Сравнительная характеристика ингаляционных анестетиков для выполнения спинальных операций у животных тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.04, кандидат наук Старынина Виктория Сергеевна

• Старынина Виктория Сергеевна
• кандидат наук
• 2020

Оглавление диссертации кандидат наук Старынина Виктория Сергеевна

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Особенности анатомии дыхательной системы у животных

1.2. Современное состояние материально технического обеспечения ингаляционной анестезии у животных

1.3. Характеристики современны ингаляционных анестетиков

1.3.1 .МАК ингаляционных анестетиков

1.3.2. Физико-химические свойства ингаляционных анестетиков

1.3.2. Фармококинетика и фармакодинамика ингаляционных анестетиков

1.3.4.Метаболизм современных ингаляционных анестетиков

1.3.5.Влияние на сердечно-сосудистую и дыхательную системы

1.3.6.Влияние на нервную систему

1.3.7.Осложнения при ингаляционном наркозе

1.3.8. Влияние анестетиковна показатели крови у животных

1.3.9.Особенности анестезиологического обеспечения при спинальных оперативных вмешательствах

1.4. Особенности выполнения ингаляционной анестезии у разных видов животных

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1. Материалы исследования

2.2. Методы исследования

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЯ

3.1. Сравнительная характеристика влияния ингаляционных анестетиков на крыс при выполнении сочетанной анестезии

3.1.1. Динамика клинических показателей у крыс при применении ингаляционных анестетиков

3.1.2. Особенности выраженности стадий общей анестезии

3.2. Сравнительная характеристика влияния ингаляционных анестетиков на кроликов при выполнении сочетанной анестезии

3.2.1. Динамика клинических показателей у кроликов при применении ингаляционных анестетиков

3.2.2. Особенности выраженности стадий общей анестезии у кроликов

3.3. Сравнительная характеристика ингаляционных анестетиков при выполнении спинальных операций у собак

3.3.1. Динамика клинических показателей у собак при применении ингаляционных анестетиков

3.3.2. Особенности выраженности стадий общей анестезии у собак

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

ПЕРСПЕКТИВА ДАЛЬНЕЙШЕГО РАЗВИТИЯ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ВВЕДЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Сравнительная характеристика ингаляционных анестетиков для выполнения спинальных операций у животных»

Актуальность исследований

В современной ветеринарной медицине любое хирургическое вмешательство, связанное с причинением боли, или манипуляции, вызывающие значительное беспокойство животных, не должны выполняться без применения анестезирующих веществ (Морган Д.Э., 2006; Колесов М.А., 2007; Lumb and Jones, 2012; Гельфанд Б. Р., 2015). Ингаляционные анестетики были первыми в анестезии, для их использования применяли открытый контур, а именно марлевую повязку с нанесенным на нее анестетиком. Однако, долгое время ингаляционный наркоз был недоступен в большинстве ветеринарных лечебных учреждений из-за больших экономических затрат и отсутствия необходимого оборудования. В ветеринарии, как правило, используется внутривенный метод анестезии с использованием гипнотических препаратов, селективных агонистов альфа - 2-адренорецепторов, диссоциативных анестетиков и бензодиазепинов (Alony Y., 1996; Кирк Р., 2005; Козловская Н.Г., 2006; Туровникова Е.В., 2006; Тимофеев С.В., 2007; Tranquilli W.J., 2007; Полатайко O.P., 2009; Миллер Р., 2015). Данный вид анестезии имеет важное значение и в современной ветеринарии, но по управляемости уступает ингаляционным анестетикам. (Салтанов А.И., 1997; Лысов В.Ф., 2004; Гершов С.О., 2005; Лихванцев В.В., 2011; Макинтайр Д.К., 2013; Стекольников А.А., 2017; Луцай В.И., 2019).

В отечественной научной литературе недостаточно изучен вопрос влияния ингаляционных анестетиков на организм в зависимости от вида животного, и применяемых доз.

Фармакологические препараты, которые были синтезированы в последние годы, обеспечивают быстрое введение в анестезию, а также хорошо сочетаются с вспомогательными средствами других фармакологических групп (Johnson C., 1998; Seymoyr C., 2007; Корнюшенков Е.А., 2011; Ягников С.А. 2017). В ветеринарной практике разработаны методы местного и спинномозгового обезболивания, которые широко применяются и

обеспечивают адекватную анестезию при операциях (Ахундов A.A., 1991; Бобовник C.B., 2005). Однако, при местном обезболивании не наступает состояние сна, в то время, как большинство оперативных вмешательств связано со специальной фиксацией животного и его вынужденным положением (Женило М.В., 2004). Данный вид анестезии затрудняет проведение оперативного вмешательства, не обеспечивает необходимой стерильности раны, приводит к стрессу, ятрогенному травматизму, в связи с этим в современной ветеринарии используется общий или комбинированный наркоз (Китиашвили И.З., 2000, 2007; Эккерт Р., 2014; Ягников С.А. 2017). Состояние общей анальгезии у животного достигается введением одного или нескольких препаратов (анестетиков). Выбор метода анестезии осуществляется в зависимости от вида животного, породы, физиологического состояния, пола и возраста. Ингаляционный наркоз, в отличии от других видов общей анестезии, вызывает искусственный сон, (Ramsey I., 2010), предупреждает болевой шок, переломы и ушибы у животных, создает возможность безопасно выполнять оперативные вмешательства (Poleshuck E.L., 2006; Ramsey I., 2011), обеспечивает быструю элиминацию анестетика из организма, тем самым снижая побочные эффекты во время пробуждения (Гимельфарб А.И., 2010; Козловская Н.Г., 2010; Ягников С.А. 2017).

Все чаще домашними животными становятся не только кошки и собаки, но также и кролики, мыши и крысы, которым тоже необходимо оказывать квалифицированную ветеринарную помощь (Волков В.Е., 1963; Братюха С.И., 1987; Балакирев Н.А., 2006; Janyce L., 2015). Более того, эти виды являются общепринятыми экспериментальными моделями в фундаментальной биологии и ветеринарной медицине.

По данным исследований Российского ветеринарного анестезиологического общества - «ВИТАР», смертность при тяжелых оперативных вмешательствах достигает 10%, в связи с передозировкой и осложнениями во время анестезии (Полатайко О.Р., 2013). В тоже время по данным «ВСАВА», смертность животных во время анестезии при высоком

анестезиологическом риске, в том числе при спинальных операциях в США составляет 2%, а в Европе - 7% (Shelby A.M., 2013). Для исследуемых животных не разработаны методы проведения анестезии. На наш взгляд, это обуславливает актуальность темы, избранной нами для решения проблемы, посвященной разработке наиболее безопасных и эффективных анестезиологических протоколов в зависимости от вида животного и характера оперативного вмешательства, а также установлению комбинаций и доз препаратов, которые будут успешно отвечать данным требованиям.

Степень разработанности темы

В зарубежной литературе вопрос о применении ингаляционной анестезии у животных изучали: Benson G.J., 2005; Lichtenberger M., 2007; Tranquilli W.J., 2007; Braun C., 2009; Vigano F., 2009; Ramsey I., 2010; Schwender D., 2011; Grimm K.A., 2011; Lumb and Jones, 2012; Janyce L., 2015; Barletta M., 2016; Sirois M., 2019.

