СТАНДАРТИЗАЦИЯ ЛЕКАРСТВЕННОГО РАСТИТЕЛЬНОГО СЫРЬЯ И РАСТИТЕЛЬНЫХ СБОРОВ МЕТОДАМИ ИОНО-ЭКСКЛЮЗИОННОЙ И ГАЗО-ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.04.02, доктор фармацевтических наук Кузьменко, Алексей Николаевич

• Кузьменко, Алексей Николаевич
• доктор фармацевтических наук
• 2013

Оглавление диссертации доктор фармацевтических наук Кузьменко, Алексей Николаевич

ОГЛАВЛЕНИЕ

Стр.

ВВЕДЕНИЕ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ГЛАВА 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР

1.1. Основы метода газо- жидкостной

хроматографии

1.2. Детекторы, применяемые в методе газо-жидкостной

хроматографии

1.2.1. Сочетание газовой хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием

1.2.2. Сочетание газовой хроматографии с инфракрасной Фурье-спектроскопией и атомно- эмиссионным детектированием

1.3. Использование газо- жидкостной хроматографии для стандартизации лекарственного растительного сырья и лекарственных форм на его основе

1.3.1. Стандартизации лекарственного растительного сырья и растительных сборов

1.3.2. Стандартизация эфирных масел

1.3.3. Стандартизация настоек, экстрактов и эликсиров

1.3.4. Стандартизация гомеопатических препаратов

1.3.5. Применение хемометрических методов для стандартизации лекарственного растительного сырья

1.4. Использование ионо-эксклюзионной хроматографии для стандартизации

лекарственного растительного сырья и лекарственных форм на его основе

1.4.1. Основные принципы ионо-эксклюзионной хроматографии

1.4.2. Основные физико-химические свойства карбоновых кислот

1.4.3. Факторы, влияющие на удерживание органических кислот в ионо-эксклюзионной хроматографии

1.4.3.1. Степень ионизации сорбата

1.4.3.2. Зависимость времени удерживания кислот от их значений рКаи рН элюента

1.4.3.3. Размер молекул сорбата

1.4.3.4. Гидрофобные взаимодействия между сорбентом и подвижной фазой

1.4.3.5. Ионообменная емкость сорбентов

1.4.3.6. Влияние температуры

1.4.4. Сорбенты для ионо-эксклюзионной хроматографии

1.4.5. Элюенты для ионо-эксклюзионной хроматографии

1.4.6. Детекторы, применяемые в ионо-эксклюзионной хроматографии

1.4.7. Применение ионо-эксклюзионной хроматографии для анализа химического

состава лекарственного растительного сырья

Выводы к главе 1

ГЛАВА 2. СТАНДАРТИЗАЦИИ ЛЕКАРСТВЕННОГО РАСТИТЕЛЬНОГО СЫРЬЯ МЕТОДОМ ГАЗО-ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

2.1. Изучение степени извлечения веществ-маркеров в зависимости от

типа растворителя

2.2. Поиск веществ- маркеров

Выводы к главе 2

ГЛАВА 3.СТАНДАРТИЗАЦИЯ ЛЕКАРСТВЕННЫХ РАСТИТЕЛЬНЫХ СБОРОВ

МЕТОДОМ ГАЗО-ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

3.1. Применение высокоспецифичных веществ-маркеров для стандартизации лекарственных растительных

сборов

3.2. Алгоритм выбора хроматографического метода

Выводы к главе 3

ГЛАВА 4. ИОНОЭКСКЛЮЗИОННОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ КАРБОЛОВЫХ КИСЛОТ В ЛЕКАРСТВЕННОМ РАСТИТЕЛЬНОМ СЫРЬЕ

4.1. Выбор сорбента

4.2. Выбор размера колонки

4.3. Выбор элюента

4.4. Выбор скорости подачи элюента

4.5. Хроматографические условия для определения карбоновых кислот

4.6. Стандартизация лекарственного растительного сырья методом ионо-эксклюзионной хроматографии

Выводы к главе 4

ОБЩИЕ ВЫВОДЫ

ЦИТИРУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА

ПУБЛИКАЦИИ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «СТАНДАРТИЗАЦИЯ ЛЕКАРСТВЕННОГО РАСТИТЕЛЬНОГО СЫРЬЯ И РАСТИТЕЛЬНЫХ СБОРОВ МЕТОДАМИ ИОНО-ЭКСКЛЮЗИОННОЙ И ГАЗО-ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Фитотерапия и фитопрофилактика сегодня все шире и прочнее внедряются в медицинскую практику. В настоящее время ассортимент лекарственных средств растительного происхождения, применяемых в отечественном здравоохранении, составляет более 40%. Не противопоставляя препараты, созданные на основе химического синтеза, лекарственным средствам на основе лекарственных растений, отметим, что последние обладают в ряде случаев менее выраженными побочными эффектами, обладая несомненной эффективностью. Практикующие врачи заинтересованы в получении базовой информации о современной научной трактовке традиционных подходов к лечению лекарственными растениями для определения их места в комплексном лечении. В связи с этим чрезвычайно актуальна задача изучения химического состава растений, а ее решение невозможно без применения современных хроматографических методов. Выявление биологически активных соединений, присутствующих в том или ином лекарственном растении ( или группе растений ) позволяет прогнозировать взаимосочетаемость и взаимодополняемость лекарственных растений для составления многокомпонентных сборов. В Государственную фармакопею РФ (ГФ) включены 83 статьи на лекарственное растительное сырье. Одним из обязательных разделов при определении подлинности лекарственного растительного сырья является раздел «Качественные реакции», который в настоящее время включает как собственно качественные и гистохимические реакции, так и проведение хроматографического анализа. Однако, качественные реакции не позволяют с уверенностью говорить об идентификации сырья, а лишь о присутствии в сырье определенной группы или ряда групп биологически активных веществ, часто не специфических для данного вида сырья. Только хроматографическая методика анализа с использованием стандартных образцов, стандартных хроматограмм позволяет уверенно говорить об идентификации лекарственного сырья. Однако, при изучении методик анализа, включенных в 1080 нормативных документов ( НД ) на лекарственные средства, которые

/с

наиболее часто применяются в практике фармацевтического анализа , установлено, что только в 5% НД упоминается метод газо-жидкостной хроматографии (ГЖХ ). При подготовке нового издания отечественной фармакопеи разработан проект общей фармакопейной статьи (ОФС) « Газовая хроматография ». В то же время очевидно ограниченное применение данного метода для качественного и количественного анализа лекарственных растений, несмотря на его высокую селективность, чувствительность и экспрессность. Более активное внедрение метода в фармацевтическую практику позволит осуществлять стандартизацию лекарственного растительного сырья и сборов на его основе, выявлять фальсифицированную продукцию. Для этого необходимы: поиск высокоспецифичных веществ- маркеров, присущих конкретным видам растительного сырья, определение минимального порога содержания данного вида сырья в растительных сборах, при котором данное вещество- маркер идентифицируется, скрининг видов растительного сырья для выявления специфичных химических веществ. В то же время для ряда видов лекарственного сырья стандартизация с помощью этого хроматографического метода недостаточно эффективна из- за отсутствия специфичных веществ- маркеров. В таком случае дополняющим хроматографическим методом может выступать ионо- эксклюзионная хроматография ( ИЭХ ). Метод ИЭХ до настоящего времени не получил широкого внедрения в фармацевтическую практику, в первую очередь для фармакогностических целей. Подбор хроматографических условий, скрининг растительного сырья для определения содержания достаточно специфичного набора карбоновых кислот- актуальные задачи для совершенствования существующих методик при контроле качества лекарственного растительного сырья. В конечном итоге, эти два хроматографических метода могут выступать как взаимодополняющие при решении задачи стандартизации лекарственного растительного сырья и многокомпонентных сборов на его основе.

Цель и задачи исследования. Цель данного исследования- разработка нового направления в системе стандартизации лекарственного растительного сырья и лекарственных сборов на его основе с помощью двух взаимодополняющих хроматографических методов- газо- жидкостной и ионо-эксклюзионной хроматографии.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие основные

задачи:

❖ анализируя существующую нормативную документацию, изучить современное состояние внедрения хроматографических методов в фармацевтическую практику стандартизации лекарственного растительного сырья и сборов на его основе.

❖ методом газо-жидкостной хроматографии провести скрининг лекарственного растительного сырья, представленного на фармацевтическом рынке, для идентификации специфических компонентов-маркеров и использования их для стандартизации, контроля качества и выявления фальсификаций.

❖ среди найденных веществ-маркеров выявить как высокоспецифичные, присущие лишь данному виду растительного сырья, так и не обладающие выраженной специфичностью.

❖ для стандартизации лекарственного растительного сырья, содержащего компоненты, не обладающие выраженной специфичностью, разработать схему стандартизации сырья с использованием комплексного «хроматографического образа».

❖ для лекарственного растительного сырья, содержащего высокоспецифичные компоненты-маркеры, оценить минимальный порог содержания данного вида сырья в растительных сборах, при котором достигается предел обнаружения для компонента-маркера.

❖ в тех случаях, где стандартизация методом газо-жидкостной хроматографии недостаточно эффективна, предложить метод ионо-эксклюзионной хроматографии в качестве дополняющего метода.

❖ провести скрининг лекарственного растительного сырья, присутствующего на фармацевтическом рынке, для идентификации специфических карбоновых кислот; разработать методики анализа, повышающие эффективность и специфичность анализа.

❖ выявить виды лекарственного растительного сырья и многокомпонентных растительных сборов, для которых два данных хроматографических метода могут являться взаимодополняющими.

Научная новизна. В работе впервые предложена методология стандартизации лекарственного растительного сырья и многокомпонентных растительных сборов с использованием двух взаимодополняющих хроматографических методов - газо-жидкостной и ионо-эксклюзионной хроматографии. Проведен широкий скрининг видов лекарственного растительного сырья на предмет содержания высокоспецифических компонентов-маркеров. В результате экспериментальных исследований отобрано 19 видов лекарственных растений. Для растений с набором специфических химических соединений (компонентов-маркеров) установлено минимальное содержание в лекарственных сборах, при котором возможна стандартизация данным методом при подобранных хроматографических условиях. Показано, что даже очень малое относительное содержание таких веществ в составе растения не является помехой для их идентификации методом газо-жидкостной хроматографии. Для растений, в составе которых не обнаружены высокоспецифические соединения, предложена их стандартизация с использованием «хроматографического образа», основой которого является ряд «реперных» соединений. При этом соотношение содержания данных соединений обычно остается постоянным для разных партий сырья.

Для ряда растений изучена степень извлечения веществ-маркеров в зависимости от растворителя, на основе которого приготовлен экстракт, с целью подтверждения специфичности данных веществ.

Предложен алгоритм отбора лекарственных растительных сборов, для стандартизации которых метод ГЖХ может быть весьма эффективным. В качестве

модельных отобрано 10 сборов, для них всесторонне обсуждены хроматографические условия, позволяющие проводить качественный и количественный анализ данных сборов, а также гарантировать их подлинность. Указаны виды сырья, наиболее успешно стандартизуемые по составу и количественному содержанию в данных сборах. На основании полученных результатов проведена классификация химических соединений по степени значимости при идентификации конкретных видов сырья в растительных сборах.

Выявлен ряд растений, стандартизация которых возможна методом ионо-эксклюзионной хроматографии по содержанию в них ряда карбоновых кислот. В первую очередь для стандаризации данным методом рекомендованы лекарственные растения, имеющие в своем составе такие специфические кислоы, как аскорбиновая, яблочная, янтарная, фумаровая и изовалериановая. Разработаны новые методики, позволяющие осуществлять стандартизацию ЛРС методом ИЭХ.

Практическая значимость работы. Разработаны и оптимизированы газохроматографические методики для качественного и количественного определения биологически активных веществ в лекарственном растительном сырье и сборах на его основе. Ряд высокоспецифических веществ-маркеров предложен в качестве эталонных для стандартизации конкретных видов растительного сырья.

Экспериментально показана возможность стандартизации с использованием цельного « хроматографического образа » тех видов лекарственного растительного сырья, в которых содержится более или менее широкий набор неспецифических веществ. Это значительно расширяет спектр растительного сырья, пригодного для стандартизации методом газожидкостной хроматографии.

Разработаны и оптимизированы методики стандартизации лекарственного растительного сырья с использованием ионо-эксклюзионной хроматографии.

