Свободнорадикальный гомеостаз моллюсков Unio pictorum в норме и при воздействии тяжелых металлов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.01, кандидат биологических наук Гханнам Хала Эльшахат Абделькадер Юссеф

• Гханнам Хала Эльшахат Абделькадер Юссеф
• кандидат биологических наук
• 2011

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Гханнам Хала Эльшахат Абделькадер Юссеф

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

ГЛАВА 3. ТКАНЕСПЕЦИФИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ СВОБОДНОРАДИ 39 -КАЛЬНОГО ГОМЕОСТАЗА В ОРГАНИЗМЕ МОЛЛЮСКОВ UNIO PICTORUM

ГЛАВА 4. ОКИСЛИТЕЛЬНЫЙ СТРЕСС В ОРГАНАХ МОЛЛЮСК- 47 ОВ UNIO PICTORUM В ПРИСУТСТВИИ ТОКСИКАНТОВ

4.1. Содержание ТБК-активных продуктов в органах моллюсков

4.2. Содержание продуктов перекисного окисления белков в органах 50 моллюсков

ГЛАВА 5. ХАРАКТЕРИСТИКА АНТИОКСИДАНТНОЙ СИСТЕМЫ 60 МОЛЛЮСКОВ UNIO PICTORUM В ПРИСУТСТВИИ ТОКСИКАНТОВ

5.1. Активность супероксиддисмутазы в органах моллюсков

5.2. Каталазная активность органов моллюсков

5.3. Активность церулоплазмина в органах моллюсков

ГЛАВА 6. ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ МОЛЛЮСКОВ 72 UNIO PICTORUM В ПРИСУТСТВИИ ТОКСИКАНТОВ

6.1. Особенности накопления тяжелых металлов в органах моллюсков 72 Unió pictorum

6.2. Фильтрационная активность моллюсков

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Свободнорадикальный гомеостаз моллюсков Unio pictorum в норме и при воздействии тяжелых металлов»

Актуальность исследования. Проблема устойчивости организма, его адаптации к изменяющимся условиям среды остается одной из центральных проблем биологии. Важным проявлением стресс-реакции и адаптационной перестройки является совершенствование деятельности регуляторных механизмов, участвующих в поддержании оптимального уровня интенсивности обменных процессов на уровне целостного организма (Федоров Б.М., 1991). Как известно, одним из ведущих повреждающих факторов при стрессе, детерминирующих развитие вторичных изменений органов и тканей, является интенсификация свободнорадикального окисления биологических субстратов при действии активных форм кислорода (Ланкин В.З., 2001; Дубинина Е.Е., Далали В.А. 2010). Анализ современной научной литературы позволяет прийти к заключению о том, что значительное количество работ посвящено перекисному окислению липидов (ПОЛ), в том числе стресс-индуцированному, при этом окислительной деструкции белков клеток и тканей уделяется меньшее внимание.

Механизмы и последствия стресс-реакции в организме зависят не только от метаболических возможностей различных тканей, но и от возраста индивидуума. В то же время, возрастной аспект исследования свободнорадикальной деструкции белковых и липидных компонентов тканей двустворчатых моллюсков, практически не представленный в литературе, должен дополнить известные к настоящему времени закономерности

-Л адаптационных процессов на разных этапах онтогенеза и позволит существенно углубить представления о возрастных особенностях механизмов адаптации к экстремальным воздействиям. стресс, который рассматривается в качестве ведущего патогенетического механизма дезорганизации клеточного метаболизма (Regoli F, Principato

G.,1995; Stohs S.J, Bagechi D, 1995; Torres et al., 2002). Согласно этим представлениям, независимо от конкретного механизма действия чужеродного химического агента, его вмешательство в окислительный метаболизм прямо или косвенно сопряжено с усилением генерации высокореакционных радикалов кислорода (оксирадикалов). Возникший дисбаланс между про- и антиокислительными системами приводит к накоплению продуктов окисления основных классов макромолекул, включая липиды, белки и нуклеиновые кислоты, в результате чего в клетке может развиваться патологический (деструктивный) процесс, получивший в литературе название окислительного стресса (Sies Н, 1991; Storey К.В., 1996). Однако прямых экспериментальных данных, подтверждающих способность меди и кадмия нарушать равновесие между про- и антиоксидантной системами и вызывать окислительный стресс в тканях пресноводных '~>спозвоночных, в частности моллюсков, практически нет. Вместе с тем, в ходе натурных и лабораторных исследований отмечены изменения в содержании низкомолекулярных антиоксидантов или активности антиоксидантных ферментов у моллюсков (Челомин и др., 1998; Канатьева

H.С., 2001, Довженко Н.В., 2006, Nasci С. et al., 1999). Этот подход, хотя обычно и используется для выявления специфических взаимосвязей между различными стрессорами и индивидуальными антиоксидантами, не н позволяет однозначно оценить степень развития окислительного стресса в организме моллюсков (Regoli F et al., 2002).

Цель исследования: изучение возрастных и тканеспецифических особенностей перекисного окисления липидов и белков, а так же состояния антиоксидантной системы у моллюсков Unió pictorum разных возрастных групп в норме и при воздействии тяжелых металлов.

Задачи исследования:

1. Провести сравнительное изучение интенсивности перекисного окисления липидов и белков у интактных животных разных возрастных групп и выявить его тканеспецифические особенности в условиях фоновой активности.

2. На модели токсического стресса исследовать уровень липидной и белковой пероксидации в некоторых тканях двустворчатого моллюска Uniópictorum.

3. Провести сравнительный анализ выраженности возрастных и стресс-индуцированных изменений антиоксидантной системы моллюсков.

4. Установить степень накопления тяжелых металлов в тканях моллюсков.

5. Изучить физиологические реакции моллюсков (изменение фильтрационной способности и количества потребленного кислорода), вызванные действием тяжелых металлов.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Свободнорадикальные процессы в условиях фоновой активности и под влиянием тяжелых металлов имеют тканевую специфичность, которая заключается в различной выраженности и направленности перекисного окисления белков и липидов в жабрах, гепатопанкреасе, гонадах и ноге экспериментальных животных.

2. Реакция организма на токсическое воздействие зависит от возраста животного и отличается динамикой накопления продуктов перекисного окисления липидов и белков.

3. Особенности функционирования антиоксидантной системы зависят от вида ткани и возраста животного.

