Структура и функционирование почвенных микробных сообществ сухостепной зоны Селенгинского среднегорья тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Никитина Елена Петровна

• Никитина Елена Петровна
• кандидат наук
• 2024

Оглавление диссертации кандидат наук Никитина Елена Петровна

Введение

1 Обзор литературы

1.1 Природные условия и почвенный покров сухостепной зоны Селенгинского среднегорья

1.1.1 Эколого-географические условия формирования почв сухостепной зоны Селенгинского среднегорья

1.2.2 Характеристика почв сухостепной зоны Селенгинского среднегорья

1.2 Распространение и разнообразие микробных сообществ почв и их роль в функционировании экосистем

1.2.1 Пространственная структура почвенных микробных сообществ

1.2.2 Таксономическая структура почвенных микробных сообществ и факторы среды, влияющие на нее

1.2.3 Функциональная роль микроорганизмов в почвах

2 Объекты и методы исследования

2.1 Объекты исследования

2.2 Методы исследования

2.2.1 Физические и химические методы исследования почв

2.2.2 Методы оценки ферментативной активности почв

2.2.3 Методы учета численности эколого-трофических групп бактерий

2.2.4 Методы исследования морфологических и эколого-трофических свойств чистых культур бактерий

2.2.5 Молекулярно-генетические методы

2.2.6 Метод полифазной таксономии

2.2.7 Статистические методы

3 Результаты и обсуждение

3.1 Физические и химические свойства почв сухостепной зоны Селенгинского среднегорья

3.2 Влияние климатических факторов на сезонную динамику ферментативной активности исследуемых почв

3.3 Динамика численности и пространственное распределение основных эколого-трофических групп бактерий

3.4 Таксономическая структура и разнообразие микробных сообществ на основании анализа последовательностей фрагментов гена 16S рРНК

3.4.1 Анализ таксономического разнообразия микробных сообществ

3.4.2 Таксономическая структура микробных сообществ

3.4.3 Взаимосвязь таксономической структуры микробных сообществ

с физическими и химическими свойствами почв

3.5 Характеристика разнообразия культивируемого бактериального сообщества исследуемых почв

3.5.1 Таксономическое положение выделенных культур бактерий

3.5.2 Эколого-трофические свойства выделенных культур бактерий

3.6 Новый таксон рода 01усотусв8 филума АсйшшусеЮа

Заключение

Список сокращений

Список использованной литературы

Приложение А Динамика целлюлазной активности почв сухостепной зоны

Селенгинского среднегорья

Приложение Б Характеристика выделенных культур аэробных гетеротрофных

бактерий

Приложение В Физиолого-биохимические свойства штамма 01усотусв8 ЪигуаХетгз 18Т

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Структура и функционирование почвенных микробных сообществ сухостепной зоны Селенгинского среднегорья»

Введение

Актуальность темы исследования. Микробные сообщества почв, являясь частью экосистем, выполняют важные экологические функции, связанные, прежде всего, с поддержанием биогеохимических циклов элементов и стабильности функционирования почвенных экосистем [Звягинцев и др., 2005 ; Добровольская и др., 2015 ; Maron et al., 2018]. Структура и функциональное разнообразие микробных сообществ почв зависят от комплексного воздействия климатических, эдафических и биотических факторов [Sanchez-Maranon et al., 2017 ; Hu et al., 2019 ; Чернов, Железова, 2020]. Различные сочетания этих факторов, а также гетерогенность почвы как среды обитания, высокая вариабельность в пространственном [Ritz et al., 2004 ; Fierer, Jackson, 2006 ; Delgado-Baquerizo et al., 2018b] и временном масштабе [Чернов, Железова, 2020] делают почву самым большим резервуаром микробного разнообразия на Земле.

В настоящее время в условиях глобального потепления климата большое внимание уделяется изучению почвенных микробных сообществ аридных экосистем. Это продиктовано как фундаментальным интересом к выяснению особенностей биоразнообразия и функционирования прокариот в экстремальных условиях [Neilson et al., 2012 ; Delgado-Baquerizo et al., 2017 ; Chen et al., 2021], так и практической направленностью с целью поиска и выделения новых видов микроорганизмов, изучения их экологических функций и биотехнологического потенциала [Mohammadipanah, Wink, 2016 ; Belov et al., 2019].

В связи с этим большой интерес представляют почвы сухостепной зоны Селенгинского среднегорья, которые формируются в условиях ярко выраженной континентальности и засушливости климата [Ногина, 1964 ; Батуев и др., 2000]. Основными особенностями климата региона являются высокий приход солнечной радиации, незначительное количество осадков и неравномерность их выпадения, резкие колебания температуры воздуха, проявляющиеся в значительных амплитудах колебаний среднесуточных и среднемесячных температур [Чимитдоржиева, Чимитдоржиева, 2021]. Все вышеперечисленное сказывается

на характере растительного покрова и процессах почвообразования, что в свою очередь несомненно отражается на структуре и функционировании почвенной микрофлоры [Чимитдоржиева, Цыбикова, 2018].

Степень разработанности проблемы. В литературе представлены результаты исследований видового состава и продуктивности степей Забайкалья [Рещиков, 1961 ; Лавренко и др., 1991 ; Намзалов и др., 1997 ; Бойков и др., 2002 ; Дамбиев и др., 2006 ; Меркушева и др., 2006, 2014]. Показано, что аридность климата способствовала формированию фитоценозов, представленных разреженным и низким травостоем [Ногина, 1964 ; Гаджиев и др., 2002] с невысокой биологической продуктивностью [Бойков и др., 2002 ; Меркушева и др., 2014]. Отношение надземной фитомассы к подземной здесь гораздо ниже, чем в степях Европейской части России. На долю корневой системы приходится по оценкам разных авторов от 88 до 97 % от общих запасов фитомассы, большая часть которой сконцентрирована в верхнем 0-20 см слое [Меркушева и др., 2014 ; Лаврентьева и др., 2017].

Условия почвообразования, водно-физические, физико-химические свойства, питательный режим почв степных территорий Забайкалья довольно полно отражены в трудах Уфимцевой К. А. (1960), Ногиной Н. А. (1964), Ишигенова И. А. (1972), Чимитдоржиевой Г. Д. (1990), Цыбжитова Ц. Х. и Цыбжитова А. Ц. (2000), Убугунова Л. Л. и др. (2000), Абидуевой Т. И. и Соколовой Т. А. (2005), Меркушевой М. Г. и др. (2006). Показано, что каштановые почвы, доминирующие в среднегорье, характеризуются малой мощностью гумусового горизонта, легким гранулометрическим составом, щебнистостью, слабой водоудерживающей способностью и низкой влагоемкостью, что отличает их от типичных каштановых почв Европейской части России [Ногина, 1964 ; Панкова, Черноусенко, 2018 ; Чимитдоржиева, Цыбикова, 2018].

Однако накоплено относительно мало данных о микробных сообществах почв Забайкалья: их таксономическом разнообразии, распространении и экологических факторах, влияющих на них. Представленные статьи затрагивают

в основном количественные характеристики микроорганизмов [Нимаева, 1992 ; Звягинцев и др., 1999а] и содержат фрагментарные сведения о таксономическом разнообразии [Нимаева, 1992 ; Звягинцев и др., 1999б]. Имеются также некоторые сведения о содержании углерода микробной биомассы в общем запасе органического углерода каштановых почв [Чимитдоржиева, Чимитдоржиева, 2012] и их биологической активности [Нимаева, 1992 ; Чимитдоржиева и др., 2001].

Таким образом, изучение распространения, разнообразия и функционирования прокариот в почвах, формирующихся в уникальных природно-климатических условиях Забайкалья, является актуальным.

Цель и задачи исследования. Цель данной работы - выявление пространственно-временной, таксономической структуры и особенностей функционирования почвенных микробных сообществ сухостепной зоны Селенгинского среднегорья.

Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:

1. Охарактеризовать физические и химические свойства почв сухостепной зоны Селенгинского среднегорья.

2. Оценить влияние климатических факторов на сезонную динамику ферментативной активности (протеазной и целлюлазной) исследуемых почв.

3. Выявить динамику численности и пространственное распределение основных эколого-трофических групп бактерий.

4. Установить таксономическую структуру микробных сообществ и выявить взаимосвязь структуры и разнообразия микробных сообществ с условиями среды обитания.

5. Определить таксономическое положение и охарактеризовать эколого-трофические свойства выделенных культур аэробных гетеротрофных бактерий.

Научная новизна. Впервые с использованием газо-хромато-масс-спектрометрии определен состав липидных компонент в почвах сухостепной зоны Селенгинского среднегорья, на основании которого выявлены маркеры растительного и бактериального источников органического вещества,

установлены индекс четности углерода и общая микробная численность. Впервые с использованием высокопроизводительного секвенирования фрагментов гена 16Б рРНК охарактеризованы таксономическая структура и разнообразие микробных сообществ исследуемых почв согласно генетическим горизонтам. Показано, что микробные сообщества сформированы преимущественно представителями семи филумов: АСтошусеЮа, Лс1ёоЬас1ег1о1а, Рвеиёошопаёо1а, Вас1его1ёо1а, СЫогоАехо1а, УеггисошюгоЬ^а и Gemшatimonadota, с доминированием актинобактерий, ацидобактерий и протеобактерий. Обнаружена взаимосвязь таксономической структуры и разнообразия микробных сообществ с содержанием органического углерода, общего азота и гранулометрическим составом исследуемых почв. Выделены культуры аэробных гетеротрофных бактерий, определено их таксономическое положение, охарактеризованы эколого-трофические свойства. Отмечено, что штаммы обладают широким диапазоном толерантности к температуре, рН, содержанию №С1 и используют широкий спектр источников углерода и азота. С использованием методов полифазной таксономии и филогеномного анализа описан новый вид филума Actinoшycetota -01усотусв8 Ъигуа1вт18 sp. nov. штамм 18Т (=1СЫ 33362т =СОЫСС 4.7610т).

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные результаты расширяют представления о таксономическом составе культивируемого и некультивируемого микробных сообществ аридных экосистем. Полученные последовательности гена 16S рРНК и массивы данных NGS зарегистрированы в базе данных NCBI и могут быть использованы для сравнительного анализа с последовательностями, полученными для почв других аридных регионов. Новый вид рода 01усотусв8 депонирован в международные коллекции микроорганизмов и доступен научной общественности для последующих исследований, как в теоретическом, так и в прикладном аспектах. Результаты исследований могут быть использованы в учебном процессе при изучении экологии микроорганизмов в высших учебных заведениях.

Методология и методы исследования. В процессе работы применялись как классические, так и современные физико-химические, микробиологические

и молекулярно-генетические методы: спектрофотометрия, атомно-абсорбционная спектрометрия, культивирование на питательных средах, световая и электронная микроскопии, газовая хроматография с масс-спектрометрическим детектированием (ГХ-МС), высокоэффективная жидкостная хроматография с масс-спектрометрическим детектированием (ВЭЖХ-МС), тонкослойная хроматография (ТСХ), высокопроизводительное секвенирование.

Положения, выносимые на защиту:

1. Климатические особенности региона, а также физические и химические свойства исследуемых почв, обуславливают развитие ксеротрофных и олиготрофных почвенных микробных сообществ и определяют различия в их пространственной и таксономической структуре.

2. Микробные сообщества исследованных почв характеризуются высоким разнообразием и сходной таксономической структурой с доминированием представителей филумов Actinomycetota, Acidobacteriota и Pseudomonadota.

3. Широкий диапазон толерантности к абиотическим факторам и большой спектр утилизируемых субстратов, а также способность к спорообразованию большинства культивируемых представителей прокариот свидетельствуют об их высоком адаптационном потенциале.

Личный вклад автора. Автором принято непосредственное участие в постановке цели и задач исследования, экспедиционных работах; самостоятельно проведен аналитический обзор научной литературы, получены, обобщены и статистически обработаны экспериментальные данные, результаты работы представлены на конференциях различного уровня; совместно с соавторами подготовлены научные публикации по теме диссертационного исследования.

Степень достоверности результатов исследования. Достоверность полученных результатов подтверждается большим объемом фактического материала, продолжительностью исследований, применением современных физико-химических, микробиологических и молекулярно-генетических методов, статистической обработкой экспериментальных данных с использованием программных пакетов Statistica 6.1, PAST 4.03 и Origin 2015 (9.2).

Апробация результатов диссертационного исследования. Основные результаты работы представлены и обсуждены на конференциях различного уровня: 52-я Международная научная студенческая конференция «Студент и научно-технический прогресс» (Новосибирск, 2014), IV Региональная научно-практическая конференция студентов, аспирантов и молодых ученых «Экологические проблемы Байкальского региона» (Улан-Удэ, 2014), IV Всероссийская конференция молодых ученых (с международным участием) «Биоразнообразие: глобальные и региональные процессы» (Улан-Удэ, 2016), Международный 15-й Азиатский консорциум по сохранению и устойчивому использованию микробных ресурсов «Microbial diversity: research, conservation and sustainable use» (Улан-Батор, Монголия, 2018), 2-й Российский микробиологический конгресс (Саранск, 2019), IV Всероссийская конференция с международным участием «Разнообразие почв и биоты Северной и Центральной Азии» (Улан-Удэ, 2021), III Всероссийская конференция с международным участием «Экология и геохимическая деятельность микроорганизмов экстремальных местообитаний» (Улан-Удэ-Байкальск, 2023).

Публикации. По результатам исследования опубликовано 16 научных работ, в том числе 6 статей в журналах, включенных в Перечень рецензируемых научных изданий, в которых должны быть опубликованы основные научные результаты диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук, на соискание ученой степени доктора наук (из них 1 статья в зарубежном научном журнале, входящем в Web of Science; 2 статьи в российских научных журналах, переводные версии которых входят в Web of Science; 1 статья в российском научном журнале, входящем в Scopus), 3 статьи в прочих научных журналах (в том числе 1 зарубежный журнал), 7 публикаций в сборниках материалов конференций.

Структура и объем диссертации. Диссертационная работа изложена на 178 страницах и состоит из введения, трех глав, заключения, списка сокращений, списка использованной литературы и пяти приложений, содержит 36 рисунков и 12 таблиц. Список использованной литературы включает 350 источников, из которых 226 - на иностранных языках.

Исследования проведены в рамках темы НИР кафедры зоологии и экологии Бурятского государственного университета им. Доржи Банзарова (БГУ им. Доржи Банзарова, г. Улан-Удэ) «Эколого-биологическая оценка состояния экосистем Байкальской Сибири и сопредельных территорий» и бюджетного проекта лаборатории химии природных систем Байкальского института природопользования СО РАН (БИП СО РАН, г. Улан-Удэ) «Процессы функционирования и адаптации наземных и водных экосистем Внутренней Азии в условиях изменения климата и антропогенного воздействия: трансформация состава индикаторных веществ» (№ FWSU-2021-0004). Часть результатов получена при поддержке гранта Министерства науки и высшего образования Российской Федерации «Фундаментальные основы, методы и технологии цифрового мониторинга и прогнозирования экологической обстановки Байкальской природной территории» (грант № 075-15-2020-787, 2020-2023 гг.) и в ходе стажировки в лаборатории микробной химии Института медицинской биотехнологии Китайской академии медицинских наук (г. Пекин) при поддержке гранта Инновационного фонда Китайской академии медицинских наук (CAMS 2017-12 MB&R08).

Благодарности. Автор выражает искреннюю признательность и благодарность своему научному руководителю кандидату биологических наук Буянтуевой Л. Б. и всему коллективу кафедры зоологии и экологии БГУ им. Доржи Банзарова за всестороннюю помощь, обсуждение работы и критические замечания на разных этапах ее выполнения. Автор благодарит коллективы лаборатории микробиологии Института общей и экспериментальной биологии СО РАН (ИОЭБ СО РАН, г. Улан-Удэ) и лаборатории химии природных систем Байкальского института природопользования СО РАН (г. Улан-Удэ) за возможность проведения экспериментальных исследований, ценные советы и обсуждение результатов работы. Отдельную благодарность автор выражает ведущему научному сотруднику лаборатории микробиологии ИОЭБ СО РАН, доктору биологических наук, профессору Абидуевой Е. Ю. и заведующему лабораторией микробной химии Китайской академии медицинских наук, Ph. D, профессору

Sun Ch. за предоставленную возможность проведения полифазного анализа; ведущему научному сотруднику лаборатории географии и экологии почв ИОЭБ СО РАН, доктору биологических наук, профессору Гыниновой А. Б. за помощь в проведении физико-химического анализа почв и обсуждении результатов; главному научному сотруднику лаборатории химии природных систем БИП СО РАН, доктору химических наук, профессору Раднаевой Л. Д. и старшему научному сотруднику лаборатории химии природных систем БИП СО РАН, кандидату химических наук Пинтаевой Е. Ц. за помощь в освоении анализа липидных компонент почвы и интерпретации данных. Я благодарю свою семью, без поддержки которой работа не могла бы быть выполнена.

