Влияние химической десимпатизации крыс в пре- и постнатальный периоды онтогенеза на функции почек тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.13, кандидат биологических наук Дюкарев, Иван Анатольевич

• Дюкарев, Иван Анатольевич
• кандидат биологических наук
• 2000

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Дюкарев, Иван Анатольевич

ВВЕДЕНИЕ.

1 ОСОБЕННОСТИ ВЛИЯНИЯ СИМПАТИЧЕСКОЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ НА ФУНКЦИИ ПОЧЕК (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ).

1.1 Взаимосвязь между почками в системе «мать - плод».

1.2 Нервная регуляция функций почек.

1.2.1 Почечная иннервация.

1.2.1.1 Эфферентные нервы.

1.2.1.2 Афферентные нервы.

1.2.2 Почечные нейротрансмиттеры.

1.2.3 Почечные рег{епторы.

1.2.3.1 Афферентные рецепторы.

1.2.3.2 Эфферентные рецепторы.

1.2.4 Функция почечных нервов.

1.2.4.1 Эфферентные нервы.

1.2.4.1.1 Влияние стимуляции почечных нервов на функцию почек.

1.2.4.1.2 Эффекты почечной денервации.

1.2.4.2 Афферентные нервы.

1.2.4.3 Функция адренергических нервов.

1.3 возрастные особенности регуляции почечной функции.

1.3.1 Созревание адренергической иннервации.

1.3.2 Онтогенез адренергических и дофаминергических рецепторов.

1.3.3 Адренергическая регуляция почечного транспорта натрия в онтогенезе.

1.4 Химическая десимпатизация с помощью гуанетидина.

1.4.1 Механизм действия гуанетидина.

1.4.2 Действие гуанетидина на взрослых животных.

1.4.3 Действие гуанетидина на новорожденных животных.

1.4.4 Действие гуанетидина на эмбрионы.

2 ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1 Подготовка животных и план проведения экспериментов

2.2 Физико-химические методы анализа.

2.3 Математические методы анализа экспериментального материала.

3 ВЛИЯНИЕ ПРЕНАТАЛЬНОЙ ДЕСИМПАТИЗАЦИИ НА ПАРЦИАЛЬНЫЕ ФУНКЦИИ ПОЧЕК ПОСЛЕ РОЖДЕНИЯ.

3.1 Парциальные функции почек в условиях спонтанного мочеотделения.

3.2 Парциальные функции почек после введения водной нагрузки.

3.2.1 Особенности парциальных функций почек у 10-ти дневных животных.

3.2.2 Особенности парциальных функций почек у 20-ти дневных животных.

3.2.3 Особенности парциальных функций почек у 30-ти дневных животных.

3.2.4 Особенности парциальных функций почек у 60-ти дневных животных.

4 ВЛИЯНИЕ ПОСТНАТАЛЬНОЙ ДЕСИМПАТИЗАЦИИ НА ПАРЦИАЛЬНЫЕ ФУНКЦИИ ПОЧЕК.

4.1 Парциальные функции почек после введения возрастающих водных нагрузок.

4.1.1 Особенности парциальных функций почек после введения 3% водной нагрузки.

4.1.2 Особенности парциальных функций почек после введения 5% водной нагрузки.

4.1.3 Особенности парциальных функций почек после введения 7% водной нагрузки.

4.1.4 Особенности парциальных функций почек после введения 10% водной нагрузки.

5 СОПОСТАВЛЕНИЕ ПРЕ- И ПОСТНАТАЛЬНОГО ДЕЙСТВИЙ ГУАНЕТИДИНА.

6 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние химической десимпатизации крыс в пре- и постнатальный периоды онтогенеза на функции почек»

Актуальность проблемы

Сегодня ни у кого не вызывает сомнений, что функция почек находится под контролем нервной системы и ее регуляция обеспечивается многими рефлекторными актами. Регуляция водно-солевого баланса достигается интеграцией осмо-, волюмо- и ионорегулирующих рефлексов, в которых почка служит эффектором (Великанова JI.K., 1990). Кроме того, почка и механизмы регуляции ее функций к моменту рождения не завершают своего развития, а продолжают его в постнатальный период.

Состояние здоровья детей во многом зависит от того, как протекало их развитие в антенатальном периоде. Установлено, что ненаследственные врожденные заболевания и ранняя постнатальная гибель детей связаны главным образом с влиянием неблагоприятных факторов внешней среды. Многие формы акушерской патологии связаны с нарушениями механизмов регуляции водно-солевого обмена, которые характеризуются отеками, гипертензией, удлинением срока беременности и т.д. (Гармашева H.JI. и др., 1978, 1985). В последние годы внимание специалистов привлечено к изучению особенностей формирования водно-солевого гомеостаза плода при физиологическом и патологическом течении беременности и при нарушении водно-солевого гомеостаза матери и плода (Айзман Р.И., Елькова Н.Г., 1988; Елькова Н.Г., 1989; Айзман Р.И., Быструшкин С.К., Склянов Ю.И., 1992; Aizman RI et al, 1990).

Поражение органа (системы) матери приводит к поражению одноименного органа (системы) плода, что обусловливает в постнатальном онтогенезе функциональную неполноценность и предрасположенность к заболеваниям тех органов (систем), которые были поражены у матери в период беременности (Громов Л.И., 1964; Бодяжина В.И., 1966; Клосовский Б.Н., Космарская E.H., 1968; Антонова С.Н., Кондрор М.И., Цибулевский А.Ю., 1978; Савченков Ю.И., Лобынцев К.С., 1980).

Одной из систем, оказывающей существенное влияние на беременный организм и водно-солевой гомеостаз, является симпатическая нервная система. 4

Однако до настоящего времени практически нет сведений о влиянии симпатической нервной системы в пренатальный период на формирование почечной функции, не выяснено, как нарушение симпатической иннервации в пренатальный период онтогенеза сказывается на надежности системы водно-солевого го-меостаза после рождения.

Таким образом, изучение связи между функцией почек и нарушением симпатической иннервации в пренатальный период представляется весьма важным для углубления теоретических представлений о значении симпатической нервной системы в становлении почечной функции после рождения.

Цель работы

Исходя из сказанного, основной целью настоящей работы явилось выяснение влияния химической десимпатизации гуанетидином беременных крыс на становление водно-солевого гомеостаза их потомства.

Задачи

Реализация поставленной цели требовала решения следующих задач:

1. Выявить особенности антенатального воздействия гуанетидина на гидро-и ионоуретические функции почек после рождения.

2. Определить особенности функций почек потомства симпатэктомирован-ных крыс в различные периоды постнатального онтогенеза в условиях гипоос-мотического сдвига.

3. Определить особенности почечной функции после ранней постнатальной десимпатизации в условиях возрастающих водных нагрузок.

4. Выявить отличие влияний пренатальной и постнатальной десимпатизаций на почечную функцию.

Научная новизна

Впервые представлены данные о становлении почечной функции после пренатальной химической десимпатизации гуанетидином. Показано изменение парциальных функций почек потомства симпатэктомированных крыс в различные периоды постнатального онтогенеза в условиях спонтанного мочеотделе5 ния и в ответ на введение водной нагрузки. Нарушение симпатической иннервации в антенатальный период приводит к изменениям ионного гомеостаза после рождения. Выявлено, что наибольшим изменениям подвержена система регуляции гомеостаза калия. Определены особенности почечной функции после ранней постнатальной десимпатизации в условиях возрастающих водных нагрузок. Показано, что постнатальная десимпатизация вызывает нарушение регуляции ионного гомеостаза и приводит к усилению роли клубочковых процессов в условиях спонтанного мочеотделения и гипоосмотического сдвига. Выявлено отличие влияний антенатального и постнатального введения гуанетидина на парциальные функции почек крыс. Пренатальная десимпатизация приводит к более глубоким нарушениям регуляции водно-солевого гомеостаза по сравнению с постнатальным введением гуанетидина, что проявляется в достоверном повышении экскреции ионов и преобладающем значении фильтрации в ответ на введение водной нагрузки.