В отечественной литературе обнаружена недостаточно полная информация в области изучения данного вида анестезии, преимущественно изложенная в ряде научных работ: Гологорский В.А., 1994; Лихванцев В.В. 2003; Гершов С.О., 2004, 2005, 2011; Кирк Р., 2005; Поллард Б. Дж., 2006; Колесов М.А. 2007; Полатайко О.Р. 2009: Скаченко Е.В., 2009, 2013; Бобовник С.В., 2005; Дж. Эдвард Морган-мл., 2014; Сидоров В.А., 2014; Позябин С.В., 2015; Корнюшенков Е.А. 2016; Букин И.А. 2017; Дибиров Ш.С. 2019; Сидорова К.А. 2019.

Цель исследования. Представить сравнительную характеристику эффективности использования ингаляционных анестетиков при спинальных оперативных вмешательствах у животных, основанную на результатах клинико-гематологических и биохимических исследований и разработать наиболее эффективные схемы выполнения ингаляционной сочетанной анестезии у мелких домашних (собака) и лабораторных (крыса, кролик) животных.

Задачи исследования

1. Изучить закономерности воздействия ингаляционных анестетиков на особенности течения общей анестезии у лабораторных животных, по результатам визуальных и гематологических исследований.

2. Оценить динамику клинического состояния у исследуемых собак при применении севофлурана и изофлурана во время оперативных вмешательств в области позвоночного столба.

3. Установить влияние изофлурана и севофлурана на морфологические и биохимические показатели крови у собак при спинальных оперативных вмешательствах.

4. Выявить частоту и характер осложнений при проведении общей анестезии у исследуемых животных.

5. На основании результатов сравнительного анализа представить наиболее эффективные схемы выполнения анестезии у исследуемых животных.

6. Разработать и внедрить методические рекомендации по применению ингаляционной анестезии у животных.

Научная новизна

Разработан алгоритм проведения ингаляционной анестезии у исследуемых животных, включающий новый подход к предоперационной подготовке, оценку влияния ингаляционных анестетиков на клинические и гематологические показатели (морфологические и биохимические). Алгоритм позволяет добиться снижения интра - и постоперационной смертности

Экспериментально обоснованы наиболее оптимальные и безопасные дозы изофлурана и севофлурана для домашних и лабораторных животных.

Установлена возможность безопасного применения ингаляционной анестезии у крысы и кролика по полузакрытому контуру, снижающая риск возникновения послеоперационных анестезиологических осложнений.

Показана высокая значимость ингаляционных анестетиков, как более управляемых и безопасных препаратов для наркоза у различных видов животных.

Теоретическая и практическая значимость работы

На основании сравнительной оценки влияния ингаляционных анестетиков на клиническое состояние животных и гематологические показатели, выявлено, что севофлурановый наркоз является наиболее безопасным и управляемым видом ингаляционной анестезии, однако, для животных с органическими патологиями печени и почек целесообразно использование изофлурана.

Определены критерии оценки состояния животного и выбора тактики ингаляционной анестезии, основанные на результатах биохимических, морфологических показателей венозной крови, содержания уровня глюкозы и лактата периферической крови. Установлены видовые клинико -морфологические эффекты ингаляционных анестетиков, что является базой для дальнейшего совершенствования проведения анестезиологических мероприятий во время хирургического вмешательства.

Научно обоснованы дозы ингаляционных анестетиков, которые позволяют снизить операционные и постоперационные риски, благодаря чему возможно безопасно проводить оперативные вмешательства у пациентов с вертеброгенными и вертебральными дискинезиями.

Разработанные оригинальные поэтапные алгоритмы выполнения анестезии позволяют эффективнее выполнять хирургические манипуляции и способствуют предотвращению возможных осложнений.

Разработаны и внедрены в практическую ветеринарию методические рекомендации «Общая анестезия с использованием ингаляционных анестетиков для животных».

Методология и методы исследования

Для данных исследований использовали такие методы как: анализ, системный подход, селективность (отбор), фотографирование, метод статистической обработки результатов, сбор анамнеза, клинический осмотр (аускультация, кардиография, измерение температуры, пульса и дыхания,

оценка неврологического статуса), гематологические и морфологические исследования.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Дозы ингаляционных анестетиков для экспериментальных лабораторных и клинически больных мелких домашних животных, позволяющие выполнить адекватную общую анестезию;

2. Оригинальный протокол анестезии для животных с вертеброгенными и вертебральными дискинезиями, основанный на изучении влияния ингаляционных анестетиков на сердечно - сосудистую, дыхательную и нервную системы у лабораторных и клинически больных животных, является безопасным и эффективным;

3. Особенности влияния ингаляционных анестетиков на биохимические показатели крови (уровень глюкозы и лактата) у клинически больных животных во время спинальных операций - как базовые маркеры оценки состояния гомеостаза животного при проведении ингаляционной анестезии;

4. Влияние ингаляционных анестетиков на гомеостаз у экспериментальных (кроликов) и клинически больных животных во время спинальных операций -важные прогностические критерии оценки состояния животного и предотвращения возможных послеоперационных осложнений;

5. Частота и характер осложнений при проведении ингаляционной анестезии у экспериментальных и клинически больных животных зависит от состояния животного до оперативного вмешательства, интраоперационных показателей и специальных особенностей выбранных для анестезии препаратов.

Степень достоверности и апробация результатов исследований

Достоверность результатов исследований базируется на применении современных методик диагностики, использовании сертифицированного оборудования, методик статистической обработки результатов исследований.

Результаты апробированы и внедрены в учебные курсы по общей и частной хирургии ФГБОУ ВО «Московская государственная академия

ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина» и ФГБОУ ВО «Башкирский ГАУ». Также, результаты исследований внедрены в практическую работу ветеринарных клиник ООО «Веста», г. Москва; ООО «Астин», г. Москва.

Материалы диссертационной работы доложены и обсуждены на конференциях: пятой Всероссийской межвузовской научной конференции по ветеринарной хирургии (Москва, 2015г.); шестой Всероссийской межвузовской научной конференции по ветеринарной хирургии (Москва, 2016г.); седьмой Всероссийской межвузовской научной конференции по ветеринарной хирургии (Москва, 2017г.); восьмой Всероссийской межвузовской научной конференции по ветеринарной хирургии (Москва, 2018г.); Конференция, посвященная 100-летию академика К.И. Скрябина (Москва, 2018г.); Материалы Международной научно-практической конференции «Современные проблемы радиобиологии, агроэкологии, клинической и экспериментальной ветеринарной хирургии», посвященной 90-летию со дня рождения академика РАСХН А.Д. Белова (Санкт-Петербург, 2018г.); девятой Всероссийской межвузовской научной конференции по ветеринарной хирургии (Москва, 2019г.)

Публикации

По теме диссертации опубликовано 14 научных работ, 5 из которых в журналах, рекомендованных Высшей аттестационной комиссией Российской Федерации, 1 статья в журнале индексируемом в Scopus/Web of Science, а также 1 учебно-методическое пособие по теме диссертации.

Объём и структура диссертации

Диссертация изложена на 119 страницах машинописного текста, содержит 65 рисунков, 22 таблицы и состоит из введения, трех глав (Обзор литературы, Материалы и методы, Результаты собственных исследований и их обсуждение), заключения, практических предложений, перспективы дальнейшего списка сокращений, списка используемой литературы и приложений. Список используемой литературы включает 158 источников, в том числе 61 зарубежных авторов.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Особенности анатомии дыхательной системы у животных

Прежде чем переходить к способам подачи ингаляционных анестетиков необходимо точно представлять анатомическое строение дыхательной системы, а также топографию основных сосудов и нервов, данные материалы полноценно описаны в работе Слесаренко Н.А., 2004 и ёеЬаИи^аА., 2009.