1 Обзор литературы

1.1 Природные условия и почвенный покров сухостепной зоны

Селенгинского среднегорья

Селенгинское среднегорье расположено в Западном Забайкалье и занимает среднюю часть бассейна р. Селенги. С юга оно граничит с Монголией, с северо -западной и северной стороны - с южными склонами хребта Хамар-Дабан и Улан-Бургасы, на северо-востоке примыкает к Витимскому плоскогорью [Ишигенов, 1972].

1.1.1 Эколого-географические условия формирования почв сухостепной зоны

Селенгинского среднегорья

Рельеф. Характерной чертой территории Селенгинского среднегорья является чередование хребтов со сглаженными водоразделами и межгорных впадин, ориентированных в основном с запада-юго-запада на восток-северо-восток [Базаров, 1968]. Здесь выделяется более тридцати отделенных друг от друга низкогорными и холмистыми перемычками, четкообразно расположенных котловин со своими морфометрическими показателями и природными особенностями [Базаров, 1968 ; Батуев и др., 2000].

Современный рельеф Селенгинского среднегорья тесно связан с геологической историей, так как в основе всех его крупных орографических единиц лежат тектонические структуры. Основные его черты, по данным геологических исследований, были заложены еще в мезозое [Базаров, 1968]. Сохранение основных черт древнего рельефа до настоящего времени объясняется в данном случае обновлением тектонических форм повторными и притом однозначными движениями отдельных участков земной коры в течение кайнозоя [Ногина, 1964 ; Базаров, 1968]. Современными экзогенными рельефообразующими процессами являются эрозионно-аккумулятивные, протекающие в условиях

сравнительно энергичного выветривания и проявляющиеся с различной интенсивностью в разных зонах и поясах среднегорья [Фадеева, 1963].

Климатические условия. Климат территории, начиная с четвертичного периода, в целом характеризовался континентальностью и аридностью [Базаров, 1968], которые свойственны ему и сейчас. Это обусловлено в первую очередь внутриконтинентальным положением территории на стыке двух океанических влияний: западного (атлантического) и восточного (тихоокеанского), причем оба влияния очень слабы из-за орографических барьеров [Ногина, 1964 ; Базаров, 1986]. Селенгинское среднегорье находится в зоне влияния двух ярко выраженных меридионально-секторных климатических областей: Северо-Сибирской Арктической - очень холодной и сухой, и Центрально-Азиатской - аридной и суперконтинентальной [Базаров, 1986]. Расчлененный характер рельефа определяет резкую и частую пространственную изменчивость микроклиматов [Ногина, 1964 ; Батуев и др., 2000]. Эти данные характеризуют Селенгинское среднегорье как своеобразную физико-географическую область, значительно отличающуюся по климатическим условиям от сопредельных территорий.

Сумма положительных температур выше 10 °С варьирует для степей от 1785 до 2000 °С, продолжительность солнечного сияния 2500 часов. Безморозный период длится 85-115 дней. Продолжительность вегетационного периода составляет 130-155 дней [Цыбжитов, Цыбжитов, 2000]. Зимой здесь господствует Азиатский (Сибирский) антициклон, вследствие чего зима очень морозная, безветренная, малоснежная, с большим количеством солнечных дней. Количество осадков в зимний период не превышает 12-15 мм (3-6 % от годовой суммы) [Бойков и др., 2002 ; Экологический атлас ... , 2015]. Зимние среднемесячные температуры воздуха варьируют от -23 до -28 °С при абсолютном минимуме -50 °С. Весенние месяцы характеризуются малым количеством осадков: в марте не более 5 мм, апреле - 10-15 мм, мае - 20-30 мм [Бойков и др., 2002]. Относительная влажность воздуха в этот сезон самая низкая в годичном цикле - 30-40 % и может опускаться в отдельные дни до 10 % [Цыбжитов, Цыбжитов, 2000]. Большая сухость воздуха при господстве ветреной погоды

приводит к возгонке снега и ликвидации сплошного снежного покрова еще до наступления положительных температур [Ногина, 1964]. По режиму циркуляции воздушных масс лето делится на два периода. Первый из них характеризуется слабо выраженной циклонической деятельностью, поэтому для него обычна малооблачная засушливая погода с отдельными суховейными днями, обусловленными привносом континентального нагретого воздуха с территории Центральной Монголии. Во второй половине лета значительно усиливается циклоническая деятельность, которая обусловливает поступление с Тихого океана воздуха, несущего с собой большое количество атмосферной влаги. В этот период лета выпадает до 60-70 % [Экологический атлас ... , 2015] всей суммы годовых осадков, которые в сухостепной и степной зоне составляют 200-250 и 250-300 мм соответственно [Ногина, 1964 ; Меркушева и др., 2006]. В первой половине осени наблюдаются высокие температуры днем и заморозки ночью. В конце сентября -начале октября отмечаются морозные дни [Цыбжитов, Цыбжитов, 2000]. Окончательный переход к зимним условиям циркуляции осуществляется примерно в середине ноября, когда Сибирский антициклон становится достаточно устойчивым [Экологический атлас ... , 2015].

Таким образом, весна, лето и осень на исследуемой территории характеризуются быстрым нарастанием и спадом среднедневных температур, резким их суточным колебанием, особенно на поверхности почвы [Цыбжитов, Цыбжитов, 2000]. В целом нужно отметить, что климат степей Селенгинского среднегорья характеризуется большой контрастностью, своеобразием хода метеорологических элементов и их изменчивостью из года в год, ярко выраженной засушливостью и континентальностью [Батуев и др., 2000]. Малая сумма годовых осадков и неравномерное их распределение, отрицательные среднегодовые температуры, наличие короткого периода, благоприятного для биологических процессов, обусловливают своеобразие процессов почвообразования и сказываются на характере растительного покрова.

Растительный покров. На территории Селенгинского среднегорья степная растительность занимает обычно южные склоны межгорных понижений,

подгорные шлейфы сопок, нижние части хребтов, террасовидные повышения [Ишигенов, Максимов, 1974 ; Гаджиев и др., 2002]. Разнообразные сочетания количеств тепла и влаги из-за гористого рельефа, различных высот и экспозиции склона, а также большое влияние подстилающей породы и щебнистости почв в котловинах, предгорьях и ландшафтах куэсто-грядового комплекса обуславливают специфику степей рассматриваемой территории [Гаджиев и др., 2002]. Это обусловливает сложную географическую и экологическую структуру степной растительности Забайкалья и является одной из основных причин отсутствия общепризнанной классификации [Королюк, 2017].

По климатическим условиям обычно выделяют сухую и менее ксерофитную настоящую степь. Однако стоит отметить, что по термическому режиму на территории Селенгинского среднегорья они близки между собой. Их разделение идет по степени атмосферного увлажнения [Ногина, 1964], что сказывается на внешнем облике растительных сообществ. Большая часть территории сухих степей используется как пастбищные угодья, в то время как на территории настоящих степей сосредоточены основные пахотные фонды [Ногина,1964 ; Меркушева и др., 2006].

Сухая степь поднимается вверх по склонам до абсолютной высоты 800 м. Растительность представлена разреженным и низким (до 15-20 см) травостоем с проективным покрытием до 35-45 %, видовой насыщенностью до 30-40 на 100 м2 с преобладанием дерновинных злаков (Stipa krylovii Roshev., Agropiron cristatum (L.), Cleistogenes squarrosa (Trin.) Keng, Leymus chinesis (Thin.)). Продуктивность таких степей достаточно низка и составляет 1-4 ц/га [Ногина, 1964 ; Батуев и др., 2000 ; Гаджиев и др., 2002]. В растительном покрове часто присутствуют устойчивые к выпасу растения: Artemisia frígida (Willd.), Potentilla acaulis L., Carex duriuscula (C.A. Mey.), Leymus chinensis (Thin.). Их высокая встречаемость, а зачастую высокое проективное покрытие отражает пастбищную трансформацию растительных сообществ [Гаджиев и др., 2002].

Высокая амплитуда колебаний климатических факторов в разные годы и в течение одного сезона определяет некоторые особенности степей Селенгинского

среднегорья и в целом Забайкалья. Для них характерно малое количество аспектов, причем ранневесенний эфемерно-эфемероидный практически не выражен в силу сухости начальных этапов вегетационного периода [Рещиков, 1961 ; Лавренко и др., 1991 ; Гаджиев и др., 2002]. Отношение надземной фитомассы к подземной здесь гораздо ниже, чем в степях Европейской части России. На долю корневой системы приходится по оценкам разных авторов от 88 до 97 % от общих запасов фитомассы, большая часть которой сконцентрирована в верхнем 0-20 см слое, что также свидетельствует о засушливости климата [Убугунов и др., 2000 ; Бойков и др., 2002 ; Меркушева и др., 2006, 2014 ; Лаврентьева и др., 2017].

1.2.2 Характеристика почв сухостепной зоны Селенгинского среднегорья

Почвенный покров Селенгинского среднегорья весьма своеобразен. Широтная зональность в распределении почв на данной территории хоть и прослеживается, но в большей степени осложняется вертикальной поясностью. Большое разнообразие геоморфологических, литологических, геокриологических, климатических и фитоценотических условий обусловливает формирование сложного почвенного покрова [Ногина, 1964 ; Ишигенов, 1972 ; Волковинцер, 1978 ; Убугунов, 1985 ; Корсунов, Цыбжитов, 1989 ; Цыбжитов и др., 1999 ; Убугунов и др., 2012]. Специфика условий почвообразования в регионе связана с горным рельефом территории, сложным геологическим строением и резко континентальным климатом. Общефациальными свойствами почв являются своеобразие сезонных процессов почвообразования, связанных с отчетливо выраженным муссонным характером выпадения осадков и контрастностью режима увлажнения почв в течение вегетационного периода, а также длительность холодного периода при сильном переохлаждении верхних горизонтов, что обусловливает краткость биологически активного периода, замедленность процессов химического выветривания и глинообразования, а также своеобразие геохимических миграций элементов [Убугунов и др., 2009].

Доминирующими в среднегорье являются каштановые почвы, которые являются наиболее освоенными и занятыми в аграрном секторе региона и издавна

используются как пахотные угодья и пастбища [Убугунов и др., 2009]. Они занимают площадь около 90 тыс. км2 и формируются под сухостепной растительностью, преимущественно в южной части среднегорья, охватывая пенепленизированные поверхности древних хребтов и террасы рек Селенга, Тугнуй, Хилок, Чикой, Джида и др. на отметках 500-900 м [Ногина, 1964 ; Ишигенов, 1972 ; Убугунов и др., 2018]. Почвообразующие породы представлены в основном песчаными и супесчаными, часто каменистыми, отложениями [Цыбжитов и др., 1999]. Содержание песчаных фракций достаточно высоко -до 50 % и почти равно содержанию пылевых частиц, среди которых доминирует фракция крупной пыли. Количество ила сильно колеблется (7-23 %) [Чимитдоржиева, 1990]. Почвообразующие породы характеризуются нейтрально-слабощелочной реакцией. Сумма поглощенных оснований в них несущественна, а количество легкорастворимых солей очень низкое [Цыбжитов и др., 1999 ; Убугунов и др., 2002]. Емкость поглощения сравнительно невелика, что согласуется с обедненностью этой группы почвообразующих пород тонкими фракциями [Ишигенов, 1972 ; Чимитдоржиева, 1990]. Вместе с тем необходимо отметить, что все рыхлые отложения данного региона в той или иной степени обогащены карбонатами [Цыбжитов и др., 1999].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Никитина Елена Петровна, 2024 год

Список использованной литературы

1. Абашеева Н. Е. Об азотном режиме некоторых типов почв Селенгинского среднегорья Бурятской АССР / Н. Е. Абашеева, М. Ц. Ракшаина // Физические и химические свойства почв Бурятской АССР : сборник статей ; отв. ред. О. В. Макеев. - Улан-Удэ : Бурятское книжное издательство, 1966. - С. 79-85. -(Труды Бурятского комплексного научно-исследовательского института СО АН СССР. Серия почвоведческая. Вып. 19).

2. Абидуева Т. И. Глинистые минералы и калийное состояние степных почв Западного Забайкалья / Т. И. Абидуева, Т. А. Соколова. - Новосибирск : Изд-во СО РАН, 2005. - 101 с.

3. Аристовская Т. В. Микробиология процессов почвообразования / Т. В. Аристовская. - Л. : Наука. Ленинградское отделение, 1980. - 187 с.

4. Базаров Д. Б. Четвертичные отложения и основные этапы развития рельефа Селенгинского среднегорья / Д. Б. Базаров. - Улан-Удэ : Бурятское книжное издательство, 1968. - 166 с.

5. Батуев А. Р. Геосистемы и картографирование эколого-географических ситуаций приселенгинских котловин Байкальского региона / А. Р. Батуев, А. Б. Буянтуев, В. А. Снытко. - Новосибирск : Изд-во СО РАН, 2000. - 164 с.

6. Бикташева Л. Р. Оценка влияния физико-химических свойств почвы на структуру бактериального сообщества / Л. Р. Бикташева, А. А. Савельев, С. Ю. Селивановская, П. Ю. Галицкая // Ученые записки Казанского университета. Серия: Естественные науки. - 2018. - Т. 160, кн. 2. - С. 240-258.

7. Бойков Т. Г. Степи Забайкалья: Продуктивность, кормовая ценность, рациональное использование и охрана / Т. Г. Бойков, Ю. Д. Харитонов, Ю. А. Рупышев. - Улан-Удэ : Изд-во БНЦ СО РАН, 2002. - 230 с.

8. Булгакова М. А. Биологическая активность антропогенно нарушенных черноземов степной и лесостепной зоны / М. А. Булгакова // Вестник Оренбургского государственного университета. - 2012. - № 10 (146). - С. 83-86.

9. Буянтуева Л. Б. Актиномицетные сообщества каштановых почв степных пастбищ Бурятии / Л. Б. Буянтуева, Е. П. Никитина, Б. Б. Намсараев // Вестник Бурятского государственного университета. - 2014 а. - Вып. 4 (2) : Биология, география. - С. 55-58.

10. Буянтуева Л. Б. Исследование численности и ферментативной активности микроорганизмов-деструкторов органического вещества растительных остатков каштановых почв степных пастбищ Бурятии / Л. Б. Буянтуева, Е. П. Никитина, А. Б. Гынинова // Вестник Бурятского государственного университета. - 2014 б. - Вып. 4 (1) : Биология, география. -С. 83-87.

11. Верховцева Н. В. Метод газовой хроматографии - масс-спектрометрии в изучении микробных сообществ почв агроценоза / Н. В. Верховцева, Г. А. Осипов // Проблемы агрохимии и экологии. - 2008. - № 1. - С. 51-54.

12. Верховцева Н. В. Структура сообществ микроорганизмов в урбаноземах, реконструированная по липидным маркерам / Н. В. Верховцева, В. А. Терехова, М. А. Пукальчик [и др.] // Проблемы агрохимии и экологии. - 2015. - № 3. -С. 45-53.

13. Виноградский С. Н. Микробиология почвы: проблемы и методы / С. Н. Виноградский. - M. : Изд-во Акад. наук СССР, 1952. - 792 с.

14. Волковинцер В. И. Степные криоаридные почвы / В. И. Волковинцер. -Новосибирск : Наука. Сибирское отделение, 1978. - 208 с.

15. Воробьева Е. А. Устойчивость микроорганизмов экстремальных ксерофитных экотопов к воздействию инактивирующих факторов / Е. А. Воробьева, А. А. Белов, В. С. Чепцов [и др.] // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. - 2018. - Вып. 4. - С. 111-127.

16. Гаджиев И. М. Степи Центральной Азии / И. М. Гаджиев, А. Ю. Королюк, А. А. Титлянова [и др.]. - Новосибирск : Изд-во СО РАН, 2002. - 296 с.

17. Гаузе Г. Ф. Определитель актиномицетов : Роды Streptomyces, Streptoverticillium, ^аМа / Г. Ф. Гаузе, Т. П. Преображенская, М. А. Свешникова [и др.] ; отв. ред. Е. Н. Мишустин. - М. : Наука, 1983. - 246 с.