Практическая значимость

Экспериментальные исследования и теоретические положения данной работы позволяют расширить представления о формировании системы водно-солевого гомеостаза в онтогенезе. Материалы диссертации, раскрывающие особенности становления почечной функции в постнатальном онтогенезе, могут быть полезны для прогноза состояния водно-солевого обмена потомства у женщин с акушерской патологией. Полученные данные о антенатальном влиянии гуанетидина на формирование функции почек могут быть учтены при назначении терапии беременным женщинам препаратами из группы симпатолитиков.

Результаты работы используются при чтении курса лекций и проведении практических занятий по физиологии человека и животных в НГПУ, НГМА и НГАУ.

Апробация работы

Основные положения диссертации были доложены на ежегодных научных конференциях НГПУ 1993-96 гг.; на симпозиуме, посвященном 100-летию со дня рождения А.Г.Гинецинского, Новосибирск, 1995; на конгрессе Европейской организации биологии развития (ЕОВО), Тулуза, 1995. 6

Публикации

По материалам диссертации опубликовано 7 работ.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, объекта и методов исследования, 3 глав собственных исследований, обсуждения, выводов и списка литературы. Работа содержит 147 страниц, 19 таблиц, 30 рисунков. Библиография включает 295 источников: 65 на русском и 230 на иностранных языках. Весь материал получен, обработан и проанализирован лично автором.

Заключение диссертации по теме «Физиология», Дюкарев, Иван Анатольевич

ВЫВОДЫ

1. Эффект пренатального введения гуанетидина проявляется в изменении фоновых показателей функций почек, что выражается в достоверном снижении гидро- и ионоуреза в раннем возрасте и повышении их в последующие периоды постнатального онтогенеза.

2. Отличительной особенностью десимпатизированных крысят является нарушение регуляции ионного гомеостаза в ответ на введение водной нагрузки. Экскреция ионов достоверно выше в опыте по сравнению с контролем во все периоды постнатальной жизни. Ведущим фактором, определяющим парциальные функции почек потомства десимпатизированных крыс, является скорость клубочковой фильтрации.

3. При постнатальном введении гуанетидина восстановление нарушенного равновесия после введения нагрузки у десимпатизированных животных осуществляется менее эффективно по сравнению с контролем, что приводит к достоверному повышению экскреции ионов. Постнатальная десимпатиза-ция приводит к усилению роли клубочковых процессов в условиях спонтанного мочеотделения и гипоосмотического сдвига.

4. Пренатальная симпатэктомия, по сравнению с постнатальным воздействием, приводит к достоверному увеличению экскреции ионов после введения водной нагрузки. Наибольшим изменениям подвержена система регуляции гомеостаза калия. Дезинтеграция клубочково-канальцевых процессов в ответ на гипоосмотический сдвиг после пренатальной десимпатизации приводит к усилению роли фильтрационных процессов по сравнению с постнатальным введением гуанетидина.

5. Симпатическая нервная система играет важную роль в становлении почечной функции у крыс. Нарушение симпатической иннервации у матери в период беременности приводит к нарушениям водно-солевого гомеостаза у потомства.

120

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Дюкарев, Иван Анатольевич, 2000 год

1. Аверкина РФ. Морфо-функциональные связи между почками матери и плода. М., Медицина, 1985, с. 84 -125.

2. Айвар Ю.П. Механизм регуляции гладких мышц почечных сосудов. Успехи физиологических наук, 1977, т. 8, №4, с. 45-61.

3. Айзман Р.И., Антоненко Н.П. Формирование механизмов регуляции водно-солевого обмена в процессе онтогенеза. Новосибирск, 1979, с. 57.

4. Айзман Р.И., Антоненко Н.П., Великанова J1.K. Интеграция механизмов регуляции водно-солевого равновесия при возрастающих водных, солевых и объемных нагрузках. Физиологич. жур. СССР, 1980, т. 66, с. 1404-1411.

5. Айзман Р. И., Быструшкин С.К., Склянов Ю.И. Водно-солевой обмен материнского и плодового организмов при гипергидратации в различные периоды беременности. Физиологич. жур., 1992, т. 78, № 6, с. 97.

6. Айзман Р.И., Великанова JI.K., Блинова J1.B. Метод исследования биологической надежности систем волюмо- и осморегуляции в онтогенезе. В кн.: Методы исследования функций организма в онтогенезе. М., 1975, с. 130-131.

7. Айзман Р.И., Елькова Н.Г. Особенности водно-солевого обмена плода и беременных крыс при венозном застое. Тез. региональной конференции, Иркутск, 1988, с. 5.

8. Антоненко Н.П. Онтогенетические особенности реакции почек крыс на водные и солевые нагрузки. Автореферат дисс. канд. биол. наук., Новосибирск, 1982.

9. Анохин П.К. Очерки по физиологии функциональных систем. М., Медицина, 1975, с. 447.

10. Антонова С.Н., Кондрор М.И., Цибулевский А.Ю. Функционально-морфологическая характеристика эндокринной системы потомства адреналэк-томированных крыс. Бюлл. экспер. биол., 1978, №4, с. 400-403.121

11. Аршавский И.А. Плацентарный барьер. В кн. Физиология гистогематиче-ских барьеров / Под ред. Я.А. Росина. М., Наука, 1977, с. 443-456.

12. Берхин Е.Б., Иванов Ю.И. Методы экспериментального исследования почек и водно-солевого обмена. Барнаул, 1972. - 199 с.

13. Бодяжина В.И. О заболеваниях аналогичных органов (систем) матери и плода. Педиатрия, 1966, №9, с. 3-6. Цит. по Аверкина Р.Ф., 1985.

14. Борисов М.М. Исследование особенностей проявления некоторых вазомоторных рефлексов у десимпатизированных животных. Автореф. дис. канд. наук, М., 1975.

15. Борисова С.А. Роль почек в осморегуляции организма. Бюл. экспер. биол. и мед., 1965, № 10, с. 18-20.

16. Васильева В.Ф. О влиянии денервации на функцию почек. Физиологический журнал СССР, 1958, т. 44, №3, с. 236-238.

17. Великанова Л. К. Методологические и биологические аспекты надежности биологических систем. В кн. Формирование механизмов регуляции водно-солевого обмена в процессе онтогенеза. Новосибирск, Изд-во НГПИ, 1979, с. 3.

18. Великанова Л.К. Резервные возможности механизмов регуляции водно-солевого обмена в различные периоды онтогенеза. В кн. Онтогенез почки. Новосибирск, 1984, с. 109-128.

19. Великанова Л.К. Осморецепторы. Новосибирск: Наука, 1985, с. 29.

20. Великанова Л.К. Значение эфферентных систем осмо-, волюмо- и ионоре-гулирующих рефлексов в интеграции функции почек. В кн. Интеграция функциональных систем в онтогенезе. Новосибирск, Изд-во НГПИ, 1990.

21. Великанова Л.К., Айзман Р.И., Абаскалова Н.П. Резервные возможности функции почек и водно-солевого гомеостаза. Новосибирск, Изд-во НГПУ, 1997.

22. Великанова Л.К. Значение эфференттных систем осмо-волюмо- и ионоре-гулирующих рефлексов в интеграции функции почек. В кн. Интеграция функциональных систем в онтогенезе. -Новосибирск, Изд-во НГПИ, 1990. -с. 152.122

23. Вихерт A.M. Быковская К.Н. К вопросу об экспериментальном врожденном нефротическом синдроме. В кн. Достижения нефрологии / Под ред. Е.И.Чазова. М., 1970, с. 57-68. Цит. по Аверкина Р.Ф., 1985.

24. Волощенко A.A., Назаренко Н.К., Талалаев C.B. К причинам некоторых отклонений нефроногенеза у плодов человека. Арх. анат., 1977, № 2 , с. 64-70.

