Углеродный метаболизм морской макроводоросли Gracilaria verrucosa в онтогенезе тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, кандидат биологических наук Левченко, Елена Владимировна

• Левченко, Елена Владимировна
• кандидат биологических наук
• 2001

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Левченко, Елена Владимировна

Список сокращений

Введение

Глава 1. Обзор литературы

1. 1 Онтогенез Gracilaria verrucosa

1. 1. 1. Представления об онтогенезе водорослей . 8 1. 1.2. Жизненный цикл Gracilaria verrucosa

1. 2. Структурно-функциональные характеристики макроводоросли Gracilaria verrucosa

1.2. 1. Анатомо-морфологическая характеристика таллома, клеток и фотосинтетического аппарата Gracilaria verrucosa

1. 2. 2. Структурно-функциональные изменения организации хлоропластов макроводорослей в онтогенезе

1.2.3. Липиды Gracilaria verrucosa

1. 2. 4. Содержание агара в вегетативном и генеративном талломе

Gracilaria verrucosa

1.3. Углеродный метаболизм морских макроводорослей

1.3. 1. Представления об углеродном метаболизме в онтогенезе высших растений

1.3.2. Водоросли-макрофиты: тип фотосинтетического углеродного метаболизма

1.3.3. Углеродный метаболизм морских макроводорослей в разные периоды жизненного цикла

1.3.3. 1. Скорость фотосинтеза и темновой ассимиляции и активность ключевых карбоксилирующих ферментов

1.3.3.2. Направленность углеродного метаболизма

Глава 2. Материалы и методы

2. 1. Объекты исследования . 38 2.2. Методы анализов

Глава 3. Результаты

3.1. Структурно-функциональные характеристики Gracilaria verrucosa в онтогенезе

3. 1. 1. Анатомия и ультраструктура

3. 1.2. Содержание пигментов

3. 1.3. Содержание агара

3. 1.4. Содержание липидов

3. 2. Углеродный метаболизм Gracilaria verrucosa в онтогенезе

3.2. 1. Скорость фотосинтеза и темновой ассимиляции и активность ключевых карбоксилирующих ферментов

3. 2. 2. Состав и накопление первичных продуктов углеродного метаболизма при фотосинтезе

Глава 4. Обсуждение

Выводы

Список сокращений, принятых на рисунках в приложении . . 85 Список литературы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Углеродный метаболизм морской макроводоросли Gracilaria verrucosa в онтогенезе»

Вопросы, связанные с изучением физиологии водорослей-макрофитов, привлекают все большее внимание исследователей в связи с возросшей потребностью в промышленном культивировании макроводорослей. Хотя многие физиологические и биохимические процессы, характерные для высших растений, сходны с происходящими у макроводорослей, между ними выявляется ряд заметных отличий. Поскольку некоторые авторы предположили возможность функционирования у многоклеточных морских водорослей (в частности - у красной макроводоросли Gracilaria corticata) С4-фотосинтеза (Patil and Joshi, 1970; 1971; Karekar and Joshi, 1973; Joshi et al., 1974), были проведены исследования по выяснению роли (3-карбоксилирующей биохимической ветви в углеродном метаболизме фотосинтеза макрофитов с разной структурной организацией талломов. В результате изучения данной проблемы было доказано, что морские макрофиты обладают механизмом ассимиляции и восстановления СОг, характерным для высших С3-видов растений (Kremer and Willenbrink, 1972; Willenbrink et al. 1975; Kremer and Kuppers, 1977). Исследования, проведенные на ряде бурых, красных и зеленых водорослей в стадии развитого вегетативного таллома, показывают, что фотосинтез в этот период имеет углеводную направленность (Yamaguchi et al., 1966; Majak et al., 1966; Craigie, 1974; Kremer, 1975; Карпилов и др., 1978; Kirst, 1980; Kremer and Kirst, 1981; McCandless, 1981; Kremer 1984; 1985 и др.), соотношение образуемых продуктов для каждого вида является устойчивым показателем и не меняется под действием факторов среды (Карпилов и др., 1978; Биль, 1988). В то же время в жизненном цикле (онтогенезе) макроводорослей, так же как и у высших растений, существуют этапы, которые характеризуются различной структурной организацией таллома, клеток и фотосинтетического аппарата, что предполагает возможные перестройки в метаболизме данных растений. Немногочисленные литературные данные не позволяют детально представить последовательность изменений в скорости и направленности углеродного метаболизма и соотношений гетеротрофной и автотрофной способов фиксации СОг в онтогенезе водорослей-макрофитов. Не существует также и целостной картины взаимосвязи изменений в ассимиляции углекислоты со структурными перестройками в онтогенезе таллома. Поэтому представляет интерес исследование углеродного метаболизма в процессе онтогенетического развития водорослей-макрофитов, особенно тех, которые являются продуцентами необычных для высших растений полисахаридов - агара (как у Gracilaria verrucosa), каррагинана (как у Chondrus armatus), альгинатов (как у Laminaria cichorioides), фукоидана (как у Fucus evanescens).

Цель настоящей работы - исследование изменений углеродного метаболизма во взаимосвязи со структурными перестройками в клетках таллома в онтогенезе красной макроводоросли Gracilaria verrucosa. Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи.

1. Изучить изменения структуры таллома и ультраструктуры клеток и хлоропластов Gracilaria verrucosa в онтогенезе.

2. Изучить изменение содержания фотосинтетических пигментов -хлорофилла а, каротиноидов и фикобилинов в процессе онтогенетического развития Gracilaria verrucosa,

3. Провести исследование различных аспектов углеродного метаболизма в процессе онтогенетического развития водоросли: изменение скорости фотосинтетической и гетеротрофной ассимиляции С02; изменение активности ключевых карбоксилирующих ферментов (РБФК, ФЕПК и ФЕПКК); изменение состава продуктов и направленности углеродного метаболизма; изменение содержания и состава липидов; изменение содержания и состава основного структурного полисахарида -агара.

4. На основе анализа полученных данных выявить особенности углеродного метаболизма для трех стадий онтогенеза Gracilaria verrucosa - проростки, ювенильные растения и взрослые растения с талломом в генеративной фазе.

Предлагаемая работа выполнена в Лаборатории физиологии водных растений Института биологии моря ДВО РАН (г. Владивосток). В основу работы положены результаты экспериментальных исследований, проведенных автором на биологических станциях "Старк" на о. Попова и "Восток" на побережье залива Восток Японского моря. Часть экспериментальных данных обработана в Лаборатории экологии и физиологии фототрофных организмов Института почвоведения и фотосинтеза РАН (с 1998 г. Институт фундаментальных проблем биологии РАН, г. Пущино).

