Цитологические основы трансдифференцировки в тканях глаза позвоночных животных тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.11, доктор биологических наук Григорян, Элеонора Норайровна

• Григорян, Элеонора Норайровна
• доктор биологических наук
• 1998

Оглавление диссертации доктор биологических наук Григорян, Элеонора Норайровна

ВВЕДЕНИЕ

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

I. Пластичность дифференцировки клеток пигментного эпителия радужки.

Регенерация хрусталика из трансдифференцирующихся клеток пигментного эпителия радужки у взрослых тритонов.

II. Пластичность дифференцировки клеток пигментного эпителия сетчатки (ПЭС).

II. 1.Регенерация нейральной сетчатки из трансдифференцирующихся клеток ПЭС у тритонов.

II.2. Регенерация нейральной сетчатки из клеток ПЭС у бесхвостых амфибий.

II. 3. Регенерация нейральной сетчатки у птиц благодаря трансдифференцировке клеток ПЭС.

II.4. Свойства клеток ПЭС млекопитающих и его превращения в развитии и при патологии.

III. Трансдифференцировка клеток пигментного эпителия сетчатки в клетки хрусталика.

IV. Трансдифференцировка клеток эмбриональной нейральной сетчатки.

V. Изменения дифференцировки клеточных типов нейральной сетчатки взрослых животных.

VI. Строение и развитие сетчатки позвоночных.

V.2. Пластичность клеток нейральной сетчатки рыб.

V.3. Вероятность пластичности клеток нейральной сетчатки у бесхвостых амфибий.

V.3. Пластичность дифференцировки клеток нейральной сетчатки птиц и млекопитающих.

Заключение диссертации по теме «Эмбриология, гистология и цитология», Григорян, Элеонора Норайровна

Выводы ВЫВОДЫ

1. Изучены пролиферативная активность и динамика синтеза специфического продукта — меланина в клетках пигментного эпителия сетчатки (ПЭС) и радужки (ПЭР) в процессе их трансдифференцировки у тритонов. Выяснено, что превращение этих клеток в нейробласты сетчатки и волокна хрусталика осуществляется при условии освобождения клеток от признаков исходной дифференцировки — в пролиферирующих клетках ПЭС и ПЭР подавляется синтез меланина. В случае одновременно протекающих процессов пролиферации и синтеза меланина, имеющих место в клетках областей ПЭС и ПЭР, не претерпевающих конверсию, происходит стабилизация исходной эпителиальной дифференцировки и восстановление числа клеток. Подавление синтеза исходного специфического продукта при трансдифференцировке ПЭС и ПЭР происходит при сохранении отдельных звеньев процесса биосинтеза меланина.

2. Исследованы время появления и локализация специфических макромолекул новых возникающих дифференцировок: Б-100 белка, белков нейрорецепторов и кристаллинов при превращении ПЭС в нейральную сетчатку и ПЭР в хрусталик, соответственно. Показано, что кальций-связывающий белок 100 и М-холино- и ^-адренергические рецепторы в детектируемых количествах появляются на поздних стадиях регенерации сетчатки в процессе восстановления функции регенерата. Выяснено, что в интактных ПЭР и роговице лягушек и тритонов клетки способны к следовому синтезу белков, иммунохимически сходных с а и /?-кристаллинами. Этосвидетельствует о том, что синтез по крайней мере двух классов кристаллинов не связан прямо со способностью ткани к трансдифференцировке. Эти же два класса кристаллинов обнаруживаются на ранних этапах конверсии ПЭР, хотя у-кристаллин выявляется позже — в волокнах регенерата хрусталика. Таким образом, при существовании в исходных и начинающих превращение клетках синтеза отдельных классов кристаллинов полный их набор формируется на поздних стадиях трансдифференцировки.

3. Радиоавтографически изучена активность синтезов РНК, общих и негистоновых ядерных белков в процессе конверсии клеток ПЭС и ПЭР. Выяснено, что вскоре после инициации трансдифференцировки синтезы ДНК и РНК активируются. Максимальная интенсивность этих процессов наблюдается в период высокой пролиферативной активности клеток и в тех облатях ПЭС и ПЭР, которые претерпевают изменения дифференцировки. Позже активность синтезов РНК, общих и негистоновых ядерных белков снижается, свидетельствуя о завершении в клетках активных биосинтетических перестроек и пролиферации.

4. Иммуногистохимически изучена экспрессия специфических белков цитоскелета в процессе превращения клеток ПЭС. Обнаружено, что в процессе трансдифференцировки клеток ПЭС происходит снижение, а затем и подавление экспрессии цитокератинов, белков специфичных для промежуточных филаментов эпителиальных клеток, и появление белков нейрофиламентов НФ-200 — маркера нейральных клеток. Последние обнаруживаются рано, задолго до появления морфологических черт нейральных клеток. В процессе трансдифференцировки клеток ПЭС белки НФ-200 синтезируются de novo, а затем аккумулируются и входят в состав цитоскелета клеток зачатка сетчатки, замещая цитокератиновые промежуточные филаменты. Временные и пространственные изменения экспрессии этого компонента цитоскелета в ПЭС коррелируют со степенью устойчивости дифференцировки клеток, зависимой от микроокружения.

5. При анализе специфических синтезов, а также экспрессии белков цитоскелета выяснено, что прямого перехода от исходной дифференцировки к новой не происходит. В процессе трансдифференцировки ПЭС и ПЭР в нейральную сетчатку и хрусталик образуется особая промежуточная популяция. Ее клетки, обладающие активной пролиферацией и не имеющие каких-либо специфических морфологических черт, все же не являются (как предполагалось ранее) дедифференцированными и сходными с эмбриональными. По наличию следовых исходных синтезов (некоторых классов кристаллинов), сохранению отдельных звеньев меланинового синтеза (фермента тирозиназы), сосуществованию белков промежуточных филаментов разной специфичности клетки этой популяции в большей мере сопоставимы с неопластическими.

6. Иммуногистохимически изучена экспрессия адгезионного компонента ЭЦМ и базальных мембран — фибронектина в процессе трансдифференцировки клеток ПЭС и ПЭР. Выяснено, что распределение фибронектина в базальных мембранах и на поверхности клеток закономерно изменяется: происходит перераспределение фибронектина с базальных поверхностей клеток на латеральные и апикальные, а также снижается его количество в выстилающих трансдифференцирующиеся клетки базальных мембранах. Снижение экспрессии фибронектина на самых ранних стадиях трансдифференцировки расценивается как один из дестабилизирующих сигналов клеточного микроокружения, приводящего впоследствии к изменению фенотипа клеток.

7. Показана роль рост-стимулирующих факторов в прогрессе трансдифференцировки клеток ПЭР в хрусталик. Выяснено, что превращение клеток вентральной радужки в хрусталик возможно при их обработке фактором роста гидры с последующим культивированием в полости глаза. Влияние этих условий приводит к активации пролиферации клеток, в результате чего они оказываются способны осуществить необходимое для завершения трансдифференцировки в клетки хрусталика число клеточных циклов. Обнаружено, что другим стимулирующим трансдифференцировку фактором является ПЭС, культивируемый в полости глаза. Он вызывает формирование дополнительных хрусталиков из клеток дорсальной радужки, образование хрусталика из клеток вентральной радужки и формирование несовершенных сетчаток из клеток ПЭР.

8. Исследование роли рост-ингибирующего фактора и морфогена — ретиноевой кислоты — продемонстрировало его подавляющее пролиферацию действие на клетки всех областей радужки in situ после однократной инъекции. Однако временное ингибирование пролиферативной активности трансдифференцирующихся клеток ПЭР не приводило в дальнейшем к изменениям хода конверсии или нарушению морфогенеза образующихся хрусталиков.

9. В экспериментах по трансплантации ПЭС показана роль межтканевых взаимодействий для осуществления финальных этапов трансдифференцировки его клеток. Выяснено, что сохранение подлежащих ПЭС тканей необходимо для завершения трансдифференцировки в сетчатку в условиях культивирования фрагментов ПЭС в полости глаза. Снятие оболочек ПЭС и нарушение в результате этого необходимых морфогенетических условий для формирования сетчаткоподобных структур приводит к активной пролиферации клеток ПЭС, но и к невозможности их дифференцировки в нейроны.

10. Впервые обнаружен и изучен процесс превращения дифференцированных клеток нейральной сетчатки после ее отслойки у взрослых тритонов. Морфологически описана и количественно охарактеризована популяция биполяроподобных клеток наружного ядерного слоя сетчатки, составляющих 10-12% от общей численности клеток слоя и способных к дифференцировке в фоторецепторы. Показано, что в сетчатке вскоре после гибели клеток, вызванной отслойкой, биполяроподобные клетки смещаются апикальнее и формируют внутренний и наружный сегменты фоторецепторных клеток. Это превращение происходит без дополнительных делений, поэтому сами клетки расцениваются как постмитотические, но не достигшие терминальной дифференцировки. Источником биполяроподобных клеток являются нетипичные биполяры с колбой Ландольта, расположенные во внутреннем ядерном слое и способные пополнять популяцию биполяроподобных клеток наружного ядерного слоя после повреждения сетчатки.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В заключении, опираясь на данные диссертации мы рассмотрим последовательность предполагаемых цитологических и молекулярных событий, лежащих в основе процесса трансдифференцировки клеток глаза у взрослых тритонов.

1. Исходно в дифференцированных клетках глаза взрослого тритона имеет место определенное соотношение биосинтезов специфических макромолекул: например, синтез в клетках ПЭР на незначительном уровне отдельных классов кристаллинов (сами кристаллины при этом иммунологически не детектируются) и на высоком — меланина. Это соотношение, наряду с другими биосинтетическими характеристиками, обеспечивает проявление исходной дифференцировки клеток пигментированного эпителия, так как идентификация дифференцировки связана с мажорными, легко выявляемыми на морфологическом или иммунологическом уровнях, макромолекулами. Состояние терминальной дифференцировки клеток поддерживается стабилизирующими ее факторами, заключенными в микроокружении и сохраняющимися благодаря нормальным связям клеток между собой, клетками соседних тканей и субстратом (базальными мембранами). В качестве одного из таких факторов нами был показан фибронектин.

2. При повреждении ткани, разобщении ее с окружающими тканями, ее выделении или обработке диссоциирующими агентами происходит разрушение нормальных межклеточных взаимодействий и привычного микроокружения. В результате снимается действие факторов, стабилизирующих исходную дифференцировку и ингибирующих клеточную пролиферацию. Например, потеря или перераспределние макромолекул поверхности или базальных мембран (по нашим данным — адгезионных молекул ЭЦМ, таких как фибронектин). Этот этап является самым существенным для инициации процесса трансдифференцировки.

3. Вслед за этим появляются и начинают воздействовать факторы, разрешающие пролиферацию и клеточную конверсию. Эти факторы могут иметь различное происхождение: факторы, локализующиеся в ЭЦМ, базальных мембранах, связанные с поверхностью клеток или высвобождающиеся из цитоплазмы клеток при их разрушении. Информация об изменении поверхности клеток при разрушении их нормальных взаимодействий и об активности новой группы факторов передается внутрь клетки. Передача этой информации может осуществляться с помощью механизма сигнальной трансдукции (ЕдисЫ, 1998).

П1У Т71/Л1 I 0Т1*!О иллл/тспйс ^ ^^

4. Трансмембранно передающийся сигнал с поверхности приводит к цитоплазматической реорганизации. По нашим данным на этом этапе возможны перестройки цитоскелета: постепенная замена одних специфических белков промежуточных филаментов цитоскелета на другие (цитокератинов на нейрофиламенты при трансдифференцировке клеток ПЭС в нейральную сетчатку). Известно, что цитоскелет клеток ответственен за компартментализацию цитоплазмы и органелл и проведение сигнала с поверхности к ядру. Не исключено, что изменения цитоскелета наряду с другими факторами участвуют в регуляции синтеза специфических макромолекул.

5. Затем разворачиваются пролиферативные события и сопровождающая их дедифференцировка клеток, которые находятся под контролем митогенов. По данным литературы последними могут быть факторы роста фибробластов, по нашим результатам — также фактор роста гидры и факторы роста, выделяемые трансплантированным в полость глаза ПЭС. Наши данные демонстрируют также резкое увеличение в это время синтеза ДНК, РНК, общих белков и среди последних ядерных негистоновых белков.

6. В процессе пролиферации и дедифференцировки клеток на фоне активированных синтезов РНК, ДНК и белков происходит изменение работы генов, ответственных за специфические синтезы. Нами показано угнетение на этом этапе в пигментированных клетках глаза специфического синтеза исходной дифференцировки, синтеза меланина. Однако, это не означает, что все звенья синтеза специфических продуктов (от транскрипции кодирующих их генов до посттрансляционных событий) репрессируются. Опираясь на собственную информацию и данные литературы, мы допускаем сохранение отдельных участников биосинтеза специфических продуктов (например, ключевого фермента биосинтеза меланина — тирозиназы) и посттрансляционные изменения синтезированных молекул, делающие их недетектируемыми.