25. Гармашева H.JI. Патофизиологические основы охраны внутриутробного развития человека. М., 1985, с. 85-100.

26. Гармашева H.JL, Константинова H.H. Введение в перинатальную медицину. М., Медицина, 1978, с. 294.

27. Герасев А.Д. Роль нервных и гормональных механизмов в регуляции го-меостаза калия. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Новосибирск, 1994.

28. Гинецинский А.Г. Физиологические механизмы водно-солевого равновесия. M.; JL; Наука, 1964, с. 427

29. Гончаревская O.A. Интракортикальные и юкстамедуллярные нефроны почки в постнатальном онтогенезе крысы. Архив анатомии, физиологии и эмбриологии, 1977, т. 2, №6, с. 20-27.

30. Григорьева Т.А. О специфических особенностях дистрофических процессов при чувствительной и двигательной денервации органов. Проблема нервной трофики в теории и практике медицины. М., 1963.

31. Громов Л.И. Преждевременная функция плода как медико-биологическая проблема. Вести АМН СССР, 1964 , №6, с. 10-13.

32. Гырчев P.A. Функциональное значение нервов почки. Успехи физиологических наук, 1986, т. 17, №4, с. 105-109.

33. Динниц Е.Д. Изменение функции почек в онтогенезе осморегулирующего рефлекса. Автореферат дисс. канд. биол. наук. Новосибирск, 1970, с. 18.

34. Длоуга Г., Кршечек И., Наточин Ю. Онтогенез почки. Л., Наука, 1981.123

35. Елькова Н.Г. Формирование водно-солевого гомеостаза в процессе физиологического и нарушенного эмбриогенеза крыс. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Новосибирск, 1989, с. 25.

36. Иванова JI.H. Антидиуретический гормон и его роль в регуляции осмотического регулирования мочи // Физиология и патология почек и водно-солевого обмена. Киев : Наукова думка, 1974. с. 35-45.

37. Иванова JI.H., Зеленина М.Н., Мелиди H.H., Соленов Е.И., Хегай И.И. Ва-зопрессин: онтогенез антидиуретического действия на клеточном уровне // Фи-зиол. Жур. СССР.- 1989. -Т 75. -с. 970-979.

38. Каракашов A.B., Вичев Е.П. Микрометоды в клинической лаборатории. -София, 1968.

39. Ковальчук JI.E., Мельман Е.П. Иннервация юкстагломерулярного комплекса (ЮГК) почки позвоночных животных. Архив анатомии, гистологии и эмбриологии, 1990, №4, с. 41-47.

40. Курдубан Л.И. Механизмы осморегуляции в онтогенезе. Автореф. дис. д.м.н. Новосибирск, 1971.

41. Лакин Г.Ф. Биометрия. М., Высш. школа, 1980, с. 293.

42. Лобко П.И., Ковальчук И.Е., Руденок В.В. Антенатальный морфогенез спинномозговых узлов плодов белой крысы в условиях химической десимпати-зации беременной самки. Здравоохр. Белоруссии, 1990, № 12, с. 17-19.

43. Лукашин В.Г., Соловьев H.A. Влияние концентрации ионов натрия на структурно-функциональные характеристики кустиковидных рецепторов. Архив анат. гистол., 1980, т. 79, вып. 10, с. 43-48.

44. Лысов В.Ф. Бюл. эксперим. биологии и медицины, 1962, т. 64, № 10, с. 118. Цит. по Федоров В.И., 1998.124

45. Манухин Б.Н. Физиология адренорецепторов. М., Наука, 1968.

46. Манухин Б.Н., Мухаммедов А;, Бердышева JI.B., и др. Содержание норад-реналина в периферических органах и их адреночувствительность при химической десимпатизации. Физиол. журн. СССР, 1980, Т. 65, № 3, с. 344-349.

47. Мелиди H.H., Савенкова JI.A., Иванова J1.H. Влияние ранней постнаталь-ной десимпатизации на концентрирующую функцию почки крыс. Журн. эвол. биохим. и физиолог., 1989, т. XXY, №4, с. 481-486.

48. Мельман Е.П., Шутка Б.В. Нервный аппарат почки. Архив анатомии, гистологии и эмбриологии, 1986, ТХС, №6, с. 90-97.

49. Михайлов В.Н. Патогенное действие нефроцитотоксической сыворотки на эмбриональное развитие белых крыс. Бюлл. экспер. биол, 1967, № 6, с. 97-100. Цит. по Аверкина Р.Ф., 1985.

50. Наточин Ю.В. Физиология почки: формулы и расчеты. JL: Наука, 1974, с 60

51. Наточин Ю.В. Ионорегулирующая функция почки. Д.: Наука, 1976.

52. Орбели JI.A. Теория адаптационно-трофического влияния нервной системы. Избр. тр., М., Л., Изд-во АН СССР, 1948, Т 2.

53. Пенде Н. Эндокринология. М., JL, Биомедгиз, 1937. Цит. по Аверкина Р.Ф., 1985.

54. Пирьова Б., Натчев Н., Киркова JI. Экскреторная функция почек после де-нервации и введения ß-блокатора. Физиологический журнал СССР, 1978, т. 64, №3, с. 335.

55. Родионов И.М., Ярыгин В.Н., Мухаммедов A.A. Иммунологическая и химическая десимпатизация. М., Наука, 1988, с. 28-68.

56. Романова Л.К., Жихарева И.А. К вопросу о гуморальной регуляции восстановительного роста в легких, почках и печени. Бюлл. экспер. биол., 1972, № 1, с. 84-87. Цит. по Аверкина Р.Ф., 1985.125

57. Руденок В.В. Строение шейных спинномозговых узлов в эмбриогенезе человека и белой крысы в норме и при введении гуанетидина беременной самке. Автореферат дисс. канд. мед. наук, Минск, 1992, с. 14.

58. Савченков Ю.И., Лобынцев К.С. Очерки физиологии и морфологии функциональной системы мать-плод. М., Медицина, 1980, с. 256.

59. Саксонова О.Н. Натрийуретическая реакция при осмотическом раздражении почек. В кн.: Альдостерон и водно-солевой гомеостаз. Новосибирск, 1968, с. 55-56.

60. Соленов Е.И. Развитие клеточных механизмов действия АДГ в постна-тальном онтогенезе почки млекопитающих. Автореф. дис. д. б. н., Новосибирск, 1994.

61. Тырышкина Е.М. Электрофизиологическая характеристика и функциональная роль механорецепторов печени. Физиол. журн. СССР, 1980, т. 66, №7, с. 984-992.

62. Федоров В.И. Холинергическая система почки. Успехи совр. биол., 1998, т. 118, вып. 4, с. 498-503.

63. Хухо Ф. Нейрохимия. Основы и принципы. М., Мир, 1990, с. 383.

64. Швалев В.Н. Иннервация почек. М : Л, Наука, 1965, с. 176.

65. Ahlquist RP: A study of adrenotropic receptors. Am J Physiol 153:586, 1948.

66. Aizman RI, Antonenko NP, Bistrushkin SK. Water-electrolyte balance of the embrio under difference conditions of pregnancy. Symp. on Develop. Pharmacol., Jena, 1990, p. 138-145.

67. Andrews PM, Coffey AK: Cytoplasmic contractile elements in glomerular cells. FedProc 42:3046, 1983.

68. Angeletti PU, Levi-Montalcini R. Growth inhibition of sympathetic cells by some adrenergic blocking agents. Proc Nat Acad Sci 1972, V 69, № 1, P 86-88.126

69. Angeletti PU, Levi-Montalcini R, Caramia F. Structural and ultrastructural changes in developig sympathetic ganglia induced by guanethidine. Brain Res, 1972, 5i 43, № 2, P 515-525.

70. Aperia A, Larsson L, Letterstrom R. Hormonal induction Na+-K+-ATPase in developing proximal tubular cells. Am J Physiol, v. 241, №4, 1981.

