Структурно-функциональная характеристика формирования клеточных стенок в растительных тканях, специализированных на интенсивном синтезе целлюлозы тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, доктор биологических наук Сальников, Вадим Владимирович

• Сальников, Вадим Владимирович
• доктор биологических наук
• 2005

Оглавление диссертации доктор биологических наук Сальников, Вадим Владимирович

Введение.

I. Обзор литературы.

1. Состав и структура клеточной стенки.

2. Биосинтез компонентов клеточной стенки.

3. Биосинтез целлюлозы.

3.1. Субстраты биосинтеза целлюлозы и пути их образования.

3.2. Каталитический центр. Терминальные комплексы, розетки. 28 3.3.Ориентация микрофибрилл. Участие цитоскелета в формировании клеточной стенки растений.

4. Первичная и вторичная клеточная стенка.

5. Использование методов микроскопии для изучения клеточной стенки растений.

II. Объекты и методы.

1. Общая характеристика объектов исследования.

1.1 .Флоэмные волокна стебля льна-долгунца

Linum usitatissimum L).

1.2. Волоски семян хлопчатника (Gossypium hirsutum L.).

1.3. Культура клеток циннии {Zinnia elegans L.), формирующая трахеальные элементы.

2. Подготовка растительного материала.

3. Флуоресцентная микроскопия.

3.1. Подготовка срезов стебля льна-долгунца.

3.2.Подготовка клеток циннии.

4. Сканирующая электронная микроскопия.

5. Трансмиссионная электронная микроскопия метод ультратонких срезов).

6. Цитохимический анализ.

7. Иммуноцитохимический анализ.

-37.1. Проведение иммуноцитохимической реакции с антителом к ß-(l—>4)-D - галактанам на ультратонких срезах стебля льна.

7.2. Проведение иммуноцитохимической реакции с антителами к сахарозосинтазе, актину и каллозе на ультратонких срезах волосков семян хлопчатника и трахеальных элементах циннии.

8. Статистическая обработка результатов.

8.1. Количественная оценка иммуноэлектронно-микроскопической метки на срезах флоэмных волокон льна-долгунца.

8.2. Количественная оценка иммуноэлектронно-микроскопической метки на срезах волосков семян хлопчатника.

8.3. Количественная оценка иммуноэлекроно-микроскопической метки на срезах трахеальных элементов циннии.

III. Результаты и обсуждение.

1. Волокна склеренхимы: флоэмные волокна льна-долгунца.

1.1. Флюоресцентная микроскопия.

1.1.1. Характеристика и использование точки слома

ТС) для планирования и проведения экспериментов.

1.1.2. Окрашивание срезов Cellufluor (СФ).

1.1.3. Окрашивание срезов специфическим красителем на пектиновые вещества (СКП).

1.1.4. Динамика формирования флоэмных волокон.

1.1.5. Аутофлуоресценция лигнина во флоэмных волокнах и сосудах ксилемы в стебле льна-долгунца.

1.1.6. Механическое разделение пучков флоэмных волокон луба) и слоя клеток вторичной ксилемы (древесины).

-41.2. Изучение строения флоэмных волокон и структуры клеточной стенки методом сканирующей электронной микроскопии (СЭМ).

1.2.1. Расслоение стебля льна-долгунца на последних стадиях созревания.

1.2.2. Поверхность флоэмных волокон.

Закрученность волокон.

1.3. Изучение флоэмных волокон в ходе онтогенеза растений льна-долгунца методами трансмиссионной электронной микроскопии.

1.3.1. Ультраструктура флоэмных волокон.

1.3.2. Цитохимический анализ флоэмных волокон. Результаты окрашивания срезов по методу Тьери. Двуслойность клеточной стенки волокон.

1.3.3. Иммуноцитохимический анализ распределения галактана в тканях стебля льна-долгунца.

1.3.4. Определение локализации лигнина во флоэмных волокон и вторичной ксилемы методом цитохимии-ческого анализа фермент-золото (enzyme-gold).

2. Трихомы: волоски семян хлопчатника.

2.1. Ультраструктура волосков семян хлопчатника.

2.2. Иммуноцитохимическая локализация клеточных структур, белков и полисахаридов, участвующих в формировании клеточной стенки и входящих в ее состав. 201 2.2.1. Иммуноцитохимическая локализация сахарозосинтазы.

2.2.2. Иммуноцитохимическая локализация каллозы.

2.2.3. Двойное иммуномечение ультратонких срезов: сахарозосинтаза + каллоза.

-52.2.4. Иммуноцитохимическая локализация актина. 214 2.2.5. Двойное иммуномечение ультратонких срезов: сахарозосинтаза + актин.

3. Трахеальные элементы: культивируемые клетки циннии {Zinnia elegans L.).

3.1. Ультраструктура трахеальных элементов циннии.

3.2. Иммунофлуорусцентная микроскопия.

3.3. Электронно-микроскопическая иммунолокализация клеточных структур и белков, участвующих в формировании клеточной стенки трахеальных элементов циннии.

3.4. Анализ взаиморасположения структур с использованием иммуноцитохимических реакций на ультратонких серийных срезах.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Структурно-функциональная характеристика формирования клеточных стенок в растительных тканях, специализированных на интенсивном синтезе целлюлозы»

Целлюлоза является основным по массе органическим веществом биосферы, широко используется во многих современных производствах (Тарчевский, Марченко, 1985). При этом, как отмечается в ряде работ (Amor et al., 1995, Delmer, 1999, Haigler et al., 2001), нет другого такого процесса в растениях, который был бы столь важен и столь мало изучен на молекулярном уровне, как синтез целлюлозы. Основное количество целлюлозы содержится в так называемых вторичных клеточных стенках растений. Вторичная клеточная стенка - это слой клеточной стенки, который формируется клетками, закончившими свой рост. Он характерен, в первую очередь, для клеток тканей, выполняющих опорно-механическую и проводящую функции. Эти клетки обычно обладают рядом особенностей: значительная длина (до нескольких сантиметров), особенности роста, индивидуальная динамика клеточных органелл, толстая клеточная стенка, состав клеточной стенки. Жизнедеятельность этих специализированных клеток в большой степени направлена на интенсивный синтез компонентов клеточной стенки, поэтому они являются удобным объектом для изучения процесса формирования вторичной клеточной стенки и, в частности, процесса биосинтеза целлюлозы.

Синтез микрофибрилл целлюлозы в растениях является высоко скоординированным процессом, который происходит на поверхности плазматической мембраны (Delmer, 1982). Имеются основания полагать, что биосинтез целлюлозы обусловлен взаимодействием нескольких белков и участием ряда органелл (Delmer, Amor, 1995, Haigler et al., 2001., Salnikov et al., 2001, 2003), однако детали этого процесса и взаимодействия структур едва начинают поддаваться пониманию.

Незаменимым инструментом в исследовании механизмов синтеза целлюлозы и других структурных полисахаридов являются методы электронной микроскопии. Однако их использование для клеток, имеющих вторичную клеточную стенку, сталкивается с рядом проблем. Так, достижение высокого качества химической фиксации материала для ультраструктурных исследований осложняется толщиной клеточной стенки, а также наличием крупной вакуоли и, как следствие, особой чувствительностью к изменениям осмотичности растворов-фиксаторов. Все эти факторы усиливают неизбежность тенденции к медленной химической фиксации, иммобилизирующей цитоплазму в состоянии, когда она уже значительно нарушена в ходе приготовления образца (Mersey, McCully, 1978). Артефакты химической фиксации приносят особенный ущерб исследованиям синтеза целлюлозы, который организован в пределах клеточного кортекса и особенно чувствителен к манипуляциям в ходе приготовления образцов для электронной микроскопии. Появление новых методов фиксации, таких как замораживание-скалывание, замораживание-замещение и замораживание-замещение под высоким давлением, открывают новые возможности для исследований растительных клеток и тканей. Однако к началу наших исследований они не были адаптированы для анализа клеток с толстой вторичной клеточной стенкой.

Цель и задачи исследования.

Целью нашей работы было изучение структурно-функциональных характеристик формирования клеточных стенок в тканях, специализированных на интенсивном синтезе целлюлозы. Ее реализация связывалась с решением следующих задач:

1. Адаптировать современные методы анализа ультраструктуры растительных тканей для клеток, характеризующихся толстой клеточной стенкой с высоким содержанием целлюлозы.

2. Проанализировать динамику формирования клеточных стенок в различных тканях, формирующих вторичнюу клеточную стенку.

3. Охарактеризовать ультраструктуру разных типов клеток, специализированных на формировании вторичной клеточной стенки.

4. Определить локализацию ключевых структур и белков, участвующих в формировании микрофибрилл целлюлозы.

-85. Сопоставить структурно-функциональные характеристики формирования первичной и вторичной клеточной стенки.

Научная новизна работы.

В работе получили развитие представления о динамичности и мозаичности структуры клеточной стенки и механизмах формирования целлюлозных микрофибрилл. Показано, что механизмы синтеза целлюлозы первичной и вторичной клеточной стенки качественно различимы.

Проведено комплексное исследование по изучению динамики роста и формирования склеренхимных волокон с использованием методов световой флуоресцентной микроскопии, электронной микроскопии (сканирующая и трансмиссионная) и иммуноцитохимического анализа. Впервые продемонстрированы особенности формирования вторичных клеточных стенок флоэмных волокон льна-долгунца. Выявлена постсинтетическая модификация р-(1—>4)-0-галактана во время утолщения клеточной стенки, доказана тканеспецифичность этого высокомолекулярного полимера. Впервые продемонстрирована мозаичность распределения лигнина и других фенольных соединений во вторичной клеточной стенке флоэмных волокон льна-долгунца.

Разработаны методы криогенной фиксации (замораживание-замещение) и особый режим проводки образцов через градиент эпоксидных смол. В результате такой фиксации появилась возможность описать ряд органелл волосков семян хлопчатника, включая структуры аппарата Гольджи, мультивезикулярные тельца и пропластиды.

Впервые на ультраструктурном уровне локализована особая форма сахарозосинтазы, связанная с плазматической мембраной. При анализе серийных ультратонких срезов впервые установлено взаиморасположение отдельных клеточных структур, участвующих в формировании микрофибрилл целлюлозы.

Основные положения, выносимые на защиту.

1). В формирующемся стебле льна-долгунца, в верхней его части существует специфический участок - «точка слома», где стебель значительно меняет свои механические свойства, что связано с изменением стадии формирования флоэмных волокон.

