВНИРО, 1998. С. 48 - 65.

60.Лисиенко В.М., Минц Г.И., Скопионов С.А. Альтерация биологических жидкостей при лазеротерапии у хирургических больных. Тезисы докладов Международного симпозиума Применение лазеров в хирургии и медицине. М, 1989. С. 529-530.

61.Медведев И. Б., Беликова Е. И., Сямичев М. П. Фотодинамическая терапия в офтальмологии. 2006. М.: Наука. -128 с.

62.Медведев Э.С., Ошеров В.И. Теория безизлучательных переходов в многоатомных молекулах. М.: Наука, 1983.- 280 с.

63.Методические указания по установлению эколого-рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ) загрязняющих веществ для воды водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение Под ред. О. Ф. Филенко, С.А. Соколовой. М.: ВНИРО, 1998. - 145 с.

64.Методическое руководство по биотестированию воды РД 118-02-90. -М.: Госкомприрода СССР, 1991.-48 с.

65.Мисейко Г.Н, Тушкова Г.И., Цхай И.В. Daphnia magna (Crustacea, Cladocera) как тест-объект в оптимальных условиях культивирования // Известия Алтайского Государственного университета, 2001. №3. С. 83-86.

66.Непомнящих Г.И., Лажей Г.А., Непомнящих Л.М. Влияние некогерентного красного света на пролиферативную и метаболическую активность эпителия гастродуоденальной системы.

74

Бюллютень экспериментальной биологии и медицины, 1994. Т. 118. С. 194-198.

67.Новоселова Е.Г., Глушкова О.В., Хренов М.О., Черенков Д.А., Лунин С.М., Новосёлова Т.В., Чудновский В.М., Юсупов В.И., Фесенко Е.Е. Защитный эффект низкоинтенсивного лазерного излучения в условиях острого токсического стресса // Биофизика, 2007. Т. 52, № 1. С. 137140.

68.Новоселова Е.Г., Черенков Д.А., Глушкова О.В., Новоселова Т.В., Чудновский В.М., Юсупов В.И., Фесенко Е.Е. (2006) Действие низкоинтенсивного лазерного излучения (632, 8 нм) на изолированные клетки иммунной системы мышей // Биофизика, 2006. Т.51, № 3. С. 509-518.

69.Осипенко М. А., Межевикина Л.М., Крастс И.В., Яшин В.А., Новиков В.В., Фесенко Е.Е. Влияние «нулевого» магнитного поля на рост эмбриональных клеток и ранних зародышей мыши в культуре in vitro.ll Биофизика, 2008. Т. 53, № 4. С. 705-712.

70.0сипова Е.А., Крылов В.В., Юсупов В.И., Симонова Н.Б. Эффекты кратковременного действия низкоинтенсивного лазерного и ультрафиолетового излучений на эмбрионы Daphnia magna II Журнал Сибирского федерального университета. Сер. Биология, 2011. Т. 4, № 3. С. 301-309.

71.Плавский В.Ю., Барулин Н.В. Влияние лазерного излучения инфракрасной области спектра на устойчивость молоди осетровых рыб к дефициту кислорода // Биомедицинская радиоэлектроника, 2008. № 8. С. 65-74.

72.Подосиновикова Н.П., Ежов Н.Ф., Сайкина H.A., Беляев В.А., Долго-

Сабуров В.Б. Частота сердечных сокращений у Daphnia magna Straus

как функциональный тест оценки действия химических соединений //

75

Экспериментальная и клиническая фармакология, 2008. Т. 71, N 3. - С. 54-57.

73.Пятаков M.J1. По поводу сезонного изменения плодовитости у ветвистоусых // Зоологический журнал, 1956. Т. 35, № 12. С. 18141819.

74.Рогаткин Д.А Черный В.В Низкоинтенсивная лазерная терапия, взгляд физика на механизмы действия и опыт применения // Сб. «Взаимодействие излучения с веществом» // Материалы 2-й Байкальской школы по фундаментальной физике, Иркутск, ИГУ, 1999. С.366-378.

75.Сазонов A.M., Романов Г.А., Портной JIM., Одинокова В.А., Кару Т.И., Лобко В.В., Летохов B.C. // Советская медицина, 1985. № 12. С. 42-49.

