Роль системы опоидных пептидов в механизмах регуляции секреторной функции печени тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.13, доктор биологических наук Рудин, Илья Владимирович
Рудин, Илья Владимирович
доктор биологических наук
2006
- Специальность ВАК РФ03.00.13
- Количество страниц 335
Оглавление диссертации доктор биологических наук Рудин, Илья Владимирович
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 13 1.1. Современные представления об опиоидергической регуляции функций организма
1.1.1. Участие опиоидов в реализации механизмов ноци- и антиноцицепции и феномена стресс-индуцированной анальгезии
1.1.2. Представление об опиоидном рецепторе и его функциональной детерминированности
1.1.3. Взаимодействие опиоидергической системы с механизмами эндокринной регуляции функций. Участие опиоидных нейропептидов в регуляции функций дыхательной и сердечнососудистой систем, антигипоксические и иммуномодулирующие свойства
1.1.4. Зависимость эффекта опиоидных пептидов от дозы и феномен отсроченного эффекта
1.1.5. Опиоидные пептиды и регуляция функций ЖКТ
1.1.6. Система опиоидных нейропептидов и функции печени 38 1.2. Современные представления о механизмах формирования желчи
1.2.1. Общие представления о фракционном составе желчи
1.2.2. Механизмы образования холатозависимой фракции желчи 44 1.2.3 Пути поступления компонентов желчи в гепатоцит
1.2.4. Механизмы трансцеллюлярного транспорта компонентов желчи
1.2.5. Механизмы переноса компонентов желчи через каналикулярную мембрану
1.2.6. Представления о секреторных формах липидов желчи
1.2.7. Механизмы образования холатонезависимой фракции желчетока
1.2.8. Механизмы нервной и гуморальной регуляции желчеотделительной функции печени 62 1.3. Регуляция желчеотделения системой гастроинтестинальных гормонов
1.3.1. Регуляция секреторной функции печени секретином
1.3.2. Регуляция секретин-стимулированного желчетока
1.3.3. Регуляция секреторной функции печени холецистокинином
1.3.4. Взаимодействие системы гастроинтестинальных гормонов и опиоидергической регуляции функций органов ЖКТ
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Методика проведения эксперимента
2.2. Эксперименты по изучению роли центральных опиоидных рецепторов в регуляции желчеотделения
2.3. Эксперименты по изучению влияния опиоидных пептидов на желчеотделение на изолированной печени
2.4. Определение скорости желчетока
2.5. Определение содержания в желчи билирубина
2.6. Определение содержания в желчи ЖК и холестерола
2.7. Определение содержания в желчи липоидного фосфора
2.8. Статистическая обработка полученных результатов
ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
3.1. Изучение роли периферических опиоидных рецепторов в регуляции секреторной функции печени
3.1.1. Изменение состава и скорости секреции желчи под влиянием периферической стимуляции опиоидных рецепторов синтетическими аналогами опиоидных пептидов при интактной и денервированной печени
3.2. Изучение роли центральных опиоидных рецепторов в регуляции секреторной функции печени 103 3.2.1. Изменение состава и скорости секреции желчи под влиянием центральной стимуляции опиоидных рецепторов синтетическими аналогами опиоидных пептидов при интактной и денервированной печени
3.3. Взаимодействие системы эндогенных опиоидных нейропептидов с системой гастроинтестинальных гормонов
3.3.1. Изменение состава и скорости секреции желчи под влиянием секретина
3.3.2. Изменение состава и скорости секреции желчи, вызванное секретином под влянием синтетических аналогов опиоидных пептидов
3.3.3. Изменение состава и скорости секреции желчи под влиянием холецистокинина
3.3.4. Изменение состава и скорости секреции желчи, вызванное холецистокинином под влянием синтетических аналогов опиоидных пептидов
3.4. Влияние опиоидных пептидов на секреторную функцию изолированной печени
ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ
ВЫВОДЫ
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Физиология», 03.00.13 шифр ВАК
Участие эндотелина-1 в протективном эффекте опиоидных пептидов на стрессобусловленную вазоконстрикцию2007 год, кандидат биологических наук Курицын, Сергей Николаевич
Роль оксида азота в опиоидергической модуляции стрессобусловленной вазоконстрикции2006 год, кандидат биологических наук Командресова, Татьяна Михайловна
Модуляция стрессорной вазоконстрикции при сочетании активации μ и δ-опиатных рецепторов агонистами с различной степенью стабильности2012 год, кандидат биологических наук Шабалина, Ирина Алексеевна
Участие энкефалина в адаптационных реакциях желудка к стрессорному воздействию2001 год, кандидат биологических наук Просекина, Елена Юрьевна
Влияние лей-энкефалина и его синтетического аналога даларгина на метаболизм белков и нуклеиновых кислот у насекомых1999 год, кандидат биологических наук Минькова, Наталья Олеговна
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Роль системы опоидных пептидов в механизмах регуляции секреторной функции печени»
Актуальность проблемы
Изучение механизмов регуляции функций органов пищеварения является традиционной научной проблемой для томской научной школы физиологов. Основы этого направления были заложены работами Б.И. Баяндурова [Баяндуров Б.И., 1930], H.A. Попова [Попов H.A., 1936], В.А. Пегеля [Пегель В.А., с соавт. 1947, 1980], Е.Ф. Ларина [Ларин Е.Ф., 1957], A.B. Елькиной [Елькина A.B., 1957, 1980] и в дальнейшем развиты работами М.А. Медведева [Медведев М.А., 1975, 1977, 1980], A.A. Потапова [Потапов A.A., 1980], Р.Н. Келус [Келус Р.Н., 1980], В.Д. Суходоло [Суходоло В.Д., с соавт. 1978, 1980], В.И. Гридневой [Гриднева В.И., с соавт. 1980], А.Д. Грациановой [Грацианова А.Д., с соавт. 1978], C.B. Низкодубовой [Низкодубова C.B., 1980].
В последние два десятилетия продолжается активное изучение роли системы эндогенных опиоидных нейропептидов в регуляции физиологических процессов в организме и ее влияние на течение различных патологических процессов [Смагин В.Г., с соавт., 1986; Cohen M.L., et al., 1994, Spampinato S., et al., 1994; Silberstein S.D., et al., 2000; Лишманов Ю.Б., с соавт., 2003].
Опиоидергические механизмы принимают участие в регуляции функций практически всех систем и органов в частности механизмов ноци- и антиноцицепции [Кузин М.И., 1984; Holland L.N., et al., 1994; Brennum J., et al., 2001; Dale О., et al., 2002; Martin M., 2003], стресса [Меерсон Ф.З., 1986; Слепушкин В.Д., с соавт. 1990; Schlussman S.D., et al., 2002; Лишманов Ю.Б., с соавт. 2003], обучения и памяти [Jamot L., et al., 2003], механизмов передачи возбуждения в центральной нервной системе [Guyenet P.G., et al., 2002], регулируют функции органов иммунной [Хугаева В.К., 1988; Calvo C.F., et al., 2000] и эндокринной систем [Аргинтаев Е.С., 1989; Pool C.W., et al., 1994; Loh Y.P. et al., 2002; Szeto H.H., 2003], висцеральных органов [Курганов A.H. 2001; Григорьян P.A., с соавт. 2002], оказывают протективный эффект на органы желудочно-кишечного тракта [Смагин В.Г., 1987; Климов П.К., 1991; Курзанов А.Н., 2001].
Изучение желчеотделительной функции печени также является одним из прогрессивных направлений современной фундаментальной науки и в последние годы значительно расширились представления о физиологических и молекулярных механизмах образования и секреции желчи [Саратиков A.C., с соавт. 1991; Erlinger S., 1992; Elsing С., et al., 1995; Shaffer E.A., 2000; Rudolph G., et al., 2002]. Изучаются внутриклеточные транспортные системы гепатоцитов ответственные за секрецию компонентов желчи [Nishida Т., et al., 1995; Ananthanarayanan М et al., 2001; Oswald M., et al., 2001; Ferenci P. et al., 2002], механизмы нервных [Tarada Т., et al., 1989; Cucchiaro G., 1992; Turukawan., et al., 1992] и гуморальных [Gebhard R.L., et al., 1992; Barrientos C., et al., 1993, Alpini G., et al., 1994; Bouchard G., et al., 1994; Mizutani S., et al., 1995] регуляторных влияний.
Однако, роль системы эндогенных опиоидных нейропептидов в регуляции секреторной функции печени до сих пор недостаточно изучена.
Данные о том, что опиоидные пептиды оказывают положительный эффект при некоторых экспериментальных патологических состояниях -острой ишемии реперфузии печени [Yamanouchi К., et al., 2003], остром токсическом гепатите [Полонский В.М., с соавт., 1985с], а также обнаружение в печени энкефалинов и субстанции Р [El-Salhy М, 2000], дают основание полагать, что опиоидные пептиды оказывают влияние на желчеотделительную функцию печени.
К настоящему времени имеются только единичные работы в данной области. В частности, показано, что лей-энкефалин изменяет секрецию в желчь желчных кислот и скорость желчетока оказывая в целом угнетающее влияние на желчеотделение [Масюк Т.В., с соавт. 1995; 1998]. В работах [Весельский С.П., с соавт. 1998; Лященко П.С., с соавт. 1992; Весельский С.П. 2004] изучено влияние субстанции Р на скорость желчетока и желчнокислотный состав желчи. Показано, что субстанция Р увеличивает скорость секреции желчи и желчных кислот. В работе Ве^аБа 1Ч.У. с соавт. [Ве^аБа Ы.У., с соавт. 1999] показано, что аналог опиоидных пептидов Б-А1а2-Ме1-энкефалинамид уменьшает скорость желчетока посредством центрального регуляторного механизма. Шевчук В.Х. с соавт. [Шевчук В.Х., с соавт. 2002] продемонстрировали, что под влиянием даларгина происходит изменение спектра секретируемых желчных кислот.
Как видно из приведенных данных, результаты исследований в данной области весьма противоречивы, что объясняется использованием разных аналогов опиоидных пептидов с разной степенью сродства к различным типам опиоидных рецепторов. Для выяснения роли опиоидергической системы в регуляции желчеотделения и выяснения функциональных взаимосвязей этой регуляции с другими медиаторными и регуляторными системами организма и желудочно-кишечного тракта в частности, необходимо изучить механизмы взаимодействия опиоидергической регуляции желчетока с системой гастроинтестинальных гормонов, провести исследования влияния опиоидергической стимуляции и блокады в условиях денервации печени, с применением методик как периферического, так и центрального введения аналогов опиоидных пептидов.
Цель исследования:
Определение роли системы эндогенных опиоидных пептидов в механизмах регуляции секреторной функции печени.
Задачи:
1. Изучить роль мю, дельта и каппа опиоидных рецепторов в реализации эффектов опиоидных нейропептидов на желчеотделение.
2. Определить роль центральной и периферической регуляции желчеотделения системой опиоидных нейропептидов.
3. Определить роль собственных опиоидных рецепторов печени в регуляции ее желчеотделительной функции.
4. Изучить значение иннервации печени в проявлении эффектов опиоидергической системы на желчеотделение.
5. Исследовать взаимодействие системы опиодных пептидов в реализации ее регулирующей способности на желчеотделение с системой гастроинтестинальных гормонов.
Научная новизна
Впервые изучена роль мю, дельта и каппа опиоидных рецепторов в регуляции желчеотделителыюй функции печени. Показано, что как периферические так и центральные опиоидные рецепторы указанных типов принимают участие в регуляции секреции желчи. Установлено, что стимуляция периферических дельта и мю опиоидных рецепторов вызывает увеличение скорости желчетока, секреции в составе желчи холестерола и фосфолипидов. Неселективная стимуляция периферических дельта и мю рецепторов даларгином вызывает увеличение секреции ЖК и холестерола, а также снижение концентрации в желчи билирубина. Стимуляция каппа опиоидных рецепторов вызывает снижение секреции билирубина.
Впервые обнаружено, что стимуляция центральных мю, дельта и каппа опиоидных рецепторов вызывает снижение скорости желчетока и секреции в составе желчи ЖК, холестерола, фосфолипидов и билирубина.
Новыми являются данные о том, что по отношению к желчеотделителыюй функции печени периферические и центральные опиоидные рецепторы обладают разнонаправленными влияниями.
Установлено, что для проявления как стимулирующих, так и угнетающих эффектов периферических и центральных опиоидных рецепторов на желчеотделение, необходимо сохранение интактной иннервации печени.
В работе впервые обнаружено, что центральный отдел опиоидергической системы оказывает тоническое ингибирующее влияние на желчеотделительную функцию печени.
Новыми являются данные о том, что стимуляция периферических мю, дельта и каппа опиоидных рецепторов препятствует проявлению стимулирующего эффекта гастроинтестинальных гормонов холецистокинина и секретина на желчеотделительную функцию печени.
В работе впервые продемонстрировано, что собственные опиоидные рецепторы печени играют важную роль в регуляции желчеотделительной функции органа. Стимуляция дельта опиоидных рецепторов приводит к повышению секреторной активности органа, стимуляция мю опиоидных рецепторов угнетает секреторную активность печени, каппа опиоидные рецепторы не оказывают влияния на желчеотделительную функцию изолированной печени.
Установлено, что направленность регуляторного эффекта опиоидергической системы на желчеотделительную функцию печени в условиях физиологического эксперимента зависит от исходного функционального состояния органа.
Теоретическая и практическая значимость
Полученные результаты вносят вклад в развитие- представлений фундаментального характера о механизмах опиоидергической регуляции желчеотделительной функции печени в условиях физиологического эксперимента, дают основание для целенаправленного поиска аналогов опиоидных пептидов для модуляции желчеотделительной функции печени.
На основании полученных данных агонист опиоидных рецепторов даларгин предложен в качестве средства обладающего холелитолитическим действием [патент на изобретение №2142814,1999 год].
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Опиоидные рецепторы мю, дельта и каппа типа как периферической, так и центральной локализации играют важную роль в регуляции желчеотделительной функции печени. Эффекты стимуляции периферических и центральных опиоидных рецепторов на секреторную функцию печени носят разнонаправленный характер.
2. Для проявления регуляторного эффекта опиоидергической системы на секреторную функцию печени необходимо сохранение вегетативной иннервации органа.
3. Собственные опиоидные рецепторы печени играют роль в проявлении эффекта опиоидных пептидов в регуляции секреции желчи, однако их эффекты в целостном организме могут маскироваться более высокими уровнями иерархической регуляции желчеотделения.
4. В физиологических условиях центральный отдел опиоидергической системы оказывает тоническое ингибирующее влияние на секреторную функцию печени.
5. Эффект опиоидергической стимуляции на желчеотделение зависит от исходного уровня физиологической секреции.
Апробация диссертации
Материалы диссертации обсуждались на 3-й научно-практической конференции стран СНГ «Актуальные вопросы гастроэнтерологии» [Томск, 1995], конференции стран СНГ «Нейрогуморальные механизмы регуляции органов желудочно-кишечного тракта» [Томск, 1997], третьем конгрессе физиологов Сибири и Дальнего Востока, [Новосибирск, 1997], III конференции молодых ученых России с международным участием «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины» [Москва,
2004], пятом конгрессе молодых ученых и специалистов «Науки о человеке» [Томск, 2004], Всероссийской конференции молодых исследователей [Санкт-Петербург, 2005], V съезде физиологов Сибири и Дальнего востока [Томск,
2005], XIII международном совещании/школе по эволюционной физиологии [Санкт-Петербург, 2006], седьмом конгрессе молодых ученых и специалистов «Науки о человеке» [Томск, 2006]
Публикации
По материалам диссертации опубликовано 21 печатная работа, из них 7 в центральных реферируемых журналах, в том числе патент РФ на изобретение.
Объем и структура работы
Диссертация изложена на 335 страницах машинописного текста и состоит из введения, 4 глав, выводов и списка литературы, включающего 838 источников, из них 152 на русском языке и 686 на иностранных. Работа иллюстрирована 32 таблицами и 48 рисунками (46 графиков и 2 схемы).
Похожие диссертационные работы по специальности «Физиология», 03.00.13 шифр ВАК
Опиоидергические механизмы тревожных расстройств и эффектов анксиолитических препаратов2007 год, доктор биологических наук Кост, Наталия Всеволодовна
Роль опиоидных рецепторов в регуляции функции сердца в условиях нормоксии и постишемической реперфузии2005 год, доктор биологических наук Ласукова, Татьяна Викторовна
Влияние опиоидных пептидов на функциональное состояние желудка домашних животных2013 год, кандидат биологических наук Григорьев, Денис Александрович
Каппа-опиоидные рецепторы и устойчивость сердца к аритмогенному воздействию острой ишемии-реперфузии2006 год, кандидат медицинских наук Лишманов, Антон Юрьевич
Влияние даларгина на гормональный статус и свободнорадикальные процессы в крови крыс при гипотермии2013 год, кандидат биологических наук Маяхи Мохаммед Т. Джабер
Заключение диссертации по теме «Физиология», Рудин, Илья Владимирович
ВЫВОДЫ
1. Периферические опиоидные рецепторы играют важную роль в регуляции желчеотделительной функции печени. Стимуляция периферических дельта и мю опиоидных рецепторов вызывает увеличение скорости желчетока, секреции в составе желчи холестерола и фосфолипидов. Неселективная стимуляция периферических рецепторов дельта и мю типа даларгином вызывает увеличение секреции ЖК и холестерола, а также снижение концентрации в желчи билирубина. Стимуляция каппа опиоидных рецепторов вызывает снижение секреции билирубина.
2. Центральные опиоидные рецепторы играют важную роль в регуляции желчеотделительной функции печени. Стимуляция центральных мю, дельта и каппа опиоидных рецепторов в различной степени выраженности вызывает снижение скорости желчетока и секреции в составе желчи ЖК, холестерола, фосфолипидов и билирубина.
3. Периферические и центральные опиоидные рецепторы обладают разнонаправленными вляниями на желчеотделительную функцию печени.
4. Для проявления как стимулирующих, так и угнетающих эффектов периферических и центральных опиоидных рецепторов на желчеотделение, необходимо сохранение интактной иннервации печени.
5. В условиях физиологического эксперимента существует тонический ингибирующий контроль центрального отдела опиоидергической системы на желчеотделительную функцию печени.
6. Селективная стимуляция периферических мю и дельта опиоидных рецепторов, и их неселективная стимуляция даларгином, а также стимуляция каппа опиопдных рецепторов препятствует проявлению стимулирующего эффекта периферического введения гастроинтестинальных гормонов холецистокинина и секретина на желчеотделительную функцию печени.
7. Опиоидные пептиды могут оказывать регуляторный эффект на секреторную функцию печени путем взаимодействия с опиоидными рецепторами печени. На изолированной печени стимуляция дельта опиоидных рецепторов приводит к повышению секреторной активности органа, стимуляция мю опиоидных рецепторов угнетает секреторную активность печени, каппа опиоидные рецепторы не оказывают влияния на желчеотделительную функцию печени. Высказывается предположение, что в целостном организме эффекты прямого взаимодействия опиоидных пептидов с опиоидными рецепторами печени могут маскироваться эффектами более высоких иерархических уровней регуляции желчеотделетельной функции печени.
8. Направленность регуляторного эффекта опиоидергической системы на желчеотделительную функцию печени в условиях физиологического эксперимента зависит от исходного функционального состояния органа - при секреторной активности состояния покоя активация периферического отдела опиоидергической системы способна повышать секреторную функцию печени в отношении, как скорости желчетока, так и секреции в составе желчи ее отдельных компонентов, а в состоянии повышенной секреторной активности опиоидергическая система приводит к снижению секреторной функции печени.
Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Рудин, Илья Владимирович, 2006 год
1. Акинчиц М.А., Павловская H.A. Модификация метода определения билирубина в сыворотке крови // Лаб. Дело. 1988. №12. С. 727-730.
2. Александрова E.H., Насонов Е.Л., Виноградов В.А., Титов М.И. Влияние синтетического аналога эндогенных опиоидов даларгина на естественную цитотоксичность лимфоцитов человека // Бюл Эксперим Биол. 1988. №4. С. 442-445.
3. Аргинтаев Е.С. Взаимоотношения между паращитовидными железами и системой опиоидных пептидов в физиологических условиях и в динамике стресс реакции Автореф .канд мед наук. Томск, 1989. 20 С.
4. Ашмарин И.П. Регуляторные пептиды, происхождение, иерархия // Журнал Эволюц Биохим и Физиол. 1982. Т. 18. №1. С.3-10.
5. Барашкова Г.М., Фокина A.A., Андрианова М.В., Действие энкефалинов и их аналогов на желудочную секрецию //Физиол журнал СССР. 1982. Т. 68. С. 632-638.
6. Барашкова Г.М., Якимовский А.Ф., Калихевич В.Н., Влияние субстанции Р на желудочную секрецию и на концентрацию гастрина в сыворотке крови // Физиол журнал СССР. 1987. Т. 73. №4. С. 512-516.
7. Баяндуров Б.И. Влияние солей на секрецию кишечного сока // Сибирский архив терапевтической и клинической медицины. 1930. Т. 4. С.679-684.
8. Бобков А.И., Семенова В.В. Влияние даларгина на глюкокортикоидную активность надпочечников при стрессе // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 59-60.
9. Ю.Брагин Е.О., Василенко Г.Ф. Роль гигантоклеточных ядер ретикулярной формации в механизмах обезболивания при аурикулярной электроаккупунктуре и действии морфина // Бюл Эксперим Биол. 1988. №10. С. 390-392.
10. Бродский В., Дубовая Т.К., Нечаева Н.В., Фатеева В.И., Новикова Т.Е., Гвазаева И.Г. Ритмы белкового синтеза в денервированной печени крыс // Известия академии наук Серия биология. 1995. №2. С. 133-136.
11. Булгаков С.А., Богданов А.Н., Овтрахт Н., Павлов С.А, Оценка эндокринного статуса у язвенных больных на фоне лечения даларгином // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 70-71.
