Роль верхних листьев и градиентов фитогормонов в стебле в регуляции апикального доминирования у Pisum sativum L. тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, кандидат биологических наук Котов, Андрей Александрович

• Котов, Андрей Александрович
• кандидат биологических наук
• 1998

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Котов, Андрей Александрович

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

СОКРАЩЕНИЯ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Коррелятивное торможение роста латеральных почек и выход их

из покоя

1.2. Транспорт ауксина - основной коррелятивный сигнал апикального доминирования

1.3. Предположительные механизмы ингибирующего действия апикального ауксинового сигнала (транспорт ИУК)

1.4. Цитокинины и ауксин-цитокининовое взаимодействие в апикальном доминировании

1.5. Роль АБК и ГК в апикальном доминировании

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. Растительный материал и схемы экспериментов

2.2. Хроматографическое разделение и очистка фитогормонов для

ИФА

2.3. ИФА фитогормонов

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Ростовая активность 1-й и 2-й латеральных почек и междоузлий. Уровень АБК и ГК в междоузлиях

3.2. Базипетальный транспорт ИУК

3.3. Базипетальный транспорт цитокининов и его взаимосвязь с транспортом ИУК

3.4. Рост латеральных почек и базипетальный транспорт фитогормонов

3.5. Содержание ИУК в междоузлиях

3.6. Содержание цитокининов в междоузлиях

3.7. Содержание З/ЗР в междоузлиях и базипетальный транспорт ИУК

и ЗР

3.8. Рост латеральных почек и содержание З/ЗР и ИУК в междоузлиях

ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

4.1. Базипетальный транспорт фитогормонов как коррелятивный сигнал регуляции отрастания латеральных почек

4.2. Коррелятивная связь ингибирования латеральных почек с содержанием фитогормонов в междоузлиях

4.3. Формирование ауксин-цитокининового статуса междоузлия

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

ЛИТЕРАТУРА

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Роль верхних листьев и градиентов фитогормонов в стебле в регуляции апикального доминирования у Pisum sativum L.»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность проблемы. Функционирование высшего растения как целостной системы основано на наличии коррелятивных взаимосвязей между его отдельными органами. Наглядное проявление таких взаимосвязей - ростовые корреляции, заключающиеся в том, что рост каждого органа зависит от интенсивности и характера роста остальных органов растения. Одним из таких типов ростовых корреляций является апикальное доминирование, то есть преимущественный рост верхушки стебля и торможение роста ниже расположенных почек.

Степень выраженности апикального доминирования определяет характер ветвления растений, что важно для решения многих вопросов растениеводства. Увеличение урожая некоторых культур (голубика, черника, кукуруза, каянус) достигается снятием апикального доминирования, а для других культур в этих целях удаляют отрастающие боковые побеги (томаты, шелковица). Коммерческие затраты для выполнения операций по удалению боковых побегов и декапитации могут достигать 5-10% от всех затрат на производство продукции. Значительные средства затрачиваются на обрезку боковых веток с деревьев вокруг линий электропередач, железных дорог и зданий.

Несмотря на то, что апикальное доминирование является одним из наиболее изученных типов ростовых корреляций, проблема гормонального контроля этого, явления еще далека от полного решения (Cline, 1994; Tamas, 1995; Beveridge et al., 1997; Stafsírom et al., 1997). Она объединяет в себе как проблему гормональных основ взаимодействия sink-органов в системе донорно-акцепторных отношений целого растения (Мокроносов, 1983; Bangerth, 1989; Tamas, 1995), так и проблему эндогенной гормональной регуляции процессов контроля выхода и входа в покой, представляющий собой временную приостановку видимого роста растительной

структуры, содержащей меристему (Чельцова, 1980; Wang, Faust, 1990; Wang et al., 1994).

На настоящий момент не вызывает сомнений, что ИУК, транспортирующаяся из апикальной почки, играет ключевую роль в коррелятивном ингибирова-нии латеральных почек, однако, при этом ауксин не проникает в сами почки (Cline, 1991; Tamas, 1995). Механизм, опосредующий его действие, вероятно, может быть двояким. Согласно первому, подавление роста латеральных почек может происходить на уровне конкуренции самих транспортных потоков ИУК: мощный поток из доминирующего апикального sink-органа (почка, плод) коррелирует с ослаблением её оттока из нижерасположенных латеральных вторичных sink-органов (Bangerth, 1989; Gruber, Bangerth, 1990). По мнению авторов этой гипотезы, для конкуренции потоков ИУК между собой не нужно участия вторичных гормональных мессенджеров, и в её основе скорее всего лежат специфические свойства полярного транспорта ИУК в ткани растения (Sachs, 1969, 1984; Johnson, Morris, 1989; Morris, Johnson, 1990), однако, детальный механизм этого явления не совсем понятен (Tamas, 1995). Другим ингибиторным механизмом действия ИУК, транспортирующейся из апикальной почки, является подавление транспорта цито-кининов из корня (Bangerth, 1994) и снижение содержания цитокининов в стебле (Li et al., 1995). Поскольку ранее было показано, что цитокинины, нанесенные на. коррелятивно заторможенные латеральные почки, способны полностью или частично снимать апикальное доминирование (Sachs, Thimann, 1967; King, Van Staden, 1988; Li, Bangerth, 1992; Tepper, 1993), то данный механизм действия апикального ауксина является цитокинин-опосредованным.

В опытах с нанесением цитокининов на верхушечную почку было показано, что они способны стимулировать из нее экспорт ИУК (Li, Bangerth, 1992). В связи с обнаружением такого эффекта И. Тамас (Tamas, 1995) выдвинул предположение,

что отмечаемое постдекапитационное повышение уровня цитокининов в ксилем-ном соке и стебле (Bangerth, 1994; Li et al., 1995), а также, вероятно, в самой латеральной почке, помимо активации клеточных делений, могло бы восстанавливать в покоящихся латеральных почках полярный транспорт ИУК, утраченный во время коррелятивного покоя (Morris, Johnson, 1990). Таким образом, первый механизм апикального доминирования, основанный на предложенной теории конкуренции ауксиновых транспортных потоков (Bangerth, 1989), можно объяснить реализацией ингибиторного действия апикального ауксина в отношении поступления в побег цитокининов из корня, т. е. через второй механизм.

Для выяснения вопроса о том, является ли цитокинин-опосредованный механизм действия ИУК основным механизмом апикального доминирования, возникает необходимость точного количественного исследования взаимосвязи ауксино-вого и цитокининового сигналов с ростовой активностью латеральной почки, что не предпринималось ранее. Такой количественный подход также интересен и в отношении эндогенных АБК и ГК, роль которых в апикальном доминировании еще не до конца выяснена (Cline, 1991; Tamas, 1995). Экзогенное применение этих гормонов способно усиливать или ослаблять действие ИУК и цитокининов на рост латеральных почек (Catalano, Hill, 1969; Phillips, 1971; Wooley, Wareing, 1972; Härtung, Fünfer, 1981), а градиент распределения по стеблю АБК может коррелировать в ряде случаев с порядком растормаживания латеральных почек вдоль оси стебля (Zieslin et al., 1978; Everat-Bourbouloux, 1987).

Цель и задачи исследования. Целью работы было изучить роль базипеталь-ного транспорта ИУК и баланса фитогормонов в стебле в регуляции роста латеральных почек проростков гороха (Pisum sativum L.). В работе решали следующие задачи:

— исследовать влияние апикальных листьев разного возраста как эндогенного источника ИУК на степень отрастания латеральных почек и сравнить с действием экзогенной ИУК;

— определить интенсивность базипетального транспорта ИУК из листьев апикальной почки и при нанесении экзогенной ИУК, а также базипетальный транспорт других фитогормонов, для выяснения их роли в регуляции роста латеральных почек;

— выяснить особенности распределения по стеблю АБК и ГК и их динамику в связи с ростовой активностью латеральных почек;

— исследовать уровни содержания цитокининов и ИУК в междоузлиях для оценки их значения в регуляции ростовой активности латеральных почек;

— изучить взаимосвязь уровней ИУК и цитокининов в междоузлиях с интенсивностью базипетального транспорта этих фитогормонов и АБК-ГК статусом междоузлий.