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Левченко, Елена Владимировна

ВЫВОДЫ

1. У проростков Gracilaria verrucosa высокое содержание фотосинтетических пигментов сочетается с низкой эффективностью миграции энергии с R-фикоэритрина на хлорофилл а, что обуславливает низкое ассимиляционное число, указывающее на недостаточно эффективную работу пигментного фотосинтетического аппарата.

2. Для проростков G. verrucosa при фотосинтетической ассимиляции углекислоты характерно преобладание анаплеротического пути через (3-карбоксилирование ФЕП над пентозофосфатным восстановительным циклом, что обеспечивает высокую скорость фотосинтеза на единицу сухой массы, несмотря на низкую эффективность работы пигментного фотосинтетического аппарата.

3. Углеродный метаболизм проростков G. verrucosa характеризуется аминокислотной направленностью с преобладанием аспартата и низким накоплением углеводов, в том числе агара.

4. Ювенильные растения G. verrucosa характеризуются максимальными величинами ассимиляционного числа и скорости фотосинтеза на единицу сухой массы, выравниванием углеводной и аминокислотной направленностей фотосинтетического углеродного метаболизма и активным накоплением агара в клеточной стенке.

5. У взрослых растений G. verrucosa, характеризующихся дифференциацией таллома на кору и псевдопаренхиму, происходит снижение содержания хлорофилла в псевдопаренхиме, а также скорости фотосинтеза и активности РБФК на единицу массы всего растения, тогда как активность ФЕПКК возрастает. В то же время ассимиляционное число остаётся таким же, как на стадии ювенильных растений. По-видимому, существует пространственное разделение фототрофных и гетеротрофных реакций между кортикальными и псевдопаренхимными клетками: в клетках коры продолжается фотосинтетическое образование глюкозы и крахмала, а в клетках паренхимы преобладает синтез агара. 6. В постэмбриональном периоде онтогенеза у G. verrucosa отсутствует смена доминирующего способа карбоксилирования при фотосинтезе - РБФ-карбоксилаза обеспечивает не менее 90% фиксации углекислоты. Это отличительная особенность первичного углеродного метаболизма водоросли по сравнению с высшими Сз-растениями, у которых в ювенильном листе ФЕП-карбоксилаза обеспечивает до 80-90% фиксации ОСЬ и мала активность РБФ-карбоксилазы, а затем в период активного роста увеличивается активность РБФ-карбоксилазы, и основным путём ассимиляции становится карбоксилирование РБФ.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Левченко, Елена Владимировна, 2001 год

1. Аверина Н. Г., Рудой А. Б., Савченко Г. Е., Фрадкин Л. И., ЧайкаМ. Т., Беляева О. Б., Одинцова М. С, Островская Л. К, Филиппович И. И. Биогенез пигментного аппарата фотосинтеза. Минск: Наука и техника, 1988.319 с.

2. Биль К Я,Медянников В. М, Карпов Е. А. Включение 14С в продукты фотосинтеза и перераспределение в тканях таллома Sargassum pallidum II Физиология растений. 1981. Т. 28. Вып. 4. С. 779-788.

3. Биль К. Я. Фототрофный метаболизм углерода у растений с разным уровнем организации фотосинтетического аппарата: Диссертация . доктора биологических наук. Пущино. 1988. 543 с.

4. Биль К Я., Колмаков П. В., Ластивка А. Н., Титлянов Э. А.

5. Фотосинтетический углеродный метаболизм в онтогенезе зеленой водоросли Ulva fenestrata II Биология моря. 1990. № 5. С. 52-58.

6. Биль К Я., Фомина И. Р. Взаимосвязь фотосинтетического углеродного метаболизма и фотохимической активности хлоропластов в листьях кукурузы // Физиология и биохимия культурных растений. 1985. Т. 17. С. 118-122.

7. Биль К Я. Экология фотосинтеза. М.: Наука, 1993. 214 с.

8. Быков О. Д., Кошкин В. И. Определение радиоактивности препаратов в слое полного поглощения // Методы комплексного изучения фотосинтеза / Под ред. Кошкина О. Д., Л.: ВАСХНИЛ, ВИР, 1969. С. 17-54.

9. Воскобошиков Г. М., Камнев А. Н. Морфофункциональные изменения хлоропластов в онтогенезе водорослей. СПб.: Наука, 1991. 96 с.

10. Голлербах М. М. О некоторых принципиальных вопросах в понимании циклов развития у водорослей // Вопросы чередования поколений у растений / Под ред. ГоллербахаМ. М. и др, М. Л.: Изд-во АН СССР, 1951. С. 20-26.

11. Гудвин Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений. Т. 1. М.: Мир, 1986. 392 с. (Goodwin Т., Mercer Е. Introduction to Plant Biochemistry // Oxford, New York, Toronto, Sydney, Paris, Frankfurt: Pergamon press, 1983.).

12. Доман H. Г. О природе продуктов темновой фиксации СОг тканями растений//Биохимия. 1956. Т. 21. С. 78-82.

13. Дэгли С., Николъсон Д. Метаболические пути. М.: Мир, 1973. 310 с. (Dagley S., Nicholson D. An Introduction to Metabolic Pathways. Oxford and Edinburgh: Blackwell Scientific Publications. 1970.).

14. Иванова E. Г. Новые полисахариды группы агара из красных водорослей японского моря: Автореферат диссертации . кандидата химических наук. Москва. 1986. 23 с.

15. Карпилов Ю. С. Фотосинтез ксерофитов: (Эволюционные аспекты). Кишинев, 1970. 19 с.

16. Карпилов Ю. С., Карташова Р. И., Титлянов Э. А. Состав продуктов фотосинтеза у некоторых многоклеточных водорослей Японского моря // Ботанический журнал. 1978. Т. 63. С. 434-437.

17. Клячко-Гурвич Г. Л.,Цоглин Л. Н., Можайцева Г. И. Обмен липидов в ходе онтогенеза хлореллы в связи с активностью фотосинтетического аппарата// Физиология растений. 1981. Т. 28. Вып. 2. С. 421-429.

18. Куперман Ф. М. Морфофизиология растений. М.: Высшая школа, 1977. 288 с.