12. Венчиков А.И., Венчиков В.А. Основные приемы статистической обработки результатов наблюдений в области физиологии. М. Медицина. 1974. 152 С.
13. Весельский С.П. Пептиды в регуляции внешнесекреторной функции печени. Автореф. дис. . докт. биол. наук. Киев, 2004. 40 С.
14. Виноградов В.А., Васильева Е.В., Насонов Е.М., Титов М.И., Мазнева JIM. Модуляци пролиферативного ответа лимфоцитов новым аналогом энкефалинов даларгином // Тер арх. 1984. №11. С. 114-116.
15. Виноградов В.А., Каленикова Е.И., Соколов A.C. Биодоступность даларгина и его метаболитов при интраназальном введении крысам // Бюл Эксперим Биол. 1988. №7. С. 48-50.
16. П.Виноградов В. А., Полонский В.М. Влияние нейропептидов на экспериментальную дуоденальную язву у крыс // Пат физиол и экспер тер. 1983. №1. С. 3-7.
17. Виноградов В.А., Полонский В.М. Даларгин наиболее активных синтетический аналог эндогенных опиоидов для лечения язвенной болезни ( итоги пятилетнего поиска ) // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 62-63.
18. Виноградов В.А., Полонский В.М., Смагии В.Г. Влияние энкефалина и циметидина на возникновение и течение дуоденальных язв у крыс // Бюл Эксперим Биол. 1982. №5. С. 40-42.
19. Виноградов В.А., Эгамов Ю.С., Полонский В.М., Джумбаев Влияние оииоподобных пептидов на лимфатический дренаж поджелудочной железы // Бюл Эксперим Биол. 1988. №3. С. 259-261.
20. Галанкина Е.И., Рогатский Г.Г., Рябинин В.А., Пекелис Б.Л. Влияние аналога энкефалинов тагефлара на эволюцию экспериментального инфаркта миокарда // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 55-57.
21. Ганиткевич Я.В. Роль желчных кислот как физиологически активных веществ в регуляции функций организма // Физиология и патология гепатобилиарной системы. Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума. Томск. 1980. С. 69-71.
22. Ганиткевич Я.В., Карбач Я.И. // Исследование желчи биохимические и биофизические методы. Киев. 1985. 135 С.
23. Гарник Т.П., Федяшин П.С., Анохина Г.А., Опанасюк Н.Д., Покрасен Н.М., Мельник Л.Ф. Изменение уровня фосфолипидов и простагландинов при хронических заболеваниях желчевыводящих путей // Врачебное дело. 1989. №12. С. 66-68.
24. Георгадзе А.К., Фомин В.Б., Булгаков С.А., Феденко В.В. Лечение язвенных гастродуоденальных кровотечений с применением аналогалейцин-энкефалина даларгина // Хирургия. 1990. №3. С. 39-43.
25. Голанов Е.В., Фуфачева A.A., Черкович Г.М., Парин С.Б. Влияние лигандов опиатных рецепторов на эмоциогенные реакции сердечнососудистой-системы у низших приматов // Бюл Эксперим Биол. 1987. №4. С. 424-427.
26. Гольдберг Е.Д., Захарова О.Ю., Дыгай A.M. Модулирующее влияние опиоидных пептидов на гемопоэз при стрессе // Бюл Эксперим Биол. 1988. №7. С. 23-26.
27. Демидович Б.П., Марон И.А., Шувалова Э.З. Численные методы анализа. М. Наука. 1967. 245 С.
28. Елькина A.B. Некоторые данные об участии околощитовидных желез в регуляции желчевыделительной функции печени // Научная конференция физиологов, биохимиков и фармакологов западно-сибирского объединения (тезисы докладов). Томск. 1957. С. 35-36.
29. Елькина A.B., Келус Р.Н. Желчевыделительная функция печени после гамма облучения // Физиология и патология гепатобилиарной системы. Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума. Томск. 1980. С. 163-165.
30. Есипенко Б.Е., Жалило Л.И., Костромина А.П., Синельник О.Д. // Ионные механизмы желчеотделения. Киев. Наукова думка. 1983. 168 С.
31. Игнатов Ю.Д., Андреев Б.В. Роль опиоид- и адренергических механизмов в болеутоляющем действии ГАМК-положительных препаратов // Бюл Эксперим Биол. 1988b. №5. С. 556-558.
32. Игнатов Ю.Д., Зайцев A.A. Роль различных опиатных рецепторов в регуляции ноцицептивных реакций артериального давления // Бюл Эксперим Биол. 1987. №4. С. 420-423.
33. Игнатов Ю.Д., Отеллин В.А., Зайцев A.A., Кучеренко Р.П., Петряевская Н.В. Влияние 5,7-дигидрокситриптамина на болевую чувствительность и болеутоляющее действие морфина // Бюл Эксперим Биол. 1988а. №9. С. 311-314.
34. Исакова O.JL, Сепетов Н.Ф., Изучение кинетических закономерностей деградации пептидов в биологических системах методом ядерного магнитного резонанса // Нейропептиды: их роль в физиологии и патологии. (Тезисы докладов). Томск. 1985. С. 13-14.
35. Йохансон О., Хекфельт Е., Эльде Р.П., Шульцберг М., Терениус JT. Иммуногистохимическое распределение распределение энкефалиновых нейронов//В Кн Эдорфины. М. Мир. 1981. С. 61-78.
36. Казимирский А.Н., Ярыгин К.Н., Косицкий Г.И., Рубина Ю.А., Виноградов В.А., Пылаев A.C., Влияние низких доз пептидногоморфогена гидры на биосинтез белка в интактной и регенирирующей печени крыс // Бюл Эксперим Биол. 1988. №4. С.424-426.
37. Каленикова Е.И., Дмитриева О.Ф., Коробов Н.В., Жуковский C.B., Тищенко В.А., Виноградов В.А. Фармакокинетика даларгина // Вопросы мед химии. 1988. №1. С. 75-83.
38. Каленикова Е.И., Дмитриева О.Ф., Нагорная JI.A., Тищенко В.А. Метаболизм даларгина в сыворотке крови человека в опытах in vitro // В Кн Нейропептиды их роль в физиологии и патологии. (Тезисы докладов). Томск. 1985. С. 77-78.
39. Келус Р.Н., Елькина A.B. Сравнительная характеристика действия уретана и нембутала на биоэлектрическую активность желчного пузыря // Физиология и патология гепатобилиарной системы. Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума Томск. 1980. С. 115-116.
40. Климов П.К. Механизмы регуляции функций желчевыделительной системы. Л.: изд-во Наука. 1969. 159 С.
41. Климов П.К. Физиологическое значение пептидов мозга для деятельности пищеварительной системы. Л. Наука. 1986. 256 С.
42. Климов П.К., Барашкова Г.М., Физиология желудка. 1991. Л. 256 С.
43. Коробов Н.В. Опиоидные свойства даларгина и его фрагментов // В Кн Нейропептиды: их роль в физиологии и патологии. (Тезисы докладов). Томск. 1985. С. 73-74.
44. Короткина Р.Н., Фомиченков Е.П., Андреев В.И., Смирнова В.И., Карелин A.A. К вопросу о некоторых молекулярных механизмах антиоксидантного действия даларгина на печень в условиях холестаза в эксперименте // Бюл Эксперим Биол. 1992. №1. С. 38-40.
45. Короткина Р.Н., Фомиченков Е.П., Бабкина Н.В., Андреев В.И., Шлозников Б.М., Карелин A.A. Антиоксидантное действие даларгина на печень в условиях острого холестаза в эксперименте // Пат Физиол Экспер Тер. 1990. №4. С. 42-44.
46. Коротько Г.Ф., Кадыров Щ.К. Зависимость секреции ферментов поджелудочной железой от дозы октапептида холецистокинина // Медицинский журнал Узбекистана. 1986. №4. С. 46-49.
47. Коротько Г.Ф., Курзанов А.Н. Гидролитические ферхменты желчи // Физиология и патология гепатобилиарной системы. Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума.Томск. 1980. С. 4-5.
48. Костерлиц Г.В., Хыос д. Развитие концепций опиатных рецепторов и их лигандов // В Кн Эндорфины. М. Мир. 1981. С. 43-55.
49. Крицкая Н.Г. Влияние нейропептидов на структуру желудка и тонкого кишечника крыс с экспериментальным инфарктом миокарда // Нейропептиды: их роль в физиологии и патологии. (Тезисы докладов). Томск. 1985. С. 85-86.
50. Кузин М.И., Вруцкий М.Я., Шлозников Б.М. Влияние чрезкожной электростисуляции в режиме электроанестезии на содержание бета-эндорффина в спинномозговой жилкости и плазме крови // Бюл Эксперим Биол. 1984. №5. С. 515-516.
51. Курзанов А.Н., Алейник В.А., Виноградов В.А. Влияние даларгина на панкреатическую секрецию // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С.74-76.
52. Курзанов А.Н., Титова Г.П., Виноградов В.А„ Алейник В.А., Герасимов Н.Ф, Морфофункциональные изменения поджелудочной железы под влиянием даларгина в норме и при экспериментальном панкреатите // Бюл Эксперим Биол. 1988. №4. С. 445-447.
53. Ларин Е.Ф. Влияние перерезки блуждающих нервов на желчевыделительную функцию печени // Научная конференция физиологов, биохимиков и фармакологов западно-сибирского объединения (тезисы докладов). Томск. 1957. С. 32-33.
54. Левицкий Е.Ф. Сравнительная оценка резистивных зон портальной системы при некоторых экстремальных состояниях // Физиология и патология гепатобилиарной системы. Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума. Томск. 1980. С. 168-170.
55. Лишманов Ю.Б., Ласукова Т.В., Алекминская Л.А. Энкефалины и гормоналыю-метабюолические реакции при различных по тяжести видах стресса в эксперименте // Бюл Эксперим Биол. 1985. №3. С. 269-271.
56. Лишманов Ю.Б., Маслов Л.Н. Опиоидные нейропептиды, стресс и адаптационная защита сердца. Томск: изд. ТГУ. 1994. 352 с.
57. Лишманов Ю.Б., Маслов Л.Н. Опиоидные рецепторы и устойчивость сердца к аритмогенным факторам // Бюл. эксперим. биол. 2004. Т. 138. №2. С. 107-112.
58. Лишманов Ю.Б., Маслов Л.Н., Маслова Л.В., Кривоногое Н.Г. Опиоидные пептиды в динамике физиологического и патологического стресса // Пат физиол и экспер терапия. 1990. №4. С. 7-9.
59. Лишманов Ю.Б., Нарыжная Н.В., Маслов Л.Н. Опиоидергическое звено морфофункциональных изменений миокарда при стрессе и адаптации. Томск: Красное знамя. 2003. 224 С.
60. Лишманов Ю.Б., Трифонова Ж.В., Цитин А.Н., Маслова Л.В., Дементьева Л.А. Р-эндорфин и стресс гормоны плазмы крови при состояниях напряжения и адаптации // Бюл Эксперим Биол. 1987. №4. С. 422-424.
61. Лишманов Ю.Б., Угдыжекова Д.С., Маслов Л.Н. Использование центрального введения агонистов дельта 1 и дельта2 опиатных рецепторов для предупреждения адреналовых аритмий в эксперименте // Бюл Эксперим Биол. 1997. Т. 124. № 9. С. 286-288.
62. Лященко П.С., Богач П.Г. Нервно-гуморальные механизмы регуляции желчеобразования у собак // Физиология и патология гепатобилиарной системы. Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума. Томск. 1980. С. 2223.
63. Лященко П.С., Косенко А.Ф., Гушинец Г.П., Весельский С.П. Влияние вещества Р на стимулированное гистамином желудочное сокоотделение и желчеобразование // Физиол журал им И.М.Сеченова. 1992. Т. 78. №9. С. 92-97.
64. Мартынова Е.Р., Медведев О.С. Влияние опиоидных пептидов на регионарную гемодинамику у бодрствующих крыс // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1988. Т. 106. №8. С. 136-139.
65. Мартынова Е.Р., Медведев О.С. Участие мю- и дельта-опиатных рецепторов в реализации вегетативных эффектов опиоидных пептидов // Бюл Эксперим Биол. 1986. №1. С. 60-62.
66. Марчук Г.И. Методы вычислительной математики. М. Наука. 1980. 300 С.
67. Маслов JI.H. Опиатергические механизмы защиты сердца от аритмий при эксперимеенталыюй коронароокклюзии. Автореф .канд мед наук. Томск. 1991.21 С.
68. Масюк А.И. Гормональная регуляция желчеотделения : феноменология, возможные молекулярные механизмы // Успехи современной биологии. 1991. Т. 111. №1. С. 48-58.
69. Масюк А.И. Гормональная регуляция желчеотделения за счет активации биосинтеза белка в гепатоцитах // Физиол журнал им И.М.Сеченова. 1993. Т. 79. №6. С. 147-153.
70. Масюк А.И. Молекулярные и клеточные механизмы желчеотделительной функции печени // Успехи Физиологических Наук. 1990. Т. 21. №2. С. 1835.
71. Масюк Т.В., Долгова E.H., Масюк А.И. Ритмические изменения интенсивности секреции желчи при действии гормонов и желчных кислот // В Кн Биоритмы пицеварительной системы и гомеостаз. (Материалы конференции). Томск. 1994. С. 212-214.
72. Медведев М.А. Эндокринная регуляция моторной функции желудка. Томск: изд-воТГУ. 1975. 172 С.
73. Медведев М.А., Манвейлер В.А., Потапов A.A. Влияние калликреина на адаптацию желчевыделительной системы к динамической мышечнойнагрузке // XII всесоюзная конференция Фундаментальные проблемы гастроэнтерологии. Львов. 1977. С. 143-144.
74. Меерсон Ф.З. Адаптация к стрессорным ситуациям и стресс лимитирующие системы организма // Физиология адаптационных процессов: Руководство по физиологии. М. Наука. 1986. С. 521-631.
75. Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования в клинике. М: Медицина. 1987. 325 с.
76. Мирошниченко В.П., Громашевская Л.Л., Касаткина М.И., Козачек Г.А. Определение содержания желчных кислот и холестерина в желчи // Лаб. Дело. 1978. №3. С. 149-153.
77. Нагорная Л.В., Самовилова H.H., Коробов Н.В., Виноградов В.А., Частичная очистка эндогенных ингибиторов связывания +/- ^HSKF 10047 с сигма опиоидными рецепторами печени // Бюл Эксперим Биол. 1988. №9. С. 314-317.
78. Низкодубова C.B. Динамика изменений желчных кислот в желчи и гепатоцитах под воздействием ширинских минеральных вод // Физиология и патология гепатобилиарной системы. Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума. Томск. 1980. С. 174-176.
79. Панькова Т.Д., Тимошин С.С., Радивоз М.И., Титов М.И. Влияние стабильного аналога лей-энкефалина даларгина на процессы клеточного деления эпителия роговицы белых крыс // Бюлл. эксперим. биол. 1988. №7 С. 97-99.
80. Пегель В.А., Элер A.A. О влиянии желчи на эвакуаторную функцию и ферментативную активность проксимального отдела кишечника рыб // Физиология и патология гепатобилиарной системы. Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума. Томск. 1980. С. 85-86.
81. Пегель В.А., Яблоков Д.Д., Вишневский A.B. Влияние лебяжинской воды на секрецию желчи и на выход ее в двенадцатиперстную кишку. // Ученые записки Томского гос. Университета. Томск. 1947. № 5. С. 64-73.
82. Пинелис В.Г., Лоншалеп М.О., Шульц Ж., Марко Х.М., Шабрие
83. Э., Браке П. Влияние эндотелина-1 на Na+/H+ обмен в гладкомышечных клетках сосудов // Бюл Экспер Биол 1992 №12 - стр 594-596
84. Подымова С.Д., Болезни печени. Руководство для врачей Изд-е 2 , M Медицина 1993, 544 стр
85. Полонский В.М., Коробов Н.В. Противоязвенное действие и периферическая опиоидная активность продуктов деградации даларгина // Бюл. ВКНЦ АМН СССР. 1986 Т. 9. №2. С. 83-86.
86. Попов H.A. О механизме нервной регуляции процессов питания в организме. М-Л: Биомедгиз. 1936. 138 С.
87. Прум И.А., Еропалова С.Х. Влияние синтетического аналога лей-энкефалина на гематологические и биохимические показатели крови у собак // Нейропептиды их роль в физиологии и патологии. (Тезисы докладов). Томск. 1985. С. 106-107.
88. Пустыльник Е.П. Статистические методы анализа и обработки наблюдений. М. Наука. 1968. 288 С.
89. Рудин И.В., Медведев М.А. Опиоидные пептиды модулируют секрецию основных детерминант желчетока // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1997. Т. 123. №5. С. 498-500.
90. Рудин И.В., Медведев М.А. Опиоидные пептиды снижают литогенность желчи // Сибирский журнал гастроэнтерологии и гепатологии. 1996. №2. С. 73-75.
91. Самовилова H.H., Ярыгин К.Н., Виноградов A.A. Специфическое связывание лиганда сигма-опиоидных рецепторов -N-аллилнорметазоцина (SKF10047) с мембранами печени // Биоорганич химия. 1985. Т. 11. №10. С. 1380-1384.
92. Саратиков A.C., Скакун Н.П. Желчеобразование и желчегонные средства. Изд-во ТГУ. Томск. 1991.
93. Сепетов Н.Ф., Исакова O.JL, Пекелис Ю.Л., Сураева Н.М. Изучение деградации даларгина а его аналогов в мембранах щеточной каймы энтероцитов крысы методом lH-ЯМР -спектроскопии // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 86-89.
94. Сергеев П.В., Шимановский Н.Л. Рецепторы физиологически активных веществ. М. Медицина. 1987. 400 С.
95. Синицин Л.Н., Гелашвили С.С. Стрессовая анальгезия при экспериментальном ожоговом шоке // Бюл Эксперим Биол. 1983. №4. С. 37-39.
96. Слепушкин В.Д., Гросслер Ю., Шейх Д.В. Влтияние агонистов опиатных рецепторов на кровообращение у крыс с геморрагическим шоком // Пат Физиол и Экспер Терапия. 1990. №4. С. 18-20.
97. Слепушкин В.Д., Золоев Г.К., Виноградов В.А., Титов М.И. Нейропептиды их роль в физиологии и патологии. Томск. 1988. 143 С.
98. Слепушкин В.Д., Павленко B.C., Хлыстов В.В., Лисаченко Г.В., Усынин А.Ф., Золоев Г.К., Крицкая Н.Г. Влияние даларгина на морфологические и функциональные показатели при экспериментальном инфаркте миокарда // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 54-55.
99. Смагин В.Г., Виноградов В.А., Булгаков С.А., Полонский В.М., Беспалова Ж.Д., Титов М.И. Клиническая оценка гексапептидв даларгина как средства лечения язвенной болезни ДПК // Тер арх. 1984. №11. С. 4952.
100. Смагин В.Г., Виноградов В.А., Булгаков С.А., Прописнова Е.П., Титов М,И., Синтетический пептидный препарат даларгин в лечении язвенной болезни // Тер арх. 1987. №2. С. 44-48.
101. Смагин В.Г., Виноградов В.А., Шаталов В.Н., Полонский В.М., Булгаков С.А„ Анохина В.В., Беспалова Ж.Д. Ингибирующий эффект лей-энкефалина на желудочную секрецию у собак // Бюл Эксперим Биол. 1980. №6. С. 652-654.
102. Смагин В.Г., Титов М.И., Булгаков С.А., Прописнова Е.П. Клиническая апробация даларгина нового средства для лечения язвенной болезни // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 63-65.
103. Соколов A.C., Дмитриева О.Ф., Тищенко В.А., Влияние внутривенной инфузии даларгина на некоторые биохимические и гормональныепоказатели в крови у больных язвенной болезнью ДПК // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 68-70.
104. Спевак С.Е., Соловьева А.И., Шехтер А.Б. Даларгин регулятор репаративной регенерации тканей // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 78-81.
105. Суворов Н.Ф., Якимовский А.Ф., Взаимодействие энкефалин- и дофаминсодержащей систем головки хвостатого ядра в реализации пищевого условного рефлекса у собак // Физиол журнал СССР. 1984. Т. 70. С. 113-117.
106. Суходоло В.Д., Суходоло И.В. Желчь как важный регуляторный агент // Физиология и патология гепатобилиарной системы. Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума. Томск. 1980. С. 90-93.
107. Теплюк С.Г. Влияние даларгина на уровень желудочной секреции // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. Р. 67-68.
108. Тимошин С.С., Швец С,И., Мурзина Н.Б., Березина Г.П. Влияние даларгина на процессы размножения влеток в эпителии желудка при стрессе // Бюл Эксперим Биол. 1990. №10. С. 399-401.
109. Тюленев В.И., Масюк А.И. Нейрогуморальная регуляция синтеза РНК в печени животных // Успехи современной биологии. 1989. Т. 108. Вып. 2. №5. С. 205-216.
110. Хайсман Е.Б., Арефолов В.А., Маликова В.А. Роль периферических катехоламинергических систем в антистрессорном действии нейропептидов // Бюл Эксперим Биол. 1988. №3. С. 302-305.
111. Хлыстов В.В., Усынин А.Ф., Павленко B.C., Слепушкин В.Д. Ультраструктура кардиомиоцитов периинфарктной зоны при лечении экспериментального инфаркта миокарда у крыс гексапептидом даларгином // Бюл Эксперим Биол. 1988. №3. С. 362-365.
112. Хугаева В.К. Влияние даларгина на микрогемо- и микролимфоциркуляцию // Бюл Эксперим Биол. 1988. №3. С. 300-302.
113. Чернышев A.JI. Нарушения желчеобразовательной и желчевыделительной функции печени при заболеваниях органов пищеварения // Автореф . докт мед наук. М. 1993. 42 С.
114. Чиченков О.Н., Коробов Н.В. Сравнение анальгетической активности опиоидных пептидов при их интрацистернальном и внутривенном введении мышам // Фармакол и токсикол. 1984. №1. С. 23-26.