Методическими предпосылками для успешного решения поставленных задач были, во-первых, выбор адекватной биологической модели и, во-вторых, разработка аналитических методов, позволявших количественно характеризовать уровни различных фитогормонов в ткани и их транспорт.

Научная новизна работы. На основе сопоставления ростовой активности латеральных почкек и интенсивности активного базипетального транспорта ИУК было обнаружено, что действие последнего зависит от ряда факторов, модулирующих его ингибиторную эффективность. В качестве этих факторов выступают возраст и/или АБК-ГК статус междоузлия, на котором расположена почка и также возраст апикальных листьев. Впервые выяснено, что дополнительное ингибирую-щее воздействие, оказываемое на отрастание латеральной почки более взрослым

листом, опосредуется более низким базипетальным флоэмным транспортом цито-кининов, имеющих, вероятно, корневое происхождение. Установлено, что рост латеральных почек определяется ауксин-цитокининовым статусом междоузлия, а ГК и АБК в междоузлиях скорее принимают участие в модификации этого статуса, повышая или снижая накопление тканями междоузлия ИУК и цитокининов из их транспортных пулов.

Теоретическое и практическое значение. Полученные результаты, с учетом литературных данных, позволяют дополнить общую схему гормональной регуляции апикального доминирования, в которой действие апикального ауксина на рост и торможение отрастания латеральных почек преобразуется гормональными стимулами практически всех частей растения: корнем, листьями, стеблем. Это объясняет сложность и интегративность явления апикального доминирования. Стебель является не только транспортирующим органом, но и важным звеном в управлении роста латеральных меристем, поскольку не интенсивность транспорта ИУК и цитокининов, а уровень содержания этих фитогормонов в таани междоузлия определяет активность роста латеральных почек. Данный подход дает основу для изучения клеточных и биохимических механизмов реализации фитогормо-нальных стимулов в апикальном доминировании.

Нами была разработана быстрая и эффективная система очистки, разделения и ИФА фитогормонов в одной пробе, содержащей небольшое (до 100 мг сырого веса) количество растительного материала, позволяющая проводить изучение полного гормонального баланса (ИУК, Зеа и ЗР, ИП и ИПА, АБК, ГК) в различных органах и тканях растения.

СОКРАЩЕНИЯ

2,4-Д - 2,4-дихлорофеноксиуксусная кислота 2,6-Д - 2,6-дигидроксиацетофенон

АБК - абсцизовая кислота АВГ - аминоэтоксивинилглицин АС - антисыворотка AT - антитела

АТФ - аденозин-5-трифосфат

БАП - 6-бензиламинопурин (7У6-бензиладенин)

БСА - бычий сывороточный альбумин

ГК - гиббереллин

ДЦКД - дициклогексижарбодиимид

Зеа (=3) - транс-зеатин

ЗР - /я/?аяс-зеатинрибозид (рибозилзеатин)

ЗФР - забуференный физиологический раствор

ЗФР-Т - ЗФР, содержащий 0.05% Тритона Х-100

ИААсп - индолилацетиласпарагиновая кислота

ИМК - индолил-3-масляная кислота

ИП - #6-(изопентен-2-ил)аденин

ИПА - тУ6-(изопентен-2-ил)аденозин

ИУК - индолил-3-уксусная кислота

ИФА - иммуноферментный анализ

Лиз-Ов - конъюгат лизина с овальбумином

НУК - 1-нафталинуксусная кислота

НФК - N-1 -нафтилфталаминовая кислота

Ов - овальбумин

ПАФ - полный адъювант Фрейнда

ПБК - 2-(1-пиренол)бензойная кислота (фитотропин)

ПВПП - поливинилполипирролидон

ТИБК - 2,3,5-трииодобензойная кислота

ТСХ - тонкослойная хроматография

ФГ - фитогормон

ХПФМ - Аг-фенил-Лг'-(2'-хлор-4'-пиридил)мочевина (синтетический цитокинин) ЭДТА - этилендиаминтетрауксусная кислота

АсОН - уксусная кислота

ВНТ - бутилированный гидрокситолуол (от англ. butylated hydroxytoluene) С18 - силикагель, модифицированный октадецилсиланом EtOH - этанол

GR - скорость роста (от англ. growth rate) МеОН - метанол г - коэффициент корреляции

SE - стандартная ошибка (стандартное отклонение среднего арифметического)

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Котов, Андрей Александрович

ВЫВОДЫ

1. Для решения проблемы гормональной регуляции апикального доминирования исследовали содержание фитогормонов в тканях междоузлий и их базипе-тальный транспорт по стеблю в модельной системе 7-дневных проростков гороха с редуцированным в разной степени листовым составом апикальной почки или заменой верхушечных листьев экзогенной ИУК.

2. Ростовая активность латеральных почек коррелирует с ауксин-цитокининовым статусом близлежащей стеблевой ткани, который определяется, во-первых, уровнем транспорта этих фитогормонов и, во-вторых, физиологическим возрастом стеблевой ткани, связанным с градиентами распределения таких фитогормонов, как гиббереллины и АБК.

3. Ростовая активность Iй и 2й латеральных почек положительно коррелировала с эндогенным уровнем зеатин/ зеатинрибозида в ткани соответствующего ей междоузлия стебля. Более высокое содержание ИУК во 2м междоузлии снижало положительный ростовой ответ 2й почки на эндогенный цитокинин, что свидетельствует в пользу ингибиторной функции ауксина стебля в контроле роста латеральных почек.

4. Уровень АБК был выше в более зрелом нижнем Iм междоузлии, тогда как уровень ГЖл-подобной активности, наоборот, был выше во 2м междоузлии и с возрастом растения снижался до низкого и стабильного уровня, характерного для 1го междоузлия. Различия в ГК-статусе междоузлий положительно коррелировали с динамикой и распределением ауксина и цитокинина, влияя, по-видимому, на их аккумуляцию из транспортных пулов.

5. Базипетальный транспорт ИУК из верхушечных листьев, помимо положительной регуляции своего собственного уровня в тканях междоузлия, является фактором, ответственным за снижение уровня цитокининов в стебле, о чем свидетельствует отрицательная корреляция транспорта ИУК с содержанием зеатин/ зеа-тинрибозида в междоузлиях и с уровнем флоэмного транспорта зеатинрибозида. Базипетальный транспорт зеатинрибозида по флоэме, по всей видимости, представляет собой обратный отток из верхушки побега корневого ИУК-ингибируемого цитокинина.

6. Верхушечные листья могут регулировать цитокининовый уровень стеблевой ткани не только как источники ауксина, который подавляет транспорт цитокининов в надземную часть растения, но и обладают собственным механизмом регуляции цитокининового уровня. При наличии на побеге более молодых листьев уровень зеатин/ зеатинрибозида в стеблях был более высоким, как и уровень флоэмного базипетального транспорта зеатинрибозида. По-видимому, флоэмный транспорт зеатинрибозида представляет собой листоопосредованный реэкспорт корневого цитокинина, поступающего в лист по ксилеме, отток которого обратно по флоэме определяется возрастом листа и выше у растений с более молодым верхушечным листом.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

На основании полученных нами результатов и литературных данных предполагаемую схему гормонального контроля апикального доминирования можно представить следующим образом (рис. 28). ИУК, транспортируясь базипетально из верхушечных листьев, ингибирует рост латеральных почек, не проникая в них (СНпе, 1991). Один из механизмов действия ауксинового транспорта может состоять в регуляции уровня этого фитогормона в стеблевой ткани, непосредственно примыкающей к латеральной почке, поскольку результаты наших опытов показывают, что степень ингибирования почек скорее коррелирует не с интенсивностью транспорта ИУК, а с содержанием ИУК в междоузлиях стебля. Дальнейший путь и механизм передачи ауксинового ингибиторного сигнала из стебля в почку остается гипотетичным. Уровень ИУК в стебле определяется также, помимо интенсивности её транспорта, возрастным статусом ткани стебля и коррелирует с содержанием в ней гиббереллина.