Научная новизна. Впервые исследованы процессы белковой и липидной особенности стрессорной динамики показателей перекисного окисления липидов и перекисного окисления белков в жабрах, гепатопанкреасе, гонадах и ноге. Показано, что процессы свободнорадикального окисления в этих органах не всегда изменяются однонаправлено у моллюсков разного возраста в норме и после воздействия на них тяжелых металлов.

Получены ранее не известные данные о влиянии возрастного фактора на фоновую активность процессов липидной и белковой пероксидации в жабрах, гепатопанкреасе, гонадах и ноге, а также на стрессорную динамику изучаемых параметров. В частности, установлены возрастные изменения стрессорного уровеня продуктов перекисного окисления липидов и белков в тканях моллюсков. В ходе исследования показано также, что уровень каталазы, супероксиддисмутазы и церулоплазмина у животных разных возрастных групп существенно различается между собой.

Теоретическая и практическая значимость. Результаты исследования демонстрируют наличие возрастных и тканеспецифических отличий свободнора-дикальных процессов у двустворчатых моллюсков при токсическом воздействии и расширяют представления о механизмах реакции антиоксидантной системы на воздействие тяжелых металлов.

Онтогенетические различия в динамике накопления продуктов свободнорадикального окисления липидных и белковых компонентов тканей служат основанием для анализа результатов повреждающего действия токсического стресса в эксперименте. Материалы диссертационного исследования могут быть включены в курсы лекций по физиологии, в частности, экологической физиологии и биохимии для студентов биологических специальностей университетов.

Апробация работы. Результаты и основные положения диссертации были представлены и обсуждены на Международной научной конференции «Ключевые проблемы современной науки» г. София, Болгария, 2010,

Международной научной конференции «Научное пространство Европы - 2011», Польша, 2011; XVI Международной экологической студенческой конференции «Экология России и сопредельных территорий», Новосибирск, 2011, II Международной научной конференции «Свободные радикалы, антиоксиданты и старение», Астрахань, 2011.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 9 работ, 4 из которых - в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.

Объём и структура диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, четырех глав, выводов, списка использованной литературы. Работа изложена на 119 страницах основного текста, содержит 19 таблиц, 8 рисунков. Список литературы включает 219 наименования, в том числе, 89 - на русском языке, 130 источников - зарубежных авторов.

Заключение диссертации по теме «Физиология», Гханнам Хала Эльшахат Абделькадер Юссеф

выводы

1. Определены возрастные различия интенсивности свободнорадикальных процессов, которые заключаются в повышении уровня перекисного окисления липидов и белковой пероксидации во всех органах у моллюсков шестилетнего возраста по сравнению с моллюсками трех лет. Наиболее выраженное влияние возраста на изучаемые параметры перекисного окисления белков выявлено в тканях гепатопанкреаса и гонад.

2. Установлены возрастные особенности функционирования антиоксидантн-ой системы у моллюсков: каталазная активность и активность супероксид-дисмутазы в целом выше в тканях моллюсков 6 лет, церулоплазмина - в тканях моллюсков 3 лет.

3. На модели токсического стресса показана стресс-индуцированная активация, обнаруженная во всех исследованных органах. Наиболее выраженный рост липоперекисей выявлен в жабрах. Стрессорные изменения уровня перекисной деструкции белков повышаются с увеличением концентрации токсиканта и зависят от возраста и вида ткани животного. Разная направленность и выраженность изменений компонентов антиокси-дйнтной системы в условиях токсического стресса отмечается у моллюсков трех и шести лет. Активность супероксиддисмутазы выше у трехлетних моллюсков. Катал азная активность тканей в целом выше у шестилетних моллюсков. Однако ткани гонад и ноги трехлетних моллюсков в условиях кадмиевой интоксикации с высокой достоверностью демонстрировали большую активность каталазы. Активность церулоплазмина во всех возрастных группах в наибольшей степени связана с видом токсиканта.

5. При экспериментальной интоксикации выявлено существенное накопление тяжелых металлов в тканях моллюска Unió pictorum. Максимальный уровень токсиканта выявлен в жабрах, где после предварительного выдерживания в воде с медью в концентрации 10 и 100 мкг/л отмечается возрастание концентрации Си 2+ по сравнению с контролем на 88,75 % и на 726,1 % соответственно. После предварительного выдерживания в воде с кадмием в тех же концентрациях в жабрах рост уровня Cd 2+ по сравнению с контролем составил 52,0% и 1138,9%) соответственно.

6. Предварительная инкубация с тяжелыми металлами влияет на физиологические показатели моллюсков. Выявлено стимулирующее влияние концентраций 10 мкг/л меди и кадмия на фильтрационную и дыхательную активность моллюсков и угнетающее действие этих металлов в концентрации 100 мкг/л на скорость фильтрации моллюсков Unió pictorum.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Гханнам Хала Эльшахат Абделькадер Юссеф, 2011 год

1. Аксенова М.Е. Тяжелые металлы: механизмы нефротоксичности / М.Е. Аксенова // Нефрология и диализ. 2000. Т. 2, № 1-2.

2. Алымов В.Т. Техногенный риск. Анализ и оценка/В.Т. Алымов, Н.П. Тарасова//-М.:ИКЦ «Академкнига», 2004.-118 с.

3. Алякринская И.О. Гемоглобин и гемоцианины беспозвоночных. Биохимические адаптации к условиям среды / И.О. Алякринская // М . : Наука, 1979. 155 с.

4. Алякринская И.О. Устойчивость к обсыханию водных моллюсков / И.О. Алякринская // Известия АН. Серия биологическая. 2004. № 3. С. 362-374.

5. Батян А.Н. Основы общей и экологической токсикологии / А.Н. Батян, Г.Т. Фрумин, В.Н. Базылев// СПб: Изд-во СпецЛит, 2009.-352 с.

6. Бережной Р.В. Судебно-медицинская экспертиза отравлений техническими жидкостями/ Р.В. Бережной//М.:Медицина, 1977.-206 с.

7. Биргер Т.И. Метаболизм водных беспозвоночных в токсической среде / Т.И.Биргер // Киев: Наукова думка, 1979. 189 с.

8. Бергер В.Я. Адаптации морских моллюсков к изменениям солености среды / В.Я. Бергер // Л.: Наука. 1986. 214 с.

9. Ю.Бурдин К.С Основы биологического мониторинга. М.: Изд-во Моск. Ун-та, 1985., 158 с.