Бе ЬаИи^а А., 2009 утверждает, что у домашних животных газообмен происходит в легких, расположенных в грудной клетке. Поочередное сокращение мышц вдыхателей и выдыхателей приводит к расширению и сужению грудной клетки, а вместе с ней и легких. Это обеспечивает всасывание воздуха через воздухопроводящие пути в легкие и его обратно. Сокращениями дыхательных мышц управляет нервная система.

По данным Слесаренко Н.А., 2004, дыхательный аппарат представляет собой совокупность органов дыхания (дыхательная система) и органов респираторной (дыхательной) моторики.

Органы дыхания образованы воздухоносными путями (проводящий отдел) и респираторным отделом, расположенным в основных органах дыхания - легких.

Органы респираторной моторики включают в себя опорно -статистический аппарат грудной клетки и дыхательную мускулатуру вместе с их сосудисто - нервным обеспечением.

Органы дыхания разделены на две части: воздухопроводящую (аэродинамическую) (включающую в себя носовую полость, носоглотку, гортань, трахею и бронхи) и респираторную (в нее входят альвеолярные ходы и альвеолы легких).

Нос и носовая полость. Представляют собой начальный участок воздухоносных путей, который с помощью ноздрей сообщается с окружающей средой, а с помощью хоан - с полостью носоглотки.

Гортань - орган для проведения воздуха. Кроме того, гортань выполняет недыхательную (голосовую) функцию. Гортань - подвижный орган, косвенно участвующий в акте глотания. Гортань имеет в своей структуре кольцевидный хрящ, щитовидный хрящ, черпаловидный хрящ, межчерпаловидный хрящ, надгортанник.

Трахея, по мнению ёе ЬаИи^а А., 2009, представляет собой длинную трубку, которую поддерживают кольца хрящей в форме лошадиной подковы, служит для проведения воздуха в легкие и обратно. Данная трубка имеет постоянно зияющий просвет, что обеспечивается имеющимися в ее стенке незамкнутыми сверху кольцами из гиалинового хряща. Внутри трахея выстлана слизистой оболочкой. Она простирается от гортани до основания сердца, где делится на два бронха, образующих основу корней легких. Это место называется бифуркацией трахеи. Бронхи делятся на мелкие бронхиолы, которые заканчиваются мельчайшими мешочками в форме пузырьков — альвеолами легких.

Легкие, по мнению автора, это главные органы дыхания, непосредственно в которых происходит газообмен между вдыхаемым воздухом и кровью через разделяющую их тонкую стенку. Для обеспечения газообмена необходима большая площадь соприкосновения между воздухоносными и кровеносными руслами. В соответствии с этим воздухоносные пути легких - бронхи - подобно дереву многократно ветвятся до бронхиол (мелких бронхов) и оканчиваются многочисленными мелкими легочными пузырьками - альвеолами, которые образуют паренхиму легких (паренхима - это специфическая часть органа, выполняющая его основную функцию). Кровеносные сосуды ветвятся параллельно бронхам и густой капиллярной сетью оплетают альвеолы, где и осуществляется газообмен. Таким образом, основными компонентами легких являются воздухоносные пути и кровеносные сосуды. Соединительная ткань объединяет их в парный компактный орган - правое и левое легкое. Правое легкое несколько больше левого, так как влево смещено сердце, расположенное между легкими.

Также необходимо помнить о механизме дыхания. Так как в легких нет мускулатуры, они не могут активно расширяться и сжиматься. Акт вдоха и выдоха происходит за счет увеличения и уменьшения объема грудной клетки благодаря работе дыхательных мышц, которые играют в акте дыхания важную роль. При вдохе происходит сокращение дыхательных мышц, что приводит к увеличению размеров грудной клетки, а при выдохе - ее уменьшение.

1.2. Современное состояние материально-технического обеспечения ингаляционной анестезии у животных

1. Дыхательный контур (ДК) (Рис. 1.2.1) - совокупность специальных приспособлений, которые обеспечивают доставку наркозно-дыхательной смеси пациенту. Все 4 вида подразделяются на реверсивные и не реверсивные ДК. По данным Лдёгееи М., 1975; Бобовника С.В., 2005; Скаченко Е.В., 2013; Брайана Дж. Полларда, 2006; Гершова С.О., 2005; Дж. Эдвард Морган-мл., 2014 существует четыре вида дыхательных контуров для подачи ингаляционного анестетика.

Рис. 1.2.1.Схематичное строение наркозно - дыхательного аппарата по Баг1еИа М., 2016: 1 - блок ротаметров; 2 - испаритель; 3 - адсорбер; 4 - резервный мешок; 5 - аппарат ИВЛ; 6 - клапан вдоха; 7 - клапан выдоха; 8 - клапан сброса.

Скаченко Е.В., 2013; Брайан Дж. Поллард 2006; Гершов С.О., 2005; Сидоров В.А., 2014 утверждают, что наркозно - дыхательный аппарат состоит из блока ротаметров (данные блоки необходимы для дозирования подачи газов, чаще всего кислорода), испарителя, необходимого для дозирования ингаляционных анестетиков (данный прибор находится вне контура, в испарителе кислород насыщается анестетиком до заданной концентрации, тем самым образуется поток свежего газа), адсорбера - емкости, заполняемой сорбентом, поглощающим СО2, резервного мешка, который предназначен для хранения запасной наркозно-дыхательной смеси (по нему, при спонтанном дыхании можно оценивать ЧДД и глубину самого дыхания), аппарата ИВЛ (данный аппарат используется не со всеми наркозными аппаратами, предназначен для принудительной вентиляции легких во время оперативного вмешательства), клапанов вдоха и выдоха (обеспечивают однонаправленное движение наркозно -дыхательной смеси в контуре ), клапана сброса

(используется для удаления излишков наркозно-дыхательной смеси), переключателя между аппаратом ИВЛ и резервным мешком (предназначен для перехода со спонтанного дыхания на принудительную вентиляцию легких).

Скаченко Е.В., 2013; Бобовник С.В., 2005 и Сидоров В.А., 2014 к реверсивным ДК относит контуры, в которых наркозно - дыхательная смесь неоднократно циркулирует от оборудования к пациенту. Данный дыхательный контур содержит адсорбер, клапаны вдоха и выдоха. Данные авторы подразделяют реверсивные ДК на полузакрытые (Рис. 1.2.2.) и закрытые (Рис. 1.2.3.). При использовании полузакрытого вида контуров дыхательная смесь циркулирует по кругу, а отработанная смесь удаляется наружу в тот момент, когда превышается давление, установленное на клапане сброса. Расчет потока для полузакрытого контура: 5-10 мл/кг/мин х МТ х 3. Преимущества данного вида контуров: экономия ингаляционного анестетика, низкий расход анестетика. К недостаткам относят: Большой набор приборов для контроля сердечно - сосудистой и дыхательной систем.Grimm K.A., 2015 считает, что закрытые ДК, по своей структуре, напоминают полузакрытые. Однако,

отличием является то, что в закрытом виде контура используется минимальный поток кислорода, который необходим для метаболических потребностей организма. Свежий поток кислорода полностью поглощается организмом, и отработанной смеси не образуется. После того, как контур заполняется анестетиком - испаритель должен быть выключен. При использовании данного контура, Grimm K.A., 2015 рекомендует очень тщательно контролировать сердечно сосудистую и дыхательную системы, а также проводить анализ анестетических газов.

Рис.1.2.2.Схематичное устройство наркозно -дыхательного аппарата по Скаченко Е.В., 2013: 1 - ротаметр кислорода; 2 - ротаметр закиси азота; 3 - кнопка экстренной подачи кислорода, в обход испарителя; 4 - клапан вдоха; 5 - клапан выдоха; 6 - клапан сброса; 7 - переключатель между резервным мешком и ИВЛ; 8 - адсорбер; 9 - испаритель; 10 -аппарат ИВЛ; 11 - резервный мешок.