18. Глазовская М. А. Геохимические функции микроорганизмов : методическое пособие / М. А. Глазовская, Н. Г. Добровольская. - М. : Изд-во Московского университета, 1984. - 153 с.

19. Гузев В. С. Концептуальная модель микробной системы почвы / В. С. Гузев, П. И. Иванов // Биотехнология микроорганизмов в сельском хозяйстве : сборник научных трудов ; под ред. А. И. Пупонина. - М. : Изд-во МСХА, 1989. - С. 78-88.

20. Дамбиев Э. Ц. Ландшафтная экология степей Бурятии / Э. Ц. Дамбиев, Б. Б. Намзалов, С. А. Холбоева. - Улан-Удэ : Изд-во Бурятского госуниверситета, 2006. - 184 с.

21. Демкина Т. С. Пространственно-временная динамика состояния микробных сообществ почв степей Волго-Донского междуречья / Т. С. Демкина // Аридные экосистемы. - 2020. - Т. 26, № 1 (82). - С. 76-83.

22. Демкина Т. С. Сравнительная характеристика микробных сообществ курганных насыпей, подкурганных и современных почв степной зоны Нижнего Поволжья / Т. С. Демкина, А. В. Борисов, М. В. Ельцов, В. А. Демкин // Почвоведение. - 2007. - № 6. - С. 738-748.

23. Добровольская Т. Г. Роль микроорганизмов в экологических функциях почв / Т. Г. Добровольская, Д. Г. Звягинцев, И. Ю. Чернов [и др.] // Почвоведение. - 2015. - № 9. - С. 1087-1096.

24. Добровольская Т. Г. Структура бактериальных сообществ почв / Т. Г. Добровольская. - М. : Академкнига, 2002. - 281 с.

25. Добровольский Г. В. Роль почвы в формировании и сохранении биологического биоразнообразия / Г. В. Добровольский, И. Ю. Чернов, А. А. Бобров [и др.]. - М. : Товарищество научных изданий КМК, 2011. - 273 с.

26. Добровольский Г. В. Структурно-функциональная роль почв и почвенной биоты в биосфере / Г. В. Добровольский, И. П. Бабьева, Л. Г. Богатырев [и др.]. - М. : Наука, 2003. - 364 с.

27. Доолоткельдиева Т. Д. Микробные сообщества высокогорных и низкотемпературных почв долины Сон-Куль Кыргызстана /

Т. Д. Доолоткельдиева, С. Т. Бобушева, Б. Ш. Бектурганова // Фундаментальные исследования. - 2012. - № 9, ч. 2. - С. 278-287.

28. Евдокимов И. В. Изменения структуры и активности почвенного микробного сообщества после внесения минерального азота / И. В. Евдокимов, А. Гаттингер, Ф. Бюггер [и др.] // Микробиология. - 2012. - Т. 81, № 6. - С. 803809.

29. Заварзин Г. А. Экстенсивная микробиология / Г. А. Заварзин // Известия АН СССР. Серия биологическая. - 1976. - № 1. - С. 121-134.

30. Захарченко А. Ф. Разложение целлюлозы в зональных почвах Таджикистана / А. Ф. Захарченко // Почвоведение. - 1961. - № 2. - С. 54-62.

31. Звягинцев Д. Г. Биология почв : учебник / Д. Г. Звягинцев, И. П. Бабьева, Г. М. Зенова. - 3-е изд.. испр. и доп. - М. : Изд-во МГУ, 2005. -445 с. - (Классический университетский учебник).

32. Звягинцев Д. Г. Биомасса микроорганизмов в почвах Забайкалья / Д. Г. Звягинцев, Л. М. Полянская, Г. Г. Гончиков, В. М. Корсунов // Почвоведение. - 1999а. - № 9. - С. 1132-1139.

33. Звягинцев Д. Г. Особенности таксономического состава микробных комплексов в почвах Байкальского региона / Д. Г. Звягинцев, Т. Г. Добровольская, И. Ю. Чернов [и др.] // Почвоведение. - 1999б. - № 6 - С. 727-731.

34. Звягинцев Д. Г. Почва и микроорганизмы / Д. Г. Звягинцев. - М. : Изд-во Московского университета, 1987. - 256 с.

35. Звягинцев Д. Г. Развитие актиномицетов в условиях низкой влажности / Д. Г. Звягинцев, Г. М. Зенова, Е. А. Дорошенко [и др.] // Известия РАН. Серия биологическая. - 2007. - № 3. - С. 296-302.

36. Звягинцев Д. Г. Экология актиномицетов / Д. Г. Звягинцев, Г. М. Зенова. - М. : ГЕОС, 2001. - 256 с.

37. Зенова Г. М. Структурно-функциональная организация комплексов термотолерантных актиномицетов пустынных и вулканических почв / Г. М. Зенова, А. И. Курапова, А. М. Лысенко, Д. Г. Звягинцев // Почвоведение. -2009. - № 5. - С. 575-580.

38. Зенова Г. М. Экофизиологические особенности актиномицетов пустынных почв Монголии / Г. М. Зенова, П. А. Кожевин, Н. А. Манучарова [и др.] // Известия Российской академии наук. Серия биологическая. - 2014. -№ 3. - С. 246-253.

39. Иванова Е. А. Сравнительный анализ микробных сообществ контрастных почвенных типов в условиях различных фитоценозов / Е. А. Иванова, Е. В. Першина, А. В. Кутовая [и др.] // Экология. - 2018. - № 1. -С. 34-44.

40. Иванова Е. А. Структура микробного сообщества агрегатов чернозема типичного в условиях контрастных вариантов сельскохозяйственного использования / Е. А. Иванова, О. В. Кутовая, А. К. Тхакахова [и др.] // Почвоведение. - 2015. - № 11. - С. 1367-1382.

41. Ишигенов И. А. Агрономическая характеристика почв Бурятии / И. А. Ишигенов. - Улан-Удэ : Бурятское книжное издательство, 1972. - 212 с.

42. Ишигенов И. А. О почвенно-климатической зональности Бурятской АССР / И. А. Ишигенов, В. Е. Максимов // Почвы бассейна озера Байкал и пути их рационального использования : доклады к X Международному конгрессу почвоведов. Москва, 12-20 августа 1974 г. - Улан-Удэ : [б. и.], 1974. - С. 122-133.

43. Кленов Б. М. Влияние континентальности климата на гумусообразование и элементный состав гуминовых кислот автоморфных почв Сибири / Б. М. Кленов, Г. Д. Чимитдоржиева // Сибирский экологический журнал. - 2011. - № 5. - С. 665-671.

44. Корвиго И. О. Оценка длительного воздействия агротехнических приемов и сельскохозяйственных культур на почвенные микробные сообщества / И. О. Корвиго, Е. В. Першина, Е. А. Иванова [и др.] // Микробиология. - 2016. -Т. 85, № 2. - С. 199-210.

45. Королюк А. Ю. Синтаксономия степной растительности Республики Бурятия / А. Ю. Королюк // Растительность России. - 2017. - № 31. - С. 3-32.

46. Корсунов В. М. Почвенный покров бассейна оз. Байкал / В. М. Корсунов, Ц. Х. Цыбжитов // Почвенные ресурсы Забайкалья : сборник

научных трудов : отв. ред. В. М. Корсунов. - Новосибирск : Наука. Сибирское отделение, 1989. - С. 4-12.

47. Корсунова Ц. Д-Ц. Биологическая активность дефлированных каштановых почв Байкальского региона при внесении компостов на основе древесной коры, опилок и соломы / Ц. Д-Ц. Корсунова, Г. Д. Чимитдоржиева // Агрохимия. - 2008. - № 4. - С. 15-19.

48. Курапова А. И. Термотолерантные и термофильные актиномицеты почв зоны пустынных степей Монголии / А. И. Курапова, Г. М. Зенова, И. И. Судницын [и др.] // Микробиология. - 2012. - Т. 81, № 1. - С. 105-116.

49. Кутовая О. В. Изменение почвенно-биологических процессов и структуры микробного сообщества агрочерноземов при разных способах обработки почвы / О. В. Кутовая, А. М. Гребенников, А. К. Тхакахова [и др.] // Бюллетень Почвенного института им. В.В. Докучаева. - 2018. - Вып. 92. - С. 3561.

50. Лавренко Е. М. Степи Евразии / Е. М. Лавренко, З. В. Карамышева, Р. И. Никулина. - Л. : Наука, 1991. - 146 с. - (Совместная советско-монгольская комплексная биологическая экспедиция. Биологические ресурсы и природные условия Монгольской Народной Республики. Т. 35.).

51. Лаврентьева И. Н. Оценка запасов органического углерода и потоков СО2 в травяных экосистемах Западного Забайкалья / И. Н. Лаврентьева, М. Г. Меркушева, Л. Л. Убугунов // Почвоведение. - 2017. - № 4. - С. 411-426.

52. Лисовицкая О. В. Влияние углеводородного загрязнения на накопление липидов в почвах / О. В. Лисовицкая, Н. В. Можарова // Почвоведение. - 2013. -№ 6. - С. 755-760.

53. Лукомская К. А. Микробиология с основами вирусологии : учебное пособие / К. А. Лукомская. - М. : Просвещение, 1987. - 192 с.

54. Манучарова Н. А. Гидролитические прокариотные комплексы наземных экосистем / Н. А. Манучарова. - М. : Университетская книга, 2014. - 272 с.

55. Манучарова Н. А. Хитинолитический актиномицетный комплекс чернозема / Н. А. Манучарова, Э. В. Белова, Л. М. Полянская, Г. М. Зенова // Микробиология. - 2004. - Т. 73, № 1. - С. 68-72.

56. Меркушева М. Г. Биопродуктивность почв сенокосов и пастбищ сухостепной зоны Забайкалья / М. Г. Меркушева, Л. Л. Убугунов, В. М. Корсунов. - Улан-Удэ : Изд-во БНЦ СО РАН, 2006. - 515 с.

57. Меркушева М. Г. Степные сообщества на каштановых почвах Западного Забайкалья: разнообразие и биопродуктивность / М. Г. Меркушева, О. А. Аненхонов, Н. К. Бадмаева, С. Б. Сосорова // Аридные экосистемы. - 2014. -Т. 20, № 3 (60). - С. 59-69.

58. Методы почвенной микробиологии и биохимии : учебное пособие / И. В. Асеева, И. П. Бабьева, Б. А. Бызов [и др.] ; под ред. Д. Г. Звягинцева. - Изд-е 2-е, перераб. и доп. - М. : Изд-во МГУ, 1991. - 304 с.

59. Мишустин Е. Н. Ценозы почвенных микроорганизмов / Е. Н. Мишустин // Почвенные организмы как компонент биогеоценоза : сборник статей ; отв. ред. Е. Н. Мишустин. - М. : Наука, 1984. - С. 5-24.

60. Мэгарран Э. Экологическое разнообразие и его измерение : пер. с англ. / Э. Мэгарран. - М. : Мир, 1992. - 184 с.

61. Намзалов Б. Б. Бурятия: растительный мир / Б. Б. Намзалов, К. М. Богданова, И. П. Быков [и др. ] ; отв. ред. Б. Б. Намзалов. - Улан-Удэ : Изд-во Бурятского госуниверситета, 1997. - Вып. II. - 250 с.

62. Нетрусов А. И. Практикум по микробиологии : учебное пособие / А. И. Нетрусов, М. А. Егорова, Л. М. Захарчук [и др.] ; под ред. А. И. Нетрусова. -М. : Издательский центр «Академия», 2005. - 608 с.

63. Никитина Е. П. Липидные компоненты почв сухостепных ландшафтов Селенгинского среднегорья / Е. П. Никитина, Е. Ц. Пинтаева, Л. Д. Раднаева [и др.] // Доклады Российской академии наук. Науки о Земле. - 2022. - Т. 506, № 1. - С. 318-323.

64. Никитина Е. П. Пространственная и таксономическая структура микробных сообществ почв сухостепной зоны Селенгинского среднегорья (Западное Забайкалье) / Е. П. Никитина, Л. Б. Буянтуева, О. А. Батурина [и др.] // Аридные экосистемы. - 2023а. - Т. 29, № 3 (96). - С. 111-123.

65. Никитина Е. П. Таксономическая и экофизиологическая характеристика актинобактерий почв сухостепной зоны Селенгинского среднегорья (Западное

Забайкалье) / Е. П. Никитина, Л. Б. Буянтуева, Е. Ю. Абидуева, Ч.-Х. Сун // Вавиловский журнал генетики и селекции. - 2023б. - Т. 27, № 4. - С. 411-420.

66. Нимаева С. Ш. Микробиология криоаридных почв (на примере Забайкалья) / С. Ш. Нимаева. - Новосибирск : Наука. Сибирское отделение, 1992. - 176 с.

67. Ногина Н. А. Почвы Забайкалья / Н. А. Ногина. - М. : Наука, 1964. -

314 с.

68. Норовсурэн Ж. Актиномицеты редких родов в равнинных каштановых почвах Монголии / Ж. Норовсурэн, Р. Баатар, Г. М. Зенова // Вестник Московского университета. Серия 17: Почвоведение. - 2007. - № 3. - С. 50-53.

69. Носова Л. М. Определение протеолитической активности дерновоподзолистой и дерновой почв методом фотобумажной автографии / Л. М. Носова, Ю. Т. Гельцер // Микроорганизмы как компоненты биогеоценоза : сборник статей ; отв. ред. Е. Н. Мишустин. - М. : Наука, 1984. - С. 153-156.

70. Определитель растений Бурятии / О. А. Аненхонов, Т. Д. Пыхалова, К. И. Осипов [и др.] / под ред. О. А. Аненхонова. - Улан-Удэ : Ин-т общ. и эксперим. биологии СО РАН, 2001. - 672 с.

71. Орлов Д. С. Химия почв : учебник / Д. С. Орлов. - 2-е изд., перераб. и доп. - М. : Изд-во МГУ, 1992. - 400 с.

72. Осипов Г. А. Способ определения родового (видового) состава ассоциации микроорганизмов / Патент Российской Федерации № 2086642, МПК С^ 1/00, С^ 1/20, СВД 1/04 ; патентообладатель: Осипов Г. А. - Заявка № 93057595/13, заявл. 24.12.1993 ; опубл. 10.08.1997. - 7 с.

73. Панкова Е. И. Сопоставление каштановых почв Центральной Азии с их аналогами в других почвенно-географических провинциях сухостепной зоны суббореального пояса Евразии / Е. И. Панкова, Г. И. Черноусенко // Аридные экосистемы. - 2018. - Т. 24, № 2 (75). - С. 13-22.

74. Першина Е. В. Изучение структуры микробного сообщества засоленных почв с использованием высокопроизводительного секвенирования / Е. В. Першина, Г. С. Тамазян, А. С. Дольник [и др.] // Экологическая генетика. -2012. - Т. X, № 2. - С. 32-39.

75. Першина Е. В. Сравнительный анализ микробиомов природных и антропогенно-нарушенных почв северо-западного Казахстана / Е. В. Першина, Е. А. Иванова, А. Г. Нагиева [и др.] // Почвоведение. - 2016. - № 6. - С. 720-732.

76. Плеханова Л. Н. Мониторинг целлюлазной активности почв как биологического индикатора восстановления залежей степного Зауралья после введения заповедного режима / Л. Н. Плеханова, А. В. Потапова (Прохорова) // Вестник Тамбовского университета. Серия: Естественные и технические науки. -2014. - Т. 19, вып. 5. - С. 1335-1339.

77. Пономарева В. В. Методические указания по определению содержания и состава гумуса в почвах (минеральных и торфяных) / сост. В. В. Пономарева, Т. А. Плотникова. - Л. : [б. и.], 1975. - 106 с.

78. Почвоведение / Л. Н. Александрова, И. П. Гречин, И. С. Кауричев [и др.] ; под. ред. И. С. Кауричева, И. П. Гречина. - М. : Колос, 1969. - 543 с. -(Учебники и учебные пособия для высших сельскохозяйственных учебных заведений).

79. Почвы Баргузинской котловины / Т. И. Азьмука, В. К. Бахнов, В. И. Волковинцер [и др.] ; отв. ред. С. С. Трофимов. - Новосибирск : Наука. Сибирское отделение, 1983. - 270 с.

80. Практикум по агрохимии : учебное пособие / В. Г. Минеев, В. Г. Сычев, О. А. Амельянчик [и др.] ; под ред. В. Г. Минеева. - 2-е изд., перераб. и доп. - М. : Изд-во Моск. ун-та, 2001. - 689 с.