76.Сарапульцева Е.И., Иголкина Ю.В. Изучение зависимости биологической опасности слабого радиочастотного воздействия от значения плотности потока энергии. Эксперименты на инфузориях Spirostomum ambiguum, облученных на частоте мобильной связи (1 ГГц) // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2011. Т. 151, №: 4 С. 459-462.

77.Сарапульцева Е.И., Иголкина Ю.В. Наследуемое снижение спонтанной двигательной активности Spirostomum ambiguum после низкоинтенсивного электромагнитного воздействия // Биомедицинская радиоэлектроника, 2010. №1. С. 45-48.

78.Сарапульцева Е.И., Иголкина Ю.В., Литовченко A.B. Исследование предельно допустимого уровня низкоинтенсивного электромагнитного излучения на частоте мобильной связи (1 ГГц) по

изменению двигательной активности Spirostomum ambiguum II Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2009. Т. 147, № 4. С. 411-413.

79.Смирнов H.H. Зоология беспозвоночных. Биология ветвистоусых ракообразных. -М.: ВИНИТИ, 1975. Т. 3 - 118 с.

80. Строганов Н.С., Колосова Л.В. Ведение лабораторной культуры и определение плодовитости дафний в ряду поколений. В сб.: Методики биологических исследований по водной токсикологии. - М.: Наука, 1971. С 210-216.

81.Усанов Д.А,. Майбородин A.B., Усанов А.Д., Креницкий А.П., Рытик А.П. Воздействие переменного магнитного поля и электромагнитного излучения терагерцевого диапазона частот на функциональное состояние дафнии // Биомедицинская радиоэлектроника. 2007. № 6. С. 55-58.

82.Усанов Д.А., Скрипаль A.B., Рзянина A.B., Усанов А.Д. Воздействие переменного низкочастотного магнитного поля на рост одноклеточной водоросли Scenedesmus И Биомедицинская радиоэлектроника, 2009. № 3. С. 39-43

83.Усанов Д.А., Скрипаль A.B.. Рзянина A.B., Усанов А.Д. Влияние низкочастотного магнитного поля на выживаемость и плодовитость пресноводного рачка - Daphnia magna Straus II биомедицинская радиоэлектроника, 2008. № 5. С 51-52.

84.Усанов Д.А., Сучков С.Г., Усанов А.Д. Корреляция между характером влияния переменного магнитного поля на акустические свойства воды и сердцебиение дафнии // Биомедицинские технологии- и радиоэлектроника, 2006. № 1-2. С. 67-69.

85.Усанов Д.А., Шишкин Г.Г., Скрипаль A.B., Усанов А.Д. Влияние внешнего переменного магнитного поля на частоту сердцебиений; пресноводного рачка — дафнию // Биомедицинская радиоэлектроника, 2006. №. 8. С. 57-61.

86.Утц С.Р., Волнухин В.А. Низкоинтенсивная лазеротерапия в дерматологии. Саратов.: Изд-во Саратовского Ун-та, 1998. -92 с.

87.Фельдман М.Г., Крутик С.Ю. Аспекты совместного воздействия низкоинтенсивного лазера и токсикантов // В Сб. трудов молодых ученых МГУТУ. М.: МГУТУ, 2005. С. 24-29.

88.Филенко О.Ф., Дмитриева А.Г., Исакова Е.Ф., Ипатова В.И., Прохоцкая В.Ю., Самойлова Т.А., Черномордина A.B. Механизмы реагирования организмов на воздействие токсичных веществ // В сб. Антропогенные влияния на водные экосистемы (По материалам конференции, посвященной 100-летию со дня рождения профессора Н.С.Строганова). Под ред. О.Ф. Филенко - М.: Т-во научных изданий КМК, 2005.-157 с.

89.Чеботарева Ю.В., Изюмов Ю.Г., Крылов В.В. Влияние переменного электромагнитного поля на раннее развитие плотвы Rutilus rutilus (Cyprinidae, Cypriniformes) // Вопросы ихтиологии. 2009. Т. 49, № 3. С. 422-428.

90.Чудновский В.М., Леонова Г.Н., Скопинов С.А., Дроздов А.Л., Юсупов В.И. Биологические модели и физические механизмы лазерной терапии. Владивосток: Дальнаука, 2002. -157 с.

91.Шахно Е.А. Физические основы применения лазеров в медицине, 2012. - СПб: НИУ ИТМО. - 129 с.