Второй механизм ингибиторного действия базипетального транспорта ИУК состоит в негативной регуляции содержания в тканях стебля ЦК, уровень которых коррелирует с ростовой активностью латеральных почек. Результаты наших исследований показали, что степень отрастания почек полностью определяется ИУК--ЗР статусом междоузлий (рис. 27). Влияние базипетального транспорта ИУК на содержание ЦК в междоузлиях, очевидно, осуществляется путем ингибирования акропетального транспорта ЦК из корня (Ва1^еП11, 1994; 1л й а1., 1995). В опытах с частичной дефолиацией растений нами было обнаружено, что снижение уровня базипетального транспорта ИУК коррелировало также с усилением базипетального транспорта ЦК по флоэме. Таким образом, ИУК регулирует транспорт ЦК как по ксилеме, так и по флоэме, что является доводом в пользу того, что транспорт

Синтез и экспорт ИУК в базипетальном направлении активным полярным способом

Активация ЦК экспорта ИУК из верхушечных листьев (1Л, Ва^егШ, 1992)

Перенос ЦК из ксилемы во флоэму для экспорта в бази летальном направлении (Котог е1 а1., 1993)

Поглощение и/или метаболизация части ксилемных ЦК верхушечным листом

ИУК стеблевой ткани ингибирует рост латеральной почки

ЦК стеблевой ткани активирует рост латеральной почки

ИУК-ЦК статус стеблевой ткани определяет ростовую активность латеральной почки

Верхушечные листья

- Стебель

ГК-АБК статус стеблевой ткани определяет ее физиологический возраст

Гиббереллины стебля активируют аккумуляцию ИУК и ЦК

АБК стебля ингибирует аккумуляцию ЦК

ИУК тормозит синтез и/ или акро летальный отток транспортных форм ЦК из корня по ксилеме (Вафель, 1994)

Корень

Перенос ЦК из флоэмы в ксилему для их обратного акропетального транспорта

Рис. 28. Гипотетическая схема гормонального контроля апикального доминирования на основе ауксин—цитокининового взаимодействия верхушечных листьев побега с корнем.

ЦК между корнем и верхушечными листьями образует ксилемно-флоэмный цикл (рис. 28). Реэкспорт ЦК по флоэме был ниже из более развитого апикального листа, чем из молодого. Регуляция листом уровня ЦК в ткани стебля наблюдалась на 2й день после частичной дефолиации растений, что, по-видимому, объяснялось уравновешиванием зависимого от возраста листа флоэмного тока ЦК с ксилем-ным, определяющим уровень ЦК в стебле (Jameson et al., 1987). Таким образом, апикальные листья, будучи включенными в цепь ксилемно-флоэмного обращения ЦК, могут регулировать ток ЦК не только по флоэме, но и по ксилеме путем снижения флоэмного оттока ЦК из-за частичного удержания и/или метаболизации части ЦК листом. В наших опытах было показано, что содержание ЦК в междоузлиях также определяется их местоположением на стебле и длительностью опыта, т. е. физиологическим возрастом тканей стебля и коррелирует с содержанием в них АБК и ГК.

Итак, основным сигналом, определяющим рост латеральной почки, является ИУК-ЗР баланс близлежащей стеблевой ткани. Содержание этих двух фитогор-монов в ткани определяется интенсивностью их транспорта и способностью тканей междоузлий поглощать фитогормоны из их транспортного пула. Эта способность коррелирует с их физиологическим возрастом и АБК-ГК статусом. Апикальные листья двояким образом регулируют транспорт ЦК из корня: подавляя, его с помощью базипетально транспортирующейся ИУК, а также - через обратный флоэмный реэкспорт ксилемного ЦК.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Котов, Андрей Александрович, 1998 год

ЛИТЕРАТУРА

1. Беккер X., Домшке Г., Фангхенель Э. Органикум. В 2-х т. Т. 2. Пер. с нем. М.: Мир, 1992. 474 с.

2. Гродзинский А. М., Гродзинский Д. М. Краткий справочник по физиологии растений. 2-е изд-е, исп. и доп. Киев: Наукова думка, 1973. 592 с.

3. Дёрфлинг К. Гормоны растений. Системный подход. Пер. с англ. М.: Мир, 1985. 304 с.

4. Еремин С. А. Иммунохимический анализ лекарств и органических соединений // Журнал Всесоюзного химического об-ва им. Д. И. Менделеева. 1988. Т. 33. № 5. С. 46-51.

5. Епифанова О. И. Лекции о клеточном цикле. М.: КМК Scientific Press, 1997. 144 с. ISBN 5-87317-047-9.

6. Кара А. Н. Сравнительное действие цитокининов на культивируемые верхушки побегов гороха // Физиология растений. 1993. Т. 40. № 2. С. 307-313.

7. Кара А. Н. Анализ чувствительности к фитогормонам заложения и роста примордиев листьев в апексе эксплантов гороха // Физиология растений. 1993. Т. 42. №2. С. 175-186.

8. Катаева Н. В., Александрова И. Г., Карягина Т. Б., Машкова А. X. Возможность метода иммуноферментного анализа для определения фитогормонов в культивируемых in vitro побегах // Физиология растений. 1990. Т. 37. № 4. С. 813821.

9. Котов А. А. Рост in vitro апексов вегетативных побегов Pisum sativum L. // Онтогенез. Т. 22. № 3. С. 316-324.

Ю.Котов А. А., Кара А.Н., Дроздова И.С., Бондар В.В., Бухов Н.Г., Мокроносов А.Т. Спектральный состав света и донорно-акцепторные отношения у растений редиса // Доклады Академии Наук. 1997. Т. 355. № 1. С. 117-119.

11.Кудоярова Г. Р., Веселое С. Ю., Еркеев М. И., Гюли-Заде В. 3., Гимаева Р. М., Загидуллин Н. В., Шакирова Ф. М. Иммуноферментное определение содержания индолилуксусной кислоты в семенах кукурузы с использованием меченых антител // Физиология растений. 1986. Т. 33. № 6. С. 1221-1227.

12.Кулаева О. Н. Влияние корней на обмен веществ листьев в связи с проблемой действия на лист кинетина // Физиология растений. 1962. Т. 9. Вып. 2. С. 229-239.

13.Кулаева О. Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка. М.: Наука, 1982. 84 с.

14.Моисеева Л. В. К вопросу о механизме апикального доминирования // Онтогенез травянистых поликарпичных растений. Свердловск: АН СССР, 1979. С. 47-55.

15.Мокроносов А. Т. Фотосинтетическая функция и целостность растительного организма. М.: Наука, 1983.64 с.

16.Муромцев Г. С., Чкаников Д. И., Кулаева О. Н„ Гамбург К. 3. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: Агропромиздат, 1987. 383 с.

П.Процко Р.Ф. К вопросу о роли ИУК в апикальном доминировании // Физиология растений. 1973. Т. 20. Вып. 5. С. 315-321.

18.Процко Р.Ф. Фитогормональная регуляция коррелятивных взаимосвязей апекса, и пазушных почек // Укр. бот. журнал. 1982. Т. 39. № 3. С. 75-86.

19.Сытник К. М., Процко Р. Ф., Варшавская В. Б. Апикальное доминирование и уровень фитогормонов в почках корнеплодов сахарной свеклы И Докл. АН УССР. 1981. № 1. С. 87-90.

20.Уоринг Ф., Филлипс И. Рост растений и дифференцировка. Пер. с англ. М.: Мир, 1984. 512 с.

21.Чельцова JI. П. Рост конусов нарастания побегов в онтогенезе растений. Новосибирск: Наука, 1980. 192 с.

22.Aloni R. The induction of vascular tissues by auxin and cytokinin // Plant Hormones. Physiology, Biochemistry and Molecular Biology. 2nd edition. Ed. by P. J. Davies. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1995. P. 531-546. ISBN 0-7923-2984-8.