2). Утолщение клеточной стенки флоэмных волокон льна-долгунца начинается на внешней периферии пучка и продолжается по направлению к центру стебля.

3). Обнаруженный во вторичной клеточной стенке флоэмных волокон льна-долгунца буферорастворимый галактан является тканеспецифичным, то есть присутствует только во флоэмных волокнах этих растений.

4). Вторичная клеточная стенка флоэмных волокон характеризуется мозаичностью распределения лигнина и других фенольных соединений.

5). Метод замораживания-замещения позволяет установить стабильно воспроизводимую локализацию лабильных белковых структур-антигенов.

6). В клетках, специализированных на интенсивном синтезе целлюлозы, во время отложения вторичной клеточной стенки всегда присутствует особая форма сахарозосинтазы, которая локализована вплотную к плазматической мембране.

7). Актиновые микрофиламенты не являются обязательными участниками формирования вторичных клеточных стенок, а обнаруживаются лишь при сложной пространственной организации этого процесса, например, при образовании локальных утолщений клеточных стенок в трахеальных элементах.

8). Каллоза существует в виде постоянного слоя в ходе формирования вторичной клеточной стенки волосков семян хлопчатника и, вероятно, выполняет роль невзаимодействующего матрикса, в котором происходит кристаллизация микрофибрилл целлюлозы.

Практическое значение работы.

Практическое значение данной работы во многом определяется тем, что объектами исследования были флоэмные волокна льна-долгунца {Цпит ш^а^тит Ь.) и волоски семян хлопчатника (Созягршт кшиШт Ь.) -ткани важнейших технических культур. Получены данные, позволяющие изменить представление об их формировании.

Проведен комплексный анализ формирования клеточной стенки волокон льна-долгунца, что может послужить практическим руководством для изучения сходных по значению технических культур таких, как конопля, рами и других.

Детально разработаны приемы быстрой криогенной фиксации растительной ткани (замораживание-замещение), анализа серийных ультратонких срезов, современных методов иммуноцитохимии, что может быть использовано в работах, где необходимо установить стабильно воспроизводимую локализацию лабильных белковых структур.

Личный вклад соискателя.

Представляемые в работе данные были получены в совместных исследованиях с коллегами из лаборатории Казанского института биохимии и биофизики КНЦ РАН и в лаборатории электронной микроскопии Техасского технического университета (США). В диссертацию включены и вынесены на защиту только те результаты, в которых автору принадлежит существенная или определяющая роль.

Апробация работы.

Материалы диссертации были представлены автором на регулярных итоговых конференциях КИББ КНЦ РАН, на трех Всесоюзных конференциях "Биосинтез целлюлозы" (Казань 1980, 1985, 1990), на Всесоюзной конференции по химии и биохимии углеводов (Пущино, 1982), на VI Всесоюзном симпозиуме "Ультраструктура растений" (Чернигов, 1988), на регулярных международных конференциях по клеточной стенке (VI Cell Wall Meeting -Nijmegen, Голландия, 1992, VII - Santiago de Compostella, Испания, 1995, VIII -Norwich, Англия, 1998, IX - Toulouse, Франция, 2001, X -Sorrento, Италия, 2004), на II Международной конференции по анатомии и морфологии растений (Санкт-Петербург, 2002), на V Съезде физиологов растений России (Пенза, 2004). Диссертационная работа в завершенном виде была представлена в виде устного доклада на семинарах в Казанском институте биохимии и биофизики КНЦ РАН и в Техасском техническом университете (Лаббок, США).

Публикации.

По теме диссертации опубликовано около 60 научных работ. В список опубликованных работ входят две монографии, статьи в отечественных ("Доклады РАН", "Физиология растений", "Цитология", "Ботанический журнал") и зарубежных ("Plant Molecular Biology", "Phytochemistry", "Plant cJb /

Physiology", "Protoplasma", "AnnuarBotany", "Natural Fiber", "Industrial Crops and Products") журналах, а также материалы, представленные на конференциях и изданные в научных сборниках. Структура и объем работы.

Основной текст диссертации изложен на 272 страницах, состоит из 3 глав, заключения и выводов. Список литературы содержит 369 названий, из них 325 на иностранных языках. Текст диссертации в себя включает 1 тавлицу, 2 схемы, 34 рисунков и 174 фотографии.

Благодарности. Приношу свою благодарность профессору д. б. н. Лозовой В.В., под руководством которой в институте были заложены основы исследований физиологии растения льна-долгунца, коллегам, работавшим со мной в разные годы в КИБ КНЦ РАН., с.н.с., к.б.н. Агеевой М.М., с.н.с., к.б.н. Чемикосовой C.B., к.б.н. доценту кафедры физиологии и биотехнологии растений Казанского государственного университета O.A. Тимофеевой, сотрудникам ГНУ ВНИИЛ РАСХ (Торжок) д.б.н. A.A. Жученко и к.б.н Л.Н. Курчаковой, сотрудникам БелНИИЗ (Жодино) д.с.-х.н. М.И. Афонин), Е.Д.

Мироновой, Л.М. Кукреш, коллегам из Агротехнологического института (Вагенинген, Нидерланды), особенно Jan van Dam, коллегам Техасского технического университета (Лаббок, Техас, США) С.Н. Haigler, М. Grimson - за совместные экспериментальные работы и плодотворное обсуждение полученных данных. Неоценима роль заведующего нашей лабораторией механизмов роста растительных клеток КИББ КНЦ РАН, моего научного консультанта, превосходного руководителя Татьяны Анатольевны Горшковой, без всесторонней поддержки и помощи которой эта работа была бы осуществима с большими трудностями. Выражаю искреннюю признательность академику И. А.

Тарчевскому, по инициативе и усилиями которого в КИБ КНЦ РАН были организованы работы по изучению растительной клеточной стенки.

1. Обзор литературы.

Роберт Гук, впервые наблюдавший растительную клеточную стенку (Микрография, 1665), не мог предположить, что обнаруженная им "мертвая" структура окажется в будущих исследованиях биологов одним из самых интересных и загадочных компартментов растительной клетки. Р. Гук в самом деле наблюдал уже мертвое образование - срез коры пробкового дерева (рис. 1). Однако цепь событий, которые произошли и продолжают происходить па пути изучения клеточной стенки, потрясают своим драматизмом и без сомнения произвели бы огромное впечатление на первооткрывателя.

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Сальников, Вадим Владимирович

Выводы:

1. С помощью различных методов микроскопии охарактеризовано формирование вторичных клеточных стенок в клетках, специализированных на интенсивном синтезе целлюлозы (флоэмные волокна льна, волоски семян хлопчатника, трахеальные элементы циннии). Развито представление о существовании многокомпонентных комплексов, обеспечивающих отложение целлюлозы, на ультраструктурном уровне локализованы их составляющие.

2. Модифицированы методы фиксации и инфильтрации растительного материала с целью адаптации их для анализа тканей с утолщенными клеточными стенками, в результате чего достигнута высокая сохранность внутриклеточного содержимого и стабильная воспроизводимость локализации исследуемых антигенов.

3. Охарактеризованы стадии формирования клеточных стенок флоэмных волокон льна-долгунца. Впервые выявлены постсинтетические изменения клеточной стенки, заключающиеся в модификации структуры отложенных слоев микрофибрилл.

4. Впервые показано распределение лигнина и других фенольных соединений в слоях клеточной стенки флоэмных волокон. Продемонстрирована мозаичность в локализации этих соединений, создающая основу для пространственной регуляции протекающих в клеточной стенке процессов.

5. Впервые доказана тканеспецифичность В-(1—>4)-В-галактана в стебле льна-долгунца. Продемонстрировано наличие его эпитопов только в клеточной стенке флоэмных волокон методами иммуноцитохимии. Показана локализация тканеспецифичного галактана в слоях вторичной клеточной стенки флоэмных волокон, подвергающихся модификации.

-2386. Впервые на ультраструктурном уровне доказано, что в волосках семян хлопчатника синтез каллозы не является ответом на стресс. Показано, что каллоза существует в виде постоянного слоя в ходе формирования вторичной клеточной стенки и, вероятно, выполняет роль невзаимодействующего матрикса, в котором происходит кристаллизация микрофибрилл целлюлозы.

7. При проведении иммуноцитохимических реакций на серийных срезах впервые установлено взаиморасположение клеточных структур, участвующих в формировании микрофибрилл целлюлозы.

8. Впервые на ультраструктурном уровне локализована особая форма сахарозосинтазы, связанная с плазматической мембраной.

9. Впервые выявлено различие в локализации сахарозосинтазы при формировании первичной и вторичной клеточной стенки. Продемонстрировано, что во время отложения вторичной клеточной стенки сахарозосинтаза всегда локализована вплотную к плазматической мембране.

10. Впервые показано, что микрофиламенты актина не являются обязательными участниками формирования вторичных клеточных стенок, а обнаруживаются лишь при сложной пространственной организации этого процесса, например, при образовании локальных утолщений клеточных стенок в трахеальных элементах.

Заключение.

В настоящее время не возникает никаких сомнений относительно важной роли клеточной стенки в растительном организме любого уровня и систематического расположения. Кажущаяся простота в строении клеточной стенки при ее открытии оказалась обманчивой. Формирование клеточной стенки является одним из самых сложным и многоплановых процессов, протекающих в растительной клетке. Для его изучения в нашей работе использовали объекты, физиология, онтогенез, жизненный цикл которых, в большой степени, направлен на формирование клеток с толстой вторичной клеточной стенкой, основным компонентом которой является целлюлоза. Нами использованы методы световой и электронной микроскопии применительно к объектам с толстой клеточной стенкой. Некоторые из них были применены впервые, а многие усовершенствованы.

Проведено комплексное исследование по изучению динамики роста и формирования лубяных волокон. В ходе нашей работы было установлены особенности формирования флоэмных волокон льна-долгунца и их клеточной стенки. На стебле льна долгунца обнаружена точка слома, где стебель меняет свои механические свойства, что связано со сменой стадии развития волокон склеренхимы (ОогБЬкоуа е1 а1., 1996., 8а1шкоу е1 а1., 1998). Показана динамика утолщения клеточной стенки флоэмных волокон.

Продемонстрирована мозаичность в локализации лигнина и других фенольных соединений клеточной стенки. Обнаружена двуслойность вторичной клеточной стенки флоэмных волокон (Сальников и др. 1993). Прослежена ее динамика в ходе онтогенеза всего растения. Методом иммуноцитохимического анализа установлено, что постсинтетическая модификация клеточной стенки связана с метаболизмом нейтрального полисахарида - Р-(1—>4)-0 - галактаном, который специфичен только для флоэмных волокон стебля льна-долгунца (ОогБЬкоуа е1 а!., 2004).