71. Appenroth D, Braunlich H: Effect of sympathectomy with 6-hydro^y dopamine on the renal excretion of water and electrolytes in developing rats. Acta Biol Med Ger 40:1715, 1981.

72. Ayus JC, Humphreys MH: Hemodynamic and renal functional changes after acute unilateral nephrectomy in the dog: Role of carotid sinus baroreceptors. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 11)242:F181, 1982.

73. Baines AD, Drangova R, Ho P: arAdrenergic stimulation of renal Na reabsorption requires glucose metabolism. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 22) 253:F810, 1987.

74. Barajas L: Innervation of the renal cortex. Fed Proc 37:1192, 1978.

75. Barajas L, Powers K, Wang P: Innervation of the renal cortical tubules: A quantitative study. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 16) 247:F50, 1984.

76. Barajas L, Wang P: Simultaneous ultrascructural visualization of acetylcholinesterase activity and tritiated norepinephrine uptake in renal nerves. Anat Rec 205:185, 1983.

77. Barber JD, Harrington WW, Moss NG, et al: Prostaglandin blockade impairs denervation diuresis and natriuresis in the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250:F895, 1986.

78. Bass AS: DA2 dopamine receptor mediated renal effects of LY 141865 in rats subjected to acute unilateral denervation (abstr). Kidney Int 35:477, 1989.

79. Bauer JH, Brooks CS: The long-term effect of propranolol therapy on renal function. Am J Med 66:405, 1979.127

80. Baylis С, Blantz RC. News Physiol Sci, ^ 1, P 86, 1986. Цит. по Федоров В.И., 1998.

81. Bello-Reuss E, Colindres RE, Pastoriza-Munoz E, et al: Effects of acute unilateral renal denervation in the rat. J Clin Invest 56:208, 1975.

82. Bencsath P, Asztalos B, Szalay L, et al: Renal handling of sodium after chronic renal sympathectomy in the anesthetized rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 5) 236:F513, 1979.

83. Bencsath P, Fekete MI, Kanyicska, et al: Renal excretion of sodium after bilateral renal sympathectomy in the anaesthetized and conscious rat. J Physiol (Lond) 331:443, 1982.

84. Bencsath P, Szenasi G, Tackacs L: Renal nerves and sodium conservation in conscious rats (letter). Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 17) 248:F616, 1985.

85. Bencsath P, Szenasi G, Tackacs L: Water and electrolyte transport in Henle's loop and distal tubule after renal sympathectomy in the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249:F308, 1985.

86. Bernard C: Leçons sur les phenomenes de la vie communes аш* animaux et аш$ vegetara. Paris, 1878 (Цит. по Гинецинский А.Г., 1964)

87. Berne RM: Hemodynamics and sodium excretion of denervated kidney in anaesthetized and unanesthetized dog. Am J Physiol 171:148, 1952.

88. Berthoud HR, Powley TL. J Autonom Nerv System, 4 42, P 153, 1993. Цит. no Федоров В.И., 1998.

89. Bradley T, Hjemdahl P: Further studies on renal nerve stimulation induced release of noradrenaline and dopamine from the canine kidney in situ. Acta Physiol Scand 122:369, 1984.

90. Brent RL, Jensen M. Immunological aspects of development. Handbook of teratology. Ed JG Wilson, FC Fraser. New York, 4 4,? 339-396, 1978.128

91. Buckley NM, Brazeau P, Charney AN, et al: Cardiovascular and renal effects of isoproterenol infusions in young swine. Biol Neonate 45:69, 1984.

92. Buckley NM, Brazeau P, Frasier ID: Cardiovascular effects of dopamine in the developing swine, Biol Neonate 43:50, 1983.

93. Buckley NM, Brazeau P, Frasier ID: Renal blood flow autoregulation in developing swine. Am J Physiol (Heart Circ Physiol 14) 245 :H1, 1983.

94. Buckley NM, Charney AN, Brazeau P, et al: Changes in cardiovascular and renal function during catecholamine infusions in developing swine. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 9) 240:F276, 1981.

95. Burnstock G, Evans В et al. A new method of destroyng adrenergic nerves in adult animals using guanethidine. Brit J Pharmacol, 1971, ^ 43, P 295-301.

96. Calaresu FR, Ciriello J: Renal afferent nerves affect discharge rates of medullary and hypothalamic single units in the cat. J Auton Nerv Syst 3:311, 1981.

97. Carey RM, Thorner MO, Ortt EM: Dopaminergic inhibition of metoclopramide-induced aldosterone secretion in man. J Clin Invest 66:10, 1980.

98. Carter MK, Hemstreet GR, Reid JW. Physiologist, 3, P 57, 1961. Цит по Федоров В.И., 1998.

99. Cass R, Kuntzman R, Brodie BB. Norepinephrine depletion as a possible mechanism of action of guanethidine (SU-5864), a new hypertensive agent (25702). Proc Soc Ещ> Biol, 1960, 103, № 4, P 871-872.

100. Cogan MG: Neurogenic regulation of proximal bicarbonate and chloride reabsorption. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250:F22,1986.

101. Collier B, Johnson G, Quik M, Welner S. Effect of chemical destruction of mechanisms in adult rat sympathetic ganglia. Brit J Pharmacol, 1984, 82, № 4, P 827-832.

102. Colindres RE, Spielman WS, Moss NG, et al: Functional evidence for renorenal reflexes in the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 8) 239:F265, 1980.129

103. Coupland RE. Renal disease. Oxford: Blackwell Scientific Publ, P 1, 1972. Цит. по Федоров В.И., 1998.

104. Cuche JL: Sources of circulating dopamine. In McGrath B, Bell С (eds): Peripheral Actions of dopamine. London, McMillan, 1988, p 1.

105. De Michelle M, Amenta F. Clin E^p Hypertens, ii A10, P 1031, 1988. Цит. no Федоров В.И., 1998.

106. De Wolf WC, Fraley EE: Renal pain. Urology 6: 403, 1975.

107. DiBona GF: Neurogenic regulation of renal tubular sodium reabsorption. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 2) 233:F73, 1977.

108. DiBona GF. Rev Physiol Biochem Pharmacol, 94, P 75, 1982. Цит. по Федоров В.И., 1998.

109. DiBona GF, Sawin LL: Role of renal a2-adrenergic receptors in spontaneously hypertensive rats. Hypertension 9:41, 1987.

110. DiBona GF, Sawin LL: Renal nerves in renal adaptation to dietary sodium restriction. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 14) 245:F322, 1983.

111. DiBona GF, Sawin LL: Effect of renal nerve stimulation on NaCl and H20 transport in Henle's loop of the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 12)243:F576, 1982.

112. DiBona GF, Sawin LL: Renal nerve activity in conscious rats during volume expansion and depletion. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 17) 248:F15, 1985.

113. DiBona GF, Sawin LL: Role of renal nerves in congestive bean failure. Kidney Int 33:418, 1988.

114. Douglas IR, Johnson EI et al. Development and maintenence of renal hypertension in normal and guanethidine sympathectomized rats. Circulation Res, 1975, 36, №6, Suppl 1,P 171-178.130

115. Downing OA, Juul P. The effect of guanethidine pretreatment on transmission in the superior cervical ganglion. Acta Pharmacol Et Toxicol, 1973, V 32, № 5, P 369381.

116. Driscoll DJ, Fukushige J, Hartley CJ, et al: The comparative hemodynamic effects of isoproterenol in chronically instrumented puppies and adult dogs. Dev Pharmacol Ther 2:91, 1981.

117. Driscoll DJ, Gillete PC, Lewis RM: Comparative hemodynamic effects of isoproterenol, dopamine, and dobutamine in the newborn dog. Pediatr Res 13:1006, 1979.

118. Dzau VJ, Kresiberg J: Cultured glomerular mesangial cells contain renin: Influence of calcium and isoproterenol. J Cardiovasc Pharmacol (suppl 10) 8:S6, 1986.