92.Шилова Н.А., Рогачева С.М., Лииник М.В. Влияние электромагнитного излучения коротковолновых частот на устойчивость гидробионтов к солям тяжелых металлов // Известия Самарского научного центра Российской академии наук, 2012. Т. 14, № 5-3. С. 862-864.

93.Шкуратов Д.Ю., Чудновский В.М., Дроздов А.Л. Влияние электромагнитных волн сверхвысокой частоты и лазерного излучения низкой интенсивности на гаметы морских беспозвоночных // Цитология, 1997. Т. 39, № 1. С. 25-28.

94.Anderson B.G. The toxicity thresholds of various substances found in industrial wastes as determined by the use of Daphnia magna II Sewage Works Journal, 1944. Vol. 16, N 6. P. 1156-1165.

95.Babushkina I.V., Borodulin V.B., Shmetkova N.A., Morrison V.V., Usanov A.D., Skripal A.V., Usanov D.A.The influence of alternating magnetic field on Escherichia coli bacterial cells // Pharmaceutical Chemistry Journal, 2005. Vol. 39, N. 8. P. 398-400.

96.Baylor E.R. Cardiac pharmacology of the Cladoceran, Daphnia II Biological Bulletin, 1942. Vol. 83, N. 2. P. 165-172.

97.Buettner G.R., Oberly L.W. The apparent production of superoxide and hydroxyl radicals by hematoporphyrin and light as seen by spin-trapping // FEBS Letters, 1980. Vol. 121. P. 161-164.

98.Buikema A. L. Effects of varying wavelength intensities and polarized light response of Daphnia pulex Leydig, 1860 emend. Richard, 1896 (Cladocera) // Crustaceana, 1968. Vol. 14, N. 1. P. 45-55.

99.Dave G. Effects of copper on growth, reproduction, survival and haemoglobin in Daphnia magna II Biochemistry and physiology, 1984. Vol. 78, N2. P. 439-443.

100.Dougherty T J., Gomer C J., Henderson B W., Jori G., Kessel D., Korbelik M., Moan J. Peng Q. Photodynamic Therapy // Journal of the nation cancer institute, 1990. Vol. 90, N. 12. P. 889-905.

101.Dougherty T.J. Photodynamic Therapy, basic principles and clinical applications. New York: Dekker, 1992. - 186 p.

102.Dougherty T.J., Kaufman J.E., Goldfarb A. Weishaupt K.R., Boyle D., Mittleman A. Photoradiation therapy for the treatment of malignant tumors. Cancer research, 1978.Vol. 38. P. 2628-2635.

103.Duan R, Zhu L, Liu TC, Li Y, Liu J, Jiao J, Xu X, Yao L, Liu S. Light emitting diode irradiation protect against the amyloid beta 25-35 induced apoptosis of PC12 cell in vitro II Lasers in Surgery and Medicine, 2003. Vol. 33. P. 199-203.

104.Enserink L., Luttmer W., Maas-Diepeveen H. Reproductive strategy of Daphnia magna affects the sensitivity of its progeny in acute toxicity tests // Aquatic toxicology, 1990. Vol.17, N.l. P. 15-25.

105.Filenko O.F., Isakova E.F., Gershkovich D.M. The lifespan of the cladoceran Ceriodaphnia affinis Lilljeborg in a laboratory culture // Inland water biology, 2011. Vol. 4, N. 3. P. 283-286.

106.Filippin L„ Magalhaes P.J., Di Benedetto G., Colella M., Pozzan T. Stable interactions between mitochondria and endoplasmic reticulum allow rapid accumulation of calcium in a subpopulation of mitochondria // Journal of Biological Chemistry, 2003. Vol. 278, N. 40. P. 39224-39234.

107.Fingar V. Vascular effect of photodynamic therapy // Journal of Clinical Laser Medicine and Surgery, 1996. Vol. 14. P. 323-328.

108.Fries G. Über die Einwirkung der Tagesperiodik und der Temperatur auf den Generationswechsel, die Weibchengrösse und die Eier von Daphnia magna Straus // Zeitschrift für Morphologie und Ökologie der Tiere, 1964. V. 53,1. 5. P. 475-516.

109.Giese A.C. Hillenkampf F., Pratesi, R., and Sacchi, C. Photosensitization of organisms with special reference to natural photosensitizers // Laser in Biology and Medicine, 1980. Vol. 34. P. 299-319.