81. Прасолов Л. И. Южное Забайкалье: почвенно-географический очерк / Л. И. Прасолов. - Ленинград : [б. и.], 1927. - 444 с. - (Серия Бурят-Монгольская).

82. Рещиков М. А. Степи Западного Забайкалья / М. А. Рещиков. - М. : Изд-во Акад. наук СССР, 1961. - 173 с. - (Труды Восточно-Сибирского филиала АН СССР. Сибирское отделение. Серия биологическая. Вып. 34).

83. Родин Л. Е. Методические указания к изучению динамики биологического круговорота фитоценозах / Л. Е. Родин, Н. П. Ремезов, Н. И. Базилевич. - Л. : Наука. Ленинградское отделение, 1968. - 145 с.

84. Розенцвет О. А. Липидные биомаркеры в экологической оценке почвенной биоты: анализ жирных кислот / О. А. Розенцвет, Е. В. Федосеева,

B. А. Терехова // Успехи современной биологии. - 2019. - Т. 139, № 2. - С. 161177.

85. Салихов Т. К. Численность микроорганизмов в почвах экосистем северного Казахстана / Т. К. Салихов, Т. С. Салихова, С. З. Елюбаев, А. К. Муканова // Биосферное хозяйство: теория и практика. - 2023. - № 2 (55). -

C. 104-113.

86. Семенов М. В. Биомасса и таксономическая структура микробных сообществ в почвах правобережья р. Оки / М. В. Семенов, Н. А. Манучарова, Г. С. Краснов [и др.] // Почвоведение. - 2019. - № 8. - С. 974-985.

87. Семенов М. В. Распределение метаболически активных представителей прокариот (архей и бактерий) по профилям чернозема и бурой полупустынной почвы / М. В. Семенов, Н. А. Манучарова, А. Л. Степанов // Почвоведение. -2016. - № 2. - С. 239-248.

88. Сергалиев Н. Х. Применение нового метода очистки ДНК микробиоты каштановых почв Западно-Казахстанской области для метагеномного анализа / Н. Х. Сергалиев, М. Г. Какишев, А. Т. Жиенгалиев [и др.] // Почвоведение. -2015. - № 4. - С. 479-485.

89. Стахурлова Л. Д. Биологическая активность как индикатор плодородия черноземов в различных биоценозах / Л. Д. Стахурлова, И. Д. Свистова, Д. И. Щеглов // Почвоведение. - 2007. - № 6. - С. 769-774.

90. Сыдыкбекова Р. К. Численность бактерий в подзональных почвах равнинной территории Казахстана / Р. К. Сыдыкбекова, Т. Д. Мукашева, М. Т. Каргаева [и др.] // Вестник КазНУ. Серия экологическая. - 2011. -№ 3 (32). - С. 19-24.

91. Теппер Е. З. Микроорганизмы рода ЫосагШа и разложение гумуса / Е. З. Теппер // Агрохимия. - 1981. - № 5. - С. 156-157.

92. Титова В. И. Методы оценки функционирования микробоценоза почвы, участвующего в трансформации органического вещества : научно-методическое

пособие / В. И. Титова, А. В. Козлов. - Нижний Новгород : Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия, 2012. - 64 с.

93. Убугунов Л. Л. Особенности гумусного состояния неорошаемых и орошаемых каштановых почв Бурятской АССР / Л. Л. Убугунов // Почвоведение. - 1985. - № 10. - С. 40-48.

94. Убугунов Л. Л. Плодородие почв агроландшафтов Бурятии / Л. Л. Убугунов, А. И. Куликов, В. И. Убугунова [и др.]. - Улан-Удэ : Бурятская государственная сельскохозяйственная академия им. В.Р. Филиппова, 2009. -177 с.

95. Убугунов Л. Л. Почвенный покров Бурятии как базовый компонент природных ресурсов Байкальского региона / Л. Л. Убугунов, Б. Б. Ральдин,

B. И. Убугунова. - Улан-Удэ : Изд-во БНЦ СО РАН, 2002. - 53 с.

96. Убугунов Л. Л. Почвы Бурятии: разнообразие, систематика и классификация / Л. Л. Убугунов, В. И. Убугунова, Н. Б. Бадмаев [и др.] // Вестник Бурятской государственной сельскохозяйственной академии им. В.Р. Филиппова. - 2012. - № 2 (27). - С. 45-52.

97. Убугунов Л. Л. Разнообразие и закономерности пространственной организации почв бассейна оз. Байкал / Л. Л. Убугунов, А. Б. Гынинова, И. А. Белозерцева [и др.] // Успехи современного естествознания. - 2018. - № 5. -

C. 142-151.

98. Убугунов Л. Л. Разнообразие почв Иволгинской котловины: эколого-агрохимические аспекты / Л. Л. Убугунов, И. Н. Лаврентьева, В. И. Убугунова, М. Г. Меркушева. - Улан-Удэ : БГСХА, 2000. - 208 с.

99. Уфимцева К. А. Степные и лесостепные почвы Бурятской АССР / К. А. Уфимцева // Степные и лесостепные почвы Бурятской АССР и их агропроизводственная характеристика / И. Г. Важенин, В. Н. Дерюгина, Н. А. Ногина, К. А. Уфимцева ; отв. ред. Е. Н. Иванова. - М. : Изд-во Акад. наук СССР, 1960. - С. 3-25.

100. Фадеева Н. В. Селенгинское среднегорье : природные условия и районирование / Н. В. Фадеева. - Улан-Удэ : Бурятское книжное издательство, 1963. - 169 с.

101. Флора Центральной Сибири : в 2 т. / В. В. Бусик, Н. С. Водопьянова, М. М. Иванова [и др.] ; под ред. Л. И. Малышева, Г. А. Пешковой. -Новосибирск : Наука. Сибирское отделение, 1979. - Т. 1 : Оноклеевые -Камнеломковые. - 536 с. ; Т. II : Розоцветные - Астровые. - 1048 с.

102. Хазиев Ф. Х. Методы почвенной энзимологии / Ф. Х. Хазиев. - М. : Наука, 2005. - 252 с.

103. Хамова О. Ф. Биологическая активность орошаемой лугово-черноземной почвы и продуктивность сои в зависимости от условий минерального питания в южной лесостепи Западной Сибири / О. Ф. Хамова, В. С. Бойко, А. Ю. Тимохин, Н. Н. Шулико // Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур. - 2018. - Вып. 4 (176). - С. 96-100.

104. Хасанова Р. Ф. Оценка экологического состояния почв степных агроэкосистем по показателям биологической активности / Р. Ф. Хасанова, Я. Т. Суюндуков, И. Н. Семенова // Вестник Нижневартовского государственного университета. - 2017. - № 1. - С. 103-108.

105. Цыбжитов Ц. Х. Почвы бассейна озера Байкал : в 3 т. / Ц. Х. Цыбжитов, А. Ц. Цыбжитов. - Улан-Удэ : Изд-во БНЦ СО РАН, 2000. - Т. 2 : Генезис, география и классификация степных и лесостепных почв / Ц. Х. Цыбжитов, А. Ц. Цыбжитов. - 165 с.

106. Цыбжитов Ц. Х. Почвы бассейна озера Байкал : в 3 т. / Ц. Х. Цыбжитов, Ц. Ц. Цыбикдоржиев, А. Ц. Цыбжитов. - Новосибирск : Наука. Сибирское предприятие РАН, 1999. - Т. 1 : Генезис, география и классификация каштановых почв. - 128 с.

107. Чернов Т. И. Динамика микробных сообществ почвы в различных диапазонах времени (обзор) / Т. И. Чернов, А. Д. Железова // Почвоведение. -2020. - № 5. - С. 590-600.

108. Чернов Т. И. Метагеномный анализ прокариотных сообществ профилей почв европейской части России : автореф. ... дис. канд. биол. наук : 03.02.03 / Чернов Тимофей Иванович. - М., 2016. - 23 с.

109. Чернов Т. И. Методология микробиологических исследований почвы в рамках проекта «Микробиом России» / Т. И. Чернов, В. А. Холодов, Б. М. Когут, А. Л. Иванов // Бюллетень Почвенного института им. В.В. Докучаева. - 2017а. -Вып. 87. - С. 100-113.

110. Чернов Т. И. Профильный анализ микробиомов сопряженных почв солонцового комплекса Прикаспийской низменности / Т. И. Чернов, М. П. Лебедева, А. К. Тхакахова, О. В. Кутовая // Почвоведение. - 2017б. - № 1. - С. 71-76.

111. Чернов Т. И. Сезонная динамика почвенного микробиома многолетнего агрохимического опыта на черноземах Каменной Степи / Т. И. Чернов, А. К. Тхакахова, Е. А. Иванова [и др.] // Почвоведение. - 2015. - № 12. - С. 14831488.

112. Чернышева Е. В. Микробная биомасса и ферментативная активность целинных и пахотных почв как показатели физиологического состояния микробных сообществ / Е. В. Чернышева, К. С. Дущанова, Т. Э. Хомутова, А. В. Борисов // Успехи современной биологии. - 2023. - Т. 143, № 4. - С. 403416.

113. Чимитдоржиева Г. Д. Биологическая активность каштановых почв бассейна озера Байкал при применении на них отходов различных производств / Г. Д. Чимитдоржиева, Р. А. Егорова, Ц. Д.-Ц. Корсунова. - Улан-Удэ : Изд-во БНЦ СО РАН, 2001. - 158 с.

114. Чимитдоржиева Г. Д. Гуминовые кислоты каштановых почв Забайкалья / Г. Д. Чимитдоржиева, Э. В. Цыбикова // Почвоведение. - 2005. -№ 4. - С. 427-429.

115. Чимитдоржиева Г. Д. Гумус холодных почв: экологические аспекты / Г. Д. Чимитдоржиева. - Новосибирск : Наука. Сибирское отделение, 1990. - 144 с.

116. Чимитдоржиева Г. Д. Органическое вещество холодных почв / Г. Д. Чимитдоржиева. - Улан-Удэ : Изд-во БНЦ СО РАН, 2016. - 388 с.

117. Чимитдоржиева Г. Д. Своеобразие каштановых почв южных котловин Сибири / Г. Д. Чимитдоржиева, Э. В. Цыбикова // Аридные экосистемы. - 2018. -Т. 24, № 4 (77). - С. 29-35.

118. Чимитдоржиева Г. Д. Структура гуминовых кислот сухостепных почв Забайкалья / Г. Д. Чимитдоржиева, Э. О. Чимитдоржиева // Успехи современного естествознания. - 2021. - № 12. - С. 89-94.

119. Чимитдоржиева Э. О. Динамика углерода микробной биомассы целинных степных и сухостепных почв Забайкалья / Э. О. Чимитдоржиева, Г. Д. Чимитдоржиева // Вестник Костромского государственного университета им. Н.А. Некрасова. - 2012. - № 3. - С. 16-20.

120. Чирак Е. Л. Таксономическая структура микробных сообществ в почвах различных типов по данным высокопроизводительного секвенирования библиотек гена ^s-рРНК / Е. Л. Чирак, Е. В. Першина, А. С. Дольник [и др.] // Сельскохозяйственная биология. - 2013. - Т. 48, № 3. - С. 100-109.

121. Шалыт М. С. Методика изучения морфологии и экологии подземной части отдельных растений и растительных сообществ / М. С. Шалыт // Полевая геоботаника ; под общ. ред. Е. М. Лавренко, А. А. Корчагина. - М., Л. : Изд-во Акад. наук СССР. Ленинградское отделение, 1960. - Т. II. - С. 369-447.

122. Шишов Л. Л. Классификация и диагностика почв России / Л. Л. Шишов, В. Д. Тонконогов, И. И. Лебедева, М. И. Герасимова. - Смоленск : Ойкумена, 2004. - 341 с.

123. Щелчкова М. В. Микробиологическая характеристика мерзлотных степных и луговых почв Центральной Якутии / М. В. Щелчкова, Л. К. Стручкова // Вестник Северо-Восточного федерального университета им. М.К. Аммосова. - 2016. - № 2 (52). - С. 41-52.

124. Экологический атлас бассейна озера Байкал / А. Д. Абалаков, В. К. Аргучинцев, А. В. Аргучинцева [и др.]. - Иркутск : Изд-во Института географии им. В.Б. Сочавы СО РАН, 2015. - 145 с.

125. 16S metagenomics of steppe soils in Western Transbaikalia. Accession: PRJNA833541. ID: 833541 // National Library of Medicine. National Center for Biotechnology Information : website ; BioProject : a collection of biological data. Genbank. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/bioproject/PRJNA833541 (access data: 16.02.2023).

126. Aislabie J. M. Dominant bacteria in soils of Marble Point and Wright Valley, Victoria Land, Antarctica / J. M. Aislabie, K. L. Chhour, D. J. Saul [et al.] // Soil Biology and Biochemistry. - 2006. - Vol. 38, № 10. - P. 3041-3056.

127. Albuquerque L. Gaiella occulta gen. nov., sp. nov., a novel representative of a deep branching phylogenetic lineage within the class Actinobacteria and proposal of Gaiellaceae fam. nov. and Gaiellales ord. nov. / L. Albuquerque, L. Franca, F. A. Rainey [et al.] // Systematic and Applied Microbiology. - 2011. - Vol. 34, is. 8. -P. 595-599.

128. Alzohairy A. M. BioEdit: An important software for molecular biology / A. M. Alzohairy // GERF Bulletin of Biosciences. - 2011. - Vol. 2., is. 1. - P. 60-61. -Rew.: BioEdit. Author: T. Hall (1999), IBiS Biosciences, Carlsbad, Ca ; License: Freeware Copyright 1991-2007 T. Hall.

129. Angst G. The fate of cutin and suberin of decaying leaves, needles, roots -inference of the initial decomposition of bound fatty acids / G. Angst, L. Heinrich, I. Kögel--Knabner, C. W. Müller // Organic Geochemistry. - 2016a. - Vol. 95. - P. 8192.

130. Angst G. Tracing the sources and spatial distribution of organic carbon in subsoils using a multi-biomarker approach / G. Angst, S. John, C. W. Müller [et al.] // Scientific Reports. - 2016b. - Vol. 6. - Article number 29478. - 12 p. -URL: https://www.nature.com/articles/srep29478.pdf (access data: 10.05.2022).

131. ANI Calculator : CJ Bioscience's online Average Nucleotide Identity // EZBioCloud : web-platform for microbiology and infectious disease research. -URL: https://www.ezbiocloud.net/tools/ani (access data: 16.02.2023).

132. Ardley J. K. Microvirga lupini sp. nov., Microvirga lotononidis sp. nov. and Microvirga zambiensis sp. nov. are alphaproteobacterial root-nodule bacteria that specifically nodulate and fix nitrogen with geographically and taxonomically separate legume hosts / J. K. Ardley, M. A. Parker, S. E. De Meyer [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2012. - Vol. 62. - P. 2579-2588.

133. Arocha-Garza H. F. High diversity and suggested endemicity of culturable Actinobacteria in an extremely oligotrophic desert oasis / H. F. Arocha-Garza,

R. C.-D. Castillo, L. E. Eguiarte [et al.] // PeerJ. - 2017. - Vol. 5. - Article number e3247. - 21 p. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5417069/ pdf/peerj-05-3247.pdf (access data: 08.05.2022).

134. Asgarani E. Radio-resistance in psychrotrophic Kocuria sp. ASB 107 isolated from Ab-e-Siah radioactive spring / E. Asgarani, M. R. Soudi, F. Borzooee, R. Dabbagh // Journal of Environmental Radioactivity. - 2012. - Vol. 113. - P. 171176.

135. Atanassova I. Free Lipid Biomarkers in Anthropogenic Soils / I. Atanassova, M. Harizanova, M. Banov // Soil Health Restoration and Management ; ed. by R. S. Meena. - Ch. 9. - Singapore : Springer, 2020. - P. 321-355.

136. Avram O. M1CR0B1AL1Z3R - a user-friendly web server for the analysis of large-scale microbial genomics data / O. Avram, D. Rapoport, S. Portugez, T. Pupko // Nucleic Acids Research. - 2019. - Vol. 47 (W1). - P. W88-W92.

137. Baker K. L. Environmental and spatial characterisation of bacterial community composition in soil to inform sampling strategies / K. L. Baker, S. Langenheder, G. W. Nicol [et al.] // Soil Biology and Biochemistry. - 2009. - Vol. 41, is. 11. - P. 2292-2298.

