Токсиколого-микробиологические аспекты биоремедиации нефтешлама-отхода нефтехимического производства тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.07, кандидат биологических наук Никитина, Елена Владимировна

• Никитина, Елена Владимировна
• кандидат биологических наук
• 2003

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Никитина, Елена Владимировна

СОДЕРЖАНИЕ

Список сокращений

ВВЕДЕНИЕ

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1. Химико-токсикологический и микробиологический мониторинг

1.1 Особенности химического состава нефтешламов

1.1.1. Фракционный состав нефтяных углеводородов шламов

1.1.2. Компоненты, составляющие неорганическую часть шлама

1.2. Токсические эффекты нефтешламов и их компонентов

1.3. Стратегии выживания бактерий 18 1.3.1. Приспособленность микроорганизмов к стрессовым условиям

1.3.2. Ответ микробного консорциума на загрязнение

2. Методы биоремедиации нефтезагрязненных объектов

2.1. Компостирование как метод ремедиации загрязненных объектов

2.2. Ландфарминговая технология биоремедиации

3. Метаболизм полициклических ароматических углеводородов - труднодоступных компонентов нефтешлама

3.1. Особенности метаболизма ПАУ у бактерий и грибов 33 ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

4. Материалы и методы исследования

1. Отбор проб нефтешлама и компостов

2. Экспериментальное компостирование в полевых условиях 42 ® 3. Микробиологические методы анализа

4. Определение ферментативных активностей. 49 4.1 Активность внутриклеточных ферментов

5. Методы химического анализа

5.1 Анализ водной вытяжки

5.2 Анализ органорастворимых компонентов нефтешлама.

6. Токсикологические методы

7. Статистическая обработка результатов 52 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

5. Характеристика отхода нефтехимического производства

5.1. Химическая характеристика нефтешлама

5.1.1. Фракционный состав нефтяных компонентов нефтешлама

5.1.2. Анализ полициклических ароматических углеводородов

5.1.3. Водорастворимые компоненты нефтешлама

5.2. Токсикология нефтешлама

5.2.1. Изучение влияния водорастворимых компонентов 60 нефтешлама на бактерии и одноклеточные

5.2.2. Влияние компонентов нефтешлама на растения

5.2.3. Мутагенность компонентов нефтешлама

5.3. Микробиологический статус нефтешлама

5.3.1. Количественная характеристика основных групп микроорганизмов

5.3.2. Физиологическое состояние бактериального консорциума шлама

5.3.3. Стресс-устойчивые группы бактерий нефтешлама

5.3.4. Деструкторы ксенобиотиков в нефтешламе

5.3.5. Характеристика бактериальных изолятов -деструкторов индивидуальных ПАУ

5.3.6. Оценка возможности изолятов использовать нефтешлам и ПАУ как источник питания

5.3.7. Активность оксигеназ расщепления ароматического кольца

6. Биоремедиация нефтехимического шлама с использованием компостирования

6.1 Химический мониторинг компостирования

6.1.1 Эффективность обработки шлама в отношении органических загрязнителей

6.1.2 Изменение содержания водорастворимых компонентов в компостах

6.2 Динамики микробиологических показателей в процессе 92 компостирования

6.2.1. Закономерности изменений общего количества бактерий и специализированной микрофлоры

6.2.2. Изменение температуры в компостах

6.2.3. Динамические изменения различных физиолого-биохимических групп микроорганизмов и показателей биохимической активности

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Токсиколого-микробиологические аспекты биоремедиации нефтешлама-отхода нефтехимического производства»

Актуальность проблемы. Мировое сообщество движется в направлении повышения уровня урбанизации и роста промышленного производства, в связи с этим, одна из главных международных экологических проблем связана с наличием в объектах биосферы сложных комплексов экологически опасных ксенобиотиков, которые представляют угрозу для почвы, воздуха, водоемов, источников питьевой воды, здоровья людей.

Очистка окружающей среды от нефтяного загрязнения является одной из актуальных проблем в свете того, что углеводороды нефти являются преобладающими загрязнителями биосферы (70%) (Lazar et al., 1999). В нефтедобывающей, перерабатывающей и нефтехимической промышленных отраслях остро стоит проблема утилизации больших объемов нефтесодержащих отходов (Shailubhai, 1 984; Castaldi, Ford, 1991; Giles etal., 2001; Mishra et al., 2001; Vasudevan, Rajaram, 2001; Saikia et al., 2001). Это в полной мере относится к производственному объединению «Нижнекамскнефтехим» (НКНХ) (г.Нижнекамск, Россия), функционирование которого сопряжено с постоянным образованием твердых нефтесодержащих отходов. До недавнего времени в мировом масштабе наиболее распространенной была практика захоронения твердых опасных отходов на специализированных полигонах (Mueller et al., 1984; Holmboe, 1993; Saxena, Jotshi, 1997). Аналогично решалась эта проблема в НКНХ, где, начиная с 1965г, происходило накопление этих шламов в шламонакопителях. В настоящее время объемы скопившихся в этих специальных депо отходов достигают 1123 тыс м3. Существующие депо практически заполнены, а строительство новых противоречит экологическим критериям. В этих условиях возникла необходимость освобождения шламонакопителей и поиска путей обезвреживания и утилизации твердых нефтехимических отходов.

Нефтешламы содержат устойчивые и токсичные компоненты, в частности, полициклические ароматические углеводороды (ПАУ), алканы (Aprill et al., 1990; Rocha et al., 1997; Giles et al., 2001; Mishra et al., 2001), a также могут включать специфические продукты нефтехимического синтеза (Якушева с соавт., 2002). Часть нефтехимических составляющих являются токсикантами и канцерогенами (Styrene, 1983; McMichael, 1988). Химический состав шламов варьирует в зависимости от их происхождения, специфики применяемых на предприятиях технологий добычи, переработки и химического синтеза. Исходя из этого, в каждом конкретном случае необходимо создавать стратегию ремедиации с учетом биологических и абиотических особенностей, которые характеризуют исследуемую эконишу.

Научное обоснование стратегии ремедиации предполагает создание концепции химического, токсикологического и биологического статуса данной антропогенной экосистемы. К изучению первых двух аспектов привлечено внимание ряда научно-исследовательских центров (Aprill et al., 1990; Juvonen et al., 2000; Giles et al., 2001), по поводу последнего практически нет литературных данных.