Предложен алгоритм для выбора одного из двух предложенных хроматографических методов, учитывающий компонентный состав растительных сборов.

Положения, выносимые на защиту.

❖ Обоснование выбора специфических веществ-маркеров при газохроматографическом анализе лекарственного растительного сырья.

♦> Для ряда лекарственых растений, имеющих в своем составе высокоспецифические вещества-маркеры, установлено минимальное содержание данного вида растительного сырья в лекарственных сборах, при котором возможна стандартизация по этому виду сырья.

♦> Экспериментальное обоснование возможности стандартизации лекарственного сырья, имеющего в своем составе набор неспецифических веществ, с использованием цельного « хроматографического образа ».

❖ Для ряда растений показана степень извлечения веществ- маркеров в зависимости от растворителя, на основе которого приготовлен экстракт.

❖ Обсуждается степень перехода веществ-маркеров из растительного сырья в состав многокомпонентных растительных сборов. Информативность этих данных использована при стандартизации сборов на примере 10 лекарственных растительных сборов.

❖ Обоснование возможности применения метода ионо-эксклюзионной хроматографии в качестве дополняющего метода для тех лекарственных растений, стандартизация которых методом газо-жидкостной хроматографии недостаточно эффективна.

❖ Показано, что среди карбоновых кислот, определяемых методом ИЭХ, есть особо специфичные, а именно: яблочная, янтарная, фумаровая и изовалериановая, и наличие этих кислот в составе растения особенно значимо при стандартизации.

Апробация работы. Основные результаты работы доложены и обсуждены на IX, X, XVI Российских национальных конгрессах « Человек и лекарство » ( Москва, 2002, 2003, 2009 ), Всероссийском симпозиуме « Современные проблемы хроматографии ». ( Москва, 2002 ), Третьем международном симпозиуме « Separations in Bio Sciences » ( Москва, 2003 ), IV Российской научно-практической конференции « Актуальные проблемы инноваций с нетрадиционными природными ресурсами и создания функциональных продуктов » (

Москва, 2007 ) , VIII международном конгрессе « Здоровье и образование в XXI веке: концепции болезней цивилизации » ( Москва, 2007 ) Научно- практической конференции « Актуальные вопросы образования, науки и производства в фармации » ( Ташкент, 2009 ). Публикации . Основное содержание работы отражено в 33 научных публикациях , в том числе в 14 статьях в изданиях, входящих в перечень ВАК ведущих рецензируемых научных журналов; опубликована 1 монография.

Личный вклад автора в работы, выполненные в соавторстве состоял в постановке общих и решении конкретных задач, активном участии во всех этапах теоретических и экспериментальных исследований, систематизации, обобщении и анализе полученных результатов.

Автор искренне признателен профессору, д.фарм.н. В.Ю.Решетняку и профессору, д.фарм.н., д.пед.н. В.А. Попкову за внимательное отношение к работе и обсуждение полученных результатов. Автор также благодарен своим соавторам и коллегам: А.А.Иванову, О.А.Шпигуну, М.Я.Мельникову, С.Э.Кондакову, О.В.Нестеровой, А.Н.Фетисовой, А.В.Пирогову.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, четырех глав, общих выводов и списка литературы. Работа изложена на 315 страницах машинописного текста, содержит 76 рисунков, 40 таблиц и 313 литературных ссылок.

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ГЖХ- газо- жидкостная хроматография; ИЭХ- ионо- эксклюзионная хроматография; ТУ- технические условия;

МДРТ- максимально допустимая рабочая температура;

МС- масс-спектрометрия;

ГХ- газовая хроматография;

ИКС- инАпакпасная фуоье- спектооскопия;

ill s ± ±

АЭД- атомно- эмиссионный детектор;

ОФС- общая фармстатья;

НД- нормативная документация;

JIC- лекарственные средства;

JTPC- лекарственное растительное сырье;

ИУ- индекс удерживания;

RSD- relative standard deviation- относительное стандартное отклонение;

ЯМР- ядерный магнитный резонанс;

JIK- летучие компоненты;

ЭД- эликсир «Демидовский»;

ЭМ- эфирные масла;

НГМ- настойки гомеопатические матричные; ВС- высушенное сырье; ДВБ- дивинилбензол; К адС- коэффициент поглощения;

Da- коэффициент распределения вещества между подвижной фазой и окклюдированной жидкостью.

Заключение диссертации по теме «Фармацевтическая химия, фармакогнозия», Кузьменко, Алексей Николаевич

ОБЩИЕ ВЫВОДЫ

Проведено изучение литературных данных, касающихся современного состояния хроматографических методов, внедренных в фармацевтическую практику в приложении к стандартизации лекарственного растительного сырья и сборов на его основе, степени применяемости данных методов в действующей документации. Сделан вывод о явной недостаточности внедрения данных методов в современную фармацевтическую практику.

Выполнен скрининг более 40 применяющихся видов лекарственного растительного сырья в целях выявления наличия специфических веществ-маркеров, позволяющих эффективно стандартизовать данное сырье методом газо-жидкостной хроматографии с масс-селективным детектированием для контроля его качества и выявления фальсификаций. Для 19 видов лекарственного растительного сырья обоснован выбор специфических веществ-маркеров при газохроматографическом анализе.

Среди найденных веществ-маркеров выявлены как высокоспецифичные, присущие лишь данному виду растительного сырья((2г)-2(гекса-2,4-диин-1-илиден)-1,6-диоксаспиро[4,4]нон-3-ен для ромашки аптечной, кумарин и гидрокумарин для донника лекарственного, изовалериановая кислота для валерианы лекарственной, бициклические сесквитерпены кадинанового типа для календулы лекарственной), так и не обладающие особой специфичностью. Для ряда лекарственных растений, имеющих в своем составе высокоспецифические вещества-маркеры, установлено минимальное содержание данного вида растительного сырья в лекарственных сборах, при котором возможна стандартизация по этому виду сырья.

Для растений, в составе которых не обнаружено содержания высокоспецифических веществ (эвкалипт прутьевидный, душица обыкновенная, пижма обыкновенная и др.), предложена их стандартизация с использованием «хроматографического образа», основой которого является ряд «реперных» соединений (гексагидрофарензил ацетон, сквален, эвкалиптол, пинен, терпинеол, кариофиллен, фелландрен, спатуленол, гермакрен)

Предложен алгоритм отбора лекарственных растительных сборов, для стандартизации которых метод газо-жидкостной хроматографии может быть весьма эффективным. В качестве модельных отобрано 10 сборов, для них всесторонне обсуждены хроматографические условия, позволяющие проводить качественный и количественный анализ данных сборов, а также гарантировать их подлинность. Указаны виды сырья, наиболее успешно стандартизуемые по своему качественному и количественному содержанию в данных сборах. Изучена степень перехода веществ-маркеров из растительного сырья в состав сборов, на основании этих данных проведена классификация данных веществ по степени их пригодности для идентификации конкретных видов сырья в растительных сборах.

Для тех видов лекарственного растительного сырья, для которых стандартизация методом газо-жидкостной хроматографии недостаточно эффективна (зверобой продырявленный, чистотел большой, девясил высокий и др.), предложен метод ионо-эксклюзионной хроматографии (ИЭХ) в качестве дополняющего метода. Методом ИЭХ изучено 37 видов лекарственного растительного сырья. Предложен алгоритм выбора того или иного метода, или их совместного использования.

Из одиннадцати исследованных ИЭХ сорбентов выбраны два наиболее подходящих для эффективного и селективного разделения смесей моно- и дикарбоновых и оксикислот, а также ароматических карбоновых кислот. Для алифатических карбоновых кислот наиболее удачным признан Агтпех Q-15S (8% сшивки, размер частиц 22 ± 3 мкм, емкость 1,7 мэкв/мл, гелевого типа) при использовании кондуктометрического детектирования, для ароматических карбоновых кислот рекомендован сорбент Аттех А5 (8% сшивки, размер частиц 13 ± 2 мкм, емкость 1,7 мэкв/мл) при использовании УФ-детектора.

8. Для каждого из указанных сорбентов выбран наиболее подходящий для аналитических целей элюент. Для сорбента Аттех <3-158 рекомендована бензойная кислотаз как имеющая наибольшее сродство к смоле. Для сорбента Аттех А5 из трех изученных минеральных кислот (серная, фосфорная, соляная) сделан выбор в пользу серной кислоты, как дающей наилучшее разделение и не обладающей нежелательными эффектами (комплексообразование, коррозионная активность).

9. Установлены аналитические характеристики метода ИЭХ с кондуктометрическим детектированием для определения ряда карбоновых кислот.

10. Методом ИЭХ с кондуктометрическим и УФ-детектированием идентифицированы и количественно определены в водных настоях и отварах лекарственных растений биологически активные карбоновые кислоты, в том числе: одноосновные (уксусная, валериановая), двухосновные (щавелевая, янтарная), оксикислоты (яблочная, лимонная, винная), дикарбоновые кислоты этиленового ряда (фумаровая). Проведена корреляция между фармакологическим действием лекарственных растений и содержанием в них карбоновых кислот. Установлено, что растения, обладающие противовоспалительным действием, обычно содержат янтарную кислоту.

Список литературы диссертационного исследования доктор фармацевтических наук Кузьменко, Алексей Николаевич, 2013 год

ЦИТИРУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА

1. Ногаре С.Д., Джувет Р.С. Газо- жидкостная хроматография. Теория и практика. Л., « Недра ». 1966.

2. Purnell Н. Gas chromatography, New York, London. John Wiley and Sons . 1962. 354 p.

3. Король A.H. Неподвижная фаза в газо- жидкостной хроматографии. -Киев.:Медицина,- 1969.- 250с.

4. Gas chromatography. Applied Science Laboratories Inc. News Letters N7 . April 1964.

5. Trash C.R. Methylsilicones- their chemistry and use gas chromatographic liquid phases // J. Chromat. Sci. 1973. 11. p. 195.

6. Coleman A.E. Chemistry of liquid phases- other silicones // J. Chromat. Sci. 1973. 11. p.198.

7. Rotzsche H. Stationary phases in gas chromatography. Elsevier. Amsterdam. 1991.

8. Baiulesu G.E., Ilie V.A. Stationary phases in gas chromatography. Pergamon Press . Oxford. 1975.

9. M. J. D. Low, S. K. Freeman Measurements of infrared spectra of gas-liquid chromatography fractions using multiple-scan interference spectrometry // Anal. Chem. 1967. 39 (2) .p. 194-198.

10. Зенкевич И.Г. Аналитические параметры компонентов эфирных масел для их хроматографической и хромато- масс- спектрометрической идентификации. Моно- и сесквитерпеноиды // Растит, ресурсы. 1996. 32. 1,2. с. 48-58.

11. Сегуру Н.В., Рудакова И.П., Вандышев В.В., Самылина И.А. Методы контроля качества эфирных масел // Фармация . 2005. 3. с.3-5.

12. М. J. D. Low, S. К. Freeman Measurements of infrared spectra of gas-liquid chromatography fractions using multiple-scan interference spectrometry // Anal. Chem. 1967. 39 (2). p. 194-198.

13. G. T. Reedy, S. Bourne, P. T. Cunningham Gas chromatography/infrared matrix isolation spectrometry//Anal. Chem. 1979. 51(2). p. 1535-1540.

14. Norton K.L., Griffiths P.R. Comparison of direct deposition and flow- cell gas chromatography- Fourier spectrometry of barbiturates // J. Chromatography. 1995. 703. 1-2. p. 383

15. White R. Fourier transform infrared spectroscopy and its application, Marcel Dekker, New York, 1990.

16. Zhang Y., Chen J., Lei Y., Zhou Q., Sun S., Noda I. Evaluation of different grades of ginseng using Fourier-transform infrared and two-dimensional infrared correlation spectroscopy //J. of Molecular Structure. 2010. 974. 1-3. p. 94-102.

17.Valente A.L.R., Uden P.C. Analyst .1990.v.115. p.525.HPG2350A Atomic emission detector for gas chromatography. Hewlett- Packard Co. 1995. 6 p.

18. Баффингтон P., Применение атомно- эмиссионной спектроскопии в высокочастотном разряде для газовой хроматографии. М., 1994. 78с.

19. Uden P.C. Selective detectors, environmental, industrial and biochemical applications. Ed. by R.E.Sievers, New York, Wiley , 1995, p. 143- 169.