119. Eranko O, Eranko L. Histochemical evidence of chemical sympathectomy by guanethidine in newborn rats. Ibid, 1971, V 3, № 6, P 451-456.

120. Euler I, Hillarp N. Evidence for the presence of noradrenaline in submicroscopic structures of adrenergic axons. Nature, 1956, V 177, P 44.

121. Evans BK, Burnstock G. Chronic guanethidine treatment of female rats including effects on the fetus. J Reprod and Fert, 1979, V 56, № 2, P 715-724.

122. Felder RA, Blecher M, Eisner GM, et al: Cortical tubular and glomerular dopamine receptors in the rat kidney. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 15) 246:F557, 1984.

123. Felder RA, Blecher M, Schoelkopf L, et al: Renal dopamine receptors during maturation (abstr). Pediatr Res 17:148A, 1983.

124. Felder RA, Jose PA: Development of adrenergic and dopamine receptors in the kidney. In Strauss J (ed): Homeostasis, Nephrotoxicity, and Renal Anomalies in the Newborn. Boston, Martinus Nijhoff, 1986, p 3.

125. Felder RA, Pelayo JC, Calcagno PL, et al: Alpha-adrenoceptors in the developing kidney. Pediatr Res 17:177, 1983.131

126. Felder RA, Seikaly MG, Eisner GM, et al: Renal dopamine-1 defect in the spontaneously hypertensive rat. Contrib Nephrol 67:71, 1988.

127. Felder RB: Excitatory and inhibitory interactions among renal and cardiovascular afferent nerves in dorsomedial medulla. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 19) 250:R580, 1986.

128. Ferguson M, Bell C: Substance P-immunoreactive nerves in the rat kidney. Neu-rosci Lett 60: 183, 1985.

129. Fernandez-Repollet E, Silva-Netto CR, Colindres RE, et al: Role of renal nerves in maintaining sodium balance in unrestrained conscious rats. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249:F819, 1985.

130. Fildes RD, Eisner GM, Calcagno PL, et al: Renal alpha adrenoceptors and sodium excretion in the dogs. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 17) 248 :F 128, 1985.

131. Fildes R, Sohaug M, Eisner GM, et al: Enhancement of sodium excretion by substance P during saline loading in the canine puppy. Pediatr Res 17:737, 1983.

132. Forssmann WG, Reinecke M: Organ-specific innervation by autonomic nerve fibers as revealed by electron microscopy and immunohistochemistry. Front Horm Res 12:59, 1984.

133. Gallen DD, Cowen T, Griffith SC, et al: Functional and non-functional nerve -smooth muscle transmission in the renal arteries of the newborn and adult rabbit and guinea pig. Bloodvessels 19:237, 1982.

134. Gannon BI, Iwajama T, Burnstock G. Prolonged effect of chronic guanethidine treatment of the sympathetic innervation of the genitalia of male rats. Med J Austral, V2, № 4, P 207-208, 1971.

135. Gattone VH, Marfurt CF, Dallie S: Extrinsic innervation of the rat kidney: A retrograde tracing study. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250:F189, 1986.

136. Genovesi S, Protasoni G, Golin R, Stella A, Zanchetti A. J. Hyper-tension. V 7, Suppl 6, P 176, 1989. Цит. по Федоров В.И., 1998.132

137. Gill JR Jr, Bartter FC: Adrenergic nervous system in sodium metabolism. II. Effects of guanethidine on the renal response to sodium deprivation in normal man. N Engl J Med 275:1466, 1966.

138. Gilmore JP, Tomomatsu E: Renal mechanoreceptors in nonhuman primates. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 17) 248:R202, 1985.

139. Gitler MS, Piccio MM, Robillard JE, et al: Ontogeny of renal alpha adrenoceptor subtypes in the sheep (abstr). Pediatr Res 25:340A, 1989.

140. Goetz KL: Physiology and pathophysiology of atrial peptides. Am J Physiol (Endocrinol Metab 7) 254 :E1, 1988.

141. Gordon D, Pert WS, Wilcox CS: Requirement of the adrenergic nervous system for conservation of sodium by the rabbit kidney (proceedings). J Physiol (Lond) 293:24P, 1979.

142. Goss RJ. Effects of maternal nephrectomy on foetal kidneys. Nature (London), 1963, V 46, P 402-403.

143. Graham RM, Pettinger WA, Sagalowsky A, et al: Renal alpha-adrenergic receptor abnormality in the spontaneously hypertensive rat. Hypertension 4:881, 1982.

144. Grignolo A, Seidler FJ, Bartolome M, et al: Norepinephrine content of the rat kidney during development: Alterations induced by perinatal methadone. Life Sei 31:3009, 1982.

145. Gross R, Hackenberg H, Hackenthal E: Interaction between perfusion pressure and sympathetic nerves in renin release by carotid baroreflex in conscious dogs. J Physiol (Lond) 313:237, 1981.

146. Gross R, Kirchheim H: Effects of bilateral carotid and auditory stimulation on renal blood flow and sympathetic nerve activity in the conscious dog. Pflugers Arch 383:233, 1980.

147. Gross R, Kirchheim HR, Ruffman K: Effect of carotid occlusion and of perfusion pressure on renal function in conscious dogs. Circ Res 48:774, 1981.133

148. Hartmann PJ, Davies H. J Compar Neurol V 89, P 225, 1948. Цит. по Федоров В.И., 1998.

149. Heath IW, Burnstock G. Selectivity of neuronal degeneration production by chronic guanethidine treatment. J Neurocytol, 1977, V 6, № 4, P 397-405.

150. Heath IW, Evans BK et al. Degeneration of adrenergic neurons following guanethidine treatment: an ultrastructural study. Virchows Arch, 1972, V 11, № 2, P 182197.

151. Heath IW, Evans BK, Burnstock G. Axon retraction following guanethidine theatment. Studies of sympathetic neuron in vivo. Ztschr Zellforsch, 1973, V 146, № 4, P 439-451.

152. Hermansson K, Larson M, Kallskog O, et al: Influence of renal nerve activity in arteriolar resistance, ultrafiltration dynamics and fluid reabsorption. Pflugers Arch 389:85, 1981.

153. Hermansson K, Ojteg G, Wolgast M: The cortical and medullary blood flow at different levels of renal nerve activity. Acta Physiol Scand 120:161, 1984.

154. Hermansson K, Ojteg G, Wolgast M: The reno-renal reflex: Evaluation from renal blood flow measurements. Acta Physiol Scand 120:207, 1984.

155. Hiroshi H, Miro M, Shuji U, Hiroshi I. Changes in density of muscarinic clon-inergic receptor by adrenergic denervation with guanethidine. Jap J Pharmacol, 1985, V 37, № 2, P 207-211.

156. Hjemdahl P, Bradley T, Tidgren B: Release of dopamine from the kidney in vivo. In McGrath B, Bell С (eds): Peripheral Actions of Dopamine. London, McMillan 1988, p 56.

157. Hjemdahl P, Tidgren B: Differential changes of norepinephrine (NE) and dopamine (DA) overflow from the human kidney in response to different stressors (abstr), Circulation 76:IV-272, 1987.

158. Holdaas H, DiBona GF: On the existence of renal vasodilator nerves. Proc Soc Exp Biol Med 176:426, 1984.134

159. Holdaas H, DiBona GF: Stimulatory and inhibitory reflexes from somatic receptors: Effect on renin release. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 15) 246:R1005, 1984.

160. Horster M. Expression of ontogeny in individual nephron sygments. Kidney Int 22:5, 1982.

161. Hosotani T, Misu I. Studies on the mechanism of guanethidine action. VI. Effects of guanethidine and calcium on release of noradrenaline from rabbit heart induced by sodium reduction, pap J Pharmacol, 1976, V 26, P 1-47.

162. Hyem Ch., Grube D. Die funktionellen Zellelemente im ganglion cervicale Su-perius der Katze unter dem Einflus von Guanethidine. Verh anat Ges, 1975, Bd 69, № 8, p 484 490.

