Влияние факторов адгезии на морфофункциональные характеристики эмбриональных клеток моллюсков и иглокожих в культуре тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.11, кандидат биологических наук Коптяева (Ермак), Анна Владимировна

• Коптяева (Ермак), Анна Владимировна
• кандидат биологических наук
• 1998

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Коптяева (Ермак), Анна Владимировна

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ.<

ВВЕДЕНИЕ.:

1. Актуальность проблемы.

2. Цель и задачи исследования.

3. Научная новизна.

4. Теоретическая и практическая значимость работы.

5. Апробация работы.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Необходимые условия культивирования.

1.1.1. Источники клеток.

1.1.2. Тканевая дезагрегация.1 ■

1.1.3. Питательная среда.

1.1.4. Специфические стимуляторы клеточного деления.

1.1.5. Субстрат и клеточная адгезия.

1.2. Дифференцировка клеток в культуре.

1.2.1. Лиганд-рецепторные комплексы.

1.2.2. Роль цитоскелета в клеточном ответе.

1.3. .Морфогенетические реакции дифференцированных клеток.2:

1.4. Неопластическая трансформация.

1.5. Углеводсвязывающие белки - лектины.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние факторов адгезии на морфофункциональные характеристики эмбриональных клеток моллюсков и иглокожих в культуре»

1. Актуальность проблемы.

Клеточные культуры широко используются для решения многих фундаментальных и прикладных проблем биологии, медицины и промышленности, в том числе в современной биотехнологии, как продуценты важных вакцин, биологически-активных веществ (БАВ), моноклональных антител. Культивируемые клетки являются незаменимым объектом в изучении механизмов злокачественной трансформации, адаптации, старения, биологической подвижности, межклеточных взаимодействий и взаимодействий клеток со средой и многих других. И наконец, клетки в сравнительно простых и экспериментально контролируемых условиях in vitro являются оптимальной модельной системой для исследования механизмов, регулирующих рост и дифференцировку клеток и играющих важную роль в процессе эмбриогенеза.

В настоящее время существует огромное количество постоянных клеточных линий многих позвоночных животных, в том числе и человека, около двухсот линий беспозвоночных, способных делиться бесконечно и длительное время храниться при использовании современных методов криоконсервации (Mitsuhashi, 1989). Однако, в культивировании клеток морских беспозвоночных, которые составляют треть всего видового состава живых организмов, столь значительного прогресса до сих пор не достигнуто (Naganumaetal., 1994).

Получение постоянной клеточной линии из этих организмов позволило бы решить ряд проблем. Во-первых, отказаться от крупномасштабного отлова морских животных, многие из которых малочисленны и труднодоступны. Во-вторых, снять сезонные и географические ограничения в изучении морских объектов. В третьих, расширить возможности вирусологических и других исследований важных промысловых видов морских беспозвоночных. 6

Основные трудности, с которыми сталкиваются исследователи при культивировании клеток морских беспозвоночных: бактериальное и грибковое загрязнения, отсутствие подходящих питательных сред, а также недостаточная разработка условий, обеспечивающих высокую жизнеспособность клеток и стимулирующих их деление (Flan et al., 1996).

Известно, что успех в получении и поддержании культивируемых клеток в значительной мере зависит от выбора донорской ткани и стадии её развития. Эмбрионы и личинки морских беспозвоночных в этом отношении являются наиболее перспективным материалом, так как именно малодифференцированные клетки эмбрионов обладают значительным ростовым потенциалом. Кроме того, культуры клеток эмбрионов или личинок морских организмов являются хорошей моделью для анализа молекулярных и клеточных механизмов контроля раннего развития, личиночного морфогенеза, метаморфоза и роста (Morse, 1990, 1992).

В условиях in vitro реализация программ роста и дифференцировки в значительной степени зависит от состояния клеток и контролируется многими факторами, в том числе факторами, обеспечивающими клеточное прикрепление. Известно, что нормальные, нетрансформированные клетки позвоночных, как правило, не способны делиться в культуре без прикрепления к искусственному субстрату (Ham, Mckeehan, 1979; Ben-Ze'ev 1980, 1991; Lee et al., 1984; Goodman, 1987). Более того, прикрепление и/или распластывание также является необходимым условием для дифференцировки по крайней мере некоторых клеточных типов животных, в том числе и морских беспозвоночных (Okazaki, 1975; Kitajima, 1986; Naganuma et al., 1994; Исаева, 1994). Для осуществления этих процессов необходимо присутствие в жидкой среде, на субстрате или на клеточной поверхности адгезионных белков или гликопротеинов. Одним из ключевых направлений в получении перевиваемых культур клеток является поиск оптимальных субстратов и адгезионных факторов. В настоящее время экспериментально показано положительное 7 влияние некоторых адгезинов (коллагена, фибронектина) на прикрепление клеток морских беспозвоночных (Лебедев и др., 1990). В практике культивирования клеток морских организмов в качестве субстратов могут быть использованы не только «классические» адгезионные белки, но и тканевые жидкости и экстракты морских беспозвоночных, а также факторы адгезии, синтезируемые этими животными (Benedict, Picciano, 1989; Pinaev, 1993; Yamamoto, 1995). В последние годы возрос интерес к морским животным, как к источникам биологически активных веществ с широким спектром действия. Появились данные о подобных адгезионных и рост-стимулирующих факторах морских беспозвоночных и их использовании в клеточных культурах (Mathieu et al., 1988; Odintsova et al., 1993; Pinaev et al., 1993; Ogawa, Yamamoto, 1995). Японским исследователям удалось получить постоянную клеточную линию из асцидии благодаря использованию специфического лектина, обладающего антимикробным действием (Kawamura, Fujiwara, 1995). Подобные гликопротеины, обнаруженные в настоящее время во многих видах морских животных, являются своеобразной защитой от соматических мутаций для этих организмов (Исаева, 1996; Оводов, 1997). В последнее время лектины морских беспозвоночных используются в клеточных культурах как вещества,

•i? обладающие антисептической активность, а также как возможные стимуляторы роста и клеточной адгезии (Ozeki et al., 1991, 1995; Белогорцева и др., 1994; Yamazaki et al., 1997).