В какой-то степени аналогичная ситуация прослеживается при образовании другого нейтрального полисахарида при формировании вторичной клеточной стенки волосков семян хлопчатника — каллозы. Методом электронно-микроскопической иммуноцитохимии установлено, что каллоза распределена ввиде равномерного слоя над плазматической мембраной, который постоянно присутствует в период интенсивного синтеза целлюлозы во вторичной клеточной стенке волосков семян хлопчатника (БаЫкоу е1 а1., 2001).

Впервые охарактеризована ультраструктура волосков семян хлопчатника и описаны ее особенности после фиксации методом замораживания-замещения.

Проведены исследования с применением целого ряда поликлопальных и моноклональных антител к белкам, входящим в состав целлюлозосинтазпого комплекса на плазматической мембране. Итоги исследования по локализации различных компонентов комплекса, синтезирующего целлюлозу, представлены на схеме 2, иллюстрирующей взаиморасположение различных структур с р-1,4- глюкамооая цепочка 1

ЦИННИЯ целлюлозо синтаза меллюподо—

CHHTJU

ХЛОПЧАТНИК

Схема 2. Пространственная локализация цитоплазма-тичесиких органелл и ферментов в клетках циннии (Zinnia etegans L.) и волосках семян хлопчатника (Gossypium hirsutum L.) в процессе формирования целлюлозных микрофибрилл вторичных клеточных стенок. учетом их размеров. Целлюлозосинтаза (1/6 её часть) изображена как интегральный белок плазматической мембраны. Идентификация этого фермента методом замораживания-скалывания (freeze-frac tu re) была произведена сравнительно недавно (Kimura et al., 1999). Его размер и форма предсказаны на основе уже известных молекулярных структур АТФаз (Auer et al., 1988, Zang et al., 1998), которые имеют молекулярную массу и топологию, подобную таковым, известным или предсказанным для целлюлозосинтазы (Delmer, 1999). Примерный размер глобулярной сахарозосинтазы был определен из отношения ее молекулярной массы - 91 кДа у хлопчатника, к целлюлозосинтазе - 110 кДа у хлопчатника ( Kowagoe, Delmer, 1997 ). Щель позади целлюлозосинтазы показывает, что глюкановые цепи должны достигнуть пространства клеточной стенки, что может происходить через пору, образованную трансмембранными спиралями (Delmer, 1999) или путем агрегации множественных белков целлюлозосинтазы в розетки (Emons, 1991).

На схеме 2 показано, что сахарозосинтаза взаимодействует с плазматической мембраной как переферический мембранный белок через определенный гидрофобный участок, а с актином - через определенный актии-связывающий пептид (Winter, Huber, 2000). Так как мы не обладаем определенной информацией о том, как связываются сахарозосинтаза и целлюлозосинтаза, диаграмма показывает их только как прилегающие показывает их только как прилегающие друг к другу; однако известно, что целлюлозосинтаза хлопчатника обладает доменом, который облегчает белок-белковые взаимодействия (Kawagoe, Delmer, 1997). Микротрубочки, в соответствии с нашими данными, располагаются ниже плазматической мембраны, но ближе к кортикальному актину. Знак вопроса, отмеченный на диаграмме, показывает, что другие возможные связи и/или места связывания для других взаимодействующих белков еще не идентифицированы.

Таким образом, в наших исследованиях продемонстрировано существование сложных многокомпонентных комплексов, обеспечивающих синтез целлюлозы. Эти комплексы существенно различаются при синтезе первичной и вторичной клеточной стенки. Наши результаты, совместно с данными об экспрессии разных CesA генов при синтезе первичной и вторичной клеточной стенки (Haigler et al., 2001, Doblin et al., 2002, Schieble, Pauly, 2004 и др.) свидетельствуют, что механизмы синтеза первичной и вторичной клеточной стенки качественно различны. Возможно, именно различие в способе формировать сложные взаимодействия с различными белками лежит в основе необходимости разных полипептидов целлюлозосинтазы для синтеза первичной и вторичной клеточной стенки. Необходимость взаимодействия многих белков может объяснить, почему так трудно воспроизвести синтез целлюлозы in vitro с высокой скоростью и в кристаллической форме (Blanton,

Haigler, 1996). Лабильность целлюлозосинтезирующего комплекса может быть связана с эволюционным преимуществом тесного контроля за синтезом целлюлозы потому, что этот процесс выводит из метаболизма существенную часть углерода (На1§1ег е1 а1., 2001).

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Сальников, Вадим Владимирович, 2005 год

1. Александров В. Г., Яковлев М. С. Опыт сравнительно-анатомической характеристики различных типов льна Linum usitatissimum L. // Труды но прикладной ботанике, генетике и селекции. -1934. -Сер. 1.I. -№ 4, -С. 49-74.

2. Васильев A.E. Опорные (механические) ткани. В кн.: Ультраструктура растительных тканей. Под ред. Даниловой М.Ф. и Козубова Г.М. -Петразоводск: Карелия. -1980. -С. 226-234.

3. Васильев А.Е. Строение и образование микрофибрилл клеточной оболочки // Ботан. журн. -1984. -Т. 69. -№ 9. -С. 1145-1158.

4. Васильев А.Е. Сравнительная структурно-функциональная характеристика цитоскелета животных и высших растений. -1996 а. -Журнал общей биологии. -Т. 57. -№ 3. -С. 293-325.

5. Васильев А.Е. Цитоскелет генеративной сферы высших растений.-1996 б. -Журнал общей биологии. -Т. 57. -№ 5. -С. 567-591.

6. Васильев А.Е. Цитоскелет водорослей. -1996 в. -Т. 38, -№ 11, -С. 11291144.

7. Гайер Г. Электронная гистохимия. М.: Мир. -1974. -С. 488.

8. Гамалей Ю.В. Цитологические основы дифференциации ксилемы // Л.: Наука.-1972.-С. 142.

9. Гамалей Ю.В. К вопросу о назначении плазмодесм. -Цитология. -1973.-Т. 15. -№ 11. -С. 1427-1429.

10. Горшкова Т.А., Карпита Н.К., Чемикосова С.Б., Кузмина Г.Г., Кожевников A.A., Лозовая В.В. Галактаны динамичный компонент клеточных стенок растений льна // Физиология растений.-1998. -Т. 45. -№ 2. -С. 276-282.

11. Горшкова Т.А., М. В. Агеева М.В., Сальников В.В., Павленчева Н.В., Снегирева A.B., Чернова Т.Е., Чемикосова С.Б. Стадии формирования флоэмных волокон Linum usitatissimum L. I ! Ботан. журн. -2003.- T. 88. -№ 12. -С. 1-11.

12. Горшкова Т.А., Чемикосова С.Б., Агеева М.В. Курчакова Л.Н., Жученко A.A. // Лен. В кн. Частная физиология полевых культур. -2004. -М.: КолосС.-С. 213-266.-24015. Гудвин Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений. -М.: Мир. -1986.-Т.1. -С. 96-106.

13. Данилова М.Ф. Структурные основы поглощения веществ корнем // Л.: Наука.-1974. -С. 206.

14. Дженсен У. Ботаническая цитохимия // М.: Мир. -1965. -С. 377.

15. Запрометов М.Н., Ермакова С.А. Мембранные ферменты биосинтеза фенольных соединений //Биохимия. -1985.-Т. 50. -С. 1175.

16. Запрометов М.Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях. -М.: Наука. -1993. -С.272.

17. Коммисарчик Я.Ю., Миронов A.A. Электронная микроскопия клеток и тканей. -Л.: Наука. -1990. -С.144.

18. Кошелева Л.Л. Физиология питания и продуктивность льна-долгунца. -Минск.: Наука и техника. -1980. -С. 200.

19. Курсанов А.Л. Транспорт ассимилятов в растении.- М.: Наука. -1976.-С. 646.

20. Лозовая В.В., Горшкова Т.А. Райманов И.Т. Сальников В.В. Хусаинов М.Б., Тарчевский И.А. Влияние освещения на синтез структурных полисахаридов в процессе регенерации клеточной стенки изолированными протопластами //ДАН. -1982. Т. 226. -№ 1. -С.220-232.

21. Лозовая В.В., Сальников В.В., Юмашев Н.В. Формирование клеточных стенок в тканях стебля льна-долгунца // Казань: КНЦ АН СССР. -1990.- С. 171.

22. Лозовая В.В., Тимофеева O.A., Заботина O.A., Сальников В.В. Образование структурных полисахаридов в ходе развития растений льна-долгунца// Физиология растений.- 1992.-Т. 36. -№ 5.-С. 1175-1186.

23. Ордина H.A. Структура лубоволокнистых растений и ее изменение в процессе переработки.-М.: Легкая индустрия.- 1978.- С. 128.

24. Павлинова O.A. Метаболизм сахарозы в свекловичном корне // Физиология растений. -1971. -Т.18. -Вып. 4. -С. 722-730.-24128. Робертис Э., Новицкий В., Саэс Ф. Биология клетки.- М.: Мир. -1967.-С. 473.

25. Сальников В.В., Лозовая В.В., Горшкова Т.А., Райманов И.Т. Участие клеточных органелл в регенерации клеточной стенки протопластами высших растений // Тез. докл. Всесоюзн. совещ. "Биология клеток в культуре". — Цитология. -1983. -Т. XXV. -№ 9. -С. 1093.

26. Сальников В.В. Изменение ультраструктуры протопластов в ходе регенерации клеточной стенки // Автореф. Канд. дисс. -1983. -С. 16.

27. Сальников В.В. Формирование полисахаридной оболочки у клеток низших и высших растений в схемах // Казань.- КНЦ АН СССР, 1990.-С. 168.

28. Сальников В.В., Агеева М.В., Юмашев Н.В., Лозовая В.В. Ультраструктурный анализ флоэмных волокон // Физиология растений. -1993. -Т. 40.-№. 3 -С. 458-464.

29. Сизов И. А. Лен // Москва-Ленинград.: Сельхозгиз. -1955. -С. 256.

30. Справочник льновода. Под ред. М.И.Афонина, Мн.: "Ураджай". -1972. -С.240.

31. Степаненко Б.Н., Морозова А.Б. Синтез целлюлозы из УДФГ-С14 in vivo препаратом фермента из проростков хлопчатника // Докл. АН СССР. -1969. -Т. 187.-С. 1425-1428.