115. Шафер Н.П. Содержание эндогенных опиоидных пептидов в плазме крови больных хроническим колитом // Клинич Мед. 1989. №10. С. 101103.
116. Шевелев O.A., Бугорский Г.В.,Завьялов A.B., Привалова И.Л. Особенности опиоидных регуляций афферентрых реакций желудка и двенадцатиперстной кишки на ранних этапах их острого повреждения // Бюл Эксперим Биол. 1992. №12. С. 578-580.
117. Шехтер А.Б., Соловьева А.И., Спевак С.Е., Титов М.И. Влияние опио-пептида-даларгина на репаративные процессы при заживлении ран // Бюл Эксперим Биол. 1988. №10. С. 487-490.
118. Шитин А.Г. Взаимодействие даларгииа с центральными опиоидными рецепторами и с мембранами клеток внутренних органов // Автореферат дисс . канд биол наук. М. 1987. 20 С.
119. Эльбов П.В. Оценка эффективности даларгина при лечении обострения язвенной болезни в амбулаторных условиях медсанчастей // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 65-67.
120. Эрдос Е.Ж., Джонсон А.Р., Бойден Н.Т. Инактивация энкефалинов. Влияние очищенных пептидилдипептидаз и культивируемых клеток эндотелия человека. В Кн. Эндорфины. М. Мир. 1981. С. 56-60.
121. Якимовский А.Ф. Поведение крыс в условиях хронической активации и блокады опиатной системы неостриатума // Журнал высшей нервной деятельности им И.П.Павлова. 1994. Т. 44. №2. С. 283-290.
122. Ярыгин К.Н., Шитин А.Г., Полонский В.Н., Московкин Г.Н. Влияние периферического введения даларгина на активность орнитиндекарбоксилазы в слизистой ДПК крыс с экспериментальными дуоденальными язвами // Бюл ВКНЦ АМН СССР. 1986. №2. С. 76-78.
123. Яснецов В.В. Отсроченный антигипоксический эффект лей-энкефалина у мышей // Бюл Эксперим Биол. 1988. №5. С. 554-556.
124. Яснецов В.В., Правдивцев В.В., Мотин В.Г. Влияние бета-эндорфина, энкефалинов и их синтетических аналогов на электрическую активность нейронов дыхательного центра продолговатого мозга // Бюл Эксперим Биол. 1984. №12. С. 687-690 .
125. Abbott W.A., Meister A. Intrahepatic transport and utilization of biliary glutathione and its metabolites // Proc Natl Acad Sci USA. 1986. V. 83. P. 1246-1250.
126. Abdulla F.A., Smith P.A. Nociceptin inhibits T-type Ca2+ channel current in rat sensory neurons by a G-protein-independent mechanism // J. Neurosci. 1997. V. 26. P. 8721-8728.
127. Accatino L., Contreras A., Berdichevsky E., Quintana C. The effect of complete biliary obstruction on bile secretion. Studies on the mechanisms of postcholestatic choleresis in the rat. // J Lab Clin Med. 1981. V. 97. P. 525-534.
128. Accatino L., Contreras A., Fernandez S., Quintana C. The effect of complete biliary obstruction on bile flow and bile acid excretion: postcholestatic choleresis in the rat // J Lab Clin Med. 1979. V. 93. P. 706-717.
129. Accatino L., Pizarro M., Solis N., Koenig C.S. Association of canalicular membrane enzymes with bile acid micelles and lipid aggregates in human and rat bile // Biochim Biophys Acta. 1995. V. 1243. №1. P. 33-42.
130. Agellon LB, Torchia EC. Intracellular transport of bile acids. Biochim Biophys Acta 1486: 198-209, 2000.
131. Ahrendt S.A., Ahrendt G.M., Pitt H.A., Moore E.W., Lillemoe K.D. Hypercalciemia decreases bile flow and increases biliary calcium in the prairie dog // Surgery. 1995. V. 117. №4. P. 435-442.
132. Aldini R., Roda A., Lenzi P., Calcaterra D.,Vaccari C., Calzolari M., Festi D., Mazzella G., Bazzoli F., Roda E. et al Hepatic uptake and biliary secretion of bile acids in the perfused rat liver// Pharmacol Res. 1992. V. 25. №1. P. 5161.
133. Alexander S., Peters J., Mathie A. TiPS nomenclature supplement 2001 // Trends. Pharmacol Sci (Suppl). 2001. V 22. P. 1-146.
134. Alho H., Ferrarese C., Vicini S., Vaccarino F. Subsets of GABA-ergic neurons in dissociated cell cultures of neonatal rat cere-bral cortex show co-localization with specific modulator pep-tides // Brain Res. 1988. V. 467. P. 193-204.
135. Allescher H.D., Storr M., Brechmann C., Hahn A., Schusdziarra V. Modulatory effect of endogenous and exogenous opioids on the excitatory reflex pathway of the rat ileum // Neuropeptides. 2000.V. 34. P. 62-68.
136. Alpini G., Lenzi R., Sarkozi L., Tavoloni N. Biliary physiology in rats with bile ductular cell hyperplasia. Evidence for a secretory function of proliferated bile ductules //J Clin Invest. 1988. V. 81. P. 569-578.
137. Alpini G., Lenzi R., Zhai W.-R., Slott P.A., Liu M.H., Sarkozi L., Tavoloni N. Bile secretory function of intrahepatic biliary epithelium in the rat // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1989. V. 257. P. G124-G133.
138. Alpini G., Phillips J.O., LaRusso N.F. The biology of the biliary epithelia. In: The Liver: Biology and Pathobiology (3rd ed.), edited by Arias I., Boyer J.L., Fausto N., Jakoby W., Schachter D., Shafritz D.A. New York: Raven. 1994. P. 623-653.
139. Alpini G., Roberts S.K., Kuntz S.M., Ueno Y., Gubba S., Podila P., LeSage G., LaRusso N.F. Morphological, molecular and functional heterogeneity of cholangiocytes from normal rat liver // Gastroenterology. 1996. V. 110. P. 1636-1643.
140. Alpini G., Ulrich C., Phillips J., Pham L., Miller L., LaRusso N. Upregulation of secretin receptor gene expression in rat cholangiocytes after bile duct ligation // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1994a. V. 266. P. G922-G928.
141. Alpini G., Ulrich C.D.-2nd, Phillips J.O., Pham L.D., Miller L.J., LaRusso N.F. Upregulation of secretin receptor gene expression in rat cholangiocytes after bile duct ligation // Am J Physiol. 1994. V. 266. №5. Pt. 1. P. G 922-928.
142. Alvaro D., Cho W.K., Mennone A., Boyer J.L. Effect of secretin on intracellular pH regulation in isolated rat bile duct epithelial cells // J Clin Invest. 1993. V. 92. №3. P. 1314-1325.
143. Alvaro D., Gigliozzi A., Fraioli F., Romeo R., Papa E., Delle Monache M., Capocaccia L. Hormonal regulation of bicarbonate secretion in the biliary epithelium // Yale J Biol Med. 1997a. V. 70. P. 417-426.
144. Alvaro D., Mennone A., Boyer J.L. Role of kinases and phosphatases in the regulation of fluid secretion and Cl'/HCOj- exchange in cholangiocytes // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 19976. V. 273. P. G303-G313.
145. Ananthanarayanan M., Ng O.C., Boyer J.L., Suchy F.J. Characterization of cloned rat liver Na+-bile acid cotransporter using peptide and fusion proteinantibodies. // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1994. V. 267. P. G637-G643.
146. Angeletti R.H., Novikoff P.M., Juuvadi S.R., Fritschy J.M., Meier P.J., Wolkoff A.W. The choroid plexus epithelium is the site of the organic anion transport protein in the brain. // Proc Natl Acad Sci USA. 1997. V. 94. P. 283286.
147. Arrese M., Accatino L. Acido ursodeoxicolico en el tratamiento de enfermedades hepaticas colestaticas // Rew Med Chil. 1993. V. 121. №4. P. 439-446.
148. Ashton N., Argent B.E., Green R. Effect of vasoactive intestinal peptide, bombesin and substance P on fluid secretion by isolated rat pancreatic ducts // J Physiol (Lond). 1990. V. 427. P. 471-482.
149. Asmann Y.W., Dong M., Ganguli S.C., Hadac E.M., Miller L.J. Structural insights into the amino-terminus of the secretin receptor. I. Status of cysteine and cystine residues // Mol Pharmacol. 2000. V. 58. P. 911-919.
150. Atreyee B., UmaK.M., John W., Sandoz N., Jyotirmoy N. Lovastatin induced synthesis of cholesterol, which acts as a secretagogue of biliary phospholipids in rats // Am J Physiol. 1995. V. 268. №2. Pt. 1. P. G242-250.
151. Attali B., Saya D., Vogel Z. Kappa-opioid agonists inhibit adenylate cyclase and produce heterologous desensitization in rat spinal cord // J Neurochem. 1989. V. 52. №2. P. 360-369.
152. Atweh S.F., Murrin L.C., Kuhar M.J. Presynaptic localization of opiate receptors in the vagal and accessory optic systems: an autoradiographic study // Neuropharmacology. 1978. V. 17. №1. P. 65-71.
153. Baiocchi L., LeSage G., Glaser S., Alpini G. Regulation of cholangiocyte bile secretion//J Hepatol. 1999. V. 31. P. 179-191.
154. Ballatori N., Truong A.T. Multiple canalicular transport mechanisms for glutathione S-conjugates. Transport of both ATP-dependent and voltage-dependent carriers // J Biol Chem. 1995. V. 270. №8. P. 3594-3601.
155. Ballatori Nazzareno, Truong Anh T., Glutathione as a primary osmotic driving forse in hepatic bile formation // Amer J Physiol. 1992. V. 263. №5. Pt. l.P. D617-624.
156. Bardin L., Kim J.A., Siege S.l. The role of formalin-induced pain in morphine tolerance, withdrawal, and reward // Exp Clin Psychopharmacol. 2000. V. 8. P. 61-67.
157. Bardo M.T., Bevins R.A. Conditioned place preference: what does it add to our preclinical understanding of drug reward? // Psychopharmacol. 2000. V. 153. P. 31-43.
158. Bare L.A., Mansson E., Yang D. Expression of two variants of the human mu-opioid receptor mRNA in SK-N-SH cells and human brain // FEBS Lett. 1994.V. 26. P. 213-216.
159. Barker J. Peptide effects on the excitability of single nerve cells // Handbook of Psychopharmacology. 1983. V. 16. P. 489-517.
160. Barrett R., Vaught J. The effects of receptor selective opioid peptides on morphine-induced analgesia // Eur J Pharmacol. 1982. V. 80. №4. P. 427-430.
161. Barrett R.W., Steffey M.E., Wolfram C.A. Type-A cholecysto-kinin binding sites in cow brain: characterization using (-)-3 HJL364718 membrane binding assays // Mol Pharmacol. 1989. V. 36. P. 285-290.
162. Barrientos C., Gonzales P., Tunon M.J., Culebras J.M., GonzalesGallego J. Effects of diabetes in disposition and hepatic handling of cefmetazole in rats // Clin Exp Pharmacol Physiol. 1993. V. 20. №6. P. 399404.
163. Baumgartner U., Sholmerich J., Leible P., Fartmann E.H. Cholestasis, metabolism and biliary lipid secretion during perfusion of rat liver with different bile salts // Biochim Biophys Acta. 1992. V. 1125. №3. P. 142-149.
164. Baxter D.J., Rahman K., Bushell A.J., Mills C.O., Elias E., Billington D. Biliary lipid output by isolated perfused rat livers in responce to cholyl-lysylfluorescein // Biochim Biophys Acta. 1995. V. 1256. №3. P. 374-380.
165. Bayliss W.M., Starling E.H. The mechanism of pancreatic secretion // J Physiol (Lond). 1902. V. 28. P. 325-348.
166. Beckh K., Dirks A., Koop I., Koop H., Adler G. Impairment of hepatic transport processes in perfused rat liver by the specific CCK receptor antagonist loxiglumide // Res Exp Med (Berl). 1997. V. 197(3). P. 125-35.
167. Beckh K., Kneip S., Arnold R. Direct regulation of bile secretion by prostaglandins in perfused rat liver // Hepatology. 1994. V. 19. №5. P. 12081213.
168. Beckh K., Monnikes H., Loos S., Arnold R., Uoop H. Low hepatic clearence of peptide YY (PYY) in the perfused rat liver // Regul Pept. 1992. V. 37. №3. P. 205-212.
169. Beijer H.J., Hulstaert P.F., Brouwer F.A., Charbon G.A. The effect of secretin on peripheral arterial blood flow // Arch Int Pharmacodyn Ther. 1979. V. 240. P. 269-277.
170. Beinfeld M.C. An introduction to neuronal cholecystokinin // Peptides. 2001. V. 22. P. 1197-1200.
171. Beinfeld M.C., Garver D.L. Concentration of cholecystokinin in cerebrospinal fluid is decreased in psychosis: relationship to symptoms and drug response // Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 1991. V. 15. P. 601-609.
172. Beinfeld M.C., Meyer D.K., Eskay R.L., Jensen R.T., Brownstein M.J. The distribution of cholecystokinin immunoreactivity in the central nervous system of the rat as determined by radio-immunoassay // Brain Res. 1981. V. 212. P. 51-57.
173. Beinfeld M.C., Palkovits M. Distribution of cholecystokinin (CCK) in the rat lower brain stem nuclei // Brain Res. 1982. V. 238. P. 260-265.
174. Belzung C., Barreau S. Differences in drug-induced place conditioning between BALB/c and C57B1/6 mice // Pharm Biochem Behav. 2000. V. 65. P. 419-423.
175. Benedetti A., Bassotti C., Rapino K., Marucci L., Jezequel A.M. A morphometric study of the epithelium lining the rat intrahepatic biliary tree // J Hepatol. 1996. V. 24. P. 335-342.
176. Bergasa N.V., Zhou J, Ravi J, Shi Q. The opioid peptide analog D-Ala2-Met-enkephalinamide decreases bile flow by a central mechanism // Peptides. 1999. V. 20. №8. P. 979-986.
177. Berkehnbosch F., Vermes I., Binnekade R. Beta-adrenergic stimulation induces an increase of the plasma levels of immunoreactive alpha-MSH, beta-endorphin, ACTH and corticosterone // Life Sci. 1981. V. 29. №22. P. 22492256.
178. Berr F., Schreiber E., Frick U. Interrelationships of bile acid and phospholipid fatty acid species with cholesterol saturation of duodenal bile // Hepatology. 1992. V. 16. №1. P. 71-81.
179. Betoin F., Eschalier A., Duchene-Marullaz P., Lavarenne J. Seven-day antinociceptive effect of a sustained release vapreotide formulation // Neuroreport. 1994. V. 5. №5. P. 642-644.
180. Beuer U., Nathanson M.H., Isales C.M., Boyer J.L., Tauroursodeoxycholic acid stimulates hepatocellular exocytosis and mobilazes extracellular Ca+ mechanisms defective in cholestasis // J Clin Invest. 1993. V. 92. №6. P. 29842993.
181. Bigoni R., Giuliani S., Calo G., et al. Characterization of mociceptin receptors in the periphery: in vitro and in vivo studies // Nuanyn-Schmiedeberg's Arch Pharmacol. 1999. V. 359. P. 160-167.
182. Bigoni R., Rizzi A., Rizzi D., Becker J.A., Kieffer B.L., Simonin F., Regoli D., Calo G. In vitro pharmacological profile of peptide III-BTD: A novel ligand for nociceptin/orphanin FQ and opioid receptors // Life Sci. 2000. V. 68. P. 233-239.
183. Bissonnette B.M., Collen M.J., Adachi H., Jensen R.T., Gardner J.D. Receptors for vasoactive intestinal peptide and secretin on rat pancreatic acini // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1984. V. 246. P. G710-G717.
184. Bluhm R.E., Frazer M.G., Vore M., Pinson C.W., Badr K.F. Endotelins 1 and 3: potent cholestatic agents secreted and excreted by the liver that interact with cyclosporine // Hepatology. 1993.V. 18. №4. P. 961-968.
185. Bodnar R.J., Hadjimarkou M.M. Endogenous opiates and behavior: 2001 // Peptides. 2002, V. 23. Is. 12. P. 2307-2365.
186. Bodnar R.J., Hadjimarkou M.M. Endogenous opiates and behavior: 2002 // Peptides. 2003. V. 24. Is. 8. P. 1241-1302.
187. Bohme M., Jedlitscky G., Leier I., Buchler M., Keppler D. ATP-dependent export pumps and their inhibition by cyclosporins // Adv Enzyme Regul. 1994 a. V. 34. P. 371-380.
188. Bohme M., Muller M., Leier I., Jedolitschky G., Keppler D. Cholestasis caused by inhibition of the adenosine triphosphote-dependent bile-salt transport in rat livers // Gastroenterology. 1994 b. V. 107. №1. P. 255-265.
189. Boksa P., Seidan N., Chretien M., Livett B. Effect of pro-opiomelanocortin fragments on release of catecholamines from adrenal chromaffin cells // Neurosci Lett. 1982. V. 28. №2. P. 199-204.
190. Borlongan C.V., Su TP., Wang Y. Treatment with delta opioid peptide enhances in vitro and in vivo survival of rat dopaminergic neurons. // Neuroreport. 2000. V. 11. №5. P. 923-926.
191. Borlongan C.V., Wang Y, Su T.P. Delta opioid peptide (D-Ala 2, D-Leu 5) enkephalin: linking hibernation and neuroprotection // Front. Biosci. 2004. № 9. P. 3392-3398.
192. Bossard R., Stieger B., O'Neill B., Fricker G., Meier P.J. Ethynylestradiol treatment induces multiple canalicular membrane transport alterations in rat liver//J Clin Invest. 1993. V. 91. №6. P. 2714-2720.
193. Bouchard G., Yousef I.M., Tuckweber B. Decreased biliary glutathione content is responsible for the decline in bile salt-independent flow induced by ethinylestradiol in rats // Toxicol Lett. 1994. V. 74. №3. P. 221-233.
194. Bouchard G., Yousef J.M., Tuchweber B. Influence of oral treatment with ursodeoxycholic and taurodeoxycholic acids on estrogen-induced cholestasis in rats: effects on bile formation and liver plasma membranes // Liver. 1993. V. 13. №4. P. 193-202.
195. Bourin M., Malinge M., Vasar E., Bradwejn J. Two faces of cholecystokinin: anxiety and schizophrenia // Fundam Clin Phar-macol. 1996. V. 10. P. 116-26.
196. Bovill J.G. Mechanisms of actions of opioids and nonsteroidal antiinflammatory drugs // Eur J Anesthesiol. 1997. V. 14. P. 9 15.
197. Boyer J.L. Bile duct epithelium: frontiers in transport physiology // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1996. V. 270. P. G1-G5.
198. Boyer J.L., Nathanson M.H. Bile formation. In: Schiffs Diseases of the Liver, edited by Schiff E.R., Sorrell M.F., Maddrey W.C. New York: Lippincott-Raven. 1999. P. 119-146.
199. Bradwejn J. Neurobiological investigations into the role of chole-cystokinin in panic disorder// J Psych Neurosci. 1993. V. 18. P. 178-188.
200. Bradwejn J., Koszycki D. The cholecystokinin hypothesis of anxiety and panic disorder//Ann NY Acad Sci. 1994. V. 713. P. 273-282.
201. Bradwejn J., Koszycki D., Meterissian G. Cholecystokinin-tetrapeptide induces panic attacks in patients with panic dis-order // Can J Psychiatry. 1990. V. 35. P. 83-5.
202. Browning K.N., Kalyuzhny A.E., Travagli R.A. Mu-opioid receptor trafficking on inhibitory synapses in the rat brainstem. // J Neurosci. 2004. V. 24. №33. P. 7344-7352.
203. Bryant M.G., Polak M.M., Modlin I., Bloom S.R., Albuquerque R.H., Pearse A.G. Possible dual role for vasoactive intestinal peptide as gastrointestinal hormone and neurotransmitter substance // Lancet. 1976. V. LP. 991-993.
204. Burford N.T., Tolbert L.M., Sadee W. Specific G protein activation and opioid receptor internalization caused by morphine, DAMGO and endomorphin 1// Eur. J. Pharmacol. 1998. V. 26. P. 123-6.
205. Burwen S.J., Schmucker D.L., Jones A.L. Subcellular and molecolar mechanisms of bile secretion // Int Rev Cytol. 1992. V. 135. P. 267-313.
206. Buscher H.P., Meder I., Macnelly S., Gerok W. Zonal changes of hepatobiliary taurocholate transport in intrahepatic cholestasis induced by 17alpha-ethinyl estradiol: a histoautoradiographic study in rats. // Hepatology. 1993. V. 17. P. 494-499.
207. Byrne J.A., Strautnieks S.S., Mieli-Vergani G., Higgins C.F., Linton K.J., Thompson R.J. The human bile salt export pump: characterization of substrate specificity and identification of inhibitors. // Gastro. 2003. V. 123. P. 16491658.
208. Cairo V., Cigarini C., Volpi R., Capretti L., Bacchi-Modena A., Chiodera P. Naloxone enchances angiotensin II-induced increase in serum luteinizing hormone concentrations in normal women // Regul Pept. 1994 a. V. 51. №2. P. 161-167.
209. Calo G., Bigoni R., Rizzi A., Guerrini R., Salvadori S., Regoli D. Nociceptin/orphanin FQ receptor ligands // Peptides. 2000. V. 21. P. 935-947.
210. Calo G., Guerrini R., Rizzi A., Salvadori S., Regoli D. Pharmacology of nociceptin and its receptor: a novel therapeutic target // Br J Pharmacol. 2000a. V 129. P. 1261-1283.
211. Carter B.D., Medzihradsky F. G0 mediates the coupling of the p-opioid receptor to adenylyl cyclase in cloned neural cells and brain // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1993. V. 26. P. 4062-4066.