Наличие и степень микробной контаминации нефтешламов важны с позиции эволюции биоценозов в процессе многолетней аккумуляции специфического комплекса ксенобиотиков. Литература по нефтешламам затрагивает, как правило, микробиологические аспекты биоремедиации (Lazar et al., 1999; Giles et al., 2001; Mishra et al., 2001; Vasudevan, Rajaram, 2001), но не собственно нефтешламов как концентрированного комплекса специфических загрязнителей. Вместе с тем, создание биотехнологии, направленной на детоксикацию и утилизацию нефтешлама, предполагает исследование микробиологического статуса этой антропогенной экосистемы, что и определило изучение закономерностей распределения ряда физиолого-таксономических групп микроорганизмов в промышленном накопителе нефтехимических отходов, особенностей их физиологического состояния с учетом специфики среды обитания. Выживание и функционирование живых организмов в условиях сложной комбинации экстремальных факторов -проблема общебиологического масштаба. Непрекращающиеся дискуссии по вопросам, связанным с гипометаболическим, анабиотическим, жизнеспособным-но-некультивируемым, "другим состоянием" микробных популяций и сообществ (Atlas, Bartha, 1997; Trevors, 1998; Mascher et al., 2000) свидетельствуют о сложности данной проблемы. В круг этих проблем входят исследования закономерностей адаптации микроорганизмов в условиях сложного комплекса экстремальных факторов нефтешлама: токсичности, гидрофобности и низкой биодоступности ксенобиотиков, высокого осмотического давления, сезонных колебаний температуры.

Мировой опыт по переработке твердых отходов демонстрирует наибольшую экономическую эффективность и экологическую безопасность применения биотехнологий, однако известны лишь немногочисленные примеры обезвреживания шламов с высоким содержанием нефтяных углеводородов с помощью компостирования (O'Reilly, Simpkin, 1997; Kirchmann, Ewnetu, 1998; Lazar et al., 1999; Juvonen et al., 2000; Admon et al., 2001). При этом, основная масса работ сконцентрирована на исследованиях химических аспектов ремедиации нефтесодержащих отходов (El-Nawawy et al., 1992; Prado-Jatar et al., 1993; O'Reilly, Simpkin, 1997; Kirchmann, Ewnetu, 1998). В связи с ужесточением норм сброса в окружающую среду различных экологически опасных химических отходов, возникла необходимость в процессе обезвреживания нефтесодержащих осадков, наряду с химическим мониторингом^ осуществлять^ токсикологические исследования (Aprill et al., 1990; Juvonen et al., 2000). В настоящее время практически не существует работ, направленных на изучение формирования и функционирования микробных сообществ в условиях компостирования нефтзагрязненных шламов (Vasudevan, Rajaram, 2001; Petrisor et al., 2001).

Цель и задачи исследования. Цель настоящей работы - создать научную основу эффективной биотехнологии детоксикации и утилизации сложного комплекса экологически опасных отходов нефтехимического предприятия. Были поставлены следующие задачи:

• Охарактеризовать исходный нефтешлам по химическим, токсикологическим и микробиологическим показателям;

• Выявить закономерности распределения ряда физиолого-таксономических групп микроорганизмов в промышленном накопителе нефтехимических отходов, а также оценить особенности их физиологического состояния с учетом специфики среды обитания;

• Оценить особенности метаболического потенциала микроорганизмов нефтешлама для создаваемой биотехнологии;

• Осуществить пилотно-полевое компостирование на базе производственного объединения «Нижнекамскнефтехим» и оценить эффективность компостирования путем мониторинга с использованием основных химических, токсикологических и микробиологических параметров;

• Разработать рекомендации по практической реализации полномасштабной ремедиации нефтехимических отходов.

Научная новизна. Впервые дана характеристика химического состава, токсикологических свойств и микробиологического статуса твердых нефтехимических отходов, с учетом вертикального распределения слоев в многолетней толще шламонакопителя. Новым является также аспект дифференцированной оценки стратегии адаптации различных физиологических групп микроорганизмов в условиях длительного воздействия комбинации экстремальных факторов. Выявлены закономерности пространственно-временного распространения основных физиолого-таксономических групп микроорганизмов в многотонной массе нефтехимических отходов, при этом принципиально важна высокая доля их жизнеспособных форм. Выдвинута гипотеза эволюции микробного сообщества исследуемой антропогенной экосистемы.

Показаны особенности адаптации микроорганизмов в условиях многолетнего воздействия сложного комплекса экстремальных физико-химических специфических факторов в процессе аккумуляции специфических комплексов ксенобиотиков. Проведена сравнительная характеристика контаминации нефтешламов с позиций численности и метаболической активности деструкторов основных устойчивых, токсичных и мутагенных органических ксенобиотиков из би- и трициклоаренов, тиофенов, алканов. Изучены степень биодоступности как индивидуальных поллютантов, входящих в состав шлама, так и сложного комплекса загрязнения собственно нефтехимических отходов для детоксикации и минерализации.

Проведено разностороннее исследование токсических и генотоксических эффектов: острая и отдаленная токсичность в тестах на беспозвоночных, токсичность по отношению к бактериям, фитотоксичность, мутагенность в тесте Эймса. •

Практическая значимость. Результаты диссертационной работы позволили практически реализовать (совместно с «Нижнекамскнефтехим») компостирование для обезвреживания и утилизации твердого отхода нефтехимических отходов «Нижнекамскнефтехим» в пилотно-полевых условиях на территории Биологических очистных сооружений и с привлечением материальной базы Лаборатории ^очистки сточных вод этого предприятия. Оценка микробиологических параметров исходного нефтешлама выявила высокую потенциальную метаболическую активность микрофлоры нефтешлама. Это позволило осуществить ремедиацию без интродукции бактериальных штаммов. Применение испытанной технологии позволило уменьшить в среднем на 90% содержания нефтяных углеводородов, полициклических ароматических углеводородов, с одновременной элиминацией токсического действия компонентов компостов на одноклеточные и растения. Создана система токсико-микробиологического мониторинга, включающая тестирование различных физиолого-биохимических групп микроорганизмов и биологических активностей, и химического мониторинга в процессе детоксикации и минерализации изучаемых комплексов. Дано обобщение результатов исследования в виде концепции биодеградации комплекса экологически опасных ксенобиотиков.

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Никитина, Елена Владимировна

выводы

1. Высокое содержанием нефтяных (около 150 г/кг) и собственно нефтехимических (около 2 г/кг) компонентов в составе твердых отходов объединения «Нижнекамскнефтехим» обуславливает острую токсичность по отношению к простейшим (летальный эффект до 78%), фитотоксичность (ингибирование нефтешламом роста корней растений до 100%, водной вытяжкой до 59%) и мутагенность (кратность превышения числа ревертантов: водная вытяжка - до 15, органическая вытяжка - до 7).

2. Впервые выявлен факт высокой микробной обсемененности толщи нефтешлама (до Ю10 клеток/г), на фоне тенденции к снижению показателей численности с глубиной залегания горизонтов шламонакопителя. Наиболее характерной особенностью физиологического статуса микроорганизмов в многолетней массе нефтехимических отходов является высокая доля жизнеспособных форм (до 90% от общего количества микробных клеток). Важной особенностью большинства микроорганизмов, населяющих толщу нефтешлама, является их гипометаболическое состояние.