10. П.Булатов В.В. Проблема малых и сверхмалых доз в токсикологии. Фундаментальные и прикладные аспекты/ В.В. Булатов, Т.Х. Хохаев,

11. B.B. Дикий//Российский химический журнал.-2002.-Т.ХЬУ1, №6.-С.58-62

12. Ващенко М.А. Загрязнение залива Петра Великого Японского моря и его биологические последствия Биология моря. 2000. Т. 26. 3. С 149154

13. Ващенко М.А., Жадан П.М. Нарушение развития потомства морского ежа как показатель загрязнения среды Экология. 2003. 6. С 459-463

14. Вержбинская H.A., Савина М.В. Эволюция гликолитической системы в типе моллюски / H.A. Вержбинская, М.В. Савина // Журн. эволюц. биохим. и физиол., 1971, 7, № 4, с. 337-345.

15. Вержбинская H.A. Функциональная организация ферментной системы гликолиза в мышечной и нервной тканях у головоногих моллюсков и низших рыб / Н.А.Вержбинская // Журн. эволюц. биохим. и физиол.-1972, 8, № 3, с. 260-268.

16. П.Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах М.: Наука. 1972. 242 с.

17. Владимиров Ю.А. Свечение, сопровождающее биохимические реакции / Ю.А. Владимиров // Соросовский Образовательный Журнал. 1999. № 6. С. 25-32.

18. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах / Ю.А. Владимиров // Соросовский образовательный журнал. 2000. -Т. 6. - № 12.-С. 13-19.

19. Волков П.А. Экологические риски/ П.А. Волков, М.С. Им// СПб.: СПбГУ, 2001.-152 с.

20. Вьюшина A.B., Герасимова И.Г., Флеров М.А. Перекисное окисление белков в сыворотке крови у пренатально стрессированных крыс// Общая патология и патологическая физиология №4.-.2000.-С 41-44

21. Галышева Ю.А. Сообщества макробентоса сублиторали залива Восток Японского моря в условиях антропогенного воздействия //Биол. моря. 2004.Т.30,6423-426

22. Говорин И. А. Мидийное обрастание гидротехнических сооружений как составляющая природного биофильтра в прибрежной зоне Чёрного моря / И. А. Говорин, В. В. Адобовский, Е. И. Шацилло //Гидробиол. журн.-2004.-40, № 3.- С. 77-85.

23. Головко А.И. Экотоксикология/ А.И. Головко, С.А. Куценко// СПб.: НИИХ СПбГУ, 1999.-124 с.

24. Горомосова А. Основные черты биохимического обмена мидий / А. Горомосова, А.З. Шапиро // М., Легкая и пищевая промышленность, 1984. 120 с.

25. ГОСТ 17.4.1.02-83 Охрана природы. Почвы. Классификация химических веществ для контроля загрязнения. Государственный стандарт союза ССР.

26. Гостюхина O.J1. Антиоксидантный ферментативный комплекс тканей черноморского моллюска {Mytilus galloprovinicialis Lam) / O.JI. Гостюхина, A.A. Солдатов, И.В. Головина, А.Я. Столбов // Экология моря. 2005. Вып. 68.42-47.

27. Громосова С.А. Основные черты биохимии энергетического обмена мидий / С.А. Громосова, А.З. Шапиро // М.: Легкая и пищевая промышленность. 1984. 120 с.97

28. Гуляева Л.Ф. Биологические эффекты токсичных соединений: курс лекций/ Л.Ф. Гуляева, Р.Х. Райе// Новосибирск, 2005.-293 с.

29. Деньон Г.Р. Исследование кумулятивного эффекта тяжелых металлов у некоторых видов рыб озера Нокуэ (Государство Бенин) / Г.Р. Деньон //Дисс.канд. биол. наук. Астрахань.- 2007.-140с.

30. Довженко Н.В. Куриленко, A.B., Бельчева H.H., Челомин В.П. Окислительный стресс индуцируемый кадмием в тканях, двустворчатого моллюска Modiolus modiolus II Биол. моря. 2005. Т. 31, J V 5. 358-9.

31. Довженко Н.В. Реакция антиоксидантной системы двустворчатых моллюсков на воздействие повреждающих факторов среды // Дисс.канд. биол. наук. Владивосток 2006-192 с.

32. Догиль P.A. Зоология беспозвоночных/Р.А. Догиль//М.: Гуманит. Изд. Центр ВЛАДОС, 1999.- 592 с.

33. Евтушенко Н.Ю. Особенности накопления тяжелых металлов в тканях рыб Кременчугского водохранилища / Н.Ю. Евтушенко, О.В. Данилко //Гидробиологический журнал. 1996. Т.32. №4. С. 58-66.

34. Дубинина Е.Е., Дадали В.А. 4-гидрокси-транс-2-ноненаль в функциональной активности клеток//Биохимия том 75, вып. 9.-2010.-С.1189-1212

35. Истомина A.A., Довженко Н.В., Бельчева H.H., Челомин В.П. Раздельное и совместное действие недостатка кислорода и меди на антиокси дантную систему LITTORINA MANDSCHURICA//BecTHHK МГОУ №1.-2011.-С. 17-21

36. Кавун В.Я., Шулькин В.М. Изменение микроэлементарного состава органов и тканей двустворчатого моллюска Crenomytilus grayanus при акклиматизации в биотопе, хронически загрязненном тяжелыми металлами Биол. моря. 2005. Т. 31, 2. 123-13.

37. Канатьева Н.С. Влияние интоксикации кадмием на состояние органов и тканей пресноводных моллюсков (на примере Апос1оп1а ргзстаШ)!I Автореф. дисс. канд.наук,- Москва.- 2001

38. Канбетов А.Ш. Оценка влияния загрязнения на моллюсков реки Урал// Автореф. дисс. канд.наук.- Махачкала- 2004

39. Кашин А.Г. Влияние солености среды обитания на состав липидов некоторых водных беспозвоночных / А.Г. Кашин // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Самара. 1997, 17 с.

40. Козак М.Ф., Марченко Н.В. Цитогенетические эффекты воздействия антропогенного загрязнения вод Нижней Волги/ Издательский дом «Астраханский университет», Астрахань, 2008, 116 с

41. Крепе Е.М. Липиды клеточных мембран. Эволюция липидов мозга. / Е.М. Крепе // Адаптационная функция липидов. Л. 1981. 339 с.

42. Куценко С.А. Основы токсикологии/ С.А. Куценко//-СПб: ООО «Издательство Фолиант», 2004.-720 с.

43. Кучеренко Н.Е. Роль мембранных фосфоинозитидов в опосредовании гормональных эффектов / Н.Е. Кучеренко, Я.Б. Блюм // Украинский биохимический журнал. 1986. Т. 58. № 1. С. 86-101.