19. Лапшина А. А., Белокопытов С. В., Иванова Е. Г., Титлянов Э. А. Содержание и свойства агара у неприкрепленной формы Gracilaria verrucosa в зависимости от интенсивности роста таллома и условий обитания // Биология моря. 1993. N. 5-6. С. 107-117.

20. Магомедов И. М. Метаболизм Сд-кислот в листьях Briophyllumdaigremontiamum, представителя НАД-"малик"-энзимного типа САМ-растений // Фотосинтетический метаболизм углерода / Под ред. Мокроносова А. Т. и др., Свердловск: Урал, рабочий, 1983. С. 24-37.

21. Магомедов И. М., Ковалева Л. Б. К вопросу о локализации ФЕПкарбоксилазы и "малик"-энзима в листьях кукурузы // Фотосинтез кукурузы / Под ред. Корнилова Ю. С., Пущино: НЦБИ АН СССР, 1974. С. 124-130.

22. Макиенко В. Ф., Золотухина Л. С. Жизненный цикл Gracilaria verrucosa (Hudson) Papenfuss у берегов Дальнего востока // Известия ТИНРО. 1979. Т. 103. С. 55-60.

23. Михайлова Т. Л. О влиянии анаэробиоза на последующую гетеротрофную фиксацию С02 листьями // Биол. науки. 1968. № 6. С. 79-82.

24. Мокроносов А. Т. Взаимосвязь фотосинтетической и темновой ассимиляции СО2 в углеродном питании растений // Ботанический журнал. 1964. Т. 49. С. 935-946.

25. Мокроносов А. Т. Некоторые вопросы методики применения изотопа углерода-14 для изучения фотосинтеза // Записки Свердловского отделения Всесоюзного Ботанического общества. 1966. Вып. 4. С. 3-13.

26. Мокроносов А. Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М.: Наука, 1981. 196 с.

27. Мокроносов А. Т. Генотипический и фенотипический факторы в детерминации фотосинтетического метаболизма углерода // Фотосинтетический метаболизм углерода / Под ред. Мокроносова А. Т. и др., Свердловск: Урал, рабочий, 1983. С. 7-23.

28. Мокроносов А. Т., Михайлова Т. Л. Темновая фиксация С02 листьями картофеля//Докл. АН СССР. 1962. Т. 147. С. 1226-1230.

29. Мокроносов А. Т., Некрасова Г. Ф. Онтогенетический аспект фотосинтеза (на примере листа картофеля) // Физиология растений. 1977. Т. 24. С. 458-465.

30. Мошкое Б. С. Значение ювенильного периода в развитии растений //

31. Физиологические закономерности онтогенеза и продуктивности растений / Под ред. Мошкова Б. С., Л.: ВАСХНИЛ, Агрофизический научно-исследовательский институт, 1985. С. 3-31.

32. Мошкова Н. А. Красные водоросли // Водоросли. Справочник / Под ред. Вассер С. П., Киев: Наукова думка, 1989. С. 354-384.

33. Мурзаева С. В. Фотофосфорилирование и энергетическое состояние морских зеленых растений в онтогенезе // Физиология растений. 1986. Т. 33. С. 490-497.

34. Мурзаева С. В. Карбоксилазная и оксигеназная активностирибулозобисфосфаткарбоксилазы в онтогенезе некоторых морских зеленых макроводорослей// Физиология растений. 1986. Т. 33. С. 881887.

35. Некрасова Г. Ф. Формирование структуры и фотосинтетической функции в процессе роста листа // Мезоструктура и функциональная активность фотосинтетического аппарата / Под ред. Мокроносова А. Т. и др., Свердловск: Урал, рабочий, 1978. С. 61-68.

36. Некрасова Г. Ф., Киселева И. С., Борисова Г. Г. Гетеротрофная фиксация СОг в разновозрастных участках листа ячменя // Фотосинтетический метаболизм углерода / Под ред. Мокроносова А. Т. и др., Свердловск: Урал, рабочий, 1983. С. 88-94.

37. Опарин А. И. Возникновение жизни на земле. М.: Изд-во АН СССР. 1957. 140 с.

38. Перестенко JI. П. Индивидуальное развитие бурых водорослей и онтогенетический принцип построения филогенетических систем // Ботанический журнал. 1972. Т. 57. С. 750-764.

39. Перестенко JI. П. Водоросли залива Петра Великого. JL: Наука. 1980. 232 с.

40. Подорванов Н. Ф., Ивашинникоеа Т. С., Петренко В. С., Хомичук J1.C. Основные черты гидрохимии залива Петра Великого (Японское море). Владивосток: ДВО АН СССР. 1989. 201 с.

41. Полевой В. В. Физиология растений. М.: Высшая школа. 1989. 464 с.

42. Романова А. К. Биохимические методы изучения автотрофии у микроорганизмов. М.: Наука, 1981. 160 с.

43. Романюк В. А. Рекомендации по искусственному воспроизводству грацилярии. II. Биологическое обоснование тепличного культивирования грацилярии. Владивосток: ТИНРО, 1990. 105 с.

44. Силаева А. М. Структура хлоропластов и факторы среды. Киев: Наукова думка, 1978. 203 с.

45. С.тадничук И. Н. Фикобилипротеины // Биологическая химия. М.: Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР, 1990. Т. 40. С. 1-196.

46. Стадничук И. Н. Фикобилисомы // Биологическая химия. М.: Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР, 1991. Т. 46. С. 1-172.

47. Тарчевский И. А. О пути углерода в процессе темновой фиксации // Биохимия. 1962. Т. 27. С. 38-43.

48. Тарчевский И. А. Фотосинтез и засуха. Казань: Издательство Казанского Университета. 1964. 182 с.

49. Тарчевский И. А. Основы фотосинтеза. Казань: Издательство Казанского Университета. 1971. 294 с.

50. Усов А. И. Полисахариды красных морских водорослей // Прогресс химии углеводов // Под ред. Торгова И. В., М.: Наука, 1985. С. 77-96.

51. Усов А. И., Иванова Е. Г., Макиенко В. Ф. Полисахариды водорослей. XXIX. Сравнение образцов агара из различных генераций Gracilaria verrucosa (Huds.) Papenf. // Биоорганическая химия. 1979. Т. 5. С. 16471653.

52. Усов А. И., Кошелева Е. А., Яковлев А. П. Полисахариды водорослей. XXXV. Полисахаридный состав некоторых бурых водорослей Японского моря // Биоорганическая химия. 1985. Т. 11. С. 830-836.

