Влияние малых доз озона на биоценоз активного ила очистных сооружений города Ростова-на-Дону тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.08, кандидат наук Агасиева, Диана Назимовна

• Агасиева, Диана Назимовна
• кандидат наук
• 2017

Оглавление диссертации кандидат наук Агасиева, Диана Назимовна

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. БИОЛОГИЧЕСКАЯ ОЧИСТКА СТОЧНЫХ ВОД

1.1 Понятие биологической очистки сточных вод

1.2 Характеристика сооружений биологической очистки сточных вод как экологической системы

1.3 Структура и функциональная характеристика микробиоценоза активного ила

1.3.1 Прокариотические компоненты

1.3.1.1 Аммонифицирующие бактерии

1.3.1.2 Нитрифицирующие бактерии

1.3.1.3 Нитратредуцирующие и денитрифицирующие бактерии

1.3.1.4 Сульфатредуцирующие бактерии

1.3.1.5 Тионовые бактерии

1.3.2 Эукариотические компоненты

1.3.2.1 Простейшие

1.3.2.2 Плесневые грибы и дрожжи

1.3.2.3 Многоклеточные животные

1.4 Интенсификация процесса очистки сточных вод

1.4.1 Основные факторы, влияющие на процессы очистки

1.4.2 Применение озонирования на сооружениях ОСК

1.4.3 Биологическое действие озона

ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Объекты и материалы исследования

2.2 Методы исследования

2.2.1 Методы микроскопического исследования гидробиологического состава ила

2.2.2 Методы выделения и количественого учета бактерий цикла азота

2.2.2.1 Аминоавтотрофные бактерии

2.2.2.2 Аминогетеротрофные бактерии

2.2.2.3 Нитрифицирующие бактерии

2.2.2.4 Нитратредуцирующие и денитрифицирующие бактерии

2.2.3 Методы выделения и количественого учета бактерий цикла серы

2.2.3.1 Сульфатредуцирующие бактерии

2.2.3.2 Тионовые бактерии

2.2.4 Выделение и учет общего числа микроорганизмов на сточном агаре

2.2.5 Методы родовой и видовой идентификации выделенных бактерий

2.2.5.1 Микроскопическое исследование выделенных бактерий

2.2.5.2 Определение типа метаболической активности (тест Хью -Лейфсона)

2.2.5.3 Вывление каталазной активности

2.2.5.4 Выявление оксидазной активности

2.2.5.5 Выявление лецитиназной и липазной активности

2.2.5.6 Выявление амилолитической активности

2.2.5.7 Методы исследования протеолитических свойств

2.2.5.8 Выявление устойчивости к NaCl

2.2.5.9 Температурные тесты

2.2.5.10 Постановка тест-систем API® strips bio Merieux

2.2.6 Методы озонирования активного ила

2.2.6.1 Схема эксперимента по озонированию

2.2.7 Методы исследования ионного состава

2.2.7.1 Фотометрический метод определения концентрации ионов аммония

2.2.7.2 Фотометрический метод определения концентрации ионов нитрита

2.2.8 Методы определения ферментативной активности ила

2.2.8.1 Определение общей дегидрогеназной активности

2.2.8.2 Определение общей уреазной активности

2.2.9 Методы статистической обработки данных

ГЛАВА 3. КАЧЕСТВЕННЫЙ СОСТАВ АКТИВНОГО ИЛА

3.1 Прокариотические компоненты

3.2 Эукариотические компоненты

ГЛАВА 4. КОЛИЧЕСТВЕННЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ

БАКТЕРИОЦЕНОЗА АКТИВНОГО ИЛА

ГЛАВА 5. ВЛИЯНИЕ ОЗОНИРОВАНИЯ НА МИКРОБИОЦЕНОЗ АКТИВНОГО ИЛА

5.1 Действие озонирования на сообщество активного ила

5.2 Действие озонирования на процессы утилизации ионов аммония и нитрита в активном иле

5.3 Действие озона на ферментативную активность ила

ВЫВОДЫ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

SA - агар на основе сточной воды (sewage agar)

КАА - крахмало-аммиачный агар

кл/мл - клеток в миллилитре

КОЕ - колониеобразующие единицы

МПА - мясо-пептонный агар

НВЧ - наиболее вероятное число

ОВП - окислительно-восстановительный потенциал

ОСК - очистные сооружения канализации

ПДК - предельно допустимая концентрация

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние малых доз озона на биоценоз активного ила очистных сооружений города Ростова-на-Дону»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность исследования. В современном мире постоянно возрастает количество сточных вод, образующихся в результате хозяйственно-бытовой деятельности людей, что требует повышения эффективности и удешевление методов их очистки. Развитие и совершенствование современных методов биологической очистки сточных вод особенно от азотных загрязнений является насущной задачей, так как попадание их в водоемы, в грунтовые и подземные воды катастрофически ухудшает качество пресной воды, необходимой для снабжения населения (Ножевникова и др., 2012).

Биологические методы очистки вод, загрязненных бытовыми отходами применяются уже более сотни лет. Преимуществом биологических методов перед многими химическими и физико-химическими является полная минерализация органического материала, который поступает на очистку (Ивчатов, Малов, 2006).

Функциональным ядром процесса биологической очистки является активный ил. Активный ил - это сложный структурированный биоценоз (флокула), представляющий собой совокупность популяций более чем 300 видов организмов, многих систематических групп, однако до 90 % всех органических веществ из сточных вод минерализуется за счет жизнедеятельности различных эколого-трофических групп бактерий. Интенсивность очистки сточных вод напрямую зависит от уровня метаболизма бактерий, входящих в состав активного ила (Ротмистров, Гвоздяк, Ставская, 1978; Cronje et al., 2002; Hashimoto et al., 2014).

Микробное сообщество, ведущее процесс разложения органики, находится в динамической системе называемой аэротенком. Любое качественное, либо количественное изменение в микробиоценозе аэротенка может нанести существенный ущерб системе очистки. (Notes on activated sludge process control, 2009). На каждом этапе работы аэротенка, существует

ряд факторов, позитивно или негативно влияющих на работу как отдельных участников процесса биодеградации, так и целых эколого-трофических групп активного ила. Дисбаланс в работе микробиологических группировок напрямую приводит к ухудшению качества очистки сточных вод (Zhou, Smith, 2002).

Вследствие вышеизложенного, многими исследователями в области экологической биотехнологии и инженерами-проектировщиками ОСК были предприняты попытки создания либо специфических конструкций сооружений очистки, либо определенных технологий, внедряемых на уже работающие сооружения, с целью интенсифицировать и корректировать процесс биологической очистки. Одной из таких технологий является в настоящее время дискретная подача озона в малых дозах в активный ил. Важно отметить, что первые попытки применения озона в технике водоподготовки были направлены исключительно на обеззараживание воды на последнем этапе очистки стоков перед тем, как выпустить их в открытые водоемы (Avery et al., 2013).

Исключительно ценным свойством озона является экологическая чистота применения - способность разлагаться до кислорода. При этом абсолютно не увеличиваются объем и масса обработанной среды, а также не вносятся токсические или солеобразующие элементы, что чрезвычайно актуально для обработки воды, попадающей, в конечном счете, в открытые водоемы (Озонирование в процессах очистки воды, 2007).

Концентрации, вводимые при озонировании достаточно низкие, поэтому не должны оказывать токсическое воздействие на микробиоценоз активного ила. Сущность метода, предложенного автором заключается в дискретной подаче озона в малых дозах в активный ил, через равные промежутки времени в течение одного цикла загрузки в аэротенке. В результате чего, предполагается повышение метаболической активности микробиоценоза.

В пользу преозонирования говорят некоторые из уже имеющихся исследований российских и зарубежных ученых (Chu et al., 2009; Bildsoe, Adamsen, Feilberg, 2012), однако процесс преозонирования в настоящее время не имеет широкого применения, поскольку данные исследования касались только физико-химической составляющей процесса очистки. Детальное его влияние и механизмы положительного воздействия как на взаимоотношения между организмами в биоценозе активного ила, так и на отдельных его представителей мало изучены. Таким образом, комплексное исследование влияния озонирования в малых дозах представляется чрезвычайно актуальным и представляет существенный научный и практический интерес.

Цели и задачи исследования. Целью данной работы являлось изучение влияния озонирования в малых дозах на сообщество активного ила городских очистных сооружений.

Для выполнения цели были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать качественный состав микробиоценоза сообщества активного ила аэротенка, а именно прокариотических организмов, одноклеточных и многоклеточных эукариот.

2. Исследовать численность ряда эколого-трофических групп микроорганизмов активного ила, а именно: общую численность, аминоавтотрофов, аминогетеротрофов, нитрификаторов, денитрификаторов, нитратредукторов, сульфатредукторов, тионовых бактерий и актиномицетов.

3. Оценить сезонную динамику численности перечисленных эколого-трофических групп микроорганизмов активного ила в летний, осенний и весенние периоды года.

4. Оценить изменения в численности и структуре микробиоценоза активного ила при действии озонирования.

5. Оценить влияние озонирования на процессы утилизации ионов аммония и нитрита.

6. Исследовать уреазную и дегидрогеназную активность в условиях озонирования Основные положения, выносимые на защиту.

1. Состав бактериоценоза активного ила очистных сооружений г. Ростова-на-Дону представлен широким спектром видов, причем представители филума АсйпоЪаСепа составляют 38% от общего числа выделенных видов.

2. В составе активного ила очистных сооружений г. Ростова-на-Дону преобладают виды т. СШа1а, встречаются представители т. Яо!а1:опа и малощетинковые черви р. Ав1о8ота.