163. Ichikawa I, Kon V: Glomerular mesangium as an effector locus for the tubu-loglomerular feedback system and renal sympathetic innervation. Fed Proc 42:3075, 1983.

164. Ichikawa K, Maddox DA, Cogan MG, et al: Dynamics of glomerular ultrafiltration in euvolemic Munich-Wistar rats. Renal Physiol 1:121, 1978.

165. Iensen-Holm I., Juul P. Ultrastructural changes in the rat superior cervical ganglion following prolonged guanethidine administration. Acta Pharmakol, 1971, V 30, №3,P 308-314.

166. Insel PA, Snavely MD: Catecholamines and the kidney: Receptors and renal function. Annu Rev Physiol 43:625, 1981.

167. John E, Assadi F, Fornell L: Dose related effect of dopamine (D) on renal function (RF) during ontogeny (abstr). Pediatric Nephrol 1:C27, 1987.

168. Johnson EM. Biochemical and functional evaluation of the sympathectomy induced by treatment of newborn rats with guanethidine. Fed Proc, 1974, V 33, № 3, Pt 1, P 486.

169. Johnson EM. Destruction of the sympathetic nervous system in neonatal rats and hamster by vinblastine: prevention by concomitant administration of nerve growth factor. Brain Res, 1978, V 141, № 1, P 105-118.135

170. Johnson EM, O'Brien F. Evaluation of the permanent sympathectomy produced by the administration of guanethidine to adult rats. J Pharmacol and Exp Ther, 1976, V 196, № 1,P 53-61.

171. Johnson MD, Barger CA: Circulating catecholamines in control of renal electrolyte and water excretion. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 9) 240:F192, 1981.

172. Johnson EM, Macia RA. Unique resistance to guanethidine-induced chemical sympathectomy of spontaneously hypertensive rats. A resistance overcome by treatment with antibody to nerve growth factor. Circulation Res, 1979, V 45, P 243-249.

173. Jonson EM, Macia RA, Andres RG, Bradshow RA. The effects of drugs which destroy the sympathetic nervous system on the retrograde transport of nerve growth factor. Brain Res, 1979, V 171, P 461-472.

174. Johnson IE, Manning PT. Guanethidine-induced destruction of sympathetic neurons. Intern Rev Neurobiol, 1984, V 25, P 1-37.

175. Jose PA: Adrenergic Regulation of Blood Pressure. NHLBI Workshop on Juvenile Hypertension, Proc Symposium, New York, Biomedical Information Corp. 1984, p 205.

176. Jose PA, Felder RA, Holloway RR, et al: Dopamine receptors modulate sodium excretion in denervated kidney. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250:1033, 1986.

177. Jose PA, Felder RA, Robillard JE, et al: Dopamine-2 receptor in the canine kidney (abstr). Kidney Int 28:385, 1986.

178. Jose P, Logan A, Slotkoff L, et al: Intrarenal blood flow distribution in the maturing kidney. Proceedings of the 1 st International Symposium "Radionuclides in Nephrology", New York, Grune and Stratton, 1972, p 9.

179. Judes C, Helwig JJ, Bollavck C, et al: Isoproterenol-sensitive adenylate cyclase in glomeruli isolated from young and adult rat renal cortex. Gen Pharmacol 16:205, 1985.

180. Juul P, Melsaac RL. The effect of guanethidine on the noradrenaline content of the adult rat superior cervical ganglion. Acta Pharmacol Et Toxicol, 1973, V 32, № 5, P 382-389.

181. Juul P, Sand O. Guanethidine determination in rat sympathetic ganglia following prolonged administration. Acta Pharmacol, 1971, V 29, spl 4, P 25.

182. Kahan T, Dahlof C, Hjemdahl P: Facilitation of nerve stimulation evoked noradrenaline overflow by isoprenaline but not by circulating adrenaline in the dog in vivo. LifeSci 40:1811, 1987.

183. Katholi RE: Renal nerves in the pathogenesis of hypertension in experimental animals and humans. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 14) 245 :F1, 1983.

184. Kessler JA, Adler JE, Bohn MC, et al: Substance P in principal sympathetic nerves: Regulation by impulse activity. Science 242:1403, 1981.

185. Kinoshita S, Canada M, Felder RA: DA-1 receptors identified in rat renal ho1mogenates, slices, and microdissected nephrons with I-SCH23982 (abstr). Kidney Int 33:419, 1988.

186. Kinoshita S, Jose PA, Felder RA: Ontogeny of the dopamine. (DAj) receptor in rat renal proximal convoluted tubule (PCT) (abstr). Pediatr Res 25:68A, 1989.

187. Klein RM. Alteration of neonatal rat parotid gland acinar cell proliferation by guanethidine-induced sympathectomy. Cell Tissue Kinet 1979, V 12, № 4, P 411-423.

188. Kon V, Ichikawa I: Effector loci for renal nerve control of cortical microcirculation. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 14) 245:F545, 1983.

189. Kopp UC, Olson LA, DiBona GF: Renorenal reflex responses to mechano- and chemoreceptor stimulation in the dog and rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 15) 246:F67, 1984.137

190. Kopp UC, Smith LA, DiBona GF: Impaired renorenal reflexes in spontaneously hypertensive rats. Hypertension 9:69, 1987.

191. Kopp UC, Smith LA, DiBona GF: Renorenal reflexes: Neural components of ipsilateral and contralateral renal responses. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249:F507, 1985.

192. Kreisberg JI, Venkatachalam MA, Patel PY: Cyclic AMP associated shape change in mesangial cells and its reversal by prostaglandin E2. Kidney Int 25:874, 1984.

193. Krothapalli RK, Suki WN: Functional characterization of the alpha adrenergic receptor modulating the hydroosmotic effect of vasopressin on the rabbit cortical collecting tubule. J Clin Invest 73:740, 1984.

194. Kuo DC, Nadelhaft I, Hisamitsu T, et al: Segmental distribution and central projections of renal afferent fibers in the cat studied by transganglionic transport of horseradish peroxidase. J Comp Neurol 216:162, 1983.

195. Kurkus J, Thorup C, Persson AE. Renal nerve stimulation restores tubuloglome-rular feadback after acute renal denervation. Acta Physiol Scand V 164, № 3, P 237243, 1998.

196. Kusano E, Nakamura R, Asano Y, et al: Distribution of alpha-adrenergic receptors in the rabbit nephron. Tohoku J Exp Med 142:275, 1984.

197. Laradi A, Sakhrani LM, Massry SG: Effect of dopamine on sodium uptake by renal proximal tubule cells of rabbit. Miner Electrolyte Metab 12:303, 1986.

198. Levin BE, Triscari I, Marquet E, Sullivan AC. Dietary obesity and neonatal sympathectomy I. Effects on body composition and grown adipose. Amer J Physiol V 247, № 6, Pt 2, P 979-987, 1984.

199. Lifschitz MD: Lack of a role for the renal nerves in renal sodium reabsorption in conscious dogs. Clin Sci Mol Med 54:567, 1978.138

200. Lin S-Y, Chaves C, Widemann E, et al: A y-melanocyte stimulating hormonelike peptide causes reflex natriuresis after acute unilateral nephrectomy. Hypertension 10:619, 1987.

201. Liu CL, Bigazzi R, Bollard J, Campese VM. Amer J Nephrol, V 12, P 86, 1992. Цит. по Федоров В.И., 1998.

202. Liuzzi A, Foppen FH, Angeletti PU. Adrenaline, noradrenaline and dopamine levels in brain and heart after administration of 6-hydroxydopamine and guanethidine to newborn mice. Biochem Pharmacol V 23, № 6, P 1041-1044, 1974.

203. Lokhandwala MF, Steenberg ML: Evaluation of effects of SKF 82526 and LY 171555 on presynaptic (DA2) and postsynaptic (DAI) dopamine receptors in rat kidney. J Auton Pharmacol 4:273, 1984.