3. Микробиологический скрининг культивируемой части микробного сообщества показал, что нефтешлам является источником метаболически активной и экстремотолерантной микрофлоры, в том числе деструкторов труднодоступных ксенобиотиков, осморезистентных, психро- и термотолерантных микроорганизмов. Наличие адекватного метаболического потенциала и разносторонней устойчивости у нефтешламовой микрофлоры исключает необходимость интродукции специальных микробных препаратов в процессе ремедиации нефтехимических отходов.

4. Создана коллекция из 20 метаболически активных бактериальных штаммов, способных метаболизировать нефтяные компоненты, в том числе полициклические ароматические углеводороды. Эти штаммы могут быть использованы и уже используются для интенсификации ремедиации объектов.

5. Сукцессия микробного сообщества в процессе компостирования нефтешлама характеризовалась увеличением органотрофной части микробиоценоза в первые месяцы компостирования, свидетельствующим о биодоступности, отражающем биоразлагаемость нефтяного загрязнения. Повышение числа актиномицетов (на 2 порядка) и стабилизация уровня органики на завершающем этапе созревания компостов свидетельствует об исчерпании в компостируемых смесях субстратов, способных удовлетворять потребности копиотрофов в источниках органического питания. В результате ремедиации микробиоценоз компостов нефтешлама приобрел свойства устойчивого сообщества на поздней стадии сукцессии.

6. Компостирование в пилотно-полевых условиях выявило его высокую эффективность для обезвреживания экологически опасных нефтехимических отходов. Об этом свидетельствует снижение суммарного уровня нефтяных углеводородов (на 70-80%, по данным гравиметрического метода, на 90% - с использованием ИК-спектроскопии), суммы 10 исследованных полициклических ароматических углеводородов - на 97%. Выявлено достоверное снижение негативного влияния компостов нефтешлама на тест-объекты из числа простейших (с 15 до 0%) и растений (с 34 до 7%).

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Никитина, Елена Владимировна, 2003 год

1. Аринушкина Е.В. Руководство по химическому анализу почв. Изд-во: МГУ. 1961.

2. Балашова Н.В. Деградация фенантрена и нафталина бактериями родов Pseudomonas и Burkholderia. (Диссертация на соискание степени кандидата биологических наук, специальность-03.00.04). Пущино, - 2000. - 112с.

3. Габбасов И.М., Сулейманов P.P., Хазиев Ф.Х., Бойко Т.Ф., Галимзянова Н.Ф., Фердман В.М., Ханисламова Г.М. Рекультивация серой лесной почвы, загрязненной нефтяным шламом // Экологическая и промышленная безопасность. 2001. - № 7. - С.81-84.

4. Гайсин И.А., Гилязов М.Ю. Загрязнение почв предприятиями нефтяной промышленности //В кн. Зеленая книга республики Татарстан. Казань: Изд-во КГУ, 1993. - С.278-281.

5. Головлёв Е.Л. Введение в биологию стационарной фазы бактерий: механизм общего ответа на стрессы // Микробиология.-1999.-Т.68.-С.623-631.

6. Головлёв Е.Л. Другое состояние неспорообразующих бактерий // Микробиология. 1998. - Т.67. - С.601-609.

7. Головлёв Е.Л. Экологическая стратегия бактерий: специфика проблемы // Микробиология. 2001. - Т.70, N.4. С.437-443.

8. ГОСТ 26213-91. Почвы. Методы определения органического вещества. // М. Изд-во стандартов. 1992.

9. ГОСТ Р 17.4.3.07-2001. Требования к свойствам осадков сточных вод при использовании их в качестве удобрений /'/' М. Изд-во стандартов. 2001.

10. Ю.Зарипов С. А. Начальные этапы микробного метаболизма 2,4,6-тринитротолуола. (Диссертация на соискание степени кандидата биологических наук 03.00.07-микробиология). - Казань, - 2002. - 109с.

11. И.Звягинцев Д.Г. Методы почвенной микробиологии и биохимии. // Изд-во: МГУ. 1991.

12. Звягинцев Д.Г., Зенова Г.М. Экология актиномицетов. М.:ГЕОС, 2001. -256с.

13. П.Звягинцева И. С., Поглазова М. Н., Готоева М. Т., Беляев С.С. Влияние солености среды на деструкцию нефтяных масел нокардиоподобными бактериями // Микробиология. 2001. - Т.70. № 6. - С.759-764.

14. М.Зенова Г.М., Грачева Т.А., Манучарова Н.А., Звягинцев Д.Г. Атиномицетные сообществ алесных экосистем // Почвоведение. 1996. -№11.- С. 1347-1351.

15. Ильинская О.Н., Иванченко О.Б., Карамова Н.С. Определение генотоксичности веществ в краткосрочных тест-системах. Методическое руководство // Изд-во: КГУ, Казань. 1995. - 22с.

16. Киреева Н.А. Микробиологические процессы в нефтезагрязненных почвах. -БашкГУ.,1994. -С. 172.

17. Кожевин П.А. Микробные популяции в природе // Изд-во: МГУ. Москва. 1989.

18. Колешко О.И. Экология микроорганизмов почвы // Изд-во: Выш. школа. Минск. 1981.- 176с.

19. Критерии определения класса опасности отходов и порядок их отнесения к классу опасности для окружающей среды. Госкомитет РФ по охране окружающей среды. // Проект документа, Изд-во: М., 2000.

20. Куличевская И.С., Милехина Е.И., Борзенков И.А., Звягинцева И.С., Беляев С.С. Окисление углеводородов нефти экстремально галофильными архебактериями //Микробиология. 1991. Т.60. № 5. С. 860 866.

21. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, - 1990. - 352с.

22. Лурье Ю.Ю. Аналитическая химия промышленных сточных вод. Изд-во: Химия. Москва. 1984. - 447с.

23. Методы таксономического анализа // Методы почвенной микробиологии и биохимии / Под ред. Звягинцева Д. Г. М.: Изд-во МГУ. 1991. С. 131-133.

24. Мишустин Е.Н. Развитие учения о ценозах почвенных микроорганизмов // Успехи Микробиологии. 1982. Т.17. С. 117-134.

25. Мулюкин А.Л., Луста К.А., Грязнова М.Н., Бабусенко Е.С., Козлова А.Н., Дуда М.В., Митюшина Л.А., Дуда В.И., Эль-Регистан Г.И. Образованиепокоящихся форм в автолизирующихся суспензиях микроорганизмов // Микробиология. 1997. - Т.66, №1. - С.42-49.