Заключение диссертации по теме «Эмбриология, гистология и цитология», Коптяева (Ермак), Анна Владимировна

ВЫВОДЫ

1. Проведён широкий скрининг различных субстратов, используемых при культивировании эмбриональных клеток моллюсков и иглокожих. Впервые определены субстраты, усиливающие как клеточное прикрепление, так и синтезирующую активность клеток. Для личиночных клеток моллюсков более эффективными факторами адгезии являются коллаген и полилизин, для клеток личинок иглокожих - фибронектин и полилизин.

2. Показано, что действие лектина, выделенного из тропической асцидии В1с1етпит 1егпа1апит, на адгезию и синтезирующую активность клеток личинок морских беспозвоночных зависит от стадии развития, на которой получены культуры. В клеточных культурах стерробластулы и бластулы лектин является фактором роста, увеличивая уровень синтеза нуклеиновых кислот и индекс меченых ядер. В культурах клеток более поздних, стадий развития лектин выступает как фактор адгезии, значительно усиливая прикрепление и стимулируя распластывание клеток.

3. Определенные типы клеток личинок моллюсков и иглокожих проявляют селективную адгезивность к используемым субстратам. Для клеточных типов личинок гребешка характерна некоторая избирательность прикрепления к коллагену и полилизину. Среди различных типов эмбриональных клеток морских ежей "микромеры" бластулы слабо прикрепляются ко всем субстратам, за исключением 1ШВ-пептида. В культуре клеток гаструлы "микромеры" проявляют наибольшую адгезивность к фибронектину, а "мезомеры" - к полилизину.

4. Различные адгезионные и ростовые факторы способны влиять на дифференцировку личиночных клеток морских беспозвоночных в однослойной культуре. В культурах клеток ранних стадий развития моллюсков и иглокожих преобладают клетки эпителиального типа. Инкубация клеток этих животных, полученных на поздних стадиях развития, с лектином БТЬ стимулирует

123 дифференцировку клеток мезенхимного типа. Клетки гаструлы морских ежей в процессе инкубации с БТЬ образуют синцитиоподобные структуры, что является характерной чертой диффиренциации клеток первичной мезенхимы. На дифференцировку клеток вторичной мезенхимы указывает появление пигмента в клетках, культивируемых на фибронектине.

5. Показано, что в отличие от клеток, полученных из тканей позвоночных, для эмбриональных клеток морских беспозвоночных распластывание не является определяющим фактором для запуска синтеза РНК. Увеличение синтезирующей активности отмечено как в распластанных, так и в сфероидных прикрепленных клетках.

124

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Коптяева (Ермак), Анна Владимировна, 1998 год

1. Альберте Б., Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М., Роберте К., Уотсон Дж. Молекулярная биология клетки. М.: Мир. 1994. Т. 3. С. 150-210.

2. Белогорцева Н.И., Оводова Р.Г., Мороз C.B., Одинцова H.A., Ермак A.B., Оводов Ю.С. Выделение и общая характеристика лектина из асцидии Didemnum ternatum / Биорган. химия. 1994. Т. 20. N 8-9. С. 973-985.

3. Бершадский А.Д., Гельфанд И.М. Механизмы реорганизации актинового цитоскелета при трансформации и нормализации клеток // Цитология. 1982. Т. 24, N 9. С. 1091-1092.

4. Васильев Ю.М., Гельфанд И.М. Взаимодействие нормальных и неопластических клеток со средой. М.: Наука, 1981. 220 С.

5. Вдовина И.Б. Гетерогенность популяции рецепторов эпидермального фактора роста в клетках А431 и их внутриклеточный процессинг // Автореф. канд. дисс. 1993. С. 17.

6. Вознесенский В.Ю., Одинцова H.A. Оптимальная среда для культивирования клеток морских беспозвоночных // В: Сборник тезисов III Всесоюзной конференции "Культивирование клеток животных и человека". Пущино, 1990. С. 80.

7. Гелыптейн В. И. Ультраструктурные особенности опухолеродных и неопухолеродных культур клеток печени серии IAR по данным растровой электронной микроскопии // Цитология. 1981. Т.23, № 5. С. 510-515.

8. Дерикот И.В., Блинова М.И. Культивирование in vitro соматических клеток морских моллюсков и иглокожих (Методологические подходы) // Биол. моря 1982. Т. 1.С. 59-61.125

9. Дзюба С.М. Гемальная система гребешка как индекс физиологического состояния моллюска // Тезисы Всесоюзной конференции "Промысловые беспозвоночные" 1990. Минск. С. 110-111.

10. Дьяконова М.Ю. Интернализация и внутриклеточный процессинг рецепторов ростовых факторов // Автореф. канд. дисс. 1993. С. 16.

11. Заварзин A.A. Основы сравнительной гистологии. Изд-во ЛГУ. 1985. 400 С.

12. Евгеньева Т.П. Межклеточные взаимодействия и их-роль в эволюции. М.: Наука. 1976. 223 С.

13. Ермак A.B., Одинцова H.A. Возможные пути клеточного роста и дифференцировки в первичных клеточных культурах эмбрионов морских ежей // Биол. моря. 1996. Т. 22, N 6. С. 371-377.

14. Иванова-Казас О.М. Эволюционная эмбриология животных. С.-Петербург. Наука. 1996. 565 С.

15. Игудин Л.И., Орлов С.Д., Коцпельсон Н.В., Маркмон А. Связь между составом сыворотки крупного рогатого скота и её способностью стимулировать рост//Цитология. 1983. Т. 25, № 10. С. 1216-1217.

16. Исаева В.В. Модуляция фенотипа мышечных клеток куринного зародыша в суспензионной культуре // Онтогенез. 1979. Т. 10. N 6. С. 621-626.

17. Исаева В.В. Дифференциация клеток бластулы морского ежа Strongylocentrotus nudus в однослойной культуре // Биол. моря. 1980. Т. 2. С. 52-56.

18. Исаева В.В. Спикулогенез в культуре клеток бластулы морского ежа Strongylocentrotus nudus II Цитология. 1981. Т. XXIII, № 6. С. 707-710.

19. Исаева В.В., Чуриков Д.Ю. Влияние цитохалазина и колхицина на морфологическую экспрессию спикулогенеза в дифференцирующейся культуре клеток эмбрионов морского ежа // Онтогенез. 1988. Т. 19, № 6. С. 266-234.