32. Тарчевский И.А, Лозовая В.В., Маркова Р.Н. Влияние концентраций экзогенной глюкозы на интенсивность из нее целлюлозы в волосках семян хлопчатника//Докл. АН СССР. 1980 а.-Т. 255. -№2. -С. 510-512.

33. Тарчевский И.А, Лозовая В.В., Маркова Р.Н., Русева Л.Г. Обеспеченность синтеза хлопковой целлюлозы макроэргическими фосфатами // В кн.: Синтез целлюлозы и его регуляция: Тез. Докл. I Всесоюзн. Конф. Казань: Изд-во Казан. Ун-та. -1980 б. -С. 54.

34. Тутаюк В.Х. Анатомия и морфология растений.- М.: Высшая школа, 1980.-С.317.

35. Трухановец Н. JI., Рубан В. В., Ильченко В. П., Хотылева Л. В. Онтогенетическое развитие клеток волокна у разных генотипов льна-долгунца // Доклады Национальной академии наук Беларуси. -2001. -Т.45. -№ 2. -С. 86-88.

36. Труш М.М. Лен-долгунец//Л 44: Колос. -1976.-С. 352.

37. Хассид У. 3. Целлюлоза и ее производные // М: Наука: 1974. -Т. 2.

38. Эсау К. Анатомия растений // М: Мир. -1969. -С. 564.

39. Ageeva M.V., Petrovska В., ICieft Н., Salnikov V.V., Snegireva A.V., van Dam J.E.G., van Veenendaal W.L.H., Emons A.M.C., Gorshkova T.A., van Lammeren A.A.M. Intrusive growth of flax phloem fibers // 2004 in press.

40. Abe H., Ohtani J., Fukazawa K.A. A scanning electron microscopic study of changes in microtubule distribution secondary wall formation in tracheides. IAWA J. 1994b. -V. 15. -№ 2. -P. 185-189.

41. Aldaba V.C. The structure and development of the cell wall in plant. I. Bast fibers of Boehmeria and Linum // American Journal of Botany. -1927. -V.14. -№ 1. -P. 16-24.

42. Allenspach A. Ultrastructure of early chick embryo tissues after high pressure freezing and freeze substitution // Microsc. Res. Techn. 1993. -V. 24. -P. 369-384.

43. Allen D.M., Northcote D. N. The scales of Chrisochromulina II Protoplasma. -1975. -V. 83. -№ -2. -P. 389-412.

44. Anderson D.B. A microchemical study of the structure and development of flax fibers //Amer. J. of Bot. -1927. -V. 14. -№ 1. -P. 187-211.

45. Auer M., Scarborough G., Scarborough G., Kuhbrandt W. Three-dimensional map of the plasma memebrane H + ATPase in the open conformation // Nature. -1988. -V. 392. -P. 840-843.

46. Bachmann L., Mayer E. Physics of water and ice; implication for cryofixation. 1987. In: Cryotechniques in biological electron microscopy; R.A. Steinbrecht and K. Zierold, ed., Springer-Verlag, New York. -P. 3-12.

47. Barber G.A., Elbeen A.D., Hassid W.Z. The synthesis of cellulose by enzyme systems from higher plants // J. Biol. Chem. -1964. -V. 239. -№ 6. -P. 40564061.

48. Baselski V.S., Robinson M.K., Pifer L.W., Woods D.R. Rapid detection of Pneumocystis carinii in bronchoalveolar lavage sample by using Cellufluor staining // J. Clin. Microbiol.-1990- V.18.-№ i p. 393-394.

49. Basra A., Saha S. In: A.S. Basra (ed.) Cotton fibers: Development biology, Quality improvement, and Textile processing. Food Product Press, Binghamton, NY. -1999.-P. 47-63.

50. Bayliss C., Canny M.J., McCully M.E. Retantion in situ and spectral analysis of fluorescent vacuole components in section of plants tissues // Biotechn. Histochem. -1997. -V.72. -P. 123-128.

51. Benhamou N., Noel S., Grenier J., Asselin A. Microwave energy fixation of plant tissues: an alternative approach that provides exelent preservation of ultrastructure and antigenicity // J. Electron. Microsc. Tech. -1991. -V. 17. -P. 81-94.

52. Benhamou N., Lafontaine N. Ultrastructural and cytochemical characterization of elicitor- induced structural responses in tomato root tissues infected by Fusarium oxysporum f. sp. radicis- lycopersici II Planta. -1995. -V. 197. -№ l.-P. 89-102.

53. Berkley E.E. Cotton-a versatile textile fiber // Textile Research Journal. -1948.-V. XYIII. -№2. -P. 71-88.

54. Blanton R.L., Haigler C.H. Cellulose biogenesis. In: Small-wood M., Knox J.P., Bowles D.J.(Eds.), Membranes: specialized functions in plants. Bios Scientific Pub, Oxford, UK. -1996. -P.57-76.

55. Boudet A.M., Lapierre C., Grima-Pettenati J. Biochemistry and molecular biology of lignification// New Physiol. -1995. -V. 129. -P. 203-236.

56. Bouquin T, Mattsson O, Naested H, Foster R, Mundy J. The Arabidopsis luel mutant defines a katanin p60 ortholog involved in hormonal control of microtubule orientation during cell growth // J. Cell Sci. -2003. -V. 116. -№ 5. -P. 791-801.

57. Bourett T.M., Czymmek K.J., and Howard R.J. Ultrastructure of chloroplast protuberances in rice leaves preserved by high-pressure freezing // Planta. -1999. -V.208.-P. 742-749.

58. Bozzola J.J., Russell L.D. Electron microscopy. 1999. Jones & Bartlett, Sudbuy, MA. -P.670.

59. Brett C., Waldron K. Physiology and biochemistry of plan cell wall // London. -UNWIN HYMAN. -P. 364.-24580. Brown R.M., Jr. Cellulose microfibril assembly and orientation: recent developments // J. Cell Biol. -1985. -V. 2. -P. 13-32.

60. Brown R.M., JR., Montezinos D. Cellulose microfibrils: visualization of biosynthetic and orienting complexes in association with the plasma membrane // Proc. Natl. Acad. Sci., USA. -1976. -V. 73. -№ 2. -P. 143-247.

61. Brown R.M., Jr., Saxema I.M., Kudlicka K. Cellulose biosynthesis in higher plants // Trends in Plant Science. -1996. -V. 1. -№ 5. -P. 149-155.

62. Buchanan B.B., Gruissem W., Jones R.L. Biochemistry and molecular biology of plants // 2000. -American Society of Plant Physiologist, RocKBille, Md, ISBN 0943088399.

63. Bulone V., Girard V., Fevre M. Separation and partial purification of 1,3-0-glucan and 1,4-p-glucan synthases from Saprolegnia II 1990. -Plant. Physiol. -V. 94. -P. 1748-1755.

64. Burk D.H., Ye Z.H. Alteration of oriented deposition of cellulose microfibrils by mutation of a katanin-like microtubule-severing protein // Plant Cell. -2002. V. 9.-P. 2145-60.

65. Burgess J., Watts J., Fleming E.N., King J.M. Plasmalemma fine structure in isolated tobacco mesophyll protoplasts // Planta. -1973. -V. 110. -№ 4. -P. 291301.

66. Burgess J., Linstead P.J. Ultrastructural studies of the binding of conconavalin A to the plasmalemma of higher plant protoplast // Planta. -1976. -V. 130. 2. -P. 73-79.

67. Burgess J., Linstead P.J., Hornden J.M. The interpretation of scanning electron micrograph//Micron. -1977. -V. 8. -P. 181-186.

68. Burgess J., Linstead P. In-vitro tracheary element formation: structural studies and the effect of tri-iodobensoic acid // Planta. -1984. -V. 160. -P. 481-489.

69. Carpita N., McCann M., Griffing L.R. The plant extracellular matrix: news from the cell's frontier// Plant Cell. -1996. -№. 9. -P. 1451-1463.

70. Carpita N.C., McCann M. The cell wall // Ed: Buchanan B.B., Gruissem W., Jones R.L. Biochemistry and molecular biology of plants. -2000. -American Society of Plant Physiologist, RocKBille, Md, ISBN 0943088399. -P. 52-108.

71. Church D.L., Galston A.W. 4- coumarate: coenzyme A ligase and isoperoxidase expression in Zinnia mesophyll cell induced to differentiate into tracheary elements // Plant Physiol. -1988. -V.88. P. 679-684.

72. Cotton fiber development and proceccing // Eds: Seagull R., Alspaugh P. -International Textile Centre. Texas Tech University. -2001. -P. 88.

73. Crooks D. M. Histological and regenerative studies on the flax seedlings // Bot. Gaz. -1933. -V. 95. -P. 209-239.

74. Dahl R., Staehelin L.A. High pressure freezing for the preservation of biological structure: theory and practice. // J. Electron. Microsc. Tech. -1989. -V. 13. -№ 1. -P. 107-117.

75. Darvill A., Mcneil M., Albersheim P., Delmer D.P. The primary cell walls of flowering plants. -In: The biochemistry of plant.-V. I.- Ed. Tolbert, Academic Press, London New York San Francisco. -1980. -P. 2-54.

76. Delmer D.P. Biosynthesis of cellulose // Adv.Carbon. Chem. And Biochem. -1983. -V. 41. -P. 105-153.

77. Delmer D. Cellulose Biosynthesis // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. -1999. -V. 50. -P. 245-276.

78. Delmer D.P., Alberschem P. The biosynthesis of sucrose and nucleoside diphosphate glucoses in Phaseolus aureus II Plant Physiol. 1970. -V. 45. № 6. -P. 782-786.

79. Delmer D.P., Amor Y. Cellulose biosynthesis // Plant Cell. -1995. -V. 7. -P. 987-1000.

80. Delmer D.P., Beasley C.A., Ordin L. Utilization of nucleoside diphosphate glucoses in developing cotton fibers // Plant Physiol. -1974. -V. 53. -№ 2.-P. 149-153.

81. Delmer D.P., Kulow C. Developmental and biochemical studies on the cotton fiber // Plant Research, MSU- ERDA, Plant Research Lab. Michigan State Univ.-USA. -1976. -P. 29-34.

82. De Mey. The preparation and use of gold probes. In: Immunocytochemistry (2nd edn) (ed. J.M. Polak and S. Van noorden) John Wright, Brisrol. -1983. -P.71-88.

83. Diaz M., Sancher Y., Bennet T., Sun S.R., Godoy C., Tamanol F., Duran A., Perez P. The Schizosaccharomyces pombe cw2+ gene codes for P-subunit of ageranylgeranyltransferase type I required for P-glucan synthesis // EMBO J. 1993.-V. 12.-P. 5245-5254.