212. Cattori V., Eckhardt U., Hagenbuch B. Molecular cloning and functional characterization of two alternatively spliced Ntcp isoforms from mouse liverl. //BiochimBiophysActa. 1999. V. 1445. P. 154-159.
213. Cesselin F. Opioid and anti-opioid peptides // Fundam. Clin. Pharmacol. 1995. V. 9. P. 409-433.
214. Champion H.C., Czapla M.A., Kadowits P.J. Nociceptin an endogenous ligand for the ORL1 receptor decreases cardiac output and total peripheral resistance in the rat// Peptides. 1997. V. 18. P. 729-732.
215. Champion H.C., Kadowitz P.J. Tyrl.-Nociceptin has naloxone-insensitive vasodilator activity in the hindquarters vascular bed of the rat // Life Sci. 1997. V. 61. P. PL403-PL408.
216. Champion H.C., Kadowitz P.J. Tyrl.-Nociceptin, a novel nociceptin analog, decreases systemic arterial pressure by a naloxone indensitive mechanism in the rat// Biochem Biophys Res Commun. 1997a. V. 234. P. 309312.
217. Chan J.S.C, Chiu T.T., Wong Y.H. Activation of type II adenylyl cyclase by the cloned ^-opioid receptor: Coupling to multiple G proteins // J. Neurochem. 1995. V. 26. P. 2682-2689.
218. Charlton C.G., Miller R.L., Crawley J.N., Handelmann G.E., O'Donohue T.L. Secretin modulation of behavioral and physiological functions in the rat // Peptides. 1983. V. 4. P. 739-742.
219. Chaturvedi K. Opioid peptides, opioid receptors and mechanism of down regulation // Indian. J Exp. Biol. 2003. V. 41(1). P. 5-13.
220. Chen Y., Mestek A., Liu J., Hurley J.A., Yu L. Molecular cloning and functional expression of a mu-opioid receptor from rat brain // Mol. Pharmacol. 1993. V. 26. P. 8-12.
221. Cheng S.H., Rich D.P., Marshall J., Gregory R.J., Welsh M.J., Smith A.E. Phosphorylation of the R domain by cAMP-dependent protein kinase regulates the CFTR chloride channel // Cell. 1991. V. 66. P. 1027-1036.
222. Cheung K, Hickman P.E., Potter J.M., Walker N.I., Jericho M., Haslam R., Roberts M.S. An optimized model for rat liver perfusion studies. // J Surg Res. 1996. V. 66. №1. P. 81-99.
223. Chey W.Y., Coy D.H., Konturek S.J., Schally A.V., Tasler J. Enkephalin inhibits the release and action of secretin on pancreatic secretion in the dog // The Journal of Physiology. 2001. V. 298. Is. 1. 429-436.
224. Chey W.Y., Coy D.H., Konturek S.J., SchallyA.V., TaslerJ. The Physiological Society Enkephalin inhibits the release and action of secretin on pancreatic secretion in the dog // The Journal of Physiology. 1980. V. 298. P. 429-436.
225. Chey W.Y., Escoffery R. Secretion cells in the gastrointestinal tract // Endocrinology. 1976. V. 98. P. 1390-1395.
226. Childs S., Yeh R.L., Hui D., Ling V. Taxol resistance mediated by transfection of the liver-specific sister gene of P-glycoprotein. // Cancer Res 1998. V. 58. P. 4160-4167.
227. Chiou L.C. Pharmacological characterization of the nociceptin receptor, ORL1 // J Biomed Sci. 2000. V. 7. P. 232-240.
228. Cho W.K., Boyer J.L. Vasoactive intestinal polypeptide is a potent regulator of bile secretion from rat cholangiocytes // Gastroenterology. 1999. V. 117(2). P. 420-428.
229. Cho W.K., Mennone A., Boyer J.L. Intracellular pH regulation in bombesin-stimulated secretion in isolated bile duct units from rat liver // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1998. V. 275. P. G1028-G1036.
230. Cho W.K., Mennone A., Boyer J.L. Isolation of functional polarized bile duct units from mouse liver // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2001. V. 280. P. G241-G246.
231. Cho W.K., Mennone A., Rydberg S.A., Boyer J.L. Bombesin stimulates bicarbonate secretion from rat cholangiocytes: implications for neural regulation of bile secretion // Gastroenterology. 1997. V. 113. P. 311-321.
232. Cicero T.J., Ennis T., Ogden J., Meyer E.R. Gender differences in the reinforcing properties of morphine // Pharm Biochem Behav. 2000. V. 65. P. 916.
233. Clapham D.E., Neer E.J. G protein 0-y subunits // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1997. V. 26. P. 167-203.
234. Clerc T., Sbarra V., Botta-Fridlung D., Lafont H., Pak-Leung P., Gauthier A., Chanussot F. Bile salt secretion by hepatocytes incubated with bile salts and liposomes or low density lipoproteins // Life Sci. 1994. V. 5. №4. P. 277-286.
235. Cohen M.L., Mendelsohn L.G., Mitch C.H., Zimmerman D.M. Use of the mouse vas deferens to determine mu, delta and kappa receptor affinities of opioid antagonists // Receptor. 1994 b. V. 4. №1. P. 43-53.
236. Connor M., MacDonald J.C. Opioid receptor signalling mechanisms // Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 1999. V. 26. Is. 7. P. 493.
237. Couture S., Debonnel G. Some of the effects of the selective sigma ligand (+)pentazocine are mediated via a naloxone-sensitive receptor // Synapse. 2001. V. 39(4). P. 323-331.
238. Cox B., Opheim K., Teschemacher H. A peptide-like substance from pituitary that acts like morphine // Life Sci. 1975. V. 16. P. 1777-1782.
239. Crain S.M., Shen K.F. Modulatory effects of Gs-coupled excitatory opioid receptor functions on opioid analgesia, tolerance, and dependence // Neurochem. Res. 1996. V. 26. P. 1347-1351.
240. Crawford J.M., Berken C.A., Golla J.L. Role of the hepatocyte microtubular system in the exretion of bile salts and biliary lipids : implications for intracellular vesicular transport //J Lipid Res. 1988. V. 29. №2. P. 144-156.
241. Crawford J.M., Strahs D.C., Crawford A.R., Barnes S. Role of bile salt hydrophobicity in hepatic microtubule-dependent bile salt secretion // J Lipid Res. 1994. V. 35. №10. P. 1738-1748.
242. Crawley J.N. Comparative distribution of cholecystokinin and other neuropeptides. Why is this peptide different from all other peptides? // Ann N Y Acad Sci. 1985. V. 448. P. 1-8.
243. Crawley J.N., Corwin R.L. Biological actions of cholecystokinin // Peptides. 1994. V. 15. P. 731-755.
244. Crespi F. The role of cholecystokinin (CCK), CCK-A or CCK-B receptor antagonists in the spontaneous preference for drugs of abuse (alcohol or cocaine) in naive rats // Methods Find Exp Clin Pharmacol. 1998. V. 20. P. 679-697.
245. Crespi F., Corsi M., Reggiani A., Ratti E., Gaviraghi G. Involve-ment of cholecystokinin within craving for cocaine: role of cholecystokinin receptor ligands // Expert Opin Investig Drugs 2000. V. 9. P. 2249-2258.
246. Cucchiaro G., Branum G.D., Farouk M., Mansour G., Kuhn C.M., Anthony D.C., Meyers W.C. The effects of liver denervation on the regulation of hepatic biliary secretion // Transplantation. 1992. V. 54. №1. P. 129-136.
247. Czapla M.A., Champion H.C., Kadovvitz P.J. Decreases in systemic arterial and hindquarters perfusion pressure in response to nociceptin are not inhibited by naloxone in the rat // Peptides. 1997. V. 18. P. 1197-1200.
248. Darland T., Heinricher M.M., Grandy D.K. Orphanin FQ/nociceptin: a role in pain and analgesia, but so much more // TINS. 1998. V. 21. P. 215-221.
249. Das D., Rogers J., Michael-Titus A.T. Comparativestudy of the effects of mu, delta and kappa opioid agonists on ^H-dopamine uptake in rat striatum and nucleus accumbens //Neuropharmacology. 1994. V. 33. №2. P. 221-226.
250. Dehpour A.R., Sadeghipour H.R., Nowroozi A., Akbarloo N. The effect of the serotonergic system on opioid withdrawal-like syndrome in a mouse model of cholestasis // Hum Psychopharmacol Clin Exp. 2000. V. 15. P. 423-428.
251. Dehpour A.R., Samini M., Rastegar H., Ardeshiri A.J., Roushanzamir F., Jorjani M., Ahmadiani A. Effect of NMDA receptor antagonist on naloxone-precipitated withdrawal signs in cholestatic mice // Hum Psychopharmacol Clin Exp. 2000a. V. 15. P. 213-218.
252. Delitala G., Trainer P.J., Oliva O., Fanciulli G., Grossman A.B. Opioid peptide and alpha-adrenoceptor pathways in the regulation of pituitary-adrenal axis in man//J Endocrinol. 1994. V. 141.№1.P. 163-168.
253. Derrick B.E., Martinez J.L. Jr. Opioid receptor activation is one factor underlying the frequency dependenceof many fiber LTP induction // J Neuroscince. 1994. V. 14. №7. P. 4359-4367.
254. Dhawan B.N., Cesselin F., Raghubir R. et al.Classification of opioid receptors // Pharmacol. Rev. 1996. V. 26. P. 567-592.313. di Jeso B. Morphine receptors in rat liver mitochondrial membranes // Seances Soc Biol Fil. 1984. V. 178(1). P. 52-55.
255. Dooley C.T., Houghten R.A. Orphanin FQ: receptor binding and analog structure relationships in rat brain // Life Sci. 1996. V. 59. P. PL23-PL29.
256. Dornan W.A., Bloch G.J., Priest C.A., Micevych P.E. Microinjection of cholecystokinin into the medial preoptic nucleus facilitates lordosis behavior in the female rat//Physiol Behav. 1989. V. 45. P. 969-674.
257. Dourish C.T., O'Neill M.F., Coughlan J., Kitchener S.J., Hawley D., Iversen S.D. The selective CCK-B receptor antagonist L-365,260 enhances morphine analgesia and prevents morphine tolerance in the rat // Eur. J. Pharmacol. 1990. V. 176. P. 35-44.
258. Dumaswala R., Berkowitz D., Setchell K.D., Heubi J.E. Effect of fasting on the enterohepatic circulation of bile acids in rats // Am J Physiol. 1994. V. 267. №5.Pt. l.P. G836-G842.
259. Eager K.R., Robinson B.J., Galletly D.C., Miller J.H. Endogenous opioid modulation of hypercapnic-stimulated respiration in the rat // Respir Physiol. 1994. V. 96. №1. P. 13-24.
260. Eisenmann-Tappe I., Wizigmann S., Gebhardt R. Glutamate uptake in primary cultures of biliary epithelial cells from normal rat liver // Cell Biol Toxicol. 1991. V. 7. P. 315-325.
261. El-Salhy M. Neuropeptide levels in murine liver and biliary pathways // Ups J Med Sci. 2000. V. 105. №3. P. 207-213.
262. Elsing C., Hirlinger A., Renner E.L., Lauterburg B.H., Meyer P.J., Reichen J. Solvent isotope effect on bile formation in the rat // Biochem J. 1995. V. 307. Pt. l.P. 175-181.
263. Elsing C., Kassner A., Hubner C., Buhli H., Stremmel W. Absorptive and secretory mechanisms in biliary epithelial cells // J Hepatol. 1996. V. 24. P. 121-127.
264. Elsing C., Sagesser H., Reichen J., Ursodeoxycholate-induced hypercholeresis in cirrhotic rats: further evidence for cholehepatic shunting // Hepatology. 1994. V. 20. №4. Pt. 1. P. 1048-1054.
265. Emson P.C., Lee C.M., Rehfeld J.F. Cholecystokinin octapeptide: vesicular localization and calcium dependent release from rat brain in vitro // Life Sci. 1980. V. 26. P. 2157-2163.
266. Endo K., Yawo H. p-Opioid recptor inhibts N-type Ca channels in the calyx presynaptic terminal of the embryonic chick ciliary ganglion // J Physiol. 2000. V. 524.3. P. 769-781.
267. Erlinger S. Cystic fibrosis: bile secretion // Br Med Bull. 1992. V. 48. №4. P. 860-876.
268. Evans C.J., Keith J.D.E., Morrison H., Magendzo K., Edwards R.H. Cloning of a delta opioid receptor by functional expression // Science. 1992. V. 26. P. 1952-1955.
269. Faden A.I., Jacobus T.P. Dinorphin induces partially reversible paraplegia in the rats // Eur J Pharmacol. 1983. V. 21. P. 321-324.
270. Faris P.L., Komisaruk B.R., Watkins L.R., Mayer D.J. Evidence for the neuropeptide cholecystokinin as an antagonist of opiate analgesia // Science. 1983. V. 219. P. 310-312.
271. Farouk M., Geoghegan J.G., Pruthi R.S., Thomson H.J., Pappas T.N., Myers W.C. Intracerebroventricular neuropeptide Y stimulates bile secretion via a vagal mechanism//Gut. 1992. V. 33. №11. P. 1562-1565.
272. Farouk M., Vigna S.R., Haebig J.E., Gettys T.W., McVey D.C., Chari R., Pruthi R.S., Meyers W.C. Secretin receptors in a new preparation of plasma membranes from intrahepatic biliary epithelium // J Surg Res. 1993. V. 54. P. 16.
273. Farouk M., Vigna S.R., McVey D.C., Meyers W.C. Localization and characterization of secretin binding sites expressed by rat bile duct epithelium // Gastroenterology. 1992. V. 102. P. 963-968.
274. Fernandez-Checa J.C., Takikawa H., Horie T., Ooktens M., Kaplowitz N. Canalicular transport of reduced glutathione in normal and mutant Eisai hyperbilirubinemic rats //J Biol Chem. 1992. V. 267. №3. P. 1667-1673.
275. Fink H., Rex A., Voits M., Voigt J.P. Major biological actions of CCK — a critical evaluation of research findings // Exp Brain Res. 1998. V. 123. P. 7783.
276. Fiorucci S., Bosso R., Farinelli V., Clausi G.G., Cascetta R., Marelli A. Cephalic stimulation of gallbladder motility. Effects of opioid receptor antagonist naloxone // Ital J Gastroenterol. 1988. V. 20. №2. P. 62-64.
277. Fitz J.G., Basavappa S., McGill J., Melhus O., Cohn J.A. Regulation of membrane chloride currents in rat bile duct epithelial cells // J Clin Invest. 1993. V. 91. P. 319-328.
278. Foo H., Helmstetter F.J. Activation of kappa opioid receptors in the rostral ventrodmedial medulla blocks stress-induced antinociception // Somatosensory Sys Pain. 2000. V. 11. P. 3349-3352.
279. Fremeau R.T.J., Jensen R.T., Charlton C.G., Miller R.L., O'Donohue T.L., Moody T.W. Secretin: specific binding to rat brain membranes // J Neurosci. 1983. V.3.P. 1620-1625.
280. Fuchs M., Schneibner J., Hormann E., Tauber G., Stange E.F. Enterohepatic circulation in hamsters with an extracorporeal bile duct // J lipid Res. 1992. V. 33. №9. P. 1383-1391.
281. Fukumoto Y., Murakami F., Tateishi A., Itoh Y., Sakaida I., Okita K. Effects of secretin on TCDCA- or TDCA-induced cholestatic liver injury in the rat //Hepatol Res. 2002. V. 22. №3. P. 214-222.
282. Gagliese L., Melzack R. Age differences in nociception and pain behaviours in the rat // Neurosci Biobehav Rev. 2000. V. 24. P. 843-854.
283. Galan A.I., Roman I.D., Munoz M.E., Cava F., Gonzalez-Buitrado J.M., Esteller A., Jimenez R. // Biochem Pharmacol. 1992. V. 44. №6. P. 1105-1113.
284. Gall С., Lauterborn J., Burks D., Seroogy K. Co-localization of enkephalin and cholecystokinin in discrete areas of rat brain // Brain Res. 1987. V. 403. P. 403-408.
285. Ganguly T.C., Liu Y., Hyde J.F., Hagenbuch В., Meier P.J., Vore M. Prolactin increases hepatic Na+/taurocholate co-transport activity and messenger RNA post partum // Biochem J. 1994. V. 303. Pt. 1. P. 33-36.
286. Gao В., Stieger В., Noe В., Fritschy J.M., Meier P.J. Localization of the organic anion transporting polypeptide 2 (oatp2) in capillary endothelium and choroid plexus epithelium of rat brain. // J Histochem Cytochem. 1999. V. 47. P. 1255-1264.
287. Garaulet J.V., Laorden M.L., Milanes M.V. Cross-tolerance between mu-and kappa-opioid agonists in the guinea pig ileum myenteric plexus // J Pharmacol ExperTher. 1994. V. 269. №3. P. 993-999.
288. Garver D.L., Beinfeld M.C., Yao J.K. Cholecystokinin, dopamine and schizophrenia//Psychopharmacol Bull. 1990. V. 26. P. 377-80.
289. Gauthier C., Reddix R. Dual effects of D-Pen 'D-Pen .enkephalin on ion transport in guinea pig colon // Eur J Pharmacol. 2000. V. 390. P. 335-338.
290. Gebhard R.L., Prigge W.F. Thyroid hormone differentially augmentsbiliary sterol secretion in the rat II. The chronic bile fistula model // J Lipid Res. 1992 b. V. 33. №10. P. 1467-1473.
291. Gebhard R.L., Stone B.G., Andreini J.P., Duane W.C., Evans C.D., Prigge W. Thyroid hormone differetially augments biliary sterol secretion in the rat I. The isolated-perfused liver model // J Lipid Res. 1992 a. Y. 33. №10. P. 1459-1466.
292. Gerloff T., Stieger B., Hagenbuch B., Madon J., Landmann L., Roth J., Hofmann A.F.,. Meier P.J. The sister P-glycoprotein represents the canalicular bile salt export pump of mammalian liver. // J Biol Chem. 1998. V. 273. P. 10046-10050.
293. Gespach C., Bataille D., Vauclin N., Moroder L., Wunsch E., Rosselin G. Secretin receptor activity in rat gastric glands. Binding studies, cAMP generation and pharmacology//Peptides. 1986. V. 7. Suppl LP. 155-163.
294. Gilberstadt M.L., Bellinger L.L., Lindblad S., Duane W.C. Liver denervation does not alter the circadian rhythm of bile acid synthesis in rats. // Am J Physiol. 1991. V. 261. №5. Pt. 1. P. G799-G802.
295. Gilbert C.L., Boulto M.I.n, Goode J.A., McGrath T.J. The timing of parturition in the pig is altered by intravenous naloxone // Theriogenology. 2000. V. 53. P. 905-923.
296. Giuliani A., Lecci, Maggi C.A. Nociceptin and neurotransmitter release in the periphery // Peptides. 2000 V. 21. P. 977-984.
297. Glaum S.R., Miller R.J., Hammond D.L. Inhibitory action of delta 1-, delta2- and mu-opioid receptor agonists on excitatory transmission in lamina II neurons of adult rat spinal cord // J Neurosci. 1994. V. 14. №8. P.4965-4971.
298. Gold L.H., Stinus L., Inturrisi C.E., Koob G.F. Prolonged tolerance, dependence and abstinence following subcutaneous morphine pellet implantation in the rat// Eur J Pharmacol. 1994. V. 253. №1-2. P. 45-51.
299. Goltermann N.R., Stengaard-Pedersen K., Rehfeld J.F., Chris-tensen N.J. Newly synthesized cholecystokinin in subcellular fractions of the rat brain // J Neurochem 1981. V. 36. P. 959-65.
300. Gonzalez J., Fevery J., Spontaneously diabetic biobreeding rats and impairment of bile acid-independent bile flow and increased biliary bilirubin, calcium and lipid secretion // Hepatology. 1992. V. 16. №2. P. 426-432.
301. Goodman R.L., Gibson M., Skinner D.C., Lehman M.N. Neuroendocrine control of pulsatile GnRH secretion during the ovarian cycle: evidence from the ewe // Reprod Suppl. 2002. V. 59. P. 41-56.
302. Gores G.J., Kost L.J., LaRusso N.F. The isolated perfused rat liver: conceptual and practical considerations. // Hepatology. 1986. V. 6. P. 511-517.
303. Green G.M. Feedback inhibition of cholecystokinin secretion by bile acids and pancreatic proteases // AnnN Y Acad Sci. 1994. V. 713. P. 167-179.
304. Grond S., Meuser T., Pietruck C., Sablotzki A. Nociceptin and the ORL1 receptor: pharmacology of a new opioid receptor // Anaesthesist. 2002. V. 51(12). P. 996-1005.
305. Grzeszczak W., Zukowska-Szczechowska E., Kakot F. Effect of opioid receptor blockade with naloxone on secretion of atrial natriuretic peptide(ANP)in patients with kidney transplantation // Pol Arch Med Wewn. 1994. V. 91. №3. P. 177-183.
306. Gurantz D., Schteingart C.D., Hagey L.R., Steinbach J.H., Grotmol T., Hofmann A.F. Hypercholeresis induced by unconjugated bile acid infusion correlates with recovery in bile of unconjugated bile acids. // Hepatology. 1991. V. 13. P. 540-550.
307. Gyires K., Ronai A.Z. Supraspinal delta and p-opioid receptors mediate gastric mucosal protection in the rat // J Pharmacol. Exp. Ther. 2001. V. 297. №3. P. 1010-1015.
308. Hagenbuch B., Meier P.J. Molecular cloning, chromosomal localization, and functional characterization of a human liver Na+/bile acid cotransporter. // J Clin Invest. 1994. V. 93. P. 1326-1331.
309. Hagenbuch B., Scharschmidt B.F., Meier P.J. Effect of antisense oligonucleotides on the expression of hepatocellular bile acid and organic anion uptake systems in Xenopus laevis oocytes. // Biochem J. 1996. V. 216. P. 901904.