44. Лакин, Г.Ф. Биометрия Текст. / Г.Ф. Лакин.// М.: Высшая школа, 1973.343 сГОСТ 17.1.3.05-82.

45. Лукьянова О.Н. Молекулярные биомаркеры. Владивосток: Изд-во ДВГАЭУ, 2001.196 с.

46. О.Львова Т.Г. Санитарная гидробиология с основами водной токсикологии / Т.Г. Львова // Калининград: КГУ, 1996. 70 с.

47. Маймулов В.Г. Основы системного анализа в эколого-гигиенических исследованиях/ В.Г. Маймулов, C.B. Нагорный, A.B. Шабров// СПб. : СПб ГМА им. H.H. Мечникова, 2000.-342 с.

48. Меньшиков В.В. Обеспечение качества лабораторных исследований Преаналитический этап // Под ред. В.В. Меньшикова, 1999, "Лабинформ"

49. Минакова В.В., Карнаухова И.В. Сравнительное исследование некоторых компонентов антиоксидантной системы двустворчатых моллюсков семейства Unionidae// Вестник ОГУ №4.-2007. С.91-94.

50. Миронов О. Г. Биологические аспекты нефтяного загрязнения морской среды / О.Г.Миронов, Н. Ю. Миловидова, Т. Л. Щекатурина // Киев: Наук, думка, .-1988.- 248 с.

51. Мисейко Г.Н. Биологический анализ качества пресных вод / Под ред. / Г.Н. Мисейко. Д.М. Безматерных, Г.И. Тушкова // Барнаул: АлтГУ.-2001.-201 с.

52. Михайлова, J1.B. Действие водорастворимой фракции Усть-Балыкской нефти на ранний онтогенез стерляди / JI.B. Михайлова // Гидробиол. журанал. -1991. -Т.27, N23. С.77-86.

53. Михайлова, Л.В. Исследование возможности образования комплекса водорастворимой фракции нефти с белками крови и печени карпа Текст. /Л.В. Михайлова // Вопросы ихтиологии 1983.-Т.23 - Вып.З. -519-521.

54. Мур Д. Тяжелые металлы в природных водах. Контроль и оценка влияния / Д. Мур, С. Рамамурти // М.: Мир, 1987. 250 с.

55. Нельсон-Смит, А. Нефть и экология моря Текст. /А.Нельсон-Смит // М.: Прогресс, 1977.-С. 302.

56. Немова H.H. Биохимическая индикация состояния рыб/ H.H. Немова, Р.У. Высоцкая // М.: Наука. 2004. 215 с.

57. Никаноров A.M. Биомониторинг тяжелых металлов в пресноводных экосистемах / A.M. Никаноров, A.B. Жулидов //Л.: Гидрометеоиздат, 1991.-312 с.

58. Ноздрюхина Л.Р. Биологическая роль микроэлементов в организме животных и человека / Л.Р. Ноздрюхина // М: Наука, 1977, 184 с.

59. Патин, С. А. Нефть и экология континентального шельфа /С. А. Патин // М.: Изд-во ВНИРО, 2001. -247 с.

60. Плотицина Н.Ф. Содержание загрязняющих веществ в гидробионтах Баренцева моря / Н.Ф. Плотицина, Л.И. Киреева // Доклады о результатах научной работы ПИНРО в 1995. Мурманск.: ПИНРО. 1996. С. 168-191.

61. Подгурская О.В. Механизмы детоксикации тяжелых металлов у моллюсков семейства Mytilidae // Дисс.канд. биол. наук. Владивосток.- 2006.-106 с

62. Попов В.Н. Влияние антропогенных факторов на видовое разнообразие наземной малакофауны Сасык Сивашского района Крыма / В.Н. Попов, Е.В. Хайленко // Геолого-, и биоэкол. проблемы Северного Причерноморья. - Тирасполь, 2001. - С. 224-225

63. Попов П.А. О содержании тяжелых металлов в рыбах Верхней Оби / Попов П.А. // Задачи и проблемы развития рыбного хозяйства на внутренних водоемах Сибири. Томск: ТГУ, 1996. - С. 36-37.

64. Прайс В. Аналитическая атомно-абсорбционная спектроскопия/ В. Прайс// мер,1976.-355с.

65. Резник Е.П. Сравнительная характеристика фракционного состава тканевых белков наземных моллюсков Helix albescens и Eobania vermiculata/ Е.П.Резник, П.С. Калиновский //Ученые записки102

66. Таврического национального университета им. В. И. Вернадского.Серия «Биология, химия». Том 23 (62). 2010. № 2. С. 152156.

67. Сейсума З.К. Свинец, кадмий и цинк в ракообразных и моллюсках Рижского залива / З.К. Сейсума, Д.Р. Вадзис, М.П. Лейнерте // Тезисы докл. 20-й Науч. конф. "Изучение и освоение водоемов Прибалтики и Белоруссии" Рига, 1979. - Т. 2, с. 93-96.

68. Сейсума З.К. Тяжелые металлы в морских гидробионтах / З.К. Сейсума, И.Р. Куликова, Д.Р. Вадзис, М.Б. Легдзиня //Разработка и внедрение на комплексных фоновых станциях методов биологического мониторинга.- Рига, 1983. Т. 2, с. 87-99.

69. Сидоренко Г.И. Никель. Гигиенические аспекты охраны окружающей среды / Г.И. Сидоренко, А.И. Ицкова // М.: Медицина, 1980, 176 с.

70. Смирнов Л.П. Липиды в физиолого-биохимических адаптациях эктотермных организмов к абиотическим и биотическим факторам среды / Л.П. Смирнов, В.В. Богдан // М.: Наука. 2007. 182 с.

71. Ткач Н.П. Роль липидов в эколого-биохимических адаптациях литоральных гаммарид Белого моря / Н.П. Ткач // Автореф. .канд. биол. наук. Петрозаводск. 2007. 23 с.

72. Хочачка П. Стратегия биохимической адаптации / П. Хочачка, Дж. Сомеро // М.: Мир. 1988. 586 с.

73. Христофорова Н.К. Содержание тяжелых металлов в брюхоногом моллюске Collisells cossis из Японского моря / Н.К. Христофорова // -Биология моря, 1981, № 4, с. 66-72.

74. Челомин В.П., Бельчева H.H., Захарцев М.В. Биохимические механизмы адаптации мидий Mytilus trossulus к ионам кадмия и меди// Биология моря. 1998. Т.24, №5. С. 319-325.