138. Bankevich A SPAdes: A New Genome Assembly Algorithm and Its Applications to Single-Cell Sequencing / A. Bankevich, S. Nurk, D. Antipov [et al.] // Journal of Computational Biology. - 2012. - Vol. 19, № 5. - P. 455-477.

139. Bao Y. Important ecophysiological roles of non-dominant Actinobacteria in plant residue decomposition, especially in less fertile soils / Y. Bao, J. Dolfing, Z. Guo [et al.] // Microbiome. - 2021. - Vol. 9. - Article number 84. - 17 p. -URL: https://microbiomejournal.biomedcentral.com/counter/pdf/10.1186/s40168-021-01032-x.pdf (access data: 20.04.2022).

140. Bardgett R. The Biology of Soil. A Community and Ecosystem Approach / R. Bardgett. - New York : Oxford University Press, 2005. - 242 p. - (Biology of Habitats).

141. Bartelme R. P. Influence of Substrate Concentration on the Culturability of Heterotrophic Soil Microbes Isolated by High-Throughput Dilution-to-Extinction

Cultivation / R. P. Bartelme, J. M. Custer, C. L. Dupont [et al.] // mSphere. - 2020. -Vol. 5, is. 1. - Article number e00024-20. - 15 p. -URL: https://journals.asm.Org/doi/10.1128/msphere.00024-20?url_ver=Z39.88-2003&rfr_id=ori%3Arid%3Acrossref.org&rfr_dat=cr_pub++0pubmed (access data: 20.12.2023).

142. Barta J. Microbial communities with distinct denitrification potential in spruce and beech soils differing in nitrate leaching / J. Barta, K. Tahovska, H. Santrûckova, F. Oulehle // Scientific Reports. - 2017. - Vol. 7, is. 1. - Article number 9738. - 15 p. - URL: https://www.nature.com/articles/s41598-017-08554-1.pdf (access data: 01.05.2022).

143. Bates S. T. Examining the global distribution of dominant archaeal populations in soil / S. T. Bates, D. Berg-Lyons, J. G. Caporaso [et al.] // The ISME Journal. - 2011. - Vol. 5. - P. 908-917.

144. Battistuzzi F. U. A Major Clade of Prokaryotes with Ancient Adaptations to Life on Land / F. U. Battistuzzi, S. B. Hedges // Molecular Biology and Evolution. -2009. - Vol. 26, is. 2. - P. 335-343.

145. Bayranvand M. Composition of soil bacterial and fungal communities in relation to vegetation composition and soil characteristics along an altitudinal gradient / M. Bayranvand, M. Akbarinia, G. S. Jouzani [et al.] // FEMS Microbiology Ecology. - 2021. - Vol. 97, is. 1. - Article number fiaa201. - 16 p. -URL: https://academic.oup.com/femsec/article-pdf/97/1/fiaa201/35434298/fiaa201.pdf (access data: 15.03.2023).

146. Belov A. A. Soil bacterial communities of Sahara and Gibson deserts: Physiological and taxonomical characteristics / A. A. Belov, V. S. Cheptsov, E. A. Vorobyova // AIMS Microbiology. - 2018. - Vol. 4, is. 4. - P. 685-710.

147. Belov A. A. Stress-Tolerance and Taxonomy of Culturable Bacterial Communities Isolated from a Central Mojave Desert Soil Sample / A. A. Belov, V. S. Cheptsov, E. A. Vorobyova [et al.] // Geosciences. - 2019. - V. 9, is. 4. - Article number 166. - 35 p. - URL: https://www.mdpi.com/2076-3263/9/4/166/ pdf?version=1554899331 (access data: 20.01.2023).

148. Blume E. Surface and subsurface microbial biomass, community structure and metabolic activity as a function of soil depth and season / E. Blume, M. Bischoff, J. M. Reichert [et al.] // Applied Soil Ecology. - 2002. - Vol. 20. - P. 171-181.

149. Boylen C. W. Survival of Arthrobacter crystallopoietes During Prolonged Periods of Extreme Desiccation / C. W. Boylen // Journal of Bacteriology. - 1973. -Vol. 113, № 1. - P. 33-37.

150. Brewer T. E. Ecological and genomic attributes of novel bacterial taxa that thrive in subsurface soil horizons / T. E. Brewer, E. L. Aronson, K. Arogyaswamy [et al.] // mBio. - 2019. - Vol. 10, is. 5. - Article number e01318-19. - 14 p. -URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6775450/pdf/mBio.01318-19.pdf (access data: 10.01.2022).

151. Busse H.-J. Review of the taxonomy of the genus Arthrobacter, emendation of the genus Arthrobacter sensu lato, proposal to reclassify selected species of the genus Arthrobacter in the novel genera Glutamicibacter gen. nov., Paeniglutamicibacter gen. nov., Pseudoglutamicibacter gen. nov., Paenarthrobacter gen. nov. and Pseudarthrobacter gen. nov., and emended description of Arthrobacter roseus / H.-J. Busse // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2016. - Vol. 66, is. 1. - P. 9-37.

152. Camacho C. BLAST+: architecture and applications / C. Camacho, G. Coulouris, V. Avagyan [et al.] // BMC Bioinformatics. - 2009. - Vol. 10. - Article number 421. - 9 p. - URL: https://bmcbioinformatics.biomedcentral.com/counter/pdf/ 10.1186/1471-2105-10-421.pdf (access data: 01.04.2022).

153. Cappuccino J. G. Microbiology: a laboratory manual / J. G. Cappuccino, N. Sherman. - 6th Ed., ill. - San Francisco : Benjamin Cummings Pearson Education, 2002. - 491 p.

154. Carro L. Micromonospora luteifusca sp. nov. isolated from cultivated Pisum sativum / L. Carro, R. Riesco, C. Sproer, M. E. Trujillo // Systematic and Applied Microbiology. - 2016. - Vol. 39, is. 4. - P. 237-242.

155. Chao A. Nonparametric Estimation of the Number of Classes in a Population / A. Chao // Scandinavian Journal of Statistics. - 1984. - Vol. 11. -P. 265-270.

156. Chen Y. Life-history strategies of soil microbial communities in an arid ecosystem / Y. Chen, J. W. Neilson, P. Kushwaha [et al.] // ISME Journal. - 2021. -Vol. 15, is. 3. - P. 649-657.

157. Chen Y. SOAPnuke: a MapReduce Acceleration-supported Software for integrated Quality Control and Preprocessing of High-Throughput Sequencing Data / Yu. Chen, Y. Chen, C. Shi [et al.] // GigaScience. - 2018. - Vol. 7, is. 1. -Article number gix119. - 6 p. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/ PMC5788068/pdf/gix120.pdf (access data: 10.05.2019).

158. Chenu C. Interactions between Microorganisms and Soil Particles: An Overview / C. Chenu, G. Stotzky // Interactions between Soil Particles and Microorganisms: Impact on the Terrestrial Ecosystems / ed. by P. M. Huang, J.-M. Bollag, N. Senesi. - Weinheim : Wiley, 2002. - P. 3-40. - (IUPAC Series on Analytical and Physical Chemistry of Environmental Systems. Vol. 8).

159. Cockell C. S. Actinobacteria: An Ancient Phylum Active in Volcanic Rock Weathering / C. S. Cockell, L. C. Kelly, V. Marteinsson // Geomicrobiology Journal. -2013. - Vol. 30, is. 8. - P. 706-720.

160. Collins M. D. Distribution of Menaquinones in Actinomycetes and Corynebacteria / M. D. Collins, T. Pirouz, M. Goodfellow, D. E. Minnikin // Journal of General Microbiology. - 1977. - Vol. 100. - P. 221-230.

161. Collins M. D. Transfer of Pimelobacter tumescens to Terrabacter gen. nov. as Terrabacter tumescens comb. nov. and of Pimelobacter jensenii to Nocardioides as Nocardioides jensenii comb. mov / M. D. Collins, M. Dorsch, E. Stackebrandt // International Journal of Systematic Bacteriology. - 1989. - Vol. 39, № 1. - P. 1-6.

162. Collwell R. K. Estimating terrestrial biodiversity through extrapolation / R. K. Collwell, J. A. Coddington // Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. - 1994. - Vol. 29, is. 345 (1311). - P. 101118.

163. Connon S. A. Bacterial diversity in hyperarid Atacama Desert soils / S. A. Connon, E. D. Lester, H. S. Shafaat [et al.] // Journal of Geophysical Research: Biogeosciences. - 2007. - Vol. 112, is. G4. - Article number G04S17. - 9 p. -

URL: https://agupubs.pericles-prod.literatumonline.com/doi/epdf710.1029/2006JG000311 (access data: 10.05.2022).

164. Crits-Christoph A. Colonization patterns of soil microbial communities in the Atacama Desert / A. Crits-Christoph, C. K. Robinson, T. Barnum [et al.] // Microbiome. - 2013. - Vol. 1. - Article number 28. - 13 p. -URL: https://microbiomejournal.biomedcentral.com/counter/pdf/10.1186/2049-2618-1-28.pdf (access data: 10.05.2022).

165. da Rocha U. N. Cultivation of hitherto-uncultured bacteria belonging to the Verrucomicrobia subdivision 1 from the potato (Solanum tuberosum L.) rhizosphere / U. N. da Rocha, F. D. Andreote, J. L. de Azevedo [et al.] // Journal of Soils and Sediments. - 2010. - Vol. 10. - P. 326-339.

166. Daims H. Complete nitrification by Nitrospira bacteria / H. Daims, E. V. Lebedeva, P. Pjevac [et al.] // Nature. - 2015. - Vol. 528 (7583). - P. 504-509.

167. Davis K. E. R. Acidobacteria, Rubrobacteridae and Chloroflexi are abundant among very slow-growing and mini-colony-forming soil bacteria / K. E. R. Davis, P. Sangwan, P. H. Janssen // Environmental Microbiology. - 2011. -Vol. 13, is. 3. - P. 798-805.

168. DeBruyn J. M. Global Biogeography and Quantitative Seasonal Dynamics of Gemmatimonadetes in Soil / J. M. DeBruyn, L. T. Nixon, M. N. Fawaz [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. - 2011. - Vol. 77, № 17. - P. 6295-6300.

169. Dechesne A. A novel method for characterizing the microscale 3D spatial distribution of bacteria in soil / A. Dechesne, C. Pallud, D. Debouzie [et al.] // Soil Biology and Biochemistry. - 2003. - Vol. 35. - P. 1537-1546.

170. Dechesne A. Biodegradation in a Partially Saturated Sand Matrix: Compounding Effects of Water Content, Bacterial Spatial Distribution, and Motility / A. Dechesne, M. Owsianiak, A. Bazire [et al.] // Environmental Science and Technology. - 2010. - Vol. 44, is. 7. - P. 2386-2392.

171. Delgado-Baquerizo M. A global atlas of the dominant bacteria found in soil / M. Delgado-Baquerizo, A. Oliverio, T. E. Brewer [et al.] // Science. - 2018a. -Vol. 359 (6373). - P. 320-325.

172. Delgado-Baquerizo M. Ecological drivers of soil microbial diversity and soil biological networks in the Southern Hemisphere / M. Delgado-Baquerizo, F. Reith, P. G. Dennis [et al.] // Ecology. - 2018b. - Vol. 99, is. 3. - P. 583-596.

173. Delgado-Baquerizo M. Soil microbial communities drive the resistance of ecosystem multifunctionality to global change in drylands across the globe / M. Delgado-Baquerizo, D. J. Eldridge, V. Ochoa [et al.] // Ecology Letters. - 2017. -Vol. 20. - P. 1295-1305.

174. DeLong E. F. Archaea in coastal marine environments / E. F. DeLong // Proceedings of the National Academy of Sciences USA. - 1992. - Vol. 89. - P. 56855689.

175. Ebrahimi-Zarandi M. Fostering plant resilience to drought with Actinobacteria: Unveiling perennial allies in drought stress tolerance / M. Ebrahimi-Zarandi, H. Etesami, B. Glick // Plant Stress. - 2023. - Vol. 10. - Article number 100242. - 18 p. - URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/ S2667064X23001094/pdfft?md5=58669f5f2cfd4025bb0aa5314dd06308&pid=1-s2.0-S2667064X23001094-main.pdf (access data: 01.10.2023).

176. Edgar R. C. Accuracy of taxonomy prediction for 16S rRNA and fungal ITS sequences / R. C. Edgar // PeerJ. - 2018. - Vol. 6. - Article number e4652. - 29 p. -URL: https://peerj.com/articles/4652.pdf (access data: 19.04.2022).

177. Edgar R. C. Search and clustering orders of magnitude faster than BLAST / R. C. Edgar // Bioinformatics. - 2010. - Vol. 26, № 19. - P. 2460-2461.

178. Edgar R. C. UPARSE: highly accurate OTU sequences from microbial amplicon reads / R. C. Edgar // Nature Methods. - 2013. - Vol. 10, is. 10. - P. 996-998.

179. Eilers K. G. Digging deeper to find unique microbial communities: The strong effect of depth on the structure of bacterial and archaeal communities in soil / K. G. Eilers, S. Debenport, S. Anderson, N. Fierer // Soil Biology and Biochemistry. -2012. - Vol. 50. - P. 58-65.

180. Eisenhauer N. Plant diversity effects on soil microorganisms support the singular hypothesis / N. Eisenhauer, H. BeBler, C. Engels [et al.] // Ecology. -2010. - Vol. 91, is. 2. - P. 485-496.

181. England L. S. Bacterial survival in soil: effect of clays and protozoa / L. S. England, H. Lee, J. T. Trevors // Soil Biology and Biochemistry. - 1993. -Vol. 25, № 5. - P. 525-532.

182. Eo J. Plant-specific effects of sunn hemp (Crotalaria juncea) and sudex (Sorghum bicolor x Sorghum bicolor var. sudanense) on the abundance and composition of soil microbial community / J. Eo, K.-Ch. Park, M.-H. Kim // Agriculture, Ecosystems and Environment. - 2015. - Vol. 213. - P. 86-93.

183. Etemadifar Z. UV-resistant bacteria with multiple-stress tolerance isolated from desert areas in Iran / Z. Etemadifar, M. Gholami, P. Derikvand // Geomicrobiology Journal. - 2016. - Vol. 33, is. 7. - 7 p. - URL: https://www.tandfonline.com/doi/epdf/ 10.1080/01490451.2015.1063025 (access data: 16.02.2023).

184. Evtushenko L. I. Glycomyces tenuis sp. nov. / L. I. Evtushenko,

5. D. Taptykova, V. N. Akimov [et al.] // International Journal of Systematic Bacteriology. - 1991. - Vol. 41, № 1. - P. 154-157.

185. Fadrosh D. W. An improved dual-indexing approach for multiplexed 16S rRNA gene sequencing on the Illumina MiSeq platform / D. W. Fadros, B. Ma, P. Gajer [et al.] // Microbiome. - 2014. - Vol. 2, is. 1. - Article number 6. - 7 p. -URL: https://microbiomejournal.biomedcentral.com/counter/pdf/10.1186/2049-2618-2-

6.pdf (access data: 01.03.2022).

186. Fang J. Lipid biomarkers in Geomicrobiology: Analytical Techniques and Applications / J. Fang, S. Dasgupta, L. Zhang, W. Zhao // Analytical Geomicrobiology : A Handbook of Instrumental Techniques ; ed. by J. P. L. Kenney, H. Veeramani, D. S. Alessi. - Cambridge : Cambridge University Press, 2019. - P. 341-359.

187. Fang X. M. Glycomyces paridis sp. nov., isolated from the medicinal plant Paris polyphylla / X. M. Fang, J. L. Bai, J. Su [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2018. - Vol. 68. - P. 1578-1583.

188. Felsenstein J. Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap / J. Felsenstein // Evolution. - 1985. - Vol. 39, is. 4. - P. 783-791.

189. Felsenstein J. Evolutionary Trees from DNA Sequences: A Maximum Likelihood Approach / J. Felsenstein // Journal of Molecular Biology. - 1981. -Vol. 17. - P. 368-376.

190. Ferreira A. C. Characterization and radiation resistance of new isolates of Rubrobacter radiotolerans and Rubrobacter xylanophilus / A. C. Ferreira, M. F. Nobre, E. Moore [et al.] // Extremophiles. - 1999. - Vol. 3, № 4. - P. 235-238.

191. Fierer N. Comparative metagenomic, phylogenetic and physiological analyses of soil microbial communities across nitrogen gradients / N. Fierer, C. L. Lauber, K. S. Ramirez [et al.] // ISME Journal. - 2012. - Vol. 6, is. 5. - P. 10071017.