23.Aloni R., Baum S. F., Peterson C. A. The role of cytokinin in sieve tube regeneration and callose production in wounded Coleus internodes // Plant Physiol. 1990. V. 93. N 3. P. 982-989.

24.Aloni R., Raviv A., Peterson C. A. The role of auxin in the removal of dormancy callose and resumption of phloem activity in Vit is vinifera // Can. J. Bot. 1991. V. 69. N 12. P. 1825-1832.

25.Andersen A. S. Regulation of apical dominance by ethephon, irradiance and CO2 // Physiol. Plant. 1976. V. 37. N 4. P. 303-308.

26.Baker D. A., Allen J. R. F. Auxin transport in the vascular system // Physiology and biochemistry of auxins in plants. Proceedings of the Symposium held at Liblice, Czechoslovakia, September 28 - october 2, 1987. Ed. by M. Kutâcek, R. S. Bandurski, J. Krekule. Praha: Academia, 1988. P. 215-220.

27.Bandurski R.S., Schulze A. Concentration of indole-3-acetic acid and its derivatives in plants // Plant Physiol. 1977. V. 60. N 2. P. 211-213.

28.Bangerth F. Dominance among fruits/sinks and the search for a correlative signal // Physiol. Plant. 1989. Y. 76. N 4. P. 608-614.

29.Bangerth F. Response of cytokinin concentration in the xylem exudate of bean (Phaseolus vulgaris L.) plants to decapitation and auxin treatment, and relationship to apical dominance // Planta. 1994. V. 194. N 3. P. 439-442.

30.Banuelos G. S., Bangerth F., Marschner H. Relationship between polar basipetal auxin transport and acropetal Ca2+ transport into tomato fruits // Physiol. Plant. 1987. V. 71. N2. P. 321-327.

31.Baum S. F., Aloni R., Peterson C. A. The role of cytokinin in vessel regeneration in wounded Coleus internodes // Ann. Bot. 1991. V. 67. N 6. P. 543-548.

32.Bellandi D. M., Dorffling K. Effect of abscisic acid and other plant hormones on growth of apical and lateral buds of seedlings // Physiol. Plant. 1974. V. 32. N 4. P. 369-372.

33.Beveridge C. A., Ross, J. J., Murfet, I. C. Branching mutant rms-2 in Pisum sativum. Grafting studies and endogenous indole-3-acetic acid levels // Plant Physiol. 1994. V. 104. N3. P. 953-959.

34.Beveridge C. A., Symons G. M., Murfet I. C., Ross J. J., Rameau C. The rmsl mutant of pea has elevated indole-3-acetic acid levels and reduced root-sap zeatin riboside content but increased branching controlled by graft-transmissible signal(s) // Plant Physiol. 1997. Y. 115.N3.P. 1251-1258.

35.Blake T. J., Reid D. M., Rood S. B. Ethylene, indoleacetic acid and apical dominance in peas a reappraisal // Physiol. Plant. 1983. V. 59. N 3. P. 481-487.

36.Bollmark M., Kubat B., Eliasson L. Variation in endogenous cytokinin content during adventitious root formation in pea cuttings // J. Plant Physiol. 1988. V. 132. N 3. P. 262-265.

37.Borkovec V., Didehvar F., Baker D. A. The biosynthesis and translocation of 14C IAA in Ricinus communis // Plant Growth Regul. 1994. V. 15. N 2. P. 137-141.

38.Brenner M. L., Cheikh N. The role of hormones in photosynthate partitioning and seed filling // Plant Hormones. Physiology, Biochemistry and Molecular Biology. 2nd edition. Ed. by P. J. Davies. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1995. P. 649670. ISBN 0-7923-2984-8.

39.Brock T. G., Kapen E. H., Ghosheh N. S., Kaufman P. B. Dynamics of auxin movement in the gravistimulated leaf-sheath pulvinus of oat {Avena sativa) // J. Plant Physiol. 1991. V. 138. N 1. P. 57-62.

40.Burg S. P., Burg E. A. Ethylene formation in pea seedlings, its relation to the inhibition of bud growth caused by indole-3-acetic acid // Plant Physiol. 1968. V. 43. N 7. P. 1069-1074.

41.Bush D. S. Regulation of cytosolic calcium in plants // Plant Physiol. 1993. V. 103. N LP. 7-13.

42.Campbell M. A., Suttle J. C., Sell T. W. Changes in cell cycle status and expression of p34cdc2 kinase during potato tuber meristem dormancy // Physiol. Plant. 1996. V. 98. N 4. P. 743-752.

43.Catalano M., Hill T. A. Interaction between gibberellic acid and kinetin in overcoming apical dominance, natural and induced by IAA in tomato (Lycopersicum esculentum Mill, cv.potentate) //Nature. 1969. Y. 222. N 5197. P. 985-986.

44.Chen C.-M., Ertl J. R., Leisner S. M., Chang C.-C. Localization of cytokinin biosynthesis sites in pea plants and carrot roots // Plant Physiol. 1985. V. 78. N 3. P. 510-513.

45.Cline M. G. Apical dominance // Bot. Rev. 1991. V. 57. N4. P. 318-358.

46.Cline M. G. The role of hormones in apical dominance. New approaches to an old. problem in plant development // Physiol. Plant. 1994. V. 90. N 1. P. 230-237.

47.Einset J. W. Biosynthesis of zeatin from vV6-(A2-isopentenyl)adenine in Actinidia : Sites and seasonal changes in activity // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. Y. 83. N 20. P. 7751-7754.

48.Einset J. W., Silverstone A. Hydroxylation of Y6-(A2-isopentenyl)adenine to zeatin: Relative activities of organ systems from Actinidia arguta H Plant Physiol. 1987. V. 84. N 2. P. 208-209.

49.Eklóf S., Ástot C., Moritz T., Blackwell J., Olsson O., Sandberg G. Cytokinin metabolites and gradients in wild type and transgenic tobacco with moderate cytokinin over-production // Physiol. Plant. 1996. V. 98. N 2. P. 333-344.

50.Epel B. L., Erlanger M. A. Light differentially regulates lateral and longitudinal auxin transport in the mesocotyl of etiolated maize seedlings // Plant Growth Regul. 1994. V. 14. N2. P. 167-171.

51.Epel B. L., Warmbrodt R. F., Bandurski R. S. Studies on the longitudinal and lateral transport of IAA in the shoots of etiolated corn seedlings // J. Plant Physiol. 1992. V. 140. N3. P. 310-318.

52.Everat-Bourbouloux A. Distribution of free and bound forms of cis-trans and transtrans abscisic acid in broad-bean plants in relation to apical dominance // Physiol. Plant. 1987. V. 70. N 4. P. 649-652.

53.Everat-Bourbouloux A., Bonnemain J.-L. Distribution of labelled auxin and derivatives in stem tissues of intact and decapitated broad-bean plants in relation to apical dominance // Physiol. Plant. 1980. V. 50. N 1. P. 145-152.

54.Everat-Bourbouloux A., Charnay D. Endogenous abscisic acid levels in stems and axillary buds of intact or decapitated broad-bean plants (Vicia faba L.) // Physiol. Plant. 1982. V. 54. N 4. P. 440-445.

55.Fuchs S., Haimovich J., Fuchs Y. Immunological studies of plant hormones. Detection and estimation by immunological assays // Eur. J. Biochem. 1971. Y. 18. N 3. P. 384-390.

56.Fuchs Y., Mayak S., Fuchs S. Detection and quantitative determination of abscisic acid by immunological assays // Planta. 1972. V. 103. N 2. P. 117-125.

57.Galfre' G., Butcher G. W. Making antibodies // Immunology in Plant Science. Soc. for Exp. Biol. Seminar Ser., 29. Ed. by T. L. Wang. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1986. P. 1-25. ISBN 0-521-30746-5.

58.Galston A. W., Dalberg L. Y. The adaptive formation and physiological significance of indoleacetic acid oxidase//Amer. J. Bot. 1954. V. 41. N 3. P.373-380.