204. Lundin S, Ricksten SE, Thoren P: Renal sympathetic activity in spontaneously hypertensive rats and normotensive controls, as studied by three different methods. Acta Physiol Scand 120: 265, 1984.

205. Maines JE, Williams RL, Pearson JE. Amer J Physiol, V 222, P 829, 1972. Цит. по Федоров В.И., 1998.

206. Matherne GP, Nakamura KT, Alden BM, et al: Regional variation of postjunctional alpha-adrenoceptor responses in the developing renal vascular bed of the sheep. Pediatr Res 25:461, 1989.

207. Matherne GP, Nakamura KT, Robillard JE: Ontogeny of a-adrenoceptor responses in renal vascular bed of sheep. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 23) 254:R277, 1988.

208. Maxwell RA, Mull RP, Plummer AI. 2-(octohydro-l-azocinyl)-ethyl-guanidine sulfate (Ciba 5864-SU), a new synthetic antihyper-tensive agent. Experientia, 1959, V 15, P 267.

209. McCaughran JA Jr, Juno CJ, O'Malley E, et al: The ontogeny of renal alphaland alpha2-adrenoceptors in the Dahl rat model of experimental hypertension. J Auton Nerv Syst 17:1, 1986.139

210. McKenna OC, Angelakos ET: Acetylcholinesterase containing nerve fibers in the canine kidney. Circ Res 23:645, 1968.

211. McKenna OC, Angelakos ET: Development of adrenergic innervation in the puppy kidney. AnatRec 167:115, 1970.

212. Melidi NN. Renal function after early postnatal chemical sympathectomy in rat. Acta Physiol Pharmacol Bulgarica, Varna, V 14, P 59, 1988.

213. Mitchell GAG: The nerve supply of the kidneys. Acta Anat (Basel) 10:1, 1950.

214. Mizelle HL, Hall JE, Woods LL, et al: Role of renal nerves in compensatory adaptation to chronic reductions in sodium intake. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 21) 252:F291, 1987.

215. Morgunov N, Baines AD: Renal nerves and catecholamine excretion. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 9) 240:F75, 1981.

216. Morgunov N, Baines AD: Vagal afferent activity and renal nerve release of dopamine. Can J Physiol Pharmacol 63:636, 1985.

217. Morita H, Vatner SF: Effects of volume expansion on renal nerve activity, renal blood flow, and sodium and water excretion in conscious dogs. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249:F680, 1985.

218. Moss NG: Renal function and renal afferent and efferent nerve activity. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 12) 243:F425, 1982.

219. Nakamura KT, Alden BM, Matherne GP, et al: Ontogeny of renal hemodynamic response to terbutaline and forskolin in sheep. J Pharmacol Exp Ther 247:453, 1988.

220. Nakamura KT, Felder RA, Jose PA, et al: Effects of dopamine in the renal vascular bed of fetal, newborn and adult sheep. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 21) 252:R490, 1987.

221. Nakamura KT, Matherne GP, Jose PA, et al: Effects of epinephrine on the renal vascular bed of fetal, newborn, and adult sheep. Pediatr Res 23:181, 1988.140

222. Nakamura KT, Matherne GP, Jose PA, et al: Ontogeny of renal ^-adrenoceptor mediated vasodilation in sheep: Comparison between endogenous catecholamines. Pediatr Res 22:465, 1987.

223. Nakamura R, Imai M: Nephron distribution of H.-dihydroalprenolol binding and its physiological significance. Jpn J Nephrol 5:70, 1982.

224. Nielsen GD. Guanethidine induced sympathectomy in the adult rat. I. Functional effects following subacute adminiatration. Acta Pharmacol et Toxicol, V 41, № 3, P 203-208, 1977.

225. Nielsen GD. Guanethidine induced sympathectony in the adult rat. II. Functional effects following chronic adminiatration. Acta Pharmacol et Toxicol, V 41, № 3, P 209-216, 1977.

226. Niijima A: Observation on the localization of mechanoreceptors in the kidney and afferent nerve fibers in the renal nerves in the rabbit. J Physiol (Lond) 245:81, 1975.

227. Nomura I, Naitoh F, Segama T. Regional changes in brain catecholamine content following administration of guanethidine to neonatal rats. Jap J Pharmacol V 25, № 6, P 773-779, 1975.

228. Nomura G, Takabatake T, Arai S, et al: Effect of acute unilateral renal denervation on tubular reabsorption in the dog. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 1) 232:F16, 1977.

229. Norvell JE, Anderson JM. The aorticorenal ganglion and its role in renal innervation of the kidney. J Auton Nerv Syst 8:291, 1983.

230. Numao Y, Saito M, Terui N, et al: Physiological and pharmacological properties of the three subsystems constituting the aortic nerve-renal sympathetic reflex in the rabbit. J Auton Nerv Syst 9:361, 1983.

231. Oliver JA, Pinto J, Sciacca RR, et al: Basal norepinephrine overflow into the renal vein: Effect of renal nerve stimulation. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 8) 239:F371, 1980.141

232. Oliver JA, Sciacca RR, Pinto J, et al: Role of the prostaglandin in norepinephrine release during augmented renal sympathetic nerve activity in the dog. Circ Res 48:835, 1981.

233. Osborn JL, Holdaas H, Thames MD, et al: Renal adrenoceptor mediation of an-tinatriuretic and renin secretion response to low frequency renal nerve stimulation in the dog. Circ Res 53:298, 1983.

234. Padbury JF, Diakomanolis ES, Hobel CJ, et al: Neonatal adaptation: Sympathoadrenal response to umbilical cord cutting. Pediatr Res 15:1483, 1981.

235. Pelayo JC: Modulation of renal adrenergic effector mechanisms by calcium entry blockers. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 21) 252:F613, 1987.

236. Pelayo JC: Renal adrenergic effector mechanisms: Glomerular sites for prostaglandin interaction. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 23) 254:F184, 1988.

237. Pelayo JC, Blantz RC: Analysis of renal denervation in the hydropenic rat: Interactions with angiotensin II. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 15) 246:F87, 1984.

238. Pelayo JC, Fildes RD, Eisner GM, et al: Effects of dopamine blockade on renal sodium excretion. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 14) 245:F247, 1983.

239. Pelayo JC, Fildes RD, Jose PA: Age-dependent renal effects of intrarenal dopamine infusion. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 16) 247:R212, 1984.

240. Pelayo JC, Ziegler MG, Blantz RC: Angiotensin II in adrenergic-induced alterations in glomerular hemodynamics. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 16) 247:F799, 1984.

241. Pelayo JC, Ziegler MG, Jose PA, et al: Renal denervation in the rat: Analysis of glomerular and proximal tubular function. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 13) 244:F70, 1983.

242. Pirola CJ, Alvarez AL, Balda MS, Finkielman S, Nahmod VE. Amer J Physiol, 257:F746, 1989. Цит. по Федоров В.И., 1998.142

243. Pirola CJ, Alvarez AL, Finkielman S, Nahmod VE. Amer J Physiol, 260:F198, 1991. Цит. по Федоров В.И., 1998.

244. Pollock DM, Arendshorst WJ. Amer J Physiol, 261:R835, 1991. Цит. по Федоров В.И., 1998.

245. Rasmussen H, Kojima I, Apfeldorf W, et al: Cellular mechanism of hormone action in the kidney: Messenger function of calcium and cyclic AMP. Kidney Int 29:90, 1986.

246. Recordati GM, Moss NG, Genovesi S, et al: Renal receptors in the rat sensitive to chemical alterations of their environment. Circ Res 46:395, 1980.

247. Recordati G, Moss NG, Genovesi S, et al: Chemoreceptors. J Auton Nerv Syst 3:237, 1981.

248. Reison DS, Oliver J, Sciacca RR, et al: Release of norepinephrine from sympathetic nerve efferents by bilateral carotid occlusion. Am J Physiol (Heart Circ Physiol 14) 245:H635, 1983.