20. H.Tao, R. B. Rajendran, C. R. Quetel, T. Nakazato, M. Tominaga, A. Miyazaki Tin

speciation in the femtogram range in open ocean seawater by gas chromatography/inductively

coupled plasma mass spectrometry using a shield torch at normal plasma conditions // Anal. Chem. 1999. 71. 19. p. 4208- 4215.

21. B. D. Quimby, J. J. Sulliva Evaluation of a microwave cavity, discharge tube, and gas flow system for combined gas chromatography-atomic emission detection // Anal. Chem. 1990. 62. 10. p. 1027- 1034.

22. Дементьева H.H., Завражная Т.А., Пахомов В.П., Самылина И.А. Разработка проекта общей фармакопейной статьи « Газовая хроматография » // Фармация . 2007. 5. с.З.

23. European Pharmacopoeia , 4, 2004.

24. United States Pharmacopoeia, 2004, USP 27- NF 22.

25. British Pharmacopoeia , 2004,- Vol. II, Appendix III.

26. DAB 10, 1997.

27. Белоусова Н.И., Хан В.А. Бициклические монотерпеноиды эфирного масла Ledum palustre // Химия природн. соединений. 1990. №5. с.27-29

28. Белоусова Н.И., Ткачев А.В., Шакиров М.М., Хан В.А. Новые терпеноиды эфирного масла Ledum palustre // Химия природн. соединений. 1990. №1. с.24-29

29. Коновалова О.А., Рыбалко К.С. Биологически активные вещества Ledum palustre// Растит. Ресурсы. 1987. 23. 2. с.295-309

30. Gretsusnikova Т., Jarvan К., Koel М. Comparative analysis of the composition of the essential oil from the shoots, leaves and stems the wild Ledum palustre L. from Estonia //Procedia Chemistry. 2010. 2. l.p. 168-173.

31. Белоусова Н.И., Хан В.А., Березовская Т.П., Саленко B.JL, Вялков А.И., Дмитрук С.Е. Состав эфирного масла Ledum palustre из Томской области// Растит. Ресурсы. 1991. 27. З.с.81-90

32. Ylipahkala Т.М., Jalonen J.E. Isolation of very volatile compounds from the leaves ofLedum palustre using the purge & trap technique // Chromatographia. 2009. 34. 3-4. p. 159162.

33. Butkiene R., Sakociute V., Latvenaite D., Mockute D. Composition of young and aged shoot essential oils ofthe wild Ledum palustre L. // Chemija. 2008. 19. 2. p. 19-24.

34. Фурса H.C., Коротаева M.C. Определение фенольных соединений мази «Ledum» // Фармация, 2006. №2. с.7-9.

35. Соколов С.Я. Фитотерапия и фитофармакология. М. 2000.

36. Gende L.B., Maggi D.G, Fritz R., Eguaras M.J., Bailac P.N., Ponzi M.I. Antimicrobial activity of Pimpinella anisum and Foeniculum vulgare essential oils against Paenibacillus larvae // The Journal of Essential Oil Research. January- february 2009. p. 35-40.

37. Burkhardt G., Reichling J., Martin R., Becker H. Terpene hydrocarbons in Pimpinella anisum L. // Pharmacy world and Science. 1986. 8. 3. p. 190-193.

38. Orav A., Raal A., Arak E. Essential oil composition of Pimpinella anisum L. fruits from various European countries //Nat. Prod. Res. 2008. 22. 3. p. 227-232.

39. Tabanca N., Demirci В., Kirimer N., Baser КН., Bedir E., Khan IA., Wedge DE. Gas chromatographic-mass spectrometric analysis of essential oils from Pimpinella aurea, Pimpinella corymbosa, Pimpinella peregrina and Pimpinella puberula gathered from Eastern and Southern Turkey // J. Chromatogr. A. 2005. 1097. 1-2. p. 192-198.

40. Сур.С.В. Газохроматографическое определение камфоры и 1,8-цинеола в растительном сырье и настоях шалфея (Salvia officinalis L.) // Хим.фарм.ж. 1991. 4. с. 5860.

41. Wise M.L., Savage T.J., Katahira E., Croteau R. Monoterpene Synthases from Common Sage (Salvia officinalis) // The Journal of Biological Chemistry .1998. 273. 24. p. 14891- 14899.

42. Dob Т., Berramdane Т., Dahmane D., Benabdelkader Т., Chelghoum C. Chemical composition of the essential oil of Salvia officinalis from Algeria // Chemistry of Natural Compounds. 2007. 43. 4. p. 491-494.

43. Hayouni el A., Chraief I., Abedrabba M., Bouix M., Leveau JY., Mohammed H., Hamdi M. Tunisian Salvia officinalis L. and Schinus molle L. essential oils: their chemical compositions and their preservative effects against Salmonella inoculated in minced beef meat // Int. J. Food Microbiol. 2008. 125. 3. p. 242-251.

44. Santos-Gomes PC., Fernandes-Ferreira M. Essential oils produced by in vitro shoots of sage (Salvia officinalis L.) // J. Agric. Food Chem. 2003. 51. 8. p. 2260- 2266.

45. Макаров В.Г., Краснов К.А., Тюкавкина H.A., Руленко И.А. Аналитические пути стандартизации спиртосодержащих жидких лекарственных форм фитопрепаратов. 1. Исследование состава летучих компонентов препарата « Эликсир Демидовский // Фармация. 1996. 5. с. 10.

46. Santoro GF, Cardoso MG, Guimaraes LG, Mendon£a LZ, Soares MJ. Trypanosoma cruzi: activity of essential oils from Achillea millefolium L., Syzygium aromaticum L. and Ocimum basilicum L. on epimastigotes and trypomastigotes // Exp. Parasitol. 2007. 116. 3. p. 283-290.

47. Orav A, Arak E, Raal A. Phytochemical analysis of the essential oil of Achillea

millefolium L. from various European Countries //Nat. Prod. Res. 2006. 20. 12. p. 1082-1088.

278

48. Dokhani S, Cottrell T, Khajeddin J, Mazza G. Analysis of aroma and phenolic components of selected Achillea species // Plant Foods Hum. Nutr. 2005. 60. 2. p. 55-62.

49. Azizi M, Chizzola R, Ghani A, Oroojalian F. Composition at different development stages of the essential oil of four Achillea species grown in Iran // Nat. Prod. Commun. 2010. 5. 2. p. 283-90.

50. Candan F, Unlu M, Tepe B, Daferera D, Polissiou M, Sokmen A, Akpulat HA. Antioxidant and antimicrobial activity of the essential oil and methanol extracts of Achillea millefolium subsp. millefolium Afan. (Asteraceae) // J. Ethnopharmacol. 2003. 87. 2-3. p. 21520.

51. Kotan R, Cakir A, Dadasoglu F, Aydin T, Cakmakci R, Ozer H, Kordali S, Mete E, Dikbas N. Antibacterial activities of essential oils and extracts of Turkish Achillea, Satureja and Thymus species against plant pathogenic bacteria // J. Sci. Food Agric. 2010. 90. 1. p. 145-160.

52. Коновалова O.A., Рыбалко K.C. Биологически активные вещества Calendula officinalis L .//Раст. ресурсы. 1990. 26. 3 .с.448.

53. Куркин А.В ., Шарова О.В. Разработка методик стандартизации цветков ноготков // Фармация. 2007. 8. с.11.

54. Gazim Z.C., Rezende С.М., Fraga S.R., FilhoB.P.D., Nakamura C.V., Cortez D.A.G. Analysis of the essential oils from Calendula officinalis growing in Brazil using three different extraction procedures // Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. 2008. 44. 3. p.391- 395.

55. Chalchat J.C., Garry R.Ph., Michet A. Chemical composition of essential oil of Calendula officinalis L. (pot marigold) // Flavour and Fragrance Journal. 1991. 6. 3. p. 189- 192.

56. Judzentiene A., Mockute D. The inflorescence and leaf essential oils of Tanacetum vulgare L. var. vulgare growing wild in Lithuania // Biochemical Systematics and Ecology. 2005. 33. 5. p. 487-498.

57. Keskitalo M., Pehu E., Simon J.E. Variation in volatile compounds from tansy (Tanacetum vulgare L.) related to genetic and morphological differences of genotypes // Biochem. Syst. Ecol. 2001. 29. 3. p. 267-285.

58. Mockute D., Judzentiene A. Composition of the essential oils of Tanacetum vulgare L. growing wild in Vilnius district (Lithuania) // The Journal of Essential Oil Research. November-December 2004. p.35-40.

59. Tolouee M., Alinezhad S., Saberi R., Eslamifar A., Zad S.J., Jaimand K., Taeb J., Rezaee M.B., Kawachi M., Shams-Ghahfarokhi M., Razzaghi-Abyaneh M. Effect of Matricaria chamomilla L. flower essential oil on the growth and ultrastructure of Aspergillus niger van Tieghem // International Journal of Food Microbiology. 2010. 139. 3. p. 127- 133.

60. Zekovic Z., Pekic B., Lepojevic Z., Petrovic L. Chromatography in our investigations of camomile (Matricaria chamomilla L.) // Chromatographia. 1994. 39. 9-10. p. 587-590.

61. Owlia P., Rasooli I., Saderi H. Antistreptococcal and Antioxidant Activity of Essential Oil from Matricaria chamomilla L // Research Journal of Biological Sciences. 2007. 2. 2. p. 155160.

62. Heuskin S.„ Godin B., Leroy P., Capella Q., Wathelet J.-P., Verheggen F., Haubruge E., Lognay G. Fast gas chromatography characterisation of purified semiochemicals from essential oils of Matricaria chamomilla L. (Asteraceae) and Nepeta cataria L. (Lamiaceae) // J. Chromatogr. A. 2009. 1217. 14. p. 2768-2775.

63. Iordache A., Culea M., Gherman C., Cozar O. Characterization of some plant extracts by GC-MS // Nuclear Instruments and Methods in Physics Research Section B: Beam Interactions with Materials and Atoms. 2009. 267. 2. p. 338-342.

64. Derwich E., Benziane Z., Taouil R., Senhaji O., Touzani M. Aromatic plants of Morocco: GC/MS analysis of the essential oils of leaves of Mentha piperita // Advances in Environmental Biology. 2010. 4. l.p. 80-85.

65. Gherman C., Culea M., Cozar O. Comparative analysis of some active principles of herb plants by GC/MS // Talanta. 2000. 53. 1. p. 253- 262.

66. Baranauskiene R., Bylaite E., Zukauskaite J., Venskutonis R.P. Flavor retention of Peppermint (Mentha piperita L.) essential oil spray-dried in modified starches during encapsulation and storage // J. Agric. Food Chem. 2007. 55. 8. p. 3027-3036.

67. Yadegarinia D., Gachkar L., Rezaei M.B., Taghizadeh M., Astaneh S.A., Rasooli I. Biochemical activities of Iranian Mentha piperita L. and Myrtus communis L. essential oils // Phytochemistry. 2006. 67. 12. p. 1249- 1255.

68. Dai J., Orsat V., Vijaya Raghavan G.S., YaylayaV. Investigation of various factors for the extraction of peppermint (Mentha piperita L.) leaves // J.of Food Engineering. 2010. 96. 4. p. 540-543.

69. Tomczykova M., Gudej J., Majda T., Gora J. Essential oils of Bidens tripartita L. The Journal of Essential Oil Research. November- December 2005. p.47-52.

70. Maruska A., Proscevicius J., Bimbiraite-SurvilieneK., Kornysova O., Ragazinskiene O., Ratautaite V. Comparison of phytochemical composition of medicinal plants by means of chromatographic and related techniques // Procedia Chemistry. 2010. 2. l.p. 83-91.

71. Tomczykowa M., TomczykM., Jakoniuk P., Tryniszewska E. Antimicrobial and

antifungal activities of the extracts and essential oils of Bidens tripartite // Folia Histochemica et Cytobiologica. 2008. 46. 3. p. 389

72. Adam K., Sivropoulou A., Kokkini S., Lanaras T., Arsenakis M. Antifungal activities of Origanum vulgare subsp. hirtum, Mentha spicata, Lavandula angustifolia, and Salvia fruticosa essential oils against human pathogenic fungi // Journal of Agricultural and Food Chemistry. 1998. 46. 5. p. 1739-1745.