26. Плохинский Н.А. Биометрия. М.: Изд-во МГУ, - 1970. - 366с.

27. Санитарные нормы допустимых концентраций химических веществ в почве САН П и II 42-128-4433-87 // Минздрав. СССР, Изд-во: М., 1988.

28. Филонов А.Е., Карпов А.В., Пунтус И.Ф., Акименко В.К., Воронин A.M. Микробная деградация фенантрена и нафталина в почвенных модельных системах. // INTAS « Microb. Ecol. Biotechnol. Reflect. Extremophil.» Москва, 26-30 сент., 1997. - С.30.

29. Якушева О.И., Наумова Р.П. Биотехнология очистки сточных вод нефтехимического комплекса // В сб. Био- и медицинские проблемы окружающей среды Республики Татарстан. Под ред. Гордона JT.X., Бойко В.А., Казань: Экоцентр. 1998. - Т.1. - С.168-188.

30. Admon S., Green М., Avnimelech Y. Biodegradation kinetics of hydrocarbons in soil during land treatment of oily sludge // Bioremediation J. 2001. - V.5, N.3. -P.193-209.

31. Ahn Y., Sanseverino J., Sayler G.S. Analyses of polycyclic aromatic hydrocarbon-degrading bacteria isolated from contaminated soils // Biodegradation. 1999. -V.10. - P.149-157.

32. Alexander M. How toxic are toxic chemicals in soil? // Environ. Sci. Technol. -1995. V.29. - P.2713-2717.

33. Almeida J.S., Leung K.T., MacNaughton S.J., Flemminf C.A., Wimpec M.H., Pavis G.A., White D.C. Mapping change in soil microbial community composition signaling bioremediation // Bioremediation J. 1998. - V.l, N.3. - P.255-264.

34. Amellal N., Portal J.-M., Vogel T. Berthelin J. Distribution and location of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) and РАН-degrading bacteria within polluted soil aggregates // Biodegradation. 2001. - V.12. - P.49-57.

35. American Petroleum Institute. Manual on disposal of refinery wastes. // Am. Petr. Inst., Washington, D.C.

36. Andersson E., Henrysson T. Bioremediation of РАН-contaminated soils using white-rot fungi // In-Situ and On-Site Bioremed. 1997. - V.2. - P.535.

37. Aprill W., Sims R.C., Sims J.L., Matthews J.E. Assessing detoxification and degradation of wood preserving and petroleum wastes in contaminated soil // Waste Manag. Research. 1990. - V.8. - P.45-65.

38. Arana I., Muela A., Iriberry J., Egea L., Barcina I. Role of hydrogene peroxide in loss of culturability mediated by visible light in Escherichia coli in a Freshwater system//Appl. Environ. Microbiol.-1992.-V.58.-P.3903-3907.

39. Atlas R.M. Microbial degradation of petroleum hydrocarbons: an environmental perspective // Microbiol. Review. 1984 V.45. N.l. - P. 198-209.

40. Atlas R.M., Horowitz A., Krichevsky A., Bej A.K. Response of microbial population to environmental disturbance // Microbiol. Ecol. 1991. - V.22. -P.249-256.

41. Atlas, R.M., Bartha, R. Microbial ecology: fundamentals and applications. Cummings. Sei. Publ. California. 1997. - 343p.

42. Barron M.G., Podrabsky Т., Ogle S., Ricker R.W. Are aromatic hydrocarbons the primary determinant of petroleum toxicity to aquatic organisms? // Aquatic Toxicol. 1999. - V.46. - P.253-268.

43. Bartha R. Biotechnology of petroleum pollutant biodegradation // Microb. Ecology. 1986. - V.12. - P.155-172.

44. Bartha R., Bossert I. The treatment and disposal of petroleum waste // In: Atlas R.M. (ed.), Petroleum microbiology. Macmillian, New York. 1984. - P.553-577.

45. Bastiaens L., Springae L.D., Wattiau P., Harms H., DeWachter R., Verachtert H., Diels L. Isolation of adherent polycyclic aromatic hydrocarbon (PAH)- degrading bacteria using PAH-sorbing carriers // Appl. Environ. Microbiol. 2000. - V.66. -P.1834-1843.

46. Benka-Coker M.O., Ekundayo J.A. Applicability of evaluating the ability of microbes isolated from an oil spill site to degrade oil // Environ. Monitor. Assessment. 1996. - V.45. - P.259-272.

47. Bispo A., Jourdain M.J., Jauzein M. Toxicity and genotoxicity of industrial soils polluted by polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) // Organic Geochemistry. -1999. V.20. -P.947-952.

48. Bogardt A.H., Hemmingsen B.B. Enumeration of phenanthrene-degrading bacteria by an overlayer technique and its use in evaluation of petroleum-contaminated sites // Appl. Environ. Microbiol. 1992. - V.58, N.8. - P.2579-2582.

49. Boldrin, В., Tiehm A., Fritzsche C. Degradation of phenanthrene, fluorene, fluoranthene, andpyreneby a Mycobacterium sp. Appl. // Environ. Microbiol. -1993. -V.59. P.1927-1930.

50. Boonchan S ., Вritz M .L., S tanley G .A. Degradation and mineralization о f high-molecular-weight polycyclic aromatic hydrocarbons by defined fungal-bacterial cocultures // Appl. Environ. Microbiol. 2000. - V.66, N.3. - P.1007-1019.

51. Bossert I., Bartha R. The fate of petroleum in soil ecosystems // In: Petroleum Microbiology. Ed. R. Atlas. New York, U.S.A.: Macmillan Pub. Co. 1986a. - P. 435-474.

52. Bossert I.D., Bartha R. Structure-biodegradability relationships of polycyclic aromatic hydrocarbons in soil // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1986b. - V.37. -P.490-495.

53. Burback, B.L., Perry J.J. Biodegradation and biotransformation of groundwater pollutant mixtures by Mycobacterium vaccae //Appl. Environ. Microbiol. 1993. -V.59. - P.1025-1029.

54. Caldini G., Cenci G., Manenti R., Morozzi G. The ability of an environmental isolate of pseudomonas fluorescence to utilize chrysene and other fourOringpolynuclear aromatic hydrocarbons // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1995. - V.44, N.l-2. - P.225-229.

55. Castaldi F.J., Ford D.L. Slurry bioremediation of petrochemical waste sludge // Wat. Sci. Tech. 1991. V.25. P.207-212.

56. Cavalca L., Colombo M., Larcher S., Gigliotti C., Collina E., Andreoni V. Survival • and naphthalene-degrading activity of Rhodococcus sp. strain 1BN in soilmicrocosms // J. Appl. Microbiol. 2002. - V.92. - P. 1058-1065.