84. Downward J. Rac and Rho in tune // Nature. -1992.-V. 359. -P. 273274.

85. Driouich A., Faye L., Staehelin A. The plant Golgi apparatus: a factory for complex polysaccharides and glycoproteins // Trends Biochem Sci. -1993. -V. 18 -P.210-214.

86. De Pétris S. Immunoelectron microscopy and immunofluorescence in membrane biology // In: Methods in membrane biology, (ed. E.D. Korn). Plenum press, New York. -1978. -Vol. 9. -P.l-201.

87. Driouich A., Faye L., Staehelin L.A. The plant Golgi. apparatus: a factory for complex polysaccharides and glycoproteins // Trends Biochem. Sci. -1993.-№ 6.-P. 210-214.

88. Durso N.A., Cyr R.J. A calmodulin-sensetive interaction between microtubules and higher plant homolog of elongation factor-la // Plant Cell. -1994. -V. 6.-P. 893-905.

89. Echlin P. Low-temperature microscopy and analysis. -1992. Plenum Publishing Corp., New York. Electron microscopic immunocytochemistry. -1992. Ed. by J.M Polak, J.V. Prestley, Oxford New York Tokyo. -P. 267.

90. Electron microscopy methods and protocol. -1999-. Ed. by M.A. nasser Hajibagheri, Humana Press. Totawa, New Jersey. -P. 283.

91. Emons A.M.S. Microtubules do not control microfibrill orientation in a hélicoïdal cell wall // Protoplasma. -1982. -V. 113. -№ 1. -P. 85-87.

92. Emons A.M.S. Plasma-membrane rosettes in root hairs of Equisetum hyemale//Planta. -1985. -V. 163. -№3. -P. 350-359.

93. Esau K. J. Vascular differentiation in the vegetative shoot of Linum. II. The procambium //Amer. J. Bot. -1942. -V. 29. -P. 738-747.

94. Esau K. J. Vascular differentiation in the vegetative shoot of Linum. II. The first phloem and xylem // Amer. J. Bot. -1943a. -V. 30. -P. 248-255.

95. Esau K. J. Vascular differentiation in the vegetative shoot of Linum. III. The origin of the bast fibers // Amer. J. Bot. -1943b. -V. 30. -P. 579-576.

96. Esau K. Plant Anatomy. -1953. -New York: Wiley. -P. 735.

97. Esau K. J. Fibers. In: Anatomy of Seed Plant. John Wiley and Sons. -1977.-P. 74-77.

98. Evert R.E., Miero^va R.J. The cell wall-plasmalemma interface in sieve tubules of barley//Planta. -1985. -V. 163. -№ 1. -P. 133-140.

99. Fahn A. Plant Anatomy // Pergamon Press. Oxford. -1990. -P. 587.

100. Falconer M. M., Seagull R.W. Immunofluorescent and Calcofluor white staining of developing tracheary elements in Zinnia elegans suspension culture // Protoplasma. -1985. -V.125. -№ 2. -P.190-198.

101. Farkas V, Maclachlan G. Fucosylation of exogenous xyloglucans by pea microsomal membranes //Arch. Biochem. Biophys. -1988. -V. 264. -№> 1. -P. 48-53.

102. Faulk W.P., Taylor G.M. An immunocolloidal method for the electron microscope // Immunocytochemistry. -1971. -V. 8. -P. 1081-1083.

103. Feldherr C.M., Marshall J.M. The use of colloidal gold for studies of intracellular exchange in amoeba Chaos chaos II J. Cell Biol. -1962. -V. 12. -№ 3. -P. 640-645.

104. Fowke L.C., Gamborg O.L. Application of protoplast to the study of plant cell//Int. Rev. Cytol. -1980. -V. -68. -№ l.-P. 8-51.

105. Frost A.O., Roberts A.W. Cortical actin filaments fragments and aggregate to form chloroplast-associated and free F-actin rings in mechanically isolated Zinnia mesophyll cells // Protoplasma. -1996. -V. 194. -№ 1. -P. 195-207.

106. Fry S.C. Primary cell wall metabolism // Oxford Surv. Plant mol. Cell Biol., e.d. B.J. Miflin. Oxford University Press. -1985. -V. 2. -P. 1-42.

107. Fry S.C. The growing plant cell wall: chemical and metabolic analysis // Ed. M.Wilkins. John Wiley and Sons. New York. -1988. -P. 333.

108. Fry S.C., Smith R.C., Renwick K.F., Martin D.J., Hodge S.K., Matthews K.J. Xyloglucan endotransglycosylase, a new wall-loosening enzyme activity from plants//Biochem. J.-1992.-V. 282. -P. 821-828.

109. Fujiwara K., Linch Q.W. The use of tannic acid in microtubule research // Meth. Cell Biol. -1982. -V. 24. -P. 217-33.

110. Fukuda H. A change in tubulin synthesis in the process of tracheary elements differentiation and cell division of isolated Zinnia mesophyll cells // Plant Cell Physiol. -1987. -V. 28. -№ 3. -P. 517-528.

111. Fukuda H. Tracheary elements formation as a model system of cell differentiation //International Review of Cytology. -1992. -V. 136. -P. 289-332.

112. Fukuda H. Redifferentiation of single mesophyll cells into tracheary elements // Intern. J. Plant Sci. -1994 -V. 155. -№ 3. -P. 262-271.

113. Fukuda H. Tracheary elements differentiation // The Plant Cell. -1997. -V.9.-P. 1147-1156.

114. Fukuda H. Programmed cell death of tracheary elements as a paradigm in plants // Plant Mol. Biol. -2000. -V. 44. -N. 3. -P. 245-253.

115. Geigenberger P, Stitt M. Diurnal changes in sucrose, nucleotides, starch synthesis, and AGPS transcript in growing potato tubers that are suppressed by decreased expression of sucrose phosphate synthase // The Plant J. -1993. -V. 23. -P. 795-806.

116. Geiger J.P., Rio B., Nandris D., Nicole M. Laccase of Rigicloporus lignosus and Phellinus noxius L. I. Purification and some physicochemical properties // Appl. Biochem. Biotech.-1991.-V. 12.-№ l.-P. 121-133.

117. Geitmann A., Emons A.M.C. The cytoskeleton in plant and fungal cell tip growth//J. Microsc.-2000. -V. 198. -Pt3. -P. 218-245.

118. Ghosh P., Datta C. Scanning electron microscopic studies on some chemically modified bast fibres. Chapman and Hall Ltd. -1990. -P. 4415-4422.

119. Gibbon B.C., Kovar D.R., Staiger C J. Latrunculum B has different effects on pollengermination and tube groth // Plant Cell. -1999. -V. 11. -P. 23492364.

120. Giberson R.T. Demaree R.S. Jr. Microwave fixation: Undestanding the variables to achieve rapid reproducible results // Microsc. Res. Tech. -1995. —32. -P. 246-254.

121. Giddings T.H., Staehelin L.A. Spatial relationship between microtubules and plasma-membrane rosettes during deposition primary wall microfibrils in Closterium sp. // Planta. -1988. -V. 173. -№ 1. -P. 22-30.

122. Giddings T.H., Staehelin L.A. Microtubule-mediated control of microfibril deposition: re-examination of the hypothesis. In The Cytochemical Basisof Plant Growth and Development, C.W., Lloyd, ed (London: Academic Press). -P. 85-99, 1990.

123. Gilkey J.C., Staehelin L.A. Advances in ultrarapid freezing for preservation of celluar ultrastructure // J. Electr. Microsc. Tech. -1986. -V. 3. -P. 177210.

124. Gorshkova T.A., Wyatt S.E., Salnikov V.V., Gibeaut D.M., Ibragimov M.R., Lozovaya V.V., Carpita n.C. Cell wall polysaccharides of developing flax plant // Plant Physiol. -1996. -V. 110. -№ 3. -P. 721-729.

125. Gorshkova T.A., Chemikosova S.B., Lozovaya V.V., Carpita T.C. Turnover of galactans and other cell wall polysaccharides during development of flax plant // Plant Physiol. -1997. -V. 114. -P. 723-729.

126. Gorshkova T.A., Salnikov V.V., Chemikosova S.B., Ageeva M.V., Pavlencheva N.V., van Dam J.E.G. Snap point: a transition point in Linum usitatis-simun bast fiber development // Ind. Crops and Prod. -2003. -№ 18. -P. 213-221.

127. Gorshkova T.A., Chemikosova S.B., Salnikov V.V., Pavlencheva N.V., Stolle-Smits T., van Dam J.E.G. Occurrence of cell-specific galactan is coinciding with bast fibre developmentall transition in flax // Ind. Crops and Prod. -2004. -№ 19.-P. 217-224.

128. Haigler C.H., Rao N.R., Roberts E.M. Huang J.Y., Upchurh D.P., Trolinder N.L. Cultured cotton ovules as models for cotton fiber development under low temperatures // Plant Physiol. -1991. V. 95. -P. 88-96.

129. Harris N., Oparha K.I., Walter-Smith D.I. Plasma-tubulus: an alternative to transfer cells // Planta. -1992. -V. 156. -P. 461-465.

130. Haugland R.P. Fluorescein substitutes for microscopy and imaging. 1990. In: Optical microscopy for biology. Eds; Herman B. and Jacobson K., Wiley-Liss, New York,-P. 143-157.

131. Hayashi T. Xyloglucan in the primary cell wall // Annu. Rev. Plant Physiol/Plant Mol. Biol. -1989. -V. 40. -№ i.p. 139-168.

132. Hayat M.A. Colloidal gold: principles, methods and applications. 1989. Vols 1 and 2. Academic Press, Orlando, Florida. -P. 536.

133. Heath J.B. A unified hypothesis for the role of membrane bound enzyme complexes and microtubules in plant cell wall synthesis // J. Theor. Biol. -1974. -V. 48. -P. 445-449.

134. Hereward F.V. Rough membranes in Schizosaccharomyces pombe protoplasts // Exp. Cell Res. 1974. -V. 25. -P 309-362.

135. Herth W. Effect of 2,6-DCB on plasma membrane rosettes of wheat root cells //Naturwissenschaften. -1987. -V. 74. -P. 556-557.

136. Herth W., Meyer Y. Ultrastructural and chemical analysis of the wall fibrills synthsized by tobacco mesophyll protoplasts // Biol. Cellulaire. -1977. -V. 30. -P. 33-40.