53. Усов А. И., ЭлашвилиМ. Я. Количественное определение производных 3,6-ангидрогалактозы и специфическое расщепление галактанов красных водорослей в условиях восстановительного гидролиза // Биоорганическая химия. 1991. Т. 17. № 6. С. 839-848.

54. Фомина И. Р., Биль К. Я., Магомедов И. М. Локализацияаспартатаминотрансферазы в клетках мезофилла и обкладки листьев С4-растения Amaranthus lividus II Цитология. 1981. Т. 23. С. 1411-1416.

55. Фомина И. Р. Исследование взаимосвязи фотохимической активностихлоропластов и реакций фотосинтетического углеродного метаболизма С4-растений: Диссертация . кандидата биологических наук. Ленинград. 1982. 114 с.

56. Фомина И. Р., Биль К. Я., Магомедов И. М. Гистохимическое определение аспартатаминотрансферазы в автотрофных тканях листьев С4-растения Amarantus lividus //Докл. АН СССР. 1981. Т. 256. С. 1514 -1516.

57. Фомина И. Р., Биль К. Я., Закржевский Д. А., Балахнина Т. И.

58. Фотосинтетический углеродный метаболизм Tradescantia fluminensis после длительной темновой инкубации листьев в атмосфере аргона и водорода // Физиология растений. 1993. Т. 40. №. 1. С. 27-34.

59. Хотимченко С. В. Распределение полярных липидов и жирных кислот в морских макрофитах: Диссертация . доктора биологических наук. Владивосток. 1999. 245 с.

60. ЧайкаМ. Т., Савченко Г. Е. Биосинтез хлорофилла в процессе развития пластид. Минск: Наука и техника. 1981. 168 с.

61. Шабнова Н. И., Фомина И. Р., Биль К. Я. Продукционный процесс икачественные характеристики надземной биомассы растений кукурузы в зависимости от источника азотного питания // Сельскохозяйственная биология. 1997. № 1. С. 57-63.( (

62. Akagawa Н., Ikawa Т. and Nisizawa К. Initial pathway of dark 14C02-fixation in brown algae // Botanica Marina. 1972. V. 15. P. 119-125.

63. Akagawa H., Ikawa T. and Nisizawa К. 14C02-fixation in marine algae with special reference of the dark-fixation in brown algae // Botanica Marina. 1972.V. 15. P. 119-125.

64. Akagawa H., Ikawa T. and Nisizawa K. The enzyme system for the entrance of 14C02 in the dark fixation of brown algae // Plant Cell Physiol. 1972. V. 13. P. 999-1076.

65. Araki S., Sakurai T, Oohusa T. andKayamaM. Component fatty acid of lipidfrom Gracilaria verrucosa II Bull. Japan. Soc. Fish. 1986. V. 52. P. 18711874.

66. Araki S., Sakurai T, Oohusa Т., KayamaM. and Nisizawa K. Content of arachidonic and eicosapentaenoic acids in polar lipids from Gracilaria (Gracilariales, Rhodophyta)//Hydrobiologia. 1990. V. 204/205. P. 513-519.

67. Araki S., Nisizawa K. and Sivalingam P. M. Lipid and fatty acid composition of red algae // Algal Biotechnology in the Asia-Pacific Region. 1994. P. 39-46.

68. Aruga Y., ToyoshimaM. and Yokohama Y. Comparative photo synthetic studies of Ecklonia cava bladelets with and without zoosporangial sori // Japanese Journal of Phycology. 1990. V. 38. P. 223-228.

69. Arnesen U., Hallenstvet M. and Liaaen-Jensen S. More about the carotenoids of red algae // Biochemical Systematics and Ecology. 1979. V. 7. P. 87-89.

70. Badger M. R., Kaplan A. and Berry J. A. Internal inorganic carbon pool of Chlamydomonas reinhardtii. Evidence for a carbon dioxid-concentrating mechanism // Plant Physiology. 1980. V. 66. P. 407-413.

71. Beardal J. and Raven J. A. Transport of inorganic carbon and "C02 concentrating mechanism" in C-hlorella emersonii (Chlorophyceae) // Journal Phycology. 1981. V. 17. P. 134-141.

72. Beer S. and Eshel A. Determining phycoerythrin and phycocyaninconcentrations in aqueous crude extracts of red algae // Aust. Jour. Mar. Freshw. Res. 1985. V. 36. P. 785-792.

73. Beer S. and Israel A. Photosynthesis of Ulva sp. III. 02 effects, carboxylase activities and the C02 incorporation pattern // Plant Physiology. 1986. V. 81. P. 937-938.

74. Beer S. and Shragge B. Photo synthetic carbon metabolism in Enteromorpha compressa (Chlorophyta) // Journal Phycology. 1987. V. 23. P. 580-584.

75. Beer S., Israel A., Drechsler Z. and Cohen Y. Photosynthesis in Ulva fasciata. V. Evidence for inorganic carbon concentrating system, and Ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase CO2 kinetics // Plant Physiology. 1990. V. 94. P. 1542-1546.

76. Bellanger F., Verdus M.C., Henocq V. and Christianen D. Determination of the composition of the fibrillar part of Gracilaria verrucosa (Gracilariales, Rhodophyta) cell wall in order to prepare protoplasts // Hydrobiologia. 1990. V. 204/205. P. 527-531.

77. Benson A. A., Bassham J. A., Calvin M., Goudale Т. C, Haas U. A., Stepka W. The Path of Carbon in Photosynthesis. V. Paper Chromatography and Radioautography of the Products // Jour. Amer. Chem. Soc. 1950. V. 72. P. 1710-1718.

78. Bernard С. Lemons sur les phenomenes de la vie, communs aux animaux et aux vegetaux. Paris: Librairie J. B. Bailliere et Fils. 1878. 436 p.

79. Bjornland T. and Aguilar-Martinez M. Carotenoids in red algae // Phytochemistry. 1976. V. 15. P. 291-296.

80. Bidwell R. G. S. and McLachlanJ. Carbon nutrition of seaweeds: photosynthesis, photorespiration and respiration // Jour. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1985. V. 86. P. 15-46.

81. Bil' K. Y., Fomina I. R. and Shabmova N. I. Content of nitrogen compounds in maize shoots, structural and functional features of photosynthetic apparatus under ammonium and nitrate nutrition // Photosynthetica. 1987. V. 21. P. 525-534.