7. Увеличение в результате пролиферации числа клеток с изменившимся паттерном экспрессии генов и формирование ими новых взаимоотношений между собой и окружением приводят к работе факторов, разрешающих дифференцировку клеток в новом направлении. Нами показано, что существенную роль в это время могут играть морфогенетические факторы, такие как агрегация клеток, формирование контактов, натяжение клеток. Например, только при наличии подстилающих ПЭС оболочек происходит

ЛТ/1 T11S\7 I /71 f 11 n LI A.' tbn LI С

Я АТ^ГЛ ^ТИГ^Т^Т/* ТЭ рртийтт^у ГТ1ЛХТ Т~»ЛЯиГ1ТТТТЯ1Л'ГЯТТ7ЛСГУ ТГ}Г X} п<~»ттг\/^тх

X ^ £1 Ч^/Ч^'Ч^-'Ч^ХАХ-^^Х^'^А^Х^ЧЛ VI V Л и Ч^Ч^ 1 А ^ ^АХ X Ч^ХХ.1 ХМХ X А 1 X'—' N- и глаза.

8. В результате морфогенеза агрегатов, состоящих из завершающих транедифференцировку клеток, и окончательного приобретения клетками своего места во вновь образованной структуре активируются новые специфические синтезы и происходит накопление продуктов, определяющих новую аллотипическую дифференцировку и функции возникших клеток. По нашим

ТТА ТГТГТ-ТЛ

Цихххиих^! и лих 1.14/^/ Г хч^^/д, ХХЧ-/./ХХ-».1АУАЧ/ А V/! АХ 1X ЧЛАЧЧ/ X Ы X АХХ^ X V/! к-* X V« Ч/Ч/^АЧ/АЧ} АХ£У\/АХЧ'/ЧЧУ(£а,ХХ X окончательное становление систем нейрорецепторов в возникшей благодаря т^^аиг'тттдгКгЬАГЧАХдттт^гч/^тэтл^ хлттАтг/лг^ П^Г1 г»»^'гттс*т,глА о т я тгм/& исл/лттттАииА /у о тл л/

А^и-АХ^^АХХ^Ч^УЧ^Ч/ХАХД^Х^/ЧУА^АЧЧ/ АЧ«>А\*АЧ/АЧ АЧу Чг'Ч/ А ~А М А АЧ V ) V* А ЧЛАЧУАЧЧ/ XX С4АЧЧУХ Х^ АЧ/АА ААЧ/ XI у хлгчттг»татттгтдигчтэ ол оилц! л^лгла^лоаиигмч хх'Ъ хгп&'-сгы' -»ла ттллмлтгтд ттт-тхл^

АЧ^-'ААЧ' А Си» А^АГАХХЧ^А^ Х»Ч-/ А^АаОхЗаЭ Ч/СЬ«Э Х* ЧА А А А ЧУ 1¥А АА--* АЧ^АЧ^АЧ-»АЧ ^ ЫуЦ^ УХЧХЧАХ ^ У *»' А V*.» АА А XXV •

9. В результате накопления в клетках новых специфических продуктов и ингибированного синтеза (или деградации) «старых« возникает новое определенное соотношение специфических макромолекул внутри клетки. Это соотношение становится устойчивым и определяет проявление новой специфической дифференцировки.

Таким образом, в данной работе нам удалось показать, что процесс трансдифференцировки клеток глаза позвоночных животных, помимо изученных ранее изменений морфологии и пролиферативной активности клеток, сопровождается заменой специфических макромолекул. Меланиновый синтез пигментированных эпителиальных клеток сетчатки и радужки ингибируется, а на смену ему после образования нескольких поколений клеток приходит синтез S-100 белка, накапливаются белки нейрорецепторов и кристалликов, соответсвенно. При этом появление нового специфического продукта может быть связано с его синтезом de novo (белок S-100, нейрофиламенты) или только с накоплением (ос- и ¡6-кристаллины, белки нейрорецепторов). Смена специфических синтезов проходит на фоне 2 — 3-х кратного повышения активности синтезов РНК, общих и негистоновых ядерных белков. Изменение дифференцировки клеток сопровождается также заменой специфических белков цитоскелета (белков промежуточных филаментов): при транедифференцировке клеток ПЭС цитокератины замещаются белками нейрофиламентов. Все эти превращения

ТТСТТ/ЛТ^Г« СГ Г> ТЛСГ ТТ\Г и(ЛС*1ГГ\ЛTi-T/T/TV ГТОХГОТТ^Т-ГТ/ТГ* Т'ТЛ QU^ TT J Ж LJ Т Т ТТТЛЛ f 1.0 Т ТТ ТТ V Г" сг wj1 xi^W A XJJ А/ХАЧ/ A V/X D J^/X^j1 XX VVXWJxDxVtX/V. X X Ч/ АЧЧ/ J XV X X * X AI 1 pUXX V^ tXV|/VJ/VXXJJ,tX^ J XVLL^iXyVV/X^ активно пролиферирующих клеток. Однако возникающие транзитные клеточные популяции, являясь дедифференцированными морфологически, по ряду биохимических критериев таковыми не являются. Каждый из этапов

Л7СТ71АТ1/ЛМ»Л ^ ^ С

Т1ЛЯ ТЛОТТТЛгЬЖАГЧАиТТТЛТЛГЧТЭТ/'ТЛ /ЧлиТЛТТО?*ТТТЛСГ ТТТЛГЛГЧЛРРР ТЛ 'ЗЯТЭАТЛТТТАТ-ТТЛА гтГМТАГ'Г'яЛ ггЯТЭТЛРТЛТ Г^Т4

X Д АА ^^ Ч^А А Ч^АУАЧ А:! ^1111111^/1^11/1, 11|/ЧУХ XX -» М ХУ I I I ^1111 Ч/ X I ^У ЧУ 1-1, V С+у ^и1Л1У111 VI ряда контролирующих факторов. Контроль процесса клеточной конверсии осуществляется как со стороны клеточного микроокружения, в частности адгезионных факторов внеклеточного матрккса и базальных мембран (фибронектин), так и со стороны экзогенных (фактор роста гидры, ретиноевая

Т/*ТЛГ'ТТГ\ТС|Л тл ^Т-Г иттV /^А'"ГТТЯ'"ГГЧ1Ти"Е-ТТЛ а ГЧА'тЛТТСТТ'/'МЛ/ЛТЭ ТЛГ^Г»^^ тд Аи АО а Ъ

ХЧХ1Ч/./АЧУ А ХА -ЗиДчл ^ИИХУЛ/Ч ^Ч/Ч/ X ~Х1Л X ЧУ А11ХУ1 X1 ЧрМ-ХЧ X у J-/w 1 ^ХЛАи^^и XI ^-Лч/лд. Х-* тяумга л/ття р.ттА1Лтэт^т а и я тлттл тл я ^тл я тл гч тт тл п я тх. иполлп ЛДГ>ТТАТТХ иЧУЧ^ А V 1 М1\УПУ ^Ди^АХ-'У!^ 1X XX А М1Х« XX V11Í1VW1LI 11 ^ А\У тлдои^ииа Т/*ТГАТ1Г\ТШГ\ТЛ тттяггКгКАт-чАитттягчгчтэт^тт ГТУ^АТЭГЧЯ тттАигтлА ^лтлттгмтсг-п/лттгч ттгч^липгтлг

ЖХ^АУХ^ХХ^ХХХХЛ X V 111^11 ^х хч|у ^1Х1ЦХ х^чу х->х\.х1 1"' Ч/Х*^ КЛХ-Ц Ч/Х X XX Ч^ ЧУХХА1ЧУ.»Х.^Х^ЧУХХЧУ,,£-Д,ЧУЧ-'АХ&1.^Ч

1ЛТТРТГМГ ТТТЛгЬгЬАГ>АиТТТЛГ\ОЯ^иИ1ГЧТЛ и АТЛГ^Я ТТХ.иГ>ТЛ рртияхтгтл Т? гЪоТ^Т^ТТАТ-ГТГЧТЛиТ V

X \/А * 1 Ч^У Ч/ИД-^ХХ^УЧ^ХУЧШХХЧУХХ JtXVl:l^/MJlL/llV/Il Ч--Ч/ X X С* X -ГчХ1 ХУ X Ч/А X X у Арлхини.

1Ч/Т/~\ТТАТТТ ТТАЛ/Г/~\иГ/"»ТТ"\ТЛГ\Л7АТ Т-ТС1 ТТТ*ХТТЛА тАЦПЛТРиЯ о титэ А Т^ Т Т Т^ -V ТТАТГЧТГТГГ\Т-,Г\ ттлгтс» тэ

ХТХЧ^^С^АЛ-» /-^Ч^ухчуичух^УХХ!-^ ^х чр ^-.ПЧУАУХЧ-'ХХЧ. Х\.Ч^.П.Е5С]^УЧ/Х1ХХ ХХ^ХЧ/Х "ХХХЧУХ ЧУ ХШШ ХУ нейральной ткани взрослых позвоночных и открывает путь к дальнейшему ее изучению. Использованные в работе экспериментальные приемы и подходы являются оригинальными, а полученные данные находят подтверждение в

ГЧЭ АТТАТГТ* СГУ ТТТТХА-ГЧС! Т^Л/ТЛТТ ТЭ ПГ/ЛЛ* ТТТЛГЧТА ТЛ тау ТТ'ГГЧ ТТГЧСТТЭТТСТТГ\ГГГ»СТ ТГМТХ. Т/Ч"» Г'АТЛТТаГ» ТТг\ ^-хуч//а,4'хххх./х./ч лп 1 ч/^ус«. х у ^у!у1 Х> 1 -ххх^хч»1 Х1 1 УД) л а V ич/лилуич/ а V/! х чулглчу^ ^чухА хис> ххчу

ЧЯТТТАЛЛ\7 Л/ГиАииХЛ ТТ Я И и 1Т А ТЛ Я ТТГЧЮГМТТЯТТТЛ ГТ\Гг ГГ Я ти иГАО^^ОТТТЛ\Л\7ХГ\ тл ттг\г,ггЯ'гг\ттил/то ниидуш^ ауххх^ихххч/) ^£4-1111x714/ с*чу чу 1 х>1 хАчу —шчитли ^^Ди 1 и хчу ха /-Цчу ^ х кл, х чу хи^хлу базу для описания процесса конверсии клеток глаза позвоночных в терминах молекулярной биологии.

СС*хг1ялх1ж *х'А тэтлттст-гг'сг 7ТЯ тттигатлттттла пллттл тлг»г»ттагтгмэс1 итлст ^*ляиг»тттлгЬгЬр1ЛАтгтттлтлг\ртлтл9

XVXVXXIV!* 1 УХЧЧ/ 1>1ИД/1 Х V/! ААХХ1Ч; XXX АА11У1 X .

Т^ иаг'ТАашАР т>1ЛА\/г ст тлят/ тттлАттгкггях>тгстАт,г,а тллг - тттэс* ГТа-птэх^ттл пэа'зоиг о тлгт'ттАттгмэяитлАлл

АУ 1ХЧ4-Ч/ X ЧУУААХ4,Ч/Ч/ ХУ£У Ч/1УХА1. } АЧЬ*АЧ А С»ХУ»»АУХЧУ X Ч.'УА } 11УЧ Дх/и! X ХЧ/^-У ХУАУА11 Ч/ХУУХ-УЧШ V XX УУ^АУДЧУ ХУС*Г111^1»1

Л ^оТТ АЪ"\/ ТТСГТЛТГ Т Т V" О^Э Я ТЛЛЛГ\ТТАТЛГ»Т'Х5ТЛТЛ" гК Я ТУТ^/ЛТЛОО А * Т Л ТУ* ТЛ Г/* МГ Аиттст г»

XVI ЧУЛ ХХ/ХЧу 1ЛИА1У1 ЧУ ,¿4^*14/ X и XIXI Vjyd.1V X ЧУ ШПЛр V Vл М^ У1ЧХ/ХХХХХХ V трансдифферекцирующимися клетками, с исследованием проведения поступившего в результате этих взаимодействий сигнала и механизмов специфической экспрессии генома в соответствии с информацией, полученной извне. Второй путь — поиск и исследование роли генов, в том числе и гомеобоксных, специфически экспрессирующихся в процессе изменения клетками их фенотипа. Есть уверенность, что на стыке этих двух направлений очень скоро будет достигнута основная цель многолетних исследований и станет понятен в бгчтт^тттт^^ тт&'гяттатг лл&хящтълл гхто^тп'гориисгц ^я ппаоп'.|тттоиии тгтт^т^гчпиглт^ дифференцировки у позвоночных. Это, в свою очередь, позволит решить проблемы регенерации тех тканей и органов, клетки которых способны к изменению своей специфической дифференцировки.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Григорян, Элеонора Норайровна, 1998 год

1. Абелев Г.И., Бакиров Р.Д. Иммунорадиоавтография // В кн.: Иммунохимическийанализ. Зильбер Л.А. (ред.) 1968. М. Медицина. С. 271-295.

2. Балаев А.Г., Каламкарое Г.Р., Миташов В.И. Накопление зрительных пиг ментов ивосстановление ЭРГ в процессе регенерации у взрослых тритонов // Изв. АН СССР. Сер.биологическая. 1990. N 5. С.711-716.

3. Барабанов В.М. Экспрессия д кристаллина в аденогипофизе куриного эмбриона //

4. ДАН СССР. 1977. Т. 234. С. 195 198.

5. Белкин В.М., Кухаренко В.И., Володарская С.М. и др. Изменение биосинтезафибронектина в эмбриональных человеческих фибробластах с трисомией по хромосомам 7 и 9//Вопр. мед. химии. 1985. Т. 31. С. 125-130.

6. Бродский В.Я., Урываева И. В. Клеточная полиплоидия, пролиферация идифференцировка//Наука. М. 1981. 257 с.