57. Cegniglia С. E. Biodegradation of polycyclic aromatic hydrocarbons. // Biodegradation. 1992. - V.3. - P.351-368.

58. Churchill S.A., Harper J.P., Churchill P.F. Isolation and characterization of a Mycobacterium species capable of degrading three- and four-ring aromatic and aliphatic hydrocarbons // Appl. Environ. Microbiol. 1999. - V.65, N.2. - P.549-552.

59. Cioffi R., Costanzo S., Maffucci L., Santoro T. Adsorption of the organic fraction of a tannery sludge by means of organophilic bentonite. // Environ. Technol. 2001. V.22. N.l. P.83-89.

60. Concawe // Sludge farming: a technique for disposal of oil refinery waste. Report 3/80. Den Haag, the Netherlands. 1980.

61. Delille D., Delille В., Pelletier E. Effectiveness of bioremediation of crude oil contaminated subantarctic intertidal sediment: the microbial response // Microb. Ecol. 2002. - V.44, N.2. P.l 18-126.

62. Denome SA, Stanley DC, Olson ES, Young KD. Metabolism of dibenzothiophene and naphthalene in Pseudomonas strains: complete DNA sequence of an upper naphthalene catabolic pathway // J Bacterid. 1993. - V.175, N.21. - P.6890-6901.

63. Dibble J.T., Bartha R. Effect of environmental parameters on the biodegradation of oil sludge. // Appl. Environ. Microbiol. 1979. - V.37, N.4. - P.729-739.

64. Dries J., Smets B.F. Transformation and mineralization of benzoa.pyrene by microbial cultures enriched on mixtures of three- and four-ring polycyclic aromatic hydrocarbons // J. Indust. Microbiol. Biotechnol. 2002. - V.28. P.70 -73

65. Dukan S., Levi Y., Tonati D. Recovery of culturability of an HOCI-stressed population of Escherichia coli after incubation in phosphate buffer: resuscitation or regrowth? // Appl. Environ. Microbiol. 1997. - V.63. - P. 4204-4209.

66. Ehrlichmann H. Entwicklung eines Konzepts zur Bewertung des wassrig extrahierbaren genotoxischen Potetials kontaminierter Boden m it optimierten und miniturierten prokariontischen Testverfahren // Copyright Shaker Vergal. Aahen. Germany. 1999. 234p.

67. E1-Nawawy A.S., El-Bagouri I.H., Abdal M., Khalafai M.S. Biodegradation of oily sludge in Kuwait soil // W. J. Microbiol. Biotechnol. 1992. - V.8, N.6. - P.618-620.

68. Faulkner B.C., Lochmiller R.L. Ecotoxicity revealed i n p arasite communities о f Sigmodon hispidus in terrestrial environments comtaminated with petrochemicals // Environ. Polutt. 2000. V.110. P.135-145.

69. Federal register. Hazardous waste management system; standards applicable to owners and operators of hazardous waste treatment, storage, and disposal facilities; and EPA administered permit programs // 1982. V.47, N.143. - P.32324.

70. Ferris J. P., MacDonald L.H., Patrie M.A., Martin M.A. Aryl hydrocarbon hydroxylase activity in the fungus Cunninghamella bainieri: evidence for the presence of cytochrome P-450 // Arch. Biochem. Biophys. 1976. - V.175, N.2. - P. 443-552.

71. Foght J.M., Fedorak P.M., Westlake D.W.S. Mineralization of l4C-hexadecane and l4C-phenanthrene in crude oil: specificity among bacterial isolates // Can. J. Microbiol. 1989. - V.36. - P.169-175.

72. Foote C.S. Definition of type 1 and type 2 photosensitized oxidation. // Photochem. Photobiol. 1991. - V.54. - P.659-664.

73. Ford Т.Е. Response of marine microbial сommunities tо anthropogenic stress // Aqua. Ecosystem Stress Recov. 2000. - V.7. - P.75-89.

74. Fredrickson J.K., Brockman F.J., Workman D.J., Li S.W. Stevens Т.О. Isolation and characterization of a subsurface bacterium capable of growth on toluene, naphthalene, and other aromatic compounds // Appl. Environ. Microbiol. 1991. -V.57. P.796-803.

75. Fuller M.E., Manning J.F. Evidence for differential effects of 2,4,6-trinitrotoluene and other munitions compounds on specific subpopulation of soil microbial communities // Environ. Tox. Chem. 1998. - V 17. P.2185-2195.

76. Garcia C., Hermandez T. Effects of bromacil and sewage sludge addition on soil enzymatic activity// Soil Sci. Plant Nutr. 1995. - V.42, N.l. - P. 191-195.

77. Garcia-Valdes E., Cozar E., Rotger R., Lalucat J., Ursing J. New naphthalene-degrading marine Pseudomonas strains // Appl. Environ. Microbiol. 1988. - V.54. - P.2478-2485.

78. Geiselbrecht A.D., Hedlund B.P., Tichi M.A., Staley J.T. Isolation of marine polycyclic aromatic hydrocarbon (PAH)-degrading Cycloclasticus strains from the Gulf of Mexico and comparison of their PAH degradation ability with that of Puget

79. Sound Cycloclasticus strains // Appl. Environ. Microbiol. 1998. - V.64, N.12. - P. 4703-4710.

80. Geiselbrecht A.D., Herwig R.P., Deming J.W., Staley J.T. Enumeration and phylogenetic analysis of polycyclic aromatic hydrocarbon-degrading marine bacteria from Puget Sound sediment // Appl. Environ. Microbiol. 1996. - V.62.• P.3344-3349.

81. Gibson, D. I., and V. Subrahamanian. Microbial degradation of aromatic hydrocarbons // In D. T. Gibson (ed.), Microbial degradation of organic compounds. Mercel Dekker, Inc., New York, N.Y. 1984. P. 181-252.

82. Giles W.R., Kriel K.D., Stewart J.R. Characterization and bioremediation of a weathered oil sludge // Environ. Geosciences. 2001. - V.8, N.2. - P.l 10-122.

83. Goettems E.M., Simon Z., Baldasso M.L., Ferreira E.S. Sitel: a successful petrochemical wastewarter treatment system // Wat. Sci. Tech. V.20. - P. 141-162.

84. Goldberg D.R., Yuill T.M., Burgess E.C. Mortality from duck plaque virus in

85. Ш immunosuppressed adultmallard ducks // J. Wildl. Dis. 1990. - V.26. - P.299-306.

86. Govindaswami M., Feldhake D. J., Kinkle B.K., Mindell D.P., Loper J.C. Phylogenetic comparison of two polycyclic aromatic hydrocarbon-degrading Mycobacteria//Appl. Environ. Micobiol. 1995. - V.61, N.9 - P.3221-3226.