82. Bird К. T. and Ryther I. H. Cultivation of Gracilaria verrucosa (Gracilariales, Rhodophyta) strain G-16 for agar // Hydrobiology. 1990. V. 204/205. P. 347-351.

83. Bligh E. G. and Dyer W. J. A rapid method of total lipids extraction and purification // Can. Jour. Biochem. Physiol. 1959. V. 37. P. 911-917.

84. Brechignac F. and Andre M. Oxygen uptake and photosynthesis of the red macroalga, Chondrus crispus, in seawater. Effects of light and C02 concentration//Plant Physiology. 1984. V. 75. P. 919-923.

85. Brown D. L. and Tregunna E. B. Inhibition of respiration during photosynthesis by some algae // Canadian Journal of Botany. 1967. V. 45. P. 1145-1143.

86. Burris J. E., Holm-Hansen O. and Black С. C. Glicine and serine production in marine plants as a measure of photorespiration // Aust. J. Plant Physiol. 1976. V. 3. P. 87-92.

87. Chiles Т. C., Bird К T. and Koehn F. E. Influence of nitrogen availability on agar-polysaccharides from Gracilaria verrucosa strain G-16: structural analysis by NMR spectroscopy // Journal of Applied Phycology. 1989. V. 1. P. 53-58.

88. Chirapart A. and Ohno M. Seasonal variation in the physical properties of agar and biomass of Gracilaria sp. (chorda type) from Tosa Bay, southern Japan //Hydrobiologia. 1993. V. 260/261. P. 541-547.

89. Christeller J. Т. and Laing W. A. The effect of environment on the agar yield and gel characteristics of Gracilaria sordida Nelson (Rhodophyta) // Botanica Marina. 1989. V. 32. P. 447-455.

90. Clenderming K. A. Photosynthesis and growth in Macrocystis pyrifera II Proc. 4th Intl. Seaweed Symp. Pergamon Press. London. 1964. P.55-65.

91. Coleman J. R. and Colman B. Demonstration of C3-photosynthesis inbluegreen alga Coccochlorispeniocystis II Planta. 1980. V. 149. P. 318-320.

92. Colman B. and Gehl K. A. Physiological characteristics of photosynthesis in Porphyridium cruentum: evidence for bicarbonate transport in a unicellular red alga // Journal Phycology. 1983. V. 19. P. 216-219.

93. Colman B. The effect of temperature and oxygen on the C02 compensation point of the marine alga Ulva lactuca II Plant Cell Environ. 1984. V. 7. P. 619-621.

94. Cote G. L. and Hanisak M. D. Production and properties of native agars from

95. Gracilaria tikvaniae and other red algae // Botanica Marina. 1986. V. 29. P. 359366.

96. Coughlan S. and Tattersfield D. Photorespiration in lager littoral algae // Botanica Marina. 1977. V. 20. P. 265-266.

97. Craigie J. S. Dark fixation of 14C-bicarbonate by marine algae // Canadian Journal of Botany. 1963. V. 41. P. 317-325.

98. Craigie J. S. Storige products // Algal Physiology and Biochemisrty / Ed. by Stewart W. D. Т., Oxford: Blackwell Scientifics Publications, 1974. P. 206-235.

99. Craigie J. S., McLachlan J. and Majak W. Photosynthesis in algae II. Greenalgae with special reference to Dunaliella spp. and Tetraselmis spp. 11 Canadian Journal of Botany. 1966. V. 44. P. 1247-1254.

100. CritchleyA. T. Gracilaria (Rhodophyta, Gracilariales): An economically important agarophyte // Seaweed cultivation and marine ranching / Eds. Masao Ohno and Alan T. Critchley. Japan International Cooperation Agency (JICA). 1993. P. 89-112.

101. Delivopoulos S. G., Pellegrini M. and Pellegrini L. Ultrastructure of the developing tip of the thallus in the alga Gracilaria dura (C. Agardh) J. Agardh (Gigartinales, Gracilariaceae) // Cytobios. 1989. V. 57. P. 177-184.

102. Domozych D. A., Stewart K. D. andMattox K. R. The comparative aspects of cell wall chemistry in the green algae (Chlorophyta) // Journal Mol. Evol. 1980. V. 15. P. 1-12.

103. Dunton К. H. and Jodwalis С. M. Photosynthetic performence of Laminaria solidungula measured in situ in the Alaskan High Arctic // Mar. Biol. 1988. V. 98. P. 277-285.

104. Ekman P., Yu S. and PedersenM. Effects of altered salinity, darkness and algal nutrient status on floridoside and srarch content, a-galactosidase activity and agar yield of cultivated Gracilaria sordida 11 Br. Phycol. Journal. 1991. V. 26. P. 123-131.

105. Friedlander M. and Zelikovitch N. Growth rates, phycocolloid yield and quality of the red seaweeds Gracilaria sp., Pterocladia capillacea, Hypnea musciformis and Hypnea cornuta in field studies in Israel 11 Aquaculture. 1984. V. 40. P. 57-66.

106. Gantt E. and Conti S. F. The ultrastructure of Porphyridium cruentum II Journal Cell Biology. 1965. V. 26. P. 365-381.

107. Gantt E., Lipschultz С. A. and Zilinskas B. Further evidence for a phycobilisome model from selective dissociation, fluorescence emission, immunoprecipitation, and electron microscopy // Biochim. Biophys. Acta. 1976. V. 430. P. 375-388.

108. Gantt E. Phycobilisomes //Ann. Rev. Plant Physiology. 1981. V. 32. P. 327-347.

109. Hara Y An electron microscopic study on the chloroplasts of the Rhodophyta // Proceedings of the Seven International Seaweed Symposium. 1971. P. 153-158.

110. Hara Y and C.hihara M. Comparative studies on the chloroplast ultrastructure in the Rhodophyta with special reference to their taxonomic significance // The Science Reports of the Tokyo Kyoiku Daigaku. 1974. V. 15. P. 209235.

111. HarwoodJ. L. and Russell N. J. Lipids in plants and microbes. London: George Allen and Unwin. 1984. 162 p.

112. Hatch M. D. and Slack C. R. A new enzyme for the interconversion of pyruvate and phosphopyruvate and its role in the C4-dicarboxylic acid pathway of photosynthesis // Biochem. Journal. 1968. V. 196. P.141-146.