20. Исаева В.В. Клетки в морфогенезе. М.: Наука. 1994. 223 С.126

21. Исаева В.В., Подгородная О.И. Поведение гемоцитов гребешка Patinopecten yessoensis в первичной культуре // Цитология. 1984. Т. 26, № 10. 1151-1155.

22. Кафиани К.А., Костомарова A.A. Информационные макромолекулы в раннем развитии животных. М.: Наука. 1978. 337 С.

23. Керкис А.Ю., Исаева В.В. Электронно-микроскопическое исследование спикулогенеза в культуре эмбриональных клеток морского ежа Strongylocentrotus nudus И Онтогенез. 1984. Т. 15, № 1. С. 34-40.

24. Колокольцева Т.Д., Герасимова Н.Г., Царева A.A. Новая линия клеток яичников куколок хлопковой совки Heliothis armígera (HUBN) // Вопросы вирусологии. 1995. Т. 3. С. 135-138.

25. Коренбаум Е.С. Защито-морфологические реакции целомоцитов морской звезды Asteria amurensis II Кандидатская диссертация. 1988. 146 С.

26. Королёв Н.П. Функции лектинов в клетках // Итоги науки и техники. Общие проблемы физико-химической биологии. М. 1984. Т. 1. С. 39-47.

27. Купер Э. Сравнительная иммунология. М.: Мир. 1980. 156 С.

28. Лахтин В. М. Биотехнология лектинов // Биотехнология. 1989. Т. 5.676.687.

29. Лебедев Д.А., Авояц Р.К., Истранов Л.П. Влияние коллагеновых подложек на культивирование клеток // Успехи современной биологии. 1990. Т. 109. № 2. С. 293-301.

30. Линевич Л.И. Лектины и углевод-белковое узнавание на разных уровнях организации животного // Успехи биол. химии. 1979. Т. 20. С. 71-94.

31. Лоенко Ю.Н., Глазкова В.Е., Артюхов A.A., Михайлов В.В., Курика A.B., Оводова Р.Г., Руцкова Т.А. // Изучение и применение лектинов : Учен. зап. Тартуского университета. 1989. Т.1. 145 С.127

32. Лоенко Ю.Н., Глазкова В.Е., Артюхов A.A., Оводова Р.Г. Лектины морских беспозвоночных // Успехи современной биологии. 1992. Т. 12, № 5-6. С. 785-794.

33. Луцик А.Д., Детюк Е.С., Луцик М.Д. Лектины в гистохимии // Из. Выща школа. 1989. 180 С.

34. Оводов Ю.С., Павленко А.Ф., Мороз C.B. Онкопреципитин с высокойспецифичностью к трофобласт-специфическому *ßl- гликопротеину // ДАН СССР. 1989. Т. 305, N 5. С. 1256-1258.

35. Оводов Ю.С. Химия иммунитета. Сыктывкарский университет. 1997. 159 С.

36. Одинцова H.A., Нестеров A.M., Корчагина Д.А. Ростовой фактор из тканей морского моллюска Mytilus edulis И Цитология, 1992. Т. 34. С. 94-100.

37. Одинцова H.A., Мороз C.B., Ермак A.B., Павленко А.Ф. Влияние трофобласт-специфического bl-гликопротеина и онкопреципитина А на рост и морфологию опухолевых клеток линии HeLa-MИ Цитология. 1997. Т. 39, N 4/5. С. 273-277.

38. Одинцова H.A., Белогорцева Н.И., Ермак A.B., Лукьянов П.А. Новый адгезивный и ростовой фактор для клеток морских беспозвоночных // Доклады РАН. 1998, в печати.

39. Павленко А.Ф., Одинцова H.A., Мороз C.B., Оводов Ю.С. Изменение цитоскелета некоторых опухолевых клеток после обработки онкопреципитином А и трофобласт-специфическим b-гликопротеином // Экспериментальная онкология, 1992. Т. 1. С. 61-64.

40. Полевщиков A.B. Лектины в защитных реакциях беспозвоночных // Журнал общей биологии. 1997. Т. 57, № 6. С. 718-739.

41. Ровенский Ю.А. Растровая электронная микроскопия нормальных и опухолевых клеток. М.: Медицина. 1979. 150 С.

42. Ройт А. Основы иммунологии. М.: Мир. 1991. 323 С.128

43. Рудников Н.И., Пичугина Т.Д. Испытание сыворотки крови разных видов теплокровных животных при выращивании перевиваемых культур рыб // Всесоюзное совещание по паразитологии и болезням рыб. Астрахань. 1985. С. 121-122.

44. Светличная C.B., Свиткина Т. М. Изменения актинового цитоскелета некоторых линий трансформированных фибробластов // Цитология. 1988. Т. 3, № 4. С. 1231-1237.

45. Свиткина Т.М., Каверина И.Н. Нарушение актинового цитоскелета в трансформированных эпителиальных тканях//Цитология. 1989. Т. 12,3. С. 1441-1447.

46. Сейц И.Ф. Молекулярные механизмы превращения протоонкогенов в онкогены // Экспериментальная онкология. 1986. Т. 8, № 4. С. 3-11.

47. Спирин A.C. Спектрофотометрическое определение общего количества нуклеиновых кислот // Биохимия. 1958. Т. 23. С. 656-662.

48. Ушева Л.Н., Лейбсон Н.Л. Митотический цикл клеток кишечного эпителия гребешка Mizuchopectenyessoensis II Цитология. 1988. T. ХХХ.С. 554-558.

49. Фонталин Л.Н. Проблема происхождения иммунной системы позвоночных животных // Иммунология. 1988. № 3. С.

50. Фридман С., Скехан Ф. Малигнизация и клеточная поверхность // Трансформированная клетка. 1985. С. 71-133.

51. Хэм А., Корман Д. Гистология. 1982. М.:Мир. Т. 1. 272 С.

52. Хребтукова И.А. Зависимость характера перераспределения поверхностных рецепторов у клеток А 431 от природы лиганда и организации актинового цитоскелета // Автореф. канд. дисс. 1991. С. 20.