3. Озонирование в дозах 0,05, 0,1 и 0,25 мг/л позволяет регулировать численность некоторых эколого-трофических групп микроорганизмов в активном иле.

4. Озонирование в дозах 0,25 и 0,5 мг/л повышает скорость утилизации ионов аммония микробиоценозом активного ила.

5. В озонируемом иле активность уреазы повышается при действующей концентрации озона равной 0,25 мг/л, а общая активность дегидрогеназ - при 0,1 мг/л.

Научная новизна работы.

Принципиальная новизна полученных данных состоит в том, что впервые проведена комплексная оценка структуры микробиоценоза активного ила, сформированного на сооружениях очистки города Ростова-на-Дону. Впервые определена численность и приведена сезонная динамика основных эколого-трофических групп бактерий, обеспечивающих протекание циклов азота и серы в исследуемых сооружениях очистки города Ростова-на-Дону. Установлен микробиологический и гидробиологический состав активного ила сооружений очистки города Ростова-на-Дону. Установлено влияние озонирования в малых дозах на качественные и количественные характеристики сообщества активного ила. Выявлены изменения уреазной и дегидрогеназной активности при озонировании в малых дозах.

Практическая значимость. Полученные данные позволяют разрабатывать специальные методы интенсификации процессов очистки, а также корректировать возможный дисбаланс качественных характеристик активного ила. Также, результаты работы могут быть применены для интенсификации процессов очистки не только на ОСК города Ростова-на-Дону.

На основе информации, полученной в ходе исследования, представляется возможной разработка ускоренных и экономически выгодных методов корректировки процесса биологического окисления органического вещества на сооружениях очистки сточных вод.

Материалы работы могут использоваться в учебном процессе при проведении общего курса «Микробиология» и специальных курсов «Техническая микробиология», «Промышленная микробиология», «Экология микроорганизмов» в Южном федеральном университете, а также специальных курсов кафедры Водоснабжения и водоотведения РГСУ.

Личный вклад автора. Тема, цель, задачи, объекты, методы и план исследования определены автором совместно с научным руководителем. Отборы всех проб проводились лично автором исследования. Лабораторные опыты и анализы проведены лично автором или под его руководством. Анализ и обобщение полученных результатов, формулировка выводов и основных защищаемых положений выполнены лично автором при направляющем и корректирующем участии научного руководителя. По результатам исследований автором или научным коллективом с участием автора опубликован ряд научных работ.

Апробация результатов исследований. Материалы, положенные в основу работы, были представлены на следующих конференциях: Международная научно-практическая конференция «Строительство - 2013. Проблемы и перспективы развития современных инженерно-экологических систем.» (Ростов-на-Дону, 2013);19-я международная Пущинская школа-конференция молодых ученых «биология - наука XXI века» (Пущино, 2015);

Международная научно-практическая конференция «Охрана природной среды и эколого-биологическое образование» (Елабуга, 2015); 8-я Всероссийская научно-практическая конференция молодых ученых на базе ИБФРМ РАН - «Стратегии взаимодействия микроорганизмов и растений с окружающей средой» (Саратов, 2016). Всероссийская научно-практическая конференция «Экология и рациональное природопользование» (Ярославль, 2017).

Публикации.

Основные положения диссертационной работы изложены в 13 публикациях, из них 3 работ в изданиях из перечня ВАК.

Структура и объем диссертации Диссертация состоит из введения, 5 глав, выводов, заключения и списка литературы. Работа изложена на 155 страницах машинописного текста, содержит 12 таблиц, 49 рисунков, 8 приложений. Список использованной литературы включает 248 источник, в том числе 145 на иностранных языках.

Благодарности. Автор выражает глубокую признательность за помощь в работе научному руководителю - заведующему кафедрой Биохимии и микробиологии ЮФУ, д.б.н., профессору В.В. Внукову; за научные консультации и неоценимую помощь на всех этапах работы - к.б.н., доценту А.В. Поляковой; за ценные рекомендации - к.т.н., заведующей кафедрой Водоотведения и водоснабжения РГСУ, Е.В. Вильсон, руководителю лаборатории вирусологии, микробиологии и молекулярно-биологических методов исследования Ростовского НИИ Микробиологии и паразитологии -д.м.н., Алешукиной А.В., за помощь в проведении ряда экспериментов -к.б.н. ст. преподавателю кафедры биохимии и микробиологии Академии биологии и биотехнологии им. Д.И. Ивановского А.В. Горовцову, ассистенту кафедры И.А. Аллилуеву, а также студентам В.В. Головинову, А.Ю. Шолухе, И.С. Приходько.

ГЛАВА 1. БИОЛОГИЧЕСКАЯ ОЧИСТКА СТОЧНЫХ ВОД

1.1 Понятие биологической очистки сточных вод

Обработка сточных вод включает три этапа. Механическая обработка поступающего материала, при которой отсеиваются в основном включения, суспендированный материал либо осаждается на дно (седиментация), либо всплывает (флотация жиров и масел) и в результате на этом этапе удаляется до 30% общей массы загрязнений. Механические стадии по сравнению с биологическими являются более автоматизированными (Паршин, Муханов, 2008).

Биологический метод очистки основан на способности микроорганизмов использовать в качестве ростовых субстратов различные соединения, входящие в состав сточных вод. Достоинства данного метода заключаются в возможности удаления из стоков широкого спектра органических и неорганических веществ, относительной простоте аппаратурного оформления и протекания процесса и невысоких эксплуатационных расходах. В ходе процесса очистки необходимо строго соблюдать технологии режима очистки и учитывать чувствительность микроорганизмов к высоким концентрациям загрязнителей. Микробное сообщество активного ила, являющегося основным компонентом, на втором этапе очистки сточных вод удаляет до 99% органического вещества.

Третий этап представляет собой химическую очистку для удаления фосфата и других химических поллютантов (Современная микробиология, 2009).

Для биологической очистки применяют два типа процессов: аэробные, в которых микроорганизмы используют для окисления веществ кислород, и анаэробные, при которых микроорганизмы не имеют доступа ни к свободному растворенному кислороду, ни к предпочтительным акцепторам

электронов типа нитрат-ионов. В этих процессах микроорганизмы используют углерод органических веществ в качестве акцептора электронов.

Принцип действия аэробных систем биологической очистки базируется на методах проточного культивирования. Начальный этап - это утилизация органических веществ. Следующим этапом биологической очистки является нитрификация. Микробное сообщество, представляющее биомассу активного ила, поддерживается при непрерывном культивировании. Возврат в систему (рециклизация) биомассы активного ила повышает эффективность разложения субстрата, а также содействует поддержанию в нем медленнорастущих микроорганизмов (Современная микробиология, 2009).

Избыток активного ила и материал, собранный в процессе очистки в аэробных условиях подвергается анаэробной постобработке. В анаэробном биореакторе биомасса активного ила и другие компоненты, доступные для разложения, превращаются в метан и диоксид углерода (Волова, 1999).

Условия спуска в водоемы бытовых и промышленных сточных вод обычно регулируются только с точки зрения охраны здоровья населения. Находящиеся в городских сточных водах соединения азота являются конечными продуктами метаболизма азота в организме человека. 80-90% всего азота сточных вод присутствует в форме аммиака или мочевины. Нитраты и нитриты сточных вод являются результатом нитрификации. В городских сточных водах содержатся также аминокислоты и пептиды и другие органические соединения азота. Промышленные сточные воды представляют собой второстепенный источник поступления азота в водоемы. Аммиак и мочевина, содержащиеся в городских сточных водах, доступны для водных растений и бактерий (Микробиология загрязненных вод, 1976).

Очистные сооружения городской канализации как объекты городской инфраструктуры являются завершающим звеном в системе приема, удаления и очистки сточных вод, образующихся в процессе жизнедеятельности населения, работы промышленных предприятий. В настоящее время биологический метод очистки активным илом в условиях аэротенка является

наиболее универсальным, широко применимым при обработке сточных вод. Аэробное окисление, составляющее основу этого процесса, является следствием протекания большого комплекса взаимосвязанных процессов различной сложности: от элементарных актов обмена электронов до сложных взаимодействий компонентов биоценоза активного ила с установлением динамического равновесия (Mayo, Bigambo, 2005).

Аэротенки городских очистных сооружений предназначены для удаления биологически окисляемых органических веществ. В этом смысле в них не должны попадать биохимически инертные и токсичные поллютанты. Сложность очистки связана с чрезвычайным разнообразием примесей в стоках, количество и состав которых постоянно изменяется вследствие появления новых производств и изменения существующих, при отсутствии доступных и надежных технологий по удалению токсикантов из сточных вод перед их сбросом в системы канализации. Это определяет необходимость постоянного контроля за содержанием комплекса загрязняющих веществ сточных вод, поступающих на биологическую очистку, выявления причин существенного снижения качества биологической очистки и разработки оперативных мероприятий по предотвращению воздействия токсикантов на активный ил аэротенков (Сачковская, 2010).

В городских сточных водах до их очистки азот в окисленных формах -нитриты и нитраты - как правило, отсутствует. Окисленные формы азота отсутствуют даже в том случае, если в производственных стоках имелись нитриты и нитраты. Денитрификация примесей сточной воды объясняется процессами анаэробиоза при транспортировании сточных вод по системе водоотведения, действием денитрифицирующих микроорганизмов и образованием молекулярного азота из его окисленных форм. В свою очередь, окисленные формы азота появляются в ходе процессов нитрификации и денитрификации, свидетельствуя о полной завершенности процессов биологической очистки сточных вод (Колесников, Вильсон, 2005).