73. Derwich E., Benziane Z., Manar A., Boukir A., Taouil R. Phytochemical analysis and in vitro antibacterial activity of the essential oil of Origanum vulgare from Morocco // American-Eurasian Journal of Scientific Research. 2010. 5. 2. p. 120-129.

74. Mechergui K., Coelho J.A., Serra M.C., Lamine S.B., Boukhchina S., Khouja M.L. Essential oils of Origanum vulgare L. subsp. glandulosum (Desf.) Ietswaart from Tunisia: chemical composition and antioxidant activity // J.Sci. Food Agric. 2010. 90. 10. p.1745-1749.

75. Crocoll C., Asbach J., Novak J., Gershenzon J., Degenhardt J. Terpene synthases of oregano (Origanum vulgare L.) and their roles in the pathway and regulation of terpene biosynthesis // Plant. Mol. Biol. 2010. 73. 6. p. 587-603.

76. De Martino L., De Feo V., Formisano C., Mignola E., Senatore F. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oils from three chemotypes of Origanum vulgare L. ssp. hirtum (Link) Ietswaart growing wild in Campania (Southern Italy) // Molecules. 2009. 14. 8. p. 2735-2746.

77. Chorianopoulos N., Kalpoutzakis E., Aligiannis N., Mitaku S., Nychas G.J., Haroutounian S.A. Essential oils of Satureja, Origanum, and Thymus species: chemical composition and antibacterial activities against foodborne pathogens // J. Agric. Food. Chem. 2004. 52. 26. p.8261-8267.

78. Джумаев Х.К., Ткаченко К.Г., Зенкевич И.Г. и др. Состав эфирного масла Origanum tyttanthum Grontsh. из южного Узбекистана. // Раст. Ресурсы. 1989. 25. 2. с.238-243.

79. Сегуру Н.В., Рудакова И.П., Вандышев В.В., Самылина И.А. Методы контроля качества эфирных масел // Фармация . 2005. 3. с.3-5.

80. Baser К.Н. Biological and pharmacological activities of carvacrol and carvacrol bearing essential oils // Current Pharmaceutical Design. 2008. 14. 29. p. 3106-3119.

81. Santoyo S., Cavero S., Jaime L., Ibañez E., Señoráns F.J., Reglero G. Supercritical carbon dioxide extraction of compounds with antimicrobial activity from Origanum vulgare L.: determination of optimal extraction parameters // J. Food Protection. 2006. 69. 2. p. 369-75.

82. Derengowski L.S., De-Souza-Silva C., Braz S.V., Mello-De-Sousa T.M., Báo S.N., Kyaw C.M., Silva-Pereira I. Antimicrobial effect of farnesol, a Candida albicans quorum sensing molecule, on Paracoccidioides brasiliensis growth and morphogenesis // Ann. Clin. Microbiol. Antimicrob. 2009. 8. 13. p. 28-35.

83. Попов H.B., Андреева И.Н., Гаврилин M.B. Определение танина в сырье и препаратах кровохлебки лекарственной методом ВЭЖ X // Хим.-фарм.ж. 2003. 7. с. 2426.

84. Ryu S.Y., Lee С.К., Ahn J.W., Lee S.H., Zee O.P. Antiviral activity of triterpenoid derivatives // Archives of Pharmacal Research. 1993. 16. 4. p. 339-342.

85. Sauerwein M., Yoshimatsu K., Shimomura K. Further approaches in the production of secondary metabolites by plant tissues cultures // Plant Tissues Culture Letters. 1992. 9. 1. p. 1-9.

86. Ishimaru K., Hirose M., Takahashi K., Koyama K., Shimomura K. Tannin production in root culture of Sanguisorba officinalis // Phytochemistry. 1990. 29. 12. p. 3827- 3830.

87. Xin Liu, Yanxing Cui, Qiang Yu, Biao Yu. Triterpenoids from Sanguisorba officinalis // Phytochemistry. 2005. 66. 14. p. 1671-1679.

88. Mimak Y., Fukushima M., Yokosuka A., Sashida Y., Furuya S., Sakagami H.

Triterpene glycosides from the roots of Sanguisorba officinalis // Phytochemistry. 2001. 57. 5. p. 773-779.

89. Xin Liu, Bingfeng Shi, Biao Yu Four new dimeric triterpene glucosides from Sanguisorba officinalis // Tetrahedron. 2004. 50. 6. p. 11647- 11654.

90. Mitsuo Miyazawa M., Kameoka H.Volatile flavour components of glycyrrhizae radix (Glycyrrhiza glabra L. var. glandulifera Regel et Herder) from China // Flavour and Fragrance Journal. 1990. 5.3. p. 157-160.

91. Young-Won Chin, Hyun-Ah Jung, Yue Liu, Bao-Ning Su, Castoro J.A. Keller W.J., Pereira M.A., Kinghorn A.D. Anti-oxidant constituents of the roots and stolons of licorice (Glycyrrhiza glabra) // Agricultural and Food Chemistry. 2007. 55. 12. p. 4691-^1697

92. Sokovic M.D., Vukojevic J., Marin P.D., Brkic D.D., Vajs V., van Griensven L.J. Chemical composition of essential oils of Thymus and Mentha species and their antifungal activities. //Molecules. 2009. 14. 1. p .238-249.

93. Hudaib M., Speroni E., Di Pietra A. M., Cavrini V. GC/MS evaluation of thyme (Thymus vulgaris L.) oil composition and variations during the vegetative cycle // Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 2002. 29. 4. p.691-700.

94. Jordán M.J., Martínez R.M., Goodner K.L., Baldwin E.A., Sotomayor J.A. Seasonal variation of Thymus hyemalis Lange and Spanish Thymus vulgaris L. essential oils composition // Industrial Crops and Products. 2006. 24. 3 . p. 253-263.

95. Rota M.C., Herrera A., Martínez R.M., Sotomayor J.A., Jordán M.J. Antimicrobial activity and chemical composition of Thymus vulgaris, Thymus zygis and Thymus hyemalis essential oils // Food Control. 2008. 19. 7. p. 681-687.

96. Piccaglia R., Marotti M. Composition of the essential oil of an italian Thymus vulgaris L. ecotype // Flavour and Fragrance Journal. 1991. 6. 3. p. 241-244.

97. Алякин A.A., Ефремов А.А., Качин С.В., Данилова О.О. Фракционный состав эфирного масла душицы обыкновенной Красноярского края // Химия растит, сырья. 2010. I.e. 99- 104.

98. Писарев Д.И., Денисенко О.Н. Состав эфирных масел хвои и плодов можжевельника обыкновенного // Фармация. 2005. 1. с. 12-15.

99. Franke R, Schilcher Н. Chamomile: Industrial Profile. CRS Press, USA. 2005. 289 p.

100. Schwob I., Bessiere J.-M., Masotti V., Viano J. Changes in essential oil composition in Saint John's wort (Hypericum perforatum L.) aerial parts during its phenological cycle // Biochemical Systematics and Ecology. 2004. 32. 8. p.735- 745.

101. Schwob I., Bessiere J.-M., Viano J. Composition of the essential oils of Hypericum perforatum L. from southeastern France // Comptes Rendus Biologies. 2002. 325. 7. p. 781-785.

102. Cirak C., Bertoli A., Pistelli L., Seyis F. Essential oil composition and variability of Hypericum perforatum from wild populations of northern Turkey // Pharm. Biol. 2010. 48. 8. p. 906-914.

103. Pintore G., Chessa M., Boatto G.P., Cerri R. Essential Oil Composition of Hypericum perforatum L. var. angustifolium DC Growing Wild in Sardinia (Italy) // The Journal of Essential Oil Research. September- October 2005. p.37-43.

104. Никитина А.С., Попова О.И., Ушакова JI.C., Чумакова В.В„ Иванова Л.И. Изучение эфирного масла змееголовника молдавского, культивируемого в условиях ставропольского края //Хим.- фарм. Ж. 2008. №4 . с. 35-39.

105. Chapman J.V., Meyer R., Kindscher К., Niemann S. Chemical constituents of Acorus calamus from a Kansas Prairie // www.cssco.com/files/tp316.pdf

106. Bjornstad K., Helander A., Hulten P., Beck O. Bioanalytical investigation of asarone in connection with Acorus calamus oil intoxications // J. Anal. Toxicol. 2009. 33. 9. p. 604-609.

107. Kumar R„ Prakash O., Pan A.K., Hore S.K., Chanotiya C.S., Mathela C.S. Compositional variations and anthelmentic activity of essential oils from rhizomes of different wild populations of Acorus calamus L. and its major component, beta-Asarone // Nat. Prod. Commun. 2009. 4. 2. p. 275-278.

108. Du Z., Clery R.A., Hammond C.J. Volatiles from leaves and rhizomes of Fragrant Acorus spp. (Acoraceae) // Chem. Biodivers. 2008. 5. 6. p. 887-895

109. Cantrell C.L., Mamonov L.K., Ryabushkina N., Kustova T.S., Fischer N.H., Schrader K.K. Bioassay- guided isolation of anti- algal constituents from Inula helenium and Limonium myrianthum // Arkivoc. 2007. Issue in honor of Prof. Atta- ur- Rahman, p. 65-75.

110. Trendafilova A., Chanev C., Todorova M. Ultrasound-assisted extraction of alantolactone and isoalantolactone from Inula helenium roots // Pharmacognosy Magazine. 2010. 6. 23. p. 234-237.

111. Maciel M.V., Morais S.M., Bevilaqua C.M., Silva R.A., Barros R.S., Sousa R.N., Sousa L.C., Brito E.S., Souza-Neto M.A. Chemical composition of Eucalyptus spp. essential oils and their insecticidal effects on Lutzomyia longipalpis // Vet. Parasitol. 2010. 167. 1. p. 1-7.

112. Silvestre A.J.D., Cavaleiro J.A.S., Delmond B., Filliatre C., Bourgeois G. The essential oil of Eucalyptus globulus labill. from Portugal // Flavour and Fragrance Journal. 1994. 9. 2. p. 51-53.

113. George D.R., Masic D., Sparagano O.A., Guy J.H. Variation in chemical composition and acaricidal activity against Dermanyssus gallinae of four eucalyptus essential oils // Exp. Appl. Acarol. 2009. 48. 1-2. p. 43-50.

114. Kallio H., Kerrola K., Alhonmaki P. Carvone and limonene in caraway fruits (Carum carvi L.) analyzed by supercritical carbon dioxide extraction-gas chromatography // J. Agric. Food Chem. 1994. 42. 11. p. 2478-2485

115. Laribi B., Kouki K., Mougou A., Marzouk B. Fatty acid and essential oil composition of three Tunisian caraway (Carum carvi L.) seed ecotypes // Journal of the Science of Food and Agriculture. 2010. 90. 3. p. 391-396.

116. Safaralie A., Fatemi S., Sefidkon F. Essential oil composition of Valeriana officinalis L. roots cultivated in Iran. Comparative analysis between supercritical C02 extraction and hydrodistillation//J. Chromatogr. A. 2008. 1180. 1-2. p. 159-164.

117. Bos R., Hendriks H., Bruins A.P., Kloosterman J., Sipma G. Isolation and identification of valerenane sesquiterpenoids from Valeriana officinalis // Phytochem

istry. 1985.25. l.p. 133-135.

118. Pavlovic M., Kovacevic N., Tzakou O., Couladis M. Essential oil of Valeriana

officinalis L. s.l. growing wild in Western Serbia // The Journal of Essential Oil Research. September- October 2004. p.37-43.

119. Letchamo W., Ward W., Heard B., Heard D. Essential oil of Valeriana officinalis L. cultivars and their antimicrobial activity as influenced by harvesting time under commercial organic cultivation // J. Agric. Food Chem. 2004. 52. 12. p. 3925-3919.

120. Adinee J., Piri K., Karami O. Essential oil component in flower of Lemon Balm (Melissa officinalis ) // American Journal of Biochemistry and Biotechnology. 2008. 4. 3. p. 277278.

121. Schnitzler P., Schuhmacher A., Astani A., Reichling J. Melissa officinalis oil affects infectivity of enveloped herpesviruses // Phytomedicine. 2008. 15. 9. p. 734-40.

122. Mimica-Dukic N., Bozin B., Sokovic M., Simin N. Antimicrobial and antioxidant activities of Melissa officinalis L. (Lamiaceae) essential oil // J. Agric. Food Chem. 2004. 52. 9. p. 2485-2489.