53. Худолей В.В., Сиренко O.A. Опухоли в моллюсках // Успехи соврем, биологии. 1977. T.85,N4. С. 128-137.129

54. Akiyama S.K., Johnson M.D. Fibronectin inevolution : presence in invertebrates and isolation from Microcina porifera I I Comp. Biochem. Physiol. 1983. V. 76B. P. 687-694.

55. Alliegro M.C., Alliegro M.A. The structure and activities of echinonectin: a developmentally regulated cell adhesion glycoprotein with galactose-specific lectin activity// Glycobiology. 1991. V. 1. P. 253-256 .

56. Auzoux S., Domart-Coulon I., Doumenc D. Gill cell culture of the buterfish clam Ruditapes decussatus II J. Mar. Biotechnol. 1993V. 1. P. 79-81.

57. Avichezer D., Gilbaa-Garler N. Antitumoral effect of Pseudomonas aeruginosa lectin on lewis lung carcinoma cells cultured in vitro without and with murin splenocytes II Toxicon. 1991. V. 29, № 11. P. 1305-1313.

58. Beck, G., Vasta, G.R., Marrchaalonis, J.J., Habicht, G.S. Characterization of interleukin-1 activity in tunicates. // Comp. Biochem. Physiol. 1989. V. B 92. P. 93-98.

59. Belogortseva N., Molchanova V., Glazunov V., Evtushenko E., Luk'yanov P.

60. N-acetylglucosamine -specific lectin from the ascidian Didemnum ternatum II Biochim. Biophys. Acta. 1998. V. 1380. P. 249-256.

61. Benedict C., Picciano P. Adhesives from marine mussels // In : Adhesives from renewable resources. American chemical socirty, Washington DC. 1989. P.465-483.

62. Ben-Ze'ev A., Farmer S.R., Penman Sh. Protein synthesis requires cell-surfase contact while nuclear events respond to cell shape in anchorage-dependent fibroblasts // Cell. 1980. V. 21. P. 365-372.130

63. Ben-Ze'ev A. Animal cell shape changes and gene expression // Bioassays. 1991. V. 13. P. 207-212.

64. Ben-Ze'ev A. Cytoarchitecture and signal transduction // Crit. Rev. Eukaryotic Gene Expression. 1992. V. 2. P. 265-281.

65. Bisgrove B.W., Andrews M.E., Raff R.A. Fibropellins, products of an EGF repeat-containing gene, form a unique extracellular matrix structure that surrounds the sea urchin embryo // Dev. Biol. 1991. V. 146. P. 89-99.

66. Bisgrove B.W., Raff R.A. The SpEGF III gene encodes a member of the fibropellins: EGF repeat containing proteins that form the apical lamina of the sea urchin embryo // Dev Biol. 1993.1 V. 57, № 2. P. 526-538.

67. Bishop J.M. The molecular genetic of cancer // Science. 1987. V. 235. P. 305-311.

68. Bishop J.M. Molecular themes in oncogenesis // Cell. 1991. V. 64. P. 235-248.

69. Bissel M.L., Hall H.G., Parry G. How does the extracellular matrix direct gene expression ? II J. Theor. Biol. 1982. V. 99. P. 31-68.

70. Blinova M.I., Goryunova L.B., Leibson N.L. Cell culture of regenerating tissues ofthe sea cucumber Stichopus japonicus II J. Biologiya Morya. 1993. № 2. P. 84-91.

71. Bocrus B.J., Stiles C.D. Regulation of cytoskeletal architecture by platelet-derived growth factor, insulin and epidermal growth factor // Exp. Cell Res. 1984. V. 151, № l.P. 186-197.

72. Booth C., Evans G.C., Potten C.S. Growth factor regulation of proliferation in primary culture of small intestinal epithelium // In vitro Cell. Dev. Biol. 1995. V. 31. P. 234-243.

73. Brachet J., Denis H. Effects of actinomicun D on morphogenesis // Nature (London). 1963. V. 198. P. 205-206.

74. Bretting, H., Phillips, S.G., Klumpart, H.J., Kabat, E.A. A mitogenic lactose-binding lectin from the sponge Geodia cydonium II J. Immunol. 1981. V. 127. P.1652-1658.131

75. Brewster, F., Nicholson, B.L. In vitro maintenance of amoebocytes from the American oyster Crassostrea virginica.il J. Fish Res. Board. Can. 1979. V. 36, №4. P. 461-467.

76. Brillouet, C., Leclerc, M., Panijel, J., and Binaghi, R. In vitro effect of various mitogens on starfish (Asterias rubens) axial organ cells // Cell. Immunol. 1981. V. 57.P.136-144.

77. Brinkley B.R. The cytoskeleton: regulating and maintaining of cell shape // Methods Cell Biol. 1982. V. 24. P. 1-8.

78. Brown C.H. Protein skeletal materials in invertebrates // Exp. Cell Res. 1949. V. 1. P. 351-355.

79. Brown C.H. Some structural proteins of Mytilus edulis II Quarterly J. Of Micrscopical Sci. 1952. V. 93. P. 487-502.

80. Burch, J.B., Guadros, C. A culture medium for snail cells and tissues // Nature 1965. V. 206. P. 637-638.

81. Burdsal C.A., Alliegro M.C., McClay D.R. Tissue-specific, temporal changes in cell adhesion to echinonectin in the sea urchin embryo // Develop. Biol. 1991. V. 144. P. 327-334.

82. Burnett A.L., Ruffing F.E., Zongker J., Necco A. Growth and differentiation of Tubularia cells in a chemically defined physiological medium // J. Embryol. Exper. Morphol. 1971. V. 20. P. 73-80.

83. Canesi L., Ciacci C., Orunesu M., Gallo G. Effects of epidermal growth factor on isolated digestive gland cells from mussels {Mytilus galloprovincialis Lam.) // Gener. Compar. Endocrinol. 1997. V. 107. P. 221-228.

84. Cecil J.T. Mitoses in cell cultures from cardiac tissue of the surf clam Spisula solidissima II J. Invertebr. Pathol. 1969. V. 14, № 3. P. 407-410.