Рис.1.2.3. Общая схема устройства закрытого дыхательного контура по Dorsch, J.A., 1993: 1 - блок ротаметров; 2 -испаритель; 3 - адсорбер; 4 - клапан вдоха; 5 - клапан выдоха; 6 - клапан сброса; 7 - Y-образный коннектор; 8 - дыхательный мешок; 9 - гибкие дыхательные трубки; 10 -маска для подачи ингаляционного анестетика.

Рис.1.2.4. Общая схема устройства открытого Рис.1.2.5. Общая схема устройства дыхательного контура по Grimm K.A., 2011 полуоткрытого дыхательного контура по

Bain J.A., 1973:

1 - предохранительный клапан; 2-соединение с наркозным аппаратом; 3 -дыхательная трубка; 4 - трубка подачи свежей дыхательной смеси; 5 - маска.

К нереверсивным ДК (контур, в котором наркозно-дыхательная смесь попадает к животному, а отработанный газ выводится за пределы контура), Скаченко Е.В., 2013 и Сидоров В.А., 2014 относят открытый (Рис. 1.2.4.) и полуоткрытый (Рис. 1.2.5.) контуры. При использовании открытого контура, по данным Скаченко Е.В., 2013, ингаляционный анестетик наносится на ватку и с нее происходит испарение, так же, по данным Edmond I.E. II, 2010 используют специальные боксы, в которые вводят ингаляционный анестетик и помещают туда животное. Скаченко Е.В., 2013 и BarlettaM., 2016, описывают, что в полуоткрытых контурах, в фазу вдоха, свежая наркозно-дыхательная смесь попадает к пациенту по тонкой трубке, находящейся в центре большой трубки (Рис. 1.2.5.), а в фазу выдоха, отработанная смесь выходит в атмосферу по более крупной трубке. Т.к. в полуоткрытых ДК отсутствует адсорбер и специальные однонаправленные клапаны, в контуре не создается сопротивление вдоху и выдоху пациента. Данные авторы относят к недостаткам достаточно высокий расход анестетика. Данные, описанные Burnell R., 1993 и Скаченко Е.В., 2013 показывают, что расчет подачи газа для полуоткрытого контура осуществляется по данной формуле: 100-120 мл/кг/мин х МТ.

1.3. Характеристики современных ингаляционных анестетиков

Наиболее распространенные галогенсодержащие препараты в современной ветеринарной анестезиологии - севофлуран и изофлуран. Представленные анестетики в отличие от неингаляционных высоко эффективны, легкоуправляемые, а также более безопасны. Чаще всего, применяют в качестве поддерживающих препаратов общей анестезии, в редких случаях используют для седации в случае серьезных патологий (Козлов Н.А., 2015; Plumb D.C., 2017 и Lipinski M.J.,2017).

К преимуществам ингаляционной анестезии относят легкость использования (при использовании данного вида наркоза наблюдается комфортное и быстрое погружение в наркоз, а также выход из него), управляемость глубиной наркоза, минимальная токсичность и минимум побочных действий, минимальная биотрансформация в организме животного. Также, данные препараты обладают сильным гипнотическим эффектом и миорелаксацией (Козлов Н.А., 2015;Plumb D.C., 2017 и Lipinski M.J.,2017).

Лихванцев В.В., 2014, считает, что во время анестезии, при помощи вентиляции, анестетик попадает в легкие и благодаря этому увеличивается альвеолярная концентрация. Поглощение анестетика кровью в легких противодействует эффекту вентиляции путем удаления анестетика из легких с током крови. Метаболизм анестетиков может усилить их поглощение. Ингаляционные анестетики отличаются растворимостью, чем она более низкая, тем быстрее выход из анестезии.

1.3.1. МАК ингаляционных анестетиков

По данным Гельфанда Б.Р., 2006 МАК - минимальная альвеолярная концентрация, необходимая для обездвиживания 50% животных при незначительных хирургических манипуляциях.

Китиашвили И.З., 2007 напоминает, что МАК - усредненная величина и ориентироваться только на ее значения невозможно. Концепция МАК —

является универсальным клиническим стандартом в практике ветеринарного врача - анестезиолога.

Таблица 1.3.1.1.

Показатели МАК, в зависимости от вида животного по Китиашвили И.З.,

2007

Вид животного МАК севофлурана Мак изофлурана

Кошка 2,5-3,95% 1,2-2,2%

Собака 1,86-2,36% 1,27-1,68%

Данный автор, также утверждает, что помимо основного значения МАК, существует еще МАКИТ — минимальная альвеолярная концентрация, необходимая для интубации трахеи. В ветеринарии, данная величина необходима при использовании ингаляционных анестетиков в качестве седации.

1.3.2. Физико-химические свойства ингаляционных анестетиков

Закись азота.

Закись азота представляет собой бесцветный газ, обладающий характерным запахом и сладким привкусом. Применение закиси азота в анестезиологии было описано в работах Andreen M., 1975; Иванаевского B.C., 1991; Бунятян A.A., 1997; Алиева A.A., 1998; Женило В.М., 1998.

Данные авторы считают, что представленный анестезирующий газ имеет минимальное количество побочных эффектов и наименьшую токсичность. Закись азота является достаточно дешевым средством для анестезии. Однако, Женило В.М., 1998 описывает, что при использовании закиси азота невозможно погрузить животное в состояние глубокого наркоза, и используется в качестве комбинированной анестезии. В сочетании с миорелаксантами, местными анальгетиками и другими анестезиологическими препаратами. По данным Алиева А.А., 1998 использование закиси азота в виде

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Старынина Виктория Сергеевна, 2020 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алиев, A.A. Экспериментальная хирургия / А.А. Алиев.// Учебное пособие. -2-е доп. и перераб. изд. - М.: НИЦ "Инженер", 1998. - 446 с.

2. Ахундов, A.A. Анестезиология и реаниматология /А.А. Ахундов, И.Г. Каракова. 1991. -№3. - С. 68-71.

3. Балакирев, Н.А.Кролиководство [текст] / Н.А. Балакирев.- М.: КолосС, 2006.- С. 3-46.

4. Бобовник, C.B. Основы анестезиологии и интенсивной терапии / С.В. Бобовник, А.М. Варвинский, Н.А. Воробьева. - "Архангельск", 2005.

5. Битнер, Р.Л. Осложнения при анестезии / Р.Л. Битнер -М.: Медицина, 2010.- С. 331-339.

6. Братюха, С.И. Болезни пушных зверей [текст] / С.И. Братюха с соавт.-Киев: Урожай, 1987.- С. 130-150.

7. Брайан, Дж. Поллард. Руководство по клинической анестезиологии.-"МЕДпресс-информ", -2006. - С. 678 -698.

8. Брерли, Д. Контроль сердечно-сосудистой системы и что делать, когда это делается неправильно. / Д. Брерли // VI Всероссийская конференция по онкологии и анестезиологии мелких домашних животных. Москва, 2010. — С.73-78.

9. Букин, И.А. Ксенон в анестезиологии/ И.А. Букин, А.А. Вельмисова// VI Всероссийская неделя науки с международным участием "WeekofRussianScience- 2017

10. Бунятян, A.A. Руководство по анестезиологии. - 2-е изд.-М.:Медицина, 1997. - 656 с.

11. Бурмистров, Е.Н. Шанс био: лабораторная диагностика / Е.Н. Бурмистров, М.Д. Кинкладзе, Н.А. Гришина, Е.В. Мещерская, С.А. Нечаев //

Справочное пособие для ветеринарных врачей. 5-й выпуск. М.: «Шанс Био», 2014. - 190с.