123. Koliopoulos G, Pitarokili D, Kioulos E, Michaelakis A, Tzakou O. Chemical composition and larvicidal evaluation of Mentha, Salvia, and Melissa essential oils against the West Nile virus mosquito Culex pipiens // Parasitol. Res. 2010. 107. 2. p. 327-35.

124. Mockutë D., Bernotienë G., Jud^entienë A. Storage-induced changes in essential oil compositionof Leonurus cardiaca L. plants growing wild inVilnius and of commercial herbs // Chemija. 2005. 16. 2. p. 29- 32.

125. Vernin G., Boniface C., Metzger J., Ghiglione C., Hammoud A., Kim-Nuor Suon,

Fraisse D., Pârkânyi C. GC-MS-SPECMA bank analysis of Juniperus communis needles and berries // Phytochemistry. 1988. 27. 4. p.1061- 1064.

126. Orav A., Koel M., Kailas T., Miïiïrisepp M. Comparative analysis of the composition of essential oils and supercritical carbon dioxide extracts from the berries and needles of Estonian juniper (Juniperus communis L.) // Procedia chemistry. 2010. 2. 1. p. 161-167.

127. Jennings W., Shibamoto T. Qualitative analysis of flavour and fragrance volatiles by glass capillary gas chromatography. N.Y. 1980.

128. Formacek V. Essential oil analysis by capillary gas chromatography and Carbon-13 NMR spectroscopy. N.Y. 1983.

129. Исидоров В.А. Летучие выделения растений: состав, скорость эмиссии и экологическая роль. СПб. 1994.

130. Sur S.V., Tuljupa F. М., Sur L. I. Gas chromatographic determination of monoterpenes in essential oil medicinal plants // Journal of Chromatography A. 1991. 542. p. 451-458.

131. Соколов А.И. Применение высокоэффективной селективной газовой хроматографии в оценке качества и контроле производства лекарственных средств группы терпеноидов. Автореф. дис. канд. фарм.наук. М. 2001.

132. Писарев Д.И., Денисенко О.Н. Состав эфирных масел хвои и плодов можжевельника длиннохвойного // Фармация . 2005. 1. с.12-14.

133. Ochocka J.R., Asztemborska М., Zook D.R., Sybilska D., Perez G., Ossicini L. Enantiomers of monoterpenic hydrocarbons in essential oils from Juniperus communis // Phytochemistry. 1997. 44. 5. p.869- 873.

134. Ханина M.A., Серых E.A., Березовская Т.П., Хан В.А. Сесквитерпеноиды эфирного масла Artemisia jacutica Drob. // Растит, ресурсы. 1991. 27. 3. с. 90-91 .

135. Зарубина Л.А., Калинкина Г.И., Дембицкий Г.И. Химический состав и антимикробные свойства эфирного масла Artemisia glauca Pall. // Растит, ресурсы. 1993. 29. 3. с. 70-73.

136. Lopes-Lutz D., Alviano D. S., Alviano C. S., Kolodziejczyk P.P. Screening of chemical composition, antimicrobial and antioxidant activities of Artemisia essential oils. // Phytochemistry. 2008. 69. 8. p. 1732- 1738.

137. Abegaz В., Yohannes P.G. Constituents of the essential oil of Artemisia rehan // Phytochemistry. 1982. 21. 7. p. 1791- 1793.

138. Perez- Alonso M. J., Velasco- Negueruela A., Pala- Paul J., Sanz J. Variations in the essential oil composition of Artemisia pedemontana gathered in Spain: chemotype camphor-1,8-cineole and chemotype davanone // Biochemical Systematics and Ecology. 2003. 31. 1. p. 7784.

139. Тропникова И.В., Буданцев A.Jl., Зенкевич И.Г., Потехина Т.С. Компонентный состав эфирных масел некоторых видов рода Nepeta L., выращиваемых в Ленинградской обл., и их антимикробная активность // Раст. Ресурсы. 1999. 35. 3. с. 1-9.

140. Зенкевич И.Г., Васильев А.В. Сравнительная оценка информативности дополнительных данных при газохроматографической идентификации. Новые возможности использования коэффициентов распределения в системе гексан-ацетонитрил // Журн. аналит. химии. 1993. 48. 3. с. 473- 485.

141. Kalemba D., Kunicka A. Antibacterial and antifungal properties of essential oils // Current Medical Chemistry. 2003. 10. 10. p. 813-829.

142. Janssen A.M., Scheffer J.J., Baerheim Svendsen A. Antimicrobial activities of essential oils. A 1976-1986 literature review on possible application // Pharmaceutisch weekblad. Scientific edition. 1987. 9. 4. p. 193-197.

143. I§can G., Kirimer N., Ktirkciioglu M., Ba§er K.H., Demirci F. Antimicrobial screening of Mentha piperita essential oils // J. Agric. Food. Chem. 2002. 50. 14. p. 3943- 3946.

144. Макаров В.Г., Краснов К.А., Тюкавкина Н.А., Руленко И.А. Аналитические пути стандартизации спиртосодержащих жидких лекарственных форм фитопрепаратов. 1. Исследование состава летучих компонентов препарата « Эликсир Демидовский // Фармация. 1996. № 5. с. 10.

145. Настойки, экстракты, эликсиры и их стандартизация, п/ред. Багировой B.J1. и Северцева В.А. С-Пб. 2001.

146. Kloeti Е., Christen P., Kapetanidis I. // Fresenius Z. Anal.Chem .1985. 321. 4. p. 352354.

147. Mulkens A., Kapetanidis I. // Pharm. Acta Helv. 1988. 63. p. 266-270.

148. Костенникова З.П., Копытько Я.Ф. Изучение компонентного состава эфирного масла настоек гомеопатических матричных, содержащих терпеноиды // Фармация .1996. 6. с. 41-43.

149. Копытько Я.Ф., Даргаева Т.Д., Сокольская Т.А. Исследование гомеопатической настойки плауна булавовидного // Фармация . 2005. 2. с.32-34.

150. ВФС 42- 2799- 96 «Настойки матричные гомеопатические »

151. Liang Y.Z., Xie P., Chan К. Quality control of herbal medicines // Journal of Chromatography B. 2004. 812. p. 53-70.

152. Welsh W.J., Lin W., Tersigni S.H., Collantes E., Duta R., Carey M.S. Pharmaceutical Fingerprinting: Evaluation of Neural Networks and Chemometric Techniques for Distinguishing among Same-Product Manufacturers // Anal.Chem. 1996. 68. 19. p. 3473- 3482.

153. Xie P., Chen C., Liang Y.Z., Wang X., Tian R., Upton R. // Journal of Chromatography A. 2006. 1112. 1-2. p. 171-180.

154. Liang Y.,Z, Xie P.S., Chan K. Quality control of herbal medicines // Journal of Chromatography B. 2004. 812. 1-2. p. 53-70.

155. Drasar P., Moravcova J. Recent advances in analysis of Chinese medical plants and traditional medicines // Journal of Chromatography B. 2004. 812. 1-2. p. 3-21.

156. Gong F., Liang Y.Z., Xu Q-S., Chau F.T. Gas chromatography-mass spectrometry and chemometric resolution applied to the determination of essential oils in Cortex Cinnamomi // Journal of Chromatography A. 2001. 905. 1-2. p. 193-205.

157. Tyler V.E. Phytomedicines: Back to the Future // J. Nat. Prod. 1999. 62.11. p. 1589-1592.

158. Xu C.J., Liang Y.Z., Chau F.T. Identification of essential components of Houttuynia cordata by gas chromatography/mass spectrometry and the integrated chemometric approach // Talanta. 2005.68. l.p. 108-115.

159. Gong F., Liang Y.Z., Fung Y.S., Chau F.T. Correction of retention time shifts for chromatographic fingerprints of herbal medicines // Journal of Chromatography A. 2004. 1029. 1-2. p. 173-183.

160. LuH.M., Liang Y.Z., Yi L.Z., Wu X.J. Anti-inflammatory effect of Houttuynia cordata injection// Journal of Ethnopharmacology. 2006. 104. 1-2. p. 245-249.

161. Guo F.Q., Liang Y.Z., Xu C.J., Huang L.F. Determination of the volatile chemical constituents of Notoptergium incium by gas chromatography-mass spectrometry and iterative or non-iterative chemometrics resolution methods. // Journal of Chromatography A. 2003. 1016. 1. p. 99-110.

162. Gong F., Liang Y.Z., Xie P.S., Chau F.T. Information theory applied to chromatographic fingerprint of herbal medicine for quality control // Journal of Chromatography A. 2003. 1002. 1-2. p. 25-40.

163. Smith R.E. Ion Chromatography Applications. CRS Press, Boca Raton. 1988.

164. Fritz J.S. Principles and applications of ion-exclusion chromatography. // J. of Chromatogr. 1991. V.546. p.111-118.

165. Glod B.K. Principles and applications of ion-exclusion chromatography. // Acta Chromatographica. 1997. № 7. p.72-87.

166. Harlow G.A., Morman D.H. Automatic ion exclusion partition chromatography. // Anal. Chem. 1964. V.36. № 13. p.2438-2442.

167. Ohta K. Application of zirconium-modified silica-gel as a stationary phase in the ion-exclusion chromatography of carboxylic acids. II. Separation of aliphatic carboxylic acids with pyromellitic acid as eluent suppressed conductimetric detection. // J. of Chromatogr. 2001. A 920. p. 69-77.

168. Ohta K., Tanaka K., Haddad P.R. Ion-exclusion chromatography of aliphatic carboxylic acids on an unmodified silica gel column. // J. of Chromatogr. 1996. A739. p.359-365.

169. Ohta K., Tanaka K., Haddad P.R. Ion-exclusion chromatography of benzenecarboxylic acids on an unmodified silica gel column. // J. of Chromatogr. 1997. A782. p.33-40.

170. Chen Z.L., Adams M.A. Retention behavior and simultaneous separation of carboxylic and aromatic acids using ion-exclusion chromatography. // J. Liq. Chromatogr. and Relat. Technol. 1999. 22. 17. p.2595-2611.

171. Chen Z.L., Adams M. A. Simultaneous determination of aliphatic and aromatic acids in plant tissue extracts by ion-exclusion chromatography. // Anal. Chem. Acta, 1999. 386. p. 249256.

172. Haddad P.R., Ng K.L., Madden J.F. Developments in retention modeling in ionexchange and ion-exclusion chromatography. Spec. Publ. - R. Soc. Chem.239. (Advances in Ion-Exchange For Industry and Research). 1999. p.97-105.

173. Ng K.L., Paull В., Haddad P.R., Tanaka K. Retention modelling of electrostatic and adsorption effects of aliphatic and aromatic carboxylic acids in ion-exclusion chromatography // J. of Chromatogr. 1999. A850. p. 17-27.

174. Ng. K.L., Glod B.K., Dicinoski G.W., Haddad P.R. Retention modeling of electrostatic and adsorption effects of aliphatic and aromatic carboxylic acids in ion-exclusion chromatography. II. Calculation of adsorption coefficients in unbuffered eluents. // J. of Chromatogr. 2001. A920. p.41-49.

175. Pecina R., Bonn G., Burtscher E., Bobleter O. High-performance liquid chromatographic elution behaviour of alcohols, aldehydes, ketones, organic acids and carbohydrates in a strong cation-exchange stationary phase. // J. of Chromatogr. 1984. 287. p.245-258.

176. Стыскин E.JI., Пуинсон Л.Б., Браудэ Е.В. Практическая высоко-эффективная жидкостная хроматография. М: Химия, 1986. 288 с.

177. Hajos P., Nagy L. Retention behaviours and separation of carboxylic acids by ion-exclusion chromatography. // J. of Chromatogr. 1998. В 717. p.27-38.

178. Кунцевич Ю.Е., Тодрес И.M. Эффективность разделения глюкозы и фруктозы на сульфокатионитах различной степени сшивки. // Теория и практика сорбционных процессов. Изд. Воронежского унив. 1987. № 19. с.66.

179. Kuntz M.A., Dubin P.L., Kaplan J.J., Mehta M.S. Evaluation of models for size exclusion chromatography of asymmetric solutes. // J. Phys. Chem. 1994. 98. 28. p.7063-7067.

180. Jontre B.R. Prediction of retention characteristics of multiprotic anions in ion chromatography. //Anal. Chem. 1994. 66. 24. p.4466-4470.