7. Вязовая Е.А., Малуп Т.К., Свиридов С.М. Содержание нейроспецифического белка

8. Б-ЮО в головном мозге мышей разных имбредных линий // ДАН СССР. 1975. Т. 225. № 5. С.1194-1197.

9. Гофман И.А., Свистунов С.А., Миташов В.И. Радиоавтографическое исследование регенерации сетчатки у серых шпорцевых лягушек // Совре- менные проблемы регенерации. Межвуз. Сб. Йошкар-Ола. 1983. С. 64-70.

10. Григорян Э.Н. Радиоавтографическое исследование синтеза РНК и меланина вклетках тканей глаза в процессе регенерации сетчатки у тритонов // Современные проблемы регенерации. 1982. Изд. МарГУ. Йошкар-Ола. С. 233.

11. Григорян Э.Н. Трансдифференцировка клеток как один из механизмов регенерации

12. В кн.: Современные проблемы регенерации: фармакологическая регуляция регенерации. 1987. Изд. МарГУ. Йошкар-Ола. С. 97 106.

13. Григорян Э.Н. Регенерация глаза после отслойки и отрыва сетчатки у тритонов

14. Р1еигос1е1е5 луаШп // Изв. РАН. Сер.биологическая. 1992. N 1. С. 18-,

15. Григорян Э.Н. Сетчатка хвостатых амфибий как модель для изученияпотенциальных регенерационных возможностей сетчатки других позвоночных // Онтогенез. 1996. Т. 27. N3. С.173-185.

16. Григорян Э.Н., Антон Г.Дж. Особенности регенерации глаза тритонов послеполной отслойки сетчатки, вызванные изменением влияния гравитации в эксперименте с использованием клиностата // Изв. РАН. Сер. биологическая. 1994. N3. С.342-351.

17. Дабагян Н.В. Регуляционные свойства глаз зародышей осетровых рыб // Докл.

18. АН СССР. 1959. Т. 125. С. 938-940.

19. Дабагян Н.В. Регенерация сетчатки в глазах зародышей осетра // Журн.

20. Общ.биол. 1960. Т. 21. С.48-53.

21. Дабагян Н.В., Оганесян Р.О. Электрофизиологическое исследование восстановления функции в регенерирующей сетчатке у взрослых тритонов // Онтогенез. 1971. Т.2. N 3. С.327

22. Дабагян Н.В., Спиридонова Т.Н., Оганесян Р.О. Регенерация сетчатки уголовастиков//Научн.докл.высш.школы. Биол.науки. 1969. Т. 50. N 4. С.25-27.

23. Дабагян Н.В., Шерешева Е.Л. Регенерация сетчатки у головастиков // Архив, анат.,гист, эмбриол. 1966. Т.50. N 6. С. 12-19.

24. Давыдова Т.В. Ультраструктура смещенных биполяров в сетчатке черепах //

25. Цитология. 1981. Т.23. N 1. С. 12-15.

26. Долъникова А.Э., Ямскова В.П. Молекулярные факторы адгезии клеток нейральныхтканей, независимая система адгезии // Онтогенез. 1990. Т. 21. N 4. С. 358 -367.

27. Дондуа А. К. Роль кластерных гомеобокссодержащих генов в морфогенезеживотных // Онтогенез. 1997. Т. 28. N 1. С. 3 17.

28. Заварзин А.А. Синтез ДНК и кинетика клеточных популяций в онтогенеземлекопитающих//Л.: "Наука". 1967. 195 с.

29. Знойко C.JI. Роль биологически активных факторов в регенерации структур глаза иконечности у амфибий. Автореф. дисс. канд. биол. наук. 1996. Москва. ИБР РАН. 185 с.

30. Знойко И.Ю. Изучение структуры и экспрессии гомеобоксных генов семейства Sixв процессе регенерации конечности амфибий // Автореф. дисс. канд. биол. наук. 1997. Москва. ИБР РАН. 18 с.

31. Казанская О.В., Маркитантова Ю.В., Снеговая И.Ю. Долгилевич С.М.,

32. Тарабыкин B.C., Зарайский А.Г., Лукьянов С.А., Миташов В.И. Идентификация новых генов и анализ их экспрессии в процессе ре- генерации хрусталика и сетчатки у взрослых тритонов // Изв. Акад. Наук. Сер. биологическая. 1995. N 3. С. 276-279.

33. Конюхов Б.В. Генетика развития позвоночных. 1980. М.: Наука. 294 с.

34. Корочкин Л.И. Взаимодействие генов в развитии. 1977. М.: Наука. 280 с.

35. Кусулакос С., Антон Г.Дж. Витамин А зонд в изучении роста,дифференцировки и морфогенеза // Изв. АН СССР, Сер. биологическая. 1991. Т.18. N 3. С. 250-258.

36. Лопашов Г.В., Строева О.Г. Развитие глаза в свете экспериментальныхисследований. М.: Изд. АН СССР. 1963. 205 с.

37. Маркитантова Ю.В., Лукьянов К.А., Казанская О.В., Миташов В.И., Лукьянов С.А.

38. Анализ экспрессии генов, содержащих последовательности Ler-1 и УеЯ-1в эмбриогенезе, при регенерации и в интактных тканях у тритонов // Онтогенез. 1997. Т. 28. N4. С. 262-270.

39. Миташов В.И. Авторадиоавтографическое исследование восстановления сетчаткиу гребенчатых тритонов (Triturus cristatus) // Докл. АН СССР. 1968. Т. 181. N6. С. 1510-1513.

40. Миташов В.И. Динамика синтеза ДНК в пигментном эпителии в процессевосстановления глаза после хирургического удаления сетчатки у взрослых гребенчатых тритонов (Triturus cristatus) // Цитология. 1969а. Т.П. N4. С. 434446.

41. Миташов В.И. Характеристика митотических циклов клеток пигментногоэпителия и зачатка сетчатки у взрослых тритонов (Triturus cristatus, Triturus taeniatus) // Докл. АН СССР. 19696. Т.189. N3. С.666-669.

42. Миташов В.И. Характеристика митотического цикла при регенерации линзы вопыте с полным удалением сетчатки и линзы у взрослых тритонов // Докл. АН СССР. 1969в. Т. 189. С. 913 916.

43. Миташов В.И. Динамика синтеза ДНК в клетках пигментного эпителиявзрослых тритонов при восстановлении глаза после перерезки зри- тельного нерва и кровеносных сосудов // Цитология. 1970а. Т.12. N 12. С.1521-1529.

44. Миташов В.И. Радиоавтографическое и цитофотометрическое исследованиетрансформации клеток пигментного эпителия в сетчатку при регенерации глаза у тритонов // Дисс. кан. биол. наук. 19706. Москва. 187. с.

45. Миташов В.И. Пролиферация клеток пигментного эпителия сетчатки взрослыхтритонов на поздних стадиях восстановления удаленной сетчатки // Онтогенез. 1974. T.5.N1. С. 80-83.

46. Миташов В.И. Радиоавтографическое исследование синтеза меланина в клеткахпигментного эпителия сетчатки у взрослых тритонов после хирургического удаления сетчатки // Онтогенез. 1976. Т.7. N5. С. 495-501.

47. Миташов В.И. Обмен меланиновых гранул в радужке и пигментном эпителиисетчатки у взрослых тритонов после завершения регенерации глаза // Онтогенез. 1978. Т.9. N2. С. 183-188.

48. Миташов В.И. Закономерности изменений митотических циклов при кле- точнойтрансформации и регенерации у низших позвоночных животных // Цитология. 1980. T.22.N4. С.371-380.

49. Миташов В.И. Пролиферация и дифференцировка при регенерации глаза и мышц //

50. Дисс. на соиск. уч. ст. докт. биол. наук. 1988. С. 16-43.

51. Миташов В.И. Клеточные источники, регуляторные факторы и экспрессия геновпри регенерации хрусталика и сетчатки у позвоночных животных // Известия РАН. Сер. биологическая. 1996. N3. С. 298-318.

52. Миташов В.И., Григорян Э.Н. Пролиферация клеток радужины и пигментногоэпителия сетчатки на ранних стадиях после удаления линзы и сетчатки у испанских тритонов// Онтогенез. 1976. Т. 7. N2. С. 141-147.

53. Миташов В.И., Малиованова С.Д. Пролиферативные потенции клеток пигментного и цилиарного эпителиев глаза шпорцевых лягушек в норме и при регенерации//Онтогенез. 1982. Т. 13. С. 228-234.

54. Миташов В.И., Лукьянов С.А., Казанская О.В., Маркитантова Ю.В.,

55. Долгилевич СМ., Снеговая И.Ю., Знойко С.Л., Микаэлян A.C. Мо- лекулярно-биологические подходы в исследовании экспрессии генов в процессе регенерации // Изв.Акад.Наук. Сер. биол. 1995. N 3. С. (в печати).

56. Миташов В.И., Старостин В.И., Слудская А.И., Паршина Е.Ф.

57. Радиоавтографическое исследование макрофагальной активности при регенерации глаза у взрослых тритонов // Онтогенез. Т. 10. N 4. С.365 -369.

58. Миташов В.И., Строева О.Г., Синщина В.Ф. Радиоавтографическое исследование роста и дифференцировки регенерирующей сетчатки у взрослых тритонов // Онтогенез. 1973. Т.4. N 6. С.568-580.

59. Михайлов А. Т. Специфические белки эпителия хрусталика амфибий // ДАН СССР.1982. Т. 265. С.199 201.

60. Михайлов А.Т., Корнеев А.Я. Иммунохимическое изучение водорастворимыхбелков хрусталика Xenopus laevis с мутацией периодического альбинизма // Онтогенез. 1979. Т. 10. С.220 230.

61. Михайлов А. Т., Такенов Ж.А. Изменение клеточной локализации у -кристаллинов впроцессе дифференцировки хрусталика амфибий // Онтогенез. 1983. Т. 14. С. 208-210.

62. Панова И.Г. Цитоструктура и цитохимия пигментного эпителия сетчатки // Изв.

63. РАН. Сер. биол. 1993. N2. С. 165 190.

64. Панова И.Г. Межфоторецепторный матрикс: развитие, состав и функциональноезначение // Онтогенез. 1994. Т. 25. N 1. С. 5 12.

65. Паршина Е.Ф., Mumaiuoe В.И. Позднее мечение клеток пигментного эпителия ирадужки у обыкновенных тритонов // Онтогенез. 1978. Т.9. N6. С.616-626.

66. Полтева Д.Г. Проблема трансдифференцировки клеток и морфогенезы у гидроидов

67. Онтогенез. 1996. Т. 27. N 1. С. 17-27.

68. Симирский В.Н., Григорян Э.Н., Миташов В.И., Михайлов А.Т. Синтезкристаллиноподобных антигенов в эпителии роговицы, радужке и сетчатке взрослых амфибий // Онтогенез. 1984. Т. 15. N 4. С. 439 440.

69. Симирский В.Н., Михайлов А.Т. Специфические антигены эпителия роговицыамфибий // ДАН СССР. 1983. Т. 270. С.715 718.

70. Синщина В.Ф. Синтез ДНК и кинетика клеточных популяций при эмбриональномгистогенезе сетчатки мыши // Архив, анат. , гистол., эмбриол. 1971. Т. 61. N6. С. 58 67.

71. Синщина В.Ф. Радиоавтографическое исследование некоторых параметровкинетики репродукции клеток при гистогенезе сетчатки тритона // Онтогенез. 1981. Т. 12. N5. С. 521 -525.

72. Сологуб А.А. Становление дифференцировки пигментного эпителия и стимуляция его метаплазии у костистых рыб // Онтогенез. 1975а. Т.6. N 1. С.39-47.

73. Сологуб А.А. Метапластические превращения тканей глаза у головастиков ивзрослых шпорцевых лягушек // Онтогенез. 19756. Т.6. N 6. С.563-572.

74. Стокум Д.Л., Миташов В.И. Регуляция пространственной организациирегенерирующей конечности амфибий // Онтогенез. 1990. Т.21. С. 5 -28.

75. Строева О.Г. Морфогенез и врожденные аномалии глаза млекопитающих. 1971.1. М., Наука. 242 с.

76. Строева О. Г. Наследственные и экзогенные колобомы сетчатки и нормаль- ныйморфогенез глаза.1. Наследственные колобомы // Журн.Общ. биол. 1961а. Т.22. С.255-264.

77. Строева О.Г. Наследственные и экзогенные колобомы сетчатки и нормаль- ныйморфогенез глаза // Журн.общ.биол. 19616. Т.22 С.436- 443.

78. Строева О. Г. Превращение пигментного эпителия в сетчатку на продви- нутыхстадиях эмбриогенеза крыс // Докл. Акад. Наук СССР. 1962. Т. 143. С.991-993.

79. Строева О.Г. Экспериментальное исследование морфогенетических свойствпигментного эпителия в эмбриогенезе млекопитающих // Журн. Общ. биол. 1960. Т.21. С. 113-121.

80. Строева О.Г., Долъникова А.Э., Сологуб А.А., Белкин В.М. Иммуногистохимическоеисследование локализации фибронектина при формировании сосудистой оболочки под влиянием пигментного эпителия у куриных зародышей // Онтогенез. 1989. Т.20. N4. С. 350-356.

81. Строева О.Г., Миташов В.И. Дифференцировка и дедифференцировка пигментированных частей глаза позвоночных животных при метаплазии // Метаплазия тканей. 1970. Наука. М. С.93-105.