113. Hatch M. D., Kagawa T. and Craig S. Subdivision of C4-pathway species based on differing C4-acid decarboxylating systems and ultrastructural features // Austr. Journal Plant Physiol. 1975. V. 2. P. 111-128.

114. Hemmingson J. A. and Furneaux R. H. Biosynthetic activity and galactan composition in different regions of the thallus of Gracilaria chilensis Bird, Mc. Lachlan et Oliveira // Botanica Marina. 1997. V. 40. P. 351-357.

115. Hirose H. and Kumano S. Spectroscopic studies on the phycoerythrins from Rhodophycean algae with special reference to their phylogenetical relations // The Botanical Magazine. 1966. V. 79. P. 105-113.

116. Hirose H., Kumano S. andMadono К Spectroscopic studies on thephycoerythrins from Cyanophycean and Rhodophycean algae with special reference to their phylogenetical relations // The Botanical Magazine. 1969. V. 82. P.197-203.

117. Hoope H. A. Marine algae: their products and constituents // Marine algae in Pharmaceutical Science. 1982. V. 2. P. 3-15.

118. Hoyle M. D. Agar studies in two Gracilaria species (G. bursapastoris

119. Johnston A. M. and Raven J. A. The CHike characteristics of the intertidal macroalga Ascophyllum nodosum (L.) Le Jolis (Fucales, Phaeophyta) // Phycologia. 1987. V. 26. P. 159-166.

120. Jos hi G. V., Dolan Т., Gee R. and Saltman P. Sodium chloride effect on darkfixation of C02 by marine and terrestrial plants // Plant Physiology. 1962. V. 37. P. 446-449.

121. Jos hi G. V. and KarekarM. D. Pathway of 14C02 fixation in marine algae // Proceedings of the Indian National Science Academy. 1973. V. 39. P. 489493.

122. Joshi G. V., KarekarM. D„ Gowda C. A. andBhosale L. Photosynthetic carbon metabolism and carboxylating enzymes in algae and mangrove under saline conditions // Photosynthetica. 1974. V. 8. P. 51-52.

123. Kauss P. Osmotic regulation in algae // Prog. Phytochem. 1978. V. 5. P. 1-28.

124. Karekar M. D. and Joshi G. V. Photo synthetic carbon metabolism in marine algae // Botanica Marina. 1973. V. 16. P. 216-220.

125. KerbyN. W. and Evans L. V. Properties of phosphoenolpyruvate carboxykinase from Ascophyllum nodosum (Phaeophyceae) // Journal Phycology. 1983. V. 19. P. 421-424.

126. Khotimchenko S. V. and Levchenko E. V. Lipids of Red Alga Gracilaria verrucosa (Huds.) Papenf. // Botanica Marina. 1997. V. 40. P. 541-545.

127. King R. J. and Schramm W. Determination of photosynthetic rates for the marine algae Fucus vesiculosus and Laminaria digitata II Marine Biology. 1976. V. 37. P. 209-213.

128. Kirst G. O. Low molecular weight carbohydrates and ions in Rhodophyceae: quantitative measurement of floridoside and digeneaside // Phytochemistry. 1980. V. 19. P. 1107-1110.

129. Kirst G. O. Salinity tolerance of eukaryotic marine algae // Annual Review Plant Physiology Plant Molecular Biology. 1990. V. 41. P. 21-53.

130. Kirst G. O. and BissonM. A. Regulation of turgor pressure in marine algae: ions and low-molecular-weight organic compounds 11 Aust. Journal Plant Physiology. 1979. V. 6. P. 539-556.

131. Kosovel V. and Talarico L. Preliminary ultrastructural characterization of R-phycocyanin from the red alga Gracilaria verrucosa (Huds.) Papenfuss // Photosynthetica. 1982. V. 16. P. 373-374.

132. Kreger D. R. and van der Veer J. Paramylon in a Chrysophyte // Acta Botanica

133. Neer. 1971. V. 19. P. 401-402.

134. Kremer B. P. and Willenbrink J. C02-fixierung und stofftransport in benthischen marinen algen. I. Zur kinetik der 14C02-assimilation bei Laminaria saccharina II Planta (Berl.). 1972. V. 103. P. 56-64.

135. Kremer B. P. Mannitmetabolismus in der marinen Braunalge Fucus serratus II Zeitschrift fur Planzenphysiologie. 1975. V. 74. P. 255-263.

136. Kremer B. P. Mannitol in the Rhodophyceae a reappraisal // Phytochemistry. 1976. V. 15. P. 1135-1138.

137. Kremer B. P. 14C-accimilate pattern and kinetics of photosynthetic 14C02-accumulation of marine red alga Bostrychia scorpioides II Planta (Berl.). 1976. V. 129. P. 63-67.

138. Kremer B. P. and Kuppers U. Carboxylating enzymes and pathway of photosynthetic carbon assimilation in different marine algae evidence for the C4-pathway? //Planta. 1977. V. 133. P. 191-196.

139. Kremer B. P. Studies on 14C02-assimilation in marine Rhodophyceae 11 Marine Biology. 1978. V. 48. P. 47-55.

140. Kremer B. P. and Berks R. Photosynthesis and carbon metabolism in marine and freshwater diatoms // Zeitschrift fur Planzenphysiologie. 1978. V. 87. P. 149-165.

141. Kremer B. P. and Markham J. W. Carbon assimilation by differentdevelopmental stages of Laminaria saccharina II Planta. 1979. V. 144. P. 497501.

142. Kremer B. P. Photorespiration and P-carboxylation in brown macroalgae // Planta. 1980. V. 150. P. 189-190.

143. Kremer В. P. Transversal profiles of carbon assimilation in the fronds of three Laminaria species // Marine Biology. 1980. V. 59. P. 95-103.

144. Kremer B. P. Metabolic implications of non-photosynthetic carbon fixation in brown macroalgae // Phycologia. 1981. V. 20. P. 242-250.

145. Kremer B. P. C4-metabolism in marine brown macrophytic algae // Zeitschrift furNaturforschung. 1981. V. 36 c. P. 840-847.

146. Kremer B. P. and Kirst G. O. Biosynthesis of 2-O-D-glycerol-a-Dgalactopyranoside (floridoside) in marine Rhodophyceae // Plant Science Letters. 1981. P. 349-357.

147. Kremer B. P. Carbohydrate reserve dark carbon fixation in the brownmacroalga Laminaria hyperborea II Journal Plant Physiology. 1984. V. 117. P. 233-242.