1.2 Характеристика сооружений биологической очистки сточных вод

как экологической системы

В 1900 году, в Англии было решено впервые применить консорциум микроорганизмов активного ила в очистке сточных вод. Метод получил одноименное название - метод «Активного ила» («Activated sludge process») (Notes on activated sludge, 2009).

Активный ил представляет собой сложный структурированный биоценоз, представляющий собой совокупность популяций более чем 300 видов эукариотических и прокариотических организмов. Формирование активного ила в очистных сооружениях происходит под влиянием химического состава обрабатываемой сточной воды, растворенного в ней кислорода, температуры, pH и окислительно-восстановительного потенциала.

Внешне активный ил выглядит как коричневые хлопья размером до нескольких миллиметров. При отстаивании жидкости, взятой из аэротенка, он выпадает в осадок. Частицы активного ила образованы преимущественно синтезированными бактериями различными полисахаридами. Активный ил обладает высокой адсорбционной способностью, на поверхности его частиц концентрируются поступающие со сточной жидкостью мелкие частицы, клетки микроорганизмов и молекулы растворенных веществ (Громов, Павленко, 1989).

Обработка сточных вод на очистных сооружениях канализации города Ростова-на-Дону в настоящее время производится по классической технологии, которая включает механическую очистку на решетках, в песколовках и первичных отстойниках. Последующая очистка проходит в аэротенках. Аэротенк в свою очередь, является основным сооружением, где происходит полное биологическое окисление поступающей на очистку азотсодержащей органики. Независимо от классической инженерной конструкции, в каждом аэротенке, в зависимости от биологического и химического состава сточных вод, а также физико-химических условий на

сооружении, формируется и развивается специфический состав рабочей микрофлоры. Развитие такого микробиоценоза происходит поэтапно, где каждый этап характеризуется своим качественным и количественным составом представителей различных физиологических групп микроорганизмов. В каждом цикле очистки сначала наблюдается преобладание большого ряда сложных органических веществ, что влечет за собой быстрый рост и развитие бактериальной флоры, участвующей в круговороте азота и серы. После разложения азотсодержащей органики в составе ила преобладают в развитии питающиеся бактериями жгутиковые, голые и раковинные амебы. В последующих этапах развиваются крупные раковинные амебы, свободноплавающие инфузории, брюхоресничные инфузории. В конечном счете, развиваются прикрепленные инфузории и появляются различные черви и тихоходки, что является признаком хорошо сформированного и качественно работающего активного ила (Martín-Cereceda, Serrano, Guinea, 1996; Bitton , 2002).

Между различными группами организмов активного ила наблюдаются три типа отношений, лежащих в основе микробиологического процесса очистки. Первый тип это отношения метабиоза между гетеротрофными, нитрифицирующими и нитратредуцирующими бактериями, а также между сульфатредукторами и микроорганизмами, окисляющими восстановленные соединения серы. Второй тип - конкурентные отношения между гетеротрофными бактериями и сапрозойными простейшими. Третий тип "хищник-жертва" между ресничными простейшими и гетеротрофными бактериями.

В активном иле можно выделить три последовательных трофических уровня, соответствующих основным фазам роста ила и обуславливающих развитие определенных групп микроорганизмов (в периодическом процессе очистки):

первый трофический уровень (когда на единицу массы ила приходится максимальная масса загрязнения) характеризуется преобладанием в иле

гетеротрофных бактерий и сапрозойных простейших, питающихся растворенными органическими веществами, и незначительным развитием свободноплавающих ресничных;

второй трофический уровень (при среднем количестве загрязнения) отличается развитием в иле голозойных свободноплавающих инфузорий и коловраток, питающихся бактериями и сапрозойными простейшими;

третий трофический уровень (с минимальным количеством загрязнений) характеризуется максимальным развитием прикрепленных и хищных инфузорий, коловраток и червей, питающихся голозойными инфузориями и бактериями.

Особенностью биоценоза активного ила является практически полное отсутствие в нем звена первичных продуцентов, поскольку органическое вещество поступает со сточными водами в готовом виде (Жмур, 2003).

1.3 Структура и функциональная характеристика микробиоценоза

активного ила

Активный ил любого действующего аэротенка представляет собой густонаселенный микроорганизмами субстрат. При изучении характеристики активного ила, следует уделить основное внимание такой структурно-функциональной единице как флокула. С 60-х годов начали активно выделять и изучать флокулообразующие виды активного ила, детально изучать механизмы флокулообразования, перекрестное влияние и взаимное перераспределение видов в частичках активного ила (Те7ика, 1969; Ка1:о, каМ, ТакаЪаБЫ, 1971). Было установлено, что флокулы практически полностью состоят из бактериальных клеток и именно структура и биологические свойства отдельных флокул активного ила определяют его основную эффективность. Было обосновано влияние на процессы очистки нитчатых микроорганизмов и их участие в процессе флокулообразования (Иогап, Би'ЛН, Бсс1ев, 1988). Таким образом, флокула представляет собой

полисахаридный матрикс, в пространстве которого распределены бактерии и другие участники биологических процессов, происходящих в активном иле. Хоукс назвал флокулы "экологическими единицами" активного ила (Pike,Curds, 1971; Шарапова, Хицова, 2007). На флокулах и между ними поселяются многочисленные мелкие эукариоты. Благодаря активному перемешиванию иловой смеси в аэротенке, в каждой ее капле можно обнаружить представителей почти всех организмов, которые обитают во всем аэротенке (Никитина, 2010).

Флокулы рассматриваются в качестве "жизненного пространства", а гликокаликс, образуемый бактериями, служит в свою очередь механизмом распределения видов во флокуле (Li, Ganczarczyk,1990). Объединяясь во флокулы, бактерии оказываются защищенными от массового поедания их беспозвоночными животными, от неблагоприятного воздействия компонентов сточной воды и механических повреждений. К тому же, велика роль в распределении гидробионтов в массе ила. Многие гидробионты используют флокулы ила в качестве механической опоры. Так, корненожки , брюхоресничные инфузории, тихоходки, гастротрихии передвигаются по поверхности флокул; нитчатые формы (бактерии, грибы, водоросли) врастают во флокулы; коловратки, трубачи, черви плавая в толще воды, временно заякориваются во флокулах задним концом тела; сувойки, оперкулярии, эпистилисы прочно прикрепляются к флокулам (Никитина, 2010) (рисунок 1).

Во флокуле микроорганизмы, разделяющиеся по отношению к кислороду, также пространственно размещены. В центральной части флокул обычно расположены анаэробы и факультативные аэробы, а по периферии аэробные формы (Hughes, Stafford, 1976).

■

Рисунок 1 - Флокулы активного ила А - люминесцентная микроскопия, увеличение х200; В - световая микроскопия, увеличение х100 (фото автора)

Систематические наблюдения за качественным и количественным составом активного ила позволяют вовремя выявлять, и, по возможности корректировать существенные нарушения в работе микробиоценоза активного ила. Однако, экспериментально доказано, что путем выращивания в лабораторных условиях, можно не более 10-15 % от всего разнообразия микроорганизмов, находящихся в активном иле. Так или иначе, известные нам методы не способны воспроизвести всех, имеющихся в естественной среде обитания условий существования, соответственно, воссоздание искусственных условий для микроорганизмов активного ила, практически невозможно в лабораторных условиях (Frederic, et al., 2000; Wagner, Loy, 2002).Также, следует помнить, что в активном иле практически все виды организмов находятся друг с другом в сложном пищевом взаимодействии (рисунок 2), что практически невозможно воссоздать в искусственных условиях (Xin Chun Liu, MinYang , et al., 2007).

Рисунок 2. - Схема циклов азота и серы в активном иле 1 - аммонификация, 2 - нитрификация, 3 - денитрификация, 4 - анаммокс-процесс, 5 -ассимиляция нитратов, 6,7,8,9 - окисление восстановленных соединений серы, 10 - сульфатредукция, 11 - ассимиляция сероводорода

(рисунок автора)

1.3.1 Прокариотические компоненты

Активный ил включает в себя огромное количество различных типов микроорганизмов, однако бактерии составляют 95 % от всей массы живых существ активного ила и играют ключевую роль в очистке сточных вод от любого рода загрязнителей (Лопо&1еве1, Рейшапи, 2007). Каждая группировка организмов является индикаторной по определенному параметру, который характеризует качество очистки. В активном иле все физиологические группы организмов взаимосвязаны и не могут существовать друг без друга.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Агасиева, Диана Назимовна, 2017 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

1. Абубакирова А.М., Федорова Т.А., Фотеева Т.С. и др. Применение медицинского озона в клинике акушерства и гинекологии // Акушерство и гинекология. 2002. №1. С. 54-57.

2. Асонов Н.Р. Микробиология. - 2-е изд., перераб. и доп. - М: Агропромиздат, 1989. - 351 с.

3. Банина Н.Н., Суханова К.М., Колесников С.Т., Таразанов В.В. Самоочищение водоемов и биологическая очистка сточных вод / Простейшие активного ила. - Л.: Наука, 1983. - с. 5-26.

4. Биотехнология: теория и практика / Под ред. Н. В. Загоскиной, Л. В. Назаренко. - М.: Издательство Оникс, 2009. - 496 с.

5. Брюханов А.Л., Корнеева В. А., Канапацкий Т. А., Захарова Е. Е., Менько Е. В., Русанов И. И., Пименов Н. В. Изучение состава сообществ сульфатредуцирующих бактерий в аэробных водах и зоне Хемоклина Черного моря с использованием метода FISH // Микробиология. 2011. Том 80. №1. С. 112-120.

6. Бурдин К.С. Основы биологического мониторинга. - М.: издательство МГУ, 1985. - 158 с.