82. Tupac Х.П. Нейропептиды стимуляторы морфогенеза планарий и гидроидныхполипов // Онтогенез. 1985. Т. 16. N 5. С. 537 -538.

83. Tupac Х.П., Лукьянов С.А., Лакирев А.В., Белоусов Л.В. Влияние головногоактиватора пресноводной гидры на регенерацию морских гидроидных полипов // Онтогенез. 1986. Т. 17. N 1. С. 84 86.

84. Федцова Н.Г. Автореф. канд. дисс. М. 1982.

85. Федцова Н.Г. Индукция лентоидов в зачатке аденогипофиза куриных эмбрионов 5йод дезоксиуридином и 5-бром дезоксиуридином // // В сб.: Закономерностииндивидуального развития живых организмов. Материалы VII Веесоюзн. Совещ. Эмбриол. 1986. Часть! С. 103.

86. Хоперская О.А., Звиададзе КГ. Индукция линз в радужке взрослых Anura // ДАН

87. СССР. 1979. Т.246. С. 1496-1499.

88. Шевченко Н.Н. Исследование морфогенетических потенций ириса и оптическойсетчатки взрослого Triturus cristatus // ДАН СССР. 1947. Т.58. С.705 710.

89. Школъник-Яррос Е.Г., Калинина А.В. Нейроны сетчатки. М. Наука. 1986. 204 с.

90. Шмуклер Ю.Б., Григорьев Н.Г., Московкин Г.Н. Адренорецептивные структуры вранних зародышах шпорцевой лягушки (Xenopus laevis) // Журн. эволюц. биохимии и физиологии. 1988. Т. 24. N5. С. 621-666.

91. Энгелъгардт Н.В. Метод флуоресцирующих антител и его применение дляобнаружения тканевых антигенов на срезах // В кн.: Иммунохимический анализ. 1968. М: Медицина. С. 165-188.

92. Abe S., Eguchi G. An analysis of differentiative capacity of pigmented epithelial cells ofadult newt iris in clonal cell culture // Develop. Growth Differ. 1977. V.19. P. 309 -317.

93. Acevedo M.C., Ortiz J.R. Effect of serum, fibronectin and laminin on cell morphologyand growth of Xenopus laevis dorsal iris cells in vitro // J. Cell Biol. 1989. V.109. N4. P. 324a.

94. Achazi R., Yamada T. Tyrosinase activity in the Wolffian lens regenerating system //

95. Develop. Biol. 1972. V. 27. P. 295-306.

96. Adler R., Hatlee M. Plasticity and differentiation of embryonic retinal cells after terminalmitosis // Science. 1989. V.243. P.391-393.

97. Aebi I J., Fowler W.E., Rew P., Tung-Tien Sun. The fibrillar substructure of keratinfilaments unraveled // J.Cell Biol. 1983. V.97. P.l 131.

98. Agata K., Eguchi G. <3-crystallin gene is transcribed in multipotent dedifferentiatedpigmented epithelial cells // Develop., Growth. Differ. 1984. V.26. N4. P. 385.

99. Agata K., Itoh Y, Eguchi G. Molecular cloning of genes specifically expressed inpigmented epithelial cells // Develop., Growth. Differ. 1985. V.27. N4. P.506.

100. Agata K., YasudaK., Okada T.S. Gene, coding for a lens-specific protein, delta crystallin,is transcribed in non-lens tissues of chicken embryos // Develop. Biol. 1983. V. 100. P. 222 226.

101. Akam M., Dawson I., Tear G. // Development. 1988. V. 104 (Suppl.). P. 123 -133.

102. Akiyama S.K., Yamada KM. Fibronectin in desease // Connective tissue desease. Wagner

103. B.M., Fleischmajer P., Kaufman N. (eds.). Baltimore. Williams and Wilkins. 1983. P. 55-96.

104. Albers K.,Fuchs E. The molecular biology of intermediate filament proteins //1.ternat.Rev.Cytol. 1992. V.134. P. 243-279.

105. Alder H., Schmid V. The role of the cell cycle in transdifferentiation of mononucleatedcross striated muscle cells into smooth muscle and sensory cells in vitro // In: Progress in Developmental Biology. 1986. Part A. Alan R. Liss Inc. P. 27 -34.

106. Alho A.M., Underbill C.B. The hyaluronate receptor is preferentially expressed onproliferating epithelial cells // J. Cell Biol. 1989. V.108. P. 1557-1561.

107. Altaba A.R., Jessel T.M. Retinoic acid modifies the pattern of cell differentiation in thecentral nervous system of neurula stage Xenopus laevis // Development. 1991. V. 112. P. 945 958.

108. Altshuler D., Cepko C.L. A temporally regulated, diffusible activity is required for rodphotoreceptor development in vitro //Development. 1992. V.114. P. 947-957.

109. Anderson D.H., Stern W.H., Fisher S.K., Erickson P.A., Borgula G.A. The onset ofpigment epithelial proliferation after retinal detachment // Invest. Opthalmol. Vis. Sci. 1981. V.21.N 10. P. 10-16.

110. Arrindell E.L., McKay B.S., Jaffe G.J., Burke J.M. Modulation of potassium transport incultured retinal pigment epithelium and retinal glial cells by serum and epidermal growth factor//Exp. Cell Res. 1992. V. 203. P. 192-197.

111. Arruti C., Courtois Y. Morphological changes and growth stimulation of bovine epitheliallens cells by retinal extract in vitro // Exp. Cell Res. 1978. V. 117. P. 283 288.

112. Atchinson M.L., Perry R.P. Tandem kappa immunoglobulin promoters are equally activein the presence of the kappa enhancer function // Cell. 1986. V. 46. P. 253 262.

113. A very R.L., Glazer B.M. Inhibition of RPE cell attachment and migration by a syntheticpeptide derived from the cellbinding domain of Fn // Arch. Ophthalmol. 1986. V. 104. P. 1220-1224.

114. AubinJ.E., OsbornM., Franke W.W., Weber K. Intermediate filaments of the vimentintype and the cytokeratin-type are distributed differently during mitosis// Exp. Cell Res. 1980. V.129. P.149- 165.

115. Barnstable C.J. Molecular aspects of development of mammalian optic cup andformation of retinal cell types // Prog. Retina Res. 1991. V. 10. P. 45 67.

116. Barritault D., Arruti C., Courtois Y. Is there a ubiquitous growth factor in the eye? // Differentiation. 1981. V.18. P.29-42.101 .Barritault D., PlouetJ., Courty J., Courtois Y. //J. Neurosci. Res. 1982. V.8. P. 477-490.

117. Beebe D. C. Discussion summary: growth factors in the eye // In: Molecular biology of the eye: genes, vision, ocular deseases. 1988. AlanR. Liss Inc. P. 457 460.

118. BissellM., HallH., Parry G. How does the extracellular matrix direct gene expression? // J. Theor. Biol. V.99. P. 31-68.

119. Bittinger H., HeidJ., Wigger N. Are only alfa-2-adrenergic receptors present in retina? // Nature (London). 1980. V.287. P.645.

120. Blose S.H., Chacko S. Rings of intermediate (100-A) filament bundles in the perinuclear region of vascular endothelial cells// J. Cell Biol. 1976. V.70. P.459.

121. Bormann J., Feigenspan A., Wassle H. Organotypic slice culture of the mammalian retina//Visual Neurosci. 1993. V.10. P.203-217.

122. Borras T., Parker D., Wawrousek E.F., Peterson C.A., Piatigorsky J. Regulation of the d crystallin gene family // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1987. V. 28. (suppl.) P. 14.

123. BorstD.E. PhD Dissertation. Appendix I. University of Pennsylvania. Philadelphia. 1984. P. 1-169.1 \5.Borst D.E., McDevitt D.S. Eye lens regeneration and the crystallines in the adult newt

124. Notophthalmus viridescens//Exp.Eye Res. 1987. V.45. P. 419-441. 116.Bouleckbache H., Pinganaud G., Joly C., Darribere T. Ontogenesis of FN in fish retina: interactions with the retinal pigment epithelium // Cell Differ. 1987. V.20. Suppl. P.19S.

125. Braekevelt C.R. Fine structure of the retinal pigment epithelium in the mud minnow ( Umbra limi) // Can. J. Zool. 1980. V. 58. P. 258 276.

126. Braisted J.E., Essman T.F., Raymond P.A. Selective regeneration of photoreceptors in goldfish retina//Development. 1994. V.120. P.2409-2419.

127. Br overman M., Cohen C., Katoh A. Cytotoxicity of lens antisera to dissotiated chick neural retina cells in tissue culture // J. Embryol. and Exptl. Morphol. 1969. V. 21. P. 391-406.

128. Breathnach R, Chambon P. Organization and expression of eucaryotic split genes,coding for proteins // Ann. Rev. Biochem. 1981. V. 50. P. 349-383. 123 .Brockes J.P. Retinoids, homeobox genes, and limb morphogenesis // Neuron. 1989. V. 2. P. 1285 -1290.

129. Brown B.C., Theaker J., Banks P.M., Gatter K.C., Mason D.Y. Cytokeratin expression in smooth muscle and smooth muscle tumors//Histopathology. 1987. V. 11. P.477-486.

130. Buchi E.R Cell death in the rat retina after a pressure induced ischaemia - reperfiision insult: an electron microscopic study. I. Ganglion cell layer and inner nuclear cell layer//Exp. Eye Res. 1992. V.55. P.605-610.

131. Bugra K., Jacquemin E., Ortiz J.R, Jeanny J.C., Hicks D. Analysis of opsin mRNA and protein expression in adult and regenerating newt retina by immunology and hybridization// J. Neurocytol.1992. V.21. P.171-183.

132. Buck C.A., Horwitz A.F. Cell surface receptors for extracellular matrix molecules // Ann. Rev. Cell Biol. 1987. V.3. P. 179-205.

133. Cagan RL., Ready D.F. Notch is required for successive cell decisions in the developing Drosophila retina // Genes and Develop. 1989. V. 3. P. 1099 1112.

134. Calissano P. Specific properties of the brain specific protein S-100 // In: Proteins of the

135. Nervous System (D.Schneider, Ed.). New-York. 1973. P. 13-26.

136. Cammarata P.R., Smith J.Y. Colocalization of laminin and fibronectin in bovine lens epithelial cells in vitro // In Vitro Cell Develop. 1987. V. 23. N 9. P. 611-621.

137. Campochiaro P. A. Cytokine production by retinal pigmented epithelial cells // Int. Rev. Cytol. 1993. V. 146. P. 75 83.

138. Campochiaro P.A., Jerdan J.A., Glaser B.M. The extracellular matrix of human retinal pigment epithelial cells in vitro and its synthesis in vitro // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1986. V. 27. P. 1615-1620.

139. Campochiaro P.A., Hackett S.F., Conway B.P. Retinoic acid promotes density-dependent growth arrest in human retinal pigment epithelial cells // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1991. V. 32. P. 65-72.

140. Charney P., Treissman R., Mellon P., Chao M. et al. Differences in human a and ft globin gene expression in mouse erythro-leukemic cells. The role of intragenic sequences // Cell. 1984. V. 38. P. 251 263.

141. Chen J.R., TsaoM.S., Duguid W.P. Hepatocytic differentiation of cultured rat pancreatic ductal epithelial cells after in vivo implantation// Amer. J. Pathol 1995. V.147. N 3. P. 707-717.

142. Chibon P., BrugalM. Duree de disponibilité de la thymidine exogene chez la larve et le jeune du Triton Pleurodeles waltlii Michan // Ann. Embryol. et morphogenese. 1973. V.6.N1.P. 81-92.

143. Clayton R.M. Cellular and molecular aspects of differentiation and transdifferentiation of ocular tissue in vitro // In: Differentiation in vitro. Yeoman, Truman (eds.). Cambridge University Press. London. 1982. P. 83- 120.

144. Clayton RM. Stability and switching in cellular differentiation. New York. Plenum1. Press. 1982. P. 23 37.

145. Clayton R.M. The molecular basis for competence, determination and transdifferentiation: a hypothesis // In: "Stability and switching in cellular differentiation". Clayton R.M., Truman D.E.S. (eds.). 1982. Plenum Press. New York.

146. ClaytonR.M., Campbell J.C., TrumanD.E.S.IIExp. Eye Res. 1968. V.7. P.ll 16.

147. Clayton R.M., dePomerai D.I., Pritchard D.J. Experimental manipulation of alternative pathways of differentiation in cultures of embrionic chick neural retina // Develop., Growth, Deffer. 1977. V.19. P. 319 328.

148. Clayton RM., Jeanny J.-C., Bower D.J., Errington L.H. The presence of extralenticular crystallins and its relationship with transdifferentiation to lens. Curr. Top. Develop. Biol. 1986. V.20. P.137-151.

149. Coons A.H. Histochemistry with labelled antibody // Internat. Rev. Cytol. 1956. V. 5. P. 1-23.

150. Coulombe J.N., Bronner-Fraser M. Cholinergic neurons acquire adrenergicneurotransmitters when transplanted into an embryo // Nature. 1986. V. 324, P. 569 -572.

151. Coulombre J.T., Coulombre A.J. Influence of mouse neural retina on regeneration of chick neural retina from chick embryonic pigmented epithelium // Nature. 1970. V.228. P.559-560.

152. Courty L., Loret C., Moenner M., Chevallier B., Lagente O., Courtois Y, Barritaidt D. Bovine retina contains three growth factor activities with different affinity to heparin: Eye-derived growth factor I,II,DI II Biochimie. 1985. V.67. P. 265-269.