110.Green J. Seasonal variation in egg production by Cladocera // Journal of Animal Ecology, 1966. Vol. 35, N. 1. P. 77-104.

111 .Hamblin M.R., Demidova T.N. Mechanisms of low level light therapy -an introduction. In: Hamblin M.R., Anders J.J., Waynant R.W., Editors. Mechanisms for Low-Light Therapy, 2006, Bellingham, WA, The International Society for Optical Engineering, P. 1-12.

112.Hayata Y., Kato H., Konaka C., Ono J., Takizawa N. Hematoporphyrin derivative and laser photoradiation in the treatment of lung cancer // Chest, 1982. Vol. 81. P. 269-277.

113.Henderson B.W., Dougherty T.J. How does photodynamic therapy work? // Photochemistry and Photobiology, 1992. Vol. 55. P. 145-157.

114.Huang Y.-Y., Chen A. C.-H., Carroll J.D. Hamblin M.R. Biphasic dose response in low-level light therapy // Dose Response Journal, 2009. Vol.7, P. 358-383.

115.Ingle L, Wood T.R., Banta A.M. A study of longevity, growth, reproduction and heart rate in Daphnia longispina as influenced by

limitations in quantity of food//Journal of Experimental Zoology, 1937. Vol. 76, N.2. P.325-352.

116.Jori G., Reddi E. The role of lipoproteins in the delivery of tumour-targeting photo-sensitizers // International Journal of Biochemistry, 1993. Vol.25. P. 1369-1375.

117.Karu T. Primary and secondary mechanisms of action of visible and near infra red radiation on cells // Journal of Photochemistry and Photobiology, 1999. Vol. 49, N l.P. 1-17.

118.Karu T.I. Low power laser therapy. // in Biomedical Photonics Handbook. Ch. 48, Editor-in-chief Tuan Vo-Dinh, Boca Raton: CRC Press N.Y., 2003, P. 48-1 -48-25.

119.Karu T.I. Molecular mechanisms of the therapeutic effect of low intensity laser irradiation // Lasers in the Life Sciences, 1988. Vol. 2. P. 53-74.

120.Karu T.I. On molecular mechanism of therapeutic action of low-intensity laser light // Pric USSR Academy of Science. 1986. Vol. 291, N. 5. P. 1245-1249.

121.Karu T.I. Ten lectures on basic science of laser phototherapy. Grangesberg: Prima Books, 2007. - 414 p.

122.Karu, T.I. Photobiology of Low Power Laser Therapy // Health Physics Society, 1989. Vol. 56, N. 5. P. 691-704.

123.Kara, T.I., Kalendo, G.S., and Letokhov, V.S. Control of RNA synthesis rate in tumor cell HeLa by action of copper laser // Lettere Nuovo Cimento, 1981. Vol.32, N. 2. P. 55-59.

124.Karu, T.I., Kalendo, G.S., Letokhov, V.S., Lobko, V.V. Biostimulation for HeLa cells by low-intensity visible light. // II Nuovo Cimento, 1982. Vol. 1, N. 6. P. 828-840.

125.Klebanov G.I., Shuraeva N.YU., Chichuk T.V., Osipov A.N., Vladimirov YU.A., Rudenko T.G., Shekhter A.B. A comparative study of the effects of laser and light-emitting diode radiation on the wound healing and functional activity of wound exudate cells // Biophysics, 2005. Vol. 50, N. 6. P. 980-985.

126.Klebanov G.I., Teselkin Yu.O., Babenkova I.V., Bashkueva T.Yu., Chichuk T.V., Vladimirov Yu.A. Low Power Laser Irradiation Induces Leukocyte Priming//General Physiology and Biophysics, 1998. Vol. 17, N. 4. P. 365-376.

127.Klima H. The effects of low level laser therapy in the frame of nonlinear dynamical systems // Book of abstracts and posters of the 8 th international congress of European medical laser association (EMLA) and 1st Russian congress of medical laser association (RMLA). M., 2001. P. 14.

128.Lubart R., Malik Z., Rochkind S., Fisher T. A possible mechanism of low-level laser-living cell interaction // Laser Theory, 1990. Vol. 2, N. 1. P. 6568.

129.McMachon J.W. Environmental factors influencing the feeding behavior of Daphnia magna Straus // Canadian Journal of Zoology, 1968. Vol. 46, N. 4. P. 756-672.