12. Вилковыский, И.Ф. Гемиламиноэктомия, минигемиламино-эктомия, корпэктомия и миникорпэктомия как методы декомпрессии спинного мозга. достоинства и недостатки методов / С.В. Крыжановский, И.Ф. Вилковыский, Ю.А. Ватников // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. -2016. - №12. С. 18-23

13. Волков, В.Е. Экспериментальная хирургия и анестезиология [текст] /В.Е. Волков -М.: Медицина, 1963.-С. 77-80.

14. Вяткин, А.А. Ксенон в анестезиологии: достоинства и недостатки, реальность и перспективы / А.А. Вяткин, В.М. Мизиков// Анестезиология и реаниматология. 2008.-№ 5.-С.103-107.

15. Гельфанд, Б.Р. Анестезиология и интенсивная терапия: Практическое руководство/ Б.Р. Гельфанд, П.А. Кириенко, Т.Ф. Гриненко // Под общ. редакцией Б.Р. Гельфанда. - М.: Литтера, 2006. - С. 41 - 43.

16. Гельфанд, Б. Р.Анестезиология и интенсивная терапия - 2-е изд. -Москва:Литтера, 2015.

17. Гершов, С.О. Ингаляционная анестезия в ветеринарной практике / С.О. Гершов, М.В. Алыпинецкий, В.Е. Козлитин, М.В. Васина // Российский ветеринарный журнал. -2005. - №4. - С. 37-42.

18. Гершов, С.О. Основы ингаляционной анестезии / С.О. Гершов, В.Е. Козлитин, М.В. Васина, М.В. Алыпинецкий // Семинар "Ингаляционная и регионарная анестезия мелких домашних животных" - М., 2004. - С. 6-17.

19. Гимельфарб, А.И. Оценка анестезиологического риска. Факторы и группы риска. // VI Всероссийская конференция по вопросам онкологии и анестезиологии мелких домашних животных. ГУ РОНЦ имени H.H. Блохина РАМН, - 2010.-С. 48-51.

20. Гологорский, В.А. Руководство по, анестезиологии / В.А. Гологорский // Под редакцией А.А.. Бунятяна. - М., 1994. - С. 248-264.

21. Гологорский, В.А. О проблеме адекватности общей анестезии /В.А. Гологорский, Т.Ф. Гриненко, Л.Д. Макарова// Анест. и реаниматол, 1988. - № 2. - С. 3-6.

22. Дабренок, Г.И. Электрокардиография у собак / Г.И. Дабренок // Ветеринар, 2000. - № 3. - С. 16-19.

23. Дамир, Е.А. Влияние сопутствующих заболеваний внутренних органов на течение и осложнения наркоза и послеоперационного периода / Е.А. Дамир // Диссертация на соискание ученой степени доктора медицинских наук. Москва, 1966 с.

24. Дела Торе, П.К. Эхокардиографические показатели грейхаундов, уиппетов и левреток/ П.К. Дела Торе, А.К. Кирби, Д.Б. Черч, Р. Малик // Российский ветеринарный журнал, 2006. - №3. - С.27-32

25. Дибиров, Ш.С. Влияние тиопентал-натриевой общей анестезии на количество тромбоцитов в крови собак / Дибиров Ш.С. // ФГБОУ ВО Дагестанский ГАУ, 2019. - №2(38). - С. 208-212

26. Дж. Эдвард Морган-мл. Клиническая анестезиология /Дж. Эдвард Морган-мл., Мэгид С. Михаил // 3 том. СПб.: Бином, 2014. - 197с

27. Женило, В.М. Основы современной общей анестезии /В.М. Женило, В.Г. Овсянников, А.Д. Белявский, Н.А. Азнаурьяи. Ростов-на-Дону: Изд-во "Феникс", 1998.-352 с.

28. Женило, М.В. Нейромедиаторные механизмы развития анальгезии при общей анестезии/ М.В. Женило, В.М. Женило, А.А. Бычков // Анестезиология и реаниматология, 2004. - №3. - С. 10-11.

29. 3ильбер, А.П. Дыхательная недостаточность: Руководство. - М.,

1989.

30. 3ильбер, А.П. Искусственная вентиляция легких при острой дыхательной недостаточности у больных пожилого возраста - М., 1978.

31. Иванаевский, B.C. Использование новых наркосмесей для обезболивания животных // Пробл. хирург, патологии с.-х. животных - Белая Церковь, 1991. - 89 с.

32. Илларионова, В.К. Алгоритм интерпретации кардиограммы собак / В.К. Илларионова // Российский ветеринарный журнал, 2006. - №3. — С. 20-26.

33. Илларионова, В.К. Морфологические и функциональные показатели сердца собак в норме и при недостаточности атриовентрикулярных клапанов. // Диссертация на соискание ученной степени кандидата биологических наук - Москва, 2006.

34. Илларионова, В.К. Диагностика болезней сердца у собак и кошек-М.: "Колос С", 2010.

35. Камышников, В.С. Справочник по клинико-биохимическим исследованиям и лабораторной диагностике - М.: «МЕД пресс-информ», 2016. - 196с.

36. Каулкетт, Н. Общая анестезия медведей/ Н. Каулкетт, М. Р. Катет // Российский ветеринарный журнал, 2005. - №1. - С. 6-8.

37. Кесарева, Е.А. Клиническая интерпретация биохимических показателей сыворотки крови собак и кошек /Е.А. Кесарева, В.Н. Денисенко-«Колосс», 2015. - С. 4-14

38. Кирк, Р. Современный курс ветеринарной медицины Кирка / Р. Кирк, Д. Бнагура- М.: "Аквариум-Принт", 2005.

39. Китиашвили, И.З. Алгоритм прогноза послеоперационных осложнений и выбора метода анестезии / И.З. Китиашвили, Н.Е. Буров // Клиническая анестезиология и реаниматология, 2007. - №4. — С. 56-61.

40. Китиашвили, И.З. Пути повышения эффективности тотальной внутривенной анестезии/ И.З. Китиашвили, Н.А. Осипова, М.С. Ветшева// Вестник интенсивной терапии, 2000. - №4. - С. 64-67.

41. Козлов, Н.А. Опыт применения медитина при оперативных вмешательствах у мелких домашних животных./ Н.А. Козлов, В.С. Старынина // Журнал «Ветеринарная клиника», 2015. - 1/2015.- 27с.

42. Козлов, Н.А. Современная концепция лечения компрессионных повреждений спинного мозга у собак. Часть 1. Экспериментальный раздел. /

Н.А. Козлов, Р.К. Полянский, В.С. Старынина // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние животные, 2014. - № 1/2014 - С. 25 - 28

43. Козлов, Н.А. Современная концепция лечения компрессионных повреждений спинного мозга у собак. часть 2. Н.А. Козлов, Р.К. Полянский, В.С. Старынина // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние животные, 2014

44. Козловская, Н.Г. Оценка глубины анестезии по клиническим признакам у собак/ Н.Г. Козловская // Российский ветеринарный журнал, 2010. - №1. — С. 2-5.

45. Козловская, Н.Г. История анестезиологии. К 160-летию. // III Всероссийская конференция по онкологии и анестезиологии мелких домашних животных. Москва. - 2006. - С. 27-29.

46. Колесов, М.А. Анестезиология и реаниматология собак и кошек. М.: Аквариум, - 2007. - 208с.

47. Корнюшенков, Е.А. диссер. 06.02.03 Фармакодинамические эффекты различных сочетаний пропофола с препаратами других групп при внутривенной анестезии собак, 2011. - 149с.