310. Hagenbuch B., Stieger B., Foguet M., Lubbert H., Meier P.J. Functional expression cloning and characterization of the hepatocyte NaVbile acid cotransport system. //Proc Natl Acad Sci USA. 1991. V. 88. P. 10629-10633.
311. Hallberg M., Nyberg F. Neuropeptide conversion to bioactive fragments an important pathway in neuromodulation // Curr Protein Pept Sci. 2003. V. 4(1). P. 31-44.
312. Hamada Y., Karjalainen A., Setchell B.A., Millard J.E., Bygrave F.L. Concomitant stimulation by vasopressin of biliary and perfusate calcium fluxes in the perfused rat liver // Biochem J. 1992. V. 281. Pt. 2. P. 387-392.
313. Han J.S. Acupuncture: neuropeptide release produced by electrical stimulation of different frequencies // Trends Neurosci. 2003. V. 26(1). P. 1722.
314. Hanner M., Moebius F.F., Flandorfer A., Knaus H.G., Striessnig J., Kempner E., Glossmann H. Purification, molecular cloning, and expression of the mammalian sigmal-binding site // Proc Natl Acad Sci USA. 1996. V. 93(15). P. 8072-8077.
315. Hansen T.V., Rehfeld J.F., Nielsen F.C. KC1 and forskolin synergistically up-regulate cholecystokinin gene expression via coordinate activation of CREB and the co-activator CBP. // J Neurochem. 2004. V. 89. №1. P. 15-23.
316. Hanson D.S., Duane W.C. Effects of lovastatin and chenodiol on bile acid synthesis, bile lipid composition and biliary lipid secretion in healthy human subjects//J Lipid Res. 1994. V. 35. №8. P. 1462-1468.
317. Harada E., Niiyama M., Syuto B. Hepatic bile and pancreatic exocrine secretions evoked by gastrointestinal peptides in sheep // Comp Biochem Physiol A Physiol. 1986. V. 85. P. 729-734.
318. Hardison W.G., Norman J.C. Electrolyte composition of the secretin fraction from the perfused pig liver // Am J Physiol. 1968. V. 214. P. 758-763.
319. Hardison W.G., Norman J.C. The effects of bile salts and secretin upon bile flow from the isolated perfused pig liver // Gastroenterology. 1967. V. 53. P. 412.
320. Harrison's Principal of Internal Medicine Eds. Isselbacher K.J., et al., Thirteenth Edition., McGraw-Hill Inc., 1994. 2487 P.
321. Harrison's Principals of Internal Medicine // eds K.J.Isselbacher ct al, 13th edition, McGraw-Hill, Inc. New York et al. 1994. V. 2. 1906 p.
322. Hashiguchi Y, Molina PE., Dorton S, McNurlan MA, Garlick P.J., Reddy D., Abumrad N.N. Central opiate mu-receptor-mediated suppression of tissue protein synthesis // Am. J Physiol. 1997. V. 273. №3. Pt. 2. P. R920-R927.
323. Hassan A.S., Garwacki S., Dutkiewicz M., Dabrowski J. // Arch Vet Pol. 1992. V. 32. №2. P. 91-99.
324. Hawes B.E., Graziano M.P., Lambert D.G. Cellular actions of nociceptin : transduction mechanisms // Peptides. 2000. V. 21. P. 961-967.
325. Hems R., Ross B.D., Berry M.N., Krebs H.A. Gluconeogenesis in the perfused rat liver // Biochem. J. 1966. V. 101. №2. P. 284-292.
326. Henderson G., McKnight A.T. The orphan opioid receptor and its endogenous ligand-nociceptin/orphanin FQ // Trends Pharmacol. Sci. 1997. V. 26. P. 293-300.
327. Hendry S.H., Jones E.G., de Felipe J., Schmechel D., Brandon C., Emson P.C. Neuropeptide-containing neurons of the cerebral cortex are also GABAergic // Proc Natl Acad Sci USA. 1984. V. 81. P. 6526-6530.
328. Heuman D.M., Vlancenic Z.R., Pandak W.M., Hylemon P.B., Kim T.S., Lillienau J., Hofmann A.F. Effect of cholylsarcosine on hepatic cholesterol and bile acid synthesis and bile secretion in rats // Gastroenterology. 1992 .V. 103. №5. P. 1641-1648.
329. Higgins G.A., Sills T.L., Tomkins D.M., Sellers E.M., Vaccarino F.J. Evidence for the contribution of CCKB receptor mechanisms to individualdifferences in amphetamine-induced locomo-tion // Pharmacol Biochem Behav. 1994. V. 48. P. 1019-1024.
330. Hill D.R., Campbell N.J., Shaw T.M., Woodruff G.N. Autoradiographic localization and biochemical characterization of peripheral type CCK receptors in rat CNS using highly selec-tive nonpeptide CCK antagonists // J Neurosci. 1987. V. 7. P. 2967-2976.
331. Hill D.R., Shaw T.M., Graham W., Woodruff G.N. Autoradiographical detection of cholecystokinin-A receptors in primate brain using 1251-bolton hunter CCK-8 and 3H-MK-329//J. Neurosci. 1990. V. 10. P. 1070-1081.
332. Hirata K., Nathanson M.H. Bile duct epithelia regulate biliary bicarbonate excretion in normal rat liver// Gastroenterology. 2001. V. 121(2). P. 396-406.
333. Ho M., Corbett A.D., McKnight A.T. Characterization of the ORL(l) receptor on adrenergic nerves in the rat anococcygeus muscle. // Br J Pharmacol. 2000. V. 131. №2. P. 349-355.
334. Hoebel B.G. Integrative peptides // Brain Res Bull. 1985. V. 4. №6. P. 525528.
335. Hofman A.F. in The Liver: Biology and Pathobiology (Arias I.M., Boyer J.L., Fausto N., Jacoby W.V., Schachter D.A., Shafritz D.A., eds), 3rd Ed., Raven Press. New York. 1994. P. 677-718.
336. Hofmann A.F. Bile acids: the good, the bad and the ugly. // News Physiol Sci. 1999. V. 14. P. 24-29.
337. Hokfelt T., Blacker D., Broberger C., Herrera-Marschitz M., Snyder G., Fisone G., Cortes R., Morino P., You Z.B., Ogren S.O. Some aspects on the anatomy and function of central cholecystokinin systems // Pharmacol Toxicol. 2002. V. 91(6). P. 382-386.
338. Hokfelt T., Millhorn D., Seroogy K., Tsuruo Y., Ceccatelli S., Lindh B., et al. Coexistence of peptides with classical neuro-transmitters // Experientia. 1987. V. 43. P. 768-780.
339. Hokfelt T., Rehfeld J.F., Skirboll L.R., Ivemark B., Goldstein M., Markey K. Evidence for coexistence of dopamine and CCK in meso-limbic neurones // Nature. 1980. V. 285. P. 476-478.
340. Holland L.N., Goldstein B.D. Examination of tonic nociceptive bahavior using a method of substance Preceptor desensitization in the dorsal horn // Pain. 1994.V. 56. №3. P. 339-346.
341. Hong W., Werling L.L. Evidence that the sigma(l) receptor is not directly coupled to G proteins // Eur J Pharmacol. 2000. V. 408(2). P. 117-125.
342. Hooiveld G.J., van Montfoort J.E., Meijer D.K., Muller M. Function and regulation of ATP-binding cassette transport proteins involved in hepatobiliary transport. // Eur J Pharm Sci. 2001. V. 12. P. 525-543.
343. Hoyle G. Neurotransmitters, neuromodulators and neurohormones Neurobiology. Current comparative approaches // Eds. Gilles R., Balthazart J., Berlin, Heidelberg, New York, Tokio 1985. P. 264-279.
344. Huang C., Wang Y., Chang J.K., Han J.S. Endomorphin and p-opioid receptors in mouse brain mediate the analgesic effect induced by 2 Hz but not 100 Hz electroacupuncture stimulation // Neurosci Lett. V. 294. 2000. P. 159162.
345. Hubner C., Stremmel W., Elsing C. Sodium hydrogen exchange type 1 and bile ductular secretory activity in the guinea pig // Hepatology. 2000. V. 31. P. 562-571.
346. Hughes J., Smith T.W., Kosterlitz H.W. et al Identification of two related pentapeptides from the brain with potent agonist activity // Nature. 1975. №5536. P. 577-579.
347. Hurwitz A, Looney G, Sullins M, Ben-Zvi Z. Hepatobiliary effects of morphine are mediated in the brain. // Hepatology. 1990. V. 12. №6. P. 14061412.
348. Huston J.P., Schildein S., Gerhardt P., Privou C., Fink H., Hasenohrl R.U. Modulation of memory, reinforcement and anxiety parame-ters by intraamygdala injection of cholecystokinin-fragments BOC-CCK-4 and CCK-8S // Peptides. 1998. V. 19. P. 27-37.
349. Ingram S.L., Williams J.T. Opioid inhibition of Ih via adenylylcyclase // Neuron. 1994. V. 13 №1. P. 179-186.
350. Ingram S.L., Williams J.T. Opioid inhibition of Ih via adenylylcyclase // Neuron. 1994. V. 13. №1. P. 179-186.
351. Ip N.Y., Zigmond R.E. Synergistic effects of muscarinic agonists and secretin or vasoactive intestinal peptide on the regulation of tyrosine hydroxylase activity in sympathetic neurons // J Neurobiol. 2000. V. 42. P. 1421.
352. Isakova O.L., Sepetov N.F., Bespalova Z.D., Bushuev V.N., Vinogradov V.A. Study of peptide degradation in the serum by 1H-NMR // Bioorg Khim. 1986. V. 12(1). P. 106-111.
353. Ishihara T., Nakamura S., Kaziro Y., Takahashi T., Takahashi K., Nagata S. Molecular cloning and expression of a cDNA encoding the secretin receptor // EMBOJ. 1991. V. 10. P. 1635-1641.
354. Ishii M., Vroman B., LaRusso N.F. Isolation and morphological characterization of bile duct epithelial cells from normal rat liver // Gastroenterology. 1989. V. 97. P. 1236-1247.
355. Itoh S., Katsuura G., MaedaY., Caerulein and cholecystokinin suppress beta -endorphin-induced analgesia in rats // Eur. J. Pharmacol. 1982. V. 80. P. 421425.
356. Jacquemin E., Dumont M., Mallet A., Erlinger S. Ursodeoxycholic acid improves ethinylestradiol-induced cholestasis in the rat // Eur J Clin Invest. 1993. V. 23. №12. P. 794-802.
357. Jacquemin E., Hagenbuch B., Stieger B., Wolkoff A.W., Meier P.J. Expression cloning of a rat liver Na+-independent organic anion transporter. // Proc Natl Acad Sci USA. 1994. V. 91. P. 133-137.
358. Janecka A, Fichna J, Janecki T. Opioid receptors and their ligands // Curr. Top. Med. Chem. 2004. №1. P. 1-17.
359. Jean P.A., Bailie M.B., Roth R.A. 1-naphthylisothiocyanate-induced elevation of biliary glutathione // Biochem Pharmacol. 1995. V. 49. №2. P. 197202.
360. Jenckc F., Moreau J.L., Martin J.R. at al. Orphanin FQ acts as an anxiolytic to attenuate behavioral responses to stress // ProcNatl Acad Sci USA. 1997. V. 94. P. 14854-14858.
361. Jensen D.M., Cheng S., Kovacs TOG A controlled study of ranitidine for the prevetion of recurrent haemorrhage from duodenal ulcer //N Engl J Med. 1994. V. 330. P. 382-386.
362. Jensen R.T. Involvement of cholecystokinin/gastrin-related peptides and their receptors in clinical gastrointestinal disorders // Pharmacol Toxicol. 2002. V. 91(6). P. 333-350.
363. Kaiser M.J., Tiegs G., Neuhuber W. Close apposition of dynorphin-positive nerve fibres to lymphocytes in the liver suggests opioidergicneuroimmunomodulation. // Histochem Cell Biol. 2003. V. 120. №3. P. 213221.
364. Kaminski D.L., Deshpande Y.G. Effect of somatostatin and bombesin on secretin-stimulated ductular bile flow in dogs // Gastroenterology. 1983. V. 85. P. 1239-1247.
365. Kaneko S., Yuasa J., Takahashi H., Satoh M. Functional expression of Ca2+-mobilizing opioid receptors in Xenopus oocytes injected with rat brain mRNA // Brain Res Mol Brain Res. 1994. V. 22. №1-4. P. 69-75.
366. Kania, Brikas, BuEno, Fioramonti, Zaremba-Rutkowska. The evaluation of the role of CCK in the opioid modulation of the motility of the gastrointestinal tract in sheep // Journal of Veterinary Pharmacology & Therapeutics. 1999. V. 22. Is. 2. P. 153.
367. Kanno N., LeSage G, Glaser S, Alpini G. Regulation of cholangiocyte bicarbonate secretion. // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2001. V. 281. P. G612-G625.
368. Kanno N., LeSage G., Glaser S., Alvaro D., Alpini G. Functional heterogeneity of the intrahepatic biliary epithelium // Hepatology. 2000. V. 31. P. 555-561.
369. Kastin A.J., Stephens E., Ehrensing R.H., Fischman A.J. Tyr-MIF-I acts as an opiate antagonists in the tail flick test // Pharmacol. Biochem. Behav. 1984. V.21.P. 937-941.
370. Kato A., Gores G.J., LaRusso N.F. Secretin stimulates exocytosis in isolated bile duct epithelial cells by a cyclic AMP-mediated mechanism // J Biol Chem. 1992. V. 267. №22. P. 15523-15529.
371. Kehlet H. Postoperative ileus // Gut. 2000. V. 47. Suppl. IV. P. iv85-iv86.
372. Keppler D., Arias I.M. Introduction: transport across the hepatocyte canalicular membrane. // FASEB J. 1997. V. 11. P. 15-18.
373. Keppler D., Cui Y., Konig J., Leier I., Nies A. Export pumps for anionic conjugates encoded by MRP genes. // Adv Enzyme Regul. 1999. V. 39. P. 237246.
374. Keppler D., Konig J. Hepatic secretion of conjugated drugs and endogenous substances. // Semin Liver Dis. 2000. V. 20. P. 265-272.
375. Kieffer B.L., Befort K., Gaveriaux-Ruff C., Hirth C.G. Correction.// Proc. Natl Acad. Sei. USA. V. 1994. V. 26. P. 1193.
376. Kieffer B.L., Befort K., Gaveriaux-Ruff C., Hirth C.G. The delta-opioid receptor: Isolation of a cDNA by expression cloning and pharmacological characterization // Proc. Natl Acad. Sei. USA. 1992. V. 26. P. 12048-12052.
377. Kipp H., Arias I.M. Trafficking of canalicular ABC transporters in hepatocytes. //Annu Rev Physiol. 2002. V. 64. P. 595-608.
378. Knuchel J., Krahenbuhl S., Zimmermann A., Reichen J. Effect of secretin on bile formation in rats with cirrhosis of the liver; structure-function relationship // Gastroenterology. 1989. V. 97. P. 950-957.
379. Konig J., Nies A.T., Cui Y., Leier I., Keppler D. Conjugate export pumps of the multidrug resistance protein (MRP) family: localization, substrate specificity, and MRP2-mediated drug resistance. // Biochim Biophys Acta. 1999. V. 1461. P. 377-394.
380. Koyanagawa H., Musha T., Kanda A., Kimura T., Satoh S. Inhibition of vagal transmission by cardiac sympathetic nerve stimulation in the dog: possible involvement of opioid receptor. // J Pharmacol Exp Ther. 1989. V. 250. №3. P. 1092-1096.
381. Kozlova M., Kalentchuk V. Stimulatory effect of opioid peptides and naloxone on rat spinal cord cells in primary dissociated culture // Int J Dev Neurosci. 1994. V. 12(5). P. 507-515.
382. Krowicki Z.K., Kapusta D.R., Hornby P.J. Orphanin FQ/nociceptin, and Phe1\j/(CH2-NH)Gly2. nociceptin (1-13)-NH2 stimulate gastric motor function in anaesthetized rats // Br J Pharmacol. V. 130. 2000. P. 1639-1645.
383. Kullak-Ublick G.A. Regulation of organic anion and drug transporters of the sinusoidal membrane. //J Hepatol. 1999. V. 31. P. 563-573.
384. Kullak-Ublick G.A., Stieger B., Hagenbuch B., Meier P.J. Hepatic transport of bile salts. // Semin Liver Dis. 2000. V. 20. P. 273-292.
385. Kuriata A.V. The functional status of the sympathoadrenal system in hypertension patients being treated with captopril and dalargin // Lik Sprava. 1999. №6. P. 23-27.
386. Kuribaba H., Uchihashi Y. Interactions of opioids with caffeine: evaluation by ambulatory activity in mice // J Parm Pharmacol. 1994. V. 46. №2. P. 141144.
387. LaBuda C.J., Sora I., Uhl G.R., Fuchs P.N. Stress-induced analgesia in p-opioid receptor knockout mice reveals normal function of the 8-opioid receptor system // Brain Res. V. 869. 2000. P. 1-5.
388. Lai C.-C., Wu S.Y., Chen C.-T., Dun N.J Nociceptin inhibts rat sympathetic preganglionic neurons in situ and in vitro // Amer J Physiol Regul Integr Comp Physiol. V. 278. 2000. P. R592-R597.
389. Lammert F., Cohen D.E., Paigen B., Carey M.C., Beier D.R. The gene encoding the multispecific organic anion transporter (Cmoat) of the hepatocyte canalicular membrane maps to mouse chromosome 19. // Mamm Genome. 1998. V. 9. P. 87-88.
390. Landmann L. Cholestasis-induced alterations of the trans- andparacellular pathways in rat hepatocytes // Histochem Cell Biol. 1995. V. 103. №1. P. 3-9.
391. LaRusso N.F., Ishii M., Vroman B.T. The ins and outs of membrane movement in biliary epithelia // Trans Am Clin Climatol Assoc. 1991. V. 102. P. 245-259.
392. Laugwitz K.-L., Offermanns S., Spicher K., Schultz G. |UL and 5 opioid receptors differentially couple to G protein subtypes in membranes of human neuroblastoma SH-SY5Y cells//Neuron. 1993. V. 26. P. 233-242.
393. Lautt W.W., Carroll A.M. Evaluation of topical phenol as a means of producing autonomic denervation of the liver // Can. J Physiol. Pharmacol. 1984. V. 62. №7. P. 849-853.
394. Lazaridis K.N., Pham L., Vroman B., de Groen P.C., LaRusso N.F. Kinetic and molecular identification of sodium-dependent glucose transporter in normal rat cholangiocytes // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1997. V. 272. P. G1168-G1174.
395. Lebed'ko O.A., Timoshin S.S. Effects of opiate receptor ligands on DNA synthesis in tracheal epitheliocytes and smooth muscle cells of newborn albino rats // Bull Exp Biol Med. 2001. V. 131 (2). P. 169-171.
396. Lee J., Boyer J.L. Molecular alterations in hepatocyte transport mechanisms in acquired cholestatic liver disorders. // Semin Liver Dis. 2000. V. 20. P. 373384.
397. Lee J.W.M., Joshi S., Chan J.S.C., Wong Y.H. Differential coupling of fi-, 8 -, and k-opioid receptors to Ga 16 -mediated stimulation of phospholipase C. J. Neurochem. 1998. V. 26. P. 2203-2211.
398. Lenzen R., Alpini G., Tavoloni N. Secretin stimulates bile ductular secretory activity through the cAMP system // Am J Physiol. 1992. V. 263. №4. Pt. l.P. G527-532.
399. Lenzen R., Stark P.,Kolb-Bachoven V., Strohmeyer G. Glucagon effects on intracellular proteolysis and pericanalicular location of hepatocyte lysosomes in isolated perfused guinea pig livers // Hepatology. 1995. V. 21. №5. P. 14221228.
400. Lenzen R., Tavoloni N. Glucagon induces biliary protein excretion in guinea pigs//Am J Physio.l 1993. V. 264. №5. Pt. l.P. G961-966.
401. Leri F., Franklin K.B.J. Diazepam modifies the effect of pedunculopontine lesions on morphine but not on amphetamine conditioned place preference // Behav Brain Res. V. 117. 2000. P. 21-27.
402. Levine R.A., Hall R.C. Cyclic AMP in secretin choleresis. Evidence for a regulatory role in man and baboons but not in dogs // Gastroenterology. 1976. V. 70. P. 537-544.
403. Li G.C., Yuan C.H., Cheng Y., Liu Y.F. Oddi sphincter function after canine auto-pancreas transplantation with bladder drainage // World J Gastroenterol. 2003. V. 9(12). P. 2849-2852.
404. Li J.P., Lee K.Y., Chang T.M., Chey W.Y. MEK inhibits secretin release and pancreatic secretion: roles of secretin-releasing peptide and somatostatin // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2001. V. 280(5). P. G890-G896.
405. Li L., Lee T.K., Meier P.J., Ballatori N. Identification of glutathione as a driving force and leukotriene C4 as a substrate for oatp 1, the hepatic sinusoidal organic solute transporter.//J Biol Chem. 1998. V. 273. P. 16184-16191.
406. Li L., Meier P.J., Ballatori N. 0atp2 mediates bidirectional organic solute transport: a role for intracellular glutathione. // Mol Pharmacol. 2000. V. 58. P. 335-340.
407. Li R., Xue-guang Zhu, Jian-de Han, Cui-ting Huang Role of monoconjugated bilirubin // Clin Med J. 1992. V. 105. №8. P. 641-646.
408. Li Y., Owyang C. Endogeneus cholecystokinin stimulates pancreatic enzyme secretion via vagal afferent pathway in rats // Gastroenterology. 1994. V. 107. №2. P. 525-531.
409. Lim A., Oei T., Funder J. Prolonged foot-shock induced analgesia: glucocorticoids and non-pituitary opioids are involved // Neuroendosrinology. 1983. V. 37. №1. P. 48-51.