192. Fierer N. Global patterns in belowground communities / N. Fierer, M. S. Strickland, D. Liptzin [et al.] // Ecology Letters. - 2009. - Vol. 12. - P. 12381249.

193. Fierer N. The diversity and biogeography of soil bacterial communities / N. Fierer, R. B. Jackson // Proceedings of the National Academy of Sciences USA. -2006. - Vol. 103, № 3. - P. 626-631.

194. Fierer N. Toward an ecological classification of soil bacteria / N. Fierer, M. A. Bradford, R. B. Jackson // Ecology. - 2007. - Vol. 88, is. 6. - P. 1354-1364.

195. Fierer N. Variations in microbial community composition through two soil depth profiles / N. Fierer, J. P. Schimel, P. A. Holden // Soil Biology and Biochemistry. - 2003. - Vol. 35. - P. 167-176.

196. Fischer Z. Intensity of organic matter decomposition in various landscapes of Caucasus (Daghestan) / Z. Fischer, M. Niewinna, I. Yasulbutaeva // Polish Journal of Ecology. - 2006. - Vol. 54, is. 1. - P. 105-116.

197. Fitch W. M. Toward defining the course of evolution: minimum change for a specific tree topology / W. M. Fitch // Systematic Zoology. - 1971. - Vol. 20, № 4. - P. 406-416.

198. Frey B. Weathering-associated bacteria from the Damma Glacier Forefield: physiological capabilities and impact on granite dissolution / B. Frey, S. R. Rieder, I. Brunner [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. - 2010. - Vol. 76, № 14. - P. 4788-4796.

199. Frommer W. Zur Systematik der Actinomycin bildenden Streptomyceten / W. Frommer // Archiv für Mikrobiologie. - 1959. - Vol. 32, is. 2. - S. 187-206.

200. Gao Y. Responses of the maize rhizosphere soil environment to drought-flood abrupt alternation stress/ Y. Gao, Y. Zhao, P. Li, X. Qi // Frontiers in Microbiology. - 2023. - Vol. 14. - Article number 1295376. - 12 p. -URL: https: //www.frontiersin.org/j ournals/microbiology/articles/10.33 89/fmicb .2023.1 295376/pdf?isPublishedV2=false (access data: 20.12.2023).

201. Genus Glycomyces // LPSN - List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature. - URL: https://lpsn.dsmz.de/genus/glycomyces (access data: 30.06.2019).

202. Genus Streptomyces // LPSN - List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature. - URL: https://lpsn.dsmz.de/genus/streptomyces (access data: 20.12.2023).

203. GGDC Genome-to-Genome Distance Calculator 3.0 // TYGS: a novel high-throughput platform for state-of-the-art genome-based taxonomy. - Braunschweig : Leibniz Institute DSMZ - German Collection of Microorganisms and Cell Cultures GmbH, 2019. - URL: https://ggdc.dsmz.de/ggdc.php (access data: 16.02.2023).

204. Ghorbani-Nasrabadi R. Distribution of actinomycetes in different soil ecosystems and effect of media composition on extracellular phosphatase activity / R. Ghorbani-Nasrabadi, R. Greiner, H. A. Alikhani [et al.] // Journal of Soil Science and Plant Nutrition. - 2013. - Vol. 13, is. 1. - P. 223-236.

205. Goldfarb K. C. Differential growth responses of soil bacterial taxa to carbon substrates of varying chemical recalcitrance / K. C. Goldfarb, U. Karaoz, C. A. Hanson [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2011. - Vol. 2. - Article number 94. - 10 p. -URL: https: //www.frontiersin.org/j ournals/microbiology/articles/10.33 89/fmicb .2011.0 0094/pdf?isPublishedV2=false (access data: 15.04.2022).

206. Gonzalez C. Halobacterium vallismortis sp. nov., an Amylolytic and carbohydrate-metabolizing, extremely halophilic bacterium / C. Gonzalez, C. Gutierrez, C. Ramirez // Canadian Journal of Microbiology. - 1978. - Vol. 24, is. 6. - P. 710-715.

207. Goodfellow M. Ecology of actinomycetes / M. Goodfellow, S. T. Williams // Annual Review of Microbiology. - 1983. - Vol. 37, is. 1. - P. 189216.

208. Goodfellow M. Rare taxa and dark microbial matter: novel bioactive actinobacteria abound in Atacama Desert soils / M. Goodfellow, I. Nouioui, R. Sanderson [et al.] // Antonie Van Leeuwenhoek. - 2018. - Vol. 111, is. 8. - P. 13151332.

209. Gordon R. E. Nocardia coeliaca, Nocardia autotrophica, and the Nocardin Strain / R. E. Gordon, D. A. Barnett, J. E. Handerhan, C. H.-N. Pang // International Journal of Systematic Bacteriology. - 1974. - Vol. 24, № 1. - P. 54-63.

210. Gu Q. Glycomyces sambucus sp. nov., an endophytic actinomycete isolated from the stem of Sambucus adnate Wall / Q. Gu, W. Zheng, Y. Huang // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2007. - Vol. 57. - P. 19951998.

211. Guan T. W. Glycomyces lacisalsi sp. nov., an actinomycete isolated from a hypersaline habitat / T. W. Guan, P. H. Wang, L. Tian [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2016. - Vol. 66. - P. 53665370.

212. Guo L. Allosalinactinospora lopnorensis gen. nov., sp. nov., a new member of the family Nocardiopsaceae isolated from soil / L. Guo, L. Tuo, X. Habden [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2015. -Vol. 65. - P. 206-213.

213. Hammer 0. PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis / 0. Hammer, D. A. T. Harper, P. D. Ryan // Palaeontologia Electronica. - 2001. - Vol. 4, is. 1. - Article number 4. - 9 p. - URL: https://palaeo-electronica.org/2001_1/past/past.pdf (access data: 16.02.2023).

214. Han X. X. Glycomyces fuscus sp. nov. and Glycomyces albus sp. nov., actinomycetes isolated from a hypersaline habitat / X. X. Han, X. X. Luo, L. L. Zhang // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2014. -Vol. 64. - P. 2437-2441.

215. Hansel C. M. Changes in Bacterial and Archaeal Community Structure and Functional Diversity along a Geochemically Variable Soil Profile / C. M. Hansel, S. Fendorf, P. M. Jardine, C. A. Francis // Applied and Environmental Microbiology. -2008. - Vol. 74, № 5. - P. 1620-1633.

216. Hartmann M. Significant and persistent impact of timber harvesting on soil microbial communities in Northern coniferous forests / M. Hartmann, C. G. Howes, D. Van Insberghe [et al.] // The ISME Journal. - 2012. - Vol. 6. - P. 2199-2218.

217. Hazarika Sh. Actinobacteria / Sh. Hazarika, D. Thakur // Beneficial Microbes in Agro-Ecology. Bacteria and Fungi ; ed. by N. Amaresan, M. S. Kumar, K. Annapurna, K. Kumar, A. Sankaranarayanan. - [S. l.] : Academic Press, 2020. -Ch. 21. - P. 443-476.

218. Hermans S. M. Bacteria as Emerging Indicators of Soil Condition / S. M. Hermans, H. L. Buckley, B. S. Case [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. - 2017. - Vol. 83, is. 1. - Article number e02826-16. - 13 p. -URL: https://journals.asm.org/doi/reader/10.1128/AEM.02826-16 (access data: 16.02.2023).

219. Hollister E. B. Shifts in microbial community structure along an ecological gradient of hypersaline soils and sediments / E. B. Hollister, A. S. Engledow, A. J. M. Hammett [et al.] // The ISME Journal. - 2010. - Vol. 4. - P. 829-838.

220. Holmes A. J. Diverse, yet-to-be-cultured members of the Rubrobacter subdivision of the Actinobacteria are widespread in Australian arid soils / A. J. Holmes, J. Bowyer, M. P. Holley [et al.] // FEMS Microbiology Ecology. - 2000. - Vol. 33, № 2. - P. 111-120.

221. Hu A. Diurnal Temperature Variation and Plants Drive Latitudinal Patterns in Seasonal Dynamics of Soil Microbial Community / A. Hu, Y. Nie, G. Yu [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2019. - Vol. 10. - Article number 674. -URL: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2019.0 0674/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.02.2023).

222. Hu H. Streptomyces qinglanensis sp. nov., isolated from mangrove sediment / H. Hu, H.-P. Lin, Q. Xie [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2012. - Vol. 62, is. 3. - P. 596-600.

223. Huang Y. Arthrobacter scleromae sp. nov. Isolated from Human Clinical Specimens / Y. Huang, N. Zhao, L. He [et al.] // Journal of Clinical Microbiology. -2005. - Vol. 43, № 3. - P. 1451-1455.

224. Ikbal. Multilegume biofertilizer: a dream / Ikbal, N. Passricha, S. K. Saifi [et al.] // Molecular Aspects of Plant Beneficial Microbes in Agriculture ; ed. by V. Sharma, R. Salwan, L. K. T. Al-Ani. - [S. l.] : Academic Press, 2020. -Ch. 3. - P. 35-45.

225. Ivanova E. P. Pseudomonas brassicacearum subsp. neoaurantiaca subsp. nov., orange-pigmented bacteria isolated from soil and the rhizosphere of agricultural plants / E. P. Ivanova, R. Christen, C. Bizet [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2009. - Vol. 59. - P. 2476-2481.

226. Jackson R. B. A global analysis of root distribution for terrestrial biomes / R. B. Jackson, J. Canadell, J. R. Ehleringer [et al.] // Oecologia. - 1996. - Vol. 108. -P. 389-411.

227. Jansen B. Opportunities and limitations related to the application of plant-derived lipid molecular proxies in soil science / B. Jansen, G. L. B. Wiesenberg // Soil. - 2017. - Vol. 3, is. 4. - P. 211-234.

228. Janssen P. H. Identifying the Dominant Soil Bacterial Taxa in Libraries of 16S rRNA and 16S rRNA Genes / P. H. Janssen // Applied and Environmental Microbiology. - 2006. - Vol. 72, № 3. - P. 1719-1728.

229. Jurelevicius D. Distribution of alkane-degrading bacterial communities in soils from King George Island, Maritime Antarctic / D. Jurelevicius, S. R. Cotta, R. Peixoto [et al.] // European Journal of Soil Biology. - 2012. - Vol. 51. - P. 37-44.

230. Kageyama A. Arthrobacter oryzae sp. nov. and Arthrobacter humicola sp. nov / A. Kageyama, K. Morisaki, S. Omura, Y. Takahashi // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2008. - Vol. 58, is. 1. - P. 53-56.

231. Kalam S. N. Recent Understanding of Soil Acidobacteria and Their Ecological Significance: A Critical Review / S. N. Kalam, A. Basu, I. Ahmad [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2020. - Vol. 11. - Article number 580024. - 15 p. -URL: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2020.5 80024/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.02.2023).

232. Kallimanis A. Arthrobacter phenanthrenivorans sp. nov., to accommodate the phenanthrene-degrading bacterium Arthrobacter sp. strain Sphe3 / A. Kallimanis,

K. Kavakiotis, A. Perisynakis [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2009. - Vol. 59, is. 2. - P. 275-279.

233. Khomutovska N. Life in extreme habitats: diversity of endolithic microorganisms from cold desert ecosystems of eastern Pamir / N. Khomutovska, M. Jerzak, I. Kostrzewska-Szlakowska [et al.] // Polish Journal of Ecology. - 2017. -Vol. 65. - P. 303-319.

234. Kielak A. M. The Ecology of Acidobacteria: Moving beyond Genes and Genomes / A. M. Kielak, C. C. Barreto, G. A. Kowalchuk [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2016. - Vol. 7. - 16 p. - URL: https://www.frontiersin.org/journals/ microbiology/articles/10.3389/fmicb.2016.00744/pdf?isPublishedV2=false (access data: 01.03.2022).

235. Kim S. J. Marmoricola solisilvae sp. nov. and Marmoricola terrae sp. nov., isolated from soil and emended description of the genus Marmoricola / S. J. Kim, J. M. Lim, M. Hamada [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2015. - Vol. 65. - P. 1825-1830.

236. Kogel-Knabner I. The macromolecular organic composition of plant and microbial residues as inputs to soil organic matter / I. Kogel-Knabner // Soil Biology and Biochemistry. - 2002. - Vol. 34. - P. 139-162.

237. Kolattukudy P. E. Chemistry, Biochemistry, and Function of Suberin and Associated Waxes / P. E. Kolattukudy, K. E. Espelie // Natural Products of Woody Plants. Chemicals Extraneous to the Lignocellulosic Cell Wall ; ed. by J. W. Rowe. -Berlin ; Heidelberg : Springer, 1989. - P. 304-367. - (Springer Series in Wood Science).

238. Kulshreshtha S. Microbial volatiles-mediated plant growth promotion and stress management in plants / S. Kulshreshtha, N. S. Rajput, S. Penna // The Chemical Dialogue between Plants and Beneficial Microorganisms / ed. by V. Sharma, R. Salwan, E. Moliszewska, D. Ruano-Rosa, M. J^dryczka. - [S. l.] : Academic Press, 2023. - Ch. 2. - P. 13-29.

239. Kumar S. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 7.0 for Bigger Datasets / S. Kumar, G. Stecher, K. Tamura // Molecular Biology and Evolution. - 2016. - Vol. 33, is. 7. - P. 1870-1874.

240. Labeda D. P. Emended description of the genus Glycomyces and description of Glycomyces algeriensis sp. nov., Glycomyces arizonensis sp. nov. and Glycomyces lechevalierae sp. nov. / D. P. Labeda, R. M. Kroppenstedt // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2004. - Vol. 54. - P. 2343-2346.

241. Labeda D. P. Glycomyces, a New Genus of the Actinomycetales / D. P. Labeda, R. T. Testa, M. P. Lechevalier, H. A. Lechevalier // International Journal Systematic Bacteriology. - 1985. - Vol. 35, № 4. - P. 417-421.

242. Labeda D. P. Phylogenetic study of the species within the family Streptomycetaceae / D. P. Labeda, M. Goodfellow, R. Brown [et al.] // Antonie van Leeuwenhoek. - 2012. - Vol. 101, № 1. - P. 73-104.

243. Lanzen A. Multi-targeted metagenetic analysis of the influence of climate and environmental parameters on soil microbial communities along an elevational gradient / A. Lanzen, L. Epelde, F. Blanco [et al.] // Scientific Reports. - 2016. -Vol. 6. - Article number 28257. - 13 p. -URL: https://www.nature.com/articles/srep28257.pdf (access data: 16.02.2023).

244. Lauber C. L. Pyrosequencing-Based Assessment of Soil pH as a Predictor of Soil Bacterial Community Structure at the Continental Scale / C. L. Lauber, M. Hamady, R. Knight, N. Fierer // Applied and Environmental Microbiology. -2009. - Vol. 75, № 15. - P. 5111-5120.

245. LeBlanc J. C. Global Response to Desiccation Stress in the Soil Actinomycete Rhodococcus jostii RHA1 / J. C. LeBlanc, E. R. Gonfalves, W. W. Mohn // Applied and Environmental Microbiology. - 2008. - Vol. 74, № 9. -P. 2627-2636.

246. Leininger S. Archaea predominate among ammonia-oxidizing prokaryotes in soils / S. Leininger, T. Urich, M. Schloter [et al.] // Nature. - 2006. -Vol. 442 (7104). - P. 806-809.

247. Leo V. V. Actinobacteria: A Highly Potent Source for Holocellulose Degrading Enzymes / V. V. Leo, D. Asem, Zothanpuia, B. P. Singh // New and Future Developments in Microbial Biotechnology and Bioengineering. Actinobacteria: Diversity and Biotechnological Applications ; ed. by B. P. Singh, V. K. Gupta, A. K. Passari. - Amsterdam : Elsevier, 2018. - Ch. 13. - P. 191-205.

248. Lewin G. R. Evolution and Ecology of Actinobacteria and Their Bioenergy Applications / G. R. Lewin, C. Carlos, M. G. Chevrette [et al.] // Annual Review of Microbiology. - 2016. - Vol. 70, is. 1. - P. 235-254.

249. Li C. Comammox Nitrospira play an active role in nitrification of agricultural soils amended with nitrogen fertilizers / C. Li, H.-W. Hu, Q.-L. Chen [et al.] // Soil Biology and Biochemistry. - 2019. - Vol. 138. - Article number 107609. - 9 p. - URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/ S0038071719302731 ?via%3Dihub (access data: 01.03.2022).