137. Herth W., Weber G. Occurrence of the putative celulose synthesizing "rosettes" in the plasma membrane of Glicine max suspension culture cells // Naturwissenschaften. -1984. -V. 71. -P. 153-154.

138. Heumann H.-G. Microwave-stimulated glutaraldehyde and osmium tetroxide fixation of plant tissues: ultrastructural preservation in seconds // Histochem. -1992. -V. 97. № 1. -P. 241-347.

139. His I., Driouich A., Jauneau A. Distribution of the cell wall matrix polysaccharides in the epidermis of flax hypocotyl seedling: Calcium induced-acidification of pectins // Plant Physiol. Biochem. -1997. -V. 35. -№ 8. -P. 631-644.

140. Hock C.W. Microscopic structure of flax and related bast fibres // Journal of Reasearch of the national Bureau of Standarts. -1942. -V. 29. -P. 41-50.

141. Hodges G.M., Southgate J., Toulson E.C. Colloidal gold a powerful tool in SEM immunocytochemistry: an overview of bioaplications // Scanning Microsc. -1987. -V. 1. -P. 301-318.

142. Hodges G.M., Carr K.E. Colloidal gold immunocytochemistry using SEM // Microscopy and Analysis. -1990. -V. 18. -P. 29-32.

143. Hong Z., Delauney A.J., Verma D.P.S. A cell plate specific callose synthase and its interaction with phragmoplastin and UDP-glucose transferase // Plant Cell.-2001.-V. 13.-P. 755-768.

144. Hoson T., Nevins D. B-D glucan antibodies inhibit auxin induced cell elongation and changes in the cell wall of Zea coleoptile segments // Plant Physiol. -1989. V. 90. -P.1353-1358.

145. Immunocytochemical methods and protocols. 1999. Ed. By L.C. Javois, Humana Press, Totawa, New Jersey. -P. 465.

146. Inomata F., Takebe K., Saiki H. Cell wall formation of conifer traheid as revealed by rapid-freeze and substitution method // J. Electron Microsc. -1992. -V. 41.-P. 369-374.

147. Itoh T., Kimura S. Immunogold labelling of terminal cellulose-synthezing complexes. 9th International Cell Wall Meeting, 2-7 September 2001, Toulouse, France. -P. 24.

148. Jones L., Seymour G.B., Knox J.P. Localization of pcctic galactan in tomato cell wall using a monoclonal antibody specific to (l-4)-p-D-galactan. // Protoplasma. -1998. -V. 203. -№ 1. -P. 26-34.

149. Kandasamy M., Kappler U. Plasmatubulus on the pollen tubes of Nicotiana sylvestris//Planta. -1988. -V. 173. -№ 1. -P. 35-41.

150. Kasten F.H. The origin of modern fluorescence microscopy and fluorescence probes. 1989. In: Cell structure and function by microspectrofluorometry. Eds. Kohen E. and Haugland J.G., Academic, San Diego. -P. 3-50.

151. Kawagoe Y., Delmer D.P. Pathways and genes involved in cellulose biosynthesis // Genetic Engineering. -1997. -V. 19. -P. 295-303.

152. Kerr T. The outer wall of the cotton fiber and its influence on fiber properties // Text. Res. J. -1946. -June. -P. 249-254.

153. Kiermayer O., Sleytr U.B. Hexagonally ordered "rosettes" of particles in the plasma membrane of Micrasterias denticulata Breb. and their significance for microfibril formation and orientation 11 Protoplasma. -1979. -V. 101. -№ 1. -P. 133138.

154. Kimura S., Laosinchai W., Itoh T., Cui X., Linder R., Brown R.M. Jr. Immunogold labelling of rosette terminal cellulose-synthe^azing complexes in the vascular plant Vigna angularis II The Plant Cell. -1999. -V. 11. -P. 2075-2085.

155. King S.P., Lunn J.E., Furbunk R.T. Carbohydrate content and enzymes metabolism in developing Canola siliques II Plant. Physiol. -1997. -V. 114. -№ 1. -P. 153-160.

156. Knox J.P., Linstead P.J., King J., Cooper C., Roberts K. Pectin esterification is spatially regulated both within cell walls and between developing tissues of root apices // Planta. -1990. -181. -№ 2. -P. 512-521.

157. Kleczwkowski L.A. Glucose activation and metabolism through UDP-glucose pyrophosphorylase in plants // Phytochemistry. -1994. -V. 37. -P. 15071515.

158. Kobyashi H., Fukuda H., Schibaoka H. Reorganization of actin filaments assotiated with the differentiation of tracheary elements in Zinnia mesophyl cells // Protoplasma.-1987.-V. 138. № 1.-P.69-71.

159. Kobyashi H., Fukuda H., Schibaoka H. Interrelation between the spatial disposition off actin filaments and microtubules during the differentiation of tracheary elements in cultured Zinnia // Protoplasma. -1988. -V. 143. № 1. -P. 2937.

160. Kudlicka K., Wardrop A., Hoh T., Brown K.H. Further evidence from sectioned material in support of the existence of a linear terminal complex in cellulose synthesis//Protoplasma. -1987. -V. 136. -№ 1. -P. 96-103.

161. Kuga S., Brown R.M. Jr. Physical Structure of Cellulose Microfibrils: Implications for Biogenesis. In CHHAPJ Weimer, ed, Biosynthesis and Biodégradation of Cellulose. Marcel Dekker, Inc., New York. -1991. -P. 125-142.

162. Kundu B.C. The anatomy of two Indian fibre plants, Cannabis and Corehorus with special reference to the fibre distrbution and development // Indian Bot. Soc. Jour. -1942. -V. 21. -№ 1. -P. 93-108.

163. Kuriyama H., Fukuda H. Regulation of traheary elment differentiation. J. Plant Growth Regul. -2000. -V 20. -№. 1. -P. 35-51.

164. Lammeren A., Ageeva M., Kieft H., Lhissier F., Vos J., Gorshkova T., Emons A. Configuration of the microtubules cytoskeleton in elongating fibers of flax (Limim usitatissimum L.) // Cell Biol. Intern. -2003. -V. 27. -P. 225.

165. Lancelle S.A., Callaham D.A., Helper P.K. A method for rapid freeze-fixation of plant cells //Protoplasma. -1986. -V. 131. -№ l.-P. 153-165.

166. Lessard J.L.Two monoclonal antibodies to actin one muscle-selective and one generally reactive // Cell Motility and the Cytoskleton. -1988. -V. 10. -P. 349362.

167. Lewis, N.G., Yamamoto, E. Lignin: Occurrence, biogenesis and biodégradation // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. -1990. -V. -41. -P. 455496.

168. Levy S., Staehelin L.A. Synthesis, assembly and function of plant cell wall macromolecules // Curr. Opin. Cell Biol. -1992. -№ 5. -P. 856-62.

169. Lloyd C.W. The plant cy to skeleton: impact of fluorescent microscopy // Ann. Rev. Plant Physiol. -1987. -V. 38. -№ 1. -P. 119-139.

170. Lloyd C.W. Probing the plant cytoskeleton // Nature. -1991. -V. 350. -№. 6315.-P. 189-190.

171. Lloyd C.W., Clayton L., Dawson P.J., Doonan J.H., Hulme J.S., Roberts I.n., Wells B. The cytoskeleton underlying side and cross walls in plants: molecules and macromolecules assemblies // J.Cell. Sci. -1985. -V. 78. -Suppl. № 2. -P. 143155.

172. Lloyd C.W., Pearce K.J., Rawlins D.J., Ridge R.W., Shaw H.J. Endoplasmic microtubules connect the advancing nucleus to the tip of legume root hairs, but F-actin is involved in basipetal migration // Cell Motil. Cytoskel. -1987. -V. 8. -№ 2. -P. 27-36.

173. Login G.R., Dvorak A.M. Microwave fixation provides excelent preservation of tissues, cells, and antigens for light and electron microscopy // Histochem. J. -1988. -V. 20. -P. 373-387.

174. Lonsdale J.E., McDonald K.L., Jones R.L. High pressure freezing and substitution reveal new aspect of fine structure and maintain protein antigenity in barley aleurone cells // The Plant J. -1999. -V. 17. -P. 221-229.

175. Lynch M.A., Staehelin L.A. Domain-specific and cell-type specific localization of to types of cell wall matrix polysaccharides in the clover root tip // J. Cell Biol. -1992. -V. 118. -P. 467-480.

176. Lynch M.A., Staehelin L.A. Immunocytochemical loclization of cell wall polysaccharides in root tip of Avena sativa // Protoplasma. —1995. -V. 188. -№ 1. -P. 115-127.

177. Matyus L. Fluorescence resonance energy transfer measurements on cell surfaces. A spectroscopic tool for determing protein interaction // J. Photochem. Photobiol. -1992. -V. 12. -P. 323-337.

178. Martin T., Smith A.M. Starch biosynthesis // Plant Cell. -1995. -V. 7. -P. 971-985.

179. McCann M., Roberts K. Mosaics and murals // J. Cell Sci. -1990. -V. 96. -P.323-334.

180. McCann M.C., Stacey N.J., Wilson R., Roberts K. Oirentation of cthe macromolecules in the walls of elongating carrot cells. J Cell Sci. -1993. -V. 106. -(Pt. 4): 1347-56.

181. McDonald K. High-pressure freezing for preservation of high resolution fine structure and antigenicity for immunolabelling // Methods in Molecular Biology. Electron Microscopy Methods and Protocols. -1999. -V. 117. -P. 77-97.

182. McDougall G.J. Isolation and partial characterization of the non-cellulosic polysaccharides of flax fibre // Carbohydr.Res. -1993. -V. 241. -P. 227-236.

183. McDougall G.J., Morrison I.M., Stewart D., Weyers J.D.B., Hillman J.R. Plant fibres: botany, chemistry and processing for industrial use // J. Sci. Food Agric. 1993.-V. 62.-P. 1-20.

184. Metcalfe C.R., Chalk L. Anatomy of the cotyledones // Oxford, Charendon press. -1950 -V.2.

185. Mizuhira V., Hasegawa H., Notoya M. Fixation and imaging of biological elements: heavy metals, diffusible substance, iones, peptides and lipids // Prog. Histochem. Cytochem. -2000. -V. 35. -P. 67-183.

186. Mogami N., Nakamura S., Nakamura N. Immunolocalization of the cell wall components in Pinus densiflora pollen // Protoplasma. -1999. -V. 206. № 1. -P. 1-10.