59.Gocal G. F. W., Pharis R. P., Yeung E. C., Pearce D. Changes after decapitation in concentrations of indole-3-acetic acid and abscisic acid in the larger axillary bud of Phaseolus vulgaris L. cv. Tender Green // Plant Physiol. 1991. V. 95. N2. P. 344-350.

60.Goldsmith M. H. M. The polar transport of auxin // Annu. Rev. Plant Physiol. 1977. Y. 28. P. 439-478.

61.Goodwin P. B., Erwee M. G. Hormonal influences on leaf growth // The growth and functioning of leaves. Ed. by J. E. Dale and F. L. Milthorpe. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1983. P. 207-232.

62.Gruber J., Bangerth F. Diffusible IAA and dominance phenomena in fruits of apple and tomato // Physiol. Plant. 1990. V. 79. Fasc. 2. Part. 1. P. 354-358.

63.Hall S. M., Hillman J. R. Correlative inhibition of lateral bud growth in Phaseolus vulgaris L. timing of bud growth following decapitation II Planta. 1975. Y. 123. N 2. P. 137-143.

64.Hanson C. E., Wenzler H., Meins F. Jr. Concentration gradients of trans-zeatin riboside and trans-zeatin in the stem. Measurement by a specific enzyme immunoassay // Plant Physiol. 1984. V. 74. N 4. P. 959-963.

65.Hare P. D., van Staden J. Cytokinin oxidase: Biochemical features and physiological significance // Physiol. Plant. 1994. V. 91. N 1. P. 128-136.

66.Hartung W., Funfer C. ABA and apical dominance in bean. The role of tissue age // Ann. Bot. 1981. V. 47. N3. P. 371-375.

67.Hemerly A. S., Ferreira P., Engler J. de A., van Montagu M., Engler G., Inze D. cdc 2a expression in Arabidopsis is linked with competence for cell division // Plant Cell. 1993. V. 5. N 12. P. 1711-1723.

68.Henry E. W., Jordan W. The enzyme response of pea (Pisum sativum) stem sections to applied indolacetic acid, gibberellic acid and ethrel: catalase, peroxidase and polyphenol oxidase // Z. Pflanzenphysiol. 1977. Y. 84. N 4. P. 321-327.

69.Hepler P. K., Wayne R. O. Calcium and plant development // Ann. Rev. Plant Physiol. 1985. V. 36. P. 397-439.

70.Hillman J. R. Apical dominance // Advanced Plant Phisiology. Ed. by M. B. Wilkins. Pitman, 1984. P. 127-148.

71.Hillman J. R., Math V. B., Medlow G. C. Apical dominance and the levels of indole acetic acid in Phaseolus lateral buds II Planta. 1977. V. 134. N 2. P. 191-193.

72.Hoad G. Y. Transport of hormones in the phloem of higher plants // Plant Growth Regul. 1995. V. 16. N 2. P. 173-182.

73.Hosokawa Z., Shi L., Prasad T. K., Cline M. G. Apical dominance control in Ipomoea nil: The influence of the shoot apex, leaves and stem // Ann. Bot. 1990. V. 65. N 5. P. 547-556.

74.Jablanovic M., Neskovic M. Changes in endogenous level of auxins and cytokinins in axillary buds of Pisum sativum L. in relation to apical dominance // Biol. PI. 1977. V. 19. N1. P. 34-39.

75 Jacqmard A., Houssa C., Bernier G. Abscisic acid antagonizes the effect of cytokinin on DNA-replication origins // J. Exp. Bot. 1995. V. 46. N 287. P. 663-666.

76Jameson P. E., Letham D. S., Zhang R., Parker C. W., Badenoch-Jones J. Cytokinin translocation and metabolism in lupin species. I. Zeatin riboside introduced into the

xylem at the base of Lupinus angustifolius stems // Aust. J. Plant Physiol. 1987. V. 14. N6. P. 695-718.

77.Johnson C. F., Morris D. A. Applicability of the chemiosmotic polar diffusion theory to the transport of indol-3yl-aeetic acid in the intact pea (Pisum sativum L.) // Planta. 1989. V. 178. N2. P. 242-248.

78.Jones R. L., Phillips, I. D. J. Organs of gibberellin synthesis in light-grown sunflower plants // Plant Physiol. 1966. V. 41. N 8. P. 1381-1386.

79.Kara A. N., Kotov A. A., Bukhov N. G. Specific distribution of gibberellins, cytokinins, indole-3-acetic acid, and abscisic acid in radish plants closely correlates with photomorphogenetic responses to blue or red light // J. Plant Physiol. 1997. V. 151. N l.P. 51-59.

80.Karavaiko N. N., Selivankina S. Yu., Brovko F. A., Zemlyachenko Ya. V., Shipilova S. V., Zagranichnaya T. K., Lipkin V. M., Kulaeva O. N. Zeatin-binding proteins participating in cytokinin-dependent activation of transcription // Plant hormone signal perception and transduction. Proceedings of the International Symposium on plant hormone signal perception and transduction, Moscow, Russia. September 4-10, 1994. Ed. by A. R. Smith, A. W. Berry, N. V. J. Harpham, I. E. Moshkov, G. V. Novikova, O. N. Kulaeva, M. A. Hall. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1996. P. 67-76. ISBN 0-7923-3768-9.

81.Katekar G. F., Geissler A. E. Auxin transport inhibitors. II. 2-(l- pyrenoyl)benzoic acid, a potent inhibitor of polar auxin transport // Austral. J. Plant Physiol. 1977. V. 4. N 3. P. 321-325.

82.Katekar G. F., Geissler A. E. Auxin transport inhibitors. IV. Evidence of a common mode of action for a proposed class of auxin transport inhibitors: the phytotropins // Plant Physiol. 1980. V. 66. N 6. P. 1190-1195.

83.Kaufman P. B., Wu L.-L., Brock T. G., Kim D. Hormones and the orientation of growth // Plant Hormones. Physiology, Biochemistry and Molecular Biology. 2nd edition. Ed. by P. J. Davies. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1995. P. 547571. ISBN 0-7923-2984-8.

84.King R. A., van Staden J. Differential responses of buds along the shoot of Pisum sativum to isopentenyladenine and zeatin application // Plant Physiol. Biochem. 1988. V. 26. N 3. P. 253-259.

85.King R. A., van Staden J. The metabolism of N6(A2-isopentenyl)[3H]adenine by different stem sections of Pisum sativum II Plant Growth Regul. 1990. V. 9. N 3. P. 237-246.

86.Knox J. P., Wareing P. F. Apical dominance in Phaseolus vulgaris L.: The possibles roles of abscisic and indole-3-acetic acid // J. Exp. Bot. 1984. V. 35. N 151. P. 239-244.

87.Komor E., Liegl I., Schobert C. Loading and traslocation of various cytokinins in phloem and xylem of the seedlings of Ricinus communis L. I I Planta 1993. V. 191. N 2. P. 252-255.

88.Kotov A. A. Indole-3-acetic acid transport in apical dominance: a quantitative approach. Influence of endogenous and exogenous IAA apical source on inhibitory power of IAA transport // Plant Growth Regul. 1996. V. 19. N 1. P. 1-5.

89.Kulaeva O. N., Karavaiko N. N., Selivankina S. Yu., Moshkov I. E., Novikova G. -V., Zemlyachenko Ya. V., Shipilova S. V., Orudgev E. M. Cytokinin signalling systems // Plant hormone signal perception and transduction. Proceedings of the International Symposium on plant hormone signal perception and transduction, Moscow, Russia. September 4-10, 1994. Ed. by A. R. Smith, A. W. Berry, N. V. J. Harpham, I. E. Moshkov, G. V. Novikova, O. N. Kulaeva, M. A. Hall. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1996. P. 57-66. ISBN 0-7923-3768-9.

90.Li C.-H., Bangerth F. The possible role of cytokinins, ethylene and indoleacetic acid in apical dominance // Progress in Plant Growth Regulation. Ed. by C. M. Karssen, L. C. van Loon and D. Vreugdenhil. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1992. P. 431-436. ISBN 0-7923-1617-7.