181. Revillon A. Alternatives to size exclusion chromatography. // J. Liq. Chromatogr. 1994. V.17. № 14-15. P.2991-3023.

182. Несмеянов A.H., Несмеянов H.A. Начала органической химии. М: Химия, 1979. т.1. С. 151-405; т.2. С. 152-183.

183. Чичибабин А.Е. Основные начала органической химии. М: Госхимиздат. 1953. 445 с.

184. Tanaka К., Ishizuka Т., Suhahara Н. Elution behaviour of acids in ion-exclusion chromatography using cation-exchange resin. // J. of Chromatogr. 1979. 177. 5. p.227-231.

185. Kihara K., Rokushika S., Hatano H. Elution behaviour of aliphatic carboxylic acid on a strong cation-exchange resin column. // J. of Chromatogr. 1987. 410. 2. p. 103-110.

186. Haddad P.K., Jackson P.E. Ion chromatography. Priciples and applications. // J. Chromatogr. Library. 1990. 46. 2. p. 199-226.

187. Waki H., Takunaga Y. Donnan exclusion chromatography. Theory and application to the separation of phosphorus oxoanions of metal cations. // J. of Chromatogr. 1980. 201. 3. p.159-264.

188. Hicks K.B., Lim P.C., Haas H.J. Analysis of uronic and aldonic acids, their lactones and related compounds by high-performance liquid chromatography on cation - exchange resins. // J. of Chromatogr. 1985. 319. 2. p.159-171.

189. Asher D.R., Simpson D.W. Glycerol purification by ion-exclusion. // J. Phys. Chem. 1956. 60. p.518-529.

190. Tanaka K., Fritz J.S. Separation of aliphatic carboxylic acids by ion-exclusion chromatography using a weak-acid eluent. // J. Chromatogr.1986. 361. 1. p. 151-160.

191. Lee D.R., Lord A.D. The influence of ion-exchange capacity of solvent on retention in IEC.//LG. GC. 1987.5. l.p.261.

192. Wilderer P.A., Potzel U., Rehbein V. Berichtsheft 2. Statusseminar. Bay FORREST -Forscnungsverbund. Munich. 1994, p.219.

193. Bipp H.P., Fischer K., Bieniek D., Kettrup A. Application of ion-exclusion chromatography (IEC) for the determination of sugar and carboxylic acids in hydrolysates from carbohydrate containing residues.// Fresenius J. Anal. Chem. 1997. 357. p. 321-325.

194. Chong W.V., Miels G.A., Wearing G.P., Walker V. High-performance liquid chromatographic methode for the rapid profiling of plasma and urinary organic acids. // J. of Chromatogr. 1989. 487. 2. p.147-153.

195. Morris J., Fritz J.S. Eluent modifiers for the liquid chromatographic separation of carboxylic acids using conductivity detection. // Anal. Chem. 1994. 66. p.2390-2396.

196. Itoh H., Shinbori Y. Ion-exclusion chromatography of weak acids using a carbonic acid solution as eluent. //Bull. Chem. Soc. Jap. 1985. 58. 11. p.3244-3247.

197. Vratny P., Brinkman U.A.T., Frei R.W. Comparative study of postcolumn reactions for the detection of saccharides in liquid chromatography. // Anal. Chem. 1985. 57. p.224-229.

198. Филимонов В.Я., Пронин Я.Я., Ларионов О.Г., Горячева Н.А. Адсорбционные и кинетические характеристики поглощения фруктозы и глюкозы сульфокатионитом в Са-форме. // Изд. Воронежского унив. 1986. № 18. С.112.

199. Tanaka K., Chikara H., Hu W., Hasebe K. Separation of carboxylic acids on a weakly acidic cation-exchange resin by ion-exclusion chromatography. // J. of Chromatogr. 1999. A850. p.187-196.

200. Tanaka K., Ohta K., Haddad P.R., Fritz J.S., Lee K-P., Hasebe K., Ienji A., Miyanaga A. Acid-rain monitoring in East Asia with portable type ion-exclusion - cation-exchange chromatography analyzer. // J. of Chromatogr. 1999. A850. p.311-317.

201. OD Reilly J., Doble P., Tanaka K., Haddad P.R. Retention behaviour of strong acid anions in ion-exclusion chromatography on sulfonate and carboxylate stationary phases. // J. of Chromatogr. 2000. A884. p.61-74.

202. Abe T., Baba H., Soloshonok I., Tanaka K. Novel way of separating polyfluorocarboxylic acids by ion-exclusion chromatography. // J. of Chromatogr. 2000. A884. p.93-103.

203. Tanaka K., Ohta K., Haddad P.R., Fritz J.S., Miyanaga A., Hu W., Hasebe K. Simultaneous ion-exclusion/cation-exchange chromatography of anions and cations in acid rain waters on a weakly acid cation-exchange resin by elution with sulfosalicylic acid. // J. of Chromatogr. 2000. A884. p. 167-174.

204. Glod B.K., Perez G. Application of small capacity cation exchangers in ion- exclusion chromatography. // J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 1999. 22. 5. p. 705-711.

205. Blake J.D., Clarke M.L., Richards G.N. Determination of organic acids in sugar cone process juice by high-performance liquid chromatography improved resolution using dual Aminex HPX-87H cation exchange columns equilibrated to different temperature. // J. of Chromatogr. 1987. 398. 5. p.265-277.

206. Ianniello K.M. Determination of organic acids in alkylphenolethoxy late surfactants by

anion exclusion high performance liquid chromatography. // Anal. Lett. 1988. 21. 3. p.87-99.

297

208. Iwinski G., Jenke D.R. Determination of alcohols in pharmaceuticals by ion-exclusion chromatography. //J. of Chromatogr. 1987. 392. 5. p.397-405.

209. Pacholec F., Eaton D.R., Rossi D.T. Characterization of mixtures of organic acids by exclusion partition chromatography - mass spectrometry.//Anal. Chem. 1986. 58.p.2581-2583.

210. Cameron A., Pohlandt C. / Watson. Mintek. 1986. Report № M 284.

211. Dionex HPI CE-AS 5. Product Information Bulletin.

212. Stevens T.S., Chriz K.M., Small H. Determination of water by liquid chromatography using conductimetric detection. // Anal. Chem. 1987. 59. 13-14. p. 1716 -1720.

213. Turkelson V.T., Richards M. Separation of the citric acid and cycle acids by liquid chromatography. //Anal. Chem. 1978. 50. 11. p. 1420-1423.

214. Richards V. Separation of mono- and dicarboxylic acids by liquid chromatography. // J. of Chromatogr. 1975. 115. 2 .p. 259-261.

215. Gjerde D.T., Fritz J.S., Schmuckler G. Anion chromatography with low conductivity eluent. //J. of Chromatogr. 1979. 186. 2. p. 509-519.

216. Walser P. New ion exclusion phase for organic acids. // J. of Chromatogr. 1988. 439. 5. p. 71-74.

217. Tanaka K., Ishizuka T., Suhahara H. Ion-exclusion chromatography of condenced phosphates on a cation-exchange resin. // J. of Chromatogr. 1980. 190. 1. p.77-83.

218. Woo D.J., Benson J.R. Organic acids analysis column ORM-801.

219. Interacion product Bulletin. 1982.

220. Interacion Separation, 1, March, 1989.

221. Gjerde D.T., Mehra H., Jandik P., Cassidy R.M. Advances in chromatography. 1989. V.l p.159-163.

222. Tokunaga Y., Waki H., Ohashi S. Donnan exclusion chromatography (DEC): elution behaviour of phosphorus oxopolyanions of large size in DEC. // J. Liq. Chromatogr. 1982. 5. 10. p. 1855-1867.

223. Tanaka K., Fritz J.S. Determination of bicarbonate by ion-exclusion chromatography with ion-exchange enhancement of conductivity detection. // Anal. Chem.1987. 59. 5-6. p. 708712.

224. Okada T. Ligand-exchange indirect conductimetric detection electrically neutral carbohydrates and alcohols after high-performance liquid chromatographic separation. // Anal. Chem.1988. 60. 13-14. p.1336-1340.

225. Okada T., Kuwamoto T. High-performance liquid chromatographic determination of boric acid and germanic acid with conductimetric detection. // Freseninus J. Anal. Chem. 1986. 325. №5-8. P. 683-685.

226. Jones W.R., Heckenberg A.L., Jandik P.F. Integrated separation schemes in chromatography. Simultaneous employment of ion-exclusion and ion-exchange for the separation of borate, chloride, nitrate and iodide. // J. of Chromatogr. 1986. V.366. № 2. P. 225233.

227. Klampf C.W., Buchberger W., Rieder G., Chappell I. Investigations on the chromatographic behavior of carboxylic acids on silica-based cation exchan-gers. // J. Liq. Chromatogr and Relat. Technol. 1998. V.21. № 13. P.2069-2079.

228. Unger K.K. Porous silica. Elsevier. Amsterdam. 1979.

229. Tanabe K., Sumiyoshi T., Shibata K., Kiyonra T., Kitago J. A new hypothesis regarding the surface acidity of binary metal oxides. // Bull. Chem. Soc. Jap. 1974. V. 47. № 5. P.1064-1066.

230. Ohta K., Morikawa H., Tanaka K., Uryu Y., Pauli B., Haddad P.R. Ion chromatographic behavior of alkali and alkaline earth metal cation on silica gel columns with cation exchange characteristics. //Anal. Chem. Acta. 1998. V. 359. P. 255-261.

231. Ohta K., Tanaka K. Ion-exclusion chromatography of carboxylic acids on silica gel modified with aluminium. // J. of Chromatogr. 1999. A850. P. 177-185.

232. Ohta K., Morikawa H., Tanaka K., Uwamino Y., Furukawa M., Sando M. Ion-exclusion chromatography behavior of alkali metal cations and am-monium ion on zirconium-adsorbing silica gel. // J. of Chromatogr. 2000. A884. P. 123 - 130.

233. Ion-exclusion chromatography instrumentation and application. // Ion chromatographic analysis of environmental pollutants - Mi. Ann Arbor. Science publishers. 1979. p. 17-29.

234. Manning D.L., Masbarinec M.H. Determination of low molecular carboxylic acids in water by HPLC with conductivity weight detection. // J. Liq. Chromatogr. 1983. V.6. № 4. P.705- 714.

235. Ohta K. Application of zirconium-modified silica gel as a stationary phase in the ion-exclusion chromatography of carboxylic acids. II. Separation of aliphatic carboxylic acids with suppressed conductimetric detection. // J. of Chromatogr. 2001. A920. P. 181-191.

236. Glod B.K., Alexander P.W., Haddad P.R., Chen Z.L. Potentiometric detection using a metallic copper electrode in reversed phase and ion-exclusion chromatography with eluents containing ion-interaction reagents. // J. of Chromatogr. 1995. V. 699. P. 31-37

237. Tanaka К., Ohta К., Fritz J.S. Ion-exclusion chromatography of aliphatic carboxylic acids on a cation-exchange resin by elution with polyvinyl alcohol. // J. of Chromatogr. 1997. V.770.P.211-218.

238. Tanaka K., Ohta K., Fritz J.S. Ion-exclusion chromatography of ethanolamines on an anion-exchange resin by elution with polyols and sugars. // J. of Chromatogr. 1996. A739.P.317-325.

239. Buchanan P.N., Thoene J.G. Dual-column high-performance liquid chromatographic urinary organic acid profiling. // Anal. Biochem. 1982. V.124. № 1. P. 108-116.

240. Haginaga J., Wakai J., Yasuda H., Nomura T. Ion-exclusion chromatography of carboxylic acids with conductivity detection. Peak enhancement using a cation-exchange hollow-fibre membrane and alcaline solution.//J. of Chromatogr. 1988. V.447. P.373-382.

241. Fischer K., Bipp H.P., Bieniek D., Kettrup A., Determination of monomeric sugar and carboxylic acids by ion-exclusion chromatography. // J. Chromatogr. 1995. A706. P.361-373.

242. Dionex Application Note 19.

243. Pohlandt C. Potassium citratus eluent for ion chromatography. // S. Afr. J. Chem. 1980. V.33. № 3. P.87-90.

244. Lebel A., Fu Yen T. Ion chromatography for determination of metallic patterns of sulfate reducing bacteria. // Anal. Chem. 1984. V.56. P.807-808.

245. Haddad P.R., Jackson P.E. Studies on preconcentration in ion chromatography. VIII. Preconcentration of carboxylic acid prior to ion exclusion separation. // J. of Chromatogr. 1988. V. 447. № l.P.155-163.