148. Kremer B. P. Aspects of cellular compartmentation in brown marine macroalgae // Journal Plant Physiology. 1985. V. 120. P. 401-407.

149. Kulkarni A. H. and Nimbalkar J. D. Initial products of photo synthetic carbon assimilation and some photosynthetic enzymes in Gracilaria corticata J. Ag. //Photosynthetica. 1983. V. 17. P. 189-192.

150. Kulkarni A. H. and Nimbalkar J. D. 3-Phosphoglycerate and glucose formation from 14C aspartate in Gracilaria corticata J. Ag. // Photosynthetica. 1983. V. 17. P. 605-606.

151. Kunitake G., Stitts C. and Saltman P. Dark fixation by tobacco leaves // Plant Physiology. 1959. V. 34. P. 123-130.

152. Majak W., McLachlan J. and Craigie J. S. Photosynthesis in algae I.

153. Accumulation products in the Rhodophyceae // Canadian Journal of Botany. 1966. V. 44. P. 541-549.

154. Mariani P., Tolomio C., Baldan B. andBraghetta P. Cell wall ultrastructure and cation localization in some benthic marine algae // Phycologia. 1990. V. 29 (2). P. 253-262.

155. Matsuhiro B. and Urzua С. C. Agarans from tetrasporic and cystocarpic Gelidium lingulatum II Bol. Soc. Chil. Quim. 1988. V. 33. P. 135-140.

156. Matsuhiro B. and Urzua С. C. Agars from Gelidium rex (Gelidiaceae: Rhodophyta) // Hydrobiologia. 1990. V. 204/205. P. 545-549.

157. Matsuyama K. Photosynthesis of JJndaria pinatifida Suringar f. distans Miyabe et Okamura (Phaeophyceae) from Oshoro Bay. II. Photosynthesis in several portions of the thallus // Sci. Rep. Hokkaido Fish. Exp. Sta. 1983. V. 25. P. 195-200.

158. Mazelis M. and Vennesland В. Carbon dioxide fixation into oxalacetate in higher plants //Plant Physiology. 1957. V. 32. P. 591-600.

159. McCandless E. L., C.raigie J. S. Sulphated polysaccharides in red and brown algae // Ann. Rev. Plant Physiology. 1979. V. 30. P. 41-53.

160. McCandless E. L. Polysaccharides of seaweeds // The Biology of Seaweeds / Ed. by Lobban C. S. and WynneM. J., Oxford: Blackwell Scientifics Publications, 1981. P. 63-85.

161. McLachlan J. and Bidwell R. G. S. Photosynthesis of eggs, sperm, zygotes, and embryos of Fucus serratus II Canadian Journal of Botany. 1978. V. 56. P. 371-373.

162. Meeuse B. J. D. Storage products // Physiology and Biochemistry of Algae / Ed. by Lewin R. A., New York: Academic Press, 1962. P. 289-311.

163. Moroney J. V., Togasaki H. D„ HusicH. D. and Tolbert N. E. Evidence that an internal carbonic anhydrase is present in 5 % C02-grown and air-grown Chlamydomonas II Plant Physiology. 1987. V. 84. P. 757-761.

164. Nisizawa K., Akagawa H. and Ikawa T. Dark I4C2-fixation in brown algae // Proceedings of the Seven International Seaweed Symposium. 1971. P. 532536.

165. Oliveira L. and Bisalputra T. Ultrastructural studies in the brown alga Ectocarpus in culture: ageing//New Phytology. 1977. V. 78. P. 131-138.

166. Oliveira L. and Bisalputra T. Ultrastructural studies in the brown alga

167. Ectocarpus in culture: autolysis //New Phytology. 1977. V. 78. P. 139-145.

168. Osmond С. B. Crassulacean acid metabolism: A curiosity in context // Annu. Rev. Plant Physiol. 1978. V. 29. P. 379-414.

169. Oyieke H.A. The yield, physical and chemical properties of agar from Gracilaria species (Gracilariales, Rhodophyta) of Kenya Coast // Hydrobiologia. 1993. V. 260/261. P. 613-620.

170. О 'Carra P. Purification and N-terminal analyses of algal biliproteins // Biochem. Journal. 1965. V. 94. P. 171-174.

171. Patil B. A. and Joshi G. V. Photosynthetic studies in Ulva lactuca II Botanica Marina. 1970. V. 13. P. 111-115.

172. Patil B. A. and Joshi G. V. Photosynthetic studies in Ulva lactuca. Ethanol insoluble fraction // Botanica Marina. 1971. V. 14. P. 22-23.

173. Penniman C. A. and Mathieson A. C. Photosynthesis of Gracilaria tikvahiae McLachlan (Gigartinales, Rhodophyta) from the great Bay Estuary, New Hampshire // Botanica Marina. 1985. V. 28. P. 427-435.

174. Perchorowitz J. T. and Gibbs M. Carbon dioxide fixation and related properties in sections of the developing green miaze leaf// Plant Physiology. 1980. V. 65. P. 802-809.

175. Perchorowitz J. Т., Raynes D. A. and Jensen R. G. Measurment and preservation of the in vivo activation of ribulose 1,5-bisphosphate carboxilase in leaf extracts // Plant Physiology. 1982. Vol. 69. P. 1165-1168.

176. Pueschel CM. An expanded survey of the ultrastructure of red algal pit plugs // Journal Phycology. 1989. V. 25. P. 625-636.

177. Pueschel C.M. and Cole K.M. Rhodophycean pit plugs: an ultrastructuralsurvey with taxonomic implications // American Journal of Botany. 1982. V. 69 (5). P. 703-720.

178. Pueschel C.M. An ultrastructural survey of the diversity of crystalline,protenaceous inclusions in red algal cells // Phycologia. 1992. V. 31. P. 489499.

179. Pueschel C.M. and Trick H. N. Unusual morphological features of pit plugs in Clathromorphum circumscriptum (Rhodophyta, Corallinales) // Br. phycol. Journal. 1991. V. 26. P. 335-342.

180. Raghavendra A. S. and Das V. S. R Comparative studies on C4 and C3photosynthetic systems: Enzyme leaves and their distribution in mesophyll and bundle sheath cells // Ztschr. Pflanzenphysiol. 1978. V. 87. P. 379-393.

181. Redlinger T. and Gantt E. Phycobilisome structure of Porphyridium cruentum. Polypeptide composition// Plant Physiology. 1981. V. 68. P. 1375.