91.Li C.-J., Guevara E., Herrera J., Bangerth F. Effect of apex excision and replacement by 1-naphthylacetic acid on cytokinin concentration and apical dominance in pea plants // Physiol. Plant. 1995. V. 94. N 3. P. 465-469.

92.Libbert E. Das Zusammenwirkung von Wuchs- und Hemmstofien bei der korrelativen Knospenhemmung // Planta. 1954. V. 45. P. 405.

93.Lim R., Tamas I. A. The transport of radiolabeled indoleacetic acid and its conjugates in nodal stem segments of Phaseolus vulgaris L. // Plant Growth Regul. 1989. Y. 8. N 2. P. 151-164.

94.Lomax T. L., Muday G. K., Rubery P. H. Auxin Transport // Plant Hormones. Physiology, Biochemistry and Molecular Biology. 2nd edition. Ed. by P. J. Davies. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1995. P. 509-530. ISBN 0-7923-2984-8.

95.Maldiney R., Leroux B., Sabbagh I., Sotta B., Sossountzov L., Miginiac E. A biotin-avidin-based enzyme immunoassay to quantify three phytohormones: auxin, abscisic acid and zeatin-riboside // J. Immunol. Meth. 1986. V. 90. N 2. P. 151-158.

96 .Manning K. Heterologous enzyme immunoassay for the determination of free indole- , 3-acetic acid (IAA) using antibodies against ring-linked IAA // J. Immunol. Meth. 1991. V. 136. N l.P. 61-68.

97.Marr C., Blaser H. W. The origin and development of induced branches in Helianthus II Amer. J. Bot. 1967. V. 54. N 4. P. 498-504.

98.Mc Intyre G. I. Nutritional control of the correlative inhibition between lateral shoots in the flax seedling (Linum usitatissium) II Can. J. Bot. 1968. V. 46. N 2. P. 147-155.

99.Miller C. O. Naturally-occurring cytokinins // Biochemistry and physiology of plant growth substances. Ed. by F. Wightman and G. Setterfield. Ottawa Runge press, 1968. P. 33-35.

100.Miyamoto K., Ueda J., Kamisaka S. Sugar accumulation in growing subhooks of

b

etiolated Pisum sativum seedlings - stimulation of sugar exudation and invertase activity in epicotyls by gibberellic acid // Physiol. Plant. 1992. V. 84. N 1. P. 106-112.

101.Mollan R. C., Donnelly D. M. X., Harmey M. A. Synthesis of indole-3-acetylaspartic acid // Phytochem. 1972. Y. 11. N 4. P. 1485-1488.

102.Moritz T., Sundberg B. Endogenous cytokinins in the vascular cambial region of Pinus sylvestris during activity and dormancy // Physiol. Plant. 1996. V. 98. N 4. P. 693-698.

103.Morris D. A. Trasport of exogenous auxin in two-branched dwarf pea seedlings {Pisum sativum L.) // Planta. 1977. V. 136. N 1. P. 91-96.

104.Morris D. A. Incorporation of label from root-applied Y6-(8-14C)furfuryl-adenine into guanine nucleotide fraction of pea bud ribonucleic acid // Physiol. Plant. 1981. V. 52. N2. P. 315-319.

105.Morris D. A. Carrier-mediated transmembrane auxin transport: possibilities for regulation and some implications for the control of growth and development // Physiology and biochemistry of auxins in plants. Proceedings of the Symposium held at Liblice, Czechoslovakia, September 28 - october 2, 1987. Ed. by M. Kutâcek, R. S. Bandurski, J. Krekule. Praha: Academia, 1988. P. 195-203.

106.Morris D. A., Johnson C. F. The role of auxin efflux carriers in the reversible loss of polar auxin transport in the pea (Pisum sativum L.) stem // Planta. 1990. V. 181. N 1. P. 117-124.

107.Morris D. A., Kadir G. O. Pathways of auxin transport in the intact pea seedling (Pisum sativum L.) // Planta. 1972. Y. 107. N 2. P. 171-182.

108.Nakajima M., Yamaguchi I., Kizawa S., Murofushi N., Takahashi N. Preparation and validation of an antiserum specific for non-derivatized gibberellins // Plant Cell Physiol. 1991. V. 32. N 4. P. 505-510.

109.Nooden L. D., Singh S., Letham D. S. Correlation of xylem sap cytokinin levels with monocarpic senescence in soybean II Plant Physiol. 1990. V. 93. N 1. P. 33-39.

110.Nougarede A., Rembur J., Rondet P. Réactivation du bourgeon cotylédonnaire du pois en réponse â la kinétine H Can. J. Bot. 1981. V. 59. N 5. P. 590-603.

11 l.Nougarede A., Rondet P., Landre P., Saint-Come R. Impact d'un traitement par le cycloheximide sur la reprise du cycle et sur les teneurs en protéines du bourgeon cotylédonnaire du Pois réactivé par décapitation // Can. J. Bot. 1990. V. 68. N 2. P. 420-427.

112.Palmer M. V., Horgan R., Wareing P. F. Cytokinin metabolism in Phaseolus vulgaris L. I. Variations in cytokinin levels in leaves of decapitated plants in relation to lateral bud growth//J. Exp. Bot. 1981. V. 32. N 131. P. 1231-1241.

113.Palni L. M. S., Burch L., Horgan R. The effect of auxin concentration on cytokinin stability and metabolism // Planta. 1988. V. 174. N 2. P. 231-234.

114.Patrick J. W. Hormonal control of assimilate transport // Plant Growth Substances. Ed. by P. F. Wareing. London: Acad. Press, 1982. P. 669-678.

115.Pence V. C., Caruso J. L. ELISA determination of IAA using antibodies against ring-linked IAA // Phytochem. 1987. V. 26. N 5. P. 1251-1256.

116.Pengelly W., Meins F. A specific radioimmunoassay for nanogram quantities of the auxin, indole-3-acetic acid // Planta. 1977. V. 136. N 2. P. 173-180.

117.Peterson C. A., Fletcher R. A. Apical dominance is not due to a lack of functional xylem and phloem in inhibited buds // J. Exp. Bot. 1973. V. 24. N 78. P. 97-103.

118.Phillips I. D. J. Effect of relative hormone concentration on auxin-gibberellin interaction in correlative inhibition of axillary buds // Planta 1971. V. 96. N 1. P. 2734.

119.Phillips I. D. J. Apical dominance // Annu. Rev. PI. Physiol. 1975. Y. 26. P. 341-367.

120.Pilate G., Sossountzov L., Miginac E. Hormone levels and apical dominance in the aquatic fern Marsilea drummondii A.Br. I I Plant Physiol. 1989. V. 90. N 3. P. 907-912.

121 .Pillay I., Railton I. D. Complete release of axillary buds from apical dominance in intact, light-grown seedlings of Pisum sativum L. following a single application of cytokinin // Plant Physiol. 1983. Y. 71. N 4. P. 972-974.

122.Prasad T. K., Hosokawa Z., Cline M. G. Effects of auxin, auxin-transport inhibitors and mineral nutrients on apical dominance in Pharbitis nil II J. Plant Physiol. 1989. V. 135. N4. P. All-All.

123.Raju M. V. S., Marchuk W. N. Xylem changes in the correlative inhibition of lateral bud growth in flax (Linum usitatissimum L.) // J. Plant Research. 1993. V. 106. N 1082. P. 137-142.

124.Ranadive N. S., Sehon A. H. Antigenicity of 5-hydroxyindole-3-acetic acid, a derivative of serotonin. I. Preparation of protein conjugates of 5-hydroxyindole-3-acetic acid // Can. J. Biochem. 1967. V. 45. N 11. P. 1681-1688.

125.Reid J. B., Ross J. J., Swain S. M. Internode length in Pisum. A new, slender mutant • with elevated levels of Ci9 gibberellins // Planta. 1992. V. 188. P. 462-467.

126.Rodbard D. Rapid calculation of radioimmunoassay results // J. Lab. Clin. Med. 1974. V. 74. P. 770-781.