7. Вильсон Е.В., Полякова А.В., Исмаилова Д.Н., Серпокрылов Е.Н. Особенности формирования биоценоза в сооружениях биологической очистки сточных вод, содержащих высокие концентрации азота аммонийного и восстановленных соединений серы // Научное обозрение. 2014. №8. С. 896906.

8. Возная Н. Ф. Химия и микробиология воды.-2-е изд., перераб. и доп //М.: Высш. шк. - 1979. - С. 314.

9. Волова Т.Г. Биотехнология. - Новосибирск: Изд-во Сибирского отделения Российской Академии наук, 1999. - 252 с.

10. Воробьев А.А., Кривошеин Ю.С., Широбоков В.П. Медицинская и санитарная микробиология. - М. :Издательский центр «Академия», 2003. -464 с.

11. Воронов Ю. В., Яковлев С. В. Водоотведение и очистка сточных вод. -М.: Издательство Ассоциации Строительных ВУЗов, 2006. - 704 с.

12. Воронов, Ю. В., Алексеев, Е. В., Саломеев, В. П., & Пугачёв, Е. А.Водоотведение: учебник. М.: ИНФРА-М, 2007. - 415 с.

13. Германов Н. И. Микробиология. М.: Просвещение, 1967. - 227 с.

14. Гогина Е. С., Гульшин И. А. Использование озона для контроля нитчатого вспухания активного ила // Строительство: наука и образование. 2012. №. 3. С. 3-5.

15. Горленко В.М., Дубинина Г. А., Кузнецов С. И. Экология водных микроорганизмов. М.: Наука, 1977. - 289 с.

16. ГОСТ 33045 - 2014 «Вода. Методы определения минеральных азотсодержащих веществ».

17. Готтшалк Г. Метаболизм бактерий. Перевод Изд-во «Мир». 1982. - 310 с.

18. Громов Б.В., Павленко Г.В. Экология бактерий. - Л.: Издательство ленинградского университета, 1989. - 248 с.

19. Гудков А.Г. Биологическая очистка сточных вод. Учебное пособие. -Вологда: ВоГТУ, 2002. - 127 с.

20. Гусев М.В., Минеева Л.А. , Микробиология. 4-е изд. перераб. и доп. -М.: Изд-во МГУ, 2007. - 448 с.

21. Гюнтер Л.И. Оценка токсичности компонентов промышленных сточных вод по дегидрогеназной активности ила // Водоснабжение и санитарная техника. 1976. № 9. С. 9-12.

22. Гюнтер Л.И. Применение метода определения дегидрогеназной активности ила (ДАИ) для исследования и контроля аэротенков // Научн. тр. АКХ. 1976. Вып.23. С.10-12.

23. Добровольская Т. Г., Головченко А. В., Лысак Л. В.., Зенова Г. М.. Физикохимия и биология торфа. Методы оценки численности и разнообразия бактериальных и актиномицетных комплексов торфяных почв. - Томск: Издательство Томского государственного педагогического университета, 2010. - 97 с.

24. Догель В.А. Зоология беспозвоночных: Учебник для университетов/ Под ред. проф. Полянского Ю.И. - М.: Высшая школа, 1981. - 606 с.

25. Ежов Г. И. Руководство к практическим занятиям по сельскохозяйственной микробиологии. - М.: Высшая школа, 1974. - 288 с.

26. Жмур Н. С. Технологические и биохимические процессы очистки сточных вод на сооружениях с аэротенками. Монография - М.: Акварос, 2003. - 507 с.

27. Закиров Р. К. Ахмадуллина, Ф. Ю., Вербенко, И. В., & Сироткин, А. С.. Ферментативная диагностика промышленных илов в процессах продленной аэрации сточных вод // Вестник Казанского технологического университета. 2009. №. 2. С. 33-39.

28. Ивчатов А. Л., Малов В. И. Химия воды и микробиология. М.: ИНФРА-М, 2011. - 218 с.

29. Исмаилова Д.Н. Механизмы биологического удаления азота в системах очистки городских сточных вод // Известия ВУЗов. Северо-кавказский регион. Естественные науки. 2013. №3. С. 71-74.

30. Квасников Е. И., Писарчук Е. Н. Артробактер в природе и производстве. Киев.: Наукова думка, 1980. - 216 с.

31. Колесников В. П., Вильсон Е. В. Современное развитие технологических процессов очистки сточных вод в комбинированных сооружениях. Ростов-на-Дону: Изд-во «Юг», 2005. - 212 с.

32. Кольчурина, Н. А., Солнцев, В. В., Шувалов, В. И., Тиньгаева, Е. А. Дефосфатация сточной воды // Вестник Пермского национального исследовательского политехнического университета. Химическая технология и биотехнология. 2015. №. 3. С. 72-78.

33. Корш Л. Е., Артемова Т. З. Ускоренные методы санитарно-бактериологического исследования воды. М.: Медицина, 1978. - 272 с.

34. Кузнецов С. И., Дубинина Г. А. Методы изучения водных микроорганизмов. - Наука, 1989. - 285 с.

35. Кузнецов С. И., Романенко В. И. Микробиологическое изучение внутренних водоемов. Лабораторное руководство. - М.: Издательство Академии Наук СССР., 1963. - 180 с.

36. Курс общей химии. /Под ред. Коровина Н.В. - М.: Высшая школа., 1990. - 446 с.

37. Лакин Г.Ф. Биометрия.- М.: Высшая школа, 1990.- 352 с.

38. Лебедева Н.В., Дроздов Н.Н., Криволуцкий Д.А. Биоразнообразие и методы его оценки. Учебное пособие. - М.: издательство Московского университета, 1999. - 95 с.

39. Лебедева О. В., Угарова Н. Н. Механизм пероксидазного окисления. Субстрат-субстратная активация в реакциях, катализируемых пероксидазой хрена // Известия РАН. Серия химическая. 1996. №. 1. С. 25-32.

40. Липунов И. Н. Основы химии и микробиологии природных и сточных вод. Учебное пособие. - Екатеринбург.: Изд-во Урал.гос. лесотехн. акад., 1995. - 212 с.

41. Лунин В. В., Попович М. П., Ткаченко С. Н. Физическая химия озона. -М. : Издательство МГУ, 1998. - 480 с.

42. Лурье Ю. Ю. Аналитическая химия промышленных сточных вод. -1984.

43. Лысак В.В. Микробиология. - Минск: БГУ, 2007. - 426 с.

44. Мазей Ю.А., Цыганов А.Н. Пресноводные раковинные амебы. - М.: Товарищество научных изданий КМК, 2006. - 300 с.

45. Малиновская И. М., Драган Н. И. Влияние бактериальных полисахаридов на структурноагрегатное состояние чернозема лугового //В^есИдо^аА^а. - 2012. - Т. 5. - №. 6.

46. Матус В.К., Мартынова М.А., Скоринко Е.В. И др. // Биологические мембраны. 1999. Т.16. С. 50-56.

47. Мельникова А.М., Калер Г.В., Бабич Г.В., Романов С.Л., Матус В.К., Конев С.В. Разнонаправленное действие низких и высоких доз озона на репродуктивную способность и активность дыхания дрожжевых клеток Candida utilis // Журнал общей биологии. 1989. №6. С.815-818.

48. Методы почвенной микробиологии и биохимии. / Под ред. Д.Г. Звягинцева. М.: Изд-во МГУ, 1991. - 304 с.

49. Микробиология загрязненных вод. / Под ред. Р.Митчелла. - М.: Медицина, 1976. - 323 с.

50. Мирчинк Т. Г. Почвенная микология. - М.: Изд-во МГУ, 1988. - 220 с.

51. Мишустин Е.Н., Емцев В.Т. Микробиология. - 7-е изд., стереотип. -М.: Дрофа, 2008. - 444 с.

52. МУ2.1.5.800 - 1999 «Организация Госсанэпиднадзора за обеззараживанием сточных вод. Методические указания».

53. Муравлева, Л. Е., Молотов-Лучанский, В. Б., Клюев, Д. А., Бакенова, Р. А., Култанов, Б. Ж., Танкибаева, Н. А., Омарова, Г. А. Окислительная модификация белков: проблемы и перспективы исследования // Фундаментальные исследования. 2010. №. 1. C. 74-78.

54. Намсараев, Б. Б., Абидуева, Е. Ю., Лаврентьева, Е. В. Экология микроорганизмов экстремальных водных систем: учеб.пособие. Улан-Удэ: Издательство Бурятского госуниверситета. - 2008.

55. Нетрусов А. И., Котова И. Б. Микробиология. - М.: Издательский центр «Академия», 2012. - 384 с.

56. Никитина О.Г. Биоэстимация: контроль процесса биологической очистки и самоочищения воды: — М.: МАКС Пресс, 2010. — 288 с.

57. Ножевникова А.Н., Литти Ю.В., Некрасова В.К., Куличевская И.С., Григорьева Н.В., Куликов Н.И., Зубов М.Г. Анаэробное окисление аммония (АНАММОКС) в биопленках иммобилизованного активного ила при очистке

сточных вод с низкой концентрацией загрязнений // Микробиология. 2012.Том 81. №1. С. 28-38.

58. Общая микробиология. / Под.ред. Проф. А.Е. Вершигоры. - К.: Выща шк. Головное изд-во, 1988. - 343 с.

59. Озонирование в процессах очистки воды. / Под общей редакцией Драгинского В.Л. - М.: ДеЛи Принт, 2007. - 400 с.

60. Определитель бактерий Берджи: В 2 т. / Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита, Дж. Стейли и С. Уилльямса. М.:Мир, 1997.- Том 1.- 432 с.