75. Шалапенок Е.С., Мелешко Ж.Е. Краткий определитель водных беспозвоночных животных Минск. Изд БГУ.-2005. 243 с.

76. Шарова И.Х. Зоология беспозвоночных/ И.Х. Шарова// Учеб. Для студ. Высш. Учеб. Заведений. -М.: Гуманит. Изд. Центр ВЛАДОС, 1999.-592с. : Ил.

77. Шуберта.Р. Биоиндикация загрязнителей наземных экосистем / Р. Шуберта. // Под ред. .-1988.- М.: Мир, 350 с.

78. Шулькин В. М. Металлы в экосистемах морских мелководий Владивосток. Дальнаука. 2004. 279 с.

79. Ш,екатурина Т. Л. Углеводородный состав, его динамика и метаболизм у морских организмов / Т.Л. Щекатурина // Биологические аспекты нефтяного загрязнения морской среды. К.: Наук, думка, 1988. - С. 186 -234.

80. Яп К.К. Зависимость между массой мягких тканей, толщиной раковины и накоплением тяжелых металлов (Cd, Си, РЬ, и Zn) у зеленой мидии Perna viridis / К.К Яп, А. Измаил, С.Г.Тан / / Биология моря, 2003. - Т 29. - No 5. - С 358-362.

81. Amiard J.-С, Amiard-Triquet С., Barka S. Temporaj changes in nickel and vanadium concentration and in conditionindex and metallothionein levels in frii species of mollusks foolowing the Erica oil spill// Aqat.Living Resour. 2004. V17. P.281-288.

82. Anderson R.S. Benzo (a) pyrene metabolism in the American oyster Crassostrea virginica / R.S. Anderson // EPA Ecol. Res. Ser. Monogr. 1978. EPA-600/3-78-009.

83. Awad H. Determination of rate of hydrocarbon accumulation by mussels in chronic pollution conditions / H. Awad // Science et Peche. 1979. Vol. 291. P. 9-15.

84. Bakhmet I.N. Physiological-biochemical properties of blue mussel Mytilus edulis adaptation to oil contamination / I.N. Bakhmet, N.N. Fokina, Z.A. Nefedova, N.N. Nemova // Environmental Monitoring and Assessment.-2008.-155(1): 581-91.

85. Barclay L.R.C. The cooperative antioxidant role of glutathione with a lipid-soluble and water-soluble antioxidant during peroxidation of liposomes initiated in the aqueous phase and in the lipid phase// J. Biol. Chem. 1988. P.16138-16142.

86. Bebianno M.J. Comparison of metallothionein induction in response to cadmium in the gills of the bivalve molluscs Mytilus galloprovincialis and Ruditapes decussates / M.J. Bebianno, M.A. Serafim // Sci. Total Environ. 1998. Vol. 214. P. 123-131.

87. Beimett R. Comparative carbohydrate metabolism of marine mollusks I. The intermediary metabolism of Mytilus cahfomianus and Haliotus rufescens / R. Beimett, H. Nakada // CoTp. Biochem. Physiol.-1968, 24, № 3, P. 787-797.

88. Bell M.V. The role of polyunsaturated fatty acids in fish / M.V. Bell, R.J. Henderson, J.R. Sargent // Comp Biochem Physiol B.-1986. 83(4), p. 711719.

89. Bertoli E. Biomembrane perturbation induced by xenobiotics in model and living system / E. Bertoli, A. Ambrosini, G. Zolese, R. Gabbianelli, D.105

90. Fedeli, G. Falcioni // Cell biol mol lett., 2001.- Vol. 6. Issue 2A. P. 334339.

91. Boesch D.F. Long-term environmental effects of offshore oil and gas developments / D.F. Boesch, N.N. Rabalais // New-York: Elsevier Applied Science, 1987.-P. 708.

92. Bryan C.W. Pollution due heavy metals and their compounds. / C.W. Bryan // Marineecology.-1984, V. 5, P. 3.

93. Buege J.A. Microsomal lipid peroxidation / J.A. Buege, S.D. Aust //' Methods in Enzymology.-1978(52):302-310.

94. Castegna A., Aksenov M., Aksenova M., Thongboonkerd V. et.al. // Free Radic Biol Med. — 2002, 33: 562-571.

95. Cairns W.J. North Sea oil and the environment. Developing oil and gas resources, environmental impacts and responses / W.J. Cairns // London and New-York: Elseiver Applied Science, 1992. P. 722.

96. Calabrese A. Marine pollution functional responses / A. Calabrese, F.J. Vernberg // Academic Press. New York, 1979. P. 271-290.

97. Chandran R., Sivakumar A., Mohandass S., Aruchami M. Effect of cadmium and zine on antioxidant enzyme activity in the gastropod Achatina filica II Compar. Biochem. Physiol. 2005. Vol. 140 P 422-49

98. Chetty A.N. Alterations in the tissue lipid profiles of Lamellidens marginalis under ambient ammonia stress / A.N. Chetty, K. Indira // Bull. Environ. Contam. Toxicol.- 1994. Vol. 53. P. 693-698.

99. De Almeida E., De ™meida Marques S., Klitzke C.F., Bainy De Medeiros M., Di Mscio P., De Melo Loureiro /J. DN^ damage in digestive gland and mantle tissue of the mussel Perna perna II CoTp. Biochem. Phys. 2003. P 295-303.

100. De Moreno J.E. Lipid methabolism of the yellow clam, Mesodesma macroides: I. Composition of the lipids / J.E. De Moreno, V.J. Moreno, R.R. Brenner // Lipids.-1976 № 4. P. 334-340.

101. Dembitsky V.M. Comparative investigation of phospholipids and fatty acids of freshwater molluscs from the Volga river basin / V.M. Dembitsky, A.G. Kashin, K. Stefanov // Comp Biochem Physiol B.-1992 May. 102(1). P. 193-198.

102. Di Paolo G. Phosphoinositides in cell regulation and membrane dynamics / G. Di Paolo, P. de Camilli // Nature.-2006 Oct 12. 443(7112). P. 651-657.

103. Dicrs B. (ed.). Ecological impacts of the oil industry / B. Dicrs // Proceedings of the International Meeting, organized by Institute of Petroleum and held in London in November 1987. New York, 1989. P. 316.