153. Cowley M., Conway B.P., Campochiaro P.A., Kaiser D., Gaskin H. Clinical risk factors for proliferative vitreoretinopathy//Arch. Ophthalmol. 1989. V. 107. P. 1147- 1151.

154. Crawford K., Stocum D. L. Retinoic acid coordinately proximalizes regenerate patternand blastema differential affinity in axolotl limbs// Development. 1988. V. 102. P. 687-698.

155. Crawford B. Some factors controlling cell polarity in chick retinal pigment epithelium cells in clonal culture// Tissue and Cell. 1983. V.15. P. 993 1005.

156. CrowfordB.J., Vielkind U. Location and possible function of fibronectin and laminin in clones of chick retinal pigmented epithelia cells // In vitro. 1985. V.21. P. 79-87.

157. CunyR, Jeanny J.-C., Courtois Y. Lens regeneration from cultured newt irises stimulated by retina-derived growth factors. Differentiation. 1986. V. 32. P. 221-229.

158. Darnell J.E. Variety in the level of gene control in eucaryotic cells // Nature (London) 1982. V. 297. P. 365 -371.

159. Davidson E.H. Gene activity in early development. 1986. 3rd Edition. Academic Press. Orlando and London.

160. Dawson A.B. The integument of Necturus maculosus //J. Morphol. 1920. V.34. P.487-589

161. DePomerai D.I.,Carr A. Heat shock may relieve a posttranscriptional block on delta crystallin synthesis in cultures of chick embryo neuroretinal cells // Cell, Growth, Diff. 1987. V. 29. P. 37-46.

162. DePomerai D.I., PritchardD.J., Clayton R.M. Biochemical and immunological studies of lentoid formation in cultures of embryonic chick neural retina and day-old chick lens epithelium // Develop. Biol. 1977. V. 60. P. 416 427.

163. Donato R. S-100 proteins // Cell Calcium. 1986. V. 7. P. 123-145.

164. Donato R., Battadlia /<'., Cocchia D. Effects of S-100 proteins on assembly of brain microtubule proteins: Correlation between kinetik and ultrastructural data // J. Nurochem. 1986. V. 47. P.350-354.

165. Doupe A.J., landis S.C., Patterson P.H. Invironmental influences in the development of neural crest derivatives: glucocorticoids, growth factors, and chromaffin cell plasticity Hi. Neurosci. 1985. V.5. P. 2119-2142.

166. Druger R.K., Levine E.M., Glasgow E., Jones P.S., Schechter N. Cloning of a type I keratin from goldfish optic nerve: differential expression of keratins during regeneration // Differentiation. 1992. V.52. P.33.

167. Dumont J.N., Yamada T., Cone M. V. Alteration of nucleolar ultrastructure in iris epithelial cells during initiation of Wolffian lens regeneration // J. Exptl. Zool. 1970. V. 174. P. 184-204.

168. Dumont J.N., Yamada T. Dedifferentiation of iris epithelial cells // Develop. Biol. 1972. V.29. P. 385-401.

169. Eisenberg S., Yamada T. A study of DNA synthesis during the transformation of the iris into lens in the lenstectomized newt // J. Exptl. Zool. 1966. V.162. N3. P. 353-367.

170. Eisenberg-Zalik S., Yamada T. The cell cycle during lens regeneration // J. Exptl. Zool. 1967. V.165.N3. P. 385-393.

171. Eguchi G. Electron microscopic studies on lens regeneration. I. Mechanism of depigmentation of the iris // Embryologia. 1963. V. 8. N 1. P. 45 -62.

172. Eguchi G. Electron microscopic studies on lens regeneration. II. Formation and growth of lens vesicle and differentiation of lens fibers // Embryologia. 1964. V.8. P. 247-287.

173. Eguchi G. In vitro analysis of Wolffian lens regeneration. Differentiation of the regenerating lens rudiment of the newt Triturus pyrrhogasterll Embryologia. 1967. V.9. P.246-266.

174. Eguchi G. // Transdifferentiation and instability in cell commitment. Okada T.S., Kondoh H. (eds.) Yamada Science Foundation. 1986. 433 p.

175. Eguchi, G. Introduction// Semin. Cell Biol. 1995. V.6. N3. P. 105-108

176. Eguchi G. Transdifferentiation as the basis of eye lens regeneration // Cellular and molecular basis of regeneration. 1998. P. 207-228.

177. Eguchi G., Okada T.S. Differentiation of lens tissue from the progeny of chick retinal pigment cells cultured in vitro: a demonstration of a switch of cell type in clonal cell culture //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1973. V.70. P. 1495-1499.

178. Eguchi G., Watanabe K. Elicitation of lens from the ventral iris epithelium of the newt by a carcinogen, N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine // J. Embryol. Exptl. Morphol. 1973. V. 30. P. 63-71.

179. Eguchi G., Abe S.-I., Watanabe K. Differentiation of lens-like structures from newt iris epithelial cells in vitro //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1974. V.71. P.5052-5056.

180. Elgert K.L., Zalik S.E. Fibronectin distribution during newt lens regeneration // J. Cell Biol. 1986. V.103. N5.P. 251.

181. Ericson J., Thar S., Edlund T., Jossell T., Yamada T.Y. Early stages of motor neuron differentiation revealed by expression of Homeobox gene Islet-1 // Science. 1992. V. 256. P. 1555- 1560.

182. Fuji J., Wakasugi N. Transdifferentiation from retinal pigment epithelium (RPE) into neural retina due to Silver Plumage mutant gene in japanese quail // Develop. Growth Differ. 1993. V. 35(5). P. 487 493.

183. Fujisawa H., Tani H., Watanabe K., Ibata Y. Branching of regenerating retinal axons and preferential selection of appropriate branches for specific neuronal connection in the newt // Develop. Biol. 1982. V.90. P.43-57.

184. Fukada K. Purification and partial characterization of a cholinergic neural differentiation factor//Proceed. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. V. 82. P. 8795 8799.

185. Gaur V., Liu Y., Turner J. RPE conditioned medium stimulates photoreceptor cell survival, neurite outgrowth and differentiation in vitro // Exp. Eye Res. 1992. V. 54. P. 645- 639.

186. Gay C.G., Winkles J.A. Heparin-binding growth factor-1 stimulation of humanendothelial cells induces platelet-derived growth factor A-chain gene expression // J. Biol. Chem. 1990. V. 265. P. 3284-3292.

187. Gaze R.M., Fawcett J.W. Pathways of xenopus optic fibres regenerating from normal and compound eyes under various conditions // JEEM. 1983. V. 73. P. 17 38.

188. Geiger B. Membrane cetoskeleton interaction//Biochem., Biophys. Acta. 1983. V. 737. P. 305 -341.

189. Geiger B., Ayalon O. Cadherins // Ann. Rev. Cell Biol. 1992. V. 8 . P. 307 332.

190. Gopal T.V., Shimada T., Baur A.W., Nienhuis A.W. Contribution of promoter to tissue specific expression of the mouse immunoglobulin kappa gene // Science. 1985. V. 229. P. 1102-1104.

191. Gouras P., FloodM.T., Kjeldbye H. Transplantation of cultured human retinal cells to monkey retina // Ann.Acad.Brasil.Cienc. 1984. V.56. N4. P.431 -.

192. Gown A.M., BoydH.C., Chang Y, Ferguson M., Reichler B., Tippens D. Smooth muscle cells can express cytokeratins of "simple" epithelium // Amer.J.Pathol. 1988. V.132. P.223-232.

193. Gregory C., Abrams T., Hall M. cAMP production via the adenylyl cyclase pathway is reduced inRCS rat RPE//Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1992. V. 33. P. 3121 3124.

194. Griffinie L., Marcchio G. Sulla regenerazione totale della retina nei tritoni // 1889 (LJht. no: Stone, 1950b).

195. Grindley J.C., Davidson D.R, HillR.E. The role of Pax-6 in eye and nasal development // Development. 1995. V.121. P. 1433-1442.

196. Grobstein C. Differentiation of vertebrate cells // In: The Cell. 1959. V. 1. Bracher J. A., Mirsky A.E. (eds.). Academic Press. New York and London. P. 437 496.

197. Gulati A.K. Changes in RNA and protein synthesis in the neural retina during lens regeneration in newts // J. Exptl. Zool. 1980. V.214. P. 101-108.

198. Gulati A.K., Reyer R. W. Role of neural retina and vitreous body during lens regeneration: transplantation and autoradiography // J. Exptl. Zool. 1980. V. 214. P. 109 118.

199. Hagedorn M., Fernald R.D. Retinal growth and cell addition during embryogenesis in the teleost Haplochromis burtoni // J. Compar. Neurol. 1992. V.321. P. 193-208.

200. Hageman G, Johnson L. Structure composition and function of the retinal interphotoreceptor matrix // Prog. Retinal Res. 1991. V.10. P.207-249.

201. Hale I.L., Fisher S.K., Matsumoto B. Effects of retinal detachment on rod disc membrane assembly in cultured frog retinas // Invest. Ophthalmol., Vis. Sci. 1991. V.32. N 11. P.2873 -2881.

202. Hall M., Abrams T., Mittag T. Rod outer segment ingestion by RPE cells is turned off by increased protein kinase C activity and by increased calcium // Exp. Eye Res. 1991. V. 52. P. 591 598.

203. Hay E., Fishman D. Origin of the blastema in regenerating limbs of the newt Triturus viridescens. An autoradiographic study using tritiated thymidine to follow cell proliferation and migration // Develop. Biol. 1961. V.3. N1. P.26-59.

204. Had H.W., Moll I., Franke W.W. Patterns of expression of trichocytic and epithelial cytokeratins in mammalian tiisues. I. Human and bovine hair follicles // Differentiation. 1988. V.31. P.137-151.

205. Hiscott P.S., Grierson I., Mc Cleod D. Retinal pigment epithelial cells in epiretinal membranes: an immunohistochemical study // Br. J. Ophthalmol. 1984. V.68. P.708-719.

206. Hollyfield J.G. Differential addition of cells to the retina in Rana pipiens tadpoles// Develop. Biol. 1968. V.18. P. 163-179.

207. Hornsby S., Zalik S.E. Redifferentiation, cellular elongation and cell surface during lens regeneration // J. Embryol. Exp. Morphol. 1977. V.39. P.23-43.

208. Hunt R.C., Davis A.A. Altered expression of keratin and vimentin in human retinal pigment epithelial cells in vivo and in vitro // J. Cell. Physiol. 1990. V.145. P.187 -197.

209. Huotari V. Structure, function and regulation of the membrane skeleton in the chicken retinal pigment epithelium and in cultured madin-darby canine kidney epithelial cells //Acta Universitatis Ouluensis. Series D: Medica. D342. 1995. p. 103.

210. Hunter D.D., Murphy M.D., Olsson C.V., Brunken W.J. S-laminin expression in adult and developing retinae: a potential cue for photoreceptor morphogenesis // Neuron. 1992. V. 8. P. 399-413.

211. Inoue M, Kuriyama H. Muscarinic receptor is coupled with a cation channel through a GTP-binding protein in gunea-pig chromaffin cells // J. Physiol. 1991. V.436. P. 511529.

212. Isobe T., Nakajima T., Okuyama T. Reinvestigation of extremely acidic protein in bovine brain//Biochem. Biophys. Acta. 1977. V.494. P. 222-232.

213. Itoh Y., Okada T.S., Ide H., Eguchi G. The differentiation of pigment cells in cultures of chick embryonic neural retina // Development, Growth, Deffer. 1975. V. 17. P. 39 -50.

214. Jeanny J.-C., Bower D.J., Errington L.H., Morris S., Clayton R.M. Cellular heterogeneity in the expression of the delta crystallin gene in non-lens tissues // Develop. Biol. 1985. V.112. P. 94-99.

215. Johns P.R. Growth of the adult goldfish eye. III. Source of the new retinal cells // J.Compar.Neurol. 1977. V.170. P.343-357.

216. Johns P.R. Formation of photoreceptors in larval and adult goldfish // J. Neurosci. 1982.1. V.2. P. 178-198.

217. Jones R.E., DeFeo D., Piatigorsky J. Transcription and site-specific hypomethylation ofthe delta-crystallin genes in the embryonic chicken lens // J. Biol. Chem. 1981. V. 256. P. 8172- 8176.

218. Juric-Lekic G., Svajger A. Lentoid formation in ectopic grafts of lentectomized eyes ofrat foetuses // Cell Differ. Develop. 1989. V.27. P.225-232.

219. Kahn A J. An autoradiographic analysis of the time of appearance of neurons in thedeveloping chick neural retina// Develop. Biol. 1974. V.38. P.30-40.313 .Kanzaki T., et al TGF-/?1 binding protein: a component of the large latent complex of

220. Karnovsky M.Y. A formaldehyde-glutaraldehyde fixative of high osmolarity for use inelectron microscopy // J. Cell Biol. 1965. V.27. P.137A. 3 n.Katoh A., Braverman M, Yeh C. Neuroretinal lentoids contain no lens antigens // Exptl.

221. Cell. Res. 1971. V. 66. P. 65- 68. 318 .Kauffman S.A. Control circuits for determination and transdetermination // Science. 1973. V. 181. P. 310-318.

222. Keefe J.R The fine structure of the retina in the newt Triturus viridescens // J. Exp. Zool. 1971. V. 177. N3. P. 263-294.