61. Определитель бактерий Берджи: В 2 т. / Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита, Дж. Стейли и С. Уилльямса. - М.:Мир,1997.-Том 2.- 429 с.

62. Орлов В.А. Озонирование воды. - М.: Стройиздат, 1984. - 88 с.

63. Паршин Д. Я., Муханов В.В. Автоматизация процессов очистки природных и сточных вод. Ростов-на-Дону: Рост. Гос. строит.ун-т, 2008. -115 с.

64. Пименова Е.В. Химические методы анализа в мониторинге водных объектов. - Пермь: Издательство ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА, 2011. - 138 с.

65. Пиневич А. В. Микробиология. Биология прокариотов. В 3-х томах., том 3 - СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та., 2009. - 457 с.

66. Полонская Н. Ю., Егорова О. В. Основы цитологической диагностики и микроскопическая техника. - М.: Издательский центр «Академия», 2005. -160 с.

67. Практикум по микробиологии. / Под ред. Нетрусова А.И. - М.: Издательский центр «Академия», 2005. - 608 с.

68. Прикладная экобиотехнология. учебное пособие : в 2 т. / Под ред. Кузнецова А.Е [и др.]. - 2-е изд. - М. : БИНОМ. Лаборатория знаний, 2012. -485 с.

69. Протисты: Руководство по зоологии. / Под ред. Алимова А.Ф. СПб.: Наука, 2000. - Часть 1. - 679 с.

70. Протисты: Руководство по зоологии. / Под ред. Алимова А.Ф. СПб.: Наука, 2007. - Часть 2. - 1144 с.

71. Пученкова С. Г. Техническая микробиология. Керчь: Изд-во «Керченский государственный морской технологический университет», 2011.

- 141 с.

72. Рогожин В.В. Пероксидаза как компонент антиоксидантной системы живых организмов. - СПб.: ГИОРД, 2004. - 240 с.

73. Романенко В. И., Кузнецов С. И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Лабораторное руководство. - Л.: Наука, 1974. - 194 с.

74. Ротмистров М. Н., Гвоздяк П. И., Ставская С. К. Микробиология очистки воды. Киев.: Наукова думка, 1978. - 268 с.

75. Руководство к лабораторным занятиям по микробиологии. / Под ред. Борисова Л. Б. - М.: Медицина, 1984. - 256 с.

76. Руководство к лабораторным занятиям по микробиологии. / Под ред. Елинова Н.П. - М.: Медицина, 1988. - 208 с.

77. Руководство к практическим занятиям по микробиологии. / Под ред. Егорова Н.С. - 3-е изд., перераб. и доп. - М.: Изд-во МГУ, 1995. - 224 с.

78. Руководство по медицинской микробиологии. Общая и санитарная микробиология. /Под ред. А.С. Лабинской - М.: Издательство БИНОМ, 2008.

- 1080 с.

79. Сахно О. Н. Трифонова Т. А. Экология микроорганизмов: учеб. Пособие. В 3 ч. Ч.1. Владимирский гос. ун-т. - Владимир: Изд-во Владимирского гос. ун-та, 2007. - 64 с.

80. Сачковская А.И. Микробиологический состав активного ила аэротенков городских очистных сооружений // Наука-2010: сборник научных статей, Гродно. 2010. С. 23-26.

81. Селиванов Е.В. Красители в биологии и медицине: Справочник. -Барнаул: Азбука, 2003. - 40 с.

82. Сидоренко О.Д., Борисенко Е.Г., Ванькова А.А., Войно Л.И. Микробиология. - М.: ИНФРА-М, 2010. - 287 с.

83. Сироткин А.С., Семенова Е.Н., Шагинурова Г.И. Биологическая трансформация соединений азота в процессе биофильтрации сточных вод // Биотехнология. 2008. №3. С.77-85.

84. Скворцова И.Н. Идентификация почвенных бактерий рода Bacillus. М.-Изд-во Моск. Ун-та, 1984. - 24 с.

85. Смирнов В. В., Киприанова Е. А. Бактерии рода Pseudomonas. - Киев: Наукова Думка, 1990. - 264 с.

86. Смирнова Г. В., Октябрьский О. Н. Глутатион у бактерий (обзор) // Биохимия. 2005. Т. 70. №. 11. С. 1459-1473.

87. Современная микробиология. Прокариоты: в 2-х томах. Т. 1. Пер. с англ./ Под ред. Й. Ленгелера, Г.Древса, Г.Шлегеля. - М.: Мир, 2009. - 656 с.

88. Современная микробиология. Прокариоты: в 2-х томах. Т. 2. Пер. с англ./ Под ред. Й. Ленгелера, Г.Древса, Г.Шлегеля. - М.: Мир, 2009. - 496 с.

89. Стейниер Р., Эдельберг Э., Ингрэм Дж. Мир микробов: в 3-х томах. Т. 3. - М.: Мир, 1979. - 487 с.

90. Таубе П. Р., Баранова А. Г. Химия и микробиология воды. - М.: Высшая школа., 1983.— 280 с.

91. Теппер Е.З., Шильникова В.К., Переверзева Г.И. ,Практикум по микробиологии. - 4-е изд., перераб. и доп. - М.: Колос, 1993. - 175 с.

92. Теппер Е.З., Шильникова В.К., Переверзева Г.И. ,Практикум по микробиологии. - 6-е изд. - М.: Дрофа, 2005. - 256 с.

93. Фауна аэротенков (Атлас)./Под ред. Кутиковой Л. А. - Л.: Наука, 1984. - 264 с.

94. Хуснутдинова Р.М. Зависимость результатов микробиологического исследования от срока взятия биоматериала и выбора питательной среды [Электронное пособие для самостоятельной работы студентов]. -http: //www.kbmk.kirov.ru /kmk/~library/7/doc/ 1/first.htm. - 2011г.

95. Цхе А. А. Интенсификация процессов очистки воды и аппараты для их реализации. Автореферат дисс. канд. техн. наук. Томск, 2013. 22 с.

96. Цхе, А. А., Хан, В. А., Мышкин, В. Ф., Колесников, В. П., Вильсон, Е.

B., Почуев, Ю. Н., Луканин, А. А. Предозонирование - как средство интенсификации процессов биологической очистки сточных вод // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2013. №. 87. С. 1-26.

97. Шабалина А.В., Фахрутдинова Е.Д., Федотова М.И., Белова К.А., Быкова П.В. Исследование изменения рН воды при озонировании // Вестник Томского госуниверситета. 2013. № 375. С. 200-203.

98. Шарапова И.В. Хицова Л.Н. О структуре и функциональном значении протозойного комплекса активного ила аэротенков очистных сооружений малого города // Вестник ВГУ, Серия: химия, биология, фармация. 2007. №2.

C. 123-128.

99. Шестаков С. В. Как происходит и чем лимитируется горизонтальный перенос генов у бактерий // Экологическая генетика. 2007. Том V. №2. С. 1224.

100. Шлегель Г. Общая микробиология. Пер. с нем. - М.: Мир, 1987.-567 с.

101. Экология микроорганизмов./Под ред. Нетрусова А.И. - Академия, 2004. - 271 с.

102. Яковлев С. В. Канализация. - Рипол Классик, 1975.

103. Abeliovich A. Nitrifying bacteria in wastewater reservoirs //Applied and environmental microbiology. 1987. Т. 53. №. 4. Р. 754-760.

104. Abrams B. I., Mitchell M. J. Role of nematode-bacterial interactions in heterotrophic systems with emphasis on sewage sludge decomposition // Oikos. 1980. Р. 404-410.

105. Advanced Bacterial Identification Software. Online Encyclopedia. (http: //www.tgw 1916.net/bacteria_logare_desktop. html)

106. Allen L. A. The bacteriology of activated sludge // Journal of Hygiene. 1944. Т. 43. №. 06. Р. 424-431.

107. Al-Qodah Z. Biosorption of heavy metal ions from aqueous solutions by activated sludge // Desalination. 2006. Т. 196. №. 1-3. Р. 164-176.

108. Al-Shahwani S. M., Horan N. J. The use of protozoa to indicate changes in the performance of activated sludge plants // Water Research. 1991. T. 25. №. 6. P. 633-638.

109. Anderson R., McCoy E. Floc-forming bacteria from activated sludge // Bacteriology Proceedings. 1963. P. 162.

110. Annadurai G., Juang R. S., Lee D. J. Microbiological degradation of phenol using mixed liquors of Pseudomonas putida and activated sludge // Waste Management. 2002. T. 22. №. 7. P. 703-710.

111. Aonofriesei F., Petrosanu M. Activated sludge bulking episodes and dominant filamentous bacteria at waste water treatment plant Constanta SUD (Romania) // Proc. Rom. Academy, Series B. 2007. № 2. P. 83-87.

112. Arregui, L., Perez-Uz, B., Salvado, H., Serrano, S. Progresses on the knowledge about the ecological function and structure of the protists community in activated sludge wastewater treatment plants // Curr. Res. Technol. Edu. Topics Appl. Microbiol. Microb. Biotechnol. 2010. T. 2. C. 972-979.

113. Avery L., Jarvis P., Macadam J. Rewiew of literature to determine the uses for ozone in the treatment of water and wastewater. - The James Hutton Institute publeshed. - 2013. - 45 p.

114. Babenzien H. D. Achromatium oxaliferum and its ecological niche // Zentralblatt für Mikrobiologie. 1991. T. 146. №. 1. P. 41-49.

115. Beller H. R., P. S. G. Chain, T. E. Letain, A. Chakicherla, F. W. Larimer, P. M. Richardson, M. Coleman, A. P. Wood, and D. P. Kelly. The genome sequence of the obligately chemolithoautotrophic, facultatively anaerobic bacterium Thiobacillus denitrificans // J. Bacteriol. 2006. Vol 188. P. 1473-1488.