85. Chen S.N., Chi S.C., Kon G.H., Liao I.C. Cell culture from of grass prawn, Penaeus monodon II Fish Patol. 1986. V.21. P.161-166.132

86. Chen S.N., Kon G.H. Infection of cultured cells from the lymphoid organ of Penaeus monodon fadricius by monodon-type bacubovicus (MBV) // S. Fish Dis. 1989. V.12.P.73-76.

87. Cheng T.C., Bayne Ch. Phisiology and biochemistry of molluscs // TCA Report. 1979. V. 13. P. 19-20.

88. Crossin K. Morpholegulatory molecules and selectional dynamics during development// International Review of Neurobiology. 1994. V. 37. P. 53-73.

89. Dan-Sohkawa M., Fujisawa H. Cell dynamics of the blastulation process in the starfish, Asterina pectinifera II Dev. Biol. 1980. V. 77, №2. P. 328-339.

90. Dan-Sohkawa M., Yamanaka H., Watanabe K. Reconstruction of bipinnaria larvae from dissociated embryonic cells of the starfish, Asterina pectinifera II J. Embryol. Exp. Morphol. 1986. V. 94. P. 47-60.

91. Dan-Sohkawa M., Kaneko H. Sorting out presumptive stomach cells of the starfish emdryo // Dev. Growth Diff. 1989. V. 31. P. 503-508.

92. Davidson E.H Understanding embryonic developmen : A contemporary view // Amer. Zool. 1987. V. 27. P. 581-591.

93. Davidson E.H. Lineage-specific gene expression and the regulation capacities of the sea urchin embryo : A proposed mechanism // Dev. 1989. V. 105. P. 421445.

94. Dedhar S., Ruoslahty E., Pierschbaener M.D. A cell surface receptor complex for collagen type 1 recognizes the Arg-Gly-Asp sequence // J. Cell Biol. 1987.V. 104. P. 585-593.

95. Doillon C.J., Wasserman A.J., Berg R.A. Behaviour of fibroblasts and epidermal cells cultivated on analogues of extracellular matrix // Biomaterials. 1988. V. 9. P. 91-96.

96. Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1984. V. 81. № 5. P. 1460-1464. Edelman G.M. Cell adhesion and molecular processes of morphologenesis //

97. Annu. Rev. Biochem. 1985a. V. 54. P. 135-169. Edelman G.M. Modulation mechanisms in cell-cell recognition // Trends

98. Pharmacol. Sci. 1985b. V. 6, № 3. P. 208-214. Ellis, L.L., Brodey, M.M., Bishop, S.H. Preparation of cell culture from Oyster

99. Flandre O. The culture of molluscan cells // In: Invertebrate Tissue culture. 1974.

100. Maramorosch, K. (ed.). N.Y., Acad. Press. V. LP. 361-363. Frank U., Rabinowitz C., Rinkevich B. In vitro establishment of continuous cell cultures and cell line from ten colonial cnidarians // Marine Biology. 1994. V. 120. P. 491-499.

101. Freshney R.I. Culture of animal cells // A manual of basic technique. Alan R. Liss, New York. 1987.

102. Folkman J., Moscona A. Role of cell shape in growth control // Nature. 1978. V. 273. P. 345-349.

103. Friedman S.J., Galuszka D., Gedeon J., Dewar C.L., Srehan P., Heckman C.A. Changes in Cell-Substratium Adhesion and Nuclea Cytockeletal Anchorage during Cytodifferentiation of BeWo Choriocarcinoma Cells // Exp. Cell Res. 1984. V. 154. P. 386-393.135

104. Fryer S.C., Hull C.J., Bayne C.J. Phagocytosis of yeast by Biomphalaria glabrata II Dev. Comp. Immunol. 1989. V. 13, № 1. P. 9-16.

105. Giga Y., Ikai A., Takahashi K. The complete amino acid sequence of echinoidin, a lectin from the coelomic fluid of the sea urchin Anthocidaris crassispina. Homologies with mammalian and insect lectins // J. Biol. Chem. 1987. V. 262. P. 197-6203.

106. Godfrey H.P., Angadi C.V., Wolstencroft R.A., Bianco C. Localisation of macrophage agglutination factor activity to the gelatin-binding domain of fibronectin // J. Immunol. 1984. V. 133, № 3. P. 1417-1423.

107. Goetschy J.-F., Ulrich G., Aunis D., Ciesielski-Treska J. Fibronectin and collagens modulate the proliferetion and morfology of astroglial cells in culture // Int. J. Dev. Neuroscience. 1987. V. 5, № 1. P. 63-70.

108. Goldstein I.J., Hughes R.C., Monsigny M., Osawam T., Sharon N. What should be called a lectin ? // Nature. 1980. V. 285, № 5760. P. 66.

109. Goodman S.L., Deutzmann R., Von der Mark K. Two distinct cell-binding domains in laminin can independently promote nonneuronal cell adhesion and spreading II J. Cell Biol. 1987. V. 105. P. 589-598.

110. Grace T.D.C. The morphology and phisiology of cultured invertebrate cells // In : Invertebrate tissue culture. 1971. Vago C. (ed.). V. 1. P. 172-208.

111. Grove R.I., Pratt R.M. Influence of epidermal growth factor and ciclic AMP in growth and differentiation of palatal epithelial cells in culture // Dev. Biol. 1984. V. 106, № 2. P. 427-437.

112. Gruber D.F., Jayme D.W. Cell and tissue culture media : History and terminology // Cell Biology : A Laboratory Handbook. 1994. P. 451 -458.

113. Gurdon J.B. The control of Gene Expression in Animal Development. Cambrige, Harvard University Press. 1974. 134 P.

114. Gustafson T., Wolpert L. The cellular basis of morphogenesis in the sea urchin embryo development // Int. Rev. Cytol. 1963. V. 15. P. 139-214.136

115. Gustafson T. Cellular behavior and cytochemistry in early stages of development // The sea urchin embryo ( Berlin, Springer). 1975. 231-266.

116. Hakomori S. Biochemical basis and clinical application of tumor-associated carbohydrates antigen. Current trends and future perspectives // Gan to Kagaku Ryoko. 1989. V. 16, pt. 2. P. 702-714.

117. Ham R.G., Mc. Keehan W.L. Media and growth requirements // In: Methods in Enzymology. 1979. Jacoby W.B., Pastan I. H. (eds.). N.Y., Acad. Press. V. 58, P. 44-47.