127.Ross J. J., Murfet I. C., Reid J. B. Distribution of gibberellins in Lathyrus odoratus L. and their role in leaf growth II Plant Physiol. 1993. V. 102. N 2. P. 603-608.

128.Rowntree R. A., Morris D. A. Accumulation of !4C from exogenous labelled auxin in lateral root primordia of intact pea seedlings (Pisum sativum L.) // Planta. 1979. V. 144. N5. P. 463-466.

129.Sachs T. Polarity and the induction of organized vascular tissues // Ann. Bot. 1969.

V. 33. N130. P. 263-275. 130.Sachs T. The induction of transport channels by auxin // Planta 1975. V. 127. N 2. P. 201-206.

131.Sachs T. The control of the patterned differentiation of vascular tissues // Adv. Bot.

Research. 1981. V. 9. P. 151-262. 132.Sachs T. Axiality and polarity in vascular plants // Positional controls in plant development. Ed. by P. W. Barlow and D. J. Carr. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1984. P. 193-224. 133.Sachs T., Thimann K. V. The role of auxins and cytokinins in the release of buds

from dominance // Am. J. Bot. 1967. V. 54. N 1. P. 136-144. 134.Savidge R. A., Heald J. K., Wareing P. F. Non-uniforn distribution and seasonal variation of endogenous indol-3yl-acetic acid in the cambial region of Pinus contorta Dougl. // Planta 1982. V. 155. N 1. P. 89-92. 135.Schumaker K. S., Sze H. Inositol 1,4,5-triphosphate releases Ca2+ from vacuolar

vesicles of oat roots // J. Biol. Chem. 1987. V. 262. N 9. P. 3944-3946. 136.Scott J. M., Horgan R. Root cytokinins of Phaseolus vulgaris L. // Plant Sci. Lett.

1984. V. 34. N l.P. 81-87. 137.Singh S., Palni L. M. S., Letham, D. S. Cytokinin biochemistry in relation to leaf senescence. V. Endogenous cytokinin levels and metabolism of zeatin riboside in leaf discs from green and senescent tobacco (Nicotiana rustica) leaves // J. Plant Physiol. 1992. V. 139. P. 279-283.

138.Skoog F., Abdul Chani A. K. B. Relative activities of cytokinins and antagonists in releasing lateral buds of Visum from apical dominance compared with their relative activities in the regulation of growth of tobacco callus // Metabolism and molecular activities of cytokinins. Ed. by Y. Guern, C. Peaud-Lenoel, Berlin- Heidelberg- New York: Springer-Verlag, 1981. P. 140-150.

139.Smith C. W., Jacobs W. P. The movement of IAA-C14 in the hypocotyl of Phaseolus vulgaris // Am. J. Bot. 1969. V. 56. N 5. P. 492-497.

140.Smith R. H., Murashige T. In vitro development of the isolated shoot apical meristem of angiosperms // Amer. J. Bot. 1970. V. 57. N 5. P. 562-568.

141.Smith R. H., Murashige T. Primordial leaf and phytohormone effects on excised shoot apical meristems of Coleus blumei Benth. // Amer. J. Bot. 1982. V. 69. N 8. P. 1334-1339.

142.Smith V. A., Knatt C. J., Gaskin P., Reid J. B. The distribution of gibberellins in vegetative tissues of Pisum sativum L. I. Biological and biochemical consequences of the le mutation II Plant Physiol. 1992. Y. 99. N 2. P. 368-371.

143.Snow R. Experiments on growth and inhibition. II. New phenomena of inhibition // Proc. Roy. Soc. B. 1931. Y. 108. P. 305-316.

144.Snow R. An inhibitor of growth extracted from pea leaves // Nature. 1939. N 144. P. 906.

145.Sorokin H. P., Thimann K. V. The histological basis for inhibition of axillary buds in Pisum sativum and the effects of auxins and kinetin on xylem development // Protoplasma. 1964. Y. 59. N 2. P. 326-350.

146.Sossountzov L., Maldiney R., Sotta B., Sabbagh I., Habricot Y., Bonnett M., Miginiac E. Immunocytochemical localization of cytokinins in Craigella tomato and a side - shootless mutant // Planta. 1988. Y. 175. N 3. P. 291-304.

147.Sponsel V. M. Gibberellins in Pisum sativum - their nature, distribution and involvement in growth and development of the plant // Physiol. Plant. 1985. V. 65. N 4. P. 533-538.

148.Stafstrom J. Axillary bud development in pea: apical dominance, growth cycles, hormonal regulation and plant architecture // Cellular Communication in Plants. Ed. by R. M. Amasino. New York: Plenum Publishing Corp., 1993. P. 75-86. ISBN 0-30644415-1.

149.Stafstrom J. P., Altschuler M., Anderson D. H. Molecular cloning and expression of a MAP kinase homoloque from pea // Plant Mol. Biol. 1993. V. 22. N 1. P. 83-90.

150.Stafstrom J. P., Devitt M. L. Nucleotide sequence of four ribosomal protein L27 cDNAs from growing axillary buds of pea // Plant Physiol. 1995. V. 107. N 3. P. 10311032.

151.Stafstrom J., Ripley B., Drake B., Devitt M., Stoudt W., Krueger M., Lloyd D. Dormancy-associated gene expression in pea axillary buds // Plant Physiol. 1997. V. 114. N 3. Sup. P. 311. Abs. 1632.

152.Stafstrom J. P., Sussex I. M. Pattern of protein synthesis in dormant and growing vegetative buds of pea // Planta. 1988. V. 176. N 4. P. 497-505.

153.Stafstrom J. P., Sussex I. M. Expression of a ribosomal protein gene in axillary buds of pea seedlings // Plant Physiol. 1992. V. 100. N 3. P. 1494-1502.

154.Summons R. E., Letham D. S., Gollnow B. I., Parker C. W., Entsch B., Johnson L. P., MacLeod J. K., Rolfe B. G. Cytokinin translocation and metabolism in species of the Leguminoseae: studies in relation to shoot and nodule development II Metabolism and molecular activities of cytokinins. Ed. by Y. Guern, C. Peaud-Lenoel, BerlinHeidelberg- New York: Springer-Verlag, 1981. P. 69-79.

155.Sundberg B., Tuominen H., Little C. H. A. Effects of the indole-3-acetic acid (IAA) transport inhibitors N-1 -naphthylphthalamic acid and morphactin on endogenous

IAA dynamics in relation to compression wood formation in 1-year-old Pinus sylvestris (L.) shoots // Plant Physiol. 1994. V. 106. N 2. P. 469-476.

156.Suttle J. C. Biochemical bases for the loss of basipetal IAA transport with advancing physiological age in etiolated Helianthus hypocotyls // Plant Physiol. 1991. V. 96. N 3. P. 875-880.

157.Sylvia V., Curtin G., Norman J., Stec J., Busbee D. Activation of a low specific activity form of DNA polymerase a by inositol l,4-6w-phosphate // Cell. 1988. V. 54. N5. P. 651-658.

158.Tamas I. A. Hormonal regulation of apical dominance // Plant Hormones. Physiology, Biochemistry and Molecular Biology. 2nd edition. Ed. by P. J. Davies. Dodrecht: Kluwer Academic Publishers, 1995. P. 572-597. ISBN 0-7923-2984-8.

159.Tamas I. A., Davies P. J., Mazur B. K., Campbell L. B. Correlative effects of fruits on plant development // World soybean research. Proceedings conference III. Ed. by R. Shibles. Boulder: Westview Press, 1985. P. 858-865.

160.Tamas I. A., Engels C. J., Kaplan S. L., Ozbun J. L„ Wallace D. H. Role of indoleacetic acid and abscisic acid in the correlative control by fruits of axillary bud development and leaf senescence // Plant Physiol. 1981. V. 68. N 2. P. 476-481.

161.Tamas I. A., Koch J. L., Mazur B. K., Davies P. J. Auxin effect on the correlative interaction among fruits in Phaseolus vulgaris L. // Proceedings of Plant growth regulator society of America (PGRSA). Ed. by A. R. Cooke. Lake Alfred, FL.: PGRSA, 1986. P. 208-215.