116. Benedict R. G., Carlson D. A. Aerobic heterotrophic bacteria in activated sludge // Water Research. 1971. T. 5. №. 11. P. 1023-1030.

117. Berg, J. S., Schwedt, A., Kreutzmann, A. C., Kuypers, M. M., & Milucka, J. Polysulfides as Intermediates in the Oxidation of Sulfide to Sulfate by Beggiatoa spp //Applied and environmental microbiology. 2014. T. 80. №. 2. P. 629-636.

118. Bergey's manual of Systematic Bacteriology. Vol. 2, part C // Don J. Brenner, Noel R. Krieg, James T. staley. Second Edition. New York: Springer, 2005. - 1388 p.

119. Bergey's manual of Systematic Bacteriology. Vol. 3 // Don J. Brenner, Noel R. Krieg, James T. staley. Second Edition. New York: Springer, 2009. - 1422 p.

120. Bergey's manual of Systematic Bacteriology. Vol. 5// Don J. Brenner, Noel R. Krieg, James T. staley. Second Edition. New York: Springer, 2012. - 2083 p.

121. Bildsoe P., Adamsen A. P. S., Feilberg A. Effect of low-dose liquid ozonation on gaseous emissions from pig slurry // Biosystems engineering. 2012. T. 113. № 1. C. 86-93.

122. Bitton G. Encyclopedia of Environmental Microbiology. - John Wiley and Sons, Inc. University of Florida, 2002. - 3571 p.

123. Brim, H., McFarlan, S. C., Fredrickson, J. K., Minton, K. W., Zhai, M., Wackett, L. P., & Daly, M. J. Engineering Deinococcus radiodurans for metal remediation in radioactive mixed waste environments // Nature biotechnology. 2000. T. 18. № 1. P. 85-90.

124. Brion N., Billen G. Water as a source of nitrifying bacteria in river systems: the case of the river Seine downstream from paris // Water Research. 2000. Vol. 34. № 12. P. 3213 - 3221.

125. Brock biology of microorganisms, 13th ed. /Michael T. Madigan, John M. Martinko, David A. Stahl, David P. Clark. 2012. - 1041 p.

126. Buckley D. H., Schmidt T. M. Diversity and dynamics of microbial communities in soils from agro-ecosystems // Environmental Microbiology. 2003. T. 5. № 6. P. 441-452.

127. Buller N.B. Bacteria from Fish and Other Aquatic Animals. A Practical Identification Manual. - CABI Publishing, Cambridge, 2004. - 361 p.

128. Butterfield, C. T. Studies of sewage purification.II.A zoogloea forming bacterium isolated from activated sludge // Public Health Rept.U.S. 1935. Vol 50. P. 671-684.

129. Cabiscol E., Tamarit J., Ros J. Oxidative stress in bacteria and protein damage by reactive oxygen species // International Microbiology. 2000. T. 3. № 1. C. 3-8.

130. Calabrese E. J. Hormesis is central to toxicology, pharmacology and risk assessment // Human & experimental toxicology. 2010. T. 29. № 4. C. 249-261.

131. Cardenas J. P., Moya F., Covarrubias P., Shmaryahu A., Levican G. Comparative genomics of the oxidative stress response in bioleaching microorganisms // Hydrometallurgy. 2012. T. 127. C. 162-167.

132. Carlson C. A., Ingraham J. L. Comparison of denitrification by Pseudomonas stutzeri, Pseudomonas aeruginosa, and Paracoccus denitrificans //Applied and Environmental Microbiology. 1983. T. 45. №. 4. C. 1247-1253.

133. Cerva L. Spontaneous occurrence of antibodies against pathogenic amoebae of the limax group in domestic animals // Folia parasitologica. 1980. T. 28. №. 2. C. 105-108.

134. Chain P., Lamerdin J., Larimer F., Regala W., Lao V., Land M., Sayavedra-Soto L. Complete genome sequence of the ammonia-oxidizing bacterium and obligate chemolithoautotroph Nitrosomonas europaea // Journal of bacteriology. 2003. T. 185. № 9. C. 2759-2773.

135. Christensen S., Simkins S., Tiedje J. M. Spatial variation in denitrification: dependency of activity centers on the soil environment // Soil Science society of America journal. 1990. T. 54. №. 6. P. 1608-1613.

136. Chu, L., Wang, J., Wang, B., Xing, X. H., Yan, S., Sun, X., & Jurcik, B. Changes in biomass activity and characteristics of activated sludge exposed to low ozone dose // Chemosphere. 2009. T. 77. №. 2. P. 269-272.

137. Ciurli, S., Marzadori, C., Benini, S., Deiana, S., & Gessa, C. Urease from the soil bacterium Bacillus pasteurii: immobilization on Ca-polygalacturonate // Soil Biology and Biochemistry. 1996. T. 28. №. 6. P. 811-817.

138. Crabtree K. T. Morphological and biochemical studies of Zoogloea ramigera species in pure culture. - University of Wisconsin, 1966. Dissertation - T. 2.

139. Cronje, G. L., Beeharry, A. O., Wentzel, M. C., & Ekama, G. A. Active biomass in activated sludge mixed liquor // Water research. - 2002. - T. 36. - №. 2. - C. 439-444.

140. Curds C. R. The ecology and role of protozoa in aerobic sewage treatment processes // Annual Reviews in Microbiology. 1982. T. 36. №. 1. P. 27-28.

141. Curds C. R., Cockburn A. Protozoa in biological sewage-treatment processes—I. A survey of the protozoan fauna of British percolating filters and activated-sludge plants // Water Research. 1970. T. 4. №. 3. C. 225-228.

142. Curds C. R., Cockburn A. Protozoa in biological sewage-treatment processes—II. Protozoa as indicators in the activated-sludge process // Water Research. 1970. T. 4. №. 3. C. 237-249.

143. Dahl E. Physicochemical aspects of disinfection of water by means of ultrasound and ozone // Water Research. 1976. T. 10. №. 8. C. 677-684.

144. Daumas S., Cord-Ruwish R., Garcia J.L. Desulfotomaculum geothermicum sp. nov. a thermophilic fatty acid degrading sulfatereducing bacterium isolated with H2 from geothermal ground water // Antonie van Leeuwenhoek. 1988. № 54. P. 165-178.

145. Delwiche C.C. Biological transformations of nitrogen compounds // Industrial and engineering chemistry. 1956. Vol. 48. P. 1421-1428.

146. Dias F. F., Bhat J. V. Accumulation of poly-P-hydroxybutyric acid and iodophilic material by the dominant activated sludge bacteria // Current Science. 1963. T. 32. №. 11. P. 501-502.

147. Dias. F.F., Bhat J.V. Microbial ecology of activated sludge // Applied Microbiology. 1964. Vol. 12. № 5. P. 412-417.

148. Dias F. F., Bhat J. V. Microbial ecology of activated sludge II. Bacteriophages, bdellovibrio, coliforms, and other organisms // Applied microbiology. 1965. T. 13. №. 2. C. 257-261.

149. Droge M., Puhler A., Selbitschka W. Horizontal gene transfer among bacteria in terrestrial and aquatic habitats as assessed by microsom and field studies // Biol Fertil Soils. 1999. № 29. P. 221-245.

150. Duine J. A., Frank J., Berkhout M. P. J. NAD-dependent, PQQ-containing methanol dehydrogenase: a bacterial dehydrogenase in a multienzyme complex // FEBS letters. 1984. T. 168. №. 2. P. 217-221.

151. Dumont H. J., Van de Velde I., Dumont S. The dry weight estimate of biomass in a selection of Cladocera, Copepoda and Rotifera from the plankton, periphyton and benthos of continental waters // Oecologia. 1975. T. 19. №. 1. C. 75-97.

152. Ehrlich's Geomicrobiology // Edited by Ehrlich H. L., Newman D. K., Kappler A. (ed.).- CRC press, 2015. - 626 C.

153. Eikelboom D. H. Process control of activated sludge plants by microscopic investigation. - IWA publishing, 2000. — 165 p.

154. Ewert D. L., Paynter M. J. B. Enumeration of bacteriophages and host bacteria in sewage and the activated-sludge treatment process // Applied and environmental microbiology. 1980. T. 39. №. 3. P. 576-583.

155. Farquhar G. J., Boyle W. C. Occurrence of filamentous microorganisms in activated sludge // Journal (Water Pollution Control Federation). 1971. P. 779-798.

156. Fenchel T. Ecology of Protozoa: The biology of free-living phagotropic protists. - Springer-Verlag, 2013. - 196 p.

157. Filipkowska Z., W. Janczukowicz, M Kremieniewski, J. Pesta. Municipal Wastewater Treatment Plant with Activated Sludge Tanks Aerated by CELPOX Devices as a Source of Microbiological Pollution of the Atmosphere // Polish Jounal of Environmental Studies. 2002. №6. P 639-648.

158. Frederic B. Gich, Estefania Amer, Jordi B. Figueras, Charles A. Abella, M. Dolors Balaguer, Manel Poch. Assessment of microbial community structure changes by amplified ribosomal DNA restriction analysis (ARDRA) // International Microbiology. 2000. №3. P. 103-106.

159. Frigon M. D., Liu D., Young J. Yeast-activated sludge model for aerobic degradation of a non-fermentable substrate // Desalination and Water Treatment. 2016.T. 57. №. 46. P. 21968-21981.

160. Fry J. C., Staples D. G. Distribution of Bdellovibrio bacteriovorus in sewage works, river water, and sediments // Applied and environmental microbiology. 1976. T. 31 .№. 4. P. 469-474.