250. Li C. Niche differentiation of clade A comammox Nitrospira and canonical ammonia oxidizers in selected forest soils / C. Li, H. W. Hu, Q. L. Chen [et al.] // Soil Biology and Biochemistry. - 2020. - Vol. 149. - Article number 107925. - 10 p. -URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0038071720302224 (access data: 01.03.2022).

251. Li D. Streptomyces monticola sp. nov., a novel actinomycete isolated from soil / D. Li, L. Han, J. Zhao [et al.] // Antonie Van Leeuwenhoek. - 2019. - Vol. 112. -P. 451-460.

252. Li W. J. Georgenia ruanii sp. nov., a novel actinobacterium isolated from forest soil in Yunnan (China), and emended description of the genus Georgenia / W. J. Li, P. Xu, P. Schumann [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2007. - Vol. 57. - P. 1424-1428.

253. Liu Q. Arthrobacter ruber sp. nov., isolated from glacier ice / Q. Liu, Y. H. Xin, X. L. Chen [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2018. - Vol. 68, is. 5. - P. 1616-1621.

254. Lombard N. Soil-specific limitations for access and analysis of soil microbial communities by metagenomics / N. Lombard, E. Prestat, J. D. van Elsas, P. Simonet // FEMS Microbiology Ecology. - 2011. - Vol. 78, is. 1. - P. 31-49.

255. Lucker S. A Nitrospira metagenome illuminates the physiology and evolution of globally important nitrite-oxidizing bacteria / S. Lücker, M. Wagner, F. Maixner [et al.] // Proceedings of the National Academy of Sciences USA. - 2010. -Vol. 107, № 30. - P. 13479-13484.

256. Lv L.-L. Glycomyces tarimensis sp. nov., an actinomycete isolated from a saline-alkali habitat / L.-L. Lv, Y.-F. Zhang, L.-L. Zhang // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2015. - Vol. 65. - P. 1587-1591.

257. Maestre F. Increasing aridity reduces soil microbial diversity and abundance in global drylands / F. Maestre, M. Delgado-Baquerizo, T. Jeffries [et al.] // Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. - 2015. - Vol. 112, № 51. -P. 15684-15689.

258. Magee C. M. A More Reliable Gram Staining Technic for Diagnosis of Surgical Infections / C. M. Magee, G. Rodeheaver, M. T. Edgerton, R. F. Edlich // American Journal of Surgery. - 1975. - Vol. 130. - P. 341-346.

259. Maisnam P. Severe Prolonged Drought Favours Stress-Tolerant Microbes in Australian Drylands / P. Maisnam, T. Jeffries, J. Szejgis D [et al.] // Microbial Ecology. - 2023. - Vol. 86. - P. 3097-3110.

260. Marasco R. Rhizosheath microbial community assembly of sympatric desert speargrasses is independent of the plant host / R. Marasco, M. J. Mosqueira, M. Fusi [et al.] // Microbiome. - 2018. - Vol. 6, is. 1. - Article number 215. - 18 p. -URL: https://microbiomejournal.biomedcentral.com/counter/pdf/10.1186/s40168-018-0597-y.pdf (access data: 16.02.2023).

261. Maron P. A. High microbial diversity promotes soil ecosystem functioning / P. A. Maron, A. Sarr, A. Kaisermann [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. - 2018. - Vol. 84, is. 9. - Article number e02738-17. - 13 p. -URL: https://journals.asm.org/doi/reader/10.1128/AEM.02738-17 (access data: 16.02.2023).

262. Martemyanov V. V. Phenological asynchrony between host plant and gypsy moth reduces insect gut microbiota and susceptibility to Bacillus thuringiensis / V. V. Martemyanov, I. A. Belousova, S. V. Pavlushin [et al.] // Ecology and Evolution. - 2016. - Vol. 6, is. 20. - P. 7298-7310.

263. Minnikin D. E. An integrated procedure for the extraction of bacterial isoprenoid quinones and polar lipids / D. E. Minnikin, A. G. O'Donnell, M. Goodfellow [et al.] // Journal of Microbiological Methods. - 1984. - Vol. 2. - P. 233-241.

264. Mohammadipanah F. Actinobacteria from Arid and Desert Habitats: Diversity and Biological Activity / F. Mohammadipanah, J. Wink // Frontiers in Microbiology. - 2016. - Vol. 28, is. 6. - Article number 1541. - 10 p. -URL: https: //www.frontiersin.org/j ournals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2015.0

1541/pdf?isPublishedV2=false (access data: 15.04.2022).

265. Mohammadipanah F. Glycomyces sediminimaris sp. nov., a new species of actinobacteria isolated from marine sediment / F. Mohammadipanah, E. Atasayar, S. Heidarian, J. Wink // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2018. - Vol. 68. - P. 2357-2363.

266. Mu S. Glycomyces dulcitolivorans sp. nov., isolated from rhizosphere soil of wheat (Triticum aestivum L.) / S. Mu, T. Sun, Y. Li [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2018. - Vol. 68. - P. 3034-3039.

267. Mummey D. Spatial Stratification of Soil Bacterial Populations in Aggregates of Diverse Soils / D. Mummey, W. Holben, J. Six, P. Stahl // Microbial Ecology. - 2006. - Vol. 51, is. 3. - P. 404-411.

268. Mummey D. L. Spatial and temporal variability of bacterial 16S rDNA-based T-RFLP patterns derived from soil of two Wyoming grassland ecosystems / D. L. Mummey, P. D. Stahl // FEMS Microbiology Ecology. - 2003. - Vol. 46. -P. 113-120.

269. Naether A. Environmental Factors Affect Acidobacterial Communities below the Subgroup Level in Grassland and Forest Soils / A. Naether, B. U. Foesel, V. Naegele [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. - 2012. - Vol. 78, is. 20. - P. 7398-7406.

270. Naumova N. West-Siberian Chernozem: How Vegetation and Tillage Shape Its Bacteriobiome / N. Naumova, P. Barsukov, O. Baturina [et al.] // Microorganisms. - 2023. - Vol. 11, is. 10. - Article number 2431. - 15 p. -URL: https://www.mdpi.com/2076-2607Z11/10/2431/pdf?version=1695894739 (access data: 30.09.2023).

271. Navarrete A. A. Verrucomicrobial community structure and abundance as indicators for changes in chemical factors linked to soil fertility / A. A. Navarrete,

T. Soares, R. Rossetto [et al.] // Antonie van Leeuwenhoek. - 2015. - Vol. 108, is. 3. -P. 741-752.

272. NCBI Prokaryotic Genome Annotation Pipeline (PGAP) // National Library of Medicine. National Center for Biotechnology Information : website. -URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/annotation_prok/ (access data: 16.02.2023).

273. Neilson J. W. Life at the hyperarid margin: novel bacterial diversity in arid soils of the Atacama Desert, Chile / J. W. Neilson, J. Quade, M. Ortiz [et al.] // Extremophiles. - 2012. - Vol. 16. - P. 553-566.

274. Nikitina E. Glycomyces buryatensis sp. nov., an actinobacterium isolated from steppe soil / E. Nikitina, S.-W. Liu, F.-N. Li [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2020. - Vol. 70, is. 2. - P. 1356-1363.

275. Nishimura H. Siomycin, a new thiostrepton-like antibiotic / H. Nishimura, S. Okamoto, M. Mayama [et al.] // Journal of Antibiotics. Ser. A (Japan Antibiotics Research Association). - 1961. - Vol. 14, № 5. - P. 255-263.

276. Nowka B. Comparison of Oxidation Kinetics of Nitrite-Oxidizing Bacteria: Nitrite Availability as a Key Factor in Niche Differentiation / B. Nowka, H. Daims, E. Spieck // Applied and Environmental Microbiology. - 2015. - Vol. 81, № 2. -P. 745-753.

277. Oberhofer M. Exploring Actinobacteria Associated with Rhizosphere and Endosphere of the Native Alpine Medicinal Plant Leontopodium nivale Subspecies alpinum / M. Oberhofer, J. Hess, M. Leutgeb [et al.] // Frontiers in Microbiology. -2019. - Vol. 10. - Article number 2531. - 9 p. - URL: https://www.frontiersin.org/ journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2019.02531/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.02.2023).

278. Ohta Y. Microbacterium saccharophilum sp. nov., isolated from a sucrose-refining factory / Y. Ohta, T. Ito, K. Mori [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2013. - Vol. 63, is. 8. - P. 2765-2769.

279. Okami Y. The screening of anti-toxoplasmic substance produced by streptomycete and anti-toxoplasmic substance N°534 / Y. Okami, R. Utahara, H. Oyagi [et al.] // Journal of Antibiotics (Tokyo). - 1955. - Vol. 8, is. 4. - P. 126-131.

280. Orellana L. H. Year-Round Shotgun Metagenomes Reveal Stable Microbial Communities in Agricultural Soils and Novel Ammonia Oxidizers Responding to Fertilization / L. H. Orellana, J. C. Chee-Sanford, R. A. Sanford [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. - 2018. - Vol. 84, is. 2. - Article number e01646-17. - 14 p. - URL: https://journals.asm.org/doi/reader/10.1128/AEM.01646-17 (access data: 16.02.2023).

281. Otto A. A comparison of plant and microbial biomarkers in grassland soils from the Prairie Ecozone of Canada / A. Otto, C. Shunthirasingham, M. J. Simpson // Organic Geochemistry. - 2005. - Vol. 36, is. 3. - P. 425-448.

282. Pascual J. Assessing Bacterial Diversity in the Rhizosphere of Thymus zygis Growing in the Sierra Nevada National Park (Spain) through Culture-Dependent and Independent Approaches / J. Pascual, S. Blanco, M. Garcia-Lopez [et al.] // PLoS ONE. - 2016. - Vol. 11, is. 1. - Article number e0146558. - 19 p. -URL: https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0146558 (access data: 16.02.2023).

283. Pfennig N. G. Anreicherungskulturen für rote und grüne Schwefelbakterien / N. G. Pfennig // Zentralblatt für Bakteriologie, Parasitenkunde, Infektionskrankheiten und Hygiene. - 1965. - I. Abt., Suppl. 1. - S. 179-189.

284. Pirhadi M. Impact of soil salinity on diversity and community of sugarcane endophytic plant growth promoting bacteria (Saccharum officinatum L. var. CP48) / M. Pirhadi, N. Enayatizamir, H. Motamedi, K. Sorkhen // Applied Ecology and Environmental Research. - 2018. - Vol. 16, № 1. - P. 725-739.

285. Podar M. Targeted Access to the Genomes of Low-Abundance Organisms in Complex Microbial Communities / M. Podar, C. B. Abulencia, M. Walcher [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. - 2007. - Vol. 73, № 10. - P. 3205-3214.

286. Prauser H. Nocardioides luteus spec. nov. / H. Prauser // Zeitschrift fur allgemeine Mikrobiologie. - 1984. - Vol. 24, is. 9. - S. 647-648.

287. Prauser H. Nocardioides, a New Genus of the Order Actinomycetales / H. Prauser // International Journal of Systematic Bacteriology. - 1976. - Vol. 26, № 1. -P. 58-65.

288. Pridham T. G. A Guide for the classification of Streptomycetes According to Selected Groups. Placement of Strains in Morphological Sections / T. G. Pridham, C. W. Hesseltine, R. G. Benedict // Applied Microbiology. - 1958. - Vol. 6, is. 1. -P. 52-79.

289. Pridham T. G. New names and new combinations in the order Actinomycetales Buchanan 1917 / T. G. Pridham // United States Department of Agriculture. Agricultural Research Service. - Washington, D. C. : U. S. Government Printing Office, 1970. - Technical Bulletin № 1424. - 55 p.

290. Raddadi N. Bacterial polyextremotolerant bioemulsifiers from arid soils improve water retention capacity and humidity uptake in sandy soil / N. Raddadi, L. Giacomucci, R. Marasco [et al.] // Microbial Cell Factories. - 2018. - Vol. 17. -Article number 83. - 13 p. - URL: https://microbialcellfactories.biomedcentral.com/ counter/pdf/10.1186/s12934-018-0934-7.pdf (access data: 16.02.2023).

291. Ranjard L. Quantitative and qualitative microscale distribution of bacteria in soil / L. Ranjard, A. Richaume // Research in Microbiology. - 2001. - Vol. 152, is. 8. - P. 707-716.

292. Ritz K. Spatial structure in soil chemical and microbiological properties in an upland grassland / K. Ritz, J. W. McNicol, N. Nunan [et al.] // FEMS Microbiology Ecology. - 2004. - Vol. 49. - P. 191-205.

293. Romanenko L. A. Paenibacillus profundus sp. nov., a deep sediment bacterium that produces isocoumarin and peptide antibiotics / L. A. Romanenko, N. Tanaka, V. I. Svetashev, N. I. Kalinovskaya // Archives of Microbiology. - 2013. -Vol. 195. - P. 247-254.

294. Safronova V. I. Microvirga ossetica sp. nov., a species of rhizobia isolated from root nodules of the legume species Vicia alpestris Steven / V. I. Safronova, I. G. Kuznetsova, A. L. Sazanova [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2017. - Vol. 67, is. 1. - P. 94-100.

295. Saitou N. The neighbor-joining Method: A New Method for Reconstructing Phylogenetic Trees / N. Saitou, M. Nei // Molecular Biology and Evolution. - 1987. -Vol. 4, is. 4. - P. 406-425.

296. Sanchez-Maranon M. Changes in the soil bacterial community along a pedogenic gradient / M. Sanchez-Maranon, I. Miralles, J. F. Aguirre-Garrido [et al.] // Scientific Reports. - 2017. - Vol. 7, is. 1. - Article number 14593. - 11 p. -URL: https://www.nature.com/articles/s41598-017-15133-x.pdf (access data: 16.02.2023).

297. Sasser M. Identification of Bacteria by Gas Chromatography of Cellular Fatty Acids. Technical Note #101 / M. Sasser. - Newark : Microbial ID Incorporation, 1990. - 6 p.

298. Schlatter D. C. Plant community richness and microbial interactions structure bacterial communities in soil / D. C. Schlatter, M. G. Bakker, J. M. Bradeen, L. L. Kinkel // Ecology. - 2015. - Vol. 96, is. 1. - P. 134-142.

299. Schleper C. Ammonia-oxidising Archaea - physiology, ecology and evolution / C. Schleper, G. W. Nicol // Advances in Microbial Physiology. -2010. - Vol. 57, is. 1. - P. 1-41.

300. Schütz K. Functional microbial community response to nutrient pulses by artificial groundwater recharge practice in surface soils and subsoils / K. Schütz, E. Kandeler, P. Nagel [et al.] // FEMS Microbiology Ecology. - 2010. - Vol. 72, is. 3. -P. 445-455.

301. Semenov M. V. Distribution of prokaryotic communities throughout the Chernozem profiles under different land uses for over a century / M. V. Semenov, T. I. Chernov, A. K. Tkhakakhova [et al.] // Applied Soil Ecology. - 2018. - Vol. 127. -P. 8-18.

302. Sessitsch A. Microbial Population Structures in Soil Particle Size Fractions of a Long-Term Fertilizer Field Experiment / A. Sessitsch, A. Weilharter, M. H. Gerzabek [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. - 2001. - Vol. 67, is. 9. - P. 4215-4224.

303. Shi X. Niche separation of comammox Nitrospira and canonical ammonia oxidizers in an acidic subtropical forest soil under long-term nitrogen deposition / X. Shi, H.-W. Hu, J. Wang [et al.] // Soil Biology and Biochemistry. - 2018. -Vol. 126. - P. 114-122.

304. Shirling E. B. Methods for characterization of Streptomyces species / E. B. Shirling, D. Gottlieb // International Journal of Systematic Bacteriology. - 1966. -Vol. 16, № 3. - P. 313-340.

305. Shivaji S. Janibacter hoylei sp. nov., Bacillus isronensis sp. nov. and Bacillus aryabhattai sp. nov., isolated from cryotubes used for collecting air from the upper atmosphere / S. Shivaji, P. Chaturvedi, Z. Begum [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2009. - Vol. 59, is. 12. -P. 2977-2986.

306. Shukla M. Multiple-Stress Tolerance of Ionizing Radiation-Resistant Bacterial Isolates Obtained from Various Habitats: Correlation Between Stresses / M. Shukla, R. Chaturvedi, D. Tamhane [et al.] // Current Microbiology. - 2007. -Vol. 54. - P. 142-148.