246. Медведь A.JI., Иванов A.A., Шпигун О.А. Ионоэксклюзионная хроматография алифатических карбоновых кислот.// Журн. анал. химии. 1997. Т. 52. № 1. С. 47-53.

247. Chen Z.L., Adams M.A. Non- suppressed conductivity detection of organic acids in plant tissue extracts by ion-exclusion chromatography with aromatic acid eluents. // J. Liq. Chromatogr. Technol. 1998. V. 21. № 16. P. 2435-2445.

248. Mongay C., Pastor A., Olmos C. Determination of carboxylic acids and inorganic anions in wines by ion-exchange chromatography.// J. of Chromatogr. 1996. A736. P.351-357

249. Chen Z.L., Glod B.K., Adams M.A. Indirect photometric of aliphatic acids separated by ion-exclusion chromatography using aromatic acidic eluents.// J. of Chromatogr. 1998. A818. № 1. P.61-68.

250. Itoh H., Shinbori Y., Tamura N. Ion-exclusion chromatographic determination of valproic acid. // Bull. Chem. Soc. Jap. 1974. V. 59. № 4. P.997-1000.

251. Chen Z., Tang C., Xu J. Non - suppressed conductivity and indirect UV detection of carboxylic acids in environmental samples by ion-exclusion chromatography using 2,6 -pyridinedicarboxylic acidic eluent.//J. of Chromatogr. 1999. A859. P. 173-181.

252. Tanaka K., Ohta K., Fritz J.S., Lee Y.S., Shim S.B. Ion-exclusion chromatography with conductimetric detection of aliphatic carboxylic acids on an H+ - form cation-exchange resin column by elution with polyols and sugars. // J. of Chromatogr. 1995. A706.P.385-393.

253. Haddad P.R., Cowie C.E. Computer-assisted optimization of eluent concentration and pH in ion chromatography. // J. of Chromatogr. 1984. V. 303. P.321-330.

254. Morales M., Gonzales A.G., Troncoso A.M. Ion-exclusion chromatography determination of organic acids in vinegars. // J. of Chromatogr. 1998. A822. P. 45-51.

255. Ding M-Y, Tanaka K, Hu W., Hasebe K, Haddad P.R. Simultaneous ion-exclusion chromatography and cation - exchange chromatography of anions and cations in environmental

water samples on a weakly acidic cation-exchange resin by elution with pyridine - 2,6 -dicarboxylic acid. // The Analyst. 2001. V.126. P. 567-570.

256. Tanaka K., Ohta K., Haddad P.R., Fritz J.S., Miyanaga A., Hu W., Hasebe K., Lee K.-P., Sarzanini C. High - performance ion-exclusion cation-exchange chromatography of anions and cations in acid rain waters on weakly acidic cation-exchange resin. // J. of Chromatogr. 2001. A920.P.239-245.

257. Masson P. Influence of organic solvents in the mobile phase on the determination of carboxylic acids and inorganic anions in grape juice by ion chromatography. // J. of Chromatogr.2000. A881. P.387-394.

258. Chong W.V., Miels G.A., Wearing G.P., Walker V. High-performance liquid chromatographic method for the rapid profiling of plasma and urinary organic acids. // J. of Chromatogr. 1989. V.487. № 2. P.147-153.

259. Fischer K., Kotalik J., Kettrup A. Chromatographic properties of the ion-exclusion column Ion-Рас ICE-AS 6 and application in environmental analysis. Part I: chromatographic properties. // J. Chromatogr. Sci. 1999. V.37. №12. P.477-480.

260. Yang L., Liu L., Olsen B.A., Nussbaum M.A. Determination of oxalic acid, oxamic acid and oxamide in a drug substance by ion-exclusion chromatography. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2000. V. 22. № 3. P. 487-493.

261. Медведь A.Jl., Иванов A.A., Шпигун O.A. Ионоэксклюзионная хроматография органических кислот: определение фенолкарбоновых кислот. // Журн. анал. химии. 1997. Т. 52. № 1. С.54-56.

262. Okada Т., Kuwamoto Т. High-performance liquid chromatographic determination of electrically neutral carbohydrates with conductivity detection. // Anal. Chem. 1986. V.58. № 7. P.1375-1379.

263. Kwon S.-M., Lee K.-P., Tanaka K., Ohta K. Simultaneous determination of anions and cations by ion-exclusion chromatography - cation-exchange chromatography with tartaric acid/ 18-crown-6 as eluent. // J. of Chromatogr. 1999. A.850. P.79-84.

264. Wilshike J.P., Broun W.A. Double - column ion-exclusion chromatography of carboxylic acid with conductimetric detection. // Anal. Chem. 1982. V.54. №3. P. 1647.

265. Mukayama T., Kubota T., Manaoka Y., Rokushika S., Kinara K., Hatano H. Peak enhancement of carboxylic acids in ion-exclusion chromatography with a cation-exchange hollow-fibre suppressor using neutral and alkaline enhancers. // J. of Chromatogr. 1988. V. 435. №3. P. 417-424.

266. Okada T., Dasgupta P.K., Selective detection, approach to ion-exclusion chromatography. //Anal. Chem. 1989. V.61. №4. P. 548-554..

267. Macfarlan J.D. Enhanced conductivity detection for ion chromatography. //Pittsburgh Conf. Anal. Chem. And Appl. Spectrosc., Atlanta, Ga, March 8-12 th, 1993. P. 49P.

268. Eiteman M.A., Chastain M.S. Optimization of the ion-exchange analysis of organic acids from fermentation. // Anal. Chem. Acta.1997. V.338. P.69-75. .

269. Lee H.S., Coates G.A. Quantitative study of free sugars and myo-inositol in citrus juices by HPLC and literature compilation. // J. Liq. Chromatogr. and Relat. Technol. 2000. V.23. № 24. P. 2123-2141.

270. Oefnek P., Hafele R., Bartsch G. Isotachophoretic separation of organic acids in biological fluids. // J. of Chromatogr. 1996. V.516. P.251-262.

271. Marco - Varga G., Csiky I., Jonsson J.A. Ion chromatographic determination of nitrate and sulfate in natural waters containing humic substances. // Anal. Chem. 1984. V.56. № 12. P.2066-2069.

272. Chen Z.L., Alexander P.W., Haddad P.R. Liquid chromatography of carboxylic acids using potentiometric detection with a tungsten oxide electrode. // Anal. Chem. Acta. 1997. V.338. P.41-49.

273. Glod B.K., Kemula W. Separation mechanism and determination of acidic compounds by ion-exclusion liquid chromatography with electrokinetic detection. // J. of Chromatogr. 1986. V.366. P. 39-50.

274. Попов Н.И., Федоров K.H., Орлов У.M. Морская вода. M: Наука, 1979. С. 156.

275. Takata Y., Muto G. Flow coulonometric detector for liquid chromatography // Anal Chem. 1984. V.45. № 11. P. 1864-1868.

276. Nakaoka H. Electrochemical detection for the ion-exclusion chromatography determination of organic acids. // Bunseki Kagaku. 1981. V.30. №1. P. 197.

277. Jondik P., Cassidy R.M. Advances in Ion chromatography. Vol.1. Century Int., Franklin, MA. 1989. P.391.

278. Watanable N., Inove M. Amperometric detection of reducing carbohydrates in liquid chromatography. //Anal. Chem. 1983. V.55. P.1016-1019.

279. Buchberger W.W. Detection techniques in ion analysis: what are our choices? // J. of Chromatogr. 2000. A884. P.3-22.

280. Mori M., Tanaka K., Helaleh M.I., Xu Q., Hu W., Hasebe K. Vacant Ion-exclusion chromatography with conductimetric detection of weak acids and weak bases. PITTCON 2003, March 9-14. 2003. Orlando. Florida. USA. 1820-5p.

281. Johnson S.K., Houk L.L., Feng J., Johnson O.C., Houk R.S. Determination of small carboxylic acids by ion-exclusion chromatography with electro-spray mass spectrometry. // Anal. Chem. Acta. 1997. V.341. P.205-216.

282. Glaus M.A., van Loon L.R., Achatz S., Chodura A., Fischer R. Degradation of cellulosic materials under the alkaline conditions of a cementitious repository for low and intermediate level radioactive waste. Part.I. Identification of degradation product. // Anal. Chem. Acta. 19.99. V.398. P.111-122.

283. Taniguchi T., Tao H., Tominaga M., Miyaxaki A. Sensitive determination of three arsenic species in water by ion-exclusion chromatography- hybride generation - inductively coupled plasma mass spectrometry. // J. Anal. At. Spectrom. 1999. V.14. № 4. P.651-655.

284. Фритц Дж., Гьерде Д., Поланд К. Ионная хроматография. Пер. с англ. М: Мир, 1984. 221 с.

285. Шпигун О.А., Золотое Ю.А. Ионная хроматография. М: Изд. Моск. Унив. 1990. 198 с.

286. Handbuch der Ionenchromatographie. Biotronik. Wissenschaftliche gerate. Русский перевод: Справочник по ионной хроматографии. С.66. Всесоюзный центр переводов научно-технической литературы и документации. Перевод № В - 46347. Москва. 1980.

287. Голубева B.JI. Консервирующие растворы для донорской и аутологичной крови. (Разработка, совершенствование, внедрение). //Дисс. докт. биол.наук. М.; 1993. (доступна в библиотеке ГНЦ РАМН.).

288. Буглов Е.Д. О дозировке препаратов кальция и переливаниях цитратной крови. // Вестник хирургии им. Грекова. 1971. № 6. С. 10.

289. Голубева B.JI. Изучение биологической полноценности крови, заготовленной на новом глюкозо - фосфатном консерванте (ЦОЛИПК - 12 А), предназначенной для искусственного кровообращения и других трансфузий. Дисс... канд.мед.наук. М.: 1972. (доступна в библиотеке ГНЦ РАМН).

290. Панов В.П. / Тез. докл. V Межд. конгр. "Парентеральное и энтеральное питание", М., 2001. С.64.

291. Раствор антикоагулянта ЦФГА-1 ФС-42-4776-95, "Грин Кросс Медикал Корп.", Корея.

292. Crommen J., Schill G., Heme P. Indirect detection in liquid chromatography. II. Response models for reversed-phase non - ionic systems. // Chromatographia. 1988. V.25. P.397-403.

293. Helaleh М.1.Н., Tanaka K., Taoda H., Hu W., Hasebe k., Haddad P.R. Qualitative analysis of some carboxylic acids by ion-exclusion chromatography with atmospheric pressure chemical ionization mass spectrometric detection.// J. of Chromatogr. 2002. A956. P. 201-208.

294. Nakazato T., Tao H., Taniguchi I., Isshiki K. Determination of arsenite, arsenate and monomethylarsonic acid in seawater by ion - exclusion chromatography combined with inductively coupled plasma mass spectrometry using reaction cell and hydride generation techniques. // Talanta. 2002. V.58. P.121-132.

295. Альбертп А., Сержант E. Константы ионизации кислот и оснований. Л.: Химия. 1964. 123 с.

296. Справочник по переливанию крови и кровезаменителей. / Под. ред. O.K. Гаврилова. М.: Медицина, 1982. 250с.

297. Lord В.S., Stringham K.W. Liquid chromatographic determination of organic acids used as pharmaceutical counterions. // Anal. Chem. 1996. V.68. P.1067-1070.

298. Справочник химика. T.2. Д.: Наука, 1971. 1167с.

299. Питьевая вода и водоснабжение населенных мест. Санитарные правила и нормы. Сан. ПиН. 2.1.4.559-96, Москва. 1996. С.37.

300. Кузнецова М.А., Рыбачук И.З. Фармакогнозия. М.: Медицина, 1993. 448 с.

301._ Соколов С.Я., Замотаев И.П. Справочник по лекарственным растениям. М.: Медицина, 1984. 464 с.

302. Государственная фармакопея СССР. XI изд. М.: Медицина, 1987. Вып.1. 334 с.

303. Страйер JI. Биохимия (в 3 т.) Пер. с англ. М: Мир. 1984.

304. Munaf F., Zein R., Takeuchi Т., Miwa Т. Microcolumn Ion chromatography of inorganic anions using bovine serum albumin stationary phase with indirect photometric detection. // Chromatographia. 1996. V.43. P.304-308.