48. Корнюшенков, EA.«Eigenschaften der totalen intravenösen Anaesthesie und intensiven Therapie bei neurochirurgischen Eingriffen bei Hunden», Deutsche Veterinärmedizinische Gesellschaft - DVG.- Дюссельдорф, Германия, 4-8 октября 2008 г., - 54с.

49. Корнюшенков, Е.А. Point of Care Measurement of Lactate/ Di Mauro FM, et al.// Top Companion Anim Med., 2016

50. Костылев, А.Н. Влияние сопутствующей вертебробазилярной недостаточности на постнаркозное восстановление / А.Н. Костылев // Анестезиология и реаниматология, 2004. - №3. - С. 17-20.

51. Кэррол, Г.Л.Сопровождающие симптомы у кролика: инструкция диагностики и терапия. Изд. Энке, второй тираж, 2009.

52. Лекманов, А.У. Оценка гипнотического компонента на основании BIS- мониторинга при сбалансированной анестезии у детей/ А.У. Лекманов,

С.В. Карпович, Е.В. Михайлова и др. // Анестезиология и реаниматология, 2007. - №1. - С.15-16.

53. Лихванцев, В.В. Современная ингаляционная анестезия /В.В. Лихванцев, В.В. Печерица— М.: Гэотар-мед, 2003. — 45с.

54. Лихванцев, В.В. Практическое руководство по анестезиологии. М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2011.

55. Лихванцев, В.В. Опасности и осложнения общей анестезии. М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2014.

56. Лихванцев, В.В. Современные возможности мониторинга глубины и эффективности анестезии: Сб.ст. //Современные проблемы мониторинга в анестезиологии и интенсивной терапии. -М., 2012. - С.63-64.

57. Лысов, В.Ф. Основы физиологии и этологии животных / В.Ф. Лысов, В.И. Максимов - М.: Колос, 2004

58. Луцай, В.И. Влияние внутрикостной анестезии на гематологические показатели кроликов/ В.И. Луцай, А.А. Онучина// Мodem science. - 2019. - № 42. - С. 41-44.

59. Луцай, В.И. Применение сочетанной анестезии для профилактики спаечных процессов при лапаротомии у домашних животных/ В.И. Луцай, М.А. Барышева// СoПoquшm-journal. -2019. -№ 8-2 (32). - С. 16-18.

60. Макинтайр, Д.К. Скорая помощь и интенсивная терапия мелких домашних животных. Практическое руководство / Д.К. Макинтайр, К. Дж. Дробац, С.С. Хаскингз, У.Д. Саксон - М.: Аквариум, 2013 - 560с.

61. Майский, В.В. Фармакология с общей рецептурой / В.В. Майский, Р.Н.Аляутдин // Учебное пособие для СПО. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2014. — С. 71.

62. Машковский, М.Д. Лекарственные средства. / М.Д. Машковский // 15-е изд. — М.: Новая Волна, 2005. — С. 16—17.

63. Мелентьев, О.Н. Нарушение процесса цекотрофии у кроликов / О.Н. мелентьев // Кролиководство и звероводство., 2014. - №4. - С.21-23.

64. Меньшиков, В.В. Критерии оценки методик и результатов клинических лабораторных исследований, справочное пособие: - Москва, изд. Лабора, 2016. - 328с.

65. Миллер, Р. Анестезия Рональда Миллера. Издательство «Человек»,

2015.

66. Морган, Д.Э. Клиническая анестезиология: книга 1-я / Д.Э. Морган, С.М. Мэгид //- М.: БИНОМ, 2006.

67. Мощев, Д.А. Применение десфлурана в анестезиологии / Д.А. Мощев, Ф.Ю. Лубнин // Анестезиология и реаниматология - 2014. - С. 12-14.

68. Печерица, В.В. Ингаляционная анестезия энфлюраном и изо-флюраном при низких потоках медицинских газов в сосудистой хирургии: Автореф. дис.... канд. мед. наук. — М., 1998.

69. Пламб, Д.К. Фармакологические препараты в ветеринарной медицине. М.: Аквариум, 2002. - 856 с.

70. Позябин, С.В. Методология выполнения и осложнения эпидуральной анестезии у собак. / С.В. Позябин, Н.П. Механикова // Ветеринария, зоотехния и биотехнология, 2015. - №.1 - С. 22 -25.

71. Полатайко, O.P. Ветеринарная анестезия. "ВД Перископ", Киев, 2009. - С. 27 -74.

72. Полатайко, О.Р. Особенности анестезии собак - М.: 2013

73. Поллард, Б. Дж. Руководство по клинической анестезиологии -Мед- пресс-информ, 2006.

74. Радушкевич, В.Л. Непреднамеренная интраоперационная гипотермия / В.Л. Радушкевич, Б.И. Барташевич, Ю.Н. Караваев // Анестезиология и реаниматология, 1997. - № 4. - С. 79-83.

75. Риган, В. Дж. Атлас ветеринарной гематологии / В.Дж. Риган, Т.Г. Сандерс, Д.Б. Деникола; науч.ред. А.М. Медведева - М.: ООО «Аквариум принт», 2014. - 135с.

76. Рябов, Г.А. Синдромы критических состояний / Г.А. Рябов - М.: Медицина, 1994.

77. Салтанов, А.И. Актуальные вопросы современной внутривенной анестезии / А.И. Салтанов // Анестезиология и реаниматология, 1997. - № 6. — С. 77-79.

78. Салтанов, А.И. Актуальные вопросы анестезии и интенсивной терапии» в педиатрии / А.И. Салтанов, А.У. Лекманов // Анестезиология и реаниматология, 1999. - №4. - С. 62-67.

79. Сидоров, В.А. Ингаляционная терапия в педиатрии /В.А. Сидоров, Л.Е. Цыпин— М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2014. — 184 с.

80. Сидорова, К.А. Клинико-физиологическое обоснование неингаляционной анестезии / К.А. Сидорова, О.А. Драгич, О.А. Балабанова // ФГБОУ ВО «Государственный аграрный университет Северного Зауралья», 2019. - №4. - С. 168-170

81. Скаченко, Е.В. ИВЛ и респираторная поддержка во время хирургических вмешательств у собак. / Е.В. Скаченко // III Всероссийская конференция по онкологии и анестезиологии мелких домашних животных. Москва., 2009. -С. 30-32.

82. Скаченко, Е.В. Методические рекомендации для ветеринарных врачей по общей анестезии собак и кошек/ Е.В. Скаченко, А.Ю. Павлюченко, Ю.С. Дородных, 2013 - 55с.

83. Слесаренко, Н.А. Анатомия собаки. Висцеральные системы (спланхнология) / Н.А. Слесаренко, Н.В. Бабичев, А.И. Торба, А.Е. Сербский -М.: Лань, 2004. - 88 с.

84. Смит, Й. Тотальная внутривенная анестезия / Й. Смит, П. Уайт // Клиническое руководство. "Бином", 2006.

85. Сотников, В.В. Диагностика и оперативное лечение дископатий грудопоясничного отдела позвоночника собак. // Автореферат дисс. кандидата ветеринарных наук. М.: 2008.

86. Стекольников, А.А. Гематологические показатели крыс при автоматизированном анализе и микроскопическом методе/ А.А. Стекольников,

B.В. Решетняк, В.В. Бурдейный, Е.А. Искалиев // Труды кубанского государственного аграрного университета. - 2019. - № 76. -

C. 185-189.

87. Стекольников, А.А. Общая анестезия и эвтаназия в ветеринарии/ Р. Бетшарт-Вольфенсбергер, А.А. Стекольников, К.В. Племяшов, А.Ю. Нечаев // Санкт-Петербург, 2017.