104. Donkin P. Quantitative structure-activity relationships for the effect of hydrophobic chemicals on rate of feeding by mussels (Mytilus edulis) / P. Donkin, J. Widdows, S.V. Evans, C.M. Worral, M. Carr // Aquat. Toxicol.-1990. Vol. 14. P. 277-294.

105. Dyrynda E.A. Changes in immune parameters of natural mussel Mytilus edulis populations following a major oil spill ("Sea Empress", Wales, UK) /107

106. E.A. Dyrynda, R.J. Law, P.E.J. Dyrynda, C.A. Kelly, R.K. Pipe, N.A. Ratcliffe // Mar. Ecol. Prog. Ser.-2000. Vol. 206. P. 155-170.

107. Farrington J.W. Biogeochemical processes governing exposure and uptake of organic pollutant compounds in aquatic organisms / J.W. Farrington // Environmental Health Perspectives.-1991. Vol. 90. P. 75-84.

108. Frenzilli G., Nigro M., Scarcelli V. et al. DNA integrity and total oxyradical scavenging capacity in the Mediterranean mussel, Mytilus galloprovincialis: a field study in a highly eutrophicated coastal lagoon AquaticToxicol.2001 .V. 53 .P. 19-65.

109. Geret F., Serafim A., Barreira L., Bebianno M. Response of antioxidant systems to copper in the gills of the clam Ruditapes decussates II Mar. Environ.Res.2002. Vol. 54.P.413-417

110. Geret F., Serafim A., Bebianno M. J. // Ecotoxicology. 2003. Vol. 12. P. 417-426.

111. Gilgun-Sherki Y., Rosenbaum Z., Melamed E., Offen D. // Pharmacol. Rev. 2002 Vol. 54.P. 271-284

112. Gillis T.E. Influences of subzero thermal acclimation on mitochondrial membrane composition of temperate zone marine bivalve mollusks / T.E. Gillis, J.S. Ballantyne// Lipids.-1999. Vol. 34. № 1. P. 59-66.

113. Gillis T.E. Mitichondrial membrane composition of two arctic marine Bivalve mollusks, Serripes groenlandicus and Mya truncate / T.E. Gillis, J.S. Ballantyne // Lipids.-1999. Vol. 34. № 1. P. 53-57.

114. Gnassiabarelli M. Effect of cadmium and copper contamination on calcium content of the bivalve Ruditapes decussates II Mar / M.

115. Gnassiabarelli, M. Romeo, S. Puiseuxdao //Environ. Res.-1995. Vol. 39, 14. P. 325-328.

116. Grimsrud P. A., Xie H., Griffin T. J. Bernlohr D.A.// The Journal of Biological Chemistry.—2008, 283: 21837-21841.

117. Carbone D. L., Doom J. A., Kiebler Z., Ickes B. R., Petersen D. R.// J. Pharmacol. Exp. Ther. — 2005, 315: 8-15.

118. Gutteridge J.M.C. Aspects to consider when detecting and measuring lipid peroxidation / J.M.C. Gutteridge // Free Radic Res Commun 1:173184, 1986.

119. Hall J.M. Eicosapentaenoic acid regulates scallop {Placopecten magellanicus) membrane fluidity in response to cold / J.M. Hall, C.C. Parrish, R.J. Thompson // Biol. Bull.-2002. 202. P. 201-203.

120. Ikavalko, J. Review of the oil spill effects on arctic marine ecosystems /J. Ikavalko // MERI-Report Series of the Finnish Institute of Marine Research.-2005.- No. 54:41-69.

121. Isani G. Metallothionein in marine molluscs / G. Isani, G. Andreani, M. Kindt, E. Carpene // Cell. Mol. Biol.-2000. Vol. 46, no. 2. P. 311-330.

122. Kato N. Effects of dietary poly chlorinated biphenils and protein level on liver and serum lipid metabolism of rats / N. Kato, K. Kawai, A. Yoshida // Agric. Boil. Chem.-1982. Vol. 46. P. 703-708.

123. Kobayashi S., Sadamoto H Ogawa H., Kitamura Y., Oka K., Tanishita K., Ito E // Neurosci.Res. 2000. Vol. 38. P. 27-34.

124. Lekube X., Cajaraville M. P., Marigomez I. Use of polyclonal antibodies for the detection of changes induced by cadmium in lysosomes of aquatic organisms //The Scien. Total Environ. 2000. Vol. 247. P. 201207.

125. Lewis J.R. The composition and functioning of benthic ecosystem in relation to the assessment of long-term effects of oil pollution J.R. / Lewis // Phil. Trans. R. Soc. Lond. 1982. Vol. 297. P. 257-267.

126. Livingstone D.R. Tissue and subcellular distribution of enzyme activities of mixed-function oxygenase and benzo(a)pyrene metabolism in the common mussel Mytilus edulis L. / D.R. Livingstone, S.V. Farrar // Sci. Tot. Environ.-1984. Vol. 39. P. 209-235.

127. Livingstone D.R. Contaminant stimulated reactive oxygen species production and oxidative damage in aquatic organisms Marine Pollution. 2001. Vol 42. 8, P.653-103.

128. Logue J.A. Lipid compositional correlates of temperature-adaptive interspecific differences in membrane physical structure / J.A. Logue, A.L. de Vries, E. Fodor, A.R. Cossins // J. Exp. Biol. 2000. 203. P. 2105-2115.

129. Lopez C.S., Alice A.F., Heras H., Rivas E.A. Sanches-Rivas C. Role of anionic phospholipids in the adaptation of Bacillus subtilis to high salinity // Microbiology. 2006. 152. P. 605-616.

130. Los D.A. Membrane fluidity and its role in the perception of environmental signals / D.A. Los, N. Murata // Biochim Biophys Acta. 2004 Nov 3. 1666(1-2). P. 142-157.

131. Lowe D.M. Alterations in cellular structure of Mytilus edulis resulting from exposure to environmental contaminants under field and experimental conditions / D.M. Lowe // Mar. Ecol. Prog. Ser.-1988. Vol. 46. P. 91-100.

132. Lowe D.M. Cellular responses in the mussel Mytilus edulis following exposure to diesel oil emulsions: Reproductive and nutrient storage cells / D.M. Lowe, R.K. Pipe // Mar. Environ. Res.-1985. Vol. 17. P. 234-237.

133. Lowe D.M. Hydrocarbon exposure in mussels: A quantitative study on the responses in the reproductive and nutrient storage cell systems / D.M. Lowe, R.K. Pipe // Aquat. Toxicol.-1986. Vol. 8. P. 265-272.