87. Goyal A.K., Zylstra G.J. Molecular cloning of novel genes for polycyclic aromatic hydrocarbon degradation from Comamonas testosteroni GZ39 // Appl. Environ. Microbiol. 1996. - V.62. - P.230-236.

88. Grifoll M., Casellas M., Bayona J.M., Solanas A.M. Isolation and characterization of a fluorene-degrading bacterium identification of ring oxidation and ring fission products // Appl. Environ. Microbiol. - 1992. - V.58. - P.2910-2917.

89. Gu Y., Mazolla M., Impact of carbon starvation on stress resistance, suvival in soil habitats and biocontrol ability of Pseudomonas putida strain 2C8. // Soil Biology and Biochemistry. -2001. -V.33. P. 1155-1162.

90. Guzev I.S., Levin S.V., Seletski G.I., Babieva E.N., Zviagintsev D.G. // In Microorganisms and protection of soils. Ed. Zviagintsev D.G. Moscow State University Press, Moscow, Russia. 1989. - P. 129-150.

91. Harmsen J., Ferdinandy M. Measured bioavailability as a tool managing clean-up and risks on landfarming // In: 5th International In Situ and On Site Bioremediation Symposium. San Diego, California, April 19-22. 1999. - V.2 - P.57-62.

92. Haworth S., Lawlor Т., Mortelmans K., Speck W., Zeiger E. Salmonella mutagenicity test results for 250 chemicals /7 Environ. Mutagen. 1983. - V.5, N.l.- P.141-142.

93. Hedlund B.P., Geiselbrecht A.D., Bair T.J., Staley J.T. Polycyclic aromatic hydrocarbon degradation by a new marine bacterium, Neptunomonas naphthavorans gen. nov., sp. nov. // Appl. Environ. Microbiol. 1999. - V.65, N.l.- P.251-259.

94. Holmboe B. SWIS the Danish solid waste information system - a statistical tool to collection and progress data on solid waste and recyclable materials. // Adv.

95. Recov. Recycl.: Concepts and Technol.: Collec. Pap. ReC'93 Int. Recycl. Congr., Geneva. 1993. - V.l. - С 234-235.

96. Huddlestone R.L., Creswell L.W. The disposal of oily wastes by landfarming. // In Proc. of the Management of Petroleum Refinery Wastewaters Forum, Tulsa, OK. Am. Petroleum Inst. 1976.

97. Hughes T.J., Claxton L.D., Brooks L., Warren S., Brenner R., Kremer F. Genotoxicity of bioremediated soils from the Reilly Tar site, St. Louise Park, Minnesota // Environ. Health Perspect. 1998. - V.106, N.6. - P. 1427-1433.

98. Hund K., Traunspueger W. Ecotox-evaluation strategy for soil bioremediation exemplified for a РАН-contaminated site // Chemosphere. 1994. - V.29, N.2. -P.371-390.

99. IARC Monographs on the Evaluation of the Carcinogenic Risk of Chemicals to Humans: Polynuclear Aromatic Hydrocarbons. WHO, Lyon, France. 1983. - V.32.

100. ISO 10712. Water quality Pseudomonas putida growth inhibition test (Pseudomonas cell multiplication inhibition test). - 1995.

101. Jonsen A.R., Winding A., Karlson U., Roslev P. Linking of microorganisms to phenanthrene metabolism in soil by analysis of 13C-labeled cell lipids // Appl. Environ. Microbiol. 2002. - V.68, N.12. - P.6106-6113.

102. Jorgensen F., Nybroe O., Knechel S. Effects of starvation and osmotic stress on viability and heat resistance of Pseudomonas fluorescens Al 19 // J. Appl. Bacterid. 1994.-V.77.-P.340-347.

103. Juhasz A., Britz M., Stanley G. Degradation of benzo(a)pyrene, dibenz(a,h)anthracene and coronene by Burkholderia cepacia II Water Sci. and Tech. 1998,-V.10,-P.45-51.

104. Juhasz A., Stanley G., Britz M. Microbial degradation and detoxification of high molecular weight polycyclic aromatic hydrocarbon by Stenotrophomonas maltophilia strain VUN 10,003 // Lett. Appl. Microbiol. 2000. - V.30. - P.396-401.

105. Juvonen R., Martikainen E., Schultz E., Joutti A., Ahtianen J., Lehtokari M. A battery of toxicity tests as indicators of decontamination in composting oily waste // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2000. - V.47. - P. 156-166.

106. Kanaly R., Bartha R., Fogel S., Findlay M. Biodegradation of 14C.benzo[a]pyrene added in crude oil to uncontaminated soil // Appl. Environ. Microbiol. 1997.-V.63,N.11.-P.4511-4515.

107. Kaprelyants A.S., Gottscal J.C., Kell D.B. Dormancy in non-sporulating bacteria // FEMS Microbiol. Rev. 1993. - V.140. - P.271-286.

108. Kastner M., Breuer-Jammali M., Mahro B. Enumeration and characterization of the soil microflora from hydrocarbon-contaminated soil sites able to mineralize aromatic polycyclic hydrocarbons // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1994. - V.41. -P.267-273.

109. Kell D.B., Kaprelyants A.S., Weichart D.H., Harwood C.R., Barer M.R. Viability and activity in readily culturable bacteria: a review and discussion of the practical issues // Ant. van Leeuwennquec. 1998. - V.73. - P. 169-187.

110. Kiehlmann E., Pinto L., Moore M. The transformation of chrysene to trans-\,2-dihydroxy-l,2-dihydrochrysene by filamentous fungi // Can. J. Microbiol. 1996. -V.42. - P.604-608.

111. Kincannon D.F., Lin Y.S. Microbial degradation of hazardous wastes by land treatment // Proc. Ind. Waste Conf. 1985. V.40. - P. 607-619.

112. Krishnamurthi K., Devi F., Chakrabarti T. Genotoxic effects of PAH containing sludge extracts in Chinese hamster ovary cell cultures // Biomed. Environ. Sci. -2003. V.16, N.l. - P.68-82.

113. Kirchmann H., Ewnetu W. Biodegradation of perroleum-based oil wastes through composting//Biodegradation. 1998. - V.9, N2. - P. 151-156.

114. Kiyohara H., Nagao K., Yana K. Rapid screen for bacteria degrading water-insoluble, solid hydrocarbon о n agar plates //Appl Environ Microbiol. 1982. -V.43.N.2. -454-457.

115. Kogure, K., U. Simidu, N. Taga. A tentative direct microscopic method for counting living marine bacteria // Can. J. Microbiol. 1979. - V.25. - P.415^420.

116. Korda A., Santas P., Tenente A., Santas R. Petroleum hydrocarbon bioremediation: sampling and analytical techniques, in situ treatments and commercial microorganisms currently used // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1997. V.48. - P.677-686.