223. Keefe J.R An analysis of urodelian retinal regeneration: III. Degradation of extruded melanin granules in Notophthalmus viridescens // J. Exp. Zool. 1973c. V.184. P.233-238.

224. Keefe J.R An analysis of retinal regeneration. IV. Studies of the cellular source of retinal regeneration in Triturus cristatus carnifex using 3H-thymidine // J. Exp. Zool. 1973d. V.184. P. 239-257.

225. Kefalides N., AlperR, Clark C. Biochemistry and metabolism of basement membranes // Proc. Nat. Acad. Sci. 1979. V.76. P. 1303-1307.

226. Kelley M.W., Turner J.K., Reh T.A. Retinoic acid promotes differentiation of photoreceptors in vitro //Development. 1994. V. 120. P. 2091 2102.

227. Kenyon C., Kamb A. Cellular dialogs during development // Cell. 1989. V. 58. P. 607608.

228. Keski-Oja J., Lehto V.-P., Virtanen I. Keratin filaments of mouse epithelial cells are rapidly affected by epidermal growth factor // J.Cell Biol. 1981. V.90. P.537.

229. KesselM., GrussP. II Science. 1990. V. 249. P. 374 379.

230. Kim K.H., Rheinwald J., Fuchs E. Tissue specificity of epithelial keratins: differential expression of mRNAs from two multigene families // Mol.Cell Biol. 1983. V.3. P.495.

231. Knight J.K., Raymond P.A. Time course of opsin expression in developing rodphotoreceptors//Development. 1990. V.110. P. 1115-1120.

232. Knight J.K., Raymond P. A. Retinal pigment epithelium does not transdifferentiate in adultgoldfish//J. Neurobiol. 1995. V.27. N4. P. 447-456.

233. Kobayashi H., Agata K, MochiiM., Ueda Y, Ieda Y., Yasubuchi Y, Eguchi G. A 62 kd protein encoded by one of pigmented epithelium-specific genes shows protease inhibitory activity // In: 9th ICER Abstracts. 1990. P.278.

234. Kobayashi K, Yamamoto T., Agata K, Eguchi G. Analysis of structure and function of pigmented epithelial cell-specific gene // Develop., Growth. Differ. 1987. V.25. N4. P.389.

235. Koh S.W.M., Chader G.J. Retinal pigment epithelium in culture demonstrates a distinct beta-adrenergic receptor//Exp. Eye Res. 1984. V.38. P.7-13.

236. Koh S. W. M, Chader G.L. Elevation of intracellular cyclic AMP and stimulation of adenylate cyclase activity by vasoactive intestinal peptide and glucagon in the retinal pigment epithelium // J. Neurochem. 1984. V. 43. P. 1522 1526.

237. Kondoh TL, Yasuda K, Okada T. Tissue-specific expression of a cloned chick 6 -crystallin gene in mouse cells // Nature (London). 1983. V. 301. P. 440 442.

238. Kondoh H., Ueda Y, Hayashi S., Okazaki K., Yasuda K, Okada T.S.: An attempt to assay the state of determination by using transfected genes as probes in transdifferentiation of neural retina into lens. Cell Differ. 1987. V.20. P.203-207.

239. Korte G.E., Chandra-Wanderman M. Distribution of Na+, K+-ATPase in regenerating retinal pigment epithelium in the rabbit. A study by electron microscopic cytochemistry // Exp. Eye Res. 1993. P. 219-229.

240. Kroll A.J., Machemer R. II Experimental retinal detachment in the owl monkey. III. Electron microscopy of retina and pigment epithelium // Am. J. Ophthalmol. 1968. V.66. P.410-427.

241. Kulyk W.M., Zalik S.E. Synthesis of sulfated glycosaminoglycan in newt iris during lens regeneration//Differentiation. 1982. V.23. P.29-35.

242. Kulyk W.M., Zalik S.E., Dimitrov E. Hyaluronic acid production and hyaluronidase activity in the newt iris during lens regeneration. Exp.Cell Res. 1987. V.172. P. 180191.

243. Kurkinen M., Alitalo K, Vaheri A., et al. Fibronectin in the development of embryonic chick eye // Develop. Biol. 1979. V.69. P. 589-600.

244. Landolt E. Beitrage zur anatomie der retina von frosh, salamander und triton // Arch, mikr. anat. 1871. Bd.7. S. 81-88.

245. Lazarides E. Intermediate filaments as mechanical integrators of cellular space // Nature (London). 1980. V.283. P.249-256.

246. LeDouarin N.M. The neural crest // Cambridge University Press. 1982.

247. Le Quang Trong N.Y. Histogenese et histochimie des glandes cutanees de l'axolotl (Ambystoma tigrinum Green) // Arch. Zool. Exp.Gen. (Paris). 1967. V.108. P.49-85.

248. Lehto V.P., Virtanen I., Kurki P. Intermediate filaments anchor the nuclei in nuclear monolayers of cultured human fibroblasts // Nature. 1978. V.272. P. 175-177.

249. Levine EM., Schechter N. Homeobox genes are expressed in the retina and brain of adult goldfish //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. V. 90. P. 2729 2733.363 .Leure-duPree A. Ultrastructure of the pigment epithelium in the domestic sheep // 1968.

250. Amer. J. Ophthalmol. 1968. V. 65. P. 383-398.

251. Linser P., Moscona A.A. Hormonal induction of glutamine synthetase in cultures of embryonic retina cells: requirement for neuron-glia contact interactions. 1983. Develop. Biol. V. 96. P. 529 534.

252. Lo D.C. A central role for ciliary neutrophic factor //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. V. 90. P. 2557-2558.

253. Lok S., Breitman M.L., Chepelinsky A.B., Piatigorsky J., Gold R.J.M., Tsui L.-C. Lens -specific promoter activity of a mouse y crystallin gene // Mol. Cell Biol. 1985. V. 5. P. 2221 -2230.

254. Maine E.M., Kimble J. Identification of genes that interact with glp-1, a gene required for inductive cell interaction in C. elegans // Development. 1989. V.105. P. 133 -143.

255. Mains RE., Patterson P.H. Primary cultures of dissotiated sympathetic neurons. I. Establishment of long- term growth in culture and studies of differentiated properties // J. Cell Biol. 1973a. V. 59. P. 329-345.

256. Marks J. Immunoglobulin genes have enhancers // Science. V. 221. P. 735 737.

257. Marshall J., Ansell P.L. Membranous inclusions in the retinal pigment epithelium phagosomes and myeloid bodies // J. Anat. 1971. V. 1110. P. 91-104.

258. Masuda A., Eguchi G. Effects of thioureas, inhibitors of melanogenesis, on lens transdifferentiation of cultured chick embryonic retinal pigment cells // Develop. Growth, Differ. 1982. V. 24. P. 589-599.

259. McDevitt D.S. Transdifferentiation in animals a model for differentiation control. Developmental Biology. (DiBerardino M.A.,Etkin L.D.eds), Plenum Publ.Corp. 1989. V. P. 149-173.

260. McKechnie N.M., BoultonM., RobeyH.L., Savage F.J., Grierson 1. The cytoskeleton of human retinal pigment epithelium: in vitro and in vivo // J. Cell Sci. 1988. V.91. P. 303-312.

261. McKeonF.D., Kirschner M.W., Caput D. Homologies in both primary and secondary structure between nuclear envelope and intermediate filament proteins // Nature. 1986. V.391. P.463-468.

262. Meriney S.D., Pilar G. The development of cholinergic innervation of the smooth muscle cells in the choroid coat in the chick eye // J. Neurosci. 1988. P. 10-18.

263. Mey J., Thanos S. Ontogenetic changes in the regenerative ability of chick retinal ganglion cells as revealed by organ explants //Cell Tissue Res. 1991. V.264. P.347-355.

264. Michetty F., RendeM., Calogero G., DelVAnna E., Cocchia. Immunochemical detection of S-100 protein in non-nervous structures of the rabbit eye // Brain Res. 1985. V. 332. P. 358-360.

265. QMiettimn M, Lehlo V-P., Dahl D., Virtanen I. Varying expression of cytokeratin and neurofilaments in neuroendocrine tumors of human gastrointestinal tract // Lab. Invest. 1985. V.52. P.429-436.

266. Mi Her S., Hughes B., Machen T. Fluid transport across retinal pigment epithelium is inhibited by cyclic AMP //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. V.78. P. 6535-6539.

267. Mitashov V.I. Mechanisms of retina regeneration in vertebrates // Internat. J. Develop. Biol. 1996. V. 40. P. 833 -844.

268. Mitashov V.I. Retinal regeneration in amphibians // Internat. J. Develop. Biol. 1997. V. 41. P. 893 -905.

269. Mitashov V.I. Mechanisms of transdifferentiation of pigment epithelial cells into neural retina. A hypothesis // In: Recent Trends in Regeneration Research. Kiortsis V., Koussoulakos S., Wallace H. (eds). Plenum Publ Corp. New-York. 1989. P. 275-280.

270. Miyamoto S.H., Teramoto H., Coso O., Gutkind J.S., Burbelo P.D., Akiyama S.K., Yamada K.M. Integrin function: molecular hierarchies of cytoskeletal and signaling molecules//J. Cell Biol. 1995. V.131. N3. P. 791 805.

271. MochiiM., Takeuchi '.'., KodamaR, AgataK., Eguchi G. The expression of melanosomal matrix protein in the transdifferentiation of pigmented epithelial cells into lens cells // Cell Differ. 1988a. V.23. P. 133-142.

272. Moll R., Franke W., Schiller D.L., Geiger B., Krepler R. The catalog of human cytokeratins: pattern of expression in normal epithelia, tumors and cultured cells //Cell. 1982. V.31. P. 11-24.

273. Monagnan A.P., Davidson D.R., Sime Ch, Graham E., Baldock R., Bhattacharva S.S., Hill R.E. The Mv/?-like homeobox genes define domains in the developing vertebrate eye//Development. 1991. V. 112. P. 1053 1061.

274. Monroy A. Ricerche sulla capacita lentogena dell' iride de gli Amfibi // Arch. Entw-Mech. 1939. V.139. P. 536-555.

275. Moran D., Palmer J.D., Model P.G. The role of phenylalanine in differentiating amphibian melanocytes //Develop. Biol. 1973. V.34. P. 297-308.

276. Morse D.E., McCann P.S. Neuroectoderm of the early embryonic rat eye // Invest.

277. Ophthalmol. Vis. Sci. 1984. V. 25. P. 899 907.

278. Moscona A.A. Formation of lentoids by dissociated retinal cells of the chick embryo // Science. 1957. V. 125. P. 598- 599.

279. Moscona A.A. Role of cell contact in phenotype stability and modification: Studies on retina cells // Amer.Zool. 1987. V. 27. P. 137 145.

280. Mo.vco/ra A.A., Degenstein L. Lentoids in aggregates of embryonic neural retina cells // Cell Deffer. 1981. V.10. P. 39-46.

281. Moyer F.H. Development, structure and function of the retinal pigment epithelium // In: The retina. B.R. Straatsma, M. Holl, R.A. Allen, F. Crescitelli F. (eds.). Univ. California Press, Los Angeles. P. 1-30.

282. Murphy P., Davidson D.R., Hill R.E. Segment-specific expression of homeobox-containing gene in the mouse hindbrain // Nature. 1989. V. 341. P. 156 -159.

283. Nachmias V.T., Lee D., Chang W., Philp N.J. Polarized distribution of integrin and fibronectin in retinal pigment epithelial cells // ARVO Abstract. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1987. Suppl. V.3. P. 380.

284. Nakajima M., Yuge K., Senzaki H., Shikata N., Miki H., Uyama M., Tsubara A. Photoreceptor apoptosis induced by a single systemic administration of N-methyl N-nitrosourea in the rat retina // Amer. J. Pathol. 1996. V. 148. N2. P. 631 -641.

285. Nardi J. B., Stocum D. L. Surface properties of regenerating limb cells: Evidence for gradation along the proximodistal axis// Differentiation. 1983. V. 27 P. 13-28.

286. Nathanson M. In: Transdifferentiation and instability in cell commitment. 1986. Okada T.S., Kondoh H. (eds.). Yamada Science Foundation. 433 p.

287. Okada T.S. 'Transdifferentiation' of cells of specialized eye tissues in cell culture // In: Tests of teratogenicity in vitro. 1976. Ebert J.D., Marois L. (eds.). North Holland. Amsterdam. P. 91-105.

288. Okada T.S. Cellular metaplasia or transdifferentiation as a model for retinal celldifferentiation// Curr. Top. Dev. Biol. 1980. V.16. P.349-380. 468. Okada T. S. Recent progress in studies of the transdifferentiation of eye tissue in vitro //

289. Cell Differ. 1983. V.13. P. 177-183. 469.Okada T.S. Transdifferentiation. Oxford. Clarendon Press, 1991. 238 p.

290. Okada T.S., Eguchi G., Takeichi M. The expression of differentiation by chicken lens epithelium in in vitro cell culture //Develop. Growth Differ. 1971. V. 13. P. 323 336.

291. Oliver G. Sidell N., Fiske W., Heinzmann C., Mohandas T., Sparkes R.S., De Robertis E.M. Complementary homeo protein gradients in developing limb buds // Genes and Develop. 1989. V.3. N 5. P. 641- 648.

292. Orts-Llorca F., Genis-Galvez J.M. Experimental production of retinal septa in the chick embryo. Differentiation of pigment epithelium into neural retina // Acta Anat. 1960. V. 42. P. 31-70.