249. Ribstein J, Humphreys MH: Renal nerves and cation excretion after acute reduction in functioning renal mass in the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 15) 246:F260, 1984.

250. Robie NW: Evaluation of presynaptic alpha-adrenoceptor function in the canine renal vascular bed. Am J Physiol (Heart Circ Physiol 3) 239:H422, 1980.

251. Robillard JE, McWeeny OJ, Smith B, et al: Ontogeny of neurogenic regulation of renal tubular reabsorption in sheep (abstr). Pediatr Res 23:545A, 1988.

252. Robillard JE, Nakamura KT, DiBona GF: Effects of renal denervation on renal responses to hypoxemia in fetal lambs. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250:F294, 1986.

253. Robillard JE, Nakamura KT: Neurohormonal regulation of renal function during development. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 23) 254:F771, 1988.143

254. Robillard JE, Nakamura KT, Wilkin MK, et al: Ontogeny of renal hemodynamic response to renal nerve stimulation in sheep. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 21) 252:F605, 1987.

255. Robillard JE, Smith FG, McWeeny OJ, et al: Ontogeny of the renal response to alphai-adrenoceptor stimulation in sheep (abstr). Pediatr Res 25:347A, 1989.

256. Rogenes PR: Single-unit and multiunit analysis of reno-renal reflexes elicited by stimulation of renal chemoreceptors in the rat. J Auton Nerv Syst 6:143, 1982.

257. Rogenes PR, Gottschalk CW: Renal function in conscious rats with chronic unilateral renal denervation. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 11) 242:F140, 1982.260. Rollason

258. Rump LC, Majewski H: Modulation of norepinephrine release thorough ar and a2-adrenoceptors in the rat isolated kidney. J Cardiovasc Pharmacol 9:500, 1987.

259. Sadowski J, Kurkus J, Gellert R: Denervated and intact kidney responses to saline load in awake and anesthetized dogs. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 6) 237:F262, 1979.

260. Sadowski J, Kurkus J, Gellert R: Reinvestigation of denervation diuresis and na-triuresis in conscious dogs. Arch Int Physiol Biochem 87:663, 1979.

261. Sanchez A, Vidal MJ, Martinez-Sierra R, et al: Ontogeny of renal alpha-1 and alpha-2 adrenoceptors in the spontaneously hypertensive rat. J Pharmacol Exp Ther 237:972, 1986.

262. Schneider E, McLane Vega L, Hanson R, et al: Effect of chronic bilateral renal denervation on daily sodium excretion in the conscious dog: (abstr). Fed Proc 37:645, 1978.

263. Schwartz DD, Eikenberg DC: Enhanced endogenous neurotransmitter overflow in the isolated perfused rat kidney alter chronic epinephrine administration: Lack of a prejunctional beta adrenoceptor influence. J Pharmacol Exp Ther 244:11, 1988.144

264. Simmonds SH, Strange PG: Inhibition of inositol phospholipid breakdown by D2 dopamine receptors in dissociated bovine anterior pituitary cells. Neurosci Lett 60:267, 1985.

265. Simon OR, Schramm LP: The spinal course and medullary termination of myelinated renal afferents in the rat. Brain Res 290:239, 1984.•5

266. Singh I, Klein RM, Yerstrowits M. Autoradiographic assessment of H-proline up take by osteoblasts following guanethidine-induced sympathectomy in the rat. Cell and Tissue Res, 1981, V 216, №1, P 215-220.

267. Skerb N, Domazet Z, Lukovic G, Hofman L. Growth of fetal organs after maternal partial hepatectomy or unilateral nephrectomy. Experientia, 1971, V 27, № 1, P 76-77.

268. Slivka SR, Insel PA: arAdrenergic receptor-mediated phosphoinositide hydrolysis and prostaglandin E2 formation in Madin-Darby canine kidney cells. Possible parallel activation of phospholipase C and phospholipase A. J Biol Chem 262:4200, 1987.

269. Smyth DD, Umemura S, Pettinger WA: Renal nerve stimulation causes ar adrenoceptor-mediated sodium retention but not a2-adrenoceptor antagonism of vasopressin. Circ Res 57:304, 1985.

270. Solomon S. Developmental changes in nephron number, proximal tubular length and superficial nephron glomerular filtration rate of rats. J Physl, v. 272, №3, 1977.

271. Spelman FA, Oberg PA. Continuous measurment of renal cortical blood flow and renal arterial blood flow during stimulation of the renal nerve. Med Biol End Comput, V 22. № 2, P 121-128, 1991.

272. Spitzer A: The role of the kidney in sodium homeostasis during maturation. Kidney Int 21:539, 1982.145

273. Sripairojthikoon W, Wyss JM: Cells of origin of the sympathetic renal innervation in rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 21) 252:F957, 1987.

274. Sripanidkulchai B, Wyss JM: The development of a2-adrenoceptors in the rat kidney: Correlation with noradrenergic innervation. Brain Res 400:91, 1987.

275. Steblay RW. Experimental autoimmune antiglomerular-basement-membrane glomerulonephritis in the sheep. Amer J Path, 1979, V 3, P 875- 878.

276. Stephenson RK, Sole MJ, Baines AD: Neural and extraneural catecholamine production by rat kidneys. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 11) 242:F261, 1982.

277. Sulyok E: Dopaminergic control of neonatal salt and water metabolism. Pediatr Nephrol 2:163, 1988.

278. Szenasi G, Bencsath P, Takacs L: Proximal tubular transport and urinary excretion of sodium after renal denervation in sodium depleted rats. Pflugers Arch 403:146, 1985.

279. Szenasi G, Bencsath P, Szalay L, et al: Fasting induces denervation natriuresis in the conscious rats. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249:F753, 1985.

280. Takishita S, Muratani H, Sesoko S, et al. Hypertension, V 24, P 445, 1994. Цит. по Федоров В.И., 1998.

281. Terman BI, Slivka SR, Hughes RJ, et al: ai-adrenergic receptor-linked guanine nucleotide-binding protein in muscle and kidney epithelial cells. Mol Pharmacol 31:12, 1987.

282. Tomlinson DR, Mayor D. The effects of guanethidine, bretylium and de-brisoguine on the accumulation of noradrenaline in constricted postganglionic sympathetic nerves in vitro. Europ J Pharmacol, 1973, V 21, № 1, P 161-170.

283. Tulassay T, Seri I, Machay T, et al: Effects of dopamine on renal functions in premature neonates with respiratory distress syndrome. Int J Pediatr Nephrol 4:19, 1983.146

284. Vik I, Volin M, Smetanova I. Dependence of the cytotoxic effect of guanethidine on the degree of sympathetic activity. Physiol Bohemosl, 1984, V 33, № 5, P 457461.

285. Weitsen HA, Norvell JE. Circulat Res V25, P535, 1969. Цит. no Федоров В.И., 1998.

286. Williams RL, Pearson JE, Carter MK. J Pharmacol and Exp Ther V 147, P 32, 1965. Цит. no Федоров В.И., 1998.

287. Winternitz SR, Katholi RE, Oparil S: Role of the renal sympathetic nerves in the development and maintenance of hypertension in the spontaneously hypertensive rat. J Clin Invest 66:971, 1980.

288. Woosley RL, Niels AS. Guanethidine. New Engl J Med, 1976, V 295, № 19, P 1053-1057.

289. Young WS, Kuhar MJ: Alpha-2 adrenergic receptors are associated with renal proximal tubules. Eur J Pharmacol 67:493, 1980.

290. Zambraski EJ, DiBona GF, Kaloyanides GJ: Effect of sympathetic blocking agents on the antinatriuresis of reflex renal nerve stimulation. J Pharmacol Exp Ther 198:464, 1976.

291. Zimmermann HD: Elektronenmikroskopische befimde zur innervation des nephron nach Untersuchungen an der fetalen nachniere des menschen. Z Zellforsch Mikrosk Anat 129:65, 1972.