117. Kragelund L., Nibroe O. Culturability and expression of outer membrane proteins during carbon, nitrogen, or phosphorus starvation of Pseudomonas putida DF14 // Appl. Environ. Microbiol. 1994. - V.60. - P.2944-2948.

118. Langworthy D.E., Stapleton R.D., Sayler G.S., Findlay R.H. Genotypic and phenotypic responses of a riverine microbial community to polycyclic aromatic hydrocarbon contamination // Appl. Environ. Microbiol. 1998. - V.64. - P.3422-3428.

119. Launen L., Pinto L., Wiebe C., Kiehlmann E., Moore M. The oxidation of pyrene and benzoa.pyrene by nonbasidiomycete soil fungi // Can. J. Microbiol. 1995. -V.41. - P.477-488.

120. Laurie A.D., Lloyd-Jones J. The phn genes of Burkholderia sp. strain RP007 constitute a divergent gene cluster for polycyclic aromatic hydrocarbon catabolism //J. Bacterid. 1999. V.181, N.2. P.531-40.

121. Lawlor K., Sublette K., Duncan K., Levetin E., Buck P. et al. Long-term effects of crude oil contamination and bioremediation in a soil ecosystem // Bioremediation J.- 1997. V.l, N.l. - P.41-51.

122. Lazar I., Dobrota S., Voicu A., Stefanescu m., Sandulescu L., Petrisor I.G. Microbial degradation of waste hydrocarbons of oily sludge from some Romanian Oil Fields//J. Petrol. Sci. Engineering. 1999. - V.22. -P.151-160.

123. Lenhard G. Bestimmung der vertugbaren Pflanzennahrstoffe durch Ermittlung der Degidrogenoseaaktivitat des Bodens // Ztschr. Pflanz. Dung. Bodenk. 1962. -V.99, N.2-3. - P.182-190.

124. Li С.-Т., W.-J. Lee, H.-H. Mi., С.-С. Su. РАН emission from the incineration of waste oily sludge and PE plastic mixtures // Sci. Total Environ. 1995. - V.170. -P.171-183.

125. Loehr R.C., Webster M.T. Behavior of fresh vs. Aged chemicals in soil // J. Soil Contamination. 1996. - V.5. - P.361-383.

126. Loehr R.C., Webster M.T. Change in toxicity and mobility resulting frombioremediation processes // Bioremediation J. 1997. - V.l, N.2. - P. 149-163.

127. Londry K., Suflita J. Use of nitrate to control sulfide generation by sulfate -reducing bacteria associated with oily waste // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 1999. V.22. № 6. P.582-589.

128. MacNaughton S.J., Stephen J.R., Venosa A.D., Davis G.A., Chang Y.J., White D.C. M icrobial p opulation сhanges during bioremediation о f an experimental oil spill // Appl Environ Microbiol. 1999. - V.65, N.8. - P.3566-3574.

129. Maliszewska-Kordybach В., Smreczak B. Deshydrogenases activity in soils andt thheavy metals. // In: Proceeding of 17 International Symposium on Polycyclic

130. Aromatic Compounds, 25-29 October, 1999. Bordeaux, France. P.212.

131. Manual of methods for general bacteriology // Ed. P. Gerhardt et al. American Society for Microbiology. Washington, DC. 1984.

132. Margesin R., Zimmerbauer A., Schinner F. Monitoring of bioremediation by soil biological activities // Chemosphere. 2000. - V.40. - P.339-346.

133. Marks R.E., Field S.D., Wojtanowicz A.K., Britenbeckn G.A. Biological treatment of petrochemical wastes for removal of hazardous polynuclear aromatic hydrocarbon constituents // Wat. Sci. Tech. 1992. - V. 25, N. 3. - P.213-220.

134. Menn F.-M., Applegate B.M., Sayler G.S. NAH plasmid-mediated catabolism of anthracene and phenanthrene to naphtoic acids // Appl. Environ. Microbiol. 1993. - V.59. - P.1938-1942.

135. Menzie C.A., Potocki B.B., Santodonato J. Exposure to carcinogenic PAHs in the environment. // Environ. Sci. Technol. 1992. V. 26. P. 1278-1284.

136. Meulenberg R., Draaisma R.B., de Ridder E.M.E.J., Rijnaarts H.H.M. Sequentialanthracene degradation by Bjerkandera BOS55 and bacteria // In-Sity and On-Site Bioremed. 1997. - V.2. - P.487.

137. Mishra S., Jyot J., Kuhad R. C., Lai B. In Situ Bioremediation Potential of an Oily Sludge-Degrading Bacterial Consortium // Curr. Microbiol. 2001. - V. 43. -P.328-335.

138. Molina M., Aranjo R., Hodson R.E. Cross-induction of pyrene and phenanthrene in a Mycobacterium sp. isolated from polycyclic aromatic hydrocarbon contaminated river sediments // Can. J. of Microbiol. 1999. - V.45, N.6. - P.520-529.

139. Mueller U., Kassner W., Kuhlhoff D., Loll U., Otte-Witte R. Neudefmition der Ф Deponierfahigkeit von Klarschlammen. // Korrespond. Adwasser. 1984. - V.31,11. -P.928-933.

140. Mueller, J.G., Chapman P.J., Blattmann B.O., Pritchard P.H. Isolation and characterization of a fluoranthrene-utilizing strain of Pseudomonas paucimobilis П Appl. Environ. Microbiol. 1990. - V.56. - P. 1079-1086.

141. Murphy S., Charrois J., McGill W. Toxicity testing of weathered biotreatment petroleum hydrocarbon-contaminated soils // In: The 6 International In Situ and On-Site Bioremediation Symposium. San Diego, California, USA. June 4-7. 2001.- V.4. P.7-16.

142. Murray K., Williams P.A. Role catechol and methyl catechol as inducers of aromatic metabolism in Pseudomonas putida II J. Bacterid. 1974. - V.l 17. -P. 1153-1 157.

143. Nyman J.A. Effect of crude oil and chemical additives ob metabolic activity of mixed microbial populations in fresh marsh soils // Microb. Ecol. 1999. - V.37. -P.157-162.

144. Parales R.E., Lee K., Resnick S.M., Jiang H., Lessner D.J., Gibson D.T. Substrate specificity of naphthalene dioxygenase: effect of specific amino acids at the active site of the enzyme // J. Bacteriol. 2000. - V.l 82, N.6. - P. 1641-1649.

145. Pfortner P., Weller MG., Niessner R. Immunological method for the detection of nitroaromatic residues covalently bound to humic acids // Prescnius J Anal Chem. -1998. V.360. - P.192-198.

146. Phillips T.M., Liu D., Seech A.G., Lee H., Trevors J.T. Monitoring bioremediation in creosote-contaminated soils using chemical analysis and toxicity tests //J. Indust. Microbiol. Bioteclmol. 2000. - V.24. - P. 132-139.