88. Туровникова, Е.В. Гемодинамическая оценка двух схем анестезии, применяемых для непродолжительных процедур / Е.В. Туровникова, И.В. Новикова // Российский ветеринарный журнал, 2006. - №1. — С.7-8.

89. Тимофеев, С.В. Общая хирургия животных. / С.В. Тимофеев, Ю.И. Филиппов, С.Ю. Концевая // «ЗООМЕДЛИТ», 2007.

90. Уиллард, М. Лабораторная диагностика в клинике мелких домашних животных / М. Уиллард, Г. Тведтен, Г. Торнвальд // Под ред. д.б.н. В.В. Макарова; "Аквариум-Бук", 2004.

91. Филиппов, Ю.И. Использование ингаляционного наркоза у лабораторных животных / Ю.И. Филиппов, Н.А. Козлов, В.С. Старынина // Сборник трудов шестой Всероссийской межвузовской конференции по ветеринарной хирургии ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина,

2016. - С. 5-9.

92. Филиппов, Ю.И. Динамика изменения концентрации глюкозы в крови при применении севофлуранового наркоза у спинальных пациентов / Ю.И. Филиппов, Н.А. Козлов, В.С. Старынина // Вестник Алтайского государственного аграрного университета № 3 (149), 2017. - С. 137-143.

93. Филиппов, Ю.И. Сравнительный анализ применения изофлурана и севофлурана при анестезиологическом обеспечении хирургических операций у разных видов животных / Ю.И. Филиппов, Н.А. Козлов, В.С. Старынина // Сборник трудов седьмой Всероссийской межвузовской конференции по ветеринарной хирургии ФГБОУ ВО МГАВМиБ-МВА имени К.И. Скрябина,

2017. - С. 224-237.

94. Филиппов, Ю.И. Влияние ингаляционных анестетиков на уровень лактата в крови / Ю.И. Филиппов, Н.А. Козлов, В.С. Старынина // Сборник трудов седьмой Всероссийской межвузовской конференции по ветеринарной хирургии ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина, 2017. - С. 214223.

95. Эккерт, Р. Физиология животных. Механизмы и адаптации / Р. Эккерт, Д. Рэндалл, Д. Огастин -М.: Мир, 2014. - 424с.

96. Ягников, С.А. Сравнительная оценка анальгетической эффективности препарата на основе нефопама гидрохлорида и препарата на основе метамизола натрия в послеоперационном периоде у собак при хирургическом вмешательстве на коленном суставе/ Ю.А. Трещёва, В.В. Матушко, С.А. Ягников, Н.В. Данилевская // Российский ветеринарный журнал. - 2017. - № 8. - С. 26-30.

97. Ященко, Е.А. Ноотропы в ветеринарной медицине // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. -2014. - №3-1. - С. 125-126.

98. Alony, Y. Total intravenous anesthesia with propofol/ketamine in the dog. A prospective case series / Y. Alony, R. White // XXI st Congress of the world small animal veterinary association - WSAVA. Jerusalem, Israel, October 2023, 1996.

99. Andreen, M. The effect of controlled halothane anesthesia on splanchnic oxygen consumption in the dog / M. Andreen, L. Irestedt, L. Thulin // Actaanesth, 1975. - Vol.19. - P. 238-244.

100. Bain, J. A., Flow requirements for a modified Mapleson D system during controlled ventilation / J.A. Bain, W.E. Spoerel // Can. Anaest. Soc. J., 1973. - Vol. 20. - 629p.

101. Barletta, M. Agreement between veterinary students and anesthesiologists regarding postoperative pain assessment in dogs / M. Barletta, C.N. Young, et. al. // Veterinary Anesthesia and Analgesia 2016. -98 p.

102. Benson , G.J. Cardiopulmonary effects of an intravenous infusion of guanfenesin, ketamine and xylazine in dogs / G.J. Benson, J.C. Thurmon, W.J. Tranquil, C.W. Smith // Am. J. veter. Res. 2005. - Vol. 46, N 9.- P. 1896 - 1898.

103. Braun, C. Effects of chanding body position on oxygenation and arterial blood pressures in foals anesthetized with guaifenesin, ketamine, and stimulation / C. Braun, C.M. Trim, R.B. Eggleston // Veterinary Anaesthesia and Analgesia, 2009. -Vol. l. - P. 18-24.

104. Brodbelt, D.C. Ganzheitliche Behandlung von Kaninchen und Meerschweinchen: Anatomie - Pathologie - Praxiserfahrungen, MVS Medizinverlage GmbH & Co Stuttgart, 2008.

105. Burnell, R. Biodegradation and organ toxicity of new volatile anesthetics / R. Burnell, et al // Current Opinion in Anaesthesiology, 1993. - P. 644-647.

106. Calasans - Maia, M.D. The rabbit as an animal model for experimental surgery / M.D. Calasans-Maia, M.L. Monteiro, F.O. Ascoli, J.M. Granjeiro // Acta cirurgica brasileira, Acta Cirurgica Brasileira/SOBRADPEC, 2009. - № 4 - P. 325 -328.

107. Calvey, N.T. Principles and Practice of Pharmacology for Anaesthetists / N.T. Calvey, N.E. Williams // Blackwell Scientific Publications, 1991.

108. Concordet, D.A. A multicentric retrospective study of serum/plasma urea and creatinine concentrations in dogs using univariate and multivariate decision ruled to evaluate diagnostic efficacy / D. Concordet, F. Vergez, C. Trumel, et al. // Vet Clin Pathol, 2006. - P. 96-103.

109. Clarke, K.W. Veterinary anesthesia / K.W. Clarke, C.M. Trim, L.W. Hall // Saunders Elsevier NY. 2017 - 694p.

110. De Lahunta, A. Veterinary Neuroanatomy and Clinical Neurology / A. De Lahunta, E. Glass, W.B. Saunders, 2009.

rd

111. Dorsch, J.A. Understanding Anesthesia Equipment, 3 ed. / J.A. Dorsch, S.E. Dorsch // Williams and Wilkins, 1993.

112. Edmond I Eger II. The pharmacology of inhaled anesthetics, 2010.

113. Ewart, I.A. Volatile anaesthetics : recent developments / I.A. Ewart, et. al. // Current Anaesthesia and Critical Care, 1991. - Vol. 2. - P.243 - 250

114. Fayyaz, S. The cardiopulmonary effects of anestetic induction with isoflurane, ketamine-diazepam or propofol-diazepam in the hypovolemic dog / S. Fayyaz, C.L. Kerr, D.H. Dyson // Veterinary Anaesthesia and Analgesia, 2009. — Vol. 2. - P. 110-123.

115. Flecknell, P. Anaesthesia of small mammals. / P. Flecknell // 41st British Small Animal Veterinary Congress. 2nd-5th April 1998, Birmingham, England.

116. Grimm, K.A. Essentials of Small Animal Anesthesia and Analgesia, 2nd Edition / K.A. Grimm, J.W. Tranquilli, A. Leigh // Lamont-Wiley-Blackwell, 2011 -572p.

117. Grimm, K.A. Veterinary Anesthesia and Analgesia, The Fifth Edition of Lumb and Jones / K.A. Grimm, A. Leigh, Lamont, J.W. Tranquilli, S.A. Greene, A. Sheilah // Robertson- Wiley-Blackwell,2015 - 1072p.