410. Lin B , Waterman R , Lippton H. Nociceptin receptor activation produces nitric oxide-mediated systemic hypotension // Life Sci. 2000. V. 66. P. PL 99-PL104.
411. Lindefors N., Linden A., Brene S., Sedvall G., Persson H. CCK peptides and mRNA in the human brain // Prog. Neurobiol. 1993. V. 40. P. 671-690.
412. Linscheer W.G., Atreyee B.,UmaK.M., John W., Sandor N., Jyotirmoy N. Lovastatin induced synthesis of cholesterol, which acts as a secretagogue of biliary phospholipids in rats // Am J Physiol. 1995. V. 268. №2. Pt. 1. P. G242-250.
413. Liu B.H., Mo P., Zhang S.B. Effects of mu and kappa opioid receptor agonists and antagonists on contraction of isolated colon strips of rats with cathartic colon // World J Gastroenterol. 2004. V. 10. №11. 1672-1674.
414. Liu Y., Hyde J.F., Vore M. Prolactin regulates maternal bile secretory function post partum // J Pharmacol Exp Ther. 1992. V. 261. №2. P. 560-566.
415. Lloreus-Cortes C., Schwartz J.C. Changes in turnover of cerebral monoamines following inhibition of enkephalin metabolism by thiorphan and bestatin // Eur J Pharmacol. 1984. V. 104. P. 369-374.
416. Lodge D.J., Lawrence A.J. Comparative analysis of the central CCK system in Fawn Hooded and Wistar Kyoto rats: extended localisation of CCK-A receptors throughout the rat brain using a novel radioligand // Regul Pept. 2001. V. 99(2-3). P. 191-201.
417. Loffeld RJLF Treatment of duodenal ulcer disease // Eur J Gastroenterol Hepatol. 1993. v5. P. 969-971.
418. Loh Y.P., Maldonado A., Zhang C., Tam W.H., Cawley N. Mechanism of sorting proopiomelanocortin and proenkephalin to the regulated secretory pathway of neuroendocrine cells // Ann N Y Acad Sci. 2002. V. 971. P. 416425.
419. Lomniczi A., Mastronardi C.A., Faletti A.G., Seilicovich A., De Laurentiis A., McCain S.M., RettoriV. Inhibitory pathways and the inhibition of luteinizing hormone-relaeasing hormone release by alcohol // PNAS. 2000. V. 97. P. 2337-2342.
420. Loose M.D., Kelly M.J. Opioids acts at ^.-receptors to hyperpolarizearcuate neurons via an inwardly rectifying potassium conductance // Brain Res. 1990.V. 519. P. 15-23.
421. Lotti V.J., Chang R.S.L. A new potent and selective non-peptide gastrin antagonist and brain cholecystokinin receptor (CCK-B) ligand: L-365,260 // Eur J Pharmacol. 1989. V. 162. P. 273-280.
422. Lundbland J.R., Roberts J.L. Regulation of pro-opiomelanocortin gene expression in the pituitary // Endocrinol Rev. 1988. V. 9. P. 135.
423. Magnusson I. Anticholeretic effects of substance P and somatostatin // Acta Chir Scand Suppl. 1984. V. 521. P. 1-57.
424. Magnusson I., Thulin L., Einarsson K., Bergstrom K. Effects of substance P and somatostatin on taurocholate-stabilized and CCK- or secretin-induced choleresis in the anesthetized dog // Scand J Gastroenterol. 1984. V. 19. P. 1007-1014.
425. Makogon N.V., Alexeeva I.N. Xenogeneic antibodies against hepatocyte plasma membranes supress bile secretion in rats // Exp Toxicol Patol. 1993. V. 45. №4. P. 211-216.
426. Malinowska B., Kozlowska H., Berger, Schliker E. Acetyl-RYYRIK-NH2 is a highly efficacious OP4 receptor agonist in the cardiovascular system of anaesthetized rats // Peptides. 2000. V. 21. P. 1875-1880.
427. Marinelli R.A., Pham L.D., Tietz P.S., LaRusso N.F. Expression of aquaporin-4 water channels in rat cholangiocytes // Hepatology. 2000. V. 31. P. 1313-1317.
428. Marinelli R.A., Roma M.G., Pellegrino J.M., Rodrigues-Garay E.A. Taurolithocholate-induced ingibition of biliary lipid and protein excretion in the rat// Biochim. Biophys Acta. 1992. V. 1125. №1. P. 44-48.
429. Marinelli R.A., Tietz P.S., Pham L.D., Rueckert L., Agre P., LaRusso N.F. Secretin induces the apical insertion of aquaporin-1 water channels in rat cholangiocytes // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1999. V. 276. P. G280-G286.
430. Marinelli RA, Roma MG, Pellegrino JM, Rodriguez Garay EA. Taurolithocholate-induced inhibition of biliary lipid and protein excretion in the rat. Biochim Biophys Acta. 1992 1125(l):44-48.
431. Marks D.L., La Russo N.F., McNiven M.A. Isolation of the microtubule-vesicle motor kinesin from rat liver : selective inhibition by cholestatic bile acids// Gastroenterology. 1995. V. 108. №3. P. 824-833.
432. Martinez J. Peptide hormones as prohormones. Processing, biological activity, phermacology // Ed Martinez J., New York Chichester et al., 1989. 354 P.
433. Martinez Pinero M.G., Milanez M.V., Vargas M.L. Modulation by catecholamine of hypothalamus-pituitary-adrenocortical (HPA) axis activity in morphine tolerance and withdrawal // Gen Pharmacology. 1994. V. 25. №1. P. 187-192.
434. Martinez-Anso E., Castillo J.E., Diez J., Medina J.F., Prieto J. Immunohistochemical detection of chloride/bicarbonate anion exchangers in human liver. //Hepatology. 1994. V. 19. P. 1400-1406.
435. Masiuk T.V., Vesel'skii S.P., Masiuk A.I. Effect of enkephalins on the liver secretory function. Article in Russian // Ross Fiziol Zh Im I M Sechenova. 1998. V. 84(4). P. 399-405.
436. Masuda M., Tomita H., Okubo K., Miyasaka K. Vagal efferent nerve-dependent inhibitory action of pancreatic polypeptide and peptide YY in conscious rats: comparison with somatostatin // J Auton Nerv Syst. 1994. V. 50. №2. P. 131-138.
437. Matheson H.B., Story J.A. Dietary psyllium hydrocolloid and pectin increase bile acid pool size and change bile acid composition in rats // J nutr. 1994. V. 124. №8. P. 1161-1165.
438. Matsunura M., Shimizu I., Ohura M., Mori H., Saito Sh. Effects of bile salts on plasma concentration of P-endorphin-like immunoreactivity in men // Digest Dis Sci. 1988. V. 33. №6. P. 692-696.
439. Matyjek R., Herzig K.H., Kato S., Zabielski R. Exogenous leptin inhibits the secretion of pancreatic juice via a duodenal CCKl-vagal-dependent mechanism in anaesthetized rats // Regul Pept. 2003. V. 114(1). P. 15-20.
440. Mayer P., Schulzeck S., Kraus J., Zimprich A., Hollt V. Promoter region and alternatively spliced exons of the rat mu-opioid receptor gene // J. Neurochem. 1996. V. 26. P. 2272-2278.
441. McFadzean I., Mullaney I., Brown D.A., Milligan G. Antibodies to the GTP binding proteins G0 antagonize noradrenalin-induced calcium current inhibitionin NG108-15 hybrid cells//Neuron. 1989.V.3.P. 177-182.
442. McGill J.M., Basavappa S., Gettys T.W., Fitz J.G. Secretin activates CI" channels in bile duct epithelial cells through a cAMP-dependent mechanism // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1994. V. 266. P. G731-G736.
443. McKenzie F.R., Milligan G. 5-Opioid-receptor-mediated inhibition of adenylate cyclase is transduced specifically by the guanine-nucleotide-binding protein Gi2 // Biochem. J. 1990. V. 26. P. 391-398.
444. Medical Uses of Statistics // Ed. Bailar J.C., Mosteller F., 2d edition, 1992, 480 P.
445. Mehta C.S., Strada S.J. Effects of acute and continuous administration of morphine on the cyclic AMP responce induced by norepinephrine in rat brain slices// Life Sci. 1994. V. 55. №1. P. 35-42.
446. Mehta C.S., Strada S.J.Effects of acute and continuous administration of morphine on the cyclic AMP responce induced by norepinephrine in rat brain slices//Life Sci. 1994. V. 55. №1 P. 35-42.
447. Mei L., Pu S.F., Han J.S. Effect of electroacupuncture to brane by different frequences on the opioid inhibition to cardiovascular activity in the spinal cord of rats// Neuropeptides. 1994. V. 26. №4. P. 221-224.
448. Meier P,J., Knickelbein R.G., Moseley R.H., Dobbins J.W., Boyer J.L. Evidence for carrier-mediated chloride/bicarbonate exchange in canalicular rat liver plasma membrane vesicles. //J Clin Invest. 1985. V. 75. P. 1256-1263.
449. Meier P.J. The bile salt secretory polarity of hepatocytes // J Hepatol. 1989. V. 9. №1. P. 124-129.
450. Meier P.J., Eckhardt U., Schroeder A., Hagenbuch B., Stieger B. Substrate specificity of sinusoidal bile acid and organic anion uptake systems in rat and human liver//Hepatology. 1997. V. 26. P. 1667-1677.
451. Meier P.J., Knickelbein R.G., Moseley R.H., Dobbins J.W., Boyer J.L. Evidence for carrier-mediated chloride/bicarbonate exchange in canalicular rat liver plasma membrane vesicles. // J Clin Invest. 1985. V. 75. P. 1256-1263.
452. Meier P.J., Stieger B. Bile salt transporters. // Annu Rev Physiol. 2002. V. 64. P. 635-661.
453. Meier P.J., Stieger B. Molecular mechanisms in bile formation. // News Physiol Sci. 2000. V. 15. P. 89-93
454. Meissner W., Schmidt U., Hartmann M., Kath R., ReinhartK. Oral naloxone reverses opioid-associated constipation // Pain. 2000. V. 84. P. 105-109.
455. Mello N.K., Mendelson J.H., KellyM. Acute effects of nalmefene on LH, prolactin, and testosterone in male rhesus monkeys // Pharm Biochem Behav. 2000. V. 66. P. 275-285.
456. Mercer L.D., Beart P.M. Histochemistry in rat brain and spinal cord with an antibody directed at the cholecystokininA recep-tor // Neurosci Lett. 1997. V. 225. P. 97-100.
457. Mercer L.D., Beart P.M., Home M.K., Finkelstein D.I., Carrive P., Paxinos G. On the distribution of cholecystokinin B receptors in monkey brain // Brain Res. 1996. V. 738. P. 313-318.
458. Meunier J.C., Mollereau C., Toll L. et al. Isolation and structure of the endogenous agonist of opioid receptor-like ORL1 receptor // Nature. 1995. V. 377. P. 532-535.
459. Micali B., Albanese V., Artemisia A., Venuti A. Action of naloxone on vagally-induced gastric acid secretion in man: Possible implication of enkephalinergic system in DU // Scand J Gastroenterol. 1982. V. 17. P. 310.
460. Michel K., Reiche D., Schemann M. Projections and neurochemical coding of motor neurones to the circular and longitudinal muscle of the guinea pig gastric corpus // Pflugers Arch- Eur J Physiol. 2000. V. 440. P. 393-408.
461. Minoia P., Sciorsci R.L. Metabolic control through L calcium channel, PKC and opioid receptors modulation by an association of naloxone and calcium salts // Curr Drug Targets Immune Endocr Metabol Disord. 2001. V. 1(2). P. 131-137.
462. Mishchenko M.V. The application of regional lymphatic stimulation in the comprehensive treatment of purulent wounds // Klin Khir. 2000. №2. P. 25-28.
463. Misra S., Ujhazy P., Gatmaitan Z., Varticovski L., Arias I.M. The Role of Phosphoinositide 3-Kinase in Taurocholate-induced Trafficking of ATP-dependent Canalicular Transporters in Rat Liver // J.Biol.Chem. 1998. V. 273. №41. P. 26638-26644.
464. Miyasaka K., Funakoshi A., Shikado F., Kitani K. Stimulatory and inhibitiry effects of bile salts on rat pancreatic secretion // Gastroenterology. 1992. V. 102. №2. P. 598-604.
465. Miyasaka K., Tunakoshi A. Involvement of gene expressions of cholecystokinin and secretin in luminal feedback regulation in conscious rats // Pancreas. 1995. V. 10. №2. P. 200-203.
466. Mizutani S., Miyata M., Izukura M., Tanaka Y., Matsuda H. Role of bile and trypsin in the release of cholecystokinin in humans // Pancreas. 1995. V. 10. №2. P. 194-199.
467. Mogil J.S., Pasternak G.W. The molecular and behavioral pharmacology of the orphanin FQ/nociceptin peptide and receptor family // Pharmacol Rev. 2001. V. 53. P. 381-415.
468. Moisés H.C., Macdonald R.L. Mu-opioi-receptor mediated reduction of N-type neuronal calcium current occurs via a G0-type GTP-binding protein // Soc Neurosci Abstr. 1992. V. 18. P. 1271.
469. Moisés H.C., Rusin K.I., Macdonald R.L. p-Opioid receptor-mediated reduction of neuronal calcium current occurs via a G0-type GTP-binding protein //J. Neurosci. 1994. V. 26. P. 3842-3851.
470. Moisés H.C., Rusin K.I., Macdonald R.L. p-opioid receptor-mediated reduction of neuronal calcium current occurs via G0-type GTP-binding proteins //J Neurosci. 1994. V. 14. №6. P. 3842-3851.
471. Mollereau C., Mouledous L. Tissue distribution of the opioid receptor-like (ORL1) receptor//Peptides. 2000. V. 21. P. 907-917.
472. Moran T., Robinson P., Goldrich M.S., McHugh P. Two brain cholecystokinin receptors: implications for behavioural actions // Brain Res. 1986.V. 362. P. 175-179.
473. Moran T.D., Abdulla F.A., Smith P.A Cellular neurophysiological actions of nociceptin/orphanin FQ // Peptides. 2000. V. 21. P. 969-976.
474. Moran T.H., Robinson P.H., Goldrich M.S., McHugh P.R. Two brain cholecystokinin receptors: implications for behavioral actions // Brain Res. 1986. V. 362. P. 175-179.
475. Moran T.H., Schwartz G.J. Neurobiology of cholecystokinin // Crit Rev Neurobiol. 1994. V. 9. P. 1-28.
476. Muller M., Jansen P.L.M. Molecular aspects of hepatobiliary transport. // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1997. V. 272. P. G1285-G1303.
477. Muller M., Jansen P.L.M. The secretory function of the liver: new aspects of hepatobiliary transport. //J Hepatol. 1998. V. 28. P. 344-354.
478. Murphy R., Rurness J.B., Beardsley A.M., Costa M., Characterization of substance P-like immunoreactivity in peripheral sensory nerves and enteric nerves by high pressure liquid chromatography and radioimmunoassay // Reg Pept. 1982. V. 4. P. 203-212.
479. Murthy K.S.,Makhlouf G.M. Opioid p , 5, and k receptor-induced activation of phospholipase C-p-3 and inhibition of adenylyl cyclase is mediated by Gj2 and G0 in smooth muscle //Mol. Pharmacol. 1996. V. 26. P. 870-877.
480. Musha T., Satoh E., Koyanagawa H., Kimura T., Satoh S. Effects of opioid agonists on sympathetic and parasympathetic transmission to the dog heart. // J Pharmacol ExpTher. 1989. V. 250. №3. P. 1087-1091.
481. Mutt V., Said S.I. Structure of the porcine vasoactive intestinal octacosapeptide. The amino-acid sequence. Use of kallikrein in its determination // Eur J Biochem. 1974. V. 42. P. 581-589.
482. Nair N.P.V, Lai S., Bloom D.M. Cholecystokinin peptides, dopa-mine and schizophrenia — a review // Prog Neuropsychopharma-col Biol Psychiatry 1985. V. 9. P. 515-524.
483. Nakai T., Katagiri K., Hoshino M., Hayakawa T., Ohiwa T. Microtubtleindependent choleresis and anticholestatic action of tauroursodeoxycholate in colchicine treated rat liver // Biochem J. 1992. V. 288. Pt. 2. P. 613-617.
484. Nakajima T. Physiologically active peptides // Eds. Nakajima T., Yanaichara N., Myazawa t., Tokyo, 1988. 156 P.
485. Nano J.-L., Fourne S.I., Rampal P. Characterization of 8-opioid receptors and effect of enkephalins on IRD 98 rat epithelial intestinal cell line // Pflugers Arch- Eur J Physiol. V. 439. 2000. P. 547-554.
486. Naruse S., Ito O., Kitagawa M., Ishiguro H., Nakajima M., Hayakawa T. Effects of PACAP/VIP/secretin on pancreatic and gastrointestinal blood flow in conscious dogs // Ann NY Acad Sci. 1998. V. 865. P. 463-465.
487. Nassar C.F., Abdallah L.E., Atallah J.B. Role of motilin in the control of intestinal absorption, and gasstric and biliary secretions in the rat // Regul Pept. 1994. V. 50. №3. P. 291-295.
488. Nathanson M.H., Boyer J.L. Mechanisms and regulation of bile secretion // Hepatology. 1991. V. 14. P. 551-566.
489. Nathanson M.H., Burgstahler A.D., Mennone A., Boyer J.L. Characterization of cytosolic Ca2+ signaling in rat bile duct epithelia // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1996. V. 271. P. G86-G96.
490. Nathanson M.H., Gautam A., Bruck K.,Isales C.M., Boyer J.L. Effects of Ca+ agonists on cytosolic Ca+ in isolated hepatocytes and on bile secretion in the isolated perfused rat liver // Hepatology. 1992. V. 15. №1. P. 107-116.
491. Nathanson M.H., Gautam A., Ng O.C., Bruck R., Boyer J.L. Hormonal regulation of paracellular permeability in isolated rat hepatocyte couplets // Am J Physiol. 1992. V. 262. №6. Pt. 1. P. G 1079-1086.
492. Nielsen S., Smith B.L., Christensen E.I., Agre P. Distribution of the aquaporin CHIP in secretory and resorptive epithelia and capillary endothelia // Proc Natl Acad Sci USA. 1993a. V. 90. P. 7275-7259.
493. Nielsen S., Smith B.L., Christensen E.I., Knepper M.A., Agre P. CHIP28 water channels are localized in constitutively water-permeable segments of the nephron // J Cell Biol. 1993. V. 120. P. 371-383.
494. Nilsson B., Theodorsson E., Jivegard L., Thune A., Friman S., Slavnik J. VIP-antiserum inhibits fluid secretion by the inflamed gallbladder mucosa // Regul Pept. 1994. V. 49. №3. P. 179-184.
495. Nishi T., Hara H., Hira T., Tomita F. Dietary protein peptic hydrolysates stimulate cholecystokinin release via direct sensing by rat intestinal mucosal cells // Exp Biol Med (Maywood). 2001. V. 226(11). P. 1031-1036.
496. Nishida T., Che M., Gatmaitan Z., Arias I.M., Structure specific inhibition by bile acids of adenosine triphosphate-dependent taurucholate tansport in canalicular embrane vesicles // Hepatology. 1995. V. 21. №4. P. 1058-1062.
497. Noble F., Roques B.P. The role of CCK2 receptors in the homeostasis of the opioid system // Drugs Today (Bare). 2003. V. 39(11). P. 897-908.
498. Noble F., Wank S.A., Crawley J.N., Bradwejn J., Seroogy K.B., Hamon M., et al. International Union of Pharmacology. XXI. Structure, distribution, and functions of cholecystokinin recep-tors // Pharmacol Rev. 1999. V. 51. P. 745781.
499. Noda Y., Mamiya T., Manabe T., Nishi M., Takeshima T. Role of nociceptin systems in learning and memory // Peptides. 2000. V. 21. P. 10631069.
500. Noe B., Hagenbuch B., Stieger B., Meier P.J. Isolation of a multispecific organic anion and cardiac glycoside transporter from rat brain. // Proc Natl Acad Sci USA. 1997. V. 94. P. 10346-10350.
501. Noe J., Steiger B., Meier P. Functional expression of the canalicular bile salt export pump (BSEP) of human liver. // Gastro. 2002. V. 123. P. 1659-1666.
502. North R., Williams J. How do opiates inhibit neurotransmitter release ? // Trends Neurosci. 1983. V. 6. №8. P. 337.
503. Nyberg B., Angelin B., Einarsson K. Somatostatin does not block the effect of vasoactive intestinal peptide on bile secretion in man // Eur J Clin Invest. 1992. V. 22. №1. P. 60-66.
504. Nyberg B., Einarsson K., Sonnenfeld T. Evidence that vasoactive intestinal peptide induces ductular secretion of bile in humans // Gastroenterology. 1989. V. 96. P. 920-924.
505. Nyberg B., Sonnenfeld T., Einarsson K. Vasoactive intestinal peptide and secretin: effects of combined and separate intravenous infusions on bile secretion in man // Scand J Gastroenterol. 1991. V. 26. P. 109-118.
506. Offermanns S., Schultz G., Rosenthal W. Evidence for opioid receptor-mediated activation of the G-proteins, G0 and Gj2, in membranes of neuroblastoma x glioma (NG108-15) hybrid cells // J. Biol. Chem. 1991. V. 26. P. 3365-3368.
507. Offermanns S., Simon M.I. Gi5 and Gj6 couple a wide variety of receptors to phospholipase C // J. Biol. Chem. 1995. V. 26. P. 15 175-80.
508. Okanoue T., Ohta M., Takami S., Nagao Y. Morphologic alterations of gap junctions in phalloidin treated rat livers // Bienn Sci Meet and Postgrad Course , Brighton June 3-6 1992: Programme and Abstr /Int Assoc Study Liver-Brighton. 1992. P. 9.