118. Hansen E.L. A cell line from embryos of Biomphalaria glabrata : Establishment and characteristics // Invertebrate tissue culture: Research application. 1976. P. 75-98.

119. Hansen E.L. Needs for a molluscan cell culture system // TCA Rept 1979. V. 13. P. 21-22.

120. Hardin J., McClay D.R. Target recognition by the archenteron during sea urchin gastrulation // Dev. Biol. 1990.V. 142. P. 87-105.

121. Hardin J. Target recognition by mesenhyme cells during sea urchin gastrulation // Amer. Zool. 1995. V. 35. P. 358-371.

122. Hardin J. The cellular basis of sea urchin gastrulation // Curr. Topics in Dev. Biol. 1996. V. 33. P. 159-262.

123. Heacox A.E., Fisher, A., Frangerberg, H.R. Development of a medium for in vitro culture of oocytes from the polychaete Nereis virens II In vitro. 1983. V.19, № 11. P. 825-832.

124. Hetrick F.M., Stephens E., Lomax N., Luttrell K. Attempts to develop a marine molluscan cell line // Methods of cell culturation (Maryland). 1981. P. 1-81.

125. Hohn H-P., Denker H-W. The role of cell shape for differentiation of choriocarcinoma cells on extracellular matrix // Exp. Cell Res. 1994. V. 215. P. 40-50.137

126. Hohn H-P., Steih U., Denker H-W. A novel artificial substrate for cell culture: effects of substrate flexibility/malleability on cell growth and morphplogy // In vitro Cell. Dev. Biol. 1995. V. 31 A. P. 37-44.

127. Holland N.D. Cell cycle in regenerating feather star arms // In: Echinoderms through time/ David B., Guille A., Feral J.P., Roux M. (eds). Rotterdam: A.A. Balkema, 1994.P. 217-220.

128. Hursh D.A., Andrews M.E., Raff R.A. A sea urchin gene encodes a polypeptide homologous to epidermal growth factor// Science. 1987. V. 237. P. 1487-1490.

129. Humphries M.J., Olden K., Yamada K.M. Sciece. 1986. V. 233. P. 467.

130. Hynes R.O. Molecular biology of fibronectin // Annu. Rev. Cell. Biol. 1985. V.l. P. 67-90.

131. Kabakoff B., Lennarz W.J. Ingibition of glycoprotein processing blocks assembly of spicules during development of sea urchin embruo // J. Cell Biol. 1990. V. Ill, №2. P. 391-400.

132. Kaneko H., Kawahara Y., Dan-Sonkawa M. Primary culture of mesodermal and endodermal cells of the starfish embryo // Zoolog. Sci. 1995. V. 12. P. 551-558.

133. Kaneko H., Kawahara Y., Okamoto M., Dan-Sonkawa M. Study on the nature of starfish larval muscle cells in vitro II Zoolog. Sci. 1997. V. 14. P.287-296.

134. Katow H., Yamada K.M., Solursh M. Occurrence of fibronectin on the primary mesenchyme cell surface during migration in the sea urchin embryo // Differentiation. 1982. V. 1, № 22. P. 120-124.138

135. Katow H. Behavior of sea urchin primary mesenchyme cells in artificial extracellular matrices // Exp. Cell Res. 1986. V. 162. P. 401-410.

136. Katow H., Yazawa S., Sofuku S. A fibronectin-related synthetic peptide, Pro-Ala-Ser-Ser, inhibits fibronectin binding to the cell surface, fibronectin-promoted cell migration in vitro, and cell migration in vivo II Exp. Cell Res. 1990. V. 190. P. 17-24.

137. Kawamura K., Fujiwara S., Sugino Y.M. // Budding-specific lectin induced in epitelial cells is an extracellular matrix component for stem cell aggregation in tunicates // Development. 1991. V. 113. P. 995-1005.

138. Kawamura K., Fujiwara S. Establishment of cell lines from Multipotent Epithelial Sheet in the Budding Tunicate, Polyandrocarpa misakiensis II Cell structure and function 1995. V.20. P. 97-106.

139. Kitajima T., Okazaki K. Spisule formation in vitro by the descendants of precocious micromere formed at the 8-cell stage of sea urchin embryo // Develop., Growth and Differ. 1980. V. 22. № 3. P. 265-279.

140. Kitajima T., Matsuda R. Specific protein synthesis of sea urchin micromers during differentiation // Zoological magazine. 1982. V. 91. P. 200-205.

141. Kitajima T. Differentiation of sea urchin micromeres: correlation between specific protein synthesis and spicul formation // Develop., Growth and Differ. 1986. V. 28, № 3. P. 233-242.

142. Klautau M., Custodio M.R., Borojevic R. Cell cultures of sponges Clathrina and Polimastia II In vitro. 1993. V. 29 A. P. 97-99.

143. Kleinschuster S.J., Parent J., Walker C.W., Larley C.A. A cardiae cell line from Mya arenaria II J. Of Shell Res. 1996. V. 15, № 3. P. 695-707.

144. Knudsen K.A. Cell adhesion molecules in miogenesis // Curr. Opin. Cell Biol. 1990. V.2.P. 905-906.139

145. Kolega J. Effect of mechanical tension on protrusive activity and microfilament and intermediate filamente organization in an epidremal epithelium moving in culture // J. Cell Biol. 1986. V. 102, № 4. P. 1400-1411.

146. M.F., Stewart J.E., Drinnan R.E. In vitro cultivation of cells of the oyster Crassostrea virginica II J. Fish Res. Board. Can. 1966. V. 23, № 4. P. 595-599.140

147. Ma C., Collodi P. Culture of cells from tissues of adult and larval sea lamprey // Cytotechnology. 1996. V. 21. P. 195-203.

148. Machii A, Wada K.T. Some marine invertebrate tissue culture // In: Mitsuhashi J. (ed.) Invertetebrate cell system in application. 1989. CRC Press, Boca Raton, FL.V. 1.

149. Mafranga V., Di Ferro D., Cervello M., Zito F., Nakano E. Adhesion of sea urchin embryonic cells to substrata coated with cell adhesion molecules // Biol. Cell. 1991. V. 1, N 71. P. 289-291.