118. Grint N.J.Lactic acid in amphibian muscle. Phisiol., 2008. - 35(4). - P. 247 - 309.

119. Hall, L.W. Effects of nitrous oxide on respiration during halothane anesthesia in the dog / L.W. Hall // Br. J. Anesth, 1988. - Vol.60, N 2. - P.207 - 215.

120. Hammond, R.A. Anaesthesia in patients with cardiovascular disease. 41st British Small Animal Veterinary Congress. 2nd-5th April 1998, Birmingham, England

121. Janyce, L. Veterinary Anesthesia (The Practical Veterinarian Series) -Paperback, 2015.

122. Johnson, C. Why monitor during general anaesthesia? 41st British Small Animal Veterinary Congress / 2nd-5th April 1998, Birmingham, England.

123. Kastner, S.B.R., and duration of single dose of rocuronium bromide during propofolanaesthesia for diagnostic EEG recordings in Beagle dogs / S.B.R. Kastner, J. Tunsmeyer, C. Brauer, A. Tipold // AVA Spring meeting, Helsenke, 2004. - P. 16-17.

124. Kazuyuki, I. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of new volatile anesthetics / I. Kazuyuki, et. al. // Current Opinion in Anesthesiology, 1993. - Vol. 6. - P.639-643.

125. Kirby, R. Emergency and critical care case protocols and procedures "Expe- rinces from the bone pile". XXIst Congress of the world small animal veterinary association - WSAVA / Jerusalem, Israel, October 20-23, 1996.

126. Keeble, E.Awareness during total i.v.anaesthesia / E. Keeble, R. Sandin, O. Norstrom // Br. J. Anaesth, 2006. - Vol.71. - №6. - P. 782 - 787.

127. Kharash, E.D. Biotransformation of sevoflurane / E.D. Kharash // Anesthesia - Analgesia, Dec 81 (6 suppl) 1995. - P. 27 - 38.

128. Lichtenberger, M.Avian respiratory distress: etiology, diagnosis, and treatment. Vet Clin North Am Exot Anim Pract., 2007. - 14(2) - P. 241-55.

129. Lipinski, M.J. The ascent of dog breeds: Genetic evaluations of breed and worldwide randombreed populations / M.J. Lipinski, L. Froenicke, K.C. Baysac, et al. // Genomics, 2017. - P. 12-21.

130. Lumb and Jones Veterinary Anestesia and Analgesia. Fourth edition. Blackwell, 2012.

131. Luttropp, H.H. Experience of xenon anaesthesia in humans. / 10th European Congress of. Anatsthesiology: Abstract book Frankfurt. 2008.

132. Mathews, K.A. Complications of fluid therapy /8 th EVECCS Congress 2009. - P. 25-28.

133. Mcmillan, Sam. NSAIDs: what are the options 51 st Annual Congress BSAVA / Birmingham UK, 3-6 april 2008.

134. Miller, R.D. Anesthesia, Churchill Livingstone, 1990.

135. Pittlnger, C.B. Clinlco-pathologic stadles associated with Xe anesthesia. / C.B. Pittlnger, J. Moyers, S.C. Cullen, P.M. Eeatherstone, E.G. Gross // Anesthesiology, 2013. - Vol.14. - P. 10 -17.

136. Plumb, D.C. Plumb's Veterinary Drug Handbook: Desk, 7th Edition. Wiley-Blackwell, 2017. - 1208 p.

137. Poleshuck, E.L. Risk factors for chronic pain fallowing breast cancer surgery: a prospective study / E.L. Poleshuck, J. Katz, C.H. Andrus, et. al. // The Journal of Pain, 2006. - P. 626 - 634.

138. Ramsey, I. BSAVA Manual of Canine and Feline Anesthesia and Analgesia, second edition. BSAVA, 2010.

139. Ramsey, I. BSAVA Small Animal Formulary - Spiral-Bound, 2011.

140. Reino, P. Recent Advancees in Use of Opioids in Balanced Anaesthesia. Special Attention to Drug Interactions. AVA Spring meeting / P. Reino // Helsenke,

2009. - P. 7-9.

141. Rocchi, A. Monitoring the critical patient: pitfalls in interpretation of monitoring devices/ A. Rocchi // 8 th EVECCS Congress, 2009. - P. 29 - 32.

142. Saucier, N. Patient awareness during nitrous oxide, oxygen, and halothane anesthesia. A casereport / N. Saucier, L.F. Walts, J.R. Moreland // Anesth. Analg., 2010. - Vol.62. - 239 p.

143. Schwender, D. Conscious and unconscious acoustic perception during general anesthesia / D. Schwender, S. Klasing, E. Faber Zullig et al. // Anaesthesist, 2011. - Vol. 40 - №11. - P.583-593.

144. Seymoyr, C. BSAVA Manual of Canine and Feline Anaesthesia and Analgesia / C. Seymoyr, T. Duke-Novakovski // 2007.

145. Shelby, A.M. Small Animal Anesthesia Techniques / A.M. Shelby, Carolyn Mc. Kune // Wiley-Blackwell, 2013. - 332p.

146. Sirois M. Anesthesia of dogs / Margi Sirois, EdD, MS, RVT, CVT, LAT, VTES, Consultant // Mosby's Veterinary PDQ 3rd Edition. Veterinary Facts at Hand. Mosby. Published Date: 7th August 2018

147. Stekolnikov, A.A. Influence of physical and psychoemotional stress on the clinical and hormonal parameters of rats' blood/ E. Korochkina, A. Stekolnikov, K. Plemyashov, P. Anipchenko// Animal reproduction science. - 2018. - T. 194. - C. e15.

148. Suetrong, B. Lactic acidosis in sepsis:it's not allanaerobic - implications for diagnosis and management. / B.Suetrong, K.R. Walley // Chest 2016 - 149: 252261.

149. Tacke, S. Treat the pain. 8 th EVECCS Congress 2009. - P. 34-39.

150. Tranquilli, W.J. Veterinary Anesthesia and Analgesia / W.J. Tranquilli, J.C. Thurmon, K.A. Grimm, Lumb & Jones // Hardcover, 2007. - 1096p.

151. Vigano, F. Selected Topics in Canine and Feline Emergency Medicine / F. Vigano, N.M. Felix, J. Robben // Aniwa S.A.S. 2009.

152. Werdehausen, R. The influence of adjuvants used in regional anesthesia on lidocaine - induced neurotoxicity in vitro. / R. Werdehausen, S. Braun, H. Hermans et al. // regional Anesth Pain Med 36, 2011. - P. 436-443.

153. West, G. Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia / G. West, D. Heard, N. Caulkett // 2007.

154. Williams, A.C. Updating the definition of pain / A.C. Williams, K.D. Craig // 2016. - P. 2420-2423

155. Xenoulis, P.G. Lipid metabolism and hyperlipidemia in dogs. / P.G. Xenoulis, J.M. Steiner // Vet J., 2010. -183. - P. 12-21

156. Yagnikov, S.A. Diagnostics of erythrocytes' microrheological features and early abnormalities of rats in the model of experimental hypertension development/ S. Yu. Zavalishina, Yu. A. Vatnikov, E.V. Kulikov, S.A. Yagnikov, A.S. Karamyan, N.V. Sturov, V.M. Byakhova, M.V. Kochneva, A.V. Petryaeva// Bali Medical Journal. - 2017. - T. 6. № 3. - C. 470.

157. Young, C.J. Inhalational anaesthetics: desflurane and sevoflurane / C.J. Young // J. Clin. Anesth., 1995. - N.7(7). - P. 564 -577.

158. Zandvliet, M.M. and Rothuizen, J. Transient hyperammonemia due to urea cycle enzyme deficiency in Irish wolfhounds. J Vet Intern Med 21:215-218, 2017