134. Lowe D.M. Mortality and quantitative aspects of storage cell utilization in mussels, Mytilus edulis, following exposure to diesel oil hydrocarbons / D.M. Lowe, R.K. Pipe // Mar. Environ. Res. 1987. Vol. 22. P. 243-251.

135. Lundebye A.K. Molecular and physiological responses in shore crab Carcinus maenas following exposure to copper / A.K. Lundebye, M.H. Depledge // Mar. Environ. Res. 1998. Vol. 46. Iss. 1-5. P. 567-572.

136. Manduzio H., Monsinjon T., Rocher B., Lebouienger F., Galap C. Characterization of an inducible isoforro of the Cu/Zn superoxide uismutase in the blue mussel Mytilus edulis II Aquat. Toxicol. 2003. Vol. 64. P. 73108.

137. McElroy A. Bioavailability and biotransformation of polycyclic aromatic hydrocarbons in benthic environments of coastal Massachusetts / A. McElroy, M. Shiaris, J. McDowell Capuzzo, B. Howes, J. Molongoski // Report to the Massachusetts program. 1994).

138. Mitchelmore C.L., Hyatt S. Assessing DNA damage in cnidarians using the Comet assay Mar. Environ. Res. 2004. Vol. 58. P. 707-115

139. Moore M.N. A methodology for impact and risk assessment in integrated environmental management / M.N. Moore // 1998)

140. Moore M.N. Cytochemical responses of the lysosomal system and NADPH-ferrihemoprotein reductase in molluscan digestive cells toenvironmental and experimental exposure to xenobiotics / M.N. Moore // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1988. Vol. 46. P. 81-89.

141. Olivier F., Ridd M., Klumpp D. The use of transplanted cuitured tropical oysters (iSaccostrea commercialis) to monitor Cd levels in North Queensland coastal waters (Australia) Mar. Poll. Bull. 2002. Vol. 44. P1051-1122.

142. Perez U., Jmenez B., Delgado W., Rodriguez-Sierra C. Heavy metals in the false mussel Mytilopsis domingensis from two tropical estuarine lagoons Bull. Envir. Cont. Tox. 2001. Vol. 66. P.206-126

143. Regoli F. Accumulation and subcellular distribution of metals (Cu, Fe, Mn, Pb and Zn) in the Mediterranean mussel Mytilus galloprovincialis during a field transplant experiment / F. Regoli, E. Orlando // Mar. Poll. Bui. 1994. Vol.28. P. 592-600.

144. Reich T. Effect of poly chlorinated biphenyls on phospholipid membrane fluidity / T. Reich, M.C. Depew, G.S. Marks, M.A. Singer, J.K.S. Wan // J. Environ. Sci. Health. Part A. Environ. Sci. Eng. 1981. Vol. 16. P. 65-72.

145. Regoli F. Total oxyradical scavenging capacity (TOSC) in polluted and translocated mussels: a predictive biomarker of oxidative stress Aquatic Toxicol.2000.V.50.P.351-360

146. Regoli F., Gorbi S., Frenzilli G., Nigro M. et al. Oxidative stress in ecotoxicology: from the analysis of individual antioxidants to a more integrated approuch Mar. Env. Res. 2002. Vol. 54. P. 419-428

147. Rice S.D. Comparative oil toxicity and comparative animal sensitivity / S.D. Rice, J.W. Short, J.F. Karinen // In: Wolf D. (ed) Fate and effects of petroleum hydrocarbons in marine ecosystems and organisms. 1977. Pergamon Press. P. 78-94.

148. Rittschof D., McClellan-Green P. Molluscs as multidisciplinary models in environment toxicology Mar. PoUut. Bull. 2005. Vol. 50. P. 369-375.

149. Robertson A. Petroleum hydrocarbons / A. Robertson // In: AMAP Assessment Report: Arctic Pollution Issues. Arctic Monitoring and Assessment programme (AMAP). 1998. Oslo. Norway. P. 661-716.

150. Roesijadi G. Metallothioneins in metal regulation and toxicity in aquatic animals / G. Roesijadi // Aquat. Toxicol. 1992. Vol. 22, no. 2. P. 81-114.

151. Roesijadi G. Uptake of hydrocarbons from marine sediments contaminated with Prudhow Bay crude oil: influence of feeding type of test species and availability of poly cyclic aromatic hydrocarbons / G. Roesijadi,

152. J.W. Anderson, J.W. Blaylock // J. Fish. Res. Board Can. 1978. Vol. 35. P. 608-614.

153. Rudolf S.S. Wu. Hypoxia: from molecular responses to ecosystem responses // Marine Pollution Bulletin. 2002. V. 45. P. 35-45.

154. Saito H. Lipid and FA composition of the pearl oyster Pinctada fucata martensii: influence of season and maturation / H. Saito // Lipids. 2004 Oct. 39(10). P. 997-1005.

155. Seibel B.A. Trimethylamine oxide accumulation in marine animals: ralationship to acylglycerol storage / B.A. Seibel, P.J. Walsh // J. Exp. Biol. 2002. 205. P. 297-306.

156. Sericano J.L. Accumulation and depuration of organic contaminant by the American oyster {Crassostres virginica) / J.L. Sericano, T.L. Wade, J.M. Brooks // Science of the total environment. 1996. Vol. 179. P. 149160.

157. Shugart L.R. Susceptibility of DNA in aquatic organisms to strand breakage effect of X-rays and gamma radiation / L.R. Shugart, M.K. Gustin, D.M. Laird, D.A. Dean // Mar. Environ. Res. 1989. Vol. 28. P. 339-343.114

158. Shugart L.R. DNA damage as a biomarker of exposure Ecotoxicology. 2000. Vol. 9. P. 329-335

159. Sokolova I.M. Cadmium effect on mitochondrial function are enhanced by elevated temperatures in a marine poikilotherm, Crassostrea virginica Gmelin (Bivalvia: Ostreidae) / I.M. Sokolova //J. Exp. Biol. 2004. Vol. 207. P. 2639-2648.

160. Stien X., Percic Ph., Gnassia-Barelli M., Romeo M., Lafaurie M. Evaluation of biomarkers in caged fishes and mussels to assess the quality of waters in a bay of the NW Mediterranean Sea//Envir. Poll. 1998. Vol. 99. P. 339-345

161. Stohs S. J., Bagchi D. Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions Free Rad. Biol. Medic. 1995. Vol. 18. 2. P. 312-320

162. Ties Norbert W. Clinical guide to laboratory tests/ Norbert W. Ties. W.B. Saundres Company. 1995. 942 p.

163. NADPH supply for maintaining the GSH pool during hypoxia Biochem. Pharmac. 1990. Vol. 39. P. 729-736.

164. Thompson G.A. Metabolism and control of lipid structure modification / G.A. Thompson // Biochem Cell Biol. 1986 Jan. 64 (1). P. 66-69.