150. Maramorosch K. Invertebrate tissue culture: research applications. 1976. Acad. Press. New York.

151. Marquardt H., Hun Kapiller M.W., Hood L.E., Todaro G.J. Rat transforming growth factor type I: structure and relation to epidermal growth factor // Science. 1984. V. 223. P.1079-1082.

152. Mathieu M., Lenoir F., Robins J. A gonial mitosis-stimulating factor in cerebral ganglia and hemolymph of the marine mussel Mitylus edulis L. // General and Comparative Endocrinology. 1988. V. 72. P. 257-263.

153. McCarthy R.A., Spiegel M. Serum effects on the in vitro differentiation of sea urchin micromers // Exp. Cell Res. 1983. V. 149, № 2. P. 433-441.

154. McClay D.R., Fink R.G. Sea urchin hyalin: Apperance and function in developmen // Develop. Biol., 1982. V. 92. P. 285-293.

155. McClay D.R., Ettensohn C.A. Cell adhesion in morphogenesis // Ann. Rev. Cell Biol. 1987. V.3. P. 319-345.

156. McDonald. Matrix regulation of cell shape and gene expression // Curr. Opin. Cell. Biol. 1989. V. 1. P. 995-999.

157. Mclntost L.C., Muchersic L., Forrester J.V. Retinal capillary endothelial cells preper different substrates from growth and migration // Tissus and cell.1988. V. 20, №2. P. 193-209.141

158. Mc Keehan W.L., Ham R.G. Stimulation of clonal growth of normal fibroblasts with substrata coated with basic polymers // J. Cell Biol. 1976. V. 171. P. 727734.

159. Mc Keehan W.L. Growth factors spawn new cell cultures // Nature. 1986. V. 321. P. 629-630.

160. Melrose G.R., O'Neill M.C., Sokolove P.G. Male gonadotropic factor in brain and blood of photoperiodically stimulated slugs // Gen. Comp. Endocrinol. 1983. V. 52. P. 319-328.

161. Metcalf T., Wolf K. Molluscan cell culture workshop revieus past progress and future goals // TCA report. 1979. V. 13. P. 22-23.

162. Micher-Sture A. Role of medium and substratum on proliferation of astroglia in vitro II Cell Biol. 1987. V. 97. P. 255-264.

163. Mijachi Y., Iwata M., Sato H., Nakano E. Effect fibronectin on cultured cells derived from isolated micromers of the sea urchin, Hemicentrotus pulcherrimus II Zoological sci., 1984. V. 1. P. 265-272.

164. Millonig G. Blastomere reaggregation // The sea urchin embryo (Berlin, SpringerVerlag). 1975. P. 407-423.

165. Mitsuhashi J. Media for unsect cell culture // Advances in cell culture. 1982. V. 2. P. 133-196.

166. Mitsuhashi J. (ed) Invertebrate cell system application. 1989. V.l, II. Boca Raton, FL: GRC Press.

167. Montreuil J. Primary structure of glycoprotein glycans // Chem. Boihem. 1980. V. 37. P. 157-223.

168. Morgan D.M.L., Clovel J. Pearson J.D. Effects os synthesis polycations on leucine incorporation, lactate dehydrogenase release, and morphology of human umbilical veun endothelial cells // J. of Cell Science. 1988. V. 91, № 2. P. 231238.142

169. Nikolaenko N.S., Odintsova N.A.,Voznesensky Y.Yu. The influence of medium composition and proliferation stimulators on cultivated cells of Patinopecten yessoensis II In: Collection of abstracts of 41 Annual ETCS Meeting. Verona, Italy, 1994. P. 66.

170. Odintsova N.A., Khomenko A.V. Primary cell culture from embryos of the Japanese scallop Mizuchopecten yessoensis (Bivalvia) // Cytotechnology. 1991. V. 6. P. 49-54.

171. Odintsova N.A., Nesterov A.M., Korchagina D.A. A growth factor from tissues of the mussel Mytilus edulis II Comp. Bioch. Physiol. 1993. V. 105A, № 4. P. 667-671.

172. Odintsova N.A., Ermak A.V., Tsal L.G. Substrate selection for long-termcultivation of marine invertebrate cells // Comp. Bioch. Physiol. 1994. V. 107 A, № 4. P. 613-619.

173. Odintsova, N.I. Belogortseva, A.V. Ermak, V.I. Molchanova, P.A. Luk'yanov. Adhesive and growth properties of lectin from the ascidian Didemnum Ternatanum on cultivated marine invertebrate cells // Biochem. Biophys. Acta. 1998, in press.

174. Ogawa T., Yamamoto H. Preparetion of antifouling surfaces toward blue mussels. 1995. In : Annual Meeting of 4th Marine Biotechnology. P. 106B.143

175. Okazaki K. Normal development to metamorphosis // The sea urchin embryo

176. Berlin, Springer-Verlag). 1975 a . P. 117-232. Okazaki K. Spicule formation by isolated micromeres of the sea urchin embryo //

177. Amer. Zool., 1975 b. V.15. P. 567-582. Opas M., Dziak E. Adhesion, spreeding and proliferation of cells on protein carperts: effects of stability of a carpet // In vitro Cell Dev. Biol. 1991. V. 27A.P. 878-885.

178. Exp. Cell Res. 1992. V. 203, № 2. P. 305-311. Pardoll D.M. Tumor antigens: a new look for the 1990s // Nature. 1994. V. 369. P. 357-358.

179. Collection of abstracts of 39th Conferance of ETCS. Krakov, Poland. 1991. P.23.

180. Pinaev G.P., Blinova M.I., Korenbaum E.S., Odintsova N.A., Yudin Yu., Schelud'ko N.S. Cell cultures of marine invertebrates: problems and perspectives // In: Collection of abstracts of 40th Conferance of ETCS. Rennes, France. 1993. P. 30.

181. Pistol T.G. Broadspectrum bacterial agglutinatig activity in the serum of the horseshoe crab, Limulus polyphemus II Dev. Comp. Immunol. 1978. V. 2, № 1. P. 65-76.

182. Pollack R., Osborn M., Weber K. Patterns of organization of actin and myosin in normal and transformed cultured cells // Proc. Nat. Acad Sci. USA. 1975. V. 72. P. 994-998.