187. Mol P.C., Park H.-M., Mullins J.T., Cabib E. AGTP-binding proteine regulates the activity of (1—»3)-(3-glucan synthase, an enzyme directly involved in yeast cell wall morphogenesis // J. Biol. Chem. -1994. -V. 269. -P. 31267-31274.

188. Mollenhauer H.H. Simple apparatus for plunge-freezing biological material: some design consideration // Micros. Res. Tech. -1999. -V. 44. -P. 195200.

189. Montezinos O., Brown R.M., Surface architecture of plant cell: biogenesis of cell wall with spatial emphasis on the role of the plasma membrane in cellulose biosinthesis // J. Sapramol. -1976. -V.5. -P. 277-290.

190. Montezinos O., Brown R.M. Cell wall biogenesis in Oocystis: experimental alteration of microfibril assembly and orientation // Cytobios. -1978. V. 23.-№90.-P. 119-139.

191. Morrow D.L. Lucas W.J. (l-3)-p-glucan synthase from sugar beer. I. Isolation and solubilization // Plant Physiol. -1986. -V. 81. -№ 1. -P. 171-176.

192. Morvan O., Quentin M., Jauneau A., Mareck A., Morvan C. Immunogold localization of pectin methylesterases in the cortical tissues of flax hypocotyl // Protoplasma. -1998. -V. 202.-№ l.-P. 175-184.

193. Morvan C., Andeme-Onzighi C., Girault R., Himmelsbach D.S., Driouich A., Akin D.E. Building flax fibers: more than one brick in the walls // Plant Physiol. Biochem. -2003. -V. 41. -P. 935-944.

194. Muhlethaler K. Ultrastructure and formation of plant cell walls // Annu. Rev. Plant. Physiol. -1967. -V. 18. -№ 1 -P. 1-24.

195. Muhlethaler K. The contribution of freeze-etching to membrane research //Acta Histochem Suppl.-1981.-V. 23. -№ l.-P. 117-122.

196. Mulber B.M., Emons A.M.C. A dynamical model for plant cell wall architecture formation // J. Math. Biol. -2001. -V. 42. -P. 261-289.

197. Mueller S.C., Brown R.M., Jr. Evidence for an intramembrane component associated with a cellulose microfibril synthsizing complex in higher plants // J. Cell Biol.-1980. -V. 84.-P. 315-325.

198. Nakashima J., Mizuno T., Takeda K., Fujita M., Saiki H. Direct visualization of lignifying secondary wall thickening in Zinnia elegans cells in culture // Plant Cell Physiol. -1997. -V. 38. -№ 7. -P. 818-827.

199. Nasland P., Vuong R., Chanzy H. Diffraction contrast transmission electron microscopy on flax fiber ultrathin cross section // Text. Res. J. -1988. -V. 58. -№. 7. -P. 414-417.

200. Nebenfuhr A., Staehelin L.A. Mobile factories: Golgi dynamics in plant cells //Trends Plants Sci. -2001. -V. 6. -№ 4. -p. 160-167.

201. Newcomb E.H. Plant microtubules // Annu. Rev. Plant Physiol. -1969. -V. 20. -№. 1.-P. 253-288.

202. Newman G.R., Hobot J.A. Resin microscopy and on-section immuno-cytochemistry // Springer-Verlag. New York.- 1993 -P. 221.

203. Nguyen-Quoc B., Krivitzky M., Huber S.C., Lecharny A. Sucrose synthase in developing maize leaves // Plant Physiol. -1990. -V. 94. -P. 516-523.

204. Nicolas T.N., Bassot J.M. Freeze substitution after fast-freeze fixation in preparation for immunocytochemistry // Microsc. Res. Techn. -1993. -V. 24. -P. 474-478.

205. Northcote D.H. Fine structure of cytoplasm in relation to synthesis and secretion in plant cells // Proc. R. Soc. -1969. -V. 173. -P. 21-30.

206. Notle K.D., Hendrix D.L., Radin J.W., Koch K.E. Sucrose synthase localization during initiation of seed development and trichome differentiation in cotton ovules // 1995. -Plant. Physiol. -V. 109. -P. 1285-1293.

207. Paiziev A.A., Krakhmalev V.A. Self-organization phenomena during developing of cotton fibers // Curr. Opin. Solid State Mat Sci. -2004. -V. 8. -P. 127133.

208. Pear J., Kawagoe Y., Schreckengost W., Delmer D.p., Stalker D. Higher plants contain homologs of the bacterial CelA genes encoding the catalic subunits ofthe cellulose synthase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1996. -V. 93. P. 1263712642.

209. Pease D.C. Histological techniques for electron microscopy. 1960. Acad. Press. New York London. -P. 164.

210. Preston R.D. Structural and mechanical aspects of plant cell walls with particular reference to synthesis and growth // 1964. -In: The role of wood in forest trees. Eds.: Zimermann N.N. New York, Academic Press. -P. 169-188.

211. Quader H., Deichgraber G., Schnepf E. The cytoskeleton of Cobaea seed hairs//Planta.-1986. -V. 168.-№ 1.-P. 1-10.

212. Quader H., Herth W., Ryser U., Schnepf E. Cytoskeletal elements in cotton seeds hair development in vitro: their possible regulatory role in cell wall organization // Protoplasma. -1987. -V. 137. -№ 1. .p. 56-62.

213. Quader H., Scnepf E. The cytoskeleton of plant cell: structural and functional aspects // Ber. Dtsch. Bot. Ges. -1988. -V. 99. -№ 3/4. -P. 297-306.

214. Quader H., Wagenbreth I, Robinson DG^Structure, synthesis and orientation of microfibrils. V. On the recovery of Oocystis solitaria from microtubule inhibitor treatment//Cytobiologie. -1978.-V. 18.№ l.-P. 39-51.

215. Ramsey J.C., Berlin J.D. Ultrastructural aspect of early stages in cotton fiber elongation // Am. J. Bot. -1976. -V. 63. -P. 868-876.

216. Reiss H-D., Schnepf E., Herth W. The plasma memebrane of the Funaria caulonema tip cell: morphology and distribution of particle rosettes, and the kinetics of cellulose synthesis // Planta. -1984. -V. 160. -P. 428-435.

217. Reymond O.L., Pickett-Heaps J.D. A routine flat embedding method for electron microscopy of microorganisms allowing selection and precisely orientated sectioning of single cell by light microscopy // Journal of Microscopy. -1983. -V. 130. P. 79-84.

218. Robenek H. Relationship between the endoplasmic reticulum and plasma membrane of protoplast of Skimmia japónica Thunb. during cell wall regeneration // Biol. ZBL -1980 b. -V. 99. -N. 1. -P. 13-23.

219. Robenek H., Peveling E. Ultrastructure of the cell wall regeneration of isolated protoplasts of Skimmia japónica Thunb // Planta. -1977. -V. 136. -№ 2. -P. 135-145.

220. Roberts A.W., Haigler C.H. Rise in chlorotetracycline fluorescence accompanies tracheary elements differentiation in suspension cultures of Zinnia II Protoplasma. -1989. V. 152. -№ 1. -P. 37-45.

221. Roberts A.W., Haigler C.H. Tracheary-elements differentiation in suspension-cultured cells of Zinnia requires uptake of extracellular Ca 2+ // Planta. -1990. -V. 180.-P. 502-509.

222. Roberts A.W., Haigler C.H. Methylxanthines reversibly inhibit tracheary-elements differentiation in suspension cultures of Zinnia elegans L // Planta. -1992. -V. 186. -P. 586-592.

223. Roberts A.W., Koonce T.L., Haigler C.H. A simplified medium for in vivo tracheary element differentiation in mesophyll suspension cultures from Zinnia elegans L. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. -1992. -V. 28. -P. 27-35.

224. Roberts A.W., Donovan S.G., Haigler C.H. A secreted factor induces cell expansion and formation of metaxylem-like tracheary elements in xylogenic suspension cultures of Zinnia II Plant Physiol. -1997. -V. 115. -P. 683-692.

225. Roberts A., Uhnak K. Tip growth in xylogenic suspension cultures of Zinnia elegans L.: implications for the relationship between cell shape and secondary-cell-wall pattern in tracheary elements // Protoplasma. -1998. -V. 204. -№ 103-113.

226. Roelofsen P.A., Houwink A.L. Architecture and growth of the primary cell wall in some plant hairs and the Phycomyces sporangiospores // Acta Bot. Neerl. -1953.-V. 2.-P. 218.

227. Roland, J. C., Vian B. The wall of the growing plant cell: Its three-dimensional organization // Int. Rev. Cytology. -1979. -V. 61. -P. 129-166.

228. Roland J.C., Reis D., Vian B. The cholesteric type of cell wall: nucleation of defects in structural order and its relation to spherical shape // Acta Bot. Neerl. -1993.-V. 42.-№2.-P. 91-98.

229. Roland J.-C., Mosiniak M., Roland D., Dynamique du positionnement de la cellulose dans les parois des fibres textiles du lin {Linum usitatissimum) // Acta Bot. Gallica. -1995. -V. 142. -P. 463-484.

230. Ross P., Mayer R., Benziman M. Cellulose biosynthesis and function in bacteria // Microbiol. Rev. // 1991. -V. -55. -P. 35-58.

231. Roth J. The colloidal gold marker system for light and electron microscopic cytochemistry. -1983. In: Immunocytochemistry, Vol. 2 (ed. G.R Bullock and P. Petrusz), Academic Press, London. -P. 217-284.

232. Ruel K., Joseleau J.P. Use of enzyme-gold complexes for the ultrastructural localization of hemicelluloses in the plant cell wall // Histochemistry. — 1984.-V. 81.-P. 573-580.

233. Ruel K, Joseleau JP. Use of an alpha-D-glucosidase for the specific cytochemical identification of lateral alpha-D-xylosyl end groups in plant xyloglucans // Histochemistry. -1990. -V. 93. -№ 5. -P. 469-71.

234. Ruel K., Faix O., Joseleau J.P. New immunogold probes for studing the distribution of the different lignin types during plant cell wall biogenesis // J. Tracc and Microprobes Techniques. -1994. -V. 12. -P. 247-265.

235. Ryser U. Cotton fiber initiation and histodifferentiation. In: Cotton Fibers Developmental biology, quality improvement, and textile proceccing. 2000, Ed. Basra A.-P. 1-45.

236. Salnikov V. V., van Dam J. E. G., Lozovaya V. V. Microscopy of cell wall formation in flax bast fibre // Natural Fibres. -1998. -V. 2. -P. 187-194.