182. Reed R. #., Davision I. R., ChudekJ. A. and Foster R. The osmotic role of mannitol in the Phaeophyta: an appraisal // Phycologia. 1985. V. 24. P. 35-47.

183. ReiskindJ. В., SeamonP.T. and Bowes G. Alternative methods of photosynthetic carbon assimilation in marine macroalgae 11 Plant Physiology. 1988. V. 87. P. 689-692.

184. ReiskindJ. В., Beer S. and Bowes G. Photosynthesis, photorespiration and ecophysiological interactions in marine macroalgae // Aquatic Botany. 1989. V. 34. P. 131-152.

185. Reiskind J. B. and Bowes G. The role of phosphoenolpyruvate carboxykinase in a marine macroalga with C4-like photosynthetic characteristics // Proc. Natl. Acad. Sci. 1991. V. 88. P. 2883-2887.

186. Reynolds E.S. The use of lead citrate at high pH as an electronopaque stain in electron microscopy // Journal of Cell Biology. 1963. V. 17. P. 208-212.

187. Rusckowski M. and Zilinskas B. A. Allophycocyanin I and the 95 kilodaltonpolypeptide //Plant Physiology. 1982. V. 70. P. 1055.

188. Sakanishi Y, Yokohama Y andAruga Y Seasonal changes of photosynthetic activity of a brown alga Ecklonia cava Kjellman // The Botanical Magazine Tokyo. 1989. V. 102. P. 37-51.

189. Sakanishi Y., Yokohama Y andAruga Y Photosynthetic capacity of various parts of the blade of Laminaria longissima Miyabe (Phaeophyta) // The Japanese Journal of Phycology. 1991. V. 39. P. 239-243.

190. Saltman P., Kunitake G., Spolter H. and Stitts C. The dark fixation of CO2 by succulent leaves // Plant Physiology. 1956. V. 31. P. 464-470.

191. Santelices В., DotyM. S. A review of Gracilaria farming // Aquaculture. V. 78. P. 95-133.

192. Sargent M, C. and Lantrip L. W. Photosynthesis, growth and translocation in giant kelp // American Journal of Botany. 1952. V. 39. P. 99-107.

193. Sawardeker J. S., Sloneker J.H., Jeanes A. R. Quantitative Determination of Monosaccharides as Their Alditol Acetates by Gas Liquid Chromatography // Anal. Chem. 1965. V. 37. P. 1602-1604.

194. Seely G. R., Duncan M. J. and Vidaver W. E. Preparation and analytical extration of pigments from brown algae with dimethyl sulfoxide // Marine Biology. 1972. V. 12. P. 1841-88.

195. Seifert U. and Heinz E. Enzymatic characteristics of UDP-sulfoquinovose: diacylglycerol sulfoquinovosyltransferase from chloroplast envelopes // Botanica Acta. 1992. V. 105. P. 197-205.

196. Shi S., Zhang Y, Liu W. and Li Z. Comparative studies on the yield and properties of agar from Chinese species of Gracilaria II Studia Marina

197. Sinica. 1986. V. 26. P. 57-64.

198. Talarico L. and Kosovel V. Ricerche sui pigmenti fotosintetici di Gracilaria verrucosa (Huds.) Papenfuss. Dosaggio quantitativo della ficoeritrina // Giornale Botanico Italiano. 1975. V. 109. P. 205-219.

199. Talarico L. and Kosovel V. Properties and ultrastructure of R-phycoerythrin from Gracilaria verrucosa (Gigartinales, Florideophyceae) (Huds.) Papenfuss // Photosynthetica. 1978. V. 12. P. 369-374.

200. Thomas P. S. and Krishnamurthy V. II Agar from cultured Gracilaria edulis (Gmel.) Silva//Botanica Marina. 1976. V. 19. P. 115-117.

201. Thomas D. N., Wiencke C. Photosynthesis, dark respiration and light independent carbon fixation of endemic antarctic macroalgae // Polar Biology. 1991. V. 11. P. 329-337.

202. Trick H. N. and Pueschel С. M. Cytochemistry of pit plugs in Bossiella californica (Corallinales, Rhodophyta) // Phycologia. 1990. V. 29. P. 403409.

203. Trick H. N. and Pueschel С. M. Cytochemical evidence for homology of the outer cap layer of red algal pit plugs // Phycologia. 1991. V. 30. P. 196-204.

204. Usov A. I. A new chemical tool for characterization and partial depolymerization of red algal galactans // Hydrobiologia. 1993. V. 260/261. P. 641-645.

205. Vaskovsky V. E., Khotimchenko S. V. HPTLC of Polar Lipids of Algae and Other Plants // Journal High Resol. Chromatogr. 1982. V. 11. P. 635-636.

206. Weidner M, Kuppers U. Phosphoenolpyruvate-carboxykinase und Pibulose-1,5-diphosphat-carboxylase von Laminaria hyperborea (Gunn). Fosl. Das Verteilungs-muster der Enzymaktivitaten im Thallus // Planta. 1973. V. 114. P. 365-372.

207. Wellburn A. R. and Hampp K. Movement of labelled metabolites from mitochondria to plastids during development // Planta. 1976. V. 131. P. 17-22.

208. Wheeler W. N. Pigment content and photosynthetic rate of the fronds of Macrocystispyrifera II Marine Biology. 1980. V. 56. P. 97-102.

209. WillenbrinkJ., Rangoni-Kubbeler M. and Tersky B. Frond Development and C02-fixation in Laminaria hyperborea // Planta. 1975. V. 125. P. 161-170.

210. Williams L. E. and Kennedy R. A. Photosynthetic carbon metabolism during leaf ontogeny in Zea mays L.: enzyme studies // Planta. 1978. V. 142. P. 269-274.

211. Yamaguchi Т., Ikawa Т., Nisizawa К. Incorporation of radioactive carbon from H14CC03 into sugar constituents by a brown alga, Eisenia bicyclis, during photosynthesis and its fate in the dark // Plant and Cell Physiology. 1966. V. 7. P. 217-229.

212. Yenigtil M. Seasonal changes in the chemical and gelling characteristics of agar from Gracilaria verrucosa collected in Turkey // Hydrobiologia. 1993. V. 260/261. P. 627-631.

213. Yokota A. and Kitaoka S. Rates of glicolate synthesis and metabolism during photosynthesis of Euglena and microalgae grown on low C02 // Planta. 1987. V. 170. P. 181-189.