509. Olivecrona H., Ericsson S., Angelin B. Growth hormone treatment does not alter biliary lipid metabolism in healthy adult men // J Clin Endocrinol Metab. 1995. V. 80. №4. P. 1113-1117.
510. Olsen O., Hoist J.J., Schaffalitzky-De-Muckadell O.B. Effects of oleic acid endogenous bile on duodenal secretion of somatostatin in man // Dig Dis Sci. 1992. V. 37. №7. P. 1025-1028.
511. Ookhtens M., Kaplowitz N. Role of the liver in interorgan homeostasis of glutathione and cyst(e)ine//Semin Liver Dis. 1998. V. 18. P. 313-329.
512. Orlova E.A., Komarevtseva I.A. Effect of dalarginum on the level of nitric oxide stable metabolites in rat kidneys during apoptosis activation // Ukr BiokhimZh. 2002. V. 74(6). P. 131-134.
513. Osinski M.A., Brown D.R. Orphanin FQ/nociceptin: a novel neuromodulator of gastrointestinal function? // Peptides. 2000. V. 21. P. 9991005.
514. Ossipov M.H., Lai J, King T, Vanderah T.W., Malan T.P. Jr, Hruby V.J., Porreca F. Antinociceptive and nociceptive actions of opioids // J Neurobiol. 2004. V. 61. №1. P. 126-148.
515. Otsuki M. Pathophysiological role of cholecystokinin in humans // Gastroenterol Hepatol. 2000. V. 15. P. D71-D83.
516. Oude-Elferink R.P.J., Groen A.K. Mechanisms of biliary lipid secretion and their role in lipid homeostasis. // Semin Liver Dis. 2000. V. 20. P. 293-305.
517. Oude-Elferink R.P.J., Jansen P.L. The role of the canalicular multispecific organic anion transporter in the disposal of endo- and xenobiotics. // Pharmacol Ther. 1994. V. 64. P. 77-97.
518. Ovvyang C., Logsdon C.D. New insights into neurohormonal regulation of pancreatic secretion // Gastroenterology. 2004. V. 127(3). P. 957-69.
519. Ozaki N., Sengupta J.N., Gebhart G.F. Differential effects of p-, 5-, and k-opioid receptor agonists on mechanosensitive gastric vagal afferent fibers in the rat // J Neurophysiol. 2000. V. 83. P. 2209-2216.
520. Paik S.H., Camarao G.C., Bauer J.A., Liete P.E., Oliveira E.S., Camargo A.C., Farges R.S. Effects of morphine withdrawal syndrome on endo-oligopeptidase (EC 3.4.22.19) activity // Eur J Pharmacol. 1994. V. 253. №1-2. P. 101-106.
521. Park C.G., Ganguli S.C., Pinon D.I., Hadac E.M., Miller L.J. Cross-chimeric analysis of selectivity of secretin and VPAC(l) receptor activation // J Pharmacol Exp Ther. 2000. V. 295. P. 682-688.
522. Pasternak G.W. Review: pharmacological mechanisms of opioid analgesics //Clin. Neuropharmacol. 1993. V. 16. P. 1-18.
523. Pasternak G.W., Mei J. Molecular cloning and pharmacological characterization of the rat sigmal receptor // Biochem Pharmacol. 2001. V. 62(3). P.349-355.
524. Paxinos G., Watson C. The rat brain in stereotaxic coordinates. N.Y: 1982.
525. Pedrosa M.E., Montero E.F., Nigro A.J. Liver microcirculation after selective denervation. //Microsurgery. 2001. V. 21. №4. P. 163-165.
526. Penn R.B., Pronin A.N., Benovic J.L. Regulation of G protein-coupled receptor kinases // Trends Cardiovasc Med. 2000. V. 10. P. 81-89.
527. Peterson W.L. Prevention of upper gastrointestinal bleeding // N Engl G Med. 1994. V. 330. P. 428-429.
528. Pfeiffer A., Brantl V., Herz A., Emrich H.M. Psychotomimesis mediated by k opiate receptors // Science. 1986. V. 233. P. 774-776.
529. Pfeiffer A., Feuerstein G., Zerbe R.L. Mu-receptors mediate opioid cardiovascular effects at anterior hypothalamic sites through sympath-adrenomedullary and parasympathetic pathways // Endocrinology. 1983. V. 113. №3. P. 929-938.
530. Piros E.T., Charles A.C., Song L., Evans C.J., Hales T.G. Cloned 5-opioidIrecetpors in GH3 cells inhibit spontaneous Ca oscillations, and prolactin release through Kir channel activation // J Neurophysiol. 2000. V. 83. P. 26912698.
531. Piros E.T., Hales T.G., Evans C.J. Functional analysis of cloned opioid receptors in transfected cell lines // Neurochem Res. 1996. V. 21. P. 1277 1285.
532. Pobuts'kyi O.O. Application of synthetic neuropeptides in complex of surgical treatment of acute pancreatitis and its complication // Klin Khir. 2002. №1. P. 26-29.
533. Polak J.M., Bloom S.R. Organisation of the gut peptidergic innervation In: Gut hormones // Eds. Bloom S.R., Polak J.M., Edinburg etc. 1981. P. 487-494.
534. Polidori C., de Caro G., Massi M. The hyperphagic effect of nociceptin/orphanin FQ in rats//Peptides. 2000. V. 21. P. 1051-1062.
535. Pool O., Ferres I., Puig M.M. Diarrhea associated with intestinal inflammation increases the potency of mu and delta opioids on the inhibition of gastrointestinal transit in mice // J Pharmacol Exp Ther. 1994. V. 270. №1. P. 386-391.
536. Porcher C., Jule Y., Henry M. A qualitative, and quantitative study on the enkephalinergic innervation of the pig gastrointestinal tract // The Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 2000. V. 48. P. 333-343.
537. Pratner P.L., McGinn T.M., Erickson L.J., Evans C.J., Loh H.H., Law P.Y. Activity of delta opioid receptors to interact with multiple G-proteins is independent of receptor dennsity // J Biol Chem. 1994. V. 269. №32. P. 2054820553.
538. Pratner P.L., Tsai A.W., Law P.Y. Mu and delta opioid receptor desensitization in un differentiated human neuroblastoma SHSY5Y cells // J Pharmacol Exper Ther. 1994. V. 270. №1. P. 177-184.
539. Przewlocki R., Gramsch Ch., Pasi A. Characterization and localization of immunoreactive dinorphin, alpha-neo-endorphine, met-enkephalin and substance P in human spinal cord // Brain Res. 1983. №280 P. 95-103.
540. Puig M.M., Warner W., Pol O. Intestinal inflammation and morphine tolerance alter the interaction between morphine and clonidine on gastrointestinal transit in mice // Anesthesiology. 2000. V. 93. P. 219-230.
541. Radomirov R., Pencheva N., Stoyneva I., Lazova L. Opioid effects of short enkephalin fragments containing the Gly-Phe sequence on contactile responses of guinea pig ileum // Gen Pharmacol. 1994. V. 25. №2. P. 303-309.
542. Rady J.J., Takemori A.E., Portoghese P.S., Fugimoto J.M. Supraspinal deta receptor subtype activity of heroin and 6-monoacetylmorphine in Swiss Webster mice // Life Sci. 1994. V. 55. №8. P. 603-609.
543. Rehfeld J.F. Immunochemical studies of cholecystokinin: Distribution and molecular heterogeneity of cholecystokinin in the central nervous system and small intestine of man and hog // J. Biol. Chem. 1978. V. 253. P. 4022-4030.
544. Rehfeld J.F., Bungaard J.R., Friis-Hansen L., Goetze J.P. On the tissue-specific processing of procholecystokinin in the brain and gut a short review // J Physiol Pharmacol. 2003. V. 54. Suppl. 4. P. 73-79.
545. Reichel C., Gao B., Van Montfoort J., Cattori V., Rahner C., Hagenbuch B., Stieger B., Kamisako T., Meier P.J. Localization and function of the organic anion-transporting polypeptide oatp2 in rat liver. // Gastroenterology. 1999. V. 117. P. 688-695.
546. Reilly F.D., McCuskey P.A., McCuskey RS. Intrahepatic distribution of nerves in the rat // Anat Rec. 1978. V. 191. P. 55-68.
547. Reinscheid R.K., Nothacker H.-P., Bourson A. et al. A neuropeptide that activates an opioid-like G protein-coupled receptor // Science. 1995. V. 26. P. 792-794.
548. Reisine T., Pasternak G. Opioid analgesics and antagonists. In: Hardman J.G., Limbird L.E., Molinoff P.B., Ruddon R.W., Gilman A.G., eds. Goodman and Gilman's The pharmacological basis of therapeutics, 9th edn. New York: McGraw-Hill. 1996. P. 521-556.
549. Rene E., Danzinger R.G., Hofmann A.F., Nakagaki M. Pharmacologic effect of somatostatin on bile formation in the dog. Enhanced ductular reabsorption as the major mechanism of anticholeresis // Gastroenterology. 1983. V. 84. P. 120129.
550. Ricci G.L., Fevery J. Somatostatin inhibits the effect of secretin on bile flow and on hepatic bilirubin transport in the rat // Gut. 1989. V. 30. P. 1266-1269.
551. Ricci G.L., Michicls R., De-Groote J. Glucagon enhances bile flow, bilirubin uridinediphosphate-glucuronyltransferase activity and biliary bilirubin monoconjugate excretion in the rat // Arch Int Pharmacodyn Ther. 1992. V. 320. P. 93-102.
552. Ricci G.L., Michiels R., Fevery J., De Groote J. Enhancement by secretin of the apparently maximal hepatic transport of bilirubin in the rat // Hepatology. 1984. V. 4(4). P. 651-657.
553. Roberts S., Kuntz S., Gores G., LaRusso N. Regulation of bicarbonate-dependent ductular secretion assessed by lumenal micropuncture of isolated rodent intrahepatic bile ducts // Proc Natl Acad Sci USA. 1993. V. 90. P. 90809084.
554. Roberts S.K., Ludwig J., LaRusso N.F. The pathobiology of biliary epithelia // Gastroenterology. 1997. V. 112. P. 269-279.
555. Roberts S.K., Yano M., Ueno Y., Pham L., Alpini G., Agre P., LaRusso N.F. Cholangiocytes express the aquaporin CHIP and transport water via a channelmediated mechanism // Proc Natl Acad Sci USA. 1994. V. 91. P. 13009-13013.
556. Roberts S.M., Skoulis N.P., James R.C. A centrally-mediated effect of morphine to diminish hepatocellular glutathione. // Biochem Pharmacol. 1987. V. 36. V. 18. P. 3001-3005.
557. Rodrigues A.R.A., Duarte I.D.G. The peripheral antinociceptive effect induced by morphine is associated with ATP-sensitive K+ channels // Br J Pharmacol. 2000. V. 129. P. 110-114.
558. Roerig S.C., Loh H.H., Law P.Y. Identification of three separate guanine nucleotide-binding proteins that interact with the 5-opioid receptor in NG108-15 neuroblastoma x glioma hybrid cells // Mol. Pharmacol. 1992. V. 26. P. 822831.
559. Romanovsky A.A., Shido O., Ungar A.L., Blatteis C.M. Peripheral naloxone attenuates lipopolysaccharide fever in guinea pigs by an action outside the blood-brain-barrier// Am J Physiol. 1994. V. 266. №6. Pt. 2. P. R1824-1831
560. Rotzinger S., Vaccarino F.J. Cholecystokinin receptor subtypes: role in the modulation of anxiety-related and reward-related behaviours in animal models //J Psychiatry Neurosci. 2003. V. 28(3). P. 171-81.
561. Russell J.A., Leng G., Douglas A.J.The magnocellular oxytocin system, the fount of maternity: adaptations in pregnancy // Front Neuroendocrinol. 2003. V. 24(1). P. 27-61.
562. Ryan J.P. Motility of the gallbladder and biliary tree. In: Johnson, LR, ed. Physiology of the Gastrointestinal Tract, 2nd edn. New York: Raven Press. 1987. P. 695 721.
563. Sacerdote P, Limiroli E, Gaspani L. Experimental evidence for immunomodulatory effects of opioids // Adv. Exp. Med. Biol. 2003. V. 521. P. 106-116.
564. Saiani L., Guidotti A. Opiate receptor-mediated inhibition of catecholamine release in primary cultures of bovine adrenal chromaffin cells // J Neurochem. 1982. V. 39. №6. P. 1669-1676.
565. Samovilova N.N., Vinogradov V.A. Subcellular distribution of (+)-3H.SKF 10,047 binding sites in rat liver// Eur J Pharmacol. 1992. V. 225(1). P. 69-74.
566. Samuel I., Zaheer S., Nelson J.J., Yorek M.A., Zaheer A. CCK-A receptor induction and P38 and NF-kappaB activation in acute pancreatitis // Pancreatology. 2004. V. 4(1). P. 49-56.
567. Sapena R., Liu J., Maurice T., Tillement J.P., Papadopoulos V., Morin D., Klouz A. Evidence for sigma-1-like receptors in isolated rat liver mitochondrial membranes // Br J Pharmacol. 2002. V. 135(7). P. 1607-1615.
568. Satlin L.M., Amin V., Wolkoff A. Organic anion transporting polypeptide mediates organic anion/HC03~ exchange. // J Biol Chem. 1997. V. 272. P. 26340-26345.
569. Schafer U., Harhammer R., Boomgaarden M., Sohr R., Ott T., Henklein P., et al. Binding of cholecystokinin-8 (CCK-8) pep-tide derivatives to CCKA and CCKB receptors//J Neurochem. 1994. V. 62. P. 1426-1431.
570. Schaffalitzky de Muckadell O.B. Secretin in plasma: ups and downs // Scand J Clin Lab Invest Suppl. 2001. V. 234. P. 105-108.
571. Schiffmann S.N., Vanderhaeghen J.-J. Distribution of cells containing mRNA encoding cholecystokinin in the rat central nervous system // J. Comp. Neurol. 1991.V. 304. P. 219-233.
572. Schliker E., Morari M. Nociceptin/orphanin FQ nad neurotransmitter release in the central nervous system // Peptides. 2000. V. 21. P. 1023-1029.
573. Schlussman SD, Nyberg F, Kreek MJ. The effects of drug abuse on the stress responsive hypothalamic-pituitary-adrenal axis and the dopaminergic and endogenous opioid systems // Acta Psychiatr Scand Suppl. 2002. V. 412. P. 121-124.
574. Schmidt W.E., Schmitz F. Cellular localization of cholecystokinin receptors as the molecular basis of the periperal regulation of acid secretion // Pharmacol Toxicol. 2002. V. 91(6). P. 351-358.
575. Schroeder J.E., Fischbach P.S., Zheng D., McCleskey E.W., Activation of p.opioid receptors inhibits transient high- and low-threshold Ca^+ currents but spares a sustained current // Neuron. 1991. V. 6. P. 13-20.
576. Schroeder J.E., McClesky E.W., Inhibition of Ca2+ currents by a jii-opioid in a defined subset of rat sensoey neurons //Neorusci. 1993. V. 13. P. 867-873.
577. Schusdziarra V., Schick A., Fuente A., et al Effect of beta casomorphines and analogs on insulin release in dogs // Endocrinology. 1983. V. 112. №3. P. 885-889.
578. Schwartz J.-C. Racecadotril: a new approach to the treatment of diarrhoea // International Journal of Antimicrobial Agents. 2000. V. 14. P. 75-79.
579. Seward E., Hammond C., Henderson G. ^.-opioid receptor-mediated inhibition of the n-type calcium channel current // Proc R Soc Lond Biol. 1991. V. 244. P. 129-135.
580. Shahabi N.A., Daaka Y., McAllen K., Sharp B.M. Delta opioid receptors expressed by stably transfected jurkat cells signal through the map kinase pathway in a ras-independent manner // J Neuroimmunol. 1999. V. 94. №1-2: P. 48-57.
581. Shamburek R.D., Schwartz C.C. Selective composition of biliary phosphatidylcholines is affected by secretion rate but not by bile acid hydrophobicity//J Lipid Res. 1993. V. 34. №11. P. 1833-1842.
582. Sharp B.M. Opioid receptor expression and intracellular signaling by cells involved in host defense and immunity // Adv Exp Med Biol. 2003. V. 521. P. 98-105.
583. Shattuck K.E., Grinnell C.D., Rassin D.K. Biliary amino acid and glutathione secretion in response to amino acid infusion in the isolated rat liver // JPEN J Parenteral Nutr. 1994. V. 18. №2. P. 119-127.
584. Shen K.F., Crain S.M. Antagonists at excitatory opioid receptors on sensory neurons in culture increasepotency and spesificity of opiate analgesies and attenuate development of tolerance/dependence // Brain Res. 1994. V. 636. №2. P. 286-297.
585. Shevchuk V.H., Kostenko S.I., Liashchenko P.S. Effect of dalargin on the bile acid spectrum in human bile // Lik Sprava. 2002. №5-6. P. 81-83.
586. Shian L.R., Lin M.T. Effects of cholecystokinin octapeptide on thermoregulatory responses and hypothalamic neuronal activity in the rat // Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 1985. V. 328. P. 363-367.
587. Shimizu I., Hirota M., Matsumura M., Shima K. Effects of gut hormones on bile acid uptake and release in cultured rat hepatocytes // Gastroenterol Jpn. 1987. V. 22(2). P. 174-178.
588. Shneibner J., Fuchs M., Hormann E., Tauber G., Stange E.F. Biliary cholesterol secretion and bile acid formation in the hamsters: the role of newly synthesized cholesterol // J lipid Res. 1994. V. 35. №4. P. 690-697.
589. Shneibner J., Fuchs M., Schiemann M., Stange E.F. Deoxycholate and cholate modulate the source of cholesterol substrate for bile acid synthesisin the rat // Hepatology. 1995. V. 21. №2. P. 529-538.
590. Simon F.R., Sutherland E.M., Gonzalez M. Regulation of bile salt transport in rat liver: Evidence that increased maximum bile secretory capacityis due to increased cholic asid receptors // J Clin Invest. 1982. V. 70. №2. P. 401-411.
591. Simonson M.S. Endothelins: multifunctional renal peptides // Physiol Rev. 1993. V. 73. P. 375-411.
592. Smart D., Smith G., Lambert D.G. Mu-opioids activate phospholipase C in SH-SY5Y human neuroblastoma cells via calcium-channel opening // Biochem J. 1995. V. 305. P. 577-581.
593. Smith A.P., Lee N.M. Opioid receptor interactions: Local and nonlocal, symmetric and asymmetric, physical and functional // Life Sciences. 2003. V. 73.1s. 15. P. 1873-1893.
594. Smith E.M. Opioid peptides in immune cells // Adv. Exp. Med. Biol. 2003. V. 521. P. 51-68.
595. Smith R., Besser G., Rees L. The effect of surgery on plasma beta-endorphin and methionine-enkephalin //Neurosci Lett. 1985. V. 55. №1. P. 17-21.
596. Snyder S.H. Opiate receptors and beyond: 30 years of neural signaling research // Neuropharmacology. 2004. V. 47. Suppl. 1. P. 274-285.
597. Soroka C.J., Lee J.M., Azzaroli F., Boyer J.L. Cellular localization and up-regulation of multidrug resistance-associated protein 3 in hepatocytes and cholangiocytes during obstructive cholestasis in rat liver. // Hepatology. 2001. V. 33. P. 783-791.
598. Sreedharan S.P., Patel D.R., Xia M., Ichikawa S., Goetzl E.J. Human vasoactive intestinal peptide 1 receptors expressed by stable transfectants couple to two distinct signaling pathways // Biochem Biophys Res Commun. 1994. V. 203. P. 141-148.
599. Stefano G.B. The Mu3 opiate receptor subtype // Pain Forum. 1999. V. 8. P. 206-209.
600. Stefano G.B., Cadet P., Rialas C.M., Mantione K., Casares F., Goumon Y., Zhu W. Invertebrate opiate immune and neural signaling // Adv Exp Med Biol. 2003. V. 521. P. 126-147.
601. Stefano G.B., Scharrer B. Endogenous morphine and related opiates, a new class of chemical messengers // Adv Neuroimmunol. 1994. V. 4. P. 57-68.
602. Stein C. Opioid receptors on peripheral sensory neurons // Adv. Exp. Med. Biol. 2003. V. 521. P. 69-76.
603. Stewart P.E., Holper E.M., Hammond D.L. Delta antagonist and kappa agonist activity of Naltriben evidence for differencial kappa interaction with the deltal and delta2 opioid receptor subtypes // Life Sci. 1994. V. 55. №4. P. PL79-84.
604. Stieger B., Hagenbuch B., Landmann L., Hochli M., Schroeder A., Meier P.J. In situ localization of the hepatocytic Na+/taurocholate cotransporting polypeptide in rat liver. //Gastroenterology 1994. V. 107. P. 1781-1787.
605. St-Pierre M.V., Kullak-Ublick G.A., Hagenbuch B., Meier P.J. Transport of bile acids in hepatic and non-hepatic tissues. // J Exp Biol. 2001. V. 204. P. 1673-1686.
606. Strazzabosco M. New insights into cholangiocyte physiology // J Hepatol. 1997. V. 27. P. 945-952.
607. Strazzabosco M., Mennone A., Boyer J.L. Intracellular pH regulation in isolated rat bile duct epithelial cells//J Clin Invest. 1991. V. 87. P. 1503-1512.
608. Strazzabosco M., Spirli C., Okolicsanyi L. Pathophysiology of the intrahepatic biliary epithelium // J Gastroenterol Hepatol. 2000. V. 15. P. 244253.
609. Strazzabosco M., Zsembery A., Fabris L. Electrolyte transport in bile ductular epithelial cells // J Hepatol. 1996. V. 24. P. 78-87.
610. Strimbu-Gozarin M., Wilier J.C., LeBarsen D. Effect of mu,delta and kappa pioid antagonists on the depression of a C-fiber reflex by intrathecal morphine and DAGO in the rat // J Pharmacol Exp Ther. 1994. V. 269. №3. P. 10071020.