293. Osborn M.,Weber K. Intermediate filaments: cell type specific markers in differentiation and pathology//Cell. 1982. V.31. P.303-306.

294. Osvorne N.N. In vitro experiments on the metabolism, uptake and release of 5-hydroxytryptamine in bovine retina // Brain Res. 1980. V.184. P.283-291.

295. Park C.M., Hollenberg M.J. Basic fibroblast growth factor induces retinal regeneration in vivo // Develop. Biol. 1989. V. 134. P. 201-205.

296. Petterson P.H., Chun L.L. The influence of nonneuronal cells on catecholamine and acetylcholine synthesis and accumulation in cultures of dissociated sympathetic neurons // Proceed. Natl. Acad. Sci. USA. 1974. V. 71. P. 3607 3610.

297. Petterson P.H., Chun L.L.Y. The induction of acetylcholine synthesis in primary cultures of dissociated rat sympathetic neurons. I. Effect of conditioned medium // Develop. Biol. 1977a. Y.56. P. 263-280.

298. Petterson P.H., Chun L.L.Y. The induction of acetylcholine synthesis in primary cultures of dissociated rat sympathetic neurons. II. Developmental aspects // Develop. Biol. 1977b. V.60. P. 473 -481.

299. Picco C., MeniniA. The permiability of the cGMP-activated channel to organic cations in retinal rods of tiger salamander// J. Physiol. 1993. V.460. P.741-758.

300. Pieron G., Durcia D.S., Sauer H.W. Invariant temporal order of replication of the four actin gene loci during the naturally synchronous mitotic cycles of Physarum polycephalum // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1984. V. 81. P. 6393 6397.

301. Pieron G., PalottaD., Sauer H.W. IIICSU Short Rep. 1987. V.7. P. 53.505Pittack C., Jones M., Reh T.A. Basic fibroblast growth factor induces retinal pigment epithelium to generate neural retina in vitro // Development. 1991. V. 113. P. 577-588.

302. Porrello K., La Vail M. Histochemical demonstration of spatial heterogeneity in the interphotoreceptor matrix of the rat retina // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1986. V. 27. P. 1577-1586.

303. Powell J.A., Powers С. Effects on lens regeneration of implantation of spinal ganglia into the eye of the newt Notophthalmus П J. Exptl. Zool. 1973. V.183. P. 95 -114.

304. Ramaekers F.C.S., Osborn M, Schmid E., Weber K, Bloemendal H., Franke W.W. Identification of the cytoskeletal proteins of lensforming cells, a special epithelioid cell type // Exp. Cell Res. 1980. V.127. P.309 -.

305. Rao M.V.N. Nuclear proteins in programming cell cycles // Internat. Rev. Cytol. 1980. V.67. P.291-315.

306. Rao M.S., Reddy J.K. Hepatic transdifferentiation in the pancreas // Semin. Cell Biol. 1995. V.6. N 3. P. 151-156.

307. Raymond Johns P.A., Fernald RD. Genesis of rods in teleost fish retina // Nature. 1981. V.293. P. 141-142

308. Raymond Johns P.A. Formation of photoreceptors in larval and adult goldfish // J. Neurosci. 1982. V.2. P. 178-198.

309. Raymond P.A. The unique origin of rod photoreceptors in the teleost retina // Trends Neurosci. 1985a. V.8. P. 12-17.

310. Raymond P.A. Cytodifferentiation of photoreceptors in larval goldfish: Delayed maturation of rods // J.Comp.Neurol. 1985b. V.236. P.90-105.

311. Raymond P.A. Retinal regeneration in teleost fish // Regeneration of vertebrate sensory receptor cells. 1991. Wiley, Chichester. Ciba Foundation Symp.160. P.171-191.

312. Raymond P.A., Barthel L.K. Retinal regeneration in goldfish: use of cell specific monoclonal antibodies to assess the reestablishment of normal cytoarchitecture // Soc. Neurosci. 1988. V.15. P. 808 -816.

313. Raymond P.A., Braisted J.E., Knight J.K., Wu D., Barthel L.K. Role of cell-cell interactions in the regulation of retinal regeneration // In: 6th Internat. Symp. on Neural Regeneration. Pacific Grove. 1995. P.29.

314. Raymond S.M., Jackson I.J. The retinal pigmented epithelium is required for development and maintenance of the mouse neural retina // Curr. Biol. 1995. V. 5. P. 1286- 1295.

315. Raymond P.A., Rivlin P.K. Germinal cells in the goldfish retina that produce rod photoreceptors//Develop. Biol. 1987. V.122. P. 120-138.

316. Reese D.H. In vitro initiation in the newt iris of some early molecular events of lens regeneration//Exp. Eye Res. 1973. V. 17. P. 435-444.

317. Reese D.H., Puccia E., Yamada T. Activation of ribosomal RNA synthesis in initiation of Wolffian lens regeneration // J. Exp. Zool. 1969. V. 170. P. 259-268.

318. Reh T.A., Nagy T. A possible role for the vascular membrane in retinal regeneration in Rana catasbienna tadpoles// Develop.Biol. 1987. V.122. P.471-482.

319. Reh T.A., Nagy T., Gretton H. Retinal pigmented epithelial cells induced to transdifferentiate to neurons by laminin // Nature. 1987. V.330. P.68-71.

320. Reh T.A., Pittack C. Transdifferentiation and retinal regeneration // Semin. Cell Biol. 1995. V. 6. N3.P. 137-142.

321. Reh T.A., Tully T. Regulation of tyrosine hydroxylase-containing amacrine cell number in larval frog retina//Develop. Biol. 1986. V. 114. P.463-489.

322. Reh T.A., Jones M., Pittack C. Common mechanisms of retinal regeneration in the larval frog and embryonic chick // In: Regeneration of Vertebrate Sensory Receptor Cells (Eds. Bock G.R., Whelan Ju.). Wiley, Chichester. 1991. P. 192-204.

323. Reichardt L.F., Bossy B., deCurtis I., Neugebauer KM. Adhesive interactions that regulate development of the retina and primary visual projection // Cold Spring Harbor Symp. on Quantitative Biol. 1992. V. LVIII. P. 419 429.

324. Reids Ch, Takeichi M. N- and R- cadherin expression in the optic nerve of the chicken embryo//Glia. 1993. V. 8. P. 161 -171.

325. Repka A., Adler R. Differentiation of retinal precursor cells born in vitro // Develop. Biol. 1992. V. 153. P. 242-249.

326. Rio-Tsonis K.D., Washabaugh C.H., Tsonis P.A. Expression of Hox genes in lens regeneration // Wound repair and regeneration. 1995a. V. 3. N1. P. 110.

327. Robey H.L., Hiscott P.S., Grierson I. Cytokeratins and retinal epithelial cell behaviour // J. Cell Sci. 1992. V.102. P.329-340.

328. Rodesch F. Differentiation, contact inhibition, and redifferentiation. Intracellular communications in retinal pigment cells // Exptl. Cell Res. 1973. V.76. N1. P.55-62.

329. Rothermel A., Willhold E., Degrip W.J., Layer P.O. Pigmented epithelium induces complete retinal reconstitution from dispersed embryonic chick retinae in reaggregation culture//Proc. R. Soc. Lond. 1997. V.264. P. 1293-1302.

330. Rungger-BTa.ndiQ E., Achtstaller T.,Franke W. W. An epithelium-type cytoskeleton in a glial cell: astrocytes of amphibian optic nerves contain cytokeratin filaments and are connected by desmosomes // J.Cell Biol. 1989. V.109. P.705 -711.

331. Sakaguchi D.S., Henderson E. Isolation and characterization of glial cell lines from Xenopus neuroepithelium and retinal pigment epithelium // Neuroprotocols: A companion to Methods in Neurosciences. 1993. V.3. P. 249 259.

332. Sakaguchi D.S., Janick L.M., Reh T.A. Basic fibroblast growth factor (FGF-2) induced transdifferentiation of retinal pigment epithelium: Generation of retinal neurons and glia//Develop. Dynam. 1997. V. 209. N4. P. 387-398.

333. Sapiro S. S. Retinoids and cell epithelial differentiation // Retinoids and Cell Differentiation. M. I. Sherman ed. CRC Press, Inc. Boca Raton, Florida. 1986. P. 30 -52.

334. Sato T. Uber die Determination des fetalen Augenspalts bei Triton tainiatus // Wilhelm Roux' Arch. Entwickl.-Mech. Org. 1933. V. 128. P. 343-377.

335. Sato T. Vergleichende Studien über die Geschwidigkeit der Wolff sehen Linsenregeneration bei Diemyctylus pyrrhogaster II Wilhelm Roux'Arch. Entwikl.-Mech. Org. 1940. V.140. P. 570 613.

336. Sato T. Uber die Ursachen des Ausbleibens der Linsenregeneration und zugleich über die linsenbildende Fahigheit des Pigmentepithels bei der Anuren // Wilhelm Roux' Archiv fur Entwicklungsmechanik der Organismen. 1953. V.146. P.487-514.

337. Scadding S. R., Maden M. Comparison of the effects of vitamin A on limb development and regeneration in the axolotl, Ambystoma mexicanum// J. Embryol. Exp. Morph. 1986. V. 91. P. 19-34.

338. Schaller H.C. Isolation and characterization of a low-molecular-weight substance activating head and bud formation in hydra 11 J. Embryol. Exptl. Morphol. 1973. V.29. N 1. P. 27-38.

339. Schaller H.C., Bodenmidier H. Isolation and aminoacid sequence of a morphogenetic peptide from hydra//Proc. Nat. Acad. Sei. USA. 1981. V. 78. N 11. P. 7000 7004.

340. Schmid V., Rebermuller S. Transdifferentiation of isolated striated muscle of jellyfish in vitro: The initiation process // Semin. Cell Biol. 1995. V.6. N 3. P. 109-116.

341. Schubert D., Kimura H. Substratum growth factor collaborations are required for the mitogenic activities of activin and FGF on embryonal carcinoma cells // J/ Cell Biol. 1991. V. 114. P. 841 -846.

342. Schummer M., Scheurlen I., Schaller C., Galliot B. HOM/Hox homeobox genes are present in hydra (Chlorohydra viridissima) and are differentially expressed during regeneration//EMBO J. 1992. V. 11. P. 1815 1823.

343. Schwab M.E. Myelin-associated inhibitors of neurite growth // Exp. Neurol. 1990. V. 109. P. 2-5.

344. Schwab M.E. Regeneration of lesioned CNS axons by neutralization of neurite growth inhibitors: a short review//J. Neurotrauma. 1992. V. 9. Suppl. 1. P. S219 S221.

345. Seiji M., Shinao M.S., Birbeck C., Fitzpatrick T.B. Subcellular localization of melanin biosynthesis // Ann. N.-Y. Acad. Sci. 1963. V.100. P. 497- 533.

346. ShenkM.A., Bode H.R., Steel R.E. Expression of Cnox 2, a HOM/Hox homeobox gene in hydra, is correlated with axial pattern formation // Development. 1993. V. 117. P. 657 667.

347. SherpoD., MorelN.M.L. Pericyte physiology//FASEB J. 1993. V.7. N 11. P.1031-1038.

348. Sidman R.L. Histogenesis of the mouse retina studied with thymidine-H3 in the structure of the eye // The Structure of the Eye. New-York. Academic Press. 1961. P.487 506.

349. Skene J.H.P. Axonal growth-associated proteins// Ann. Rev. Neurosci. V. 12. P. 127-156.

350. Squires J.E., Biochemical and metabolic changes during the degeneration and regeneration of the neural retina of Notophthalmus viridescens // Ph. D. Thesis. 1972 (Цит. no: Reyer, 1977).

351. Stern W.H., Anderson D.H., Borgula G.A., Erikson P. A. Anatomic recovery following retinal detachment: Clinicopathologic correlations// Aust. J. Opthalmol. 1981. V. 9. P. 143-149.

352. Stocum D. L. Morphogenesis of the amphibian limb regeneration blastema// Nerve, Organ and Tissue Regeneration/ Ed. Seil F. J. N. Y.: Acad, press, 1983. 377-406.

353. Stocum D.L., Crawford K. Use of retinoids to analyse the cellular basis of positional memory of regenerating amphibian limbs // Bochem. Cell Biol. 1987. V.65. P. 750755.

354. Stocum D. L., Thorns S. D. Retinoic acid induced pattern compection in regeneration double anterior limbs of urodeles// J. Exp. Zool. 1984. V. 232. P. 207-215.

355. Stone L.S. Neural retina degeneration followed by regeneration by surviving retinal pigment cells in grafted adult salamander eyes // Anat. Rec. 1950a. V. 106. P. 89-109.

356. Stone L.S. The role of retinal pigment cells in regenerating neural retina of adult salamander eye // J. Exp. Zool. 1950b. V. 113. P. 9-31.

357. Stone L.S. An experimental study of the inhibition and release of lens regeneration in adult eyes of Triturus viridescens // J. Exp. Zool. 1952. V.121. P. 181-223.

358. Stone L.S. Regeneration of the iris and lens from retina pigment cells in adult newt eyes // J. Exp. Zool. 1955. V. 129. P. 505-534.

359. Stone L.S. Regeneration of the retina, iris, and lens // In: Regeneration of vertebrates. III. University of Chicago Press. C.S.Thornton (Ed.). 1959. P. 3 -14.