237. Salnikov V.V., Grimson M.J., Delmer D.P., Haigler C.H. Sucrose synthase localazes to cellulose synthesis sites in tracheary elements // Phytochemistry. -2001. -V. 57. -P. 823-833.

238. Salnikov V., Grimson M., Seagull R., Haigler C. The localisation of Cellulose-synthesi-assotiated sucrose synthase is changeable in freeze substitution, secondary wall stage, cotton fibers // Protoplasma. -2003. -V. 221. № 3-4. -P. 175184.

239. Schlupmann H., Bacic A., Read S.M. Uridine diphosphate glucose metabolism and callóse synthesis in cultured pollen tibes of Nicotiana alata Link et Otto // Plant Physiol. -1994. -V. 105. -P. 659-670.

240. Scheible W.R., Eshed R., Rischmond T., Delmer D., Somerville C. Modifications of cellulose synthase confer resístanse to isoxaben and thazolidinone herbicides in Arabidopsis Ixrl mutant // Proc. Natl. Acad. Sci. -2001. -V. 98. -P. 10079-10084.

241. Scheible W.R., Pauly M. Glycotrasferases and cell wall biosynthesis: novel players and insights // Curr. Opin. Plant Biol. -2004. -V. 7. P. 285-295.

242. Schoch-Bodmer H., Huber P. Das Spitzewachstum der Fasern bei Linum perenne L // Experientia. -1945. -Vol. 1/9. -P. 327-328.

243. Seagull R.W. The plant cytoskeleton // CRC Rev.Plant Sci. -1989a. -V. 8. -P. 131-167.

244. Seagul R.W. The role of the cytoskeleton during oriented microfibril deposition. II. Microfibril deposition in cell with disrupted cytoskeletons. In: Cellulose and Wood: Chemistry and Technology, Schuerch, C., (ed). Wiley. -1989 b. -№ V.-P. 811-825.

245. Seagull R.W. Tip growth and transition to secondary wall synthesis in developing cotton hairs. In: Tip Growth in Plant and Fungial Cells, Heath, I.B., (ed). Academic, San Diego, CA. -1990a. -P. 261-284.

246. Seagull R.W. The effects of microtubules and microfilament disrupting agent on cytoskeletal arrays and wall deposition in developing cotton fibers // Protoplasma-1990b.-V. 159. -№ 1.-P. 44-59.

247. Seagull R.W. Role of the cytoskeletal elements in organized wall microfibrill deposition. In: Biosynthesis and Biodégradation of cellulose, Haigler, C.H. and Weimer, P.J, (eds). Marccl Dekker, New York. -1991. -P. 143-163.

248. Seagull R.W. A quantitative electron microscopic study of changes in microtubule arrays and wall microfibril orientftion during in vitro cotton fiber development//J. Cell Sci. -1992a.-V. 101.-P. 561-577.

249. Seagull R.W. Commentary: The gormonal regulation of cell elongationthough changes in microtubule orientation // Int. J. Plantt Sci. -1992b. -V. 153. -P. iii-iv.

250. Seagull R.W., Heath I. B. The organization of cortical microtubule arrays in the radish root hair // Protoplasma. -1980. -V. 103. -№ 1. -P. 205-229.

251. Silva M.T., Macedo P.M. Improved Tbieiy staining for the ultrastructural detection of polysaccharides // J.Submicrosc. Cytol. -1987. -V. 19. -№ 4.-P. 677-681.

252. Singer S.J. Preparation of an electron-dense antibody conjugate // Nature.-1959.-V. 183.-P. 1523-1524.

253. Smallwood M., Yates E.A., Willats W.G.T., Martin H., Knox J.P. Immunochemical comparison of membrane-associated and secreted arabinogalactan-proteins in rice and carrot // Planta. -1996. -V. 198. -№ 1. -P.452-459.

254. Staehelin L.A., Moore I. The plant Golgi apparatus: structure, functional organization and trafficking mechanisms //Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mo.l Biol. -1995.-V.46. P. 261-288.

255. Smallwood M., Yates E., Willats W.G.T., Martin H., Knox P. Immunochemical comparison of membrane-associated and secreted arabimogalactan-proteines in rice and carrot // Planta -1996. -V. 198. -№ l.-P. 452-459.

256. Smith R.C., Fry S.C. Endotransglycosylation of xyloglucans in plant cell suspension cultures //Biochem. J. -1991. -V. 279. P. 529-535.

257. Stewart A., Deacon J.W. Vital fluorochromes as tracers for fungal growth studies // Biotech. Histochem. -1995. -V. 70. -№ 2. -P57-65.-269331. Strivastava L.M. Histochemical studies on lignin // 1966. -Tappi 49. -P. 173-183.

258. Suplin J.K., Robinson N.M., Wilhelmus K.R., Osato M.S. Improved detection of oculomycoses using induced fluorescence with cellufluor // Ophthahmology. -1986. -V. 93. -№ 3. -P. 416-417.

259. Sung S.S., Sheih W.J., Geiger D.R., Black C.C. Growth, sucrose synthase, and invertase activities of developing Phaseolus vulgaris L. fruits // Plant Cell Environ. -1994. -V. 17. P. 419-426.

260. Takabe K., Fukazawa K., Harada H. Deposition of cell wall components in conifer tracheides // In: Plant cell polymers: biogenesis and biodégradation. -1995. -ASC Symp. Ser. -P. 47-66.

261. Tammes T. Der Flachsstengel. Eine statistisch-anatomische. Monographie // Natuurk. Verhand. v.d. Holland Maattsch. d. Wetenschappen t. Haarlem. Derde Verzameling. Deel VI. Vierde Stuk. -1907. -P. 285.

262. Taylor J., Haigler C.H., Kilburn D.G., Blanton R.L. Detection of cellulose with improved specificity using laser-based instruments // Biotechnic & Histochemistry. -1996. -V. 71. -№ 5. P. 215-223.

263. Terashima N., Fukushima K. Heterogenity in formation of lignin. VII. An autoradiographic study of the heterogenous formation and structure of pine lignin // Wood Sci. Technol. -1988. -V. 22. -P. 269-270.

264. Tiwari S.C., Wilkins T.A. Cotton (Gossipium hirsutum) seed trichomes expand via diffuse growing mechanism // Can. J. Bot. -1995. -V. 73. -P. 746-757.

265. Van Genderen I.L., Van Meer G., Slot J.W., Geuze H.J., Voorhout W.F. Subcellular localization of Forssman glicolipid in epitelial MDCK cells by immuno-electronmicroscopy after freeze-substitution // J. Cell Biol. -1991. -V. 115. -P. 10091019.

266. Varner J., Taylor R. New ways to look at the architecture of plant cell walls // Plant Physiol. -1989. -V. 91. -P. 31-33.

267. Vian B., Roland J-C. Affinodetection of the sites of formation and of the further distribution of polygalacturonans and native cellulose in growing plant cells // Biol. Cell. -1991. -V. 71. -P. 43-55.

268. Vian B., Roland J.-C., Reis D. Primary cell wall texture and its relation to surface expansion // Internat. J. Plant Sci. -1993. -V. 154. -№ 1. -P. 1-9.

269. Viere M., Jauneau A., Knox J.P., Driouich A. Immunolocalization of P-(l->4) and |3-(1—>6)-D-galactan epitopes in cell wall and Golgi stacks of developing flax root tissues // Protoplasma. -1998. -V. 203. -P. 26-34.

270. Vos J.W., Hepler P.K. Calmodulin is uniformly distributed during cell division in living stamen hair cells of Tradescantia virginiana // Protoplasma. -1998. -V. 201.-P. 158-171.

271. Wada M., Staechelin L.A. Freeze-fracture observation on plasma membrane, the cell wall and the cuticle of growing protonemata of Adiantum capillus-veneris L. // Planta. -1981. -V. 151. -№ 3-4. -P. 462-468.

272. Wasteneys G.O. The cytoskeleton and growth polarity // Curr. Opin. Plant Biol. -2000.-V. 3. -P. 503-511.

273. Wasteneys G.O. Microtubules organization in the green kindom: chaos or self order? // J. Cell Sci. -2002. -V. 115. -P. 1345-1354.

274. Wasteneys G.O. Progress in understanding the role of microtubules in plant cells // Curr. Opin. Plant Biol. -2004. -V. 7. -P. 651-660.

275. Waterkeyn L. Cytochemical localization and function of the 3-linked glucan callose in the developing cotton fibre cell wall // Protoplasma. -1981. —V. 106. -№ l.-P. 49-67.

276. Westafer J.M., Brown R.M., Jr. Electron microscopy of the cotton fiber: new observation on wall formation//Cytobios.-1976.-V. 15.-P. 111-138.

277. Whetten R., Sederoff R. Lignin biosynthesis // The Plant Cell. -1995. V. 7.-P. 1001-1013.

278. Willemse M.T.M., Den Outer R.W. Stem anatomy and cell wall autofluorescence during growth of tree maize {Zea mays L.) cultivars // Acta Botanica Neerlandica. -1988. -V. 37. -P. 39-47.

279. Willemse M.T.M., Emons A.M.C. Autofluorescence and HPLC analysis of phenolic in Zea mays L. stem cell walls // Acta Botanica Neerlandica. -1991. -V. 40. -P. 115-124.

280. Willison J.H.M., Brown R.M., Jr. An examination of the development cotton fiber wall and plasmalemma // Protoplasma. -1977. -V. 92. -№ 1. -P. 21-41.

281. Winter H., Huber S.C. Regulation of sucrose metabolism in higher plants: localisation and regulation of activity of key enzymes // Critical Reviews in Plant Sciences. -2000 b. -V. 19. -№ 1. -P. 31-67.

282. Whitaker D. Cellulases. In: The enzymes // Ed: Boyer P. Academic Press, NY.-1971 -V. 5-P. 273.

283. Zang P., Toyoshima C., Yonekura K., Green n.M., Stokes D.L. Structure of the calcium pump from sarcoplasmic reticulum at 8 A resolution // Nature. -1998. -V. 392.-P. 835-839.

284. Zhu J.-K., Damsz B., Kononowisz A.K., Bressan R.A., Hasegawa P.M. A higher plant extracellular vitronectin-like adhesion protein is related to the transitional elongation factor-la// Plant Cell. -1994. -V. 6. -P. 393-404.

285. Zrenner R., Salanoudat M., Willmitzer L., Sonnewald U. Evidence of the crucial role of sucrose synthase for sink strength using trasgenic potato plants (Solanum Tuberosum L.) // Plant J. -1995. -V. 7. -P. 97-107.