307. Simmons T. Drought Drives Spatial Variation in the Millet Root Microbiome / T. Simmons, A. B. Styer, G. Pierroz [et al.] // Frontiers in Plant Science. - 2020. -Vol. 11. - Article number 599. - 13 p. - URL: https://www.frontiersin.org/ journals/plant-science/articles/10.3389/fpls.2020.00599/full (access data: 16.02.2023).

308. Singh R. Diversity and Applications of Endophytic Actinobacteria of Plants in Special and Other Ecological Niches / R. Singh, A. K. Dubey // Frontiers in Microbiology. - 2018. - Vol. 9. - Article number 1767. - 30 p. -URL: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2018.0 1767/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.02.2023).

309. Smalla K. Bulk and Rhizosphere Soil Bacterial Communities Studied by Denaturing Gradient Gel Electrophoresis: Plant-Dependent Enrichment and Seasonal Shifts Revealed / K. Smalla, G. Wieland, A. Buchner [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. - 2001. - Vol. 67, № 10. - P. 4742-4751.

310. Stackebrandt E. Taxonomic Dissection of the Genus Micrococcus: Kocuria gen. nov., Nesterenkonia gen. nov., Kytococcus gen. nov., Dermacoccus gen. nov., and Micrococcus Cohn 1872 gen. emend / E. Stackebrandt, C. Koch, O. Gvozdiak, P. Schumann // International Journal of Systematic Bacteriology. - 1995. - Vol. 45, № 4. - P. 682-692.

311. Staneck J. L. Simplified Approach to Identification of Aerobic Actinomycetes by Thin-Layer Chromatography / J. L. Staneck, G. D. Roberts // Journal of Applied Microbiology. - 1974. - Vol. 28, № 2. - P. 226-231.

312. Sun Y. Diversity of Bacteria and the Characteristics of Actinobacteria Community Structure in Badain Jaran Desert and Tengger Desert of China / Y. Sun, Y.-L. Shi, H. Wang [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2018. - Vol. 9. - Article number 1068. - 14 p. - URL: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/ articles/10.3389/fmicb.2018.01068/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.02.2023).

313. Suzuki K.-I. Pimelobacter gen. nov., a new genus of coryneform bacteria with LL-diaminopimelic acid in the cell wall / K.-I. Suzuki, K. Komagata // The Journal of General and Applied Microbiology. - 1983. - Vol. 29. - P. 59-71.

314. Szoboszlay M. Impact of land-use change and soil organic carbon quality on microbial diversity in soils across Europe / M. Szoboszlay, A. B. Dohrmann, C. Poeplau [et al.] // FEMS Microbiology Ecology. - 2017. - Vol. 93, № 12. - Article number fix146. - 12 p. - URL: https://academic.oup.com/femsec/article-pdf/93/12/fix146/22217307/fix 146. pdf (access data: 16.02.2023).

315. Tatar D. Streptomyces seymenliensis sp. nov., isolated from soil / D. Tatar, N. Sahin // Antonie Van Leeuwenhoek. - 2015. - Vol. 107. - P. 411-418.

316. Tilford P. E. Fasciation of sweet peas caused by Phytomonas fascians n. sp. / P. E. Tilford // Journal of Agricultural Research. - 1936. - Vol. 53, is. 5. - P. 383-394.

317. Torsvik V. Prokaryotic Diversity - Magnitude, Dynamics, and Controlling Factors / V. Torsvik, L. 0vreas, T. F. Thingstad // Science. - 2002. - Vol. 296 (5570). -P. 1064-1066.

318. Upchurch R. Differences in the composition and diversity of bacterial communities from agricultural and forest soils / R. Upchurch, C. Y. Chiu, K. Everett [et al.] // Soil Biology and Biochemistry. - 2008. - Vol. 40. - P. 1294-1305.

319. van Kessel M. A. Complete nitrification by a single microorganism / M. A. H. J. van Kessel, D. R. Speth, M. Albertsen [et al.] // Nature. - 2015. -Vol. 528 (7583). - P. 555-559.

320. van Leeuwen J. P. Effects of land use on soil microbial biomass, activity and community structure at different soil depths in the Danube floodplain /

J. P. van Leeuwen, I. Djukic, J. Bloem [et al.] // European Journal of Soil Biology. -2017. - Vol. 79. - P. 14-20.

321. Waghunde R. R. Endophytes: a potential bioagent for plant disease management / R. R. Waghunde, M. D. Khunt, R. M. Shelake [et al.] // Microbial Endophytes and Plant Growth: Beneficial Interactions and Applications ; ed. by M. K. Solanki, M. K. Yadav, B. P. Singh, V. K. Gupta. - [S. l.] : Academic Press, 2022. - Ch. 2. - P. 19-34.

322. Waksman S. A. Family Actinomycetaceae Buchanan and family Steptomycetaceae Waksman and Henrici / S. A. Waksman // Bergey's Manual of Determinative Bacteriology / eds. by R. S. Breed, E. G. D. Murray, N. R. Smith. -7th ed. - Baltimore : The Williams & Wilkins Co, 1957. - P. 744-825.

323. Wang C. Decreasing soil microbial diversity is associated with decreasing microbial biomass under nitrogen addition / C. Wang, D. Liu, E. Bai // Soil Biology and Biochemistry. - 2018. - Vol. 120. - P. 126-133.

324. Wang C. Metagenomic analysis of microbial consortia enriched from compost: new insights into the role of Actinobacteria in lignocellulose decomposition / C. Wang, D. Dong, H. Wang [et al.] // Biotechnology for Biofuels. -2016. - Vol. 9. - Article number 22. - 17 p. -URL: https://biotechnologyforbiofuels.biomedcentral.com/counter/pdf/10.1186/s13068-016-0440-2.pdf (access data: 10.04.2022).

325. Wang J. Adaptive responses of comammox Nitrospira and canonical ammonia oxidizers to long-term fertilizations: Implications for the relative contributions of different ammonia oxidizers to soil nitrogen cycling / J. Wang, J. Wang, G. Rhodes [et al.] // Science of the Total Environment. - 2019. - Vol. 668. - P. 224-233.

326. Wang L. Effects of different fertilization conditions and different geographical locations on the diversity and composition of the rhizosphere microbiota of Qingke (Hordeum vulgare L.) plants in different growth stages / L. Wang, H. Wang, M. Liu [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2023. - Vol. 14. - Article number1094034. - 13 p. - URL: https://www.frontiersin.org/journals/ microbiology/articles/ 10.3389/fmicb.2023. 1094034/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.05.2023).

327. Wang Q. Naïve Bayesian Classifier for Rapid Assignment of rRNA Sequences into the New Bacterial Taxonomy / Q. Wang, G. M. Garrity, J. M. Tiedje, J. R. Cole // Applied and Environmental Microbiology. - 2007. - Vol. 73, № 16. -P. 5261-5267.

328. Wang Y. Glycomyces xiaoerkulensis sp. nov., isolated from Xiaoerkule lake in Xinjiang, China / Y. Wang, X.-X. Luo, Z.-F. Xia, C. -X. Wan [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2018. - Vol. 68. - P. 27222726.

329. Wiesenberg G. L. B. Reconstruction of environmental changes during the late glacial and Holocene reflected in a soil-sedimentary sequence from the lower Selenga River valley, Lake Baikal region, Siberia, assessed by lipid molecular proxies / G. L. B. Wiesenberg, D. B. Andreeva, G. D. Chimitdorgieva [et al.] // Quaternary International. - 2015. - Vol. 365. - P. 190-202.

330. Will C. Horizon-Specific Bacterial Community Composition of German Grassland Soils, as Revealed by Pyrosequencing-Based Analysis of 16S rRNA Genes / C. Will, A. Thürmer, A. Wollherr [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. -2010. - Vol. 76, № 20. - P. 6751-6759.

331. Williams S. T. Numerical Classification of Streptomyces and Related Genera / S. T. Williams, M. Goodfellow, G. Alderson [et al.] // Journal of General Microbiology. - 1983. - Vol. 129. - P. 1743-1813.

332. Wink J. Biology and biotechnology of Actinobacteria ; ed. by J. Wink, F. Mohammadipanah, J. Hamedi. - Berlin : Springer, 2017. - 395 p.

333. Wolters V. Invertebrate control of soil organic matter stability / V. Wolters // Biology and Fertility of Soils. - 2000. - Vol. 31, is. 1. - P. 1-19.

334. Wright D. A. The effect of location in soil on protozoal grazing of a genetically modified bacterial inoculum / D. A. Wright, K. Killham, L. A. Glover, J. I. Prosser // Geoderma. - 1993. - Vol. 56. - P. 633-640.

335. Wu C. Y. Corynebacterium humireducens sp. nov., an alkaliphilic, humic acid-reducing bacterium isolated from a microbial fuel cell / C.-Y. Wu, L. Zhuang, S.-G. Zhou [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2011. - Vol. 61. - P. 882-887.

336. Wu S. Native plant Maireana brevifolia drives prokaryotic microbial community development in alkaline Fe ore tailings under semi-arid climatic conditions / S. Wu, F. You, M. Hall, L. Huang // Science of The Total Environment. - 2021. -Vol. 760. - Article number 144019. - 11 p. -URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0048969720375501?via% 3Dihub (access data: 16.05.2023).

337. Xu A. Dynamic distribution of Massilia spp. in sewage, substrate, plant rhizosphere/phyllosphere and air of constructed wetland ecosystem / A. Xu, C. Liu, S. Zhao [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2023. - Vol. 14. - Article number 1211649. - 17 p. - URL: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/ 10.3389/fmicb.2023.1211649/pdf?isPublishedV2=false (access data: 01.08.2023).

338. Xu P. Naxibacter alkalitolerans gen. nov., sp. nov., a novel member of the family Oxalobacteraceae isolated from China / P. Xu, W.-J. Li, S.-K. Tang [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2005. -Vol. 55, Pt. 3. - P. 1149-1153.

339. Yang A. Rhizosphere bacterial communities of dominant steppe plants shift in response to a gradient of simulated nitrogen deposition / A. Yang, N. Liu, Q. Tian [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2015. - Vol. 6. - Article number 789. - 10 p. -URL: https: //www.frontiersin.org/j ournals/microbiology/articles/10.33 89/fmicb .2015.0 0789/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.02.2023).

340. Yao F. Microbial Taxa Distribution Is Associated with Ecological Trophic Cascades along an Elevation Gradient / F. Yao, S. Yang, Z. Wang [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2017. - Vol. 8. - Article number 2071. - 17 p. -URL: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2017.0 2071/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.02.2023).

341. Yoon S.-H. Introducing EzBioCloud: a taxonomically united database of 16S rRNA gene sequences and whole-genome assemblies / S.-H. Yoon, S.-M. Ha, S. Kwon [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. -2017. - Vol. 67, is. 5. - P. 1613-1617.

342. Yu L. Z. H. Diversity of ionizing radiation-resistant bacteria obtained from the Taklimakan Desert / L. Z.-H. Yu, X.-S. Luo, M. Liu, Q. Huang // Journal of Basic Microbiology. - 2015. - Vol. 55, is. 1. - P. 135-140.

343. Zhang B. Variation in Actinobacterial Community Composition and Potential Function in Different Soil Ecosystems Belonging to the Arid Heihe River Basin of Northwest China / B. Zhang, X. Wu, X. Tai [et al.] // Frontiers in Microbiology. - 2019. - Vol. 10. - Article number 2209. - 11 p. -URL: https: //www.frontiersin.org/j ournals/microbiology/articles/10.33 89/fmicb .2019.0 2209/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.02.2023).

344. Zhang J. Rhizosphere microorganisms of Crocus sativus as antagonists against pathogenic Fusarium oxysporum / J. Zhang, J. Lu, Y. Zhu [et al.] // Frontiers in Plant Science. - 2022. - Vol. 13. - Article number 1045147. - 14 p. -URL: https://www.frontiersin.org/journals/plant-science/articles/10.3389/fpls.2022. 1045147/pdf?isPublishedV2=false (access data: 16.02.2023).

345. Zhang X. Glycomyces artemisiae sp. nov., an endophytic actinomycete isolated from the roots of Artemisia argyi / X. Zhang, K. Ren, J. Du [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2014. -Vol. 64. - P. 3492-3495.

346. Zhou J. Temperature mediates continental-scale diversity of microbes in forest soils / J. Zhou, Y. Deng, L. Shen [et al.] // Nature Communications. - 2016. -Vol. 7. - Article number 12083. - 10 p. - URL: https://www.nature.com/ articles/ncomms12083.pdf (access data: 16.02.2023).

347. Zhou S. Q. A Rapid Method for Extracting DNA from Actinomycetes by Chelex-100 / S. Q. Zhou, X. J. Huang, D. G. Huang [et al.] // Biotechnology Bulletin. - 2010. - Vol. 2. - P. 123-125.

348. Zhu Y.-L. The Composition and diversity of the rhizosphere bacterial community of Ammodendron bifolium growing in the Takeermohuer Desert are different from those in the nonrhizosphere / Y.-L. Zhu, Y.-J. Huang, N. Nuerhamanti [et al.] // Microbial Ecology. - 2023. - Vol. 87, is. 1. - Article number 2. - 16 p. -URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s00248-023-02320-9 (access data: 28.11.2023).

349. Zucchi T. D. Streptomyces brevispora sp. nov. and Streptomyces laculatispora sp. nov., actinomycetes isolated from soil / T. D. Zucchi, B. -y. Kim, J. D. Kshetrimayum [et al.] // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. - 2012. - Vol. 62. - P. 478-483.

350. Zul D. Effects of Plant Biomass, Plant Diversity, and Water Content on Bacterial Communities in Soil Lysimeters: Implications for the Determinants of Bacterial Diversity / D. Zul, S. Denzel, A. Kotz, J. Overmann // Applied and Environmental Microbiology. - 2007. - Vol. 73, № 21. - P. 6916-6929.

Приложение А

(обязательное)

Динамика целлюлазной активности почв сухостепной зоны Селенгинского среднегорья

Таблица А.1 - Динамика целлюлазной активности почв сухостепной зоны Селенгинского среднегорья

Горизонт 2012 г. 2013 г. 2014 г. 2015 г. 2016 г. 2017 г.

1* 2** 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2

Разрез Г \ Каштановая типичная почва

АJ 23 0,137 11 0,069 8 0,052 7 0,045 12 0,075 9 0,056

ВМК 20 0,120 9 0,057 7 0,045 6 0,043 26 0,161 12 0,075

САТ 5 0,030 2 0,013 3 0,022 2 0,013 10 0,062 3 0,019

ВСса 2 0,010 0 — 1 0,006 0 — 2 0,080 1 0,006

Разрез 3Т. Светлогумусовая почва

АЛ 18 0,108 15 0,094 11 0,071 6 0,039 17 0,107 6 0,038

АJ2 17 0,102 18 0,113 15 0,097 11 0,068 22 0,157 10 0,063

Сса,т 5 0,030 6 0,038 13 0,084 4 0,027 5 0,031 7 0,044

Сса 1 0,005 2 0,020 3 0,019 0 — 2 0,012 1 0,006

Разрез 4И. Каштановая с погребенным профилем чернозема гидрометаморфизированного почва

АJ 16 0,096 10 0,062 12 0,079 5 0,034 15 0,094 8 0,05

ВМК 15 0,081 13 0,087 20 0,132 14 0,1 19 0,118 7 0,044

ГАи1 11 0,059 11 0,068 10 0,071 4 0,027 13 0,082 8 0,050

[Аи/ВСА] 5 0,027 4 0,025 2 0,014 3 0,02 16 0,099 3 0,019

ВCAq 2 0,011 2 0,012 2 0,014 0 — 4 0,025 3 0,019

ВСq 1 0,006 1 0,006 1 0,006 0 — 1 0,006 0 —

Разрез 5И. Каштановая квазиглеевая почва

АЛ 18 0,108 17 0,105 13 0,084 8 0,053 29 0,181 12 0,075

АJ2 12 0,071 16 0,099 16 0,125 15 0,107 24 0,151 10 0,063

ВМК 9 0,054 10 0,062 7 0,052 4 0,027 14 0,087 6 0,038

САТq 4 0,024 3 0,019 3 0,022 2 0,014 13 0,081 5 0,031

ВСд 4 0,023 2 0,012 4 0,030 1,5 0,010 5 0,031 8 0,05

Сca,q 1 0,005 0 — 1 0,006 0 — 2 0,012 1 0,006

1* - разложение за весенне-летний и летне-осенний периоды, %; 2** - скорость разложения в сут., %.