360. Stone L.S. Regeneration of the lens iris and neural retina in a vertebrate eye // Yale J. Biol. Med. 1960. V. 32. P. 464-473.

361. Stone L.S. The structure and visual function of the eye of larval and adult cave salamanders Typhlotriton speleus // J. Exp. Zool. 1964. V.156. P. 201-218.

362. Stone L.S. The regeneration of the crystalline lens // Invest. Ophthalmol. 1965. V. 4. P. 420 432.

363. Stone L.S. An investigation recording all salamanders which can and cannot regenerate a lens from the dorsal iris // J. Exp. Zool. 1967. V. 164. P.87-104.

364. Stone L.S., Steinitz H. The regeneration of lenses in eyes with intact and regenerating retina in adult Triturus viridescens // J. Exp. Zool. 1953. V. 124. P. 435-468.

365. Stone L.S., Steinitz H. Regeneration of neural retina and lens from retina pigment cells grafts in adult newts // J. Exptl. Zool. 1957. V.135. P.301-315.

366. Stone L.S., Zaur L.S. Reimplantation and transplantation of adult eyes in the salamander (Triturus viridescens) with return to vision // J. Exp. Zool. 1940. V. 85. P. 243-270.

367. Stossel T. From signal to pseudopod // J. Biol. Chem. 1989. J. Biol. Chem. V. 264. P. 18261 18264.

368. Stroeva O.G. Experimental analysis of the eye morphogenesis in mammals // J. Embryol. Exp. Morphol. 1960. V.8. P.349-368.

369. Takagi S., KondohK, NomuraK., Okada T.S. Lentoidogenesis from neural retina cells in culture is affected by interactive relationships between different cell types // J. Embryol. Exp. Morphol. 1983. V.73. P. 97-110.

370. Tawara A., Varner H., Hollyfield J. Proteoglycans in the mouse interphotoreceptor matrix. II. Origin and development of proteoglycans // Exp. Eye Res. 1989. V.48. P. 815 839.

371. TchengM., Fuhrmann G., Hartmann M.P., Courtois Y, Jeanny J.C. Spatial and temporal expression patterns of FGF receptor genes type 1 and type 2 in the developing chick retina//Exp. Eye Res. 1994. V.58. P. 351-358.

372. Thanos S. Alterations in the morphology of ganglion cell dendrites in the adult rat retinaafter optic nerve transsection and grafting of peripheral nerve segments // Cell Tissue Res. 1988. V.254. P.599-609.

373. Thanos S., Bahr M., Barde Y.-A., Vanselow./. Survival and axonal elongation of adult rat retinal ganglion cells. In vitro effects of lesioned sciatic nerve and brain derived neurotrophic factor// Eur. J. Neurosci. 1989. V.l. P. 19-26.

374. Thesleff L, StenmanA., Vahery R., Timple R. Changes in the matrix proteins, fibronectinand collagen, during differentiation of mouse tooth germ // Develop. Biol. 1979. V.70. P. 116-126.

375. Thiery J.P., Duband J.L., Tucker G.C. Migrations in the vertebrate: role of cell adhesion and tissue environments in the patterning of the embryo // Ann. Res. Cell Biol. 1985. V. 7. P. 91-113.

376. Thor S., Ericson J., Brannstrom T., Edlund T. The homeodomain LIM protein Islet-1 isexpressed in subsets of neurons and endocrine cells in the adult rat // Neuron. 1991. V.7. P. 881 -889.

377. Thorpe C.W., Bond J.S., Collins J.M. Early events in lens regeneration. Chages in cyclic AMP concentrations during initiation of RNA and DNA synthesis // Biochem. Biophys. Acta. 1974. V.340. P. 413-418.

378. Tickle C., Lee J., Eichele G. A quantitative analysis of the effect of all-trans-retinoic acid on the pattern of chick wing development // Develop.Biol. 1985. V. 109. P. 82 -92.

379. Titeler M. Understanding receptor binding assays // In: Research methods inneurochemistry. 1981. Marks N., Kodnight R. (eds.). Plenum Press. V.5. P. 39-73.

380. Tombran-Tink J., Johnson L. V., Chader G.J. PEDF: a pigment epithelium derived factor with potent neuronal differentiation ability // Exp. Eye Res. 1991. V. 53. P.411-414.

381. Torres L.D., Alonso H.M., Ortiz J.R. The effect of catecholamines and adenosine on the induction of morphological alterations and depigmentation of newt iris epithelial cells in vitro // Differentiation. 1988. V.38. P. 104-114.

382. Torriglia A., Jeanny J.C., Blanquet P.R Immunohistochemical analysis of fibroblast growth factor receptor in bovine retina // Neurosci. Lett. 1994. V. 172. P. 125-128.

383. Treisman R Identification of a protein binding site that mediates transcriptional response of the c-fos gene to serum factors // Cell. 1986. Y. 46. P. 567 574.

384. Treton J.A., Jones RE., King C.R., Piatigorsky J. Evidence against y crystallin DNA or RNA sequences in the chicken // Exp. Eye Res. 1984. V. 39. P. 513 - 522.

385. Trinkaus J.P. Behavior of dissociated retinal pigment cells in retinotypic cell aggregates

386. Ann. N.Y. Acad. Sci. 1963. V.100. P. 413-418.

387. Tsonis P.A., Washabaugh C.H., Delriotsonis K. TransdifFerentiation as a basis for amphibian limb regeneration // Semin. Cell Biol. 1995. V.6. N 3. P. 127-135.

388. Tsuchida T., Ensini M., Morton S.B. Baldassarre M., Edlund T., Jesse I T.M., Pfaff S.L. Topographic organization of embryonic motor neurons defined by expression of LIM homeobox genes // Cell. 1994. V.79. P. 957 -970.

389. Tsunematsu ¥., Coulombre A.J. Demonstration of transdifferentiation of neural retina from pigmented retina in culture // Develop. Growth, Differ. 1981. V.23. P.297-311.

390. Turksen K, Opas M., Kalnins V. Cytoskeleton, adhesion and extracellular matrix offetal human retinal pigment epithelial cells in culture // Ophthalmic. Res. 1989. V.21.P. 56 -66.

391. Turner D.L., Cepko C.L. A common progenitor for neurons and glia persists in rat retinalate in development//Nature. 1987. V.238. P.131-136.

392. Underwood L.W., Ide C.F. An autographic time study during regeneration in fully differentiated Xenopus eyes // J.Exp.Zool. 1992. V. 262. P.193-201.

393. Uga S.,Smelser G.K. Comparative study of the fine structure of retinal Muller cells invarious vertebrates//Invest. Ophthalmol. 1973. V.12. P.434.

394. Van EldikL.J., Zimmer D.B. Secretion of S-100 from C6 glioma cells // Brain Res. 1987.1. V. 436. P. 367-370.

395. Velazquez F.M, Ortiz J.R. Intracellular levels of adenosine 3': 5'-cyclic monophosphatein the dorsal iris of adult newt during lens regeneration // Differentiation. 1980. V. 17. P.117-120.

396. Vi lie gas-Perez M.P., Vidal-Sanz M., Bray G.M., Aguayo A.J. Influence ofperipheral nerve grafts on the survival and regrowth of axotomized retinal ganglion cells in the adult rat // J. Neurosci. 1988. V.8. P.265-280.

397. Vikstrom K.L., Borysi G.G., Goldman R.D. Dynamic aspects of intermediate filament networks in BHK-21 cells // Proc. Natl. Acad. Sei. 1989. V.86. P.549-553.

398. Wachs H. Neue Versuche zur Wölfischen Linsenregeneration II Archiv, fur Mikroskopische Anatomie und Entwicklungsmechanik der Organismen. 1914. Bd. 39. S. 384-451.

399. Wachs H. Restitution des Auges nach Extirpation von Retina and Linse bei Triton (Neue

400. Versuche zur Wölfischen Linsenregeneration, 2. Teil) // Roux' Arch. Entwicklungsmech. Organismen. 1920. Bd. 46. S. 328-390.

401. WaidD.K., McLoon S.C. Immediate differentiation of ganglion cells following mitosis in developing retina II Neuron. 1995. V. 14. N 1. P. 117-124.

402. Wallow I.H.L., Tso M.O.M., Fine B.S. Retinal repair after experimental xenon arc photocoagulation// Am. J. Ophthalmol. 1973. V.75. P. 32-52.

403. Watanabe T., RaffM.C. Diffusible rod-promoting signals in the developing rat retina // Development. 1992. V.114. P. 899-906.

404. Watanabe K, Tamamaki N. Nojyo Y. Possible presence of oculopotent cell in embryonicpineal of quail //Develop., Growth, Differ. 1983. V.25. P.421.

405. Wells R., Fräser S.E. Multipotent precursors can give rise to all major cell types of thefrog retina // Science. 1988. V.239. P. 1142-1145.

406. Wetts R., Serbedzija G.N., Fraser S.E. Cell lineage analysis reveals multipotent precursors in the ciliary margin of the frog retina // Develop. Biol. 1989. V.136. P.254-263.

407. Wiedemann P. Growth factors in retinal desease: Proliferative vitreoretinopathy, proliferative diabetic retinopathy and retinal degeneration // Surv. Ophthalmol. 1992. V. 36. P. 373-384.

408. WillboldE., Brummendorf Th., Rathjen F.G., et al. The neural cell recognition molecule

409. F-ll is expressed on Muller cells and Schwann cells in vitro // J. Brain Res. 1997a. V. 1. P. 71-80.

410. Williams Jr.J.A. The regeneration of the neural retina from retina pigment cells in adultnewt eyes: an electron microscopic study // University Microfilm Inc. Ann Arbor. University of Michigan. Ph.D. Thesis. 1964. P. 1-82.

411. Yamada T. Control mechanism in cell-type conversion in newt lens regeneration // In: Monographs in Developmental Biology. Wolsky A. (ed). Basel. Karger. 1977. V. 13, 126 p.

412. Yamada T. Transdifferentiation of lens cells and its regulation // In: Cell Biology of the Eye. McDavitt D.S. ( ed.). New York. Academic Press, 1982. P. 193-242.

413. Yamada T. Cell type expression mediated by cell cycle events, and signaled by mitogens and growth inhibitors//Internat. Rev. Cytol. 1989. V.117. P.215-255.

414. Yamada T. Cellular and subcellular events in Wolffian lens regeneration // Curr.Top. Develop. Biol. 1967a. V.2. P.247 283.

415. Yamada T. Differentiation of lens cells // Exptl. Biol. Med. 1967b. V. 1. P.77-89.

416. Yamada T., McDevitt D.S. Conversion of iris epithelial cells as a model of differentiation control//Differentiation. 1984. V. 27. P.l-12.

417. Yamada T., Reese D.H., McDevitt D.S. Transformation of iris into lens in vitro and its dependency on neural retina // Differentiation. 1973. V.l. P.65-82.

418. Yamada T., Roesel M. Labeling of lens regeneration cells grafted into the newt optic chamber. A study of availability time of tritiated thymidine // Exptl. Cell Res. 1968. V.50. N3.P. 649-652.

419. Yamada T., Roesel M. Activation of DNA replication in the iris epithelium by lens removal //J. Exptl. Zool. 1969. V.171. N4. P. 425-432.

420. Yamada T., Roesel M. Control of mitotic activity in Wolffian lens regeneration // J. Exptl. Zool. 1971. V.l77. P.l 19-128.

421. Yasitda К. Transdifferentiation of "lentoid" structures in cultures derived from pigmentedepithelium was inhibited by collagen // Develop. Biol. 1979. V.68. P.618-623.

422. Yasuda K., Eguchi G., Okada T.S. Age-dependent changes in the capacity of transdifferentiation of retinal pigment cells as revealed in clonal cell culture // Cell Differ. 1981. V.10.P.3-11.

423. Yasitda K., Okada T.S., Eguchi G., Hayashi M. A demonstration of a switch of cell typein human fetal eye tissues in vitro: pigmented cells of the iris or the retina can transdifferentiate into lens // Exp. Eye Res. 1978. V. 26. P.591-595.

424. Yodlowski M.L., Fredien J.R., Landis S.C. Neonatal 6- hydroxydopamine treatment eliminates cholinergic sympathetic innervation and induces sensory sprouting in rat sweat glands// J. Neurosci. 1984. V. 43. P. 1535 1548.

425. Yoshida K., MuraM Y, Ohki K., Harada Т., OhashiT., Matsuda H., Imaki J. C-fos gene expression in rat retinal cells after focal retinal injury // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci.1995. V. 36. Nl.P. 251-254.

426. Young R.W. Protein renewal in rods and cones studied by electron microscope autoradiography//! Cell Biol. V. 1967. V. 35. P. 1474-1489.

427. Young R.W. Biogenesis and renewal of visual cell outer segment membrane // Exp. Eye Res. 1974. V.18. N3. P. 215-222.

428. Young R.W., Bock D. Paricipation of the retinal pigment epithelium in the rod outer segment renewal process // J. Cell Biol. 1969. V.42. N2. P. 392-403.

429. Yuan S.Y., Rosenberg L., Paraskevas S., Agapitos D., Duguid W.P. Transdifferentiation of human islets to pancreatic ductal cells in collagen matrix culture // Differentiation.1996. V. 61. Nl.P. 67-75.

430. Zalik S.E., Dimitrov E. Distribution of hyaluronidase activity in the tissue of the normal and the lens-regenerating iris in the newt // J. Exp. Zool. 1990. V.256. P. 273-278.