611. Su T.P. Delta opioid peptideD- Ala(2),D-Leu(5).enkephalin promotes cell survival. // J Biomed Sci. 2000. V. 7. №3. P. 195-199.
612. Su X., Julia V., Gebhart G.F. Effects of intracolonic opioid receptor agonists on polymodal pelvic nerve afferent fibers in the rat // J Neurophysiol. V2000. . 83. P. 963-970.
613. Sugiura H., Nakanuma Y. Secretory component and immunoglobulins in the intrahepatic biliary tree and peribiliary glands in normal livers and hepatholithiasis // Gastroenterologia Japonica. 1989. V. 24. P. 308-314.
614. Suh H.W., Song D.K., Huh S.O., Kim Y.H. Involvement of dynorphin in immobilization stress-induced antinociception in the mouse // Eur Neuropsychopharmacol. 2000. V. 10. P. 407-413.
615. Sumantra D., Chatterjee T., Ganguly A. Role of adrenal steroids on electroacupuncture analgesia and on antagonising potency of naloxone // Pain. 1984. V. 18. №2. P. 135-143.
616. Suzuki H., Sugiyama Y. Transport of drugs across the hepatic sinusoidal membrane: sinusoidal drug influx and efflux in the liver. // Semin Liver Dis. 2000. V. 20. P. 251-263.
617. Suzuki Y., Goto K., Shiizaki K., Omiya Y., Ishige A., Komatsu Y., Kamei J. Antinociceptive effect of U-50488H, a kappa-opioid agonist, in streptozotocin-induced diabetic mice // J Pharm Pharmacol. 2001. V. 53(4). P. 521-526.
618. Svensson G., Holmberg S.B., Friman S. Influence of liver transplantation and cyclosporin on bile secretion an experimental study in the rat // Transpl Int. 1995. V. 8. №1. P. 27-34.
619. Szelenyi Z. Cholecystokinin and thermoregulation — a mini-review. Peptides // 2001. V. 22. P. 1245-1250.
620. Tanaba A., Katagiri K., Hoshino M., Hayakawa T., Tsukada K., Takeuchi T. Endotelin-1 stimulates bile acid secretion and vesicular transport in the isolated perfused rat liver // Am J Physiol. 1994. V. 266. Pt. 1. №2. P. G324-329.
621. Tanaka A., Katagiri K., Hoshino M., Hayakawa T., Tsukada K., Takeuchi T. Endotelin 1 stimulates bile acid secretion and vesicular transport in isolated perfused rat liver // Am J Physiol. 1994. V. 266. №2. Pt. 1. P. G 324329.
622. Tao P.L., Hwang C.L., Chen C.Y. U50,488 blocks the development of morphine tolerance and dependence at a very low dose in guinea pigs // Eur J Pharmacol. 1994. V. 256. №3. P. 281-286.
623. Tarada T., Nakanuma Y. Innervation of intrahepatic bile ducts and peribiliary glands in normal human livers, extrahepatic biliary obstruction and hepatolithiasis. An immunohystochemical study // J Hepatology. 1989. V. 9. №2. P. 141-148.
624. Taussig R., Sanchez S., Rifo M., Gilman A.G., Belardetti F. Inhibition of the co-conotoxin-sensitive calcium current by distinct G proteins // Neuron. 1992. V. 26. P. 799-809.
625. Tavoloni N. The intrahepatic biliary epithelium: an area of growing interest in hepatology // Semin Liver Dis. 1987. V. 7. P. 280-292.
626. Terenius L., Wahistrom A. Inhibitors of narcotic receptor binding in brain extracts and cerebrospinal fluid // Acta Pharmacol Toxicol. 1974. №35. P. 5557.
627. Terenius L., Walhstrom A. Search for an endogenous ligand for the opiate receptor // Acta Physiol Scand. 1975. №94. P. 74-78.
628. Terman G.W., Wagner J.J., Chavkin C. Kappa opioids inhibit induction of long-term potentiation in the dentate gyrus of the guinea pig hippocampus // J Neurosci 1994. V. 14. №8. P. 4740-4747.
629. Thornton J.R., Losowsky M.S. Methionine enkephalin is increased in plasma in acute liver disease and is present in bile and urine // J Hepatol. 1989. V. 8(1). P. 53-59.
630. Tietz P., Alpini G., Pham L.D., LaRusso N.F. Somatostatin inhibits secretin-induced ductal choleresis in vivo and exocytosis by cholangiocytes // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 1995. V. 269. P. G110-G118.
631. Torrence-Campbell C., Bowen W.D. Differential solubilization of rat liver sigma 1 and sigma 2 receptors: retention of sigma 2 sites in particulate fractions // Eur J Pharmacol. 1996. V. 304(1-3). P. 201-210.
632. Trauner M., Boyer J.L. Bile Salt Transporters: Molecular Characterization, Function, and Regulation // Physiol. Rev. 2003. V. 83. P. 633-671.
633. Trauner M., Meier P.J., Boyer J.L. Molecular pathogenesis of cholestasis. // N Engl J Med. 1998. V. 339. P. 1217-1227.
634. Trauner M., Meier P.J., Boyer J.L. Molecular regulation of hepatocellular transport systems in cholestasis. //J Hepatol. 1999. V. 31. P. 165-178.
635. Tsao L.I., Su T.P. IP3 receptor antagonist heparin uncompetitively inhibits 3H.(+)-SKF-10047 binding to sigma receptors // Eur J Pharmacol. 1996. V. 311(1). P. R1-R2.
636. Tseng L.F., Collins K.A. Antisence oligonucleotide to a delta opioid receptor given intrathecally blocks i.c.v. administered bete-endorphin-induced antinociception in the mouse // Life Sci. 1994. V. 55. №7. P. PL 127-131.
637. Tsuneki K.} Ichihara K. Electron microscope study of vertebrate liver innervation // Arch Histol Jpn. 1981. V. 44. P. 1-13.
638. Tsushida D., Fukuda H., Koda K., Miyazaki M., Pappas T.N., Takahashi T. Central effect of mu-opioid agonists on antral motility in conscious rats. // Brain Res. 2004. V. 1024. №1-2. P. 244-250.
639. Turukawa N., Okada H. Effects of selective vagal stimulation on the gallbladder and sphincter of Oddi and peripheral vagal routes mediating bile evacuative responses induced by hypothalamic stimulation // Jpn J Physiol. 1992. V. 42. №2. P. 321-334.
640. Twitchell W.A., Rane S.G. Nucleotide-independent modulation of Ca2+-dependent K+ channel current by a p-type opioid receptor // Mol. Pharmacol. 1994. V. 26. P. 793-795.
641. Ueda H., Harada H., Nozaki M.,Katoda T., Ui M., Satoh M.,Takagi H. Reconstitution of rat brain p. opioid receptors with purified guanine nucleotide-binding regulatory proteins Gi and G0 // Proc Natl Acad Sci USA. 1988. V. 85. P. 7013-7017.
642. Ujhazy P., Ortiz D., Misra S., Li S., Moseley J., Jones H., Arias I.M. Familial intrahepatic cholestasis 1: studies of localization and function. // Hepatology. 2001. V. 34. P. 768-775.
643. Ulens C., Daenens P., Tytgat J. Changes in GIRK1/GIRK2 deactivation kinetics and basal activity in the presence and absence of RGS4 // Life Sci. 2000. V. 67. P. 2305-2317.
644. Ulrich C., Holtmann M., Miller J.L. Secretin and vasoactive intestinal peptide receptors: members of a unique family of G protein-coupled receptors // Gastroenterology. 1998. V. 114. P. 382-397.
645. Vaccarino A.L., Kastin A.J. Endogenous opiates: 2000 // Peptides. 2001. V. 22. Is. 12. P. 2257-2328.
646. Vaccarino A.L., Olson G.A., Olson R.D., Kastin A.J. Endogenous opiates: 1998 // Peptides. 1999. V. 20. P. 1527-1574.
647. Vaccarino F.J. CCK, addiction and anxiety. In: Bradwejn J., Vasar E., editors. Cholecystokinin and anxiety: from neuron to be-havior. Austin (TX): R.G. Landes Company; 1995. P. 127-142.
648. Vaccarino F.J. Nucleus accumbens dopamine-CCK interactions in psychostimulant reward and related behaviors // Neurosci Biobehav Rev. 1994. V. 18. P 207-214.
649. Vaccarino F.J., Rankin J. Nucleus accumbens cholecystokinin (CCK) can either attenuate or potentiate amphetamine-induced Competing interests: None declared. CCK receptor subtypes // J Psychiatry Neurosci. 2003. V. 28(3)
650. Valle L., Puig M., Pol O. Effects of (¿-opioid receptor agonists on intestinal secretion and permeability during acute intestinal inflammation in mice // Eur J Pharmacol. 2000. V. 389. P. 235-242.
651. Valverde O., Maldonado R., Fournie-Zaluski M.C., Roques B.P. Cholecystokinin B antagonists strongly potentiate antinociception mediated by endogenous enkephalins // J Pharmacol Exper Ther. 1994. V. 270. №1. P. 7778.
652. Van-der Bergh P., Rozing J., Nagelkerken L. Identification of distinct sites of beta-endorphin that stimulate lymphokine production by murine CD4+ T cells // Lymphykine Cytokine Res. 1994. V. 13. №2. P. 63-69.
653. Vanderah T.W., Lai J., Yamamura H.I., Porreca F. Antisense oligodeoxynucleotide to the CCKB receptor produces naltrindoleand Leu5.enkephalin antiserum-sensitive enhancement of morphine antinociception//Neuroreport. 1994. V. 5. P. 1-5.
654. Veith C.M., Thalhammer T., Felberbauer F.X., Craf J. Relationship of hepatic cholate transport to regulation of intracellular pH and potassium // Biochim Biophys Acta. 1992. V. 1103 №1. P. 51-61.
655. Verkman A.S. Mechanisms and regulation of water permeability in renal epithelia // Am J Physiol Cell Physiol. 1989. V. 257. P. C837-C850.
656. Villanger O., Veel T., Holthe M.R., Cragoe E.J. Jr., Raeder M.G. Secreretinstimulates bile ductules to secrete both H+ and HCO3" ions // Acta Physiol Scand. 1992. V. 146. №3. P. 369-376.
657. Vore M. Canalicular transport: discovery of ATP-dependent mechanisms // Toxicol Appl Pharmacol. 1993. V. 118. №1. 2-7.
658. Walker J.M., Bowen W.D., Walker F.O., Matsumoto R.R., de Costa B., Rice K.C. Sigma receptors: Biology and function // Pharmacol. Rev. 1991. V. 26. P. 355-402.
659. Walker J.S. Anti-inflammatory effects of opioids // Adv Exp Med Biol. 2003. V. 521. P. 148-160.
660. Walker S., Rudolph G., Raedsch R., Stiehl A. Intestinal absorbtion of ursudeoxycholic acid in patients with extrahepatic biliary obstruction and bile drainage// Gastroenterology. 1992. V. 102. №3. P. 810-815.
661. Walsh J.H. Gastrointestinal hormones: secretin. In: Physiology of the Gastrointestinal Tract (2nd ed), edited by Johnson L.R. New York: Raven. 1987. P. 206-224.
662. Walsh J.H., Mayer E.A.I Gastrointestinal hormones. In: Gastrointestinal Disease (5th ed), edited by Sleisenger M.H., Fordtran J.S. London, UK: Saunders. 1993. P. 18-44.
663. Walters H.C., Craddock A.L., Fusegawa H., Willingham M.C., Dawson P.A. Expression, transport properties, and chromosomal location of organic anion transporter subtype 3. // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2000. V. 279. P. G1188-G1200.
664. Wang C.H., Zhou D.H., Chen J., Li G.E., Pei G., Chi Z.Q. Binding properties of C-truncated delta opioid receptors // Zhongguo Yao Li Xue Bao. 1997. V. 18. №4. P. 337-340.
665. Wang D.Q., Schmitz F., Kopin A.S., Carey M.C. Targeted disruption of the murine cholecystokinin-1 receptor promotes intestinal cholesterol absorption and susceptibility to cholesterol cholelithiasis // J Clin Invest. 2004. V. 114(4). P. 521-528.
666. Wang G.Y., Wu S., Pei J.M., Yu X.C., Wong T.M. Kappa- but not delta-opioid receptors mediate effects of ischemic preconditioning on both infarct and arrhythmia in rats // Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2001. V. 280(1). P. H384-H391.
667. Wang J.F., Ren M.F., Han J.S. Mobilization of calcium from intracellular stores is one of the mechanisms underlying the antiopioid effect of cholecystokinin octapeptide // Peptides. 1992. V. 13. P. 947-951.
668. Wang R.Y. Cholecystokinin, dopamine, and schizophrenia: re-cent progress and current problems // Ann N Y Acad Sci. 1988. V. 537. P. 362-379.
669. Wang X.J., Han J.S. Modification by cholecystokinin octapeptide of the binding of p-, delta- and k-opioid receptors // J. Neurochem. 1989. V. 55. P. 1379-1382
670. Wank S.A. Cholecystokinin receptors editorial. // Am J Physiol. 1995. V. 269. P. G628-G646.
671. Watanabe N., Otsuki M. A cholecystokinin receptor antagonist, loxiglumide , stimulates biliary secretion in conscious rats // Eur J Pharmacol. 1994. V. 264. №3. P. 331-336.
672. Wegener K., Kummer W. Sympathetic noradrenergic fibers as the source of immunoreactive alpha-neoendorphin and dynorphin in the guinea pig heart. // Acta Anat (Basel). 1994. V. 151. №2. P. 112-119.
673. Wei E.T., Kiang J.G. Peripheral opioid receptors influensing heart rate in rats // Opioid peptides in the periphery, Proc Intern Symp Rome, Amsterdam May 1984. P. 95-102.
674. West S.D., Helmer K.S., Chang L.K., Cui Y., Greeley G.H., Mercer D.W. Cholecystokinin secretagogue-induced gastroprotection: role of nitric oxide and blood flow // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2003. V. 284(3). P. G399-410.
675. West S.D., Mercer D.W. Cholecystokinin-induced gastroprotection: a review of current protective mechanisms // Dig Dis Sci. 2004. V. 49(3). P. 361369.
676. Wiesenfeld-Hallin Z., Xu X.J. Opioid-antiopioid interactions. In: Opioids in pain control Basic and clinical aspects. Ed.: C. Stein. Cambridge University Press. 1999. P. 131-142.
677. Wiesenfeld-Hallin Z., Xu X.J. The role of choleeystokinin in nociception, neuropathic pain and opiate tolerance // Regul. Pept. 1996. V. 65. P. 23-28.
678. Wiesenfeld-Hallin Z., Xu X.J., Hokfelt T. The role of spinal cholecystokinin in chronic pain states // Pharmacol Toxicol. 2002. V. 91. №6. P. 398-403.
679. Wiley J.W., Moisés H.C., Gross R.A., MacDonald R.L. Dynorphin A-mediated reduction in multiple calcium currents involves a G0 a-subtype G protein in rat primary afferent neurons // J. Neurophysiol. 1997. V. 26. P. 13381348.
680. Wilson M.A., Burt A.R., Milligan G., Anderson NG. Mitogenic signalling by delta opioid receptors expressed in rat-1 fibroblasts involves activation of the p70s6k/p85s6k S6 kinase. // Biochem J. 1997. V. 1. №325. Pt. 1. P. 217222.
681. Wimpey T.L., Chavkin C. Opioids activate both an inward rectifier and a novel potassium conductance in the hippocampal formation // Neuron. 1991. V. 6. P. 281-289.
682. Wittert G., Hope P., Pyle D. Tissue distribution of opioid receptor gene expression in the rat // Biochem Biophys Res Commun. 1996. V. 218(3). P. 877-881.
683. Wong Y.H., DemoliouMason C.D., Barnard E.A. Opioid receptors in magnesium-digitonin-solubilized rat brain membranes are tightly coupled to a pertussis toxin sensitive guanine nucleotide-binding protein // J Neurochem. 1989. V. 52. P. 999-1009.
684. Wood J.D., Galligan J.J. Function of opioids in the enteric nervous system // Neurogastroenterol. Motil. 2004. V. 16(2). P. 17-28.
685. Wunderlich G.R., DeSousa N.J., Vaccarino F.J. Cholecystokinin modulates both the development and the expression of behav-ioral sensitization to amphetamine in the rat // Psychopharmacol-ogy. 2000. V. 151. P. 283-290.
686. Xie Y.F., Wang J., Huo F.Q., Jia H., Tang J.S. Mu but not delta and kappa opioid receptor involvement in ventrolateral orbital cortex opioid-evoked antinociception in formalin test rats // Neuroscience. 2004. V. 126(3). P. 717726.
687. Xu H.S., Rosenlof L.K., Pruett T.L., Jones R.S. Prostaglandin Ei icreases survival with extended anhepatic phase during liver transplantation // Ann Surg. 1994. V. 220. №1. P. 53-58.
688. Xu X.J., Elfvin A., Hao J.X., Fournie-Zaluski, Roques B.P., Wiesenfeld-Hallin Z. CI 988, an antagonist of the cholecystokinin-B receptor, potentiates endogenous opioid-mediated antinociception at spinal level // Neuropeptides. 1997. V. 31. P. 287-291.
689. Yamanouchi K., Yanaga K., Okudaira S., Eguchi S., Furui J., Kanematsu T. D-Ala2, D-Leu5. enkephalin (DADLE) protects liver against ischemia-reperfusion injury in the rat // J Surg. Res. 2003. V. 114(1). P. 72-77.
690. Yamashita G., Tazuma S., Kajiyama G. Effects of organic anions on biliary lipid secretion in rats. Importance of association with biliary lipid structures // BiochemJ. 1992. V. 286. Pt.l.P. 193-196.
691. Yamatani K., Saito K., Takahashi K., Ohnuma H., Manaka H., Sasaki H. Hormone-specific combinations of isoforms of adenylyl cyclase and phosphodiesterase in the rat liver // Regul Pept. 2001. V. 99(1). P. 45-52.
692. Yamatani K., Sato N., Takahashi K., Hara M., Sasaki H. A rise in cyclic AMP with a lack of glycogenolysis by secretin in the isolated perfused rat liverand its inhibition by epinephrine // Biochem Biophys Res Commun.1983. V. 115(2). P. 743-748
693. Yamazaki M., Mizoguchi H., Ohsawa M., Tseng L.F., Suzuki T., Narita M. Implications of Ca2+-activated CF channels in the 8-opioid receptor-mediated antinociception in the mouse spinal cord //Neurosci Lett. 2000. V. 295. P. 113115.
694. Yamazaki T., Akiyama T, Mori H. Effects of nociceptin on cardiac norepinephrine and acetylcholine release evoked by ouabain. // Brain Res. 2001. V. 904. №1. P. 153-156.
695. Yang, H.Y.T., Fratta W., Majabe E.A., Costa E. Isolation, sequencing, synthesis and pharmacological characterization of two brain neuropeptides that modulate the action of morphine // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. V. 82. P. 7757-7761.
696. Yassin R.R., Clearfield H.R., Little K.M. Gastrin's trophic effect in the colon: identification of a signaling pathway mediated by protein kinase C // Peptides. 1993. V. 14. P. 1119-1124.
697. Yassin R.R., Little K.M. Early signaling mechanism in colonic epithelial cell response to gastrin // Biochem J. 1995. V. 311. P. 945-950.
698. Yasuda K, Raynor K, Kong Het al.Cloning and functional comparison of kappa and delta opioid receptors from mouse brain // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1993. V. 26. P. 6736-6740.
699. Yeomans M.R., Gray R.W. Opioid peptides and the control of human ingestive behaviour // Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 2002. V. 26. Is. 6. P. 713-728.
700. Yoon S.H., Lo T.M., Loh H.H., Thayer S.A. Delta-opioid-induced liberation of Gbetagamma mobilizes Ca2+ stores in NG108-15 cells. // Mol Pharmacol. 1999. V. 56. №5. P.902-908.
701. Yoshida H., Kuronuma Y., Iijima M., Tamano T., Harada T. Effects of glutathione isopropil ester on bile flow in glutathione-depleted rats // Arch Int Pharmacodyn Ther. 1993. V. 322. P. 105-114.
702. Young W.S. 3rd, Wamsley J.K., Zarbin M.A., Kuhar M.J. Opioid receptors undergo axonal flow. // Science. 1980. V. 210. №4465. P. 76-78.
703. Yousef I., Mignault D., Tuchweber B. Effect of complete sulfation of bile acids on bile formation: role of conjugation and number of sulfate groups // Hepatology. 1992. V. 15. №3. P. 438-445.
704. Yuan C.S., Foss J.F. Methylnaltrexone: investigation of clinical applications //Drug Development Research. 2000. V. 50. P. 133-141.
705. Yuan C.S., Foss J.F., O'Connor M., Karrison T., Osinski J., Roizen M.F., Moss J. Effects of enteric-coated methylnaltrexone in preventing opioid-induced delay in oral-cecal transit time // Clin Pharmacol Ther. 2000a. V. 67. P. 398-404.
706. Yuan X.P., Lin S.X., Yuan S.L., Qin B.Z., Ma D. Distribution, content and action site of leucine-enkephalin in pulmonary artery wall of rat and rabbit // Sheng Li Xue Bao. 1994. V. 46. №4. P. 381-389.
707. Zaal K.J., Kok J.W., Sormunen R., Estelinen S., Hoekstra D. Intracellular sites involved in the biogenesis of bile canaliculi in hepatic cells // Eur J Cell Biol. 1994. V. 63. №1. P. 10-19.
708. Zaitsev S.V., Vinogradov V.A., Sergeeva M.G., Dmitrieva O.F., Ivanikov I.O. Radioimmunologic and radioreceptor studies of the pharmacokinetics of the enkephalin analog dalargin in man // Biull Eksp Biol Med. 1986. V. 101(6). P. 702-704.
709. Zamyatnin A.A. EROP-Moscow: Specialized data bank endogenous regulatory oligopeptides // Protein Sequence and Data Analisis. 1991. №4. P. 49-52.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.