183. Pomponi S.A., Willoughby R., Kaighn M.E., Wright A.E. Development of techniques for in vitro production of bioactive natural products from marine sponges // Invertebrate cell culture. Novel directions and biotechnology applications. 1997. P. 231-237.

184. Raftos D.A., Cooper E.L. Proliferation of limphocyte-like cells from the solitary tunicate, Styela clava, in response of allogenetic stimuli // J. Exp. Zool. 1991. V. 260, № 3. P. 391-400.

185. Rannon M. Cell culture of invertebrates other then molluscs and arthropods // In: Invertebrate tissue culture. 1971. Vago C. (ed.). V. 1. P. 385-407.

186. Rinkevich B., Weissman I.L. Chimeras in colonial ibvertebrates : a synergistic symbiosis or somatic and germ cell parasitism // Symbiosis. 1987. V. 4. P. 117134.

187. Rinkevich B., Rabinowitz C. In vitro culture of blood cells from the colonial protochordate Botryllus schlosseri I I In vitro Cell Dev. Biol. 1993. V. 29 A. P. 79-85.

188. Rinkevich B., Rabinowitz C. Acquiring embryo-derived cell cultures and aseptic metamorphosis of larvae from the colonial protochordate Botryllus schlosseri //Invertebrate reproduction and development. 1994. V. 25. P. 59-72.

189. Robinson J.J. Comparative biochemical analysis of sea urchin peristome and rat tail tendon collagen // Compar. Bioch. and Physiol. B.-Bioh. and Molec. Biol. 1997. V. 117, №2. P. 307-313.

190. Rosenthal J., Diamant A. In vitro primary cell culture from Penaeus semisulcatus II Pathology in marine science. San Diego: Academic Press.1990. P.7-13.

191. Ruoslahti E., Pierschbacher M.D. New perspectives in cell adhesion: RGD and Integrins // Science 1987. V. 238. P. 491-497.

192. Sano K. Changes in cell surface charges during differentiation of isolated micromeres and mesomeres from sea urchin embryos // Develop. Biol. 1977. V. 60. P. 404-415.

193. Salomon D.S., Liotta L.A., Kidwell W.R. Differential response to growht factor by rat mammary epithelium plated jn different collagensubstrata in serum-free medium//Proc. nat. Acad. Sci. U.S.A. 1981. V. 78. P. 382-386.

194. Sayer N.E., Butler M., Macleod A.J. The attarchment of MDCK cells to three types of microcarriezs of different serum-free media // Cell technol. 1987. P. 264-279.146

195. Singer S.J., Kupfer A. The directed migration of eukaryotic cells // Annu. Rev.

196. Cell Biol. 1986. V. 2. P. 337-365. Singer S.J. Intercellular communication and cell-cell adhesion // Science. 1992. V. 255.P. 1671-1677.

197. Tanabe J., Fujita H., Ivamatsu A., Mohri H., Ohkubo T. Fibronectin ingibis platelet aggregation independently of RGD-sequence // J. Biol. Chem. 1993. V. 268. P. 27143-17147.147

198. Tamarin A., Lewis P., Askey J. The structure and formation of the byssus attachment plaque in Mytilus // J. of morphology. 1976. V. 149. P. 199-220.

199. Thiery J.P., Duband J.L., Dufour S., Boyer B., Tucker G.C., Valles A.-M., Gavrilovic J., Moens G., Jouanneau J. Adhesion and motility of embryonic and cancer cells // J. Cell Biochem. 1990. Suppl., 14 A. P. 141.

200. Tosi L., Aniello F., Geraci G., Branno M. DNA methyltransferase activity in the early stages of a sea urchin embryo Evidence of differential cjntrol // FEBS Letters. 1995. V. 361. P. 115-117.

201. Vasta G.R., Cheng T.C., Marchalonis, J. A lectin on the Hemocyte Membrane of the Oyster (Crassostrea virginica) // Cell. Immunol. 1984. V.88. P. 475-488.

202. Vasta G.R., Ahmed H., Fink N.E., Ecola M.T., Marsh A.G., Snowden A., Odom E.W. Animal lectins as self/non-self recognition molecules. // Ann. NY. Acad. Sci. 1994. V.712. P.55-73.

203. Venkatasubmanian K., Solursh M. Adhesive anf migratory behavior of normal and sulfate-deficient sea urchin cells in vitro I I Exsp. Cell Res. 1984. V. 154. P. 421-431.

204. Venuti J.M., Gan L., Kozlowski M.T., Klein W.H. Developmental potential of progenitors and the myogenic factor SUM-1 in the sea urchin embryo // Mech. Dev. 1993. V. 41, № l.P. 3-14.

205. Wagner G., Wyss D. Cell surface adhesion receptors // Curr. Opin. in Structual Biol. 1994. V. 4. P. 841-851.

206. Waite J.H., Tanzer M.L. The adhesive of Mytilus byssus : a protein containing L-Dopa // Bioch. and Bioph. Res. Communication. 1980. V. 96. P. 1554-1561.

207. Watt F.M. Cell culture models of differentiation // FASEB J. 1991. V. 5. P. 287294.

208. Whitfield J.F., Perns A.D., Dissolution of the condensed chromatin structures of isolated thymocyte nuclei and the disruption of deoxyribonucleoprotein by148inorganic phosphate and A phosphoprotein // Exp. Cell Res. 1968. V. 49. P. 359-372.

209. Yamamoto H. Marine adhesine proteins and some biotechnological applications //

210. Biotechnology and genetic engineering reviews. 1995. V. 13. P. 133-165. Yamazaki M. Antitumor and antimicrobial glycoproteins from sea hares // Comp.

211. Zuedeman R.A., Zightner D.V. Development of an in vitro primary cell culture system from the penaeid shrimp, Penaeus stylirostris and Penaeus vannoneei II Aquaculture. 1992. V. 101. P. 205-211.150

212. Часть работы выполнена при финансовой поддержке Международного Научного Фонда (грант № RJBOOO), Международного Научного Фонда и Российского правительства (грант № RJB300) и Российского Фонда Фундаментальных исследований (грант № 95-04 12681а).