165. Thomson J.D. Cellular metal distribution in the Pacific oyster, Crassostrea gigas (Thun.) determined by quantitative X-ray microprobe analysis / J.D. Thomson, B.J.S. Pirie, S.G. George // J. Exp. Mar. Biol. 1985. Vol. 85. P. 37.

166. Uchiyama M., Mihara M. Analyt. Biochem., 1978, - v.86, - p.271., Mihara M., Uchiyama M. et al, Biochem.,Med, - 1980, - v.23, - p.302.

167. Valko M., Morris H., Cronin M.T.D. Metals, Toxicity and Oxidative Stress // Current Medicinal Chemistry. 2005. Vol. 12. P. 1161-1208.

168. Vailee B.L. Active-site zinc iiganas ana activated H20 of zinc enzymes / B.L. Vailee, D.S. Auld // Proc Nat. Acad Sci. USA. 1990b. Vol. 87. P. 220224.

169. Vailee B.L. Zinc coordination, function, and structure of zinc enzymes and other proteins / B.L. Vailee, D.S. Auld // Biochemistry. 1990a. Vol. 29. P. 5647-5659.

170. Vandermeulen J.H. Reentry of 5-year old stranded Bunker С fuel oil from a low-energy beach into the water, sediments and biota of Chedabucto Bay, Nova Scotia / J.H. Vandermeulen, D.C. Gordon // J. Fish. Res. Board. Can. 1976. Vol. 33. P. 2002-2010.

171. Veith D.C. Measuring and estimating the bioconcentration factor of chemicals in fish / D.C. Veith, D.L. Defoe, B.V. Bergstedt // J. Fish. Res. Board. Can. 1979. Vol. 36. P. 1040.

172. Vercauteren K. Uptake of cadmium and zinc by the mussel Mytilus edulis and inhibition by calcium channel and metabolic blockers / K. Vercauteren , R., Blust // Mar. Biol. 1999. Vol. 135. P. 615-626.

173. Viarengo A. Heavy metal effects on lipid peroxidation in the tissues of Mytilus galloprovincialis / A. Viarengo, L. Canesi, M. Pertica, G. Poli,

174. M.N. Moore, M. Orunesu // Lam. Compar Biochem Physiol 19916 .-97.-C:37-42,.

175. Viarengo A. Seasonal variations in the antioxidant defense systems and lipid peroxidation of the digestive gland of mussels / A. Viarengo, L. Canesi, M. Pertica, D.R. Livingstone // Compar. Biochem. Physiol. 1991a.-100:187-190.

176. Viarengo A., Burlando B., Ceratto N., Panfoli I. Antioxidant role of metallothioneins: a comparative overview Cellular and Molecular Biology. 2000. Vol. 46 (2). P. 407202. Viarengo A., Burlando B., Giordana A., Bolognesi C Gabrielides G.

177. Networking and expert-system analysis: next frontier in biomonitoring Mar. Environ. Res. 2000. Vol. 49. P. 483-490

178. Yap C.K., Ismail. A., Omar H., Tan S.G. Toxicities and tolerances of Cd, Cu, Pb and Zn in a primary produser {Isochysis galbana) and in a primary consumer (Perna viridis)// Environ.Inter. 2004. V.29. P. 100971104.

179. Watling H.R. Accumulation of seven metals by Crassostrea gigas, Crassostrea margaritacea, Perna and Choromytihis meridionalis II Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1983. Vol. 30. P. 317-326

180. Wayner D.D.M., Burton G.W., Ingold K.U. The antioxidant efficiency of vitamin E is concentration-dependent Biochem. Biophys. Acta. 1986. Vol. 884. P. 119-125

181. Wedderburn J. The field application of cellular and physiological biomarkers, in the mussel Mytilus edulis, in conjunction with early life stage bioassays and adult histopathology / J. Wedderburn, I. McFadzen, R.C.

182. Sanger, A. Beesley, C. Heath, M. Hornsby, D. Lowe // Mar. Pollut. Bull.-2000. Vol. 40. P. 257-267.

183. Wells P.G. Effects of oil on Arctic invertebrates. In: Engelhardt F.R. (ed) Petroleum effects in the Arctic environment / P.G. Wells, G.A. Percy // 1985. Elsevier Applied Publishers. Essex. England. P. 101-156.

184. Winston G.W., Livingston D.R., Lips F. Oxygen reduction metabolism by the digestive gland of the common marine mussel Mytilus edulis II J. Exp. Zool. 1990. Vol. 255. P.296-301

185. Winston G.W., Regoli F., Dugas A.J., Jr., Fong J.H., Blanchard K.A. A rapid gas chromatographic assay for determining oxyradical scavenging capacity of antioxidants and biological fluids Free Radical Biology and Medicine. 1998. Vol. 24№.3. P. 480-493

186. Widdows J. Mussels and environmental contaminants: bioaccumulation and physiological aspects / J. Widdows, P. Donkin // In: Gosling E (eds), The mussel Mytilus: ecology, physiology, genetics and aquaculture. 1992. Elsevier. Amsterdam. P. 383^4-24.

187. Widdows J. Responses of Mytilus edulis on exposure to the water accommodated fraction of North Sea oil / J. Widdows, T. Bakke, B.L. Bayne, P. Donkin, D.R. Livingstone, D.M. Lowe, M.N. Moore, S.V. Evans, S.L. Moore//Mar. Biol.-1982. Vol. 67. P. 15-31.

188. Widdows J., Donkin P., Evans S.V. Physiological responses of Mytilus edulis during chronic oil exposure and recovery / J. Widdows, P. Donkin, S.V. Evans // Mar. Environ. Res. 1987. Vol. 23. P. 15-32.

189. Wijsman T.C.M. Adenosine phosphates and energy charge in different tissues of Mytilus edulis under aerobic and anaerobic conditions / T.C.M. Wijsman//J. Comp. Physiol., 1976, 107, No 1, p.129-140.

190. Zwaan A. de Body distribution and seasonal changes in the glycogen content of the common sea mussel Mytilus edulis / A. de. Zwaan, D.I. Zandee // Comp. Biochem. Physiol., 1972.-No 1. P.53-58.