161. Gao B., Gupta R. S. Conserved indels in protein sequences that are characteristic of the phylum Actinobacteria // International journal of systematic and evolutionary microbiology. 2005. T. 55. №. 6. P. 2401-2412.

162. Garg, A., Soni, B., Paliya, B. S., Verma, S., & Jadaun, V. Low molecular weight thiols: glutathione (GSH), mycothiol (MSH) potenail antioxidant compound from actinobacteria // Journal of Applied Pharmaceutical Science. 2013. Vol. 3 (09). P. 117-120.

163. Gayford C. G., Richards J. P. Isolation and enumeration of aerobic heterotrophic bacteria in activated sludge // Journal of Applied Bacteriology. 1970. T. 33. №. 2. P. 342-350.

164. Goel S., Hozalski R. M., Bouwer E. J. Biodegradation of NOM // J Am Water Works Assoc. 1995. T. 87. №. 1. P. 90-105.

165. Gonzalez-Martinez, A., Rodriguez-Sanchez, A., Lotti, T., Garcia-Ruiz, M. J., Osorio, F., Gonzalez-Lopez, J., Van Loosdrecht, M. C. Comparison of bacterial communities of conventional and A-stage activated sludge systems // Scientific reports. 2016. T. 6. P. 1-11.

166. Groves M. R., Lucana D. O. Adaptation to oxidative stress by Gram-positive bacteria: the redox sensing system HbpS-SenS-SenR from Streptomyces reticuli // Appl Microbiol Microb Biotechnol. 2010. T. 1. C. 33-42.

167. Hamelin C., Chung Y.S. Optimal conditions for mutagenesis bu ozone in Escherichia coli K12 // Mutat. Res. 1974. V.24. № 3. P. 271-279.

168. Hao T. W., Xiang P. Y., Mackey H. R., Chi K., Lu H., Chui H. K., Chen G. H. A review of biological sulfate conversions in wastewater treatment // Water research. 2014. T. 65. C. 1-21.

169. Harris R. F., Sommers L. E. Plate-dilution frequency technique for assay of microbial ecology // Applied microbiology. 1968. T. 16. №. 2. P. 330-334.

170. Hashimoto, K., Matsuda, M., Inoue, D., & Ike, M. Bacterial community dynamics in a full-scale municipal wastewater treatment plant employing conventional activated sludge process // Journal of bioscience and bioengineering. 2014. T. 118. №. 1. P. 64-71.

171. Hausmann K. Food acquisition, food ingestion and food digestion by protists // Jpn. J. Protozool. 2002. T. 35. №. 2. P. 85-95.

172. Hitoshi I. T. O., Watanabe H., Takehisa M., Iizuka H. Isolation and identification of radiation-resistant cocci belonging to the genus Deinococcus from sewage sludges and animal feeds // Agricultural and biological chemistry. 1983. T. 47. №. 6. P. 1239-1247.

173. Horan N. J., Bu'Ali A. M., Eccles C. R. Isolation, identification and characterisation of filamentous and floc-forming bacteria from activated sludge flocs // Environmental Technology. 1988. T. 9. №. 5. P. 449-457.

174. Horan N. J., Eccles C. R. Purification and characterization of extracellular polysaccharide from activated sludges // Water Research. 1986. T. 20. №. 11. P. 1427-1432.

175. Hughes D. E., Stafford D. A., Gaudy Jr A. F. The microbiology of the activated-sludge process // Critical Reviews in Environmental Science and Technology. 1976. T. 6. №. 3. P. 233-257.

176. Hwan Seo Y., gyu Lee I., in Han J. Cultivation and lipid production of yeast Cryptococcus curvatus using pretreated waste active sludge supernatant // Bioresource technology. 2013. T. 135. P. 304-308.

177. Jarvik O., Kamenev I. Ozonation of Activated Sludge in Periodic Reactors. // Scientific Journal of Riga Technical University. 2010. Vol. 22. P. 88-93.

178. Jones G. L. Bacterial growth kinetics: measurement and significance in the activated-sludge process // Water Research. 1973. T. 7. №. 10. P. 1475-1492.

179. Joyce G. H., Dugan P. R. The role of floc-forming bacteria in BOD removal from waste water // Dev. Ind. Microbiol. 1970. T. 11. P. 377-386.

180. Kampschreur M. J., Temmink H., Kleerebezem R., Jetten M. S., Van Loosdrecht M. C. Nitrous oxide emission during wastewater treatment // Water research. 2009. T. 43. №. 17. P. 4093-4103.

181. Kappeler J., Gujer W. Scumming due to actinomycetes: towards a better understanding by modelling // Water Research. 1994. T. 28. №. 4. P. 763-779.

182. Kato A., Izaki K., Takahashi H. Floc-forming bacteria isolated from activated sludge // The Journal of General and Applied Microbiology. 1971. T. 17. №. 6. P. 439-456.

183. Kim J. K., Park K. J., Cho K. S., Nam S. W., Park T. J., Bajpai R. Aerobic nitrification-denitrification by heterotrophic Bacillus strains // Bioresource Technology. 2005. T. 96. №. 17. P. 1897-1906.

184. Koops H. P., Pommerening-Roser A. Distribution and ecophysiology of the nitrifying bacteria emphasizing cultured species // FEMS Microbiology Ecology. 2001. T. 37. №. 1. C. 1-9.

185. Kowallik U., Pringsheim E. G. The oxidation of hydrogen sulfide by Beggiatoa // American Journal of Botany. 1966. C. 801-806.

186. Leeuwen J., Pretorius W. A. Sludge bulking control with ozone // Water and Environment Journal. 1988. T. 2. №. 2. P. 223-227.

187. Lemmer H., Roth D., Schade M. Population density and enzyme activities of heterotrophic bacteria in sewer biofilms and activated sludge // Water Research. 1994. T. 28. №. 6. P. 1341-1346.

188. Leven L., Nyberg K., Korkea-aho L., Schnurer A., Phenols in anaerobic digestion processes and inhibition of ammonia oxidising bacteria (AOB) in soil // Sci. Total Env. 2006. V. 364. Is. 1-3. P. 229-238.

189. Li D. H., Ganczarczyk J. J. Structure of activated sludge floes // Biotechnology and bioengineering. 1990. T. 35. №. 1. P. 57-65.

190. Lindsay D. G. Nutrition, hormetic stress and health // Nutrition research reviews. 2005. T. 18. №. 02. P. 249-258.

191. Lushchak V. I. Oxidative stress and mechanisms of protection against it in bacteria // Biochemistry . 2001. T. 66. №. 5. P. 476-489.

192. Madoni P, Davol D, Gibin G. Survey of filamentous microorganisms from bulking and foaming activated-sludge plants in Italy // Water research. 2000. №34. P 1767-1772

193. Manual for the Identification of Medical Bacteria / Edited by Barrow G.I. and Feltham. - The Press syndicate of the University of Cambridge, 1995. - 328 p.

194. Martín-Cereceda M., Serrano S., Guinea A. A comparative study of ciliated protozoa communities in activated-sludge plants // FEMS Microbiology Ecology. 1996. T. 21. №. 4. P. 267-276.

195. Martins A. M., Pagilla K., Heijnen J. J., Van Loosdrecht M. C. Filamentous bulking sludge - a critical review // Water research. 2004. T. 38. №. 4. P. 793-817.

196. Mayo A.W., Bigambo T. Nitrogen transformation in horizontal subsurface flow constructed wetlands I: Model development // Physics and Chemistry of the Earth. 2005 (30). P. 658-667.

197. McArthur J. V. Microbial ecology: an evolutionary approach. - Academic press, 2006. - 416 p.

198. Men, Y., Achermann, S., Helbling, D. E., Johnson, D. R., Fenner, K. Relative contribution of ammonia oxidizing bacteria and other members of nitrifying activated sludge communities to micropollutant biotransformation // Water Research. 2017.T. 109. P. 217-226.

199. Myrold D. D. Soil nitrogen cycle. Encyclopedia of Environmental Microbiology. - Published by John Wiley & Sons, Inc., New York.2002, - 149 p.

200. Nielsen, P. H. , M. A. de Muro and J. L. Nielsen. Studies on the in situ physiology of Thiothrix spp. present in activated sludge // Environ. Microbiol. 2000. № 2 (4). P. 389-398.

201. Notes on activated sludge process control. - State of Maine Department of Environmental Protection, 2009.

202. Nowaczyk K., Domka F. Kinetic model of CuS oxidation by Thiobacillus ferrooxidans and Thiobacillus thiooxidans bacteria // Polish Journal of Environment Studies. 2000. Vol. 9. № 3. P. 195-201.

203. Okabe S., Itoh T., Satoh H., Watanabe Y. Analyses of Spatial Distributions of Sulfate-Redusing Bacteria and their Activity in Aerobic Wastewater Biofilms // Applied and Environmental Microbiology. 1999 (nov). P. 5107-5116.

204. Otte S., Schalk J., Kuenen J. G., Jetten M. S. M. Hydroxylamine oxidation and subsequent nitrous oxide production by the heterotrophic ammonia oxidizer Alcaligenes faecalis //Applied microbiology and biotechnology. 1999. T. 51. №. 2. P. 255-261.

205. Ozone in water treatment: application and engineering. / Edited by Res, F., Langlais, B., Reckhow, D. A., & Brink, D. R.: CRC press, 1991. - 569 p.

206. Patten C. L., Glick B. R. Role of Pseudomonas putida indoleacetic acid in development of the host plant root system // Applied and environmental microbiology. 2002. T. 68. №. 8. P. 3795-3801.