305. Small H., Miller Т.Е. Indirect photometric chromatography. //Anal.

306. Chem. 1982. V.54. P.462-469.

307. Chen Z.L., Glod B.K., Adams M.A. Indirect photometric detection of aliphatic acids separated by ion-exclusion chromatography using aromatic acidic eluents. // J. of Chromatogr. 1998. A818. P.61-68.

308. Pimminger M., Puxbaum H., Kossina I., Weber M. Simultaneous determination of some inorganic and organic anions by means of an ion-chromatographic triple column system.//Fresenius J. Anal. Chem. 1985. V.B320. № 4. P.445-450.

309. Agarwal L., Isar J., Saxena R.K. Rapid screening procedures for identification of succinic acid producers // J. Biochem. Biophys. Methods. 2005. 63. 1. P. 24-32.

310. Chinnici F., Masino F., Annonelli A. Determination of furanic compounds in traditional balsamic vinegars by ion-exclusion liquid chromatography and diode-array detection // J. Chromatogr. Sci. 2003. 41. 6. P. 305- 310.

311. Schiller M., von der Heydt H., März F., Schmidt P.C. Quantification of sugars and organic acids in hygroscopic pharmaceutical herbal dry extracts // J. Chromatogr. A. 2002. 968. 1-2. P. 101-111.

312. Silva B.M., Andrade P.B., Mendes G.C., Seabra R.M., Ferreira M.A. Study of the organic acids composition of quince (Cydonia oblonga Miller) fruit and jam // J. Agric. Food Chem. 2002. 50. 8. P. 2313-2317.

313. Kim Y.K., Koh E., Park S.Y., Chang S.Y., Park S.J., Na W.I., Kim H.J. Determination of sulfite in Oriental herbal medicines / J. of AOAC Int. 2000. 83. 5. P. 1149- 1154.

ПУБЛИКАЦИИ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ Оригинальные статьи и монографии

1. Кузьменко А.Н., Панов В.П., Иванов A.A., Шпигун O.A., Евграфов A.A., Решетняк В.Ю., Попков В.А. Определение цитрат- и ацетат-ионов в гемоконсервантах и инфузионных растворах методом ион-эксклюзионной хроматографии // Хим.-фарм. журнал. 2002. Т.36.№ 7. С.44-47.

2. Кузьменко А.Н., Панов В.П., Иванов A.A., Шпигун O.A., Попков В.А., Решетняк В.Ю., Евграфов A.A. Определение фумарат-ионов в инфузионном растворе « Мафусол » методом ион-эксклюзионной хроматографии // Хим.-фарм. журнал. 2002. Т.36.№ 10.С.51-52.

3. Доброхотов Д.А., Нестерова О.В., Разживин Р.В., Кузьменко А.Н. Разработка показателей подлинности сбора для комплексного лечения заболевания пародонта , осложненного аллергическим состоянием // Фармацевтический вестник Узбекистана. 2007. № 2. С. 19-22

4. Кузьменко А.Н., Попков В.А. Определение карбоновых кислот в лекарственных растениях методом ион-эксклюзионной хроматографии // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2007. № 4. С. 8-10

5. Разживин Р.В., Кузьменко А.Н., Решетняк В.Ю., Нестерова О.В., Попков В.А. Изучение компонентного состава летучей фракции жидких экстрактов из лекарственного растительного сырья, входящего в состав комплексных средств, используемых при заболеваниях органов мочевыводящей системы // Хим. технология. 2008. Т.9. № 8. С.408-410.

6. Фетисова А.Н., Попков В.А., Кузьменко А.Н. Эмпирический расчет состава жирных кислот и глицеринов в оценке качества лекарственных средств // Вестник МГУ серия 2 «Химия». 2008. Т.49. № 3. С.209-212

7. Разживин Р.В., Решетняк В.Ю., Кузьменко А.Н., Нестерова О.В., Попков В.А. Применение хромато-масс-спектрометрии для изучения компонентного состава фармакопейных видов лекарственного растительного сырья // Вестник МГУ серия 2 « Химия ». 2009. Т.50. №1. С. 67- 70.

8. Разживин Р.В., Решетняк В.Ю., Кузьменко А.Н., Нестерова О.В., Попков В.А. Возможность применения специфических маркеров определенных видов лекарственного растительного сырья при анализе многокомпонентных растительных сборов и фиточаев // Вестник МГУ серия 2 « Химия ». 2009. Т.50. №2 С 129- 132.

9. Кузьменко А.Н. Изучение компонентного состава растительного лекарственного сбора // Вестник МГУ серия 2 « Химия ». 2009. Т.50. № 3. С.212-216

10. Кузьменко А.Н. Стандартизация растительного сбора методом газо-жидкостной хроматографии // Вестник МГУ серия 2 « Химия ». 2009. Т. 50. № 4. С.278-281

11. Кузьменко А.Н. Использование метода газо- жидкостной хроматографии для стандартизации лекарственных растительных сборов // Фармацевтический вестник Узбекистана . 2009. № 2. С.32-36.

12. Кузьменко А.Н Использование методов ионо- эксклюзионной и газо- жидкостной хроматографии для стандартизации лекарственного растительного сырья и сборов на его основе // Фармацевтический вестник Узбекистана . 2009. № 3. С.35-40.

13. Кузьменко А.Н., Пашкова Е.Б., Пирогов A.B., Разживин Р.В., Решетняк В.Ю. Изучение состава растительного лекарственного сбора методом газо-жидкостной хроматографии с хромато- масс- спектрометрическим детектированием // Вестник МГУ серия 2 «Химия». 2010. Т. 51. № 2. С.132-138

14. Кузьменко А.Н. Использование газо -жидкостной хроматографии для стандартизации лекарственного растительного сырья и лекарственных форм на его

основе // Рос. хим. ж. ( Ж.Рос. хим. об- ва им. Д.И.Менделеева ). 2010. Т. LIV. №6. С.114-119.

15. Харчилава И.А., Нестерова О.В., Кузьменко А.Н. Определение биологически активных веществ в корневище имбиря аптечного хроматографическими методами //Естественные и технические науки. 2010. Т. 50. №6. С. 246-251.

16. Кузьменко А.Н., Доброхотов Д.А., Разживин Р.В., Нестерова О.В., Решетняк В.Ю., Попков В.А. Изучение компонентного состава летучей фракции экстрактов растений, входящих в состав сбора для лечения заболеваний пародонта, методом газовой хромато- масс-спектрометрии // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2010. №10. С.3-9.

17. Кузьменко А.Н.. Решетняк В.Ю. Стандартизация лекарственного растительного чырья и растительных сборов хроматографическими методами (монография). Москва, Изд. Московского университета, 2010, 104 с.

18. Кузьменко А.Н., Решетняк В.Ю., Попков В.А., Пашкова Е.Б., Пирогов A.B. Сочетание двух хроматографических методов для изучения химического состава лекарственных растений // Вестник МГУ серия 2 « Химия ». 2011. Т. 52. № 5. С.394-399.

Тезисы докладов

19. Кузьменко А.Н., Евграфов A.A., Решетняк В.Ю., Иванов A.A., Панов В.П. Определение ацетат-иона в инфузионных растворах методом ион-эксклюзионной хроматографии // « Человек и лекарство »: тез.докл. IX Российского национального конгресса. Москва. 8-12 апреля 2002. С.644.

20. Кузьменко А.Н., Решетняк В.Ю., Евграфов А.А., Иванов А.А., Бендрышев А.А., Шпигун О.А.Использование метода ион-эксклюзионной хроматографии для анализа фармацевтических препаратов // « Современные проблемы хроматографии »: тез. докл. Всероссийского симпозиума. Москва, 18-22 марта 2002. С. 129.

21. Kuzmenko A.N., Ivanov A.A., Shpigun О.A., Popkov V.A., Reshetnyak V.Yu., Evgrafov A.A. Application of ion-exclusion chromatography for the analysis and quality control of pharmaceutical formulations / // « Séparations in Bio Sciences »: Proc. Of the 3 rd International Symposium. Moscow,13-18 May 2003, P.170.

22. Кузьменко A.H., Иванов A.A., Евграфов A.A., Решетняк В.Ю., Попков В.A., Федосеев Е.Е. Исследование химического состава лекарственных растений методом ион-эксклюзионной хроматографии ///X Российский национальный конгресс « Человек и лекарство ». Москва, 7-11 апреля 2003. Тез. докл.: Москва, С. 726.

23. Доброхотов Д.А.,Кузьменко А.Н., Нестерова О.В., Разживин Р.В.,Решетняк В.Ю., Попков В.А. Сравнительное изучение компонентного состава вытяжек из лекарственного сбора для лечения и профилактики заболеваний пародонта на основе различных растворителей методом газо-жидкостной хроматографии // Материалы IV Российской научно-практической конференции « Актуальные проблемы инноваций с нетрадиционными природными ресурсами и создания функциональных продуктов » Москва 4-5 июня 2007 С. 103

24. Миронов С.Е., Нестерова О.В., Кузьменко А.Н., Доброхотов Д.А. Совершенствование методов идентификации основных биологически активных веществ в препаратах « Стоматофит » и « Мараславин » // Материалы IV Российской научно-практической конференции « Актуальные проблемы инноваций с нетрадиционными природными ресурсами и создания функциональных продуктов ». Москва. 4-5 июня 2007. С.108

25.Разживин Р.В.,Кузьменко А.Н.,Решетняк В.Ю.,Нестерова О.В.,Попков В.А. Изучение компонентного состава летучей фракции экстрактов растений , входящих в состав сборов, применяемых при лечении заболеваний органов дыхания, методом газовой хроматографии с хромато-масс-спектрометрическим детектированием // Сб.науч.тр . « Нетрадиционные природные ресурсы, инновационные технологии и продукты »15 выпуск , Москва. 2007 С. 100-106.

26. Миронов С.Е., Нестерова О.В., Кузьменко А.Н., Доброхотов Д.А. Изучение состава терпеноидной фракции в препаратах « Стоматофит » и « Мараславин » с целью разработки критериев определения их подлинности // Сб.науч.тр . « Нетрадиционные природные ресурсы, инновационные технологии и продукты »15 выпуск . Москва. 2007 С. 141-144.

27. Разживин Р.В.,Кузьменко А.Н. Изучение компонентного состава экстрактов пяти видов растительного сырья, составляющего сбор желудочно-кишечный, методом газовой хроматографии с хромато-масс-спектрометрическим детектированием // « Здоровье и образование в XXI веке: концепции болезней цивилизации »: тез. докл. VIII межд. Конгресса. Москва. 2007. С. 530

28. Решетняк В.Ю., Кузьменко А.Н., Попков В.А. Определение кислородсодержащих веществ в составе экстракта элеутерококка // « Человек и лекарство »: тез.докл. XVI Российского национального конгресса. Москва. 6-10 апреля 2009. С. 726.

29. Кузьменко А.Н. Определение аскорбиновой кислоты в плодах малины методом ионо-эксклюзионной хроматографии // « Человек и лекарство »: тез.докл. XVI Российского национального конгресса. Москва. 6-10 апреля 2009. С. 688.

30. Кузьменко А.Н. О возможности стандартизации сырья « Крапивы листья » методом газо-жидкостной хроматографии / Кузьменко А.Н., Решетняк В.Ю., Попков В.А. // « Человек и лекарство »: тез.докл. XVI Российского национального конгресса. Москва. 6- 10 апреля 2009. С. 688.

31.Разживин Р.В., Кузьменко А.Н., Решетняк В.Ю., Попков В.А. Принципы выбора веществ-маркеров для анализа состава лекарственных растений при использовании метода газо-жидкостной хроматографии // « Человек и лекарство »: тез.докл. XVI Российского национального конгресса. Москва. 6- 10 апреля 2009. С.723.

32. Ермакова В.Ю., Решетняк В.Ю., Кузьменко А.Н., Дунин A.C. Сравнительное изучение химического состава плодов и сухого экстракта клюквы болотной // « Человек и лекарство »: тез.докл. XVI Российского национального конгресса. Москва. 6- 10 апреля 2009. С. 657.

33. Доброхотов Д.А., Нестерова О.В., Кузьменко А.Н., Ретиетняк В.Ю. Определение компонентного состава летучей фракции экстракта цветков календулы с целью выделения веществ-маркеров // « Актуальные вопросы образования, науки и производства в фармации »: тез. докл. научно- практической конференции. Ташкент. 2009. С. 168.