162.Tamas I. A., Langridge W. H. R., Abel S. D„ Crawford S. W„ Randall J. D., Schell J., Szalay A. A. Hormonal control of apical dominance. Studies in tobacco transformed with bacterial luciferase and Agrobacterium rol genes // Progress in Plant

Growth Regulation. Ed by C. M. Karssen, L. C. van Loon and D. Vreugdenhil. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1992. P. 418-430. ISBN 0-7923-1617-7.

163.Tamas I. A., Ozbun J., Wallace D., Powell L., Engels C. Effect of fruits on dormancy and abscisic acid concentration in the axillary buds of Phaseolus vulgaris L. // Plant Physiol. 1979. V. 64. N 4. P. 615-619.

164.Tamas I. A., Schlossberg-Jacobs J., Lim R., Friedman L., Barone C. Effect of plant growth substances on the growth of axillary buds in cultured stem segments of Phaseolus vulgaris L. // Plant Growth Regul. 1989. V. 8. N 2. P. 165-183.

165.Taylor J. S., Thompson B., Pate J. S., Atkins C. A., Pharis R. P. Cytokinins in the phloem sap of white lupin (Lupinus albus L.) // Plant Physiol. 1990. V. 94. N 4. P. 1714-1720.

166.Tepper H. B. Developmental features accompanying the imposition and release of apical dominance in pea // J. Plant Physiol. 1993. V. 142. N 2. P. 722-729.

167.Thimann K. V. On the nature of inhibitions caused by auxin // Amer. J. Bot. 1937. V. 24. N5. P. 407-412.

168.Thimann K. V. Hormone action in the whole life of plants. Amherst: Univ Mass. press, 1977. 448 p.

169.Tietz A., Dörffling, K. Veränderungen im Gehalt von Abscisinsäure und Indol-3-essigsäure sowie der Chloroplastenfarbstoffe in Pisum Keimlingen durch Gibberellinsäure // Planta 1969. V. 85. N 1. P. 118-125.

170.Tomar Y. S. Reflections on apical dominance in relation to mineral nutrients in Nicotiana tabacum L. cv. Calcutti // Proc. Nat. Acad. Sei. India. 1983. V. 53(B). N 2. P. 109-114.

171.Tucker D. J. Apical dominance in the tomato: the possible roles of auxin and abscisic acid // Plant. Sei. Lett. 1978. V. 12. N 3-4. P. 273-278.

172.Van Staden J., Davey J. E. The synthesis, transport and metabolism of endogenous cytokinins // Plant Cell Environment. 1979. V. 2. N 2. P. 93-106.

173.Van Staden J., Dimalla G. G. Endogenous cytokinin and the breaking of dormancy and apical dominance in potato tubers // J. Exp. Bot. 1978. V. 29. N 112. P. 10771084.

174.Van Staden J., Spiegelstein H., Zieslin N., Halevy A. H. Endogenous cytokinins and lateral bud outgrwth in roses // Bot. Gaz. 1981. V. 142. N 2. P. 177-182.

175.Wang S. Y., Faust M. Changes of membrane lipids in apple buds during dormancy and bud break // J. Amer. Soc. Hort. Sei. 1990. V. 115. P. 803-808.

176.Wang S. Y., Faust M. Changes in inositol phosphates during decapitation - induced lateral bud break of Malus domestica II Physiol. Plant. 1995. V. 93. N 3. P. 471-475.

177.Wang S. Y., Faust M., Line M. J. Apical dominance in apple (Malus domestica Borkh.): The possible role of indole-3-acetic acid (IAA) // J. Amer. Soc. Hort. Sei. 1994. V. 119. N6. P. 1215-1221.

178.Wardlaw I. F., Mortimer D. C. Carbohydrate movement in pea plants in relation to axillary bud growth and vascular development // Can. J. Bot. 1970. V. 48. N 2. P. 229237.

179.Weibull J., Ronquist F., Brishammar S. Free amino acids composition of leaf exudates and phloem sap. A comparative study in oats and barley // Plant Physiol. 1990. V. 92. N 1. P. 222-226.

180 .Weiler E. W. Radioimmunoassays for trans-zeatin and related cytokinins // Planta. 1980. V. 149. N2. P. 155-162.

181.Weiler E. W., Jourdan P. S., Conrad W. Levels of indole-3-acetic acid in intact and decapitated coleoptiles as determined by a specific and highly sensitive solid-phase enzyme immunoassay// Planta. 1981. V. 153. N 6. P. 561-571.

182.Weiler E. W., Zenk M. H. Radioimmunoassay for the determination of digoxin and related compaunds in Digitalis lanata II Phytochem. 1976. V. 15. N 10. P. 1537-1545.

183.Weiss D., Shillo R. Axillary bud inhibition induced by young leaves or bract in Euphorbia pulcherrima Willd. //Ann. Bot. 1988. V. 62. N 4. P. 435-440.

184.White J. C. Correlative inhibition of lateral bud growth in Phaseolus vulgaris L. Effect of application of indol-3yl-acetic acid to decapitated plants // Ann. Bot. 1976. Y. 40. N 167. P. 521-529.

185.White J. C., Mansfield T. A. Correlative inhibition of lateral bud growth in Pisum sativum L. and Phaseolus vulgaris L.: Studies of the role of abscisic acid // Ann. Bot. 1977. V. 41. N 176. P. 1163-1170.

186.White J. C., Medlow G. C., Hillman J. R., Wilkins M. B. Correlative inhibition of lateral bud growth in Phaseolus vulgaris L. Isolation of indoleacetic acid from inhibitory region //J. Exp. Bot. 1975. V. 26. N 92. P. 419-424.

187.Wickson M. E., Thimann K. V. The antagonism of auxin and kinetin in apical dominance // Physiol. Plant. 1958. Y. 11. N 1. P. 62-74.

188.Wickson M. E., Thimann K. V. The transport of IAA in pea stems in relation to apical dominance // Physiol. Plant. 1960. Y. 13. N 3. P. 539-554.

189.Wightman F. Gas chromatographic identification and quantitative estimation of natural auxins in developing plant organs // Plant Growth Regulation. Ed. by P. E. Pilet. Berlin, Heidelberg: Springer-Yerlag, 1977. P. 77-90.

190.Wolf O., Jeschke W. D., Hartung W. Long distance transport of abscisic acid in NaCl-treated intact plants of Lupinus albus II J. Exp. Bot. 1990. V. 41. N 226. P. 593600.

191.Woolley D. J., Wareing P. F. The interaction between growth promoters in apical dominance. I. Hormonal interaction, movement and metabolism of a cytokinin in rootless cuttings //NewPhytol. 1972. V. 71. N 5. P. 781-793.

192.Yeang H. Y., Hillman J. R. Lateral bud growth in bean and levels of ethylene in bud and adjacent tissue // J. Exp. Bot. 1982. V. 33. N 132. P. 111-117.

193.Yoon I. S., Kang B. G. Autoregulation of auxin transport in corn coleoptile segments // J. Plant Physiol. 1992. V. 140. N 4. P. 441-446.

194.Zbell B. A modulating role of the inositol exchenge reaction on the auxin-mediated phosphoinositide response in plant cell membranes? // Physiology and biochemistry of auxins in plants. Proceedings of the Symposium held at Liblice, Czechoslovakia, September 28 - october 2, 1987. Ed. by M. Kutacek, R. S. Bandurski, J. Krekule. Praha: Academia, 1988. P. 187-192.

195.Zhang R., Zhang X., Wang J., Letham D. S., McKinney S. A., Higgins T. J. V. The effect of auxin on cytokinin levels and metabolism in transgenic tobacco tissue expressing an ipt gene // Planta. 1995. V. 196. N 1. P. 84-94.

196.Zieslin N., Spigelstein H., Halevy A. H. Components of axillary bud inhibition in rose plants. IV. Inhibitory activity of plant extracts // Bot. Gaz. 1978. V. 139. N 1. P. 64-68.