207. Perez Y. G., Leite S. G. F., Coelho M. A. Z. Activated sludge morphology characterization through an image analysis procedure // Brazilian Journal of Chemical Engineering. 2006. T. 23. №. 3. P. 319-330.

208. Pike E. B., Carrington E. G., Ashburner P. A. An evaluation of procedures for enumerating bacteria in activated sludge // Journal of Applied Bacteriology. 1972. T. 35. №. 2. P. 309-321.

209. Pike E. B., Curds C. R. The microbial ecology of the activated sludge process. - Academic Press, London, 1971. - T. 147. - 288 p.

210. Pipes W. O. Actinomycete scum production in activated sludge processes // Journal (Water Pollution Control Federation). 1978. P. 628-634

211. Pomposiello P. J., Demple B. Redox-operated genetic switches: the SoxR and OxyR transcription factors //T rends in biotechnology. 2001. T. 19. №. 3. P. 109-114.

212. Powell, A., Chingombe, P., Lupatsch, I., Shields, R. J., & Lloyd, R. The effect of ozone on water quality and survival of turbot (Psetta maxima) maintained in a recirculating aquaculture system // Aquacultural Engineering. 2015. T. 64. P. 20-24.

213. Priest F. G. Extracellular enzyme synthesis in the genus Bacillus // Bacteriological reviews. 1977. T. 41. №. 3. P. 711.

214. Pujol R., Canler J. P. Biosorption and dynamics of bacterial populations in activated sludge // Water Research. 1992. T. 26. №. 2. P. 209-212.

215. Pynaert K, Smets BF, Wyffels S, Beheydt D, Siciliano SD, Verstraete W. Characterization of an autotrophic nitrogen-removing biofilm from a highly loaded lab-scale rotating biological contactor // Applied and Environmental Microbiology. 2003. 69(6). P.3626-3635.

216. Radak Z., Chung H. Y., Goto S. Systemic adaptation to oxidative challenge induced by regular exercise // Free Radical Biology and Medicine. 2008. T. 44. №. 2. P. 153-159.

217. Ramothokang T. R., Naidoo D., Bux F. Morphological shifts in filamentous bacteria isolated from activated sludge process // World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2006. № 22. P. 845 -850.

218. Rokitansky O. Die Ozon-Therapie bei peripheren arteiellen Durchblutungsstörungen // Dr. Med. 1977. №4. P.711.

219. Rosselló-Mora, R. A., Wagner, M., Amann, R., Schleifer, K. H. The abundance of Zoogloea ramigera in sewage treatment plants // Applied and environmental microbiology. 1995. T. 61. №. 2. P. 702-707.

220. Sanchis V. From microbial sprays to insect-resistant transgenic plants: history of the biospesticide Bacillus thuringiensis. A review // Agronomy for sustainable development. 2011. 1 (31), P. 217 - 231.

221. Schaechter M. (ed.). Desk encyclopedia of microbiology. - Academic Press, 2010. - 1260 p.

222. Schmid M.C., Maas B, Dapena A, van de Pas-Schoonen K, van de Vossenberg J, Kartal B et al. Biomarkers for in situ detection of anaerobic ammonium-oxidizing (anammox) bacteria // Appl Environ Microbiol. 2005. 71. P. 1677-1684.

223. Sievers M., Schaefer S. The impact of sequential ozonation-aerobic treatment on the enhancement of sludge dewaterability // Water science and technology. 2007.T. 55. №. 12. P. 201-205.

224. Simos Y. V., Toliopoulos I. K., Verginadis I. I., Karagounis I. V., Charalampidis P. S., Ragos V. N., Karkabounas S. C. Evaluation of intraperitoneal ozone application effects to rat's antioxidant enzymes, superoxide dismutase and glutathione peroxidase // Journal of Applied Pharmaceutical Science. 2013. T. 3. №. 11. P. 35.

225. Siripong S., Rittmann B. E. Diversity study of nitrifying bacteria in full-scale municipal wastewater treatment plants // Water research. 2007. T. 41. №. 5. P. 1110-1120.

226. Sladecek V. System of water quality from the biological point of view / Ergebnisse limnologie. - Stuttgart, 1973. - p. 218.

227. Starr, M. P., Stolp, H., Truper, H. G., Balows, A., & Schlegel, H. G. The prokaryotes: a handbook on habitats, isolation and identification of bacteria. -Springer Science & Business Media, 2013. — 2285 p.

228. Stenstrom M. K., Song S.S. Effects of oxygen transport limitation on nitrification in the activated sludge process // Water Pollution Control Federation. 1991. Vol. 63. № 3. P. 208-219.

229. Tezuka Y. Cation-dependent flocculation in a Flavobacterium species predominant in activated sludge // Applied microbiology. 1969. T. 17. №. 2. P. 222-226.

230. Tran N. H., Urase T., Ngo H. H., Hu J., Ong S. L. Insight into metabolic and cometabolic activities of autotrophic and heterotrophic microorganisms in the biodegradation of emerging trace organic contaminants // Bioresource technology. 2013. T. 146. P. 721-731.

231. The prokaryotes. Third edition. Vol 3. Bacteria: Firmicutes, Actinomycetes. / Edited by Martin Dwirkin. - Springer Science & Business Media, 2006. — 1140 p.

232. The prokaryotes. Third edition. Vol 4. Bacteria: Firmicutes, Cianobacteria. / Edited by Martin Dwirkin. - Springer Science & Business Media, 2006. — 1142 p.

233. Van Veen W. L. Bacteriology of activated sludge in particular the filamentous bacteria // Antonie van Leeuwenhoek. 1973. № 39. P. 189-205.

234. Viebahn-Haensler R. The use of ozone in medicine. Heidelberg: K.F. Haug Publishers, 1999.-P.17-20.

235. Wagner M., Loy A. Bacterial community composition and function in sewage treatment systems // Environmental Biotechnology. 2002. № 13. P. 218227.

236. Wagner M., Loy A., Nogueira R., Purkhold U., Lee N., Daims H. Microbial community composition and function in wastewater treatment plants // Antonie van Leeuwenhoek. 2002. № 81. P. 665-680.

237. Wanner J. Activated sludge: bulking and foaming control. - CRC Press, 1994. - 322 p.

238. Wijnbladh E. Ozone technology for sludge bulking control. - Institutionen for geovetenskaper, 2007. - 35 p.

239. Williams T. M., Unz R. F. Filamentous sulfur bacteria of activated sludge: characterization of Thiothrix, Beggiatoa, and Eikelboom type 021N strains // Applied and environmental microbiology. 1985. T. 49. №. 4. P. 887-898.

240. Williams, T. M. & Unz, R. F. Isolation and characterisation of filamentous bacteria present in bulking activated sludge // Appl Microbiol Biotechnol. 1985. T. 22. P. 273-282.

241. Wirth S., Ulrich A. Cellulose-degrading potentials and phylogenetic classification of carboxymethyl-cellulose decomposing bacteria isolated from soil // Systematic and applied microbiology. 2002.T. 25. №. 4.P. 584-591.

242. Withey S., Cartmell E., Avery L. M., Stephenson T. Bacteriophages -potential for application in wastewater treatment processes // Science of the total environment. 2005. T. 339. №. 1. P. 1-18.

243. Xin Chun Liu, Min Yang, Yu Zhang, Xiang-Ping Yang, Yi-Ping Gan. Microbial community of different biological processes for treating the same sewage // World journal of microbiological biotechnology. 2007. №23. P 135-143.

244. Yasui H., Shibata M. An innovative approach to reduce excess sludge production in the activated sludge process // Water science and technology. 1994. T. 30. №. 9. P. 11-20.

245. Zhang Y, Li S, Liang Y, Wen C, Guo Q and Su B. Potential mechanisms of neuroprotection induced by low dose total-body gammairradiation in C57 mice administered with 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6- tetrahydropyridine (MPTP) // Neurosci Lett. 2009. 450. P. 106-110.

246. Zhang, X., Peterson, C., Reece, D., Haws, R., & Moller, G. Biodegradability of organic substance in the aquatic environment // Transactions of the ASAE. 1998. T. 41. №. 5. P. 1423-1430.

247. Zheng X., Su Y., Chen Y., Wan R., Li M., Wei Y., Huang H. Carboxyl-modified single-walled carbon nanotubes negatively affect bacterial growth and denitrification activity // Scientific reports. 2014. T. 4. P. 5653.

248. Zhou H., Smith D. W. Advanced technologies in water and wastewater treatment // Journal of Environmental Engineering and Science. 2002. T. 1. №. 4. P. 247-264.

ПРИЛОЖЕНИЕ 1 Калибровочная кривая для определения концентраций ионов аммония

50

45

40

В 35 в

¡3 30 х

о 25

03

£ 20 х

15 10 5 0

0

V — 9 1571 ^ —————

234 [С] ионов аммония мг/л

5

6

1

ПРИЛОЖЕНИЕ 2 Калибровочная кривая для определения концентраций нитрит-аниона

100 оп V — 102.08х

90 80 § 70

д /0 | 60 § 50 в ан 40 и ил 30 20 10 0 0

0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 [С] ионов нитрита мг/л 0.8 1 1 0.9 1

ПРИЛОЖЕНИЕ 3 Калибровочная кривая для определения дегидрогеназной активности

ПРИЛОЖЕНИЕ 4 Калибровочная кривая для определения уреазной активности

45 40 35 30

£

я 25

| 20

ч

и 15

I 10

Й 5 0

У = 35 .1 7 5х

/ г

/

/ / г

у /

А 1

0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 1 1.1 1.2 1.3

[С] ионов аммония мг/мл