147. Picado A., Nogueira A., Baeta-Hall L., Mendonca E., Rodrigues F.M., Saagua M.C., Martins A., Anselmo A.M. Landfarming i n a РАН-contaminated soil//J.

148. Environ. Sci. Health. -2001,- V.36,N.9. P. 1579-1588.

149. Poche L.R., Derby R.E., Wagner D.R. Solvent extraction of refinery wastes rates EPA BDAT // Oil Gas J. 1991. - V.7, N.l. - P.73-77.

150. Pope D.F., Matthews J.E. Bioremediation using the land treatment concept. // USEPA/600/R-93/164. Robert S. Kerr Environ. Res. Lab., U.S. Environ. Protection Agency. 1993.

151. Prado-Jatar M., Correa M., Rodriguez-Grau J., Carneiro M. Oil sludge landfarming biodegradation experiment conducted at a tropical site in eastern Venezuela//Was. Manag. Resech. 1993. - V.ll. - P.97-106.

152. Propst T.L., Lochmiller R.L., Quails C.W., McBee K. In situ (mesocosm) assessment of immunotoxicity risks to small mammals inhabiting petrochemical waste sites // Chemosphere. 1999. - V.38, N5. - P.1049-1067.

153. RCRA Information on Hazardous waste for Public owned treatment works, United States Environmental Protection Agency. September 1985.

154. Rocke Т.Е., Yuill T.M., Hinsdill R.D. Oil and related toxicant effects on mallard immune defenses // Environ. Res. 1984. - V.33. - P.343-352.

155. Rosazza J. P., Smith R. V. Microbial models for drug metabolism // Adv. Appl. Microbiol. 1979. - V.25. - P. 169-208.

156. Roszak D.B., Colwell R.R. Survival strategies of bacteria in the natural environment // Microbiol. Rev. 1987. - V.51. - P. 367-379.

157. Saagua M.C., Baeta-Hall L., Anselmo A.M. Microbiologiucal characterization of • a coke oven contaminated site and evaluation of its potential for bioremediation //

158. W. J. Microbiol. Biotechnol. 2002. - V.18. - P.841-845.

159. Saikia N.J., Segupta P., Gogoi P.K., Borthakur P.C. Physico-chemical and cementitious properties of sludge from oil field effluent treatment plant // Cement Concrete Research. 2001. - V.31. - P. 1221 -1225.

160. Sakai M., Yoshida P., Mizusaki S. Mutagenicity of polycyclic aromatic hydrocarbons and quinines on Salmonella typhimurium TA97 // Mutation Research. 1985. - T.156. - P.61-67.

161. Sandvik S, Lode A, Pedersen ТА. Biodegradation of oily sludge in Norwegian Щ soils // Appl. Microbiol. 1986. - V.23. - P.297-301.

162. Saxena S.C., Jotshi C.K. Management and combustion of hazardous wastes. // Prog. Energy Combust. Sci. 1996. - V.22. - P.401-425.

163. Symons B.D., Sims R.C. Assessing detoxification of a complex hazardous waste, using the Microtox™ bioassay // Arch. Environ. Contam. Toxocol. 1988. - V.l7. -P.497-505.

164. Tedesco M., Ligo M., Gianello C., Simon Z. Effect of petrochemical activated sludge on soil properties // Wat. Sci. Tech. 1989. - V.20. - P.63-74.

165. Thompson R.A., Shcroder G.D., Connor Т.Н. Chromosomal aberrations in the cotton rat, Sigmodon hispidus, exposed to hazardous waste // Environ. Molec. Mutagen. 1988. - V. 11. - P.359-367.

166. Trevors J.T. Bacterial biodiversity in soil with an emphasis on chemically-contaminated soils // Water Air Soil Pollution. 1998. - V.101. P.45-67.

167. Vasudevan N, Rajaram P. Bioremediation of oil sludge-contamination soil // Environ. Internat. 2001. - V.26. 409-411.

168. Verrhiest G.J., Clement В., Volat В., Montuelle В., Perrodin Y. Interactions between a polycyclic hydrocarbon mixture and the microbial communities in a natural freshwater sediment // Chemosphere. 2002. - V. 46. - P. 187-196.

169. Walter U., Beyer M., Klein J., Rehm H.J. Degradation of pyrene by Rhodococcus sp. UW1II Appl. Environ. Microbiol. 1991. - V.34. - P.671-676.

170. Wang X., Bartha R. Effects of bioremediation on residues, activity and toxicity in soil contaminated by fuel spills // Soil Biol. Biochem. 1990. - V.22. - P.501-505.

171. Weissenfels W.D., Beyer M., Klein J. Degradation of phenanthrene, fluorene and fluoranthene by pure bacterial cultures // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1990. -V.32. - P.479-484.

172. Weldon R.A. Oil waste biooxidation in soil. // In 86th Nat. Meeting, Am. Inst, of chem. Eng., Houston-1979.

173. Wernersson A.-S., Dave G. Phototoxicity identification by solid phase extraction and photoindused toxicity to Daphnia magna. // Arch. Environ. Contam. Toxicol. -1997. V.32. - P.268-273.

174. West P.A., Okpokwasih G.C., Brayton P.R., Grimes D.J., Colwell R.R. Numerical taxonomy of phenanthrene-degrading bacteria isolated from the Chesapeake Bay// Appl. Environ. Microbiol. 1984. - V.48. - P.988-993.

175. Whitesides M.D., Oliver J.D. Resuscitation of Vibrio vulnificus from the viable but nonculturable state // Appl. Environ. Microbiol. 1997. - V.63.- P.1002-1005.

176. Williams R.T., Ziegenfuss P.S., Sisk W.E. Composting of explosives and propellant contaminated soils under thermophilic and mesophilic conditions // J. Industr. Microbiol. 1992. - V.9. - 137-144.

177. Wilstrom P., Wiklund, A. Andersson A.C., Forsman M. DNA recovery and PCR quantification of catechol 2,3-dioxygenase genes from different soil types // Biotechnol. 1996. - V.52. - P. 107-120.

178. Wunder Т., Marr J., Kremer S., Sterner О., Anke H. 1-Methyoxy-pyrene and 1,6-dimethoxypyrene: two novel metabolites in fungal metabolism of polycyclic aromatic hydrocarbons // Arch. Microbiol. 1997. - V.167. - P.310-316.

179. Yamamoto H., Hashimoto Y., Ezaki T. Study of nonculturable Legionella pneumophila cells during multiplenutrient starvation // FEMS Microbiol. Ecol. -1996. V.20. - P.155-162.

180. Zitrides T. G. Bioremediation comes of age // Pollution Engineering. 1990.-V.22. - P.57-62.