130.Mester E., Szende B., Gartner P. The effect of laser beams on the growth of hair in mice // Radiobiol Radiother (Berl), 1968. Vol. 9, N. 5. P. 621626.

131.Moon P. Proposed standard solar-radiation curves for engineering use // Journal of The Franklin Institute, 1940. Vol. 230, N. 5. P. 583-617.

132.Muller G., Chance B., Alfano R. Arridge S., Beuthan J., Gratton E., Kaschke M., Masters B., Svanberg S., van der Zee P. Medical optical tomography: functional imaging and monitoring. Bellingham: SPIE Press, 1993.-642 p.

133.Naumann, E. Über die Anwendung von Daphnia magna Straus als Versuchstier zur experimentellen Klarlegung der Lebensverhältnisse im Wasser // Internationale Revue der gesamten Hydrobiologie und Hydrographie, 1934. V. 31, N. 1. P. 421-431.

134.Palma P., Barbosa LR. Embryo-toxic effects of atrazine environmental concentrations on the crustacean Daphnia magna II Global journal of environmental science and technology, 2011. Vol. 1,N. 12. P. 1714-1718.

135.Phil Sang Chung, You Chan Kim, Min Sang Chung, Sang Oun Jung, Chung Ku Ree, The Effect of Low-power Laser on the Murine Hair Growth // Journal Korean Society of Plastic and Reconstructive Surgery, 2005. Vol. 32, N. 2 P. 149-154.

136.Plavskii V.Yu., Barulin N.V. Effect of exposure of sturgeon roe to low-intensity laser radiation on the hardiness of juvenile sturgeon // Journal of Applied Spectroscopy, 2008. Vol. 75. P. 241-250.

137.Popov A.Yu., Popova N.A., Tyurin A.V. A physical model of the action of low-intensity laser radiation on biological objects // Optics and Spectroscopy, 2007. Vol. 103. N.4. P. 671-677.

138.Satino JL, Markou M. Hair regrowth and increased hair tensile strength using the HairMax LaserComb for low-level laser therapy // International

Journal of Cosmetic Surgery and Aesthetic Dermatology, 2003, N 5. P.l 13117.

139. Sutherland J.C. Biological effects of polychromatic light // Photochemistry and Photobiology, 2002. Vol. 76. P. 164-70.

140.Tuner J., Hode,L. Low Level Laser Therapy: Clinical Practice and Scientific Background, 1999. Goengesberg: Prima Books. -403 p.

Ml.Uzdensky A.B., Gorbacheva L.T.; Vorob'eva O.A.; Son C. Helium-neon laser radiation effect on some teratogenic processes in fish embryos //Proc. SPIE. 2001. Vol. 4515. P. 32-35.

142.Vareshin N.A. Effects of EHF radiation and cytoactive substances on fertilization and early embryonic development of the sea urchin Strongylocentrotus intermedins //Russian Journal of Marine Biology, 2007. Vol. 33. N. 5. P. 333-337.

143.Vladimirov Y.A., Osipov A.N., Klebanov G.I. Photobiological principles of therapeutic applications of laser radiatioN // Biochemistry (Moscow), 2004. Vol. 69 N. 1 P. 81-90.

144.Vladimirov, Y.A., Gorbatenkova, E.A., Paramonov, N.V., Azizova, O.A. Photoreactivation of superoxide dismutase by intensive red (laser) light // Free Radical Biology and Medicine, 1988. N. 5. P. 281-286

145.Wang W. Chromate ions as a reference toxicant for aquatic phytotoxicity tests // Environmental Toxicology and Chemistry, 1987. Vol. 213. P. 361397.

146.Weishaupt K., Gomer C., Dougherty T. Identification of singlet oxygen as the cytotoxic agent in photoinactivation of murine tumor // Cancer Research, 1976. Vol. 36. P. 2326-2329.

147.Welch A.J. van Gemert M.C.J. Tissue optics, 1992. N.Y.: Academic -196 p.

148.Wikramanayake TC, Rodriguez R, Choudhary S, Mauro LM, Nouri K, Schachner LA, Jimenez JJ. Effects of the Lexington LaserComb on hair regrowth in the C3H/HeJ mouse model of Alopecia areata II Lasers in Medical Science, 2012. Vol. 27, N. 2. P. 431-436.